JP2006517922A - メタスチン誘導体およびその使用 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】
本発明は、癌転移抑制活性および癌増殖抑制活性を有する、式X-AA1-AA2-AA3-AA4-Z (I)によって表されるメタスチン誘導体、またはその塩、あるいはそのプロドラッグに関する。本発明はまた、癌の予防または治療薬剤としてのこれらの誘導体の使用に関する。
Description
(i)
W1およびW2はそれぞれ水素原子、C1-6アルキル基、C6-14アリール基または複素環基より選択され;
Rは下記の式によって表され:
nは0、1または2である。)
AA1は天然または非天然の芳香族アミノ酸であり;
AA2はGly、Ala、Proまたは Picであり;
AA3は脂肪族アミノ酸であり;
AA4は塩基性アミノ酸またはシトルリンであり;
そしてZは:
(i) 天然または非天然の芳香族アミノ酸、またはそのアミド、あるいはそのエステル;
(ii)下記の式によって表される基:
(iii) 下記の式によって表される基:
または
(iv) 下記の式によって表される基:
より選択される。]
によって表されるメタスチン誘導体またはその塩を提供する。
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる医薬組成物を提供する。本発明の医薬組成物は、有用な癌転移抑制剤または癌増殖抑制剤である。本発明の医薬組成物はまた、有用な癌予防剤または治療剤である。
本発明はまた、有用な胎盤機能調節剤である、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる医薬組成物を提供する。
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における癌転移または癌増殖の抑制方法を提供する
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における膵臓機能の調節方法を提供する
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における胎盤機能の調節方法を提供する。
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、癌転移抑制剤または癌増殖抑制剤を提供する。
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、哺乳動物の膵臓機能調節剤を提供する。
本発明はまた、上に規定するメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、哺乳動物の胎盤機能調節剤を提供する。
本発明はまた、癌転移抑制剤または癌増殖抑制剤を製造するための、メタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用を提供する。
本発明はまた、哺乳動物の膵臓機能調節剤を製造するための、メタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用を提供する。
本発明はまた、哺乳動物の胎盤機能調節剤を製造するための、メタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用を提供する。
(i)
C6-14アリール基としては、フェニル、1-ナフチル、2-ナフチル、2-ビフェニリル、3-ビフェニリル、4-ビフェニリルおよび2-アントリル等が挙げられる。
好ましい実施形態においては、YはY3、Y5、N,N-ビス-(2-ピリジルメチル)アミノ基および4-グアニジノ基より選択される。
特定の実施形態においては、Rは好ましくは
Xの好ましい例は、4-(N,N-ビス-(2-ピリジルメチル)アミノエチル)ベンゾイルまたは4-(グアニジノメチル)ベンゾイルである。
AA2はGly、Ala、Proまたは Picからなる群より選択される。AA2の好ましい例は、Gly、D-Ala、D-ProまたはD-Picである。特定の実施形態においては、AA2は好ましくはGlyである。
AA4は塩基性アミノ酸またはシトルリンである。有用な塩基性アミノ酸の例としては、Arg、LysまたはOrnが挙げられる。特定の実施形態において、AA4は好ましくはArgである。
(i) 天然または非天然の芳香族アミノ酸、またはそのアミド、あるいはそのエステル;
(ii)下記の式によって表される基:
(iii) 下記の式によって表される基:
(iv) 下記の式によって表される基:
本発明のメタスチン誘導体(I)の好ましい例は、後述の調製例において調製される化合物である。最も好ましい本発明のメタスチン誘導体の例には、FM052aおよびFMO53aが含まれる。
(1)M. Bodanszky および M.A. Ondetti、ペプチド シンセシス (Peptide Synthesis), Interscience Publishers, New York (1966年)
(2)SchroederおよびLuebke、ザ ペプチド(The Peptide), Academic Press, New York (1965年)
(3)泉屋信夫他、ペプチド合成の基礎と実験、 丸善(株) (1975年)
(4)矢島治明 および榊原俊平、生化学実験講座 1、 タンパク質の化学IV、 205、(1977年)
(5)矢島治明監修、続医薬品の開発 第14巻 ペプチド合成 広川書店
ヒスチジンのイミダゾールの保護基としては、Tos、4-メトキシ-2,3,6-トリメチルベンゼンスルホニル(Mtr)、DNP、Bom、Bum、Boc、Trt、Fmoc、または当技術分野で公知の他のものなどが挙げられる。
トリプトファンのインドリル保護基としてはフォルミル(For)、Z, Boc、Mts、Mtr、または当技術分野で公知の他のものなどが挙げられる。
