JP2007131544A - エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体の製造方法、抗体、ハイブリドーマ、その免疫学的測定方法および測定キット - Google Patents

Abstract

【課題】 エマメクチンおよびその類似化合物（主としてエマメクチンの代謝生成物）に対して高感度、かつ選択性の高い抗体を作製するための方法、およびエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体、ならびに当該抗体を用いた高感度かつ定量性に優れたエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法、および測定キットを提供すること。
【解決手段】 上記エマメクチン（１６員環マクロライド系殺虫剤）の類似化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることを用いることを特徴とする。
【選択図】 なし

Description

本発明は、エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体の製造方法、抗体、ハイブリドーマ、その免疫学的測定方法および測定キットに関する。
ここで、エマメクチンとは、エマメクチンＢ１ａとエマメクチンＢ１ｂの混合物をいい、
エマメクチンＢ１ａとは、化学名『（１０Ｅ，１４Ｅ，１６Ｅ，２２Ｚ）−（１Ｒ，４Ｓ，５’Ｓ，６Ｓ，６’Ｒ，８Ｒ，１２Ｓ，１３Ｓ，２０Ｒ，２１Ｒ，２４Ｓ）−６’−［（Ｓ）−ｓｅｃ−ブチル］−２１，２４−ヒドロキシ−５’，１１，１３，２２-テトラメチル−２−オキソ−３，７，１９−トリオキサテトラシクロ［１５，６，１，１^４，８，０^{２０，２４}］ペンタコサ−１０，１４，１６，２２−テトラエン−６−スピロ−２’−（５’，６’−ジヒドロ−２’Ｈ−ピラン）−１２−イル ２，６−ジデオキシ−３−Ｏ−メチル−４−Ｏ−（２，４，６−トリデオキシ−３−Ｏ−メチル−４−メチルアミノ−α−Ｌ−リキソ−ヘキソピラノシル）−α−Ｌ−アラビノ−ヘキソピラノシド』と表される物質をいい、
エマメクチンＢ１ｂとは、化学名『（１０Ｅ，１４Ｅ，１６Ｅ，２２Ｚ）−（１Ｒ，４Ｓ，５’Ｓ，６Ｓ，６’Ｒ，８Ｒ，１２Ｓ，１３Ｓ，２０Ｒ，２１Ｒ，２４Ｓ）−２１，２４−ヒドロキシ−６’−イソプロピル−５’，１１，１３，２２−テトラメチル−２−オキソ−３，７，１９−トリオキサテトラシクロ［１５，６，１，１^４，８，０^{２０，２４}］ペンタコサ−１０，１４，１６，２２−テトラエン−６−スピロ−２’−（５’，６’−ジヒドロ−２’Ｈ−ピラン）−１２−イル ２，６−ジデオキシ−３−Ｏ−メチル−４−Ｏ−（２,４,６−トリデオキシ−３−Ｏ−メチル−４−メチルアミノ−α−Ｌ−リキソ−ヘキソピラノシル）−α−Ｌ−アラビノ−ヘキソピラノシド』と表される物質をいう。

エマメクチンは、以下の式（２）：

（式中、Ｒ_２はメチル基およびエチル基を示す）
で表される構造を有する１６員環マクロライド系殺虫剤で、害虫の神経系に作用し速やかに殺虫効果を発揮して食害を抑制する。ミナミキイロアザミウマ，チャノキイロアザミウマ等のアザミウマ目害虫，シンクイムシ類，チャノホソガ，キンモンホソガ，ギンモンハモグリガ，モモハモグリガ，ミカンハモグリガ等の鱗翅目害虫，更にはマメハモグリバエ等の双翅目害虫やハダニ類などの幅広い害虫に低薬量で卓効を示し、既存薬剤に抵抗性を示す害虫に対しても優れた効果を示す作物に対して安全性の高い化合物である。

近年、土壌、水、大気等の環境中での残留農薬や、最近特に増加してきた輸入農産物の農薬等の残留に大きな社会的関心が寄せられている。エマメクチンについては、食品衛生法で食品、添加物等規格基準の残留基準値が、例えば、キャベツ（０．１ｐｐｍ）、だいこん類の根（０．１ｐｐｍ）、だいこん類の葉（０．１ｐｐｍ）、はくさい（０．１ｐｐｍ）、ブロッコリー（０．１ｐｐｍ）、芽キャベツ（０．１ｐｐｍ）、きゅうり（０．１ｐｐｍ）、トマト（０．１ｐｐｍ）、なす（０．１ｐｐｍ）、茶（０．５ｐｐｍ）などと定められている。従って、環境や食品に関する安全確保のためには、上記の農作物に含有される、エマメクチンの量を迅速かつ正確に測定することが必要である（非特許文献１参照）。

従来、例えば農作物中のエマメクチンの含有量は、代謝生成物についても同時に求める必要のあることから、麦、果実、野菜類等から抽出した後、２通りの方法で処理し、蛍光誘導化の処理を行った後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により分析されてきた。即ち、試料をメタノールで抽出、ろ過後、Ｃ_１８ミニカラム、次いでスルホプロピルシリカゲルミニカラム処理を行う。次に処理液を２つに分け、一方は更にＮＨ_２シリカゲルミニカラムで処理後、それぞれ蛍光誘導化し、ＨＰＬＣで測定する方法が採用されている（非特許文献１参照）。

近年、多種類の農薬を一括して分析する機器分析による一斉分析法が公定法として認められてきており、一斉分析法は残留農薬分析で大きな位置を占めつつある。しかし、エマメクチンはその複雑な前処理法の故に一斉分析法による分析はできず、単一の分析でも時間がかかることから簡便な分析法の確立が望まれている。

一方、免疫学的測定法は、抗原抗体反応を利用して抗原の測定を行うもので、測定精度が優れているばかりでなく、迅速、簡便かつ経済的な測定法である。従来、免疫学的測定法は、臨床診断の分野で患者の病態解析法の一つとして大きな役割を担ってきたが、環境負荷化学物質の測定への適用が進んでいる。

