JP2002524016A

JP2002524016A - イノシトールポリホスフェート誘導体およびその使用方法

Info

Publication number: JP2002524016A
Application number: JP51490898A
Authority: JP
Inventors: アレクシストライノア―カプラン，; カーステンシュルツ，; ステファンローマー，; クリストフシュタットラー，; マルコルドルフ，
Original assignee: THE REGENTS OF THE UNIVERSITY OF CARIFORNIA
Current assignee: THE REGENTS OF THE UNIVERSITY OF CARIFORNIA
Priority date: 1996-09-20
Filing date: 1997-09-19
Publication date: 2002-07-30
Also published as: WO1998011901A1; CN1478783A; AU721150B2; EP0954320A4; CN1145489C; EP0954320A1; KR20060028630A; AU4426697A; CA2267348A1; CN1239894A

Abstract

(57)【要約】本発明は、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストである組成物を提供する。さらに、本発明は、細胞をイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストと接触させることにより細胞からの塩化物イオン分泌を増強するための方法を提供する。本発明はまた、個体に、小野市トールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストを投与することにより個体において塩化物イオン分泌を増強するための方法を提供する。本発明は、さらに個体にイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストを投与することにより個体において嚢胞性線維症に関連する徴候または症状を軽減するための方法を提供する。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストである組成物を提供する。さらに、本発明は、細胞を、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストと接触させることにより細胞からの塩化物イオン分泌を増強するための方法を提供する。本発明はまた、個体にイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストを投与することにより個体において塩化物イオン分泌を減少される方法を提供する。本発明は、さらに個体にイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストを投与することにより個体において分泌性下痢と関連する徴候または症状を軽減する方法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】本発明は、米国国立衛生研究所によって与えられた許可番号R01 DK47240-01A1 のもとで政府支援を得た。政府は本発明に一定の権利を有する。発明の背景発明の分野本発明は、一般に、塩化物イオン輸送を調節する化合物および方法に、そしてより詳細には、イノシトールポリホスフェートのアンタゴニストおよびアゴニストに関する。背景情報すべての生きている生物は細胞から作られる。細胞の境界は、内側の物質を外側の物質から分離するために役立つ形質膜によって決定される。細胞膜は、栄養のような物質の細胞内へまたは細胞からの通過を調節することによって機能する。細胞膜を横切る輸送は、細胞の膠質浸透圧の調節を含む、細胞における多くの重要な機能に役立つ。イオン輸送の調節は、その完全性および機能を維持するために適切な濃度のイオンを有する細胞を提供する。不適切な条件下では、例えば、細胞内部のイオン濃度が高すぎる場合、水が細胞中へ移動しそして細胞を膨張または破裂させる。細胞中のイオン濃度が低すぎる場合、細胞は縮む。生物は、特定の組織タイプにおいて体液を調節するために細胞膜イオン輸送特性を利用する。例えば、腸に沿って並ぶ細胞は、イオン輸送を使用して水の取り込みを調節する。細胞によって輸送される１つの特に重要なイオンは、塩化物イオンである。塩化物イオン輸送は、浸透圧調節、細胞内pH調節、ならびに塩および体液分泌のような種々の細胞機能に重要な役割を果たす。腸において、高レベルの塩化物イオン分泌は、分泌性下痢のような疾患に関連する。分泌性下痢は、Salmonella、Shigella、およびEscherichia coliの特定の株のような微生物による感染を含む、多くの原因がある。組織および塩化物イオン分泌における体液レベルの調節に関連する他の条件は、炎症、感染、または外傷に関連する組織腫脹を含む。したがって、望ましくないレベルの塩化物イオン分泌を阻害する方法が、これらの病理の症状を軽減するために使用され得る。嚢胞性線維症は、白人において最も普通の致死的遺伝病であり、ヨーロッパ系のアメリカ人のうち2,000人の誕生に約１人に影響を及ぼす。これは、慢性肺疾患、膵不全、および腸閉塞になる異常な粘性の粘液分泌によって特徴づけられる。米国では、約30,000人が嚢胞性線維症を有し、そして毎年約1,000の新しい症例が診断される。過去において、罹患した子供はしばしば幼児として死亡したが、現在、個体は、20代および30代まで生存し得る。それにもかかわらず、嚢胞性線維症の治療法がなく、そして現在の治療は、根底にある細胞の欠陥を修正せず、疾患の症状を管理するのみである。嚢胞性線維症の現在の処置は、日和見感染の症状管理または制御に大きく制限される。例えば、ウイルス病原体に対するワクチン接種および細菌感染に対する培養特異的抗生物質の使用は、感染を防ぐために使用され得る。コルチコステロイドは、感染に対する炎症性応答の処置にときどき有用であるが、種々の望ましくない長期副作用を有する。他の処置は、肺における異常に粘性の粘液分泌に関連する慢性肺病の症状に焦点を合わせる。例えば、胸部打診法および姿勢排液法（postural drainage）のような物理的補助は、肺からの分泌物を取り除くことを助ける。気管支拡張器は、ある患者では有益であったが、他の患者では、気体交換が減少した。異常に粘性の粘液分泌に関連する他の症状は、腸閉塞および膵不全を含む。腸閉塞は、20％の成人で起こり、そして浣腸剤で処置されるかあるいは浣腸剤が効果的でない場合は外科的手術によって処置される。膵不全は、80〜90％の患者で起こり、そして細胞からの塩化物イオンの損傷した再循環のため、重炭酸イオンおよび体液の減少した分泌によって引き起こされる。対応する膵液は、タンパク質が高濃度になり、そして濃縮され、膵管の閉塞およびそれに続く膵腺房の萎縮を生じる。膵不全は、酵素の補充によって処置され、通常は、これにより適切な消化および吸収機能が回復し、それによって栄養不良の症状を直す。しかし、根底にある疾患は持続し、しばしば、膵臓の萎縮を導き得る膵炎の再発性の発作を引き起す。正常な肺機能、結腸への正常な分泌機能、または正常な膵機能をもとに戻す処置は、現在利用可能な治療に大きな利点を提供する。遺伝子治療は、嚢胞性線維症患者で使用されている。しかし、遺伝子治療での試みは、遺伝子の並外れたサイズ、遺伝子を移送するために使用されるアデノウイルスベクターへの免疫反応、および上皮組織の迅速な代謝回転を含む種々の理由のため、成功していない。したがって、異常な塩素輸送に関連する嚢胞性線維症および分泌性下痢のような病理の症状を改善するように、塩化物イオン分泌を変化させる手段の必要性がある。本発明は、この必要性を満たし、そしてさらに関連する利点を提供する。発明の要旨本発明は、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストである組成物を提供する。例えば、本発明は、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートおよびホスファチジルイノシトールトリスホスフェートのアンタゴニストを提供する。さらに、本発明は、細胞をイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストで接触させることによって、細胞からの塩化物イオン分泌を増強する方法を提供する。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストを個体に投与することによって、個体における塩化物イオン分泌を増強する方法を提供する。本発明はさらに、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストを個体に投与することによって、個体における嚢胞性線維症に関連する徴候または症状を軽減する方法を提供する。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストである組成物を提供する。例えば、本発明は、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートおよびホスファチジルイノシトールトリスホスフェートのアゴニストを提供する。さらに、本発明は、細胞をイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストで接触させることによって、細胞からの塩化物イオン分泌を減少させる方法を提供する。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストを個体に投与することによって、個体における塩化物イオン分泌を減少させる方法を提供する。本発明はさらに、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストを個体に投与することによって、個体における分泌性下痢に関連する徴候または症状を軽減する方法を提供する。図面の簡単な説明図１は、myo-イノシトール、scyllo-イノシトール、および代表的細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体、2-Bt-1-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AMの構造を示す。図２は、ウサギ結腸における塩化物イオン分泌のBt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AM阻害を示す。図３は、ヒスタミン刺激した塩化物イオン分泌のBt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AM媒介阻害の逆転のため、200μMの2-Bt-1-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AMで処理した結腸上皮T₈₄ 細胞における増強された塩化物イオン分泌を示す。図４は、Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMが細胞内カルシウムを増加させず、そしてタプシガルギンに対するカルシウム応答に影響を及ぼさないことを示す。図５は、以下のもので処理した結腸上皮T₈₄細胞における増強された塩化物イオン分泌を示す： D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AM（図5A）； 1-Bu-2-Bt-Ins(3,4,5,6)P₄/AM（図5B）； Bu₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AM（図5C）； 3-Bt-2-Bu-Ins(1,4,5,6)P₄/AM（図5D）； Bu₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM（図5E）； 1-Bt-2-Bu-Ins(3,4,5,6)P₄/AM（図5F）；および 3-Bu-2-Bt-Ins(1,4,5,6)P₄/AM（図5G）。図６は、塩化物イオン分泌のEGF媒介阻害の逆転のため、Bt₂-Ins(1,4,5,6)P₄/ AMで処理した結腸上皮T₈₄細胞における増強された塩化物イオン分泌を示す。図７は、EGFで処理されたか、またはPtdInsP₃の細胞浸透性誘導体で処理した結腸上皮T₈₄細胞における減少した塩化物イオン分泌を示す。Bt₂-Ins(1,4,5,6)P₄ /AMは、塩化物イオン分泌のEGFおよびPtdInsP₃媒介阻害の逆転のため、塩化物イオン分泌を増強する。図８は、PtdInsP₃/AMの漸増濃度で処理した結腸上皮T₈₄細胞における減少した塩化物イオン分泌を示す。図９は、細胞浸透性PtdInsP₃およびジC₁₆-Bt-PtdInsP₃/AMの構造を示す。図10は、細胞浸透性PtdInsP₃/AM誘導体の合成の概略図を示す。図11は、1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄//AMの合成の概略図を示す。図12は、myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートおよび2,5,6-Bt₃-Ins(1, 3,4)P₃/AMの構造を示す。化合物のD-立体配置のみを示す。図13は、細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体の合成の概略図を示す。発明の詳細な説明本発明は、イノシトールポリホスフェートのアンタゴニストまたはアゴニストである細胞浸透性化合物と細胞とを接触させることによって、塩化物イオン分泌を変化させる組成物および方法を提供する。本明細書で使用する場合、用語「変化させる」は、細胞中へまたは細胞からの塩化物イオン輸送のレベルが、本発明のアゴニストまたはアンタゴニストで処理されていない細胞における分泌のレべルとは異なるように、塩化物イオン分泌を増強または減少させることをいう。本明細書で使用する場合、用語「アンタゴニスト」とは、化合物が、他の化合物の生理学的活性を減少させる機能を有することを意味する。例えば、塩化物イオン分泌を阻害する化合物のアンタゴニストは、その阻害を逆転する。同様に、用語「アゴニスト」とは、化合物が、他の化合物の生理学的活性を模倣する機能を有することを意味する。本発明のアンタゴニストは、細胞からの塩化物イオン分泌を増強する。本明細書で使用する場合、用語「増強する」とは、塩化物イオン分泌を増加させることに関して使用される場合、細胞からの塩化物イオン輸送のレベルが、アンタゴニストで処理されていない対応する細胞での分泌のレベルよりも高いことを意味する。反対に、用語「減少させる」とは、塩化物イオン分泌を阻害することに関して使用される場合、細胞からの塩化物イオン輸送のレベルが、アゴニストで処理されていない対応する細胞での分泌のレベルよりも低いことを意味する。本明細書で使用する場合、用語「接触する」とは、化合物が細胞膜を通過し得るように、細胞浸透性化合物に細胞をインキュベートまたは曝露することをいう。異常な塩化物イオン分泌は、種々の病理症状に関連する。したがって、本発明の化合物は、塩化物イオン分泌を増強または減少させることに有用であり、それによってこのような疾患の症状を軽減する。嚢胞性線維症のような特定の病理症状では、塩化物イオン分泌の増強は疾患の症状を軽減するために有用であり得るが、分泌性下痢のような他の病理症状では、塩素分泌を減少させることは症状を軽減し得る。本明細書で使用する場合、用語「軽減する」とは、疾患の症状を和らげるまたは軽減することをいう。したがって、塩化物イオン分泌異常に依存して、本発明は、特定の疾患に関連する異常な塩化物イオン分泌を補償する組成物および方法を提供する。本発明は、イノシトールポリホスフェートのアゴニストまたはアンタゴニストである化合物を提供する。イノシトールポリホスフェート誘導体は、イノシトールポリホスフェートアゴニストおよびアンタゴニストとして機能し得る。カルシウム媒介塩化物イオン分泌のIns(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃媒介阻害に対する、本発明の化合物の効果は、実施例に記載され、そして表Ｉにまとめられる。本発明は、カルシウム媒介塩化物イオン分泌の内因性インヒビターであるIns( 3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の活性を模倣または拮抗することによって、カルシウム依存性塩化物イオンチャンネルを介する塩化物イオン分泌を調節する細胞浸透性化合物を提供する。本明細書に開示されるように、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdI nsP₃の細胞内濃度を増加させる化合物は、塩化物イオン分泌を阻害するために有用である。反対に、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の効果を拮抗する化合物は、塩化物イオン分泌を増強させるために有用である。表Ｉ．塩化物イオン分泌に対するイノシトールポリホスフェート誘導体の効果表Ｉ ¹挙げられた誘導体は、以下の略号を使用する：TK、テトラキスホスフェート；o ct、オクタキス；hex、ヘキサキス。他に指示がなければ、すべての化合物はＤ型である。² 表でおよび本出願全体を通して使用した略号：Ins、イノシトール；P、ホスフェート；P_n、ｎはホスフェートの数を示す；AM、アセトキシメチルエステル；Bt 、ブチリル；Me、メチル；Bu、ブチル；C₁₆、パルミトイル；C₈、オクタノイル；PtdIns、ホスファチジルイソシトール。他に指示がなければ、すべての誘導体は、myo-イノシトール誘導体である。原形質膜を容易に通過する、本発明の細胞浸透性化合物は、構造的類似性に起因して、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の細胞内濃度を直接増加させるためか、あるいはIns(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の効果を模倣するために有用であり得る。あるいは、本発明の細胞浸透性化合物は、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の効果に拮抗するために有用である。本明細書で開示されるように、イノシトールポリホスフェート誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の細胞浸透性アゴニストまたはアンタゴニストとして機能し得る。細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体を、実施例XIに記載のように合成した。荷電したリン酸基が、アセトキシメチルエステル基によってマスクされ、そしてヒドロキシル基が疎水性化学基によってマスクされるので、これらの化合物は細胞浸透性である（図１を参照のこと）。親水性基をマスクするために有用な疎水性化学基は、例えば、アシル基、アルキル基、アルキリデン基、またはイノシトールポリホスフェート上の親水性基をマスクし得る任意の疎水性化学基であり得る。アルキル基としては、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、tert-ブチル、sec-ブチル、1-メチルブチル、2,2-ジメチルブチル、2-メチルペンチル、2,2-ジメチルプロピル、ペンチル、およびヘキシル、ならびにアルキレン基、シクロヘキシルおよびシクロペンチル基のような炭素原子の環式鎖、ならびに直鎖または分枝鎖とメチル-シクロヘキシルまたはシクロプロピル-メチレン基のような炭素原子の環式鎖との組み合わせが挙げられる。しかし、メチル誘導体については、2-Bt-1-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、Me₂-I ns(3,4,5,6)P₄/AM、Me₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、2-Bt-3-Me-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、およびD,L-1-Bt-2-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AMは、本発明の組成物の範囲内ではない。さらに、本明細書で定義されるように、アルキルが、置換基で置換され得ることが認識されるべきである。アセタール基であるアルキリデン基としては、例えば、メチリデン、エチリデン、プロピリデン、ブチリデン、ペンチリデン、ヘキシリデン、シクロブチリデン、シクロペンチリデン、シクロヘキシリデン、およびシクロヘプチリデンが挙げられる（KempおよびVellaccio，Organic Chemistry， Worth Publishers，New York(1980)、これは参考として本明細書に援用される）。アシル基としては、例えば、アセチル、プロパニル、ブチリル、ヘキサノイル、およびバレリルが挙げられる。しかし、アシル誘導体については、Bt₂-Ins(3,4, 5,6)P₄/AM、D,L-Bt₂-scyllo-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、およびBt₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM は、本発明の組成物の範囲内ではない。一旦細胞内にはいると、ブチリルおよびアセトキシメチルエステル基は、細胞内エステラーゼによって切断される。したがって、これらの疎水性官能基での修飾は、化合物が細胞膜を通過することを可能にし、ここで化合物は加水分解されて、誘導体化されていない化合物の親水性基を曝露する。対照的に、アルキル基およびアルキリデン基は、加水分解性でなく、したがって、細胞膜を通過した後に誘導体で保持される。イノシトールポリホスフェートのさらなる修飾は、細胞浸透性誘導体を提供する。例えば、1,2-ジデオキシ-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、1-Bt-2-デオキシ-Ins(3,4,5, 6)P₄/AM、2-Bt-1-デオキシ-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、および1,2-ジクロロ-1,2-ジデオキシ-myo-Ins(3,4,5,6)P₄/AMを含むIns(3,4,5,6)P₄誘導体も、細胞浸透性誘導体である（表Ｉを参照のこと）。