JP2005112839A

JP2005112839A - 微生物及び動物由来物の保存方法

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Publication number: JP2005112839A
Application number: JP2003396325A
Authority: JP
Inventors: Dobun Hayashi; 同文林; Tomotaka Nishiyama; 友貴西山; Mitsuo Shimada; 島田光生; Satoshi Taisha; 聡大社; Akihiko Mitani; 明彦三谷
Original assignee: FEEL TECHNOLOGY CO Ltd; Mebix Inc
Current assignee: FEEL TECHNOLOGY CO Ltd; Mebix Inc
Priority date: 2003-09-19
Filing date: 2003-11-26
Publication date: 2005-04-28
Anticipated expiration: 2023-11-26
Also published as: JP3862085B2

Abstract

【課題】本発明の課題は、微生物及び動物由来物の保存方法を提供することである。
【解決手段】微生物又は動物由来物を、静電場雰囲気内に置いて保存することによる。静電場雰囲気は、１００Ｖ〜５０００Ｖの交流又は直流電圧を電極に印加して形成される。静電場雰囲気での保存温度は、−２０〜４０℃であり、静電場雰囲気でなければ微生物やヒトを含む動物由来物が凍結しうる−１２〜−１℃でも凍結させることなく保存することができる。器官、臓器、組織、細胞、血液、血漿、血清、血液製剤、精製蛋白質、組換蛋白質、培養細胞、培養組織等の保存に有用であり、特に移植領域、輸血領域、再生医療領域、基礎実験領域、遺伝子治療領域、臨床検査領域、製薬・試薬領域等に利用することができる。

Description

本発明は、微生物及び動物由来物の新規な保存方法に関する。さらに、詳しくは、微生物及び動物由来物を静電場雰囲気内におくことを特徴とする保存方法に関する。

脳死ドナーからの肝移植は末期肝疾患に対する治療法として確立され、欧米ではすでに年間8,000例以上行なわれている。わが国でもようやく1997年に臓器移植法が施行されたが、６年を経過した2003年10月現在、脳死者からの肝提供による肝移植はわずか２３例に過ぎない。一方、我が国では身内または配偶者から肝提供をうける生体部分肝移植が1989年に初めて施行されて以来、現在までに2300例以上が実施され、生体肝移植はいまや日常の診療となりつつある。

ドナー手術と同時進行可能で、最短の冷保存が可能な生体肝移植と異なり、脳死肝移植の場合、長時間の冷保存（０〜４℃）が不可避である。1980年代後半にUniversity of Wisconsin (UW) 液が開発され、冷保存時間の限界が従来の７〜８時間より２４時間に大幅に延長し、肝移植は緊急手術より準緊急・待機手術へと変貌を遂げた。しかし現在でも５〜１０％の症例に移植後グラフト機能不全がみられ、実際には１６時間を超える保存ではグラフト機能不全が起こる確率が非常に高くなる。また心臓・肺移植では保存の限界はいまだに６〜７時間であり緊急手術の域を出ていないのが現状である。そこで保存時間のさらなる延長が可能であれば、その各種臓器移植に及ぼす世界的な影響ははかりしれないほど大きいと考えられる。

臓器保存の温度に注目すれば従来の冷保存温度である４℃では代謝は１／１０になり、−４℃では１／１７になることが知られ、氷点下非凍結保存の有用性が示唆されていた。従来、非凍結剤を用いた実験が行われてきたが、氷点下非凍結保存は可能であるものの、非凍結剤によるグラフト障害がさけられなかった。

移植技術の発達により、移植対象の動物の組織等の保存方法の改良は種々検討されている。組織を凍結させない条件での保存は、組織がより自然に近い状態にあるため好ましい保存方法である。たとえば、グルコースを含む第一液で血管内の血液を排除かつ置換し、ジメチルスルフォキシドまたはグリセリンとマンニットを含む第二液で第一液を置換した後、凍結させずに０℃ないし２０℃で保存する方法が開示されている（特許文献１）。あるいは非還元二糖と充填剤との保存剤の組み合わせによる生存微生物、細胞、または組織の保存方法の提案もある（特許文献２）。しかし、いずれの保存方法も、安定剤の添加や複雑な処理が必要であり、早期の改良が望まれている。

