JP2006514826A - 核酸を分析するためのラボ・オン・チップシステム - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、一般に核酸検出分野に関する。特に、本発明は核酸を分析するためのラボ・オン・チップシステムを提供し、本システムは、制御可能閉鎖空間を特に含み、制御可能閉鎖空間と外部環境との間の物質交換を一切せずに制御可能閉鎖空間内で、標的核酸を調製するか、および/または増幅でき、さらに核酸プローブとハイブリッド形成でき、必要に応じてハイブリッド形成信号が取得できる。このラボ・オン・チップシステムを使用して、核酸を分析する方法も提供される。
感染因子を検出するための現行手法では、感染性細菌の検出のために主として細胞培養が使用され、血清学は感染症ウイルスの検出のために主として使用されている。核酸をベースとした検出方法は迅速かつ高感度であり、従来の検出方法、例えば、細胞培養または血清学に基づいた方法と比較すると待ち時間を短縮、あるいはむしろほとんど不要とする。したがって、核酸をベースとした検出方法は、臨床検出において当然のトレンドである。
一態様において、本発明は、核酸を分析するためのラボ・オン・チップシステムに向けたものであり、このシステムは、基材上に適切な材料で囲まれた制御可能な閉鎖空間を備え、この適切な材料は熱伝導性、生体適合性であり、核酸増幅またはハイブリッド形成を阻害せず、この制御可能な閉鎖空間は、その基材表面上に標的核酸に相補的な核酸プローブ、この基材の表面上または離れた位置に試料からこの標的核酸の調製、この標的核酸の増幅、この核酸プローブとこの標的核酸との間のハイブリッド形成に適した他の試薬、および/またはこの核酸プローブとこの標的核酸との間のハイブリッド形成を検出する手段を備え、試料の添加は、適切な条件下で、この制御可能閉鎖空間へ標的核酸を加えることを含み、その結果、この試料から連続的に試料調製され、および/またはこの調製された標的核酸が増幅され、この核酸プローブおよび標的核酸の間でハイブリッド形成され、好ましくは、この制御可能閉鎖空間および外部環境の間での任意の物質交換なしに、この制御可能閉鎖空間内でハイブリッド形成信号が検出される。
開示を明確にするため、本発明の詳細な説明を、以下の複数のサブセクションに分割するが、これは本発明を限定するものではない。
別に規定のないかぎり、本明細書に使用される全ての技術用語および科学用語は、本発明に属する当業者によって一般に理解される用語と同じ意味を有する。本明細書に引用した全ての特許、出願、出版された出願、および他の出版物は、その内容全体を参照によって引用される。本節で述べる定義が、参照によって本明細書に引用される特許、出願、公開された出願、および他の出版で述べられた定義に反する、あるいはさもなくば矛盾する場合は、参照によって本明細書に引用される定義よりも、本節で述べる定義を優先する。
Q=λdT/dx
ここで、Qは熱流量、Aは断面積、dT/dxは温度/厚み勾配、およびλは熱伝導度として定義される。大きな熱伝導度を有する物質は熱の良導体であり、小さな熱伝導度を有するものは、不良熱導体、すなわち優れた熱絶縁体である。したがって、熱伝導度値(単位W/m・K)に関する知見から、異なる材料の断熱効率の間でなされる比較、定量的比較が可能になる。
1)高ストリンジェンシー:0.1×SSPE(あるいは0.1×SSC)、0.1%SDS、65℃、
2)中程度ストリンジェンシー:0.2×SSPE(あるいは1.0×SSC)、0.1%SDS、50℃(中等度ストリンジェンシーとも呼ばれる)、および
3)低ストリンジェンシー:1.0×SSPE(あるいは5.0×SSC)、0.1%SDS、50℃。
一態様において、本発明は、核酸を分析するためのラボ・オン・チップシステムを目的とし、このシステムは、基材上に適切な材料で囲まれた制御可能閉鎖空間を備え、この適切な材料は熱伝導性、生体適合性の材料であり、核酸増幅またはハイブリッド形成を阻害せず、この制御可能な閉鎖空間は、その基材表面上に標的核酸に相補的な核酸プローブを備え、この基材の表面上または離れた位置に、試料からのこの標的核酸の調製と、この標的核酸の増幅と、この核酸プローブとこの標的核酸との間のハイブリッド形成とに適した他の試薬、および/またはこの核酸プローブとこの標的核酸との間のハイブリッド形成を検出する手段を備え、試料の添加は、適切な条件下で、この制御可能閉鎖空間へ標的核酸を加えることを含み、その結果、この試料からの試料調製、および/またはこの調製された標的核酸の増幅、およびこの核酸プローブと標的核酸との間でハイブリッド形成が連続的に実施され、好ましくは、この制御可能閉鎖空間と外部環境との間で任意の物質交換をすることなく、この制御可能閉鎖空間内でハイブリッド形成信号が検出される。
