JP2001527071A - レチノイド拮抗薬様活性を有するベンゾピランおよびベンゾチオピラン誘導体 - Google Patents
レチノイド拮抗薬様活性を有するベンゾピランおよびベンゾチオピラン誘導体Info
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Abstract
Description
ド拮抗薬用生物活性を有する新規な化合物に関する。さらに詳しくは、本発明は
、置換3-オキソ-1-プロペニル基で置換されてもよい4-アリール置換ベンゾピラ ン、4-アリール置換ベンゾチオピラン、4-アリール置換1,2-ジヒドロキノリンお
よび8-アリール置換5,6-ジヒドロナフタレンの誘導体に関する。これらの新規な
化合物は、レチノイド拮抗薬様活性を有し、レチノイドとビタミンAとビタミン
A前駆体が哺乳類に誘発する毒性を治療または予防するのに有用であり、かつレ
チノイド類で哺乳類を処置する際の有害なもしくは望ましくない副作用を予防し
または改善する助剤として有用である。さらに、本発明は、他のレチノイド類お
よびステロイドホルモン類の生物活性を増大しかつリガンド未結合(unliganded
)のレチノイン酸受容体の基礎活性を阻害するレチノイドネガティブホルモン類
(retinoid negative hormones)の使用に関する。
びその外の国の多数の特許、および科学刊行物に記載されている。レチノイド様
活性は、多種類の疾患と病状に伴う症状を治癒または改善するためヒトを含む哺
乳類を治療するのに有用であると、一般に知られ、認識されている。
分化に対する作用を含む広範囲の活性を有していることが知られている。この活
性があるため、レチノイド類は、皮膚科の障害と癌を含む各種の疾患を治療する
のに有用になっている。従来技術によって、レチノイド様生物活性を有する化学
化合物が多数開発されており、これら化合物が記載されている多数の特許および
化学文献がある。関連する特許文献としては次のものがある。すなわち、米国特
許第4,980,369号、同第5,006,550号、同第5,015,658号、同第5,045,551号、同第
5,089,509号、同第5,134,159号、同第5,162,546号、同第5,234,926号、同第5,24
8,777号、同第5,264,578号、同第5,272,156号、同第5,278,318号、同第5,324,74
4号、同第5,346,895号、同第5,346,915号、同第5,348,972号、同第5,348,975号 、同第5,380,877号、同第5,399,561号、同第5,407,937号(本願と同じ譲受人に 譲渡されている)およびそれらにおいて引用されている特許と刊行物があるが、
それらは特に、レチノイド様生物活性を有するクロマン、チオクロマンおよび1,
2,3,4-テトラヒドロキノリン誘導体を記載しまたは、これら化合物に関するもの
である。さらに、本願の譲受人に譲渡され、レチノイド様活性を有するその外の
化合物に関するいくつもの出願が係属中である。
,326,055号(Loeligerら)、同第5,130,335号(Chandraratnaら)、同第5,037,8
25号(Klausら)、同第5,231,113号(Chandraratnaら)、同第5,324,840号(Cha
ndraratna)、同第5,344,959号(Chandraratna)、同第5,130,335号(Chandrara
tnaら);ヨーロッパ特許願公開第0176034A号(Wuestら)、同第0350846A号(Kl
ausら)、同第0176032A号(Frickelら)、同第0176033A号(Frickelら)、同第0
253302A号(Klausら)、同第0303915A号(Bryceら);英国特許願第GB2190378A 号(Klausら);ドイツ特許願第DE3715955A1号(Klausら)、同第DE36024731A1 号(Wuestら);および論文類:J. Amer. Acad. Derm.、15巻、756〜764頁、198
6年(Spornら)、Chem. Pharm. Bull.、33巻、404〜407頁、1985年(Shudoら) 、J. Med. Chem.、31巻、2182〜2192頁、1988年(Kagechikaら)、「Chemistry
and Biology of Synthetic Retinoids」、CRC Press Inc.、 1990年、334〜335 頁、354頁(Dawsonら著)は、テトラヒドロナフチル部分を含有し、レチノイド 様のまたはレチノイドに関連する生物活性を有する化合物を記載しまたはこれら
化合物に関するものである。米国特許第4,391,731号(Bollerら)には、液晶組 成物に用いて有効なテトラヒドロナフタレン誘導体が記載されている。
活性を有する特定の6-(3-オキソ-1-プロペニル)-1,2,3,4-テトラメチル-1,2,3
,4-テトラヒドロナフタレン誘導体および類縁フラボン化合物が記載されている 。Shudoらの論文:Chem. Pharm. Bull.、33巻、404頁、1985年およびJettenらの
論文:Cancer Research、47巻、3523頁、1987頁は、その外の3-オキソ-1-プロペ
ニル誘導体(カルコン化合物)およびそれらのレチノイド様もしくは類縁の生物
活性を記載しまたはこれらに関するものである。
のレベルで、頭痛、催奇形、皮膚粘膜毒性、筋骨格系毒性、異常脂肪血症(dysl
ipidemias)、皮膚刺激、頭痛および肝毒性を含む多くの望ましくない副作用も 起こす。これらの副作用のため、疾患を処置する場合のレチノイドの受容性と有
用性が制限されている。
ていることは、現在、当該技術分野で公知である。その2種の主要な型またはフ
ァミリーの受容体は、それぞれRARおよびRXRと呼称されている。これら各
型の中には亜型があり、RARファミリー中の亜型はRAR−α、RAR−βお
よびRAR−γと呼称され、RXRファミリー中の亜型はRXR−α、RXR−
βおよびRXR−γと呼称されている。両ファミリーの受容体は、それらのリガ
ンド結合特異性に基づいて互いに識別できる転写因子である。オール-trans-R A(ATRA)は、RAR−α、RAR−βおよびRAR−γを含むクラスのレ
チノイン酸受容体(RAR)と結合して活性化する。異なるリガンドの9-cis-R
A(9C−RA)は、RARおよびレチノイドX受容体(RXR)ファミリーの
メンバーの両者に結合して活性化する。
各種の組織と臓器に均一に分布していないことは当該技術分野で確認されている
。さらに、レチノイドの多くの有害作用が、1種以上のRAR受容体の亜型によ
って仲介されることも当該技術分野で一般に容認されている。したがって、レチ
ノイド受容体において作動薬様活性を有する化合物の中で、受容体の主要な型も
しくはファミリーの一つに対する特異性もしくは選択性、さらには受容体のファ
ミリー内の1種以上の亜型に対する特異性もしくは選択性を有するものは、医薬
特性が望ましいと考えられる。
R受容体に結合する化合物が当該技術分野で比較的最近に開発されている。した
がって、「レチノイド」応答を引き起こさずにRAR受容体に結合するこれらの
化合物または薬剤は、生物学的検定法および生物系でRAR作動薬の活性を(多
少)遮断することができる。さらに詳しく述べると、この技術分野の科学文献と
特許文献に関して、PCT特許願公開第WO94/14777号には、RARレチノイ ド受容体に結合する特定の複素環式カルボン酸誘導体が記載され、これら化合物
は、該出願において、例えば痙瘡、乾癬、リウマチ様関節炎およびウイルス感染
症などの特定の疾患または病状を治療するのに有用であると述べられている。Yo
shimuraらの論文:J. Med. Chem.、38巻、3163〜3173頁、1995年に類似のことが
開示されている。Kanekoら、Med. Chem. Res.、1巻、220〜225頁、1991年;Apfe
lら、Proc. Natl. Acad. Sci. USA、89巻、7129〜7133頁、Augusty 1992 Cell B
iology;Eckhardtら、Toxicology Letters、70巻、299〜308頁、1994年;Keidel
ら、Moleculay and Cellular Biology、14巻、287〜298頁、1994年;およびEyro
llesら、J. Med. Chem.、37巻、1508〜1517頁、1994年には、1種以上のRAR レチノイド亜型において拮抗薬様活性を有する化合物が記載されている。
剰服用または高レベルのビタミンAを含有する特定の魚と動物の肝臓の摂取が原
因で、ビタミンAまたはビタミンA前駆体の過量によって重篤な症状がときどき
起こる。ビタミンA過剰症症候群にみられる慢性または急性の毒性としては、頭
痛、皮膚剥離、骨毒性、異常脂肪血症などがある。近年、ビタミンA類似体すな
わちレチノイド類による毒性は、高ビタミンA症症候群の毒性を事実上再現して
おり、このことは、共通の生物学的原因、すなわちRARの活性化を示唆してい
ることが明らかになってきている。これらの毒性は現在、主として、補助的(su
pportive)手段によって、および原因物質がたとえ肝臓、ビタミン剤またはレチ
ノイド類であろうと、これら物質にそれ以上さらされるのをひかえることによっ
て治療されている。これら毒性のいくつかは、時間の経過によって消失するが、
他の毒性(例えば、早期骨端板閉鎖)は永久的である。
るが、既存の何千もの化学薬剤のうち、わずかに約24種の化学薬剤もしくは化学
薬剤のクラスしか、特異的な公知の解毒薬がない。特異的な解毒剤は、過ビタミ
ンA症およびレチノイド毒性を処置するのに価値があることはたしかである。実
際に、臨床で使用される強力なレチノイド類が増加しているので、レチノイド中
毒に対する特異的な解毒薬は人命を助ける薬剤でもある。
は、[C(R1)2]n、ここでR1は独立してHまたは炭素原子数1〜6のアルキル、お
よびnは0〜2の整数; R2は、水素、炭素原子数1〜6の低級アルキル、F、Cl、Br、I、CF3、炭素原 子数1〜6のフッ素置換アルキル、OH、SH、炭素原子数1〜6のアルコキシ、ま
たは炭素原子数1〜6のアルキルチオ; R3は、水素、炭素原子数1〜6の低級アルキルまたはF; mは、0〜3の整数; oは、0〜3の整数; Zは、−C≡C−、 −N=N−、 −N=CR1−、 −CR1=N−、 −(CR1=CR1)n ’ −、ここでn’は0〜5の整数、 −CO−NR1−、 −CS−NR1−、 −NR1−CO、 −NR1−CS、 −COO−、 −OCO−、 −CSO−、 −OCS−; Yは、フェニルもしくはナフチル基、またはピリジル、チエニル、フリル、ピ
リダジニル、ピリミジニル、ピラジニル、チアゾリル、オキサゾリル、イミダゾ
リルおよびピラゾリルからなる群より選択されるヘテロアリール、ここで、フェ
ニルおよびヘテロアリール基は場合により1または2のR2基で置換される、あ るいは、Zが−(CR1=CR1)n ’ −およびn’が3、4または5の場合、 Yは前記−(CR2=CR2)n ’ −基とBとの間の直接原子価結合; Aは、(CH2)q、ここでqは0〜5、炭素原子数3〜6の低級分岐鎖アルキ
ル、炭素原子数3〜6のシクロアルキル、炭素原子数2〜6で1または2の二重
結合を有するアルケニル、炭素原子数2〜6で1または2の三重結合を有するア
ルキニル、 Bは、水素、COOHもしくは薬学的に許容できるその塩、COOR8、CO NR9R10、CH2OH、CH2OR11、CH2OCOR11、CHO、CH(OR12 )2、CHOR13O、COR7、CR7(OR12)2、CR7OR13O、またはトリ 低級アルキルシリル、ここでR7は炭素原子数1〜5のアルキル、シクロアルキ ルもしくはアルケニル基、R8は炭素原子数1〜10のアルキル基もしくはトリ メチルシリルアルキル、ここでアルキル基は1〜10の炭素原子を有する、また
は炭素原子数5〜10のシクロアルキル基、あるいはR8は、フェニルまたは低 級アルキルフェニル、R9およびR10は独立して水素、炭素原子数1〜10のア ルキル基、または炭素原子数5〜10のシクロアルキル基、またはフェニルもし
くは低級アルキルフェニル、R11は低級アルキル、フェニルもしくは低級アルキ
ルフェニル、R12は低級アルキル、およびR13は炭素原子数2〜5の2価アルキ ル基、および R14は、(R15)r−フェニル、(R15)r−ナフチル、または(R15)r−ヘ テロアリール、ここでヘテロアリール基はO、SおよびNからなる群より選択さ
れる1〜3のヘテロ原子を有し、rは0〜5の整数、および R15は、独立して、H、F、Cl、Br、I、NO2、N(R8)2、NH(R8)、
COR8、NR8CON(R8)2、OH、OCOR8、OR8、CN、炭素原子数1〜
10のアルキル基、炭素原子数1〜10のフッ素置換アルキル基、炭素原子数1
〜10で1〜3の二重結合を有するアルケニル基、炭素原子数1〜10で1〜3
の三重結合を有するアルキニル基、またはトリアルキルシリルもしくはトリアル
キルシリルオキシ基、ここでアルキル基は独立して1〜6の炭素原子を有する。)
。
は、[C(R1)2]n、ここでR1は独立してHまたは炭素原子数1〜6のアルキル、お
よびnは0〜2の整数; R2は、水素、炭素原子数1〜6の低級アルキル、F、Cl、Br、I、CF3、炭素原 子数1〜6のフッ素置換アルキル、OH、SH、炭素原子数1〜6のアルコキシ、ま
たは炭素原子数1〜6のアルキルチオ; R3は、水素、炭素原子数1〜6の低級アルキルまたはF; mは、0〜3の整数; oは、0〜3の整数; Yは、フェニルもしくはナフチル基、またはピリジル、チエニル、フリル、ピ
リダジニル、ピリミジニル、ピラジニル、チアゾリル、オキサゾリル、イミダゾ
リルおよびピラゾリルからなる群より選択されるヘテロアリール、ここで、フェ
ニルおよびヘテロアリール基は場合により1または2のR2基で置換される; Aは、(CH2)q、ここでqは0〜5、炭素原子数3〜6の低級分岐鎖アルキ
ル、炭素原子数3〜6のシクロアルキル、炭素原子数2〜6で1または2の二重
結合を有するアルケニル、炭素原子数2〜6で1または2の三重結合を有するア
ルキニル、 Bは、水素、COOHもしくは薬学的に許容できるその塩、COOR8、CO NR9R10、CH2OH、CH2OR11、CH2OCOR11、CHO、CH(OR12 )2、CHOR13O、COR7、CR7(OR12)2、CR7OR13O、またはトリ 低級アルキルシリル、ここでR7は炭素原子数1〜5のアルキル、シクロアルキ ルもしくはアルケニル基、R8は炭素原子数1〜10のアルキル基もしくはトリ メチルシリルアルキル、ここでアルキル基は1〜10の炭素原子を有する、また
は炭素原子数5〜10のシクロアルキル基、あるいはR8は、フェニルまたは低 級アルキルフェニル、R9およびR10は独立して水素、炭素原子数1〜10のア ルキル基、または炭素原子数5〜10のシクロアルキル基、またはフェニルもし
くは低級アルキルフェニル、R11は低級アルキル、フェニルもしくは低級アルキ
ルフェニル、R12は低級アルキル、およびR13は炭素原子数2〜5の2価アルキ ル基、および R14は、(R15)r−フェニル、(R15)r−ナフチル、または(R15)r−ヘ テロアリール、ここでヘテロアリール基はO、SおよびNからなる群より選択さ
れる1〜3のヘテロ原子を有し、rは0〜5の整数、および R15は、独立して、H、F、Cl、Br、I、NO2、N(R8)2、N(R8)CO
R8、NR8CON(R8)2、OH、OCOR8、OR8、CN、炭素原子数1〜1
0のアルキル基、炭素原子数1〜10のフッ素置換アルキル基、炭素原子数1〜
10で1〜3の二重結合を有するアルケニル基、炭素原子数1〜10で1〜3の
三重結合を有するアルキニル基、またはトリアルキルシリルもしくはトリアルキ
ルシリルオキシ基、ここでアルキル基は独立して1〜6の炭素原子を有する; R16は、Hまたは炭素原子数1〜6の低級アルキル; R17は、H、炭素原子数1〜6の低級アルキル、OHまたはOCOR11;およ
び pは0または1で、pが1のときR17置換基は存在せず、mが0〜2の整数で
ある。)。
れるレチノイド類のある種の望ましくない副作用を予防するのに有効である。こ
の目的を達成するため、本発明の化合物はレチノイド類と同時に投与してもよい
。また、本発明の化合物は、レチノイド医薬またはビタミンAの過量または中毒
で起こる急性または慢性の毒性を処置するのに有用である。
つかを遮断して前記受容体部位に対するRAR作動薬の作用を防止もしくは低下
させるためのRAR拮抗薬の使用に関する。さらに詳しくは、本発明は、レチノ
イド(ビタミンAまたはビタミンA前駆体を含む)の慢性または急性の毒性およ
びレチノイド療法の副作用の(a)予防および(b)治療のためのRAR拮抗薬の使用
に関する。
状はレチノイン酸受容体の活性に関連がある。この方法では、以下のレチノイン
酸受容体の亜型:RARα、RARβおよびRARγのうちの一つに結合できる
レチノイド拮抗剤またはネガティブホルモンを哺乳類に投与する。この拮抗剤ま
たはネガティブホルモンは、哺乳類の病状に対して処置効果を与える医薬として
有効な量で投与する。
として、RAR拮抗薬を、哺乳類に対し、経腸ですなわち胃内挿管法もしくは食
物/水の混合物によって、または非経口で、例えば腹腔内、筋肉内、皮下、局所
などに投与することができる。投与経路にとって唯一必要なことは、拮抗薬を標
的組織まで送達しなければならないことである。RAR拮抗薬は、それ自体だけ
でまたは賦形剤と混合して配合することができる。RAR拮抗薬は、例えば経腸
で使用する場合、配合物中で溶液である必要はない。
るレチノイド医薬の1種以上の副作用を予防するため、同様に経腸または非経口
で投与することができる。RAR拮抗薬およびRAR作動薬は、同じ投与経路で
投与する必要はない。重要なことは、対象の組織がRAR作動薬に暴露されてい
る間、充分な量のRAR拮抗薬が、対象の組織中に連続的に存在していることで
ある。レチノイドの毒性を予防するには、RAR作動薬で処置するのと同時にま
たはその処置を行う前に、RAR拮抗薬を投与することが最も望ましい。多くの
場合、RAR拮抗薬は、RAR作動薬とは異なる経路で投与される。例えば経腸
投与されるレチノイドの皮膚に対する望ましくない作用は、局所投与されるRA
R拮抗薬によって予防または改善できる。
の方法は以下のステップで構成されている。すなわち組換えレチノイド受容体の
結合に転写で応答するリポーター遺伝子を含有するトランスフェクトされた細胞
を得て、その組換えレチノイド受容体は元の(intact)レチノイド受容体のDNA 結合ドメインに対しC末端側に位置するタンパク質ドメインを少なくとも有し; 未処理のトランスフェクトされた細胞でのリポーター遺伝子の発現の基本レベル
を測定し、その未処理のトランスフェクトされた細胞はレチノイドを添加せずに
増殖させ;トランスフェクトされた細胞を、ネガティブホルモン活性について試
験されるレチノイド化合物で処理し;処理された細胞内でのリポーター遺伝子の
発現のレベルを測定し;処理された細胞内および未処理細胞内で測定されたリポ
ーター遺伝子の発現のレベルを比較し;次いで未処理細胞内で測定されたリポー
ター遺伝子の発現の基本レベルと比べて低いレベルで、処理された細胞内でリポ
ーター遺伝子を発現させるレチノイド化合物をレチノイドネガティブホルモンと
して同定する;ステップで構成されている。この方法の特定の好ましい実施態様
で、元の受容体はRAR-α、RAR-βまたはRAR-γの亜型である。他の実施態様では
、元の受容体がRXR-α、RXR-βまたはRXR-γの亜型である。組換え受容体は組換
えRAR受容体でもRXR受容体でもよい。いくつかの実施態様では、組換え受容体が
、構成転写アクチベータードメイン(constitutive transcription activator d
omain)を有するキメラレチノイド受容体である。前記構成転写アクチベーター ドメインは、実効負電荷を有する複数のアミノ酸を有し得るが、または例えば単
純ヘルペスウイルスVP-16転写アクチベータードメインのようなウイルスの転写 アクチベータードメインのアミノ酸配列を有していてもよい。構成転写アクチベ
ータードメインが実効負電荷を有する実施態様では、レチノイド受容体は、組換
え体で、かつそれから、レチノイン酸応答要素以外のcis-調節要素に対して特異
的なDNA結合ドメインのようなDNA結合ドメインを除いたものでもよい。これらの
要素としてはエストロゲン応答要素がある。前記トランスフェクトされた細胞は
、内在性レチノイド類を実質的に欠いた増殖培地、例えば活性炭で抽出した血清
を含有する増殖培地の中で増殖させることが好ましい。この方法の場合、リポー
ター遺伝子はルシフェラーゼ遺伝子であってよい。この場合、その測定ステップ
は発光測定で行うことができる。また、リポーター遺伝子はβ-ガラクトシダー ゼ遺伝子でもよく、この場合、測定ステップとしてβ-ガラクトシダーゼ検定法 を利用する。トランスフェクトされた細胞は、例えばミドリザルの細胞またはヒ
トの細胞などのトランスフェクトされた哺乳類の細胞でよい。
体作動薬の薬理活性を高める方法である。この方法では、ステロイドスーパーフ
ァミリー受容体作動薬を、前記ステロイドスーパーファミリー受容体作動薬の薬
理活性を高めるのに医薬として有効な投与量のレチノイドネガティブホルモンを
含有してなる組成物と同時に、哺乳類に投与する。その薬理活性は、生体外での
リポーター遺伝子トランスアクチベーション検定法で、例えば抗-AP-1活性を測 定することによって測定できる。高められる薬理活性は、例えば網膜色素上皮で
測定可能な種類の活性などの抗増殖活性でよい。ステロイドスーパーファミリー
受容体作動薬は、以下のものであってよい:レチノイド受容体作動薬、ビタミン
D受容体作動薬、グルココルチコイド受容体作動薬、甲状腺ホルモン受容体作動 薬、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体作動薬(peroxisome proliferator-
activated receptor agonist)またはエストロゲン受容体作動薬。レチノイド受
容体作動薬は、例えばオールトランス-レチノイン酸または13-cisレチノイン酸 などのRAR作動薬であってよい。また、レチノイド受容体作動薬はRXR作動薬でも
よい。好ましいビタミンD受容体作動薬は1,25-ジヒドロキシビタミンD3である。
好ましいグルココルチコイド受容体作動薬はデキサメタゾンである。好ましい甲
状腺ホルモン受容体作動薬は3,3',5-トリヨードチロニンである。レチノイドネ ガティブホルモンはRAR特異的レチノイドネガティブホルモンであり、解離定数 が30nMより低いかまたはほぼ等しいものが好ましい。RAR特異的レチノイドネガ ティブホルモンの例としては、AGN193109,AGN193385,AGN193389およびAGN193871
がある。レチノイドネガティブホルモンの医薬として有効な投与量を含有する組
成物は、ステロイドスーパーファミリー作動薬と同時に投与することができ、か
つ同時投与する前に混合しておいてもよい。また、これらは別個の組成物として
同時に投与してもよい。
型調節遺伝子の有意な転写活性化を起こさない化学薬剤と定義する。通常、拮抗
薬は作動薬の活性を阻害する化学薬剤である。したがって受容体拮抗薬の活性は
通常、作動薬の活性を阻害するその性能によって測定される。
上に結合し、かつ受容体同時トランスフェクション検定法でRAR亜型調節遺伝子 の転写活性化を起こす化学薬剤と定義する。用語”RAR薬剤”には、RAR例えばRX
R受容体に加えて他の受容体に結合しおよび/またはこれら受容体を活性化し得 る化学薬剤が含まれる。
リガンドも存在しないときにおこる基本的状態に比べて不活性な状態にする、そ
の受容体のリガンドである。したがって、拮抗薬は作動薬の活性を阻害できるが
、ネガティブホルモンは、作動薬が存在していないときに受容体のコンフォメー
ションを変えることができるリガンドである。ネガティブホルモンすなわち逆作
動薬の概念はBondらが研究してNature、374巻、272頁、1995年に報告したもので
ある。さらに具体的に述べると、Bondらは、リガンド未結合のβ2-アドレナリン
受容体が、不活性なコンフォメーションと自発的に活性なコンフォメーションの
間の平衡状態で存在しているということを提案した。作動薬は、受容体を、活性
コンフォメーションに安定化すると提案されている。逆に、逆作動薬は、不活性
な受容体のコンフォメーションを安定化すると考えられている。したがって、拮
抗薬は、作動薬を阻害することによってその活性を示すが、ネガティブホルモン
は、さらに、作動薬が存在しないときに、リガンド未結合受容体が活性コンフォ
メーションに自発的に変換するのを阻害することによって、その活性を示すこと
ができる。拮抗薬の一部だけがネガティブホルモンとして作動し得る。本願で開
示されているように、AGN193109は、拮抗薬でありかつネガティブホルモンであ る。現在まで、ネガティブホルモン活性を有するレチノイド類は外に報告されて
いない。
種の別個の化学物質を生体外または生体内にかかわらず送達することを意味する
。同時投与とは、別個の薬剤の同時送達;薬剤の混合物の同時送達;および最初
の薬剤を送達し次に第二の薬剤を送達することを意味する。すべての場合、同時
投与される薬剤は、互いに協同して作動させることを目的とする薬剤である。
知られているすべての基を意味しカバーしている。用語アルケニルは、1個以上 の不飽和部位を有する直鎖アルケニル、分枝鎖アルケニルおよびシクロアルケニ
ル基を意味しカバーしている。同様に、用語アルキニルは、1個以上の三重結合 を有する直鎖アルキニルおよび分枝鎖アルキニル基を意味しカバーしている。
合は1〜6個の炭素原子を有するアルキル基、および低級分枝鎖アルキル基とシク
ロアルキル基の場合は3〜6個の炭素原子を有する基を意味する。低級アルケニル
は、同様に、直鎖低級アルケニル基の場合は2〜6個の炭素原子を有する基、分枝
鎖およびシクロ低級アルケニル基の場合は3〜6個の炭素原子を有する基と定義す
る。低級アルキニルも同様に、直鎖低級アルキニル基の場合は2〜6個の炭素原子
を有する基、分枝鎖低級アルキニル基の場合は4〜6個の炭素原子を有する基と定
義する。
うな用語の定義内に入る化合物を意味しカバーしている。このエステルという用
語には有機と無機のエステルが含まれている。(式1または式101の)Bが-COOHの
場合、この用語は、この官能基を、アルコール類またはチオール類で、好ましく
は1〜6個を炭素原子を有する脂肪族アルコール類で処理して誘導される生成物を
カバーしている。エステルがBが-CH2OHである化合物から誘導される場合、この 用語は、リンをベースとする酸および硫黄をベースとする酸を包含するエステル
を生成可能な有機酸から誘導される化合物;または式:-CH2OCOR11(式中、R11 は置換もしくは未置換の脂肪族、芳香族、ヘテロ芳香族また脂肪族芳香族の基で
あって好ましくはその脂肪族部分に1〜6個の炭素原子を有する基である)で表さ
れる化合物をカバーしている。
有する飽和脂肪族のアルコール類もしくは酸類、または5〜10個の炭素原子を含 有する環式もしくは飽和脂肪族環式のアルコール類と酸類から誘導される。特に
好ましい脂肪族エステルは、低級アルキルの酸とアルコールから誘導されるエス
テルである。また、フェニルもしくは低級アルキルフェニルのエステル類も好ま
しい。
る。この場合、この用語には、未置換アミド類およびすべての脂肪族と芳香族の
モノ−とジ−置換アミド類が含まれている。本願では特にことわらない限り、好
ましいアミド類は、10個以下の炭素原子を有する飽和脂肪族基または5〜10個の 炭素原子を有する環式基もしくは飽和脂肪族環式基から誘導されるモノ−および
ジ−置換アミド類である。特に好ましいアミド類は、置換および未置換の低級ア
ルキルアミンから誘導されるアミド類である。置換および未置換のフェニルアミ
ン類または低級アルキルフェニルアミン類から誘導されるモノ−およびジ−置換
アミド類も好ましい。未置換アミド類も好ましい。
を含有している。ここでRは低級アルキルである。Kは-OR7Oでもよく、そのR7は2
〜5個の炭素原子を含有する直鎖または分枝鎖の低級アルキルである。
本発明のどの化合物にも製造できる。医薬として許容される塩は、親化合物の活
性を保持し、かつそれが投与される患者およびそれが投与される状況で有害なま
たは不利な作用を与えない塩である。
その塩は一価または多価のイオンであり得る。特に重要なのは、無機イオンのナ
トリウム、カリウム、カルシウムおよびマグネシウムである。有機塩は、アミン
類、特にモノ−、ジ−およびトリ−アルキルアミン類またはエタノールアミン類
のようなアンモニウム塩で製造することができる。塩類は、カフェイン、トロメ
タミンおよび類似分子でも製造することができる。酸付加塩を形成することがで
きるほど十分に塩基性の窒素が存在している場合、酸付加塩は無機もしくは有機
の酸またはヨウ化メチルのようなアルキル化剤で製造することができる。好まし
い塩は、塩酸、硫酸またはリン酸のような無機酸で製造することができる。例え
ばモノ−、ジ−またはトリ−酸などの多数の簡単な有機酸のどれでも使用ができ
る。
本発明の化合物は、1個以上のキラル中心をもち得るので、エナンチオマーおよ びジアステレオマーの形態で存在し得る。本発明の範囲は、このようなすべての
異性体自体、ならびにcis異性体とtrans異性体の混合物、ジアステレオマーの混
合物およびエナンチオマー(光学異性体)のラセミ混合物を含むものとする。本
願において、化合物(または不斉炭素原子)の立体配置(cis、transまたはRも しくはS)について特に言及していない場合、かような異性体の混合物または異 性体のいずれか一方を意味するものとする。
ルまたはフリルである化合物である。さらに好ましいのはYがフェニルまたはピ リジルの化合物でありさらに一層好ましいのはYがフェニルの化合物である。Y(
フェニル)基およびY(ピリジル)基の置換に関する限り、前記フェニル基がZ基
とA-B基によって1,4(パラ)置換されている場合、および前記ピリジン環がZ基 およびA-B基によって2,5置換されている場合の化合物が好ましい(”ピリジン”
命名法における2,5位の置換は、”ニコチン酸”命名法の6位の置換に相当する)
。本発明の好ましい化合物において、Y基に対する任意のR2置換基はないかまた は任意のR2置換基はフッ素(F)である。
容される塩である。
。しかし、nがゼロである化合物(インデンの誘導体)およびXがSまたはOである
化合物(ベンゾチオピランおよびベンゾピランの誘導体)も好ましい。Xが[C(R1 )2]nでnが1の場合、R1は、好ましくは1〜6個の炭素原子を有するアルキルであり
、さらに好ましくはメチルである。
CF3、またはアルコキシ(例えばOCH3)である。R3は、好ましくは水素またメチ ルであり、さらに好ましくは水素である。 Y基に結合するR2基は、それが存在する場合、好ましくはFまたはCF3である。
結合(Z=-C≡C-)である。しかし、ジアゾ基(Z=-N=N-);オレフィン基もしくは
ポリオレフィン基(Z=-(CR1=CR1)n’);エステル(Z=-COO-)、アミド(Z=-CO-N
R2-)もしくはチオアミド(Z=-CS-NR2-)結合のような”リンカー基”Zも好ましい
。
び2-チアゾリルである化合物が好ましい。R15基(R14基の置換基)は好ましくは
H、低級アルキル、トリフルオロメチル、塩素、低級アルコキシまたはヒドロキ シである。
。
後の実験の記載において挙げる。
ェニル基が-CR16=CR17-基およびA-B基で1,4(パラ)置換されている場合、およ
びそのピリジン環が-CR16=CR17-基およびA-B基で2,5置換されている場合が好ま
しい(”ピリジン”命名法の2,5位の置換は”ニコチン酸”命名法の6位置換に相
当する)。本発明の好ましい化合物には、Y基に任意のR2置換基がない。
ある。
しかし、XがSまたはOである化合物(ベンゾチオピランおよびベンゾピランの誘 導体)も好ましい。Xが[C(R1)2]nでnが1である場合、R1は好ましくは1〜6個の炭
素原子を有するアルキルであり、さらに好ましくはメチルである。
くはH、FまたはCF3である。R3は好ましくは水素またはメチルであり、さらに好 ましくは水素である。
び2-チアゾリルである化合物が好ましい。R15基(R14基の置換基)は好ましくは
H、低級アルキル、トリフルオロメチル、塩素、低級アルコキシまたはヒドロキ シである。
のことは、本発明の化合物が1種以上のRAR受容体の亜型に結合するが、同じ受容
体の作動薬が引き起こす応答を引き起さないことを意味する。本発明の化合物の
いくつかは、3種のRAR受容体の亜型(RAR-α、RAR-βおよびRAR-γ)すべての拮
抗薬であり、これらの化合物は”RAR汎拮抗薬(RAR pan antagonist)”と呼称 される。他のいくつかはRAR受容体亜型の1種または2種のみの拮抗薬である。本 発明の範囲内にあるいくつかの化合物は、1種もしくは2種のRAR受容体亜型の部 分的作動薬でありかつ残りのRAR受容体亜型の拮抗薬である。本発明の化合物はR
XR受容体類には結合しないので、RXRの作動薬でも拮抗薬でもない。
たがって使用される化合物は、1種または2種のRAR受容体亜型だけの拮抗薬であ ってもよい。本発明にしたがって使用されるいくつかの化合物は、1種もしくは2
種のRAR受容体亜型の部分作動薬でかつ残りのRAR受容体亜型の拮抗薬であっても
よい。このような化合物は、一般的に述べると、その拮抗薬作用が、過量投与に
よる中毒または単一もしくは複数の望ましくない副作用の主原因である単一もし
くは複数のRAR受容体亜型に対する作用である場合、本発明に有用である。これ に関連して、一般的に述べると、以下に述べる同時トランスフェクション検定法
において、化合物が、受容体調節リポーター遺伝子の有意な転写活性化を起こさ
ず約1μMより小さいKdで受容体に結合するならば、その化合物はその受容体亜型
の拮抗薬とみなされる。
ラ受容体トランスアクチベーション検定法であって、Feigner P. L.とHolm M.,
Focus、 11巻、2号、1989年で刊行された研究に基づいた検定法は、1994年8月18
日付けで公開されたPCT特許願公開第WO94/17796号に詳細に記載されている。後 者の刊行物は、米国特許第5,455,265号として発行された1993年2月11日付け出願
の米国特許願08/016,404号のPCT出願に相当するものである。PCT特許願公開第WO
94/17796号および米国特許第5,455,265号を引用により本発明の一部とする。化 合物は、本発明に有用なRAR拮抗剤として適合するには、上記検定法において、 与えられた受容体亜型(RAR-α、RAR-βまたはRAR-γ)を通じてリポーター遺伝
子を有意に活性化させてはならない。
型に結合する性能をそれぞれ測定するホロ受容体トランスアクチベーション検定
法とリガンド結合検定法は、1993年6月24日付けで公開されたPCT特許願公開第W
O93/11755号(特に30〜33頁と37〜41頁)に記載されており、この明細書も引用 により本発明の一部とする。またホロ受容体トランスアクチベーション検定法は
以下に説明する。
、Cell、68巻、397〜406頁のリン酸カルシウム法によって、RAR発現ベクターの うちの一つ(10ng)とともにRARリポータープラスミドMTV-TREp-LUC(50ng)を 用いてトランスフェクトした。RXR-αおよびRXR-γトランスアクチベーション検
定法の場合、適当なRXR発現ベクター(10ng)とともにRXR応答性リポータープラ
スミドCRBPII-tk-LUC(50ng)を、Heymanらの前掲報告とAllegrettoら、J. Biol
. Chem.、268巻、26625〜26633頁に記載されているのと実質的に同様に使用した
。RXR-βトランスアクチベーション検定法の場合は、RXR-β発現ベクター(10mg
)とともにRXR応答性リポータープラスミドCPRE-tkLUC(50mg)を上記のように して使用した。これらのリポーターはそれぞれ、ヒトCRBPII由来のDRI要素およ びプロモーター由来の特定のDRI要素を含有している(Mangelsdorfら著「The Re
tinoids: Biology, Chemistry and Medicine」、319〜349頁、米国ニューヨーク
所在のRaven Press Ltd.および前掲Heymanらの報告参照)。β-ガラクトシダー ゼ(50ng)発現ベクターを、トランスフェクションの内部対照として用いて、ト
ランスフェクション効率の変動を正規化した。これらの細胞を3組、6時間トラ
ンスフェクトし、続いてレチノイド類とともに36時間インキュベートし、次いで
抽出物を、ルシフェラーゼとβ-ガラクトシダーゼの活性について検定した。ホ ロ受容体のトランスアクチベーションの詳細な実験手順は、Heymanらの前掲報告
およびAllegrettoらの前記引用報告に記載されている。この検定法で得られた試
験結果はEC50の数値で示し、このことはキメラ受容体トランスアクチベーション
検定法でも同様である。Heymanら、Cell、68巻、397〜406頁;Allegrettoら、J.
Biol. Chem.、268巻、26625〜26633頁;およびMangelsdorfら著「The Retinoid
s: Biology, Chemistry and Medicine」、319〜349頁、米国ニューヨーク所在の
Raven Press Ltd.を、引用により本発明の一部とする。リガンド結合検定法の試
験結果はKdの数値で示す(Chengら、Biochemical Pharmacology、22巻、3099〜3
108頁参照;該文献を引用により本発明の一部とする)。
nら、J.Biol.Chem.271,22692−22696(1996)に記載され
ている。該文献を特に引用により本発明の一部とする。この検定法の詳細な説明
は、次にも行う。PGR検定法の結果も、EC50値(nM濃度)で示す。
−2752)によって、12ウェルプレート内で、RXRα発現プラスミドpR
S−hRXRα(0.1μg/ウェル)、およびRAR−P−GR発現プラスミド
の1種(0.05μg/ウェル)と共に、R5GレチノイドDNA応答エレメント
4コピーを含むルシフェラーゼリポータープラスミドMTV−4(R5G)−L
uc(0.7μg/ウェル)で、CV−1細胞(4×105細胞/ウェル)を一過性 にトランスフェクトした。3種の異なるRAR−P−GR発現プラスミドである
pRS−RARα−P−GR、pcDNA3−RARβ−P−GRおよびpcD
NA3−RARγ−P−GRはそれぞれ、RARα、RARβおよびRARγ受
容体を発現し、「P−ボックス」がグルココルチコイド受容体のそれに変えられ
た修飾DNA結合ドメインを有する。そのようなRAR−P−GR受容体は、R
XRとのヘテロ二量体としてDNAに結合する。特に、RAR−P−GR受容体
は、レチノイン酸応答エレメントR5Gに結合する。R5Gは、5塩基対で隔て
られた2つのRARハーフサイト(ヌクレオチド配列5'−GGTTCA−3')
から成り、3'−ハーフサイトがグルココルチコイド受容体ハーフサイトのそれ (5'−AGAACA−3')に変えられている。トランスフェクション効率の変
動を考慮して、β−ガラクトシダーゼ発現プラスミド(0.01μg/ウェル) を内部対照として用いた。この検定法の別法においては、96ウェルマイクロタ
イタープレートフォーマット(5000細胞/ウェル)において、上記と同様の
方法であるが、各ウェルに適用するDNA−リン酸カルシウム沈殿剤量を1/5
(100μlの代わりに20μl)とした。DNA沈殿剤導入の18時間後に、細
胞をリン酸緩衝塩類塩(PBS)で濯ぎ、10%活性炭抽出ウシ胎児血清(Gem
ini Bio−Products)を含有するD−MEM(Gibco−BRL)を加えた。数 値を示した化合物で、細胞を18時間処理した。PBSで濯いだ後、細胞を溶解
し、de Wetら(1987)Mol.Cell.Biol.7、725−737に記載の ようにしてルシフェラーゼ活性を測定した。ルシフェラーゼ値は、β−ガクトシ
ダーゼ活性に対して正規化した三測定値の平均±SEMとして示す。
たはRAR-γ)を通じてリポーター遺伝子を有意に活性化してはならない。そして
、化合物は、結合する受容体亜型の拮抗薬として機能できるためには、同じ受容
体亜型がその化合物によって有意に活性化されないという条件で、リガンド結合
検定法において、約1ミクロモルより小さいKd(Kd<1μM)で、RAR受容体亜型
の少なくとも一つと結合しなければならない。
ション検定法の試験結果を示す。第3a表は、第1a表の好ましい化合物につい
て、RAR−PGRホロ受容体トランスアクチベーション検定法の試験結果を示
す。第4表および第4a表は本発明の化合物例について、試験化合物の、オール
トランスレチノイン酸と比較したこの検定法での有効性(%で示す)を示してい
る。第5表および第5a表は本発明の化合物例のリガンド結合検定法の試験結果
を示す。
。
結果から分かるように、これらの表に示した本発明の化合物例は、RAR受容体亜 型の拮抗薬であるが、RXR受容体亜型に対し親和力がない(本発明の他の化合物 は、いくつかのRAR受容体亜型の拮抗薬であるがすべてのRAR受容体亜型の拮抗薬
ではなく、そしてそのほか残りのRAR亜型の作動薬である)。このような特性の ため、本発明の化合物は、生物学的検定法においてRAR作動薬の活性を遮断する のに使用できる。ヒトを含む哺乳類の場合、本発明の化合物は、RAR作動薬と同 時に投与することができ、薬理学的選択性または部位特異的送達によって、RAR 作動薬の有害作用を優先的に防止することができる。また、本発明の化合物は、
ビタミンA剤の過剰服用または高レベルのビタミンAを含有する特定の魚と動物の
肝臓の摂取が原因の急性または慢性のビタミンA過剰症を処置するのにも使用で きる。さらに、本発明の化合物は、レチノイド薬物によって起こる急性または慢
性の毒性を処置するのにも使用できる。ビタミンA過剰症候群に見られる毒性( 頭痛、皮膚剥離、骨毒性、異常脂肪血症)は、他のレチノイド類にみられる毒性
と類似しているかまたは同一であり、このことは共通の生物学的原因すなわちRA
R活性化を示唆していることは当該技術分野で公知である。本発明の化合物は、R
ARの活性化を遮断するので前記毒性を処置するのに適している。
化合物は、皮膚に局所投与して、RAR作動薬化合物を全身的に投与されている患 者または動物の皮膚刺激を遮断することができる。本発明の化合物は、既発のレ
チノイド毒性からの回復を促進し、同時投与されるレチノイド類によって起こる
高トリグリセリド血症を遮断し、かつRAR作動薬(レチノイド)によって誘発さ れる骨毒性を遮断することができる。
れら拮抗薬化合物は、ビタミンA、ビタミンA前駆体に対する解毒剤として、また
は過量投与もしくは長期間の暴露が原因のレチノイド毒性に対する解毒剤として
、原因因子(ビタミンA前駆体または他のレチノイド)の摂取を停止した後、経 腸でまたは局所に投与することができる。あるいは、これら拮抗薬化合物は、本
発明にしたがってレチノイド薬物と同時に投与され、この場合、レチノイド薬物
が処置面で利点を提供し、かつ同時投与されている拮抗薬がレチノイドの1種以 上の望ましくない副作用を改善もしくは除く。この種の利用の場合、拮抗薬は、
同時投与されるレチノイドを経腸で投与しながら、例えば局所に塗布されるクリ
ーム剤またはローション剤として、部位特異的な方法で投与することができる。
自体公知の医薬として許容される賦形剤と担体を用いて、例えば、錠剤、丸剤、
カプセル剤、液剤、懸濁剤、クリーム剤、軟膏剤、ゲル剤、軟膏剤、ローション
剤などの医薬組成物中に組み込まれる。例えば、局所投与用配合物の製法は、”
Remington's Pharmaceutical Science”第17版、米国ペンシルベニア州イースト
ン所在のMack Publishing Company発行に十分に記載されている。局所に適用す る場合、これら拮抗薬化合物は粉末またはスプレーとして特にエアゾルの形態で
投与することもできる。薬物を全身的に投与したい場合、薬物は、粉末薬、丸剤
、錠剤など、または経口投与用に適したシロップ剤もしくはエリキシル剤として
調合され得る。静脈内または腹腔内投与の場合、拮抗剤化合物は注射で投与でき
る液剤または懸濁剤として調製され得る。ある場合には、拮抗薬化合物を調合し
て注入剤にすることが有用であり得る。ある場合には、拮抗薬化合物を、坐剤の
形態で、または皮下に保持する徐放性製剤として、または筋肉内注射剤として調
合することが有用であり得る。
る。処置濃度は、特定の症状(例えばレチノイドもしくはビタミンAに対する暴 露が原因の毒性またはレチノイド薬物の副作用)を軽減するかまたはその拡大を
防止する濃度であり得る。レチノイドが誘発する毒性または副作用を本発明にし
たがって遮断するため拮抗薬化合物と同時に投与する場合、その拮抗薬化合物は
、皮膚刺激のようなある種の症状の発症を防ぐため、予防用に使用されると解す
べきである。
処置症状の重症度および処置に対する患者の感受性によって変わり得る。したが
って単一の濃度が等しく有効ではなく、慢性もしくは急性のレチノイド毒性また
は関連症状に応じて修正する必要があり得る。このような濃度は、ルーチン試験
によって決めることができる。しかし、配合物1 ml当たり0.01〜1.0 mgの拮抗薬
化合物を含有する配合物が、局所適用用に処置上有効であると考えられる。全身
的に投与する場合、体重1 kg当たり毎日0.01〜5 mgの量が処置効果をもたらすと
考えられる。
は、RAR作動薬によるRAR受容体の活性化の競合阻害である。RAR拮抗薬のこれら 二つの利用法の主な差は、レチノイドの毒性がすでに存在しているか否かという
差である。すぐ後に述べる実施例の大部分は、レチノイドの毒性を予防するため
レチノイド類を使用することに関するものであるが、ここに記載されている一般
的方法は、すでに存在しているレチノイドの毒性を治療するのにも利用できる。
タゴニストによる処置 AGN191183と命名した化合物、4−[(E)−2−(5,6,7,8−テト ラヒドロ−5,5,8,8−テトラメチルナフタレン−2−イル)プロペン−1−イ
ル]安息香酸は、強力なRARアゴニスト(作動薬)として先行技術において既知 である(例えば、米国特許第5324840号の発明の説明の部分および図2B を参照)。ここで、「AGN」番号は、化合物識別のために、本発明の法人譲受 人によって使用される任意に指定された参照番号である。
ル)エチニル]安息香酸(AGN192869、化合物60aとも言う)は、下記に
その製造方法が記載される化合物である。この化合物はRARアンタゴニスト( 拮抗薬)である。 無毛マウスにおいて、局所投与されるRARアゴニストAGN191183に
よって誘発される皮膚刺激を、これもまた局所投与されるAGN192869に
よってブロックすることができる。
の主観的評価によって、半定量的尺度に基づいて、皮膚刺激を測定した。単一数
の、局所刺激評点は、実験期間中に動物に誘発された皮膚刺激を要約するもので
ある。局所刺激評点は下記のように計算される。局所刺激評点は、複合薄片剥離
評点および複合表皮剥離評点の代数的合計である。薄片剥離および表皮剥離に関
する複合評点は、それぞれ0〜9および0〜8であり、最大重度(maximum sever
ity)、開始時間、および観察される薄片剥離および表皮剥離の平均重度を考慮に
入れる。
点付けし、より高い評点は重度が高いことを示す。複合評点の最大重度成分は、
観察中の所定動物に割り当てられる日々の最も高い重度評点である。 複合評点の開始時間成分に関しては、0〜4の評点が下記のように割り当てら
れる。
離評点の合計である。薬剤成分が初回処置時には効力を生じる場合が無かったの
で、処置の第一日目は数えない。
評点を合計し、2で割る。この結果を最大重度評点に加える。次に、複合の薄片
剥離および表皮剥離評点を合計して、合計局所刺激評点を得る。各動物が局所刺
激評点を与えられ、その値を、動物群の個々の評点の平均±SDとして表す。
との何らかの組み合わせによって、5日連続して局所的に処置した。各化合物の
投与量を表7に示す。4ml/kg(約0.1ml)の全容量で、背側の皮膚に処置を施す
。最後の処置、即ち第8日目以後、3日目まで(3日目を含む)、マウスを毎日観
察し、薄片剥離および表皮剥離に関して評点を付けた。
およびAGN192869(アンタゴニスト)[1.5mg/kg/d(グループF)]のどち
らも、観察できる局所刺激を生じなかった。AGN191183、RARアゴニ
ストは、0.025mg/kg/dの投与量において、中度の局所刺激を生じさせた。し
かし、AGN191183誘発局所刺激は、AGN192869によって投与量
依存的に阻害され、50倍モル過剰のAGN192869の存在下にほぼ完全に
刺激を排除した。このことは、局所RARアンタゴニストが、局所RARアゴニ
ストによって生じる皮膚刺激をブロックすることを示している。4−[(5,6− ジヒドロ−5,5−ジメチル−8−(4−メチルフェニル)−2−ナフタレニル)エ
チニル]安息香酸(AGN193109、本出願において化合物60とも言う)の ように、RARアンタゴニストがより強力である場合には、RARアゴニスト誘
発皮膚刺激の完全なブロックが、アンタゴニスト対アゴニストのより低いモル比
を用いても達成することができる。
タゴニストによるブロック 強力なRARアゴニストAGN191183(4−[(E)−2−(5,6,7,8−
テトラヒドロ−5,5,8,8−テトラメチルナフタレン−2−イル)プロペン−1
−イル]安息香酸)、および強力なRARアンタゴニスト、4−[(5,6−ジヒド ロ−5,5−ジメチル−8−(4−メチルフェニル)−2−ナフタレニル)エチニル
]安息香酸(AGN193109、化合物60)をこの実施例において使用し、被 験動物(マウス)の体重を、全身性のRARアゴニスト曝露のマーカーとして使用
した。
油(5ml/kg)中に懸濁されたAGN191183(0.26mg/kg)の胃内挿管によ って処置した。同時に、ビヒクル(97.6%アセトン/2.4%ジメチルスルホ キシド)、またはビヒクル(6ml/kg)中のAGN193109の溶液を用いて、背
側の皮膚において、マウスを局所的に処置した。種々の処置グループの具体的な
投与量を、第8表に示す。処置は、4日間連続して毎日行った。マウスの体重を
計り、最後の処置から1日後(その日を含む)まで、実施例1に記載のように、
局所刺激を毎日評価した。初期体重(第1日)から最終体重(第5日)を引き、初期
体重で割り、100%を掛けることによって、体重変化のパーセントを計算する
。局所刺激評点を、実施例1と同様に計算する。
ルおよび経口ビヒクル、即ち、それぞれアセトンおよびコーン油を用いる組み合
わせ処置は、局所刺激も体重減少も生じなかった。同様に、経口ビヒクルおよび
局所アンタゴニストAGN193109を用いる組み合わせ処置も、局所刺激も
体重減少も生じなかった。経口AGN191183は単独で、実質的な体重減少
および皮膚刺激を誘発した。AGN191183誘発皮膚刺激は、より少ない投
与量のAGN193109と組み合わせた場合に実質的に減少し、より多い投与
量のAGN193109において完全にブロックされた。AGN191183誘
発体重減少も、局所AGN193109によって、投与量に比例してブロックさ
れたが、ブロックは完全ではなかった。従って、局所AGN193109は、A
GN191183の皮膚毒性を、選択的にブロックした。おそらく、低レベルの
AGN193109が全身的に吸収され、従って、AGN191183によって
誘発される体重減少を部分的にブロックしたのであろう。しかし、そのような吸
収は、ヒトのような、より少ない浸透性の皮膚を有する種においては、かなり少
ないと考えられる。または、AGN193109による体重減少阻害は、AGN
誘発皮膚刺激の改善によるものであろう。
れたRARアゴニストによって誘発される皮膚刺激を選択的にブロックし得るこ
とを示す。
の促進 この実施例においては、RARアゴニストAGN191183を用いて体重減
少を誘発し、次に、被験動物を、ビヒクル、またはRARアンタゴニストAGN
193109のどちらかを用いて局所的に処置する。
日間、毎日、局所的に処置した。これらの同じマウスのグループ(n=5)を次に
、ビヒクル、またはビヒクル(4ml/kg)中のAGN193109のどちらかを用 いて、第3日目から開始して3日間連続して、毎日、局所的に処置した。第1日
目〜第5日目、および第8日目にマウスの体重を計った。体重を、平均±SDと
して表す。平均値を、無対の2テールt−検定(unpaired,two-tailed t-test)を
用いて、統計的に比較した。P<0.05において、差異が有意であると見なし た。
第1日目および第2日目のAGN191183処置の結果として、第2日目およ
び第3日目に対等に減少した。2つのグループの体重は、第1日目、第2日目、
または第3日目において、有意な差異がなかった。しかし、AGN193109
処置は、第4日目および第5日目において、ビヒクル処置に比較して有意に体重
を増加させた。これらのデータは、AGN191183誘発体重減少からの回復
が、続くAGN193109での処置によって促進されたことを示した。第8日
目においては、マウスの2つのグループ間において体重に有意な差はなく、この
ことは、所定の充分な時間を与えられた両グループにおいて、充分な回復が達成
されたことを示している。従って、RARアゴニスト誘発毒性がRARアンタゴ
ニスト処置に先行する場合でもさえも、即ち、RARアゴニスト毒性シナリオに
おいてさえも、RARアンタゴニストは、RARアゴニスト誘発毒性を軽減させ
るのに有効である。
トによって誘発される高トリグリセライド血症のブロック 5−[(E)−2−(5,6,7,8−テトラヒドロ−3,5,5,8,8−ペンタメチ ルナフタレン−2−イル)プロペン−1−イル]−2−チオフェンカルボン酸は、
既知のRAR/RXRパン−アゴニスト(pan-agonist)であり(米国特許第532 4840号、コラム32を参照)、AGN191659と命名されている。この 化合物を、ラットにおいて、急性高トリグリセライド血症を誘発させるために経
口的に使用し、AGN193109、化合物60を、経口的に同時投与して、A
GN191659誘発の高トリグリセライド血症をブロックした。
191659、AGN193109、またはAGN191659とAGN193
109との組み合わせを用いて、胃内挿管によって処置した。AGN19165
9とAGN193109は、コーン油中の微細懸濁液として与えた。投与量を含
む実験デザインを、第10表に示す。
ら血清を分離した。キットとして市販されており、96穴プレートフォーマット
に適合された標準分光光度エンドポイントアッセイを用いて、合計血清トリグリ
セリド(トリグリセリド+グリセロール)を測定した。血清トリグリセリドレベル
を、平均±SDとして表す。分散の一方向分析によって、平均値を統計的に比較
し、有意な差異が見い出された場合には、Dunnett試験を引き続いて行った。P <0.05において、差異が有意であると見なした。
で、血清トリグリセリドの有意な増加を生じさせた。AGN193109は単独
で、血清トリグリセリドを有意に増加させなかった。重要なことに、1:1およ
び5:1のモル比における、AGN193109とAGN191659との組み
合わせは、血清トリグリセリドを、対照標準と有意に異ならないレベルに減少さ
せた。
誘発される高トリグリセリド血症をブロックしうることを示す。
アゴニストによって誘発される骨毒性の阻止 実施例5はRARアンタゴニストがRARアゴニストによって誘発される骨毒性を阻
止しうることを示す。この実施例においては、モルモットに同時投与したRARア ゴニストAGN 1931183によって引き起こされた早発骨端軟骨の閉鎖を阻止するた めにAGN139109を使用する。
ホキシド/80 %ポリエチレングリコール-300)、AGN 191183(0.06 mg/ml)またはAG
N 193109(0.34 mg/ml)と組み合わせたAGN 191183(0.06 mg/ml)を含む浸透圧ポン
プを腹腔内に埋め込んだ。該浸透圧ポンプは、メーカーによって、溶液を毎時〜
5μlの流速で連続14日間送液するように設計されている。
出し、10 %緩衝ホルマリンに入れた。その脛骨をギ酸/ホルマン溶液に3〜4日間 曝露して脱灰し、それからパラフィン切片を作成した。標準法に従い、切片はヘ
マトキシリンとエオシンで染色した。近位の脛骨骨端軟骨を検査し、閉鎖の有無
によって採点した。本発明において骨端軟骨の閉鎖とは、骨端成長軟骨の連続性
に何らかの欠如、すなわち骨または線維芽細胞組織もしくは両者による置換を言
う。
骨の閉鎖を示さなかった。モルモットの脛骨の近位骨端軟骨は、普通、少なくと
も10月齢まで閉鎖しないので、この結果は予想されたことである。AGN 191183で
処置した全モルモット4匹が部分的または完全な骨端軟骨の閉鎖を示した。しか
し、AGN 191183とAGN 193109の組み合わせで治療したモルモットはすべて骨端軟
骨の閉鎖を示さなかった。このように、AGN 193109とAGN 191183を同時投与した
場合、AGN191183によって誘発される骨毒性は、5倍モル過剰のAGN 193109によ って完全に阻止された。
60a)は、本発明に従ってRAR受容体をブロックするための上述の動物試験に使用 されたRARアンタゴニストの例である。以下の式(式1)で示される化合物は、本 発明に従って使用される他のRARアンタゴニスト化合物のさらに別の一般的な例 となる。
数1〜6個のアルキルであり、nは0または1である)であり; R2は水素、炭素数1〜6個の低級アルキル、F、CF3、炭素数1〜6個のフ
ッ素置換アルキル、OH、SH、炭素数1〜6個のアルコキシ、または炭素数1
〜6個のアルキルチオであり; R3は水素、炭素数1〜6個の低級アルキルまたはFであり; mは0〜3の整数であり; oは0〜3の整数であり; Zは、-C≡C-、 -N=N-、 -N=CR1、 -CR1=N、 -(CR1=CR1)n'- (ここで、n'は0〜5の整数である)、 -CO-NR1-、 -CS-NR1-、 -NR1-CO、 -NR1-CS、 -COO-、 -OCO-、 -CSO-、 -OCS-であり; Yはフェニル基またはナフチル基、またはピリジル、チエニル、フリル、ピリ
ダジニル、ピリミジニル、ピラジニル、チアゾリル、オキサゾリル、イミダゾリ
ルおよびピラゾリルからなるグループから選ばれたヘテルアリール(該フェニル 基およびヘテロアリール基は、任意に1個または2個のR2基で置換されていて もよい)であるか、または Zが-(CR1=CR1)n'-であり、n'が3、4または5である場合、Yは該(C R2=CR2)n'基とBの間の直接的な原子価結合を表し; Aは(CH2)q(ここで、qは0〜5である)、炭素数3〜6個の低級分岐鎖アル
キル、炭素数3〜6個のシクロアルキル、炭素数2〜6個の1または2個の二重
結合を持つアルケニル、炭素数2〜6個の1または2個の三重結合を持つアルキ
ニルであり; Bは水素、COOHまたはその薬学的に許容しうる塩、COOR8、CONR9 R10、-CH2OH、CH2OR11、CH2OCOR11、CHO、CH(OR12)2、 CHOR13O、-COR7、CR7(OR12)2、CR7OR13Oまたはトリ低級アル キルシリル(ここで、R7は1〜5個の炭素を含むアルキル、シクロアルキルまた
はアルケニル基であり、R8は1〜10個の炭素を含むアルキル基、アルキル基が 1〜10個の炭素を持つトリメチルシリルアルキル、または5〜10個の炭素を含む
シクロアルキル基であるか、またはR8はフェニルまたは低級アルキルフェニル であり、R9およびR10はそれぞれ独立して水素、炭素数1〜10個のアルキル基 または炭素数5〜10個のシクロアルキル基またはフェニル基または低級アルキル
フェニル基であり、R11は低級アルキル、フェニルまたは低級アルキルフェニル
であり、R12は低級アルキルであり、R13は炭素数2〜5個の2価アルキル基で
ある)であり、そして R14は(R15)r-フェニル、(R15)r-ナフチルまたはO、S、Nからなるグルー
プから選んだ1〜3個のヘテロ原子を持つ(R15)r-ヘテロアリールであり、rは
0〜5の整数であり、そして R15は独立してH、F、Cl、Br、I、NO2、N(R8)2、N(R8)COR8、 NR8CON(R8)2、OH、OCOR8、OR8、CN、1〜10個の炭素を含むア ルキル基、1〜10個の炭素を持つフルオロ置換アルキル基、1〜10個の炭素およ
び1〜3個の二重結合を持つアルケニル基、1〜10個の炭素および1〜3個の3
重結合を持つアルキニル基、またはアルキル基がそれぞれ独立して1〜6個の炭
素を持つトリアルキルシリルもしくはトリアルキルシリルオキシ基である。
合成経路によって作ることができる。合成化学の同業者は、ここに開示する条件
が式1で表される化合物のすべてに一般化しうる特定態様であることを容易に理
解するであろう。
である式1の化合物の合成を図示するものである。すなわち、反応式1は、本発
明のエチニル置換ジヒドロナフタレン誘導体の合成を図示するものである。本反
応式に従い、式6のテトラヒドロナフタレン-1-オン化合物を臭素化すると式7 の臭素誘導体が得られる。式6の化合物は、式1に関連して上で定義した所要の
置換基R1、R2およびR3を既に持っている。式6の化合物の好ましい例は、3,4-ジ
ヒドロ-4,4-ジメチル-1(2H)-ナフタレンであり、これは化学文献[Arnoldら、J.