食品等を静電場雰囲気を利用して過冷却状態において保存するための装置は、本件発明者の一によって開発されている（特許文献３〜７）。しかし、それらはいずれも食品の分野でのみ利用されていたにすぎない。

特開平８−３２５１０１号公報特表２００３−５０５０２４号公報特開平１０−１３６８８２号公報特開平１１−３３２４６４号公報特開２０００−２９７９７６号公報特開２００１−２４１８２４号公報国際公開ＷＯ９８／４１１１５号公報

微生物及び動物由来物の新規な保存方法の提供が、本発明の課題である。

上記課題を解決するために鋭意検討した結果、本発明者らは、微生物又は動物由来物を静電場雰囲気におくことで微生物及び動物由来物をより自然な形で保存しうることを見出し、本発明を完成した。
つまり本発明は以下からなる。
１．微生物又は動物由来物を、静電場雰囲気内におくことを特徴とする微生物又は動物由来物の保存方法。
２．静電場雰囲気が、１００Ｖ〜５０００Ｖの交流又は直流電圧を電極に印加して形成される前項１に記載の保存方法。
３．微生物又は動物由来物を、−２０℃〜４０℃で静電場雰囲気内におくことを特徴とする前項１又は２に記載の保存方法。
４．微生物又は動物由来物が、保存液中に浸漬状態である前項１〜３の何れか一に記載の保存方法。
５．微生物又は動物由来物が、静電場雰囲気中にそのまま存置される前項１〜３の何れか一に記載の保存方法、
６．微生物又は動物由来物が以下から選択される何れかである前項１〜５の何れか一に記載の保存方法；
臓器・組織、気管、血液成分、生物由来製剤、培養細胞・培養組織、遺伝子、核酸、ウイルス、細菌、真菌、精製蛋白質、遺伝子組換蛋白質、臨床検査用検体。

本発明の静電場雰囲気に器官や臓器等を保存することにより、組織等を損傷することなく長期保存することが可能となる。すなわち、本発明の方法では微生物又は動物由来物を長期間の間自然に近い状態で、微生物または動物由来物が有する活性を不活化若しくは不活性化させることなく、又は死滅化させることなく保存することができる。

臓器保存においては、氷点下非凍結保存により代謝が押さえられること、抗酸化作用により再灌流時の酸化ストレスを押さえ虚血再灌流障害を軽減する可能性がある。臓器を静電場雰囲気に置き微振動のエネルギーを与えることで、通常では凍結してしまう温度、例えば−５℃程度であっても、器官や臓器等が凍結するのを防ぎ、損傷することなく長期保存することが可能となる。

本発明の静電場雰囲気とは、例えば閉鎖系又は開放系の容器内を静電場状態にすることをいう。電場雰囲気とするために、種々の手段が公知であるが、例えば容器内の底部に単に電極板を絶縁状態で載置することにより静電場状態にすることができる。また、通常の家庭用又は業務用の冷蔵庫を簡便に静電場冷蔵庫に変換することができる。例えば絶縁材料（塩ビ板）からなる横板と、この横板の両側にヒンジを介して組立て自在とされた側板と、電場箱の底部を閉塞する底板から形成される。そして、その前面と上面は開放されて冷蔵庫の扉を開いたときに対象物の出入が容易に行ない得る。接続線、高電圧発生装置で、高電圧がいずれかの金属棒等に印加され、静電場が形成される。

本発明の微生物又は動物由来細胞の保存方法に使用することができる保存装置として、具体的には、静電場雰囲気を形成させるための電極を備えた容器と、該電極に交流または直流電圧を印加する静電場発生用電源と、上記容器に、例えば動物の臓器を冷蔵温度に保持できる冷却装置とを備えた装置を例示することができる。

