JP2002119286A - エピトープの免疫原性が増強された人工タンパク質 - Google Patents
エピトープの免疫原性が増強された人工タンパク質Info
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Abstract
得られないHIVのgp120ループ3等のペプチド性
エピトープに強い免疫応答誘導能力を付与し、エイズウ
イルス中和活性等を有する特異抗体を効率よく作製する
手法を提供すること。 【解決手段】 ペプチド性エピトープのアミノ酸配列の
全部又はその一部を含み、タンパク質の高次構造形成を
補助する性質が付与されたアミノ酸配列や、免疫担当細
胞による抗原提示処理を補助する性質が付与されたアミ
ノ酸配列から構成されているエピトープの免疫原性が増
強された人工タンパク質を調製する。次いで、該人工タ
ンパク質を用いて常法により前記ペプチド性エピトープ
に対する抗体を効率よく作製する。
Description
原性が増強された人工タンパク質や、該人工タンパク質
を含んでなる免疫応答の誘導剤や、該人工タンパク質を
抗原として用いる抗体の製造方法や、該人工タンパク質
を有効成分として含有する機能性食品や、該人工タンパ
ク質を発現する腸内細菌からなる脱感作・免疫寛容状態
の誘導剤や、該人工タンパク質をコードするDNAを含
んでなる免疫応答誘導用DNAワクチン等に関する。
根幹を形成するタンパク質あるいはそれらをコードする
遺伝子DNAを、実験室の中で人工的に創り出すことが
行われている。この技術により、自然には存在しない新
たな活性を持った酵素・タンパク質や、天然のタンパク
質とは大きく構造の異なるタンパク質を産み出すことが
可能となり、医療領域や工学領域への様々な応用が期待
されている。分子進化工学では、タンパク質又はそれを
コードする遺伝子を構成するアミノ酸又はヌクレオチド
のブロック単位のランダムな重合体プールの中から、目
的とする活性を持つ分子を選び出す操作が行われる。例
えば、Szostakらのグループは、100塩基の長さをも
つランダムな配列をもったDNA集団をDNA合成機で
作製し、このDNA集団をインビトロでRNAに転写
し、1013の多様性をもつRNA集団を用意し、このR
NA集団の中から特定の色素に特異的に結合するRNA
分子を選択し、どのような配列構造を有するRNA分子
が与えられた機能を満足するかについて報告している
(Nature,346:818-822,1990)。Szostakらのグループは
さらに同様のアプローチで、リガーゼ活性といったより
複雑な活性をもつRNA分子を創出することに成功して
いる(Science,261:1411-1418,1993)。
合して誕生したのではないかという仮説があり(Proc.N
atl.Acad.Sci.USA,80:3391-3395,1983)、また、繰り返
し構造に富むポリペプチドは安定な高次構造を取りやす
いと考えられるので、大きなタンパク質や遺伝子を対象
とする分子進化工学では、短い構造単位を繰り返し重合
させ巨大分子を合成する技術が要求されている(Natur
e,367:323-324,1994)。短いDNA単位の繰り返し重合
体を得る方法として、ローリング・サークル合成法が報
告されている(Proc,Natl,Acad.Sci.USA,92:4641-4645,
1995)が、この方法はリン酸化反応、連結反応、重合反
応、二本鎖形成反応などのステップを何段階も経なけれ
ばならないため、反応系が複雑である。
イクロ遺伝子の繰り返し重合体を作製する方法として、
少なくとも一部の配列が互いに相補しているオリゴヌク
レオチドA及びオリゴヌクレオチドBに、DNAポリメ
ラーゼを作用させて重合反応を行うことを特徴とするマ
イクロ遺伝子重合法(特開平9−322775号公報)
を提案している。
タンパク質の反復単位に類似する反復単位を有するアミ
ノ酸ポリマーをコードするDNA(特開平10−145
86号公報)や、繰返しアミノ酸配列を有する人工タン
パク質をコードする遺伝子カセット(米国特許第508
9406号明細書)や、アミノ酸の繰返し配列を有する
大ポリペプチド作製用の合成反復DNA(米国特許第5
641648号明細書)や、アミノ酸の繰返し単位を有
するペプチドをコードするDNA配列(米国特許第57
70697号明細書)や、アミノ酸の反復配列を含む大
ポリペプチド作製用の合成反復DNA(米国特許第58
30713号明細書)が知られている。また、6つの読
み枠の1つがαヘリックス構造を形成しやすいDNA断
片をデザインし、そこから作成したライブラリーが高頻
度に安定なタンパク質をコードすることや、同様に、6
つの読み枠の中の1つがβストランド構造を形成しやす
いDNA断片をデザインすることが報告(Proc,Natl,Ac
ad.Sci.USA,94:3805-3810,1997)されている。
を増強する手法としては、ペプチド性エピトープをタン
デムにいくつも連結し、得られる種々のペプチド性エピ
トープのタンデム重合体を免疫原として用いる手法が知
られており(J. Immunol. 153:5634-5642, 1994)、例
えば米国特許第5,951,986号明細書には、HI
Vのエピトープを多価にもつペプチドの免疫原としての
利用について開示されている。また、枝状に連結し多価
にエピトープをもつ巨大分子を作製する方法(米国特許
第5,229,490号明細書、特表平08−5110
07号公報)や、ペプチド性エピトープを提示するファ
ージを免疫原として利用する方法(Nature Biotechnolo
gy, 18:873-876, 2000)なども知られている。
トープをタンデムに重合する手法は簡便ではあるが、か
ならずしも全てのエピトープで有効に機能するわけでは
ない(Mol. Immunol. 34:599-608, 1997)。例えばHI
Vのgp120ループ3ペプチドは、タンデムに重合し
て、さらにキャリアータンパク質と融合させた型ではマ
ウスでの免疫誘導反応の改善が見られるが、キャリアー
タンパク質と融合しない状態では単独のペプチドを用い
た免疫との有意な差は見られない(Vaccine 17:2392-239
9, 1999)。このような免疫原性の極めて弱いペプチド性
エピトープについて、強い免疫原性を与える新しい手法
の開発が望まれていた。本発明の課題は、従来の手法か
らは十分な免疫応答誘導活性が得られないペプチド性エ