現存するラボ・オン・チップシステムの弱点に対処するために、制御可能閉鎖空間と外部環境との間で物質交換が全くない1つの制御可能閉鎖空間中に従来の3ステップ核酸分析(試料調製、核酸ハイブリッド形成、およびハイブリッド形成信号検出)を組み込んだ代表的なラボ・オン・チップシステムを開発した。このシステムは実験誤差および汚染の発生を減少させるかまたは回避する。分析後、システムのチップは廃棄することができる。システムが閉鎖されているので、従来の核酸分析でしばしば見られる残留汚染は認められない。全工程は3時間以内に完了することができる。
(1.アルデヒド基を有する基材の調製)
ガラス基材は酸性洗浄溶液に室温で一晩浸漬した。続いて、ガラス基材を水ですすぎ、蒸留水で3回洗浄し、脱イオン水で2回洗浄した。その後、遠心分離し、さらに110℃で15分間加熱することにより乾燥させた。このガラス基材を95%エタノールの1%APTES中に浸漬し、室温にて1時間振盪機で穏やかに振盪させた。95%エタノール中で浸漬した後、このガラス基材をすすぎ、つづいて減圧乾燥器中で−0.08Mpaから−0.1Mpa、110℃で20分間乾燥させた。一旦、ガラス基材を室温まで冷却し、12.5%グルタルアルデヒド溶液(12.5%グルタルアルデヒド溶液400mlの場合は、50%グルタルアルデヒド100mlをリン酸ナトリウム緩衝液300mlと混合する(NaH2PO430mlおよびNaCl2.628g、pH7.0に調整する))に浸漬した。室温で4時間浸漬した後、溶液を穏やかに振盪し、さらにガラス基材をグルタルアルデヒド溶液から取り出し、3×SSCで1回洗浄し、続いて脱イオン水で2回洗浄する。過剰の水を遠心分離によって除去し、ガラス板を室温で乾燥させた。
プライマーおよびプローブは上海バイオアジアバイオテクノロジーShanghai BioAsia Biotechnology社により合成された。プローブ1は、アミノ−5’−polyT(15nt)GCATGGACATCGACCCTTATAAAG−3’−TAMRA(配列番号:1)である。プローブ2は、Cy5−5’−GGAGCTACTGTGGAGTTACTC CTGG−3’(配列番号:2)である。上流プライマーは、gTTCAAgCCTCCAAgCTgTg(配列番号:3)である。下流のプライマーは、TCAgAAggCAAAAAAgAgAgTAACT(配列番号:4)である。
プローブ1を終濃度10μMで50%DMSO中に溶解させる。プローブは、あらかじめ設計されたパターンに従ってマイクロアレイ印刷装置(Cartesian Technologies、カリフォルニア州、米国)を使用して基材上に印刷された。つづいて印刷された基材を室温で一晩乾燥させた。その後、室温で2分間振盪させながら印刷された基材を0.2%SDS中に2回浸漬した。基材を2回すすいだ後、脱イオン水で1回洗浄し、続いて遠心分離により乾燥させた。さらにこの基材をNaBH4溶液(1×PBS300mlおよびエタノール100mlにNaBH40.1gを溶解させた)に移し、室温で5分間穏やかに振盪させた。基材をさらに2回すすいだ後、脱イオン水で1分間ずつ2回洗浄し、遠心分離により乾燥させた。
オペレーションマニュアルに従って、自己シールチャンバ(MJリサーチ社、MA、米国)を使用し反応チャンバを調製した。固相化プローブを有する基材をチャンバ内側に面するように作製した。
