JP2002536642A - トロンビン阻害剤の濃度を測定する方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、非混濁体液または体液からの非混濁抽出物におけるトロンビン阻害剤の濃度を測定する方法に関する。これは以下の方法ステップを示す。生物から体液を採取し、必要に応じて体液の混濁物を分離する。こうして得られた非混濁体液にプロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１の転換に干渉しない凝固抑制剤、活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１により分解可能な色素原または蛍光発生原基質およびマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１に分解する物質のプロトロンビンのほか、任意にプロトロンビンを添加する。こうして得られた溶液または混合液を時間依存的に波長選択的な光吸収または光放出測定にかける。それぞれの時間単位での光吸収または光放出の減少から、体液中に含有するトロンビン阻害剤の量を、求められた標準曲線と比較することにより測定する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 技術分野 本発明は、生物から体液を抽出し、その体液にマイゾトロンビン（meizothrom
bin）またはマイゾトロンビン−デスフラグメント１（meizothrombin-des Fragm
ent 1）（以下、Ｍｔｄｅｓｆｇ1）に分解する物質を添加することにより、トロ
ンビン阻害剤の濃度を測定する方法に関する。トロンビン阻害剤として理解され
るのは、トロンビンまたはトロンビン前駆体を直接阻害するすべての天然物質ま
たは合成物質である。天然トロンビン阻害剤の例としてヒルジンが挙げられ、こ
れは医用ヒルの唾液から得ることができる。ヒルジンは、６５個のアミノ酸から
成り、分子量が７ｋＤの極小タンパク質である。合成トロンビン阻害剤の例は、
ヒルジンと類似または相同の部分配列を示すいわゆるヒロログ（Hirologe）のほ
か、トリペプチドＰｈｅ−Ｐｒｏ−Ａｒｇまたは係るトリペプチドの誘導体、例
えばホウ酸誘導体、クロロメチルケトン誘導体、ベンザミジン誘導体、アルギニ
ン、アミノ酸修飾誘導体、等から成る、またはそれらを含むポリペプチドである
。前記物質にはヒルジンと本質的に同じ作用機序が共通している可能性がきわめ
て高い。体液の提供生物としては、ヒトおよび哺乳動物、例えば齧歯動物が対象
となる。体液の例は、特に血液または血液から調製される血漿である。しかし、
プロトロンビンを含まない体液、例えば尿、羊水、唾液、腹水およびその他も対
象となる。その場合には、発明の範囲でプロトロンビンを添加する。非混濁とは
、著しい量の浮遊物が被験体液中に存在しないことを意味する。これは、必要で
あれば、例えば体液の遠心分離や上清の排出により達成することができる。

【０００２】 発明の基礎となる理論的背景は以下の通りである。プロトロンビンのトロンビ
ンへの転換は血液凝固の重要な因子である。トロンビンはフィブリノーゲンから
のフィブリンモノマーの形成に対し、またフィブリンモノマーの重合に対し作用
する。プロトロンビンは、活性化因子Ｘ、活性化因子Ｖ Ｃａ⁺⁺−イオンおよび
リン脂質、例えば血小板因子３との協力下にトロンビンに転換される。この場合
、多段の反応が起こり、比較的少量の中間物が形成される。しかし、例えばエカ
リン（Ecarin）または他のヘビ毒またはヘビ毒分画によって凝固を導入すると、
それに対して「変則的な」中間物、例えばマイゾトロンビン、ＰＩＶＫＡマイゾ
トロンビンまたはマイゾトロンビン−デスフラグメント１（ＰＩＶＫＡはビタミ
ンＫアンタゴニストによる誘導されるタンパク質の略語である）。これらの変則
的な中間物は興味深いことに例えばヒルジンでは不活性化するが、へパリン（Ｉ
Ｉａ因子、ＩＸａ因子、ＸＩＩａ因子および／または抗トロンビンの阻害剤）で
は不活性化しない。また、その他の点では、トロンビン形成やその後の凝固にも
つながる。変則的な中間物とヒルジンおよび他の合成トロンビン阻害剤との親和
性はきわめて高く（マイゾトロンビンではＫ１＞１０^-10ｍｏｌ／ｌ）、そのた
めトロンビン阻害剤の微小な変則的な中間物が短期的に結合される。

