JP2002520332A - 少量のトリスルフィドを有する組換えペプチドの製造法 - Google Patents
少量のトリスルフィドを有する組換えペプチドの製造法Info
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Abstract
Description
フィドを有する組換えペプチドの製造法に関し、発酵工程の間又は後の金属塩の
添加を特徴とする、組換えペプチドの製造におけるトリスルフィドの量を減少さ
せる方法に関する。ペプチドは、好ましくはヒト成長ホルモンであり、塩は、好
ましくはリン酸カリウム又はリン酸ナトリウムである。
質の異型のような夾雑物の量は、経済的な面からも、治療の面からも、可能な限
り減少させなければならない。
異型が見出されることがあり、本発明は、この問題に関する。
。分子は、2つのジスルフィド架橋により架橋されており、その単量体型は22
kDaという分子量を有する。
は組換え法により製造されたrhGHである。
型とは、真正hGH、例えばゲノトロピン(Genotropin)(登録商標
)(Pharmacia&Upjohn AB)及びN末端に付加的なメチオニ
ン残基を有するアナログ、例えばソマトノーム(Somatonorm)(登録
商標)である。hGHは下垂体小人症又はターナー症候群の患者において線形の
成長を刺激するために使用されるが、その他の適用も提唱されている。
93、Bioseparation 3,257−265を参照されたい。この
異型は、同定され特徴決定されている。Andersonら,1996,Int
.J.Peptide,Protein,Res.47,311−321を参照
のこと。大腸菌におけるhGHの発現において形成される異型は、rhGHより
も疎水性が高く、構造的にはrhGHのトリスルフィド異型として定義されてい
る。その異型は、大腸菌における合成においてのみ形成され、ヒト下垂体由来の
hGH調製物中には見出されていない。
スーパーオキシドジスムターゼ(Briggsら,1987,Biochem.
,Biophys.Acta,537,100−109)及びインターロイキン
のムテイン(mutein)(Breton Jら,J.Chromatogr
.A.,1995,709(1),135−46)に関しても記載されている。
型の成長ホルモンに変換するための方法が開示されている。成長ホルモンの疎水
性誘導体は、余分な硫黄原子を含む。その方法は、成長ホルモンの誘導体のメル
カプト化合物による化学的処理である。例としては、システイン、グルタチオン
、2−メルカプトエタノール及びジチオスレイトールが挙げられている。
換するための、亜硫酸塩化合物による化学的処理を含む方法が開示されている。
余分な硫黄原子を含む、既に形成された成長ホルモンの変換のための酸化還元反
応において、メルカプト化合物及び亜硫酸塩化合物が使用される。
の製造におけるトリスルフィドの量を減少させるための新規な方法を見出した。
本発明は、従来の提唱のように、形成された成長ホルモンのトリスルフィドを天
然型に変換するのではなく、発酵の間又は後に既に、好ましくは過剰の金属塩を
添加することにより、組換えペプチドの製造におけるトリスルフィドの量を減少
させることができるという、新規かつ予想外の発見に基づいている。
含む修飾型成長ホルモンの形成の阻止によるものである。
の前に直接的に実施されうる。添加は、例えば、塩を含む緩衝液を用いて実施さ
れうる。
ルモン(hGH)、ウシ成長ホルモン(bGH)及びブタ成長ホルモン(pGH
)のような、ヒトであっても動物であってもよい組換え成長ホルモンである。
でありうる。
8以下であり、最も好ましくは、pHは、pH6.0以下である。
は、好ましくはナトリウム又はカリウムのリン酸塩又は酢酸塩である。
の金属塩の添加により最少限に抑えられる。
が、請求の範囲に記載される発明は、このペプチドに限定されない。トリスルフ
ィド異型は、トリスルフィドGHと呼ばれる。
3号、実施例8を参照することができる。
コースを添加した。グルコース及び曝気を中止することにより、発酵を停止させ
た。この時点で、参照試料を採取した。その後、細胞を収集した。
し、凍結により可溶化し、解凍し、精製した。
濃縮した。細胞濃縮物中のpHは7.3であった。細胞濃縮物の4つのバッチを
採取した。3つのバッチ(500ml)においては、それぞれHCl又はNaO
Hを用いて、pHを6.5、7.0及び7.8に調整した。第4のバッチは、未
処理の比較試料である。その後、細胞濃縮物を凍結させた。
(pH8.2)を含有する緩衝液を用いて細胞濃縮物を2倍に希釈した。遠心分
離により無細胞抽出物を得た。
12%)。これは、pHを変化させていない第4のバッチに匹敵していた。
与えたため、pHは低くするべきである。