PCR反応系は、トリス−HCl(24℃、pH8.3)10mmol/L、KCl 50mmol/L、MgCl2 1.5mmol/L、上流プライマーおよび下流プライマー 0.5μmmol/L、TaqDNAポリメラーゼ 1ユニット、dNTP(dATP、dTTP、dCTP、およびdGTP)200μmmol/L、BSA 0.1%、Tween20 0.1%、プローブ2 2μmmol/Lを含む。反応ボリュームの合計は25μlである。続いて、PCR反応系を反応チャンバに導入し、封止した。PCRは、94℃で1分間の前変性、94℃で30秒、55℃で30秒、および72℃で1分のメインサイクルを30サイクル、および72℃で10分の設定プログラムで、PTC−200(MJリサーチ社)を使用して行った。9PCR反応の後、同じPCR装置を使用して52℃、4時間ハイブリッド形成を行った。
ハイブリッド形成法信号は、ScanArray4000蛍光スキャナ(GSI Lumonics、MA、アメリカ)を使用して検出した。レーザ素子3は543nmの励起波長を選択した。光学フィルター7は信号検出に使用した。レーザ素子および光電子倍増管は80%で選択した。焦点の設定はガラス基材によって調整した。検出プロセスはオペレーションマニュアルに従って行なった。反応系に加えられた試料を有する反応チャンバからのチップは、この基材上のプローブ位置で相対的に強い蛍光信号を、また陰性対照プローブ位置では相対的に弱い蛍光信号示すが、一方、試料のない反応チャンバからのチップは相対的に弱い蛍光信号を示し、試料はB型肝炎ウイルスの核酸を含んでいることを示す。
(1.アルデヒド基を有する基材の調製)
ガラス基材は酸性洗浄溶液に室温で一晩浸漬した。続いて、ガラス基材を水ですすぎ、蒸留水で3回洗浄し、脱イオン水で2回洗浄した。その後、遠心分離し、さらに110℃で15分間加熱することにより乾燥させた。このガラス基材を95%エタノールの1%APTES中に浸漬し、室温にて1時間振盪機で穏やかに振盪させた。95%エタノール中で浸漬した後、このガラス基材をすすぎ、つづいて減圧乾燥器中で−0.08Mpaから−0.1Mpa、110℃で20分間乾燥させた。一旦、ガラス基材を室温まで冷却し、12.5%グルタルアルデヒド溶液(12.5%グルタルアルデヒド溶液400mlの場合は、50%グルタルアルデヒド100mlをリン酸ナトリウム緩衝液300mlと混合する(NaH2PO430mlおよびNaCl2.628g、pH7.0に調整する))に浸漬した。室温で4時間浸漬した後、溶液を穏やかに振盪し、さらにガラス基材をグルタルアルデヒド溶液から取り出し、3×SSC中で1回洗浄し、続いて脱イオン水で2回洗浄する。過剰の水を遠心分離によって除去し、ガラス板を室温で乾燥させた。
プライマーおよびプローブは上海バイオアジアバイオテクノロジーShanghai BioAsia Biotechnology社により合成された。分子ビーコンは、5’−アミノ−TTTTT TTTTT TTTTT CGTGC−GTTCAAgCCTCCAAgCTgTg−GCACG A−3’−TAMRA(配列番号:5)である。ヌクレオチドTは蛍光消光剤Dabcylで標識する。上流プライマーは、gTTCAAgCCTCCAAgCTgTg(配列番号:6)である。下流のプライマーは、TCAgAAggCAAAAAAgAgAgTAACT(配列番号:7)である。
分子ビーコンプローブを終濃度10μMで50%DMSO中に溶解させる。プローブは、あらかじめ設計されたパターンに従ってマイクロアレイ印画装置(Cartesian Technologies、カリフォルニア州、米国)を使用して基材上に印刷された。つづいて印刷された基材を室温で一晩乾燥させた。その後、室温で2分間振盪させながら印刷された基材を0.2%SDS中に2回浸漬した。基材を2回すすいだ後、脱イオン水で1回洗浄し、続いて遠心分離により乾燥させた。さらにこの基材をNaBH4溶液(1×PBS300mlおよびエタノール100mlにNaBH40.1gを溶解させた)に移し、室温で5分間穏やかに振盪させた。基材をさらに2回すすいだ後、脱イオン水で1分間ずつ2回洗浄し、遠心分離により乾燥させた。
オペレーションマニュアルに従って、自己シールチャンバ(MJリサーチ社、MA、米国)を使用し反応チャンバを調製した。チャンバ内側に面するように固相化プローブを有する基材を作製した。
