JP2007510154A - 検体/ポリマー活性剤の二層配置による検体検出法 - Google Patents
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Abstract
Description
一つの観点では、本発明は検出電極により検体分子を電気化学的に検出するための方法を提供し、当該方法は:
(a)検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子を検出電極上に固定化し;
(b)検出電極を検出されるべき検体分子を含むと想定される溶液と接触させ;
(c)前記溶液中に含まれる検体分子を検出電極上で捕捉分子と結合することを可能にし、それにより捕捉分子と検体分子間の複合体の形成を可能にし、前記複合体が電極上で第1層を形成し;
(d)検出電極を電気化学的活性剤と接触させ、ここでの前記電気化学的活性剤は静電気の正味電荷(捕捉分子と検体分子間で形成される複合体の静電気の正味電荷に相補的なものである)を有し、それによって電極上に第二層を形成し、ここでの第二層及び第一層は一緒になって電導性の二層を形成し;
(e)検出電極を電気化学的活性剤へ又は電気化学的活性剤から、電極から又は電極へ、それぞれ電子を運搬することを可能にする試薬と接触させ;
(f)検出電極での電気計測を実施し;
(g)得られた電気計測の結果をコントロール計測の結果と比較することにより検体を検出すること、
を含んで成る。
(a)検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子と検体分子との複合体を含む検出電極上の第一層;及び
(b)電気化学的活性剤を含む第二層、ここでの前記電気化学的活性剤は、捕捉分子及び検体分子間で形成される複合体の静電気の正味電荷と相補性である、静電気の正味電荷を有し、ここでの前記第二層及び第一層は一緒になって電導性の二層を形成する、
を含んで成る。
(a)検出電極
(b)検出されるべき検体分子と結合することができる補足分子と検体分子との複合体を含む検出電極上の第一層;及び
(c)電気化学的活性剤を含む第二層、ここでの前記電気化学的活性剤は、捕捉分子と検体分子の間で形成された複合体の静電気の正味電荷と相補性である静電気の正味電荷を有し、ここでの第二層及び第一層は一緒になって電導性の二層を形成する、
を含んで成る。
(a)重合可能なフェロセン誘導体を含む第一の単量体ユニット;及び
(b)(末端の)第一の酸又は塩基、正味電荷を捕捉できる酸又は塩基官能基を有すアクリル酸誘導体を含む第二の単量体ユニット
を含んで成る。
重合可能なフェロセン誘導体を含む第一の単量体ユニットと、正味電荷を獲得することができる酸又は塩基官能基を有するアクリル酸誘導体を含む第二の単量体ユニットをポリマー化し、ここで前記ポリマー化は水性アルコール培地中で実行されること、
を含んで成る。
本発明は、電気化学的活性剤(溶解した形態で存在し、且つ溶液中のその正味電荷が検出されるべき検体分子、又は同一物を含む複合体の正味電荷に相補的(即ち反対)である)の使用により有意に改良され得るバイオポリマー等の検体(一般的に非電導性又は僅かな電導性)の検出の感度を見出すことに基づく。それらの反対電荷のために、当該検体及び同一物を含む複合体は、電気化学的活性剤と一緒になって、静電気の層間を経由した自己集合を介して非常に安定な二層を形成する。この"電子交換ブリッジ"(又は"電子シャトル")としての二層機能は、電極の表面を完全に横断し、検体の検出のために使用される電極で電流に影響を与える。二層の使用は、電極に対して、より大きな、そしてより均質な接触面積を提供するという利点も有し、当業界において公知の他の手順と比較した、本発明の検出方法の増加した感度にも寄与する。
(a)検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子、及び検体分子の複合体を含む検出電極上に固定された第一相;及び