Am. Chem. Soc. 69: 2322-2325 (1947)]に記載されている。1-ブロモ-3-フェニ ルプロパンからこの化合物を合成するための現時点で好ましい経路を、本願の実
験の項に記載する。
す(トリメチルシリル)エチニル置換3,4-ジヒドロナフタレン-1(2H)-オン化合物 が得られる。(トリメチルシリル)アセチレンの反応は、典型的には、不活性ガス
(アルゴン)の雰囲気下、ヨウ化第一銅、適当な触媒、すなわち典型的なものとし
てはPd(PPh3)2Cl2の式で表される触媒、および酸受容体(たとえばトリエチルア ミン)の存在下に加熱下(約100゜C)で実施される。典型的な反応時間は、約24時間
である。次に、式8の(トリメチルシリル)エチニル置換 3,4-ジヒドロナフタレ ン-(2H)-オン化合物をアルコール溶媒、たとえばメタノール中で塩基(水酸化カ リウムまたは炭酸カリウム)と反応させて、式9のエチニル置換3,4-ジヒドロ-1-
ナフタレン-1(2H)-オンを得る。続いて、式9の化合物を、不活性ガス(アルゴン
)の雰囲気下、ヨウ化第一銅、適当な触媒、すなわち典型的にはPd(PPh3)2Cl2、 およびトリエチルアミンのような酸受容体の存在下に芳香族試薬またはヘテロ芳
香族試薬X1-Y(R2)-A-B'(式10)とカップリングさせる。あるいは、別の方法とし て、式9の化合物の亜鉛塩(または他の適当な金属塩)をPd(PPh3)4またはそれと 同類の錯体の存在下に式10の試薬とカップリングさせることもできる。典型的に
は、試薬X1-Y(R2)-A-B'(式10)とのカップリング反応は室温、または中程度に昇 温した温度で実施される。一般的に言えば、エチニルアリール誘導体またはその
亜鉛塩と式10の試薬のようなハロゲン置換アリールまたはヘテロアリール化合物
のカップリングは米国特許第5,264,456号に記載されている。該特許を引用によ り本発明の一部とする。式11の化合物は、本発明の例示化合物またはその誘導体
(B'基が保護され、その保護基を公知の反応によって容易に除去できる)の前駆体
である。また、式11の化合物は、公知の反応および変換法によって、該例示化合
物へのさらに別の前駆体に変換することもできる。この種の反応は、反応式1の
中に、「同族体および誘導体」への変換として表示されている。いくつかの例示
化合物の合成に使用されたそのような変換反応の1つは、エステル基(BまたはB'
がエステル基の場合)を加水分解して遊離のカルボン酸またはその塩を与えるも のである。
、公知の反応によって得ることができる。そのような化合物の1例は、4-ヨー ド安息香酸エチルであり、この化合物は、たとえば4-ヨード安息香酸のエステ ル化によって得ることができる。別の例は、6-ヨードニコチン酸エチルであり、
このエステルは6-クロロニコチン酸のハロゲン交換反応と、それに続くエステル
化によって得ることができる。さらにもっと一般的に言えば、式11の化合物から
の誘導体の合成および/または後に式9の化合物と反応させることができる式10
のアリール化合物およびヘテロアリール化合物の合成に関しては、次に述べる公
知の発表された一般的な原理と合成法を適用することができる。
チオニルのような酸触媒の存在下に当該の酸を還流させることによってエステル
化することができる。別の方法として、当該のカルボン酸をジシクロヘキシルカ
ルボジイミドおよびジメチルアミノピリジンの存在下に適当なアルコールと縮合
することができる。エステルは常法によって回収し、精製することができる。ア
セタールとケタールは、March著、"Advanced Organic Chemistry”第2版、McGr
aw-Hill Book Company、第180ページに記載されている方法によって容易に製造 される。アルコール、アルデヒドおよびケトンはすべて、たとえばMcOmie著、Pl
enum Publishing Press, 1973およびGreene編、Protecting Group、John Wiley
& Sons, 1981に記載されているような公知の方法によって、それぞれエーテルお
よびエステル、アセタールまたはケタールを形成させることにより保護してもよ
い。
香族カルボン酸またはヘテロ芳香族カルボン酸をアルント−アイシュテルト反応
条件または別の同族体化法によって順次処理して同族体に変換する。別の方法と
して、カルボン酸ではない誘導体を適切な方法で同族体化してもよい。次に、こ
の同族体化した酸を、前節で概説した一般的な方法により、エステル化すること
ができる。
は他の中間体または例示化合物)は、たとえば、有機合成化学を専門とする同業 者に公知の合成反応式、たとえば、ウィッティッヒ反応とその類似反応、または
α-ハロアリールアルキルカルボン酸、エステルまたは同類のカルボキシアルデ ヒドからのハロゲンの脱離による二重結合の導入によって作ることができる。式
10において、グループAが三重結合(アセチレン結合)を持つ化合物(または他の中
間体または例示化合物)は、相当する芳香族メチルケトンと、たとえばリチウム
ジイソプロピルアミドのような強塩基との反応、クロロリン酸ジエチルとの反応
、そしてそれに続くリチウム ジイソプロピルジアミドの添加によって作ること ができる。
は相当するエステルから容易に得ることができる。アルカリ金属塩基で塩基性加
水分解すれば当該の酸が得られる。たとえば、式11のエステル(またはその他の 中間体または例示化合物)をアルカノールのような極性溶媒中、好ましくは不活 性雰囲気下、室温で約3モル過剰の塩基、たとえば水酸化リチウムまたは水酸化
カリウムによって溶解してもよい。溶液を、15時間〜20時間攪拌し、冷却し、酸
性化し、常法によって加水分解物を回収する。
よって生成させることができる。このような化合物を作る1つの方法は、酸を酸
塩化物に変換し、それからその化合物を水酸化アンミニウムまたは適当なアミン
で処理することである。
換し(J.March、Advanced Organic Chemistry、第2版、McGraw-Hill Book Compa
ny)、それからその酸塩化物を水素化ホウ素ナトリウムで還元することにより(Ma
rch、同書、1124ページ)、対応するアルコールが得られる。別の方法として、エ
ステルを低温で水素化アルミニウムリチウムで還元しても良い。これらのアルコ
ールをウィリアムソンの反応条件下で適当なハロゲン化アルキルでアルキル化す
ると対応するエーテルが得られる(March、同書、357ページ)。これらのアルコー
ルは、酸触媒またはジシクロヘキシルカルボジイミドおよびジメチルアミノピリ
ジンの存在下に適当な酸と反応させることにより、エステルに変換することがで
きる。
リジニウム ジクロマート(Corey, E.J.,Schmidt, G., Tet. Lett. 399, 1979)、
またはジクロロメタン中、ジメチルスルホキシド/オキサリルクロリド(Omura,K.
, Swern, D.,Tetrahedron 34: 1651(1978))のような穏和な酸化剤を使って合成 することができる。
類似の試薬で処理した後、酸化することによって調製することができる。 アセタールまたはケタールは相当するケトンまたはアルデヒドから文献(March
著、同書、810ページ)に記載の方法によって調製することができる。 Bが水素である式10の化合物(または他の中間体または例示化合物)は、相当す るハロゲン化芳香族化合物またはヘテロ芳香族化合物、好ましくはハロゲンがヨ
ウ素である化合物から調製することができる。
エーテルタイプの不活性溶媒中、低温(-78゜Cおよび0゜C)でナトリウム ビス(トリ
メチルシリル)アミドおよび2-[N,N-ビス(トリフルオロメチルスルホニル)アミノ
]-5-クロロピリジンを反応させる。この反応は反応式1に示されているが、通常
単離しないナトリウム塩中間体は式12のようにカッコ内に示してある。反応の結
果、式13で表されているトリフルオロメチルスルホニルオキシ誘導体(Tf = SO2C
F3)が生成する。次いで、式13の化合物を、アリール化合物またはヘテロアリー ル化合物R14Hから誘導した有機金属化合物、すなわちR14Met(Metは1価の金属) 、好ましくはR14Li(R14は式1に関連して定義されている)と反応させることによ
り、式14で示される本発明の例示化合物に変換する。有機金属誘導体、好ましく
は式R14Liで示されるリチウム誘導体との反応は、通常、エーテルタイプの溶媒(
たとえばテトラヒドロフラン)中、塩化亜鉛(ZnCl2)およびテトラキス(トリフェ ニルホスフィン)パラジウム(0)(Pd(PPh3)4)の存在下で行う。有機リチウムR14L
iが市販されていない場合は、公知の方法に従って、エーテルタイプの溶媒中で 化合物R14H(またはそのハロゲン誘導体R14-X1;ここでX1はハロゲン)から調製す ることができる。試薬R14Liと式13の化合物の間の反応の温度範囲は、一般的に 言って、およそ-78゜Cから50゜Cの範囲である。式14の化合物は、上で述べた反応 に従って、さらに同族体および誘導体に変換することができる。
ャール試薬で変換すると、式15の三級アルコールが生成する。この三級アルコー
ルを酸で処理すると脱水され、3,4-ジヒドロ-7-ブロモナフタレン誘導体が得ら れる。この誘導体は、本発明のさらに別の化合物を合成するための中間体として
使用することができる(反応式6、7および8を参照)。
発原料は、式17に示されている構造のブロモフェノール、ブロモチオフェノール
またはブロモアニリンである。本明細書を簡単にするため、以下の記述でXは、 たとえばベンゾチオピラン誘導体の合成の場合のように、主として硫黄を考える
ことができる。しかし、ここに記した反応式は、同業の専門家には容易に分かる
ような変更を加えることによって本発明のベンゾピラン(X = O)およびジヒドロ キノリン(X = NR')化合物にも適していることを念頭に置いておくべきである。 かくして、式17の化合物、好ましくはp-ブロモチオフェノール、p-ブロモフェノ
ールまたはp-ブロモアニリンと式18で表される3-ブロモカルボン酸と塩基性条件
で反応させる。この反応式で、記号は式1に関連して説明した意味を持つ。R3が
水素である式18の試薬の例は、3-ブロモプロピオン酸である。式18の3-ブロモカ
ルボン酸との反応により式19の化合物が生成する。後者の化合物を酸で処理する
と環化して式20の6-ブロモチオクロマン-4-オン誘導体(XがSの場合)または6-ブ ロモクロマン誘導体(XがOの場合)が得られる。続いて、式20のブロモ化合物に、
式7のブロモ化合物から本発明の化合物への変換に関して反応式1に記述されて
いる類似の反応条件下で実質的に同じ一連の反応を行う。従って、ここでは簡潔
に要約して述べる。式20のブロモ化合物を(トリメチルシリル)アセチレンと反応
させ、式21の6-(トリメチルシリル)エチニル置換チオクロマン-4-オンまたはク ロマン-4-オン化合物を得る。次に、式21の6-(トリメチルシリル)エチニル置換 チオクロマン-4-オンを塩基(水酸化カリウムまたは炭酸カリウム)と反応させ、 式22のエチニル置換6-エチニル置換チオクロマン-4-オンを得る。続いて、式22 の化合物を芳香族試薬またはヘテロ芳香族試薬X1-Y(R2)-A-B'(式10)と、反応式 1の類似反応に対して記述した条件と同様な条件下でカップリングさせて式23の
化合物を得る。
ナトリウム ビス(トリメチルシリル)アミドおよび2-[N,N-ビス(トリフルオロメ チルスルホニル)アミノ]-5-クロロピリジンと反応させ、式24に表される4-トリ フルオロメチルスルホニルオキシベンゾチオピランまたはベンゾピラン誘導体を
得る。次に、式24の化合物を、反応式1に関連して記述したように、アリールま
たはヘテロアリール化合物R14Hから誘導される有機金属誘導体と反応させ、式25
に示す化合物に変換する。
の合成に使用することができる。式25の化合物も、反応式1に関連して述べた反
応と同様の反応において、さらに別の同族体および誘導体に変換することができ
る。
チニル基(-C≡C-)である化合物の合成経路を示す。この反応式に従い、式26の6-
ブロモ-2,3-ジヒドロ-1H-インデン-1-オン誘導体に、反応式1および2に関連し
て上で述べた反応と類似のトリメチルシリルアセチレンとの反応で始まる一連の
反応を行い、式27〜30の中間体を経由して、式31のインデン誘導体を得る。反応
式3の範囲内の好ましい態様において、出発原料は、化学文献(Smithほか、Org.
Prep. Proced. Int., 1978, 10, 123-131を参照)に従って入手できる6-ブロモ-
2,3-ジヒドロ-3,3-ジメチル-1H-インデン-1-オンである。式26の化合物、たとえ
ば6-ブロモ-2,3-ジヒドロ-3,3-ジメチル-1H-インデン-1-オンは、以下に述べる 本発明で使用するためのさらに別の例示化合物の合成にも使用することができる
。
4または5であり、そしてYが(CR1=CR1)n'基とBの間の直接原子価結合である例 示化合物への合成経路を開示する。ここでは、X基が[C(R1)2]nであり、nが1で ある場合(ジヒドロナフタレン誘導体)を例として合成経路を述べる。しかし、反
応式4およびそれに続く反応式に記述されている反応と方法は、同業者にとって
容易に分かるような変更を加えることにより、XがS、O、NR'(ベンゾチオピラン 、ベンゾピランまたはジヒドロキノリン誘導体)または[C(R1)2]nであってnが0 の誘導体(インデン誘導体)にも適用することができることを認識すべきである。
(R1COCl)とフリーデルクラフツ反応条件下で反応させ、生成したアセチル化物を
、たとえばジョーンズ酸化反応によって酸化し、異性体混合物である式33の6-お
よび7-アセチル-1(2H)-ナフタレノン誘導体を得る。この反応の具体的な好まし い例において、式32の出発化合物は、本明細書の実験の部に記載したプロセスに
従って合成することができる1,2,3,4-テトラヒドロ-1,1-ジメチルナフタレン(既
知化合物)である。式33の7-アセチル-1(2H)-ナフタレノン誘導体を酸の存在下に
エチレングリコールと反応させ、式34で表されるケタール誘導体として環外ケト
ン部分のオキソ基を保護する。次に、式34のケタールを式R14MgBrで表されるグ リニャール試薬(記号は式1に関連して定義されたものと同じである)と反応させ
、式35の3級アルコールを得る。次に、ジオキソラン保護基を除去し、該3級ア
ルコールを酸で処理して脱水し、式36の3,4-ジヒドロ-7-アセチルナフタレン誘 導体を得る。式36の化合物のケトン基を式37のホスホナート試薬と強アルカリ条
件下でホーナー−エモンス(またはそれと類似の)反応を行い、還元した後に式38
のアルデヒド化合物を得る。強アルカリ条件下での式39の試薬とのさらに別のホ
ーナー−エモンス(または類似の)反応により式40の化合物が生成する。後者は上
に述べた反応に従って更に別の同族体および誘導体に変換することができる。好
ましい化合物の合成に使用される式37のホーナー−エモンス試薬の具体例は、ジ
エチルシアノメチルホスホナートであり、式39のホーナー−エモンス試薬の例は
、ジエチル-(E)-3-エトキシカルボニル-2-メチルアリルホスホナートである。
と同様、この方法はXが[C(R1)2]nであってnが1である例(ジヒドロナフタレン 誘導体)について述べる。しかし、記述する合成法は、同業者にとって容易に分
かるような変更を加えることによって、本発明に使用するためのすべてのアゾ化
合物、すなわち、XがS、O、NR'(ベンゾチオピラン、ベンゾピランまたはジヒド ロキノリン誘導体)または[C(R1)2]nであり、nが0(インデン誘導体)である化合 物にも適用できることを認識しておくべきである。かくして、ニトロ化の標準的
な条件下で式6の出発化合物にニトロ基を導入し、式41の3,4-ジヒドロ-7-ニト ロ-1(2H)-ナフタレノン誘導体を得る。後者の化合物を還元して、式42の3,4-ジ ヒドロ-7-アミノ-1(2H)-ナフタレノン誘導体とし、それから、アゾ化合物を合成
するために通常使用される条件(氷酢酸)下に、式ON-Y(R2)-A-Bのニトロソ化合物
(式43)と反応させる。式43のニトロソ化合物は公知の方法に従って得ることがで
きる。好ましい化合物の合成に使用されるそのような化合物の具体例は、4-ニト
ロソ安息香酸エチルである。次に、式44のアゾ化合物をナトリウム ビス(トリメ
チルシリル)アミドおよび2-[N,N-ビス(トリフルオロメチルスルホニル)アミノ]-
5-クロロピリジンと反応させ、式45で表される4-トリフルオロメチルスルホニル
オキシ誘導体を得る。次に、式45の化合物を、アリール化合物またはヘテロアリ
ール化合物R14Hから誘導される有機金属化合物と反応させ、式46で示されるアゾ
化合物に変換する。これら最後の2つの反応、すなわち、4-トリフルオロメチル
スルホニルオキシ誘導体への変換とそれに続く有機金属誘導体との反応は、反応
式1、2および3に関連して上で述べてあり、例示のRARアンタゴニスト化合物 に導く現時点で好ましいいくつかの合成法に使用される。
ミド誘導体は、反応式1で述べたようにして得ることができる式16の3,4-ジヒド
ロ-7-ブロモナフタレン誘導体から合成される。すなわち、式16の化合物を、不 活性なエーテルタイプの溶媒、たとえばテトラヒドロフラン中で強塩基、たとえ
ば、t-ブチルリチウムと低温で反応させ、次いで二酸化炭素(CO2)を加えると式4
7の5,6-ジヒドロ-2-ナフタレンカルボン酸誘導体が得られる。次に、式47の化合
物を式:X2-Y(R2)-A-B[式中、X2はOHまたはNR1を表し、R1は好ましくは水素であ る]で示される化合物(式48)と反応させる。同業の専門家は、式48の化合物が、 現在の技術水準に従って得ることができるアリールまたはヘテロアリールヒドロ
キシ誘導体またはアミノ誘導体であることを明確に理解するだろう。式47の化合
物と式48の化合物の間の反応は、たとえば、1-(3-ジメチルアミノプロピル)-3- エチルカルボジイミド塩酸塩および4-ジメチルアミノピリジンの存在下に両者を
カップリングさせるような、様々な既知のエステルまたはアミド形成条件下で行
うことができる。別の方法として、式47の化合物を対応する酸塩化物に変換し、
それから塩基の存在下に式48の化合物とカップリングさせることができる。式49
のアミド化合物またはエステル化合物は、上で述べたように、さらに別の同族体
および誘導体に変換することができる。反応式6は、式1のXが[C(R1)2]nであり
、nが1である例(ジヒドロナフタレン誘導体)に対して記述し、示すものである が、ここに記述する方法はベンゾピラン、ベンゾチオピラン、ジヒドロキノリン
およびインデン誘導体の合成にも適用することができる。
置換されている式16の化合物から誘導される中間体から、米国特許第5,324,744 号の教示に従って合成することができる。該特許を引用により本発明の一部とす
る。
成するための現時点で好ましい合成法について開示する。式50で表されるこれら
の化合物は式16の化合物と式10のハロゲン化合物から誘導されるグリニャール試
薬の間のカップリング反応で得ることができる。そのカップリング反応は典型的
には、テトラヒドロフランのようなエーテルタイプの不活性溶媒中で、亜鉛塩と
ニッケル[Ni(0)]触媒の存在下に行われる。式50の化合物は上で述べたように、 さらに別の同族体および誘導体に変換することができる。
合成するための現時点で好ましい合成法について開示する。より具体的には反応
式8は、Zがビニル基(-CH=CH)であってジヒドロナフタレン誘導体である化合物 を合成するための現時点で好ましい方法を開示する。しかし、ここに開示する包
括的な方法は、同業者にとって容易に分かるような変更を加えれば、同類のベン
ゾピラン、ベンゾチオピラン、ジヒドロキノリン化合物、およびビニル基が置換
された化合物に拡張することができる。すなわち、反応式8に従い、式7の7-ブ
ロモ-1(2H)-ナフタレノン誘導体と構造-CH2=CH-Y(R2)-A-B(式51)のビニル誘導体
を、不活性ガス(アルゴン)雰囲気下、適当な触媒、典型的にはPd(PPh3)の式を持
つ触媒、酸受容体(たとえばトリエチルアミン)の存在下に反応させる。この反応
の条件は、式9のアセチレン誘導体と式10の試薬とのカップリングと類似してお
り(たとえば、反応式1を参照)、この反応形式はヘック反応として同業者には広
く知られている。式51のビニル誘導体は、現在の技術水準に従って合成すること
ができ、本発明に使用するのに好ましい化合物の合成に使用されるそのような試
薬の例は4-ビニル安息香酸エチルである。
れをナトリウム ビス(トリメチルシリル)アミドおよび2-[N,N-ビス(トリフルオ ロメチルスルホニル)アミノ]-5-クロロピリジンで処理して式53の4-トリフルオ ロメチルスルホニルオキシ誘導体を生成させ、さらに、上で述べたようにアリー
ル化合物またはヘテロアリール化合物R14Hから誘導される有機金属誘導体と反応
させることにより、本発明で使用される化合物に変換する。生成する式54の化合
物はさらに別の同族体および誘導体に変換することができる。
ns)反応を利用する合成反応式を経由して得ることもできる。たとえば、式33の 中間体(反応式4を参照)をトリフェニルホスホニウムブロミド(ウィッティッヒ)
試薬、またはより好ましくは、米国特許第5,324,840(該特許を引用により本発 明の一部とする)において類似のホーナー−エモンス反応に関して記載されてい
る構造(EtO)2PO-CH2-Y(R2)-A-Bのジエチルホスホナート(ホーナー−エモンス)
試薬と反応させることができる。ここに挙げたホーナー−エモンス反応は、式52
と構造が類似した中間化合物を与え、式52の化合物に対して反応式8で述べられ
ている一連の反応によって式54の化合物に変換することができる。
る化合物は、反応式9によって製造される。反応式9によって製造される化合物
の重要な特徴は、式1における基XがSであり、この化合物のベンゾチオピラン
(チオクロメン)環の2位がアルキル基によって置換されていることである。
る。式55の4−メトキシチオフェノールは、式1に関して定義される1個また
はそれ以上の基R2によって置換されていてもよい。反応式9による好ましい化 合物の合成において、式55の基R2は、H、Fのようなハロゲン、またはアル コキシ基、好ましくはメトキシである。本発明の特定の好ましい化合物の合成に
使用される式55の化合物の例は、4−メトキシチオフェノールおよび3−フル
オロ−4−メトキシチオフェノールである。ピリジン中における加熱によって、
式55のチオフェノールを、式56のアルケン酸と反応させる。この反応により
、アルケン酸の二重結合にチオフェノールを付加(Michael付加)して、式57 の化合物を得る。式56のアルケン酸は、ここに記載される好ましい実施態様に
関してはアルキル基、最も好ましくはメチル基であるR3置換基を有する。式5 6のアルケン酸の例は、3−メチル−2−ブテン酸である。2,2−ジメチル− チオクロマン−4−オン誘導体を合成する式55のチオフェノールと2−アルケ
ン酸との反応は一般に、Ferreiraら、Synthesis 1987,p.149に記載されている。
物に変換し、次に、得られる酸塩化物を、四塩化第二錫(SnCl4)の存在に おけるCH2Cl2のような不活性溶媒中での加熱によって環化して、式58の2
,2−ジ置換チオクロマン−4−オン化合物を得る。式58の2,2−ジ置換チオ
クロマン−4−オンを三臭化硼素と反応させて、メトキシ官能基からメチル基を
除去して、式59の2,2−ジ置換6−ヒドロキシ−チオクロマン−4−オンを 得る。次に、式59のヒドロキシ化合物を、無水ピリジン中においてトリフルオ
ロメタンスルホン酸無水物と反応させて、式60の6−トリフルオロメタンスル
ホニルオキシ誘導体を得る。
させて、2,2−ジ置換6−(トリメチルシリル)エチニル−チオクロマン−4 −オン化合物を得、次に、メタノールのようなアルコール溶媒中において塩基(
K2CO3)と反応させて、式61の2,2−ジ置換6−エチニル−チオクロマン −4−オン化合物を得る。(トリメチルシリル)アセチレンとの反応は一般に、
式Pd(PPh3)2Cl2で一般に示される好適な触媒、および酸受容体(例え ば、トリエチルアミン)の存在において、不活性ガス(アルゴン)雰囲気中で、
加熱(約95℃)によって行われる。この反応は、反応式2に示される、式20
の6−ブロモ−チオクロマン−4−オン化合物と(トリメチルシリル)アセチレ
ンとの反応と同様である。次に、式61の2,2−ジ置換6−エチニル−チオク ロマン−4−オン化合物を、反応式1および反応式2の類似の反応に関して記載
したのと同様の条件において、芳香族またはヘテロ芳香族試薬X1−Y(R2)−
A−B'(前記に定義される式10)と結合させて、式62の化合物を得る。こ こに記載される式62の特定の好ましい化合物の例の合成において、エチル4−
ヨードベンゾエート、エチル2−フルオロ−4−ヨードベンゾエート、およびエ
チル6−ヨードニコチネートは、試薬X1−Y(R2)−A−B'(式10)の例 である。
いて、式62の化合物を、ナトリルムビス(トリメチルシリル)アミドおよび2
−[N,N−ビス(トリフルオロメチルスルホニル)アミノ]−5−クロロピリ ジンと反応させて、式63の4−トリフルオロメチルスルホニルオキシベンゾチ
オピラン(チオクロメン)誘導体を得る。次に、反応式1および反応式2に関し
て記載したアリールまたはヘテロアリール化合物R14H、R14Br、またはR14 Iから誘導される有機金属誘導体との反応によって、式63の化合物を式64の
化合物に変換する。式63の4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ化合物を
式64の本発明の好ましい化合物に変換する反応式9に使用される試薬および条
件の例は下記の通りである:
ウム、および塩化亜鉛(ZnCl2)からの有機金属試薬の製造、次に、テトラ キス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)触媒の存在における4−トリ
フルオロメチルスルホニルオキシ(トリフレート)誘導体との反応; 2−メチルチオフェン、THF、n−ブチルリチウム、およびZnCl2、次 に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在におけるト
リフレートとの反応; ブロモベンゼン、THF、t−ブチルリチウム、およびZnCl2、次に、テ トラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在におけるトリフレ
ートとの反応;
るトリフレートとの反応; 4−イソ−プロピルブロモベンゼン、THF、t−ブチルリチウム、およびZ
nCl2、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存 在におけるトリフレートとの反応; 4−t−ブチルブロモベンゼン、THF、t−ブチルリチウム、およびZnC
l2、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在に おけるトリフレートとの反応;
リフレートとの反応; 2−t−ブチルチオフェン、THF、n−ブチルリチウム、およびZnCl2 、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在におけ
るトリフレートとの反応;および 4−ブロモ−2−メチルピリジン、THF、t−ブチルリチウム、およびZn
Cl2、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在 におけるトリフレートとの反応。
チオクロメン)誘導体は、本発明に含まれる好ましい化合物である。これらの化
合物において基R3がメチルであるのが最も好ましい。前記反応式に関して記載 したのと同様に、式64の化合物を他の同族体および誘導体に変換することがで
きる。本発明の多くの特定例示化合物を生成する、これに関して使用されること
が多い反応は、遊離カルボン酸または医薬的に許容されるそれの塩を生成するア
ルキルエステル(BまたはB'がエステル化されたカルボン酸基を表す)の鹸化 である。
ルキル基によって置換されている、式5bおよび第1a表に示される多くの特に
好ましい化合物は、反応式10によって製造される。式65の4−ブロモフェノ
ール化合物が出発物質であり、R2は式1と同様に定義されるが、好ましくは4 −ブロモフェノールが非置換であるか、またはアルキル、ハロゲン、またはアル
コキシ置換されている(基R2がアルキル、ハロゲン、またはアルコキシを表す )。式65の4−ブロモフェノールをアセチル化して、式66のアセチルオキシ
−4−ブロモベンゼン誘導体を得る。次に、塩化アルミニウム(AlCl3)と 共に加熱することによって、式66のアセチルオキシ−4−ブルモベンゼン誘導
体を転位反応(Fries転位)にかけて、式67の3−ブロモ−6−ヒドロキシア セトフェノン誘導体を得る。該化合物を、ピペリジン中で、ピペリジントリフル
オロアセテートの存在において、式R3−CO−R3[基R3は低級アルキルであ る]と共に加熱して、式67の3−ブロモ−6−ヒドロキシアセトフェノン誘導
体を、Knoevenagel縮合、次いでMichael付加にかけ、それによって閉環して、式
68の2,2−ジアルキル−6−ブロモ−クロマン−4−オン誘導体を得る。
の(トリメチルシリル)アセチレンとの反応、および反応式9の式60の6−ト
リフルオロスルホニルオキシチオクロマン−4−オン化合物に関して記載したの
と同様の条件において、式68の2,2−ジアルキル−6−ブロモ−クロマン− 4−オン誘導体を(トリメチルシリル)アセチレンと反応させる。次に、得られ
る2,2−ジ置換6−(トリメチルシリル)エチニル−クロマン−4−オン化合 物(反応式10に示さず)を、塩基(前記の類似の反応と同様)と反応させて、
式69の2,2−ジ置換6−エチニル−クロマン−4−オン化合物を得る。次に 、反応式1、反応式2、および反応式9の類似の反応に関して記載したのと同様
の条件において、式69の化合物を、芳香族またはヘテロ芳香族試薬X1−Y( R2)−A−B'(前記に定義された式10)と結合させて、式70の化合物を得
る。ここに記載される式70の化合物の特定の好ましい実施態様の合成に使用さ
れる試薬X1−Y(R2)−A−B'(式10)の例は、エチル4−ヨードベンゾ エートおよびエチル2−フルオロ−4−ヨードベンゾエートである。
2−[N,N−ビス(トリフルオロメチルスルホニル)アミノ]−5−クロロピ リジンでの処理によって、式70の6−(アリール)または6−(ヘテロアリー
ル)エチニル2,2−ジ置換クロマン−4−オン化合物が、式71の6−(アリ ール)または6−(ヘテロアリール)エチニル2,2−ジ置換4−トリフルオロ メチルスルホニルオキシベンゾピラン(クロメン)誘導体に変換される。これは
、対応するチオクロマン−4−オン化合物(式62)の、式63の対応する4−
トリフルオロメチルスルホニルオキシベンゾチオピラン(チオクロメン)誘導体
への変換と同様である。次に、式71の6−(アリール)または6−(ヘテロア
リール)エチニル2,2−ジ置換4−トリフルオロメチルスルホニルオキシベン ゾピラン(クロメン)誘導体を、反応式1、反応式2、および反応式9に関して
前記に記載したのと同様のアリールまたはヘテロアリール化合物R14H、R14B
r、またはR14Iから誘導される有機金属誘導体と反応させて、式72の本発明
の好ましい化合物を得る。式71の4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ化
合物を式72の本発明の好ましい化合物に変換するために反応式10に使用され
る試薬および条件の例は、下記の通りである:
ートとの反応; 4−メチルブロモベンゼン、THF、t−ブチルリチウム、およびZnCl2 、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在におけ
るトリフレートとの反応; 4−エチルブロモベンゼン、THF、t−ブチルリチウム、およびZnCl2 、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在におけ
るトリフレートとの反応;
nCl2、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存 在におけるトリフレートとの反応;および 4−t−ブチルブロモベンゼン、THF、t−ブチルリチウム、およびZnC
l2、次に、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)の存在に おけるトリフレートとの反応。
きる。B'がエステル化されたカルボキシル基である場合に、式72で示される アルキルエステルを鹸化して、本発明の特に好ましいカルボン酸(または医薬的
に許容される塩)化合物を得る。
経路に従って調製することができる。合成化学専門の同業者は、ここに示した条
件が、式101によって表されるあらゆる化合物に一般化することができる具体例 であることを容易に理解するだろう。
ジメチルナフタレンであり、これは化学文献に記載されている(Mathurら、Tetra
hedron, 1985, 41:1509)。1-ブロモ-3-フェニルプロパンからこの化合物を合成 する現時点で好ましい経路は、本明細書の実験の部にも記載してある。
ロムで酸化すると異性体混合物6-および7-アシル-3,4-ジヒドロ-1(2H)-ナフタレ
ノン誘導体が得られる。本発明において重要な6-アシル誘導体のみを反応式101 に構造式(式104)で示してある。本発明の現時点で好ましい化合物の合成におい ては、R1基はメチル、R2、R3およびR16はHであり、それゆえ、式104に相当する 好ましい中間体は、3,4-ジヒドロ-4,4-ジメチル-6-アセチル-1(2H)-ナフタレノ ンである。
で表されるグリニャール試薬と反応させると、式106の1,2,3,4-テトラヒドロ-1-
ヒドロキシ-ナフタレン誘導体が得られる。次に、式106の化合物の環外ケトン基
を酸処理して脱保護し、脱水すると式107の化合物が得られる。
ドロフランのようなエーテルタイプの不活性な溶媒中、低温(-78゜Cおよび0゜C)で
反応させることである。この反応は、通常単離されない、それゆえ反応式101に は示されていないナトリウム塩中間体を通って進行する。全体の反応の結果、ト
リフルオロメチルスルホニルオキシ誘導体が生成し、次いでこの誘導体を、アリ
ール化合物またはヘテロアリール化合物R14Hから誘導される、たとえばR14Met(M
etは1価の金属を表す)、好ましくはR14Li(R14は式101に関連して定義されてい る)で表される有機金属誘導体と反応させる。有機金属誘導体、好ましくは式R14 Liで表されるリチウム誘導体との反応は、通常、エーテルタイプの不活性溶媒中
(たとえばテトラヒドロフラン)で塩化亜鉛(ZnCl2)とテトラキス(トリフェニルホ
スフィン)パラジウム(0)(Pd(PPh3)4)の存在下で行われる。有機リチウム試薬R14 Liは、市販品がなければ公知の方法に従ってエーテルタイプの溶媒中で化合物R1 4 H(またはそのハロゲン誘導体R14-X1、ここでX1はハロゲン)から調製することが
できる。試薬R14Liとトリフルオロメチルスルホニルオキシ誘導体の間の反応の 温度範囲は、一般的に言えば、おおよそ-78゜Cないし50゜Cである。
の間の縮合の結果として生成する。本発明の好ましい例示化合物の合成において
、式108の試薬は4-カルボキシベンズアルデヒド(R17-H)である。式108の範囲内 にあって縮合反応および本発明の範囲内の化合物(式101)の合成に適するその他 の試薬の例は以下の通りである:5-カルボキシ-ピリジン-2-アルデヒド、4-カル
ボキシ-ピリジン-2-アルデヒド、4-カルボキシ-チオフェン-2-アルデヒド、5-カ
ルボキシ-チオフェン-2-アルデヒド、4-カルボキシ-フラン-2-アルデヒド、5-カ
ルボキシ-フラン-2-アルデヒド、4-カルボキシアセトフェノン、2-アセチル-ピ リジン-5-カルボン酸、2-アセチル-ピリジン-4-カルボン酸、2-アセチル-チオフ
ェン-4-カルボン酸、2-アセチル-チオフェン-5-カルボン酸、2-アセチル-フラン
-4-カルボン酸および2-アセチル-フラン-5-カルボン酸。後者の化合物は化学文 献に従って入手することができる;たとえば、Decroixら、J. Chem. Res.(S), 4
:134 (1978); Dawsonら、J. Med.Chem.29:1282 (1983); および Queguinerら、B
ull. Soc. Chimique de France No.10,pp.3678-3683 (1969)。式107の化合物と 式108の化合物の間の縮合反応は、アルコール系溶媒中で、塩基の存在下に行わ れる。好ましくは、反応は水酸化ナトリウムの存在下にエタノール中で行われる
。同業の専門家はこの縮合反応がアルドール縮合であることを理解し、ここに記
載されている好ましい例(式107のケトンと式108のアルデヒドの縮合)においては
クライゼン−シュミット反応であることがわかるだろう[March著、Advanced Org
anic Chemistry: Reactions, Mechanism, and Structure, pp694-695 McGraw Hi
ll (1968)を参照]。式109の化合物は本発明の範囲内にあり、さらに反応させる と本発明の別の化合物を生成する。別の方法として、式108のA-B基は、式101で 定義されているような、本発明の範囲内にある基であり、有機化学の専門家に良
く知られ、同業者が実施できるような種類の1つまたは複数の合成反応を行った
後の基である。たとえば、A-B基に実施される反応は、脱保護段階、ホモローグ 化(同族体生成)、エステル化、ケン化、アミドの生成などである。
びヘテロアリール化合物の合成(次いでこれを式107の化合物と反応させることが
できる)については、「合成法−アリール置換化合物」と題する部分でも説明し
た、公知の公表されている一般原理および合成法を使用することができる。
-ジケトンであることを容易に理解するだろう。反応式102は、pが1である本発 明の化合物への合成経路をも記述している。この技術分野の同業者は、後者の化
合物がフラボンであることを容易に認識するだろう。かくして、この反応式に従
い、式110の1,2,3,4-テトラヒドロ-6-メトキシナフタレン-1-オン誘導体を、た とえばジクロロメタンのような適当な溶媒中で、四塩化チタンの存在下にジアル
キル亜鉛(R1Zn)と反応させてオキソ基をgem-ジアルキル基R1R1で置換すると、R1 が低級アルキル基である式111の化合物が得られる。反応式102に従って調製され
る本発明の化合物の好ましい態様においては、R3基は水素であり、R1基はメチル
基である。従って、ジアルキル亜鉛試薬はジメチル亜鉛であり、式110の好まし い出発原料は1,2,3,4-テトラメチル-6-メトキシナフタレン-1-オンである。後者
の化合物は市販されており、たとえばアルドリッチ社から入手することできる。
次に、式111の1,2,3,4-テトラヒドロ-1,2-ジアルキル-6-メトキシナフタレン誘 導体を酢酸および無水酢酸中で三酸化クロムで酸化すると、式112の1,2,3,4-テ トラヒドロ-3,4-ジアルキル-7-メトキシナフタレン-1-オン誘導体が得られる。 式112のケトン化合物をグリニャール試薬(R14MgBr、R14は式101に関連して定義
されている)と反応させると式113の1-ヒドロキシ-1-アリール-3,4-ジヒドロ-3,
4-ジアルキル-7-メトキシナフタレン誘導体が得られる。式113のヒドロキシ化合
物を、好ましくは酸中で加熱することにより脱離反応を行うと、式114のジヒド ロナフタレン化合物が得られる。式114の化合物を適当な溶媒中、たとえばジク ロロメタン中で三臭化ホウ素で処理し、フェノール性メチルエーテル基からメチ
ル基を除去する。続いて、R16CH2CO基を導入するアシル化剤でフェノール性OH基
をアシル化し、式115の化合物を得る。好ましい態様ではR16はHであり、それゆ えアシル化剤は塩化アセチルまたは無水酢酸である。アセチル化は塩基性溶媒、
たとえばピリジン中で行う。式115のアシル化フェノール化合物を高温で塩化ア ルミニウムと反応させてフリース転位を行うと式116の1-アリール-3,4-ジアルキ
ル-3,4-ジヒドロ-6-アシル-7-ヒドロキシナフタレン化合物が得られる。CO-Y(R2 )-A-B基を導入するアシル化剤(たとえば酸塩化物)で式116の化合物のフェノー
ル性ヒドロキシル基をアシル化すると式117の化合物が得られる。酸塩化物試薬C
l-CO-Y(R2)-A-B(または類似のアシル化剤)において、記号Y、R2およびA-Bは、
式101と関連して定義されている意味を持つ。この反応式に従う本発明の好まし い化合物の合成において、この試薬はClCOC6H4COOEtである(テレフタル酸の半 エチルエステル半酸クロリド)。
の化合物は本発明および式101の範囲内にあり、縮合環の芳香環部分の置換基R2 がOHであり、そしてR17がOHである。上記の反応(分子内クライゼン縮合)およ び前記のフリース転位に関連して、これらの可能性の高い反応機構は、本明細書
中に記載した反応を詳しく説明するため、ならびに当業者が本明細書中に記載し
た反応を実施し、本発明の化合物を合成するのを容易にするために挙げたもので
あることに注意すべきである。しかし、本発明者らは、反応機構と理論に拘束さ
れることを望まないし、それによって請求の範囲に記載した発明が制限されるべ
きではない。
よび誘導体への変換として、反応式102の中に示してある。
ための経路について述べる。ただし、反応式102に示した合成の一般的原理を適 用することによって、XがS、OまたはNR'であってpが1であるか、あるいはXがO 、S、NR'であってpがゼロであり、そして縮合環の芳香族部分中のR2基がOHであ ってR17がOHである本発明の化合物を得るために、普通の同業者がここに示す合 成法に変更を加えるか、あるいは適合させることができる。
誘導体である。現時点で好ましい本発明の化合物においては、R2基およびR16基 が共に水素であり、そして式120の好ましい出発化合物は、化学文献において既 知である3-エテニル-チオフェノールまたは3-エテニルフェノールである[Nuyken
ら、Polym.Bull(Berlin)11:165 (1984)]。本明細書を簡潔にするため、以下の記
述では本発明のベンゾチオピラン誘導体の合成に見られるように、Xは主として 硫黄と考えることができる。ただし、ここに記載する反応式も同業の専門家にと
って容易に分かるような変更を加えれば、本発明の範囲内のベンゾピラン(X = O
)およびジヒドロキノリン(X = NR')にも適することを念頭に入れておくべきであ
る。かくして、式120の化合物を式121の3-ブロモカルボン酸と塩基性条件下で反
応させる。この反応式に使用されている記号は、式101に関連して説明されてい る意味と同じ意味を持っている。R3が水素である式121の試薬の1つの例は3-ブ ロモプロピオン酸である。式121の3-ブロモカルボン酸との反応によって式122の
化合物が得られる。後者を酸で処理して環化すると式123の7-エテニル-チオクロ
マン-4-オン誘導体(Xが硫黄の場合)または7-エテニルクロマン誘導体(Xが酸素の
場合)が得られる。式123の7-エテニル-チオクロマン-4-オンまたは7-エテニル- クロマン-4-オン誘導体をPd(II)Cl2およびCuCl2の存在下に酸化すると式124の対
応する7-アシル化合物(ケトン)が得られる。同業者には後者の反応がワッカー酸
化であることが理解されるだろう。式124の化合物の環外ケトン基は、たとえば 酸中でエチレングリコールにより処理することによってケタールの形で保護され
、式125の1,3-ジオキソラニル誘導体を与える。次に、反応式101における式105 の化合物に対して述べられているのと同様の一連の反応を式125の化合物に対し て行う。すなわち、式125の1,3-ジオキソラニル誘導体を式R14MgBrで表されるグ
リニャール試薬と反応させると式126の第3級アルコールが得られ、さらにこの アルコールを酸中で脱水すると式127のベンゾチオピラン(Xが硫黄 )、ベンゾ ピラン(Xが酸素)またはジヒドロキノリン(XがNR')が生成する。次に、式127の
ケトン化合物を塩基の存在下に式108の試薬とアルドール縮合(クライゼン−シ ュミット)反応を行うと、式128で表される本発明の化合物が得られる。式128の
化合物は、反応式101および102に関連して上で述べたように、さらに他の同族体
および誘導体に変換することができる。
ブロモ-3-フェニルプロパン100.0 g(0.492 mol)を100 mlのエーテルに溶かした 溶液を加えた。溶液5-10 ml加えたのち、グリニャール試薬の生成が進行するま で添加を中断した。それから残る臭化物を1時間かけて添加した。グリニャール
試薬を35゜Cで20分間かきまぜ、それからアセトン31.64 g(0.54 mol)を45分かけ て加えた。反応混合物を室温で一晩かき混ぜ、それから0゜Cまで冷却し、注意し ながら20 %塩酸を加えて酸性にした。水層をエーテルで抽出し(3 x 200 ml)、有
機層を合わせて水、それからさらに飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マ
グネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去した後、残留物を蒸留して淡黄色の油状
生成物63.0 g(72 %)を得た。bp 99-102゜C/0.5 mm Hg。1H NMR(CDCl3):δ7.28-7.
