JP7100680B2 - ゲノム適用および治療適用のための、核酸分子のクローン複製および増幅のためのシステムおよび方法 - Google Patents
ゲノム適用および治療適用のための、核酸分子のクローン複製および増幅のためのシステムおよび方法 Download PDFInfo
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Description
本発明の態様は、概して核酸分子の複製および増幅の分野に関する。より具体的には、本発明の特定の態様は、ローリングサークル複製を使用した、生物学的サンプルからのDNA分子の複製を含む。本発明の他の態様は、ローリングサークル増幅を使用した、生物学的サンプルからのDNA分子の増幅を含む。本発明の特定の態様は、生物学的サンプルに由来するゲノムにおける配列変異の特徴付けにおいて利用し得る。本発明の特定の態様は、生物学的サンプルに由来する全染色体またはその一部の分子計数において利用し得る。本発明の特定の態様は、生物学的サンプルに由来するゲノム中でのハプロタイプ構造の特徴付けにおいて利用し得る。本発明の特定の態様は、ゲノム科学、生物医学研究、診断アッセイ、ならびにワクチンおよび治療開発におけるサンプル調製および分析のために適用してもよい。
全ゲノム技術、例えば高密度ジェノタイピングアレイおよび次世代シークエンシング(NGS)は、配列変異、特に単一ヌクレオチド多型(SNP)および単一ヌクレオチド変異(SNV)を同定することができ、本明細書において集合的に、所与の個体または種の「配列変異体」として言及される。しかし現在の方法では、同じDNA分子上のこれらの配列変異体の組み合わせを決定することはできない。配列変異体の組み合わせを決定することは「フェーズ」、同じDNA分子上の配列変異体の特定の組み合わせは「ハプロタイプ」と呼ばれる。例えば、ヒト個体は二倍体であり、各々の体細胞が、各々の親から遺伝した常染色体の2セットを含む。所与の個体のハプロタイプ状態を特徴付けることは、疾患遺伝子をマッピングし、集団の履歴を解明し、表現型発現におけるシスおよびトランス作用変異体のバランスを研究するために重要である。
本発明の一態様は、少なくとも1つのDNA分子の複製方法である。この方法は、少なくとも1つのDNA分子を断片化して少なくとも1つの断片化されたDNA分子を形成する工程;1つまたは複数のヘアピン構造を少なくとも1つの断片化されたDNA分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;少なくとも1つのダンベルテンプレートを少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程であって、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーが、少なくとも1つの基板に付着されている、工程;および、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた少なくとも1つのダンベルテンプレート上でローリングサークル複製を実施して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成する工程を含む。
[本発明1001]
少なくとも1つの核酸分子を断片化して少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの断片化された核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを、少なくとも1つの基板に付着されている少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程;および
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル複製を実施して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成する工程
を含む、少なくとも1つの核酸分子の複製方法。
[本発明1002]
少なくとも1つの核酸分子を断片化して少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの断片化された核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを、少なくとも1つの基板に付着されている少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程;
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル複製を実施して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成する工程;および
該少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを検出する工程
を含む、少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを検出する方法。
[本発明1003]
少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを配列決定することからなる、本発明1002の方法。
[本発明1004]
少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートをDNAプローブと接触させることを含む、本発明1001の方法。
[本発明1005]
DNAプローブがフルオロフォアと結合されている、本発明1004の方法。
[本発明1006]
サンプルから少なくとも1つの核酸分子を単離する工程;