さらに、細胞浸透性PtdInsP₃誘導体としては、例えば、ジC₁₆-6-O-Bt-PtdIns(3,4,5)P₃/AMおよびジC₈-6-O-Bt-PtdIns(3,4,5)P₃ /AM、ならびにジC₁₆-2-O-Bt-PtdIns(3,4,5)P₃/AM、ジC₈-2-O-Bt-PtdIns(3,4,5)P₃ /AM、ジC₁₆-2,6-O-Bt₂-PtdIns(3,4,5)P₃/AM、およびジC₈-2,6-O-Bt₂-PtdIns(3, 4,5)P₃/AMが挙げられる。アシル化およびアセトキシメチルエステル誘導体を合成する方法は、Roemerら（J ．Chem．Soc.，Chem．Commun. N4:411(fat 1995)；J ．Chem．Soc.，Perkins Trans，1 N14:1683(fat 1996)）に記載され、それらのそれぞれは、参考として本明細書に援用される。本発明は、イノシトールポリホスフェートのアンタゴニストである細胞浸透性化合物を提供する。１つの実施態様では、細胞浸透性化合物は、Ins(3,4,5,6)P₄ アンタゴニストである。本明細書に開示されるように、Ins(3,4,5,6)P₄誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄アンタゴニストとして機能する。例えば、１位、２位、または両方でヒドロキシル基に付加されたアルキル基を有するIns(3,4,5,6)P₄誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄のアンタゴニストとして機能する（表Ｉならびに実施例IIIおよびIVを参照のこと）。特に有用なアルキル基誘導体は、メチル（ME）およびブチル（Bu）誘導体である。例えば、2-Bt-1-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、Me₂-Ins-(3, 4,5,6)P₄/AM、1-Bu-2-Bt-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、およびBu₂-Ins-(3,4,5, 6)P₄/AMはそれぞれ、塩化物イオン分泌のIns(3,4,5,6)P₄媒介阻害を逆転し、したがってIns(3,4,5,6)P₄アンタゴニストである。他の有用なIns(3,4,5,6)P₄誘導体は、１位および２位にアルキリデン基を含む誘導体である。例えば、D,L-1,2- シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AMは、塩化物イオン分泌のカルバコール媒介阻害を逆転し、したがってIns(3,4,5,6)P₄アンタゴニストである。さらに、２位および３位にアルキリデン基を有するIns(1,4,5,6)P₄/AM誘導体もまた、Ins(1 ,4,5,6)P₄誘導体として使用され得る。別の実施態様では、細胞浸透性化合物は、PtdInsP₃アンタゴニストである。本明細書に開示されるように、細胞浸透性Ins(1,4,5,6)P₄誘導体は、PtdInsP₃アンタゴニストである。例えば、２および３位に結合されたブチリル基を有するIns( 1,4,5,6)P₄誘導体は、カルシウム媒介塩化物イオン分泌のEGF媒介およびPtdInsP₃ 媒介阻害を逆転し、したがって、PtdInsP₃アンタゴニストである（表Ｉならびに実施例VIIおよびVIIIを参照のこと）。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートのアゴニストである細胞浸透性化合物を提供する。１つの実施態様では、細胞浸透性化合物は、Ins(3,4,5,6)P₄ アゴニストである。本明細書に開示されるように、Ins(3,4,5,6)P₄誘導体は、In s(3,4,5,6)P₄アゴニストである。例えば、Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、Bt₂-scyllo- Ins(3,4,5,6)P₄/AM、および1-Bt-2-デオキシ-Ins(3,4,5,6)P₄/AM（36％阻害）は、細胞内カルシウム濃度から塩化物イオン分泌を切り離すことによってカルシウム媒介塩素分泌を阻害し、したがって、Ins(3,4,5,6)P₄アゴニストである（表Ｉおよび実施例Ｉ〜IIIを参照のこと）。さらに、Ins(1,3,4)P₃誘導体は、Ins(3,4 ,5,6)P₄アゴニストである。例えば、Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AMは、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞内濃度を増加させることによってカルシウム媒介塩化物イオン分泌を阻害し、したがって、Ins(3,4,5,6)P₄アゴニストである（実施例Ｖを参照のこと）。別の実施態様では、細胞浸透性化合物はPtdInsP₃アゴニストである。本明細書に開示されるように、PtdInsP₃誘導体はPtdInsP₃アゴニストである。例えば、ジ C₁₆-Bt-PtdInsP₃/AMおよびジC₈-Bt-PtdInsP₃/AMはカルシウム媒介塩化物イオン分泌を阻害した。したがって、PtdInsP₃アゴニストである（表Ｉおよび実施例VIIIを参照のこと）。イノシトールポリホスフェート誘導体の構造の分子モデリングは、イノシトールポリホスフェート誘導体の所望の活性を模倣する構造的特徴を有する合成化合物を設計するために使用され得る。あるいは、イノシトールポリホスフェートのアゴニストまたはアンタゴニストとして作用する細胞浸透性合成化合物は、例えば、コンビナトリアル化学ライブラリーをスクリーニングすることによって、同定され得る。本明細書に記載される方法を使用して、合成化合物は、カルシウム媒介塩化物イオン分泌における所定のイノシトールポリホスフェートの効果を模倣または拮抗する所望の活性について、スクリーニングされ得る。コンビナトリアル化学ライブラリーを作製およびスクリーニングする方法は、当業者に周知である（Combinatorial Peptide and Nonpeptide Libraries: A Handbook，Jung編，VCH，New York(1996)、これは参考として本明細書に援用される）。本発明は、さらに、イノシトールポリホスフェートのアンタゴニストまたはアゴニストである細胞浸透性化合物と細胞とを接触させることによって、塩化物イオン分泌を変化させる方法を提供する。塩化物イオンの移動は、生物の体内での水の流れを調節するために、細胞によって使用される。細胞は、チャンネルが開いた場合に塩化物イオンが膜を通過することのみを可能にする特異的塩化物イオンチャンネルを有する。これらのチャンネルは、ムチンを分泌しそして水の流れを調節する粘膜において細胞で特に重要である。細胞内へおよび細胞からの水の流れが不足する場合、ムチン分泌は粘性の栓を生じ、これは肺の気道および嚢胞性線維症のような疾患の腸の粘膜下層を閉塞する。しかし、すべての塩化物イオンチャンネルが同じではなく、そして異なるチャンネルは異なるように調節される。塩化物イオンチャンネルの特定の群の、カルシウム依存性塩化物イオンチャンネルは、カルシウムイオン流量に連結される。カルシウムイオンの細胞内濃度が上昇すると、塩化物イオン分泌が増加する。本明細書で使用される場合、用語「塩化物イオン分泌」とは、細胞の形質膜を横切る塩化物イオンの輸送をいう。イノシトールポリホスフェート代謝に測定可能な長期効果を有さない生理学的に関連するアゴニストであるヒスタミンのようなある化合物での細胞の処理は、増加した塩化物イオン分泌を生じる細胞内カルシウムイオン濃度の上昇を引き起こす。ムスカリン性コリン作動性化合物であるカルバコールも、細胞内カルシウムイオン濃度を上昇させ、そして短期処理で塩化物イオン分泌を刺激する。しかし、結腸上皮T₈₄細胞のカルバコールでの長期処理の後、細胞なカルシウムイオンの上昇した濃度は、もはや塩化物イオン分泌を刺激しない（Kachintornら，Am ．J. Physiol．Cell 264:C671(1993)、これは参考として本明細書に援用される）。カルバコールでの長期処理は、細胞内Ins(3,4,5,6)P₄レベルのゆっくりしたおよび延長された上昇を生じる（Vajanaphanichら，Nature 371:711(1994)、これは参考として本明細書に援用される）。Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMとBt₂-Ins(1,4,5,6 )P₄/AMとの混合物でのT₈₄細胞の処理は、タプシガルギンによって誘導される細胞内カルシウムの濃度の上昇に応じて塩化物イオン分泌を阻害したが、Bt₂-Ins( 1,4,5,6)P₄/AMは効果がなかった。本明細書に例示されるように、エナンチオマー的に純粋なBt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMは、細胞内カルシウムの濃度の上昇に応じて塩化物イオン分泌を阻害した（実施例Ｉを参照のこと）。したがって、Ins(3, 4,5,6)P₄は、塩化物イオン分泌をカルシウムイオン濃度と切り離すので、カルシウム媒介塩化物イオン分泌の内因性のネガティブ調節である。 Ins(3,4,5,6)P₄によって媒介されるものとは異なるカルシウム媒介塩化物イオン分泌を阻害するための他のメカニズムは、PtdInsP₃のレベルを上昇させることによる。EGFは、T₈₄細胞においてカルバコールおよびタプシガルギンによって誘導されるカルシウム媒介塩化物イオン分泌を阻害する（Uribeら，Am ．J．Physio l. 271:C914(l996a)）。EGFは、Ins(3,4,5,6)P₄の20倍までの上昇の引き金になるカルバコールと比較して、Ins(3,4,5,6)P₄レベルの1.7倍上昇の引き金になる。これらの結果は、EGFが、Ins(3,4,5,6)P₄とは異なるメカニズムによるカルシウム媒介塩化物イオン分泌を調節することを示唆する。 EGFは、ホスファチジルイノシトール3-キナーゼ（PI 3-キナーゼ）を活性化し、そしてカルシウム媒介塩化物イオン分泌におけるEGFの効果は、PI 3-キナーゼによって媒介される（Uribeら，J ．Biol．Chem. 271:26588(1996b)）。EGFは、P I 3-キナーゼ産物である、ホスファチジルイノシトール3,4-ビスホスフェート（ P tdInsP₂）およびPtdInsP₃のレベルの上昇を刺激した。これらのPI 3-キナーゼ産物は、塩化物イオン分泌のEGF阻害に類似する時間経過とともに増加した。非常に特異的なPI 3-キナーゼインヒビターであるウォルトマンニンは、PtdInsP₃およびPtdInsP₂の形成をブロックし、そして塩化物イオン分泌のEGF誘導阻害を逆転した。したがって、PtdInsP₃に関連するメカニズムは、カルシウム媒介塩化物イオン分泌のEGF誘導阻害の原因であった。本発明の化合物は、塩化物イオン分泌を調節するイノシトールポリホスフェートのアゴニストおよびアンタゴニストであるので、これらの化合物は、細胞中で塩化物イオン分泌を変化させるために有用である。化合物の細胞浸透性は、化合物を細胞に接触させることによって、イノシトールポリホスフェートの作用部位である細胞質への化合物の送達を可能にする。本発明は、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストと細胞を接触させることによって、細胞膜を横切る塩化物イオン分泌を増強する方法を提供する。１つの実施態様では、Ins(3,4,5,6)P₄アンタゴニストを使用して塩化物イオン分泌を増強する。本明細書に開示されるように、Ins(3,4,5,6)P₄誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄アンタゴニストとして使用され得る。他の実施態様では、Pt dInsP₃アンタゴニストを使用して塩化物イオン分泌を増強する。本明細書に開示されるように、Ins(1,4,5,6)P₄誘導体は、PtdInsP₃アンタゴニストとして使用され得る。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストと細胞を接触させることによって、細胞膜を横切る塩化物イオン分泌を減少させる方法を提供する。１つの実施態様では、Ins(3,4,5,6)P₄アゴニストを使用して、塩化物イオン分泌を減少させる。本明細書で開始されるように、Ins(3,4,5,6)P₄誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄アゴニストとして使用され得る。さらに、Ins(1,3,4)P₃誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄アゴニストとして使用され得る。他の実施態様では、Pt dInsP₃アゴニストを使用して塩化物イオン分泌を減少させる。本明細書に開示されるように、PtdInsP₃誘導体は、PtdInsP₃アゴニストとして使用され得る。本発明は、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃のアンタゴニストを個体に投与することによって、個体における塩化物イオン分泌を増強する方法を提供する。本明細書で使用する場合、用語「個体」とは、塩化物イオン分泌を増強または減少する本発明のアゴニストまたはアンタゴニスト化合物で処理されるべき生物、一般的に哺乳動物、特にヒトをいう。塩化物イオン分泌増強または減少は、個体において１つ以上の組織器官を含む細胞で生じる。本明細書で使用する場合、用語「投与する」または「投与」とは、アンタゴニストまたはアゴニストが、標的細胞と接触され得、それによって細胞の塩化物イオン分泌を変化させる、１つまたは複数の適切な標的組織に送達されるような方法および形態で、アンタゴニストまたはアゴニストを個体に導入することをいう。本発明はさらに、Ins(3,4,5,6) P₄もしくはPtdInsP₃または両方を徴候または症状を示す個体に投与することによって、嚢胞性線維症に関連する徴候または症状を軽減する方法を提供する。本発明はまた、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃のアゴニストを個体に投与することによって、個体における塩化物イオン分泌を減少させる方法を提供する。さらに、本発明は、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃を徴候または症状を示す個体に投与することによって、分泌性下痢に関連する徴候または症状を軽減する方法を提供する。アンタゴニストまたはアゴニストは、一般的に、薬学的組成物として個体に投与される。このような薬学的組成物は、アンタゴニストまたはアゴニストおよび薬学的に受容可能なビヒクルを含む。薬学的に受容可能なビヒクルは当該技術分野で周知であり、そして生理学的緩衝化生理食塩水のような水性溶液、あるいはグリコール、グリセロール、オリーブ油のような油、または注射可能な有機エステルのような他の溶媒もしくはビヒクルが含まれる。薬学的に受容可能なビヒクルは、例えば、アンタゴニストまたはアゴニストを安定化するまたは薬剤の吸収を増加させるために作用する、生理学的に受容可能な化合物を含み得る。このような生理学的に受容可能な化合物としては、例えば、グルコース、スクロース、またはデキストランのような炭水化物、アスコルビン酸またはグルタチオンのような抗酸化剤、キレート剤、低分子量タンパク質、あるいは他の安定化剤もしくは賦形剤が挙げられる。当業者は、生理学的に受容可能な化合物を含む薬学的に受容可能なビヒクルの選択が、例えば、本発明のアンタゴニストまたはアゴニストの投与経路および１つまたは複数の標的組織に依存することを知っている。いくつかの投与経路は、処置されるべき個体および１つまたは複数の標的組織に依存して使用され得る。薬学的組成物は、種々の経路によって投与され得、例えば、経口投与、直腸投与、あるいは静脈内、筋肉内、皮下、眼窩内、嚢内、腹腔内、槽内、または、例えば、皮膚パッチもしくは経皮イオン電気導入法を使用する皮膚を介する受動または容易にされた吸収による非経口投与を含む。さらに、組成物は、注射、挿管、または局所的に投与され得、その後者は、例えば、軟膏もしくは粉末の直接塗布によって受動的であり、あるいは鼻スプレーもしくは吸入を使用して能動的であり得る。合計の有効用量は、ボーラスとしてまたは比較的短時間の潅流によるいずれかで単回用量として被験体に投与され得るか、あるいは、複数回用量がより長期間にわたって投与される分画された処置プロトコルを使用して、投与され得る。被験体における有効用量を得るために必要な薬剤の濃度が、被験体の年齢および一般的健康ならびに投与経路および投与されるべき処置の数を含む多くの因子に依存することは、当業者には公知である。これらの因子について、当業者は有効用量を得るように特定の用量を調節する。特定の化合物の投与量は、例えば、塩化物イオン分泌を増強または減少させる、所望の効果を達成するために必要とされる細胞内濃度によって決定される。有効な細胞内濃度は、本明細書に開示されるような方法または当該技術分野で公知の他の方法を使用して決定され得る。例えば、アゴニストBt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/A Mの有効な細胞内濃度を、インビトロIns(1,3,4)P₃-5/6-キナーゼアッセイを使用して、約４μMであると決定した（Vajanaphanichら，前出，1994）。したがって、Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMについて、投与量は、約４〜20μM、好ましくは４μM の細胞内誘導体濃度を提供するように選択される。最初の研究は、特定の化合物の有効性を決定するためにモデルシステムで行われる。個体における病理状態を処置するために必要な有効濃度は、第Ｉ相および第II相臨床試験で決定される。本発明の化合物は、単独で、または互いの、もしくは異常な塩化物イオン分泌と関連する病理状態を処置するための他の治療薬剤との組み合わせで使用され得る。例えば、処置プロトコルは１つの化合物で開始され得、そして、第１の化合物による軽減が不十分である場合、必要ならば、追加の化合物が第１の化合物とともに投与され得る。処置はまた、ウリジン5'-三リン酸＋アミロリドの投与のような、処置の他の態様と組み合わせられ得る（Bennettら，Am ．J．Respir．Cr it．Care Med. 153:1796(1996)を参照のこと、これは参考として本明細書に援用される）。本発明の組成物および方法は、異常な塩化物イオン分泌によって部分的に特徴づけられる、嚢胞性線維症または分泌性下痢のような、種々の病理を処置するために有用である。不完全な塩化物イオン分泌は、嚢胞性線維症膜貫通レギュレーター（CFTR）である上皮細胞塩化物イオンチャンネルでの変異のため、嚢胞性線維症を生じる。上皮細胞の頂端表面に関連する塩化物イオンチャンネルは、塩および体液分泌を調節する主要な制御点である。嚢胞性線維症のほとんどの場合は、アミノ酸508位でアミノ酸フェニルアラニンの喪失を生じるΔF508変異として公知の単一点変異の結果である。この変異は、細胞膜へのCFTRの移動を妨害し、それによって細胞による塩化物イオン分泌を減少させる。嚢胞性線維症の処置のための１つのアプローチは、他の塩化物イオンチャンネルを人工的に活性化することである。例えば、上皮細胞では、表面で修正する塩素チャンネル（ORCC）は、サイクリックAMPによって調節される塩化物イオンチャンネルである。しかし、ORCCはまた、CFTRによって調節されると考えられ、したがって、嚢胞性線維症であまり活性ではない（Schwiebertら，Cell 81:1063(1 995)；Eganら，Nature 358:581(1992)；およびGabrielら，Nature 363:263 1993 ）。逆に、カルシウム依存性塩化物イオンチャンネルは、嚢胞性線維症のマウスモデルの細胞でより豊富である（Grubbら，Am ．J．Physiol. 266: C1478(1994) ）。カルシウム依存性塩化物イオンチャンネルはCFTRとは異なり、そしておそらく嚢胞性線維症の患者の細胞でより豊富であるので、CFTRを介する流出の不足を補うためにこれらのチャンネルを介する流出を増大することが可能であるべきである。本明細書に開示されるように、Ins(3,4,5,6)P₄またはPtdInsP₃の１つ以上のアンタゴニストは、CFTRでの欠損によって冒された上皮細胞での塩化物イオン分泌を元に戻すために使用され得る。本発明のイノシトールポリホスフェート誘導体の塩化物イオン分泌を増強する能力を評価するために、いくつかのモデルシステムが有用である。１つのこのようなモデルは、ヒト結腸上皮T₈₄細胞株であり、これはモデル分泌上皮として広く研究されている（Dhaemsathaphornら，Am ．J．Physiol. 246:G204(1984)）。T₈₄ 細胞は、透過性支持体上でコンフルエンスになるまで増殖した場合、比較的分化した表現型を示し、タイトジャンクションおよび病因菌伝播性輸送を有する極性化単層を形成する。T₈₄単層は、遊離の細胞質カルシウムおよびCFTRでの変化に関連するものを含む多くのレセプター媒介塩化物イオン分泌メカニズムを保持する（Cohnら，Proc ．Natl．Acad．Sci．USA 89:2340(1992)）。ヒスタミン、カルバコール、カルシウムイオノホア、およびタプシガルギンのような薬剤は、細胞内カルシウムイオンを上昇させ、そしてT₈₄単層を横切る種々の程度の塩化物イオン分泌を刺激する（Dharmsathaphornら，J ．Clin．Invest. 84:945(1989)； Kachintornら，前出，1993）。サイクリックAMPはまた、T₈₄細胞においてCFTRを介する塩化物イオン分泌を刺激する（AndersonおよびWelsh，Proc ．Natl．Acad ．Sci．USA 88:6003(1991)）。したがって、T₈₄細胞は、嚢胞性線維症のような不完全な塩化物イオン輸送に関連する正常および病理状態での塩化物イオン分泌の調節のためのインビトロモデルを提供する。さらに、ウサギ結腸の上皮細胞はまた、結腸上皮細胞のモデルを提供する。嚢胞性線維症のより衰弱する症状のうちの３つは、慢性肺病、膵不全、および腸閉塞である。これらの症状の処置に対する本発明のイノシトールポリホスフェート誘導体の治療有効性を特徴づけるために、いくつかのモデルシステムが利用可能である。