18(5H,m)、2.63(2H,t,J=7.5Hz)、1.68(2H,m)、1.52(2H,m)、1.20(6H,s)。
で固体が完全に溶解するまでアルゴン下で加熱した。生成した溶液を室温まで冷
却し、かきまぜながら2-ヒドロキシ-2-メチル-5-フェニルペンタン(63.0 g, 0.3
54 mol)をゆっくり加えた。4時間後に、溶液を1Lの氷上に注意しながら注ぎだ
し、反応を停止させた。反応混合物をエーテルで抽出し(4 x 125 ml)、有機層を
合わせて水で洗い、それからさらに飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マ
グネシウムで乾燥した。溶液を減圧濃縮し、蒸留して透明な無色油状の生成物51
.0 g(90 %)を得た。bp 65〜67゜C/1.1 mm Hg。1H NMR(CDCl3):δ7.32(1H,d,J=7.4
Hz)、7.16-7.05(3H,m)、2.77(2H,t,J=6.3Hz)、1.80(2H,m)、1.66(2H,m)、1.28(6
H,s)。
クロム25.0g(0.25 mol)を少しづつ加えた。生成した混合物を30分間攪拌したの ち、ベンゼン120 mlを加えた。1,2,3,4-テトラヒドロ-1,1-ジメチルナフタレン をベンゼン30 mlに溶かした溶液をゆっくり加えた。添加が終了したら、反応混 合物を0゜Cで4時間攪拌した。溶液を水(200 ml)で希釈し、エーテル(5 x 50 m
l)で抽出した。有機層を合わせ、水、それから飽和炭酸ナトリウム水溶液、そ してさらに飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。
溶媒を減圧除去し、蒸留して淡黄色の油状生成物16.0 g(74 %)を得た。bp 93-96
゜C/0.3 mm Hg。1H NMR(CDCl3):δ8.02(1H,dd,J=1.3,7.8Hz)、7.53(1H,m)、7.42(
1H,d,J=7.9Hz)、7.29(1H,m)、2.74(2H,t,J=6.8Hz)、2.02(2H,t,J=6.8Hz)、1.40(
6H,s)。
スコに塩化アルミニウム9.5 g(71.4 mmol)およびジクロロメタン3 mlの混合物を
入れた。攪拌しながら3,4-ジヒドロ-4,4-ジメチル-1(2H)-ナフタレノン(5.0 g,
28.7 mmol)を室温で混合物に滴下した(注意:発熱反応)。続いて、臭素5.5 g(
34.5 mmol)を極めてゆっくり加え、生成した混合物を室温で2時間攪拌した(注
:攪拌が停止すると、攪拌を再開するまで混合物の温度が70゜Cまで上昇するおそ
れがある)。次に、反応混合物に氷冷した6 M塩酸をゆっくり加えて反応を停止 した。混合物をエーテルで抽出し、有機層を合わせて水、飽和炭酸水素ナトリウ
ム水溶液、そしてさらに飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し硫酸マグネシウムで
乾燥した。溶媒を減圧除去し、残留物を蒸留して放置すると固化する淡黄色油状
の生成物5.8g(80%)を得た。bp 140゜C/0.4 mm Hg。1H NMR(CDCl3):δ8.11(1H,d,J
=3.0Hz)、7.61(1H,dd,J=3.0,9.0Hz)、7.31(1H,d,J=9.0Hz)、2.72(2H,t,J=6.0Hz)
、2.01(2H,t,J=6.0Hz)、1.28(6H,s)。
トルエン(5.40 g, 31.8 mmol)のTHF 10 ml溶液を2回に分けて加えた。溶液2ml
を加えることによって反応が開始し、そのあと残りの溶液を滴下漏斗を使用して
ゆっくり滴下した。混合物を室温で1時間攪拌し、それからカヌラを使用して溶
液を別のフラスコに移した。生成したグリニャール試薬に3,4-ジヒドロ-4,4-ジ メチル-7-ブロモ-1(2H)-ナフタレノン(化合物B)4.0 g(15.9 mmol)のTHF 15 ml 溶液を加えた。生成した溶液を一晩加熱還流し、それから室温まで冷却し、反応
混合物に氷冷した10 %塩酸を注意しながら加えて反応を停止させた。エーテルで
抽出し、有機層を合わせて水、そして飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、それ
から硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去して油状物を得た。これをカ
ラムクロマトグラフィ(ヘキサン/酢酸エチル、96:4)にかけて無色の固体を得た 。1H NMR(CDCl3):δ7.36(1H,dd,J=2.1,7.6Hz)、7.26(3H,m)、7.12(3H,s)、2.34(
3H,s)、2.24-2.04(2H,m)、1.81(1H,m)、1.55(1H,m)、1.35(3H,s)、1.30(3H,s)。
(9.85 mmol)とベンゼン40 mlを入れた。触媒量のp-トルエンスルホン酸1水和物
を加え、得られた溶液を2時間加熱還流した。室温まで冷却した後、エーテルを
加え、溶液を水、飽和炭酸水素ナトリウムおよび飽和塩化ナトリウムで洗い、そ
れから硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去し、カラムクロマトグラフ
ィ(100 %ヘキサン/シリカゲル)にかけて標題の化合物を無色の固体として得た。
1H NMR(CDCl3):δ7.32(1H,dd,J=2.1,8.2Hz)、7.21(5H,m)、7.15(1H,d,J=2.1Hz) 、5.98(1H,t,J=4.7Hz)、2.40(3H,s)、2.32(2H,d,J=4.7Hz)、1.30(6H,s)。
.6 mmol)をトリエチルアミン150 mlに溶かした溶液(アルゴンを15分間通気しフ
ラッシュしておく)にトリス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)クロ
リド0.97 gとヨウ化第一銅 0.26 g(1.3 mmol)を加えた。溶液混合物に5分間ア
ルゴンを流してフラッシュし、それから(トリメチルシリル)アセチレン39 ml(
36.6 mmol)を加えた。反応混合物を耐圧ガラス管に封入し、あらかじめ加熱して
おいた油浴(100゜C)中に24時間置いた。反応混合物をセライトを通して濾過し 、エーテルで洗い、濾液を真空下に濃縮して粗製の7-(トリメチルシリル)エチ
ニル-3,4-ジヒドロ-4,4-ジメチルナフタレン-1(2H)-オンを得た。この粗製TMS- アセチレン化合物をメタノール50 mlに溶解した溶液に炭酸カリウム0.6 g(4.3 m
mol)を加えた。混合物を室温で8時間攪拌してから濾過した。濾液を真空下に濃
縮したのち、エーテルで希釈し、それから水、10 %塩酸および食塩水で洗浄し、
硫酸マグネシウムで乾燥し、減圧濃縮した。カラムクロマトグラフィ(シリカ、1
0 %,酢酸エチル−ヘキサン)で精製して標題の化合物を白色の固体として得た。P
MR(CDCl3):δ1.39(6H,s)、2.02(2H,t,J=7.0Hz)、2.73(2H,t,J=7.0Hz)、3.08(1H,
s)、7.39(1H,d,J=8.2Hz)、7.61(1H,dd,J=1.8,8.2Hz)、8.14(1H,d,J=9 1.8Hz)。
塩化チオニル2 mlを加え、混合物を3時間加熱還流した。溶媒を真空下に除き 、残留物をエーテル100 mlに溶解した。エーテル溶液を飽和炭酸水素ナトリウム
および飽和塩化ナトリウムで洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を真空
下に除去し、残留物をクーゲルロール(100゜C; 0.55 mm)で蒸留して、標題化合
物を無色油状物として得た。PMR(CDCl3):δ1.42(3H,t,J〜7Hz)、4.4(2H,q,J〜7H
z)、7.8(4H)。
それからヨウ化水素酸(97.13 g, 759.34 mmol)を加えた。冷却浴を除き、懸濁
液を5分間攪拌した。この混合物に6-クロロニコチン酸(22.09 g, 140.20 mmol
)を加え、生成した混合物を攪拌しながら室温までゆっくり昇温させた。混合物
を125゜Cで24時間加熱還流させ、それから室温まで冷却し、0゜Cでアセトン中(50
0 ml)に注ぎ出した。黄色の固体を濾取し、1N 炭酸水素ナトリウム水溶液200 m
lで洗浄した。メタノールから再結晶(結晶をエチルエーテルで洗浄した)して 標題化合物の白色結晶を得た:mp 177-179゜C[文献値:mp 187-192, New-komeら 、"Reductive Dehalogenation of Electron-Poor Heterocycles: Nicotinic Aci
d Derivatives" J.Org.Chem. 51: 953-954(1986)]。1H NMR(DMSO-d6):δ8.81(1H
,dd,J=0.8, 2.4Hz)、8.01(1H,dd,J=0.8, 8.2Hz)、7.91(1H,dd,J=2.4, 8.2Hz)。
機層を合わせて飽和食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮すると黄
色固体が得られた。フラッシュクロマトグラフィ(シリカ、10 %酢酸エチル−ヘ
キサン)で精製し、標題化合物を白色針状結晶として得た:mp 48-49゜C。1H NMR
(CDCl3):δ8.94(1H,d,J=2.1Hz)、7.91(1H,dd,J=2.1, 8.2Hz)、7.85(1H,d,J=8.2H
z)、4.41(2H,q,J=7.1Hz)、1.41(3H,t,J=7.1Hz)。
ルナフタレン-1(2H)-オン(化合物E)4 g(21.7 mmol)と4-ヨード安息香酸エチル
6 g(21.7 mmol)のトリエチルアミン(100 ml)溶液にビス(トリフェニルホス
ホニウム)パラジウム(II)クロリド5 g(7.2 mmol)とヨウ化第一銅1.4 g (7.2
mmol)を加えた。混合物をアルゴンで5分間フラッシュし、室温で18時間攪拌し た。反応混合物をセライトを通して濾過し、濾液を真空下に濃縮した。フラッシ
ュクロマトグラフィ(シリカ、10%酢酸エチル−ヘキサン)によって精製し、標 題化合物を白色固体として得た。PMR(CDCl3):δ1.41(3H,t,J=7.2Hz)、1.41(6H,s
)、2.04(2H,t,J=6.5Hz)、2.76(2H,t,J=6.5Hz)、4.40(2H,q,J=7.2Hz)、7.44(1H,d
,J=8.2Hz)、7.59(2H,d,J=8.4Hz)、7.68(1H,dd,J=1.8, 8.2Hz)、8.04(2H,d,J=8.4
Hz)、8.15(1H,d,J=1.8Hz)。
l冷溶液(-78゜C)に4-[(5,6,7,8-テトラヒドロ-5,5-ジメチル-8-オキソ-2-ナフタ レニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物F)500 mg(1.44 mmol)のTHF4.0 ml溶 液を加えた。反応混合物を-78゜Cで35分間攪拌し、それから5-クロロ[2-ビストリ
フルオロメチルスルホニル]イミド601.2 mg(1.59 mmol)のTHF4.0 ml溶液を加え た。-78゜Cで1時間攪拌したのち、溶液を0゜Cまで昇温して2時間攪拌した。飽和
塩化アンモニウム水溶液を加えて反応を停止させた。混合物を酢酸エチル(50 ml
)で抽出し、有機層を合わせて5 %水酸化ナトリウム、水および食塩水で洗浄した
。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、真空下で濃縮して黄色の油状物を得た。カ
ラムクロマトグラフィ(シリカ、7 %酢酸エチル−ヘキサン)で精製して無色固体 の標題化合物を得た。1H NMR(CDCl3):δ8.04(2H,dd,J=1.8, 8.4Hz)、7.60(2H,dd
,J=1.8, 8.4Hz)、7.51(2H,m)、7.32(1H,d,J=8.0Hz)、4.40(2H,q,J=7.1Hz)、6.02
(1H,t,J=5.0Hz)、2.44(2H,d,J=5.0Hz)、1.43(3H,t,J=7.1Hz)、1.33(6H,s)。
リチオトルエン溶液を調製した。30分間攪拌したのち、塩化亜鉛269.4 mg(1.977
mmol)のTHF3.0 ml溶液を加えた。得られた溶液を室温まで昇温させ、30分間放 置し、それからカニューレを通して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフ ルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化
合物G)472.9 mg(0.988 mmol)とテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジ ウム(0)50 mg(0.04 mmol)のTHF4.0 ml溶液に加えた。得られた溶液を50゜Cに4
5分間加熱し、それから室温まで冷却し、そして飽和塩化アンモニウム溶液で希 釈した。混合物を酢酸エチル(40 ml)で抽出し、有機層を合わせて水および食 塩水で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し真空下に濃縮して黄色の油状
物を得た。カラムクロマトグラフィ(シリカ、5 %酢酸エチル−ヘキサン)で精製 し無色固体の標題化合物を得た。1H NMR(d6-アセトン):δ1.35(6H,s)、1.40(3H,t,J= 7.1Hz)、2.36(2H,d,J=4.7Hz)、2.42(3H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、5.99(1H,t,J=
4.7Hz)、7.25(5H,m)、7.35(2H,m)、7.52(2H,d,J=8.5Hz)、7.98(2H,d,J=8.5Hz)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、フェニ ルリチウム(1.8 Mシクロヘキサン/ジエチルエーテル溶液)58.2 mg(0.38 ml, 0
.69 mmol)、塩化亜鉛116.1 mg(0.85 mmol)およびテトラキス(トリフェニルホス
フィン)パラジウム(0)13.8 mg(0.01 mmol)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5
-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル
]安息香酸エチル(化合物G)203.8 mg(0.43 mmol)を標題化合物に変換した(無 色の固体)。PMR(CDCl3):δ1.36(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)、2.37(2H,d,J=4.7H
z)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、6.02(1H,t,J=4.7Hz)、7.20(1H,d,J=1.5Hz)、7.27(1H,
m)、7.39(6H,m)、7.52(2H,d,J=8.2Hz)、7.98(2H,d,J=8.2Hz)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛284.8 mg(2.090 mol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム( 0)24 mg(0.02 mmol)のTHF 2.0 ml溶液および3-メチルフェニルリチウム(t-ブ
チルリチウム(1.7 Mペンタン溶液)201.2 mg(1.86 ml, 3.14 mmol)を3-メチル ブロモベンゼン274.0 mg(1.568 mmol)のTHF2.0ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製し た)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホ ニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)250.0 mg(0
.522 mmol)を標題の化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.99(2
H,d,J=8.4Hz)、7.51(2H,d,J=8.4Hz)、7.39-7.14(7H,m)、5.99(1H,t,J=4.7Hz)、4
.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.60(3H,s)、2.35(2H,d,J=4.7Hz)、1.39(3H,t,J=7.1Hz)、1
.34(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛199.4 mg(1.463 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)
24 mg(0.02 mmol)のTHF4.0ml溶液、および2-メチルフェニルリチウム(t-ブチル
リチウム(1.7 Mペンタン溶液)133.9 mg(1.23 ml, 2.09 mmol)を2-メチルブロ
モベンゼン178.7 mg(1.045 mmol)のTHF2.0ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製した) を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルフォニ ル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)を標題化合物
に変換した(無色の固体)。1H NMR(CDCl3):δ7.97(2H,d,J=8.4Hz)、7.50(2H,d,J=
8.4Hz)、7.49-7.19(6H,m)、6.81(1H,d,J=1.6Hz)、5.89(1H,t,J=4.5Hz)、4.36(2H
,q,J=7.1Hz)、2.43-2.14(2H,dq,J=3.7, 5.4Hz)、2.15(3H,s)、1.39-1.34(9H,m)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛249.0 mg(1.827 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(
0)24 mg(0.02 mmol)のTHF2.0 ml溶液および 3,5-ジメチルフェニルリチウム(
t-ブチルリチウム(1.7 Mペンタン溶液)167.7 mg(1.54 ml, 2.62 mmol)を3,5-
ジメチルブロモベンゼン249.0 mg(1.305 mmol)のTHF2.0 ml冷溶液(-78゜C)に加え
て調製した)を使用して4-[5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチル
スルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)250
mg(0.522mmol)を標題化合物に変換した(無色の固体)。1H NMR(CDCl3):δ7.98(2H
,d,J=8.4Hz)、7.52(2H,d,J=8.4Hz)、7.40-7.33(2H,m)、7.20(1H,d,J=1.6Hz)、7.
00(1H,s)、6.97(2H,s)、5.97(1H,t,J=4.8Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.36(6H,s)
、2.34(2H,d,J=4.8Hz)、1.39(3H,t,J=7.1Hz)、1.37(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般合成法を適用し、塩化亜鉛2
49.0 mg(1.827 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0 )24 mg(0.02 mmol)のTHF2.0 ml溶液および4-エチルフェニルリチウム(t-ブチ ルリチウム(1.7 Mペンタン溶液)167.7 mg(1.54 mmol)を4-エチルブロモベンゼ
ン244.0 mg(1.305 mmol)のTHF2.0 ml)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチ
ル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香
酸エチル(化合物G)を標題化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7
.99(2H,d,J=8.4Hz)、7.51(2H,d,J=8.4Hz)、7.42-7.24(7H,m)、5.99(1H,t,J=4.7H
z)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.71(2H,q,J=7.6Hz)、2.35(2H,d,J=4.7Hz)、1.39(3H,
t,J=7.1Hz)、1.34(6H,s)。
]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜鉛142.
2 mg(1.045 mmol)および4-t-ブチルフェニルリチウム[t-ブチルリチウム(1.5 M
ペンタン溶液)100.6 mg(0.97 ml, 1.57 mmol)を4-t-ブチルブロモベンゼン167.
0 mg(0.78 mmol)のTHF1.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製した]を使用して4-[(
5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナ フタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)250.0 mg(0.52 mmol)を標題化合
物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.99(2H,d,J=8.4Hz)、7.55(2H,
d,J=8.4Hz)、7.28-7.45(7H,m)、6.02(1H,t,J=4.9Hz)、4.38(2H,q,J=7.2Hz)、2.3
6(2H,d,J=4.9Hz)、1.59(3H,s)、1.40(3H,t,J=7.2Hz)、1.39(9H,s)、1.35(6H,s) 。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛249.0 mg(1.827 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(
0)24 mg(0.02 ml)のTHF2.0 ml溶液および4-クロロフェニルリチウム(t-ブチ ルリチウム(1.7 Mペンタン溶液)167.7 mg(1.54 ml, 2.62 mmol)を4-クロロ-1-
ブロモベンゼン252.4 mg(1.305 mmol)のTHF2.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製
した)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスル ホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)を標題化
合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.98(2H,d,J=8.4Hz)、7.53(2
H,d,J=8.4Hz)、7.40-7.27(6H,m)、7.12(1H,d,J=1.6Hz)、6.00(1H,t,J=4.8Hz)、4
.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.35(2H,d,J=4.8Hz)、1.40(2H,t,J=7.1Hz)、1.34(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の合成と同じ一般法を適用し、塩化亜鉛249.0
mg(1.827 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)24
mg(0.02 mmol)のTHF2.0 ml溶液および4-メトキシフェニルリチウム(t-ブチルリ
チウム(1.7 Mペンタン溶液)167.7 mg(1.54 ml, 2.62 mmol)を4-メトキシ-1-ブ
ロモベンゼン244.1 mg(1.305 mmol)の冷溶液(-78゜C)に加えて調製した)を使 用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキ
シ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)を標題化合物(無色の
固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.98(2H,d,J=8.5Hz)、7.52(2H,d,J=8.6Hz)
、7.40-7.21(5H,m)、6.95(2H,d,J=8.7Hz)、5.97(1H,t,J=4.7Hz)、4.37(2H,q,J=7
.1Hz)、4.34(3H,s)、2.34(2H,d,J=4.7Hz)、1.39(3H,t,J=7.1Hz)、1.34(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛249.0 mg(1.827 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(
0)24 mg(0.02 mmol)および4-トリフルオロメチルフェニルリチウム(t-ブチル
リチウム(1.7 Mペンタン溶液)167.7 mg(1.54 ml, 2.62 mmol)を4-トリフルオ ロメチルブロモベンゼン296.6 mg(1.305 mmol)のTHF2.0 ml冷溶液(-78゜C)に加
えて調製した)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメ チルスルホニル)オキシ)-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G )を標題の化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.98(2H,d,J=8.
5Hz)、7.67(2H,d,J=8.3Hz)、7.54-7.36(6H,m)、7.10(1H,d,J=1.6Hz)、6.06(1H,t
,J=4.8Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.38(2H,d,J=4.8Hz)、1.39(3H,t,J=7.1Hz)、1
.35(6H,s)。
ル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜鉛1
42.4 mg(1.045 mmpl)および2-リチオピリジン(t-ブチルリチウム(1.5 Mペンタ
ン溶液)100.6 mg(0.97 ml, 1.57 mmol)を2-ブロモピリジン123.8 mg(0.784 mmo
l)のTHF1.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製した)を使用して4-[5,6-ジヒドロ-5
,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニ
ル]安息香酸エチル(化合物G)250.0 mg(0.52 mmol)を標題の化合物(無色の固体
)に変換した。1H NMR(d6-アセトン):δ8.64(1H,m)、7.99(2H,d,J=8.5Hz)、7.85(1H,d dd,J=1.8, 7.7, 9.5Hz)、7.58(2H,d,J=8.4Hz)、7.50(1H,d,J=7.7Hz)、7.47(2H,d
,J=1.1Hz)、7.35(2H,m)、6.32(1H,t,J=4.8Hz)、4.34(2H,q,J=7.2Hz)、2.42(2H,d
,J=7.4Hz)、1.35(3H,t,J=7.0Hz)、1.35(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛142.4 mg(1.045 mmol)および3-リチオピリジン(t-ブチルリチウム(1.5 Mペ ンタン溶液)100.2 mg(0.92 ml, 1.56 mmol)を3-ブロモピリジン123.8 mg(0.784
mmol)のTHF1.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製した)を使用して4-[(5,6-ジヒド
ロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エ
チニル]安息香酸エチル(化合物G)170.0 mg(0.35 mmol)を標題の化合物(無色 の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ8.63-8.61(2H,dd,J=1.7Hz)、7.99(2H,d,
J=8.4Hz)、7.67(1H,dt,J=7.9Hz)、7.52(2H,d,J=8.4Hz)、7.43-7.34(3H,m)、7.10
(1H,d,J=1.6Hz)、6.07(1H,t,J=4.7Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.40(2H,d,J=4.7H
z)、1.390(3H,t,J=7.1Hz)、1.36(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜鉛1
42.4 mg(1.045 mmol)および2-メチル-5-リチオピリジン[t-ブチルリチウム(1.7
Mペンタン溶液)100.5 mg(0.92 ml, 1.57 mmol)を2-メチル-5-ブロモピリジン のTHF1.0 ml冷溶液に加えて調製した]を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチ ル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香
酸エチル(化合物G)を標題の化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3): δ8.50(1H,d,J=2.2Hz)、7.99(2H,d,J=8.3Hz)、7.56(1H,dd,J=2.3, 8.0Hz)、7.53
(2H,d,J=8.4Hz)、7.43(1H,dd,J=2.3, 8.0Hz)、7.37(2H,d,J=8.0Hz)、7.21(1H,d,
J=8.1Hz)、7.11(1H,d,J=1.5Hz)、6.04(1H,t,J=4.7Hz)、4.38(2H,q,J=7.2Hz)、2.
63(3H,s)、2.38(2H,d,J=4.6Hz)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)、1.35(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物G)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛150.0 mg(1.10 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム( 0)24 mg(0.02 mmol)のTHF2.0 ml溶液、および3-((2,2-ジメチルエチル)ジメチ
ルシロキシ)フェニルリチウム(t-ブチルリチウム(1.7 Mペンタン溶液)100.2
mg(0.92 ml, 1.564 mmol)を3-((2,2-ジメチルエチル)ジメチルシロキシ)ブロモ ベンゼン226.0 mg(0.787 mmol)のTHF2.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製した)を
使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オ
キシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)150.0 mg(0.314 mmo
l)を標題の化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.98(2H,d,J=8.
4Hz)、7.51(2H,d,J=8.4Hz)、7.40-7.22(4H,m)、6.95(1H,d,J=7.6Hz)、6.84-6.82
(2H,m)、6.00(1H,t,J=4.7Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.35(2H,d,J=4.7Hz)、1.39
(3H,t,J=7.1Hz)、1.34(3H,s)、0.99(9H,s)、0.23(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用して、塩化 亜鉛209.0 mg(1.53 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム (0)24 mg(0.02 mmol)のTHF2,0 ml溶液および4-((2,2-ジメチルエチル)ジメチ
ルシロキシ)フェニルリチウム(t-ブチルリチウム(1.7 Mペンタン溶液)140.3
mg(1.30 ml, 2.19 mmol)を4-((2,2-ジメチルエチル)ジメチルシロキシ)ブロモ ベンゼン315.0 mg(1.09 mmol)のTHF2.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えることによって 調製した)を使用して、4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチ ルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)を 標題の化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR(CDCl3):δ7.98(2H,d,J=8.4Hz)
、7.51(2H,d,J=8.4Hz)、7.39-7.25(3H,m)、7.21(2H,d,J=8.5Hz)、5.87(2H,d,J=8
.5Hz)、5.96(1H,t,J=4.7Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.33(2H,d,J=4.7Hz)、1.39(
3H,t,J=7.1Hz)、1.33(6H,s)、1.01(9H,s)、0.25(6H,s)。
mol)の1.0 mlTHF溶液にテトラブチルアンモニムフルオリド(1M THF溶液)91.5
mg(0.35 ml, 0.35 mmol)を室温で加えた。一晩攪拌した後、溶液を酢酸エチルで
希釈し、水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥
した。溶媒を減圧下に除去し、それからカラムクロマトグラフィ(4:1、ヘキサ ン−酢酸エチル)にかけて標題の無色固体化合物を得た。1H NMR(CDCl3):δ7.98
(2H,d,J=7.8Hz)、7.52(2H,d,J=8.3Hz)、7.39-7.21(4H,m)、6.93(1H,d,J=7.5Hz) 、6.84(1H,d,J=7.1Hz)、6.83(1H,s)、6.01(1H,t,J=4.7Hz)、4.91(1H,s)、4.39(2
H,q,J=7.1Hz)、2.35(2H,d,J=4.7Hz)、1.39(3H,t,J=7.1Hz)、1.34(6H,s)。
0.095 mmol)の1.0 mlTHF溶液にテトラブチルフルオリド(1M THF溶液)73.2 mg(
0.29 ml, 0.29 mmol)を室温で加えた。一晩攪拌した後、溶液を酢酸エチルで希 釈し、続いて水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで
乾燥した。溶媒を減圧下に除去し、それからカラムクロマトグラフィ(4:1、ヘキ
サン−酢酸エチル)にかけ、無色固体の標題化合物を得た。1H NMR(CDCl3):δ7.9
8(2H,d,J=8.2Hz)、7.52(2H,d,J=8.3Hz)、7.41-7.20(5H,m)、6.88(2H,d,J=8.4Hz)
、5.96(1H,t,J=4.5Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.34(2H,d,J=4.5Hz)、1.39(3H,t,
J=7.1Hz)、1.34(6H,s)。
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用して、塩化 亜鉛150.0 mg(1.10 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム (0)14 mg(0.012 mmol)の4.0 mlTHF溶液および5-メチルチアゾール-2-イルリ チウム(n-ブチルリチウム(1.55 Mヘキサン溶液)53.2 mg(0.53 ml, 0.83 mmol
)を5-メチルチアゾール82.0 mg(0.83 mmol)の5.0 mlTHF冷溶液(-78゜C)に加えて 調製した)を使用し、4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチル スルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)264.
0 mg(0.5552 mmol)を標題の化合物に変換した(無色の固体)。1H NMR (CDCl3):
δ7.99 (2H,d,J=7.8Hz), 7.88 (1H,d,J=1.5Hz), 7.55 (2H,d,J=7.8Hz), 7.54 (1
H,s), 7.45 (1H,dd,J=1.5, 8.0Hz), 7.35 (1H,d,J=7.9Hz), 6.48 (1H,t,J=4.8Hz
), 4.38 (2H,q,J=7.1Hz), 2.51 (3H,s), 2.38 (2H,d,J=4.8Hz), 1.40 (3H,s), 1
.32 (6H,s).
(1.5 Mヘキサン溶液)41.2 mg(0.42 ml, 0.63 mmol)を加えて2-リチオチアゾー
ル溶液を調製した。その溶液を30分間攪拌し、それから塩化亜鉛113.9 mg(0.84
mmol)をTHF1.5 mlに溶解した溶液を加えた。得られた溶液を室温まで昇温し、30
分間攪拌し、それからカニューレを通して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-( トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチ
ル(化合物G)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)1
2.4 mg(0.01 mmol)のTHF1.5 ml溶液に有機亜鉛化合物を添加した。生成した溶液
を50゜Cに45分間加熱し、それから室温まで冷却し飽和塩化アンモニウム水溶液で
希釈した。混合物を酢酸エチル(40 ml)で抽出し、有機層を合わせて水および食 塩水で洗った。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥して減圧濃縮し、黄色油状物を得
た。カラムクロマトグラフィによって精製し(シリカ、20% 酢酸エチル−ヘキサ
ン)標題の無色油状化合物を得た。PMR (CDCl3):δ1.35 (6H,s), 1.40 (3H,t,J=
7.1Hz), 2.42 (2H,d,J=4.8Hz), 4.38 (2H,q,J=7.1Hz), 6.57 (1H,t,J=4.8Hz), 7
.33 (1H,d,J=3.3Hz), 7.36 (1H,d,J=8.0Hz), 7.46 (1H,dd,J=1.7, 8.1Hz), 7.55
(2H,d,J=8.4Hz),7.87 (1H,d,J=1.7Hz),7.92 (1H,d,J=3.3Hz),8.00 (2H,d,J=8.4
Hz).
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用して、塩化 亜鉛168.0 mg(1.23 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム (0)12 mg(0.011 mmol)の6.0 mlTHF溶液および4-メチルチアゾール-2-イル リ
チウム(n-ブチルリチウム(1.55 Mヘキサン溶液)59.6 mg(0.60 ml, 0.93 mmol
)を4-メチルチアゾール92.0 mg(0.93 mmol)のTHF6.0 ml冷溶液(-78゜C)を加えて 調製した)を使用し、4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチル スルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G) 295.0
mg(0.617 mmol)を標題の化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR (CDCl3):δ8
.00 (2H,d,J=8.4Hz), 7.80 (1H,d,J=1.7Hz), 7.55 (2H,d,J=8.4Hz), 7.45 (1H,d
d,J=1.7, 8.0Hz), 7.35 (1H,d,J=8.0Hz), 6.87 (1H,s), 6.52 (1H,t,J=4.7Hz),
4.37 (2H,q,J=7.2Hz), 2.54 (3H,s), 2.39 (2H,d,J=4.7Hz), 1.40 (3H,t,J=7.2H
z), 1.33 (3H,s).
リチウム(n-ブチルリチウム(1.55 Mヘキサン溶液)40.2 mg(0.39 mmol)を4,5-
ジメチルチアゾール71.0 mg(0.63 mmol)のTHF2.0 ml冷溶液(-78゜C)に加えて調製
した)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスル ホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)200.0 mg(
0.418 mmol)を標題化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR (CDCl3):δ8.00 (
2H,d,J=8.4Hz), 7.82 (1H,d,J=1.7Hz), 7.54 (2H,d,J=8.4Hz), 7.43 (1H,dd,J=1
.7, 8.0Hz), 7.33 (1H,d,J=8.0Hz), 6.45 (1H,t,J=4.9Hz), 4.38 (2H,q,J=7.1Hz
), 2.41 (3H,s), 2.40 (3H,s), 2.37 (2H,d,J=4.9Hz), 1.40 (3H,t,J=7.1Hz), 1
.32 (6H,s).
mg(0.969 mmol)をTHF/水(3:1 v/v)3 ml中、室温で一晩攪拌した。飽和塩化ア
ンモニウム水溶液を加えて反応を停止させ、酢酸エチルで抽出した。有機層を合
わせて水および食塩水で洗浄し、それから硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮し
て標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (d6-DMSO):δ8.41 (1H,d,J=1.9H
z), 7.90 (2H,d,J=8.3Hz), 7.63 (1H,dd,J=2.3, 7.9Hz), 7.59 (2H,d,J=8.3Hz),
7.49 (2H,m), 7.33 (1H,d,J=7.8Hz), 6.95 (1H,s), 6.11 (1H,t,J=4.5Hz), 2.5
2 (3H,s), 2.37 (2H,d,J=4.6Hz), 1.31 (6H,s).
91 mmol)をTHF/水3 ml中で一晩攪拌した。飽和塩化アンモニウム水溶液を加え て反応を停止し、酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせて水と食塩水で洗浄し
、それから硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧除去し、標題化合物を無色の固体とし
て得た。1H NMR (d6-DMSO):δ8.64 (1H,m), 7.94 (2H,d,J=8.3Hz), 7.87 (1H,dt
,J=1.7, 7.8Hz), 7.58 (2H,d,J=8.3Hz), 7.50 (1H,d,J=8.2Hz), 7.47 (2H,s), 7
.37 (1H,m), 7.25 (1H,s), 6.30 (1H,t,J=4.6Hz), 2.39 (2H,d,J=4.6Hz), 1.31
(6H,s).
ニル]安息香酸エチル(化合物2)30.0 mg(0.071 mmol)をEtOH 3 mlおよびTHF 2
mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)28.0 mg(0.70 mmol, 0.7
ml)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、10 % 塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後溶媒を減圧下
に除去し、標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.90 (2H,d,J
=8.5Hz), 7.59 (2H,d,J=8.5Hz), 7.46 (2H,s), 7.32-7.13 (4H,m), 7.10 (1H,s)
, 6.98 (1H,t,J=4.5Hz), 2.34 (3H,s), 2.31 (2H,d,J=4.5Hz), 1.30 (6H,s).
チニル]安息香酸エチル(化合物5)47.0 mg(0.108 mmol)をEtOH 3 mlおよびTHF
2 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)28.0 mg(0.70 mmol, 0
.7 ml)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、10
%塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後溶媒を減圧
除去し、標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.90 (2H,d,J=8
.3Hz), 7.59 (2H,d,J=8.3Hz), 7.46 (2H,s), 7.29-7.21 (4H,m), 7.02 (1H,s),
6.01 (1H,t,J=4.5Hz), 2.64 (2H,q,J=7.5Hz), 2.33 (2H,d,J=4.5Hz), 1.29 (6H,
s), 1.22 (3H,t,J=7.5Hz).
チニル]安息香酸エチル(化合物8)80.0 mg(0.183 mmol)をEtOH 3 mlおよびTHF
2mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)40.0 mg(1.00 ml, 1.0
ml)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、10 %
塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後溶媒を減圧除
去し、標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.90 (2H,d,J=8.3
Hz), 7.60 (2H,d,J=8.3Hz), 7.45 (2H,s), 7.24 (2H,d,J=8.6Hz), 7.02-6.89 (3
H,m),5.98 (1H,t,J=4.4Hz), 3.79 (3H,s), 2.31 (2H,d,J=4.7Hz), 1.29 (6H,s).
mlおよびTHF 2 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)60.0 mg(1
.50 mmol, 1.5ml)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで
冷却し、10 %塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後
、溶媒を減圧除去し、標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.
90 (2H,d,j=8.3Hz), 7.80 (2H,d,J=8.1Hz), 7.61-7.47 (6H,m), 6.97 (2H,s), 6
.16 (1H,t,J=4.5Hz), 2.37 (2H,d,J=4.6Hz), 1.30 (6H,s).
エチニル]安息香酸エチル(化合物4)40.0 mg(0.207 mmol)をEtOH 3 mlおよびT
HF 2mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)48.0 mg(1.20 mmol,
1.20 ml)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、
10 %塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を
減圧除去し標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.90 (2H,d,J
=8.2Hz), 7.59 (2H,d,J=8.2Hz), 7.45 (2H,s), 7.00 (1H,s), 6.97 (1H,s), 5.9
7 (1H,t,J=4.5Hz), 2.31 (2H,d,J=4.5Hz), 2.30 (6H,s), 1.29 (6H,s).
ニル]安息香酸エチル(化合物7)80.0 mg(0.181 mmol)をEtOH 3mlおよびTHF 2m
lに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)48.0 mg(1.20 mmol, 1.2 m
l)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、10 %塩
酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧除
去し標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.90 (2H,d,J=8.3Hz
), 7.60 (2H,d,J=8.3Hz), 7.51-7.48 (4H,m), 7.34 (2H,d,J=8.4Hz), 6.97 (1H,
s), 6.07 (1H,t,J=4.5Hz), 2.34 (2H,d,J=4.6Hz), 1.29 (6H,s).
加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却後、10 %塩酸で
酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧除去し
標題化合物を無色の固体を得た。1H NMR (DMSO):δ8.60 (1H,d,J=4.6Hz), 8.55
(1H,s), 7.90 (2H,d,J=8.3Hz), 7.76 (1H,d,J=7.5Hz), 7.60 (2H,d,J=8.3Hz), 7
.51-7.46 (3H,m), 6.94 (1H,s), 6.14 (1H,t,J=4.5Hz), 2.37 (2H,d,J=4.5Hz),
1.31 (6H,s).
ニル]安息香酸エチル(化合物3)80.0 mg(0.190 mmol)をEtOH 3 mlおよびTHF 2ml
に溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0 M水溶液)60.0 mg(1.50 mmol, 1.5 ml
)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、10 %塩 酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧除
去し標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (DMSO):δ7.89 (2H,d,J=8.4Hz
), 7.57 (2H,d,J=8.4Hz), 7.46 (2H,s), 7.29-7.14 (4H,m), 6.59 (1H,s), 5.90
(1H,t,J=4.7Hz), 2.39 (2H,m), 2.60 (3H,s), 1.39 (3H,s), 1.29 (3H,s).
.076 mmol) をEtOH 3mlおよびTHF2 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.0M 水溶液)40.0 mg(1.00 mmol, 1.00 ml)を加えた。その溶液を50゜Cで2時間加熱 し、それから室温まで冷却し、10%塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、硫 酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧除去し標題化合物を無色の固体として得た。
1H NMR (d6-アセトン):δ7.90 (2H,d,J=8.3Hz), 7.49 (2H,d,J=8.4Hz), 7.35 (2H,s) , 7.15-7.07 (2H,m), 6.77-6.69 (3H,m), 5.92 (1H,t,J=4.7Hz), 2.25(2H,d,j=4
.7Hz), 1.23 (6H,s).
0.143 mmol)をEtOH 3 mlおよびTHF 2 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム(1.
0 M水溶液)60.0 mg(1.50 mmol, 1.50 ml)を加えた。その溶液を50゜Cに2時間加
熱し、それから室温まで冷却し、10 %塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、
硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧除去し標題化合物を無色の固体として得た
。1H NMR (d6-acetone):δ8.01 (2H,d,J=8.3Hz), 7.59 (2H,d,J=8.4Hz), 7.45 (
2H,s), 7.20-7.17 (3H,m), 6.92-6.89 (2H,m), 5.97 (1H,t,J=4.7Hz), 2.35 (2H
,d,J=4.7Hz), 1.34 (6H,s).
ニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物15)(100 mg, 0.23 mmol)をEtOH 3 mlお
よびTHF 2 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム水溶液(1 ml, 1 M, 1 mmol) を加えた。その溶液を50゜Cに1時間加温し、それから減圧濃縮した。残留物をジ
クロロメタンとエーテル(5:1)の溶液に懸濁させ、1 M塩酸でpH 5にした。分液 し、有機層を食塩水で洗い、硫酸ナトリウムで乾燥、濾過し、それから溶媒を減
圧で除去して標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (d6-DMSO):δ7.96 (1
H,d,J=1.7Hz), 7.95 (2H,d,J=8.0Hz), 7.65 (2H,d,J=8.0Hz), 7.64 (1H,s), 7.5
3 (1H,dd,J=1.7, 8.0Hz), 7.46 (1H,d,J=8.0Hz), 6.59 (1H,t,J=4.5Hz), 2.50 (
3H,s), 2.39 (2H,d,J=4.5Hz), 1.27 (6H,s).
]安息香酸エチル(化合物15a)33.9 mg(0.08 mmol)とLiOH ・H2O 8.5 mg(0.20 m
mol)をTHF/水(3:1 V/V)3 mlに溶かした溶液を室温で一晩攪拌した。飽和塩化ア
ンモニウム水溶液を加えて反応を停止させ、酢酸エチルで抽出した。有機層を合
わせ、水および食塩水で洗浄し、それから硫酸ナトリウムで乾燥させ、減圧濃縮
して標題化合物を無色の固体として得た。PMR (d6-DMSO):δ1.29 (6H,s), 2.42
(2H,d,J=4.6Hz), 6.68 (1H,t,J=4.6Hz), 7.51 (2H,m), 7.62 (2H,d,J=8.2Hz), 7
.77 (1H,d,J=3.3Hz), 7.93 (2H,d,J=8.2Hz), 7.98 (1H,d,J=3.3Hz).
ニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物16)(145.0 mg, 0.34 mmol)をエタノー ル4 mlに溶かした溶液に室温で水酸化ナトリウム水溶液(1 ml, 1 M, 1mmol) を加えた。得られた溶液を50゜Cに1時間加温し、それから減圧濃縮した。残留物
をジクロロメタンとエーテル(5:1)の溶液に懸濁させ、1 Mの塩酸でpHを5にし
た。分液し、有機層を水および食塩水で洗浄し、それから硫酸ナトリウムで乾燥
させ、濾過後減圧濃縮して標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (d6-DMS
O):δ7.94 (2H,d,J=8.1Hz), 7.87 (2H,d,J=1.6Hz), 7.63 (2H,d,J=8.3Hz), 7.50
(1H,dd,J=1.6, 8.1Hz), 7.45 (1H,d,J=8.1Hz), 7.27 (1H,s), 6.58 (1H,t,J=4.
8Hz), 2.43 (3H,s), 2.37 (2H,d,J=4.8Hz), 1.26 (6H,s).
タレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物17)(58.0 mg, 0.13 mmol)をエタ
ノール4 mlに溶かした溶液に室温で水酸化ナトリウム(1 ml, 1 M, 1mmol)を 加えた。得られた溶液を50゜Cに1時間加温し、減圧濃縮した。残留物をジクロロ
メタンとエーテル(5:1)の溶液に懸濁させ、1 Mの塩酸でpHを5にした。分液し
、有機層を食塩水で洗い、硫酸ナトリウムで乾燥させ、濾過後溶媒を減圧除去し
、標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (d6-DMSO):δ7.94 (2H,d,J=8.4H
z), 7.86 (1H,d,J=1.6Hz), 7.61 (2H,dd,J=8.3Hz), 7.50 (1H,dd,J=1.6, 8.0Hz)
, 7.45 (1H,d,J=8.0Hz), 6.51 (1H,t,J=4.9Hz), 2.37 (3H,s), 2.36 (2H,d,J=4.
6Hz), 2.32 (3H,s), 1.26 (6H,s).
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛202.0 mg(1.48 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム( 0)24 mg(0.022 mmol)のTHF2 ml溶液および5-メチル-2-リチオチオフェン(n-
ブチルリチウム(2.5 Mヘキサン溶液)58.65 mg(0.38 ml, 0.915 mmol)を2-メチ
ルチオフェン89.8 mg(0.915 mmol)の2.0 mlTHF冷溶液(-78゜C)に加えて調製し た)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホ ニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物G)170.0 mg(0.
366 mmol)を標題化合物(無色の固体)に変換した。1H NMR (CDCl3):δ8.00 (2H
,d,J=8.3Hz), 7.59 (1H,d,J=1.7Hz), 7.55 (2H,d,J=8.2Hz), 7.43 (1H,dd,J=1.7
, 8.0Hz), 7.35 (1H,d,J=8.0Hz), 6.87 (1H,d,J=3.5Hz), 6.74 (1H,d,J=2.8Hz),
6.15 (1H,t,J=4.8Hz), 4.38 (2H,q,J=7.1Hz), 2.52 (3H,s), 2.32 (2H,d,J=4.8
Hz), 1.40 (3H,t,J=7.1Hz), 1.32 (6H,s).
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛186.8 mg(1.37 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム( 0)37.1 mg(0.03 mmol)および2-リチオチオフェン(n-ブチルリチウム(1.5 M ヘキサン溶液)65.9 mg,(0.69 ml, 1.03 mmol)をチオフェン86.5 mg(1.03 mmol)
の1.0 mlTHF冷溶液(-78゜C)に加えて調製した)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-
5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチ ニル]安息香酸エチル(化合物G)250.0 mg(0.52 mmol)を標題化合物(無色の固体
)に変換した。PMR (CDCl3):δ1.33 (6H,s), 1.36 (3H,t,J=7.1Hz), 2.38 (2H,d
,J=4.7Hz), 4.34 (2H,q,J=7.2Hz), 6.25 (1H,t,J=4.7Hz), 7.13 (2H,m), 7.47 (
4H,m), 7.62 (2H,d,J=8.5Hz), 8.00 (2H,d,J=8.5Hz).
びTHF 2 ml溶液に室温で水酸化ナトリウム(1 ml, 1 M)を加えた。得られた溶液 を室温で一晩攪拌し、それから10 % 塩酸で酸性にした。酢酸エチルで抽出し、 硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧除去し標題化合物を無色の固体として得た
。1H NMR (d6-acetone):δ8.03 (2H,d,J=8.6Hz), 7.63 (2H,d,J=8.6Hz), 7.54-7
.48 (3H,m), 6.89 (1H,m), 6.18 (1H,t,J=4.7Hz), 2.49 (3H,s), 2.35 (2H,d,J=
4.7Hz), 1.32 (6H,s).
mg(0.42 mmol)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(2-チエニル)-2- ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物33a)70.0 mg(0.17 mmol)を標 題化合物(無色の固体)に変換した。PMR (d6-DMSO):δ1.27 (6H,s), 2.33 (2H,
d,J=4.9Hz), 6.23 (1H,t,J=4.9Hz), 7.14 (2H,m), 7.38-7.56 (4H,m), 7.61 (2H
,d,J=8.3Hz), 7.92 (2H,d,J=8.3Hz).
CO2ガスを反応液に1時間通じた。それから、溶液を室温に戻し、10 %塩酸を加 えて反応を停止した。酢酸エチルで抽出し、有機層を合わせ水および飽和塩化ナ
トリウム水溶液で洗浄し、そして硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧下に
除き、そして固体をヘキサンで洗い、標題化合物を無色の固体として得た。1H N
MR (CDCl3):δ7.94 (1H,dd,J=1.8, 8.1Hz), 7.76 (1H,d,J=1.8Hz), 7.45 (1H,d,
J=8.1Hz), 7.24 (4H,m), 6.01 (1H,t,J=4.7Hz), 2.40 (3H,s), 2.36 (2H,d,J=4.
7Hz), 1.35 (6H,s).
)、1-(3-ジメチルアミノプロピル)-3-エチルカルボジイミド塩酸塩145.0 mg(0.7
6 mmol)および4-ジメチルアミノピリジン92.4 mg(0.76 mmol)のDMF6.0 ml溶液を
室温で一晩攪拌した。酢酸エチルを加え、得られた溶液を水、飽和炭酸水素ナト
リウム水溶液および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、それから硫酸マグネシ
ウムで乾燥した。溶媒を減圧下に除去し、クロマトグラフィ(10 %ないし15 % 酢酸エチル/ヘキサン)によって生成物を無色の結晶として単離した。1H NMR (C
DCl3):δ8.02 (2H,d,J=8.7Hz), 7.72 (2H,m), 7.65 (2H,d,J=8.7Hz), 7.52 (1H,
d,J=1.8Hz), 7.48 (1H,d,J=8.0Hz), 7.25 (4H,m), 6.15 (1H,t,J=4.9Hz), 4.36
(2H,q,J=7.1Hz), 2.40 (3H,s), 2.38 (2H,d,J=4.9Hz), 1.39 (3H,t,J=7.1Hz), 1
.37 (6H,s).
およびTHF4.0 mlの溶液に水酸化ナトリウム240.1 mg(6.00 mmol, 2 M水溶液3.0
ml)を加えた。室温で72時間攪拌したのち、10 %塩酸を加えて反応を停止させた 。酢酸エチルで抽出し、有機層を硫酸マグネシウムで乾燥後、溶媒を減圧下に除
去すると固体が得られた。これをアセトニトリルから再結晶し、標題化合物を無
色の固体として得た。1H NMR (d6-DMSO):δ10.4 (1H,s), 7.91-7.81 (5H,m), 7.