少なくとも1つの核酸分子を断片化して少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの断片化された核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを、少なくとも1つの基板に付着されている少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程;および
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル複製を実施して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成する工程
をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1007]
サンプルから少なくとも1つの核酸分子を単離する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを、少なくとも1つの基板に付着されている少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程;および
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル複製を実施して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成する工程
を含む、少なくとも1つの核酸分子の複製方法。
[本発明1008]
少なくとも1つの核酸分子の配列を検出するためのダンベルテンプレートであって、以下の工程を含む方法によって作られる、ダンベルテンプレート:
サンプルから少なくとも1つの核酸分子を単離する工程;および
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程であって、該ダンベルテンプレートが少なくとも約20キロベース長である、工程。
[本発明1009]
少なくとも1つの核酸分子の配列を検出するためのダンベルテンプレートであって、以下の工程を含む方法によって作られる、ダンベルテンプレート:
サンプルから少なくとも1つの核酸分子を単離する工程;および
2つ以上の異なるヘアピン構造を該少なくとも1つの核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程。
[本発明1010]
少なくとも1つの核酸分子を断片化して少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの断片化された核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを、少なくとも1つの基板に付着されている少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程;および
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル増幅を実施して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成する工程
を含む、少なくとも1つの核酸分子の増幅方法。
[本発明1011]
以下の工程を含む、少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する方法:
少なくとも1つの核酸分子を断片化して少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの断片化された核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを少なくとも2つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程であって、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーが、少なくとも1つの基板に付着されている、工程;
少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル増幅を実施して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成する工程;および
該少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程。
[本発明1012]
少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを配列決定することを含む、本発明1011の方法。
[本発明1013]
少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートをDNAプローブと接触させることを含む、本発明1011の方法。
[本発明1014]
DNAプローブがフルオロフォアと結合されている、本発明1013の方法。
[本発明1015]
以下の工程を含む、少なくとも1つの核酸分子の増幅方法:
サンプルから少なくとも1つの核酸分子を単離する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを少なくとも2つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程であって、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーが、少なくとも1つの基板に付着されている、工程;および
少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル増幅を実施して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成する工程。
[本発明1016]
以下の工程を含む、少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する方法:
少なくとも1つの核酸分子を断片化して少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの断片化された核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結の断片化核酸分子を、エキソヌクレアーゼを用いて処理することにより、該少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを少なくとも2つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程であって、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーが、少なくとも1つの基板に付着されている、工程;
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル増幅を実施して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成する工程;および
該少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程。
[本発明1017]
少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートの配列決定からなる、本発明1016の方法。
[本発明1018]
少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートをDNAプローブと接触させることを含む、本発明1016の方法。
[本発明1019]
DNAプローブがフルオロフォアと結合されている、本発明1018の方法。
[本発明1020]
以下の工程を含む、少なくとも1つの核酸分子の増幅方法:
サンプルから少なくとも1つの核酸分子を単離する工程;
1つまたは複数のヘアピン構造を該少なくとも1つの核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結の核酸分子を、エキソヌクレアーゼを用いて処理することにより、該少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製する工程;
該少なくとも1つのダンベルテンプレートを少なくとも2つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程であって、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーが、少なくとも1つの基板に付着されている、工程;および
該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル増幅を実施して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成する工程。
[本発明1021]
ヘアピン構造を形成することが可能な少なくとも1つのオリゴヌクレオチド;
ヘアピン構造をサンプルからの少なくとも1つの核酸分子に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成するためのリガーゼ;
任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結核酸分子を消化することにより、少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製するためのエキソヌクレアーゼ;および
少なくとも1つのダンベルテンプレートを複製して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成するための、ポリメラーゼおよび少なくとも1つのダンベルテンプレートの領域に実質的に相補的な少なくとも1つのプライマー
を含む、キット。
[本発明1022]
ヘアピン構造を形成することが可能な少なくとも1つのオリゴヌクレオチド;
ヘアピン構造をサンプルからの少なくとも1つの核酸分子に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成するためのリガーゼ;
任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結核酸分子を消化することにより、少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製するためのエキソヌクレアーゼ;および
少なくとも1つのダンベルテンプレートを複製して少なくとも1つの複製されたダンベルテンプレートを形成するための、レプリソームおよび少なくとも1つのダンベルテンプレートの領域に実質的に相補的な少なくとも1つのプライマー
を含む、キット。
[本発明1023]
ヘアピン構造を形成することが可能な少なくとも1つのオリゴヌクレオチド;
ヘアピン構造をサンプルからの少なくとも1つの核酸分子に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成するためのリガーゼ;
任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結核酸分子を消化することにより、少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製するためのエキソヌクレアーゼ;および
少なくとも1つのダンベルテンプレートを増幅して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成するための、ポリメラーゼおよび少なくとも1つのダンベルテンプレートの少なくとも2つの領域に実質的に相補的な少なくとも2つのプライマー
を含む、キット。
[本発明1024]
ヘアピン構造を形成することが可能な少なくとも1つのオリゴヌクレオチド;