「農薬登録保留基準ハンドブック（改正４版）」 〔第１６９〜１７３頁〕 （化学工業日報社）

しかしながら、上記ＨＰＬＣで測定する方法は、試料の調製が煩雑で多大の手順と時間を必要とし、分析に熟練を要すること、並びに、測定装置や設備等に高額の費用を必要とする等の問題点がある。エマメクチンの測定は短時間で膨大な数の試料の分析結果を出す必要があり、精度面だけでなく、簡便性、迅速性及び経済性をも具備した新規測定方法が要求されている。

また、免疫学的測定法においても、エマメクチンに対する抗体の作製、それを用いた測定方法についての報告はなく、実用化の要請が強まっている。

免疫測定法はその性質上、構造類似化合物に対しても高い反応性を示すことが多い。逆に以下の一般式（３）

（式中、Ｒ_１：−ＮＨ_２、−ＮＨＣＨＯおよび−Ｎ（ＣＨ_３）ＣＨＯを、Ｒ_２はメチル基およびエチル基を示す）
で表されるエマメクチンの代謝生成物（以後、Ｒ_１：−ＮＨ_２をアミノ体、−ＮＨＣＨＯをホルミルアミノ体、−Ｎ（ＣＨ_３）ＣＨＯをＮ−メチルホルミルアミノ体と称する）はその化学構造がエマメクチンに非常に類似していることから、エマメクチンの糖鎖の末端部分のアミノ基の部分にリンカーを導入したハプテン由来の抗体を作製した場合、その抗体はエマメクチンのみならずその代謝生成物に対しても高い反応性が期待でき、エマメクチンとその代謝生成物を同時に測定できる可能性が高い。

本発明の目的は、エマメクチンおよびその類似化合物（主としてエマメクチンの代謝生成物）に対して高感度、かつ選択性の高い抗体を作製するための方法、およびエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体、ならびに当該抗体を用いた高感度かつ定量性に優れたエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法、および測定キットを提供することにある。

本発明者らは、前記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、以下に示すエマメクチン誘導体をハプテンとして使用することによるエマメクチンおよびその類似化合物の抗体作製方法、抗体、その抗体を産生するハイブリドーマ、その抗体を含んでなるエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法、および測定キットにより前記目的を達成することができることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、下記式（１）：

（式中、Ｒ_１はＮＲ_３Ｒ_４またはＯＲ_３を、Ｒ_２はメチル基およびエチル基を、Ｒ_３は水素原子、−ＣＯ（ＣＨ_２）ｎＲ_５または−（ＣＨ_２）ｎＲ_５を、Ｒ_４は水素原子または炭素数１から１０のアルキル基を、Ｒ_５は水素原子、カルボキシル基、アミノ基、アルデヒド基またはヒドロキシル基を、ｎは０から１０の整数を表す。）
で表わされる構造を有する化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることによるエマメクチンに対する抗体の製造方法である（請求項１）。

本発明者は、上記化合物（１）をエマメクチンおよびその類似化合物のハプテンとして好適に用いることにより、高感度、かつ選択性の高いエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体の作製が可能であることを案出したものであり、当該抗体を用いた高感度かつ定量性に優れたエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法および測定キットを提供することができる。

特に、前記式（１）で表される化合物において、Ｒ_１が−Ｎ（ＣＨ_３）ＣＯ（ＣＨ_２）_３ＣＯＯＨ、Ｒ_２がメチルおよびエチルで表される構造を有することが好ましい（請求項２）。

こうした構成を有することによって、エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体製造のハプテンとして特に優れた効果を奏することができる。

本発明は、上記製造方法にて得られるエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体または抗原と結合可能なそのフラグメントである（請求項３）。

本発明においては、上記化合物をハプテンとして得られた抗体と、上記ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより、動物においてエマメクチンおよびその類似化合物に対する免疫応答を良好に惹起することができ、特異的かつ高感度なエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体またはそのフラグメントを得ることができる。

本発明は、上記抗体またはそのフラグメントであって、エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体またはそのフラグメントが、ポリクローナル抗体またはそのフラグメントあるいはモノクローナル抗体またはそのフラグメントであることを特徴とする（請求項４）。

一般に抗体には、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体が包含され、本発明においては、いずれの抗体をも利用できる。また、本発明に係る抗原−抗体反応においては、さらに、こうした抗体のみならず、ＦａｂフラグメントやＦ（ａｂ’）２フラグメントなどのように抗原結合性を有する抗体の一部も包含される。

本発明は、上記のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマである（請求項５）。

本発明に係るハイブリドーマによって、前記モノクローナル抗体を安定して産生することができるとともに、当該ハイブリドーマを培養または由来の動物の腹腔内に投与し腹水を作らせることにより、大量のモノクローナル抗体を製造することができる。

具体的には、本発明においては、前記ハイブリドーマがＥＭＴ２−１７Ｈ７−２であることが好ましい（請求項６）。

こうしたハイブリドーマによって、エマメクチンおよびその類似化合物に対する高感度かつ選択性が高い抗体を安定的に産出することができることを見出したもので、エマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定に好適に用いることができる。

本発明は、上記いずれかの抗体またはそのフラグメントを含んでなるエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法である（請求項７）。

本発明のエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法は、本発明の抗体またはそのフラグメントを用いることにより感度、特異性および操作の簡便性にすぐれた効果を奏する。

また、本発明は、上記いずれかの抗体またはそのフラグメントを含んでなるエマメクチンおよびその類似化合物の測定キットである（請求項８）。

本発明の測定キットは、本発明の抗体またはそのフラグメントおよび測定方法を含むことにより、エマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定に好適に用いられ、エマメクチンおよびその類似化合物を特異的、高感度および簡便に測定することができる。

本発明の製造方法は、エマメクチンおよびその類似化合物の抗体製造に好適に用いられるものである。エマメクチンハプテン化合物と高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより、動物においてエマメクチンおよびその類似化合物に対する免疫応答を良好に惹起することができ、特異的かつ高感度なエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体を得ることができる。また、前記式（１）で表される化合物において、Ｒ_１は−Ｎ（ＣＨ_３）ＣＯ（ＣＨ_２）_３ＣＯＯＨの場合、エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体製造のハプテンとして特に優れた効果を奏する。