例えば、T₈₄細胞におけるCFTR遺伝子のノックアウト（CFTR^-T₈₄細胞）は、嚢胞性線維症患者の結腸細胞のものと類似の遺伝的背景を有する結腸上皮細胞についてのモデルを提供する（実施例Ｘを参照のこと）。CFTR^-T₈₄細胞株は、漸増する塩化物イオン分泌でIns(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃のアンタゴニストである、本発明の化合物の有効性を評価するために有用である。一次ヒト鼻上皮細胞は、塩化物イオン分泌における種々の化合物の効果を試験するための、呼吸上皮のモデルである。一次ヒト鼻上皮細胞は、これらの細胞での塩化物イオン分泌におけるIns(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃のアンタゴニストである、本発明の化合物の機能を試験するために有用である（実施例IXを参照のこと）。膵臓機能を研究するために適切なモデルシステムは、ΔF508変異にホモ接合性の患者の膵臓腺ガンに由来するヒト細胞株である、膵管上皮細胞CFTR^-細胞株のC FPACを使用する。CFPAC細胞は、cAMP刺激したチャンネル機能がないが、カルシウム活性化された塩化物イオンチャンネル活性を示す（Shoemacherら，Proc ．Na tl．Acad．Sci．USA 87:4012(1990)）。イヌ膵管上皮細胞もまた、これらの細胞における塩化物イオン分泌におけるIns(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃のアンタゴニストである、本発明の化合物の機能を試験するために有用である（Nguyenら，Am ．J．Physiol. 272:G172(1997)、これは参考として本明細書に援用される）。 Ins(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃アンタゴニストの活性を評価するために、嚢胞性線維症の動物モデルも利用可能である。例えば、嚢胞性線維症のモデルを提供するCFTRノックアウトマウスが生成されている（Rozmahelら，Nature Gen. 12:2 80(1996)；Snouwaertら，Science 257:1083(1992)；Ratiffら，Nature Gen. 4:3 5(1992)；O'Nealら，Hum ．Molec．Genet. 2:1561(1993)；およびDorinら，Natur e 359:211(1992)、これらのそれぞれは参考として本明細書に援用される）。カルシウム依存性塩化物イオンチャンネルの発現の上昇したレベルは、CFTRノックアウトマウスにおける改良された生存性に対応する（Clarkeら，Proc ．Natl．Ac ad．Sci．USA 91:479(1994)；およびRozmahelら，前出，1996）。動物モデルを使用して、これらの動物での塩化物イオン分泌におけるIns(3,4,5,6)P₄およびPt dInsP₃のアンタゴニストである、本発明の化合物の効率を試験する。動物モデルはまた、動物での特定の組織における本発明の化合物の有効性を試験するために有用である。嚢胞性線維症状はいくつかの器官系で起こるので、当業者は処置されるべき症状に基づいて、化合物の投与の特定の経路および方法を選択する。化合物は、幾分両親媒性であり、そして水溶液に可溶である。あるいは、化合物は、界面活性剤を含むジメチルスルホキシドに溶解され得る。化合物はまた、低い粘性の有利点のあるFREON（1,1,2トリクロロトリフルオロメタン）を含む溶液に溶解され得、さらに疾患の組織への接近を可能にし、したがって、急性炎症中または疾患の初期段階中の処置に有用である。例えば、呼吸病理にかかっている被験体では、本発明のアンタゴニストは、適切な薬学的に受容可能なキャリアに懸濁または溶解され、吸入噴霧器または鼻吸入器のような吸入デバイスを使用して肺に直接投与され得る。したがって、肺における粘液蓄積を軽減するために、化合物は標的肺組織にエアロゾル形態で直接的に投与され得る。あるいは、化合物は、FREONに溶解され得、そして肺潅流によって送達され得る。このような処置は、噴霧された水溶液の周期的呼吸によって維持され得る。粘液粘性のような嚢胞性線維症の臨床的発現は周知であり、そして、処置プロトコルが嚢胞性線維症のこれらの公知の呼吸徴候および症状を軽減または防止することに有効であるかどうかをどのように決定するかは、当業者にはわかる。例えば、(^99MTc)鉄酸化物粒子を使用する粘膜毛様体クリアランスの測定は、本発明の化合物での処置の有効性を決定するために使用され得る（Bennett，前出，1 996）。嚢胞性線維症の他の臨床的発現はまた、投与の適切な態様を使用して、Ins(3, 4,5,6)P₄またはPtdInsP₃のアンタゴニストで処置され得る。例えば、血脈洞（si nus）合併症（sinus complications）は、鼻スプレー中の薬学的組成物を投与することによって処置され得る。この処置は、嚢胞性線維症の患者における顔面変形を生じ得る複数の内視鏡手術をしばしば必要とする血脈洞合併症を処置するための現在の方法に有利である。嚢胞性線維症での腸障害の軽減については、薬剤は、適切な薬学的ビヒクル中の坐剤または浣腸によって投与され得る。あるいは、腸溶性コート錠剤は経口投与され得る。膵炎にかかっている患者では、薬学的組成物は、静脈内投与、経口投与、または膵臓を含む全身に化合物を分布する任意の他の方法によって投与され得る。嚢胞性線維症の他に、組織における体液蓄積に関連する他の病理状態は、塩化物イオン分泌を変化させることによる処置を受容する。例えば、脳腫脹のような、炎症、感染、または外傷に関連する腫脹は、塩化物イオン分泌を減少させることによって軽減され得る（Bergerら，Acta Neurochir ．Suppl．(Wien) 60:534(1 994)；およびStaubら，J ．Neurotrauma 11:679(1994)）。塩化物イオン分泌が異常に低い、嚢胞性線維症のような病理状態とは対照的に、他の病理状態は、一部は、異常に高レベルの塩化物イオン分泌によって特徴づけられる。例えば、高レベルの塩化物イオン分泌は、分泌性下痢で生じる。分泌性下痢を引き起こす侵襲性腸細菌であるSalmonellaは、発展途上国での子供の死亡のおよび先進国での健康問題の最も重要な原因の１つである。胃腸炎の13億より多くの症例および約３百万人の死亡が、Salmonella感染のため毎年起こる。分泌性下痢は、腸上皮を横切る塩化物イオン流出の上昇に関連するので、塩化物イオン分泌の減少は、分泌性下痢の症状を軽減し得る。当業者は、分泌性下痢の症状を軽減するためにイノシトールポリホスフェートのアゴニストで個体を処置する方法が、上記の方法と類似することを認識する。本発明は、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストまたはアンタゴニストと細胞を接触させることによって、細胞膜を横切る塩化物イオン分泌を変化させる組成物および方法を提供する。本発明はまた、イノシトールポリホスフェートのアゴニストまたはアンタゴニストを個体に投与することによって、個体における塩化物イオン分泌を変化させる方法を提供する。本発明はさらに、イノシトールポリホスフェートのアゴニストまたはアンタゴニストを含む薬学的組成物を投与することによって、異常な塩化物イオン分泌に関連する病理状態に関連する症状を軽減するための方法を提供する。したがって、本発明の組成物は、一部は、異常な塩化物イオン分泌によって特徴づけられる病理状態の徴候および症状を軽減するための医薬品として有用である。以下の実施例は、例証する目的であり、本発明を限定することを意図しない。実施例Ｉ T₈₄ 細胞におけるIns(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体によって減少したカルシウム媒介性塩化物イオン分泌この実施例は、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体が、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞内濃度を上昇させることによって結腸上皮T₈₄細胞株でカルシウム媒介性塩化物イオン分泌を減少させることを示す。エナンチオマー的に純粋な1,2-Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMを合成して、1,2-Bt₂-I ns(3,4,5,6)P₄/AMが、細胞内カルシウム濃度からの塩化物イオン分泌の切り離しを媒介するかどうかを決定した。T₈₄細胞（18〜48継代）を、既述のように維持した（Weymerら，J ．Clin．Invest. 76:1828(1985)、これは参考として本明細書に援用される）。SNAP-WELLS（Corning Coster; Cambridge，MA）上でのインキュベーションの７〜10日後、単層はタイトジャンクションを形成した。細胞単層を、100、200、または400μMのBt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMとともに、マウントの前に30分間プレインキュベートした。さらに30分後、0.1mMヒスタミンを添加し、そして塩化物イオン分泌をモニターした。塩化物イオン分泌を、コンフルエンスまで増殖したT₈₄単層を横切る短回路電流（I_sc）として測定し、そして電圧クランプを装着したUssingチャンバー（Physiologic Instrumetns; San Diego, CA ）にマウントした。データを獲得し、そして「Acquire and Analyze」ソフトウエア（Physiologic Instruments）を使用して分析した。ヒスタミン刺激塩化物イオン分泌の最大減少を、200μMの1,2-Bt₂-Ins(3,4,5, 6)P₄/AMで得たが、400μMではさらなる減少はなかった（表II）。この結果は、2 00μMの細胞内濃度と等価なほぼ４μMのIns(3,4,5,6)P₄の細胞内レベルが最大阻害の開始に対応することを示すこれまでの研究（Vajanaphanichら，前出，1994 ）と一致する。表II．細胞浸透性Ins(3,4,5,6)P₄誘導体による減少したカルシウム依存性塩化物イオン分泌表II Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体による塩化物イオン分泌の減少とは逆に、ジブチリルサイクリックAMPアセトキシメチルエステル刺激した塩化物イオン分泌の阻害は観察されなかった（ピークΔI_sc＝96.3±9.1％またはコントロール；平均±SEM；n＝4）。この結果は、サイクリックAMP媒介塩化物イオン分泌が、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌に関連するチャンネルとは異なる塩化物イオンチャンネルを介して起こるという観察（McRobertsら，J ．Biol．Chem. 260:1416 3(1985)）と一致する。これらの結果は、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体に細胞を曝露することによるIns(3,4,5,6)P₄の細胞内濃度を上昇させることが、細胞内カルシウム濃度から塩化物イオン分泌を切り離すことによってカルシウム媒介性塩化物イオン分泌を減少させること、および細胞浸透性Ins(3,4,5,6)P₄誘導体が、Ins(3,4,5,6)P₄ のアゴニストであることを示す。実施例II ウサギ結腸における細胞浸透性Ins(3,4,5,6)P₄誘導体による減少したカルシウム媒介性塩化物イオン分泌この実施例は、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体を使用してIns(3,4,5,6)P₄ の細胞内濃度を上昇させることが、ウサギ結腸組織において減少したカルシウム媒介性塩化物イオン分泌を引き起こすことを示す。培養においてT₈₄結腸上皮細胞を使用して上記を得た結果を、ウサギ結腸モデルシステムを使用して確認した（Frizzellら，J ．Membrane Biol. 27:297(1976) ；ならびにFrizzellおよびSchultz，Int ．Rev．Physiol. 19:205(1979)、これらのそれぞれは、参考として本明細書に援用される）。ウサギ結腸のセグメントを切り出し、そしてウサギ結腸上皮の供給源として使用した。簡単にいえば、ウサギ結腸のセグメントを、141mM Na⁺、５mM K⁺、1.2mM Ca²⁺、1.2mM Mg²⁺、122mM Cl^-、25mM HCO₃、1.6mM HPO₄、0.4mM H₂PO₄、および10mMグルコースを含むリンゲル溶液で洗浄した。37℃にて、この溶液を、５％CO₂および95％O₂で気体処理した場合pH7.4である。上皮を、基底筋肉層からはぎ取り、そして改変したSNAP WELLS中にマウントした（Frizzellら，前出，1976）。上皮を、37℃にて30分間、200μMの1,2-Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMとともにプレインキュベートし、そしてUssingチャンバーにマウントした。単回路電流、コンダクタンス、および抵抗を、実施例Ｉに記載のように４秒間隔で測定した。ピークI_scは、ビヒクルとインキュベートしたコントロールの50.9％±10.4であった（図２；平均±SEM 、n＝3；p＜0.05、スチューデントの２テイルt検定）。図２に示される％コントロールは、ヒスタミンで刺激したコントロール単層においてピークI_scを越える ΔI_scを示す。これらの結果は、細胞浸透性誘導体Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMが、Ins(3,4,5,6)P₄ の細胞内濃度を上昇させることによってIns(3,4,5,6)P₄のアゴニストとして作用し、そしてウサギ結腸における塩化物イオン分泌を減少させることを示す。これらの結果はまた、細胞内Ins(3,4,5,6)P₄の上昇が、結腸上皮組織中の細胞内カルシウム濃度から塩化物イオン分泌を切り離すことを確認する。実施例III Ins(3,4,5,6)P₄ アンタゴニストを使用するヒスタミン刺激した塩化物イオン分泌のIns(3,4,5,6)P₄阻害の逆転この実施例は、ヒスタミン刺激した塩化物イオン分泌におけるIns(3,4,5,6)P₄ の阻害効果が、Ins(3,4,5,6)P₄のアンタゴニストとして機能するIns(3,4,5,6)P₄ の細胞浸透性誘導体によって逆転され得ることを示す。実施例ＩおよびIIに示す結果は、Ins(3,4,5,6)P₄の漸増濃度が、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌を減少させることを示す。したがって、細胞中でIns(3,4, 5,6)P₄の機能を拮抗する化合物は、この減少を逆転すべきである。最初の研究は、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌における阻害効果に対して応答性であるIns(3,4,5,6)P₄の構造決定基を理解することに関した。一連の細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体を合成した。これらの誘導体は、１、２、または３位に１つまたは２つのいずれかの非加水分解性化学基を含んだ。 T₈₄単層を、200μMの2-Bt-1-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、Me₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、M e₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、または2-Bt-3-Me-Ins(1,4,5,6)P₄/AMとともに30分間プレインキュベートした。インキュベーション後、細胞をUssingチャンバーにおいてマウントした。カルシウム媒介塩化物イオン分泌を、ヒスタミン（10^-4M）で刺激した。コントロール値は、同時インキュベートした単層におけるヒスタミンに対する応答であった。データを、８〜10実験についての％コントロールとして表される、平均ピーク ΔI_sc±SEMとして示す。有意差を、スチューデントの２テイルt検定を使用して同定した。表IIIに示すように、阻害効果は、誘導体のいずれかで処理した細胞で生じなかった。これらの結果は、１および２位での水素結合ドナー電位が、カルシウム媒介塩化物イオン分泌に対するIns(3,4,5,6)P₄の阻害効果を媒介することに関与することを示す。細胞浸透性Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMのscyllo誘導体は、myo誘導体と少なくとも同じくらいの効果のインヒビターであり、2-ヒドロキシル位の方向性が阻害活性に関連がないことを示す。イノシトールポリホスフェート誘導体のいずれかが、カルシウム媒介塩化物イオン分泌のIns(3,4,5,6)P₄の阻害アンタゴニストとして機能するかどうかを決定するために、T₈₄細胞を、上記の細胞浸透性イノシトールポリホスフェートとともにプレインキュベートした。ヒスタミン刺激後、短回路電流を測定した。図３に示すように、Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMとのインキュベーションは、コントロール細胞に対してヒスタミン刺激した塩化物イオン分泌を減少させた。図３に示す％コントロールは、ヒスタミンで刺激したコントロール単層においてピークI_sc を越えるΔI_scを示す。しかし、2-Bt-1-Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AMとのプレインキュベーションは、Bt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMの阻害効果を逆転した。表III．Ins(3,4,5,6)P₄の誘導体による塩化物イオン分泌におけるIns(3,4,5,6)P₄ 媒介減少の逆転表III ヒスタミン刺激した塩化物イオン分泌に対する種々のイノシトールポリホスフェート誘導体の効果を表IIIに示す。Ins(3,4,5,6)P₄誘導体の、2-Btー1-Me-Ins(3,4 ,5,6)P₄/AMおよびMe₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMは、ヒスタミン刺激した塩化物イオン分泌に対するBt₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AMの阻害効果を逆転した。対照的に、Ins(1,4 ,5,6)P₄、Me₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、および2-Bt-3-Me-Ins(1,4,5,6)P₄/AMの誘導体は、本質的に効果がなかった。これらの結果は、塩化物イオン分泌に関するBt₂ -Ins(3,4,5,6)P₄/AM減少の逆転が、立体特異的であることを示し、そしてIns(3 ,4,5,6)P₄のこれらのアルキル誘導体が、Ins(3,4,5,6)P₄のアンタゴニストとして機能することを証明する。他の誘導体も試験した。Bt₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AMとのプレインキュベーションは、塩化物イオン分泌を阻害せず、そして実際に、塩化物イオン分泌においてわずかに上昇した。Ins(3,4,5,6)P₄誘導体の、D,L-1,2-Cl₂-ジデオキシ-Ins(3,4,5 ,6)P₄/AMは、塩化物イオン分泌に対するわずかな阻害効果があった。D,L-1-Bt-2 -Me-Ins(3,4,5,6)P₄/AMは、塩化物イオン分泌を阻害せず、そしてBt₂-Ins(1,4,5 ,6)P₄/AMの阻害を逆転しなかった。細胞内カルシウム濃度の上昇は、塩化物イオン分泌を増加させる。塩化物イオン分泌に対するイノシトールポリホスフェート誘導体のどの効果もカルシウムレベルの変化によるものではないことを確実にするために、細胞内カルシウムの濃度を、イノシトールポリホスフェート誘導体で処理した細胞で測定した。図４に示すように、Bt₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AMは、細胞内カルシウムまたはタプシガルジンに対するカルシウム応答を上昇しなかった。試験したどの化合物も、それ自体による細胞内カルシウムレベルあるいはカルバコールまたはタプシガルジンで刺激した細胞内カルシウムの改変されたレベルを変更しなかった。したがって、塩化物イオン分泌に対するイノシトールポリホスフェート誘導体の効果は、細胞内カルシウム濃度に対する何らかの効果のためではない。これらの結果は、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体が、1,2-Bt₂-Ins(3,4,5, 6)P₄/AMでの細胞の処理によるIns(3,4,5,6)P₄の上昇した細胞内濃度から得られるカルシウム媒介塩化物イオン分泌の減少を逆転し、それによってこれらの細胞からカルシウム媒介塩化物イオン分泌を増強することを証明する。対照的に、立体異性体のIns(1,4,5,6)P₄の誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄によって媒介される塩化物イオン分泌の阻害に影響を与えない。したがって、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体は、Ins(3,4,5,6)P₄アンタゴニストとして機能する。実施例IV Ins(3,4,5,6)P₄ アンタゴニストを使用する塩化物イオン分泌のカルバコール媒介減少の逆転この実施例は、塩化物イオン分泌におけるカルバコール媒介減少が、Ins(3,4, 5,6)P₄のアンタゴニストとして機能する細胞浸透性Ins(3,4,5,6)P₄誘導体によって逆転され得ることを示す。上記の実施例IIIにおいて、細胞内Ins(3,4,5,6)P₄を、Ins(3,4,5,6)P₄を産生するために内因性エステラーゼによって加水分解される細胞浸透性誘導体のBt₂- Ins(3,4,5,6)P₄/AMの添加によって増加した。この実施例では、細胞内Ins(3,4,5 ,6)P₄は、カルバコールでの細胞の延長した処理によって増加する。 