JP2007503816A - β−カテニン/TCF活性化転写の調節 - Google Patents
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Abstract
Description
Wodarz et al., "Mechanisms of Wnt signaling in development," Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 14:59-88 (1998) Morin, P.J., "Beta-catenin signaling and cancer," Bioessays 21:1021-30 (1999) Moon et al., "The promise and perils of Wnt signaling through beta-catenin," Science 296:1644-46 (2002) Oving et al., "Molecular causes of colon cancer," Eur. J. Clin. Invest. 32:448-57 (2002) Gottardi et al., "Adhesion signaling: how beta-catenin interacts with its partners," Curr. Biol. 11:R792-4 (2001) Gottardi et al., "Adhesion signaling: how beta-catenin interacts with its partners," Curr. Biol. 11:R792-4 (2001) Huber et al., "The structure of the beta-catenin/E-cadherin complex and the molecular basis of diverse ligand recognition by beta-catenin," Cell 105:391-402 (2001) Behrens J., "Control of beta-catenin signaling in tumor development," Ann. N. Y. Acad. Sci. 910:21-33 (2000); discussion 33-5) Brantjes et al., "TCF: Lady Justice casting the final verdict on the outcome of Wnt signaling," Biol. Chem. 383:255-61 (2002) Hecht et al., "The p300/CBP acetyltransferases function as transcriptional coactivators of beta-catenin in vertebrates," EMBO J. 19:1839-50 (2000) Takemaru et al., "The transcriptional coactivator CBP interacts with beta-catenin to activate gene expression," J. Cell Biol. 149:249-54 (2000) Staal et al., "Wnt signals are transmitted through N-terminally dephosphorylated beta-catenin," EMBO 3:63-68 (2002) Hecht et al., "Functional characterization of multiple transactivating elements in beta-catenin, some of which interact with the TATA-binding protein in vitro," J. Biol. Chem. 274:18017-25 (1999) Vleminckx et al., "The C-terminal transactivation domain of beta-catenin is necessary and sufficient for signaling by the LEF-1/beta-catenin complex in Xenopus laevis," Mech. Dev. 81:65-74 (1999) Fearnhead et al., "Genetics of colorectal cancer: hereditary aspects and overview of colorectal tumorigenesis," Br. Med. Bull. 64:27-43 (2002) Shtutman et al., "The cyclin D1 gene is a target of the beta-catenin/LEF-1 pathway," Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96:5522-27 (1999) Tetsu et al., "Beta-catenin regulates expression of cyclin D1 in colon carcinoma cells," Nature 398:422-26 (1999) He et al., "Identification of c-MYC as a target of the APC pathway," Science 281:1509-12 (1998) Crawford et al., "The metalloproteinase matrilysin is a target of beta-catenin transactivation in intestinal tumors," Oncogene 18:2883-91 (1999) Gradl et al., "The Wnt/Wg signal transducer beta-catenin controls fibronectin expression," Mol. Cell. Biol. 19:5576-87 (1999) Wielenga et al., "Expression of CD44 in Apc and Tcf mutant mice implies regulation by the WNT pathway," Am. J. Pathol. 154:515-23 (1999) Mann et al., "Target genes of beta-catenin-T cell-factor/lymphoid-enhancer-factor signaling in human colorectal carcinomas," Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96:1603-08 (1999)
β−カテニン/p300相互作用に対してβ−カテニン/CBP相互作用を選択的に抑制する方法であって、前記方法は、化合物を組成物に投与することを含み、前記組成物はβ−カテニン、CBP及びp300を含み、前記化合物はβ−カテニン/p300相互作用に対してβ−カテニン/CBP相互作用を選択的に抑制する方法;
β−カテニン/CBP相互作用に対してβ−カテニン/p300相互作用を選択的に抑制する方法であって、前記方法は化合物を組成物に投与することを含み、その組成物はβ−カテニン、CBP及びp300を含み、その化合物はβ−カテニン/CBP相互作用に対してβ−カテニン/p300相互作用を選択的に抑制する方法;
核から細胞質へβ−カテニンの転位(translocation)を促進させる方法であって、前記方法は化合物を細胞に投与することを含み、前記細胞は核及び細胞質を含み、前記核はβ−カテニンを含み、前記化合物は核から細胞質へのβ−カテニンの転位を起こす方法;
WNT/β−カテニン経路により標的とされる遺伝子の発現を選択的に抑制する方法であって、前記方法は化合物を組成物に投与することを含み、前記組成物はWNT/β−カテニン経路により標的とされる遺伝子を含み、前記化合物はWNT/β−カテニン経路により標的とされる遺伝子の発現の変化させる方法。
配列番号:1または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はCBPタンパク質をコードしない;
配列番号:1の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はCBPタンパク質をコードしない;
配列番号:2または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドを含む実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはCBPタンパク質ではない;
配列番号:2の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはCBPタンパク質ではない;
配列番号:1または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はCBPタンパク質をコードしない;
配列番号:1の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はCBPタンパク質をコードしない;
配列番号:2または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはCBPタンパク質ではない;
配列番号:2の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成されるペプチド、実質的に精製単離された配列、但し前記ペプチドはCBPタンパク質ではない;
配列番号:1または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はCBPタンパク質をコードしない;
配列番号:1の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はCBPタンパク質をコードしない;
配列番号:2または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはCBPタンパク質ではない;
配列番号:2の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはCBPタンパク質ではない;
配列番号:3または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はp300タンパク質をコードしない;