更に、冷蔵室内の空気を帯電させるためには、導電性カーテンを設けてもよく、このカーテンは柔軟な布、プラスチック等の表面に導電性塗料を付着せしめたり、カーテン自体を薄いアルミ板等にすることにより形成してもよい。そして、カーテンは、レール等を介して高電圧発生装置に接続される。

本発明の静電場雰囲気は、１００Ｖ〜５０００Ｖ、好ましくは１００Ｖ〜３０００Ｖの交流又は直流電圧を電極に印加して形成される。印加する電圧は、保存対象物やその保存状態により適宜選択することができる。特に、保存液中で保存する場合や保存容器の材質により、印加する電圧を選択することができる。電流は交流、直流のいずれであってもよい。

本発明の静電場雰囲気におく保存方法に適用されうる温度は、−２０〜４０℃、好ましくは−２０〜５℃、より好ましくは−１２〜−１℃、さらに好ましくは−５〜−１℃である。保存する温度は、保存対象物やその保存状態により適宜選択することができる。特に例えば０℃以下であっても、過冷却現象により、保存対象物を凍結させることなく保存することができる。ここに過冷却現象とは、液体が凍り始める寸前の温度である氷結点を下回る温度であっても物質が凍らない現象をいう。氷結点を下回る温度の場合でも、本発明の静電場雰囲気下では、物質へ温度を伝えると同時に微振動エネルギーが起こり、水溶液は凍結せず、微生物及び動物由来物の凍結もおこらないと考えられる。

微生物又は動物由来物が保存液中に浸漬状態であるとは、微生物及び動物由来物が金属やプラスチック等の容器内の保存液中に浸っている状態をいい、一般的に公知のあらゆる細胞等の保存液や今後開発される保存液を利用することができる。保存液の代表的なものとして、例えば今日の移植(Vol.11, No.5, September p.549-557(1998))に例示されるリンゲル液、ユーロコリンズ溶液、ＵＷ溶液、ＳＬＳ溶液、Ｈ−Ｌ溶液、ＨＴＫ溶液等や、市販品、例えばラクテック（大塚製薬製）が挙げられる。

微生物又は動物由来物が、静電場雰囲気中にそのまま存置されるとは、微生物又は動物由来物が、水溶液中におかれることなくそのまま静電場雰囲気中におかれることをいい、物質そのものが金属やプラスチック等の容器内に収納されて保存されていても良い。例えば、微生物を静電場雰囲気中にそのまま存置すると、過冷却現象により仮死状態とすることができ、精製蛋白質であれば、そのまま安定に不活化の心配なく長期保存することが可能である。また、採血した血液やその由来物を、ＣＰＤ液（クエン酸ナトリウム、クエン酸、グルコース、NaH₂PO₄・2H₂Oを含む）やＭＡＰ液（マンニトール、アデニン、リン酸を含む）等を含むプラスチック（ｐｐ）製等の採血用バッグに入れて、静電場雰囲気中にそのまま存置すると、例えば０℃以上でも安定に保存することができる。

かくして、本発明の方法は、移植領域での臓器・組織保存、輸血領域での血液成分保存、生物由来製剤領域での成分保存、血漿分画製剤の保存、再生医療領域での細胞・組織保存、基礎実験領域での各種培養細胞保存、遺伝子治療領域での遺伝子および薬剤を導入したベクターの保存、臨床検査領域での検体保存、製薬・試薬領域での精製蛋白質保存等の領域で適用することができる。

本発明の保存方法に適用される微生物及び動物由来物は、細菌、真菌類、ウイルス等の微生物、ヒト及びヒト以外の動物由来の物質を含むことを意味し、例えば移植領域での臓器・組織では、心臓、肺、肝臓、腎臓、膵臓、小腸、心臓弁、皮膚、血管、角膜、眼球、硬膜、骨、気管、耳小骨等が、輸血領域での血液成分では、血小板、白血球、赤血球、さい帯血、血漿各成分、各種因子等が、生物由来製剤領域での成分では、血液や尿成分由来の精製蛋白質、例えば血液凝固因子、抗凝固因子、トロンビン、ウロキナーゼ、ウリナスタチン、プラセンタやこれらの遺伝子組換蛋白質、その他ゼラチン、へパリン、コンドロイチン、ヒアルロン酸等が、再生医療領域での細胞・組織では、造血幹細胞、ＥＳ細胞（胚性幹細胞）、骨髄、各種因子等が、臨床検査領域での検体では、生化学検体、内分泌検体、ウイルス検体、細菌検体、真菌検体、免疫血清検体、細胞性免疫検体、遺伝子、染色体検体、染色体検体、血液学検体、微生物検体、病理学検体等が、遺伝子治療領域では遺伝子および薬剤を導入したベクターを含む微生物が、基礎実験領域での各種培養細胞では、血管内皮細胞、血液幹細胞、再生医療用各種細胞等を挙げることができる。