原料のカルボキシル基の活性化されたものとしては、たとえば対応する酸無水物、アジド、活性エステル[アルコール(例えば、ペンタクロロフェノール、2,4,5-トリクロロフェノール、2,4-ジニトロフェノール、シアノメチルアルコール、パラニトロフェノール、HONB、N-ヒドロキシスクシンイミド、1-ヒドロキシベンゾトリアゾール(HOBt)、1-ヒドロキシ-7-アザベンゾトリアゾール(HOAt))とのエステル]などが挙げられる。原料のアミノ基の活性化されたものとしては、たとえば対応する亜リン酸アミドが挙げられる。
また、本発明のメタスチン誘導体(I)は、水和物であっても、または非水和物であってもよい。
本明細書に記載のペプチドにおいては、ペプチド標記の慣例に従って左端がN末端(アミノ末端)、右端がC末端(カルボキシル末端)である。ペプチドのC末端は、アミド(-CONH2)、カルボキシル基(-COOH)、カルボキシレート(-COO-)、アルキルアミド(-CONRR)またはエステル(-COOR)であってよく、特にアミド(-CONH2)が好ましい。エステルまたはアルキルアミド基におけるRとしては、C1-6アルキル基(例えば、メチル、エチル、n-プロピル、イソプロピルおよびn-ブチルなど)、C3-8シクロアルキル基(例えば、シクロペンチル、シクロヘキシルなど)、C6-12アリール基(例えば、フェニル、α-ナフチルなど)、フェニル-C1-2アルキル基(例えば、ベンジル、フェネチル、ベンズヒドリルなど)、C7-14アラルキル基(例えば、α-ナフチルメチルなどのα-ナフチル-C1-2アルキル基)、などののほか、経口用エステルとして汎用されるピバロイルオキシメチル基などが用いられる。
また、本発明のメタスチン誘導体(I)のプロドラッグは、広川書店1990年刊「医薬品の開発」第7巻(薬剤設計)163頁から198頁に記載されているような生理的条件で本発明のメタスチン誘導体(I)に変化するものであってもよい。
また、本発明の化合物は胎盤機能調節作用を有するため、例えば、繊毛癌、胞状奇胎、侵入奇胎、流産、胎児発育不全、糖代謝異常、脂質代謝異常または分娩誘発の予防または治療剤として使うことができる医薬組成物として有用である。
滑沢剤としては、例えばステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、タルク、コロイドシリカ等が挙げられる。
有用な結合剤としては、限定はされないが、例えば結晶セルロース、ショ糖、D−マンニトール、デキストリン、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、デンプン、サッカロース、ゼラチン、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム等が挙げられる。
有用な溶剤としては、限定はされないが、例えば注射用水、アルコール、プロピレングリコール、マクロゴール、ゴマ油、トウモロコシ油、オリーブ油等が挙げられる。
有用な溶解補助剤としては、限定はされないが、例えばポリエチレングリコール、プロピレングリコール、D−マンニトール、安息香酸ベンジル、エタノール、トリスアミノメタン、コレステロール、トリエタノールアミン、炭酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム等が挙げられる。
有用な緩衝剤としては、例えばリン酸塩、酢酸塩、炭酸塩、クエン酸塩等の緩衝液等が含まれるが、これに限定されない。
有用な無痛化剤としては、例えばベンジルアルコール等が含まれるが、これに限定されない。
有用な抗酸化剤としては、例えば亜硫酸塩、アスコルビン酸、およびα-トコフェロールが挙げられるが、これに限定されない。
化学療法剤としては、例えば、アルキル化剤、代謝拮抗剤、抗癌性抗生物質、植物由来抗癌剤等が挙げられるが、これに限定されない。
植物由来抗癌剤としては、例えば、エトポシド、リン酸エトポシド、硫酸ビンブラスチン、硫酸ビンクリスチン、硫酸ビンデシン、テニポシド、パクリタキセル、ドセタクセル、ビノレルビン等が含まれるが、これに限定されない。
(1)本発明の化合物または併用薬物を単独で投与する場合に比べて、その投与量を軽減することができる、
(2)患者の症状(軽症、重症など)に応じて、本発明の化合物と併用する薬物を選択することができる、
(3)本発明の化合物と作用機序が異なる併用薬物を選択することにより、治療期間を長く設定することができる、
(4)本発明の化合物と作用機序が異なる併用薬物を選択することにより、治療効果の持続を図ることができる;および
(5)本発明の化合物と併用薬物とを併用することにより、相乗効果が得られる。
本発明の併用剤の使用に際しては、本発明の化合物と併用薬物の投与時期は限定されず、本発明の化合物またはその医薬組成物と併用薬物またはその医薬組成物とを、投与対象に対し、同時に投与してもよいし、時間差をおいて投与してもよい。併用薬物の投与量は、臨床上用いられている投与量に準ずればよく、投与対象、投与ルート、疾患、組み合わせ等により適宜選択することができる。
滑沢剤としては、例えばステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、タルク、コロイドシリカ等が挙げられるが、これに限定されない。
有用な結合剤としては、例えば結晶セルロース、ショ糖、D−マンニトール、デキストリン、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、デンプン、ショ糖、ゼラチン、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム等が挙げられるが、これに限定されない。
有用な溶剤としては、例えば注射用水、アルコール、プロピレングリコール、マクロゴール、ゴマ油、トウモロコシ油、オリーブ油等が挙げられる。