T₈₄結腸上皮細胞を、D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、1-Bu- 2-Bt-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、Bu₂-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、3-Bt-2-Bu-Ins(1,4,5,6)P₄/ AM、Bu₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、1-Bt-2-Bu-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、または3-Bu-2-Bt- Ins(1,4,5,6)P₄/AMで処理し、そして短回路電流を測定した。１セットの細胞を、イノシトールポリホスフェート誘導体とともに30分間プレインキュベートした。他の２セットの細胞を、ビヒクル単独とプレインキュベートした。I_scの測定を０時で開始した。５分で、カルバコール（10^-4M）を、ビヒクル単独とプレインキュベートした１セットの細胞（図５では「カルバコール」と命名される）に、およびイノシトールポリホスフェート誘導体とプレインキュベートした細胞のセット（図5Aでは「カルバコール＋D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AM」と命名される）に添加した。30分で、１μMのタプシガルジンを添加した。データを、n＝４〜６実験について収集した。図5Aは、D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AMを使用する実験を示す。カルバコールの添加は、Ins(3,4,5,6)P₄誘導体とプレインキュベートした細胞で、およびカルバコール単独で処理した細胞での、短回路電流の一過性の増加を起こした。30分で、コントロールレベルまでのΔI_scの復帰後、１μMのタプシガルジンを添加して、増加した細胞内カルシウムを刺激した。ΔI_scにおける予測された増加を、タプシガルジン処理したコントロール細胞で観察したが、ΔI_s _c は、カルバコールでの延長した処理を受ける細胞で減弱された。D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AMでの前処理は、カルシウム媒介塩化物イオン分泌に対するカルバコールの阻害効果を逆転した。したがって、D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AMは、Ins(3,4,5,6)P₄のアンタゴニストとして機能する。図５に示すように、Ins(3,4,5,6)P₄誘導体である、D,L-1,2-シクロヘキシリデン-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、1-Bu-2-Bt-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、およびBu₂-Ins(3,4,5 ,6)P₄/AMは、タプシガルジンによって刺激された塩化物イオン分泌のカルバコール媒介された阻害を逆転し、これらのIns(3,4,5,6)P₄誘導体が、Ins(3,4,5,6)P₄ のアンタゴニストとして機能することを示した（それぞれ図5A〜5C）。対照的に、1-Bt-2-Bu-Ins(3,4,5,6)P₄/AM、ならびに3-Bt-2-Bu-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、2,3- Bu₂-Ins(1,4,5,6)P₄/AM、および3-Bu-2-Bt-Ins(1,4,5,6)P₄/AMは、タプシガルジンによって刺激された塩化物イオン分泌のカルシウム媒介阻害を逆転しなかった（それぞれ図5D〜5G）。これらの結果は、Ins(3,4,5,6)P₄の細胞浸透性誘導体が、カルシウム媒介塩化物イオン分泌に対するカルバコールでの延長された処理の阻害効果を逆転し、したがってIns(3,4,5,6)P₄のアンタゴニストとして機能することを証明する。実施例Ｖ細胞内Ins(1,3,4)P₃レベルの上昇はIns(3,4,5,6)P₄を増加させ、そしてカルシウム媒介される塩化物イオン分泌を減少させるこの実施例は、Ins(1,3,4)P₃の細胞浸透性誘導体での細胞の処理が、Ins(3,4, 5,6)P₄を増加させ、それによってカルシウム媒介塩化物イオン分泌を減少させることを示す。ほぼ30のイノシトールポリホスフェートが細胞において同定されている。Ins( 1,3,4,5)P₄は、5'イノシトールポリリン酸ホスファターゼによってIns(1,3,4)P₃ に変換される。インビトロアッセイ系で、Ins(1,3,4)P₃はイノシトール１キナーゼを阻害し、これはIns(3,4,5,6)P₄のIns(1,3,4,5,6)P₅への変換を触媒する（Ta nら，J ．Biol．Chem. 272:2285(1997)、これは参考として本明細書に援用される）。細胞浸透性誘導体のD,L-Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AMを合成した。結腸上皮T₈₄細胞を、Ussingチャンバーにマウントする前に400μMのD,L-Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AMとともに30分間プレインキュベートし、そしてΔI_scを測定した。10分に、カルバコール（10^-4M）を添加して、カルシウム媒介塩化物イオン分泌を一時的に刺激した。データは、８実験の平均であり、対になっていない両側のスチューデントのt検定でp＜0.04であった。 400μMのD,L-Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AMとの細胞のインキュベーションは、(³H)-イノシトールで標識した細胞で測定されたIns(3,4,5,6)P₄で３倍の増加を引き起こし、Ins(1,3,4)P₃がインビボでIns(3,4,5,6)P₄を増加させることを示した。ビヒクルとプレインキュベートしたコントロール細胞は、15.2±2.8のピークΔI_scを有した。D,L-Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AMとプレインキュベートした細胞は、7.9±1.6 のピークΔI_scを有した。したがって、カルシウム媒介塩化物イオン分泌は、細胞浸透性D,L-Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AM誘導体で細胞を処理することによって、約50 ％減少した。これらの結果は、細胞浸透性Ins(1,3,4)P₃誘導体が、減少したカルシウム媒介塩化物イオン分泌を生じるIns(3,4,5,6)P₄の細胞内濃度を上昇させ得、したがって、Ins(3,4,5,6)P₄のアゴニストとして機能することをする。実施例VI ヒト結腸上皮細胞のSalmonella侵襲はIns(1,4,5,6)P₄の細胞内濃度を増加させるこの実施例は、Salmonellaによるヒト結腸上皮細胞の侵襲が、細胞内Ins(1,4, 5,6)P₄の濃度を上昇させることを示す。侵襲性腸内細菌は、腸上皮に入りそして通過して、基底粘膜を横切って到達し、そして全身的感染を開始する。上皮細胞のSalmonella侵襲がイノシトールポリホスフェート代謝回転の増加を引き起こすことを示すこれまでの研究は、イノシトールポリホスフェートが細菌侵襲に対する上皮細胞の応答に役割を果たし得ることを示した（Ruschkowskiら，FEMS Microbiol ．Lett. 74:121(1992)）。細菌侵襲によって誘導されたイノシトールポリホスフェートの変化を特徴づけるために、結腸上皮細胞に対する侵襲する細菌の効果を評価した。６ウェルプレートにおいてコンフルエントな結腸上皮T₈₄細胞を、イノシトールを含まない50％ダルベッコ改変イーグル（DME）培地および５％透析ウシ新生児血清を補充した50％Ham's F12培地中で50μCi/ウェルの(³H)-イノシトールとともに、４日間インキュベートした。培養物を、予め温めた培地（50％DME、5 0％Ham's F12、および１mg/mlウシ血清アルブミン）で３回洗浄し、そして同じ培地中で５×10⁸細菌/ウェルで種々の時間にわたって感染させた。培養物を氷冷リン酸緩衝化生理食塩水（PBS）で２回洗浄し、そして10％トリクロロ酢酸および10mMフィチン酸中で氷上にて５分間溶解した。抽出物を、FREON/アラミンを使用して中和し、そしてAdsorbosphere SAXカラム上で分離してポリリン酸(³H)-イノシトールを分離した。放射活性ピークを、オンライン放射能検出器を装着した HPLCを使用して、既述のように定量した（Kachintornら，前出，1993）。HPLCで分離されないエナンチオマーを定量するために、(³H)-Ins(3,4,5,6)P₄およびIns (1,4,5,6)P₄に対応するピークを、HPLCによってすべての他の(³H)-InsP₄異性体から分離し、脱塩し、次いで部分精製したIns(1,4,5,6)P₄3-キナーゼと、既述のように(³²P)-標識したIns(1,4,5,6)P₄の内部標準とともにインキュベートした（ Vajanaphanichら，前出，1994）。形成された(³H)-および(³²P)-標識したIns(1, 3,4,5,6)P₅の相対量を比較することによって、元のピークにおける(³H)-Ins(3,4 ,5,6)P₄対(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄の比を決定した。 T₈₄細胞の単層を、(³H)-イノシトールで標識し、そしてSalmonella dublinで種々の時間感染させた。感染直後から60分間の間、myo-イノシトールヘキサキスホスフェート（InsP₆）またはホスホリパーゼＣが活性化される場合に代表的に蓄積するIns(1,4,5)P₃のような他のイノシトールポリホスフェートのレベルの顕著な変化がなかった。対照的に、分離されないエナンチオマー(³H)-Ins(3,4,5,6 )P₄および(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄のレベルは、S．dublinでの感染後10分以内に増加した。このピークの約85％が(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄に対応した。コントロールの非感染細胞よりも最大14倍の増加は、感染後30〜40分に到達した（表IVを参照のこと）。(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄のレベルは40分後にゆっくりと減少し、そして感染後３時間までにほぼベースラインに戻った（表IVを参照のこと）。類似の観察が、別のヒト腸上皮細胞株LS174Tを使用して行われた。(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄ は、S．dublin感染後11.3倍に上昇したことが見られ、感染後の細胞イノシトールポリホスフェートの変化が、上皮細胞の一般的応答を表すことを示した。別の侵襲性Salmonella株、Salmonella typhi BRD691でのT₈₄細胞の感染はまた、(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄レベルを増加させた(表IVを参照のこと)。対照的に、上皮細胞へ正常に付着するが、侵襲しないS.dublinの変異株、SB133は、(³H)-Ins(1, 4,5,6)P₄レベルを最小限でのみ増加させ、このことはSalmonellaによる宿主細胞の侵襲がこの応答を必要とすることを示した。しかし、細菌侵襲単独では、Ins( 1,4,5,6)P₄レベルを増加させるには十分ではなかった。なぜならT₈₄細胞の感染はいくつかの他の侵襲性グラム陰性菌（Shigella flexneri、Shigella dysenter iae、Yersinia enterocolitlca、および腸侵襲性Escherichia coli(血清型 O29: NM)を含む）は、(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄レベルの小さな増加を生じたからである。さらに、腸内出血性E.coli(血清型 O157)のような非侵襲性グラム陰性菌、または非病原性E.coli(DH5α)のT₈₄単層への添加は、(³H)-Ins(1,4,5,6)P₄レベルにほとんど影響しなかった。10μg/mlの細菌性リポポリ多糖(LPS)の添加は、(³H)- Ins(1,4,5,6)P₄レベルに全く影響しなかった。表IV．上皮細胞のSalmonella感染後のIns(1,4,5,6)P₄レベルの増加これらの結果は、結腸上皮細胞のSalmonellaによる侵襲が、Ins(1,4,5,6)P₄の細胞内濃度を増加させることを示す。増加した塩化物イオン分泌は、分泌性下痢、Salmonella感染の病理的徴候を生じ、このことはIns(1,4,5,6)P₄濃度との関連性を示唆する。実施例VII Ins(1,4,5,6)P₄ は塩化物イオン分泌のEGF誘導阻害を逆転する本実施例は、細胞を細胞侵入性Ins(3,4,5,6)P₄誘導体とインキュベートすることによるIns(1,4,5,6)P₄の細胞内濃度の増加が、上皮成長因子(EGF)によって誘導される塩化物イオン分泌の阻害を逆転することを示す。上記実施例IIIおよびIVにおいて、Ins(1,4,5,6)P₄誘導体は、塩化物イオン分泌におけるIns(3,4,5,6)P₄媒介性減少に全く影響しなかった。Ins(1,4,5,6)P₄が塩化物イオン分泌の阻害を誘導するEGFに影響されるか否かを試験するために、T₈₄ 細胞単層を、Bt₂Ins(1,4,5,6)P₄/AMと30分間プレインキュベーションした。Δ I_scの測定を開始し（実施例Iを参照のこと）、そして、測定の５分後、16.3nM E GFを細胞の側底表面に添加した。さらなる15分間のインキュベーション後、100 μM カルバコールを添加して、急速に細胞内カルシウム濃度を上昇させた。コントロールもまた、カルバコールで刺激したが、EGFで前処理しなかった。データは、代表的な実験（全てで３回の実験）からの２連の測定の平均である。図６および図７（パネルａおよびｂ）に示されるように、EGFは、カルバコール刺激塩化物イオン分泌を阻害した。内因性細胞性エステラーゼによって加水分解されてIns(1,4,5,6)P₄となる、細胞浸透性誘導体であるBt₂Ins(1,4,5,6)P₄/AM とのプレインキュベーションは、有意にEGF誘導される塩化物イオン分泌の阻害を逆転した。対照的に、EGFの阻害機能は、Ins(1,3,4,5,6)P₅の細胞浸透性誘導体の添加によって減弱されなかった（図７、パネルＣ）。Ins(1,4,5,6)P₄の鏡像異性体である細胞浸透性Ins(3,4,5,6)P₄誘導体の添加もまた、塩化物イオン分泌に対するEGF阻害機能を減弱しなかった。Bt₂Ins(1,4,5,6)P₄/AMの添加は、サイクリックAMP媒介性塩化物イオン分泌のEGF阻害を逆転せず、そのことはIns(1,4, 5,6)P₄の作用が、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌に特異的であることを示した。これらの結果は、細胞浸透性誘導体として細胞へ送達されるIns(1,4,5,6)P₄の増加したレベルが、塩化物イオン分泌の逆転されたEGF媒介性阻害によってカルシウム媒介性塩化物イオンの分泌が増強されることを示す。実施例VIIIIns(1,4,5,6)P₄ は、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌におけるPtdInsP₃減少を逆転する本実施例は、PtdInsP₃の誘導体が、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌を減少させることを示す。細胞浸透性Ins(1,4,5,6)P₄誘導体は、塩化物イオン分泌におけるPtdInsP₃媒介性減少を逆転する。 T₈₄細胞単層を、PtdInsP₃/AMで30分間プレインキュベートし、そしてΔI_scを測定した。図８に見られるように、漸増濃度のPtdInsP₃/AMは、カルバコール刺激塩化物イオン分泌を阻害し、このことは、Ins(3,4,5,6,)P₄とは別のイノシトールリン酸もまた、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌を阻害することを示した。 PI3-キナーゼ産物PtdInsP₃のさらなる細胞浸透性誘導体を合成し、そして塩化物イオン分泌に対する影響について試験した。細胞を、ジC₁₆-Bt-PtdInsP₃/AMまたはジC₈-Bt-PtdInsP₃/AMとプレインキュベーションし、そしてΔI_scを実施例VI Iに記載のように測定した。図７に見られるようにT₈₄細胞のジC₁₆-Bt-PtdInsP₃/AMでの前処理は（図７ｄ）、74％までカルシウムイオン媒介性塩化物イオン分泌を阻害した。同様に、ジ C₈-Bt-PtdInsP₃/AMは、79％まで塩化物イオン分泌を阻害した。細胞を、細胞に侵入することが期待されないPtdInsP₃で前処理した場合、カルシウム媒介塩化物イオン分泌の阻害は観察されなかった。これらのPtdInsP₃の細胞浸透性誘導体は、カルバコール刺激後のカルシウムレベルに影響しなかった。PtdInsP₃のこれらの誘導体で観察されたレベルの減少を、細胞のEGF処理によって観察された減少と匹敵した。さらに、細胞浸透性PtdInsP₃誘導体でプレインキュベーションされた単層へのEGFの添加は、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌のさらなる阻害を生じず、このことはPtdInsP₃およびEGFが同じ機構を介して作用することを示した。 T₈₄細胞をまた、細胞浸透性Ins(1,4,5,6)P₄誘導体でプレインキュベートして、Ins(1,4,5,6)P₄が、塩化物イオン分泌においてPtdInsP₃媒介性減少を逆転し得るか否かを決定する。図７ｄに見られるように、T₈₄単層の膜透過性Ins(1,4,5,6 )P₄誘導体とのプレインキュベーションは、塩化物イオン分泌のPtdInsP₃媒介減少を部分的に逆転した。これらの結果は、PtdInsP₃が、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌を減少させることを示す。さらに、Ins(1,4,5,6)P₄は、カルシウム媒介性塩化物イオン分泌におけるPtdInsP₃減少を逆転する。実施例IX ヒト鼻上皮における塩化物イオン輸送本実施例は、呼吸器上皮における塩化物イオン分泌を変化させる化合物の有効性を試験するためのモデルとして有用な初代ヒト鼻上皮細胞系を提供する。初代ヒト鼻上皮を、生検によって入手する。単層における生体電気測定およびカルシウム測定について、初代ヒト鼻上皮細胞を、Ｏリングで固定された多孔性 Transwell Colｌフィルター(孔径、0.4μM; Costar)上にプレーティングし、そして播種後５〜７日間（最大の上皮貫通潜在的分化の発生と同時に生じる時間）研究する。細胞を、インシュリン(10μg/ml)、トランスフェリン(５μg/ml)、内皮細胞成長補填剤(3.75μg/ml)、ヒドロコルチゾン(５nM)、内皮細胞成長補填剤 (3.75μg/ml)、トリヨードチロニン、(30nM)、および１mM CaCl₂を補充された無血清Ham F12培地において維持する。ヒト鼻上皮単層を、プレーティングの５〜７日後、小型Ussingチャンバーにおいて取り付ける。上皮貫通潜在的分化を、Voltage-Clamp/Pulse Generator(Physiologic Instru ments，San Diego，California)によってモニターし、そして生体電気を２つのチャネルレコーダーで記録する。単層を、ナトリウムを含まないリンゲル液に曝露して、その天然のナトリウム吸収段階から塩化物イオン分泌段階への変化の測定である上皮貫通塩化物イオン耐性における変化を計算する。細胞内カルシウム測定のために、単層を、Fura-2でロードし、そして微量蛍光測定器に連結した顕微鏡の対物レンズの上へマウントする。蛍光強度比を、30〜40細胞の場からか、または単一の細胞からのいずれかで収集する。細胞内カルシウムレベルに対する ΔIscは、各調製において正規化する。結果が真の単層からの応答を反映していることを保証するために、単層をルーチン的に固定し、交差切片セグメントを試験する。初代ヒト鼻上皮細胞は、実施例III、IV、VII、およびVIIIにおいて記載されたようにIns(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃のアンタゴニストでの処置に有用である。初代鼻上皮における塩化物イオン分泌の増強に有効な化合物は、肺不全のような嚢胞性繊維症の徴候を緩和するための良い候補である。実施例Ｘ CFTR^-T₈₄ 細胞の作製本実施例は、嚢胞性繊維症のモデルとして有用なCFTR^-T₈₄細胞を調整するための方法を提供する。 Ins(3,4,5,6)P₄誘導体をスクリーニングするため、そして最終的にCFTRが、塩化物イオン分泌のIns(3,4,5,6)P₄媒介阻害に関与するエレメントの発現を調節するか否かを決定するために、CFTR^-T₈₄細胞を作製する。 T₈₄細胞におけるCFTR遺伝子（単数または複数）を、元来マウス胚幹細胞(ES細胞)において遺伝子ノックアウト変異を作製するために開発された二重選択アプローチ（Mansourら、Nature 336:348(1988)(これは本明細書中に参考として援用される)）を用いて不活性化する。変異誘発CFTR標的遺伝子導入構築物を、pSSC- 9ベクター中に作製する（ChauhanおよびGottesman，Gene 120:281(1992)(これは本明細書中に参考として援用される)）。このベクターは、hsv-tk遺伝子の両側に隣接するチミジンキナーゼプロモーターによって駆動されるネオマイシン耐性遺伝子を有する。さらに、pSSC-9は標的遺伝子導入セグメントを挿入するために使用され得る遺伝子の両側に都合の良いクローニング部位を有し、そして線状形態における変異カセットを切り出すために使用され得る２つのSfil制限部位を有する。G418の耐性によるネオマイシン遺伝子の発現のための選択は、安定にトランスフェクトされたクローンのスクリーニングを可能にする。次いで、シクロビルを用いた、hsv-tk発現に対する選択は、構築物が標的化部位内への相同性組換えを介して組み込まれたクローンを拡大する(Mansourら、前出、1988)。