以下に実施例で本発明を説明するが、これらは本発明の典型的代表例を示すものであって、本発明はこれらに限定されるものではない。

（実施例１）腎臓
１）腎臓の摘出及び保存
ラット成獣を麻酔し、四肢を１８Ｇ針で固定し、ラットの胸から腹にかけて開腹した。横隔膜直下で大動脈をクランプし、下大静脈・肝静脈を併せクランプし、その遠位部を開窓し、紙ワイパーを挿入した。該ラットの左腎静脈の背側に大動脈を同定し、ラクテック（大塚製薬製）５ｍＬで腎臓をゆっくり灌流した。
該ラットの左右の腎臓を摘出し、ラクテック（大塚製薬製）を含むデッシュに置いた。腎臓片に注射針を用いて４ｍＬの保存液を注入し、各保存条件で保存した。
２）腎臓の保存
１回目：４℃で電圧を印加しない場合及び−５℃で５００Ｖ，１０００Ｖの各電圧を印加した条件下で、２８時間保存した。
２回目：０℃電圧を印加しない場合及び−３℃で１００Ｖの電圧を印加した条件下で、各々２８．５時間及び６７時間保存した。
３）結果
上記保存条件下で保存したときの液中に漏出した乳酸脱水素酵素（l-lactate dehydrogenase、以下「ＬＤＨ」）を測定した。さらに、２回目には腎臓組織切片を染色し、光学顕微鏡にて観察した。その結果を表１及び表２に示した。個体差は認められたものの、電圧をかけない場合よりも電圧をかけた場合のほうが保存溶液に漏出したＬＤＨの値は低値であり、いずれの場合も良好な結果を示した。また、２回目の２８．５時間保存後の組織片は、電圧をかけない場合では変性所見が観察されたが、電圧をかけた場合には明らかな変性は観察されなかった。

（実施例２）肝臓
１）肝臓の摘出
ラット成獣を麻酔し、四肢を１８Ｇ針で固定し、ラットの胸から腹にかけて開腹した。門脈からＵＷ液（今日の移植：Vol.11, No.5, September p.549-557(1998)）４ｍＬをゆっくり注入し、肝臓を灌流・摘出し、ＵＷ液を含むデッシュに置き、臓器保存した。摘出した肝臓片に注射針を用いて１０ｍＬの保存液を注入し、各保存条件で冷蔵した。
２）肝臓の保存
４℃で電圧を印加しない場合及び−５℃で５００Ｖ，１０００Ｖの各電圧を印加した条件下で、肝臓を４時間保存した。
３）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したグルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ（glutamic-oxaloacetic transaminase、以下「ＧＯＴ」），グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ（glutamic-pyruvic transaminase、以下「ＧＰＴ」），ＬＤＨの測定結果を表３に示した。その結果、５００Ｖの電圧を印加した条件下で保存した場合に最も良好な結果が得られた。