【０００３】 上述の関係は、文献第ＵＳ−Ａ−５，５４７，８５０号に記載され、いわばト
ロンビン阻害剤の消費が凝固の遅延の測定によって理解される冒頭に挙げた種類
の方法において利用される。トロンビン阻害剤の量が多ければ、凝固開始までの
時間が長くなり、逆に少なければ短くなる。この方法は実際上、基本的に優秀で
あることが実証されている。しかし、フィビリノーゲン濃度が（あまりに）低く
、またトロンビン阻害剤濃度が高いと凝固時間が長くなるため、フィブリノーゲ
ン濃度が低い場合には品質低下が発生することが欠点であることがわかっている
。

【０００４】 本発明の技術的問題は、フィブリノーゲン濃度に関係なく正確な値を提供する
トロンビン阻害剤の濃度を測定する方法を記載することである。

【０００５】 この問題を解決するために、本発明は、非混濁体液または体液からの非混濁抽
出物において以下の方法ステップによりトロンビン阻害剤の濃度を測定する方法
を開示する。すなわち、ａ）生物から体液を採取し、必要に応じて体液の混濁物
を分離し、ｂ）ステップａ）で得られる非混濁体液にプロトロンビン／活性マイ
ゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1の転換に干渉しない凝固抑制剤、活性マイ
ゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1により分解可能な色素原または蛍光発生原
基質およびマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1に分解する物質のプロトロ
ンビのほか、任意にプロトロンビンを添加し、ｃ）ステップｂ）で得られる溶液
すなわち混合液を時間依存的に波長選択的な光吸収または光放出測定にかけ、ｄ
）それぞれの時間単位でステップｃ）の光吸収または光放出の減少から体液中に
含有するトロンビン阻害剤の量を求められた標準曲線と比較することにより測定
する。マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1分解物質中のプロトロンビンの
代替または補充にマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1を添加することがで
きる。さらに、本発明は、非混濁水性体液中の（発生したマイゾトロンビンまた
はＭｔｄｅｓｆｇ1を抑制するための）トロンビン阻害剤の（特異的）活性を測
定する方法を以下の方法ステップにより開示する。すなわち、ａ）生物から体液
を採取し、必要に応じて体液の混濁物を分離または非混濁液体を人工的に作製し
、ｂ）ステップａ）で得られる非混濁液体に所定量のトロンビン阻害剤、場合に
より、プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1の転換に
干渉しない凝固抑制剤、活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1により分
解可能な色素原または蛍光発生原基質およびマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓ
ｆｇ1に分解する物質のプロトロンビンのほか、任意にプロトロンビンを添加し
、ｃ）ステップｂ）で得られる溶液すなわち混合液を時間依存的に波長選択的な
光吸収または光放出測定にかけ、ｄ）それぞれの時間単位でステップｃ）の光吸
収または光放出の減少から体液中に含有するトロンビン阻害剤の量を求められた
標準曲線と比較することにより測定する。−色素原基質と呼ばれるのは、発色団
を含有し、トロンビンから特異的に呈色分解される物質である。蛍光発生原基質
は、トロンビンから特異的に蛍光を発生する物質の形成下に分解可能である物質
である。当然のことながら、体液が十分にプロトロンビンを含有しないとき、例
えばビタミンＫが不足している場合、または予想されるトロンビン阻害剤の量も
しくはトロンビン阻害剤の活性がこれを推奨するとき、または疾患中にプロトロ
ンビン不足が発生しているとき、プロトロンビンを添加するができる。

【０００６】 本発明は、トロンビンから特異的に分解される色素原物質または蛍光発生原物
質が、マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1からも特異的に分解可能である
という驚くべき認識に基づく。このことは、中間物質は必要な前段階を示すが、
しかし当然のことながらトロンビンと同じ作用または反応を欠くため、予想され
ないことである。本発明による検出反応は呈色反応によってマイゾトロンビンま
たはＭｔｄｅｓｆｇ1阻害のモニタリングによってのみ起こることにより、検出
はフィブリノーゲン濃度と完全に無関係である。それどころか、体液、特に血液
または血漿の使用時には、凝固が阻止され、呈色反応の評価を妨害することがな
い。さらに、本発明によるトロンビン阻害剤の測定は、全範囲において高いフィ
ブリノーゲン濃度での周知の方法による測定と少なくとも同じく正確である。ま
た、場合により体液中に含有し、経口投与される抗凝固剤とは無関係に構成され
る。他の利点は以下の通りである。すなわち、通常の凝固自動装置（これは補正
の目的で多くの場合、多波長で混濁を測定し、したがって通常、波長選択性およ
び波長変動性の光吸収測定の可能性を示す）色素原チャネルにおいて数分以内の
迅速な測定； 個別値のきわめて低いばらつきに基づく確認された値の高い再現
性（信頼性区間は多数の試験により５％以下、通常２．２〜３．５％）； 高い
精度または再現性はさらにトロンビン阻害剤またはヒルジンの濃度がきわめて高
い場合にも達成される； 前述の特徴に基づき、本発明による方法は国内および
国際標準化に適している。