(b)電気化学的活性剤を含む第二層、ここでの前記電気化学的活性剤は静電気の正味電荷を有し、それは捕捉分子と検体分子間で形成される複合体の静電気の正味電荷に相補的であり、ここでの第二層及び第一層は一緒になって電導性の二層を形成する、
を含んで成る。
(a)検出電極;
(b)検出されるべき検体分子に結合することができる捕捉分子と検体分子間の複合体を含む検出電極上の第一層;及び
(c)電気化学的活性剤を含む第二層、前記電気化学的活性剤は静電気の正味電荷を有し、捕捉分子と検体分子間で形成される複合体の静電気の正味電荷に相補的であり、ここでの前記第二層と第一層は一緒になって電伝性の二層を形成する、
を含んで成る。
式中Rは、CnH2n-NH2、CnH2n-COOH、NH-CnH2n-PO3H、及びNH-CnH2n-SO3Hから成る群から選定され、ここでのアルキル鎖は任意に置換され、そしてここでのnは0から12、好適には0から8の整数である。従って、当該アルキル基は直鎖又は分岐してよく、そして二重もしくは三重結合、又は環構造、例えばシクロヘキシルを含むことができる。置換基Rの中での適した脂肪族部分の例をいくつか挙げるとメチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、ペンチル、イソペンチル、ヘキシル、シクロヘキシル又はオクチルである。脂肪族基は更に、例えばフェニル等の芳香族基、ハロゲン原子、更なる塩基もしくは酸基、又は0-アルキル基によって置換され得る。置換基として存在できる例示的な芳香族基は、フェニル、トルオイル又はナフチルである。ハロゲン原子はフッ素、塩素、又は臭素から選定され得る。適したo-アルキル基の例は、メトキシ、エトキシ、プロポキシ又はブトキシであり、一方n-アルキル基は-NHMe、-N(Me)2、-N(エチル)2又は-N(プロピル)2から選定される。
アクリル酸誘導体単量体単位を水性アルコール性媒体に溶解し;その後、
フリーラジカルイニシエーターを付加し;そしてその後
重合可能なフェロセン誘導体単量体単位を当該混合物に付加すること、
を含む、前記第一及び第二の単量体をポリマー化する前に、前反応混合物を産生することを更に含む。
一般的に本発明による核酸の検出は、図1に説明した通りに実施される。最初に捕捉分子 (20)として作用するチオール化オリゴヌクレオチドの混合物(ラベルとしてのビオチン修飾の運搬もする)及びバックグラウンドを減少させるために遮断剤(15)として作用するチオール分子を金の電極表面(10)上に固定する。その後、当該電極を所定の標的検体(30)を含むと想定される溶液へ曝す。引き続き、その相補的ビオチン化標的DNA(即ち、捕捉分子)への酵素-複合体(50)のハイブリダイゼーションは、アビジン-ビオチン相互作用を経由して付着される。最終的に、酸化還元ポリマー(40)は、層間の静電気の自己集合を通して、電極表面へもたらされる。当該酸化還元ポリマー層は電気化学的に標的DNAに結合した酵素ラベルを活性化する。基質分子(55)が存在する中で、基質の触媒酸化から発生した電流を電流滴定的に検出する。当該電流はサンプル溶液中での標的検体濃度と直接的に相互関係にある。
ラット肝mRNAの抽出は、Dynabead(商標)mRNA DIRECT(商標)キット(Dynal ASA, Oslo, Norway)を用いて製造業者の指示に従って実施した。逆転写(RT)の間、1×eAMVのSigmaAldrich製の緩衝剤(50 mM Tris-HCI、pH8.3、40 mM KCI、8.0 mM MgCI2、1 mMDTT)、それぞれ500μMのdNTP、1.0μMのアンチセンスプライマー、20 U RNaseインヒビター及び20 U 増強させたトリ骨髄芽球症ウィルス逆転写酵素(eAMV)を含む、10 ngの当該mRNAを20μlの総容量で使用した。サンプルを50分、56℃で、DNAサーマルサイクラー(Gene AmpPCR System 9700, Applied Biosystems, Foster City, CA, 米.)中で培養し、そして得られたcDNAをPCR増幅のためのテンプレートとして直接使用した。