（実施例３）心臓
１）心臓の摘出及び保存
ラット成獣を麻酔し、四肢を１８Ｇ針で固定し、ラットの胸から腹にかけて開胸した。心臓を大血管と共に速やかに摘出し、ラクテック（大塚製薬製）を含むデッシュ（6cm）に置き、臓器保存した。
自律心拍により、保存した心臓の心腔内はラクテック（大塚製薬製）に置換された。
心臓片に注射針を用いて４ｍＬの保存液を注入し、各保存条件で冷蔵した。
２）心臓の保存
４℃で電圧を印加しない場合及び−５℃で５００Ｖ，１０００Ｖの各電圧を印加した条件下で、心臓を４時間保存したときの保存液内のＧＯＴ，ＧＰＴ，ＬＤＨを測定した。また、組織切片を染色し、光学顕微鏡にて観察した。
３）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したクレアチンキナーゼ(creatine kinase,以下「ＣＫ」），ＧＯＴ，及びＬＤＨの測定結果を表４に示した。その結果、電圧を印加しない場合よりも印加したときのほうが、保存溶液に漏出したＣＫ，ＧＯＴ，及びＬＤＨの値は低値であり、良好な結果を示した。心筋組織は、各条件において細胞質及び核ともに明らかな変化は認められず、良好であった。

（実施例４）赤血球
１）赤血球の取得
自己輸血のために術前貯血式自己輸血する方法により採血した。採血した血液を通常行う遠心分離により赤血球と血漿に分離し、ＭＡＰ液で保存した赤血球溶液をｐｐ採血用バックに保存した。
２）赤血球の保存
該ＭＡＰ赤血球溶液を、２ｍＬずつプラスチック製試験管チューブに分注し、４℃で、電圧を印加しない非電場群及び３０００Ｖの電圧を印加した電場群の条件で保存した。
３）結果
該ＭＡＰ赤血球溶液を各条件下で保存したときの保存状態を観察し、その結果を表５及び表６に示した。保存後７日目でも電圧印加しない場合よりも印加した場合のほうがｐＨの変化及びカリウム（Ｋ）の漏出度の変化が少なく、保存条件として良好であることが確認された（表５）。さらに、保存後１５日であっても、電圧印加しない場合よりも印加した場合のほうがカリウム（Ｋ）の漏出度が少なく、ナトリウム（Ｎａ）量の変化も少なく、保存条件として良好であることが確認された（表６）。

（実施例５）心臓片
１）心臓の摘出及び保存
ラット雄成獣をエーテル麻酔し、四肢を１８Ｇ針で固定し、腹から頚にかけて左右に開腹した。肝臓の上縁を横隔膜から切離し横隔膜を穿孔して開胸した。横隔膜前縁を左右に開腹した後、胸骨に沿って両側の肋骨を切断した。下行大動脈をクランプし、臓器心筋保護液ラクテックＧ（大塚製薬製）を５ｍＬ注入し、下行大動脈近位部に心筋保護液ミオテクター（日清製油製）を３ｍＬ注入し、心臓を摘出し、ミオテクターを含むデッシュに置き、臓器保存した。
２）心臓の保存
１８Ｇ針で４ｍＬの心筋保護液を心臓に注入し、軽く揺らしてから２℃で電圧を印加しない場合及び１００Ｖ，５００Ｖの各電圧を印加した条件下で保存した。
３）結果
各条件下で保存したときの心筋保護液内に漏出したクレアチンホスホキナーゼ（creatin phospho kinase、以下「ＣＰＫ」），ＧＯＴ，ＬＤＨの測定結果を表７に示した。対照として保存１時間後についても測定した。２４時間保存後、印加しない場合に比べて電圧を印加したほうがＣＰＫ、ＧＯＴ及びＬＤＨの漏出が低く抑えられる傾向が認められた。

（実施例６）肝臓
１）肝臓の摘出及び保存
実施例５で心臓が摘出された後のラットの下大動脈のクランプをはずし、門脈のなるべく遠位から臓器保存液ビアスパン（藤沢薬品工業製）４ｍＬをゆっくり注入し、肝臓を摘出し、ビアスパンを加えたデッシュに置き、臓器保存した。
２）肝臓の保存
１８Ｇ針で１０ｍＬの保存液を肝臓に注入し、軽く揺らしてから２℃で電圧を印加しない場合及び１００Ｖ，５００Ｖの各電圧を印加した条件下で保存した。
３）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したＧＯＴ，ＧＰＴ，ＬＤＨ，γＧＰＴ，アルカリホスファターゼ（alkaline phosphatase、以下「ＡＬＰ」）の測定結果を表８に示した。対照として保存１時間後についても測定した。その結果、２４時間保存後では対照に比べてＧＯＴ，ＧＰＴ，ＬＤＨ及びＡＬＰは増加の傾向が認められた。印加しない場合に比べて、電圧印加の条件下で保存したほうが、ＧＯＴ，ＧＰＴ及びＬＤＨの漏出が低く抑えられる傾向が認められた。