本発明の抗体は、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体のいずれの場合も、エマメクチンおよびその類似化合物に対する感性を有し、本発明に係る抗原−抗体反応に用いることができる。特に、モノクローナル抗体である場合、エマメクチンおよびその類似化合物に対して高感度であり、しかも他の化合物に対する交差反応性が認められず、エマメクチンおよびその類似化合物を特異的に検出することができる。本発明のハイブリドーマは、前記モノクローナル抗体を安定して産生することができ、例えば、当該ハイブリドーマを培養または由来の動物の腹腔内に投与し腹水を作らせることにより、大量のモノクローナル抗体を製造することができる。また、本発明においては、上記いずれかの抗体またはそのフラグメントを含むことにより、エマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法に好適に用いられ、エマメクチンおよびその類似化合物を特異的、高感度および簡便に測定することのできる測定キットを提供することができる。

本発明は、下記式（１）：

（式中、Ｒ_１はＮＲ_３Ｒ_４またはＯＲ_３を、Ｒ_２はメチル基およびエチル基を、Ｒ_３は水素原子、−ＣＯ（ＣＨ_２）ｎＲ_５または−（ＣＨ_２）ｎＲ_５を、Ｒ_４は水素原子または炭素数１から１０のアルキル基を、Ｒ_５は水素原子、カルボキシル基、アミノ基、アルデヒド基またはヒドロキシル基を、ｎは０から１０の整数を表す。）
で表わされる構造を有する化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることによるエマメクチンに対する抗体の製造方法を提供する。該製造方法は、エマメクチンおよびその類似化合物の製造方法として好適に使用される。

ハプテン化合物として用いる上記化合物（１）の製造は、公知の合成方法により行うことができ、特に限定されるものではないが、例えば化合物（１）のＲ_１が−Ｎ（ＣＨ_３）ＣＯ（ＣＨ_２）_３ＣＯＯＨのものは、下記反応式：

（式中Ｒ_２，ｎは前述と同じ意味を表す）
で示す方法は、高収率で化合物を得ることから好適に用いられる。

具体的には、前記反応式において、出発原料としてのエマメクチン（２）に塩基の存在下ω−カルボキシアルキルカルボン酸および溶媒の存在下に脱水剤のＤＣＣ(ジシクロヘキシルカルボジイミド）を加え反応させてエマメクチンのＮ−ω−カルボキシアルキルカルボニル誘導体（４）を得る。

この反応で塩基としては特に限定されないが、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどの水酸化アルカリ金属類、水素化ナトリウム、水素化カリウムなどの水素化アルカリ金属類、ナトリウムメチラート、ナトリウムエチラートなどのアルカリ金属アルコラート類、炭酸カリウム、炭酸ナトリウムなどの炭酸塩類、トリエチルアミン、ピリジン、４−ジメチルアミノピリジン、ＤＢＵなどの有機塩基類などを使用することができる。溶媒としては、例えばメタノール、エタノールなどのアルコール類、塩化メチレン、クロロホルムなどの塩素系溶媒、ベンゼン、トルエンなどの芳香族炭化水素類、ジエチルエーテル、ジプロピルエーテル、テトラヒドロフランなどのエーテル類、アセトン、メチルエチルケトンなどのケトン類、アセトニトリル、プロピオニトリルなどのニトリル類、ジメチルホルムアミド、ジメチルアセトアミドなどの酸アミド類、ジメチルスルホキシドなどのスルホキシド類、水およびそれらの混合溶媒などを挙げることができる。反応温度は通常室温から溶媒の沸点の温度で、３０分から２０時間程度行う。
詳細な合成方法は、実施例に記載する。

このようにして得られたエマメクチン誘導体は、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、ウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ）、オボアルブミン（ＯＶＡ）、スカシ貝ヘモシアニン（ＫＬＨ）、チログロブリン（ＴＧ）、免疫グロブリン等の高分子化合物（タンパク質）との複合体を形成させた後、抗原として用いる。

複合体の形成方法は、公知の方法により行うことができ、特に限定されるものではない。例えば、混合酸無水物法または活性エステル法等によって、エマメクチン誘導体のカルボキシル基と前記高分子化合物の官能基とを反応させて、複合体を形成することができる。

本発明は、上記エマメクチン誘導体と高分子化合物との複合体を抗原として用いることにより得られるエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体を提供する。当該抗体は、エマメクチンおよびその類似化合物に対する特異性を有する抗体である。

抗体には、一般に免疫したウサギやヤギなどから血液を採取後その中に含まれる抗体を分離・精製するいわゆるポリクローナル抗体や、抗体産生能を持つクローン化ハイブリドーマの分泌する抗体を分離・精製するいわゆるモノクローナル抗体がある。本発明においては、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体が包含される。モノクローナル抗体が有する高感度性および高選択性、さらには、複数のモノクローナル抗体の組み合わせによる複数成分との分離可能な反応性など、適用の汎用性の広さから、特にモノクローナル抗体が好ましい。

前記モノクローナル抗体は、エマメクチンおよびその類似化合物に対する特異性と他の物質に対する交差反応性とを明確にするため、下記のようなＩＣ_５０値を有することが好ましい。ここでＩＣ_５０値とは、間接競合ＥＬＩＳＡまたは直接競合ＥＬＩＳＡにより標準阻害曲線を求めて、５０％阻害を示す検体の濃度をいう。ここで、ＥＬＩＳＡとは、Ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ Ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙをいう。

すなわち、本抗体は、エマメクチンおよびその類似化合物を測定対象とする場合は、直接競合ＥＬＩＳＡによるエマメクチンおよびその類似化合物に対するＩＣ_５０が５０ｎｇ／ｍＬ以下であることが好ましく、１０ｎｇ／ｍＬ以下がより好ましい。