CFTR遺伝子の8.5kbフラグメント（エキソン21を含むTE 2611E8.5）を、CFTR遺伝子配列 (Rommensら，Science 245:1059(1989);およびRommensら，Am.J.Hum.Genet. 45:9 32(1989)(これらのそれぞれは本明細書中に参考として援用される)の供給源として使用する。あるいは、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を使用して、T₈₄細胞由来の適切な配列を直接クローン化し得る。CFTR遺伝子セグメントを増幅するためのいくつかのPCRプライマーが記載されている(Zielinskiら，Genomics 10:214(1991) （これは、本明細書中に参考として援用される）。少なくとも２〜４kb長のフラグメントを、相同性組換えのための充分な配列相同性を保証するために増幅するべきである。PCRプライマーは、pSSC-9クローニング部位と互換性の制限部位伸長を有する。変異構築物を、DNAトランスフェクション法（例えば、リン酸カルシウムまたはエレクトロポレーションに基づくプロトコール(Molecular Biology ，A Labora tory Manual ，第２版，Sambrookら,編，Cold Spring Harbor Laboratory Press, Plainview，NY(1989)（これは本明細書中に参考として援用される）を用いてT₈ ₄ 細胞へトランスフェクトする。安定なトランスフェクト体を、G418を用いて選択し、拡大し、そしてシクロビルを用いた第２回目の選択に供する。おそらくCF TR遺伝子座へのベクターの相同性組換えによって誘導された耐性クローンを、漸増量のG418を用いて、さらなる回の選択に供する。ES細胞を用いてマウスにおいて二重ノックアウト変異体の作製を容易にするために開発されたこのアプローチもまた、細胞株におけるホモ接合変異体の選択のために適用し得る(Chenら，Pro c.Natl.Acad.Sci ．USA 90:4528(1993)およびMortenson，Hypertension 22:646(1 993)（これらのそれぞれは、本明細書中に参考として援用される）。選択されたクローンを、サザンブロットおよびPCR分析によって分析して、neoカセットがCF TR遺伝子（単数または複数）に挿入されたことを確認する。「二重構築法」は、２つの異なる変異構築物を用いて標的遺伝子の変異を連続的に行うことにおいて交換可能に使用され得る(Mortenson，上述、1993; Feldha usら，EMBO J. 12:2763(1993)、ならびにPorterおよびItzhaki，Eur.J.Biochem. 218:273(1993)(これらのそれぞれは、本明細書中に参考として援用される))。これらの構築物は、neo遺伝子またはgpt遺伝子カセットを有し、それによって、連続的なトランスフェクション、ならびにG418を用いたneo遺伝子の選択およびキサンチンに加えてミコフェノール酸を用いたgpt遺伝子の選択を可能にする。T₈₄ 細胞の二重ノックアウトCFTR変異体を使用して、Ins(3,4,5,6)P₄およびPtdIns P₃アンタゴニストの効力を評価する。これらの結果は、嚢胞性繊維症のモデルとして使用され得るT₈₄細胞のCFTR^-変異体の作製を示す。これらの細胞は、嚢胞性繊維症の患者の上皮細胞に見出される細胞と同じ遺伝的背景を提供する。CFTR^-T₈₄細胞において塩化物イオン分泌を有効に増強するIns(3,4,5,6)P₄およびPtdInsP₃のアンタゴニストは、嚢胞性繊維症患者における塩化物イオン分泌を増強するための良い候補である。実施例11 細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体の調製この実施例は細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体の合成を記述する。いくつかの細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体の合成反応は以前に記述されている(Roemerら、前出、1996; およびRoemerら、前出、1995)。さらなるイノシトールポリホスフェート誘導体の合成反応を以下に記述する。図９は、細胞浸透性PtdInsP₃およびdiC₁₆-Bt-PtdInsP₃/AMの構造を示す。図10は、PtdInsP₃/AM誘導体の合成スキームを示す。図11は、1,2-シクロヘキシリデンI ns(3,4,5,6)P₄//AMの合成スキームを示す。図12は、myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェート、および2,5,6-Bt₃-Ins(1,3,4)P₃/AMの構造を示す。化合物のD 配置のみを示す。図13は、細胞浸透性イノシトールポリホスフェート誘導体の合成スキームを示す。図13において、以下の条件が用いられた：(i)Bt₂O、DMAP、ピリジン;(ii)TFA、CH₃CN/H₂O;(iii)a、Bu₂SnO、トルエン、還流、b、BnBr、CsF 、DMF;(iv)Bt₂O、DMAP、ピリジン;v Pd/C(10％)、AcOH;(vi)a、(BnO)₂PNiPr₂、テトラゾール、CH₃CN、b、AcOOOH、-40℃;(vii)Pd/C(10％)、AcOH;および(viii) AMBr、DIEA、CH₃CN。全ての化学試薬は入手可能な限りで最高純度のものを用いた。必要な場合には、溶媒は使用前に乾燥および／または蒸留した。アセトニトリルは、ジメチルホルムアミド(DMF)でするように、酸化リン(V)から蒸留し、そして3Åのモレキュラーシーブと共に保存した。ピリジンおよびトルエンは4Åのモレキュラーシーブと共に保存した。エチル-ジイソプロピルアミン(DIEA)はナトリウム線で乾燥した。パラジウム炭素(10％)およびトリフルオロ酢酸は、Acros Chemieから入手した。ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(phosphoramidite)、過酢酸(32％ v/w)、テトラゾール、水素化ナトリウム、およびアセトキシメチルブロミドは、Aldrich(Milwaukee、Wisconsin)から入手した。無水酪酸、DIEA、およびトリス(トリフェニルホスフィン)-ロジウム(I)-クロリドは、Merckから入手した。臭化ベンジル、臭化アリル、ヨウ化ブチル、フッ化セシウム、および4- ジメチルアミノピリジン(DMAP)は、Flukaから入手した。イオン交換樹脂Dowex 5 0 WX 8(H⁺-型)は、Serva(Heidelberg Germany)から入手した。その他の試薬は高速液体クロマトグラフィー(HPLC)は、LDC/Milton Roy UVモニターD(254nm) またはKnaur屈折率検出器と共に、LDC/Milton Roy Consta Metric IIIポンプを用いて行われた。分析カラムは、RP 18材料(Merck、LiChrosorb:10μm)を充填したMerck Hibar鋼管(250mm x 4mm)であった。分取HPLCは、分取LDCU V IIIモニター(254nm)またはKnaur屈折率検出器と、RP 18材料(Merck、LiChrospher 100、10 μm)を充填したMerck Prepbarスチールカラム(25°mm x 50mm)と共に、Shimadzu LC 8Aポンプを用いて行われた。溶離液はメタノール-水混合物であり；組成はメタノール(MeOH)％で与えられる。 ¹H-NMRおよび³¹P-NMRスペクトルは、Brucker AM 360 AM分光計で記録された。化学シフトは、¹H-NMRスペクトルについてはテトラメチルシランに対するppmで測定され、³¹P-NMRスペクトルについては85％H₃PO₄の外部標準を用いて測定された。J値は、Hzで与えられた。質量スペクトルは、高速原子衝撃(FAB)イオン化によるFinnigan Mat 8222質量分析器を使用して記録した。高分解能質量は、質量が10％よりも大きく異ならない公知の化合物と比較することで決定された。融点 er 1231旋光計を用いて、10cmセル中のナトリウムD-線について測定された。パラジウム/炭触媒の限外濾過は、再生セルロースからのフィルター(Sartorius、S M 116 04)を使用して、Sartorius濾過装置SM 162 01を用いて行った(Sartorius Edgewood、New York)。元素分析は、Mikroanalytisches(Labor Beller、Gotting en、Germany)によって行った。 D-1,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-myo-イノシトール(ent-9)およびD-3,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-myo-イノシトール(9)は、以前記述されたように合成した(Roem erら、前出、1996)。化合物、rac-1,2-ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトールは、AngyalおよびTateの方法によって合成した(AngyalおよびTate、J. Chem ．Soc. 1965:6949(1965))。これは、本明細書中で参考として援用する。ホスホリル化の一般的手順。アルゴン下、選択的に保護されたmyo-イノシトール誘導体およびテトラゾールを乾燥アセトニトリルに溶解し、それからジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイトを加えた。室温で指示した時間の間撹拌した後、反応混合物を-40℃まで冷却し、そして過酢酸(32％ v/w; ホスホルアミダイトの各モル当量に対して１モル当量)を加えた。混合物が室温まで到達した後、溶媒を減圧下で除去し、そして油状残渣を分取HPLCによって精製して所望のイノシトールテトラキスホスフェート誘導体を得た。水素化分解によるベンジル基の除去の一般的手順。全保護されたmyo-イノシトールテトラキスホスフェートまたはテトラベンジル-イノシトールを、それぞれ、水素雰囲気下、自己構築(self-built)水素化分解装置において、指示した時間の間、酢酸中でパラジウム炭素(10％；ベンジル基の各モルに対して0.1モルのパラジウム)と共に激しく撹拌した。触媒を限外濾過により除去して、そして濾液を凍結乾燥することにより、それぞれの生成物を得た。アセトキシメチルエステルの導入の一般的手順。完全に乾燥したイノシトールテトラキスホスフェート誘導体(遊離酸)を、アルゴン下、乾燥アセトニトリルに懸濁し、それから乾燥DIEA(ヒドロキシ基の各モルに対して2.25モルのDIEA)およびアセトキシメチルブロミド(DIEAの各モル当量に対して1モル当量)を加えた。暗所で室温で４日間混合物を撹拌した後、全揮発性成分を減圧下でエバポレートし、そして粗残渣を特定の溶媒を用いて分取HPLCにより精製して、シロップとして、イノシトールテトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルを得た。 D-3,4,5,6- テトラ-Oベンジル-1-O-ブチル-myo-イノシトール(10)。乾燥9(250m g、463μmol)および乾燥酸化ジブチルスズ(116mg、167μmol)を、活性化モレキュラーシーブ(3Å)を入れたソックスレー装置中18時間、乾燥トルエン(100ml)中で加熱還流した。反応混合物を室温まで冷却し、減圧下で乾固するまでエバポレートした。油状残渣にCsF(140mg、926μmol)を加え、そして混合物を2時間高真空下に保った。残渣のシロップを、アルゴン下乾燥DMF(10ml)に溶解し、ヨウ化1 -ブチル(300μl、2.62mmol)を加えた。溶液を48時間撹拌した後、HPLC分析(90％メタノール；1.5ml/分；t_R=7.43分)では、それ以上の反応は見られなかった。過剰のヨウ化1-ブチルおよびDMFを高真空で除去した。粗生成物を分取HPLC(93％メタノール；40ml/分；t_R=22.30分)によるクロマトグラフィーを行い、化合物10を固体として得た(175mg、74％)。Mp: 75.4°-75.9℃(メタノールより)。[α]²⁴ _D: +8.4°(CHCl₃中 c=0.98)。 D-1,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-3-O-ブチル-myo-イノシトール(ent-10)。ジオールent-9での同様な反応および後処理から化合物ent-10を得た。[α]²⁴ _D-8.7° (CHCl₃中 c=1.01)。スペクトルデータは、エナンチオマー10について得られたものと一致していた。 D-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-1-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール(1 1) 。10(178mg、298μmol)、無水酪酸(210μl、596μmol)、およびDMAP(38mg、30 μmol)の乾燥ピリジン(3ml)溶液を、18時間室温で撹拌した。溶媒を高真空下でエバポレートして油状物を得た。残留ピリジンは、3回オクタンと共にエバポレートすることにより除去した。残渣を、tert-ブチルメチルエーテル(10ml)に溶解し、そしてリン酸緩衝液(10ml)で１回、炭酸水素ナトリウム(10ml)で１回、硫酸水素ナトリウム(10ml)で１回、リン酸緩衝液(10ml)でもう１回、次いでブライン(10ml)で１回洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、そして濾過した。溶媒をエバポレートして純粋な11を油状物として得た(194mg、98%)、[α]²⁴ _D: -10.4°(CHC l₃中 c-1.97)。 D-1,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-3-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール(e nt-11) 。化合物ent-10を、他のエナンチオマーについて上記されたようにブチリル化することにより、化合物ent-11を得た。[α]²⁴ _D: +10.7°(CHCl₃中 c-2.0 5)。スペクトルデータは、エナンチオマー11について得られたものと一致していた。 D-1-O- ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール(12)。化合物11(178mg、267μm ol)を、一般的手順において記述したように、水素下パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体としてテトロール12を得た(81mg、99%)。[α]²⁴ _D: +2 6.5°(MeOH中 c=2.0)。元素分析() C:計算値、54.89; 実測値54 45; H: 計算値、8.55、実測値8.56。 D-3-O- ブチル-2-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール(ent-12)。全保護された化合物ent-11での類似の反応および後処理からテトロールent-12を得た。 [α]²⁴ _D: -26.6°(MeOH中 c=0.76)。スペクトルデータは、エナンチオマー12について得られたものと一致していた。 D-1-O- ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(20) 。テトロール12(63mg、206μmol)およびテトラゾール(174mg、2.47mmol )のアセトニトリル(2ml)溶液を、18時間ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(834μl、2.47mmol)と処理し、過酢酸で酸化し、そして記述したように後処理した。分取HPLC(93% MeOH; 40ml/分; t_R=26.45分)で精製して、化合物20を油状物として得た(165mg、60％)。[α]²⁴ _D: -4.9°(CHCl₃中 c=1.08)。 D-3-O- ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(ent-20) 。テトロールent-12を、化合物20について上記されたようにホスファイト化および酸化することにより、全保護されたホスフェートen t-20 を得た。[α]²⁴ _D: +4.8°(CHCl₃中 c=2.09)。スペクトルデータは、エナンチオマー20について得られたものと一致していた。D-1-O- ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート (21) 。化合物20(160mg、118μmol)を、一般的手順において記述したように、パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体として表題化合物21を得た(7 3mg、99%)。[α]²⁴ _D: 4.1°(H₂O中、pH=1.6で c=1.04)。 D-3-O- ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェート (ent-21) 。全保護された基質ent-20での類似の反応から、凍結乾燥後、遊離酸en t-21 を得た [α]²⁴ _D: =4.1°(H₂O中、pH=1.6で c=0.78)。スペクトルデータは、エナンチオマー21について得られたものと一致していた。D-1-O- ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート(5) 。化合物21 (17mg、27μmol)を1MのKOH(260μl)と処理して、pH値を12.8に調整した。溶液を室温で2日間撹拌した。精製するために、反応混合物を直接イオン交換カラム(Do wex 50 WX 8、Ht)に注いだ。凍結乾燥により、化合物5を得た(14mg、94％)-[α]²⁴ _D :+4.9°(H₂O中、pH=1.6で c=0.53)。 D-3-O- ブチル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェート(ent-5)。上記の方法と同様にして、基質ent-21のブチリル基を加水分解し、テトラキスホスフェートent-5を得た-[α]²⁴ _D: +4.6°(H₂O中、pH=1.6で c=0.35)。スペクトルデータは、エナンチオマー5について得られたものと一致していた。D-1-O- ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(1) 。DIEA(131μl、768μmol)およびアセトキシメチルブロミド(77μl、768μmol)を、アセトニトリル(2ml)中の化合物21 (30mg、47μmol)の懸濁液に、一般的手順において記述されたように加えた。分取HPLC(73% MeOH、37.5ml/分、t_R=19.30)により精製して、化合物1をシロップとして得た(31mg、55%)。-[α]²⁴ _D: +2.0°(トルエン中 c=1.00)。 D-3-O- ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(ent-1) 。上記のように、ホスフェートe nt-21 をアルキル化し、オクタキス(アセトキシメチル)エステルent-1を得た。[ α]²⁴ _D: +1.9°(トルエン中 c=1.46)。スペクトルデータは、エナンチオマー1について得られたものと一致していた。D-1-O- アリル-3,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-myo-イノシトール(13) 。乾燥9(690mg 、1.28mmol)および乾燥酸化ジブチルスズ(324mg、1.3mmol)を、活性化モレキュラーシーブ(3Å)を入れたソックスレー装置中20時間、乾燥トルエン(150ml)中で加熱還流した。反応混合物を室温まで冷却し、減圧下で乾固するまでエバポレートした。油状残渣にCsF(388mg、2.56mol)を加え、そして混合物を2時間高真空下に保った。残渣のシロップを、アルゴン下乾燥DMF(10ml)に溶解し、ヨウ化1-アリル(329μl、3.58mmol)を加えた。溶液を20時間撹拌した後、HPLC分析(95％MeO H；1.5ml/分；t_R=3.20分)では、それ以上の反応は見られなかった。過剰のヨウ化1-アリルおよびDMFを高真空で除去した。粗生成物を分取HPLC(90％MeOH；40ml /分；t_R=26.15分)によるクロマトグラフィーを行い、化合物13を固体として得た (448mg、60％)。Mp: 71-72℃(メタノールより)。-[α]²⁴ _D: +4.6°(CHCl₃中 c=0 .98)。 D-3-O- アリル-1,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-myo-イノシトール(ent-13)。ジオールent-9での同様な反応および後処理から化合物ent-13を得た。-[α]²⁴ _D: +3.9 °(CHCl₃中 c=0.82)。スペクトルデータは、エナンチオマー13について得られたものと一致していた。D-1-O- アリル-3,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-2-O-ブチル-myo-イノシトール(14) 。暗所にて室温で、水素化ナトリウム(46mg、1.92mmol)を、13(445mg、767μmol) の乾燥DMF(5ml)撹拌溶液に加えた。混合物を5時間撹拌し、その後ヨウ化1-ブチル(306μl、2.68mmol)を加えた。懸濁液を80℃で18時間撹拌し、その後HPLC(95% MeOH; 1.5ml/分; t_R=7.35)は生成物を示した。過剰のヨウ化1-ブチルおよびDMF を減圧下でエバポレートした。次いで、混合物をtert-ブチルメチルエーテル(40 ml)に溶解し、そしてリン酸緩衝液(20ml)で１回、水性ジチオン酸ナトリウム(20 ml)およびブライン(20ml)で連続して洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、濾過し、そしてエーテルをエバポレートして油状物を得た。