（実施例７）心臓片
１）心臓の摘出及び保存
ラット雄成獣をエーテル麻酔し、四肢を１８Ｇ針で固定し、腹から頚にかけて皮切をおいて左右に開腹した。肝臓の上縁を横隔膜から切離し横隔膜を穿孔して開胸した。横隔膜前縁を左右に開腹した後、下行大動脈をクランプし、臓器保存液ラクテックＧ（大塚製薬製）を５ｍＬ注入し、下行大動脈近位部に心筋保護液ミオテクター（日清製油製）を３ｍＬ注入し、心臓を摘出し、ミオテクターを含むデッシュに置き、臓器保存した。
２）心臓の保存
１８Ｇ針で４ｍＬの保存液を心臓に注入し、軽く揺らしてから０℃で電圧を印加しない場合及び１００Ｖ、５００Ｖの各電圧を印加した条件下で、心臓を保存した。
３）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したＣＰＫの測定結果を表９に示した。対照として保存開始３０分についても測定した。その結果、４時間後では、対照に比べてＣＰＫ値はほとんど増加しなかった。２４時間保存後では、印加しない場合はＣＰＫ値が増加していたが、電圧を印加条件下で保存すると低く抑えられる傾向が認められた。

（実施例８）肝臓
１）肝臓の摘出及び保存
実施例７で心臓が摘出された後のラットの下大動脈のクランプをはずし、門脈のなるべく遠位から臓器保存液ビアスパン（藤沢薬品工業製）４ｍＬをゆっくり注入し、肝臓を摘出し、ビアスパンを加えたデッシュに置き、臓器保存した。
２）肝臓の保存
１８Ｇ針で１０ｍＬの保存液を肝臓に注入し、軽く揺らしてから０℃で電圧を印加しない場合及び１００Ｖ，５００Ｖの各電圧を印加した条件下で保存した。
３）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したＧＯＴ，ＧＰＴ，ＬＤＨ，γＧＰＴ，ＡＬＰの測定結果を表８に示した。対照として、保存３０分後についても測定した。その結果、肝臓保存後２４時間ではＧＯＴ，ＧＰＴ，ＬＤＨ及びＡＬＰは増加の傾向が認められたが、印加しない場合に比べて、電圧を印加した条件で保存したほうが、各物質の漏出が低く抑えられる傾向が認められた。

（実施例１０）腎臓
１）肝臓の摘出及び保存
実施例９で肝臓が摘出された後のラットから左右の腎臓を順次摘出し、ラクテック（大塚製薬製）を加えたデッシュに置き、臓器保存した。
２）腎臓の保存
１８Ｇ針で４ｍＬの保存液を腎臓に注入し、軽く揺らしてから０℃で電圧を印加しない場合及び１００Ｖ，５００Ｖの各電圧を印加した条件下で保存した。
３）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したＧＯＴ及びＬＤＨの測定結果を表１１に示した。対照として、保存３０分後についても測定した。その結果、２３時間及び６９時間保存後ではＧＯＴ及びＬＤＨの測定値が増加の傾向が認められたが、印加しない場合に比べて、電圧を印加した条件で保存したほうが、各物質の漏出が低く抑えられる傾向が認められた。

（実施例１０）心臓
１）心臓の摘出及び保存
ラット雄成獣をエーテル麻酔し、四肢を１８Ｇ針で固定し、腹から頚にかけて皮切をおいて左右に開腹した。肝臓の上縁を横隔膜から切離し横隔膜を穿孔して開胸した。横隔膜前縁を左右に開腹した後、下行大動脈をクランプし、臓器保存液ラクテックＧ（大塚製薬製）を５ｍＬ注入し、下行大動脈近位部に心筋保護液ミオテクター（日清製油製）を３ｍＬ注入し、心臓を摘出し、ミオテクターを含むデッシュに置き、臓器保存した。