溶解補助剤としては、例えばポリエチレングリコール、プロピレングリコール、D−マンニトール、安息香酸ベンジル、エタノール、トリスアミノメタン、コレステロール、トリエタノールアミン、炭酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム等が挙げられる。
有用な緩衝剤としては、例えばリン酸塩、酢酸塩、炭酸塩、クエン酸塩等の緩衝液等が挙げられるが、これに限定されない。
有用な無痛化剤としては、例えばベンジルアルコール等が挙げられるが、これに限定されない。
抗酸化剤としては、例えば亜硫酸塩、アスコルビン酸、α−トコフェロール等が挙げられる。
本発明の併用剤における本発明の化合物と併用薬物との配合比は、投与対象、投与経路、疾患等により適宜選択することができる。
本発明の併用剤における併用薬物の含有量は、製剤の形態によって相違するが、通常製剤全体に対して約0.01ないし100重量%、好ましくは約0.1ないし50重量%、さらに好ましくは約0.5ないし20重量%程度である。
また、本発明の化合物および併用薬物をそれぞれ別々に製剤化する場合も同様の含有量でよい。
本発明の化合物は、固形製剤(例、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤)等の経口投与用製剤に成型するか、坐剤等の直腸投与用製剤に成型するのが好ましい。特に経口投与用製剤が好ましい。
以下に、本発明の化合物または併用薬物の注射剤およびその調製、本発明の化合物または併用薬物の徐放性製剤又は速放性製剤およびその調製、本発明の化合物または併用薬物の舌下錠、バッカル又は口腔内速崩壊剤およびその調製について具体的に示す。
本発明の化合物または併用薬物を水に溶解することにより調製される注射剤が好ましい。該注射剤には安息香酸塩又は/およびサリチル酸塩を含有させてもよい。
該注射剤は、本発明の化合物または併用薬物と所望により安息香酸塩又は/およびサリチル酸塩の双方を水に溶解することにより得られる。
注射剤中の本発明の化合物または併用薬物の濃度は0.5〜50w/v%、好ましくは約3〜20w/v%程度である。また安息香酸塩又は/およびサリチル酸塩の濃度は0.5〜50w/v%、好ましくは3〜20w/v%が好ましい。
注射剤は本発明の化合物または併用薬物と所望により安息香酸塩又は/およびサリチル酸塩の双方を、また必要により前記添加剤を水に溶解することにより得られる。これらの溶解はどのような順序で行ってもよく、従来の注射剤の製法と同様に適宜行うことができる。
注射用水溶液は、例えば100〜121℃の条件で5〜30分高圧加熱滅菌するのがよい。
さらに多回分割投与製剤として使用できるように、溶液に抗菌性を付与した製剤としてもよい。
本発明の化合物または併用薬物を含む核を所望により水不溶性物質や膨潤性ポリマー等の被膜剤で被覆することにより得られる徐放性製剤が好ましい。例えば、1日1回投与型の経口投与用徐放性製剤が好ましい。
このような酸性の解離基を有し、pH依存性の膨潤を示すポリマーとしては、架橋型ポリアクリル酸共重合体、例えばカーボマー(Carbomer)934P、940、941、974P、980、1342等、ポリカーボフィル(polycarbophil)、カルシウムポリカボーフィル(calcium polycarbophil)(最後の2つはBF Goodrich製)、ハイビスワコー103、104、105、304(いずれも和光純薬(株)製)等が挙げられる。
被膜剤で被覆される薬物を含む核(以下、単に核と称することがある)の形態は特に制限されないが、好ましくは顆粒あるいは細粒等の粒子状に形成される。核が顆粒又は細粒から構成される場合、その平均粒子径は、好ましくは約150ないし2,000μm、さらに好ましくは約500ないし1,400μmである。
核の薬物含量は、約0.5ないし95%(w/w)、好ましくは約5.0ないし80%(w/w)、さらに好ましくは約30ないし70%(w/w)である。
核に含まれる賦形剤としては、例えばショ糖、乳糖、マンニトール、グルコース等の糖類、澱粉、結晶セルロース、リン酸カルシウム、コーンスターチ等が用いられる。中でも、結晶セルロース、コーンスターチが好ましい。
防護剤は通常のコーティング法により被覆することができ、具体的には、防護剤を例えば流動層コーティング法、パンコーティング法等により核に被覆することができる。
前記工程Iで得られた核を、前記水不溶性物質及び pH依存性の膨潤性ポリマー、および親水性物質を加熱溶解あるいは溶媒に溶解又は分散させた被膜剤液により被覆するで徐放性製剤が製造される。
核の被膜剤液による被覆方法として、例えば噴霧コーティングする方法等が挙げられる。
被膜剤の被覆量は、核(防護剤の被覆量を含まない)に対して約1ないし90%(w/w)、好ましくは約5ないし50%(w/w)、さらに好ましくは約5ないし35%(w/w)である。
被膜剤による被膜後、必要に応じてタルク等の帯電防止剤を混合してもよい。
速放性製剤が経口固形製剤の場合、通常前記成分に加えて、崩壊剤を含有する。このような崩壊剤としては、例えばカルボキシメチルセルロースカルシウム(五徳薬品製、ECG-505)、クロスカルメロースナトリウム(例えば、旭化成(株)製、アクチゾル(Actisol))、クロスポビドン(例えば、BASF社製、コリドン(Kollidon) CL)、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース(信越化学(株))、カルボキシメチルスターチ(松谷化学(株))、カルボキシメチルスターチナトリウム(木村産業製、エキスプロタブ)、部分α化デンプン(旭化成(株)製、PCS)等が用いられ、例えば水と接触して吸水、膨潤、あるいは核を構成している有効成分と賦形剤との間にチャネルを作る等により顆粒を崩壊させるものを用いることができる。これらの崩壊剤は、二種又はそれ以上を組み合わせて使用できる。崩壊剤の配合量は、用いる薬物の種類や配合量、放出性の製剤設計等により適宜選択されるが、速放性製剤全量に対して、例えば約0.05〜30 w/w %、好ましくは約0.5〜15 w/w %である。