ピトープに関しても、強い免疫応答誘導能力を付与する
手法を提供することにある。より具体的には、エピトー
プの免疫原性が増強された人工タンパク質や、該人工タ
ンパク質を含んでなる免疫応答の誘導剤や、該人工タン
パク質を抗原として用いる抗体の製造方法や、該人工タ
ンパク質を有効成分として含有する機能性食品や、該人
工タンパク質を発現する腸内細菌からなる脱感作・免疫
寛容状態の誘導剤や、該人工タンパク質ををコードする
DNAを含んでなる免疫応答誘導用DNAワクチン等を
提供することにある。
十分な抗原性をもつためには、そのペプチド性エピトー
プが、免疫担当細胞に取り込まれ、プロセシングを受け
た後に、MHC分子によりB細胞、T細胞へと効率よく
提示される必要がある。このような「取り込み」「プロ
セシング」「MHCによる提示」反応が効率よく進むた
めには、ペプチド性エピトープが、天然のタンパク質に
近いコンテクストの中に存在する必要があると考えられ
る。このような考えのもとに、「ペプチド性エピトープ
を少なくとも1コピーもつような天然のタンパク質に近
い性質をもった人工タンパク質」をデザイン・作製し、
この人工タンパク質の免疫原性を調べる実験をまず実施
した。
質のループ3と呼ばれる領域は、中和エピトープとして
知られており、このエピトープに対する抗体のいくつか
は、ウイルスの増殖を抑えるといった中和活性をもち、
エイズ治療に利用できる重要な抗体となる。エイズウイ
ルスは、急速に自身の遺伝子配列を変化させることによ
り、ループ3領域のアミノ酸配列を変化させ、この中和
抗体からの攻撃を逃れることが知られている。中和抗体
の臨床利用の観点から考えると、このようにして新たに
出現したエイズウイルス変異体に対する新しい中和抗体
の迅速な作製が必要となるが、gp120タンパク質そ
のものを免疫原としても、あるいは、ループ3領域に相
当するペプチドを免疫原としても、十分な免疫誘導が引
き起こすことができないことも知られており、中和抗体
の新たな作製には多大の時間と労力が必要であるのが現
状であった(Nature 376:115, 1995)。そして、従来用
いられているようなエピトープ配列のタンデム重合体を
抗原として用いても、ループ3ペプチド配列に対する十
分な免疫を誘導できないことが報告されている(Vaccin
e 17:2392-2399, 1999)。gp120タンパク質そのも
のを免疫原としてもループ3領域に対する抗体ができな
い理由は、ループ3ペプチドが、gp120タンパク質
の内部に埋もれているからと考えられている。ループ3
領域に相当するペプチドが弱い免疫原性しかもたないの
は、免疫担当細胞による「取り込み」「プロセシング」
「MHCによる提示」反応が、このペプチドでは効率よ
く進まないためだと考えられる。
に近い性質」をもちながら、その構造上に少なくとも1
コピーのループ3ペプチド配列をもつような人工タンパ
ク質を作製し、これを用いた効率の良い免疫誘導法を試
みた(図1)。なお、人工タンパク質の作製には「多機
能塩基配列及びそれを含む人工遺伝子」(特願2000
−180997)や、「マイクロ遺伝子重合法」(特開
平9−322775号公報)に記載された方法を用い
た。
られているループ3ペプチド「RKSIRIQRGPG
RTFVTIGKI」を読み枠の1つにコードするマイ
クロ遺伝子をデザインすることとした。例えば、最初の
R(アルギニン)には「CGT」「CGC」「CGA」
「CGG」「AGA」「AGG」の6つのコドンが対応
するがこの中から特定のコドンを選択し、次のK(リシ
ン)には「AAA」「AAG」の2つのコドンが対応す
るがこの中から特定のコドンを選択し、以下同様にして
特定のコドンを順次選択しマイクロ遺伝子をデザインす
る場合、上記中和抗原ペプチドを読み枠の1つにコード
する塩基配列は、コドンの縮重から約1,651億種あ
ることになる。また、単一マイクロ遺伝子はプラス鎖及
びマイナス鎖に各3種の読み枠をもつことから、6種の
異なるペプチドをコードすることができることになり、
例えば、同じ方向の異なる2つの読み枠では、上記中和
抗原ペプチドとは全く異なる2つのペプチドがコードさ
れることになる。そこで、同じ方向の他の読み枠2つの
いずれかで「二次構造を形成しやすい」という性質を有
するペプチドをコードする塩基配列を、上記約1,65
1億種の塩基配列の中から計算機により検索することに
した。
e250を用いて実行したところ、約1,651億種の
塩基配列全てを同時に計算するには無理があることがわ
かったので、上記中和抗原ペプチドの両端を削除した
「IRIQRGPGRTFVT」の13個のアミノ酸か
らなるペプチドについて計算することとした。1つの読
み枠でこのペプチドをコードする可能性のある塩基配列
を全て計算機内に書き出したところ、約5億種の塩基配
列が作成された。これら5億種の塩基配列の、同じ方向
の他の2つの読み枠を翻訳し、終止コドンが現れて翻訳
が途中でストップするものや、ペプチド配列として重複
するものを除いた、約1,506万種のペプチド配列の
集団を計算機の中に作成した。次に、この約1,506
万種のペプチドの中から「二次構造を形成しやすい」と
いう性質をもつペプチドを、二次構造予測プログラムを
用いて個別に計算してスコアづけを行った。この計算に
1週間以上要したが、得られた結果をスコアの高い順に
ソートしたところ、第2読み枠でαヘリックスを非常に
形成しやすい塩基配列として、「ATACGCATTC
AGAGAGGCCCTGGCCGCACTTTTGT
TACT」を選択することができた。
チド20アミノ酸残基の真ん中部分13アミノ酸残基に
ついて実施したので、未計算の両端部分についても同様
の計算をおこない、それらの結果を合わせてマイクロ遺
伝子「デザイン−25」を得ることができた。このマイ
クロ遺伝子「デザイン−25」は、その読み枠の1つに
中和抗原配列をコードし、他の読み枠2つに終止コドン
をもたず、さらに、そのうちの1つにαヘリックスを形
成しやすい性質のペプチドをコードし、「エイズウイル
ス中和抗原性」と「構造形成能力」といった2つの生物
機能構造が潜源化したマイクロ遺伝子ということができ
る。次に、かかるマイクロ遺伝子「デザイン−25」
を、前記本発明者によるマイクロ遺伝子重合法(特開平
9−322775号公報)を利用して重合し、「中和抗
原配列」と「αヘリックスを形成しやすい配列」とが複