２）心臓の保存
１８Ｇ針で４ｍＬの保存液を心臓に注入し、軽く揺らしてから０℃で電圧を印加しない場合及び１００Ｖ、５００Ｖの各電圧を印加した条件下で、心臓を保存した。

３）ＣＫ−ＭＢの測定
免疫阻止−ＵＶ法により測定する。具体的には、次の方法による。上記の保存条件にて心臓を保存したときの保存液中のＣＫ−Ｍサブユニットのみを特異的に阻害する抗体を用い、ＣＫ−Ｂサブユニットの活性を測定する。その値を２倍することにより、ＣＫ−ＭＢの活性を求めることができる。

４）トロポニンＴの測定
免疫化学発光免疫測定法（ECLIA）により測定する。本法は電気化学発行反応を用いたステップサンドイッチ法である。検体内のトロポニンＴとビオチン化抗トロポニンＴ抗体をよびRu(bpy)₃ ²⁺標識抗トロポニンＴ抗体を反応させ、標識抗体−トロポニンＴ−ビオチン化抗体複合物を生成させる。次にストレプトアビジン（ＳＡ）をコーティングした磁性マイクロパーティクル（ＭＰ）を加えてアビジン−ビオチン反応をさせる。反応終了後、混合溶液を測定セル内に吸引し、電極の磁力により磁性マイクロパーティクルを電極に引き付ける。電気供与物質である、トリプロアミン（ＴＰＡ）にてＢ／Ｆ分離を行い、電極による酸化反応とＴＰＡラジカルの還元作用により生じるRu²⁺錯体からの発光量を測定し、トロポニンＴ量を測定する。

５）結果
各条件下で保存したときの保存液内に漏出したＣＫ−ＭＢの測定結果を図１に、心筋トロポニンの測定結果を図２に示した。対照として保存開始３０分についても測定した。その結果、２４時間保存後では印加しない場合に比べて電圧を印加条件下で保存したほうが、これらの測定値が低く抑えられ、印加電圧が１００Ｖよりも５００Ｖの方が良好な結果を示した。

（実施例１１）赤血球
１）赤血球の取得
自己輸血のために術前貯血式自己輸血する方法により採血した。採血した血液を通常行う遠心分離により赤血球と血漿に分離し、ＭＡＰ液で保存した赤血球溶液をｐｐ採血用バックに保存した。
２）赤血球の保存
該ＭＡＰ赤血球溶液を、２ｍＬずつプラスチック製試験管チューブに分注し、電圧を印加しない非電場群及び５００Ｖの電圧を印加した電場群について各々４℃で保存した。
３）結果
各条件で保存したときのナトリウム（Ｎａ）、カリウム（Ｋ）、遊離ヘモグロビン（遊離Ｈｂ）、総ハプトグロビン（総Ｈｐ）を測定し、その結果を表１２〜１５に示した。保存時間経過に伴い、Ｎａは減少傾向を認め、Ｋ及び遊離Ｈｐは増加傾向を認めた。Ｎａ、Ｋ及び総Ｈｐについては非電場群と電場群ではほとんど差を認めなかったが、遊離Ｈｂは非電場群に比べて電場群のほうが増加抑制効果が認められた。

（実施例１２）赤血球
１）赤血球の取得
自己輸血のために術前貯血式自己輸血する方法により採血した。採血した血液を通常行う遠心分離により赤血球と血漿に分離し、ＭＡＰ液で保存した赤血球溶液をｐｐ採血用バックに保存した。
２）赤血球の保存
該ＭＡＰ赤血球溶液を、２ｍＬずつプラスチック製試験管チューブに分注し、電圧を印加しない非電場群及び３０００Ｖの電圧を印加した電場群について各々４℃で保存した。
３）結果
各条件で保存したときのＮａ、Ｋ、遊離Ｈｂ、総Ｈｐを測定し、その結果を表１６〜１９に示した。保存時間経過に伴い非電場群ではＮａは減少傾向を認め、Ｋ及び遊離Ｈｂは増加傾向を認めたが、電場群ではＮａの減少は抑制され、Ｋ及び遊離Ｈｂの増加傾向についても抑制が認められた。