54 (1H,d,J=8.1Hz), 7.45 (1H,d,J=1.7Hz), 7.23 (4H,s), 6.04 (1H,t,J=4.7Hz)
, 2.35 (5H,s), 1.33 (6H,s).
mmol)、1-(3-ジメチルアミノプロピル)-3-エチルカルボジイミド塩酸塩21.4 mg(
0.112 mmol)および4-ジメチルアミノピリジン12.6 mg(0.103 mmol)のDMF2.0 ml 溶液を室温で一晩攪拌した。酢酸エチルを加え、得られた溶液を水、飽和炭酸水
素ナトリウム水溶液および飽和塩化ナトリウム溶液で洗浄し、それから硫酸マグ
ネシウムで乾燥した。溶媒を減圧下に除去したのち、カラムクロマトグラフィ(
10 %酢酸エチル/ヘキサン)にかけ、生成物を淡黄色の結晶として単離した。1H
NMR (CDCl3):δ8.08 (2H,d,J=8.1Hz), 8.05 (1H,dd,J=1.8, 8.1Hz), 7.89 (1H,d
,J=1.8Hz), 7.50 (2H,d,J=8.1Hz), 7.22 (5H,m), 6.05 (1H,t,J=4.7Hz), 4.37 (
2H,q,J=7.1Hz), 2.39 (2H,d,J=4.7Hz), 2.38 (3H,s), 1.39 (3H,t,J=7.1Hz), 1.
37 (6H,s)
イミド塩酸塩80.0 mg(0.417 mmol)および4-ジメチルアミノピリジン51.0 mg(0.4
17 mmol)のDMF4.0 ml溶液を室温で一晩攪拌した。酢酸エチルを加え、得られた 溶液を水、飽和炭酸水素ナトリウムおよび飽和塩化ナトリウムで洗浄し、それか
ら硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧下に除去し、カラムクロマトグラフ
ィによって(5 %酢酸エチル/ヘキサン)生成物を無色の固体として単離した。1
H NMR (CDCl3):δ8.08 (2H,d,J=8.8Hz), 8.05 (1H,dd,J=1.8, 8.1Hz), 7.50 (1H
,d,J=8.1Hz), 7.26-7.18 (6H,m), 6.05 (1H,t,J=4.7Hz), 4.42 (2H,t,J=8.4Hz),
2.40 (2H,d,J=4.7Hz), 2.39 (3H,s), 1.38 (6H,s), 0.09 (9H,s)
213 mmol)およびテトラブチルアンモニウムフルオリド167.3 mg(0.640 mmol、1
M THF溶液0.64 ml)のTHF2.0 ml溶液を室温で22時間攪拌した。酢酸エチルを加え
、得られた溶液を水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウ
ムで乾燥した。溶媒を減圧下に除去し、残留固体を酢酸エチルおよびアセトニト
リルで洗浄して、標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (d6-アセトン):δ8.1 0 (2H,d,J=8.8Hz), 8.06 (1H,dd,J=2.0, 8.1Hz), 7.82 (1H,d,J=1.9Hz), 7.64 (
1H,d,J=8.1Hz), 7.35 (2H,d,J=8.6Hz), 7.25 (4H,m), 6.08 (1H,t,J=4.7Hz), 2.
42 (2H,d,J=4.7Hz), 2.35 (3H,s), 1.39 (6H,s).
(0.49 mmol)、1-(3-ジメチルアミノプロピル)-3-エチルカルボジイミド塩酸塩10
2.0 mg(0.53 mmol)および4-ジメチルアミノピリジン65.0 mg(0.53 mmol)のDMF5.
0 ml溶液を50゜Cで1時間攪拌し、それから室温で一晩攪拌した。酢酸エチルを加
え、得られた溶液を水、飽和炭酸水素ナトリウムおよび飽和塩化ナトリウムで洗
浄し、それから硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を癌圧下に除去したのち、カ
ラムクロマトグラフィ(20 %酢酸エチル/ヘキサン)によって生成物を無色の固 体として単離した。1H NMR (CDCl3):δ7.96 (1H,s), 7.89 (1H,t,J=8.4Hz), 7.7
0 (2H,m), 7.52 (1H,d,J=1.9Hz), 7.45 (1H,d,J=8.1Hz), 7.23 (5H,m), 6.04 (1
H,t,J=4.8Hz), 4.36 (2H,q,J=7.1Hz), 2.38 (3H,s), 2.35 (2H,d,J=4.8Hz), 1.3
9 (3H,t,J=7.1Hz), 1.36 (6H,s).
のエタノール2.0 mlおよびTHF2.0 ml溶液に水酸化ナトリウム40.0 mg(1.00 mmol
, 1 M水溶液1.0 ml)を加えた。室温で一晩攪拌したのち、10 %塩酸を加えて反応
を停止させた。 酢酸エチルで抽出し、有機層を硫酸マグネシウムで乾燥し、そ れから溶媒を減圧下に除去して固体を得た。アセトニトリルから再結晶し、標題
化合物を淡黄色固体として得た。1H NMR (d6-アセトン):δ9.84 (1H,s), 7.94-7.83 (3H,m), 7.64 (1H,dd,J=2.0Hz), 7.53 (2H,d,J=8.1Hz), 7.23 (4H,s), 6.04 (1H
,t,J=4.7Hz), 2.38 (2H,d,J=4.7Hz), 2.36 (3H,s), 1.35 (6H,s).
ス(4-メトキシフェニル)-1,3-ジチア-2,4-ジホスフェタン-2,4-ジスルフィド](L
awesson試薬)121.0 mg(0.30 mmol)のベンゼン12.0ml溶液を一晩還流させた。室 温まで冷却したのち混合物を濾過し、濾液を減圧濃縮した。クラマトグラフィ(1
0%から20%酢酸エチル/ヘキサン)にかけ、標題化合物を黄色固体として単離した 。1H NMR (CDCl3):δ8.92 (1H,s), 8.06 (2H,t,J=8.5Hz), 7.88-7.70 (3H,m), 7
.42 (2H,d,J=8.1Hz), 7.18 (4H,m), 6.03 (1H,t,J=4.7Hz), 4.37 (2H,q,J=7.1Hz
), 2.38 (3H,s), 2.36 (2H,d,J=4.7Hz), 1.56 (3H,t,J=7.1Hz), 1.35 (6H,s).
2.0 mlおよびTHF 2.0 ml溶液に水酸化ナトリウム60.0 mg(1.50 mmol, 1 M水溶 液1.5 ml)を加えた。室温で一晩攪拌した後、10 %塩酸を加えて反応を停止させ
た。酢酸エチルで抽出し、有機層を硫酸マグネシウムで乾燥し、そして溶媒を減
圧除去して固体を得た。アセトニトリルから再結晶して標題化合物を黄色固体と
して得た。1H NMR (d6-アセトン):δ10.96 (1H,s), 8.05 (4H,m), 7.72 (1H,dd,J=2. 0, 8.0Hz), 7.54 (1H,s), 7.46 (1H,d,J=8.1Hz), 7.20 (4H,m), 6.04 (1H,t,J=4
.7Hz), 2.38 (2H,d,J=4.7Hz), 2.33 (3H,s), 1.35 (6H,s).
mol)を入れたニトロベンゼン400 mlの冷混合物(-10゜C)に塩化アセチル21.0 g(
267 mmol)を加えた。反応混合物を攪拌機で攪拌しながら室温まで昇温させ、そ れから40゜Cに18時間加熱した。氷浴中で0゜Cまで冷却し、12 M塩酸(70 ml)を加
えて反応を停止させた。分液し、有機層を水および薄い炭酸ナトリウム水溶液で
洗った。クーゲルロールで蒸留し、それから10 %酢酸エチル−ヘキサンで再結晶
を行い淡褐色の標題化合物23 gを得た。1H NMR (CDCl3):δ8.44 (1H,br,s), 8.0
4-8.10 (2H,m), 7.85 (1H,d,J=8.5Hz), 7.82 (1H,d,J=8.8Hz), 7.64 (1H,d,J=8.
8Hz), 2.73 (3H,s).
に水50 mlに溶かした水酸化ナトリウム(6.4 g, 160.6 mmol)と1,4-ジオキサン50
mlに溶かした2-アセチル-6-ブロモナフタレン(化合物L)4 gを加えた。その黄
色溶液を油浴中70゜Cに2時間加熱し、それから室温まで冷却し、エチルエーテル
(2 x 50 ml)で抽出した。水層を炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し(KI指示溶液 が着色しなくなるまで)、それから1 N硫酸で酸性(pH<2)にすると白色の沈 殿が生成した。混合物をエチルエーテルで抽出し、有機層を合わせて飽和塩化ナ
トリウム水溶液で洗浄し、それから硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮して固体の
標題化合物3.54 g(88 %)を得た。1H NMR (DMSO-d6):δ8.63 (1H,br,s), 8.32 (1
H,d,J=2.0Hz), 8.10 (1H,d,J=8.8Hz), 8.00-8.05 (2H,m), 7.74 (1H,dd,J=2.0,
8.8Hz).
と水(100 ml)の間に分配させた。水層をペンタン(100 ml)で抽出し、合わせた有
機層を飽和塩化ナトリウム( 100 ml)で洗い、硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮
して白色固体を得た。フラッシュクロマトグラフィ(シリカ、10 %酢酸エチル−
ヘキサン)によって精製し、標題化合物を白色固体として得た。1H NMR (CDCl3)
:δ8.58 (1H,br,s), 8.10 (1H,dd,J=1.7, 9Hz), 8.06 (1H,d,J=2Hz), 7.83 (1H,
d,J=9Hz), 7.80 (1H,d,J=9Hz), 7.62 (1H,dd,J=2, 9Hz).
mg(2.00 mmol)および4-ビニル安息香酸エチル510.0 mg(2.90 mmol)のトリエチル
アミン4.0 ml溶液(アルゴンを25分間通気して脱ガス)にトリス(2-メチルフェ
ニル)ホスフィン124.0 mg(0.40 mmol)を加え、それから酢酸パラジウム(II) を加えた。生成した溶液を95゜Cに2.5時間加熱し、そのあと室温まで冷却し、減 圧濃縮した。カラムクロマトグラフィで精製し、標題化合物を無色固体として得
た。1H NMR (CDCl3):δ8.19 (1H,d,J=2.0Hz), 8.03 (2H,d,J=8.4Hz), 7.69 (1H,
dd,J=2.0, 8.2Hz), 7.57 (2H,d,J=8.4Hz), 7.45 (1H,d,J=8.2Hz), 7.20 (2H,s),
4.39 (2H,q,J=7.1Hz), 2.76 (2H,t,J=6.5Hz), 2.04 (2H,t,J=6.5Hz), 1.41 (3H
,t,J=7.1Hz および 6H,s).
ml冷溶液(-78゜C)に(E)-4-[2-(5,6,7,8-テトラヒドロ-5,5-ジメチル-8-オキソ-
2-ナフタレニル)エテニル]安息香酸エチル(化合物O)700.0 mg(2.00 mmol)のT
HF25.0 ml溶液として加えた。-78゜Cで1.5時間攪拌したのち、2-[N,N-ビス(トリ フルオロメチルスルホニル)アミノ]-5-クロロピリジン960.0 mg(2.40 mmol)を1
度に加えた。30分後に溶液を 0゜Cまで昇温し3時間攪拌した。飽和塩化アンモ ニウム水溶液を加えて反応を停止し、酢酸エチルで抽出した。抽出液を合わせて
5 %水酸化ナトリウム水溶液で洗い、つづいて硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を 減圧下に除いた。カラムクロマトグラフィ(7%酢酸エチル/ヘキサン)によって 標題化合物を無色固体として単離した。1H NMR (CDCl3):δ8.04 (1H,d,J=8.4Hz)
, 7.57 (2H,d,J=8.4Hz), 7.52 (1H,s), 7.49 (1H,d,J=8.0Hz), 7.33 (1H,d,J=8.
0Hz), 7.20 (1H,d,J=16.4Hz), 7.10 (1H,d,J=16.4Hz), 6.00 (1H,t,J=4.9Hz), 4
.39 (2H,q,J=7.1Hz), 2.43 (2H,d,J=4.9Hz), 1.41 (3H,t,J=7.1Hz), 1.32 (6H,s
).
.7 mg(2.04 mmol; 1.7 M ペンタン溶液1.20 ml)を-78゜Cで加えて4-リチオトル
エン溶液を調製した。30分後に塩化亜鉛313.4 mgをTHF2.0 mlに溶かした溶液を 添加した。得られた溶液を室温まで昇温させ、1.25時間攪拌し、それからカニュ
-レを通して(E)-4-[2-(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフルオロメチルスル
ホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エテニル]安息香酸エチル(化合物P)285.0 mg およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)29.0 mgをTHF2.
0 mlに溶かした溶液に添加した。生成した溶液を室温で1時間、そして55゜Cで2
時間攪拌した。室温まで冷却し飽和塩化アンモニウム水溶液を加えて反応を停止
させた。混合物を酢酸エチルで抽出し、有機層を合わせて5 %水酸化ナトリウム 水溶液および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、続いて硫酸ナトリウムで乾燥
後、減圧濃縮した。カラムクロマトグラフィ(10 % 酢酸エチル/ヘキサン)によ
り標題化合物を無色の固体として単離した。1H NMR (CDCl3):δ7.96 (2H,d,J=8.
1Hz), 7.47 (2H,d,J=8.1Hz), 7.43-7.16 (7H,m), 7.07 (1H,d,J=16.3Hz), 6.93
(1H,d,J=16.3Hz), 5.97 (1H,t,J=4.7Hz), 4.39 (2H,q,J=7.0Hz), 2.41 (3H,s),
2.33 (1H,d,J=4.7Hz), 1.38 (3H,t,J=7.0Hz), 1.33 (6H,s).
にLiOH 30.0 mg(0.909 mmol, 1.1 M 溶液1.0 ml)とメタノール1.0 mlを加えた
。得られた溶液を55゜Cに3時間加熱し、室温まで冷却し、それから減圧濃縮した
。残留物を水に溶かし、ヘキサンで抽出した。水層を10 %塩酸でpH1まで酸性に
し、それからエーテルで抽出した。有機層を合わせて飽和食塩水で洗浄し、酢酸
エチルで希釈すると透明な溶液が得られ、これを硫酸ナトリウムで乾燥した。溶
媒を減圧下に除去すると標題化合物が無色固体として得られた。1H NMR (d6-DMS
O):δ7.86 (2H,d,J=8.4Hz), 7.66 (2H,d,J=8.4Hz), 7.58 (1H,dd, J=1.7, 8.1Hz
), 7.41 (1H,d,J=8.1Hz), 7.28 (1H,d,J=16.5Hz), 7.23 (4H,s), 7.08 (1H,d,J=
1.7Hz), 7.07 (1H,d,J=16.5Hz), 5.97 (1H,t,J=4.6Hz), 2.35 (3H,s), 2.31 (1H
,d,J=4.6Hz), 1.29 (6H,s).
-ブチルリチウム24.0 mg(0.375 mmol, 1.7 M ペンタン溶液0.22 ml)をゆっく り加えた。黄色の溶液を30分間攪拌し、塩化亜鉛29.8 mg(0.219 mmol)のTHF1.0
ml溶液として加えた。生成した溶液を室温まで昇温し、39分後に4-[2-(1,1-ジ メチル-3-(トリフルオロメチルスルホニル)オキシ-5-インデニル)エチニル]安 息香酸エチル(化合物FF)29.0 mg(0.062 mmol)およびテトラキス(トリフェニ ルホスフィン)パラジウム(0)2.9 mgのTHF1.0 ml溶液を入れた第2のフラス コに加えた。生成した溶液を50゜Cに1時間加温し、それから室温で4時間攪拌し
た。飽和塩化アンモニウム水溶液を加えて反応を停止させ、エーテルで抽出した
。有機層を合わせて水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシ
ウムで乾燥後、減圧濃縮した。カラムクロマトグラフィ(10 % 酢酸エチル/ヘキ
サン)により標題化合物を無色の油状物として単離した。1H NMR (300 MHz CDCl 3 ):δ8.03 (2H,d,J=8.5Hz), 7.66 (1H,s), 7.58 (2H,d,J=8.5Hz), 7.50 (2H,d,J
=8.0Hz), 7.46 (1H,d,J=7.9Hz), 7.38 (1H,d,J=7.7Hz), 7.28 (2H,d,J=9Hz), 6.
43 (1H,s), 4.40 (2H,q,J=7.2Hz), 2.43 (3H,s), 1.41 (3H,t; 6H,s).
エチル(化合物47)10.0 mg(0.025 mmol)の0.5mlTHF/水(3:1 V/V)溶液にLiOH・H2O
5.2mg(0.12 mmol)を加えた。室温で48時間攪拌した後、溶液をヘキサンで抽出し
、水層を飽和塩化アンモニウムで酸性にした。固体の塩化ナトリウムを添加し、
得られた混合物を酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせて硫酸ナトリウムで乾
燥し、減圧濃縮すると標題化合物が無色の固体として得られた。1H NMR (300 MH
z d6-DMSO):δ7.95 (2H,d,J=8.3Hz), 7.65 (2H,d,J=8.3Hz), 7.57 (2H,m), 7.49
(3H,m), 7.30 (2H,d,J=7.9Hz), 6.61 (1H,s), 2.36 (3H,s), 1.36 (6H,s).
)を溶かした溶液に4-ブロモチオフェノール6.79 g(35.7 mmol)を添加した。その
混合物を室温で30分間攪拌した。第2のフラスコに炭酸カリウム2.20 g(16.3 mm
ol)と脱ガスした水15 mlを入れた。この溶液に3-ブロモプロピオン酸5.00 g(32.
7 mmol)を(何回かに分けて)加えた。得られたカルボン酸カリウム溶液をナト リウムチオラート溶液に加え、その混合物を室温で48時間攪拌した。混合物を濾
過し、濾液をベンゼンで抽出し、有機層は合わせて廃棄した。水層を10 %塩酸で
酸性にし、酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせて飽和塩化ナトリウムで洗浄
し、硫酸マグネシウムで乾燥し、減圧濃縮した。得られた固体をエーテル−ヘキ
サンから再結晶し、標題化合物を少し色を帯びた白色結晶として得た。1H NMR (
CDCl3):δ7.43 (2H,d,J=8.4Hz), 7.25 (2H,d,J=8.4Hz), 3.15 (2H,t,J=7.3Hz),
2.68 (2H,t,J=7.3Hz).
酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせて2Nの水酸化ナトリウム水溶液、水およ
び飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減
圧で除去し黄色の固体を得た。これをカラムクロマトグラフィにかけ(3 %酢酸
エチル−ヘキサン)、生成物を淡黄色固体として単離した。1H NMR (CDCl3):δ8
.22 (1H,d,J=2.1Hz), 7.48 (1H,dd,J=2.1, 8.3Hz), 7.17 (1H,d,J=8.5Hz), 3.24
(2H,t,J=6.4Hz), 2.98 (2H,t,J=6.7Hz).
.00 g(4.11 mmol)およびCuI78.3 mg(0.41 mmol)、およびジエチルアミン6.0 ml の溶液にアルゴンを5分間通じた。この溶液に(トリメチルシリル)アセチレン2.
0ml(1.39g, 14.2 mmol)を加え、さらに続いてビス(トリフェニルホスフィン)パ ラジウム(II)クロリド288.5 mg(0.41 mmol)を加えた。生成した暗色の溶液を室 温で3日間攪拌し、それからセライトの層を通して濾過し、酢酸エチルで洗浄し
た。濾液を水および飽和食塩水で洗い、硫酸マグネシウムで乾燥した。カラムク
ロマトグラフィ(4 %酢酸エチル/ヘキサン)により、標題化合物として橙色油 状物を得た。1H NMR (CDCl3):δ8.13 (1H,d,J=1.9Hz), 7.36 (1H,dd,J=2.1, 8.2
Hz), 7.14 (1H,d,J=8.2Hz), 3.19 (2H,d,J=6.3Hz), 2.91 (2H,d,J=6.3Hz), 0.21
(9H,s).
オン600.0 mg(2.25 mmol)および炭酸カリウム100.0 mg(0.72 mmol)を含むメタノ
ール15.0 ml溶液を室温で20時間攪拌した。溶液を水で希釈し、エーテル抽出し た。有機層を合わせて水および飽和塩化ナトリウムで洗浄し、硫酸マグネシウム
で乾燥した。溶媒を減圧で除去し、標題化合物を橙色固体として得た。1H NMR (
CDCl3):δ8.17 (1H,d,J=1.8Hz), 7.40 (1H,dd,J=1.8, 8.2Hz), 7.19 (1H,d,J=8.
2Hz), 3.22 (2H,t,J=6.3Hz), 3.08 (1H,s), 2.94 (2H,t,J=6.3Hz).
ol)および4-ヨード安息香酸エチル594.0 mg(2.15 mmol)をトリエチルアミン15 m
lとTHF3 mlに溶かした溶液に15分間アルゴンを通じて脱気した。この溶液にビス
(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)クロリド503.0 mg(0.72 mmol)およびC
uI137.0 mg(0.72 mmol)を加えた。この溶液を室温で20時間攪拌し、それからセ ライトの層を通して濾過し酢酸エチルで洗った。溶媒を減圧で除去し褐色の固体
を得た。カラムクロマトグラフィ(3%酢酸エチル/ヘキサン)にかけ、標題化合物
を橙色固体として得た。1H NMR (d6-アセトン):δ8.15 (1H,d,J=2.0Hz), 8.02 (2H,d ,J=8.5Hz), 7.69 (2H,d,J=8.5Hz), 7.61 (1H,dd,J=2.1, 8.3Hz), 7.40 (1H,d,J=
8.2Hz), 4.35 (2H,q,J=7.1Hz), 3.40 (2H,t,J=6.3Hz), 2.96 (2H,t,J=6.3Hz), 1
.37 (3H,t,J=7.1Hz).
l)のTHF3.0 ml溶液に、4-[2-(6-(2,3-ジヒドロ-(4H)-1-ベンゾチオピラン-4-オ ニル)エチニル)]安息香酸エチル370.0mg(1.10 ml)のTHF4.0 mlを加えた。30分後
に2-[N,N-ビス(トリフルオロメチルスルホニル)アミノ]-5-クロロピリジンのTHF
4.0 ml溶液をゆっくり加えた。反応混合物を室温までゆっくり昇温し、それから
5時間後に飽和塩化アンモニウム水溶液を加えて反応を停止した。混合物を酢酸
エチルで抽出し、有機層を5 %水酸化ナトリウム、水および飽和塩化ナトリウム 水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去し、カラムクロ
マトグラフィにかけて標題化合物の淡黄色固体を得た。1H NMR (d6-アセトン):δ 8. 12 (2H, d, J=8.5Hz), 7.66 (2H, d, J=8.5Hz), 7.56 (1H, d, J=1.7Hz), 7.49
(1H, dd, J=1.7, 8.1Hz), 7.40 (1H, d, J=8.1Hz), 6.33 (1H, t, J=5.7Hz), 4.
35 (2H, q, J=7.1Hz), 3.82 (2H, d, J=5.7Hz), 1.37 (3H, t, J=7.1Hz).
室温まで昇温した。40分間攪拌を続け、それからこの溶液を、4[2-(6-(4-(トリ フルオロメチルスルホニル)オキシ-(2H)-1-ベンゾチオピラニル))エチニル]安息
香酸エチル129.2 mg(0.28 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジ ウム(0)14.0 mg(0.012 mmol)およびTHF2.0 mlを入れた第2のフラスコに加えた
。得られた溶液を50゜Cに5時間加熱し、室温まで冷却し、それから飽和塩化アン
モニウム水溶液を加えて反応を停止した。混合物を酢酸エチルで抽出し、それか
ら有機層を合わせて水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄した後、硫酸マグ
ネシウムで乾燥し、濃縮して橙色油状物を得た。カラムクロマトグラフィ(3〜5%
酢酸エチル−ヘキサン)にかけ、標題化合物を無色固体として単離した。1H NMR
(d6-アセトン):δ 7.98 (2H, d, J=8.3Hz), 7.58 (2H, d, J=8.2Hz), 7.44-7.38 (2 H, m), 7.26-7.15 (5H, m), 6.14 (1H, t, J=5.8Hz), 4.34 (2H, q, J=7.1Hz),
3.53 (2H, d, J=5.8Hz), 2.37 (2H, s), 1.35 (3H, t, J=7.1Hz).
香酸エチル(化合物49)29.0 mg(0.07 mmol)をTHF2.0 mlとEtOH2.0 mlに溶かし た溶液にNaOH160.0 mg(4.00mmol,2 M水溶液2.0 ml)を加えた。得られた溶液は35
゜Cで2時間攪拌し、それから室温まで冷却し、さらに2時間攪拌した。10 %塩酸
を加えて反応を停止させ、酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせて水および飽
和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥した。溶媒を減圧除去
して得られる固体をアセトニトリルで洗い、高真空で乾燥して標題化合物の淡黄
色固体を得た。1H NMR (d6-DMSO):δ 7.90 (2H, d, J=8.4Hz), 7.59 (2H, d, J=
8.4Hz), 7.40 (4H, m), 7.25-7.13 (4H, m), 7.02 (1H, d, J=1.7Hz), 6.11 (1H
, t, J=5.7Hz), 3.54 (2H, d, J=5.7Hz), 2.34 (3H, s).
酸(50 ml)、水(50 ml)、10 %炭酸水素ナトリウムおよび飽和塩化ナトリウム水溶
液(50 ml)で洗い、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を留去して黄色油状物を 得、それをベンゼン(50 ml)に溶解した。
攪拌し、そしてベンゼン(120 ml)で希釈した。攪拌しながら、上で調製したベン
ゼン溶液を滴下漏斗を使って20分間で加えた。8時間後にイソプロピルアルコー
ル(50 ml)、それから水(100 ml)を注意しながら0゜Cで加えて反応を停止させた。
15分後に反応混合物をエーテル(1100 ml)および水(200 ml)で希釈し、それから 炭酸水素ナトリウム(200 g)で中和した。エーテル層を水(100 ml)および飽和塩 化ナトリウム水溶液(2 x 100 ml)で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒
を減圧除去してジケトンの異性体混合物を得た。これをカラムクロマトグラフィ
(5 % 酢酸エチル/ヘキサン)で分離した。
2.0, 8.3Hz), 7.53 (1H, d, J=8.3Hz), 2.77 (2H, t, J=6.6Hz), 2.62 (3H, s),
2.05 (2H, t, J=6.6Hz), 1.41 (6H, s). (化合物S):1H NMR (CDCl3):δ 8.10 (1H, d, J=8.1Hz), 8.02 (1H, d, J=1
.6Hz), 7.82 (1H, dd, J=1.6, 8.1Hz), 2.77 (2H, t, J=7.1Hz), 2.64 (3H, s),
2.05 (2H, t, J=7.1Hz), 1.44 (6H, s).
.0 mg, 0.60 mmol)、エチレングリコール(55.0 mg, 0.90 mmol)、p-トルエンス ルホン酸1水和物(4 mg)およびベンゼン(25 ml)をDean-Stark装置を使って12時 間還流させた。10 %炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて反応を停止させ、エーテ
ルで抽出した(2 x 75 ml)。有機層を合わせて水(5 ml)および飽和塩化ナトリウ ム水溶液(5 ml)で洗い、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去し、標題
化合物を無色油状物として得た。1H NMR (CDCl3):δ 8.13 (1H, d, J=2.0Hz), 7
.64 (1H, dd, J=2.0, 8.2Hz), 7.40 (1H, d, J=8.2Hz), 3.97-4.10 (2H, m), 3.
70-3.83 (2H, m), 2.73 (2H, t, J=6.5Hz), 2.01 (2H, t, J=6.5Hz), 1.64 (3H,
s), 1.39 (6H, s).
l)のTHF2ml溶液に3,4-ジヒドロ-4,4-ジメチル-7-(2-(2-メチル-1,3-ジオキソラ
ニル))-1(2H)ナフタレン(化合物T)135.0 mg(0.52 mmol)のTHF5 ml溶液を加えた
。その溶液を16時間還流させたのち、室温まで冷却し、エーテル(50 ml)で希釈 した。溶液を水(5 ml)および飽和塩化アンモニウム(5 ml)で洗い、硫酸マグネシ
ウムで乾燥した。溶媒を減圧で除去し、カラムクロマトグラフィ(5 %酢酸エチ ル/ヘキサン)にかけて固体標題化合物を得た。1H NMR (CDCl3):δ 7.37 (2H, d
), 7.21 (1H, s), 7.13 (2H d, J=8.5Hz), 7.08 (2H, d, J=8.5Hz), 3.88-3.99
(2H, m), 3.58-3.75 (2H, m), 2.34 (3H, s), 2.12-2.30 (2H, m), 1.79-1.90 (
1H, m), 1.57 (3H, s), 1.48-1.58 (1H, m), 1.38 (3H, s), 1.31 (3H, s).
(2-(2-メチル-1,3-ジオキソラニル)ナフタレン(化合物U)130.0mg(0.38 mmol)、
p-トルエンスルホン酸1水和物(4mg)およびベンゼン(5ml)の混合物を16時間還流
させた。室温まで冷却し、反応混合物をエーテル(100ml)で希釈した後、10%炭酸
水素ナトリウム、水および飽和塩化ナトリウムで洗浄した。有機層を硫酸マグネ
シウムで乾燥し、溶媒を減圧で除去し、固体標題化合物を得た。1H NMR (CDCl3)
:δ 7.83 (1H, dd, J=1.8, 8.0Hz), 7.66 (1H, d, J=1.8Hz), 7.45 (1H, d, J=8
.0Hz), 7.25 (2H, d, J=8.5Hz), 7.22 (2H, d, J=8.5Hz), 6.03 (1H, t, J=6.3H
z), 2.47 (3H, s), 2.41 (3H, s), 2.37 (2H, d, J=6.3Hz), 1.36 (6H, s).
1-(4-メチルフェニル)-4,4-ジメチル-7-アセチルナフタレン(化合物V)95.0 mg
(0.33 mmol)のTHF(10 ml)溶液を添加した。混合物を16時間攪拌し、エーテル(10
0 ml)で希釈し、水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウ ムで乾燥した。溶媒を減圧で除去し、カラムクロマトグラフィ(3 %酢酸エチル/
ヘキサン)にかけて固体標題化合物を得た。1H NMR (CDCl3):δ 7.39 (1H, d, J
=1H), 7.32 (1H, dd, J=2.0, 8.1Hz), 7.20-7.25 (4H, brs), 7.15 (1H, d, J=2
.0Hz), 6.03 (1H, t, J=6.0Hz), 5.44 (1H, s), 2.42 (3H, s), 2.36 (2H, d, J
=6.0Hz), 2.35 (3H, s), 1.35 (6H, s).
2-ブテンニトリル(化合物W)84.0 mg(0.29 mmol)のジクロロメタン(4 ml)冷溶 液(-78゜C)に水素化ジイソブチルアルミニウム(1 Mジクロロメタン溶液)0.50
ml(0,50 mmol)を加えた。1時間攪拌後、-78゜Cで2-プロパノール(1 ml)を加え て反応を停止させ、エーテル(100 ml)で希釈した。室温まで昇温し、溶液を水、
10 %塩酸および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗った。有機層を硫酸マグネシウム
で乾燥し、溶媒を減圧除去し、油状の標題化合物を得た。1H NMR (CDCl3):δ 10
.12 (1H, d, J=7.9Hz), 7.43 (2H, s), 7.19-7.28 (5H, m), 6.27 (1H, d, J=7.
9Hz), 6.03 (1H, t, J=4.8Hz), 2.47 (3H, s), 2.42 (3H, s), 2.37 (2H, d, J=
4.8Hz), 1.37 (6H, s).
. 39: 821(1974)に従って合成した]264.0 mg(1.00 mmol)の冷THF(2ml)溶液にn-
ブチルリチウムのヘキサン溶液(1.6 M溶液)26.0 mg(0.41 mmol, 0.65 ml)を加え
、すぐ引き続いて(E)-3-(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(4-メチルフェニル)-2-
ナフタレニル)-2-ブテナール(化合物X)82.0 mg(0.26 mmol)のTHF(3 ml)溶液を
加えた。1時間後に、反応混合物をエーテル(60 ml)で希釈し、水(5 ml)および 飽和塩化ナトリウム水溶液(5 ml)で洗い、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を
減圧で除去し、クロマトグラフィ(5 % 酢酸エチル/ヘキサン)、それからさらにH
PLC(1 %酢酸エチル/ヘキサン)によって油状の標題化合物を単離した。1H NMR (d
6-アセトン):δ 7.36-7.43 (2H, m), 7.18-7.27 (4H, m), 7.17 (1H, d, J=1.7Hz), 7.08 (1H, dd, J=11.2, 15.2Hz), 6.46 (1H, d, J=11.2Hz), 6.38 (1H, d, J=15
.2Hz), 5.98 (1H, t, J=4.7Hz), 5.78 (1H, s), 4.10 (2H, q, J=7.1Hz), 2.35
(3H, s), 2.33 (3H, s), 2.32 (2H, d, J=4.7Hz), 2.12 (3H, s), 1.31 (6H, s)
, 1.22 (3H, t, J=7.1Hz).
のTHF(1 ml)およびメタノール(1 ml)溶液にLiOH (0.5 ml, 1 M溶液) 12.0 mg(0.
50 mmol)を加えた。混合物を6時間攪拌し、エーテル(60 ml)で希釈後、10 %塩 酸(1 ml)で酸性にした。溶液を水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫
酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧で除去し、アセトンから再結晶して固体
として標題化合物を得た。1H NMR (d6-アセトン):δ 7.35-7.45 (2H, m), 7.19.7.28 (4H, m), 7.17 (1H, d, J=1.8Hz), 7.09 (1H, dd, J=11.5, 15.1Hz), 6.48 (1H
, d, J=11.5Hz), 6.42 (1H, d, J=15.1Hz), 5.99 (1H, t, J=4.7Hz), 5.82 (1H,
s), 2.36 (3H, s), 2.33 (2H, d, J=4.7Hz), 2.32 (3H, s), 2.13 (3H, s), 1.
32 (6H, s).
(2H)-ナフタレノン783.0 mg(4.49 mmol)をゆっくり加えた。硝酸426.7 mg(6.88
mmol, 0.43 ml, 16 M)および硫酸1.31 g(0.013 mol, 0.74 mi, 18 M)の溶液をゆ
っくり加えた。20分後に、氷を加え、生成した混合物を酢酸エチルで抽出した。
抽出液を合わせて減圧濃縮し、その残留物をクロマトグラフィ(10 %酢酸エチル
/ヘキサン)にかけて標題化合物の淡黄色固体を単離した。1H NMR (CDCl3):δ 8
.83 (1H, d, J=2.6Hz), 8.31 (1H, dd, J=2.8, 8.9Hz), 7.62 (1H, d, J=8.7Hz)
, 2.81 (2H, t, J=6.5Hz), 2.08 (2H, t, J=6.5Hz), 1.45 (6H, s).
mg(1.05 mmol)の酢酸エチル5.0 ml溶液を触媒量の10 %Pd-Cと共に1気圧の水素 下で、室温で 24時間攪拌した。セライトの層を通して触媒を濾別し、濾液を減
圧濃縮して標題化合物の暗色油状物を得た。1H NMR (CDCl3):δ 7.30 (1H, d, J
=2.7Hz), 7.22 (1H, d, J=8.4Hz), 6.88 (1H, dd, J=2.7, 8.5Hz), 2.70 (2H, t
, J=6.6Hz), 1.97 (2H, t, J=6.6Hz), 1.34 (6H, s).
mg(1.05 mmol)の酢酸5.0 ml溶液に4-ニトロソ安息香酸エチル180.0 mg(1.00 ml)
を加えた。生成した溶液を室温で一晩攪拌し、それから減圧濃縮した。残留油状
物をクロマトグラフィ(15 %酢酸エチル/ヘキサン)にかけ、生成物として赤色 固体を単離した。1H NMR (CDCl3):δ 8.57 (1H, d, J=2.0Hz), 8.19 (2H, d, J=
8.4Hz), 8.07 (1H, d, J=8.0Hz), 7.94 (2H, d, J=8.4Hz), 7.58 (1H, d, J=8.6
Hz), 4.41 (2H, q, J=7.1Hz), 2.79 (2H, t, J=6.6Hz), 2.07 (2H, t, J=7.02Hz
), 1.44 (6H, s), 1.42 (3H, t, J=7.1Hz).
.48 ml)のTHF2.0ml溶液に4-[(5,6,7,8-テトラヒドロ-5,5-ジメチル-8-オキソ-2-
ナフタレニル)アゾ]安息香酸エチル(化合物AA)153.0mg(0.437 mmol)のTHF2.0ml
溶液を-78゜Cで加えた。暗赤色の溶液を-78゜Cで30分間攪拌し、次いで2-[N,N-ビ ス(トリフルオロメチルスルホニル)アミノ]-5-クロロピリジン204.0mg(0.520 mm
ol)をTHF 2.0ml溶液として加えた。反応混合物を室温まで昇温し、3時間後に水
を加えて反応を停止させた。有機層を減圧濃縮して赤色油状物を得た。カラムク
ロマトグラフィ(25 %酢酸エチル/ヘキサン)にかけ生成物を赤色油状物として単 離した。1H NMR (CDCl3):δ 8.21 (2H, d, J=8.6Hz), 7.96 (2H, d, J=8.6Hz),
7.94 (2H, m), 7.49 (1H, d, J=8.2Hz), 6.08 (1H, t, J=2.5Hz), 4.42 (2H, q,
J=7.1Hz), 2.49 (2H, d, J=4.8Hz), 1.44 (3H, t, J=7.1Hz), 1.38 (6H, s).
、4-リチオトルエン溶液を調製した。30分間攪拌した後、塩化亜鉛107.0 mg(0.7
85 mmol)のTHF2.0 ml溶液を加えた。生成した溶液を室温まで上げ、30分間攪拌 し、それからカニューレを通して、4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリフ ルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)アゾ]安息香酸エチル(化合物
BB)94.7 mg(0.196 mmol)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジ ウム(0)25 mg(0.02 mmol)のTHF2.0 ml溶液に加えた。生成した溶液を50゜Cに1
.5時間加熱し、それから室温まで冷却し、飽和塩化アンモニウム水溶液で希釈し
た。混合物を酢酸エチル(40 ml)で抽出し、有機層を合わせて水と食塩水で洗浄 した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥したのち減圧濃縮し、カラムクロマトグラ
フィ(25 %酢酸エチル/ヘキサン)にかけて標題化合物を赤色固体として単離し た。1H NMR (CDCl3):δ 8.21 (2H, d, J=8.6Hz), 7.96 (2H, d, J=8.6Hz), 7.94
(2H, m), 7.49 (1H, d, J=8.2Hz), 6.08 (1H, t, J=2.5Hz), 4.42 (2H, q, J=7
.1Hz), 2.49 (2H, d, J=4.8Hz), 1.44 (3H, t, J=7.1Hz), 1.38 (6H, s).
]安息香酸エチル(化合物46a)16.5 mg(0.042 mmol)のTHF(2 ml)およびエタノー
ル(1 ml)溶液に水酸化ナトリウム(2.0 ml, 1 M水溶液)80.0 mg(2.00 mmol)を 加えた。混合物を室温で12時間攪拌し、10 %塩酸で酸性にし、それから酢酸エチ
ルで抽出した。有機層を合わせて、水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し
、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去し、残留物を酢酸エチル/ヘキ サンから再結晶して標題化合物の赤色固体を得た。1H NMR (d6-アセトン):δ 8.19 ( 2H, d, J=8.4Hz), 7.92 (2H, d, J=8.5Hz), 7.88 (2H, dd, J=2.1, 6.1Hz), 7.6
6 (1H, s), 7.64 (2H, d, J=2.3Hz), 7.28 (4H, d, J=3.0Hz), 6.09 (1H, t, J=
2.5Hz), 2.42 (2H, d, J=4.8Hz), 2.39 (3H, s), 1.40 (6H, s).
rep. Proced. Int. 1978 10 123-131を参照)815.0 mg(3.41 mmol)の脱ガスした
(アルゴンを20分間通気)トリエチルアミン100 ml溶液にヨウ化銅(I)259.6 m
g(1.363 mmol)、ビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)クロリド956
.9 mg(1.383 mmol)および(トリメチルシリル)アセチレン3.14 mg(34.08 mmol)
を加えた。この混合物を70゜Cに42時間加熱し、それから室温まで冷却し、シリカ
ゲルの層を通して濾過し、エーテルで洗浄した。濾液を水、1 M塩酸、そして最 後に飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶液を
減圧下に濃縮し、カラムクロマトグラフィ(シリカゲル;10 %エーテル/ヘキサ ン)にかけて標題化合物の褐色油状物を得た。1H NMR (300 MHz, CDCl3):δ 7.7
9 (1H, d, J=1.4Hz), 7.69 (1H, dd, J=1.6, 8.3Hz), 7.42 (1H, d, J=8.5Hz),
2.60 (2H, s), 1.41 (6H, s), 0.26 (9H, s).
1-オン(化合物CC)メタノール28 ml溶液に炭酸カリウム197.3 mg(1.43 mmol)を
1度に加えた。室温で6時間攪拌した後、混合物をセライトの層を通して濾過し
、濾液を減圧濃縮した。残留した油状物をシリカゲルカラムに注入し、5 %酢酸 エチル/ヘキサンで溶離して無色油状の標題化合物を得た。1H NMR (300 MHz, CD
Cl3):δ 7.82 (1H, s), 7.72 (1H, dd, J=1.6, 7.8Hz), 7.47 (1H, d, J=8.4Hz)
, 3.11 (1H, s), 2.61 (2H, s), 1.43 (6H, s).
.0 mg(1.520 mmol)および4-ヨード安息香酸エチル419.6 mg(1.520 mmol)のトリ エチルアミン5 ml溶液にアルゴンを40分間通気した。この溶液にトリフェニルホ
スフィン271.0 mg(0.076 mmol)、ヨウ化銅(I)53.5 mg(0.281 mmol)およびビス(
トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)クロリド53.5 mg(0.076 mmol)を加えた
。得られた混合物を2.5時間還流させ、それから室温まで冷却し、エーテルで希 釈した。セライトの層を通して濾過した後、濾液を水、1 M塩酸、水および飽和 塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、そして減圧濃縮し
た。カラムクロマトグラフィ(15%酢酸エチル/ヘキサン)によって標題化合物を淡
黄色固体として単離した。1H NMR (300 MHz, d6-アセトン):δ 8.05 (2H, d, J=8.6H z), 7.87 (1H, dd, J=1.4, 8.1Hz), 7.75 (2H, m), 7.70 (2H, d, J=8.5Hz), 4.
36 (2H, q, J=7.1Hz), 2.60 (2H, s), 1.45 (6H, s), 1.37 (3H, t, J=7.1Hz).
l溶液を-78゜Cに冷却し、4-[2-(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-7-オキソ-2-インデ ニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物EE)145.0 mg(0.436 mmol)をTHF1,0 ml
溶液として加えた。30分後に2-(N,N-ビス(トリフルオロメタンスルホニル)アミ ノ)-5-クロロピリジン181.7 mg(0.480 mmol)をTHF1.0 ml溶液として加えた。反 応混合物を室温までゆっくり昇温させ5時間後に飽和塩化アンモニウム水溶液を
加えて反応を停止させた。混合物を酢酸エチルで抽出し、有機層を合わせ5 %水 酸化ナトリウム、水および飽和塩化ナトリウムで洗浄し、硫酸マグネシウムで乾
燥後、減圧濃縮した。カラムクロマトグラフィ(10 %エーテル/ヘキサン)にか け、生成物を無色固体として単離した。1H NMR (300 MHz, d6-アセトン):δ 8.05 (2 H, d, J=8.3Hz), 7.69 (2H, d, J=8.4Hz), 7.63 (2H, s), 7.55 (1H, s), 4.36
(2H, q, J=7.1Hz), 1.44 (6H, s), 1.37 (3H, t, J=7.1Hz).
ニル]安息香酸エチル(化合物1)142.6 mg(0.339 mmol)およびLiOH・H2O 35.6 mg
(0.848 mmol)のTHF/水(4:1 v/v)12 ml溶液を室温で一晩攪拌した。反応混合物を
ヘキサンで抽出し、そしてヘキサン層を5%水酸化ナトリウムで抽出した。水層を
合わせ、1M塩酸で酸性にし、それから酢酸エチルおよびエーテルで抽出した。有
機層を合わせ、硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮し標題化合物を無色固体とし
て得た。1H NMR (d6-DMSO):δ 7.91 (2H, d, J=8.4Hz), 7.60 (2H, d, J=8.4Hz)
, 7.47 (2H, s), 7.23 (4H, q, J=8.1Hz), 7.01 (1H, s), 6.01 (1H, t, J=4.6H
z), 2.35 (3H, s), 2.33 (2H, d, J=4.8Hz), 1.30 (6H, s).
]安息香酸(化合物30a)の場合と同様の一般的な方法を適用し、LiOH・H2O 5.9
mg(0.14 mmol)を使用して4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-フェニル-2-ナフタ
レニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物1a)27.0 mg(0.07 mmol)を標題化合物 に変換した(無色の固体)。PMR (d6-DMSO):δ 1.31 (6H, s), 2.35 (2H, d, J=4
.5Hz), 6.05 (1H, t, J=J=J=4.5Hz), 7.00 (1H, s), 7.33 (2H, d, J=6.2Hz), 7
.44 (4H, m), 7.59 (2H, d, J=8.1Hz), 7.90 (2H, d, J=8.1Hz).
フタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物6)80.0 mg(0.173 mmol)およびLi
OH・H2O 18.1 mg(0.432 mmol)のTHF/水(3:1 V/V)6 ml溶液を室温で一晩攪拌した
。反応混合物をヘキサンで抽出し、残った水層を1 M塩酸で酸性にし、それから 酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせ、硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧乾燥し
標題化合物の無色固体を得た。1H NMR (d6-DMSO):δ 7.82 (2H, d, J=8.2Hz), 7
.44 (6H, m), 7.25 (2H, d, J=8.3Hz), 7.02 (1H, s), 6.01 (1H, t, J=4.6Hz),
2.32 (2H, d, J=4.7Hz), 1.32 (9H, s), 1.29 (6H, s).
および[2,4-ビス(4-メトキシフェニル)-1,3-ジチア-2,4-ジホスフェタン-2,4-ジ
スルフィド](Lawesson試薬)57.7 mg(0.143 mmol)のベンゼン12.0 ml溶液を一 晩還流させた。混合物を室温まで冷却し、濾過し、濾液を減圧濃縮した。カラム
クロマトグラフィ(10〜25% EtOAc/ヘキサン)によって標題化合物を黄色固体とし
て得た。1H NMR (CDCl3):δ 9.08 (1H, s), 7.92 (1H, br s), 7.90 (1H, t, J=
8.2Hz), 7.66 (1H, dd, J=2.0, 6.0Hz), 7.38 (3H, m), 7.18 (4H, m), 6.01 (1
H, t, J=4.7Hz), 4.35 (2H, q, J=7.1Hz), 2.36 (3H, s), 2.33 (2H, d, J=4.7H
z), 1.38 (3H, t, J=7.1Hz), 1.33 (6H, s).
mol)をエタノール1.0 mlとTHF1.0 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム55 mg(1
.4 mmol)と水1.0 mlを加えた。室温で一晩攪拌した後、酢酸エチルを加え、それ
から10 %塩酸を加えて反応を停止させた。酢酸エチルで抽出後、有機層を合わせ
て水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。
溶媒を減圧除去し、残留した固体をアセトニトリルから再結晶し、標題化合物を
淡黄色固体として得た。1H NMR (d6-アセトン):δ 11.05 (1H, s), 8.02 (1H, m), 7 .99 (1H, t, J=8.3Hz), 7.75 (1H, m), 7.69 (1H, dd, J=2.0, 6.1Hz), 7.52 (1
H, s), 7.46 (1H, d, J=8.1Hz), 7.21 (4H, m), 6.04 (1H, t, J=4.8Hz), 2,37
(2H, d, J=4.8Hz), 2.33 (3H, s), 1.36 (6H, s).
物D)0.45g(1.40 mmol)とTHF(2.1 ml)の溶液にアルゴン下、室温でマグネシウム
片(0.044 g, 1.82 mmol)を加えた。エチレンジブロミドを2滴加えると徐々に濁
って黄色になり、その溶液を1.5 時間加熱還流させた。第2のフラスコに塩化亜
鉛(0.210 g, 1.54 mmol)を入れ、高真空下に溶融し、それから室温まで冷却し、
THF(3 ml)に溶解した。第2のフラスコにグリニャール試薬を加え、室温で30分 後に6-ブロモ-2-ナフタレンカルボン酸エチル(化合物N)0.293 mg(1.05 mmol)お
よびTHF(2 ml)の溶液を加えた。次のようにして第3のフラスコにおいてNi(PPh3 )4とTHFの溶液を調製する。すなわち、NiCl2(PPh3)2(0.82 g, 1.25 mmol)および
PPh3(0.66 g, 2.5 mmol)のTHF(3.5 ml)溶液に水素化アルミニウムジイソブチル とヘキサンの1 M溶液(2.5 ml, 2.5 mmol)を加え、生成した溶液をTHFで希釈して
全量を15 mlとし、室温で15分間攪拌した。Ni(PPh3)4溶液を第2のフラスコに0.
60 mlづつ15分間隔で3回加えた。生成した懸濁液を室温で2時間攪拌した。1 N
の塩酸水溶液5mlを加えて反応を停止させ、1時間攪拌した後、生成物を酢酸エ
チルで抽出した。有機層を合わせて食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し
た後、濾過して溶媒を減圧除去した。残留物をヘキサンから再結晶して純粋な物
質を130 mg得た。母液を減圧濃縮し、残留物をシリカゲルカラムクロマトグラフ
ィ(95:5 ヘキサン-酢酸エチル)によって精製し、さらに170 mgの標題化合物を
無色の固体として得た(通算収率=300 mg, 64 %)。1H NMR (CDCl3):δ 8.57 (
s, 1H), 8.05 (dd, 1H, J=1.7, 8.0Hz), 7.84-7.95 (overlapping d's, 3H), 7.
66 (dd, 1H, J=1.7, 8.5Hz), 7.58 (dd, 1H, J=2.0, 8.0Hz), 7.48 (d, 1H, J=8
.0Hz), 7.43 (d, 1H, J=2.0Hz), 7.32 (d, 2H, J=8.0Hz), 7.21 (d, 2H, J=8.0H
z), 6.04 (t, 1H, J=4.8Hz), 4.44 (q, 2H, J=7.1Hz), 2.40 (s, 3H), 2.39 (d,
2H, J=4.8Hz), 1.45 (t, 3H, J=7.1Hz), 1.39 (s, 6H).