雑に組み合わさった種々の人工遺伝子からなる人工遺伝
子ライブラリーを作製した。これら人工遺伝子ライブラ
リーを用いて種々の人工タンパク質を大腸菌で発現さ
せ、全体としてはαヘリックスの構造に支えられなが
ら、その中のところどころにエイズウイルス中和抗原配
列をもつ人工タンパク質が得られた。かかる人工タンパ
ク質を用いてマウスを免疫し、gp120タンパク質の
ループ3領域に対する抗血清を効率よく作製することが
できることや、対照実験としてのループ3領域に相当す
る合成ペプチドを用いた免疫からは有意な免疫誘導が生
起しないことを確認し、本発明を完成するに至った。
のアミノ酸配列の全部又はその一部を含むアミノ酸配列
から構成されていることを特徴とするエピトープの免疫
原性が増強された人工タンパク質(請求項1)や、ペプ
チド性エピトープのアミノ酸配列の全部又はその一部を
含み、タンパク質の高次構造形成を補助する性質が付与
されたアミノ酸配列から構成されていることを特徴とす
る請求項1記載のエピトープの免疫原性が増強された人
工タンパク質(請求項2)や、ペプチド性エピトープの
アミノ酸配列の全部又はその一部を含み、免疫担当細胞
による抗原提示処理を補助する性質が付与されたアミノ
酸配列から構成されていることを特徴とする請求項1記
載のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパク質
(請求項3)や、ペプチドタグ又はマーカータンパク質
が融合していることを特徴とする請求項1〜3のいずれ
か記載のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパ
ク質(請求項4)や、ペプチドタグがポリヒスチジン残
基であることを特徴とする請求項4記載のエピトープの
免疫原性が増強された人工タンパク質(請求項5)や、
ペプチド性エピトープのアミノ酸配列が、配列番号1に
示されるアミノ酸配列であることを特徴とする請求項1
〜3のいずれか記載のエピトープの免疫原性が増強され
た人工タンパク質(請求項6)や、ペプチド性エピトー
プのアミノ酸配列の全部又はその一部を含むアミノ酸配
列が、配列番号24〜47のいずれかに示されるアミノ
酸配列であることを特徴とする請求項1〜4のいずれか
記載のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパク
質(請求項7)に関する。
載のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパク質
を含んでなることを特徴とする免疫応答の誘導剤(請求
項8)や、免疫応答が体液性免疫であることを特徴とす
る請求項8記載の免疫応答の誘導剤(請求項9)や、免
疫応答が細胞性免疫であることを特徴とする請求項8記
載の免疫応答の誘導剤(請求項10)や、請求項1〜7
のいずれか記載のエピトープの免疫原性が増強された人
工タンパク質を抗原として用いることを特徴とする抗体
の製造方法(請求項11)や、抗体がモノクローナル抗
体であることを特徴とする請求項11記載の抗体の製造
方法(請求項12)や、請求項11又は12記載の抗体
の製造方法により得られることを特徴とする抗体(請求
項13)や、請求項13記載の抗体を産生する細胞(請
求項14)や、請求項1〜7のいずれか記載のエピトー
プの免疫原性が増強された人工タンパク質を発現するこ
とができる発現系を含んでなる宿主細胞(請求項15)
や、腸内細菌であることを特徴とする請求項15記載の
宿主細胞(請求項16)や、請求項16記載の腸内細菌
を含んでなることを特徴とする脱感作・免疫寛容状態の
誘導剤(請求項17)に関する。
記載のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパク
質をコードするDNA(請求項18)や、塩基配列の読
み枠を異にした場合、該塩基配列の少なくとも1つの読
み枠にペプチド性エピトープがコードされ、他の読み枠
に該ペプチド性エピトープの抗原性を高めるような性質
を付与しうるペプチドがコードされていることを特徴と
する請求項18記載のDNA(請求項19)や、請求項
18又は19記載のDNAを含んでなることを特徴とす
る免疫応答誘導用DNAワクチン(請求項20)や、免
疫応答が体液性免疫であることを特徴とする請求項20
記載の免疫応答誘導用DNAワクチン(請求項21)
や、免疫応答が細胞性免疫であることを特徴とする請求
項20記載の免疫応答誘導用DNAワクチン(請求項2
2)や、請求項1〜7のいずれか記載のエピトープの免
疫原性が増強された人工タンパク質を有効成分として含
有する機能性食品(請求項23)や、脱感作・免疫寛容
状態を誘導することができる請求項23記載の機能性食
品(請求項24)に関する。
増強された人工タンパク質としては、ペプチド性エピト
ープのアミノ酸配列の全部又はその一部を含むアミノ酸
配列から構成されているタンパク質又はペプチドであれ
ば特に制限されるものではなく、ここで人工タンパク質
とは、天然に存在しないタンパク質又はペプチドであっ
て、例えば前記文献(Vaccine 17:2392-2399, 1999)に記
載された、HIVのgp120ループ3ペプチドのタン
デム重合体とキャリアータンパク質との融合体など、公
知のペプチド性エピトープのタンデム重合体や、公知の
ペプチド性エピトープ又は公知のペプチド性エピトープ
のタンデム重合体と公知のキャリアタンパク質との融合
タンパク質や融合ペプチドは除かれる。かかるエピトー
プの免疫原性が増強された人工タンパク質としては、ペ
プチド性エピトープのアミノ酸配列の全部又はその一部
を含み、タンパク質の高次構造形成を補助する性質が付
与されたアミノ酸配列から構成されている人工タンパク
質や、ペプチド性エピトープのアミノ酸配列の全部又は
その一部を含み、免疫担当細胞による抗原提示処理を補
助する性質が付与されたアミノ酸配列から構成されてい
る人工タンパク質を好適に例示することができる。
性質としては、αヘリックス形成能力、二次構造形成能
力、疎水性度向上能力に関する性質を例示することがで
き、また、免疫担当細胞による抗原提示処理を補助する
性質としては、クラスI、クラスIIのMHC分子との親
和性向上能力に関する性質を例示することができるが、
その他、天然のタンパク質に類似させた種々の性質を付
与することもできる。そして、これらの有用な性質を有