速放性製剤は、通常の製剤の製造技術に基づき、前記各成分を混合し、必要により、さらに練合し、成型することにより調製することができる。前記混合は、一般に用いられる方法、例えば、混合、練合等により行われる。具体的には、例えば速放性製剤を粒子状に形成する場合、前記徐放性製剤の核の調製法と同様の手法により、バーチカルグラニュレーター、万能練合機(畑鉄工所製)、流動層造粒機FD−5S(Pulek社製)等を用いて混合しその後、湿式押し出し造粒法、流動層造粒法等により造粒することにより調製することができる。
舌下錠、バッカル製剤、口腔内速崩壊剤は錠剤等の固形製剤であってもよいし、口腔粘膜貼付錠(フィルム)であってもよい。
舌下錠、バッカル又は口腔内速崩壊剤としては、本発明の化合物または併用薬物と賦形剤とを含有する製剤が好ましい。また、滑沢剤、等張化剤、親水性担体、水分散性ポリマー、安定化剤等の補助剤を含有していてもよい。また、吸収を容易にし、生体内利用率を高めるためにβ-シクロデキストリン又はβ-シクロデキストリン誘導体(例、ヒドロキシプロピル-β-シクロデキストリン等)等を含有していてもよい。
該マトリックス形成剤としては、動物性タンパク類若しくは植物性タンパク類、例えばゼラチン類、デキストリン類ならびに大豆、小麦ならびにオオバコ(psyllium)種子タンパク質等;ゴム質物質、例えばアラビアゴム、ガーガム、寒天ならびにキサンタンガム等;多糖類;アルギン酸類;カルボキシメチルセルロース類;カラゲナン類;デキストラン類;ペクチン類;ポリビニルピロリドン等の合成ポリマー類;ゼラチン-アラビアゴム複合体等から誘導される物質が含まれる。さらに、マンニトール、デキストロース、ラクトース、ガラクトースならびにトレハロース等の糖類;シクロデキストリン等の環状糖類;リン酸ナトリウム、塩化ナトリウムならびにケイ酸アルミニウム等の無機塩類;グリシン、L-アラニン、L-アスパラギン酸、L-グルタミン酸、L-ヒドロシキプロリン、L-イソロイシン、L-ロイシンならびにL-フェニルアラニン等の炭素原子数が2から12までのアミノ酸等が含まれる。
以下の実施例中の「室温」は通常約10℃ないし約35℃を示す。%は、収率はmol/mol%を、クロマトグラフィーで用いられる溶媒は体積%を、その他は重量%を示す。プロトンNMRスペクトルで、OHやNHプロトン等ブロードで確認できないものについてはデータに記載していない。
DMF: N,N-ジメチルホルムアミド
BisPy: N,N-ビス(2-ピリジルメチル)
TFA: トリフルオロ酢酸
Gu-Amb: 4-(グアニジノメチル)ベンゾイル
Pic: ピペコリン酸
Gly: グリシン
Ala: アラニン
Val: バリン
Leu: ロイシン
Ile: イソロイシン
Ser: セリン
Thr: スレオニン
Met: メチオニン
Glu: グルタミン酸
Asp: アスパラギン酸
Lys: リジン
Arg: アルギニン
His: ヒスチジン
Phe: フェニルアラニン
Tyr: チロシン
Trp: トリプトファン
Pro: プロリン
Asn: アスパラギン
Gln: グルタミン
Cys: システイン
Nle: ノルロイシン
Orn: オルニチン
Asx: アスパラギンまたはアスパラギン酸
Glx: グルタミンまたはグルタミン酸
Amb: 4-(アミノメチル)安息香酸
ATP: アデノシン三リン酸
[配列番号:1]ヒト由来メタスチンのアミノ酸配列
以下の実施例は、本発明をより詳細に例証するものであり、本発明の範囲を限定するものではない。
Fmocに基づく固相ペプチド合成法により、保護されたペプチド樹脂を手動で構築した。Arg側鎖保護のため、Pbfを用いた。脱Fmocは、DMF中で20%ピペリジンを用いて実施した(2 x 1分、1 x 20分)。5当量の試薬(Fmoc-アミノ酸、N,N'-ジイソプロピルカルボジイミド(DIPCDI)およびHOBt-H2O)を用いて処理することにより、DMF中で1.5時間、Fmoc-アミノ酸を遊離アミノ酸とカップリングした。
一般的なカップリングプロトコールによって、Trp、Arg(Pbf)、Leu、Gly、Phe、Amb残基をFmoc-Rink樹脂上で連続的にカップリングした(0.51 mmol/g、78.4 mg、0.04 mmol)。20%ピペリジンで処理した後、保護されたペプチド樹脂をDMF-メチレンクロライド中で2-ピリジンカルボキシアルデヒド(32μL、0.338 mmol)およびNaBH(OAc)3 (112 mg、0.528 mmol)を用いて25℃で2時間処理することによってN末端アミノ基を修飾した。この樹脂をTFA/チオアニソール/m-クレゾール/1,2-エタンジチオール/H2O (160:10:10:5:10:4、5 mL)で0℃で2時間処理した。この樹脂を濾過して反応混合物から単離し、TFAで2回洗浄し、次に濾液と洗浄液を混合して減圧下で濃縮した。減圧下で濃縮後、氷冷Et2Oを添加した。遠心より粉末を回収し、デカンテーションにより上清から分離し、次にこの粉末をEt2Oで3回洗浄し、1N酢酸に溶解し、蒸留水で希釈した。分取HPLC(Cosmosil 5C18 AR-IIカラム、ナカライテスク製;アセトニトリル:水)で精製後、単一ピークポリペプチドを得て、凍結乾燥した。このペプチドの純度をHPLCで測定した。このようにして、表題の環状ペプチドFM052aをテトラ-TFA塩(8.43 mg、収率15%)の無色の凍結乾燥粉末として得た。