配列番号:3の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はp300タンパク質をコードしない;
配列番号:4または配列番号:4と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドを含む、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはp300タンパク質ではない;
配列番号:4の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはp300タンパク質ではない;
配列番号:3または配列番号:3と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はp300タンパク質をコードしない;
配列番号:3の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はp300タンパク質をコードしない;
配列番号:4または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはp300タンパク質ではない;
配列番号:4の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはp300タンパク質ではない;
配列番号:3または配列番号:3と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はp300タンパク質をコードしない;
配列番号:3の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離された核酸配列、但し前記配列はp300タンパク質をコードしない;
配列番号:4または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはp300タンパク質ではない;
配列番号:4の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離されたペプチド、但し前記ペプチドはp300タンパク質ではない;
これらおよび本発明の関連した形態は、下記にさらに詳しく述べられる。
図1.化合物1はβ−カテニン/TCF転写を抑制する。
A.化合物1は細胞をG1で停止させる。FACS分析は、化合物1(25μM)(右)または対照群(0.5%DMSO)(左)で24時間処理されたSW480(下部パネル)及びHCT116(上部パネル)細胞に対して行った。5.5×106細胞は、ヨウ化プロピジウム(PI)で固着および染色させた。G0/G1、S、およびG2/Mは、矢印によって示される。
配列番号:1は核酸配列である:tgaggaatca acagccgcca tcttgtcgcg gacccgaccg gggcttcgag cgcgatctac tcggccccgc cggtcccggg ccccacaacc gcccgcgctc gctcctctcc ctcgcagccg gcagggcccc cgacccccgt ccgggccctc gccggcccgg ccgcccgtgc ccggggctgt tttcgcgagc aggtgaaaat ggctgagaac ttgctggacg gaccgcccaa ccccaaaaga gccaaactca gctcgcccgg tttctcggcg aatgacagca cagattttgg atcattgttt gacttggaaa atgatcttcc tgatgagctg。
ENDLPDELIPNGGELGLLNSGNLVPDAASKHKQLSELLRGGSGSSINPGIGNVSASSPVQQGLGGQAQGQPNSAN。
FDLEHDLPDELINSTELGLTNGGDINQLQTSLGMVQDAASKHKQLSELLRSGSSPNLNMGVGGPGQVMASQAQQSSPGLGL。
一形態において、本発明は、上述した方法に使用できる薬剤を提供する。化合物1以外に、本発明の方法に有用な他の薬剤が、一般式(I)の化合物およびそれらの立体異性体をスクリーニングすることにより同定できる。
一つの形態において、本発明は、β−カテニンとp300間の相互作用に対してβ−カテニンとCBP間の相互作用を選択的に抑制する薬剤のスクリーニングに有用なポリペプチドをコードする様々な核酸分子を提供する。
一つの形態において、本発明は、β−カテニンとp300間の相互作用に対してβ−カテニンとCBP間の相互作用を選択的に抑制する薬剤のスクリーニングに有用な様々なポリペプチド分子を供給する。
本発明は、β−カテニン/TCF誘導転写の一部を抑制する式(I)の化合物を提供する。例えば、実施例に詳細に記述されているように、化合物1は、CBPと密接に関係があるp300とβ−カテニンの相互作用を妨げることなく、CBPとβ−カテニンの相互作用を選択的に遮断する。化合物1の処理は、核から細胞質へのβ−カテニンの再配置をもたらし、ある標的遺伝子(例えば、c−mycおよびcyclin D1)のプロモータとのCBPの結合を抑制し、これによりこれら遺伝子の発現を抑制する。また、化合物1は、形質転換され、正常でない大腸細胞におけるアポトーシス性カスパーゼを選択的に活性化させ、癌細胞のG1/S−期を停止させ、形質転換された直腸結腸細胞の増殖を減少させる。したがって、本発明の化合物は、癌の治療、腫瘍増殖の減少、アポトーシスの増加、β−カテニン誘導の遺伝子発現の調節などといった様々な有用性を持つことができる。
(a)Wnt経路の構成成分を含む組成物(i)を、Wnt経路を活性化させる化合物(ii)と接触させ、活性化されたWnt経路を準備し、および
(b)p300およびβ―カテニン間の結合を完全にまたは実質的に妨げるが、CBPおよびβ−カテニン間の結合は殆どまたは全く妨げない化学薬剤と接触させてWnt経路の活性を調節する。
(a)細胞集団(cell population)を、集団の一部は増殖し、一部は分化する条件下とし、および
(b)前記集団に化学薬剤を添加し、前記薬剤は分化する細胞の割合に対して増殖する細胞の割合を増加させる。
式(I)の化合物および他の薬剤は、本願明細書に記載されているように、および下記方法によって活性のためにスクリーニングできる。
本発明に係る核酸分子、ペプチドおよび化合物は、投与に適した薬学組成物に含まれることが可能である。このような組成物は、典型的に、核酸分子、ペプチド、または化合物および薬学的に許容可能な担体を含む。「薬学的に許容可能な担体」とは、薬学投与に利用可能な溶媒や分散媒、コーティング、抗細菌および抗真菌剤、等張および吸収遅延剤などをいう。このような薬学活性成分のための媒質または薬剤の利用は、当該分野によく知られている。補助活性化合物は、また、その組成物に含有できる。
調製例1
(N−Fmoc−N’−R3−ヒドラジノ)−酢酸の調製
(1)N−Fmoc−N’−メチルヒドラジンの調製
(N−Fmoc−N’−R7−ヒドラジノ)−酢酸の調製
(1)(N’−メトキシカルボニル−ヒドラジノ)−酢酸エチルエステルの調製
調製例3
ブロモアセタール樹脂(60mg、0.98mmol/g)およびDMSO(2.5mL、2M)中のベンジルアミン溶液をねじ口ガラス瓶に入れた。その反応混合物を回転オーブン[Robbins Scientific]を用いて60℃で12時間振とうした。樹脂は、濾過によって収集し、DMFで洗浄した後、DCMで洗浄して第1構成片を得た。
ブロモアセタール樹脂(30mg、0.98mmol/g)およびDMSO中のベンジルアミン溶液(1.5mL、2M)をねじ口ガラス瓶に入れた。その反応混合物を回転オーブン[Robbins Scientific]を用いて60℃で12時間振とうした。樹脂を濾過によって収集し、DMFで洗浄した後、DCMで洗浄して第1構成片を得た。
2,5,7−トリメチル−3,6−ジオキソ−ヘキサヒドロ−[1,2,4]トリアゾロ[4,5−A]ピラジン−1−カルボン酸ベンジルアミドの調製
標題化合物は、ブロモアセタール樹脂をベンジルアミンに代えてメチルアミン溶液と反応させる以外は、調製例4と同様にして調製される。
2−メチル−5−(p−ヒドロキシフェニルメチル)−7−ナフチルメチル−3,6−ジオキソ−ヘキサヒドロ−[1,2,4]トリアゾロ[4,5−A]ピラジン−1−カルボン酸ベンジルアミドの調製
ブロモアセタール樹脂(30mg、0.98mmol/g)およびDMSO中のナフチルメチルアミン溶液(1.5mL、2M)をねじ口ガラス瓶に入れた。その反応混合物を回転オーブン[Robbins Scientific]を用いて60℃で12時間振とうした。樹脂を濾過によって収集し、DMFで洗浄した後、DCMで洗浄して第1構成片を得た。
2−メチル−6−(p−ヒドロキシフェニルメチル)−8−ナフチル−4,7−ジオキソ−ヘキサヒドロ−ピラジノ[2,1−c][1,2,4]トリアジン−1−カルボン酸ベンジルアミドの調製
ブロモアセタール樹脂(60mg、0.98mmol/g)およびDMSO中のナフチルメチルアミン溶液(2.5mL、2M)をねじ口ガラス瓶に入れた。その反応混合物を回転オーブン[Robbins Scientific]を用いて60℃で12時間振とうした。樹脂を濾過によって収集し、DMFで洗浄した後、DCMで洗浄した。
MS (m/z, ESI) 564.1 (MH+) 586.3 (MNa+)
プラスミド