するアミノ酸配列は、アミノ酸組成や配列の繰り返し性
を調整することにより、あるいは、かかる性質を保持し
た既知の配列を参考にすることにより調製することがで
きる。また、本発明のエピトープの免疫原性が増強され
た人工タンパク質のエピトープのアミノ酸配列に由来す
るアミノ酸配列以外のアミノ酸配列として、上記タンパ
ク質の高次構造形成を補助する性質を付与しうるペプチ
ド配列や免疫担当細胞による抗原提示処理を補助する性
質を付与しうるペプチド配列の他、例えば、糖の付加シ
グナルをもったペプチド配列を用いることもでき、かか
るペプチド配列を加えることにより、合成された天然タ
ンパク質は糖修飾され、タンパク質−糖のハイブリッド
人工タンパク質などとすることもできる。
は、免疫原性のきわめて弱いペプチド性エピトープであ
るHIVのgp120ループ3に強い免疫原生を付与す
ることができる、該ペプチド性エピトープループ3の全
部又はその一部を含むアミノ酸配列、例えば配列番号2
4〜47のいずれかに示されるアミノ酸配列から構成さ
れる人工ペプチドあるいは人工タンパク質を挙げること
ができる。これら人工ペプチドあるいは人工タンパク質
を含め、本発明のエピトープの免疫原性が増強された人
工タンパク質は、生体おける体液性免疫や細胞性免疫等
の免疫応答を誘導するための免疫応答の誘導(薬)剤と
して用いることができる。
た人工タンパク質をコードするDNAとしては、塩基配
列の読み枠を異にした場合、該塩基配列の少なくとも1
つの読み枠にペプチド性エピトープがコードされ、他の
読み枠に該ペプチド性エピトープの抗原性を高めるよう
な性質を付与しうるペプチドがコードされているDNA
や、同じ読み枠にペプチド性エピトープと該ペプチド性
エピトープの抗原性を高めるような性質を付与しうるペ
プチドがコードされているDNAを例示することがで
き、例えばかかるDNAを組み込んだ発現ベクターは細
胞性免疫や体液性免疫等の免疫応答誘導用DNAワクチ
ンとして用いることができる。
免疫原性が増強された人工タンパク質を発現することが
できる発現系を含んでなる宿主細胞に関し、宿主細胞と
しては、サルモネラ菌、大腸菌、ストレプトミセス、枯
草菌、ストレプトコッカス、スタフィロコッカス等の細
菌原核細胞や、酵母、アスペルギルス等の真菌細胞や、
ドロソフィラS2、スポドプテラSf9等の昆虫細胞
や、L細胞、CHO細胞、COS細胞、HeLa細胞、
C127細胞、BALB/c3T3細胞(ジヒドロ葉酸
レダクターゼやチミジンキナーゼなどを欠損した変異株
を含む)、BHK21細胞、HEK293細胞等の動物
細胞や、植物細胞等を挙げることができるが、サルモネ
ラ菌等の腸内細菌を好ましく例示することができる。か
かる人工タンパク質を発現する腸内細菌を生体に投与す
ると、脱感作・免疫寛容状態を誘導することができるこ
とから、これら腸内細菌は脱感作・免疫寛容状態の誘導
剤として期待できる。
トープの免疫原性が増強された人工タンパク質を宿主細
胞内で発現させることができる発現系であればどのよう
なものでもよく、染色体、エピソーム及びウイルスに由
来する発現系、例えば、細菌プラスミド由来、酵母プラ
スミド由来、SV40のようなパポバウイルス、ワクシ
ニアウイルス、アデノウイルス、鶏痘ウイルス、仮性狂
犬病ウイルス、レトロウイルス由来のベクター、バクテ
リオファージ由来、トランスポゾン由来及びこれらの組
合せに由来するベクター、例えば、コスミドやファージ
ミドのようなプラスミドとバクテリオファージの遺伝的
要素に由来するものを挙げることができる。この発現系
は発現を起こさせるだけでなく発現を調節する制御配列
を含んでいてもよい。また、読み枠を変えて翻訳するこ
とができる発現ベクターシリーズも有利に用いることが
できる。
Aや該人工タンパク質をコードするDNAが組み込まれ
た発現系の宿主細胞への導入は、Davisら(BASIC METHO
DS IN MOLECULAR BIOLOGY, 1986)及びSambrookら(MOL
ECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL, 2nd Ed., Cold
Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbo
r, N.Y., 1989)などの多くの標準的な実験室マニュア
ルに記載される方法、例えば、リン酸カルシウムトラン
スフェクション、DEAE−デキストラン媒介トランス
フェクション、トランスベクション(transvection)、マ
イクロインジェクション、カチオン性脂質媒介トランス
フェクション、エレクトロポレーション、形質導入、ス
クレープローディング (scrape loading)、弾丸導入(ba
llisticintroduction)、感染等により行うことができ
る。
従来公知のタンパク質の製造方法であれば特に制限され
るものではなく、例えば、該人工タンパク質をコードす
るDNAを発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転
換し、該形質転換細胞を培養することにより、あるいは
ペプチド合成法により得ることができる。上記人工タン
パク質をコードするDNAは、例えば実施例に説明され
ているようなマイクロ遺伝子重合法を用いることにより
作製することができ、その際エピトープをコードする塩
基配列に付加する人工タンパク質の性質は、マイクロ遺
伝子の同じ読み枠に存在していても異なる読み枠に存在
していてもよいが、人工タンパク質をコードするDNA
の作製はこれらの方法に限定されるものではない。ま
た、上記発現ベクター由来の翻訳領域に、ポリヒスチジ
ン残基をコードする塩基配列を存在させるなどして、該
人工タンパク質のアミノ酸配列の一部にポリヒスチジン
残基等の分離精製用のペプチドタグを存在させることも
できる。
ータンパク質及び/又はペプチドタグと結合させた融合
タンパク質や融合ペプチドとすることもできる。マーカ
ータンパク質としては、従来知られているマーカータン
パク質であれば特に制限されるものではなく、例えば、
アルカリフォスファターゼ、抗体のFc領域、HRP、
GFPなどを具体的に挙げることができ、またペプチド
タグとしては、Mycタグ、Hisタグ、FLAGタ
グ、GSTタグなどの従来知られているペプチドタグを
具体的に例示することができる。かかる融合タンパク質
や融合ペプチドは、常法により作製することができ、N