ピリジン-2-アルデヒドおよび水素添加トリアセトキシボロンナトリウムを用いた他は本質的にFM052aの調製と同じ方法で、FM053aの合成を実施した。N末端アミノ基の修飾は、DMF中で1H-ピラゾール-1-カルバキシアミジン-ハイドロクロライド(29 mg、0.200 mmol)およびN,N-ジイソプロピルエチルアミン(70 mL、0.400 mmol)を用いて処理することにより行い、表題のペプチドFM053aをジ-TFA塩(5.96 mg、収率14%)の無色の凍結乾燥粉末として得た。
略語:Pbf = 2,2,4,6,7-ペンタメチルジヒドロベンゾフラン-5-スルホニル;DMF = N,N-ジメチルホルムアミド;BisPy = N,N-ビス(2-ピリジルメチル);TFA = トリフルオロ酢酸;Gu-Amb = 4-(グアニジノメチル)ベンゾイル
(i) 細胞培養
膵癌細胞系AsPC-1、BxPC-3、Capan-2、CFPAC-1、Panc-1およびSuit-2をAmerican Type Culture Collection より購入した。10%ウシ胎児血清、100単位/mlペニシリン、および100μg/mlストレプトマイシンを補充した適切な培地中で、37℃で、5% CO2/95%空気の湿潤雰囲気下で細胞を単層として培養した。AsPC-1およびPanc-1については、80%コンフルエンスに到達した時点で培地を除去し、細胞をリン酸緩衝化生理的食塩水(PBS)で洗浄し、そして順次用量を増やしたメタスチン(武田薬品工業、大阪、日本)および10%ウシ胎児血清で処理した。15分後に、タンパク質を以下に記述するように単離した。
この試験では、1998年1月から2001年6月の間に本発明者らの勤務する科で膵切除を受けた、膵管腺癌を有する30人の患者を対象とした。他の膵悪性腫瘍、例えば、管内乳頭粘液性腺癌、腺房細胞癌および内分泌腫瘍、等を有する患者は除外した。組織病理学的診断は、京都大学病院病理学科で確認された。膵癌のステージは、pTNM (UICC)システム[Sobin, L.H.およびFleming, I.D. TNM 悪性腫瘍分類(TNM Classification of Malignant Tumors), 5版, (1997); 国際癌防止連合およびアメリカ癌合同委員会(Union Internationale Contre le Cancer and the American Joint Committee on Cancer), Cancer. 80: 1803-4, 1997]にしたがった。院内ガイドラインにしたがって患者からインフォームドコンセントを得た後、腫瘍サンプルを集めた。mRNA発現用サンプルは、手術時に液体窒素中で直ちに凍結し、-80℃で保存した。
遺伝子発現をモニターするため、定量的リアルタイムRT-PCRを実施した。このアプローチは、DNAポリメラーゼ(AmpliTaq Gold)の5'エキソヌクレアーゼ活性を利用するものであった(Bieche, I. et al., Cancer Res. 59:2759-65, 1999; Schmittgen, T.D. et al., Anal Biochem. 285: 194-204, 2000;およびYuan, A. et al., Lab Invest. 80:1671-80, 2000)。
すなわち、遺伝子特異的PCRプライマー対によって規定されるアンプリコン内に、2つの蛍光色素によって標識されるオリゴヌクレオチドプローブを設計し、TaqManプローブと称した。このプローブが完全である限り、5'末端のリポーター色素(6-カルボキシ-フルオレセイン;FAM)の発光は、3'末端の第2の蛍光色素(6-カルボキシ-テトラメチル-ローダミン;TAMRA)によってクエンチされる。PCRの伸長期の間に、ポリメラーゼがTaqManプローブを開裂し、その結果、リポーター色素の放出をもたらした。リポーター色素発光の増大量を、分析ソフトウエアと組み合わせた自動配列検出器(ABI Brism 7700 Sequence Detection System; PE Applied Biosystems)で検出した。反応条件は、製造業者のプロトコールにしたがった。5μlのcDNA(逆転写混合物)、25μlのTaqMan Universal PCR Master Mix (PE Applied Biosystems)およびプライマーについては最終濃度0.3μM、TaqManハイブリダイゼーションプローブについては最終濃度0.2μMのオリゴヌクレオチドを50μl容量で分析した。
分析には下記のプライマーおよびTaqManプローブを用いた(武田)。
上流プライマー:5'-ACTCACTGGTTTCTTGGCAGC-3'(配列番号:5)
下流プライマー:5'-ACCTTTTCTAATGGCTCCCCA-3'(配列番号:6)
TaqManプローブ:5' (FAM)-ACTGCTTTCCTCTGTGCCACCCACT- (TAMRA) 3'(配列番号:7)
(以上KiSS-1用)、および
上流プライマー:5'-CGACTTCATGTGCAAGTTCGTC-3'(配列番号:8)
下流プライマー:5'-CACACTCATGGCGGTCAGAG-3'(配列番号:9)
TaqManプローブ:5' (FAM) -ACTACATCCAGCAGGTCTCGGTGCAGG- (TAMRA)3'(配列番号:10)
(以上hOT7T175用)
サーマルサイクラーのパラメーターは、95℃10分(Taqポリメラーゼの熱活性化のため)の後、95℃15秒および60℃1分を1サイクルとして40サイクル実施した。質および標準化のためのGAPDH RNA評価は、標準的TaqManプローブ化学を利用したTaqMan GAPDH Control Reagent kit (PE Applied Biosystems)を用いて実施した。