CBPおよびp300の欠損構築物が市販のpTriEx−3ベクター(Novagen、Madison、WI)で発現された。マウスのCBPの欠損シリーズが全長のマウスCBPプラスミド(オレゴン州ポトランドのVollum InstituteのRichard Goodman博士からの譲与)からPCRによって生成された。増幅された領域は、5’−末端にBamHI部位を、3’−末端にNotI部位を持っているため、発現ベクターpTriEx−3のATGを有するフレームをクローニングできる。プラスミドを認識し精製するために、プラズミドは、また、COOH−末端に6X−ヒスチジンおよび単純へスペルウィルス(Herpes Simplex Viral)(HSV)タグを有するフレームをクローニングさせた。CBPのC−末端側が切断された構築物のクローニングに使用された順方向プライマー(forward primers)は、5’−GATATCTGAGCTCGTGGATCCGATGGCCGAGAACTTGCTG−3’(配列番号:7)である。CBP−C1(1−334)、−C2(1−634)、−C3(1−1594)、−C4(1−2062)、−C5(1−2623)、−C6(1−3094)、−C7(1−3694)に使用された逆方向プライマー(reverse primers)は:C1:5’−CGTGTATACAGCTGTGCGGCC-GCGTTTGTACTGTTCGGCTG−3’(配列番号:8)、C2:5’−CGTGTATACAGCTGTGCGGCCGCTCC-ATTCATGACTTGAGC−3’(配列番号:9)、C3:5’−CGTGTATACAGCTGTGCGGCCGCGCGTTTTT-CAGGGTCTGC−3’(配列番号:10)、C4:5’−CGTGTATACAGCTGTGCGGCCGC AGCTGGTAAAGC-TGGCTG−3’(配列番号:11)、C5:5’−CGTGTATACAGCTGTG CGGCCGCATGTTGGAGAGAGGGC−3’(配列番号:12)、C6:5’−CGTGTATA CAGCTGTGCGGCCGCAGAACCTTGTAAATCCTC−3’(配列番号:13)、C7:5’−CGTGTATACAGCTGTGCGGCCGCGCTGTAGTAGGCTGCATC−3’(配列番号:14)である。CBPのN−末端側が切断された構築物は、以下の逆方向プライマーで生成された:5’−GTATACAGCTGTGCGGCCGCCAAACCCTCCACAA ACTTTTC−3’(配列番号:15)。CBP−C8(4081−7324)、−C9(4534−7324)、−C10(5074−7324)、−C11(5674−7324)、−C12(6286−7324)、−C3(6754−7324)のための順方向プライマーは:、C8:5’−GATATCTGAGCTCG-TGGATCCGGAAGCTGGGGAGGTTT TT−3’(配列番号:16)、C9:5’−GATATCTGAGCTCGTGGAT-CCGAAGAAGATGC TGGACAAG−3’(配列番号:17)、C10:5’−GATATCTGAGCTCGTGGATCCGT-CC AAATGGTCCACTCTG−3’(配列番号:18)、C11:5’−GATATCTGAGCTCGTGGAT CCGTCTCCT-ACCTCAGCACCA−3’(配列番号:19)、C12:5’−GATATCTGAGCTC GTGGATCCGAACATCCTTAA-ATCAAAC−3’(配列番号:20)、C13:5’−GATATCTGAGCTCGTGGATCCGCAGCAGCAACGCATGGATATCT GAGCCGTGGATCCGCAGCAGCAACGCATG-CAA−3’(配列番号:21)である。C−末端が切断された構築物の順方向プライマー、およびN−末端が切断された構築物の逆方向プライマーを用いて、全長のマウスCBPは増幅され、pTriEx−3ベクターにクローニングされた。CBP(Δ1−111:NLS)は、下記の順方向プライマーを用いて、全長のCBPのPCRによって生成された。前記プライマーは、CBPのNLS配列(下線)の上流のBamHI部位を含むプライマーであり、PAGEによって精製されたプライマー:5’−ATCTGAGCTCGTGGATCCGGGACCGCCCAACCCCAAACGAGCCAAACTCCAGCCGAACAGTACAAACATGGCCAGCTTA−3’(配列番号:22)、使用した逆方向プライマーは、前述したN−末端が切断されたCBPの構築物を生成するプライマーを使用した。挿入体は、pTriEx−3プラスミドのBamHI−NotI部位にクローニングされた。
ヒト大腸癌腫細胞株SW480およびHCT116、並びに正常的な大腸細胞CCD18Co(ATCC、Manassas、VA)は、5%CO2雰囲気下、37℃で10%胎児小牛血清が補充された、DMEM(Invitrogen Gibco−BRL、Baltimore、MD)で増殖させた。
幾何級数的に増殖するSW480およびHCT116細胞(105)は24−ウェルプレートまたは100−mmディッシュで培養され、0.5μgのβ−カテニン/TCFレポータおよびエフェクター(effector)プラスミドの増加濃度または10μgの発現ベクターでそれぞれトランスフェクションされた。細胞は、示したとおりに、FuGENE6(Roche Molecular Biochemicals、Indianapolis、IN)またはSuperfect(Qiagen、Valencia、CA)でトランスフェクションされた。核抽出物は、NE−PERキット(Pierce Biotechnology、Rockford、IL)に記載の方法によって調製された。
様々なグループについてのルシフェラーゼ分析は、デュアルルシフェラーゼ分析(Promega)を用いて、トランスフェクション16〜24時間後、示されたとおりに20μLの細胞溶解物に対して行われた。空発現ベクターであるpTriEx−3の増加濃度が標準化(normalization)のために使用された。
軟寒天コロニー形成分析は、前記方法(Moody et al.,「血管作用の腸内ペプチド拮抗剤は、小さくない細胞肺癌生長を抑制する」Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 90:4345-49 (1993))を少し修正して、SW480細胞で実施した。
細胞は、20mM Hepes pH7.9、100mM NaCl、0.5mM EDTA、0.5% Nonidet P−40、6mM MgCl2、5mM 2−メルカプトエタノール(Mercaptoethanol)、およびCompleteTMタンパク質分解酵素阻害剤カクテル(Roche Molecular Biochemcals)の1錠を含む溶解(lysis)緩衝液で氷浴上で30分間溶解され、遠心分離により澄ませた(cleared)。全ての細胞溶解質(lysate)は、Santa Cruz Biotechnology,Inc.からのCBP−C1、A−22抗体に対する特異的抗体、p300−P1、N−15抗体(Santa Cruz Biotechnology,Inc.Santa Cruz、CA)に対する特異的抗体、および全長の内因性β−カテニン特異的抗体、タンパク質A−アガロースビーズ(Pierce、Rockford、IL)に予備結合させたモノクローナル抗体(Transduction Laboratories、Lexington、KY)と室温で1時間インキュベーションした。免疫複合体は、HBS(100〜150mM NaCl(示すとおり)、10mM Hepes pH7.9、5mM 2−メルカプトエタノール、およびCompleteTMタンパク質分解酵素阻害剤カクテル1錠)で数回洗浄し、ウェスタンブロットを行った(下記参照)。その後、前記ビーズ(beads)は(20mM Hepes pH7.9、500mM NaCl、およびCompleteTMタンパク質分解酵素阻害剤カクテルの1錠を含む5mM 2−メルカプトエタノール)を含む緩衝液で7回洗浄した。
25〜100μMのビオチニル化された化合物2は、50%DMSOおよび50%タンパク質結合緩衝液のPBB(20mM Hepes pH7.9、20%グリセロール、0.5mM EDTA、60mM NaCl、6mM MgCl2、0.1% Nonidet P−40、5mM 2−メルカプトエタノール、およびCompleteTMタンパク質分解酵素阻害剤カクテル1錠)を含む緩衝液中の100μLのストレプトアビジン−アガロースビーズの50%スラリー(Amersham Pharmacia Biotech、Arlington Heights、IL)に、一晩室温で結合させた。前記ビーズは、PBBで3回洗浄し、結合していない化合物2を除去した。過剰発現させたプラスミドを含む100〜200μLの全体細胞溶解質を(免疫沈澱部分参照)、室温で3〜4時間、または4℃で一晩ビーズとインキュベーションした。前記ビーズは、さらにPBB緩衝液で3回洗浄し、その溶離したタンパク質をSDS−PAGE電気泳動およびウェスタンブロットした(下記参照)。競合分析において、過剰の化合物1は、各実験で示されたように、室温で1時間、溶解質と前インキュベーションされた。
SW480細胞のホルムアルデヒド架橋およびクロマチン免疫沈澱分析は、前述のとおりに行った(Barlev et al., "Acetylation of p53 activates transcription through recruitment of coactivators/histone acetyltransferases," Mol. Cell 8:1243-54 (2001); El-Osta et al., "Analysis of chromatin-immunopurified MeCP2-associated fragments," Biochem. Biophys. Res. Commun. 289:733-37 (2001); Shang et al., "Formation of the androgen receptor transcription Complex," Mol. Cell 9:601-10 (2002))。c−mycおよびcyclin D1プロモータのPCRに使用されるプライマーは、下記のとおりである:c−myc順方向プライマー:5’−TGGTAGGCGCGCGTAGTTA−3’(配列番号:28)および逆方向プライマー:5’−GGGCGGAGATTAGCGAGAG−3’(配列番号:29)。Cyclin D1順方向プライマー:5’−TGCTTAACAACA-GTAACGT−3’(配列番号:30)および逆方向プライマー:5’−GGGGCTCTTCCTGGGCAGC−3’(配列番号:31)。これらのChIPプライマーは、転写開始部位近くのプロモータ領域内のTCF4結合ドメインの下流の約20〜30塩基対を設計した。PCR生成物は、サイズが約200の塩基対である。抗−CBP、AC−26、抗体は、David Livingston博士からの親切なギフトであった。
前記免疫複合体は、SDS−PAGE上で分離された後、(Millipore、Bedford、MA)からのイモビロン−P膜(PVDF)に送られた。前記膜は、TBST(15mM Tris/HCl、pH7.4、0.9% NaCl、および0.05% Tween20)中の5%無脂肪乾燥牛乳で遮断された後、特異的抗体でブロットされた。Qiagen Inc.からの抗−His抗体が、pTriEx−3で作られたタンパク質の検出に使用された。ホースラディッシュペルオキサイドに結合された2次抗体(Santa Cruz Biotechnology Inc.)が検出に使用された。免疫ブロットは、ECL検出キット(Amersham Pharmacia Biotech)を用いて分析された。