]-6-カルボン酸エチル(化合物64)0.19 g(0.43 mmol)、エタノール(8 ml)およ び1 N水酸化ナトリウム(2 ml)の溶液を60゜Cに3時間加熱した。溶液を0゜Cまで 冷却し、1 Nの塩酸水溶液で酸性にした。生成物を酢酸エチルで抽出し、有機層 を合わせて水と食塩水で洗い、硫酸マグネシウムで乾燥後濾過し、溶媒を減圧除
去した。残留物をTHF/酢酸エチルから0゜Cで再結晶させ、35 mgの純品を得た。 母液を減圧濃縮し、残留物をシリカゲルクロマトグラフィ(100 %酢酸エチル) で精製し、さらに125 mgの標題化合物を無色の固体として得た(通算収率=160
mg, 90 %)。1H NMR (DMSO-d6)δ 8.57 (s, 1H), 8.11 (d, 1H, J=8.7Hz), 7.96
-7.82 (重なったd, 3H), 7.65 (d, 2H, J=7.6Hz), 7.50 (d, 1H, J=7.9Hz), 7.2
8 (s, 1H), 7.26 (d, 2H, J=8.3Hz), 7.21 (d, 2H, J=8.3Hz), 6.01 (t, 1H, J=
4.5Hz), 3.34 (br s, 1H), 2.31 (s, 3H), 2.31 (d, 2H, J=4.5Hz), 1.31 (s, 6
H).
ニル]安息香酸エチル(化合物1)の場合と同じ一般的合成法を適用し、塩化亜 鉛142.4 mg(1.045 mmol)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(
0)24.1 mg(0.02 mmol)および2-リチオフラン[n-ブチルリチウム(1.5 Mヘキサ
ン溶液)53.4 mg(0.52 ml, 0.78 mmol)をフラン53.4 mg(0.784 mmol)の冷溶液(-
78゜C)に加えて調製した]を使用して、4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(トリ フルオロメチルスルホニル)オキシ-2-ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(
化合物G)250.0mg(0.52 mmol)を標題化合物(無色の固体)に変換した。PMR (C
DCl3):δ 1.32 (6H, s), 1.41 (3H, t, J=7.1Hz), 2.35 (2H, d, J=5.0Hz), 4.3
9 (2H, q, J=7.1Hz), 6.41 (1H, t, J=5.0Hz), 6.50 (2H, s), 7.36 (1H, d, J=
8.0Hz), 7.45 (1H, dd, J=1.7, 8.0Hz), 7.49 (1H, s), 7.57 (2H, d, J=8.2Hz)
, 7.63 (1H, d, J=1.7Hz), 8.02 (2H, d, J=8.2Hz).
]安息香酸(化合物30a)の場合と同じ一般的合成法を適用し、LiOH 16.0 mg(0.3
8 mmol)の水溶液を使用して、4-[(5,6-ジヒドロ-5,5-ジメチル-8-(2-フリル)-2-
ナフタレニル)エチニル]安息香酸エチル(化合物66)を標題化合物(無色の固体
)に変換した。PMR (d6-DMSO):δ 1.26 (6H, s), 2.33 (2H, d, J=4.9Hz), 6.41
(1H, t, J=4.9Hz), 6.60 (2H, m), 7.45-7.53 (3H, m), 7.64 (2H, d, J=8.3Hz
), 7.75 (1H, d, J=1.6Hz), 7.93 (2H, d, J=8.3Hz).
-78゜C)に塩化アセチル(15 g, 192 mmol)および1,2,3,4-テトラヒドロ-1,1-ジメ チルナフタレン(24.4 g, 152 mmol)のジクロロメタン(20 ml)溶液を20分間で加 えた。反応混合物を室温まで温め、4時間攪拌した。反応フラスコに氷(200 g) を加え、混合物をエーテル(400 ml)で希釈した。水層と有機層を分離し、有機層
を10 %塩酸(50 ml)、水(50 ml)、10 %炭酸水素ナトリウム水溶液および飽和塩化
ナトリウム水溶液(50 ml)で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を留去 し、黄色油状物を得た。これをベンゼン(50 ml)に溶かした。
50 g, 503 mmol)を20分かけて少しづつ加えた。混合物を0゜Cで30分間攪拌し、ベ
ンゼン(120 ml)で希釈した。攪拌しながら、上で調製したベンゼン溶液を滴下漏
斗から20分間で加えた。8時間経過後、イソプロピルアルコールを注意しながら
0゜Cで加え、それから水を加えて反応を停止させた。15分後に反応混合物をエー
テル(1100 ml)および水(200 ml)で希釈し、それから、固体炭酸水素ナトリウム(
200 g)で中和した。エーテル層を水(100 ml)および飽和塩化ナトリウム水溶液(2
x 100 ml)で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を減圧除去しジケトン
の異性体混合物を得た。そしてこれをクロマトグラフィ(5 %酢酸エチル/ヘキサ
ン)で分離した。
, J=2.0, 8.3Hz), 7.53 (1H, d, J=8.3Hz), 2.77 (2H, t, J=6.6Hz), 2.62 (3H,
s), 2.05 (2H, t, J=6.6Hz), 1.41 (6H, s). (化合物 100D):1H NMR (CDCl3):δ 8.10 (1H, d, J=8.1Hz), 8.02 (1H, d,
J=1.6Hz), 7.82 (1H, dd, J=1.6, 8.1Hz), 2.77 (2H, t, J=7.1Hz), 2.64 (3H,
s), 2.05 (2H, t, J=7.1Hz), 1.44 (6H, s).
;および3,4-ジヒドロ-4,4-ジメチル-6-アセチル-1(2H)-ナフタレノン(化合物
100D)の1:5混合物1.80 g(8.34 mmol)のベンゼン50 ml溶液とエチレングリコ ール517.7 mg(8.34 mmol)およびp-トルエンスルホン酸1水和物20.0 mg(0.11 mm
ol)を混合した。生成した溶液を18時間加熱還流し、室温まで冷却した後、減圧 濃縮した。クロマトグラフィ(10 %酢酸エチル−ヘキサン)によって標題化合物
を無色油状物として単離した。1H NMR (CDCl3):δ 8.01 (1H, d, J=8.2Hz), 7.5
1 (1H, s), 7.43 (1H, dd, J=1.7, 6.4Hz), 4.07 (2H, m), 3.79 (2H, m), 2.74
(2H, t, J=6.5Hz), 2.04 (2H, t, J=7.1Hz), 1.67 (3H, s), 1.46 (6H, s).
54 mmol)のTHF2.0 ml溶液に3,4-ジヒドロ-4,4-ジメチル-6-(2-(2-メチル-1,3-ジ
オキソラニル))-1(2H)-ナフタレノン(化合物 100E, 200.0 mg, 0.769 mmol)の
THF(5 ml)溶液を加えた。溶液を16時間加熱還流し、室温まで冷却した後、水お よび飽和塩化アンモニウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒
を減圧で除去し、カラムクロマトグラフィ(10 %酢酸エチル/ヘキサン)にかけ て標題化合物を無色の固体として得た。1H NMR (CDCl3):δ 7.49 (1H, d, J=1.7
Hz), 7.19 (2H, m), 7.10 (2H, d, J=7.9Hz), 7.04 (1H, d, J=8.2Hz), 4.05 (2
H, m), 3.80 (2H, m), 2.34 (3H, s), 2.21 (1H, m), 2.10 (1H, m), 1.88 (1H,
m), 1.65 (3H, s), 1.54 (1H, m), 1.39 (3H, s), 1.33 (3H, s).
(2-(2-メチル-1,3-ジオキソラニル)ナフタレン(化合物 100F)160.0 mg(0.52 m
mol)、p-トルエンスルホン酸1水和物(4 mg)およびベンゼン30 mlの溶液を12時 間還流した。室温まで冷却した後、反応物をエーテル(100 ml)で希釈し、10 %炭
酸水素ナトリウム、水および飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄した。有機層を硫
酸マグネシウムで乾燥し、溶媒を減圧除去し、カラムクロマトグラフィ(10% 酢
酸エチル−ヘキサン)にかけて黄色油状の標題化合物を得た。1H NMR (CDCl3): δ 7.97 (1H, d, J=1.8Hz), 7.67 (1H, dd, J=1.7, 6.4Hz), 7.22 (4H, s), 7.1
3 (1H, d, J=8.1Hz), 6.10 (1H, t, J=4.5Hz), 2.59 (3H, s), 2.40 (3H, s), 2
.38 (2H, d, J=4.7Hz), 1.38 (6H, s).
M水酸化ナトリウム水溶液2.0 ml)を加えた。生成した溶液を室温で12時間攪拌
したのち減圧濃縮し、残留油状物を酢酸エチルに溶解した。溶液を10 %塩酸で処
理し、有機層を水および飽和塩化ナトリウムで洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥し
た。溶媒を減圧除去し、アセトニトリルから再結晶して精製し、標題化合物の無
色固体を得た。1H NMR (d6-アセトン):δ 8.00 (7H, m), 7.83 (1H, d, J=15.6Hz), 7.24 (4H, s), 7.13 (1H, d, J=8.1Hz), 6.12 (1H, t, J=4.5Hz), 2.42 (2H, d,
J=4.8Hz), 2.38 (3H, s), 1.41 (6H, s).
フタレノン(化合物100E)508.0mg(1.95mmol)のTHF10ml溶液にフェニルマグネシ ウムブロミド496.2mg(2.54mmol, 1Mエーテル溶液2.54ml)を加えた。生成した溶 液を8時間加熱還流し、水を加えて30分間加熱を続けた。THFを減圧で除去し、 残留水溶液を溶媒で抽出した。有機層を合わせ、硫酸マグネシウムで乾燥した後
、減圧濃縮した。残留物をカラムクロマトグラフィ(10 %酢酸エチル−ヘキサン)
にかけ、標題化合物を無色油状物として単離した。1H NMR (CDCl3):δ 7.97 (1H
, d, J=1.8Hz), 7.67 (1H, dd, J=2.1, 8.0Hz), 7.34 (5H, m), 7.10 (1H, d, J
=8.1Hz), 6.12 (1H, d, J=4.6Hz), 2.59 (3H, s), 2.39 (2H, d, J=4.8Hz), 1.3
8 (6H, s).
)115.0 mg(0.42 mmol)および4-ホルミル安息香酸65.0 mg(0.43 mmol)をエタノ ール5.0 mlおよびTHF1.0 mlに溶かした溶液に水酸化ナトリウム120.0 mg(3.00 m
mol,1 M水溶液3.00 ml)を加えた。生成した黄色の溶液を室温で12時間攪拌した 。溶液を6 %塩酸で酸性にし、酢酸エチルで抽出した。有機層を合わせて硫酸マ グネシウムで乾燥し減圧濃縮した、後カラムクロマトグラフィ(50 %酢酸エチル
−ヘキサン)にかけ、標題化合物を淡黄色固体として単離した。1H NMR (CDCl3)
:δ 8.13 (2H, d, J=7.7Hz), 8.04 (1H, s), 7.81 (1H, d, J=15.5Hz), 7.75 (3
H, m), 7.60 (1H, d, J=15.5Hz), 7.35 (5H, m), 7.14 (1H, d, J=8.1Hz), 6.15
(1H, t, J=4.2Hz), 2.41 (2H, d, J=4.2Hz), 1.41 (6H, s).
ン下に慎重に火炎乾燥した。室温に冷却した後、フラスコに14.0mLのTH
Fを入れ、その混合物を還流温度に加熱し、混合物を還流させながら、3−フル
オロ−4−メトキシ−1−ブロモベンゼン(5.00g、24.4ミリモル)を
ゆっくり加えた。6時間後、グリニャール試薬の形成が終了したことがわかった
。得られる不透明橙色溶液を0℃に冷却し、硫黄(781.8mg、24.4g
−原子)を5分間にわたって3回で加えた。室温で一晩攪拌した後、褐色混合物
を氷10%HCl水溶液混合物に慎重に入れた。EtOAcで抽出し、次に、合
わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥し
た。溶媒を減圧下に除去し、残渣を蒸留して(バルブ−トゥ−バルブ)(bulb-t
o-bulb)、2.14g(55%)の標記化合物を無色油状物として得た(沸点9
0〜100℃/5mm)。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.06(2H,m)、6.85
(1H,t,J=8.6Hz)、3.87(3H,S)、3.43(1H,s)
。
酸(化合物201) 3−メチル−2−ブテン酸(1.23g、12.33ミリモル)、3−フルオ
ロ−4−メトキシチオフェノール(化合物200、1.95g、12.33ミリ
モル)、およびピペリジン(314.8mg、3.70ミリモル)を厚肉ねじ蓋
付き試験管に入れた。この混合物を23時間105℃に加熱し、室温に冷却し、
EtOAc(100mL)に溶解させた。得られる溶液を、1M HCl水溶液
、H2O、および飽和NaCl水溶液で洗浄し、Na2SO4で乾燥した。乾燥溶 液を減圧下に濃縮して、3.22gの明澄黄色油状物を得、さらに精製せず、次
の反応に使用した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.32(2H,m)、6.94
(1H,t,J=8.4Hz)、3.92(3H,s)、2.54(2H,s)
、1.41(6H,s)。
チロイルクロリド(化合物202) 室温における40mLのベンゼン中の3−(3−フルオロ−4−メトキシ−フ
ェニルスルファニル)−3−メチル−酪酸(化合物201、3.00g、11.
6ミリモル)の溶液に、5mLのベンゼン中の塩化オキサリル(2.21g、1
7.4ミリモル)の溶液を30分で加えた。3時間後、その溶液を氷冷5%Na
OH水溶液(注意:この手順の間に多量のガスが放出される)、次に氷冷H2O 、最後に飽和NaCl水溶液で洗浄した。その溶液を乾燥し(Na2SO4)、減
圧下に濃縮して、2.83gの明澄黄色油状物を得た。この物質を、さらに精製
せず、次の段階に使用した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.27(2H,m)、6.96
(1H,t,J=8.4Hz)、3.93(3H,s)、3.13(2H,s)
、1.42(6H,s)。
g、10.1ミリモル)の溶液に、5mLのCH2Cl2中のSnCl4(2.6 4g、10.1ミリモル)の溶液を滴下した。2.5時間後、20mLのH2O をゆっくり加えて、反応を鎮めた。有機相を、1M HCl水溶液、5%NaO
H水溶液、H2O、最後に飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥した。
減圧下に濃縮して、1.90g(78%)の標記化合物を黄褐色固形物として得
た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.72(1H,d,J=8.9
Hz)、6.95(1H,d,J=11.0Hz)、3.91(3H,s)、2
.85(2H,s)、1.47(6H,s)。
2,2−ジメチル−チオクロマン−4−オン(化合物203、1.75g、7. 29ミリモル)の溶液に、BBr3(5.46g、21.8ミリモル;CH2Cl 2 中の1M溶液21.8mL)を10分で加えた。−230℃において23時間 攪拌した後、溶液を3時間0℃に温め、次に−78℃に冷却し、25mLのH2 Oをゆっくり加えて鎮めた。室温に温めた後、水性相をCH2Cl2で抽出し、合
わした有機相を、飽和NaHCO3水溶液、H2O、および飽和NaCl水溶液で
洗浄し、MgSO4で乾燥した。減圧下に溶媒を除去し、次に、カラムクロマト グラフィー(10〜20%EtOAc/ヘキサン)にかけて、1.12g(68
%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.82(1H,d,J=9.3
Hz)、6.97(1H,d,J=10.4Hz)、5.54(1H,s)、2
.86(2H,s)、1.46(6H,s)。
−2,2−ジメチルチオクロマン−4−オン(化合物204、1.12g、4. 94ミリモル)の溶液に、トリフルオロメタンスルホン酸無水物(1.61g、
5.68ミリモル)を加えた。0℃において18時間後、溶液を濃縮し、残留油
状物をEt2Oに溶解し、H2O、次に飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4 で乾燥した。減圧下に溶媒を除去し、カラムクロマトグラフィー(5〜8%Et
OAc/ヘキサン)にかけて、1.28g(72%)の標記化合物を無色固形物
として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.07(1H,d,J=7.8
Hz)、7.13(1H,d,J=9.7Hz)、2.89(2H,s)、1.
50(6H,s)。
分間にわたってパージした。この溶液に、トリメチルシリルアセチレン(2.0
g、20.4ミリモル)およびビス(トリフェニルホスフィン)−パラジウム(
II)クロリド(100.0mg、0.14ミリモル)を加えた。その溶液を6時
間95℃に加熱し、室温に冷却し、一晩攪拌した。その溶液をH2Oで稀釈し、 EtOAcで抽出した。合わした有機相を、H2O、飽和NaCl水溶液で洗浄 し、MgSO4で乾燥した。減圧下に乾燥溶液を濃縮し、生成物をカラムクロマ トグラフィー(3〜5%EtOAc/ヘキサン)によって単離して、850.0
mg(78%)の標記化合物を橙色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.22(1H,d,J=7.5
Hz)、6.92(1H,d,J=9.3Hz)、2.85(2H,s)、1.
46(6H,s)、0.25(9H,s)。
g、2.78ミリモル)およびK2CO3(180.0mg、1.30ミリモル)
の溶液を、室温において一晩攪拌した。その溶液を初期容量の1/3に濃縮し、
EtOAcで稀釈し、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾
燥した。減圧下に溶媒を除去し、次に、残留固形物をカラムクロマトグラフィー
(5〜10%EtOAc/ヘキサン)にかけて、330.0mg(51%)の化
合物207を黄色固形物として得、および217.0mg(32%)の化合物2
08を黄色固形物として得た。 (化合物207):1H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.18(1
H,d,J=7.5Hz)、6.90(1H,d,J=8.3Hz)、3.28
(1H,s)、2.81(2H,s)、1.42(6H,s)。 (化合物208):1H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.19(1
H,s)、6.64(1H,s)、3.90(3H,s)、3.26(1H,s
)、2.80(2H,s)、1.44(6H,s)。
チオクロマン−4−オン(化合物207、330.0mg、1.41ミリモル)
およびエチル4−ヨードベンゾエート(392mg、1.41ミリモル)の溶液
を、アルゴンで15分間にわたってパージした。この溶液に、ビス(トリフェニ
ルホスフィン)−パラジウム(II)クロリド(247mg、0.35ミリモル)
および沃化銅(I)(67.0mg、0.35ミリモル)を加えた。さらに10
分間にわたってアルゴンでパージした後、溶液を室温において一晩攪拌した。そ
の反応混合物をEtOAcで稀釈し、EtOAc洗液を使用してCeliteのパッド
で濾過した。濾液を減圧下に濃縮し、次に、残留固形物をカラムクロマトグラフ
ィー(3〜5%EtOAc/ヘキサン)にかけて、490.0mg(91%)の
標記化合物を黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.31(1H,d,J=7.6
Hz)、8.04(2H,d,J=8.3Hz)、7.60(2H,d,J=8
.3Hz)、7.00(1H,d,J=9.3Hz)、4.40(2H,q,J
=7.1Hz)、2.89(2H,s)、1.50(6H,s)、1.41(3
H,t,J=7.1Hz)。
、0.89ミリモル)の溶液を、アルゴンで15分間にわたってパージした。こ
の溶液に、ビス(トリフェニルホスフィン)−パラジウム(II)クロリド(15
4.0mg、0.22ミリモル)および沃化銅(I)(42.0mg、0.22
ミリモル)を加えた。さらに10分間にわたってアルゴンでパージした後、溶液
を室温において一晩攪拌した。その反応混合物をEtOAcで稀釈し、EtOA
c洗液を使用してCeliteのパッドで濾過した。濾液を減圧下に濃縮し、次に、残
留固形物をカラムクロマトグラフィー(5〜10%EtOAc/ヘキサン)にか
けて、320.0mg(92%)の標記化合物を橙色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.29(1H,s)、8.03
(2H,d,J=8.4Hz)、7.60(2H,d,J=8.4Hz)、6.
70(1H,s)、4.40(2H,q,J=7.1Hz)、3.96(3H,
s)、2.86(2H,s)、1.50(6H,s)、1.41(3H,t,J
=7.1Hz)。
.7mg、1.44ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、3.0mL中のエ
チル4−(2,2−ジメチル−4−オキソ−7−フルオロ−チオクロマン−6− イルエチニル)−ベンゾエート(化合物209、460.0mg、1.20ミリ
モル)の溶液をゆっくり加えた。30分後、2.0mLのTHF中の2−[N, N−ビス(トリフルオロメタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(518.
0mg、1.32ミリモル)の溶液を加えた。5分後、その溶液を室温に温め、
6時間攪拌した。飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮め、EtOAcで抽出 した。合わした有機相を、5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し( MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(3〜5%EtO Ac/ヘキサン)によって、549.0mg(89%)の標記化合物を淡黄色固
形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.04(2H,d,J=8.4
Hz)、7.61(2H,d,J=8.4Hz)、7.60(1H,d,J=6
.7Hz)、7.08(1H,d,J=9.0Hz)、5.88(1H,s)、
4.40(2H,q,J=7.1Hz)、1.53(6H,s)、1.41(3
H,t,J=7.1Hz)。
.9mg、0.85ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、3.0mL中のエ
チル4−(2,2−ジメチル−4−オキソ−7−メトキシ−チオクロマン−6− イルエチニル)−ベンゾエート(化合物210、280.0mg、0.71ミリ
モル)の溶液をゆっくり加えた。30分後、2.0mLのTHF中の2−[N, N−ビス(トリフルオロメタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(355.
0mg、0.85ミリモル)の溶液を加えた。5分後、その溶液を室温に温め、
6時間攪拌した。飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮め、EtOAcで抽出 した。合わした有機相を、5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し( MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(15%EtOA c/ヘキサン)によって、300.0mg(80%)の標記化合物を橙色固形物
として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.02(2H,d,J=8.3
Hz)、7.61(2H,d,J=8.3Hz)、7.57(1H,s)、6.
82(1H,s)、5.76(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1H
z)、3.92(3H,s)、1.51(6H,s)、1.40(3H,t,J
=7.1Hz)。
9ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(217.2m
g、3.39ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液2.0mL)を加えて、黄色
溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(409.0mg、 3.00ミリモル)の溶液をカニューレでゆっくり加えた。その溶液を室温に温
め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフルオロ メタンスルホニルオキシ−7−フルオロ−(2H)−チオクロメン−6−イルエ
チニル)−ベンゾエート(化合物211、158.0mg、0.31ミリモル)
およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg
、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に
加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液 をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で 洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー (3%EtOAc/ヘキサン)によって、120.0mg(86%)の標記化合
物を単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.00(2H,d,J=8.3
Hz)、7.54(2H,d,J=8.3Hz)、7.27〜7.13(6H,
m)、5.79(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、2.4
2(3H,s)、1.48(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz
)。
リモル)の溶液を、−78℃に冷却し、n−ブチルリチウム(83.3mg、1
.30ミリモル、ヘキサン中の1.6M溶液0.84mL)を加え、その溶液を
1.5時間0℃に温めた。3.0mLのTHF中のZnCl2(341.0mg 、2.50ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を
室温に温め、40分間攪拌し、2.0mLのTHF中のエチル4−[(2,2− ジメチル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−7−フルオロ−(2H)
−チオクロメン−6−イル)エチニル]−ベンゾエート(化合物211、158
.0mg、0.31ミリモル)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パ
ラジウム(0)(24.0mg、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加え
た。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を 加えて反応を鎮めた。その溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2 Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮し た。カラムクロマトグラフィー(3%EtOAc/ヘキサン)によって、70.
0mg(50%)の標記化合物を蝋状固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.01(2H,d,J=8.3
Hz)、7.61(1H,d,J=7.5Hz)、7.58(2H,d,J=8
.3Hz)、7.13(1H,d,J=7.2Hz)、6.82(1H,d,J
=4.4Hz)、6.73(1H,d,J=4.4Hz)、5.96(1H,s
)、4.39(2H,q,J=7.1Hz)、2.52(3H,s)、1.46
(6H,s)、1.41(3H,t,J=7.1Hz)。
2ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(374.2m
g、5.84ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液3.4mL)を加えて、黄色
溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(613.0mg、 4.50ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室
温に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフル
オロメタンスルホニルオキシ−7−メトキシ−(2H)−チオクロメン−6−イ
ルエチニル)−ベンゾエート(化合物212、285.0mg、0.54ミリモ
ル)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0
mg、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50
℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。その 溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶 液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフ ィー(2〜5%EtOAc/ヘキサン)によって、200.0mg(79%)の
標記化合物を無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.98(2H,d,J=8.3
Hz)、7.54(2H,d,J=8.3Hz)、7.23〜7.21(5H,
m)、5.71(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、3.9
5(3H,s)、2.41(3H,s)、1.49(6H,s)、1.40(3
H,t,J=7.1Hz)。
6) 厚肉ねじ蓋付き試験管に、3−メチル−2−ブテン酸(13.86g、138
.4ミリモル)、4−メトキシチオフェノール(20.0g、138.4ミリモ
ル)、およびピペリジン(3.45g、41.6ミリモル)を入れた。この混合
物を32時間105℃に加熱し、室温に冷却し、EtOAc(700mL)に溶
解させた。得られる溶液を、1M HCl水溶液、H2O、および飽和NaCl 水溶液で洗浄し、Na2SO4で乾燥した。乾燥溶液を減圧下に濃縮して、油状物
を得、冷凍庫に静置して、結晶質固形物を得た。その結晶質固形物をペンタンで
洗浄して、標記化合物を淡黄色結晶として単離した(27.33g、82%)。
1H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.48(2H,d,J=9.0
Hz)、6.89(2H,d,J=8.9Hz)、3.83(3H,s)、2.
54(2H,s)、1.40(6H,s)。
ド(化合物217) 室温における250mLのベンゼン中の3−(4−メトキシ−フェニルスルフ
ァニル)−3−メチル−酪酸(化合物216、20.0g、83.2ミリモル)
の溶液に、10mLのベンゼン中の塩化オキサリル(15.84g、124.8
ミリモル)の溶液を30分間で加えた。4時間後、その溶液を氷冷5%NaOH
水溶液(注意:この手順の間に、多量のガスが放出される)、次に氷冷H2O、 最後に飽和NaCl水溶液で洗浄した。この溶液を乾燥し(Na2SO4)、減圧
下に濃縮して、明澄黄色油状物を得た。この物質を、さらに精製せず、次の段階
に使用した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.45(2H,d,J=8.8
Hz)、6.90(2H,d,J=8.8Hz)、3.84(3H,s)、3.
12(2H,s)、1.41(6H,s)。
5g、83.2ミリモル)の溶液に、30mLのCH2Cl2中のSnCl4(2 1.7g、83.2ミリモル)の溶液を滴下した。2時間後、150mLのH2 Oをゆっくり加えて反応を鎮めた。有機相を、1M HCl水溶液、5%NaO
H水溶液、H2O、最後に飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥した。
減圧下に濃縮し、残留油状物を真空蒸留して(バルブ−トゥ−バルブ、125〜
135℃、5mm/Hg)、14.48g(78%)の標記化合物を淡黄色油状
物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.62(1H,d,J=2.9
Hz)、7.14(1H,d,J=8.6Hz)、7.03(1H,dd,J=
2.8,8.3Hz)、3.83(3H,s)、2.87(2H,s)、1.4
6(6H,s)。
に、BBr3(20.0g、80.0ミリモル;CH2Cl2中の1M溶液80. 0mL)を20分で加えた。−23℃において5時間攪拌した後、溶液を−78
℃に冷却し、50mLのH2Oをゆっくり加えて鎮めた。室温に温めた後、水性 相をCH2Cl2で抽出し、合わした有機相を、飽和NaHCO3水溶液、H2O、
および飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥した。減圧下に溶媒を除 去して、緑褐色固形物を得、再結晶して(Et2O/ヘキサン)、2.25g( 40%)の標記化合物を薄褐色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.63(1H,d,J=2.8
Hz)、7.15(1H,d,J=8.5Hz)、7.01(1H,dd,J=
2.8,8.5Hz)、2.87(2H,s)、1.46(6H,s)。
)の溶液に、トリフルオロメタンスルホン酸無水物(245.0mg、0.87
ミリモル)を加えた。0℃において4時間後、その溶液を濃縮し、残留油状物を
Et2Oに溶解し、H2O、次に飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥 した。減圧下に溶媒を除去し、カラムクロマトグラフィー(5%EtOAc/ヘ
キサン)にかけて、126.0mg(47%)の標記化合物を無色固形物として
得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.97(1H,s)、7.32
(2H,s)、2.90(2H,s)、1.49(6H,s)。
パージした。この溶液に、トリメチルシリルアセチレン(4.15g、42.0
ミリモル)およびビス(トリフェニルホスフィン)−パラジウム(II)クロリド
(298.0mg、0.425ミリモル)を加えた。その溶液を5時間95℃に
加熱し、室温に冷却し、H2Oで稀釈した。EtOAcで抽出し、次に、合わし た有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥した。
減圧下に乾燥溶液を濃縮し、生成物をカラムクロマトグラフィー(3%EtOA
c/ヘキサン)によって単離して、2.23g(91%)の標記化合物を橙色油
状物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.18(1H,d,J=1.9
Hz)、7.34(1H,dd,J=1.9,8.1Hz)7.15(1H,d
,J=8.1Hz)、2.85(2H,s)、1.45(6H,s)、0.23
(9H,s)。
リモル)およびK2CO3(40.0mg、0.29ミリモル)の溶液を、室温に
おいて一晩攪拌した。その溶液をH2Oで稀釈し、Et2Oで抽出した。合わした
有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥した。減
圧下に溶媒を除去して、81mg(99%)の標記化合物を橙色油状物として得
た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.20(1H,d,J=1.9
Hz)、7.46(1H,dd,J=1.9,8.1Hz)、7.18(1H,
d,J=8.1Hz)、3.08(1H,s)、2.86(2H,s)、1.4
6(6H,s)。
−オン(化合物222、82.0mg、0.38ミリモル)およびエチル4−ヨ
ードベンゾエート(104.9mg、0.38ミリモル)の溶液を、アルゴンで
10分間にわたってパージした。この溶液に、ビス(トリフェニルホスフィン)
−パラジウム(II)クロリド(88.0mg、0.12ミリモル)および沃化銅
(I)(22.9mg、0.12ミリモル)を加えた。さらに5分間にわたって
アルゴンでパージした後、溶液を室温において一晩攪拌した。その反応混合物を
、Et2O洗液を使用してCeliteのパッドで濾過した。濾液を減圧下に濃縮し、 次に、残留固形物をカラムクロマトグラフィーにかけて、100mg(72%)
の標記化合物を黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.25(1H,d,J=1.8
Hz)、8.00(2H,d,J=8.4Hz)、7.55(2H,d,J=8
.4Hz)、7.53(1H,dd,J=1.8,8.2Hz)、7.21(1
H,d,J=8.2Hz)、4.37(2H,q,J=7.1Hz)、2.88
(2H,s)、1.47(6H,s)、1.39(3H,t,J=7.1Hz)
。
.12g、6.13ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、15.0mL中の
エチル4−(2,2−ジメチル−4−オキソ−チオクロマン−6−イルエチニル )−ベンゾエート(化合物223、1.86g、5.10ミリモル)の溶液をゆ
っくり加えた。30分後、10mLのTHF中の2−[N,N−ビス(トリフル オロメタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(2.40g、6.13ミリモ
ル)の溶液を加えた。5分後、その溶液を室温に温め、一晩攪拌した。飽和NH 4 Cl水溶液を加えて反応を鎮め、EtOAcで抽出した。合わした有機相を、 5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮
した。カラムクロマトグラフィー(2%EtOAc/ヘキサン)によって、1.
53g(61%)の標記化合物を黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.03(2H,d,J=8.4
Hz)、7.61(1H,d,J=1.8Hz)、7.59(2H,d,J=8
.4Hz)、7.41(1H,dd,J=1.8,8.1Hz)、7.29(1
H,d,J=8.1Hz)、5.91(1H,s)、4.39(2H,q,J=
7.1Hz)、1.53(6H,s)、1.41(3H,t,J=7.1Hz)
。
)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(151.2mg、2.3
6ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.4mL)を加えて、黄色溶液を得た
。30後、4.0mLのTHF中のZnCl2(225.0mg、1.4ミリモ ル)の溶液をカニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温に温め、2.0
mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフルオロメタンスル ホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)−ベンゾエート(
化合物224、200.0mg、0.40ミリモル)およびテトラキス(トリフ
ェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.02ミリモル)の溶
液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温に冷却し、飽
和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEtOAcで抽出し、合 わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4 )、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5%EtOAc/ヘキサン
)によって、155.0mg(91%)の標記化合物を無色固形物として単離し
た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(2H,d,J=8.4
Hz)、7.52(2H,d,J=8.4Hz)、7.42〜7.24(8H,
m)、5.78(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、1.5
0(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)。
5ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(147.4m
g、2.30ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.4mL)を加えて、黄色
溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(219.4mg、 1.4ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温
に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフルオ
ロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)−ベ
ンゾエート(化合物224、230.0mg、0.46ミリモル)およびテトラ
キス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.02ミ
リモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温
に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。その溶液をEtOAc で抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥 し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5%EtO Ac/ヘキサン)によって、165.0mg(82%)の標記化合物を無色固形
物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.98(2H,d,J=8.4
Hz)、7.51(2H,d,J=8.4Hz)、7.35〜7.21(7H,
m)、5.84(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、2.4
2(3H,s)、1.48(6H,s)、1.40(3H,s)。
3ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(464.5m
g、7.25ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液4.26mL)を加えて、黄
色溶液を得た。30分後、8.0mLのTHF中のZnCl2(658.7mg 、4.83ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を
室温に温め、8.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフ
ルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)
−ベンゾエート(化合物224、1.20g、2.42ミリモル)およびテトラ
キス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(111.7mg、0.09
7ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を1時間50℃に加熱し、
室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。その溶液をEtO Acで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、 乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5%E tOAc/ヘキサン)によって、標記化合物を無色油状物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(2H,d,J=8.2
Hz)、7.52(2H,d,J=8.4Hz)、7.40(5H,m)、7.
35(2H,m)、5.85(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1H
z)、2.72(2H,q,J=7.6Hz)、1.48(6H,s)、1.4
0(3H,t,J=7.1Hz)、1.30(3H,t,J=7.6Hz)。
0.81ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(103
.8mg、1.62ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液0.95mL)を加え
て、黄色溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(175. 5mg、1.3ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶
液を室温に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−ト
リフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニ
ル)−ベンゾエート(化合物224、160.0mg、0.32ミリモル)およ
びテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0
.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱
し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をE tOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄 し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5 %EtOAc/ヘキサン)によって、128.0mg(85%)の標記化合物を
無色油状物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(2H,d,J=8.4
Hz)、7.53(2H,d,J=8.1Hz)、7.38〜7.22(7H,
m)、5.86(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、2.9
8(1H,hept,7.0Hz)、1.49(6H,s)、1.43(3H,
t,J=7.1Hz)、1.32(6H,d,J=7.0Hz)。
.70ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(92.6
mg、1.44ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液0.85mL)を加えて、
黄色溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(133.0m g、0.98ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液
を室温に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリ
フルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル
)−ベンゾエート(化合物224、140.0mg、0.28ミリモル)および
テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.
02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し
、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEt OAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し 、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5% EtOAc/ヘキサン)によって、94.0mg(70%)の標記化合物を無色
固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.98(2H,d,J=8.3
Hz)、7.52(2H,d,J=8.3Hz)、7.43〜7.22(7H,
m)、5.86(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、1.4
7(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)、1.38(9H,s
)。
リモル)の溶液を、−78℃に冷却し、n−ブチルリチウム(64.0mg、1
.00ミリモル、ヘキサン中の1.6M溶液0.63mL)を加え、その溶液を
1.5時間で0℃に温めた。3.0mLのTHF中のZnCl2(218.0m g、1.60ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液
を室温に温め、40分間攪拌し、2.0mLのTHF中のエチル4−[(2,2−
ジメチル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン
−6−イル)エチニル]−ベンゾエート(化合物224、200.0mg、0.
40ミリモル)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)
(24.0mg、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を
2時間で50℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を 鎮めた。その溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和 NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムク ロマトグラフィー(5%EtOAc/ヘキサン)によって、170.0mg(9
6%)の標記化合物を淡黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.01(2H,d,J=8.3
Hz)、7.63(1H,s)、7.55(2H,d,J=8.3Hz)、7.
35(2H,s)、6.82(1H,d,J=3.5Hz)、6.72(1H,
m)、6.00(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、2.5
2(3H,s)、1.46(6H,s)、1.40(2H,t,J=7.1Hz
)。
リモル)の溶液を、−78℃に冷却し、n−ブチルリチウム(64.0mg、1
.00ミリモル、ヘキサン中の1.6M溶液0.63mL)を加え、その溶液を
1.5時間で0℃に温めた。3.0mLのTHF中のZnCl2(218.0m g、1.60ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液
を室温に温め、40分間攪拌し、2.0mLのTHF中のエチル4−[(2,2−
ジメチル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン
−6−イル)エチニル]−ベンゾエート(化合物224、200.0mg、0.
40ミリモル)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)
(24.0mg、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を
2時間50℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮 めた。その溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和N aCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。HPLC( 1.25%EtOAc/ヘキサン)によって、29.0mg(16%)の標記化
合物を淡黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.01(2H,d,J=8.4
Hz)、7.65(1H,s)、7.55(2H,d,J=8.4Hz)、7.
35(2H,s)、6.84(1H,d,J=3.5Hz)、6.77(1H,
m)、6.02(1H,s)、4.39(2H,q,J=7.1Hz)、2.8
8(2H,q,J=7.6Hz)、1.46(6H,s)、1.41(2H,t
,J=7.1Hz)、1.35(2H,t,J=7.6Hz)。
5ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、n−ブチルリチウム(48.1mg
、0.75ミリモル、ヘキサン中の1.6M溶液0.47mL)を加え、その溶
液を1.5時間で0℃に温めた。3.0mLのTHF中のZnCl2(163. 2mg、1.20ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる
溶液を室温に温め、40分間攪拌し、2.0mLのTHF中のエチル4−[(2
,2−ジメチル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオク ロメン−6−イル)エチニル]−ベンゾエート(化合物224、200.0mg
、0.40ミリモル)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム
(0)(20.0mg、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この
溶液を2時間50℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反 応を鎮めた。その溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび 飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラ ムクロマトグラフィー(5%EtOAc/ヘキサン)によって、110.0mg
(76%)の標記化合物を無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.01(2H,d,J=8.3
Hz)、7.68(1H,s)、7.56(2H,d,J=8.3Hz)、7.
36(2H,m)、6.82(2H,m)、6.04(1H,s)、4.39(
2H,q,J=7.1Hz)、1.46(6H,s)、1.43(9H,s)、
1.41(2H,t,J=7.1Hz)。
1.28ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(164
.0mg、2.56ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.5mL)を加え、
赤橙色溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(348.0 mg、2.56ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶
液を室温に温め、40分間攪拌し、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2 −ジメチル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメ
ン−6−イルエチニル)−ベンゾエート(化合物224、172.0mg、0.
35ミリモル)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)
(24.0mg、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を
2時間50℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮 めた。その溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和N aCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロ マトグラフィー(5%EtOAc/ヘキサン)によって、109.0mg(72
%)の標記化合物を淡黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.45(1H,d,J=2.0
Hz)、8.00(2H,d,J=8.5Hz)、7.52(2H,d,J=8
.5Hz)、7.49(1H,dd,J=2.3,8.1Hz)、7.36(2
H,m)、7.20(1H,d,J=8.1Hz)、7.16(1H,d,J=
1.5Hz)、5.86(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)
、2.63(3H,s)、1.50(6H,s)、1.40(3H,t,J=7
.1Hz)。
−オン(化合物222、1.37g、6.34ミリモル)およびエチル2−フル
オロ−4−ヨードベンゾエート(1.86g、6.43ミリモル)の溶液を、ア
ルゴンで20分間にわたってパージした。この溶液に、ビス(トリフェニルホス
フィン)−パラジウム(II)クロリド(1.05g、1.5ミリモル)および沃
化銅(I)(286.0mg、1.5ミリモル)を加えた。さらに10分間にわ
たってアルゴンでパージした後、その溶液を室温において一晩攪拌した。その反
応混合物を、Et2O洗液を使用してCeliteのパッドで濾過した。濾液を減圧下 に濃縮し、次に、残留固形物をカラムクロマトグラフィー(5%EtOAc/ヘ
キサン)にかけて、1.88g(78%)の標記化合物を黄色固形物として得た
。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.27(1H,d,J=1.9
Hz)、7.92(1H,d,J=7.8Hz)、7.52(1H,dd,J=
1.9,8.2Hz)、7.36〜7.24(3H,m)、4.41(2H,q
,J=7.1Hz)、2,90(2H,s)、1.50(6H,s)、1.41
(3H,t,J=7.1Hz)。
82g、5.90ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、15.0mL中のエ
チル4−[(2,2−ジメチル−4−オキソ−チオクロマン−6−イル)エチニ ル]−2−フルオロベンゾエート(化合物234、1.88g、4.91ミリモ
ル)の溶液をゆっくり加えた。30分後、10mLのTHF中の2−[N,N− ビス(トリフルオロメタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(2.32g、
5.90ミリモル)の溶液を加えた。5分後、その溶液を室温に温め、一晩攪拌
した。飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮め、EtOAcで抽出した。合わ した有機相を、5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し(MgSO4)
、減圧下に濃縮した。カラムクトマトグラフィー(5%EtOAc/ヘキサン)
によって、1.80g(71%)の標記化合物を黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.93(1H,d,J=7.8
Hz)、7.61(1H,d,J=1.6Hz)、7.43〜7.27(4H,
m)、5.92(1H,s)、4.41(2H,q,J=7.1Hz)、1.5
3(6H,s)、1.42(3H,t,J=7.1Hz)。
4ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(209.5m
g、3.27ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.9mL)を加えて、黄色
溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(680.0mg、 5.0ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温
に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフル オロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)−
2−フルオロベンゾエート(化合物234、200.0mg、0.39ミリモル
)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0m
g、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を1時間50℃
に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。その溶 液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液 で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクトマトグラフィ ー(5%EtOAc/ヘキサン)によって、177.0mg(79%)の標記化
合物を淡黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.88(1H,d,J=7.8
Hz)、7.28〜7.18(9H,m)、5.84(1H,s)、4.39(
2H,q,J=7.1Hz)、2.42(3H,s)、1.48(6H,s)、
1.40(3H,t,J=7.1Hz)。
0ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(128.5m
g、2.0ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.2mL)を加えて、黄色溶
液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(204.5mg、1 .5ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温に
温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフルオ ロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)−2
−フルオロベンゾエート(化合物234、200.0mg、0.39ミリモル)
およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg
、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を1時間50℃に
加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。その溶液 をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で 洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクトマトグラフィー (5%EtOAc/ヘキサン)によって、158.0mg(86%)の標記化合
物を淡黄色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.88(1H,d,J=7.8
Hz)、7.39〜7.20(9H,m)、5.86(1H,s)、4.40(
2H,q,J=7.1Hz)、2.72(2H,q,J=7.6Hz)、1.4
9(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)、1.30(3H,t
,J=7.6Hz)。
−オン(化合物222、510.0mg、2.36ミリモル)およびエチル6−
ヨードニコチネート(654.0mg、2.36ミリモル)の溶液を、20分間
にわたってアルゴンでパージした。この溶液に、ビス(トリフェニルホスフィン
)−パラジウム(II)クロリド(425.0mg、0.60ミリモル)および沃
化銅(I)(115.0mg、0.60ミリモル)を加えた。さらに10分間に
わたってアルゴンでパージした後、溶液を室温において一晩攪拌した。その反応
混合物をEtOAc(20mL)で稀釈し、Et2O洗液を使用してCeliteのパ ッドで濾過した。濾液を減圧下に濃縮し、次に、残留固形物をカラムクトマトグ
ラフィー(10〜20%EtOAc/ヘキサン)にかけて、675mg(78%
)の標記化合物を橙色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:9.20(1H,d,J=1.0
Hz)、8.34(1H,d,J=1.8Hz)、8.29(1H,dd,J=
2.2,8.2Hz)、7.60(2H,m)、7.25(1H,d,J=8.
4Hz)、4.43(2H,q,J=7.1Hz)、2.90(2H,s)、1
.49(6H,s)、1.43(3H,t,J=7.1Hz)。
.2mg、1.55ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、3.0mLのTH
F中のエチル6−(2,2−ジメチル−4−オキソ−チオクロマン−6−イルエ チニル)−ニコチネート(化合物238、480.0mg、1.31ミリモル)
の溶液をゆっくり加えた。30分後、3.0mLのTHF中の2−[N,N−ビ ス(トリフルオロメタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(608.0mg
、1.55ミリモル)の溶液を加えた。5分後、その溶液を室温に温め、一晩攪
拌した。飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮め,EtOAcで抽出した。合 わした有機相を、5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し(MgSO4 )、減圧下に濃縮した。カラムクトマトグラフィー(20%EtOAc/ヘキサ
ン)によって、566.0mg(87%)の標記化合物を黄色固形物として単離
した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:9.21(1H,d,J=2.0
Hz)、8.30(1H,dd,J=2.0,8.1Hz)、7.68(1H,
d,J=1.5Hz)、7.61(1H,d,J=8.2Hz)、7.49(1
H,dd,J=1.7,8.1Hz)、7.31(1H,d,J=8.2Hz)
、5.92(1H,s)、4.41(2H,q,J=7.1Hz)、1.53(
6H,s)、1.43(3H,t,J=7.1Hz)。
4ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(209.5m
g、3.27ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.9mL)を加えて、黄色
溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(680.0mg、 5.0ミリモル)の溶液をカニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温に
温め、2.0mLのTHF中のエチル6−(2,2−ジメチル−4−トリフルオ ロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)−ニ
コチネート(化合物239、120.0mg、0.24ミリモル)およびテトラ
キス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(20.0mg、0.02ミ
リモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温
に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。その溶液をEtOAc で抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥 し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクトマトグラフィー(10〜15 %EtOAc/ヘキサン)によって、80.0mg(76%)の標記化合物を無
色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:9.15(1H,d,J=2.2
Hz)、8.23(1H,dd,J=2.1,8.0Hz)、7.51(1H,
d,J=8.1Hz)、7.40〜7.32(3H,m)、7.18(4H,m
)、5.83(1H,s)、4.40(2H,q,J=7.1Hz)、2.40
(3H,s)、1.47(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)
。
2ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(207.6m
g、3.24ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.9mL)を加えて、黄色
溶液を得た。30分後、4.0mLのTHF中のZnCl2(408.0mg、 3.0ミリモル)の溶液をカニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温に
温め、2.0mLのTHF中のエチル6−(2,2−ジメチル−4−トリフルオ ロメタンスルホニルオキシ−(2H)−チオクロメン−6−イルエチニル)−ニ
コチネート(化合物239、178.0mg、0.36ミリモル)およびテトラ
キス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24mg、0.02ミリモ
ル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を1時間50℃に加熱し、室温に冷
却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEtOAcで抽 出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し( MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクトマトグラフィー(10〜15%E tOAc/ヘキサン)およびCH3CNからの再結晶によって標記化合物を単離 して、136.0mg(83%)の淡黄色結晶を得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:9.15(1H,s)、8.23
(1H,dd,J=2.2,8.2Hz)、7.51(1H,d,J=8.1H
z)、7.49〜7.34(3H,m)、7.24〜7.17(4H,m)、5
.83(1H,s)、4.40(2H,q,J=7.1Hz)、2.70(2H
,q,J=7.6Hz)、1.47(6H,s)、1.40(3H,t,J=7
.1Hz)、1.29(3H,t,J=7.1Hz)。
ニル−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル]−エチニル]− ベンゾエート(化合物225、105.0mg、0.247ミリモル)の溶液に
、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水溶液3.0mL)を加え
た。得られる溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。室温に冷却した後、その反
応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わした有
機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、減 圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、標記化合物を 淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.00(2H,d,J=8
.4Hz)、7.57(2H,d,J=8.4Hz)、7.48〜7.29(7
H,m)、7.18(1H,d,J=1.3Hz)、5.96(1H,s)、1
.48(6H,s)。
−メチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル] −エチニル]−ベンゾエート(化合物226、126.0mg、0.287ミリ
モル)の溶液に、NaOH(160.0mg、4.0ミリモル、2M水溶液2.
0mL)を加えた。得られる溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。室温に冷却
した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出し
た。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(N a2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して 、85.0mg(72%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.00(2H,d,J=8
.3Hz)、7.58(2H,d,J=8.3Hz)、7.45〜7.38(2
H,m)、7.28〜7.17(5H,m)、5.92(1H,s)、2.37
(3H,s)、1.47(6H,s)。
4−エチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル ]−エチニル]−ベンゾエート(化合物227、940.0mg、2.08ミリ
モル)の溶液に、NaOH(416.0mg、10.4ミリモル、2M水溶液5
.2mL)を加えた。得られる溶液を室温において一晩攪拌した。その反応混合
物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わした有機相を
、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、減圧下に 溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、786.0mg(8 9%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.01(2H,d,J=8
.3Hz)、7.60(2H,d,J=8.5Hz)、7.42(2H,m)、
7.29(2H,m)、7.22(3H,m)、5.94(1H,s)、2.6
9(2H,q,J=7.7Hz)、1.47(6H,s)、1.25(3H,t
,J=7.7Hz)。
−イソプロピルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6− イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物228、89.0mg、0.19ミ
リモル)の溶液に、NaOH(80.0mg、2.0ミリモル、1M水溶液2.
0mL)を加えた。得られる溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。室温に冷却
した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出し
た。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(N a2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して 、78.0mg(93%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.00(2H,d,J=8
.4Hz)、7.58(2H,d,J=8.4Hz)、7.45〜7.21(7
H,m)、5.93(1H,s)、2.95(1H,hept,J=7.0Hz)、
1.47(6H,s)、1.25(6H,d,J=7.0Hz)。
−t−ブチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イ ル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物229、65.0mg、0.135ミ
リモル)の溶液に、NaOH(80.0mg、2.0ミリモル、1M水溶液2.
0mL)を加えた。得られる溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。室温に冷却
した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出し
た。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(N a2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して 、33.0mg(54%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.01(2H,d,J=8
.4Hz)、7.57(2H,d,J=8.4Hz)、7.45(4H,m)、
7.24(3H,m)、5.93(1H,s)、1.47(6H,s)、1.3
4(9H,s)。
−メチルチオフェン−2−イル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン −6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物230、143.0mg、0
.322ミリモル)の溶液に、NaOH(160.0mg、4.0ミリモル、1
M水溶液4.0mL)を加えた。得られる溶液を室温において一晩攪拌した。そ
の反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わし
た有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4) 、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、110. 0mg(82%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.03(2H,d,J=8
.4Hz)、7.63(2H,d,J=8.3Hz)、7.60(1H,s)、
7.44(2H,s)、6.87(1H,d,J=3.5Hz)、6.79(1
H,m)、6.10(1H,s)、2.49(3H,s)、1.45(6H,s
)。
−エチルチオフェン−2−イル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン −6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物231、23.0mg、0.