【０００７】 本発明による方法は、一方では研究、すなわちトロンビン阻害剤の濃度を測定
する必要がある研究のすべての分野、および（場合により高い能力の）予測的ト
ロンビン阻害剤のスクリーニングにおいて使用される。後者の場合には、高い装
入量により実際の作用に対する多数の合成予測的阻害剤を試験することができる
。この場合、活性とは、果たして阻害が起こるかどうか、起こる場合は、運動力
学または特異的活性がいかなるものかの確認を意味する。他方、臨床的使用、例
えば、治療的理由から阻害剤が投与される患者におけるトロンビン阻害剤濃度の
モニタリングにも提供される。簡単にかつ低コストに、トロンビン阻害剤の過小
または過大投与が起こることの回避、すなわち、ほぼ連続的または非連続的なモ
ニタリングが可能である。

【０００８】 具体的にいえば、プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆ
ｇ1の転換を干渉しない凝固抑制剤は、「カルシウム複合体造形物、へパリン、
へパリノイド、抗トロンビンIII、タンパク質Ｃ、フィブリン重合抑制物質およ
びこれらの物質の混合物」の群から選択することができる。その具体的な例が、
ペンタファルムＡＧ社（スイス、バーゼル）のペファブロック（Pefabloc）ＦＧ
であり、これはテトラペプチド（Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ）であって、
高い親和性によりフィブリノーゲン重合を阻止する。マイゾトロンビンまたはＭ
ｔｄｅｓｆｇ1に分解する物質中のプロトロンビンは、ヘビ毒およびヘビ毒分画
、例えばＤｉｓｐｈｏｌｉｄｕｓ、Ｒｈａｂｄｏｐｈｉｓ、Ｂｏｔｈｒｏｐｓ、
Ｎｏｔｅｃｈｉｓ、ＯｘｙｕｒａｎｕｓおよびＲｕｓｓｅｌ Ｖｉｐｅｒｎの群
から選択することができる。便宜的にそれらから精製された分画を使用する。好
ましくは、エカリン、Ｅｃｈｉｓ−ｃａｒｉｎａｔｕｓ毒素の高度に精製した分
画またはＭｕｌｔｉｓｑｕａｍａｓｅ、Ｅｃｈｉｓ ｍｕｌｔｉｓｑｕａｍａｔ
ｏｕｓからのプロトロンビン分解性酵素を使用する。係る物質、例えばエカリン
は、スイスのペンタファルムＡＧ社などから入手可能である。

【０００９】 活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1により分解可能な色素原基質は
、ｐ−ニトロアニリンの分解下に遊離し、光吸収測定は４０５ｎｍで行うことが
できる。係る基質または他の基質の例は、クロモザイム（Chromozym）ＴＨまた
はペファクロムＴＨの名称でクロモゲニックス社、べーリンガー社、ペンタファ
ルム社から入手可能のトリペプチドである（ペファクロムＴＨは、Ｈ−Ｄ−Ｃｈ
Ｇ−Ａｌａ−Ａｒｇ−ｐＮ．２ＡｃＯＨである）。蛍光色素基質の例は、ペファ
（Pefa）１５８６５名称でペンタファルム社から入手可能のペファクロムＴＨ蛍
光発生原である。

【００１０】 具体的にいえば、問題となる活性の場合、ステップＣ）において、最初の吸収
または放出の測定が、マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1に分解する物質
へのプロトロンビンまたはマイゾトロンビンもしくはＭｔｄｅｓｆｇ1の添加か
ら０〜１００ｓ、好ましくは０〜５０、最も好ましくは５〜１５ｓ後、２回目の
測定がその後、１０〜１０００ｓ、好ましくは５０〜５００ｓ、最も好ましくは
１５０〜３００ｓ後に行うことが推奨される。本発明による方法は、特にヒルジ
ンの測定または合成トロンビン阻害剤すなわちヒルローゲンの濃度および／また
は活性の測定のためのものである。