DNA検体の検出に先立ち、捕捉プローブとして働くチオール化したオリゴヌクレオチドの混合物、及びチオール分子を金の電極表面上に自己集合を介して固定化した。標的DNAの取り込みに関する非-ハイブリダイゼーションを最小化するために、陰イオン性チオール分子を用いて、混合した単層の遮断成分を形成する。以下の捕捉プローブを使用した:GAPHの検出のための、5'-T12TTACTCCTTGGA GGCCATGTAGG-3'(SEQ ID NO:5);及び5'-T12ATGGTGAAGGTCGGTGTCAACGG-3'(SEQ ID NO:6);TP53の検出のための、5'-T12ATGGAGGATTCACAGTCGGA-3'(SEQ ID NO:7)及び5'-T12TCAGTCTGAGTCAGGCCCCA-3'(SEQ ID NO:8);及びコントロールとして、5'-T12CCTCTCGCGAGTCAACAGAAACG-3'(SEQID NO:9)。オリゴヌクレオチドを、標準方法による11-メルカプトウンデカン酸を用いてそれらの5'-末端でチオール化し、そして 金の電極上に50μMのオリゴヌクレオチド溶液中にクリ−ン電極を3-16時間曝すことを介して集合させた。その後、残存している表面を11-メルカプトウンデカン酸(MUA)で遮断した。
予備的なハイブリダイゼーション試験では、PCR増幅混合物を更なる精製なしで、検体として使用した。ビオチン化GAPDHcDNA(実施例1.1参照)を標的として、そしてハイブリダイゼーション緩衝剤として0.10 M NaCIを含むTE(10 mM Tris-HCI、1.0 mM EDTA)を使用した。ハイブリダイゼーション前に、標的cDNAを95℃で、5分間変性させ、そして氷上で冷却した。ハイブリダイゼーションは55℃で、30分間水槽で実施し、ここでのGAPDH cDNAは相補的な捕捉プローブにより選択的結合し、それにより電極表面上に固定した。反復したハイブリダイゼーション緩衝剤による洗浄工程では、全ての非特異的核酸を除去した。その後、当該電極を2.5 RIグルコースオキシダーゼ/アビジンD-複合体(GOx-A、5mg/ml;Vector Laboratories, San Diego, CA, USA)へ35℃で30分間曝した。PBS緩衝剤による3回の洗浄工程の後、過剰な酵素ラベルを除去して、電極を少なくとも10分間、2.5μIのPVP-PM-Os酸化還元ポリマー溶液へ曝し、そしてPBS緩衝剤ですすいだ。
ビオチン化ラットTP53cDNAを実施例1で発表したように合成した。PCR増幅後、TP53cDNAの総量は17.2ng/μl(22.5pM)であると決定された。10、50、100、200、500及び800 fMのTP53cDNA(TE緩衝剤中で希釈した)を含むサンプルを解析した。PCR混合物中のTP53特異的cDNAを酵素ラベル及び酸化還元ポリマーをそれぞれ付加する前にその相補的捕捉プローブにより、電極の表面に固定した(実施例1.3参照)。TP53cDNAの量と直接一致する触媒電流は0.36 Vで、検出された。図6に描かれるように、当該電流はこの範囲内のTP53cDNAの濃度で線形的に増加した。検出限界は約1.0 fMで見出された。サンプル容積を考慮に入れると、TP53 DNA分子のわずか1500個のコピーが当該提案されたアプローチを用いて成功裏に検出された。我々の認識では、これは今まで報告されたゲノムDNAの電気化学的に検出される最も少ない量である。
核酸バイオセンサーは混合物中のE.coli 16S rRNA及びGAPDHcDNAの検出に応用した。当該混合物は:0.5-1500 fMのE.coli 16S rRNA、100-5000 fMのE.coli 23S rRNA、0.2-2000 fMの全長ラットGAPDHcDNA、1-500 mM BSA、及び1-100 mMの サケの精子のDNAを含んだ。GAPDH cDNAは、実施例1.1で発表したように、ラット肝mRNAを単離しそして引き続きPCR増幅により調製した。得られたGAPDH cDNAの総量は5.0±0.5μgであった。以後、PCR産物はpH 8.0のTris-EDTA緩衝剤で106倍(factor)に希釈した。