ヘアピン構造をサンプルからの少なくとも1つの核酸分子に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成するためのリガーゼ;
任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結核酸分子を消化することにより、少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製するためのエキソヌクレアーゼ;および
少なくとも1つのダンベルテンプレートを増幅して少なくとも1つの増幅されたダンベルテンプレートを形成するための、レプリソームおよび少なくとも1つのダンベルテンプレートの少なくとも2つの領域に実質的に相補的な少なくとも2つのプライマー
を含む、キット。
本発明の態様を詳細に記載する前に、本発明の態様の文脈において使用されるいくつかの用語を定義する。これらの用語に加えて、他のものが、必要に応じて、本明細書の他の箇所で定義される。本明細書で明白に定義されていない限り、本明細書で使用される技術用語は、当技術分野で認識されている意味を有する。
j=3.55×10-8M/kb3/2
式中、kbはキロベース対(kpb)の核酸分子の長さである。所与の連結反応のために、分子内事象のパーセンテージは、j/(i+j)の比率により決定される。すなわち、より大きな核酸分子は、分子内サークルを作製する際に合理的な効率を達成するために、より小さな核酸分子と比較して、さらに希釈しなければならない。選択可能なマーカーが、合理的な確率を伴って分子内連結中に組み入れられるためには、そのモル濃度が、jと大まかに等価であるべきである。しかし、非常に希釈した連結条件下でさえ、分子間連結種を形成する確率が依然として生じ、結果として2つ以上の核酸分子の分子内サークルおよび線状コンカテマーの混合物がもたらされる。下記を含む大きな環状核酸分子を作製することに関連するいくつかの技術的な問題がある:(a)より小さな核酸分子へと破壊することなく、非常に大きな核酸分子を生成および取り扱うこと、(b)接合フラグメントについて濃縮するための適切な選択可能なマーカーを同定すること、および(c)完全で、代表的な核酸ライブラリーを作製する際に大量の出発核酸材料を必要とすること。大きな核酸分子を取り扱うための十分に確立された方法(例えばパルスフィールドゲル電気泳動)が当技術分野において存在し、代替戦略、例えば、接合フラグメントの選択を改善するためのビオチン/アビジンまたはストレプトアビジン系が使用されてきた。しかし、大量の出発核酸材料についての必要性に関する問題は適切に対処されていない。従って、限定された量で出現する貴重な生物学的サンプル、例えば、手術手順中に得られる生検サンプルまたは全血、血漿、もしくは血清から得られる遊離の循環DNAの分析を考慮した場合、分子内連結事象の戦略により核酸サークルを作製することは、ほとんど適用可能ではない。
2つの異なるヘアピン構造を含有するダンベルテンプレートのサイズ非依存性が実証された。サンプルDNA、pUC18ベクターを、プライマー(すなわち、
フォワード:
およびリバース:
)のセットを用いて増幅して425塩基対の産物をもたらした。各々のプライマーの5'末端は、BamHIおよびEcoRI制限酵素部位の両方を含有した。PCR産物を、次に、EcoRIを用いて消化し、5'-AATTオーバーハングを与え、QIAquick PCR精製キットを用いて精製した。
ヘアピン構造1:
を50℃まで加熱しその後冷却することにより、オリゴヌクレオチドが、下線を引いた配列で自己アニーリングすることを可能にし、5'-AATTオーバーハングをもたらした。ループ構造は、M13ユニバーサルプライマー配列を含有した。ヘアピン構造1およびpUC18 PCR産物を10:1モル比でそれぞれ組み合わせ、37℃で40分間、5ユニットのT4ポリヌクレオチドキナーゼを用いて処理し、16℃で30分間、T4 DNAリガーゼの400の付着末端単位を用いて連結し、次に、65℃で10分間、不活性化し、ダンベルテンプレートを形成した。変性した場合、ダンベルテンプレートは、一本鎖サークルになる。ダンベルテンプレートは、QIAquick PCRクリーンアップキットを用いて精製して、過剰の非連結ヘアピン構造を除去した。
M13-RCプライマー:
およびM13コントロールプライマー:
を別々に、20μLの反応物において200μMのdNTPおよび200μg/mLのBSAを伴うφ29反応緩衝液中で、94℃で5分間加熱し、57℃で1分間冷却することにより、約10ngのpUC18ダンベルテンプレートにアニーリングした。反応物をさらに30℃まで冷却し、その時、10単位のφ29DNAポリメラーゼを、プライミングされたダンベルテンプレートに加え、30分間インキュベートし、続いて65℃で10分間熱不活化した。コントロールとして、通常のM13ユニバーサル配列決定プライマーを、別のローリングサークル複製の混合物中でインキュベートした。複製されたダンベルテンプレートを、次に、ゲル電気泳動により分析した。図2に示す通り、M13-RCR産物(レーン2)が、高分子量の産物(ウェル中の上のバンド)をもたらしたのに対し、M13コントロールは、目に見えるローリングサークル複製産物をもたらさなかった。レーン2の結果から、ローリングサークル複製方法によって、高分子量ダンベルテンプレートが作製されたことが明らかである。
により付着させることができる。425bpのpUC18 PCRアンプリコンは、また、NEBNext dA-テーリングキットを用いて処理し、DNAフラグメントの3'末端に「dA」残基を付着させてもよい。pUC18アンプリコンおよびヘアピン構造2を、次に、リン酸化し、上記の方法を使用して一緒に連結させてダンベルテンプレートを作製する。このアプローチは、全ゲノムサンプルのための次世代配列決定ライブラリー構築方法の大部分に組み込まれる。