前記抗体は、通常の製造方法に従って製造することができる（Current Protocol in Molecular Biology, chapter 11.12〜11.13（2000））。具体的には、本発明の抗体がポリクローナル抗体の場合には、常法に従ってエマメクチンハプテンと高分子化合物との複合体を形成させた後、当該複合体を家兎等の非ヒト動物に免疫し、該免疫動物の血清から常法に従って得ることが可能である。一方、モノクローナル抗体の場合には、前記複合体を常法に従ってマウス等の非ヒト動物に免疫し、得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマ細胞をスクリーニングし、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを培養することにより得ることができる（Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley and Sons. Section 11.4 〜11.11 ）。

抗体の調製は、限外ろ過、硫安分画、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、アフィニテイークロマトグラフィーなどの濃縮・精製法を適宜組み合わせて行うことができる。

また、本発明は、前記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを提供する。以下、マウスでのハイブリドーマの作製方法についてより詳細に説明する。

前記のように、調製した抗原を２ｍｇ／ｍＬ程度になるように生理的リン酸緩衝液に溶解し、アジュバントと等量混合した後、Ｂａｌｂ／ｃマウスの腹腔内に投与する。その後、約２週間毎に追加免疫する。尾血管から採取した血液の血清中の抗体力価が高くなった前記マウスの脾臓を摘出し、無血清ＤＭＥＭ培地（ダルベッコ改変イーグル培地）中で、組織片等を取り除いた後に新しい培地中に移し、脾細胞を完全に培地中に浮遊させる。遠心、上清除去を数回繰り返し、細胞を洗った後、マウスのミエローマ細胞（Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３）と細胞数の比５：１〜１０：１（脾細胞：ミエローマ）で混合する。細胞を沈殿させ上清を取り除いたあと、攪拌しながら５０％ポリエチレングリコール（分子量１５００）をゆっくり加え細胞融合を行う。細胞融合後、遠心分離によって集めた細胞に、細胞数が５×１０^５個／ｍＬになるようにＨＡＴ培地を加えて懸濁し、細胞懸濁液を９６穴プラスチックプレートに２５０μＬ／ウェルの量で分注して、３７℃、５％炭酸ガス、加湿条件下のインキュベーター中で培養する。１週間後、ウェル中の培地の半量をＨＡＴ培地で置換して、１０日から１４日間培養する。培養液中の抗体の活性をＥＬＩＳＡで調べ、目的とする抗体を産生しているウェルの細胞について、限界希釈法によりハイブリドーマのクローニングを行う。クローニングにより、エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体を産生している安定なハイブリドーマ株を得る。

本発明では、前記方法によりハイブリドーマを作製しＥＭＴ２−１７Ｈ７−２について、２００５年９月２７日に独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託した（受領番号 ＦＥＲＭ ＡＰ−２０６６７）。

本発明のハイブリドーマは、培地（例えば、１０％牛胎児血清を含むＤＭＥＭ）を用いて培養し、その培養液の遠心上清をモノクローナル抗体溶液とすることができる。また、本ハイブリドーマを由来する動物の腹腔に注入することにより、腹水を生成させ、得られた腹水をモノクローナル抗体溶液とすることができる。これらの抗体溶液は、さらに上述のように精製・濃縮することができる。

また、本発明においては、エマメクチンおよびその類似化合物に特異的に結合する抗体を含むことにより、エマメクチンおよびその類似化合物を簡便に測定することができ、後述するエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法、および測定手段としての測定キットに好適に使用することができる。

さらに、本発明は、前記抗体を用いることを特徴とするエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法に関する。測定方法としては、通常の抗原−抗体反応を利用する方法であれば特に制限されず、放射性同位元素免疫測定法（ＲＩＡ）、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、蛍光もしくは発光測定法、凝集法、イムノブロット法、イムノクロマト法等（Meth. Enzymol., 92, 147-523 (1983), Antibodies Vol.II IRL Press Oxford (1989)）が挙げられるが、感度や簡便性等の点からＥＩＡが好ましく、汎用性の面からＥＬＩＳＡがより好ましい。ＥＬＩＳＡに用いる酵素としては、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼ等が挙げられる。

ＥＬＩＳＡによる測定法は、間接競合ＥＬＩＳＡまたは直接競合ＥＬＩＳＡなどが挙げられる。例えば以下に述べるような本発明のモノクローナル抗体を用いた直接競合ＥＬＩＳＡによって行うことができる。

（１）本発明のモノクローナル抗体を、担体に固相化する。
用いる担体は、９６穴、４８穴、１９２穴等のマイクロタイタープレートが好ましい。固相化は、例えば、固相化用抗体を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベーションすればよい。緩衝液中の抗体の濃度は、通常０．０１μｇ／ｍＬから１００μｇ／ｍＬ程度である。緩衝液としては、検出手段に応じて公知のものを使用することができる。

（２）担体の固相表面へのタンパク質の非特異的吸着を防止するため、固相化用抗体が吸着していない固相表面部分を、抗体と無関係なタンパク質等によりブロッキングする。
ブロッキング剤としては、ＢＳＡもしくはスキムミルク溶液、または市販のブロックエース（大日本製薬社製）等を使用することができる。ブロッキングは、前記ブロッキング剤を担体に添加し、例えば、約４℃で一晩インキュベーションした後、洗浄液で洗浄することにより行われる。洗浄液としては特に制限はないが、前記（１）と同じ緩衝液を使用することができる。

（３）各種濃度のエマメクチンおよびその類似化合物を含む試料に、エマメクチン誘導体と酵素を結合させた酵素結合ハプテンを加えた混合物を調製する。
酵素結合ハプテンの調製は、エマメクチン誘導体を酵素に結合する方法であれば特に制限なく、いかなる方法で行ってもよい。

（４）工程（３）の混合物を工程（２）で得られた抗体固相化担体と反応させる。
エマメクチンおよびその類似化合物と酵素結合ハプテンとの競合阻害反応により、これらと固相化担体との複合体が生成する。反応は例えば、約２５℃で約１時間行う。反応終了後、緩衝液で担体を洗浄し、固相化抗体と結合しなかった酵素結合ハプテンを除去する。
固相化抗体−酵素結合ハプテン複合体の量を測定することにより、予め作成した検量線から試料中のエマメクチンおよびその類似化合物の量を決定する。