セルスクレイパーを用いて細胞をマイクロチューブに回収して、リン酸化阻害RIPAバッファー[50 mM HEPES (pY 7.0), 250 mM NaCl, 0.1% Nonidet P-40, 1 mM フェニルメチルスルホニルフルオリド(PMSF)および20 μg/ml メシル酸ガベキサート含有] 中で60分間溶解し、次にライセート(lysate)を10秒間超音波処理した。全抽出物を12,000 rpmで10分間4℃で遠心し、上清を回収した。タンパク質アッセイキット(Tonein-TP;大塚製薬、東京、日本)を用いてタンパク質濃度を測定した。ライセートを1容量のゲルローディングバッファー[50 mM Tris-HCl (pH 6.7), 4% SDS, 0.02%ブロモフェノールブルー, 20%グリセリンおよび4% 2-メルカプトエタノール含有] に再懸濁し、95℃で90秒間煮沸した。抽出したタンパク質を文献記載の通りにウエスタン・ブロッティングにかけた(Wada, M. et al., Pancreas. 15:176-82, 1997)。すなわち、タンパク質の30μgアリコートをSDS-PAGE (12%ゲル)により単一次元にサイズ分画して、セミドライ式エレクトロブロット装置(Bio-Rad, Richmond, CA)を用いて0.45μmのポリビニリデンジフルオリド膜(Bio-Rad, Richmond, CA)上にトランスブロットした。次に、このブロットをTBSTバッファーで3回洗浄し、第1抗体溶液 [抗ホスホERK抗体(#pTEpY; Promega, Madison, WI)、抗ホスホp38MAPK抗体(#pTGpY; Promega, Madison, WI)または抗ホスホJNK抗体(#pTPpY; Promega, Madison, WI)および0.2% I-block (Promega, Madison, WI)を含有] 中で2時間、室温でインキュベートした。TBSTバッファーで3回洗浄後、ブロットを西洋ワサビペルオキシダーゼ結合抗ウサギIgG(TBSTバッファーを用いた1:2000希釈物)と共に1時間室温でインキュベートした。TBSTバッファーで3回洗浄後、高感度ケミルミネッセンス法試薬(Amersham Life Sciences, Amersham, UK)を用いて製造者のプロトコールにしたがって膜を処理した。この膜をX線フィルムに5-60秒間暴露した。ATTO濃度アナライザーシステムAE-6929M (ATTOコーポレーション、東京、日本)によりタンパク質発現を測定し、発現量を数字で表した。標的タンパク質の量をベータアクチンの量で割り算し、相対強度を得た。
増殖アッセイを行うために、AsPC-1およびPanc-1細胞を10% FBS培地中に播き(内径3 cmの培養皿あたり1x104個)、順次用量を増やしたメタスチンと共に48および98時間インキュベートした。細胞をトリプシン処理し、血球計数器で細胞数を数えた。
ポリビニルピロリドン不含ポリカーボネートを枠にはめたフィルター(ポアサイズ:8μm)をマイクロケモタシス(microchemotasis)チェンバー(Corning Coster Corp., Cambridge, MA)に取り付けた。細胞(AsPC-1は200μlのRPMI1640中に、およびPanc-1は200μlのDMEM中に2x106個)およびペプチドを上室に添加し、37℃で12時間インキュベートして下室へ遊走させた。下室は、化学誘引物質としてAsPC-1に対しては10% FBS/RPMI1640を、Panc-1に対しては5% FBS/DMEMを含んでいた。膜の上面から非遊走細胞を綿棒で取り除いた後、膜の下面の細胞をDiff-Quick (国際試薬株式会社、神戸、日本)で固定、染色した。定量のため、顕微鏡下で、あらかじめ定めた5つの視野で倍率200Xで細胞を数えた。
細胞 (AsPC-1は200μlのRPMI1640中に、およびPanc-1は200μlのDMEM中に2x106個) およびペプチドをマトリゲルで被覆したTranswell (ポアサイズ:8μm; Becton Dickinson Laware, Bedford, MA)に加え、37℃で12時間インキュベートした。Transwellの下室は、AsPC-1に対しては10% FBS/RPMI1640を、Panc-1に対しては5% FBS/DMEMを含んでいた。膜の上面からマトリゲルおよび細胞を取り除いた後、膜の下面の細胞をDiff-Quickで固定、染色し、上記と同様に細胞数を測定した。浸潤インデックスは、遊走細胞数あたりの浸潤細胞数と定義した。
濃度または遊走活性におけるグループ間の比較統計学的評価は、まず最初に反復測定の二元配置分散分析(ANOVA)によって、次にTurkey-Kramer HDS分析を用いたポストホックテストによって実施した。膵臓組織中のmRNAレベルを比較するためには、ウイルコクソンの順位和検定を実施した。高および低KiSS-1またはhOT7T175レベルを有する30人の患者を対象に、カイ2乗検定(またはフィッシャーの直接確率検定)を用いて臨床病理学的特性を比較した。すべてのアッセイは3回独立して実施した。統計学的分析は、マッキントッシュ用JMP統計ソフトウエア(バージョン3.02)を用いて実施した。p <0.05で統計的に有意とみなした。
最初に、30個の浸潤性膵管癌組織サンプルおよび5個の近接正常膵組織サンプルにおけるKiSS-1およびその受容体hOT7T175のmRNAレベルをリアルタイムRT-PCRで調べた(図1)。5個の正常膵組織サンプル中5個で低レベルのメタスチンmRNAが検出されたが、膵管癌組織サンプルでは30個中14個がメタスチンを発現しているのみであった。膵癌組織は正常膵組織と比較してメタスチンmRNAの発現が低い傾向があった。対照的に、メタスチン受容体hOT7T175 mRNAの発現は、正常膵組織ではほとんど観察されなかったが、膵癌では30個のサンプル中30個で検出された。