ゲノムDNAは、また、出発サンプルとして使用することができる。例えば、非限定的に、HapMapサンプルNA18507からの精製ゲノムDNAを、Coriell Cell Repositoriesから得て、標準的な次世代配列決定方法を使用して(すなわち、Covaris E210Rデバイスを使用して)剪断し、次に、0.5、1.0、2.5、5.0、7.5、および10.0kbの漸増サイズでフラグメントについてサイズ選択することができる。上記と同様に、DNAサンプルを、異なるサイズのDNAフラグメントを産生するための断片化、フラグメントの開始数の定量化、同一条件を使用したhpA/hpBの連結、およびhpA-フラグメントhpBダンベルテンプレート濃縮に供することができる。濃縮係数は、二重標識蛍光顕微鏡を使用して、共局在した蛍光シグナルを数え、それを蛍光シグナルの合計数と比較することにより決定されるであろう。Nikon Eclipse顕微鏡分析ツールによって、多数の分析(強度測定、複数の蛍光シグナルの共局在化、およびコアパッケージ項目に含まれる他を含む)を実施することができる。
HP1:
を高塩緩衝液中で95℃に加熱しその後迅速に氷上で冷却することにより、オリゴヌクレオチドが、下線付きの配列で自己アニーリングすることを可能にし、5'-AATTオーバーハングをもたらした。HP1および消化したゲノムDNAをそれぞれ10:1モル比率で組み合わせ、16℃で30分間、400付着末端単位のT4 DNAリガーゼを用いて連結し、次に、65℃で10分間不活性化させてダンベルテンプレートを形成した(図3を参照のこと)。希釈消化およびHP1連結によって、約20kbから1kbまでのサイズの範囲のダンベルテンプレートDNAのスメアが生成された。ダンベルテンプレートをゲル精製し、過剰な未連結および自己連結HP1アダプターを除去し、3つの異なるフラグメントサイズ(10~6kb、6~3kb、および3~2kb)を単離するためにサイズ選択した。
複製用のダンベルテンプレートは、また、dAテールを有する大きな断片化ゲノムDNAから作製した。ここでは、ヘアピンを、TAクローニングと平滑末端連結により付着させた。TAクローニングのアプローチは、現在のNGSプラットフォームの大部分において上手く組み込まれている。本発明者らは、「T」オーバーハングを伴うヘアピン2(HP2):
を設計した。ヒトゲノムDNA(500ng)を、図5のレーン1および2に示す通り、Covaris Gチューブを使用して断片化し、厳密に定義されたフラグメント長の集団を得た。このゲノムDNAを、次に、末端修復し、NEBNext Ultra DNA Library Prep Kitの末端調製モジュールを使用してdAテールを付加した。HP2を、HP1と同様に自己アニーリングさせ、Blunt/TA Ligase Master Mix(5:1モル比)を使用して修復ゲノムDNAに連結した。過剰なHP2および非連結ゲノムDNAを、エキソヌクレアーゼIIIおよびVIIを使用して除去した。
を使用したRCR反応を、以前に記載した反応と同様にして行った。図5に示す通り、2つの断片化ゲノムDNA集団は、Covaris Gチューブの高度に調整可能な断片化能を示した(レーン1および2)。末端修復され、dAテールを付加されたHP2連結フラグメントからもたらされたRCR産物は、高度に不動な複合体のままであり、ゲル電気泳動後にウェル中に残る(レーン3および4)。
別の実験において、約20μLの高分子量の正常ヒトゲノムDNA(gDNA)(100ng/μL)を、130μLのHPLCグレードH2Oと組み合わせ、合計150μLをCovaris G-チューブ上にピペットした。チューブは、最初に5600RCF(すなわち、相対遠心力)で、1分間遠心し、次に、Gチューブの向きを逆にし、5600RCFで1分間遠心した。これによって、図6のレーン2に示す通り、ゲノムDNAの約8~10キロベースのフラグメントがもたらされた。
ローリングサークル複製産物は、また、ダンベルテンプレートのヘアピン配列の相補的領域に向けられた分子プローブまたはビーコンを使用することにより検出することができる。この方法の実現可能性を実証するために、H3ヘアピンアダプターの用量設定系列を、0μM~5μMの範囲の濃度で作製した。10μMのH3ヘアピンのストック液を連続希釈して2×試験濃度を得た。ヘアピンアダプター3(H3)は以下の配列:
を有する。
を有し、「5,6-FAM」は、5-FAMおよび6-FAM異性体の混合物であり、「IABkFQ」はIowaBlackクエンチャーである。この反応混合物の設定において、試験サンプル中のH3濃度は、最終的な1×測定濃度まで低下させた。反応混合物を、次に、ホットプレート上で98℃に加熱し、その温度で10分間維持し、次に、ベンチトップ上でゆっくりと冷却させた。ビーコンからのシグナルの消失を防止するために、消灯してアルミ箔で覆われた反応管を用いて、全ての反応および熱サイクル工程を行った。一度室温まで冷却したら、反応物を、Molecular Devices SpectraMax Gemini XPS蛍光マイクロプレートリーダーでの読み取りのために調製した。具体的には、SpectraDropマイクロスライドを使用して非常に少量の測定を容易にした。各々の用量設定反応からの約2μLをマイクロボリュームスライドに添加した。機械に挿入したら、以下のプログラムを室温で実行した:
励起波長:495nm
発光波長:520nm
6フラッシュ/読み取り。
実験は、フラグメント長サイズに非依存的なダンベルテンプレートを作る効率を決定するように設計することができる。現在の大フラグメントNGSライブラリー構築方法の主な制限は、長いDNAフラグメントの末端を環状化することによりメイト対テンプレートを作製することである。理想的には、ダンベルテンプレートを作製するための効率的な能力は、サイズ非依存的であるべきである。これらのダンベルテンプレートは、種々のサイズ(例えば、非限定的に、0.5、1.0、2.5、5.0、7.5、または10.0kbを含む)であり得る。これらのフラグメントサイズは、最初に、同じゲノム領域を標的とするヒトBAC DNAを使用してプライマーを設計することにより、PCRを用いて作製し得る。このアプローチでは、リアルタイムPCRの使用によって異なるサイズのダンベルテンプレートのコピー数を定量することが可能になる。例において、TCF7L2 rs7903146対立遺伝子用のリアルタイムPCR試薬を作製しており、それは、Life TechnologiesのカスタムTaqManアッセイウェブサイトを使用して設計された。