粗油状物を、分取HPLC(93 ％MeOH；40ml/分；t_R=37.10分)により精製して、表題化合物14を油状物として得た(458mg、94%)。-[α]²⁴ _D: +1.5°(CHCl₃中 c=2.29)。 D-3-O- アリル-1,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-2-O-ブチル-myo-イノシトール(ent-1 4) 。化合物ent-13での同様な反応および後処理から化合物ent-14を得た。[α]²⁴ _D : -1.6°(CHCl₃中 c=1.87)。スペクトルデータは、エナンチオマー14について得られたものと一致していた。D-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2-O-ブチル-myo-イノシトール(15) 。トリス(トリフェニルホスフィン)-ロジウム(I)クロリド(140mg、150pmol)およびDIEA(25μl 、140μmol)を、14(458mg、720μmol)の50％エタノール(90ml)懸濁液に加え、それから懸濁液を7時間加熱還流した。反応混合物を室温まで冷却し、それからトリフルオロ酢酸(7ml)を加え、溶液をさらに24時間撹拌し、その後HPLC(90% MeOH ; 1.5ml/分；t_R=4.03分)は出発物質を示さなかった。2Nの水性NH₄OHで中和した後、エタノールを減圧下でエバポレートしてシロップを得た。シロップをtert- ブチルメチルエーテル(40ml)に溶解し、そしてリン酸緩衝液(20ml)およびブライン(20ml)で１回連続して洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、濾過し、そしてエーテルをエバポレートして油状物を得た。粗油状物を、分取HPLC(92％MeOH；40ml/ 分；t_R-27.40分)により精製して、15を固体として得た(275mg、74%)。-[α]²⁴ _D: +24.6°(CHCl₃中 c=0.97)。 C: 計算値、76.48; 実測値 76.52; H: 計算値、7.43、実測値 7.40。D-1,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2-O-ブチル-myo-イノシトール(ent-15) 。ジオールent-15での同様な反応および後処理から化合物ent-15を得た。 [α]²⁴ _D: +24 .9°(CHCl₃中 c=1.00)。スペクトルデータは、エナンチオマー15ついて得られたものと一致していた。D-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2-O-ブチル-1-O-ブチリルmyo-イノシトール(16) 。アルコール15(178mg、298μmol)の乾燥ピリジン(4ml)溶液を、無水酪酸(158μ l、447μmol)およびDMAP(38mg、29μmol)で処理し、そして室温で撹拌した。HPL C分析(90% MeOH; 1.5ml/分；t_R=6.40分)でもはや出発物質が見られなかった時点 (18時間)で、反応混合物を減圧下でエバポレートして粗油状物を得た。残留ピリジンを除去するために、３回、油状物をオクタンに溶解してエバポレートした。残渣を、tert-ブチルメチルエーテル(20ml)に溶解し、そしてリン酸緩衝液(10ml )で１回、炭酸水素ナトリウム(10ml)で１回、硫酸水素ナトリウム(10ml)で１回、リン酸緩衝液(10ml)でもう１回、次いでブライン(10ml)で洗った。有機層をNa₂ SO₄で乾燥し、そして濾過した。溶媒をエバポレートして純粋な16を油状物として得た(176mg、89%)。-[α]²⁴ _D: -15.4°(CHCl₃中 c=1.00)。 D-1,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-3-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール(ent -16) 。化合物ent-15を、他のエナンチオマーについて上記されたようにブチリル化することにより、化合物ent-16を得た。-[α]²⁴ _D: +15.9°(CHCl₃中 c=1.10) 。スペクトルデータは、エナンチオマー16について得られたものと一致していた。D-2-O- ブチル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール(17) 。化合物16(170mg、255μmol )を、一般的手順において記述したように、水素下、パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体としてテトロール17を得た(75mg、97%)。[α]²⁴ _D: +4 1.9°(MeOH中 c=1.10)。C: 計算値、54.89; 実測値 54.90; H: 計算値、8.55、実測値 8.51。D-2-O- ブチル-3-O-ブチリル-myo-イノシトール(ent-17) 。全保護された化合物en t-16 での類似の反応および後処理からテトロールent-17を得た。-[α]²⁴ _D: -40. 5°(MeOH中 c=1.00)。スペクトルデータは、エナンチオマー17について得られたものと一致していた。D-2-O- ブチル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキス(ジベンジル) ホスフェート(22) 。化合物17(55mg、178μmol)およびテトラゾール(152mg、2.15 mmol)のアセトニトリル(2ml)溶液を、22時間ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(726μl、2.15mmol)と処理し、過酢酸で酸化し、そして記述したように後処理した。分取HPLC(92% MeOH; 40ml/分; t_R=29.00分)で精製して、化合物22を油状物として得た(192mg、80％)。-[α]²⁴ _D: -3.4°(CHCl₃中 c=1.02) 。 D-2-O- ブチル-3-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキス(ジベンジル) ホスフェート(ent-22) 。化合物22について上記されたように化合物ent-12をホスファイト化および酸化して、全保護されたホスフェートent-22を得た。[α]²⁴ _D: +3.1°(CHCl₃中 c=1.10)。スペクトルデータは、エナンチオマー22について得られたものと一致していた。D-2-O- ブチル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート (23) 。化合物22(190mg、141μmol)を、一般的手順において記述したように、パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体として表題化合物23を得た(8 7mg、99%)。-[α]²⁴ _D: +9.9°(H₂O中、pH=1.6で c=1.10) D-2-O- ブチル-3-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェート (ent-23) 。全保護された基質ent-23を用いた同様な反応により、凍結乾燥後、遊離酸ent-23を得た。[α]²⁴ _D: -9.7°(H₂O中、pH=1.6で c=1.00)。スペクトルデータは、エナンチオマー23について得られたものと一致していた。D-2-O- ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート(6) 。化合物23 (33mg、52μmol)を1MのKOH(453μl)と処理して、pH値を12.8に調整した。溶液を室温で2日間撹拌した。精製するために、反応混合物を直接イオン交換カラム(Do wex 50 WX 8、H⁺)に注いだ。凍結乾燥により、化合物6を得た(27mg、93％)。--[ α]²⁴ _D:-1.1°(H₂O中、pH=1.6で c=0.89)。 D-2-O- ブチル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェート(ent-6)。上記の方法と同様にして、基質ent-23のブチリル基を加水分解し、テトラキスホスフェートent-6を得た。-[α]²⁴ _D: +1.6°(H₂O中、pH=1.6で c=0.60)。スペクトルデータは、エナンチオマー6について得られたものと一致していた。D-2-O- ブチル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(2) 。DIEA(182μl、1.06mmol)およびアセトキシメチルブロミド(107μl、1.06mmol)を、アセトニトリル(2ml)中の化合物23(37mg、59μmol)懸濁液に、一般的手順において記述されたように加えた。分取HPLC(72% MeOH、40ml/分、t_R=21.12)により精製して、化合物2をシロップとして得た(33mg、46%)。[α]²⁴ _D+1.1°(トルエン中 c=1.07)。 D-2-O- ブチル-3-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(ent-2) 。上記のように、ホスフェートe nt-23 をアルキル化し、オクタキス(アセトキシメチル)エステルent-2を得た。[ α]²⁴ _D: 1.3°(トルエン中 c=0.60)。スペクトルデータは、エナンチオマー2について得られたものと一致していた。D-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-1,2-ジ-O-ブチル-myo-イノシトール(18) 。暗所で室温で、水素化ナトリウム(13mg、522μmol)を、9(94mg、174μmol)の乾燥DMF(3 ml)溶液に撹拌しながら加えた。混合物を5時間撹拌し、その後ヨウ化1-ブチル(1 20μl、1.04mmol)を加えた。HPLC(95% MeOH; 1.5ml/分; t_R=7.26)で生成物を確認した後、懸濁液を80℃で36時間撹拌した。過剰のヨウ化1-ブチルおよびDMFを減圧下でエバポレートした。次いで、混合物をtert-ブチルメチルエーテル(30ml )に溶解し、そしてリン酸緩衝液(10ml)で１回、水性ジチオン酸ナトリウム(10ml )およびブライン(10ml)で連続して洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、濾過し、そしてエーテルをエバポレートして油状物を得た。粗油状物を、分取HPLC(95％M eOH、40ml/分；t_R=27.24分)により精製して、表題化合物18を油状物として得た( 100mg、88%)。[α]²⁴ _D: +1.3°(CHCl₃中 c=1.00)。¹H NMR (C₄₂H₅₃O₆の計算値 653.384)D-1,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2,3-ジ-O-ブチル-myo-イノシトール(ent-18) 。化合物ent-9での同様な反応および後処理から化合物ent-18を得た。[α]²⁴ _D: 1.2 °(CHCl₃中 c=2.20)。スペクトルデータは、エナンチオマー18について得られたものと一致していた。D-1,2- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール(19) 。化合物18(100mg、153μmol)を、一般的手順において記述したように、水素下、パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体としてテトロール19を得た(40mg、92%)。(エタノールより) [ α]²⁴ _D: +18.7°(MeOH中 c=0.80)。 D-2,3- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール(ent-19)。全保護された化合物ent-18での同様な反応および後処理からテトロールent-19を得た。[α]²⁴ _D: -18.9°(MeOH 中 c=1.36)。スペクトルデータは、エナンチオマー19について得られたものと一致していた。D-1,2- ジ-Oブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(24) 。化合物19(40mg、137μmol)およびテトラゾール(115mg、1.64mmol)のアセトニトリル(2ml)溶液を、18時間ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(552μl、1.64mmol)で処理し、過酢酸で酸化し、そして記述したように後処理した。分取HPLC(93% MeOH; 40ml/分; t_R=26.05分)で精製して、化合物24 を油状物として得た(133mg、73％)。[α]²⁴ _D: -2.3°(CHCl₃中 c-1.00)。¹H NMR (CDCl₃、360MHZ): D-2,3- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(ent-24) 。化合物ent-19を、化合物24について上記されたようなホスファイト化および酸化することにより、全保護されたホスフェートent-24を得た。[α]²⁴ _D : +2.5°(CHCl₃中 c=1.15)。スペクトルデータは、エナンチオマー24について得られたものと一致していた。D-1,2- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート(7) 。化合物24(134mg、100μmol)を、一般的手順において記述したように、パラジウム( 10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体として表題化合物7を得た(52mg、87%) 。(H₂O中、pH=1.6で c=1.10)。 D-2,3- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェート(ent-7) 。全保護された基質ent-24での同様な反応から、凍結乾燥後、遊離酸ent-7を得た。(H₂O中、pH=1.6で c=1.00)。スペクトルデータは、エナンチオマー7について得られたものと一致していた。D-1,2- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(3) 。DIEA(187μl、1.00mmol)およびアセトキシメチルブロミド(111μl、1.00mmol)を、化合物7(34mg、55μmol)のアセトニトリル(2ml)懸濁液に、一般的手順において記述されたように加えた。分取HPLC(73% MeOH、40ml/分、t_R=20.40)により精製して、化合物3をシロップとして得た(42mg 、65%)。[α]²⁴ _D: -2.3°(トルエン中 c=1.03)。¹H NMR([D]₈トルエン、360MHZ) : D-2,3- ジ-O-ブチル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(ent-3) 。上記のように、ホスフェートent-7をアルキル化し、オクタキス(アセトキシメチル)エステルent-3を得た。[α]²⁴ _D: +2 .5°(トルエン中 c=1.10)。スペクトルデータは、エナンチオマー3について得られたものと一致していた。rac-1,2- ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(rac-26) 。化合物rac-25(130mg、500μmol)およびテトラゾール(350mg、5.00mmol)のアセトニトリル(6ml)溶液を、26時間ジベンジルN,Nジイソプロピルホスホルアミダイト(1.68ml、5.00mmol)で処理し、過酢酸で酸化し、そして記述したように後処理した。分取HPLC(93% MeOH; 40ml/分; t_R=22.35分 )で精製して、化合物rac-26を油状物として得た(306mg、47％)。 rac-1,2- ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート(rac-8)エチル-ジイソプロピルアミノ塩。rac-26(91mg、70μmol)を乾燥エタノール(4ml)に溶解し、それから乾燥エチル-ジイソプロピルアミン(95μl、 560μmol)を加え、続いてパラジウム(10％)炭素(84mg、840μmol)を加えた。この溶液を水素雰囲気下、室温で6日間撹拌した後、触媒を限外濾過によって除去し、そして炉液を凍結乾燥して表題化合物rac-8を得た(108mg、96％)。 rac-1,2- ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(rac-4) 。DIEA(205μl、1.20mmol )およびアセトキシメチルブロミド(120μl、1.20mmol)を、化合物rac-8(108mg、 66μmol)のアセトニトリル(2ml)懸濁液に、一般的手順において記述されたように加えた。分取HPLC(68% MeOH、40ml/分、t_R=19.35)により精製して、化合物rac -4 をシロップとして得た(50mg、65%)。¹H NMR([D]₈トルエン、360MHZ): rac-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2-デオキシ-2-ヨード-1-O-(4-メトキシベンジル)-myo-イノシトール(rac-56) 。乾燥rac-55(rac-3,4,5,6-テトラ-O-ベンジル-1 -O-(4-メトキシベンジル)-myo-イノシトール)(1.32g、2mmol)、トリフェニルホスフィン(2.15g、8.2mmol)、イミダゾール(549mg、8.2mmol)、およびヨウ素(1.5 2g、6mmol)の混合物を、乾燥トルエン(100ml)中41時間還流下で撹拌した。反応混合物を室温まで冷却し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液(100ml)を加え、そして混合物を10分間撹拌した。ヨウ素を少量ずつ加えた。トルエン相からヨウ素による着色が消えなくなってから、さらに15分間撹拌した。過剰のヨウ素を、亜ジチオン酸ナトリウム水溶液を加えることによって除去した。有機相と水相とを分液漏斗によって分離し、そして有機層をブラインで(２回)洗った。トルエン相を Na₂SO₄で乾燥し、濾過した。混合物をエバポレートし、そして再結晶して純粋なrac-56 を得た(1.01g、73％)。Mp.: 131.5℃-132.4℃(メタノールより)。 rac-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2-デオキシ-1-O-(4-メトキシベンジル)-myo-イノシトール(rac-57) 。化合物rac-56を乾燥トルエン(150ml)に溶解し、そしてAIB N(63mg、355μmmol)およびn-Bu₃SnH(1.63ml、6.3mmol)を加えた。溶液を、アルゴン雰囲気下2時間加熱した。反応混合物を冷却し、リン酸緩衝液(30ml)で１回、そしてブライン(30ml)で１回洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、濾過した。混合物をエバポレートし、そして再結晶して57を得た(692mg、76％)。Mp.: 76.2℃ -76.8℃(メタノールより)。 rac-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-2-デオキシ-myo-イノシトール(58)。化合物rac -57 (600mg、931μmmol)のCH₂Cl₂(10ml)溶液(少量の水(5％)を含む)に、DDQ(367m g、1.62mmol)を加えた。懸濁液を室温で28分間撹拌した後、HPLC分析(90％MeOH ；1.5ml/分；t_R=4.27分)で、反応の完了を確認した。反応混合物を減圧下でエバポレートし、そして分取HPLC(90％MeOH、40ml/分；20.00分)により精製してra c-58 を固体として得た(232mg、48％)。Mp.: 126.7℃(メタノールより)。 rac-3,4,5,6- テトラ-O-ベンジル-1-O-ブチリル-2-デオキシ-myo-イノシトール(r ac-59) 。rac-58(186mg、355μmol)、無水酪酸(70μl、426μmol)、およびDMAP(1 2mg、10μmol)の乾燥ピリジン(5ml)溶液を、18時間室温で撹拌した。溶媒を高真空下でエバポレートして油状物を得た。残留ピリジンは、3回オクタンと共にエバポレートすることにより除去した。残渣を、tert-ブチルメチルエーテル(30ml )に溶解し、そしてリン酸緩衝液(20ml)で１回、炭酸水素ナトリウム(20ml)で１回、硫酸水素ナトリウム(20ml)で１回、リン酸緩衝液(20ml)でもう１回、次いでブライン(20ml)で洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、そして濾過した。溶媒をエバポレートして純粋なrac-59を固体として得た(196mg、94%)。Mp.: 110.1℃-110 .3℃(メタノールより)。 rac-1-O- ブチリル-2-デオキシ-myo-イノシトール(rac-60)。化合物rac-59(177mg 、297μmol)を、一般的手順において記述したように、水素下、パラジウム(10％ )炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体としてテトロールrac-60を得た(68mg、98%) 。Mp.: 174.9℃-175.9℃(エタノールより)。 rac-1-O- ブチリル-2-デオキシ-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(rac-61) 。テトロールrac-60(44mg、190μmol)およびテトラゾール(160mg、2.28mmol)のアセトニトリル(2ml)溶液を、36時間ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(767μl、2.28mmol)で処理し、過酢酸で酸化し、そして記述したように後処理した。