（５）担体に結合した標識酵素と反応する発色基質溶液を加え、吸光度を測定することによって検量線からエマメクチンおよびその類似化合物の量を算出することができる。
標識酵素としてペルオキシダーゼを使用する場合には、例えば、過酸化水素と、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンまたはｏ−フェニレンジアミンを含む発色基質溶液を使用することができる。通常、発色基質溶液を加えて室温で約１０分程度反応させた後、硫酸を加えることにより酵素反応を停止させる。３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンを使用する場合、４５０ｎｍの吸光度を測定する。ｏ−フェニレンジアミンを使用する場合、４９２ｎｍの吸光度を測定する。なお、バックグランド値を補正するため、６３０ｎｍの吸光度も同時に測定することが望ましい。
標識酵素としてアルカリホスファターゼを使用する場合には、例えばｐ−ニトロフェニルリン酸を基質として発色させ、ＮａＯＨ溶液を加えて酵素反応を止め、４１５ｎｍでの吸光度を測定する方法が挙げられる。
エマメクチンおよびその類似化合物を添加しない反応溶液の吸光度に対して、エマメクチンおよびその類似化合物を添加して抗体と反応させた溶液の吸光度の減少率を阻害率として計算する。既知の濃度のエマメクチンおよびその類似化合物を添加した反応液の阻害率により予め作成しておいた検量線を用いて、試料中のエマメクチンおよびその類似化合物の濃度を算出することができる。

別の態様として、エマメクチンおよびその類似化合物の測定は、以下のような手順により間接競合ＥＬＩＳＡによって行うことができる。

（１）固相化抗原を担体に固相化する。
用いる担体は、通常のＥＬＩＳＡに用いる担体であれば特に制限されないが、９６穴等のマイクロタイタープレートが好ましい。固相化は、例えば、固相化用抗原を含む緩衝液を担体上に載せ、インキュベーションすればよい。緩衝液中の抗原の濃度は、通常０．０１μｇ／ｍＬから１００μｇ／ｍＬ程度である。緩衝液としては、検出手段に応じて公知のものを使用することができる。

（２）担体の固相表面へのタンパク質の非特異的吸着を防止するため、固相化用抗原が吸着していない固相表面部分を、抗原と無関係なタンパク質等によりブロッキングする。ブロッキング剤としては、ＢＳＡもしくはスキムミルク溶液、または市販のブロックエース（大日本製薬社製）等を使用することができる。ブロッキングは、前記ブロッキング剤を担体に添加し、例えば、約４℃で一晩インキュベーションした後、洗浄液で洗浄することにより行われる。洗浄液としては特に制限はないが、前記（１）と同じ緩衝液を使用することができる。

（３）前記（１）および（２）で処理された固相表面に各種濃度のエマメクチンおよびその類似化合物を含む試料および本発明のモノクローナル抗体溶液を加え、該抗体を前記固相化抗原、およびエマメクチンまたはその類似化合物に競合的に反応させて、固相化抗原−抗体複合体および、エマメクチンまたはその類似化合物に対する抗体複合体を生成させる。
反応は、通常室温、１〜２時間程度で行うことができる。
エマメクチンおよびその類似化合物は、水に不溶性であるため、反応溶液中には各種有機溶媒を含有することができる。前記有機溶媒としては、エマメクチンおよびその類似化合物を溶解させ、かつ抗原−抗体反応を阻害しない範囲で有機溶媒およびその含有量を選択すればよい。具体的には、メタノール、ジメチルスルホキシド、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミドなどが挙げられ、含有量は５〜５０重量％程度である。

（４）固相化抗原−抗体複合体の量を測定することにより、予め作成した検量線から試料中のエマメクチンおよびその類似化合物の量を決定することができる。
固相化抗原−抗体複合体の量は、酵素標識した二次抗体（マウス抗体を認識する抗体）を添加して測定することができる。例えばエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体としてマウスモノクローナル抗体を用いる場合、酵素標識（例えば、ペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ等）した抗マウス−ヤギ抗体を用いて、担体に結合したエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体と反応させるのが望ましい。反応は、前記（３）と同様の条件下で行えばよい。反応後、緩衝液で洗浄する。

（５）担体に結合した二次抗体の標識酵素と反応する発色基質溶液を加え、酵素結合ハプテンの酵素に反応する発色基質溶液を前述の直接競合阻害ＥＬＩＳＡ法と同様に加え、吸光度を測定することにより検量線からエマメクチンおよびその類似化合物の量を算出することができる。

前記本発明の測定方法においては、測定対象物に応じた前処理をして試料とした後、前記直接競合ＥＬＩＳＡの工程（３）または間接競合ＥＬＩＳＡに供することができる。
例えば、測定対象物が土壌または食品の場合、エマメクチンおよびその類似化合物が抽出できる全ての方法を用いることができる。抽出物は、メタノールに転溶させて緩衝液で希釈後、測定試料にする。簡便法として、メタノールで抽出し緩衝液で希釈したものをそのまま試料とすることも可能である。具体的には、例えば試料５ｇに、メタノール５ｍＬを加えて２０分間振とうする。室温で３０分間静置した後、抽出物の上層２ｍＬを２５００Ｒｐｍで１０分間遠心分離する。上清を蒸留水で１：４に希釈し、これを前記工程（３）に供する。
また、測定対象物が環境水の場合、抽出工程を必要とせず、直接測定試料とすることが可能である。

また、本発明は、前記抗体および免疫学的測定方法を用いることを特徴とするエマメクチンおよびその類似化合物の測定キットに関するものである。具体的に本測定キットは、測定法に応じて、酵素標識された二次抗体もしくは酵素標識されたエマメクチン誘導体（抗原）、緩衝液、検出試薬および／またはエマメクチンおよびその類似化合物の標準溶液等から構成される。さらに、好ましくは、本測定キットは、ＥＬＩＳＡ法に用いられうるものであり、前記直接競合ＥＬＩＳＡ法に用いる場合、固相化されたエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体、固相化抗体を保持する担体、酵素標識された抗原、標準溶液、検出試薬、反応停止液および洗浄液などを含む。酵素標識された抗原および標準溶液は凍結乾燥されていてもよい。こうした構成からなる測定キットを使用し、前記の直接競合ＥＬＩＳＡおよび間接競合ＥＬＩＳＡによる測定方法を用いることによって、エマメクチンおよびその類似化合物を簡便、かつ迅速に測定することができる。