統計学的には、膵癌組織は正常膵組織と比べてメタスチンの発現が少ない可能性が高く(p=0.0183)、また正常膵組織と比べてメタスチン受容体hOT7T175の発現が多い可能性が高い(p=0.0272)。5個のサンプル対において、近接正常膵組織サンプルと比較して全ての膵癌組織サンプルでhOT7T175は過剰発現された(データ省略)。メタスチンレベル、hOT7T175発現、および臨床病理学的因子(例えば、腫瘍サイズ、TNM状態、後腹膜浸潤または神経浸潤)の間には明らかな相関性は見出されなかった。
6つの膵癌細胞系におけるメタスチンおよびその受容体hOT7T175のmRNA発現を上記のようにリアルタイムRT-PCRによって測定した(図2)。6つの膵癌細胞系のうち、AsPC-1およびSuit-2は低レベルのメタスチンを発現したが、他の4つの細胞系は発現しなかった。対照的に、全細胞系ともヒトメタスチンの受容体であるhOT7T175を発現し、Panc-1は最も強度に発現した。これらの結果に基づいて、AsPC-1細胞系をhOT7T175低発現の代表として、Panc-1細胞系をhOT7T175高発現の代表として選択し、これら2つの細胞系を以下の試験に用いた。
上記の2つの細胞系を用いて、膵癌に対するメタスチンの増殖効果を検討した。組み換えメタスチンを指数増殖期にあるAsPC-1細胞およびPanc-1細胞に最終濃度0、100 nM、1 μMおよび10μMで48時間および96時間添加した。図3は、メタスチンとのインキュベーション下のAsPC-1細胞またはPanc-1細胞の細胞増殖曲線を示す。AsPC-1もPanc-1もメタスチンとのインキュベーションによる増殖遅滞を示さなかった。これは、メタスチンが膵癌細胞の増殖に何ら影響を及ぼさないことを示唆する。
次に、これらの細胞系における遊走活性および浸潤活性に対するメタスチンの影響を調べた。図4Aは、順次用量を増やしたメタスチン(0 nM、100 nM、1 μM、10μM)を12時間添加した場合のAsPC-1およびPanc-1の遊走スコアを示す。ミリリットルあたり2x106個の細胞を上室でメタスチンと共にインキュベートし、細胞を下室へ遊走させた。下室は化学誘引物質として10% FBS/培地を含有していた。メタスチンはPanc-1細胞の遊走活性を40%減少まで抑制したが(p<0.01)、AsPC-1の遊走活性は殆ど影響をうけないことが示された。Panc-1の遊走スコアは、メタスチンを1および10μM添加した場合にもAsPC-1に比べて有意に減少している(両方ともp<0.01)が、AsPC-1細胞の方は軽度な遊走減少が観察されただけであった。対照的に、両細胞系とも、遊走活性によって相殺した場合、メタスチンとのインキュベーションによる浸潤性の低下は何ら示さなかった(図4B)。図4bはメタスチンを12時間用いた、AsPC-1およびPanc-1細胞の浸潤アッセイを示す。細胞(2x106個/ml)およびペプチドをマトリゲルで被覆したTranswellに添加し、37℃で12時間インキュベートした。Transwellの下室は10% FBS/培地を含有していた。AsPC-1およびPanc-1の両細胞とも、10μMメタスチンの添加によって浸潤活性は何ら影響を受けなかった。
膵癌において内因性メタスチン受容体によって活性化されるシグナル経路を評価するため、メタスチンで処理することによってMAPKの活性化を調べた。遊走または浸潤アッセイの場合と同様に、指数増殖期にある細胞を血清含有培地中でインキュベートし、次にメタスチンを含む1% BSA培地に移した。順次用量を増やしたメタスチン(0 nM、0.1μM、1μM、10μM)と共に15分インキュベートした後、ERK1/2、p38およびJNK1/2の活性化をイムノブロットにより測定した(図5A)。ウエスタンブロット分析から、リン酸化ERK1 (pERK1)およびリン酸化ERK2 (pERK2)に対応するダブルバンド、リン酸化p38 (pp38)に対応するシングルバンド、ならびにリン酸化JNK1 (pJNK1)およびリン酸化JNK2 (pJNK2)を示すダブルバンドが同定された。AsPC-1およびPanc-1の両方において、添加したメタスチンの量が増えるにつれ、pERK1は増加した。Panc-1においてp38の軽度な活性化が観察されたが、AsPC-1では観察されなかった。メタスチン添加によるpJNK類の減少または増加は全く見られなかった。図5Bは、AsPC-1細胞およびPanc-1細胞におけるpERK1/2およびpp38の相対強度を示す。メタスチンは、AsPC-1およびPanc-1の両方においてERK1の活性化を増大させ、そしてp38を軽度に活性化させたが、これらの条件下ではPanc-1においてJNKを用量依存的に活性化することはなかった(図5B)。
メタスチン-52ペプチドの2つのより短い変異体を上述のように合成し、それぞれFMO53aおよびFMO52aと名づけた(図6)。可能性のある二塩基開裂部位(RK/RR)および開裂/アミド化部位(GKR)を太字で示す。下線を付した文字部分は予測されるシグナルペプチドを示す。hOT7T175を強発現するPanc-1細胞に対するそれらの生物学的活性を調べた。図7Aは、2つのペプチド(すなわち、KiSS-1の短い誘導体であるFMO53aおよびFMO52a)とインキュベートしたPanc-1の増殖活性を示す。予想されたように、細胞増殖はこれら2つのペプチドによって影響されなかった。遊走活性アッセイにおいて、これら2つのペプチドはPanc-1細胞の遊走インデックスを低下させた。ただし、FMO53aは、メタスチンとほぼ同一の活性を有するFMO52aに比べて抑制が弱かった(図7B)。これら2つのペプチドのメタスチンとのシグナル伝達を比較するため、ERK1/2、p38およびJNKの活性化を上述のようにイムノブロットによって調べた。これら2つのペプチドならびにメタスチンの添加によって、Panc-1細胞においてERK1活性化が観察された。しかし、Panc-1細胞にFMO53aを添加した場合は、FMO52aの添加に比べてpERK1の活性化は少なかった。このことは上述の遊走抑制結果とよく一致していた。pp38は、上記2つの誘導体とインキュベートした後、軽度に活性化され、そしてpJNK類は増加しなかった(図7C)。ERK活性化率は、これらのペプチドの遊走抑制度とよく相関しているように思われた。