分取HPLC(92% MeOH; 40ml/分; t_R=21.55分 )で精製して、化合物rac-61を油状物として得た(172mg、71％)。 rac-1-O- ブチリル-2-デオキシ-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート(rac-62) 。化合物rac-61(165mg、130μmol)を、一般的手順において記述したように、パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体として表題化合物rac-62 を得た(65mg、90%)。 rac-1-O- ブチリル-2-デオキシ-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステル(rac-51) 。DIEA(201μl、1.19mmol)およびアセトキシメチルブロミド(119μl、1.19mmol)を、化合物rac-62(37mg、66 μmol)のアセトニトリル(2ml)懸濁液に、一般的手順において記述されたように加えた。分取HPLC(69% MeOH、40.00ml/分、t_R=12.10)により精製して、化合物ra c-51 をシロップとして得た(31mg、50%)。¹H NMR([D]₈トルエン、360MHZ): rac-2- デオキシ-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェート(rac-53)。化合物62を1MのKOH(260μl)と処理して、pH値を12.8に調製した。溶液を室温で2 日間撹拌した。精製するために、反応混合物を直接イオン交換カラム(Dowex 50 WX 8、H⁺)に注いだ。凍結乾燥により、化合物rac-53を得た。 rac-1-O- ベンジル-6-O-ブチリル-2,3-4,5-ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール(rac-100) 。rac-1-O-ベンジル-2,3-4,5-ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール(200mg、465μmol)、無水酪酸(144μl、571μmol)、およびDMAP(6mg 、50μmol)の乾燥ピリジン(3ml)溶液を、36時間室温で撹拌した。溶媒を高真空下でエバポレートして油状物を得た。残留ピリジンは、3回オクタンと共にエバポレートすることにより除去した。残渣を、tert-ブチルメチルエーテル(40ml) に溶解し、そしてリン酸緩衝液(20ml)で１回、炭酸水素ナトリウム(20ml)で１回、硫酸水素ナトリウム(20ml)で１回、リン酸緩衝液(20ml)でもう１回、次いでブライン(20ml)で１回洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、そして濾過した。溶媒をエバポレートして純粋なrac-100を油状物として得た(186mg、80%)。 rac-1-O- ベンジル-6-O-ブチリル-myo-イノシトール(rac-101)。rac-100(186mg、 372μmol)のCH₃CN/H₂O(100:1、8ml)溶液を、トリフルオロ酢酸(4ml)と共に、室温で2時間撹拌した。溶媒を、高真空でエバポレートして表題化合物rac-101を油状物として得た(125mg、98%)。 rac-1-O- ベンジル-6-O-ブチリル-myo-イノシトール2,3,4,5-テトラキス(ジベンジル)ホスフェート(rac-102) 。化合物rac-101(145mg、426μmol)およびテトラゾール(358mg、5.11mmol)のアセトニトリル(3ml)溶液を、22時間ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(1.72ml、5.11mmol)と処理し、過酢酸で酸化し、そして記述したように後処理した。分取HPLC(94% MeOH; 40ml/分; t_R=22.40分 )で精製して、化合物rac-102を油状物として得た(297mg、50％)。 rac-6-O- ブチリル-myo-イノシトール2,3,4,5-テトラキスホスフェート(rac-103) 。化合物rac-102(290mg、210μmol)を、一般的手順において記述したように、パラジウム(10％)炭素で水素化し、凍結乾燥後、固体として表題化合物rac-103を得た(119mg、99%)。¹H NMR rac-1-O-[1,2- ジパルミトイル-sn-グリセロール]-6-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステル(rac-104) 。DIEA(190μl、1.12mmol)およびアセトキシメチルブロミド(126μl、1.26mmol) を、化合物rac-103(40mg、70μmol)の乾燥アセトニトリル(1.5ml)懸濁液に加えた。暗所で室温で3時間撹拌した後、1,2- ジパルミトイル-sn-グリセロール(20mg、35 μmol)を加え、そして溶液を暗所で4℃で4日間撹拌した。溶媒を高真空下でエバポレートし、そして粗残渣をトルエンで抽出し、表題化合物rac-104をシロップとして得た。rac-1-O-[1,2- ジオクタノイル-sn-グリセロール]-6-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステル(rac-105) 。DIEA(136μl、800μmol)およびアセトキシメチルブロミド(90μl、900μmol) を、化合物rac-103(28mg、50μmol)の乾燥アセトニトリル(1.5ml)懸濁液に加えた。暗所で室温で3時間撹拌した後、1,2- ジパルミトイル-sn-グリセロール(23mg 、70μmol)を加え、そして溶液を暗所で4℃で4日間撹拌した。溶媒を高真空下でエバポレートし、そして粗残渣をトルエンで抽出し、表題化合物rac-105をシロップとして得た。材料 - 全ての化学試薬は入手可能な最高純度のものを用いた。必要な場合には、溶媒は使用前に乾燥および／または蒸留した。アセトニトリルは、ジメチルホルムアミド(DMF)でするように、酸化リン(V)から蒸留し、そして3Åのモレキュラーシーブと共に保存した。ピリジンおよびトルエンは4Åのモレキュラーシーブと共に保存した。エチル-ジイソプロピルアミン(DIEA)はナトリウム線で乾燥した。パラジウム炭素(10％)およびトリフルオロ酢酸は、Acros Chemieから入手した。ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト、過酢酸(32％ v/w)、テトラゾール、およびアセトキシメチルブロミドは、Aldrichから入手した。無水酪酸、DIEAは、Merckから入手した。臭化ベンジル、フッ化セシウム、および4 -ジメチルアミノピリジン(DMAP)は、Flukaから入手した。その他の試薬は全てRi myo-イノシトール(1)は、以前述べられているように、myo-イノシトールから３工程で合成された(Angyalら、J ．Chem．Soc. 4116(1961); JiangおよびBaker Ca rbohydr ．Chem ．5:615(1986))。これらはそれぞれ本明細書中で参考として援用される。全ての化合物はラセミ体である。3,4- ジ-O-ベンジル-5,6-ジ-O-ブチリル-1,2-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール(152) 。151(130mg、295μmol)、無水酪酸(193μl、1.18mmol)、およびDMAP( 40mg、33μmol)の乾燥ピリジン(2ml)溶液を、2日間室温で撹拌した。溶媒を高真空下でエバポレートして油状物を得た。残留ピリジンは、3回オクタンと共にエバポレートすることにより除去した。残渣を、tert-ブチルメチルエーテル(10ml )に溶解し、そしてリン酸緩衝液(10ml)で１回、炭酸水素ナトリウム(10ml)で１回、硫酸水素ナトリウム(10ml)で１回、リン酸緩衝液(10ml)でもう１回、次いでブライン(10ml)で１回洗った。有機層をNa₂SO₄で乾燥し、そして濾過した。溶媒をエバポレートして純粋な152を油状物として得た(171mg、98%)。¹H NMR(M + H)⁺(C₃₄H₄₅O₈の計算値 581.311)。3,4- ジ-O-ベンジル-5,6-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール(153) 。152(166mg、28 6μmol)のCH₃CN/H₂O(100:1、5ml)溶液を、トリフルオロ酢酸(2ml)と共に、室温で2時間撹拌した。反応混合物を減圧下でエバポレートし、そして生成物をtert- ブチルメチルエーテルで抽出した。有機層をブラインで洗い、Na₂SO₄で乾燥し、濾過し、そしてエバポレートして153を油状物として得た(140mg、99%)。 539.207(M + H)⁺(C₃₄H₄₅O₈Kの計算値 581.311)。1,3,4- トリ-O-ベンジル-5,6-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール(154) 。乾燥153(1 43mg、286μmol)および乾燥酸化ジブチルスズ(71mg、300μmol)を、活性化モレキュラーシーブ(3Å)を入れたソックスレー装置中4時間、乾燥トルエン(100ml) 中で加熱還流した。反応混合物を室温まで冷却し、減圧下で乾固するまでエバポレートした。油状残渣にCsF(92mg、572μmol)を加え、そして混合物を2時間高真空下に保った。残渣のシロップを、アルゴン下乾燥DMF(5ml)に溶解し、臭化ベンジル(270μl、2.28mmol)を加えた。溶液を18時間撹拌した後、HPLC(RP 18材料(M erck、Lichrosorb;10μm)を充填したMerck Hibar鋼管(250mm x 4mm))分析(95％M eOH；1.5ml/分；t_R=3.20分)では、それ以上の反応は見られなかった。過剰の臭化ベンジルおよびDMFを高真空で除去した。粗生成物を分取HPLC(RP 18材料(Merc k、LiChrospher;10μm)を充填したMerck Prepbarスチールカラム(250mm x 50mm) )(88％MeOH；40ml/分；t_R=17.20分₎によるクロマトグラフィーを行い、化合物15 4 を固体として得た(448mg、75％)。 (C₃₅H₄₂O₈Naの計算値 613.278)。1,3,4- トリ-O-ベンジル-2,5,6-トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール(155) 。154(9 8mg、166μmol)、無水酪酸(68μl、415μmol)、およびDMAP(5mg、4μmol)の乾燥ピリジン(2ml)溶液を、2時間室温で撹拌した。化合物2について上記したように同様に後処理して、純粋な155を油状物として得た(106mg、99%)。(C₂₉H₄₉O₉の計算値 661.334)。2,5,6- トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール(156) 。155(105mg、159μmol)を酢酸( 3ml)に溶解し、それからパラジウム(10％)炭素(80mg、795μmol)を加えた。溶液を水素雰囲気下室温で6時間撹拌した後、触媒を限外濾過によって除去し、そして炉液を凍結乾燥して表題化合物156を得た(53mg、86％)。Mp: 113.4℃-114.4℃ (MeOHより)。 C₁₈H₃₀O₉について:分析計算値: C、55.37; H、7.74。実測値: C、55.43; H、7.8 4。2,5,6- トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリス(ジベンジル)ホスフェート(157) 。トリオール156(48mg、123μmol)およびテトラゾール(104mg、1048mmol )のアセトニトリル(2ml)溶液を、18時間ジベンジルN,N-ジイソプロピルホスホルアミダイト(500μl、1.48mmol)と処理し、-40℃まで冷却し、そして激しく撹拌しながら過酢酸(32％v/w、340ml、1.48mmol)で酸化した(YuおよびFraiser-Reid 、Tetrahedron Lett. 29:979(1989))。これは、本明細書中で参考として援用される。混合物を室温まで昇温した。溶媒を減圧下で除去し、油状残渣を分取HPLC (92% MeOH; 40ml/分 ;t_R=17.50分)で精製して、化合物157を油状物として得た(1 04mg、72％)。 2,5,6- トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェート(158)。遊離酸157(100mg、85μmol)を、上記のように水素化し、凍結乾燥後、表題化合物1 58 を得た(47mg、88％)。 2,5,6- トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス (アセトキシメチル)エステル(159) 。DIEA(209μl、1.23mmol)およびアセトキシメチルブロミド(123μl、1.23mmol)を、化合物158(39mg、61μmol)の乾燥アセトニトリル(2ml)懸濁液に加えた。暗所で室温で4日間撹拌した後、全揮発性成分を減圧下でエバポレートし、そして粗残渣を分取HPLC(73% MeOH、40ml/分、t_R=20. 25分)で精製して、化合物159をシロップとして得た(44mg、67％)。本発明は、上記に提供された実施例を参照して記述しているが、種々の改変が、本発明の意図から逸脱することなく成され得ることが理解されるべきである。従って、本発明は請求の範囲によってのみ制限される。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (71)出願人ユニバーシティオブカリフォルニア, サンディエゴアメリカ合衆国カリフォルニア 92093 ―0910，ラホヤ，ジルマンドライブ 9500，テクノロジートランスファーオフィス (72)発明者トライノア―カプラン，アレクシスアメリカ合衆国カリフォルニア 92129, サンディエゴ，カレジュアニト 15050 (72)発明者シュルツ，カーステンドイツ国デー28211 ブレーメン，オルレアンシュトラーセ 34 (72)発明者ローマー，ステファンドイツ国デー28211 ブレーメン，アンデアゲーテ 27 (72)発明者シュタットラー，クリストフドイツ国デー28199 ブレーメン，フリードリッヒ―エベルト―シュトラーセ 27 (72)発明者ルドルフ，マルコドイツ国デー27386 ヘムスリンゲン, ディーペンナーシュトラーセ 10

Claims

【特許請求の範囲】１．イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストであって、myo- イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートのアルキルもしくはアルキリデン誘導体、または該誘導体の模倣物を含む、アンタゴニスト。２．前記誘導体が、1-O-アルキル、2-O-アルキル、および1,2-ジ-O-アルキル誘導体からなる群から選択されるアルキル誘導体である、請求項１に記載の細胞浸透性アンタゴニスト。３．前記アルキルが独立してブチルである、請求項２に記載のアルキル誘導体。４．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アルキル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２に記載のアルキル誘導体。５．前記アルキルが独立してブチルである、請求項４に記載のアルキル誘導体。６．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項５に記載のアルキル誘導体。７．前記誘導体が、2-O-アシル-1-O-アルキル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２に記載のアルキル誘導体。８．前記アシルがブチリルである、請求項７に記載のアルキル誘導体。９．前記アルキル誘導体が独立してブチルである、請求項７に記載のアルキル誘導体。１０．前記誘導体が、1-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項９に記載のアルキル誘導体。１１．前記誘導体が、2-O-アルキル-1-O-アシル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２に記載のアルキル誘導体。１２．前記誘導体が、2-O-アルキル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１１に記載のアルキル誘導体。１３．前記アルキルが独立してブチルである、請求項１２に記載のアルキル誘導体。１４．前記誘導体が1,2-ジ-O-アルキリデン誘導体である、請求項１に記載の細胞浸透性アンタゴニスト。１５．前記誘導体が、D,L-1,2-ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１４に記載のアルキリデン誘導体。１６．ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストであって、但し該アンタゴニストは、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルでない、アンタゴニスト。１７．細胞からの塩化物イオン分泌を増強するための方法であって、該細胞をイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストと接触させる工程を包含し、ここで、該アンタゴニストはイノシトールポリホスフェート誘導体またはその模倣物である、方法。１８．前記イノシトールポリホスフェートが、myo-イノシトール3.4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項１７に記載の方法。１９．前記細胞浸透性アンタゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項１８に記載の方法。２０．前記誘導体が、1-O-アルキル、2-O-アルキル、および1,2-ジ-O-アルキル誘導体からなる群から選択されるアルキル誘導体である、請求項１９に記載の方法。２１．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項２０に記載の方法。２２．前記アルキル誘導体が、1,2-ジ-O-アルキル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２０に記載の方法。２３．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項２２に記載の方法。２４．前記アルキル誘導体が、1,2-ジ-O-ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２３に記載の方法。２５．前記アルキル誘導体が、2-O-アシル-1-O-アルキル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２０に記載の方法。２６．前記アシルがブチリルである、請求項２５に記載の方法。２７．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項２５に記載の方法。２８．前記アルキル誘導体が、2-O-ブチリル-1-O-メチル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２７に記載の方法。２９．前記アルキル誘導体が、1-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２７に記載の方法。３０．前記アルキル誘導体が、2-O-アルキル-1-O-アシル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項２０に記載の方法。３１．前記アルキル誘導体が、2-O-アルキル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール3, 4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項３０に記載の方法。３２．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである。請求項３１に記載の方法。３３．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アルキリデン誘導体である、請求項１９に記載の方法。３４．前記アルキリデン誘導体が、D,L-1,2-ジ-O-シクロヘキシリデン-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項３３に記載の方法。３５．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3,4, 5-トリスホスフェートである、請求項１７に記載の方法。３６．前記細胞浸透性アンタゴニストが、myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項３５に記載の方法。３７．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項３６に記載の方法。３８．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項３７に記載の方法。３９．個体における塩化物イオン分泌を増強するための方法であって、該個体にイノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストを投与する工程を包含し、ここで、該アンタゴニストはイノシトールポリホスフェート誘導体またはその模倣物である、方法。４０．前記イノシトールポリホスフェートがmyo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項３９に記載の方法。４１．前記細胞浸透性アンタゴニストがmyo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項４０に記載の方法。４２．