化合物1(25μM)または対照群(0.5%DMSO)で処理されたSW480およびHCT116内のCBPおよびβ−カテニンの位置を調査するために、免疫蛍光が使用された。ログ期の細胞が播種され、24時間後、前記細胞は化合物1または対照群で処理された。処理24時間後、細胞は固定された。カバースリップは、それぞれCBP(A−22)に対する抗体(Santa Cruz Biotechnology)およびβ−カテニンに対する抗体(Transduction Laboratories)でインキュベーションされた。スライドは、FITCまたはTRITC(Jackson ImmunoResearch、Westgrove、PA)に接合された2次抗体が適用された後、Nikon PCM2000 Laser Scanning Confocal Microscopeを用いて検査された。
FACS分析のために、PNRI−処理された細胞または媒体−処理された約5×106細胞は、70%冷却エタノールで固定され、少なくとも30分間−20℃に保管された。細胞は、1×PBSで1回洗浄され、ヨウ化プロピジウム(PI)溶液(85μg/mLヨウ化プロピジウム、0.1% Nonidet P−40、10mg/mL RNAse)と共に30分間室温でインキュベーションされた。各サンプルで10,000個の染色された細胞がBeckman Coulter EPICS XL−MCL流動細胞計測器を用いて得られた。細胞サイクルの別の時期にある細胞の百分率は、Expo32 ADCソフトウェア(Coulter Corporation、Miami、Florida、33196)によって決定された。
CBP(1−111)およびp300(1−111)は、6X−Hisタグと共に融合タンパク質として発現され、それらの6X−His−タグを用いてバクテリアの溶解質から親和精製(affinity-purified)された。形質転換されたバクテリアのペレット(1L培養液)は、5〜10mLの溶解緩衝液(20mM Hepes pH7.9、150mM NaCl、0.1% Nonidet P−40、5mM 2−メルカプトエタノール、およびCompleteTMタンパク質分解酵素阻害剤カクテル1錠)にさらに懸濁された。細胞は、超音波破砕によって溶解された。透明の溶解質は、500μLのNi−NTA−アガロースビーズ(Qiagen)で1時間4℃でインキュベーションされた。結合したタンパク質は、500μLの溶離緩衝液(20mM Hepes pH7.9および150mM NaCl、タンパク質分解酵素阻害剤カクテル1錠、5mM 2−メルカプトエタノールおよび250mMイミダゾール)で溶離した。溶離したタンパク質は、少量の部分ずつに分けて冷凍された。
RNA抽出のためにRNeasy Midi Kit(Qiagen)が使用され、SYBR Green PCR Master Mix Kit(Perkin Elmer Biosystems、SheltonmCT)に提供されたプロトコルによってリアルタイムRT−PCRが行われた。cyclin D1、axin2、hnkd、c−myc、c−jun、およびfra−1増幅のために使用されたプライマーは:cyclin D1順方向プライマー:5’−AGATCGAAGC-CCTGCTG−3’(配列番号:32)逆方向プライマー:約300bpサイズの生産物をもたらす5’−AGGGGGAAAGAGCAAAGG−3’(配列番号:33);axin2順方向プライマー:5’−GTGTGAGGTCCAC GGAAA-CT−3’(配列番号:34)および逆方向プライマー:5’−CTCGGGAAATGAGGTA-GAGA−3’(配列番号:35);hnkd順方向プライマー:5’−CTGGCTGCTGCTACCACCA TTGCGT−3’(配列番号:36)および逆方向プライマー:5’−CCAGGCCCAAATTGGG ACGT−3’(配列番号:37);c−myc順方向プライマー:5’−GAA-GAAATTCGAGCTG CTGC−3’(配列番号:38)および逆方向プライマー:5’−CACATACAGTCCTGGATGAT-G−3’(配列番号:39);c−jun順方向プライマー:5’−AGATGCCCGGCGAGACACCG−3’(配列番号:40)および逆方向プライマー:5’−AGCCCCCGACGGTCTCTTT−3’(配列番号:41);fra−1順方向プライマー:5’−ACC-CCGGCCAGGAG-TCATCCGGGCCC−3’(配列番号:42)および逆方向プライマー:5’−AGGCGCCTCACAAAGCGAGGAGGG-TT−3’(配列番号:43)である。β−actinが標準化のために使用された。β−actinのためのプライマーは:順方向プライマー:5’−ATCTGGCACCACACCTTCTACAATGAGCTGCG−3’(配列番号:44)および逆方向プライマー5’−CGTCATACTCCTCCTTGCYGATCCACA TCTGC−3’(配列番号:45)である。各プライマーセットは、95℃で10分間、95℃で15秒間40サイクル、60℃で1分間増幅された。
SW480、HCT116、およびCCD18Co細胞が、処理前24時間の間ウェル当たり105細胞で播種された(96−ウェルプレート)。25μMの化合物1または対照群(0.5%DMSO)が各ウェルに添加された。処置24時間後に、細胞は融解され、カスパーゼ−3/7活性キット(Apo−one Homogeneous caspase−3/7assay、#G77905、Promega)を用いてカスパーゼ活性が測定された。相対蛍光単位(RFU)は、実験測定値からブランク(対照群、細胞なし)の単位値を差し引いて得た。
APC内の突然変異のため、TOPFLASHレポータシステムによる評価によれば、SW480大腸癌腫細胞は、核へのβ−カテニンの構成性(constitutive)転位(translocation)、すなわち高い基礎(basal)β−カテニン/TCF転写を示す(Korinek et al., "Constitutive transcriptional activation by a beta-catenin-Tcf complex in APC-/- colon carcinoma," Science 275:1784-87 (1997))。関連したレポータは、β−カテニン/TCF媒介転写の抑制剤のための2次構造−鋳型小分子ライブラリのスクリーニングに使用された(Ogbu et al., "Highly efficient and versatile synthesis of libraries of constrained b-strand mimetics," Bioorg. Med. Chem. Lett. 8:2321-26 (1998); Eguchi et al., "Solid-phase synthesis and structural analysis of Bicyclic β-Turn mimetics incorporating fnctionality at the i to i+3' positions," Amer. Chem. Soci. 102:22031-32 (1999))。この最初のスクリーニングから、われわれは5μMのIC50(図1B)、並びにNFAT(図1C)、CREおよびAP−1(図示せず)を含む多くの他のCBP−依存性レポータに比べて非常に良い選択性を持つ化合物1(図1A)を選別した。β−カテニンリン酸化部位が欠乏するが、野性型APCを発現するHCT116細胞で、化合物1は同様の活性を示した(図示せず)。
ビオチン化された同族体(analog)としての化合物2(図1A)は、化合物1を結合するために必要なCBPの最小領域の輪郭を描くのに使用された。過剰発現されたCBP断片を含む細胞溶解質(図2B、上部パネル)は、数時間化合物2と予備結合したストレプトアビジン−アガロースビーズと培養された。その後、前記結合したタンパク質は、ビーズから溶離され、結合したCBP断片を検出するために、抗−His抗体を用いてゲル電気泳動および免疫ブロットされた。図示の如く(図2B、下部パネル)、化合物2が特異的に結合する最小部位は、CBPのNH2−末端のアミノ酸1−111であった(レイン2、3および4を他のものと比較する)。共同−免疫沈澱実験から予想されたように、SW480細胞で過剰発現されたp300断片のいずれとも結合が検出されなかった(図示せず。下記参照)。p300(1−111)、p300(1−211)およびp300(1−351)と共に、CBP(1−111)、CBP(1−211)およびCBP(1−351)がSW480細胞で過剰発現されると(図2C、下部パネル)、過剰の化合物1は、CBP断片の結合を強く競合したが(図2C、上部パネル、レイン4〜6をレイン7〜9と比較する)、p300断片の結合に対して何らの影響を与えることができなかった(図2C、上部パネル、レイン10〜12をレイン13〜15と比較する)。したがって、化合物1がCBPの最初111アミノ酸に結合するが、関連タンパク質であるp300には結合しないものと判断された。
CBPは、多くの転写事象において律速因子である。図3Aに示すように、CBPの濃度を増加させながらトランスフェクションさせると、化合物1(12.5μM)のIC50は用量依存方式で増加するが、β−カテニンはそうではない。化合物1がCBPに対するβ−カテニンの結合を破壊するかを決定するために、SW480細胞で免疫沈降分析が行われた。CBPでのβ−カテニンの免疫沈降は、濃度依存方式で化合物1によって抑制された(図3B、レイン2、3、および4を比較する。レイン1は対照群であって、抗体が添加されなかった)。CBPに対する化合物1の結合は非常に特異的であり、前記化合物はCBPとp300が非常に同種由来的であるにも拘わらず、p300に対するβ−カテニンの結合を妨げない(図3B、下部パネル、レイン2〜4を比較する)。
2つの中のいずれか一つの位置が化合物1によって影響されるかを決定するために、β−カテニンとCBPの細胞内分布が調査された。SW480細胞内の内因性β−カテニンの多くは、CBPと同様に核内で発見された(図4A)。化合物1での処理は、SW480細胞の細胞質へのβ−カテニンの転位を引き起こし、ここで内因性E−カドヘリンの発現は制限される(図4A、対照群(上部)を処理された細胞(下部パネル)と比較する)(de Vries et al., "In vivo and in vitro invasion in relation to phenotypic characteristics of human colorectal carcinoma cells," Br. J. Cancer 71:271-77 (1995))。核伝送抑制剤レプトマイシンBでの処理は、化合物1によって誘導されるβ−カテニンの細胞質伝送を除去するが、これは、図4Aから観察されるβ−カテニンの核放出はβ−カテニン/CBP複合体の破壊に起因することを示唆する(図示せず)。したがって、われわれは、CBPに対するβ−カテニンの結合の破壊がβ−カテニンの核レベルを減少させると結論付けた。化合物1によって誘導されるSW480細胞の核から細胞質へのβ−カテニンの転位は、ウェスタンブロット分析によって観察された(図4B)。