バイオセンサーの選択性は上記捕捉プローブ:5'-GCCAGCGTTCAATCTGAGCCATGATCAAACTC TTCAAAAAAAAAAAAAAAA-3'(SEQID NO:10)及び以下の合成オリゴヌクレオチド:相補性5'-AAATTGAAGAGTTTGATCATGGCTCAGATTGAACGCTGGCAAAAAAAAAAAAAACTCCTACGGGAGGCAGC-3'(SEQ ID NO: 12);単一塩基非適合5'-AAATTGAAGAGTTTGATCATGTCTCAGATTGAACGCTGGCAAAAAAAAAA AAAACTCCTACGGGAGGCAGC-3'(SEQ ID NO:13);2塩基不適合5'-AAATTGAAGAGTATGATCATGTC TCAGATTGAACGCTGGCAAAAAAAAAAAAAACTCCTACGGGAGGCAGC-3'(SEQ ID NO:14)(ヌクレオチド変異は下線で示される)を用いて評価した。捕捉プローブは、実施例1.2.で発表した通り、金の電極上に固定された。
検体濃度からの酸化電流の依存性を評価するために、GAPDH cDNA捕捉プローブの飽和量を金の電極の表面上で固定化し、そして10μMのビオチン化相補性GAPDH cDNAと接触させた。ハイブリダイゼーションにより、グルコースオキシダーゼ/アビジン-複合体をアビジン-ビオチン相互作用を介して付着させた。最終的に酸化還元ポリマーは層間の静電気的自己集合を通して、電極表面にもたらされた。PBS(pH7.4)は0.35 Vの処理電位で検出媒体として使用された。図9で説明するように、約20 mMまでのグルコールは、得られた酸化電流と検出された検体の量の間で線形性の関係にある。
タンパク質の検出(核酸について類推、実施例1参照)は図1a及び図1b中の概説のとおりに実施する。この場合、電極をチオール分子(例えば16-メルカプトヘキサデカン酸)で最初に覆ってよく、この場合、捕捉分子の共有結合のためのリンカー分子を供給する。捕捉分子のアミノ基と後に共有結合を形成するだろうリンカーのカルボン酸基を活性化するために、その後、被覆した電極を1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド/N-ヒドロキシ-スクシンイミド(EDC/NHS)の混合物の中に浸す。例えば、捕捉分子は、タンパク質性検体に結合親和性を有する抗体又は低分子量のリガンドであり得る。その後、当該電極を捕捉分子と検体分子の間に複合体を形成することを可能にする検体を含む疑いのある溶液と接触させる。その後、酵素ラベルが結合した酸化還元ポリマーを、層間の静電気性自己集合(図1aを参照)を通して電極表面にもたらす。基質分子の存在中で、基質の触媒酸化から発生した電流を電流測定的に検出する。電流はサンプル溶液中で標的検体濃度に直接相互関係する。図1b中に示す通り、サンドウィッチELISAと似た方法で検出を実施することもできる。この目的のために、捕捉分子としての抗体、及び検体を含む複合体を検体に結合親和性を有する第二の抗体と同様に接触させる。この第二の抗体は例えばグルコースオキシダーゼ等の酵素と接合してよく、それぞれ電気化学的活性剤へ又は電気化学的活性剤から、電極から又は電極へ電子を運搬することができる試薬として働く。その後、酵素ラベルを結合した酸化還元ポリマーは、電極表面と接触させられて、それにより、層間の静電気性の自己集合(図1a参照)を形成し、そしてポリペプチドの検出を可能にする。
"サンドウィッチ-ELISA様"手順を用いることは実施例3で説明され、ここでの抗体は捕捉分子として使用され、そして検体を有する本捕捉抗体の複合体は適切な酵素と接合した第二の抗体と接触し、薬物(例えばコカイン、モルヒネ等)、栄養物(サッカロース、アミノ酸等)、環境有害物質(例えばトリアジン、DDT等の殺虫剤)等の事実上任意の小さなリガンドが本発明によって検出され得ることは明白である。