i−NTAとHisタグの親和性を利用した本発明の人
工タンパク質の精製や、T細胞誘導活性を有するタンパ
ク質の検出や、本発明の人工タンパク質に対する抗体の
定量、免疫不全症の診断用マーカーなどとして、また当
該分野の研究用試薬としても有用である。
ープの免疫原性が増強された人工タンパク質を抗原とし
て用いる方法であれば特に制限されるものではなく、か
かる抗体の種類としては、モノクローナル抗体、ポリク
ローナル抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体、ヒト化抗体等
の免疫特異的な抗体を具体的に挙げることができ、これ
らは本発明のエピトープの免疫原性が増強された人工タ
ンパク質又はその一部を抗原として用いて常法により作
製することができるが、その中でもモノクローナル抗体
がその特異性の点で好ましく、特にエイズウイルスの増
殖に対する中和活性をもったモノクローナル抗体がより
好ましい。かかるモノクローナル抗体等の抗体は、例え
ば、エイズ等の免疫不全症等の治療ばかりでなく、エイ
ズ等の免疫不全症の発症機構を明らかにする上で有用で
ある。
ルを用いて、動物(好ましくはヒト以外)に本発明のエ
ピトープの免疫原性が増強された人工タンパク質又はそ
の一部を、あるいはかかる人工タンパク質の一部とMH
Cとの複合体を膜表面に発現した細胞を投与することに
より産生され、例えばモノクローナル抗体の調製には、
連続細胞系の培養物により産生される抗体をもたらす、
ハイブリドーマ法(Nature 256, 495-497, 1975)、ト
リオーマ法、ヒトB細胞ハイブリドーマ法(Immunology
Today 4, 72, 1983)及びEBV−ハイブリドーマ法
(MONOCLONAL ANTIBODIES AND CANCER THERAPY, pp.77-
96, Alan R.Liss, Inc., 1985)など任意の方法を用い
ることができる。
鎖抗体をつくるために、一本鎖抗体の調製法(米国特許
第4,946,778号)を適用することができる。また、ヒト
化抗体を発現させるために、トランスジェニックマウス
又は他の哺乳動物等を利用したり、上記抗体を用いて、
本発明のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパ
ク質を発現するクローンを単離・同定したり、アフィニ
ティークロマトグラフィーでそのポリペプチドを精製す
ることもできる。本発明のエピトープの免疫原性が増強
された人工タンパク質やその抗原エピトープを含むペプ
チドに対する抗体は、エイズ等の免疫不全症の診断や治
療に使用できる可能性がある。また本発明の上記抗体を
産生する細胞としては、株化した培養細胞が好ましく、
例えば、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマ、株化
B細胞等を例示することができる。
ピトープの免疫原性が増強された人工タンパク質を有効
成分として含有するものであればどのような食品でもよ
く、かかる人工タンパク質を飲食品原料の一部として用
いたり、あるいは製造工程又は製造後に添加・配合する
ことにより得ることができる。かかる機能性食品として
は特に制限されるものではなく、クッキー、パン、ケー
キ、煎餅などの焼き菓子、ラムネ菓子等などの錠菓、羊
羹などの和菓子、プリン、ゼリー、アイスクリーム類な
どの冷菓、チューインガム、キャンディ等の菓子類や、
クラッカー、チップス等のスナック類や、うどん、そば
等の麺類や、かまぼこ、ハム、魚肉ソーセージ等の魚肉
練り製品や、チーズ、バターなどの乳製品や、みそ、し
ょう油、ドレッシング、マヨネーズ、甘味料等の調味類
や、豆腐、こんにゃく、その他佃煮、餃子、コロッケ、
サラダ、スープ、シチュー等の各種総菜や、ヨーグル
ト、ドリンクヨーグルト、ジュース、牛乳、豆乳、酒
類、コーヒー、紅茶、煎茶、ウーロン茶、スポーツ飲料
等の各種飲料などを具体的に例示することができる。
的に説明するが、この発明の範囲はこれらの例示に限定
されるものではない。 実施例1 HIVウイルスの一群の亜種がもつgp120タンパク
質の部分配列である、配列番号1に示されるアミノ酸配
列からなるペプチドをコードする塩基配列を読み枠の1
つとし、かつ同方向の他の読み枠2つのうちの少なくと
も1つの読み枠で2次構造を形成しやすいアミノ酸配列
からなるペプチドをコードすることができるマイクロ遺
伝子をデザインするために、図2に示すフローチャート
にしたがってマイクロ遺伝子を構築した。計算機の処理
能力を考慮して、配列番号1に示される20アミノ酸残
基を、互いに一部重複する部分配列である3つのアミノ
酸配列、すなわち配列番号2、配列番号3、配列番号4
にそれぞれ示される3つのアミノ酸配列からなるペプチ
ドに分割し、それぞれについて計算を実行した。
るペプチドをコードする塩基配列の場合、まず読み枠の
1つに配列番号3に示されるアミノ酸配列からなるペプ
チドをコードすることのできる全ての塩基配列(塩基長
は13×3=39)である約5億種の塩基配列を計算機
内に作成し、この配列集団の中から、同方向の他の2つ
の読み枠に終止コドンをもたない約1,135万種の塩
基配列を計算機内で選び出した。次に、これら選び出さ
れた塩基配列の読み枠1と同方向の他の2つの読み枠の
コードする全てのアミノ酸配列約2,270万種を計算
機内に作成し、このアミノ酸配列からなるペプチド集団
の中から同じアミノ酸配列をもった重複配列を除き、そ
れぞれ異なる配列をもつペプチド集団約1,506万種
を選び出した。このそれぞれのペプチド集団に対して、
そのαヘリックス、あるいは、βシートの二次構造形成
能力を前記の二次構造予測プログラムを用いたスコアー
によって評価し、二次構造形成能力が高いと予想される
ペプチドの中から、配列番号5に示されるアミノ酸配列
からなるペプチドを選定した。このペプチドは、配列番
号6に示される塩基配列の第2読み枠にコードされるア
ミノ酸配列であり、αヘリックス構造を形成しやすい配
列と予想された。
るペプチドをコードする塩基配列についても、上記同様
の計算を実行し、第1読み枠で、配列番号2に示される
アミノ酸配列からなるペプチドを、第2読み枠でαヘリ
ックスを形成する可能性が高いペプチドをコードし、か
つ、そのペプチドの4番目から6番目のアミノ酸配列
が、上記配列番号5に示されるアミノ酸配列の1番目か