（実施例１３）肝臓
Ａ）温度条件の検討
−４℃，−５℃，−６℃の温度で臓器保存液（ＵＷ液）に１００Ｖ，５００Ｖ，１０００Ｖ，２０００Ｖ，３０００Ｖの電圧印加を行い、ＵＷ液が氷結しない条件を設定した。その結果、電圧を印加したときは−４℃で凍結しないことが確認された。
Ｂ）電圧印加条件（４℃０Ｖ，−４℃、１００Ｖ）
ラットの肝臓を摘出し、−４℃にて電圧を１００Ｖを印加してＵＷ液中で２４時間保存した群のＡＳＴ，ＡＬＴ，及びＬＤＨを測定した。４℃で電圧を印加しない条件を対照群とした。
その結果を図３に示した。対照群に比べ、−４℃にて電圧を１００Ｖを印加したときの方がＡＳＴ，ＡＬＴ，及びＬＤＨのすべてについて低値を示し、良好であった。
Ｃ）電圧印加条件（４℃０Ｖ，４℃、３０００Ｖ）
ラットの肝臓を摘出し、４℃にて電圧を３０００Ｖを印加してＵＷ液中で２４時間保存した群のＡＳＴ，ＡＬＴ，及びＬＤＨを測定した。４℃で電圧を印加しない条件を対照群とした。
その結果を図４に示した。対照群及び電圧を印加群の間にＡＳＴ，ＡＬＴ，及びＬＤＨの有効な差異は認められなかった。

以上説明したように、本発明の静電場雰囲気下におくと、０℃以下であっても微生物又は動物由来物、例えば、器官や臓器等を凍結させることなく保存することができ、０℃以上の場合であっても血液等について良好な状態で保存することができた。つまり、本発明の静電場雰囲気下による保存方法を適用することで、従来よりも長期間の間、微生物又は動物由来物を自然に近い状態で保存することが可能となり、特に移植領域、輸血領域、再生医療領域、基礎実験領域、遺伝子治療領域、臨床検査領域、製薬・試薬領域等に利用することができる。

心臓を電圧印加条件下で保存したときの保存液中のＣＫ−ＭＢを測定した結果を示す図である。（実施例１０）心臓を電圧印加条件下で保存したときの保存液中のトロポニンＴを測定した結果を示す図である。（実施例１０）肝臓を１００Ｖの電圧印加条件下で保存したときの保存液中のＡＳＴ、ＡＬＴ及びＬＤＨを測定した結果を示す図である。（実施例１３）肝臓を３０００Ｖの電圧印加条件下で保存したときの保存液中のＡＳＴ、ＡＬＴ及びＬＤＨを測定した結果を示す図である。（実施例１３）

Claims

微生物又は動物由来物を、静電場雰囲気内におくことを特徴とする微生物又は動物由来物の保存方法。
静電場雰囲気が、１００Ｖ〜５０００Ｖの交流又は直流電圧を電極に印加して形成される請求項１に記載の保存方法。
微生物又は動物由来物を、−２０℃〜４０℃で静電場雰囲気内におくことを特徴とする請求項１又は２に記載の保存方法。
微生物又は動物由来物が、保存液中に浸漬状態である請求項１〜３の何れか一に記載の保存方法。
微生物又は動物由来物が、静電場雰囲気中にそのまま存置される請求項１〜３の何れか一に記載の保存方法。
微生物又は動物由来物が以下から選択される何れかである請求項１〜５の何れか一に記載の保存方法；
臓器・組織、気管、血液成分、生物由来製剤、培養細胞・培養組織、遺伝子、核酸、ウイルス、細菌、真菌、精製蛋白質、遺伝子組換蛋白質、臨床検査用検体。