グルコースオキシダーゼ(GOx、黒色アスペルギルス由来EC1.1.3.4、191 ユニット/mg)はFluka(CH-9470 Buchs,スイス)から購入した。フェロセン(Fc)、ビニルフェロセン(VFc)、アクリルアミド(AA)、アクリル酸(AC)、2-アクリルアミド-2-メチル-1-プロパンスルホン酸("アクリルアミド-スルホン酸"、AAS、カタログ番号28,273)及び過硫酸塩をSigmaAldrich(St. Luis, MO,米)から購入した。アセトン、エタノール、及びリン酸塩緩衝生理食塩水等の使用される他の全ての化学物質は、認定された分析的グレードであった。使用した全ての溶液は脱イオン化水で調製された。
10mlのエタノール/水(3対1)の混合溶媒中に溶解した1.0 gのアクリルアミドを含む3つのサンプルを調製した。0.10g/mlの酸素-不存在過硫酸塩溶液の0.30mlのアリコートを10分間、脱酸素した後にそれぞれのサンプルに付加した。0.05 gから0.16 g の範囲にある3つの量のビニルフェロセンを脱気したエタノール中に溶解し、3つのビニルフェロセン溶液サンプルを形成した。それぞれアクリルアミド、対、ビニルフェロセンの供給比率(w/w)が、95:5、90:10及び85:15となるように算出されたフェロセンの量がそれぞれのサンプルに付加される。それぞれのビニルフェロセンサンプルをアクリルアミド-イニシエーター混合物へ付加した。反応混合物を70℃で24時間、窒素環境中で還流した。冷却後、当該反応混合物を、酸化還元ポリマーを沈殿させるために迅速に攪拌したアセトンへ別々に滴下付加した。沈殿した酸化還元ポリマーをアセトンで洗浄し、そして水への溶解、アセトンでの沈殿の複合サイクルにより精製した。その後、当該精製産物を50℃、真空下で乾燥させた。
10 mlのエタノール/水(3:1)の混合溶媒に溶解した1.0 g アクリル酸を含む3つのサンプルを調製した。0.10g/mlの酸素不存在過硫酸塩溶液の0.30 mlアリコートを10分間脱酸素した後、それぞれのサンプルに付加した。0.05 gから0.16 gの範囲にある3つの量のビニルフェロセンを脱気したエタノール中に溶解させて、3つのビニルフェロセン溶液サンプルを形成した。それぞれアクリルアミド、対、ビニルフェロセンの供給比率(w/w)が、95:5、90:10及び85:15となるように算出されたビニルフェロセンの量がそれぞれのサンプルに付加される。その後、それぞれのビニルフェロセンサンプルをアクリルアミド-イニシエーター混合物へ付加した。反応混合物を70℃で24時間、窒素環境中で還流した。冷却後、当該反応混合物を、酸化還元ポリマーを沈殿させるために迅速に攪拌したアセトンへ別々に滴下付加した。沈殿した酸化還元ポリマーをアセトンで洗浄し、そして水への溶解、アセトンでの沈殿の複合的なサイクルにより精製した。その後、当該精製産物を真空下、50℃で乾燥させた。
10 mlのエタノール/水(3:1)の混合溶媒に溶解した1.0 g アクリル酸を含む3つのサンプルを調製した。0.10g/mlの酸素不存在過硫酸塩溶液の0.30 mlアリコートを10分間脱酸素した後、それぞれのサンプルに付加した。0.05 gから0.16 gの範囲にある3つの量のビニルフェロセンを脱気したエタノール中に溶解させて、3つのビニルフェロセン溶液サンプルを形成した。それぞれアクリルアミド、対、ビニルフェロセンの供給比率(w/w)が、95:5、90:10及び85:15となるように算出されたビニルフェロセンの量がそれぞれのサンプルに付加される。その後、それぞれのビニルフェロセンサンプルをアクリルアミド-イニシエーター混合物へ付加した。反応混合物を70℃で24時間、窒素環境中で還流した。冷却後、当該反応混合物を、酸化還元ポリマーを沈殿させるために迅速に攪拌したアセトンへ別々に滴下付加した。沈殿した酸化還元ポリマーをアセトンで洗浄し、そして水への溶解、アセトンでの沈殿の複合的なサイクルにより精製した。その後、当該精製産物を真空下、50℃で乾燥させた。