ら3番目のアミノ酸配列に一致する、配列番号7に示さ
れるアミノ酸配列からなるペプチドを選び出した。この
ペプチドは、配列番号8に示される塩基配列の第2読み
枠にコードされるアミノ酸配列である。
行し、第1読み枠で、配列番号4に示されるアミノ酸配
列からなるペプチドを、第2読み枠でαヘリックスを形
成する可能性が高いペプチドをコードし、かつ、そのペ
プチドの1番目から3番目のアミノ酸配列が、配列番号
5の11番目から13番目のアミノ酸配列に一致する、
配列番号9に示されるアミノ酸配列からなるペプチドを
選び出した。このペプチドは、配列番号10に示される
塩基配列の第2読み枠にコードされるアミノ酸配列であ
る。
号8、配列番号10にそれぞれ示される塩基配列を、重
複を考慮しながら連結し、配列番号11に示される塩基
配列を有するマイクロ遺伝子「デザイン−25」を得
た。このデザインされたマイクロ遺伝子は、図3に示す
ように、第1読み枠でHIVウイルスの一群の亜種がも
つgp120タンパク質の部分配列をコードし、第2読
み枠で、αヘリックス構造を形成しやすいペプチドの配
列をコードする。なお、マイクロ遺伝子デザイン−25
の場合、マイクロ遺伝子のマイナス鎖(配列番号11に
示される塩基配列に対して相補的な配列)に関しては、
終止コドンの出現の回避などの制限を加えていない。
ザイン−25」を出発材料とし、前記特開平9−322
775号公報記載の高分子マイクロ遺伝子重合体の作成
方法の技術を用いて、マイクロ遺伝子重合体ライブラリ
ーを作製した。なお、重合の基礎となるオリゴヌクレオ
チドAとして、配列番号12に示される塩基配列からな
るKY−1197を、オリゴヌクレオチドBとして、配
列番号13に示される塩基配列からなるKY−1198
をそれぞれ合成して用いた。これら34ヌクレオチドか
らなるオリゴヌクレオチドAの3′側10残基と、36
ヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチドBの3′側1
0残基とが、ともに3′端を除いて互いに相補的な配列
として構成されている。
オチドBとを用いた重合反応の条件は、50μLの反応
容量では以下の通りである。 KY−1197 20pmol KY−1198 20pmol KCl 10 mM (NH4)2SO4 10 mM Tris−HCl(pH8.8) 10 mM MgSO4 2 mM TritonX−100 0.1 % 2.5mM dNTP 7 μL 上記反応液を94℃で10分間処理した後、DNAポリ
メラーゼ(ニューイングランドバイオラブス社製「Ve
ntR」)を5.2ユニット加えた。
00ジーンアンプPCRシステムを用いて行った。反応
条件は、94℃で10秒間熱変性させ、66℃で60秒
間アニーリングと伸張反応を行うというサイクルで55
サイクル繰り返し、最後の伸張反応を66℃で7分間行
った。重合反応産物として得られた本発明の人工遺伝子
をプラスミドベクターpTZ19R(Protein Eng.,1:67
-74,1986)にクローニングし、その挿入DNA断片の塩
基配列をシークエンサー(パーキン・エルマー社)を用
いて決定した。クローニングした10種類のDNA断
片、すなわちpTH127、pTH133、pTH13
6、pTH142、pTH143、pTH145、pT
H155、pTH167、pTH171及びpTH17
6を図4及び図5に示す。このうち、pTH133、p
TH142、pTH143及びpTH167は、その挿
入断片が長く、また繰り返し配列といった性質をもつた
めに、その全長の塩基配列を決定することができないの
で、その部分配列が図4及び図5に示している。これら
図4及び図5に示される各挿入塩基配列を配列番号14
〜23にそれぞれ示す。
子を大腸菌内で発現させるために、プラスミドベクター
pTZ19Rにクローニングした10種の挿入DNA断
片を切りだし、方向、読み枠などを考慮しながら、方
向、読み枠を選んで発現させることができる発現プラス
ミドベクターシリーズpKS600〜pKS605のい
ずれか1つに再クローニングした。この6種の発現プラ
スミドベクターpKS600〜pKS605は、キアゲ
ン社から発売されている読み枠を1つずつずらした発現
ベクターシリーズであるpQE−9、pQE−10、p
QE−11のクローニングサイトを改変したもので、プ
ラス鎖とマイナス鎖のそれぞれ3読み枠、合計6種の読
み枠のいずれかにより翻訳産物を大腸菌の中で大量発現
させることができるように作製したものである。
発現プラスミドベクターpTH177〜pTH200、
すなわち、pTH127の挿入配列をpKS601に移
し変えたpTH177、pTH133の挿入配列をpK
S601に移し変えたpTH178、pTH136の挿
入配列をpKS600に移し変えたpTH179、pT
H143の挿入配列をpKS600に移し変えたpTH
180、pTH145の挿入配列をpKS601に移し
変えたpTH181、pTH155の挿入配列をpKS
601に移し変えたpTH182、pTH167の挿入
配列をpKS601に移し変えたpTH183、pTH
171の挿入配列をpKS601に移し変えたpTH1
84、pTH176の挿入配列をpKS601に移し変
えたpTH185、pTH127の挿入配列をpKS6
03に移し変えたpTH186、pTH133の挿入配
列をpKS603に移し変えたpTH187、pTH1
42の挿入配列をpKS602に移し変えたpTH18
8、pTH143の挿入配列をpKS602に移し変え
たpTH189、pTH155の挿入配列をpKS60
3に移し変えたpTH190、pTH167の挿入配列
をpKS603に移し変えたpTH191、pTH17
1の挿入配列をpKS603に移し変えたpTH192
であり、pTH176の挿入配列をpKS603に移し
変えたpTH193、pTH127の挿入配列をpKS
605に移し変えたpTH194、pTH133の挿入
配列をpKS605に移し変えたpTH195、pTH
143の挿入配列をpKS604に移し変えたpTH1
96pTH155の挿入配列をpKS605に移し変え
たpTH197、pTH167の挿入配列をpKS60
5に移し変えたpTH198、pTH171の挿入配列
をpKS605に移し変えたpTH199、pTH17
6の挿入配列をpKS605に移し変えたpTH20
0、が導入された大腸菌XL1Blue株を、発現誘導