PCR反応系は、トリス−HCl(24℃、pH8.3)10mmol/L、KCl 50mmol/L、MgCl2 1.5mmol/L、上流プライマーおよび下流プライマー 0.5μmmol/L、TaqDNAポリメラーゼ 1ユニット、dNTP(dATP、dTTP、dCTP、およびdGTP)200μmmol/L、BSA 0.1%、Tween20 0.1%、プローブ2 2μmmol/Lを含む。反応ボリュームの合計は25μlである。続いて、PCR反応系を反応チャンバに導入し、封止した。PCRは、94℃、1分間の前変性、94℃、30秒のメインサイクル、30サイクルで55℃、30秒、および72℃、1分、および72℃、10分の設定プログラムで、PTC−200(MJリサーチ社)を使用して行った。PCR反応の後、同じPCR装置を使用して52℃、4時間ハイブリッド形成を行った。
ハイブリッド形成法信号は、ScanArray4000蛍光スキャナ(GSI Lumonics、MA、アメリカ)を使用して検出した。レーザ素子3は543nmの励起波長を選択した。光学フィルター7は信号検出に使用した。レーザ素子および光電子倍増管は80%で選択した。焦点の設定はガラス基材によって調整した。検出プロセスはオペレーションマニュアルに従って行なった。反応系に加えられた試料を有する反応チャンバ由来のチップは、この基材上のプローブ位置で相対的に強い蛍光信号を、また陰性対照プローブ位置では相対的に弱い蛍光信号示すが、一方、試料のない反応チャンバ由来のチップは相対的に弱い蛍光信号を示し、試料はB型肝炎ウイルスの核酸を含んでいることを示す。
(1.アルデヒド基を有する基材の調製)
ガラス基材は酸性洗浄溶液に室温で一晩浸漬した。続いて、ガラス基材を水ですすぎ、蒸留水で3回洗浄し、脱イオン水で2回洗浄した。その後、遠心分離し、さらに110℃で15分間加熱することにより乾燥させた。このガラス基材を95%エタノールの1%APTES中に浸漬し、室温にて1時間振盪機で穏やかに振盪させた。95%エタノール中で浸漬した後、このガラス基材をすすぎ、つづいて減圧乾燥器中で−0.08Mpaから−0.1Mpa、110℃で20分間乾燥させた。一旦、ガラス基材を室温まで冷却し、12.5%グルタルアルデヒド溶液(12.5%グルタルアルデヒド溶液400mlの場合は、50%グルタルアルデヒド100mlをリン酸ナトリウム緩衝液300mlと混合する(NaH2PO430mlおよびNaCl2.628g、pH7.0に調整する))に浸漬した。室温で4時間浸漬した後、溶液を穏やかに振盪し、さらにガラス基材をグルタルアルデヒド溶液から取り出し、3×SSCで1回洗浄し、続いて脱イオン水で2回洗浄する。過剰の水を遠心分離によって除去し、ガラス板を室温で乾燥させた。
プライマーおよびプローブは上海バイオアジアバイオテクノロジーShanghai BioAsia Biotechnology社により合成された。プローブ1は、アミノ−5’−polyT(15nt)GCATGGACATCGACCC1TATAAAG−3’−TAMRA(配列番号:8)である。プローブ3は、5’−TCTTTATAAGGGTCG cct−3’(配列番号:9)である。ヌクレオチドTは蛍光消光剤Dabcylで標識する。上流プライマーは、gTTCAAgCCTCCAAgCTgTg(配列番号:10)である。下流のプライマーは、TCAgAAggCAAAAAAgAgAgTAACT(配列番号:11)である。
プローブ1を終濃度10μMで50%DMSO中に溶解させる。プローブは、あらかじめ設計されたパターンに従ってマイクロアレイ印画装置(Cartesian Technologies、カリフォルニア州、米国)を使用して基材上に印刷された。つづいて印刷された基材を室温で一晩乾燥させた。その後、室温で2分間振盪させながら印刷された基材を0.2%SDS中に2回浸漬した。基材を2回すすいだ後、脱イオン水で1回洗浄し、続いて遠心分離により乾燥させた。さらにこの基材をNaBH4溶液(1×PBS300mlおよびエタノール100mlにNaBH4 0.1gを溶解させた)に移し、室温で5分間穏やかに振盪させた。基材をさらに2回すすいだ後、脱イオン水で1分間ずつ2回洗浄し、遠心分離により乾燥させた。
オペレーションマニュアルに従って、自己シールチャンバ(MJリサーチ社、MA、米国)を使用し反応チャンバを調製した。チャンバ内側に面するように固相化プローブを有する基材を作製した。