05ミリモル)の溶液に、NaOH(40.0mg、1.0ミリモル、1M水溶
液1.0mL)を加えた。得られる溶液を室温において一晩攪拌した。その反応
混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わした有機
相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、減圧 下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、15.5mg( 72%)の標記化合物を橙色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.03(2H,d,J=8
.3Hz)、7.63(2H,d,J=8.3Hz)、7.61(1H,s)、
7.44(2H,s)、6.90(1H,d,J=3.5Hz)、6.83(1
H,d,J=3.5Hz)、6.10(1H,s)、2.86(2H,q,J=
7.6Hz)、1.45(6H,s)、1.30(3H,t,J=7.6Hz)
。
−t−ブチルチオフェン−2−イル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロ メン−6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物232、88.0mg、
0.181ミリモル)の溶液に、NaOH(160.0mg、4.0ミリモル、
1M水溶液4.0mL)を加えた。得られる溶液を室温において一晩攪拌した。
その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わ
した有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4 )、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、68. 0mg(82%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.03(2H,d,J=8
.3Hz)、7.63(2H,d,J=8.3Hz)、7.62(1H,s)、
7.44(2H,d,J=1.2Hz)、6.87(2H,s)、6.11(1
H,s)、1.45(6H,s)、1.39(9H,s)。
−メチルピリジン−3−イル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン− 6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物233、70.0mg、0.1
59ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水
溶液3.0mL)を加えた。得られる溶液を35℃において一晩攪拌した。室温
に冷却した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで
抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥 し(Na2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をアセトンから再結晶
して、60.0mg(92%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.36(1H,d,J=2
.1Hz)、7.91(2H,d,J=8.3Hz)、7.60(2H,d,J
=8.3Hz)、7.56(1H,dd,J=2.1,8.0Hz)、7.45
(2H,m)、7.31(1H,d,J=8.0Hz)、7.06(1H,s)
、6.06(1H,s)、2.51(3H,s)、1.44(6H,s)。
−メチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル] −エチニル]−2−フルオロベンゾエート(化合物236、100.0mg、0
.219ミリモル)の溶液に、NaOH(80.0mg、2.0ミリモル、1M
水溶液2.0mL)を加えた。得られる溶液を40℃に加熱し、一晩攪拌した。
室温に冷却した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOA
cで抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、 乾燥し(Na2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから 再結晶して、78.0mg(83%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:7.94(1H,d,J=7
.8Hz)、7.43〜7.17(9H,m)、5.93(1H,s)、2.3
8(3H,s)、1.47(6H,s)。
−エチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル] −エチニル]−2−フルオロベンゾエート(化合物237、125.0mg、0
.266ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1
M水溶液3.0mL)を加えた。得られる溶液を室温において一晩攪拌した。そ
の反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わし
た有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4) 、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、100. 0mg(86%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:7.94(1H,d,J=7
.8Hz)、7.43〜7.20(9H,m)、5.93(1H,s)、2.6
8(2H,q,J=7.6Hz)、1.47(6H,s)、1.24(3H,t
,J=7.6Hz)。
−メチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル] −エチニル]−ニコチネート(化合物240、66.0mg、0.15ミリモル
)の溶液に、NaOH(80.0mg、2.0ミリモル、1M水溶液2.0mL
)を加えた。得られる溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。室温に冷却した後
、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合
わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO 4 )、減圧下に溶媒を除去して、50.0mg(81%)の標記化合物を黄色固 形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:9.09(1H,d,J=1
.4Hz)、8.30(1H,dd,J=2.0,8.1Hz)、7.65(1
H,d,J=8.1Hz)、7.46(2H,s)、7.24(5H,m)、5
.94(1H,s)、2.37(3H,s)、1.48(6H,s)。
−エチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−チオクロメン−6−イル] −エチニル]−ニコチネート(化合物241、110.0mg、0.24ミリモ
ル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水溶液3.0
mL)を加えた。この溶液を1時間40℃に加熱し、室温に冷却し、得られる溶
液を一晩攪拌した。その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOA
cで抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、 乾燥し(Na2SO4)、減圧下に溶媒を除去して、100mg(96%)の標記
化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:9.08(1H,d,J=2
.0Hz)、8.30(1H,dd,J=2.2,8.2Hz)、7.66(1
H,d,J=8.2Hz)、7.46(2H,s)、7.31〜7.21(5H
,m)、5.95(1H,s)、2.69(2H,q,J=7.6Hz)、1.
48(6H,s)、1.25(3H,t,J=7.6Hz)。
−メチルフェニル)−2,2−ジメチル−7−フルオロ−(2H)−チオクロメ ン−6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物213、108.0mg、
0.236ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、
1M水溶液3.0mL)を加えた。この溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。
室温に冷却した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOA
cで抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、 乾燥し(Na2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから 再結晶して、85mg(80%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.03(2H,d,J=8
.3Hz)、7.61(2H,d,J=8.3Hz)、7.31〜7.18(6
H,m)、5.90(1H,s)、2.37(3H,s)、1.48(6H,s
)。
−メチルフェニル)−2,2−ジメチル−7−メトキシ−(2H)−チオクロメ ン−6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物215、64.0mg、0
.113ミリモル)の溶液に、NaOH(80.0mg、2.0ミリモル、1M
水溶液2.0mL)を加えた。この溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した。室温
に冷却した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで
抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥 し(Na2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNから再結 晶して、50mg(83%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.00(2H,d,J=8
.2Hz)、7.56(2H,d,J=8.2Hz)、7.28〜7.14(5
H,m)、7.06(1H,s)、5.76(1H,s)、3.96(3H,s
)、2.36(3H,s)、1.47(6H,s)。
−メチル−2−チエニル)−2,2−ジメチル−7−フルオロ−(2H)−チオ クロメン−6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物214、58.0m
g、0.125ミリモル)の溶液に、NaOH(80.0mg、2.0ミリモル
、1M水溶液2.0mL)を加えた。この溶液を45℃に加熱し、一晩攪拌した
。室温に冷却した後、その反応混合物を10%HCl水溶液で酸性化し、EtO
Acで抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し 、乾燥し(Na2SO4)、減圧下に溶媒を除去した。残留固形物をCH3CNか ら再結晶して、50mg(90%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.05(2H,d,J=8
.3Hz)、7.56(2H,d,J=8.3Hz)、7.61(1H,d,J
=7.4Hz)、7.31(1H,d,J=9.6Hz)、6.89(1H,d
,J=3.5Hz)、6.79(1H,d,J=3.5Hz)、6.06(1H
,s)、2.49(3H,s)、1.46(6H,s)。
モル)の溶液に、トリエチルアミン(14.0g、0.139モル)、次に塩化
アセチル(9.53g、0.121モル)を室温において少量ずつ加えた。21
時間攪拌した後、その混合物を200mLのH2Oに入れた。有機相を、5%N aOHおよびH2Oで洗浄し、MgSO4で乾燥した。減圧下に溶媒を除去し、残
渣を蒸留して、20.6g(83%)の生成物を無色油状物として得た(沸点9
3〜95℃/2mm)。
、46.50ミリモル)の混合物を、30分間150℃に加熱した。室温に冷却
した後、橙色固形物を、100mLのH2Oおよび100mLの10%HCl水 溶液で慎重に処理した。得られる混合物をEtOAcで抽出し、合わした有機相
を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、Na2SO4で乾燥した。その溶 液を減圧下に濃縮し、得られた黄褐色固形物をi−PrOHから再結晶して、7
.18g(72%)の標記化合物を灰色がかった白色の結晶質固形物として得た
。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:12.17(1H,s)、7.8
4(1H,d,J=2.6Hz)、7.55(1H,dd,J=2.5,9.0
Hz)、6.90(1H,d,J=8.9Hz)、2.64(3H,s)。
液に、トリフルオロ酢酸(344.6mg、3.02ミリモル)をベンゼン4.
0mL中の溶液として加えた。アセトン(8.78g、151.3ミリモル)、
次に2−ヒドロキシ−5−ブロモアセトフェノン(化合物259、6.50g、
30.23ミリモル)を加えた。得られる溶液を、Dean-Starkトラップを取り付
けたフラスコにおいて加熱還流した。24時間後、追加の2.5当量のアセトン
および0.1当量のトリフルオロ酢酸を加えた。合計43時間後、反応混合物を
室温に冷却し、EtOAcで稀釈した。その溶液を1M HCl水溶液、H2O 、および飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮し た。残留油状物を蒸留(バルブ−トゥ−バルブ)して、4.80g(62%)の
標記化合物を明澄黄色油状物として得た(沸点105〜115℃/5mm)。こ
こでの反応条件は、BuckleらによってJ.Med.Chem.1990 3028〜3034に記載されて
いる標記化合物の合成法を適切に変更したものである。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.97(1H,d,J=2.6
Hz)、7.54(1H,dd,J=2.6,8.7Hz)、6.84(1H,
d,J=8.8Hz)、2.72(2H,s)、1.46(6H,s)。
(化合物260、4.30g、16.85ミリモル)および沃化銅(I)(32
1mg、0.17ミリモル)の溶液を、30分間にわたってアルゴンでパージし
た。この溶液に、トリメチルシリルアセチレン(4.66g、50.56ミリモ
ル)およびビス(トリフェニルホスフィン)−パラジウム(II)クロリド(1.
18g、0.17ミリモル)を加えた。その混合物を26時間70℃に加熱し、
室温に冷却し、Et2O(100mL)で稀釈した。得られる混合物を、Et2O
洗液を使用してCeliteのパッドで濾過し、濾液をH2O、NH4OH/飽和NH4 Cl水溶液(9:1)、H2O、1M HCl水溶液、H2O、および飽和NaC
l水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、減圧下に濃縮した。残留油状物をカ
ラムクロマトグラフィー(5%EtOAc−ヘキサン)にかけて、4.09g(
89%)の生成物を黄色蝋状固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(1H,d,J=2.1
Hz)、7.53(1H,dd,J=2.2,8.6Hz)、6.86(1H,
d,J=8.6Hz)、2.72(2H,s)、1.45(6H,s)、0.2
4(9H,s)。
の溶液に、K2CO3(410.9mg、2.97ミリモル)を加えた。得られる
混合物を室温において24時間攪拌し、EtOAc(100mL)で稀釈し、H 2 Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、Na2SO4で乾燥した。この溶液を減 圧下に濃縮して、2.71g(91%)の生成物を黄褐色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.01(1H,d,J=2.2
Hz)、7.56(1H,dd,J=2.2,8.6Hz)、6.90(1H,
d,J=8.6Hz)、3.02(1H,s)、2.74(2H,s)、1.4
7(6H,s)。
ンゾエート(3.6g、13.0ミリモル)の溶液を、15分間にわたってアル
ゴンでパージした。この溶液に、ビス(トリフェニルホスフィン)−パラジウム
(II)クロリド(1.82g、2.6ミリモル)および沃化銅(I)(496m
g、2.6ミリモル)を加えた。さらに10分間にわたってアルゴンでパージし
た後、その溶液を室温において一晩攪拌した。その反応混合物をEt2O洗液を 使用してCeliteのバッドで濾過した。濾液を減圧下に濃縮し、次に、残留固形物
をカラムクロマトグラフィー(2〜5%EtOAc−ヘキサン)にかけて、2.
28g(50%)の標記化合物を橙色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.06(1H,d,J=2.2
Hz)、8.02(2H,d,J=8.5Hz)、2.61(1H,dd,J=
2.2,8.6Hz)、7.55(2H,d,J=8.5Hz)、6.93(1
H,d,J=8.6Hz)、4.39(2H,q,J=7.1Hz)、2.75
(3H,s)、1.48(6H,s)、1.41(t,J=7.1Hz)。
56g、8.5ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、15.0mL中のエチ
ル4−((2,2−ジメチル−4−オキソ−クロマン−6−イル)エチニル)− ベンゾエート(化合物263、2.26g、6.49ミリモル)の溶液をゆっく
り加えた。30分後、10mLのTHF中の2−[N,N−ビス(トリフルオロ メタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(3.10g、7.79ミリモル)
の溶液をゆっくり加えた。5分後、その溶液を室温に温め、一晩攪拌した。飽和
NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮め、EtOAcで抽出した。合わした有機相 を、5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に
濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5%EtOAc−ヘキサン)によって、
2.0g(64%)の標記化合物を無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.03(2H,d,J=8.3
Hz)、7.57(2H,d,J=8.3Hz)、7.45〜7.21(2H,
m)、6.85(1H,d,J=8.4Hz)、5.69(1H,s)、4.4
0(2H,q,J=7.1Hz)、1.55(6H,s)、1.4(3H,t,
J=7.1Hz)。
)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(203.7mg、3.1
8ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.9mL)を加えて黄色溶液を得た。
30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(440.0mg、3.18ミリ モル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温に温め、2
.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフルオロメタン スルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イルエチニル)−ベンゾエート(
化合物264、150.0mg、0.31ミリモル)およびテトラキス(トリフ
ェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.02ミリモル)の溶
液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温に冷却し、飽
和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEtOAcで抽出し、合 わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(MgSO4 )、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(2.5%EtOAc/ヘキ
サン)によって、110.0mg(87%)の標記化合物を無色固形物として単
離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(2H,d,J=8.3
Hz)、7.51(2H,d,J=8.3Hz)、7.47〜7.35(6H,
m)、7.21(1H,d,J=2.0Hz)、6.88(1H,d,J=8.
4Hz)、5.66(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1Hz)、1
.52(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)。
8ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(177.5m
g、2.77ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.6mL)を加えて黄色溶
液を得た。30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(377.0mg、2 .77ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温
に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフル オロメタンスルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イルエチニル)−ベン
ゾエート(化合物264、150.0mg、0.31ミリモル)およびテトラキ
ス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.02ミリ
モル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温に
冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEtOAcで 抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し (MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(2.5%Et OAc/ヘキサン)によって、120.0mg(92%)の標記化合物を無色固
形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.98(2H,d,J=8.5
Hz)、7.50(2H,d,J=8.5Hz)、7.34(1H,dd,J=
2.1,8.3Hz)、7.25〜7.21(5H,m)、6.85(1H,d
,J=8.3Hz)、5.62(1H,s)、4.36(2H,q,J=7.1
Hz)、2.41(3H,s)、1.49(6H,s)、1.39(3H,t,
J=7.1Hz)。
1ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(198.6m
g、3.10ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.9mL)を加えて黄色溶
液を得た。30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(408.0mg、3 .10ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室温
に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−(2,2−ジメチル−4−トリフル オロメタンスルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イルエチニル)−ベン
ゾエート(化合物264、150.0mg、0.31ミリモル)およびテトラキ
ス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.02ミリ
モル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し、室温に
冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEtOAcで 抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し (MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(2.5%Et OAc/ヘキサン)によって、123.0mg(91%)の標記化合物を淡黄色
固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.00(2H,d,J=8.4
Hz)、7.52(2H,d,J=8.4Hz)、7.36(1H,dd,J=
2.0,8.3Hz)、7.31〜7.25(5H,m)、6.88(1H,d
,J=8.3Hz)、5.65(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1
Hz)、2.73(2H,q,J=7.6Hz)、1.52(6H,s)、1.
41(3H,t,J=7.1Hz)、1.31(2H,t,J=7.6Hz)。
、1.25ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(16
0.8mg、2.51ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.5mL)を加え
て黄色溶液を得た。30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(345.0 mg、2.53ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶
液を室温に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−((2,2−ジメチル−4 −トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イル)エチ
ニル)−ベンゾエート(化合物264、150.0mg、0.31ミリモル)お
よびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、
0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加
熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液を EtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗 浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー( 2.5%EtOAc/ヘキサン)によって、100.0mg(72%)の標記化
合物を無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(2H,d,J=8.3
Hz)、7.52(2H,d,J=8.3Hz)、7.36(1H,dd,J=
2.1,8.3Hz)、7.30〜7.26(5H,m)、6.88(1H,d
,J=8.3Hz)、5.64(1H,s)、4.38(2H,q,J=7.1
Hz)、2.98(1H,hept,J=7.0Hz)、1.51(6H,s)
、1.40(3H,t,J=7.1Hz)、1.31(6H,d,J=7.0H
z)。
.61ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(206.
3mg、3.22ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液1.7mL)を加えて黄
色溶液を得た。30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(380.0mg 、3.22ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を
室温に温め、2.0mLのTHF中のエチル4−((2,2−ジメチル−4−ト リフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イル)エチニル
)−ベンゾエート(化合物264、150.0mg、0.31ミリモル)および
テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(24.0mg、0.
02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃に加熱し
、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶液をEt OAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し 、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(2. 5%EtOAc/ヘキサン)によって、85.0mg(59%)の標記化合物を
無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.99(2H,d,J=8.3
Hz)、7.53(2H,d,J=8.3Hz)、7.45(1H,d,J=8
.4Hz)、7.37(1H,dd,J=2.0,8.3Hz)、7.32〜7
.28(3H,m)、6.89(1H,d,J=8.3Hz)、5.66(1H
,s)、4.39(2H,q,J=7.1Hz)、1.52(6H,s)、1.
40(3H,t,J=7.1Hz)、1.39(9H,s)。
ン(化合物262、314.0mg、1.57ミリモル)およびエチル2−フル
オロ−4−ヨードベンゾエート(440.0mg、1.50ミリモル)の溶液を 、15分間にわたってアルゴンでパージした。この溶液に、ビス(トリフェニル
ホスフィン)−パラジウム(II)クロリド(275.0mg、0.39ミリモル
)、および沃化銅(I)(75.0mg、0.39ミリモル)を加えた。さらに
10分間にわたってアルゴンでパージした後、その溶液を室温において一晩攪拌
した。その反応混合物を、Et2O洗液を使用してCeliteのパッドで濾過した。 濾液を減圧下に濃縮し、次に、残留固形物をカラムクロマトグラフィー(3〜5
%EtOAc−ヘキサン)にかけて、400.0mg(69%)の標記化合物を
橙色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.05(1H,d,J=2.1
Hz)、7.90(1H,d,J=7.8Hz)、7.60(1H,dd,J=
2.2,8.5Hz)、7.29(1H,dd,J=1.5,8.2Hz)、7
.25(1H,d,J=11.4Hz)、6.93(1H,d,J=8.5Hz
)、4.39(2H,q,J=7.1Hz)、2.75(2H,s)、1.48
(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)。
.0mg、1.30ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、2.0mL中のエ
チル2−フルオロ−4−((2,2−ジメチル−4−オキソ−クロマン−6−イ ル)エチニル)−ベンゾエート(化合物270、400.0mg、1.09ミリ
モル)の溶液をゆっくり添加した。30分後、1.0mLのTHF中の2−[N
,N−ビス(トリフルオロメタンスルホニル)アミノ]−5−ピリジン(510 .0mg、1.30ミリモル)の溶液を加えた。5分後、その溶液を室温に温め
、一晩攪拌した。飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮め、EtOAcで抽出 した。合わした有機相を、5%NaOH水溶液およびH2Oで洗浄し、乾燥し( MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィー(5%EtOAc /ヘキサン)によって、315.0mg(58%)の標記化合物を無色固形物と
して単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.92(1H,d,J=7.8
Hz)、7.44〜7.26(4H,m)、6.85(1H,d,J=8.7H
z)、5.70(1H,s)、4.31(2H,q,J=7.1Hz)、1.5
5(6H,s)、1.41(3H,t,J=7.1Hz)。
0ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(102.5m
g、1.60ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液0.94mL)を加えて黄色
溶液を得た。30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(174.0mg、 1.28ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室
温に温め、2.0mLのTHF中のエチル2−フルオロ−4−(2,2−ジメチ ル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イル
エチニル)−ベンゾエート(化合物271、150.0mg、0.31ミリモル
)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(20.0m
g、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間で50
℃に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この 溶液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶 液で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフ ィー(5%EtOAc/ヘキサン)によって、86.0mg(62%)の標記化
合物を無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.88(1H,d,J=7.8
Hz)、7.35(1H,d,J=7.8Hz)、7.35(1H,dd,J=
2.0,8.4Hz)、7.28〜7.19(7H,m)、6.88(1H,d
,J=8.3Hz)、5.64(1H,s)、4.40(2H,q,J=7.1
Hz)、2.43(3H,s)、1.51(6H,s)、1.41(3H,t,
J=7.1Hz)。
0ミリモル)の溶液を、−78℃に冷却し、t−ブチルリチウム(102.5m
g、1.60ミリモル、ペンタン中の1.7M溶液0.94mL)を加えて黄色
溶液を得た。30分後、5.0mLのTHF中のZnCl2(218.0mg、 1.60ミリモル)の溶液を、カニューレでゆっくり加えた。得られる溶液を室
温に温め、2.0mLのTHF中のエチル2−フルオロ−4−(2,2−ジメチ ル−4−トリフルオロメタンスルホニルオキシ−(2H)−クロメン−6−イル
エチニル)−ベンゾエート(化合物271、160.0mg、0.32ミリモル
)およびテトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)(20.0m
g、0.02ミリモル)の溶液にカニューレで加えた。この溶液を2時間50℃
に加熱し、室温に冷却し、飽和NH4Cl水溶液を加えて反応を鎮めた。この溶 液をEtOAcで抽出し、合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液 で洗浄し、乾燥し(MgSO4)、減圧下に濃縮した。カラムクロマトグラフィ ー(5%EtOAc/ヘキサン)によって、115.0mg(79%)の標記化
合物を、無色固形物として単離した。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:7.88(1H,d,J=7.8
Hz)、7.35(1H,dd,J=2.0,8.3Hz)、7.28〜7.2
0(7H,m)、6.88(1H,d,J=8.3Hz)、5.65(1H,s
)、4.39(2H,q,J=7.1Hz)、2.73(2H,q,J=7.6
Hz)、1.52(6H,s)、1.40(3H,t,J=7.1Hz)、1.
31(3H,t,J=7.6Hz)。
ニル−2,2−ジメチル−(2H)−クロメン−6−イル]−エチニル]−ベン ゾエート(化合物265、70.0mg、0.171ミリモル)の溶液に、Na
OH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水溶液3.0mL)を加えた。得
られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し、一晩攪拌した。その反応混合物を
10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わした有機相を、H 2 Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4)、溶媒を減圧下 に除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、48.0mg(74%) の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.00(2H,d,J=8
.2Hz)、7.57(2H,d,J=8.2Hz)、7.51〜7.37(6
H,d)、7.14(1H,d,J=2.0Hz)、6.91(1H,d,J=
8.3Hz)、5.80(1H,s)、1.50(6H,s)。
−メチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−クロメン−6−イル]−エ チニル]−ベンゾエート(化合物266、90.0mg、0.213ミリモル)
の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水溶液3.0mL
)を加えた。得られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し、一晩攪拌した。そ
の反応混合物を、10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わ
した有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4 )、溶媒を減圧下に除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、70. 0mg(83%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.01(2H,d,J=8
.3Hz)、7.57(2H,d,J=8.3Hz)、7.40(1H,dd,
J=2.1,8.3Hz)、7.30〜7.20(4H,m)、7.16(1H
,d,J=2.0Hz)、6.90(1H,d,J=8.3Hz)、5.67(
1H,s)、2.38(3H,s)、1.49(6H,s)。
−エチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−クロメン−6−イル]−エ チニル]−ベンゾエート(化合物267、82.0mg、0.188ミリモル)
の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水溶液3.0mL
)を加えた。得られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し、一晩攪拌した。そ
の反応混合物を、10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで抽出した。合わ
した有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥し(Na2SO4 )、溶媒を減圧下に除去した。残留固形物をCH3CNから再結晶して、65. 0mg(85%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.01(2H,d,J=8
.4Hz)、7.57(2H,d,J=8.4Hz)、7.40(1H,dd,
J=2.0,8.3Hz)、7.35〜7.25(4H,m)、7.17(1H
,d,J=2.0Hz)、6.90(1H,d,J=8.3Hz)、5.77(
1H,s)、2.69(2H,q,J=7.6Hz)、1.49(6H,s)、
1.24(2H,t,J=7.6Hz)。
−(1−メチルエチル)フェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−クロメン− 6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物268、95.0mg、0.2
10ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M水
溶液3.0mL)を加えた。得られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し、一
晩攪拌した。その反応混合物を、10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAcで
抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾燥 し(Na2SO4)、溶媒を減圧下に除去した。残留固形物をCH3CNから再結 晶して、75.0mg(84%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,CDCl3)δ:8.05(2H,d,J=8.4
Hz)、7.55(2H,d,J=8.4Hz)、7.36(1H,dd,J=
2.0,8.3Hz)、7.30〜7.26(5H,m)、6.88(1H,d
,J=8.3Hz)、5.64(1H,s)、2.98(1H,hept,J=
6.9Hz)、1.51(6H,s)、1.31(6H,d,J=6.9Hz)
。
−(1,1−ジメチルエチル)フェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−クロメ
ン−6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物269、72.0mg、0
.155ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1
M水溶液3.0mL)を加えた。得られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し
、一晩攪拌した。その反応混合物を、10%HCl水溶液で酸性化し、EtOA
cで抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、 乾燥し(Na2SO4)、溶媒を減圧下に除去した。残留固形物をCH3CNから 再結晶して、50.0mg(74%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:8.00(2H,d,J=8
.3Hz)、7.57(2H,d,J=8.3Hz)、7.51(2H,d,J
=8.3Hz)、7.41(1H,dd,J=2.0,8.3Hz)、7.31
(2H,d,J=8.3Hz)、7.19(1H,d,J=2.0Hz)、6.
91(1H,d,J=8.3Hz)、5.78(1H,s)、1.49(6H,
s)、1.35(9H,s)。
−[[4−(4−(メチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−クロメン −6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物272、60.0mg、0.
136ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M
水溶液3.0mL)を加えた。得られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し、
一晩攪拌した。その反応混合物を、10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAc
で抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾 燥し(Na2SO4)、溶媒を減圧下に除去した。残留固形物をCH3CNから再 結晶して、53.0mg(94%)の標記化合物を無色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:7.93(1H,d,J=7
.8Hz)、7.43〜7.16(8H,m)、6.91(1H,d,J=8.
3Hz)、5.77(1H,s)、2.38(3H,s)、1.49(6H,s
)。
−[[4−(4−(エチルフェニル)−2,2−ジメチル−(2H)−クロメン −6−イル]−エチニル]−ベンゾエート(化合物273、82.0mg、0.
180ミリモル)の溶液に、NaOH(120.0mg、3.0ミリモル、1M
水溶液3.0mL)を加えた。得られる溶液を35℃に加熱し、室温に冷却し、
一晩攪拌した。その反応混合物を、10%HCl水溶液で酸性化し、EtOAc
で抽出した。合わした有機相を、H2Oおよび飽和NaCl水溶液で洗浄し、乾 燥し(Na2SO4)、溶媒を減圧下に除去した。残留固形物をCH3CNから再 結晶して、70.0mg(91%)の標記化合物を淡黄色固形物として得た。1 H NMR(300MHz,d6−アセトン)δ:7.93(1H,d,J=7
.8Hz)、7.41(1H,dd,J=2.1,8.3Hz)、7.37〜7
.25(6H,m)、7.18(1H,d,J=2.0Hz)、6.91(1H
,d,J=8.3Hz)、5.77(1H,s)、2.69(2H,q,J=7
.6Hz)、1.49(6H,s)、1.24(3H,t,J=7.6Hz)。
サブセットが、他のレチノイドおよびステロイド受容体(レセプター)スーパー
ファミリーホルモンの生物活性の増強に使用できることを発見した。これらの他
のレチノイドおよびステロイド受容体スーパーファミリーホルモンは、内因性ホ
ルモンでもよいし、医薬物質でもよい。従って、たとえばレチノイドネガティブ
ホルモンと組み合わせて使用すると、医薬レチノイド作動薬(アゴニスト)のある
種の活性が、特定の生物学的な効果を誘導するのをより活発にすることができる
。この組み合わせ法を薬物投与に採用することにより、効果を高めながら医薬レ
チノイドの用量を減らすことが可能となるので、医薬レチノイドの望ましくない
副作用を最少限に抑えることができるという利点が生まれる。
かつ予想外の薬理活性を示すことを発見した。AGN 193109は核レセプターを活性
化したりレチノイド応答遺伝子の転写を刺激することなく、これらレセプターの
RARサブクラスに高い親和性を示す。しかしそれよりも、AGN 193109はレチノ
イド作動薬によるRARの活性化を抑制し、レチノイド拮抗薬として働く。
、レチノイドネガティブホルモンがある種の病状を抑えることを発見した。もっ
と具体的に言えば、ここに開示するレチノイドネガティブホルモンは、リガンド
が結合していないRARに応答する遺伝子の高レベルな基礎転写を下方調節する
ことができる。たとえば、制御されない細胞増殖が、リガンドが結合していない
RARに応答する遺伝子の活性に起因しているときには、RARを不活性化する
レチノイドネガティブホルモンを投与することによって該遺伝子の活性を抑える
ことができる。従って、リガンドが結合していないRARの活性に依存する細胞
増殖をネガティブホルモンによって抑制することができる。従来の拮抗薬ではリ
ガンドが結合していないRARを抑制することはできない。
およびステロイド受容体のスーパーファミリーホルモン作動薬の活性を増強する
こともあることを、我々が発見したことは重要である。本発明においては、ネガ
ティブホルモンの存在下に低濃度の作動薬が、作動薬単独で得られる応答と実質
的に同じ強さの応答を誘導する場合、ホルモン作動薬はAGN 193109のようなネガ
ティブホルモンによって増強されると言う。たとえば、定量的な応答はインビト
ロでのリポーター遺伝子アッセイで測定することができる。すなわち、治療用レ
チノイドを単独で使用したときの治療用レチノイドの用量または濃度が高い場合
と実質的に同じ効果が、AGN 193109と組み合わせることによって、より少ない用
量または低い濃度で得られるなら、特定の用量または濃度で使用した時に所望の
応答を誘導する治療用レチノイドはAGN 193109によって増強される。AGN 193109
と一緒に投与することにより増強される作動薬にはRAR作動薬、ビタミンD受
容体作動薬、糖質コルチコイド受容体作動薬および甲状腺ホルモン受容体作動薬
が含まれる。さらに具体的に述べると、同時投与で増強されうる特定の作動薬と
して:ATRA、13-シス-レチノイン酸、合成RAR作動薬のAGN 191183、1,25
-ジヒドロキシビタミンD3、デキサメタゾンおよび甲状腺ホルモン(3,3',5-トリ
ヨードチロニン)が含まれる。さらに、AGN 193109との同時投与によって増強さ れうる他のホルモンを同定するために使用できる方法もここに開示する。
、核レセプターのファミリーに属する様々な構成員の活性を増強しうるネガティ
ブホルモンとして挙動する。我々は、AGN 193109のネガティブホルモン活性と他
の核レセプターリガンドの活性を増強する能力の両方を説明する可能な機構につ
いても論じる。この機構には、レチノイド依存的なシグナル経路に関与している
ことが分かっている要素が含まれ、さらに新しいネガティブな調節成分も含まれ
ている。
が、様々なレチノイド応答遺伝子の発現を調節する転写因子であることを理解す
るだろう。レチノイド依存的に転写調節される遺伝子の近くに、RARに対する
シス-調節性DNA結合部位が同定されている。このようなDNA部位に結合す るRARはよく分かっており、レチノイン酸応答要素(RARE)として知られて
いる。重要なことは、RAREが1つのRARと1つのRXRからなるヘテロ二
量体と結合することである。ヘテロ二量体のRXR成分は、RAR/RXRヘテ
ロ二量体とRAREの間の親和性の高い相互作用を促進する働きをする[Spornら
編、「レチノイド:生物学、化学および医薬」、第2版、Raven Press,Ltd., Ne
w Yorkに収載されている、Mangelsdorfら、The Retinoid Receptors;該開示を 引用により本発明の一部とする]。
れわれの知見は、推定上のネガティブ同時活性化タンパク質(NCP)とRARと
の相互作用を含む機構と一致している。提案した機構に従えば、この相互作用が
AGN 193109によって安定化される。
ターとの相互作用にNCPが細胞内で利用を、AGN 193109が調節しうることを示
唆している。このことから、NCPと結合する能力をRARと共有する核レセプ
ターが関係する転写調節経路を、AGN 193109が増強しうるということになる。こ
の点で、AGN 193109は核レセプターの様々な経路を調節する能力、すなわち、従
来のレチノイド拮抗薬には予想できないような活性を発揮する。従って、AGN 19
3109は、内因性のホルモンおよび処方された治療薬の両者を含む、核レセプター
リガンドの活性を高める薬物として有用である。この具体的な態様は、あらゆる
核レセプターネガティブホルモンがNCPと競争的に結合する他の核レセプター
の活性を高めるであろうという、より一般的な原理を示すものである。
発明の実施または試験に使用することは可能であるが、ここでは、より好ましい
材料と方法について述べることにする。本明細書中に記述されている様々な核酸
の取扱いおよび操作を行うために使用できる方法についての一般的な参照は、Mo
「分子クローニング:実験室マニュアル」[Samrockら編、Cold Spring Harbor
Lab Publ. 1989]および「分子生物学における最新のプロトコール」[Ausubelら 編、Greene Publishing Associates and Wiley-Interscience]の中に紹介されて
いる。該開示を引用により本発明の一部とする。本発明を創造するに至った実験
と結果について、以下に記述する。
したが、レチノイドに依存的な遺伝子発現を活性化しなかったことを明らかにす
るために適用した方法について記す。 実施例6 AGN193109は高親和性を伴ってRARと結合するが、レチ
ノイド依存性遺伝子発現をトランス活性化(transactivate)しない Allegrettoら[J. Biol. Chem. 268:26625(1993)]が記載している方法に本質的
に従って、バクロウイルス発現系を用いて、ヒトRAR−α、RAR−β、およ
びRAR−γレセプターを組換えタンパク質として別々に発現させた。Heymenら
[Cell 68:397(1992)]が記載している[3H]−ATRA置換アッセイ(displacemen
t assay)を用いて、AGN193109結合親和性を測定するために、この組換
えレセプタータンパク質を、別々に使用した。Chengら[Biochemical Pharmacolo
gy 22:3099(1973)]が記載している方法に従って、解離定数(Kd)を求めた。
一時的に同時トランスフェクションしたCV−1細胞中で、RARをトランス活
性化する能力に関しても、AGN193109を試験した。レセプター発現ベク
ターpRShRAR−α[Giguereら、Nature 330:624(1987)]、pRShRAR −β[Benbrookら、Nature 333:669(1988)]およびpRShRAR−γ[Isikawaら
、Mol Endocrinol. 4:837(1990)]を、△MTV−TREp−Lucリポータープ ラスミドを用いて、別々に同時トランスフェクションした。このルシフェラーゼ
リポータープラスミドの使用は、Heymanら[Cell 68:397(1992)]が記載している 。クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ(CAT)リポーター遺伝
子が、ホタル-ルシフェラーゼをコードするポリヌクレオチド配列によって置換 されたこと以外は、△MTV−TREp−Lucプラスミドは、Umesonoら[Natur
e 336:262(1988)]が記載している△MTV−TREp−CATリポーター構築物 と本質的に同じである。Molecular Cloning: A Laboratory Manual[Sambrookら 編、Cold Spring Harbor Lab Publ. 1989]に記載されている燐酸カルシウム共沈
法を用いて、グリーンモンキーCV−1の細胞のトランスフェクションを実施し
た。CV−1細胞を4x104/穴の密度で、12穴の多穴プレート中で培養し、
標準実験操作に従って、0.7μgのリポータープラスミドおよび0.1μgのレ
セプタープラスミドを含有する燐酸カルシウム沈殿物を用いて、一時的にトラン
スフェクションした。18時間後に細胞を洗浄して沈殿物を除去し、10%の活
性炭抽出ウシ胎児血清(Gemini Bio-Products)を含有するDulbecco修飾イーグ ル培地(DMEM)(Gibco)を再度添加した。ビヒクルのみ(エタノール)または AGN193109(10-9〜10-6M)を用いて、18時間、細胞を処置した
。細胞溶解物を、0.1M KPO4(pH7.8)、1.0% TRITON X-100、1.0m
M DTT、2mM EDTA中に調製した。ホタルルシフェリン(Analytical Lum
inescence Laboratory)およびEG&G Berthold 96穴プレートルミノメーターを 用いて、Wetらによって、Mol.Cell. Biol.7:725(1987)に記載のように、ルシフ ェラーゼ活性を測定した。報告したルシフェラーゼ値は、三回測定の平均±SEM である。
RAR−β、およびRAR−γのそれぞれに結合したが、レチノイド依存性遺伝
子発現を活性化しなかったことを示した。より詳しくは、AGN193109は
、2〜3nMの範囲のKd値で3つのレセプターのそれぞれに結合した。この強い
結合にもかかわらず、ATRAによって刺激された誘発と比較した場合に、AG
N193109は遺伝子発現を活性化しなかった。従って、AGN193109
の半最大有効濃度(EC50)は、測定不可能であった。表には示されていないが
、AGN193109がRXRに関して測定可能な親和性を持たないことも、我
々は見い出した。
性阻害 Sambrookらの燐酸カルシウム共沈法[Molecular Cloning: A Laboratory Manu
al,Cold Spring Harbor Lab Publ.1989]によって同時トランスフェクションし たCV−1細胞において、ATRA媒介RAR活性化に拮抗するAGN1931
09の能力を調べた。真核発現ベクターpRShRAR−α[Giguereら、Nature
330:624(1987)]、pRShRAR−β[Benbrookら、Nature 333:669(1988)]、 およびpRShRAR−γ[Ishikawaら、Mol. Endocrinol.4:837(1990)]を、Hol
lenbergら[Cell 55:899(1988)]によって記載されている△−MTV−Lucリポ
ータープラスミドを同時トランスフェクションした。注意すべきことは、リポー
タープラスミドが、TRE−回文性応答要素(TRE-palindromic response eleme
nt)の2つのコピーを含んでいたことである。燐酸カルシウムトランスフェクシ
ョンを、実施例6と全く同様に実施した。ビヒクル(エタノール)のみ、ATRA
(10-9〜10-6M)、AGN193109(10-9〜10-6M)、またはAG
N193109(10-9〜10-6M)と組み合わせた10-8M ATRAを、1 8時間、細胞に投与した。細胞溶解物およびルシフェラーゼ活性の測定も、実施
例6と同様に行った。
る図2A〜2Fに示す。特に、図2A、2Cおよび2Eに示される結果は、AT
RAを用いるトランスフェクション細胞の刺激が、ルシフェラーゼ活性の用量応
答増加を導くことを示した。このことは、ATRAが、この実験系において3つ
のRARのそれぞれを活性化し、アンタゴニストの活性を検出する比較基準を提
供することを確認するものであった。図2B、2D、および2Fに示されるグラ
フによる結果は、10nM ATRAおよび増加濃度のAGN193109による トランスフェクション細胞の同時処理が、ルシフェラーゼ活性の阻害を導くこと
を示した。特に、AGN193109およびATRAの等しい用量が、3つの全
てのRARサブタイプに対して、ATRA単独と比較して、50%を越える阻害
を与えた。種々の濃度のAGN193109の存在下のATRA用量応答の比較
は、ATRAがAGN193109によって競合的に阻害されることを示した。
注目すべきことに、図2に示される全グラフの水平軸が、レチノイド濃度の対数
を表す。これらの結果は、AGN193109が強力なRARアンタゴニストで
あることを証明するものであった。
ムを解明するための実験を行った。この分野の精通者は、核レセプター活性化が
、リガンド結合によって誘発されるリセプターのコンホメーション変化に関係し
ていると考えられていることを認めるであろう。事実、プロテアーゼ保護アッセ
イの結果は、核ホルモンアゴニストおよびアンタゴニストがレセプタータンパク
質に異なるコンホメーションを取らせることを確認した[Keidelら、Mol. Cell.
Biol. 14:287(1994);Allanら、J. Biol. Chem. 267:19513(1992)]。AGN19
3109およびATRAが、RAR−αに異なるコンホメーションを取らせるか
どうかを判断するために、我々はそのようなアッセイを用いた。AGN1935
83、RAR−α選択性アンタゴニストが、プロテアーゼ感受性のアンタゴニス
ト特異パターンを与えることが既知の正の対照標準として含まれた。
ーションの変化を検出するために用いられた1つの方法を記載している。下記に
示すように、この方法の結果は意外にも、AGN193109は、ATRA、R
ARアゴニストによって誘発されるものと実質的に同じであるが、モデルRAR
アンタゴニストによって誘発されるものとは異なるトリプシン感受性パターンを
導くことを示した。
reら、Nature 330:624(1987)]を含有するプラスミドを、TNT結合網状赤血球 溶解物インビトロ転写−翻訳系(Promega)と共に用いて、[35S]−メチオニン標 識RAR−αを調製した。標識プロテインRAR−αの制限タンパク質消化を、
Keidelら[Mol.Cell.Biol.14:287(1994)]の記載の方法に従って行った。[35S]−
メチオニン標識RAR−αを含有する網状赤血球溶解物の一部を、ATRA、A
GN193583、またはAGN193109のいずれかを用いて、氷上で45
分間、合計容量9μlでインキュベートした。全試験のレチノイド最終濃度は、 ATRAおよびAGN193109に対しては100nMであり、AGN1935
83に対しては1000nMであった。レチノイドの最終濃度間の差異は、ATR
AおよびAGN193109(それぞれ2および10nMのRAR−αのKdを有
する)と、AGN193583(>100nMのRAR−αのKdを有する)との
相対親和力における約10倍の差異によるものであった。リガンド結合の後、適
切な濃度のトリプシン1μlを混合物に加えて、25、50、または100μg/m
lの最終濃度を得た。サンプルを室温で10分間インキュベートし、SDS−サ ンプル緩衝剤の添加によってトリプシン消化を停止した。サンプルを標準法に従
って、ポリアクリルアミドゲル電気泳動およびオートラジオグラフにかけた。
得られる結果とは異なるトリプシン感受性の明確なパターンを導いた。オートラ
ジオグラフの結果は、25、50、および100μg/mlのトリプシン濃度が、放
射能標識RAR−αを、室温において、添加レチノイドの不存在下に、10分間
で完全に消化したことを示した。ATRAの予備結合は、2つの主要なプロテア
ーゼ耐性種の出現を導いた。RAR−α選択性アンタゴニストAGN19358
3の予備結合は、ATRA予備結合から生じるよりも低い分子量のプロテアーゼ
耐性種を出現させた。この結果は、レチノイドアゴニストおよびアンタゴニスト
が、変化したトリプシン感受性によって検出可能なコンホメーション変化を導く
ことを示した。驚くべきことに、AGN193109の予備結合は、ATRAの
予備結合によって生じるパターンとは区別できないプロテアーゼ保護パターンを
生じた。
ションを変化させたことを確認するものであった。興味あることに、このコンフ
ォメーション変化の性質は、アンタゴニスト(AGN193583)結合によっ
て生じる変化よりも、アゴニスト(ATRA)の結合から生じるものに、より類
似していた。明らかに、AGN193109依存性拮抗作用のメカニズムは独特
であった。
いて、我々は考慮した。特に、AGN193109が、RAR/RXRヘテロダ イマー形成を乱すかどうか、あるいはRARとその同種DNA結合部位との間の
相互作用を阻害するかどうかを試験するために、標準ゲルシフトアッセイを使用
した。
使用したゲル電気泳動の移動度シフトアッセイを記載している。 実施例9 ゲルシフト分析 インビトロ翻訳RAR−αを、35S標識メチオニンを除いた以外は実質的に実
施例8に記載されたようにして調製した。インビトロ転写体を生成させるために
テンプレートとして、Mangelsdorfら[Nature、第345巻:224〜229頁(1990)]に 記載のRXR−α cDNAを含むpBluescript(II)(SK)系ベクターを用いて
、同様に、インビトロ翻訳RAR−αを調製した。標識RAR−αおよびRAR
−αを、単独または組み合わせて、あるいはAGN193109(10-6M)の単
独または組合わせと予め結合させて、配列:5'-TCAGGTCACCAGGAGGTCAGA-3'(配 列番号1)を有する末端標識DR−5 RARE二本鎖プローブと相互作用させた
。結合混合物を、標準実験法に従って、非変性ポリアクリルアミドゲル上で電気
泳動させ、オートラジオグラフにかけた。ゲル上の全てのレーンに共通であるオ
ートラジオグラフ上に現れる単一遅延種は、網状赤血球溶解物中に存在する明確
ではないプローブ結合因子を表わす。RAR/RXRの組み合わせのみが、レチ
ノイドレセプター特異性遅延種を生成させた。RAR単独もRXR単独もプロー
ブに結合してこのシフト種を生成させることがなかった。AGN193109の
存在はその相互作用を弱めなかった。
化特性のいずれも実質的に変化させないことを示した。さらにAGN19310
9は、同系結合部位を含むDNAセグメントとレセプター二量体との相互作用を
抑制しなかった。
抗薬が、非配位RARの活性をさらに抑制し得るかどうか検討した。これを決め
るために用いたレセプター/リポーター系は、添加レチノイド作用薬の不存在下
に高水準の構成性活性を有利に示した。より具体的には、これらの操作は、ER
−RARキメラレセプターおよびERE−tk−Lucリポーター系を用いた。
ERE−tk−Lucプラスミドは、Klein-Hitpassら[Cell、第46巻:1053〜10
61(1986年版)]が記載しているXenopusビテロゲニン(vitellogenin)A2遺伝子
のエストロゲン反応性5'-境界領域の−397〜−87領域であって、プラスミドt k−Lucのルシフェラーゼリポーター遺伝子およびHSVチミジンキナーゼプ
ロモーターの上流に連結された領域を含む。ER−RARキメラレセプターは、
RARの「D-E-F」ドメインに融合しているエストロゲンレセプターDNA結
合ドメインからなっていた。当業者は、この「D-E-F」ドメインが、レチノイ
ドと結合し、レチノイド誘発性トランス活性化機能を提供し、RXRとのヘテロ
二量化のための接触部位を提供するように機能することを知っている。すなわち
、このレセプター系におけるルシフェラーゼ発現は、トランスフェクションされ
たキメラレセプター構築物の活性化に依存していた。
性を抑制することを示すために用いられた方法を記載している。これらの操作は
、添加レチノイド作用薬の不存在下に行った。以下の結果は、AGN19310
9がネガティブホルモン活性を表わすことを最初に示した。
イド調節リポーターの基本遺伝子活性の抑制 CV-1細胞を、ERE-tk-Lucリポータープラスミドと、ER-RAR- α、ER-RAR-βまたはER-RAR-γ発現プラスミドで同時トランスフェク
ションした。ERE-tk-Lucプラスミドは、Xenopus laevisビテロゲニン A2遺伝子のエストロゲン反応性プロモーター要素を含んでおり、ルシフェラー
ゼをコードするポリヌクレオチド配列によりCATリポーター遺伝子が置換され
た以外は、Klein-Hitpassら[Cell、第46巻:1053頁(1986)]に記載されたリポー
タープラスミドと実質的に同一であった。同時トランスフェクションにおいて用
いられたER-RAR-α、ER-RAR-βまたはER-RAR-γキメラレセプタ
ーコード化ポリヌクレオチドは、Graupnerら[Biochem. Biophys. Res. Comm.、 第179巻:1554頁(1991)]により記載されている。これらのポリヌクレオチドを 、Ellisら[Cell、第45巻:721頁(1986)]が記載しているpECE発現ベクター 内に連結し、SV-40プロモーターの転写制御下に発現させた。リポータープ ラスミド0.5μg/ウエルおよびレセプタープラスミド0.05μg、0.10μgまたは0.