cyclin D1遺伝子は、多くの相異なる腫瘍タイプで不適切に発現され、Wnt/β−カテニン経路の直接的標的として知られている(Shtutman et al., "The cyclin D1 gene is a target of the beta-catenin/LEF-1 pathway," Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96:5522-27 (1999); Tetsu et al., "Beta-catenin regulates expression of cyclin D1 in colon carcinoma cells," Nature 398:422-26 (1999))。このβ−カテニン/TCF経路の直接的標的の発現における化合物1の効果を決定するために、リアルタイム逆転写−PCR(RT−PCR)が化合物1(25μM)または対照群で処理された細胞から抽出されたmRNAに対し、処理後4、8または24時間で行われた(表1)。表1は、化合物1(25μM)または対照群(0.5%DMSO)で4、8または24時間処理されたSW480細胞の定量的リアルタイム逆転写−PCR(RT−PCR)の結果を示す。各時間地点に対し、1μgのmRNAがリアルタイムRT−PCRされた。内因性cyclin D1、c−myc、fibronectin、hnkd、axin2、c−jun、およびBMP−4の発現レベルがβ−アクチンに対して相対的に測定された。Δしきい値周期(CT)値の定量は、各セットの平均値から、β−アクチンに対して得られた対応する平均値を差し引くことにより決定された。全ての実験は2回ずつ行われた。
cyclin D1遺伝子の発現の抑制は、細胞周期のG1/S期における停止を起こすことと知られてきた(Shintani et al., 「唾液腺の腺様嚢胞癌におけるRB経路(Rb−p16INK4A−cyclin D1)の稀な変更」、Anticancer Res. 20:2169-75 (2000))。HCT116(図6A、上部パネル)およびSW480(図6A、下部パネル)細胞は、24時間化合物1(25μM)(図6A、右側パネル)または対照群(0.5%DMSO)(図6A、左側パネル)で処置された。次いで、細胞は、ヨウ化プロピジウム(PI)で染色され、FACS細胞蛍光計数器(cytofluorometry)でDNA含量が分析された。予想とおりに、対照群細胞(図6A、左)は正常的にサイクリングする反面、化合物1で処置された細胞(図6A、右側)は細胞周期のG1/S期における蓄積が増加することを示した。したがって、化合物1がG1期で細胞停止を起こすことが分かる。
軟寒天コロニー形成分析は、化合物1(0.25〜5μM)および5−フルオロウラシル(0.5〜32μM)で処置されたSW480細胞を用いて行われた。図7Aに示すように、化合物1は、コロニー形成数において用量依存減少を示す。化合物1および5−FUのIC50数値は、それぞれ0.87±0.11μMおよび1.98±0.17μmであった。したがって、化合物1は、カスパーゼ活性度を増加させ、β−カテニン情報伝達を活性化させる突然変異によってトランスフェクションされた直腸結腸細胞の試験管内における増殖を減少させた。
化合物4、化合物5、またはベクターが野性型およびMinマウスに投与された。化合物4は、また、化合物1の同族体(analog)である(図1A)。各種処置後、これらマウスの小腸および大腸に形成されるポリプの数を測定した(表6)。データは、化合物4および化合物5の両方ともで、約300mpkで投与される場合、ベクターのみで処置された対照マウスに比べてMinマウスでポリプの数が減少することを示す。
化合物3(化合物1の同族体、図1A)の細胞毒性および他の抗癌治療剤は、様々な起源の癌細胞を用いて測定された。その結果によれば、化合物3は、他の抗癌治療剤(すなわち、シスプラチン、5−FU、ADR(アドリアマイシン)に対する濃度と同様であり或いはより少ない濃度における癌細胞の死亡を起こすことを示す(表7)。
化合物3の代謝は、その化合物をラットまたはヒトの肝ミクロソームと共に5分〜1時間インキュベーションし、HPLCを介して処置ミクロソームの分画抽出を行い、その分画に対してMS分析を行うことにより分析された。その結果は、図10Aおよび図10Bに示す。いろいろの代謝物(例えば、M1、M2、M3)が2つのシステムともから観察された。
化合物3、化合物4および化合物5の生体利用効率がマウスおよびラットで研究された。これら化合物の構造は図1Aに示す。これら全ての化合物は、同一のベクター(例えば、20%Tween80)を用いて投与された(i.vおよびp.o、10mg/kg)。化合物3、4および5のマウスにおける生体利用効率はそれぞれ2%未満、2%未満、略0%であった。ラットにおける化合物3の生体利用効率は約24%である。
Wnt/β−カテニン経路の誤調節が癌の発達および進行に関与するという山のような強力な証拠がある(Morin, P.J., "Beta-catenin signaling and cancer," Bioessays 21:1021-30 (1999); Moon et al., "The promise and perils of Wnt signaling through beta-catenin," Science 296:1644-46 (2002); Oving et al., "Molecular causes of colon cancer," Eur. J. Clin. Invest. 32:448-57 (2002))。ここで、われわれは式(I)の化合物がβ−カテニン/TCF転写のサブセットを抑制するという発見を記述した。構成的に上昇したβ−カテニン/TCF転写をもたらすAPC遺伝子における突然変異を有するSW480大腸癌腫細胞内の2次構造−鋳型の化学ライブラリを利用するレポータ遺伝子スクリーニングを用いてこれらの少ない分子量抑制剤の生活性の特性を明らかにした。ビオチンが挿入された同族体(化合物2)を用いた親和性クロマトグラフィは、コアクチベータータンパク質CBPを化合物1の分子標的として同定した。
配列番号8〜15、24〜26、29、31、33、35、37、39、41、43、45:リバースプライマー
配列番号27:4タンデム(tandem)TCF4結合部位
配列番号46:RXR/RAR結合部位
Claims (165)
- 組成物を薬剤と接触させることを含む、β−カテニンにより誘導される標的遺伝子の発現を調節する方法であって、前記組成物はβ−カテニン、CBPおよびp300を含み、前記β−カテニンはp300に対するCBPへの結合可能性を有し、前記薬剤はβ−カテニンがp300に対するCBPへの結合可能性を変化させるのに有効な量で組成物と接触する方法。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するCBPの結合を増加させる、請求項1に記載の方法。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するp300の結合を減少させる、請求項2に記載の方法。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するp300の結合を増加させる、請求項1に記載の方法。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するCBPの結合を減少させる、請求項4に記載の方法。
- 前記組成物が生体外(ex vivo)に存在する、請求項1に記載の方法。
- 前記組成物が幹細胞を含む、請求項6に記載の方法。
- 前記組成物が細胞または哺乳動物である、請求項1に記載の方法。
- 前記哺乳動物が癌に罹患し、前記量が前記癌の治療に有効な量である、請求項8に記載の方法。
- 前記癌が大腸癌(colon cancer)である、請求項9に記載の方法。
- 前記癌が前立腺癌および乳房癌から選択される、請求項9に記載の方法。
- 前記組成物は細胞であり、前記薬剤は前記細胞が増殖ではなく分化する可能性を増加させる、請求項1に記載の方法。
- 前記組成物は細胞であり、前記薬剤は前記細胞が分化ではなく増殖する可能性を増加させる、請求項1に記載の方法。
- 前記薬剤が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を有する、請求項1に記載の方法:
- R1、R2、R3、R4、R5、R6、R7、R8およびR9は、アミノC2-5アルキル、グアニジノC2-5アルキル、C1-4アルキルグアニジノC2-5アルキル、ジC1-4アルキルグアニジノC2-5アルキル、アミジノC2-5アルキル、C1-4アルキルアミジノC2-5アルキル、ジC1-4アルキルアミジノC2-5アルキル、C1-3アルコキシ、フェニル、置換フェニル(ここで、置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、ベンジル、置換ベンジル(ここで、ベンジル上の置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、ナフチル、置換ナフチル(ここで、置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、ビス−フェニルメチル、置換ビス−フェニルメチル(ここで、置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、ピリジル、置換ピリジル、(ここで、置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、ピリジルC1-4アルキル、置換ピリジルC1-4アルキル(ここで、ピリジン置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、ピリミジルC1-4アルキル、置換ピリミジルC1-4アルキル(ここで、ピリミジン置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、または、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、トリアジン−2−イル−C1-4アルキル、置換トリアジン−2−イル−C1-4アルキル(ここで、トリアジン置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、イミダゾールC1-4アルキル、置換イミダゾールC1-4アルキル(ここで、イミダゾール置換基はアミノ、アミジノ、グアニジノ、ヒドラジノ、アミダゾニル、C1-4アルキルアミノ、C1-4ジアルキルアミノ、ハロゲン、パーフルオロC1-4アルキル、C1-4アルキル、C1-3アルコキシ、ニトロ、カルボキシ、シアノ、スルフリルまたはヒドロキシルの少なくとも一つから独立に選択される)、イミダゾリニルC1-4アルキル、N−アミノピペラジニル−N−C0-4アルキル、ヒドロキシC2-5アルキル、C1-5アルキルアミノC2-5アルキル、ヒドロキシC2-5アルキル、C1-5アルキルアミノC2-5アルキル、C1-5ジアルキルアミノC2-5アルキル、N−アミジノピペリジニルC1-4アルキルおよび4−アミノシクロヘキシルC0-2アルキルから独立に選択される、請求項14に記載の方法。