＜実施例＞
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の技術的範囲を限定するためのものではない。当業者は本明細書の記載に基づいて容易に本発明に修飾、変更を加えることができ、それらは本発明の技術的範囲に含まれる。

〔実施例１〕 （４”−ｅｐｉ−［Ｎ−（４−カルボキシブチリル）−Ｎ−メチルアミノ］−４”−デオキシアベルメクチンＢ１ａ／Ｂ１ｂ （エマメクチンハプテン）の合成）
２０ｍＬのシュレンクチューブにエマメクチン３０ｍｇ（０．０３４ｍｍｏｌ）、コハク酸６．０ｍｇ（０．０５１ｍｍｏｌ）および４−ジメチルアミノピリジン４．０ｍｇ（０．０３４ｍｍｏｌ）を入れ、アルゴン置換した。さらに窒素気流下にて塩化メチレンを２ｍＬ加え、アイスバスにて０℃に冷却した。次にジシクロヘキシルカルボジイミド１４．０ｍｇ（０．０６８ｍｍｏｌ）を加えて室温にて１２時間攪拌した。得られた反応混合物をシリカゲルクロマトグラフィー（塩化メチレン／メタノール＝１０／１）で単離精製し、８．０ｍｇの無色透明粘稠液体の生成物を得た。

〔実施例２〕 （免疫原の調製）
免疫原として、スカシ貝へモシアニン（ＫＬＨ）と本発明エマメクチンハプテンとの結合体を、活性エステル法を用いて作製した。
実施例１で製造した４”−ｅｐｉ−［Ｎ−（４−カルボキシブチリル）−Ｎ−メチルアミノ］−４”−デオキシアベルメクチンＢ１ａ／Ｂ１ｂ （エマメクチンハプテン）１．５ｍｇ、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド１．２ｍｇおよび１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド塩酸塩１．９ｍｇを、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド２００μＬに溶解し、この溶液を２５℃の暗所に１．５時間放置しエマメクチンハプテン溶液とした。
別途、０．１Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）１ｍＬにＫＬＨを１０ｍｇ加え、一晩攪拌することにより、ＫＬＨ溶液を得た。
このＫＬＨ溶液に、先に調製したエマメクチンハプテン溶液を徐々に滴下し、暗所にて室温で１．５時間攪拌した。反応終了後、４℃で２日間生理的リン酸緩衝液（ＰＢＳ、１０ｍＭリン酸緩衝液、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）に対して透析した後、−４０℃で貯蔵した。このようにして得られたエマメクチンハプテンとＫＬＨとの結合体を免疫原として使用した。

〔実施例３〕 （固相化抗原の調製）
固相化抗原としてウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）とエマメクチンハプテンとの結合体を、活性エステル法を用いて作製した。
エマメクチンハプテン１．５ｍｇ、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド１．２ｍｇおよび１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド塩酸塩１．９ｍｇを、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド２００μＬに溶解し、この溶液を２５℃の暗所に１．５時間放置しエマメクチンハプテン溶液とした。
別途、０．１Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）１ｍＬにＢＳＡを１０ｍｇ加え、一晩攪拌することにより、ＢＳＡ溶液を得た。
このＢＳＡ溶液に、先に調製したエマメクチンハプテン溶液を徐々に滴下し、暗所にて室温で１．５時間攪拌した。反応終了後、４℃で一晩ＰＢＳ緩衝液（ＰＢＳ、１０ｍＭリン酸緩衝液、１５０ｍＭ ＮａＣｌ．ｐＨ７．０）に対して透析した後、３０℃で貯蔵した。このようにして得られたエマメクチンハプテンとＢＳＡとの結合体を固相化抗原として使用した。

〔実施例４〕 （マウスへの免疫）
実施例２で調製した免疫原を２ｍｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳ緩衝液（０．４％ＢＳＡ、１０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（以下「ＮａＰＢ」という）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）に溶解し、これに等量の完全アジュバント（商品名：フロイント完全アジュバント；ＦＣＡ）を等量混合しエマルジョン化し、その１００μＬを７週齢のメスのＢＡＬＢ／ｃマウスに腹腔投与した。これと同様の手順で、不完全アジュバント（商品名：フロイント不完全アジュバント；ＦＩＣＡ）を等量混合し、２週間後に追加免疫した。更に０.２５ｍｇ/ｍＬの免疫原を不完全アジュバントと等量混合し、その１００μＬを２週間毎に追加免疫した。４回の免疫後、眼底から採血し、血清中の抗体力価とエマメクチンに対する阻害を間接競合法で確認した。

〔実施例５〕 （抗血清の間接競合試験）
（１）４回の免疫から１週間後に、マウスの眼底から採血し、血清部分を１０％ブロックエース−ＰＢＳ緩衝液で１００倍希釈し抗血清希釈液とした。
（２）実施例３で調製した固相化抗原をＰＢＳ緩衝液で５．０μｇ／ｍＬに調製し、９６穴マイクロプレートに１００μＬ／ウェルずつ分注、４℃で一晩静置することにより固相化した。次に液を吸引除去後、２５％ブロックエース−ＰＢＳ緩衝液を３００μｇ／ウェル分注、４℃で一晩静置することによりブロッキングを行い固相化プレートとした。
（３）抗血清希釈液を１０％ブロックエース−ＰＢＳ緩衝液で順次希釈し、固相化プレートに１００μＬ／ウェルずつ分注、２０℃で１時間静置反応させた後、プレートを洗浄した。
（４）ブロックエースで４０００倍に希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合抗マウスＩｇＧヤギ抗体（第２抗体）の１０％ＰＢＳ溶液を１００μＬ／ウェル加え、室温℃で１時間静置した後、プレートを洗浄した。
（５）ＨＲＰ基質溶液（１００μｇ/ｍＬの３，３’，５，５’−テトラメチルベンチジンおよび０．００６％過酸化水素を添加した０.１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５））を１００μＬ／ウェル加え、２５℃で１０分間反応、発色させた。１Ｎ硫酸を１００μＬ／ウェル加えて酵素反応を止め、４５０ｎｍの吸光度を測定した。最終希釈倍数が８００倍で約１．０の吸光度を示す２匹のマウス（Ｎｏ１、Ｎｏ２）の抗血清について、以下のようにしてエマメクチンに対する阻害試験を行った。
（６）０．２％ＢＳＡ−ＰＢＳ緩衝液で４００倍に希釈した抗血清溶液と１０％ブロックエースＢＳＡ−ＰＢＳ緩衝液で希釈した各種濃度のエマメクチン標準液を等量混合し、固相化プレートに１００μＬ／ウェルずつ分注して、２５℃に１時間静置反応させた。
（７）以後の操作は（４）、（５）と同様に行った。抗血清の間接阻害試験結果を図１に示す。