PCR反応系は、トリス−HCl(24℃、pH8.3)10mmol/L、KCl 50mmol/L、MgCl2 1.5mmol/L、上流プライマーおよび下流プライマー 0.5μmmol/L、TaqDNAポリメラーゼ 1ユニット、dNTP(dATP、dTTP、dCTP、およびdGTP)200μmmol/L、BSA 0.1%、Tween20 0.1%、プローブ3 2μmmol/Lを含む。反応ボリュームの合計は25μlである。続いて、PCR反応系を反応チャンバに導入し、封止した。PCRは、4℃、1分間の前変性、94℃、30秒のメインサイクル、30サイクルで55℃、30秒、および72℃、1分、および72℃、10分の設定プログラムで、PTC−200(MJリサーチ社)を使用して行った。9PCR反応の後、同じPCR装置を使用して52℃、4時間ハイブリッド形成を行った。続いて、ハイブリッド形成されたプローブ1にプローブ3が結合できるようにその反応を30℃で5分間インキュベートした。
ハイブリッド形成法信号は、ScanArray4000蛍光スキャナ(GSI Lumonics、MA、アメリカ)を使用して検出した。レーザ素子3は543nmの励起波長を選択した。光学フィルター7は信号検出に使用した。レーザ素子および光電子倍増管は80%で選択した。焦点の設定はガラス基材によって調整した。検出プロセスはオペレーションマニュアルに従って行なった。反応系に加えられた試料を有する反応チャンバ由来のチップは、この基材上のプローブ位置で相対的に強い蛍光信号を、また陰性対照プローブ位置では相対的に弱い蛍光信号示すが、一方、試料のない反応チャンバ由来のチップは相対的に弱い蛍光信号を示し、試料はB型肝炎ウイルスの核酸を含んでいることを示す。
Claims (39)
- 核酸を分析するためのラボ・オン・チップシステムであって、前記システムは基材上に適切な材料で囲まれた制御可能閉鎖空間を備え、前記適切な材料は熱伝導性、生体適合性の材料であり、核酸増幅またはハイブリッド形成を阻害せず、前記制御可能閉鎖空間は、前記基材の表面上に標的核酸に相補的な核酸プローブを備え、前記基材の表面上または離れた位置に、試料からの前記標的核酸の調製と、前記標的核酸の増幅と、前記核酸プローブと前記標的核酸との間のハイブリッド形成とに適した他の試薬、および/または前記核酸プローブと前記標的核酸との間のハイブリッド形成を検出する手段を備え、試料の添加は、適切な条件下で、前記制御可能閉鎖空間へ前記標的核酸を加えることを含み、その結果、前記試料から試料調製、および/または前記調製された標的核酸の増幅、および前記核酸プローブと前記標的核酸との間でハイブリッド形成が連続的に実施され、好ましくは、前記制御可能閉鎖空間と外部環境との間で任意の物質交換をすることなく、前記制御可能閉鎖空間内でハイブリッド形成信号が検出される、システム。
- 前記適切な材料が気密材料である、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記適切な材料が前記基材上に接着され、制御可能閉鎖空間を形成する、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記適切な材料が前記基材上でミクロ加工され制御可能閉鎖空間を形成する、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記基材が、シリコン、プラスチック、ガラス、石英ガラス、セラミック、ゴム、金属、ポリマー、およびこれらの組み合わせから成る群から選択される材料を含む、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記基材上に1つの核酸プローブを備える、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記基材上に複数の核酸プローブを備える、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブが約5塩基対から約100塩基対までの範囲、あるいは約5ヌクレオチド(nt)から約100ntまでの範囲の長さを有する、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブが標識されている、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記標識が、放射性標識、蛍光性標識、化学標識、酵素標識、発光標識、蛍光共鳴