Claims (28)
- 式:
(i)
(v)
R1、R2、R3およびR4はそれぞれ水素原子またはC1-6アルキル基より選択され;
W1およびW2はそれぞれ水素原子、C1-6アルキル基、C6-14アリール基または複素環基より選択され;
Rは下記の式によって表される基であり:
nは0、1または2である。)
AA1は天然または非天然の芳香族アミノ酸であり;
AA2はGly、Ala、Proまたは Picであり;
AA3は脂肪族アミノ酸であり;
AA4は塩基性アミノ酸またはシトルリンであり;
そしてZは:
(i) 天然または非天然の芳香族アミノ酸、またはそのアミド、あるいはそのエステル;
(ii)下記の式によって表される基:
(iii) 下記の式によって表される基:
または
(iv) 下記の式によって表される基:
より選択される。]
によって表されるメタスチン誘導体またはその塩。 - 4-[N,N-ビス(2-ピリジルメチル)アミノメチル]ベンゾイル-Phe-Gly-Leu-Arg-Trp-NH2 (FMO52a)(配列番号:4)、4-(グアニジノメチル) ベンゾイル-Phe-Gly-Leu-Arg-Trp-NH2 (FMO53a)(配列番号:3)またはそれらの塩より選択される、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩のプロドラッグ。
- 製薬上許容される担体および治療上有効量の請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる医薬組成物。
- 癌転移抑制剤または癌増殖抑制剤である、請求項4に記載の医薬組成物。
- 癌の予防剤または治療剤である、請求項4に記載の医薬組成物。
- 膵臓の機能調節剤である、請求項4に記載の医薬組成物。
- 急性もしくは慢性の膵炎または膵癌の予防剤または治療剤である、請求項4に記載の医薬組成物。
- 哺乳動物の胎盤機能調節剤である、請求項4に記載の医薬組成物。
- 繊毛癌、胞状奇胎、侵入奇胎、流産、胎児発育不全、糖代謝不全、脂質代謝不全または分娩誘発の予防剤または治療剤である、請求項4に記載の医薬組成物。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における癌転移または癌増殖の抑制方法。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における癌の予防方法または治療方法。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における膵臓機能の調節方法。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における急性もしくは慢性の膵炎または膵癌の予防方法または治療方法。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における胎盤機能の調節方法。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの有効量を哺乳動物に投与することを含んでなる、哺乳動物における繊毛癌、胞状奇胎、侵入奇胎、流産、胎児発育不全、糖代謝不全、脂質代謝不全または分娩誘発の予防方法または治療方法。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、癌転移抑制剤または癌増殖抑制剤。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、癌の予防剤または治療剤。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、哺乳動物の膵臓機能調節剤。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、哺乳動物の急性もしくは慢性の膵炎または膵癌の予防剤または治療剤。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、哺乳動物の胎盤機能調節剤。
- 請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグを含んでなる、哺乳動物における繊毛癌、胞状奇胎、侵入奇胎、流産、胎児発育不全、糖代謝不全、脂質代謝不全または分娩誘発の予防剤または治療剤。
- 癌転移抑制剤または癌増殖抑制剤を製造するための、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用。
- 癌増殖の予防剤または治療剤を製造するための、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用。
- 哺乳動物の膵臓機能調節剤を製造するための、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用。
- 哺乳動物の急性もしくは慢性の膵炎または膵癌の予防剤または治療剤を製造するための、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用。
- 哺乳動物の胎盤機能調節剤を製造するための、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用。
- 哺乳動物における繊毛癌、胞状奇胎、侵入奇胎、流産、胎児発育不全、糖代謝不全、脂質代謝不全または分娩誘発の予防剤または治療剤を製造するための、請求項1に記載のメタスチン誘導体(I)またはその塩あるいはそのプロドラッグの使用。
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