〔実施例６〕 （モノクローナル抗体産生ハイブリドーマの作製）
十分に力価が高くなったことを確認し、１週間後に最終免疫として免疫原１０μｇ／１００μＬ・ＰＢＳを尾静脈から投与した。その３日後に当該マウスから脾臓を摘出し細胞融合に供した。
摘出した脾臓を無血清ＤＭＥＭ培地（ダルベッコ改変イーグル培地）中で余分な組織片を切除したあと、脾臓から完全に細胞を取り出し、培地中に浮遊させた。浮遊している大きな組織片を沈降させるために５分間静置、細胞浮遊液を遠沈管に集め、１５００ｒｐｍで遠心し、上清を吸引除去して、新しい無血清ＤＭＥＭを添加して細胞を浮遊させた。この操作を２回繰り返した。
あらかじめ培養してあったミエローマ細胞（Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３）を回収し、遠沈、上清除去、無血清ＤＭＥＭ培地で再浮遊を２回繰り返した。
それぞれの細胞数を計数して脾細胞とミエローマ細胞との比率が１０：１〜７．５：１になるように混合し、１５００ｒｐｍで５分間遠心して、上清を吸引除去した。
遠沈管を激しく攪拌しながら５０％ポリエチレングリコール（分子量１５００）溶液２ｍＬを約６０秒かけて添加した。次いで約１０ｍＬの無血清ＤＭＥＭを攪拌しながら３〜４分かけて添加した。
遠沈管を１０００ｒｐｍ，５分で遠心して上清を完全に吸引除去し、脾細胞が２．５×１０^６個／ｍＬになるようにＨＴ培地（ヒポキサンチン、チミジン、１０％牛胎児血清入ＤＭＥＭ培地）に浮遊させ、９６穴培養プレートに１００μＬ／ウェル分注し、３７℃、８％炭酸ガス、加湿条件下で培養を開始した。
翌日に約４０μＬ／ウェルのＨＡＴ培地（ヒポキサンチン、チミジン、アミノプテリン、１０％牛胎児血清入ＤＭＥＭ培地）を添加し、ミエローマ細胞が死滅し、ハイブリドーマ細胞のコロニーが形成されるまで観察を続け、以後は細胞の状態を見ながらＨＴ培地を添加した。
培養開始から１０日後に培養液を採取し、間接競合阻害法でエマメクチンに対する抗体を産生しているウェルを選別し、９６ウェル、４８ウェル、２４ウェルと順次培養スケールを上げた。
２４ウェルの段階で限界希釈法によるクローニングを行い、エマメクチンに対するモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ株 ［ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２］を得た。

〔実施例７〕 （モノクローナル抗体の作製）
実施例６で得られたハイブリドーマ株を１０％牛胎児血清入りＤＭＥＭで培養し、約２×１０^７個の細胞をＢＡＬＢ／ｃメスマウスの腹腔内に注射し、腹水液を採取した。
得られた腹水はプロテインＧ カラムによりＩｇＧ精製を行い、抗エマメクチン抗体ＭＥＴ２−１７Ｈ７−２を得た。

〔実施例８〕 （エマメクチンハプテンとＨＲＰとの結合体の調製）
直接競合ＥＬＩＳＡにおいてトレーサーとして用いるため、活性エステル法によりエマメクチンハプテンとＨＲＰとの結合体を調製した。エマメクチンハプテン１．５ｍｇ、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド１．２ｍｇおよび１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド塩酸塩１．９ｍｇを、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド２００μＬに溶解し、この溶液を２５℃の暗所に１．５時間放置しエマメクチンハプテン溶液とした。
別途、０．１Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）１ｍＬにＨＲＰを１０ｍｇ加え、一晩攪拌することにより、ＨＲＰ溶液を得た。
このＨＲＰ溶液に、先に調製したエマメクチンハプテン溶液を徐々に滴下し、暗所にて室温で１．５時間攪拌した。反応終了後、４℃で一晩生理的リン酸緩衝液（ＰＢＳ、１０ｍＭリン酸緩衝液、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）に対して透析した後、３０℃で貯蔵した。ゲル濾過で精製を行い、濃度の測定はＤＣプロテインアッセイで行った。