エネルギー転移(FRET)標識、および分子ビーコンから成る群から選択される、請求項9に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブが前記基材へのその付着を促進するように改質されている、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記基材上の官能基を介して、前記核酸プローブが前記基材に付着している、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記官能基は、−CHO、−NH2、−SH、および−S−S−から成る群から選択される、請求項12に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブが結合対によって前記基材に付着している、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記結合対がビオチン/アビジン対、あるいはビオチン/ストレプトアビジン対である、請求項14に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブは、紫外線活性化架橋、熱活性化架橋、NH2と−CHOとの間の相互作用、−SHと−SHとの間の相互作用、ビオチンとアビジンのとの間の相互作用、およびビオチンとストレプトアビジンとの間の相互作用を介して前記基材に付着している、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブが特異的または変性したプローブである、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブがDNA、RNA、PNA、LNA、あるいはこれらの組み合わせである、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 検出位置において、前記システムは2つの核酸プローブを有し、第1のプローブは、第1のFRET標識を有し、前記基材に付着しており、第2のプローブは液体中にあって第2のFRET標識を有し、前記第1および第2の両プローブの標的核酸に対するハイブリッド形成により、前記2つのプローブを隣接させ、前記2つのプローブ間の蛍光共鳴エネルギー転移を可能とし、検出可能な信号を生成する、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記2つのFRET標識は、フルロセインおよびTAMRA、TAMRAおよびCy5、ROXおよびCy5、IAEDNSおよびフルロセイン、あるいはフルロセインおよびQSY−7の組み合わせである、請求項19に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 検出位置において、前記システムは、2つの核酸プローブを有し、前記第1のプローブは前記基材に付着しており、前記第2のプローブが液体中にあり、前記2つのプローブは互いに相補的であり、前記第1のプローブは標的核酸に対して相補的であり、前記2つのプローブのハイブリッドのTmが、前記標的核酸および前記第1のプローブのハイブリッドのTmよりも約5℃から約30℃低く、前記第1のプローブは蛍光性標識を有し、前記第2のプローブは蛍光性標識の消光剤を有し、前記標的核酸の非存在下では、前記2つのプローブはハイブリッド形成され、前記蛍光性標識は前記消光剤により消光されており、標的核酸の存在下では、前記プローブは前記第1のプローブの前記標的核酸へのハイブリッド形成によって分離され、前記蛍光性標識はもはや消光剤により消光されず、検出可能な信号を生成する、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記蛍光性の標識は、6−FAM、TET、HEX、Cy3、Cy5、テキサスレッド、ROX、フルロセイン、およびTAMRAから成る群から選択され、前記蛍光性標識のための前記消光剤は、ダシル、ブラックホール−1、ブラックホール−2、および直径約0.1nmから約10nmまでの金粒子から成る群から選択される、請求項21に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