【００１１】 本発明はさらに、以下のキット構成要素により、非混濁体液または体液からの
非混濁抽出物におけるトロンビン阻害剤の濃度を測定するための検査キット、す
なわち、Ｋ１）プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1
の転換を干渉しない凝固抑制剤の溶液と、Ｋ２）活性マイゾトロンビンまたはＭ
ｔｄｅｓｆｇ１により分解する色素原または蛍光発生原基質と、Ｋ３）マイゾト
ロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１に分解する物質のトロンビンの溶液であって、
構成要素Ｋ３）はＫ３ａ）マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１を有する溶
液で代替または補充が可能であるほか、以下のキット構成要素により非混濁体液
または体液からの非混濁抽出物もしくは非混濁の非天然水性液体の活性を測定す
るための検査キット、すなわち、任意のＫ１）プロトロンビン／活性マイゾトロ
ンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1の転換を干渉しない凝固抑制剤の溶液と、Ｋ２）
活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１により分解する色素原または蛍光
発生原基質と、Ｋ３）マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１に分解する物質
のトロンビン溶液であって、構成要素Ｋ３）はＫ３ａ）マイゾトロンビンまたは
Ｍｔｄｅｓｆｇ１を有する溶液で代替または補充が可能である検査キットに関す
る。キット構成要素は互いに分離することができるが、単一の検査キットパック
に予め準備されている。任意に代替可能な追加のキット構成要素として、プロト
ロンビンを有する溶液が予め準備することができる。

【００１２】 いずれの場合にも、トロンビン、マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１お
よび／またはマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１分解性物質の添加に際し
て、これらは明白な所定量で使用されることが理解される。同じことは基質につ
いても該当する。

【００１３】 スクリーニングのために特に適切な本発明による方法に基づき、本発明の対象
も新しいトロンビン阻害剤が見出され、特徴づけられ、すなわち以下の方法のス
テップによって入手可能である。すなわち、Ａ）予測的なトロンビン阻害剤の群
の構成要素を所定の好ましくは同じ濃度で、その後のまたは個別に請求項２ない
し８のいずれか１項に記載の方法に同時にかけ、Ｂ）それぞれの時間単位で光吸
収または光放出の減少を各予測的なトロンビン阻害剤について算出し、ヒルジン
の所定の好ましくは同じ濃度のそれぞれの時間単位で同じ条件下に測定された光
吸収および光放出と比較し、Ｃ）それぞれの時間単位での光吸収または放出の減
少がヒルジンを使用した場合の対応する減少の少なくとも１０％に対応する予測
的なトロンビン阻害剤を選択する。

【００１４】 本発明による検査キットおよび本発明により見出されるトロンビン阻害剤には
、本発明による方法に対する詳細な説明が合致する。

【００１５】 マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１を使用する限り、これは、例えばス
イスのペンタファルムＡＧ社から購入できるが、例えば文献第ＵＳ−Ａ−５，５
４７，８５０号における規定により固定化エカリンで製造することもできる。

【００１６】 発明の範囲で使用可能な装置は、例えばほとんど既存の半または全自動の凝固
装置である。その場合に問題となるのは、例えばダーデ−ベーリング（Dade-Beh
ring）社のＳｙｓｍｅｘ ＣＡ−５００型もしくはＳ２０００型またはＥｌｅｃ
ｔｒａ ２０００型である。ＣＡ−５００では、ＬＥＤから放出される光はフィ
ルタ（４０５ｎｍ）により送出され、引き続き試料により送出される。ＣＡ−５
００は色素原チャネルにおいて色素、例えばｐＮＡ（ｐ−ニトロアニリン）の光
吸収の変化または減少を測定する。試料中にヒルジンがある場合は、生成または
添加されるマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１は、それにより阻害される
ｐＮＡ遊離の結果、不活性化する。その点では別に反応（変化）する試料の光学
的密度は光ダイオードによって受容され、評価される。観察される光吸収の変化
は逆にヒルジンの活性に比例する。