0.0μg、及び10μgのGOx、及び10μgのGOx及び10 mMのグルコースが存在する中でのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)溶液中の酸化還元ポリマー。
酸化還元ポリマーのタンパク質との交差-連鎖反応を実施し、得られた反応膜の電気化学的特質を研究した。酵素GOxを本実施例中で使用した。グルタルアルデヒド及びポリ(エチレングリコール)ジグリシジルエーテル(PEG)を交差-リンカーとして選定した。生物学的等級のグルタルアルデヒド(水中で50%、製品コード00867-1 EA)及びポリ(エチレングリコール)ジグリシジル(PEGDE)(製品コード03800)をSigma-Aldrichから得た。
Claims (46)
- 検出電極による検体分子の電気化学的検出のための方法であって:
(a)検出電極上で検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子を固定し;
(b)電極を検出されるべき検体分子を含むことが想定される溶液と接触させ;
(c)前記溶液中に含まれる検体分子を電極上の捕捉分子と結合させて、それによって、捕捉分子と検体分子間に複合体が形成され、当該複合体が検出電極上に第一層を形成し;
(d)検出電極と電気化学的活性剤を接触させ、当該電気化学的活性剤は、捕捉分子と検体分子の間で形成した複合体の静電気性正味電荷に相補的なものである静電気性正味電荷を有し、それにより電極上に第二層を形成し、当該第二層及び第一層は、一緒になって電導性の二層を形成し;
(e)検出電極を電気化学的活性剤へ又は電気化学的活性剤から、電極から又は電極へ、それぞれ電子を運搬することができる試薬と接触させ;
(f)検出電極で電気的計測を行い、そして;
(g)当該得られた電気的計測の結果をコントロール計測の結果と比較することによって検体を検出すること、
を含んで成る方法。 - 前記電気化学的活性剤が、検体と電極間で電子を運搬することができるポリマー性酸化還元メディエーターである、請求項1に記載の方法。
- 前記電気化学的活性剤が、金属イオンを含んで成る、請求項2に記載の方法。
- 前記金属イオンが、銀、金、銅、ニッケル、鉄、コバルト、オスミウム、ルテニウム、及びそれらの混合物から成る群から選定される、請求項3に記載の方法。
- 前記電気化学的活性剤が、ポリ(ビニルフェロセン)、ポリ(ビニルフェロセン)-コアクリルアミド、ポリ(ビニルフェロセン)-コ-アクリル酸、及びポリ(ビニルフェロセン)コ-アクリルアミド-(CH2)n-スルホン酸、及びポリ(ビニルフェロセン)-コ-アクリルアミド-(CH2)n-ホスホン酸、ここでn=0−12である、から成る群から選定される、請求項4に記載の方法。
- 前記電気化学的活性剤へ、又は電気化学的活性剤から電子を運搬することができる試薬が、酵素又は酵素複合体である、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、酸化還元酵素又は酸化還元酵素の混合物である、請求項6に記載の方法。
- 前記酸化還元酵素が、グルコースオキシダーゼ、水素ペルオキシダーゼ、ラクテートオキシダーゼ、アルコールデヒドロゲナーゼ、ヒドロキシブチレートデヒドロゲナーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、グリセロールデヒドロゲナーゼ、ソルビトールデヒドロゲナーゼ、グルコースデヒドロゲナーゼ、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ガラクトースデヒドロゲナーゼ、リンゴ酸オキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼ、キサンチンデヒドロゲナーゼ、アルコールオキシダーゼ、コリンオキシダーゼ、キサンチンオキシダーゼ、コリンデヒドロゲナーゼ、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ、ピルビン酸オキシダーゼ、オキサレートオキシダーゼ、ビリルビンオキシダーゼ、グルタメートデヒドロゲナーゼ、グルタメートオキシダーゼ、アミンオキシダーゼ、NADPHオキシダーゼ、尿酸オキシダーゼ、シトクロムCオキシダーゼ、及びアルコールオキシダーゼから成る群から選定される、請求項7に記載の方法。