前記誘導体が、1-O-アルキル、2-O-アルキル、および1,2-ジ-O-アルキル誘導体からなる群から選択されるアルキル誘導体である、請求項４１に記載の方法。４３．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項４２に記載の方法。４４．前記アルキル誘導体が、1,2-ジ-O-アルキル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項４２に記載の方法。４５．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項４４に記載の方法。４６．前記アルキル誘導体が、1,2-ジ-O-ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項４５に記載の方法。４７．前記アルキル誘導体が、2-O-アシル-1-O-アルキル-myo-イノシトール（3, 4,5,6）テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項４２に記載の方法。４８．前記アシルがブチリルである、請求項４７に記載の方法。４９．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項４７に記載の方法。５０．前記アルキル誘導体が、2-O-ブチリル-1-O-メチル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項４９に記載の方法。５１．前記アルキル誘導体が、1-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項４９に記載の方法。５２．前記アルキル誘導体が、2-O-アルキル-1-O-アシル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項４２に記載の方法。５３．前記アルキル誘導体が、2-O-アルキル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール3, 4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項５２に記載の方法。５４．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである。請求項５３に記載の方法。５５．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アルキリデン誘導体である、請求項４１に記載の方法。５６．前記アルキリデン誘導体が、D,L-1,2-ジ-O-シクロヘキシリデン(cylcohex ylidene)-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項５５に記載の方法。５７．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3,4, 5-トリスホスフェートである、請求項３９に記載の方法。５８．前記細胞浸透性アンタゴニストが、myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項５７に記載の方法。５９．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項５８に記載の方法。６０．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項５９に記載の方法。６１．個体において嚢胞性線維症に関連する徴候または症状を軽減するための方法であって、イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アンタゴニストを該個体に投与する工程を包含し、ここで、該アンタゴニストはイノシトールポリホスフェート誘導体またはその模倣物である、方法。６２．前記徴候または症状が肺不全である、請求項６１に記載の方法。６３．前記投与工程が吸入を介する、請求項６１に記載の方法。６４．前記徴候または症状が、腸不全または膵不全からなる群から選択される、請求項６１に記載の方法。６５．前記イノシトールポリホスフェートが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項６１に記載の方法。６６．前記細胞浸透性アンタゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項６５に記載の方法。６７．前記誘導体が、1-O-アルキル、2-O-アルキル、および1,2-ジ-O-アルキル誘導体からなる群から選択されるアルキル誘導体である、請求項６６に記載の方法。６８．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項６７に記載の方法。６９．前記アルキル誘導体が、1,2-ジ-O-アルキル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項６７に記載の方法。７０．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項６９に記載の方法。７１．前記アルキル誘導体が、1,2-ジ-O-ブチル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項７０に記載の方法。７２．前記アルキル誘導体が、2-O-アシル-1-O-アルキル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項６７に記載の方法。７３．前記アシルがブチリルである、請求項７２に記載の方法。７４．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである、請求項７２に記載の方法。７５．前記アルキル誘導体が、2-O-ブチリル-1-O-メチル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項７４に記載の方法。７６．前記アルキル誘導体が、1-O-ブチル-2-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項７４に記載の方法。７７．前記アルキル誘導体が、2-O-アルキル-1-O-アシル-myo-イノシトール3,4, 5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項６７に記載の方法。７８．前記アルキル誘導体が、2-O-アルキル-1-O-ブチリル-myo-イノシトール（ 3,4,5,6）-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項７７に記載の方法。７９．前記アルキルが独立してメチルまたはブチルである。請求項７８に記載の方法。８０．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アルキリデン誘導体である、請求項６６に記載の方法。８１．前記アルキリデン誘導体が、D,L-1,2-ジ-シクロヘキシリデン(cylcohexyl idene)-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項８０に記載のアルキリデン誘導体。８２．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3,4, 5-トリスホスフェートである、請求項６１に記載の方法。８３．前記細胞浸透性アンタゴニストが、myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項８２に記載の方法。８４．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項８３に記載の方法。８５．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項８４に記載の方法。８６．イノシトールポリホスフェートの細胞浸透性アゴニストであって、イノシトールポリホスフェート誘導体またはその模倣物を含む、アゴニスト。８７．前記イノシトールポリホスフェートが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項８６に記載の細胞浸透性アゴニスト。８８．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項８７に記載の細胞浸透性アゴニスト。８９．前記誘導体が、D,L-1-O-ブチリル-2-O-デオキシ-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチチル)エステルである、請求項８８に記載の誘導体。９０．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートの誘導体である、請求項８７に記載の細胞浸透性アゴニスト。９１．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-アシル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項９０に記載の誘導体。９２．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項９１に記載の誘導体。９３．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3,4, 5-トリスホスフェートである、請求項８６に記載の細胞浸透性アゴニスト。９４．前記細胞浸透性アゴニストが、ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートの誘導体である、請求項９３に記載の細胞浸透性アゴニスト。９５．前記誘導体が、ジーパルミトイル-D,L-O-アシル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項９４に記載の誘導体。９６．前記誘導体が、sn-ジ-O-パルミトイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項９５に記載の誘導体。９７．前記誘導体が、sn-ジ-O-オクタノイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項９４に記載の誘導体。９８．細胞からの塩化物イオン分泌を減少させるための方法であって、該細胞を、請求項８６に記載の細胞浸透性アゴニストと接触させる工程を包含する、方法。９９．前記イノシトールポリホスフェートが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項９８に記載の方法。１００．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項９９に記載の方法。１０１．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１００に記載の方法。１０２．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１０１に記載の方法。１０３．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-scyllo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１０１に記載の方法。１０４．前記誘導体が、D,L-1-O-ブチリル-2-O-デオキシ-イノシトール3,4,5,6- テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１００に記載の方法。１０５．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートの誘導体である、請求項９９に記載の方法。１０６．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-アシル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１０５に記載の方法。１０７．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１０６に記載の方法。１０８．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3, 4,5-トリスホスフェートである、請求項９８に記載の方法。１０９．前記細胞浸透性アゴニストが、ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートの誘導体である、請求項１０８に記載の方法。１１０．前記誘導体が、ジ-パルミトイル-D,L-O-アシル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１０９に記載の方法。１１１．前記誘導体が、sn-ジ-O-パルミトイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１１０に記載の方法。１１２．前記誘導体が、sn-ジ-O-オクタノイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１０９に記載の方法。１１３．個体における塩化物イオン分泌を減少させるための方法であって、請求項８６に記載の細胞浸透性アゴニストを該個体に投与する工程を包含する、方法。１１４．前記イノシトールポリホスフェートが、、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項１１３に記載の方法。１１５．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項１１４に記載の方法。１１６．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１１５に記載の方法。１１７．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１１６に記載の方法。１１８．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-scyllo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１１６に記載の方法。１１９．前記誘導体が、D,L-1-O-ブチリル-2-O-デオキシ-イノシトール3,4,5,6- テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチチル)エステルである、請求項１１５に記載の方法。１２０．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートの誘導体である、請求項１１４に記載の方法。１２１．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-アシル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１２０に記載の方法。１２２．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１２１に記載の方法。１２３．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3, 4,5-トリスホスフェートである、請求項１１３に記載の方法。１２４．前記細胞浸透性アゴニストが、ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートの誘導体である、請求項１２３に記載の方法。１２５．前記誘導体が、ジ-パルミトイル-D,L-O-アシル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１２４に記載の方法。１２６．前記誘導体が、sn-ジ-O-パルミトイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１２５に記載の方法。１２７．前記誘導体が、sn-ジ-O-オクタノイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１２４に記載の誘導体。１２８．個体において分泌性下痢に関連する徴候または症状を軽減するための方法であって、請求項８６に記載の細胞浸透性アゴニストを該個体に投与する工程を包含する、方法。１２９．前記イノシトールポリホスフェートが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項１２８に記載の方法。１３０．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項１２９に記載の方法。１３１．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３０に記載の方法。１３２．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３１に記載の方法。１３３．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-scyllo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３１に記載の方法。１３４．前記誘導体が、D,L-1-O-ブチリル-2-O-デオキシ-イノシトール3,4,5,6- テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３０に記載の方法。１３５．前記アゴニストが、myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートの誘導体である、請求項１２９に記載の方法。１３６．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-アシル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３５に記載の方法。１３７．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-ブチリル-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３６に記載の方法。１３８．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3, 4,5-トリスホスフェートである、請求項１２８に記載の方法。１３９．前記細胞浸透性アゴニストが、ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートの誘導体である、請求項１３８に記載の方法。１４０．前記誘導体が、ジーパルミトイル-D,L-O-アシル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３９に記載の方法。１４１．前記誘導体が、sn-ジ-O-パルミトイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１４０に記載の方法。１４２．前記誘導体が、sn-ジ-O-オクタノイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１３９に記載の方法。１４３．個体において脳肥大に関連する徴候または症状を軽減するための方法であって、請求項８６に記載の細胞浸透性アゴニストを該個体に投与する工程を包含する、方法。１４４．前記イノシトールポリホスフェートが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項１４３に記載の方法。１４５．前記細胞浸透性アゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートの誘導体である、請求項１４４に記載の方法。１４６．前記誘導体が、1,2-ジ-O-アシル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１４５に記載の方法。１４７．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１４６に記載の方法。１４８．前記誘導体が、1,2-ジ-O-ブチリル-scyllo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１４６に記載の方法。１４９．前記誘導体が、D,L-O-ブチリル-2-O-デオキシ-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートオクタキス(アセトキシメチチル)エステルである、請求項１４５に記載の方法。１５０．前記アゴニストが、myo-イノシトール3,4,5,6-テトラキスホスフェートである、請求項１４４に記載の方法。１５１．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-アシル-O-myo-イノシトール1,3,4-トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１５０に記載の方法。１５２．前記誘導体が、D,L-2,5,6-トリ-O-ブチリル-O-myo-イノシトール1,3,4- トリスホスフェートヘキサキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１５１に記載の方法。１５３．前記イノシトールポリホスフェートが、ホスファチジルイノシトール3, 4,5-トリスホスフェートである、請求項１４３に記載の方法。１５４．前記アゴニストが、ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスファートの誘導体である、請求項１５３に記載の方法。１５５．前記誘導体が、ジーパルミトイル-D,L-O-アシル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１５４に記載の方法。１５６．前記誘導体が、sn-ジ-パルミトイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１５５に記載の方法。１５７．前記誘導体が、sn-ジ-O-オクタノイル-D,L-6-O-ブチリル-ホスファチジルイノシトール3,4,5-トリスホスフェートヘプタキス(アセトキシメチル)エステルである、請求項１５４に記載の方法。