〔実施例９〕 （直接競合ＥＬＩＳＡ法によるエマメクチンの測定）
（１）抗マウスＩｇＧヤギ抗体をＰＢＳ緩衝液（１０ｍＭ ＮａＰＢ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ）で１０μｇ／ｍＬに希釈し、９６穴マイクロプレートに１００μｇ／ウェルずつ分注し、４℃で一晩放置することにより固相化した。次に液を吸引除去後、ＰＢＳ緩衝液（０．４％ＢＳＡ、１０ｍＭ ＮａＰＢ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）を３００μｇ／ウェル分注し、４℃で一晩静置することによりブロッキングを行った後、ブロッキング液を吸引除去した。
（２）実施例７で得られたモノクローナル抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２をＰＢＳ緩衝液（０．２％ＢＳＡ、１０ｍＭリン酸緩衝液、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）で０．０５μｇ／ｍＬに希釈し、（１）で作製した抗マウスＩｇＧヤギ抗体固相化プレートに１００μｇ／ウェルずつ分注し、２０℃で１時間静置した後、ＰＢＳで洗浄し抗体固相化プレートとした。
（３）ＨＲＰとエマメクチンハプテンの結合体をＰＢＳ緩衝液（０．４％ＢＳＡ、１０ｍＭリン酸緩衝液、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）で０．１２μｇ／ｍＬに希釈しＨＲＰ希釈液とした。
（４）上記ＨＲＰ希釈液と１０％メタノール溶液に溶解したエマメクチンの標準溶液（０．１２５、０．２５、０．５、１．０、２．５、５および１０μｇ／ｍＬ）を等量混合し、その混合液の１００μｇ／ウェルを（２）で得られた抗体固相化プレートに加え、２０℃で１時間静置した後、ＰＢＳで洗浄した。
（５）ＨＲＰ基質溶液（１００μｇ／ｍＬの３，３’，５，５’−テトラメチルベンチジンおよび０．００６％過酸化水素を添加した０．１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５））１００μＬをウェルに加え、２５℃で１０分間インキュベーションした後、１Ｎ硫酸１００μＬをウェルに加えて酵素反応を止め、４５０ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定した。
モノクローナル抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２溶液についての直接競合阻害法によるエマメクチンの標準阻害曲線を図２に示す。モノクローナル抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２溶液を用いた直接競合ＥＬＩＳＡ法によるエマメクチンの測定可能な範囲は０．２５ｎｇ／ｍＬ〜３ｎｇ／ｍＬであり、５０％阻害を示す値（ＩＣ_５０値）は０．７ｎｇ／ｍＬであった。

以上の結果から、本発明のエマメクチン誘導体を用いて得られるモノクローナル抗体を使用する直接競合ＥＬＩＳＡ法により、エマメクチン分析の大幅な簡略化および測定時間の短縮が可能となり、多数の検体を迅速、簡便かつ低コストで測定できることがわかる。

〔実施例１０〕 （抗体のエマメクチン構造類似化合物に対する交差反応性）
エマメクチンと化学構造が類似している農薬および代謝物、および抗生物質農薬について抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２の交差反応性を調べた。交差反応性は、実施例９に記載の方法と同様にして試験化合物のIＣ_５０値を求め、次式により計算し交差反応率を算出した。
交差反応率（％）＝（エマメクチンのＩＣ_５０値／試験化合物のＩＣ_５０値）×１００
その結果、殺ダニ剤アバメクチン〔化５〕（日本未登録）、エマメクチン代謝物のアミノ体、ホルミルアミノ体、Ｎ−メチルホルミルアミノ体に対しては高い交差反応性を示したのに対し、ミルベメクチン〔化６〕、スピノサド、ストレプトマイシンに対しいずれも交差反応性は０．１％以下であり、抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２はエマメクチン、その類縁体のアバメクチンおよび代謝生成物のアミノ体、ホルミルアミノ体、Ｎ−メチルホルミルアミノ体に特異的な抗体と云える。
抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２を用いた直接競合ＥＬＩＳＡ法におけるエマメクチン代謝生成物（アミノ体、ホルミルアミノ体、Ｎ−メチルホルミルアミノ体）、アバメクチンに対する交差反応性を、表１に示す。

ここで、アバメクチンとは、アバメクチンＢ１ａとＢ１ｂの４：１の混合物であって、下式（５）に示す化合物を表す。

（式中Ｒは、Ｃ_２Ｈ_５（アバメクチンＢ１ａ）とＣＨ_３（アバメクチンＢ１ｂ）を表す）

ここで、ミルベメクチンとは、ミルベメクチンＡ３とＡ４の３：７の混合物であって、下式（６）に示す化合物を表す。

（式中Ｒは、Ｃ_２Ｈ_５（ミルベメクチンＡ４）とＣＨ_３（ミルベメクチンＡ３）を表す）

抗血清を用いた間接競合ＥＬＩＳＡ法におけるエマメクチンに対する阻害曲線（マウスＮｏ１，Ｎｏ２）を示す。

抗体ＥＭＴ２−１７Ｈ７−２を用いた直接競合ＥＬＩＳＡ法におけるエマメクチンに対する阻害曲線を示す。

Claims (8)

1. 下記式（１）：
   

   

   （式中、Ｒ_１はＮＲ_３Ｒ_４またはＯＲ_３を、Ｒ_２はメチル基およびエチル基を、Ｒ_３は水素原子、−ＣＯ（ＣＨ_２）ｎＲ_５または−（ＣＨ_２）ｎＲ_５を、Ｒ_４は水素原子または炭素数１から１０のアルキル基を、Ｒ_５は水素原子、カルボキシル基、アミノ基、アルデヒド基またはヒドロキシル基を、ｎは０から１０の整数を表す。）
   で表わされる構造を有する化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることを特徴とするエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体の製造方法。
2. 請求項１に記載の化合物で、Ｒ_１が−Ｎ（ＣＨ_３）ＣＯ（ＣＨ_２）_３ＣＯＯＨ、Ｒ_２がメチル基およびエチル基で表される構造を有する化合物をハプテンとし、当該ハプテンと高分子化合物との複合体を抗原として用いることによるエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体の製造方法。
3. 請求項１または２に記載の製造方法にて得られるエマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体または抗原と結合可能なそのフラグメント。
4. エマメクチンおよびその類似化合物に対する抗体またはそのフラグメントがポリクローナル抗体またはそのフラグメント、あるいはモノクローナル抗体またはそのフラグメントであることを特徴とする請求項３に記載の抗体またはそのフラグメント。
5. 請求項３または４記載の抗体を産生するハイブリドーマ。
6. ハイブリドーマがＥＭＴ２−１７Ｈ７−２である請求項５記載のハイブリドーマ。
7. 請求項３または４記載の抗体またはそのフラグメントを含んでなるエマメクチンおよびその類似化合物の免疫学的測定方法。
8. 請求項３または４記載の抗体またはそのフラグメントを含んでなるエマメクチンおよびその類似化合物の測定キット。

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