2μg/ウエルを用いて実施例6に記載の通りにして燐酸カルシウムトランスフェ
クションを行った。細胞に、ビヒクル単独(エタノール)、ATRA(10-9〜10-6 M)またはAGN193109(10-9〜10-6M)を18時間投与した。細胞溶解物お よびルシフェラーゼ活性の測定を実施例6に記載のように行った。
ョン体においてルシフェラーゼ発現を強力に誘発したことを示した。3つのトラ
ンスフェクションされたキメラRAR異性型についてのルシフェラーゼの基本水
準発現は、約7000〜40000の相対光単位(rlu)に及び、トランスフェクションで用
いられるレセプタープラスミドの量にある程度依存していた。すなわち、3つの
キメラレセプターは、予想されたようにATRAにより活性化された。より詳し
くは、3つの全てのレセプターがATRAに結合し、ERE-tk-Lucプラス
ミド上に保持されたルシフェラーゼレセプター遺伝子の転写を活性化した。
得られるAGN193109用量反応曲線を表わす。興味深いことに、ER−R
AR−α(図3B)は、AGN193109により実質的に影響を受けず、ER
−RAR−βおよびER−RAR−γキメラレセプター(それぞれ図4Bおよび
5B)はルシフェラーゼリポーター活性のAGN193109用量反応性減少を
示した。
たキメラRAR-γレセプターにより媒介される遺伝子発現を抑制する能力を試 験することにより、AGN193109のネガティブホルモン活性を研究した。
より詳しくは、2つのタイプのルシフェラーゼレセプター系において、我々は、
RAR-γ-VP-16と呼ばれるHSV VP-16の酸性アクチベータードメイ ンに融合している構成的活性RAR-γキメラレセプターを用いた。第1のもの は、ER-RARおよびER-RXR-αで同時トランスフェクションされたER E-tk-Lucリポーターからなっていた。第2のものは、ERE-tk-Luc
リポーターの代わりに△MTV-TREp-Lucリポーターを利用した。
09が抑制し得ることを示すための方法を記載している。以下に示す結果は、作
用薬の不存在下においてRAR依存性遺伝子発現をAGN193109が抑制し
得ることを示すものであり、AGN193109がネガティブホルモン活性を示
すことを確認するものである。
−16活性の抑制 ERE−tk−Lucルシフェラーゼリポータープラスミド0.5μg/ウエル、
ER−RXR−αキメラリポーター発現プラスミド0.1μg/ウエル、およびRA
R−γ−VP−16発現プラスミド0μgまたは0.1μg/ウエルを用いて実施例 6に記載の燐酸カルシウム共沈殿法によりCV−1細胞を一時的に同時トランス
フェクションした。キメラレセプターER−RXR−αは、エストロゲンDNA
結合ドメイン[Graupnerら、Biochem. Biophys. Res. Comm.、第179巻:1554頁(
1991)]に融合したRXR−α[Mangelsdorfら、Nature、第345巻:224〜229頁(1
990)]のホルモン結合ドメイン(アミノ酸181〜458)からなっており、Ellisら[C
ell、第45巻:721頁(1986)]が記載しているSV−40系発現ベクターpECE
から発現させた。RAR−γ−VP−16は、Nagpalら[EMBO J.、第12巻:2349
頁(1993);該開示を引用により本発明の一部とする]が記載しているVP16R
AR−γ1発現プラスミドに同一であり、全長RAR−γのアミノ末端に融合し
たHSVのVP−16タンパク質の活性化ドメインを有するキメラタンパク質を
コード化する。トランスフェクション18時間後に、細胞を燐酸塩緩衝塩水(PB
S)で濯ぎ、木炭で抽出してレチノイドを除去した10%FBS(Gemini Bio-Pro
ducts製)を含むDMEM(Gibco-BRL製)を供給した。細胞に、エタノール単独
またはエタノールビヒクル中のAGN193109またはATRAの適切な希釈
液を18時間投与し、次に、PBSで濯ぎ、0.1M KPO4(pH 7.8)、1.0% T RITON X−100、1.0 mM DTTおよび2 mM EDTAを用いて溶解 した。ルシフェラーゼ活性を、ホタルルシフェリン(Analytical Luminescence
Laboratory)およびEG & G Berthold 96-ウエルプレート蛍光測定器を用いてWe
tら[Mol. Cell. Biol. 第7巻:725頁(1987)]に記載の方法に従って測定した。
ルシフェラーゼ値は、3回測定の平均±SEMを表わしていた。
R−αキメラ発現プラスミドによりトランスフェクションされたCV−1細胞は
、おそらく、RXRのための天然配位子[Heymanら、Cell、第68巻:397頁(1992
)]である9C−RAへのATRAの異性化により、ATRAによるルシフェラー
ゼ活性の弱い活性化を示した。リポーターおよびキメラレセプタープラスミドの
同じ混合物でトランスフェクションし、AGN193109で処理した細胞は、
フシフェラーゼ活性に何の効果も示さなかった。AGN193109はRXRに
結合しないので、この後者は予想されていた。ERE−tk−Lucリポーター
で同様にトランスフェクションしたがER−RXR−αをER−RARキメラレ
セプター発現プラスミドで置換したCV−1細胞は、ATRA処理に続いてルシ
フェラーゼ活性の強度の誘発を示した。
よびERE−tk−Lucプラスミドと共にトランスフェクション混合物中に含
むことにより、任意の添加レチノイドの不存在下に測定したときに基本的ルシフ
ェラーゼ活性が大きく増加した。ER−RXR−α/RAR−γ−VP−16同
時トランスフェクション体について観察された基本的ルシフェラーゼ活性のこの
増加は、ER−RXR−α単独でトランスフェクションした細胞を用いて得られ
た結果と比較して、組み換えER−RXR−αおよびRAR−γ−VP−16タ
ンパク質がヘテロ二量化し得ることを示した。ヘテロ二量体とシス調節性エスト
ロゲン反応性要素との相互作用により、VP−16活性化ドメインが、ERE−
tk−Lucリポーターのプロモーター領域を標的化した。そのような3重トラ
ンスフェクションされた細胞をATRAで処理すると、ルシフェラーゼ活性が高
い基本水準よりも僅かに増加した。しかし、3重トランスフェクション体をAG
N193109で処理すると、ルシフェラーゼ活性が用量依存的に減少する。重
要なことに、図6は、ER−RXR−αおよびRAR−γ−VP−16で同時ト ランスフェクションした細胞をAGN193109で処理するとルシフェラーゼ
活性が抑制され、最大抑制がAGN193109 約10-8Mで起こることを示し ている。
ータータンパク質の結合を容易化するネガティブコンフォーメーションを安定化
させるRARにおけるコンフォーメーション変化を、AGN193109のRA
Rへの結合が誘発するモデルにより説明された。AGN193109/RAR複
合体がNCPにより結合される場合、RARは、活性化RARに普通に反応性で
ある遺伝子の転写を上方制御することができない。我々のモデルは、さらに、N
CPの細胞内貯蔵部が、ある関係において制限された濃度を有し、AGN193
109刺激されたRARとの複合化のゆえに使い果され得ることを提案する。
RXR−αとRAR―γ―VP−16タンパク質とが相互作用して、リポーター
遺伝子の転写を活性化するのにコンピテントなヘテロ二量体を形成するように相
互作用し得ることを示した。より詳しくは、ER−RXR−αおよびRAR―γ
―VP−16でトランスフェクションすると共に、最大抑制を提供するのに充分
である濃度(10-8〜10-6M)においてAGN193109で処理した細胞は、約
16000 rluのルシフェラーゼ活性を提供した。逆に、ER−RXR−αのみでト ランスフェクションし、次に10-6Mの高い濃度でAGN193109で処理した
細胞は、約8000 rluのルシフェラーゼ活性水準しか示さなかった。10-6MのAG
N193109の存在下においても、ER−RXR−αおよびRAR−γ−VP
−16の両方を発現する細胞において高水準のルシフェラーゼ活性が得られた事
実は、二つの組み換えレセプター間の相互作用の持続を示した。AGN1931
09によるRAR−γ−VP−16活性の抑制は、NCP相互作用の調整を、V
P−16活性化によって同時支配し得ることを示した。従って、我々は、普通は
AGN193109に依存してレチノイドにより調節されない遺伝子の発現を調
整することが可能であることを理解した。
非RAR因子(この非RAR因子は活性化のためにRAR作用薬を必要としない
)からなる転写因子複合体により活性化される遺伝子を含む。RAR作用薬によ
る刺激はそのような遺伝子の発現に実質的に影響を有さないが、AGN1931
09の投与は、AGN193109/RAR/NCPを含む不活性転写複合体の
形成を促進することができる。従って、AGN193109レチノイドネガティ
ブホルモンの添加は、それ以外ではレチノイド非感受性遺伝子の転写を下方制御
することができる。
ゼ)遺伝子の活性をAGN193109が抑制し得るという観察を説明すること
ができる。5および7の塩基対をおいて離れている3つの基本レチノイド半部位
を含んでいるレチノイド反応要素が、この遺伝子の転写制御領域において同定さ
れた。TGアーゼはRXR選択的作用薬により誘発し得るが、それはRAR選択
的作用薬に反応性ではない。TGアーゼレチノイド反応要素は、RAR/RXR
ヘテロ二量体(Daviesら、印刷中)により結合される。興味深いことに、AGN
193109は、RXR作用薬により誘発されるTGアーゼ活性を抑制すること
ができる。このAGN193109媒介抑制は、このネガティブホルモンが、ヘ
テロ二量体のRAR成分にNCPを封鎖し、それにより結合RXRの活性を抑制
する能力により説明することができる。
tk-Lucリポータープラスミドと組み合わせる代わりに、RAR-γ-VP-1
6および発現構造物ならびに△MTV-TREp-Lucリポータープラスミドを
用いて、実施例11により示される結論と同一の結論を支持する結果を得た。前
述の結果と一致するように、我々は、△MTV-TREp-Lucリポーターにお
けるRAR-γ-VP-16活性がAGN193109により抑制されることを発 見した。従って、AGN193109は、このキメラレセプターが、レポーター
プラスミドのプロモーター領域においてエストロゲン反応要素に間接的に結合す
る代わりにレチノイン酸レセプター反応要素に直接結合したときに、RAR-γ-
VP-16活性を抑制した。これらの発見は、ネガティブホルモン活性を有する 試薬を同定するためのアッセイが、特別のリポータープラスミドの使用により限
定される必要がないことを示した。その代わりに、レチノイドネガティブホルモ
ンの同定に有用な実験系により具現化された重要な特徴は、構成性転写活性化ド
メインを含むように加工されたRARの活性を抑制する化合物の能力を検出する
ことを含む。
C末端に位置しているレチノイドレセプターの少なくともドメインを含むキメラ
レセプターまたはレチノイドレセプターによる直接または間接の結合に転写的に
反応性であるリポーター遺伝子の基本水準発現を、トランスフェクションされた
細胞中において抑制するレチノイド化合物のサブセットとして同定することがで
きる。この手段は、レチノイドネガティブホルモンの同定のために有用なスクリ
ーニング法に適用される。発明されたスクリーニング法の種々の態様において、
ネガティブホルモンに求められるレセプターの構造は様々である。より詳しくは
、レチノイドレセプターは、RARまたはRXRサブタイプであってよい。レセ
プターは、要すれば、構成性転写アクチベータードメインを含むように加工する
ことができる。ネガティブホルモンのスクリーニングに使用されるレチノイドレ
セプターは、要すれば、天然レセプターに内因的なDNA結合ドメインの代用と
して異質DNA結合ドメインを含む。しかし、スクリーニング法において第2の
レセプターを使用する場合、および第2のレセプターがネガティブホルモンに求
められるレチノイドレセプターと二量体を形成し得る場合、そのレチノイドレセ
プターは、それ自体が転写制御領域に結合される第2のレセプターとの二量化を
介して間接的にリポーター遺伝子の転写制御領域に結合することができるので、
DNA結合ドメインを必要としない。
能力は、通常、インビトロアッセイにより測定される。基本発現は、外因的な添
加レチノイド作用薬が存在しない条件下におけるトランスフェクションされた細
胞におけるリポーター発現の基本水準を表わす。要すれば、インビトロで細胞を
培養するのに用いられる血清の木炭抽出のような操作を介して、トランスフェク
ションされた細胞の環境から内因性レチノイド配位子を除去するための工程を設
けて良い。
より検出することができるルシフェラーゼ、βガラクトシダーゼ、クロラムフェ
ニコールアセチルトランスフェラーゼまたは細胞表面抗原をコードする遺伝子を
含む。実際、リポーター遺伝子の性質は、方法の操作性に重要であるとは考えら
れない。しかし、リポーター構築物の転写調節領域は、ネガティブホルモンに求
められている転写因子の標的である一つまたはそれ以上のシス調節性要素を含ん
でいなければならない。例えば、RARネガティブホルモンを同定しようとする
場合、リポーター構築物の転写調節領域は、RAR含有タンパク質により結合さ
れ得るシス調節性要素を含むことができる。この例においては、RARのDNA
結合ドメインと、リポーター構築物の転写調節領域のシス調節性要素とが一致す
べきである。すなわち、シス調節性エストロゲン反応性要素を結合することがで
きるDNA結合ドメインおよび構成性転写アクチベータードメインを有するキメ
ラRARがスクリーニング法において用いられる場合、リポーター構築物の転写
調節領域は、エストロゲン反応性要素を含むべきである。
と直接結合するシス調節性要素の例は、Mangelsdorfら[The Retinoid Receptors
、The Retinoids: Biology,Chemistry and Medicine、第2版、Spornら編、Rave
n Press, Ltd., New York (1994)]が開示している。該開示を引用により本発明 の一部とする。キメラレセプターを間接的に結合するシス調節性要素の例には、
レチノイドレセプターに結合したDNA結合ドメインからなるキメラレセプター
中にタンパク質のDNA結合ドメインを組み込むことのできる任意のDNA結合
タンパク質のためのDNA結合部位が含まれる。加工してキメラレセプターに入
れることができ異質シス調節要素を認識する異質DNA結合ドメインの具体例は
、エストロゲン反応性要素を認識するものを含む。すなわち、スクリーニング法
に関して有用なキメラレセプターのレチノイドレセプター部分は、レチノイドレ
セプターのDNA結合を含む必要がないが、少なくとも、レチノイドレセプター
の配位子結合ドメインを含まなくてはならない。
性要素と結合しレチノイドレセプターを二量化することのできるタンパク質の使
用が含まれる。この場合、レチノイドレセプターは、DNA結合に係わるタンパ
ク質との結合によってのみ、シス調節性要素と結合する。そのような系の例は、
RARとの二量化に係わるRXRのドメインを少なくとも含む、RXRに融合し
た異質DNA結合ドメインからなる融合タンパク質の使用を含む。一緒に導入さ
れたRARは、シス調節性要素に結合したそのような融合タンパクと二量化する
ことができる。我々は、RARと二量化してRARとシス調節性要素との間接結
合を生じる任意のシス調節性要素結合タンパク質も、ネガティブホルモンスクリ
ーニング法に用いるのに好適であると考える。
、増加した基本活性を有する加工RAR転写因子の基本発現を抑制するレチノイ
ドと同定される。スクリーニング法の操作性に必須ではないが、以下の実施例で
用いられる加工RARは、構成性転写活性化ドメインを含んでいた。このキメラ
レセプターの使用は、いかなるレチノイドも存在しない状態でリポーター遺伝子
の基本発現を向上させることのできる手段を有利に提供した。我々は、先に詳細
に記載した操作において一時的トランスフェクションを用いたが、キメラレセプ
ターを構成的に発現する安定にトランスフェクションされたセルラインもスクリ
ーニング法に有用である。
キメラレチノイドレセプターは、エストロゲン反応性シス調節性要素に特異的な
DNA結合ドメインを含むように加工された第2のレセプターとヘテロ二量化が 可能であった。この場合、構成性転写アクチベータードメインを有するキメラレ
チノイドレセプターは、DNA標的配列と結合する第2のレセプターへの結合を 介して間接的にリポーター遺伝子発現を制御するシス調節性領域と結合する。よ
り詳しくは、第2のレセプターを、エストロゲン反応性要素を認識するDNA結 合ドメインを含むように加工した。有利には、上流プロモーター領域にエストロ
ゲン反応性要素を有するリポーター遺伝子は、構成性転写アクチベータードメイ
ンを有するトランスフェクションしたキメラレセプターの不存在下においてレチ
ノイド作用薬に非反応性である。従って、全てのリポーター遺伝子活性は、トラ
ンスフェクションされたレセプターに起因する。エストロゲン反応性要素DNA
結合ドメインとエストロゲン反応性要素シス調節性要素とを組み合わせて用いる
のは、説明のみを意図したものである。当業者は、非RAREシス調節性要素に
特異性を有する加工レセプターの他の組み合わせも、本発明のスクリーニング法
の実際において有用であることを理解する。
核細胞である。細胞は、ヒト、霊長類またはげっ歯類細胞のような動物細胞であ
る。我々は、CV−1を用いて非常に優れた結果を達成したが、他の培養細胞系
(セルライン)も良好に用い得ることが合理的に予想される。構成性転写アクチ
ベータードメインを有するキメラレチノイドレセプターをコードする発現構築物
を導入するために、当分野において知られている多くの従来の転写法のいずれも
使用することができる。
転写アクチベータードメインは、ウイルス性転写因子においても見られるアミノ
酸配列を有していてよい。構成性転写アクチベータードメインを有するウイルス
性転写因子の一例は、ヘルペス単純ウイルス16である。しかし、他のウイルス
性または合成転写アクチベータードメインも、構成性転写アクチベータードメイ
ンを有するキメラレチノイドレセプターをコードする発現構築物の構築に有用で
ある。
るのに有用な一般化スクリーニング法を開発した。このスクリーニング法は、ネ
ガティブホルモンから単純な拮抗薬を区別する手段を提供する。表12は、RA
R−γへの強力な親和性を示す幾つかのレチノイド化合物を列挙しているが、A
RTAを除いて、一時的な同時トランスフェクショントランス活性化アッセイに
おいてこのレセプターをトランス活性化しなかった。従って、我々は、どれがR
AR−γ拮抗薬であり、存在する場合は、これら拮抗薬のどれがネガティブホル
モン活性を示すかを決めるためにこれらの化合物を試験した。
性を示す拮抗薬のサブセットを同定するために用いた方法を記載する。 実施例12 レチノイドネガティブホルモンのためのアッセイ 4×104のCV−1細胞を、ERE-tk-Lucリポータープラスミド0.5μgおよびER-
RAR-γ[Graupnerら、Biochem. Biophys. Res. Comm.、第179巻:1554頁(1991年
版)]キメラ発現プラスミド0.1μgを用いて、Molecular Cloning:A Laboratory
Manual[Sambrookら編、Cold Spring Harbor Lab Publ., 1989年版]に記載の燐酸
カルシウム共沈殿法によりトランスフェクションした。18時間後、細胞を、PB
Sで濯ぎ、10%活性炭抽出FBS(Gemini Bio-Products製)を含むDMEM(B
ibco-BRL製)を供給した。細胞を、エタノール中の10-8M ATRAまたはエタ ノール単独で処理した。さらに、ATRA処理細胞を、10-9、10-8、10-7または
10-6 Mの第12表に列挙する化合物で処理した。18時間後、細胞をPBSで濯 ぎ、0.1 M KPO4、(pH7.8)、1.0% TRITON X−100、1.0 mM DT
T、2 mM EDTA中で溶解した。ルシフェラーゼ活性を、deWetら[Mol. Cell
. Biol. 第7巻:725頁(1987年版)]の記載のように測定した。
-Prussof式の適用により決めた相対親和性(Kd) b:△MTV-TREP-LucおよびRS-RAR-γで一時的に同時トランスフ
ェクションしたCV-1細胞中で測定したEC50;「na」は活性なしを示す。
12表中に列挙する化合物の全てがRAR−γのレチノイド拮抗薬であった。 次に、第12表中に挙げたRAR-γ拮抗薬をスクリーニングして、存在する 場合はどれがレチノイドネガティブホルモンでもあるかを決めた。4×104のC V-1細胞を、ERE-tk-Lucリポータープラスミド0.5μgならびにER-RAR
-α[Graupnerら、Biochem. Biophys. Res. Comm.、第179巻:1554頁(1991年版)
]0.1μgおよびRAR-γ-VP-16[Nagpalら、EMBO J. 第12巻:2349頁(1993 年版)]0.2μgキメラ発現プラスミドを用いて、「分子クローニング:実験室マニ
ュアル」[Sambrookら編、Cold Spring Harbor Lab Publ., 1989年版]に記載の燐
酸カルシウム法によりトランスフェクションした。18時間後、細胞を、PBSで
濯ぎ、10%活性炭抽出FBS(Gemini Bio-Products製)を含むDMEM(Bibco-BR
L製)を供給した。細胞を、10-9、10-8、10-7または10-6Mの第12表に列挙する
各化合物で処理した。エタノールビヒクル単独での処理はネガティブ対照として
用いた。18時間後、細胞をPBSで濯ぎ、0.1M KPO4、(pH7.8)、1.0% T RITON X-100、1.0mM DTT、2mM EDTA中で溶解した。ルシフ
ェラーゼ活性を、deWetら[Mol. Cell. Biol. 第7巻:725頁(1987年版)]の記載 のように測定した。
に分けることができた。AGN193174、AGN193199およびAGN
193840を含む1つの群は、ATRA拮抗薬であってもRAR-γ-VP-1 6を抑制しなかった。これに対して、AGN193109、AGN193385
、AGN193389およびAGN193871は、RAR-γ-VP-16構成 性活性の用量依存的な抑制を示した。従って、両群の化合物はRAR-γ拮抗薬 であるが、第2の群の化合物のみがネガティブホルモン活性を示した。このアッ
セイは、単純レチノイド拮抗薬からレチノイドネガティブホルモンを有利に区別
した。
に合致することを示した。より詳しくは、実施例11に表わす結果は、AGN1
93109が、外因性添加レチノイド配位子の不存在下においてさえRARの抑
制活性を示す能力を有することを示した。このように、この化合物は、ATRA
やAGN191183のような作動薬とRARの間の相互作用のブロックに依存
しない生物学的活性を有していた。これらの発見により、我々は、AGN193
109がRARとNCPとの間の相互作用を安定化させると結論した。図9に示
すように、NCP/RAR/PCP相互作用は、平衡状態にある。作動薬は、P
CP相互作用を増加させ、NCP相互作用を低下させるように作用し、逆作動薬
またはネガティブホルモンはNCPを安定化させPCP相互作用を低下させる。
先に述べたように、我々の実験結果は、他のレセプターのためのNCPの細胞内
利用性はAGN193109投与により調整することができることを示した。よ
り詳しくは、我々は、AGN193109が、NCPとRARとの複合化を促進
し、それによりRAR以外の転写因子との相互作用に利用できるNCPの細胞内
貯蔵部を減少させることができることを発見した。
109の効果を試験した。Pfhal[Endocr. Rev. 第14巻:651頁(1993年版)]は、
レチノイド作動薬剤が遺伝子発現を下方制御し得ることを開示した。Pfhal[Endo
cr. Rev. 第14巻:651頁(1993年版)]は、AP−1活性の抑制を含む機構により
レチノイド作動薬が遺伝子発現を下方制御し得ることを開示した。我々は、AG
N193109が、AP−1活性を測定するように設計されたモデル系において
レチノイド作動薬と組み合わせて使用した場合に、2つの効果のうちのいずれか
を有し得ると仮定した。第1に、AGN193109は、おそらく、作動薬の作
用に拮抗し、それによりAP−1活性の作動薬依存抑制を除くことができる。ま
た、AGN193109は、作動薬活性を強化し、それによりAP−1活性の作
動薬依存性抑制を大きくすることができる。
強化することを示すために用いた方法を記載している。以下に記載するように、
AGN191183レチノイド作動薬は、AP−1依存性遺伝子発現を弱く抑制
する。AGN193109とレチノイド作動薬との組み合わせは、AP−1依存
性遺伝子発現を強く抑制した。それ自体、AGN193109は抗AP−1活性
を実質的に有していなかった。
する LIPOFECTAMINE(Life Technologies, Inc.)を用いて、Giguereら[Nature 第3
3巻:624頁(1987年版)]の記載のプラスミドpRS−hRARα 0.2μgおよび Str−AP1−CATリポーター遺伝子構築物 1μgでHeLa細胞をトラン スフェクションした。pBLCAT3[Luckowら、Nucl. Acids Res. 第15巻:54
90頁(1987年)]のHindIII−BamHI部位の間に、ラットストロメリシン(strom
elysin)−1プロモーター[Matrisianら、Mol. Cell. Biol. 第6巻:1679頁(198
6年)]の-84〜+1位に相当するDNAフラグメントをクローニングすることにより
、Str−AP1−CATを調製した。ストロメリシン−1プロモーターのこの
配列は、AP1モチーフを、その唯一のエンハンサー要素[Nicholsonら、EMBO J
. 第9巻:4443頁(1990年)]として含む。以下の配列を有する2つの合成オリゴ
ヌクレオチドをアニーリングすることによりプロモーター配列を調製した。
GTTGGGCTCAGAAAGGTGGACCTCGAGGATCCAG-3' (配列番号2)および 5'-CTGGATCCTCGAGGTCCACCTTTCTGAGCCCAACTTTTATAGAGTGGCAGTATTTGCAGAGTCACCC
GCAAACTGACTCATAATTGCTTCCATAAGCTTCT-3'(配列番号3) トランスフェクション、適当な化合物での処理およびCAT活性の測定を含む
操作を、Nagpalら[J. Biol. Chem. 第270巻:923頁(1995年版)]に記載のように
実施した。該開示を引用により本発明の一部とする。
183の抗AP−1活性を強化することを示した。より詳しくは、10-12〜10-10 Mの濃度範囲において、AGN191183は、TPA−誘発Str−AP1 −CAT発現を抑制しなかった。10-10〜10-8 Mの濃度範囲におけるAGN19
3109での処理は、AP−1媒介リポーター活性を実質的に抑制しなかった。
しかし、図10に表わす結果は、AGN193109(10-8 M)と10-12〜10-10
Mの濃度範囲のAGN191183との組み合わせでトランスフェクションした
ものを刺激すると、実質的に、TPA誘発Str−AP1−CAT発現を12%〜
21%抑制することを示した。従って、AGN193109は、このレチノイド作
動薬が通常、AP−1活性を抑制しない条件下においてAGN191183の抗
AP−1活性を強化する。
えられる機構により、AGN193109がAP−1活性の作動薬媒介抑制を強
化することの理由付けをした。1,25−ジヒドロキシビタミンD3、グルココ ルチコイド、甲状腺ホルモン、エストロゲンおよびプロゲステロンのレセプター
も含む核レセプターの上科にRARは属する。NCPを結合する能力が、核レセ
プター上科の異なる構成員の間で共有されるというのは合理的な仮定である。こ
れにより我々は、AGN193109が、核レセプターのこの上科と相互作用す
る配位子の一つまたはそれ以上の抗AP−1活性を強化し得ると考えた。
抗AP−1活性を強化することを明らかに示した。より詳しくは、AGN193
109は、AGN191183の抗AP−1活性を検出することのできる閾値を
低下させた。AGN193109は、それ自体が抗AP−1活性を実質的に有さ
ないので、核レセプター作動薬に対するその効果は協力的なものである。我々は
、AGN193109ネガティブホルモンが、ビタミンD3レセプターへの天然 配位子である1,25−ジヒドロキシビタミンD3の抗AP−1活性を強化するこ
とも発見した。
力作用は、必然的に、レチノイド作動薬の抗AP−1活性およびその活性のAG
N193109媒介能力強化は異なる機構から生じるに違いないことを意味して
いる。2つの試薬の作用の機構が同一であるなら、AGN193109と作動薬
との組み合わせの効果が付加的であるということになる。その代わりに、組み合
わせは、いずれかの試薬単独よりも一層効果的であることが示され、その効果は
この発見に前もって予想されていなかった。
ド作動薬よりも約100倍モル過剰のAGN193109を用いて行われた。従
って、RARの大部分が、作動薬結合に利用できるRARを殆ど残すことなくA
GN193109により結合されたに違いない。この事実に拘わらず、AGN1
93109により結合されないRARの集団は、レチノイド作動薬と結合し、リ
ポーター遺伝子発現の抑制として測定することのできる作動薬依存反応を激しく
刺激することができた。すなわち、我々のデータは、AGN193109により
誘発されるRARの可能な異質性を示唆した。
9のネガティブホルモン活性は、AGN193109とレチノイド作動薬との間
の協力作用の理解の基礎を提供した。我々の結果は、細胞のAGN193109
処理がRARおよびNCPの結合を促進し、それにより細胞内の遊離NCPおよ
び遊離RARの数が減らされるモデルと充分に一致した。これにより、機能的に
異なるRARの2つの集団が生じる。最初の集団はNCPと結合するRARによ
り示される。そのようなAGN193109/RAR/NCP複合体は、レチノ
イド作動薬によって活性化することができない。第2の集団は、NCPによって 結合されず、作動薬との相互作用への利用性を維持するRARからなる。この後
者の集団は、実質的にNCPが消費されつくした環境中における遊離RARを示
す「RAR*」と表わされる。
抗AP−1活性として測定され得るレチノイド作動薬への増加した感受性を有す
る。この理由は、NCPの細胞内貯蔵部はAGN193109投与ゆえに消去さ
れ、PCPの貯蔵部は消去されていないからである。従って、遊離RAR*は、
レチノイド作動薬を結合することができ、実質的にNCPが消費された環境内で
PCP因子と相互作用することができる。AGN193109が、他の核レセプ
ターのそれぞれの作動薬への感受性を増加させる能力は、これらの異なる核レセ
プターが、AGN193109/RAR複合体と相互作用する同じNCPと相互
作用する能力に起因し得る。核レセプターファミリー構成員へのNCPの利用性
のAGN193109媒介調整のこのモデルを、図11に概略的に表わす。
の活性をAGN193109が調整し得ると予想した。以下の実施例に示すよう
に、我々は、インビトロトランス活性化アッセイにおいて1,25−ジヒドロキ シビタミンD3の活性をAGN193109が強化することを確認した。
強化する Felgnerら[Proc. Natl. Acad. Sci. USA 第84巻:7413頁(1987年版)]により 記載されたカチオン性リポソーム媒介トランスフェクション法を用いて、Hel
a細胞をトランスフェクションした。5×104の細胞を、12ウエル複ウエルプレ ートに入れ、10%FBSを補足したDMEM中で増殖させた。LIPOFECTAMINE試 薬(Life Technologies, Inc.製)2μg/ウエルを用い、さらにリポータープラ スミド△MTV−Luc[Heymanら、Cell 第68巻:397頁(1992年版)]中に連結 したマウスオステオポンチン(osteopontin)遺伝子[Ferraraら、J. Biol. Chem
. 第269巻:2971頁(1994年版)]からの1,25−ジヒドロキシビタミンD3反応 要素5'-GTACAAGGTTCACGAGGTTCACGTCTTA-3'(配列番号4)の2つのコピーを含む
リポータープラスミドMTV−VDRE−Luc 0.7μg、およびDNAの最終 濃度を1.0μg/ウエルにするためのキャリアDNAとしてのプラスミドpGEM
3Z(Pharmacia, Inc.製)0.3μgを用いて、血清非含有培地中、細胞を同時ト ランスフェクションした。トランスフェクションの6時間後、細胞に、最終濃度
10%で木炭抽出FBSを含む増殖培地を供給した。トランスフェクション後8時
間において、細胞をビヒクル単独(エタノール)または最終濃度10-8または10-7 Mでのエタノール中AGN193109で処理した。6時間後、最終濃度10-10 または10-7 Mになるようにエタノールに1,25−ジヒドロキシビタミンD3を 加えた。1,25−ジヒドロキシビタミンD3処理後8時間で、細胞を溶解し採取
した。ルシフェラーゼ活性を、前述のように測定した。この実験系により、1, 25−ジヒドロキシビタミンD3依存遺伝子発現をモニターし定量する都合の良 い方法が得られる。
れた結果と比較したときに、1,25−ジヒドロキシビタミンD3と同時投与した
AGN193109が用量反応曲線を左にシフトさせたことを示した。このこと
により、AGN193109が、インビトロトランス活性化アッセイにおいて1
,25−ジヒドロキシビタミンD3の効果を強化することを確認した。より詳しく
は、図12は、10〜100 nMと低いAGN193109の濃度が、1,25−ジ ヒドロキシビタミンD3を約10倍より活性にしたことを図示している。約2000 rl
uのルシフェラーゼ発現を得るのに10-8 Mの1,25−ジヒドロキシビタミンD3 濃度が必要であるが、10-8〜10-7 Mの濃度でAGN193109をビタミンと 共に投与した場合、同じルシフェラーゼ出力を得るのに、1/10の1,25−ジヒ ドロキシビタミンD3しか必要なかった。図12のグラフには示していないが、1
0-9および10-8 Mの濃度のAGN193109を用いて実質的に同じ結果が得ら
れた。すなわち、AGN193109と同時投与することは、ネガティブホルモ
ンの不存在下において同様の結果を得るのに必要な1,25−ジヒドロキシビタ ミンD3の量を大きく低下させた。
ンスフェクションと共に前述の操作を繰り返した場合、1,25−ジヒドロキシ ビタミンD3の活性を強化するAGN193109の能力がそれに対して減少し た。我々は、この結果を、VDRの過剰発現が、1,25−ジヒドロキシビタミ ンD3の活性を強化するAGN193109の能力に影響を与え得ることを示し ていると解釈する。すなわち、組織特異的に異なり得る配位子レセプターの細胞
内濃度は、レセプターを結合する配位子の活性を強化するAGN193109の
能力に影響を与え得る。このことは、やはり、滴定できる量のNCPがビタミン
D3反応の調節に貢献するモデルに一致し、前述のモデルを支持する。
AP−1活性をAGN193109が強化することも確認した。AGN1931
09作用の活性のための我々のモデルは、この薬物の存在下にNCPが強くRA
Rと結合することを考慮してこの観察を説明する。HeLa細胞中に存在する内
因性ビタミンDレセプターは、1,25−ジヒドロキシビタミンD3に対してより
感受性になり、その結果、Str−AP1−CATリポーターからの発現を抑制
するこの配位子の能力が増大される。
193109が強化することを示すために用いられる方法を記載する。 実施例15 AGN193109は1,25−ジヒドロキシビタミンD3の抗A
P−1活性を強化する Nagpalら[J. Biol. Chem. 第270巻:923頁(1995年版)]の記載の方法により、
LIPOFECTAMINEを用いて、Str-AP1-CAT1μgでHela細胞をトランス
フェクションした。トランスフェクションした細胞を、AGN193109単独
(10-9〜10-7 M)、1,25−ジヒドロキシビタミンD3単独(10-12〜10-7 M)
または10-8 MのAGN193109の存在下での1,25−ジヒドロキシビタミ ンD3(10-12〜10-7 M)で処理した。
表わすことを示した。10-8 MのAGN193109の存在下におけるTAP刺激
CAT活性の1,25−ジヒドロキシビタミンD3媒介発現の分析は、抗AP−1
活性が10-10〜10-9 Mの1,25−ジヒドロキシビタミンD3において検出され、
1,25−ジヒドロキシビタミンD3単独処理と比較して10-8および10-7 Mにお いて活性が増加することを示した。1,25−ジヒドロキシビタミンD3媒介抗A
P−1活性のAGN193109依存性調整は、RARへのNCPの結合により
、NCPが他の核レセプターファミリー要素との相互作用に利用できなくなった
我々のモデルに一致した。従って、レセプターは、1,25−ジヒドロキシビタ ミンD3処理に対してより感受性になった。
いるようである。この結論は、AGN193109の高投与は、抗AP−1活性
を実質的に抑制することなくトランス活性化を完全に抑制するという我々の観察
に基づく。従って、我々は、AGN193109処理により媒介されるRAR*
形成の我々のモデルを支持するための更なる証拠を得ようとした。これを達成す
るために、我々は、インビトロトランス活性化アッセイにおいてRAR特異的作
動薬AGN191183の活性をAGN193109が強化し得るかどうか検討
した。
109が強化することを示すために用いられる方法を記載している。この操作の
結果は、特定の環境下において、AGN193109が、RAR特異的レチノイ
ドの強さを高めたことを示し、AGN193109がRAR*形成を促進したこ
との強力な証拠を提供した。
la細胞をトランスフェクションした。5×104の細胞を、12ウエル複ウエルプ レートに入れ、10%FBSを補足したDMEM中で増殖させた。LIPOFECTAMINE 試薬(2μg/ウエル、Life Technologies, Inc.製)用い、さらにリポータープ ラスミド△MTV−Luc[Heymanら、Cell 第68巻:397頁(1992年版)]中に挿 入したTREpal反応要素 5'-TCAGGTCATGACCTGA-3'(配列番号5)の2つの コピーを含むリポータープラスミドMTV−TREp−Luc 0.7μg、および RAR−γ発現プラスミドpRShRAR−γ[Ishikawaら、Mol. Endocrinol.
第4巻:837頁(1990年版)] 0.1μgを用いて、血清非含有培地中、細胞を同時ト ランスフェクションした。トランスフェクション6時間後、細胞に、最終濃度10
%で木炭抽出FBSを含む増殖培地を供給した。トランスフェクション後8時間
において、細胞をビヒクル単独(エタノール)または最終濃度10-11〜10-8 Mで
のエタノール中AGN193109で処理した。6時間後、最終濃度10-10また は10-9 MになるようにエタノールにAGN191183を加えた。AGN19 1183処理後8時間で、細胞を溶解し採取し、ルシフェラーゼ活性を、前述の
ように測定した。
N191183の反応を抑制するのに比較的効果が無いことを示した。これは、
CV−1細胞中において10-8 M ATRAを抑制する10-9 M AGN19310
9の能力と対照的である(図2)。
う予測を支持した。AGN193109の拮抗薬およびネガティブホルモン活性
の我々の特徴付けに一致して、AGN193109での処理により2相の投与反
応曲線が得られた。AGN193109の最低量投与(10-11および10-10)により
、AGN191183単独の場合を超える、ルシフェラーゼ活性の刺激が得られ
た。この効果は、RAR*がAGN193109により生成されることを示して
いる。興味深いことに、このことはAGN193109処理単独の場合にも見ら
れ、RAR*が内因性配位子に反応し得ることを示している。AGN19118
3は、合成レチノイド作動薬であり、ATRAと同様に、RARを介して転写を
活性化する。実施例7においてATRAをAGN191183で置換することは
、定量的に類似の結果を与える(すなわち、AGN193109は10nM AGN 191183の作用に拮抗する)。実施例16は、AGN193109はRAR 作動薬の拮抗薬として機能することができるが、AGN193109同時投与が
RAR作動薬により媒介される活性化を強化する場合に、投与条件を容易に同定
し得ることを示している。実施例16で用いられる化合物の投与量が、実施例7
で記載の操作において用いられる投与量より実質的に少ないことを注目すること
が重要である。我々は、AGN193109処理が、RAR*に対して、RAR
異質性RARを導き得ることを提案した。見かけの異質性(すなわち、強化能力)
は、トランス活性化対AP−1抑制において異なる様相を有するようである。曲
線が2相である理由は、AGN193109の量が増加すると、作動薬の結合に
有用なRARが比例して少なくなるからである。このことは、AP−1抑制の場
合には現れず、我々は、この相違が、同じレセプター種によるトランス活性化お
よびAP−1抑制のための2つの異なる機能を反映するに違いないと考えた。
るのに有用であることを確認した。この結果を支持する実験的研究が、Grahamら
[West. J. Med. 第145巻:192頁(1986年版)]、Lippmanら[J. Natl. Cancer Ins
t. 第84巻:241頁(1992年版)]、およびWeinerら[Invest. New Drugs 第4巻:24
1頁(1986年版)]により公表された。
いたインビトロ研究の結果により支持される。より詳しくは、Agarwalら[Cancer
Res. 第51巻:3982頁(1991年版)]は、頚部形成異常の初期段階をモデル化する
ためにECE16−1細胞系を用い、レチノイン酸が、上皮成長因子(EGF)
依存細胞増殖を抑制し得ることを示した。
るAGN191183レチノイド作動薬の活性に拮抗し得ることを示すために用
いられる方法を記載する。 実施例17 ECE16−1細胞におけるレチノイドの抗増殖効果にAGN1
93109が拮抗する ECE16−1細胞を、DMEM:F12(3:1)、非必須アミノ酸、5%F
BS、5μg/mlトランスフェリン、2nMの3,3',5-トリヨードチロニン(甲状腺
ホルモンまたは「T3」)、0.1 nMコレラ毒素、2mM L-グルタミン、1.8×10-4
Mアデニンおよび10 ng/ml EGFを含む完全培地において1×104細胞/cm2の 密度で播種した。細胞を、一晩、プレートに付着させ、次に、DMEM:F12
(3:1)、2 mM L-グルタミン、非必須アミノ酸、0.1%子ウシ血清アルブミン 、1.8×10-4 Mアデニン、5μg/mlトランスフェリン、2 nM T3、50 μg/ml アスコルビン酸、100ug/mlストレプトマイシン、100単位/mlペニシリンおよび
50 μg/mlゲンタマイシンを含む規定培地に移した。規定培地(DM)には10ng
/ml EGFを追加した。EGF処理細胞には、AGN191183レチノイド 作動薬10 nMを0、0.1、1.0、10、100、1000 nMのAGN193109と組み合 わせて、あるいは1000 nMのAGN193109単独を与えた。3日間処理した 後、細胞を、Hembreeら[Cancer Res. 第54巻:3160頁(1994年版)]の記載のよう
に採取し、細胞数をCOULTER計数器を用いて測定した。
強化培地単独においては増殖しなかったことを示した。このことは、Andreatta-
van Leyenら[J. Cell. Physio. 第160巻:265頁(1994年版)]およびHembreeら[C
ancer Res. 第54巻:3160頁(1994年版)]により発行された発見を確認するもの であった。10nM AGN191183および0nM AGN193109の添加は
、EGF媒介増殖を完全に抑制した。すなわち、AGN191183は、強力な
抗増殖性レチノイドである。AGN193109濃度を0nMから10nMに増やす
と、AGN191183濃度媒介増殖抑制が約50%拮抗された。10倍モル過剰の
AGN193109は、AGN191183の抗増殖効果を完全に逆転した。10
00nM AGN193109単独で細胞を処理することは、EGF媒介増殖増加に
効果が無かった。これらの結果は、AGN193109が、レチノイドの抗増効
果に拮抗するが、AGN191183のようなレチノイドによる増殖抑制に感受
性の頚部上皮を代表する細胞を処理するために使用したときに、それ自体の抗増
殖活性は実質的に有していないことをことを証明した。注目すべきことに、EC
E16−1モデル系を用いてAGN191183作動薬の抗増殖活性をAGN1
93109が強化する証拠はない。
る細胞増殖がレチノイド作動薬により抑制することができない他の例がある。例
えば、Agarwalら[Cancer Res. 第54巻:2108頁(1994年版)]は、レチノイド処理
に反応性のない頚部腫瘍のモデルとしてCaSki細胞を使用することを記載し
ている。以下に記載のように、細胞増殖を抑制するのではなく、レチノイド治療
は、CaSki細胞の増殖速度に実質的に影響を有さない。以下の実施例は、こ
の細胞系の増殖速度へのAGN193109ネガティブホルモンの効果を示す。
結果は、予想外にも、AGN193109が、レチノイド作動薬の抗増殖効果に
非反応性である頚部腫瘍細胞の増殖を抑制し得ることを示した。
ノイドの抗増殖効果に反応しない頚部腫瘍細胞系の増殖を抑制することを示すた
めに用いられる方法を記載する。重要なことは、AGN193109が添加レチ
ノイドの不存在下に抗増殖活性を示すことである。 実施例18 CaSki頚部癌誘導細胞系の増殖速度をAGN193109が
抑制する 我々は、CaSki細胞増殖へのEGFの効果を、単独または10-6 Mの濃度 でAGN191183レチノイド作動薬および/またはAGN193109ネガ
ティブホルモンと組み合わせて試験した。細胞増殖アッセイを、ECE16−1
細胞が関与する研究のために前述したように行った。EGFをレチノイド処理培
養物に添加して最終濃度を20 ng/mlにした。細胞を、10-6 M AGN19310
9の存在または不存在下にAGN191183(10-10〜10-6 M)で、合計3日
間、処理した。培地を、適切な場合は毎日、新らしい培地および2つのレチノイ
ド化合物の各々に取り替えた。細胞数を、前述のようにCOULTER計数器を用いて 決めた。
耐性であり、AGN193109が添加レチノイドの不存在下に抗増殖活性を示
すことを示した。培養物中にEGFが存在することはCaSki細胞増殖を刺激
する。この結論は、AGN191183を表わさないストリップバーと規定増殖
培地(「DM」)単独を表わすオープンバーの比較に基づく。AGN191183
処理は、CaSki腫瘍細胞系に抗増殖活性を有さなかった。我々は、レチノイ
ド作動薬濃度の1000倍増殖が、僅か20%の増殖速度の上昇にしか関与しないので
、レチノイド作動薬剤に関する細胞増殖速度の僅かな増加は考慮しなかった。す
なわち、AGN191183作動薬は、CaSki細胞の増殖速度に実質的に効
果を有していなかった。
が抑制することを示した。この結論は、「0」AGN191183ブラックバー
および「0」AGN191183ストリップバーとして現れる測定結果の比較に
基づく。すなわち、AGN193109は、AGN191183のようなレチノ
イド作動薬により増殖抑制されない頚部腫瘍細胞を処理するために使用された場
合、添加レチノイド作動薬の不存在下に生物学的反応を刺激することができる。
発見は、増殖に要求される遺伝子の発現を非配位RARが媒介するモデルに一致
する。AGN191183のようなRAR作動薬は実質的に効果を有さないか、
またはおそらく細胞増殖を僅かに促進するが、AGN193109は抗増殖効果
を有していた。AGN193109ネガティブホルモンはおそらくRARと結合
し、それによりNCP結合促進し、RARに不活性コンフォーメーションを採ら
せる。我々のモデルによれば、これは、非配位RARによりポジティブに調節さ
れる遺伝子活性を抑制する。非配位RARの活性を下方制御するAGN1931
09のこの能力は、おそらくRARおよびNCPの結合を促進するその能力から
生じる。
レチノイド作動薬が有用であることを知っている。網膜剥離後、網膜色素上皮(
RPE)は、脱分化し、増殖し、網膜下空間に移動する。この過程は、網膜再付
着を目指す外科操作の成功にネガティブな衝撃を与え得る。Campochiaroら[Inv
est. Opthal & Vis. Sci. 第32巻:65頁(1991年版)]は、ATRA のようなRAR作動薬が、一次ヒトRPE培養物の増殖に抗増殖効果を示すこと
を示した。レチノイド作動薬は、網膜再付着手術の後の網膜剥離の発生を低下さ
せることも示された[Fekratら、Opthamology 第10巻:412頁(1994年
版)]。以下の実施例に開示するように、我々は、AGN193109ネガティ
ブホルモンが、一次ヒトRPE培養物における増殖を抑制する能力を分析した。
るレチノイド拮抗薬の抗増殖効果を強化することを示すために用いられる方法を
記載する。 実施例19 ATRAの抗増殖活性をAGN193109が強化する ヒト網膜色素上皮(RPE)の一次培養物を、Campochiaroら[Invest. Opthal
& Vis. Sci. 第32巻:65頁(1991年版)]に記載の方法に従って調製した。5%
FBSを含むDMEM(Gibco製)内の24ウエル複ウエルプレートの16 mmウエル
に入れた。細胞を、エタノールビヒクル単独、エタノール中ATRA(10-10〜1
0-6 M)、エタノール中AGN193109(10-10〜10-6 M)、またはATR
A(10-10〜10-6 M)および10-6 M AGN193109で擬処理した。細胞に
、これらの化合物を適当な濃度で含む新しい培地を、2日毎に合計5日間供給し
た。細胞を、トリプシンで穏やかに消化することによりプレートから除去し、細
胞の数を電気細胞計数器で数えた。
増殖活性を劇的に強化することを示した。ATRAで一次RPE細胞を処理する
と、RPE細胞増殖が、対照培養物に対して、10-6 M ATRAで、用量依存的
に約40%減少した。AGN193109処理は、この操作で試験したいかなる濃
度でもRPE細胞の増殖速度を実質的に変化させなかった。予想外に、ATRA
(10-10〜10-6 M)と10-6 M AGN193109との組み合わせはATRA単
独よりも強力な抗増殖活性を有していた。すなわち、AGN193109同時処
理は、ATRAの抗増殖効果を強化した。より詳しくは、図に示される結果は、
10-8 M ATRAの抗増殖効果が、10-10 M のATRAを10-7 M AGN19 3109と組み合わせて使用するだけで得られることを示した。すなわち、AG
N193109ネガティブホルモンは、ATRAの抗増殖活性を約100倍向上さ せた。
および10-6 M AGN193109の効果との比較は、再度、AGN19310
9の存在下におけるATRAへの一次RPE細胞の感受性の明らかな増加を示し
た。この系において、AGN193109は、単独で用いた場合、レチノイド作
動薬としても機能せず、抗増殖効果も示さなかった。しかし、AGN19310
9の同時投与は、レチノイド作動薬の抗増殖活性を強化した。
法を用いて、一次RPE培養物における13-シスレチノイン酸(13-シスRA)の
抗増殖効果を強化する能力について試験した。注目すべきことに、13-シスRA は臨床的に重要である。より詳しくは、13-シスRAは、にきびを含む種々の病 状の治療に有用であり[Pechら、N. Engl. J. Med. 第300巻:329頁(1977年版) ;Jonesら、 Br. J. Dermatol, 第108巻:333頁(1980年版)]、インターフェロ ン2aと組み合わせて皮膚および頚部の鱗状細胞ガンの治療に有用である[Lippm
anら、J. Natl. Cancer Inst. 第84巻:241頁(1992年版):Mooreら、Seminars
in Hamatology 第31巻:31頁(1994年版)]。
M)の両方がRPE細胞増殖を効果的に抑制することを示した。注目すべきこと
に、13-シス異性体は、ATRAと比較すると、このアッセイにおいて約2倍の 水準で効果が低かった。AGN193109とATRAの同時投与(前記)を用
いて得られる結果と同様に、AGN193109(10-8または10-6 M)を13-シ
スRA(10-12〜10-6 M)と同時投与することは、RPE細胞増殖の抑制の媒介
において13-シスRAの強さを劇的に増加させた。13-シスRA単独での処理と対
照的に、AGN193109の同時投与は、13-シスRAの強さを上昇させた。 すなわち、AGN193109は、13-シスRAの抗増殖活性を強化した。
性をAGN193109が強化する能力を試験した。合成グルココルチコイドレ
セプター作動薬であるデキサメタソンは、強力な抗炎症および免疫抑制特性のた
めに臨床的に使用されている化合物群の一員である。甲状腺ホルモン(T3;3,3
',5'-トリヨードチロシン)は、主に甲状腺機能低下の治療におけるホルモン置 換治療のために用いられる天然甲状腺ホルモンレセプター作動薬である。これら
の実験において用いられる方法は、ATRAおよび13-シスRAを用いる操作の ために前述したものと同一である。
与は、核レセプター作動薬の抗増殖活性を強化することを示した。より詳しくは
、図19に表す結果は、デキサメタソン(10-11〜10-6 M)またはATRA(10-12 〜10-6 M)のいずれかによるRPE細胞の単一試薬処理は、RPE細胞増殖を実
質的に抑制できないことを示した。しかし、RPE細胞をデキサメタソン(10-11 〜10-6 M)および10-8または10-6 MのAGN193109で処理すると、AT
RAでの処理により得られる抑制と同程度にRPE細胞増殖を抑制した。同様に
、図20に表わす結果は、AGN193109が、甲状腺ホルモンの抗増殖活性
を強化することを示した。デキサメタソンを用いて得られた結果と同様に、RP
E細胞の増殖は、甲状腺ホルモン(10-11〜10-6 M)での単一試薬処理に耐性で
あった。しかし、RPE細胞を甲状腺ホルモン(10-11〜10-6 M)およびAGN
193109(10-8または10-6 M)で同時処理すると、甲状腺ホルモンに依存 するようにRPE細胞増殖を抑制した。我々は、AGN193109が、一次R
PE培養物を、これらの核レセプター作動薬の抗増殖効果に感受性にしたと結論
した。AGN193109がこれらの効果を媒介する機構には、NCP/RAR
相互作用の調整が関与しているようである。
子の発現へのAGN193109の効果を試験した。MRP8およびストロメリ
シン遺伝子の両方が、種々の生物学的系においてレチノイド作動薬により抑制さ
れることが知られている。例えば、Wilkinsonら[J. Cell Sci. 第91巻:221頁(
1988)]およびMadsenら[J. Invest. Dermatol. 第99巻:299頁(1992)]は、MR P8遺伝子発現が乾癬において上昇することを開示した。逆に、MRP8遺伝子
は、ヒト乾癬皮膚[Nagpalら、1995年発行]、ヒトケラチノサイト大量培養物[Cha
ndraratnaら、J. Invest. Dermatol. 第102巻:625頁(1994)]および培養ヒト新