記核酸プローブは、本質的に前記標的核酸と相補的である、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、リガーゼ連鎖反応(LCR)、核酸配列ベースの増幅(NASBA)、鎖置換増幅(SDA)、転写媒介増幅(TMA)、およびローリングサイクル増幅(RCA)を介して前記標的核酸増幅が達成される、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記標的核酸増幅方法の少なくとも1つに適する緩衝液を含む、請求項24に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記標的核酸の増幅、および核酸プローブと前記標的核酸との間のハイブリッド形成に適した試薬類を含む、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 試料からの前記標的核酸の調製、前記標的核酸の増幅、および前記核酸プローブと前記標的核酸との間のハイブリッド形成に適した試薬類を有する、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 温度制御装置さらに備える、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記温度制御装置は市販のPCR装置あるいは水浴の温度制御ユニットを含む、請求項28に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 信号検出装置をさらに備える、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記信号検出装置は蛍光イメージング装置を含む、請求項30に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記制御可能閉鎖空間内での試料からの前記標的核酸の試料調製、および前記核酸プローブと前記調製された標的核酸との間のハイブリッド形成の連続実施に使用される、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 制御可能閉鎖空間内での前記核酸プローブと前記調製された標的核酸との間のハイブリッド形成、およびハイブリッド形成信号解析の連続実施に使用される、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 前記システムを使用し、試料中の標的核酸を調製し、増幅し、および/またはハイブリッド形成するための指示書をさらに備える、請求項1に記載のラボ・オン・チップのシステム。
- 前記制御可能閉鎖空間内における、前記試料からの前記標的核酸の増幅、前記核酸プローブと増幅標的核酸との間のハイブリッド形成、およびハイブリッド形成信号解析の連続実施に使用される請求項1に記載のラボ・オン・チップのシステム。
- 前記制御可能閉鎖空間における、前記試料からの標的核酸の試料調製、前記調製された標的核酸からの前記標的核酸の増幅、前記核酸プローブと前記増幅された標的核酸との間のハイブリッド形成、およびハイブリッド形成信号解析の連続実施に使用される、請求項1に記載のラボ・オン・チップシステム。
- 核酸を分析する方法であって、
a)上記ラボ・オン・チップシステムを提供するステップと、
b)a)で提供される前記システムの前記制御可能閉鎖空間内に、標的核酸を含むかまたは含むことが疑われる試料を添加するステップと、
c)前記試料から前記標的核酸の試料調製、および/または前記調製された標的核酸の増幅、および前記核酸プローブと前記調製された標的核酸との間のハイブリッド形成、および好ましくは、前記ハイブリッド形成信号の検出を前記制御可能閉鎖空間において、連続的に可能とするステップ、とを含む、方法。 - 前記制御可能閉鎖空間において、前記標的核酸を増幅するステップをさらに含む、請求項37に記載の方法。
- 前記制御可能閉鎖空間中の前記核酸プローブと前記調製された標的核酸との間のハイブリッド形成を分析するステップをさらに含む、請求項37に記載の方法。
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