- Raはナフチル、キノリニルまたはイソキノリニル基であり、Rbはフェニル、ピリジルまたはピペリジルであり、これらすべてはハロゲン化合物、ヒドロキシ、シアノ、低級アルキル、および低級アルコキシ基からなる群から選択される少なくとも一つの置換基で置換できる、請求項19に記載の方法。
- Raはナフチルであり、Rbはフェニルであり、これらはハロゲン化物、ヒドロキシ、シアノ、低級アルキル、及び低級アルコキシ基からなる群から選択される少なくとも一つの置換基で置換できる、請求項20に記載の方法。
- 前記薬剤が化合物1である、請求項14に記載の方法。
- 薬剤、β−カテニン、CBPおよびp300を含む組成物であって、β−カテニンはp300に対するCBPへの結合可能性を有し、前記薬剤はβ−カテニンがp300に対するCBPへの結合可能性を変化させるのに有効な量で組成物内に存在する、組成物。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するCBPの結合を増加させる、請求項23に記載の組成物。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するp300の結合を減少させる、請求項24に記載の組成物。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するp300の結合を増加させる、請求項23に記載の組成物。
- 前記薬剤がβ−カテニンに対するCBPの結合を減少させる、請求項26に記載の組成物。
- 前記組成物が生体外(ex vivo)状態にある、請求項23に記載の組成物。
- 前記組成物が幹細胞をさらに含む、請求項28に記載の組成物。
- 前記薬剤は、細胞が増殖ではなく分化する可能性を増加させる、請求項29に記載の組成物。
- 前記薬剤は、細胞が分化ではなく増殖する可能性を増加させる、請求項29に記載の組成物。
- 前記薬剤が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項23に記載の組成物:
- 前記薬剤が化合物1である、請求項32に記載の化合物。
- (a)Wnt経路の構成要素を含む組成物(i)を、Wnt経路を活性化させる化合物(ii)と接触させ、活性化されたWnt経路を提供し、
(b)p300およびβ−カテニン間の結合を完全にまたは実質的に妨げるが、CBPおよびβ−カテニン間の結合は殆どまたは全く妨げない化学薬剤でWnt経路の活性を調節することを含む、Wnt経路の活性を調節する方法。 - 前記組成物が細胞である、請求項34に記載の方法。
- 生体外(ex vivo)で行われる、請求項34に記載の方法。
- 前記化合物がLiClまたはGSK3抑制剤である、請求項34に記載の方法。
- 前記化学薬剤が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項34に記載の方法:
- (a)細胞集団を、集団の一部は増殖し、一部は分化する条件下とし、
(b)前記集団に化学薬剤を添加し、前記薬剤が、分化する細胞の割合に対して増殖する細胞の割合を増加させることを含む、細胞増殖を調節する方法。 - 前記化合物はp300及びカテニン間の結合を妨げる、請求項39に記載の方法。
- Wnt経路を活性化させる薬剤を集団に添加することをさらに含む、請求項39に記載の方法。
- 前記細胞集団は幹細胞の集団である、請求項39に記載の方法。
- 生体外(ex vivo)で行われる、請求項39に記載の方法。
- 細胞集団の分化を引き起こす薬剤を添加することをさらに含む、請求項39に記載の方法。
- 集団内の細胞が分化して血液細胞を形成する、請求項44に記載の方法。
- 集団内の細胞が分化して神経細胞、筋肉細胞、骨細胞または膵臓ベータ細胞(pancreatic beta-cells)を形成する、請求項44に記載の方法。
- 前記化学薬剤が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項44に記載の方法:
- β−カテニン/p300相互作用に対してβ−カテニン/CBP相互作用を選択的に抑制する方法であって、前記方法は化合物を組成物に投与することを含み、前記組成物はβ−カテニン、CBP及びp300を含み、前記化合物はβ−カテニン/p300相互作用に対してβ−カテニン/CBP相互作用を選択的に抑制する方法。
- 前記化合物が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項48に記載の方法:
- β−カテニン/CBP相互作用に対してβ−カテニン/p300相互作用を選択的に抑制する方法であって、前記方法は化合物を組成物に投与することを含み、前記組成物はβ−カテニン、CBP及びp300を含み、前記化合物はβ−カテニン/CBP相互作用に対してβ−カテニン/p300相互作用を選択的に抑制する方法。
- 前記化合物が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項50に記載の方法:
- 核から細胞質へのβ−カテニンの転位(translocation)を促進させる方法であって、前記方法は化合物を細胞に投与することを含み、前記細胞は核及び細胞質を含み、前記核はβ−カテニンを含み、前記化合物は核から細胞質へのβ−カテニンの転位を起こす方法。
- 前記化合物が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項52に記載の方法:
- WNT/β−カテニン経路により標的とされる遺伝子の発現を選択的に抑制する方法であって、前記方法は化合物を組成物に投与することを含み、前記組成物はWNT/β−カテニン経路により標的とされる遺伝子を含み、前記化合物はWNT/β−カテニン経路により標的とされる遺伝子の発現の変化を起こす方法。
- 前記化合物が、下記式(I)およびその異性体から選択される構造を持つ、請求項54に記載の方法:
- 幹細胞を未分化状態に維持させる方法であって、細胞の分化を抑制しまたは細胞の増殖を促進させる薬剤と、幹細胞を未分化状態に維持するのに有効な量で幹細胞を接触させることを含む方法。
- 前記薬剤は、β−カテニン/CBP相互作用に対してβ−カテニン/p300相互作用を選択的に抑制する、請求項56に記載の方法。
- β−カテニン:CBP相互作用の小分子抑制剤を同定する方法であって、
(a)推定のβ−カテニン:CBP小分子抑制剤を、CBP 1−111を含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(b)前記工程(a)の混合物を、β−カテニンを含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(c)前記工程(a)の前記分子が、前記工程(b)のβ−カテニンを含む部分(moiety)と前記工程(a)のCBP 1−111を含む部分(moiety)との結合を抑制するかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(d)前記工程(a)の前記小分子が、前記CBP 1−111を含む部分(moiety)と前記β−カテニンを含む部分(moiety)との結合を抑制するとの決定によって、前記工程(a)の小分子をβ−カテニン:CBP相互作用の抑制剤として同定する工程とを含む方法。 - (e)前記工程(d)の同定されたβ−カテニン:CBP相互作用の小分子抑制剤を、p300 1−111を含む部分(moiety)(1)及びβ−カテニン(2)を含む混合物に接触させる工程と、
(f)前記工程(e)の前記分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(g)前記工程(e)の前記小分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないとの決定により、前記小分子がβ−カテニン:CBP相互作用の選択的抑制剤であることを確認する工程とをさらに含む、請求項58に記載の方法。 - β−カテニン:CBP相互作用の小分子抑制剤を同定する方法であって、
(a)推定のβ−カテニン:CBPの小分子抑制剤を、β−カテニンを含む部分と接触させる工程と、
(b)前記工程(a)の混合物を、CBP 1−111を含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(c)前記工程(a)の前記分子が、前記工程(b)のCBP 1−111を含む部分(moiety)と前記工程(a)のβ−カテニンを含む部分(moiety)との結合を抑制するかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(d)前記工程(a)の前記小分子が、β−カテニンを含む部分(moiety)とCBP 1−111を含む部分(moiety)との結合を抑制するか否かの決定により、前記工程(a)の小分子をβ−カテニン:CBP相互作用の抑制剤として同定する工程とを含む方法。 - (e)前記工程(d)の同定されたβ−カテニン:CBP相互作用の小分子抑制剤を、p300 1−111を含む部分(moiety)(1)およびβ−カテニン(2)を含む混合物と接触させる工程と、
(f)前記工程(e)の前記分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(g)前記工程(e)の前記小分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないとの決定により、前記小分子がβ−カテニン:CBP相互作用の選択的抑制剤であることを確認する工程とをさらに含む、請求項60に記載の方法。 - β−カテニン:CBP相互作用の小分子抑制剤を同定する方法であって、