5'-プライマー配列は:
であり、3'-プライマー配列は:
があり、プローブ配列は:
であった。他の例において、異なるサイズのフラグメントを産生し、アンプリコンの開始数を定量化する、同一の条件を使用してヘアピン構造2を連結する、次に、リアルタイムPCRを用いてダンベルテンプレートコピー数を定量化することもできる。
NGS対合末端配列決定プラットフォーム中でのダンベルテンプレートの効率的な挿入には、DNAテンプレートの各々の末端での固有のプライマーまたはヘアピンの存在が要求される。これは、標準的な末端修復/dAテーリング方法、それに続く、2つの固有のヘアピンオリゴヌクレオチド(すなわち、hpAおよびhpB)(各々が、固有のユニバーサル複製/配列決定プライミングおよび分子ビーコン部位を含む)の連結を通じて達成される。ヘアピン連結後、本発明者らは、25% hpA-フラグメント-hpA、50% hpA-フラグメント-hpB、および25% hpB-フラグメント-hpBで構成される集団を予測する。所望の形態であるhpA-フラグメント-hpBは、最初に連結産物をヘアピンAの逆相補体を含むカラムを通過させることによって捕捉プローブクロマトグラフィーにより濃縮し、従って、hpA-フラグメント-hpAおよびhpA-フラグメント-hpBテンプレート(hpB-フラグメント-hpBテンプレートではない)を捕捉し得る。溶出後、部分的に濃縮されたサンプルを、次に、ヘアピンBの逆相補を含む第2カラムを通し、従って、hpA-フラグメント-hpB(しかし、hpA-フラグメント-hpAテンプレートではない)を捕捉する。この二重ヘアピンアプローチは、上述の通り、同様のアプローチを使用して実証される;0.5、1.0、2.5、5.0、7.5、および10.0kbを中心とする固有のサイズのDNAフラグメントの集団を作製し、サイズ選択し、精製し、末端修復し、dAテールを付加する。これらを、次に、hpAおよびhpBヘアピンに連結し、二重標識し、hpA-フラグメント-hpBダンベルテンプレートを、上記の技術を使用して濃縮する。φ29DNAポリメラーゼおよびT7レプリソームシステムを使用した初期の実験を実施し、溶液ベースの分子ビーコンを使用してダンベルテンプレートサイズに対する複製コピー数の依存性を評価する。
ローリングサークル増幅のための条件は、適切なDNAポリメラーゼ、複製因子、および反応条件を含むように最適化することができ、10kbダンベルテンプレートの少なくとも1,000倍複製を支持することができるようにする。1,000コピーの複製倍率が目標とされているのは、Illumina cBot機器で実現された、クローン増幅された短いテンプレートと同等の数であるからであり、したがって、配列決定プロセスの間に測定された蛍光シグナルの同様のレベルを予測することができる。DNAポリメラーゼのパネルを長い合成のために採用することができ、商業的に入手可能なDNAポリメラーゼ(φ29、LongAmp、Bst、Bst2.0、Q5、およびT7 DNAポリメラーゼ)ならびに少なくとも12種の非商業的な独自のファミリーA、B、およびD DNAポリメラーゼが含まれる。加えて、複製アクセサリー因子のパネルもまた、複製増強剤として使用することができる。アクセサリータンパク質は、所望のローリングサークル産物(DNAポリメラーゼの処理能力を増加させるための、処理能力を有するクランプおよびクランプローダー複合体、一本鎖DNA領域を安定化させるための一本鎖結合タンパク質、DNAポリメラーゼの前に二本鎖DNAを分離するためのヘリカーゼ、フラップDNA構造を分解するためのフラップエンドヌクレアーゼ、およびDNAニックをシールするためのDNAリガーゼを含むが、これらに限定されない)の産生の効率を増加させるために加えることができる。これらの因子は、同じファミリー内からのDNAポリメラーゼと互換性があり、適切なDNAポリメラーゼパートナーを用いて試験され得る。例えば、古細菌サーモコッカス種(Thermococcus sp.)9°Nからのコアアクセサリー因子は、ファミリーB DNAポリメラーゼを用いて使用され、ファミリーA DNAポリメラーゼは、大腸菌アクセサリー因子を用いて試験される。定量的PCRは、複製されたダンベルテンプレートDNAを測定するために使用される。qPCRプローブは、本明細書において記載する通りに作製された2kbおよび10kbのダンベルテンプレートのヘアピン領域を標的化することができる。プライミングされたダンベルテンプレートの複製を用いて、プローブは、合成されたヘアピン領域の各々のセグメントに結合することができる。したがって、プローブ強度は、希釈されたヘアピンテンプレートの標準系列と比較した場合のコピー数を示すために使用することができる(図11)。qPCRに加えて、増幅産物の長さは、アルカリアガロースゲル電気泳動によりモニターすることができる。アルカリアガロースゲル電気泳動では、DNAが一本鎖に分離され、全体的な複製物の長さが正確に測定される。
この例において、ローリングサークル複製のための最適密度の機能的プライマーが、注文設計されたフローセルのガラス面に付着されている。2枚のスライドガラスの間に挟まれたカスタムカット接着剤ガスケットを、図11Aに示す通りに設計した。レプリコンは、カバースリップの下側に付着されている。カバーガラスは、ナノポート固定部で固定された入口/出口ポートを有する。ガスケットは、ここで、マイクロチャネルを伴う3M両面テープであり、標準的な顕微鏡スライドの上に位置する。この設計では、必要な光学的、化学的、および機械的特性に、使いやすさ、製造のスピード、単純性、および費用対効果のような実用的な必要性を組み合わせる。