剤であるIPTG存在下で培養することにより、HIV
gp120のループ3ペプチド配列の全部、あるいは一
部をもつ人工タンパク質が得られた。
であり、それらのN末とC末には発現プラスミド由来ペ
プチド配列が融合している24種類の人工タンパク質の
アミノ酸配列を図6〜9に示す。なお、図6〜9には、
その重合体塩基配列の部分配列しかわからないものにつ
いては、N末領域のペプチド配列のみが示されている。
図6〜9に示されるpTH177の挿入ペプチド配列を
配列番号24に、pTH178の挿入ペプチド配列を配
列番号25に、pTH179の挿入ペプチド配列を配列
番号26に、pTH180の挿入ペプチド配列を配列番
号27に、pTH181の挿入ペプチド配列を配列番号
28に、pTH182の挿入ペプチド配列を配列番号2
9に、pTH183の挿入ペプチド配列を配列番号30
に、pTH184の挿入ペプチド配列を配列番号31
に、pTH185の挿入ペプチド配列を配列番号32
に、pTH186の挿入ペプチド配列を配列番号33
に、pTH187の挿入ペプチド配列を配列番号34
に、pTH188の挿入ペプチド配列を配列番号35
に、pTH189の挿入ペプチド配列を配列番号36
に、pTH190の挿入ペプチド配列を配列番号37
に、pTH191の挿入ペプチド配列を配列番号38
に、pTH192の挿入ペプチド配列を配列番号39
に、pTH193の挿入ペプチド配列を配列番号40
に、pTH194の挿入ペプチド配列を配列番号41
に、pTH195の挿入ペプチド配列を配列番号42
に、pTH196の挿入ペプチド配列を配列番号43
に、pTH197の挿入ペプチド配列を配列番号44
に、pTH198の挿入ペプチド配列を配列番号45
に、pTH199の挿入ペプチド配列を配列番号46
に、pTH200の挿入ペプチド配列を配列番号47に
示す。
現ベクターpTH177〜pTH200の翻訳産物の中
で、発現量の多いpTH177、pTH178、pTH
180、pTH181、pTH183、pTH184、
pTH185、pTH186、pTH187、pTH1
88、pTH189、pTH190、pTH192、p
TH194、pTH195、pTH196、pTH19
7、pTH198、pTH199、pTH200の各人
工タンパク質について、発現ベクターに由来するN末端
のポリヒスチジン残基を利用することによって次のよう
に精製した。各発現プラスミドをもつ大腸菌XL1Bl
ue株の500mlスケールの培養を37℃で開始し、
培養液のOD660が0.2に達した時点で発現誘導剤で
あるIPTGを0.24g/lになるように加え、さら
に3時間培養を続け、培養液を3,000gで10分間
遠心し、集菌した。
ァー(50mMのNaH2PO4(pH8.0)、10m
MのTris−HCl(pH8.0)、6Mの塩酸グア
ニジン、100mMのNaCl、1mMのPMSF)に
懸濁し、37℃で1時間インキュベートし、7,000
g×30分間遠心して得られた上清を、溶菌バッファー
で平衡化前処理した50%TALON樹脂(クロンテッ
ク社)液4mlと混合し、室温で20分間緩やかに攪拌
した後、700g×5分間遠心した。次いで、上清を捨
て、20mlの溶菌バッファーで洗浄し、室温で10分
間緩やかに攪拌した後、700g×5分間遠心して上清
を捨て溶菌バッファーによる洗浄を繰り返した。次に、
2mlの溶菌バッファーを加え、voltexで懸濁し、カラ
ムに充填し、6mlの洗浄バッファー(50mMのNa
H2PO4(pH7.0)、8Mの尿素、100mMのN
aCl、15mMのイミダゾール)で洗浄した後、溶出
バッファー(50mMのNaH2PO4(pH5.0)、
20mMのMES(pH5.0)、8Mの尿素、100
mMのNaCl、250mMのイミダゾール)でTAL
ON樹脂に結合した精製タンパク質を溶出させた。精製
タンパク質を含む溶出分画を50mMのTris−酢
酸、pH4.0、100mMのNaCl、1mMのED
TAで透析(ピアス社、分画分子量1万)し、限外濾過
膜(アミコン社、セントリップ、分画分子量1万)で濃
縮後、濃度を測定し精製標本とした。
〜25μgをそれぞれ5匹のマウス(BALB/c)、
合計100匹の脾臓に注射することにより免疫し、最終
免疫から5日目に血液をマウス網膜血管から採取した。
また、HIVgp120ループ3領域を含む40mer
の合成ペプチドINCTRPNNNTRKSIRIQR
GPGRTFNTIGKIGNMRQAHCNI(配列
番号48)を用いて同様に免疫した5匹のマウス(BA
LB/c)から採取した血液を対照(V3)として用い
た。次に、常法により、HIVgp120ループ3領域
を含む40merの合成ペプチドを用いたELISA実
験を行い、免疫誘導能力を評価した。ELISAは、9
6穴プレート(ファルコン社、3539)に上記合成ペプチ
ド(配列番号48)を固相化した後、マウス血清を一次
抗体として吸着させ、洗浄の後、二次抗体としてペルオ
キシダーゼ結合ヒツジ抗マウスIgG抗体(アマシャム
ファルマシアバイオテク社)を加え、洗浄の後、OPD
(o-Phenylenediamine)を基質として発色させ、波長4
92nmにおける吸光度を測定することにより行った。
0、pTH181、pTH184、pTH185、pT
H186、pTH188、pTH190、pTH192
からの精製タンパク質及び対照としてのHIVgp12
0ループ3領域を含む40merの合成ペプチドを免疫
原として用いた免疫実験の、それぞれ5匹の免疫マウス
から得た血清を2500倍希釈し、ELISAを行っ
た。結果を図10に示す。図10に示される結果は、こ
れらの人工タンパク質がマウスの生体内で異物として認
識され、免疫反応を誘導することを示している。また、
対照実験であるHIVgp120ループ3領域を含む4
0merの合成ペプチドで免疫したマウスからは該合成
ペプチドに対する抗血清は予想通りの結果が得られなか
った。
一抗原の5匹のマウス内で混合し、いろいろな希釈の後
にHIVgp120ループ3領域を含む40merの配
列をもつ合成ペプチドを抗原としたELISA実験を行
った結果を図11に示す。この結果は、人工タンパク質
のgp120ループ3配列に相当する部分に対する抗体
が多くのマウスで作られていることを示している。
6、pTH198、pTH199からの精製タンパク質
を用いた免疫実験の、それぞれ5匹の免疫マウスから得