【００１７】 実施例 以下、完全に実施例で示された実験をもとにして本発明を詳しく述べる。

【００１８】 標準曲線を測定するために、プールされたヒト保存血漿を所定量のヒルジン溶
液とともに使用した。こうして得られた標準溶をＣＡ−５００で測定した。

【００１９】 試薬として以下を導入した。

【００２０】 試薬１［Ｉｎｈｉｂ］（室温）： ペファブロックＦＧ４００μｌ（２０ｍＭ
；０．９％ＮａＣｌ中で溶解）＋トリス緩衝液２１００μｌ。

【００２１】 試薬２［Ｃｈｒｏｍ］（室温）： ペファクロムＴＨ（１０μｍｏｌ／バイア
ル）、３μｍｏｌ／ｍｌ蒸留水に希釈。

【００２２】 試薬３［Ｅｃａｒｉｎ］（１５℃）： Ｅｃａｒｉｎ（５０ＥＵ／バイアル）
、０．３ＥＵ／ｍｌに希釈（Ｅｃａｒｉｎバイアルの内容物は０．９％Ｎａｃｌ
溶液５ｍｌ中に溶解し、使用直前に０．９％Ｎａｃｌ、１％プリノネックス（メ
ルク）含有、および０．１Ｍ ＣａＣｌ２溶液の混合液１：２で最終濃度に設定
した。

【００２３】 試験プロトコールは以下に再現されている。希釈緩衝液としてプロトロンビン
１６．６μｌ（精製；タンパク質含量：２．２２ｍｇ／ｍｌ）およびトリス緩衝
液（０．０５Ｍ、ｐＨ８、３７℃、＋０．１Ｍ Ｎａｃｌ）９００μｌとプリオ
ネックス（メルク）１００μｌの混合液９８４μｌの混合液を使用した。

【００２４】

【表１】

【００２５】 図１には得られた標準曲線が再現されている。０．９９７７のきわめて優れた
相関係数が注目される。実験では、完全に標準試料は測定すべき試料により代替
され、図１における不明のヒルジン濃度は光学的密度の測定された減少をもとに
して読み取られる。

【図面の簡単なの説明】

【図１】 実験により得られたヒルジン濃度を示す図である。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ )，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ， ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＡ， ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，Ｃ Ｕ，ＣＺ，ＤＫ，ＤＭ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ， ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，Ｌ Ｋ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ， ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，Ｔ Ｍ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ ，ＺＡ，ＺＷ Ｆターム(参考） 2G043 AA01 BA17 CA03 DA02 EA01 EA13 FA03 GA06 GB18 KA02 KA05 LA01 2G045 AA28 DA34 DA41 DA80 FB01 FB12 GC10 JA20 2G059 AA01 BB13 DD03 EE01 EE07 EE11 FF04 GG02 HH02 HH06 KK01 MM05 4B063 QA01 QQ03 QQ20 QQ79 QQ95 QR16 QR41 QR48 QR51 QR58 QX01