(a)推定のβ−カテニン:CBP小分子抑制剤を、CBP 1−111と結合した(associated)β−カテニンを含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(b)前記工程(a)の前記分子が、β−カテニンからCBP 1−110を分離させるかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(c)前記工程(a)の前記小分子が、CBP 1−111からβ−カテニンの結合を分離させるとの決定により、前記工程(a)の小分子をβ−カテニン:CBP相互作用の抑制剤として同定する工程とを含む方法。 - (d)前記工程(c)で同定されたβ−カテニン:CBP相互作用の小分子抑制剤を、p300 1−111を含む部分(moiety)(1)およびβ−カテニン(2)を含む混合物に接触させる工程と、
(e)前記工程(d)の前記分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(f)前記工程(d)の前記小分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないとの決定により、前記小分子がβ−カテニン:CBP相互作用の選択的抑制剤であることを確認する工程とをさらに含む、請求項62に記載の方法。 - β−カテニン:p300相互作用の小分子抑制剤を同定する方法であって、
(a)推定のβ−カテニン:p300小分子抑制剤を、p300 1−111を含む部分と接触させる工程と、
(b)前記工程(a)の混合物を、β−カテニンを含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(c)前記工程(a)の前記分子が、前記工程(b)のβ−カテニンを含む部分(moiety)と前記工程(a)のp300 1−111を含む部分(moiety)との結合を抑制するかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(d)前記工程(a)の前記小分子が、前記p300 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンを含む部分(moiety)との結合を抑制するとの決定によって、前記工程(a)の前記小分子をβ−カテニン:p300相互作用の抑制剤として同定する工程とを含む方法。 - (e)前記工程(d)の同定されたβ−カテニン:p300相互作用の小分子抑制剤を、CBP 1−111を含む部分(moiety)(1)およびβ−カテニン(2)を含む混合物に接触させる工程と、
(f)前記工程(e)の前記分子が、前記CBP 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(g)前記工程(e)の前記小分子が、前記CBP 1−111を含む部分(moiety)と前記β−カテニンとの結合を抑制しないとの決定により、前記小分子がβ−カテニン:p300相互作用の選択的抑制剤であることを確認する工程とをさらに含む、請求項64に記載の方法。 - β−カテニン:p300相互作用の小分子抑制剤を同定する方法であって、
(a)推定のβ−カテニン:p300小分子抑制剤を、β−カテニンを含む部分と接触させる工程と、
(b)前記工程(a)の混合物を、p300 1−111を含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(c)前記工程(a)の前記分子が、前記工程(b)のp300 1−111と含む部分(moiety)が前記工程(a)のβ−カテニンを含む部分(moiety)との結合を抑制するかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(d)前記工程(a)の前記小分子が、前記β−カテニンを含む部分(moiety)とp300 1−111を含む部分(moiety)との結合を抑制するとの決定によって、前記工程(a)の小分子をβ−カテニン:p300相互作用の抑制剤として同定する工程とを含む、方法。 - (e)前記工程(d)の同定されたβ−カテニン:p300相互作用の小分子抑制剤を、CBP 1−111を含む部分(moiety)(1)およびβ−カテニン(2)を含む混合物に接触させる工程と、
(f)工程(e)の前記分子が、前記CBP 1−111を含む部分とβ−カテニンとの結合を抑制しないかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(g)前記工程(e)の前記小分子が、前記CBP 1−111を含む部分(moiety)と前記β−カテニンとの結合を抑制しないことの決定により、前記小分子がβ−カテニン:p300相互作用の選択的抑制剤であることを確認する工程とをさらに含む、請求項66に記載の方法。 - β−カテニン:p300相互作用の小分子抑制剤を同定する方法であって、
(a)推定のβ−カテニン:p300小分子抑制剤を、p300 1−111と結合したβ−カテニン(1)を含む部分(moiety)と接触させる工程と、
(b)前記工程(a)の前記分子が、β−カテニンからp300 1−111を分離させるかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(c)前記工程(a)の前記小分子が、p300 1−111からβ−カテニンの結合を分離させるとの決定により、前記工程(a)の小分子をβ−カテニン:p300相互作用の抑制剤として同定する工程とを含む方法。 - (d)前記工程(c)で同定されたβ−カテニン:p300相互作用の小分子抑制剤を、CBP 1−111を含む部分(moiety)(1)およびβ−カテニン(2)を含む混合物に接触させる工程と、
(e)前記工程(d)の前記分子が、前記CBP 1−111を含む部分(moiety)とβ−カテニンとの結合を抑制しないかどうかを分析手段によって決定する工程と、
(f)前記工程(d)の前記小分子が、前記CBP 1−111を含む部分(moiety)と前記β−カテニンとの結合を抑制しないとの決定により、前記小分子がβ−カテニン:p300相互作用の選択的抑制剤であることを確認する工程とをさらに含む、請求項68に記載の方法。 - 配列番号:1または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列(但し、前記配列は全長のCBPタンパク質をコードしない)を含む、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記核酸分子は、前記配列番号:1と少なくとも90%以上の同一性を有するヌクレオチド配列を含む、請求項70に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子は、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項70に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、CBPタンパク質内に存在する、200個以下の連続したアミノ酸残基を含むペプチドをコードする、請求項70に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、CBPタンパク質内に存在する、150個以下の連続したアミノ酸残基を含むペプチドをコードする、請求項70に記載の核酸分子。
- 前記ペプチドが、配列番号:2または配列番号:5を含む、請求項74に記載の核酸分子。
- 配列番号:1の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列(但し、前記配列は全長のCBPタンパク質をコードしない)を含む、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記断片が90〜300核酸を有する、請求項76に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項76に記載の核酸分子。
- 前記断片が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項76に記載の核酸分子。
- 配列番号:2または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドを含む、実質的に精製単離されたペプチド(但し、ペプチドは全長のCBPタンパク質ではない)。
- 前記ペプチドが配列番号:2と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項80に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項80に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが、CBPタンパク質内に存在する、連続したアミノ酸200残基以下を含む、請求項80に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが、CBPタンパク質内に存在する、連続したアミノ酸150残基以下を含む、請求項80に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが配列番号:2または配列番号:4を含む、請求項84に記載のペプチド。
- 配列番号:2の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む、実質的に精製単離されたペプチド(但し、前記ペプチドは全長のCBPタンパク質ではない)。
- 前記断片が30〜100アミノ酸を有する、請求項86に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項86に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項86に記載のペプチド。
- 配列番号:1または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列(但し、前記配列は全長のCBPタンパク質をコードしない)から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記核酸分子は配列番号:1と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項90に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項90に記載の核酸分子。
- 配列番号:1の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記断片は90〜300ヌクレオチドを有する、請求項93に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項93に記載の核酸分子。
- 前記断片が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項93に記載の核酸分子。