をカバースリップ表面に付着させるために使用されてきた。他の例では、いくつかの他の活性化学物質、例えば、1,4-フェニレンジイソチオシアネートおよびジカルボン酸反応を利用してもよい。全てのこれらの活性化戦略によって、同様に良好なハイブリダイゼーションデータがもたらされる。本発明の態様は、異なる長さ(すなわち、n=0、10、20)のポリ(dT)nリンカーを含む。
ヘアピン構造3:
を用いたdA-テーリング方法を使用して作製された。
分子ビーコン2:
が、上記のフローセル中の固相ローリングサークル複製反応についてアッセイするために設計されている。下線を引いた配列は二本鎖ステム領域を表し、ボックスで囲った第1の配列はプローブ配列を表し、ボックスで囲った第2の配列は、固定化M13プライマー配列に結合するプライマー配列を表す。分子ビーコンは、バックグラウンド蛍光が低いため、良好なシグナル対ノイズ比(SNR)で、十分なローリングサークル複製で表面結合レプリコンを生成する。0.5-kbのダンベルテンプレートの希釈液は、視野当たり(FOV)25~50kのレプリコン密度を目標とするよう経験的に決定され得る。
上記の例から得た試薬および条件を、断片化ヒトゲノムDNAに適用して、10kbのダンベルテンプレートからのNGS適合性のクローン複製クラスタを作製する強固な能力を実証することができる。一部の例において、10kbのダンベルテンプレートは、1,000コピーの標的配列をもたらすことができる。いくつかのDNAポリメラーゼは、ローリングサークル複製方法において効率的に働く(φ29、Bst、およびベント(エキソ-)DNAポリメラーゼを含むが、これらに限定されない)。最近、変異体φ29DNAポリメラーゼが、DNA合成収率を数倍だけ増加させるために同定され、Sygnis, Inc.から商業的に入手可能である。特定の例において、レプリソーム複合体は、T7シークエナーゼ、T7ヘリカーゼ、およびT7一本鎖結合タンパク質の協調活動を使用し、10kbのダンベルテンプレートを複製するために使用することができる。特定の例において、ダンベルテンプレート(0.5、1.0、2.5、5.0、7.5、および10.0kbの漸増サイズ)を溶液アッセイのために使用し、TCF7L2についてのリアルタイムPCR試験を使用して分析し得る。特定の例において、ローリングサークル複製方法の効率および精度を改善するために、アクセサリータンパク質(例えば、他のヘリカーゼ、一本鎖結合タンパク質、チオレドキシン、トポイソメラーゼ、リバースジャイレース、またはこれらの任意の組み合せを含むが、これらに限定されない)を含めてもよい。
Claims (9)
- (a) ヘアピン構造を、サンプルから単離された5kbより大きい最小長を有する少なくとも1つの二本鎖核酸分子の各々の末端に連結して少なくとも1つのダンベルテンプレートを形成する工程;
(b) 該少なくとも1つのダンベルテンプレートを、複製方法において少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと、または増幅方法において少なくとも2つの実質的に相補的なプライマーと接触させる工程であって、少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーが、少なくとも1つの基板に付着されている、工程;
(c) 該少なくとも1つの実質的に相補的なプライマーと接触させた該少なくとも1つのダンベルテンプレート上で、ローリングサークル複製を実施して少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートを形成する工程;および
(d) 該少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートをクローン的にコピーされたテンプレートを含む次世代配列決定(NGS)方法で配列決定する工程
を含む、少なくとも1つの核酸分子の複製または増幅方法。 - 二本鎖核酸分子が10kbより大きい長さを有する、請求項1記載の方法。
- ダンベルテンプレートが少なくとも20キロベース長である、請求項1記載の方法。
- 連結工程の前に、少なくとも1つの核酸分子を断片化して、5kbより大きい最小長または10kbより大きい最小長を有する少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程をさらに含む、請求項1~3のいずれか一項記載の方法。
- 接触工程の前に、任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結の核酸分子を、エキソヌクレアーゼを用いて処理することにより、該少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製する工程をさらに含む、請求項1~3のいずれか一項記載の増幅方法。
- (a) 少なくとも1つの核酸分子を断片化して、5kbより大きい最小長または10kbより大きい最小長を有する少なくとも1つの断片化された核酸分子を形成する工程;
(b) 請求項1記載の複製方法に従って、断片化された核酸分子を複製または増幅する工程;および
(c) 該少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程であって、該少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートをクローン的にコピーされたテンプレートを含む次世代配列決定(NGS)方法で配列決定することを含む工程
を含む、少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートを検出する方法。 - 少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートを配列決定することからなる、請求項6記載の方法。