Claims (13)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 非混濁体液または体液からの非混濁抽出物の濃度を測定する
   方法であって、以下の方法ステップ、すなわち ａ）生物から体液を採取し、必要に応じて体液の混濁物を分離し、 ｂ）ステップａ）で得られる非混濁体液にプロトロンビン／活性マイゾトロン
   ビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１の転換に干渉しない凝固抑制剤、活性マイゾトロン
   ビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１により分解可能な色素原または蛍光発生原基質およ
   びマイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１に分解する物質のトロンビンほか、
   任意にプロトロンビンを添加し、 ｃ）ステップｂ）で得られる溶液または混合液を時間依存的に波長選択的な光
   吸収または光放出測定にかけ、 ｄ）それぞれの時間単位でステップｃ）の光吸収または光放出の減少から体液
   中に含有するトロンビン阻害剤の量を、求められた標準曲線と比較するステップ
   により測定する方法。
2. 【請求項２】 非混濁水性液体中のトロンビン阻害剤の活性を測定する方法
   であって、以下の方法ステップ、すなわち ａ）生物から体液を採取し、必要に応じて体液の混濁物を分離または非混濁液
   体を人工的に作製し、 ｂ）ステップａ）で得られる非混濁液体に所定量のトロンビン阻害剤、場合に
   より、プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１の転換に
   干渉しない凝固抑制剤、活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１により分
   解可能な色素原またはｆｌｏｕｒｏｇｅｎ（蛍光発生原）基質およびマイゾトロ
   ンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１に分解する物質のトロンビンほか、任意にプロト
   ロンビンを添加し、 ｃ）ステップｂ）で得られる溶液すなわち混合液を時間依存的に波長選択的な
   光吸収または光放出測定にかけ、 ｄ）それぞれの時間単位でステップｃ）の光吸収または光放出の減少からトロ
   ンビン阻害剤の活性を求められた標準曲線と比較することにより測定するステッ
   プで測定する方法。
3. 【請求項３】 プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆ
   ｇ１の転換を干渉しない凝固抑制剤が、「カルシウム複合体造形物、へパリン、
   へパリノイド、抗トロンビンＩＩＩ、タンパク質Ｃ、フィブリン重合抑制物質お
   よびこれらの物質の混合物」の群から選択される、請求項１または２に記載の方
   法。
4. 【請求項４】 マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1に分解する物質の
   プロトロンビンが、ヘビ毒およびヘビ毒分画の群から選択される、請求項１〜３
   のいずれか１項に記載の方法。
5. 【請求項５】 マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1に分解する物質の
   プロトロンビンがＥｃａｒｉｎである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方
   法。
6. 【請求項６】 活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1により分解可
   能な色素原基質が、ｐ−ニトロアニリンの分解下に遊離し、光吸収測定は４０５
   ｎｍで行うことができる、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
7. 【請求項７】 ステップＣ）において、最初の吸収または放出の測定が、マ
   イゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ1に分解する物質へのプロトロンビンまた
   はマイゾトロンビンもしくはＭｔｄｅｓｆｇ1の添加から０〜１００ｓ、好まし
   くは０〜５０、最も好ましくは５〜１５ｓ後、２回目の測定がその後、１０〜１
   ０００ｓ、好ましくは５０〜５００ｓ、最も好ましくは１５０〜３００ｓ後に行
   われる、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
8. 【請求項８】 トロンビン阻害剤がヒルジン、ヒロログまたは合成トロンビ
   ン阻害剤である請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
9. 【請求項９】 非混濁体液または体液からの非混濁抽出物におけるトロンビ
   ン阻害剤の濃度を測定するための検査キットであって、以下のキット構成要素、
   すなわち、Ｋ１）プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ
   1の転換を干渉しない凝固抑制剤の溶液と、Ｋ２）活性マイゾトロンビンまたは
   Ｍｔｄｅｓｆｇ１により分解する色素原または蛍光発生原基質と、Ｋ３）マイゾ
   トロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１に分解する物質のプロトロンビン溶液であっ
   て、構成要素Ｋ３）はＫ３ａ）マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１を有す
   る溶液で代替または補充が可能である構成要素で測定するための検査キット。
10. 【請求項１０】 非混濁体液または体液からの非混濁抽出物におけるトロン
    ビン阻害剤の活性を測定するための検査キットであって、以下のキット構成要素
    、すなわち、任意にＫ１）プロトロンビン／活性マイゾトロンビンまたはＭｔｄ
    ｅｓｆｇ1の転換を干渉しない凝固抑制剤の溶液と、Ｋ２）活性マイゾトロンビ
    ンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１により分解する色素原または蛍光発生原基質と、Ｋ３
    ）マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓｆｇ１中のプロトロンビンに分解する物質
    の溶液であって、構成要素Ｋ３）はＫ３ａ）マイゾトロンビンまたはＭｔｄｅｓ
    ｆｇ１を有する溶液で代替または補充が可能である構成要素で測定するための検
    査キット。
11. 【請求項１１】 構成要素は互いに分離されるが、単一検査キットパックで
    準備される、請求項９または１０に記載の検査キット。
12. 【請求項１２】 任意に代替可能な追加のキット構成要素としてプロトロン
    ビンを有する溶液が準備される請求項９〜１１のいずれか１項に記載の検査キッ
    ト。
13. 【請求項１３】 以下の方法ステップ、すなわち Ａ）予測的なトロンビン阻害剤の群の構成要素を所定のかつ好ましくは同じ濃
    度で、その後のまたは個別に請求項２〜８のいずれか１項に記載の方法に同時に
    かけ、 Ｂ）それぞれの時間単位で光吸収または光放出の減少を各予測的なトロンビン
    阻害剤について算出し、ヒルジンの所定のかつ好ましくは同じ濃度のそれぞれの
    時間単位で同じ条件下に測定された光吸収および光放出と比較し、 Ｃ）それぞれの時間単位での光吸収または放出の減少がヒルジンを使用した場
    合の対応する減少の少なくとも１０％に対応する予測的なトロンビン阻害剤を選
    択するステップにより入手可能であるトロンビン阻害剤。