- 配列番号:2または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記ペプチドが配列番号:2と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項97に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項97に記載のペプチド。
- 配列番号:2の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記断片は30〜100アミノ酸を有する、請求項100に記載のペプチド。
- 前記ペプチドは前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項100に記載のペプチド。
- 前記ペプチドはβ−カテニンに結合する、請求項100に記載のペプチド。
- 配列番号:1または配列番号:1と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記核酸分子は配列番号:1と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項104に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子がβ−カテニンに結合する、請求項104に記載の核酸分子。
- 配列番号:1の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記断片は90〜300ヌクレオチドを有する、請求項107に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項107に記載の核酸分子。
- 前記断片が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項107に記載の核酸分子。
- 配列番号:2または配列番号:2と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記ペプチドが配列番号:2と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項111に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項111に記載のペプチド。
- 配列番号:2の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記断片は30〜100アミノ酸を有する、請求項114に記載のペプチド。
- 前記ペプチドは前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項114に記載のペプチド。
- 前記ペプチドはβ−カテニンに結合する、請求項114に記載のペプチド。
- 配列番号:3または配列番号:3と少なくとも80%以上の同一性を有する配列(但し、前記配列は全長のp300タンパク質をコードしない)を含む、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記核酸分子は配列番号:3と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項118に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項118に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、p300タンパク質内に存在する、200個以下の連続したアミノ酸残基を含むペプチドをコードする、請求項118に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、p300タンパク質内に存在する、150個以下の連続したアミノ酸残基を含むペプチドをコードする、請求項118に記載の核酸分子。
- 前記ペプチドが配列番号:4を含む、請求項122に記載の核酸分子。
- 配列番号:3の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列(但し、前記配列は全長のp300タンパク質をコードしない)を含む、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記断片は90〜300ヌクレオチドを有する、請求項124に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子は、前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項124に記載の核酸分子。
- 前記断片は、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項124に記載の核酸分子。
- 配列番号:4または配列番号:4と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドを含む、実質的に精製単離されたペプチド(但し、ペプチドは全長のp300タンパク質ではない)。
- 前記ペプチドが配列番号:4と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項128に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項128に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが、p300タンパク質内に存在する、連続したアミノ酸200残基以下を含む、請求項128に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが、p300タンパク質内に存在する、連続したアミノ酸150残基以下を含む、請求項128に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが配列番号:4を含む、請求項132に記載のペプチド。
- 配列番号:4の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列を含む、実質的に精製単離されたペプチド(但し、ペプチドは全長のp300タンパク質ではない)。
- 前記断片が30〜100アミノ酸を有する、請求項134に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項134に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項134に記載のペプチド。
- 配列番号:3または配列番号:3と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記核酸分子が配列番号:3と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項138に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項138に記載の核酸分子。
- 配列番号:3の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製分離された核酸分子。
- 前記断片が90〜300ヌクレオチドを有する、請求項141に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項141に記載の核酸分子。
- 前記断片が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項141に記載の核酸分子。
- 配列番号:4または配列番号:4と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記ペプチドが配列番号:4と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項145に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項145に記載のペプチド。
- 配列番号:4の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記断片は30〜100アミノ酸を有する、請求項148に記載のペプチド。
- 前記ペプチドは前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項148に記載のペプチド。
- 前記ペプチドはβ−カテニンに結合する、請求項148に記載のペプチド。
- 配列番号:3または配列番号:3と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記核酸分子が、配列番号:3と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項152に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項152に記載の核酸分子。
- 配列番号:3の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から本質的に構成される、実質的に精製単離された核酸分子。
- 前記断片が90〜300ヌクレオチドを有する、請求項155に記載の核酸分子。
- 前記核酸分子が前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項155に記載の核酸分子。
- 前記断片が、β−カテニンに結合するペプチドをコードする、請求項155に記載の核酸分子。
- 配列番号:4または配列番号:4と少なくとも80%以上の同一性を有するペプチドから構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記ペプチドが配列番号:4と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項159に記載のペプチド。
- 前記ペプチドがβ−カテニンに結合する、請求項159に記載のペプチド。
- 配列番号:4の断片または前記断片と少なくとも80%以上の同一性を有する配列から構成される、実質的に精製単離されたペプチド。
- 前記断片は30〜100アミノ酸を有する、請求項162に記載のペプチド。
- 前記ペプチドは前記断片と少なくとも90%以上の同一性を有する、請求項162に記載のペプチド。
- 前記ペプチドはβ−カテニンに結合する、請求項162に記載のペプチド。
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