- 前記捕捉分子が、検出されるべき検体と特異的に結合することができる、請求項1に記載の方法。
- 前記検出されるべき検体が、核酸、オリゴヌクレオチド、タンパク質、ペプチド、オリゴ糖、多糖及びそれらの複合体から成る群から選定される、請求項1に記載の方法。
- 前記検出されるべき検体が、核酸分子である、請求項10に記載の方法。
- 前記核酸分子が、予め規定された配列を有す、請求項11に記載の方法。
- 前記核酸分子が、少なくとも1つの一本鎖領域を含んで成る、請求項12に記載の方法。
- 前記捕捉分子が、検出されるべき核酸分子の一本鎖領域と相補性の配列を有する、少なくとも1つの核酸プローブである、請求項13に記載の方法。
- 前記検出されるべき検体が、タンパク質又はペプチドである、請求項10に記載の方法。
- 前記捕捉分子が、タンパク質又はペプチドと結合することができる少なくともリガンド上にある、請求項15に記載の方法。
- 電極を検体分子が含まれていると想定される溶液に接触させる前に、遮断剤が電極上に固定される、請求項1に記載の方法。
- 検出電極によって検体分子を電気化学的に検出するための方法であって:
(a)検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子を、検出電極上に固定し;
(b)電極を検出されるべき検体分子を含むと想定される溶液と接触させ;
(c)前記溶液中に含まれる検体分子を電極上の捕捉分子に結合させ、それによって捕捉分子と検体分子間に複合体が形成し、前記複合体が検出電極上に第一層を形成し;
(d)当該検出電極と電気化学的活性剤を接触させ、当該電気化学的活性剤は、捕捉分子と検体分子の間で形成した複合体の静電気性正味電荷に相補的なものである静電気性正味電荷を有し、それにより電極上に第二層を形成し、当該第二層及び第一層は、一緒になって電導性の二層を形成し、そして当該捕捉分子は、それぞれ電気化学的活性剤へ又は電気化学的活性剤から、電極から又は電極へ、電子を運搬することを可能にし;
(e)検出電極で電気的計測を実施し、そして;
(f)当該得られた電気的計測の結果をコントロール計測の結果と比較することによって検体を検出すること、
を含んで成る方法。 - 請求項1で規定したような検体分子の電気化学的検出を行うために適した、検出電極を含んで成る電極配置であって:
(a)検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子と、検体分子間の複合体を含む検出電極上の第一層;及び
(b)電気化学的活性剤を含む第二層であって、当該電気化学的活性剤が捕捉分子と検体分子間で形成される複合体の静電気性正味電荷に相補的である静電気性正味電荷を有し、ここでの第二層及び第一層は一緒になって電導性の二層を形成すること、
を含んで成る電極配置。 - 前記電気化学的活性剤が、前記検体と電極間で電子を運搬することができるポリマー性酸化還元メディエーターである、請求項19に記載の電極配置。
- 前記剤が金属イオンを含む検体の電導性を増加させる、請求項20に記載の電極配置。
- 前記金属イオンが銀、金、銅、ニッケル、鉄、コバルト、オスミウム、ルテニウム及びそれらの混合物から成る群から選定される、請求項21に記載の電極配置。
- それぞれポリマー性酸化還元メディエーターへ又はポリマー性酸化還元メディエーターから、電極から又は電極へ電子を運搬することができる試薬を更に含んで成り、当該試薬が電導性の二層に結合し、挿入し、又は付随する、請求項19に記載の電極配置。