- 少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートを検出する工程が、該少なくとも1つの複製または増幅されたダンベルテンプレートをDNAプローブと接触させることを含む、請求項6記載の方法。
- 接触工程の前に、任意の非連結ヘアピン構造および任意の非連結の断片化核酸分子を、エキソヌクレアーゼを用いて処理することにより、該少なくとも1つのダンベルテンプレートを精製する工程をさらに含む、請求項6記載の方法。
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CN115003829A (zh) * | 2020-01-31 | 2022-09-02 | 泰瑞斯疗法公司 | 带有修饰的核苷酸的闭合线性dna |
EP4150126A4 (en) * | 2020-05-12 | 2024-06-19 | Singular Genomics Systems, Inc. | NUCLEIC ACID AMPLIFICATION PROCESSES |
AU2022349697A1 (en) * | 2021-09-27 | 2024-05-16 | Aldevron, Llc | Synthetic production of circular dna vectors |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2007530020A (ja) | 2004-03-25 | 2007-11-01 | ゲニゾン バイオサイエンシス インコーポレイテッド | 核酸の配列決定のための方法および手段 |
JP2011515102A (ja) | 2008-03-28 | 2011-05-19 | パシフィック バイオサイエンシーズ オブ カリフォルニア, インコーポレイテッド | 核酸シーケンシング用組成物及び方法 |
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Family Cites Families (11)
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---|---|---|---|---|
US7244559B2 (en) * | 1999-09-16 | 2007-07-17 | 454 Life Sciences Corporation | Method of sequencing a nucleic acid |
CA2360342A1 (en) * | 1999-12-02 | 2001-06-07 | Molecular Staging Inc. | Generation of single-strand circular dna from linear self-annealing segments |
US7452699B2 (en) * | 2003-01-15 | 2008-11-18 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Amplification of DNA in a hairpin structure, and applications |
JP4517061B2 (ja) * | 2003-08-08 | 2010-08-04 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | ダンベル型dnaの効率的な製造方法 |
US20080021205A1 (en) * | 2003-12-11 | 2008-01-24 | Helen Blau | Methods and Compositions for Use in Preparing Hairpin Rnas |
US7169561B2 (en) * | 2004-12-29 | 2007-01-30 | Applera Corporation | Methods, compositions, and kits for forming self-complementary polynucleotides |
BRPI0607661A2 (pt) * | 2005-04-29 | 2009-09-22 | J Craig Venter Inst | amplificação e clonagem de molécula de único dna usando amplificação de cìrculo rolante |
KR101414713B1 (ko) * | 2007-10-11 | 2014-07-03 | 삼성전자주식회사 | 리가제 및 엔도뉴클레아제의 존재하에서 롤링서클 증폭에의하여 표적 핵산을 증폭하는 방법 |
CN102144031B (zh) * | 2008-09-04 | 2013-07-17 | 中国农业科学院生物技术研究所 | 表达发卡rna的dna分子及其构建方法与应用 |
US9267168B2 (en) * | 2012-06-12 | 2016-02-23 | Pacific Biosciences Of California, Inc. | Methods and compositions for isolating template nucleic acids |
PL3260558T3 (pl) * | 2012-11-02 | 2020-08-10 | Life Technologies Corporation | Nowe kompozycje i sposoby poprawy specyficzności pcr |
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Patent Citations (3)
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