生包皮ケラチノサイト[Thacherら、J. Invest. Dermatol. 第10巻:594頁(1995
)]においてレチノイド作動薬AGN190168により抑制される。Nagpalら[J
. Biol. Chem. 第270巻:923頁(1995)]は、ストメリシンmRNA水準が、培養
ヒト新生包皮ケラチノサイト内においてAGN190168のようなレチノイド
作動薬により抑制されることを開示した。我々は、AGN191183レチノイ
ド作動薬またはAGN193109での培養ヒト新生包皮ケラチノサイトの処理
に続いて、これらの遺伝子の調節された発現を分析した。
発現を抑制することを示すために用いられる方法を記載する。 実施例20 角化細胞においてAGN193109はMRP−8発現を阻害す
る 一次包皮角化細胞(Primary foreskin keratinocytes)を、Nagpalら[J.Biol.Ch
em. 270:923 (1995)]の記載の方法に従って単離し、Cloneticsから購入した角化
細胞増殖培地(KGM)において培養した。AGN191183(10-7M)ま
たはAGN193109(10-6M)を用いた3日間の処置の後に、処置したお
よび対照標準の角化細胞から、全細胞RNAを標準法に従って単離した。mRN
AがcDNCに逆転写され、次に、それが、グリセルアルデヒドリン酸デヒドロ
ゲナーゼ(GAPDH)ハウスキーピング遺伝子またはMRP−8のどちらかに特
異的なプライマーを用いるPCR増幅プロトコールにおける、鋳型として機能し
た。GAPDHプライマーは、配列: 5'-CCACCCATGGCAAATTCCATGGCA-3'(配列番号6)、および 5'-TCTAGACGGCAGGTCAGGTCCACC-3'(配列番号7) を有していた。MRP−8プライマーは、配列: 5'-ACGCGTCCGGAAGACCTGGT-3'(配列番号8)、および 5'-ATTCTGCAGGTACATGTCCA-3'(配列番号9) を有していた。MRP−8増幅反応からの一部(10μl)を、12サイクルか ら開始して21サイクルで終わるPCR増幅のサイクル毎に採取した。同様に、
GAPDH増幅反応の一部を、15サイクルから開始して24サイクルで終わる
PCRサイクル毎に採取した。サンプルを、2%アガロースゲル上で電気泳動に
かけ、臭化エチジウム染色によって分離された増幅生成物を検出した。増幅生成
物の染色強度は、所定のプライマーセットに特異的な出発mRNAの量の量的尺
度として機能した。
それぞれ、角化細胞におけるMRP−8の発現を阻害することを示した。染色さ
れたGAPDH増幅生成物の強度は、対照標準、AGN191183、およびA
GN193109で処置された角化細胞から単離された出発物質を表すゲルのレ
ーンにおいて、実質的に同等であった。GAPDH増幅生成物を表す弱いバンド
が、PCR増幅の18サイクルの後に除去されたサンプルに対応するレーンにお
いて、初めに検出された。ゲルの種々のレーン間の同等の染色強度は、出発物質
の同等の量が、全サンプルに使用されたことを示す。従って、MRP−8増幅生
成物を表す染色バンドにおける強度の差異は、種々の出発サンプル間のMRP−
8 mRNA発現の差異を示すものであった。予期した通り、MRP−8増幅シ グナルが、未処理の対照標準と比較して、AGN191183(10-7M)で処
置された培養物において阻害された。培養された角化細胞のAGN193109
(10-6M)処置もまた、染色された増殖生成物の低い強度から判断して、MRP
−8の発現を抑制した。
二マーカー遺伝子の発現も阻害した。Nagpalら[J.Biol.Chem. 270:923 (1995)] は、ストロメリジン(stromelysin) mRNA発現が、培養された新生ヒト包皮角
化細胞において、RAR特異性アゴニストによって下方制御されることを記載し
ている。Nicholsonら[EMBO J. 9:4443 (1990)]は、AP−1プロモーター成分が
、ストロメリジン−1遺伝子の、レチノイド依存性の負の制御において、役割を
担うことを記載している。従って、AGN193109がこの遺伝子の発現を変
化させることができるかどうかを判定することは興味あることであった。
ストの不存在下に、ストロメリジン−1遺伝子の発現を阻害することを示すため
に使用される方法を記載している。 実施例21 AGN193109は培養角化細胞におけるストロメリジン−1
の発現を阻害する 一次包皮角化細胞を、RARアゴニストAGN191183(10-7M)また
はAGN193109(10-6M)を用いて、24時間模擬処置(mock treated)
するか、あるいは処置した。模擬処置された、およびレチノイド処置された、角
化細胞から調製された合計RNAを逆転写し、得られるcDNAを、β−アクチ
ンまたはストロメリジン−1オリゴプライマーを用いて、Nagpalら[J.Biol.Chem
. 270:923 (1995);該開示を引用により本発明の一部とする。]の記載と同様に PCR増幅した。PCR増幅反応からのサンプル(10μl)を、PCR増幅の 18サイクルから開始して、3サイクル毎に、採取した。サンプルを2%アガロ
ースゲル上で電気泳動させ、臭化エチジウム染色後に検出した。
ドアゴニストの不存在下に、ストロメリジン−1遺伝子の発現を阻害することを
示した。特に、β−アクチン増殖生成物を表すエチジウム染色バンドは、PCR
の18サイクル後に、アガロースゲル中に容易に検出された。全てのバンド強度
が、増殖反応の追加サイクルと共に増加するが、一方、AGN191183処置
細胞のサンプルにおいては幾分弱かった。このことは、AGN191183で処
置した細胞に対応する出発サンプル中に、わずかに少ない量のRNAが存在した
ことを示した。この結果はまた、PCR増殖の33サイクルにおいて開始して、
ストロメリジン−1 mRNAが模擬処置された角化細胞において検出されたこ とも示す。予期したとおり、模擬処置サンプルから誘導されるサンプルと比較し
た場合の、より弱いバンド強度から判断して、ストロメリジン−1 mRNA発 現が、AGN191183(10-7M)処置の後に阻害された。β−アクチン増
殖生成物の強度に標準化させた、MRP−8の発現の測定において得られる結果
と一致したときに、角化細胞のAGN193109(10-6M)処置が、ストロ
メリジン−1 mRNAレベルの下方制御を生じた。事実、AGN193109 処置によって刺激された下方制御は、RARアゴニストANG191183を用
いた角化細胞の処置によって生じた下方制御と識別できなかった。
アゴニストの活性を調節することに関して、3つの可能な効力のいずれかを有す
ることができる。最初に、AGN193109が効力を有さない。第二に、AG
N193109がアゴニストの効力に拮抗し、それによって、アゴニストの活性
の減少に導く。最後に、AGN193109がアゴニストの活性を強化し、それ
によって、アゴニストによって生じる測定効果の刺激に導く。
セプターアゴニスト、およびステロイドレセプター上科の他の構成員に結合する
アゴニストを包含する。アゴニストの後者の種類は、ビタミンDレセプター、グ
ルココルチコイドレセプター、および甲状腺ホルモンレセプターアゴニストを包
含する。ペルオキシソームプロリフェレーター(proliferator)活性化レセプター
、エストロゲンレセプター、および現在未知のリガンドを有するオーハン(orpha
n)レセプターも、AGN193109によって強化される。ステロイド上科アゴ
ニストがRARアゴニストである場合には、AGN193109は、そのアゴニ
ストに拮抗するか、または強化するかのいずれかである。AGN193109と
組み合わせて使用されるアゴニストが、RAR以外の核レセプターに結合し得る
化合物である場合には、AGN193109の同時投与は効力を有さないか、ま
たは、その系をアゴニストに感受性にし、それによりアゴニストの活性が強化さ
れる。
するかを判断するための、一般的な例示的方法を下記に記載する。この記載は、
ステロイドレセプター上科アゴニストとAGN193109との同時投与に関す
る可能な結果の各々を例示する。核レセプターアゴニストの活性を調節するAG
N193109の能力を評価するのに有用な生物学的系は、確立された組織培養
細胞系、ウイルス性形質変換細胞系、インビトロ一次培養細胞、および生体を使
用するインビボ研究を包含するが、それらに限定されない。そのような系におけ
るAGN193109の生物学的効力の測定は、種々の生物学的終了点(biologi
cal endpoint)のいずれかを判定することを含む。これらの終了点は、以下のも のを包含する:細胞増殖の分析、プログラムされた細胞死(アポトーシス)の分析
、遺伝子発現アッセイによる細胞の分化状態の分析、ヌードマウスにおける細胞
の腫瘍形成能力の分析、およびリポーター遺伝子構築物の一時的または安定導入
後の遺伝子発現の分析。
くつかの"Y"細胞遺伝子マーカーが維持される標準培養条件下において、レチノ
イドアゴニストの添加が、豊富な"X"mRNAの減少を導く。遺伝子Xの発現の
分析は、細胞mRNAの単離、ポリメラーゼ連鎖反応による豊富なX mRNA レベルの測定、リボヌクレアーゼ保護またはRNAブロット法、例えばノーザン
分析によって、評価することができる。器官Zからの単離後、一次Y細胞を適切
な増殖培地で培養する。次に一次培養物を、細胞集団の拡大のために、組織培養
プレートで培養する。この工程は、4つのサンプルグループに細胞を分離するの
を容易にし、それによって種々の投与量のレチノイドアゴニストおよびAGN1
93109を加えることができる。第一グループは標準対照であり、ビヒクルの
みを添加する。第二グループは、10-11〜10-6Mの範囲の最終濃度を与える のに充分な量で、エタノール中のRARアゴニスト レチノイン酸を与える。最 低用量は、系の感受性に依存して経験的に決める必要がある。そのような決定は
、当業者にとって日常実験の範囲に含まれる。第三グループは、グループ2の細
胞の処置に使用したのと同様の投与量の核レセプターアゴニスト、および一定投
与量のAGN193109の両方を投与する。グループ3の細胞の処置に使用さ
れるAGN193109の投与量も経験的に決定する必要があるが、RAR亜類
型に関するAGN193109の親和定数(Kd)に近似している(即ち、少なくと
も10-8M)。第四グループは、グループ3のアゴニスト同時投与に使用される 用量を最小限含む投与量でAGN193109を与える。 この投与計画に代わ るものは、グループ2で指定したように、前記の例に記載されたレチノイドアゴ
ニストに代わってAGN193109を用い、そして、グループ3および4に指
定したように、AGN193109の代わりに一定投与量のレチノイドアゴニス
トを用いる。適切なインキュベート期間の後、アゴニスト活性の指標として測定
される生物学的終了点の決定に適した方法で、細胞を採取する。
効果の分析は、前記の4つのプロトコールの各々に従って処置される細胞から採
取されるmRNAプールにおけるmRNA種の量の比較を含む。対照標準細胞か
ら誘導されるRNAは、X mRNAの基線発現を判定するのに使用され、無抑 制に対応する条件を表す。このレベルと、レチノイン酸で処置した細胞から誘導
されるmRNAプールにおいて測定されるレベルとの比較は、遺伝子発現におけ
るこのアゴニストの効力の判定を可能にする。レチノイン酸処置から生じる特異
的mRNAの抑制の数量化したレベルを次に、AGN193109単独、または
レチノイン酸と組み合わせたAGN193109のどちらかを用いて同時に処置
した細胞からのmRNAの量と比較することができる。この一般化した例は、レ
チノイドアゴニストによって抑制される遺伝子の発現における同時投与AGN1
93109の効力の分析を例示し、一方で、この例は、レチノイドアゴニストに
よって誘起される遺伝子に対する同時投与AGN193109の効力の分析も記
載している。AGN193109が、アゴニストとして、ネガティブホルモンと
して、挙動するか、または特定の系において効力を有さないかどうかを判定する
ための重要な特徴は、AGN193109の存在および不存在下の、効力の大き
さの量的比較を含む。
ン酸とのAGN193109の同時処置が、レチノイン酸のみで処置した細胞に
おいて測定されるレベルと比較して、より強く抑制されているX mRNA発現 レベルを生じた場合である。特に、Y軸にプロットされる生物学的効力(即ち、
X mRNA量の抑制)対X軸上のアゴニストの投与量(対数尺度)の、用量応 答曲線の比較が、AGN193109同時処置の存在または不存在下のX mR NA量のアゴニスト媒介抑制の比較を可能にする。アゴニストに対する生物学的
応答を感受性にし、それによってアゴニストの活性を強化させるAGN1931
09の能力が、用量応答曲線における左方向のシフトによって示される。特に、
AGN193109の存在下において、アゴニストのみを用いて得られるのと同
じ生物学的効力を得るために、より少ないアゴニストが必要とされる。
イン酸とのAGN193109の同時処置が、レチノイン酸のみで処置した細胞
において測定されるレベルと比較して、より少なく抑制されているX mRNA 発現レベルを生じた場合である。AGN193109の存在または不存在下にお
ける、X mRNA発現対アゴニストの対数投与量の用量応答曲線の比較が、用 量応答曲線における右へのシフトを説明する。特に、AGN193109の存在
下において、アゴニストのみでの単一剤処置で得られるのと同じ生物学的効力を
得るために、より多くのアゴニストが必要である。
は、レチノイドアゴニストを用いるAGN193109の同時投与に関する実験
結果を記載している。しかし、AGN193109と共に同時投与されるアゴニ
ストが、RAR以外のステロイドレセプター上科の構成員を結合および活性化す
ることができるアゴニストである場合、アゴニストに拮抗する代わりに、AGN
193109がアゴニストの活性に効力を有さないということが可能になる。そ
のようなアゴニストを用いるAGN193109の同時処置が、アゴニストのみ
で処置された細胞において測定されるレベルと等しいmRNA発現のレベルを生
じる場合、RAR:NCP結合の促進によってNCPの利用性に影響を及ぼすA
GN193109の能力が、この系においては示されない。これは、AGN19
3109が同時投与アゴニストに対して効力を有さない例である。
するための、前記の一般化された例に記載されている方法が、実施例7に記載の
方法によって例示される。3つのレチノイン酸レセプターの1つ、およびレチノ
イドアゴニスト誘起性MREp−Lucリポーター構築物を用いて同時トランスフェ
クションしたCV−1細胞に、エタノール(対照標準、グループ1)、最終濃度1
0-9〜10-6MのAGN193109(グループ2)、10-8Mのレチノイン酸と
共に同時投与した最終濃度10-9〜10-6のAGN193109、またはレチノ
イン酸(10-8M、グループ4)のいずれかを投与した。グループ1のルシフェラ
ーゼ活性とグループ4のルシフェラーゼ活性との比較によって、添加AGN19
3109の不存在下における、ルシフェラーゼリポーター遺伝子のレチノイドア
ゴニスト誘起発現のレベルの決定が可能になった。グループ3の細胞におけるル
シフェラーゼリポーター遺伝子発現と、グループ4の細胞において測定されるル
シフェラーゼリポーター遺伝子発現との比較は、AGN19309が、この系に
おいてレチノイドアゴニストのアンタゴニストとして作用することを示した。
ノイドアゴニスト媒介発現のアンタゴニストとして、AGN193109が機能
することを、実施例17において判定するために、レチノイドアゴニストと共に
同時投与されるAGN193109の効力を判定する一般的な例において記載し
た方法を同様に使用した。この方法において、ECE−16−1細胞の処置は、
EGFのみで処置された対照標準サンプル(グループ1)、最終濃度10-6MのE
GFとAGN193109の組み合わせを用いて処置されたサンプル(グループ 2)、10-8MのレチノイドアゴニストAGN191183の単一投与と同時投 与された最終濃度10-10〜10-6MのEGFとAGN193109の組み合わ せを用いて処置されたサンプル(グループ3)、および10-8MのEGFとAGN
191183の組み合わせを用いて処置されたサンプル(グループ4)を含む。処
置の3日後、細胞増殖速度を求めた。EGFによって細胞が刺激されて増殖した
という判定は、EGFを含有しない規定培地に細胞が曝露される追加の制御処置
が含まれたので可能であった。グループ1の細胞の数とグループ4の細胞の数と
の比較によって、RARアゴニストAGN191183が、ECE−16−1細
胞のEGF刺激増殖を抑制したという判定を可能にした。グループ3とグループ
4との比較は、この系において、AGN193109がRARアゴニストの活性
に拮抗することを示した。
ー遺伝子を用いてトランスフェクションしたHela細胞における、各レセプター アゴニストの活性を、AGN193109が強化させたことを判定するために、
レチノイドアゴニストと共に同時投与されたAGN193109の効力を判定す
るための一般的な例において記載した方法を、実施例14においても使用した。
トランスフェクションされた細胞の処置は、ビヒクルのみ(対照標準、グループ 1)、最終濃度10-10〜10-7Mの1,25−ジヒドロキシビタミンD3(グルー
プ2)、最終濃度10-8Mまたは10-7MのAGN193109と共に同時投与
される最終濃度10-10〜10-7Mの1,25−ジヒドロキシビタミンD3(グル ープ3)、および最終濃度10-8Mまたは10-7Mの単一剤処置としてのAGN
193109(グループ4)を含む。グループ1(対照標準)細胞において測定
されたルシフェラーゼ活性と、グループ2細胞のルシフェラーゼ活性のと比較に
よって、1,25−ジヒドロキシビタンD3刺激ルシフェラーゼ活性が、用量依存
性であるという判定を可能にした。グループ4(AGN193109単一剤処置)
の細胞におけるルシフェラーゼ活性と、グループ3(AGN193109同時投 与)の細胞において測定されたルシフェラーゼ活性との比較も同様に、所定濃度 のAGN193109の存在下の、用量依存性1,25−ジヒドロキシビタミン D3刺激ルシフェラーゼ活性の判定を可能にした。この例において、ゼロの値は 、AGN193109のみで処置された細胞(グループ4)におけるルシフェラ
ーゼ活性を表した。そのような投与計画は、3つの1,25−ジヒドロキシビタ ミンD3用量応答曲線の比較を可能にした。AGN193109の不存在下の1,
25−ジヒドロキシビタミンD3の用量応答曲線と、AGN193109(10- 8 または10-7M)の同時供与を表す曲線との比較は、半最大応答における左方 向のシフトによって明らかであるように、アゴニスト活性の強化を示した。
ium cells)の一次培養物において、RARアゴニストの抗増殖活性を強化したこ
とを、実施例19において判定するために、レチノイドアゴニストと共に同時投
与されるAGN193109の効力を判定するための一般例に記載された方法を
、さらに使用した。細胞の処置は下記のものを含む:エタノールビヒクルのみ( グループ1)、最終濃度10-10〜10-6Mのレチノイン酸(グループ2)、10-6 MのAGN193109と共に同時投与される最終濃度10-10〜10-6Mのレ チノイン酸(グループ3)、および最終濃度10-10〜10-6MのAGN1931 09のみ(グループ4)。グループ1および2の細胞を用いて得られたアッセイ結
果の比較は、レチノイン酸による、これらの細胞の増殖の用量依存性阻害の判定
を可能にした。同様に、グループ3の細胞を用いて得られる結果と、グループ1
の細胞を用いて得られる結果との比較は、同時投与AGN193109の存在下
の、レチノイン酸による、これらの細胞の増殖の用量依存性阻害の判定を、可能
にした。グループ4は、AGN193109が、単一処置剤として使用される場
合には、これらの細胞の増殖速度を実質的に変化させることができないことを示
した。グループ2および3において生じる細胞増殖のレチノイン酸媒介抑制の用
量応答曲線の比較は、AGN193109が、一次RPE細胞を、RARアゴニ
ストの抗増殖効力に対して感受性にし、それによってRARアゴニストの活性を
強化させるという結論に対する根拠を与える。
増殖が、HPV不死化ECE−16−1細胞の増殖と異なって、レチノイドアゴ
ニストの処置によって阻害されなかったことを記載している。本明細書に開示す
るように、CaSki細胞増殖が、レチノイドアゴニストの不存在下に、AGN1 93109によって阻害されることを我々は意外にも見い出した。下記の実施例
は、インビボで、CaSki細胞腫瘍の増殖を阻害するために、AGN19310 9をどのように使用し得るかを示すものである。
既知の技術を用いて、腫瘍形成を評価する。注入後、マウスを任意に、対照標準
グループと被験グループとに分ける。対照標準グループには偽薬を与える。被験
グループには、AGN193109を投与する。偽薬を投与される動物は、コー
ン油の胃内挿管を受ける。被験動物には、処置の期間中、毎日、コーン油中のA
GN193109を20μMol/kgを投与する。腫瘍体積を、目盛付きカリパスを
用いて測定する(立方ミリメートル)。腫瘍体積を、時間の関数としてプロットす
る。AGN193109を投与されたマウスは、試験期間中の腫瘍寸法および数
から判断して、対照標準マウスにおける腫瘍と比較して、増殖速度が有意に減少
した腫瘍を示す。この結果は、レチノイドアゴニストの投与を包含する治療に耐
性である進行頸癌の増殖を、AGN193109が阻害することをインビボで立
証するものである。
おいて、CaSki細胞増殖がAGN193109によって阻害されたことを、我 々は本明細書において開示した。CaSki細胞の増殖を阻害するAGN1931 09の能力は、レチノイドアゴニスト治療に非感受性である頸癌を治療的に処置
するために、AGN193109を使用し得ることを示唆した。下記実施例は、
頸癌の治療におけるAGN193109の治療的可能性を評価するために使用し
得る1つの方法を例示するものである。
を得る。外植腫瘍からの細胞を、標準法に従って、組織培養で増殖させて、3つ
のサンプルグループに分割するのに充分な細胞数を得る。Agarwalら[Cancer Res
. 54:2108 (1994)]の記載の培養条件を、この目的に使用する。第一グループは 、対照標準として保存し、ビヒクル(エタノール)のみを与える。第二グループを
、10-10〜10-6Mの濃度のRARアゴニストレチノイン酸で処置する。第三 グループを、10-10〜10-6の範囲の投与量のAGN193109で処置する 。細胞に新しい増殖培地を毎日与え、各サンプルグループに適切なように、前記
のレチノイドを与える。3日後に、電気セルカウンターを用いて、細胞をカウン
トする。対照標準培養物における細胞の数と、レチノイン酸処置培養物における
細胞数との比較は、RARアゴニストが、培養された頸癌細胞の増殖速度を実質
的に阻害しないことを示す。これと対照的に、AGN193109で処置した細
胞は、対照標準グループにおける細胞数と比較した場合、細胞数の用量依存性の
減少を示す。AGN193109処置が、培養頸癌細胞の増殖を阻害するこの結
果は、AGN193109が、転移疾患を有する頸癌患者を治療するのに有効な
治療薬であることを示している。
この適応症におけるAGN193109の治療的有益性を立証しようとする無作
為の臨床試験に加える。患者を2つのグループに分ける。第一のグループは、対
照標準グループであり、一方、第二グループの構成員は、AGN193109で
処置される。AGN193109を、医薬的に許容されるビヒクルと組み合わせ
て、当業者に既知の方法に全て従って、全身投与に適した組成物を製造する。対
照標準グループには、偽薬製剤を投与し、被験グループには、AGN19310
9ネガティブホルモンを含有する製剤を投与する。患者への投与は、最大許容用
量において行い、3ヶ月〜1年の期間中、1日おきに行った。試験の結果を、経
時における無疾患の生存者の計数によって、定量化した。AGN193109を
投与された患者は、無疾患生存において有意な増加を示し、この中には、転移疾
患の完全な鎮静を示す不均衡数の患者を含む。この結果は、レチノイン酸のよう
なレチノイドアゴニストの抗増殖効果に非反応性である頸癌のインビボ治療に関
して、AGN193109が治療的有効性を有することを示す。
おいて、RARアゴニストの抗増殖活性を強化させた。従って、同じ治療的終了
点を得るために、より少ない量のRARアゴニストが必要とされるので、AGN
193109とRARアゴニストとのインビボ同時投与が、アゴニストの治療的
指数を増加させると考えることは合理的なことである。さらに、AGN1931
09が、ヒト網膜色素上皮細胞の一次培養物を、グルココルチコイドおよび甲状
腺ホルモンレセプターアゴニストの抗増殖効果に対して感受性にすることが立証
された。AGN193109と、RARアゴニスト(13−シス レチノイン酸) または甲状腺ホルモンレセプターアゴニストとのそれぞれの同時投与によって得
られる増加した治療的指数を示すための2つの別の試験に、下記のPVRのウサ
ギモデルを使用する。注目すべきことに、インビボで一次RPE細胞の増殖を阻
害するレチノイドアゴニストが、インビボにおいて網膜剥離の頻度をも阻害する
ことを示すために、Senら[Arch.Opthalmol. 106:1291 (1988)]に記載されている
網膜再剥離のウサギモデルが使用されている[Araizら、Invest.Opthalmol. 34:5
22 (1993)]。従って、網膜剥離の防止における治療としての、それらの使用に関
して、レチノイドアゴニストのインビトロ活性とインビボ活性との間の相関関係
が、既に確立されている。下記実施例は、網膜剥離を防止する治療用途において
、AGN193109をどのように使用し得るかを示すものである。
レセプターアゴニストの治療的可能性を増加させるためのAGN193109の
使用 第一試験においては、Senら[Arch.Opthalmol. 106:1291 (1988)]に記載されて
いる方法に従って、ウサギの目の硝子体腔に、ヒトRPE細胞を注射する。硝子
体内注射の後、ウサギを5つのグループに分ける。第一グループ(対照標準)に
は、硝子体内注射によってビヒクルのみを与える。第二グループには、単一治療
剤としてのレチノイン酸(100μg)を硝子体内注射によって与える。第三グ ループには、単一治療剤としてのAGN193109(100μg)を硝子体内 注射によって与える。第四グループには、グループ2に投与した量の1/10の 投与量で、RARアゴニスト(レチノイン酸)を、硝子体内注射によって与える
。第五グループには、AGN193109(100μg)とレチノイン酸(10 μg)との組み合わせを、硝子体内注射によって与える。動物は、ヒトRPE細 胞の硝子体内注射の1日後に、適切な治療の、単一の硝子体内注射を受ける。7
、14、および28日目に倒像検眼法によってウサギを検査し、牽引網膜剥離(
tractional retinal detachment)の頻度および程度を評価した。100μgのレ
チノイン酸を注射したグループのウサギは、対照標準ウサギ、あるいはAGN1
93109またはレチノイン酸(10μg)のみのどちらかを投与されたウサギ と比較して、網膜剥離の有意に減少した頻度および程度を示す。AGN1931
09とレチノイン酸(10μg)の組み合わせを投与されたグループのウサギは 、対照標準、AGN193109、またはレチノイン酸(10μg)のいずれか のグループのウサギと比較して、網膜剥離の有意に減少した頻度および程度を示
す。この結果は、PVRのインビボモデルにおいて、AGN193109が、R
ARアゴニストレチノイン酸の治療指数を向上させることを示す。
注射を行い、次に4つのグループに分ける。第一グループ(対照標準)には、硝
子体内注射によって、ビヒクルのみを与える。第二グループには、単一剤治療と
しての甲状腺ホルモン(100μg)を硝子体内注射によって与える。第三グル ープには、単一剤治療としてのAGN193109(100μg)を硝子体内注 射によって与える。第四グループには、AGN193109(100μg)と甲 状腺ホルモン(100μg)との組み合わせを投与する。7、14、および28 日目に倒像検眼法によってウサギを検査し、牽引網膜剥離の頻度および程度を評
価した。4つのグループの網膜剥離の頻度および程度の比較は、AGN1931
09または甲状腺ホルモンのどちらかによる単一剤治療が、対照標準ウサギと比
較した場合に、網膜剥離を阻害しないことを示す。これと対照的に、AGN19
3109と甲状腺ホルモンとの組み合わせを投与されたウサギのグループは、有
意に減少した、網膜剥離の発生および程度を示す。この結果は、AGN1931
09が、PVRのインビボモデルにおいて、甲状腺ホルモンの治療指数を向上さ
せることを示す。
RARアゴニストの治療指数を高めるために、AGN193109をどのように
使用し得るかを例示する。 実施例25 RARアゴニスト 13−シス レチノイン酸の治療指数の増加 PVRから生じる網膜剥離を有する成人ボランティアの集団を最初に同定する
。個体は、この分野において標準的である方法を用いて、剥離の外科的修復を受
ける。次に、患者を5つのグループに分ける。対照標準グループは、網膜剥離の
外科的修復を受ける患者から成り、レチノイド化合物を投与しない。第二グルー
プは、40mgの経口13−シス レチノイン酸を、手術後4週間、1日に2回投 与する。第三グループは、40mgの経口AGN103109を、手術後4週間、
1日に2回投与する。第四グループは、4mgの経口13−シス レチノイン酸と 組み合わせた40mgの経口AGN193109を、手術後4週間、1日に2回投
与する。治療プロトコールおよび薬効評価を、本質的に、Fekratら[Ophthalmolo
gy 102:412 (1995)]の記載のように行う。
既知の眼科検査によって9ヶ月間監視する。40mgの経口13−シス レチノイ ン酸を投与された患者は、対照標準患者、4mgの経口13−シス レチノイン酸 を1日に2回、または40mgの経口AGN193109を1日に2回、投与され
た患者と比較した場合に、有意に減少した網膜再剥離の発生を示す。術後4週間
、1日に2回の、40mg経口AGN193109と4mg経口13−シス レチノ イン酸との組み合わせを投与される患者グループの検査は、この患者グループの
治療結果が、術後4週間、1日に2回の、40mg経口13−シス レチノイン酸 を投与される患者と等しい、またはより優れていることを示す。この結果は、P
VR患者における網膜再剥離の頻度および程度が減少することによって、AGN
193109ネガティブホルモンが、RARアゴニストの治療指数を向上させる
ことを示す。
ンとして、AGN193109が機能し得ることを、我々は前記に示した。さら
に我々は、単純なアンタゴニストであるRARリガンドを、ネガティブホルモン
活性を有するものから識別するために、ERE−tk−Lucルシフェラーゼリ
ポータープラスミドおよびER−RXR−αおよびRAR−γ−VP−16リセ
プター発現プラスミドで同時トランスフェクションしたCV−1細胞を用いるア
ッセイを記載した。
ARネガティブホルモンが、RAR媒介転写活性の抑制を媒介するとの結論に達
した。さらに、核リセプターのステロイド上科の構成員間のNCPの相互共有と
一致する方法で、AGN193109が、他の核レセプターのアゴニストの効果
を強化することができることを我々は示した。このように、これらの非RAR核
レセプターにおいて、ネガティブホルモン活性を有する化合物を同定するために
、リガンドをデザインし、スクリーニングすることができる。
R−αおよびRAR−γ−VP−16リセプター発現プラスミドで同時トランス
フェクションしたCV−1細胞の使用に基づく、RARネガティブホルモンスク
リーニングの1つの方法を、一般に、RAR−γ−VP−16プラスミドのRA
R−γ成分が、ペルオキシソームプロリフェレーター(proliferator)活性化レ
セプター(PPAR)、ビタミンDレセプター(VDR)、甲状腺ホルモンレセ
プター(T3R)、またはRXRとヘテロ二量体化し得る他のステロイド上科の
核レセプターのそれに変換するように適合させることができる。そのようなプラ
スミドで同時トランスフェクションされたCV−1細胞は、ルシフェラーゼ活性
の高い基礎レベルを発現させる。RAR−γ成分に置き換えられるレセプターの
、リガンド結合ドメインを結合し得るリガンドは、ルシフェラーゼ活性を抑制す
るそれらの能力を測定することによって、ネガティブホルモン活性に関して容易
にスクリーニングすることができる。
コルチコイドおよびエストロゲンレセプター)に関しては、GR−VP−16ま
たはER−VP−16レセプター、および異質プロモーター成分に融合した適切
なグルココルチコイドまたはエストロゲン応答性成分およびルシフェラーゼまた
は他のリポーター遺伝子から成るルシフェラーゼリポータープラスミドを用いて
、同様の最終結果が得られる。一般化されたネガティブホルモンスクリーニング
アッセイの本質的な特徴は、それのために、逆アゴニストがスクリーニングされ
る特定の核レセプターのリガンド結合ドメインを少なくとも含むことであり、お
よび、核レセプターリガンド結合ドメインをリポーター遺伝子のプロモーターに
局在させる方法である。このことは、リセプターの天然のDNA結合部位を用い
て、または、異質DNA結合ドメインを有するキメラリセプターの構成、および
異質DNA結合ドメインによって認識されるDNA制御要素の制御下にあるリポ
ーター遺伝子の対応する使用によって、達成することができる。好ましい実施態
様においては、逆アゴニストがそれのためにスクリーニングされる核リセプター
を発現するプラスミドが、この核レセプターを、HSV VP-16活性化ドメイ
ンのような、構成性の活性化ドメインを含有する融合タンパク質として発現して
、高い基礎活性を与える。この高い基礎活性は、効果的にアッセイ感度を増加さ
せ、それによって、添加核リセプターアゴニストの不存在下に基礎転写活性を抑
制する核リセプターリガンドの分析を可能にする。
を有する化合物に関してスクリーニングするために使用し得る1つの方法を例示
する。 実施例26 甲状腺ホルモンレセプターネガティブホルモンを同定する方法 CV−1細胞を、ルシフェラーゼリポータープラスミドERE−tk−Luc
およびプラスミドER−RXR−αおよびT3R−VP−16を用いて、同時ト
ランスフェクションする。RAR−γ−VP−16のRAR−γ成分が、甲状腺
ホルモンレセプターcDNAによって置換されていることは除いて、T3R−V
P−16はプラスミドRAR−γ−VP−16と同一である。このように、T3
R−VP−16は、甲状腺ホルモンレセプターのN末端を有するフレーム中に、
HSV VP−16の活性化ドメインを含有する融合タンパク質を発現する。標 準的なトランスフェクションおよび細胞培養方法を、この目的に使用する。トラ
ンスフェクション後に、細胞を濯ぎ、活性炭で抽出した10%ウシ胎児血清を含
有する増殖培地を与えた。細胞を、ビヒクルのみ(エタノール)、甲状腺ホルモ
ン(10-9〜10-10M)、または化合物TR−1(10-9〜10-6M)を用い て処置する。TR−1は、競合結合試験において、甲状腺ホルモンレセプターに
対して強い親和性を示すが、甲状腺ホルモン反応性リポーター遺伝子および甲状
腺ホルモンリセプター発現プラスミドを使用する一時的な同時トランスフェクシ
ョントランス活性化アッセイにおいて、トランスフェクションされた甲状腺ホル
モンレセプターを活性化しない、合成甲状腺ホルモンレセプターリガンドである
。さらに、TR−1は、甲状腺ホルモン媒介トランス活性化に拮抗することがで
き、従って、甲状腺リセプターアンタゴニストである。
ランスフェクションしたCV−1細胞からのルシフェラーゼ活性の分析は、ビヒ
クル処置細胞におけるルシフェラーゼリポーター活性の高い基礎レベルを示す。
甲状腺ホルモンで処置した細胞は、投与量に依存して、ルシフェラーゼ活性の僅
かな増加を示す。TR−1で処置した細胞は、ルシフェラーゼ活性において、用
量依存性の減少を示す。このことは、おそらくはNCPと甲状腺ホルモンリセプ
ターとの増加した相互作用によって、TR−1が甲状腺リセプター逆アゴニスト
活性を示すことを示すものである。
抑制される。この観察の治療的価値が、網膜再付着手術後の術後使用レチノイド
治療において例示されている。AGN193109RARネガティブホルモンが
、一次RPE細胞を、同時投与法におけるATRAおよび13−シス レチノイ ン酸の抗増殖効果に対して感受性にし得ることを、我々は前記に示した。さらに
、AGN193109はまた、RPE細胞を、他の核レセプターアゴニストの抗
増殖効果に対しても感受性にすることが示された。特に、AGN193109は
、RPE細胞を、グルココルチコイドアゴニスト、デキサメタソン、および甲状
腺ホルモンアゴニスト3,3',5−トリヨードチロニン、T3の抗増殖効果に対 して感受性にした。このデータは、核レセプター種の構成員の間で共有されるN
CPの利用性をAGN193109が調節した我々のモデルと一致した。同様に
、甲状腺ホルモンリセプター逆アゴニストTR−1を用いるRPE細胞の処置は
、共有されたNCPの利用性を変化させ、それによって、RARアゴニスト13
−シス レチノイン酸のような非甲状腺リセプターアゴニストを用いる同時投与 が、単一処置剤としての13−シス レチノイン酸と比較して、RPE培養物へ の増加した抗増殖効果に導く。
り感受性にするために使用し得る1つの方法を例示する。注目すべきことに、こ
の実施例は、いかにして、ネガティプホルモンとの同時投与によってRARアゴ
ニストの活性を強化し得るかをさらに示す。 実施例27 TR−1甲状腺ホルモン逆アゴニストの同時投与によって、RA
Rアゴニストの抗増殖効果に対して、一次網膜色素上皮細胞を感受性にする ヒト一次RPE細胞を得、標準法に従って培養する。培養細胞を4つのグルー
プに分け、下記のように処置する。グループ1には、ビヒクル(エタノール)のみ
を与える。グループ2は、13−シス レチノイン酸で処置する。グループ3は 、10-11〜10-1Mの範囲の濃度の甲状腺ホルモン逆アゴニストTR−1で処 置する。グループ4は、10-11〜10-6MTR−1の範囲の濃度で、13−シ スレチノイン酸を用いて同時処置する。合計5日の処置中、2日毎に細胞に新た
な増殖培地を与え、適切な化合物で再処置する。実験期間中の増殖速度を、電気
細胞カウンターを用いて、培養物中の細胞数を測定することにより定量化した。
細胞増殖速度を示し、培養物の測定増殖速度に対して、この逆アゴニストの影響
はない。13−シス レチノイン酸で処置した細胞(グループ2)は、細胞数にお いて用量依存性の減少を示す。グループ4細胞(13−シス RAおよびTR−1
同時投与)の細胞増殖における用量依存性の減少と、グループ3において得られ るそれとの比較は、グループ2細胞と比較したグループ4における、このRAR
アゴニストの用量応答曲線における左へのシフトによって判断されるように、R
PE培養物を13−シス レチノイン酸の抗増殖効果に対して感受性にするTR −1甲状腺ホルモンレセプター逆アゴニストの同時投与の能力を示す。
スアクチベーション(transactivation)を阻害したことを示す一連の線グラフ である。図2Aと2BはRAR-α受容体における活性を示し;図2Cと2DはRAR-β受容体
における活性を示し;図2Eと2FはRAR-γ受容体における活性を示す。図2A,2Cお よび2Eにおいて、白抜き四角印はレチノイン酸による処理を示しそして黒丸印は
AGN193109による処理を示す。図2B,2Dおよび2Fにおける1本の線は10-8MのATRA および各種濃度のAGN193109で処理した後に測定したルシフェラーゼ活性を示す 。
び発現プラスミドER-RAR-αでトランスフェクトされ、各種濃度のATRA(図3A) またはAGN193109(図3B)で処理されたCV-1細胞において検出されたルシフェラ ーゼ活性を示す線グラフである。データ点は、3個の独立のルシフェラーゼ測定 値の平均値±SEMを示す。同時にトランスフェクトされるER-RAR-αの異なる量(
0.05,0.1および0.2μg/ウエル)を用いて実施したトランスフェクションの結果
を各図に示してある。
び発現プラスミドER-RAR-βでトランスフェクトされ、各種濃度のATRA(図4A) またはAGN193109(図4B)で処理されたCV-1細胞内のルシフェラーゼ活性を示す 線グラフである。データの点は、3個の独立のルシフェラーゼ測定値の平均値±S
EMを示す。同時にトランスフェクトされるER-RAR-βの異なる量(0.05,0.1およ び0.2μg/ウエル)を用いて実施したトランスフェクションの結果を各図に示す
。
び発現プラスミドER-RAR-γでトランスフェクトされ、各種濃度のATRA(図5A) またはAGN193109(図5B)で処理されたCV-1細胞内で検出されたルシフェラーゼ 活性を示す線グラフである。データ点は、3個の独立のルシフェラーゼ測定値の 平均値±SEMを示す。同時にトランスフェクトされるER-RAR-γの異なる量(0.05
,0.1および0.2μg/ウエル)を用いて実施したトランスフェクションの結果を各
図に示してある。
受容体発現プラスミド;またはERE-tk-LucリポータープラスミドおよびER-RXR- αキメラ受容体発現プラスミドにRAR-γ-VP-16発現プラスミドを組み合わせたも
ので、同時トランスフェクトされたCV-1細胞の、ATRAとAGN193109の用量応答を 示す。ER-RXR-αで同時にトランスフェクトされた細胞を、ATRA(四角印)とAGN
193109(菱形印)で処理した。ER-RXR-αとRAR-γ-VP-16を組み合わせたもので 同時にトランスフェクトされた細胞をATRA(円形印)またはAGN193109(三角形 印)で処理した。
示す線グラフである。試験化合物は、AGN193109(四角印)、AGN193357(白抜き
菱形印)、AGN193385(丸形印)、AGN193389(三角形印)、AGN193840(黒四角 印)およびAGN192870(黒菱形印)である。
α発現の構造体でトランスフェクトされ次に横軸に示した濃度の試験化合物で処
理したCV-1細胞の溶解物について記録されたルシフェラーゼ活性の測定値を示す
線グラフである。試験化合物は、ATRA(白抜き四角印)、AGN193109(白抜き丸 形印)、AGN193174(白抜き三角印)、AGN193199(黒四角印)、AGN193385(黒 丸形印)、AGN193389(逆三角印)、AGN193840(黒菱形印)およびAGN193871( 半黒菱形印)である。
負のコアクチベータータンパク質[negative coactivator protein (-)]との間の
相互作用を調節できる機序を、トランスアクチベーション検定法に関連して示す
模式図である。図9Aは負のコアクチベータータンパク質と正のコアクチベーター
タンパク質(+)が、RARと結合平衡状態にあることを示す。リガンドがない場 合、リポーター遺伝子の基本レベルの転写が起こる。図9Bに示すように、RAR作 動薬を添加すると、正のコアクチベータータンパク質とRARの会合が促進されて 、正に調節されたリポーター遺伝子転写が起こる。図9Cに示すように、AGN19310
9が添加されると、負のコアクチベータータンパク質とRARの会合が促進されて、
リポーター遺伝子の転写が阻害される。
処理した結果を示す。
バーの活性を高めることができる機序を示す模式図である。図11に示すように、
導入されたRAR(AB-C-DEFドメインを有する白抜き長方形)は、負のコアクチベ ータータンパク質(ncp)(制限された供給で存在)が、RAR上に封鎖され、その
結果、二つの集団;RAR+ncpとRAR-ncpが生成するので(RAR-ncpはリガンドに対 する感受性が高い)、抗-AP1検定法においてRARリガンドに対する感受性が増大 した。非RAR核因子(AB-D-DEFドメインを有する陰影付き長方形)は、ncpがAGN1
93109の活性によってRARに封鎖されたので、コグネイトリガンドに対する感受性
が増大した。これら核受容体のモジュールドメインを、標準の命名法を用いて、
”AB”(リガンド非依存性トラスアクチベーションドメイン)、”C”(DNA結合
ドメイン)および”DEF”(リガンド調節トラスアクチベーションドメインおよ び二量体化ドメイン)と命名する。
効果を示す。トランスフェクタント(transfectant)を、1,25-ジヒドロキシビ タミンD3(黒四角印)、1,25-ジヒドロキシビタミンD3と10-8MのAGN193109(黒 三角印)および1,25-ジヒドロキシビタミンD3と10-7MのAGN193109(黒丸印)で 処理した。
タミンD3とAGN193109を組み合わせたもので処理した、トランスフェクトされた 細胞のCAT活性の阻害を示す。
191183を組み合わせたものの効果を示す線グラフである。このグラフに示す医薬
処理は、AGN193109単独(四角印)、AGN193109と10-10MのAGN191183の組合せ( 菱形印)およびAGN193109と10-9MのAGN191183の組合せである。
が、規定培地だけ(白抜き丸形印)には応答して増殖しなかったことを示す線グ
ラフである。AGN193109だけで処理した細胞は黒三角印で示す。黒丸印は、10nM のAGN191183と0〜1000nMのAGN193109で処理した細胞について得た結果を示す。
(DM)だけで増殖させたサンプル(白抜き棒)を除いた全サンプル群に20ng/ml
の上皮増殖因子(EGF)を加えた。斜線付き棒はAGN193109なしで増殖させたサン
プルを示す。陰影付き棒は1000nMのAGN193109の存在下で増殖させたサンプルを 示す。この手順で使用したAGN191183の濃度は横軸に示してある。
の抗増殖活性を高めたということを示す用量応答曲線である。ATRAだけで処理し
たサンプルを黒四角印で示す。ATRAとAGN193109(10-7M)を組み合わせたもので
処理したサンプルを黒丸印で示す。各種のサンプルを処理するのに使用したATRA
の濃度は横軸に示してある。
とおよびAGN193109が13-cis-RAの抗増殖活性を高めたことを示す用量応答曲線で
ある。用量応答曲線に示す、サンプルの各種処理法は、13-cis-RAだけ(黒四角 印)、13-cis-RAとAGN193109(10-6M)の組合せ(黒丸形印)、13-cis-RAとAGN1
93109(10-8M)の組合せ(黒三角印)およびATRA(黒菱形印)である。サンプル
の処理に使用した13-cis-RAとATRAの濃度は横軸に示してある。
タゾンの抗増殖活性を高めたことを示す用量応答曲線である。用量応答曲線に示
した、サンプルの各種処理法は、ATRA(黒四角印)、デキサメタゾンだけ(黒丸
印)、デキサメタゾンとAGN193109(10-8M)の組合せ(黒三角印)、およびデキ
サメタゾンとAGN193109(10-6M)の組合せ(黒菱形印)である。サンプルの処理
に使用したデキサメタゾンとATRAの濃度は横軸に示してある。
ルモン(T3)の抗増殖活性を高めたことを示す用量応答曲線である。用量応答曲
線に示す、サンプルの各種処理法は、ATRA(黒四角印)、T3だけ(黒丸印)、T3
とAGN193109(10-8M)の組合せ(黒三角印)、T3とAGN193109(10-6M)の組合わ
せ(黒菱形印)である。サンプルの処理に使用したT3とATRAの濃度は横軸に示し
てある。
Claims (46)
- 【請求項1】 式: 【化1】 [式中、X1はS、またはOであり; X2はCH、またはNであり; R2はH、F、CF3、または炭素数1〜6のアルコキシであり; R2 *はH、F、またはCF3であり; R8はH、または炭素数1〜6の低級アルキルであり; R14は不置換のフェニル、チエニルもしくはピリジルであるか、または1〜3
個の基R15で置換されたフェニル、チエニルもしくはピリジルであり、R15は炭
素数1〜6の低級アルキル、塩素、CF3、または炭素数1〜6のアルコキシで ある。] で示される化合物または薬学的に許容し得るその塩。 - 【請求項2】 X1はSである請求項1記載の化合物。
- 【請求項3】 X2はCHである請求項2記載の化合物。
- 【請求項4】 R14は、不置換であるか、または炭素数1〜6の低級アルキ
ル基1個で置換されたフェニル、2−チエニルまたは3−ピリジルである請求項
2記載の化合物。 - 【請求項5】 R2はH、またはFである請求項2記載の化合物。
- 【請求項6】 R2 *はH、またはFである請求項2記載の化合物。
- 【請求項7】 X2はNである請求項2記載の化合物。
- 【請求項8】 X1はOである請求項1記載の化合物。
- 【請求項9】 X2はCHである請求項8記載の化合物。
- 【請求項10】 R14は、不置換であるか、または炭素数1〜6の低級アル
キル基1個で置換されたフェニル、2−チエニルまたは3−ピリジルである請求
項8記載の化合物。 - 【請求項11】 R2はH、またはFである請求項8記載の化合物。
- 【請求項12】 R2 *はH、またはFである請求項8記載の化合物。
- 【請求項13】 哺乳動物の病態を処置する方法であって、該病態はレチノ
イン酸受容体活性に関連するものであり、該方法はRARα、RARβおよびR
ARγからなる群より選択されるレチノイン酸受容体亜型に結合することのでき
るレチノイド拮抗薬またはネガティブホルモンを哺乳動物に投与することを含ん
で成り、該拮抗薬またはネガティブホルモンは哺乳動物の前記病態に対し処置効
果をもたらす薬学的有効量で投与し、該拮抗薬またはネガティブホルモンは請求
項1記載の化合物である方法。 - 【請求項14】 病態はレチノイド化合物を哺乳動物に投与することから生
じる毒性または望ましくない副作用であり、処置効果は該毒性または望ましくな
い副作用の防止または改善である請求項13記載の方法。 - 【請求項15】 レチノイド薬剤またはビタミンAもしくはビタミンA前駆
体を哺乳動物が摂取することにより引き起こされた予め存在する病態を治療また
は改善するためにレチノイド拮抗薬またはネガティブホルモンを投与する請求項
13記載の方法。 - 【請求項16】 処置目的で投与するレチノイド薬剤による望ましくない局
所副作用を防止または改善するためにレチノイド拮抗薬またはネガティブホルモ
ンを局所投与する請求項13記載の方法。 - 【請求項17】 処置目的で全身的に投与するレチノイド薬剤による望まし
くない局所副作用を防止または改善するためにレチノイド拮抗薬またはネガティ
ブホルモンを局所投与する請求項13記載の方法。 - 【請求項18】 レチノイド薬剤またはビタミンAにより引き起こされた予
め存在する病態または副作用を処置するためにレチノイド拮抗薬またはネガティ
ブホルモンを局所投与する請求項13記載の方法。 - 【請求項19】 レチノイド薬剤またはビタミンAにより引き起こされた予
め存在する病態または副作用を処置するためにレチノイド拮抗薬またはネガティ
ブホルモンを全身的に投与する請求項13記載の方法。 - 【請求項20】 レチノイド薬剤またはビタミンAの同時投与により引き起
こされる骨毒性を防止または改善するためにレチノイド拮抗薬またはネガティブ
ホルモンを全身的に投与する請求項13記載の方法。 - 【請求項21】 式: 【化2】 [式中、X2はCH、またはNであり; R2はH、F、またはOCH3であり; R2 *はH、またはFであり; R8はH、または炭素数1〜6の低級アルキルであり; R14はフェニル、4−(低級アルキル)フェニル、5−(低級アルキル)−2−チ
エニル、および6−(低級アルキル)−3−ピリジルから成る群から選択し、ここ
で低級アルキルは炭素数1〜6のものである。] で示される化合物または薬学的に許容し得るその塩。 - 【請求項22】 X2はCHである請求項21記載の化合物。
- 【請求項23】 R2はHである請求項22記載の化合物。
- 【請求項24】 R2 *はHである請求項23記載の化合物。
- 【請求項25】 R14はフェニル、4−メチルフェニル、4−エチルフェニ
ル、4−イソプロピルフェニル、4−t−ブチルフェニル、5−メチル−2−チ
エニル、5−エチル−2−チエニル、5−t−ブチル−2−チエニル、および6
−メチル−3−ピリジルから成る群から選択する請求項24記載の化合物。 - 【請求項26】 R8はエチル、またはHである請求項25記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項27】 R2 *はFである請求項23記載の化合物。
- 【請求項28】 R14は4−メチルフェニル、および4−エチルフェニルか
ら成る群から選択する請求項27記載の化合物。 - 【請求項29】 R8はエチル、またはHである請求項28記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項30】 R2はFであり、R2 *はHである請求項22記載の化合物 。
- 【請求項31】 R14は4−メチルフェニル、および5−メチル−2−チエ
ニルから成る群から選択する請求項30記載の化合物。 - 【請求項32】 R8はエチル、またはHである請求項30記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項33】 R2はOCH3であり、R2 *はHであり、R14は4−メチル
フェニルである請求項22記載の化合物。 - 【請求項34】 R8はエチル、またはHである請求項33記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項35】 X2はNであり、R2はHであり、R2 *はHであり、R14は
4−メチルフェニルおよび4−エチルフェニルから成る群から選択する請求項2
1記載の化合物。 - 【請求項36】 R8はエチル、またはHである請求項35記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項37】 式: 【化3】 [式中、R2 *はH、またはFであり; R8はH、または炭素数1〜6の低級アルキルであり; R14はフェニル、および4−(低級アルキル)フェニルから成る群から選択し、
ここで低級アルキルは炭素数1〜6のものである。] で示される化合物または薬学的に許容し得るその塩。 - 【請求項38】 R2 *はHである請求項37記載の化合物。
- 【請求項39】 R14はフェニル、4−メチルフェニル、4−エチルフェニ
ル、4−イソプロピルフェニル、および4−t−ブチルフェニルから成る群から
選択する請求項38記載の化合物。 - 【請求項40】 R8はエチル、またはHである請求項39記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項41】 R2 *はFである請求項37記載の化合物。
- 【請求項42】 R14は4−メチルフェニル、および4−エチルフェニルか
ら成る群から選択する請求項41記載の化合物。 - 【請求項43】 R8はエチル、またはHである請求項42記載の化合物ま たは薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項44】 式: 【化4】 [式中、R8はH、または炭素数1〜6の低級アルキルである。] で示される化合物または薬学的に許容し得るその塩。
- 【請求項45】 R8はHである請求項44記載の化合物または薬学的に許 容し得るその塩。
- 【請求項46】 R8はエチルである請求項44記載の化合物。
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