- 前記試薬が酵素又は酵素複合体である、請求項23に記載の電極配置。
- バイオセンサーとしての請求項19に記載の電極配置の使用。
- 検体分子の電気化学的検出のためのバイオセンサーであって:
(a)検出電極;
(b)検出されるべき検体分子と結合することができる捕捉分子と検体分子間の複合体を含む検出電極上の第一層;及び
(c)電気化学的活性剤を含む第二層、当該電気化学的活性剤は、捕捉分子と検体分子の間で形成した複合体の静電気性正味電荷に相補的なものである静電気性正味電荷を有し、当該第二層及び第一層は、一緒になって電導性の二層を形成すること;
を含んで成るバイオサンサー。 - 水溶性酸化還元ポリマーであって:
(a)ポリマー化可能なフェロセン誘導体を含む第一の単量体単位;及び
(b)正味電荷を捕捉できる第一の酸又は塩基の官能基を有するアクリル酸誘導体を含む第二の単量体単位、
を含んで成る水溶性酸化還元ポリマー。 - 前記第二の単量体単位が、正味電荷を捕捉できる末端の第一の酸又は塩基官能基を有するアクリル酸誘導体を含んで成る、請求項26に記載の酸化還元ポリマー。
- 前記ポリマー化され得るフェロセン誘導体が、ビニル-フェロセン、アセチレン-フェロセン、スチレン-フェロセン、及びエチレンオキシド-フェロセンから成る群から選定される、請求項27に記載の酸化還元ポリマー。
- 前記フェロセン誘導体がビニルフェロセンである、請求項30に記載の酸化還元ポリマー。
- 前記酸化還元ポリマーの分子量が、約1000から5000ダルトンである、請求項27に記載の酸化還元ポリマー。
- 前記酸化還元ポリマーにローディングしているフェロセンが約3%から14%の間である、請求項27に記載の酸化還元ポリマー。
- 水溶性酸化還元ポリマーを調製するための方法であって、:ポリマー化され得るフェロセン誘導体を、正味電荷を捕捉できる酸又は塩基の官能基を有するアクリル酸誘導体を含む第二の単量体単位と共に含む第一の単量体単位をポリマー化することを含んで成り、前記ポリマーが水性アルコール性媒体中で実施される方法。
- 前記アルコール性媒体が、エタノール及び水を2:1から3:1の容積比で含む、請求項34に記載の方法。
- 前記ポリマー化が、フリーラジカルイニシエーターの付加により開始される、請求項34に記載の方法。
- 前記フリーラジカルイニシエーターが、過硫酸アンモニウム、過硫酸カリウム、及び過硫酸ナトリウムから成る群から選定される、請求項36に記載の方法。
- 前記付加されるフリーラジカルイニシエーターの重量比が、単量体の1グラム当り、約20 mgから40 mgの間である、請求項35に記載の方法。
- 前記ポリマー化が、還流下で、約60℃から80℃の温度で実施される、請求項34に記載の方法。
- 前記ポリマーが、不活性ガス環境中で実施される、請求項34に記載の方法。
- 前記ポリマー化が、約24時間実施される、請求項34に記載の方法。
- 前記第一及び第二の単量体をポリマー化する前に、反応前混合物を形成することを更に含んで成り:
アクリル酸誘導体単量体単位を水性アルコール性媒体に溶解させ、その後、フリーラジカルイニシエーターを付加し、その後、
ポリマー化され得るフェロセン誘導体単量体単位を付加し、反応前混合物を形成すること、を含んで成る、請求項34に記載の方法。 - 前記アクリル酸の反応前混合物中のポリマー化され得るフェロセン誘導体への供給率が付加された単量体の約5重量%から15重量%の間である、請求項42に記載の方法。
- 前記ポリマーされ得るフェロセン誘導体の単量体単位が、付加される前の水性アルコール性媒体中で溶解される、請求項42に記載の方法。
- 前記酸化還元メディエーターを有機溶媒中で沈殿させることを更に含んで成る、請求項42に記載の方法。
- 前記有機溶媒がエーテル及びケトンから成る群から選定される、請求項41に記載の方法。
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