2であった。細胞濃縮物を2つの部分に分割した(約30L)。細胞濃縮物Aを
約1容量の水で洗浄し、その後−30℃で凍結させた。
洗浄した。細胞濃縮物B中のpHは6.8であった。その後、細胞濃縮物を−3
0℃で凍結させた。
ation)により、濃縮された細胞を抽出し、トリスルフィドの量を決定した
。トリスルフィドGHの量は、細胞濃縮物Aにおいては6%、細胞濃縮物Bにお
いては約3%であり、Aにおいては、Bと比較して2倍であった。これは、低p
H及び金属塩緩衝液が、成長ホルモンのトリスルフィド異型の量を減少させるこ
とを示した。
集し、微小濾過により細胞を濃縮した。細胞濃縮物中のpHは7.2であった。
細胞濃縮物を2つの部分に分割した(約30L)。細胞濃縮物Cを約1容量の水
で洗浄し、その後−30℃で凍結させた。
中のpHは7.2であった。その後、細胞濃縮物を−30℃で凍結させた。
細胞を抽出し、トリスルフィドの量を決定した。トリスルフィドGHの量は、抽
出物Cにおいては約5%、Dにおいては約4.8%であり、CとDは同等であっ
た。抽出物C中のトリスルフィドGH:参照試料中のトリスルフィドGHの比は
、5.0%:2.0%=2.5であり、抽出物D中のトリスルフィドGH:参照
試料中のトリスルフィドGHの比は、4.7%:2.0%=2.4であった。
要であることを示した。
集し、微小濾過により細胞を濃縮した。細胞濃縮物中のpHは7.2であった。
細胞濃縮物(E)を、1ml/Lの37%HClが添加された約1容量の0.0
25Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)で洗浄した。細胞濃縮物E中のp
Hは5.9であった。その後、細胞濃縮物を−30℃で凍結させた。
細胞を抽出し、トリスルフィドの量を決定した。
1.6%:1.4%=1.1であった。
ことができることを示した。
集し、微小濾過により細胞を濃縮した。細胞濃縮物中のpHは7.2であった。
細胞濃縮物を2つの部分に分割した(約30L)。8.03g/Lの酢酸ナトリ
ウム×3H2O及び2.35ml/Lの酢酸(100%)を含有する約1容量の
酢酸緩衝液で、細胞濃縮物Fを洗浄した。細胞濃縮物F中のpHは5.9であっ
た。その後、細胞濃縮物を−30℃で凍結させた。
トリウム緩衝液(pH6.0)で、細胞濃縮物Gを洗浄した。細胞濃縮物G中の
pHは5.9であった。その後、細胞濃縮物を−30℃で凍結させた。
細胞を抽出し、トリスルフィドの量を決定した。
3.4%:3.1%=1.1であり、抽出物G中のトリスルフィドGH:参照試
料中のトリスルフィドGHの比は、2.6%:3.1%=0.8であった。
ることができることを示した。
(2.436mg/ml)+250μlの異なる100mM緩衝液(表1参照)
を混合した。飽和H2S(0.11M)を含む蒸留水を、調製直後に使用した。
50μlの蒸留水(対照)又はH2Sを含む3つの異なる希釈液を、各試料に添
加した(それぞれ、0.5、0.1、及び0.02mMのH2S)。
凍結、解凍、及び脱塩の後、トリスルフィドの量を分析した。
えなかった。
のリン酸Naも使用されうる。
重要であることを示した。
Claims (10)
- 【請求項1】 発酵工程の間又は後の金属塩の添加を特徴とする、少量のト
リスルフィドを有する組換えペプチドの製造法。 - 【請求項2】 発酵工程の間又は後の金属塩の添加を特徴とする、組換えペ
プチドの製造におけるトリスルフィドの量を減少させる方法。 - 【請求項3】 添加が発酵後に直接的に実施される、請求項1又は2のいず
れかに記載の方法。 - 【請求項4】 金属塩がアルカリ金属及びアルカリ土類金属の中から選択さ
れる、請求項1から3のいずれかに記載の方法。 - 【請求項5】 pHがpH7以下である、請求項1から4のいずれかに記載
の方法。 - 【請求項6】 金属が好ましくはカリウム又はナトリウムである、請求項1
から5のいずれかに記載の方法。 - 【請求項7】 塩が好ましくはカリウム又はナトリウムのリン酸塩又は酢酸
塩である、請求項6に記載の方法。 - 【請求項8】 ペプチドが、好ましくは成長ホルモンであり、より好ましく
はヒト成長ホルモンである、請求項1から7のいずれかに記載の方法。 - 【請求項9】 組換え産物中のトリスルフィドの量を減少させるための、発
酵工程の間又は後の組換えペプチドの製造における金属塩の使用。 - 【請求項10】 発酵工程の間又は後の金属塩の添加による、組換えペプチ
ドの製造におけるトリスルフィドの量を減少させるための金属塩の使用。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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