た血清を別々に4000倍希釈し、HIVgp120ル
ープ3領域を含む40merの合成ペプチドを抗原とし
たELISAの結果を図12に示す。この結果は、人工
タンパク質のgp120ループ3配列に相当する部分に
対する抗体が多くのマウスで作られていることを示して
いる。
9、pTH197、pTH200からの精製タンパク質
を用いた免疫実験の、それぞれ5匹の免疫マウスから得
た血清を5000倍希釈し、HIVgp120ループ3
領域を含む40merの合成ペプチドを抗原としたEL
ISAの結果を図13に示す。
れた人工タンパク質を用いると、生体での体液性免疫を
誘導することができる。また、かかる人工タンパク質を
用いてマウスその他の動物を免疫することにより、前記
エピトープに対する抗体を簡便かつ効率的に製造するこ
とができ、得られた抗体は、抗体を用いた治療や抗体を
用いた診断に利用できる。前記人工タンパク質をコード
するDNAをDNAワクチンとして用いることにより、
生体での細胞性免疫を誘導することができる。そして、
これらの体液性免疫、細胞性免疫の誘導は、マラリアな
ど広い抗原に対するワクチンとして利用できることを示
している。さらに、人工タンパク質を発現する腸内細菌
等は脱感作・免疫寛容の誘導にも利用できる他、生体内
で免疫寛容状態のタンパク質(癌抗原や胎児抗原など)
に免疫反応を引き起こさせる手法としても利用できる。
工タンパク質が強い免疫誘導能力を獲得することを説明
するための図である。
ローの一例を示す図である。
るマイクロ遺伝子とそれがコードするアミノ酸配列を示
す図である。
工タンパク質をコードするDNAの一例を示す図であ
る。
工タンパク質をコードするDNAの一例を示す図であ
り、図4の続きである。
工タンパク質の一例を示す図である。
工タンパク質の一例を示す図であり、図6の続きであ
る。
工タンパク質の一例を示す図であり、図7の続きであ
る。
工タンパク質の一例を示す図であり、図8の続きであ
る。
人工タンパク質を用いて得られた抗血清のELISAの
結果を示す図である。
人工タンパク質を用いて得られた抗血清の種々の希釈物
のELISAの結果を示す図である。
他の人工タンパク質を用いて得られた抗血清のELIS
Aの結果を示す図である。
他の人工タンパク質を用いて得られた抗血清のELIS
Aの結果を示す図である。
Claims (24)
- 【請求項1】 ペプチド性エピトープのアミノ酸配列の
全部又はその一部を含むアミノ酸配列から構成されてい
ることを特徴とするエピトープの免疫原性が増強された
人工タンパク質。 - 【請求項2】 ペプチド性エピトープのアミノ酸配列の
全部又はその一部を含み、タンパク質の高次構造形成を
補助する性質が付与されたアミノ酸配列から構成されて
いることを特徴とする請求項1記載のエピトープの免疫
原性が増強された人工タンパク質。 - 【請求項3】 ペプチド性エピトープのアミノ酸配列の
全部又はその一部を含み、免疫担当細胞による抗原提示
処理を補助する性質が付与されたアミノ酸配列から構成
されていることを特徴とする請求項1記載のエピトープ
の免疫原性が増強された人工タンパク質。 - 【請求項4】 ペプチドタグ又はマーカータンパク質が
融合していることを特徴とする請求項1〜3のいずれか
記載のエピトープの免疫原性が増強された人工タンパク
質。 - 【請求項5】 ペプチドタグがポリヒスチジン残基であ
ることを特徴とする請求項4記載のエピトープの免疫原
性が増強された人工タンパク質。 - 【請求項6】 ペプチド性エピトープのアミノ酸配列
が、配列番号1に示されるアミノ酸配列であることを特
徴とする請求項1〜5のいずれか記載のエピトープの免
疫原性が増強された人工タンパク質。 - 【請求項7】 ペプチド性エピトープのアミノ酸配列の
全部又はその一部を含むアミノ酸配列が、配列番号24
〜47のいずれかに示されるアミノ酸配列であることを
特徴とする請求項1〜6のいずれか記載のエピトープの
免疫原性が増強された人工タンパク質。 - 【請求項8】 請求項1〜7のいずれか記載のエピトー
プの免疫原性が増強された人工タンパク質を含んでなる
ことを特徴とする免疫応答の誘導剤。 - 【請求項9】 免疫応答が体液性免疫であることを特徴
とする請求項8記載の免疫応答の誘導剤。 - 【請求項10】 免疫応答が細胞性免疫であることを特
徴とする請求項8記載の免疫応答の誘導剤。 - 【請求項11】 請求項1〜7のいずれか記載のエピト
ープの免疫原性が増強された人工タンパク質を抗原とし
て用いることを特徴とする抗体の製造方法。 - 【請求項12】 抗体がモノクローナル抗体であること
を特徴とする請求項11記載の抗体の製造方法。 - 【請求項13】 請求項11又は12記載の抗体の製造
方法により得られることを特徴とする抗体。 - 【請求項14】 請求項13記載の抗体を産生する細
胞。 - 【請求項15】 請求項1〜7のいずれか記載のエピト
ープの免疫原性が増強された人工タンパク質を発現する
ことができる発現系を含んでなる宿主細胞。 - 【請求項16】 腸内細菌であることを特徴とする請求
項15記載の宿主細胞。 - 【請求項17】 請求項16記載の腸内細菌を含んでな
ることを特徴とする脱感作・免疫寛容状態の誘導剤。 - 【請求項18】 請求項1〜7のいずれか記載のエピト
ープの免疫原性が増強された人工タンパク質をコードす
るDNA。 - 【請求項19】 塩基配列の読み枠を異にした場合、該
塩基配列の少なくとも1つの読み枠にペプチド性エピト
ープがコードされ、他の読み枠に該ペプチド性エピトー
プの抗原性を高めるような性質を付与しうるペプチドが
コードされていることを特徴とする請求項18記載のD
NA。 - 【請求項20】 請求項18又は19記載のDNAを含
んでなることを特徴とする免疫応答誘導用DNAワクチ
ン。 - 【請求項21】 免疫応答が体液性免疫であることを特
徴とする請求項20記載の免疫応答誘導用DNAワクチ
ン。 - 【請求項22】 免疫応答が細胞性免疫であることを特
徴とする請求項20記載の免疫応答誘導用DNAワクチ
ン。 - 【請求項23】 請求項1〜7のいずれか記載のエピト
ープの免疫原性が増強された人工タンパク質を有効成分
として含有する機能性食品。 - 【請求項24】 脱感作・免疫寛容状態を誘導すること
ができる請求項23記載の機能性食品。
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