JP2001504693A

JP2001504693A - ある種の抗体とヒトｂ７．１およびｂ７．２コスティミュラトリー抗原との間の独特の結合相互作用の同定

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Publication number: JP2001504693A
Application number: JP52163398A
Authority: JP
Inventors: アンダーソン，ダレル・アール; ハンナ，ナビル; ブラムズ，ピーター; ハード，シェリル
Original assignee: アイデック・ファーマシューティカルズ・コーポレイション
Priority date: 1996-11-08
Filing date: 1997-10-29
Publication date: 2001-04-10
Anticipated expiration: 2017-10-29
Also published as: KR20000053137A; AU5100998A; KR100510604B1; EP1878748A2; CN1198646C; JP2009001570A; ID21676A; WO1998019706A1; BR9713498A; EP1007090A4; EP1007090B1; ATE453406T1; HK1025741A1; JP4320381B2; DE69739725D1; CN1244128A; NO992212L; NO992212D0; EP1007090A1; RU2221590C2

Abstract

(57)【要約】本発明は、ヒトＢ７.１抗原（ＣＤ８０）に特異的であり、ＣＤ２８受容体へのＢ７.１の結合を阻害することができ、ＣＴＬＡ−４受容体へのＢ７.１の結合を阻害し得ない抗体の同定に関する。これら抗体のうちの２つの抗体、１６Ｃ１０および７Ｃ１０は、第二の活性化リガンドＢ７.２（ＣＤ８６）の存在にもかかわらず、ＩＬ−２の産生を有意に阻害する。ＣＴＬＡ−４とＢ７.１および／またはＢ７.２との相互作用が損なわれずまたは同時に進行しながら、これら抗体を用いてＣＤ２８とＢ７.１（ＣＤ８０）との間の第一活性化シグナルを阻止することは、正のコスティミュレーションに対するアンタゴニスト作用と負のシグナル伝達に対するアゴニスト作用との組み合わせを表す。これら抗体は、特異的な免疫抑制剤として、たとえば自己免疫疾患の治療のためおよび臓器移植拒絶を防ぐために用いることができる。

Description

【発明の詳細な説明】ある種の抗体とヒトＢ７.１およびＢ７.２コスティミュラトリー抗原との間の独特の結合相互作用の同定発明の技術分野本発明は、ヒトＢ７.１抗原（ＣＤ８０）に特異的なモノクローナル抗体の同定および使用に関する。さらに詳しくは、本発明は、ヒトＢ７.１抗原のＣＤ２８受容体への結合は阻害し得るがＢ７.１のＣＴＬＡ−４受容体への結合は阻害し得ないモノクローナル抗体またはその霊長類化（primatized）形態の同定および使用に関する。それゆえ、本発明は、ＣＴＬＡ−４受容体結合を排除するＢ７ .１抗原上の特定の部位を認識するモノクローナル抗体およびその霊長類化形態の同定および使用に関する。本発明はさらに、ヒトＢ７.１抗原上の特定の部位を認識し、ＩＬ−２産生を阻害し得るモノクローナル抗体またはその霊長類化形態に関する。本発明はまた、ヒトＢ７.１に特異的なモノクローナル抗体または霊長類化抗体を含む医薬組成物並びにＢ７：ＣＤ２８経路を調節することによる、たとえば自己免疫疾患の治療や臓器移植拒絶の防止のための免疫抑制剤としてのその使用に関する。発明の要約免疫学、血液学および腫瘍学の間での臨床的相互領域が長らく認識されている。血液学者または腫瘍学者によって処置される多くの状態は、その病理生理学に自己免疫または免疫不全要因のいずれかを有し、それが血液学者による免疫抑制剤療法の広範な採用となり、一方、腫瘍学者は腫瘍に対する内生の免疫を高めるための免疫アジュバントを探し求めていた。今日ではこれらの介入措置は、一般に非特異的なモードの免疫抑制および免疫刺激からなる。これら介入措置の効能が限られていることに加え、その非特異性による毒性もまた、その全的成功を制限していた。それゆえ、別の戦略が探し求められている。迅速にその数を増している細胞表面分子の機能的役割の解明は、免疫学と臨床血液学および腫瘍学との統合に多大な貢献をしている。２００近い細胞表面抗原が免疫系および造血系の細胞で同定されている［シュロスマン（Schlossman,SF ）、ブムセル（Boumsell,L.）、ジルクス（Gilks,JM）、ハーラン（Harlan,T.）、キシモト（Kishimoto,C.）、モリモト（Morimoto,C.）、リッツ（Ritz,J.）、ショー（Shaw,S.）、シルバースタイン（Silverstein,RL）、スプリンガー（Spr inger,TA）、テッダー（Tedder,TF）、トッド（Todd,RF）：CD antigens（ｌ９９３）、Blood ８３：８７９、１９９４］。これら抗原は、細胞認識、接着、増殖の誘発および維持、サイトカイン分泌、エフェクター機能、および細胞死さえも含む種々のプロセスに関与する、系統に限定された分子および広く分布する分子の両方を提示する。これら分子の機能的貢献の認識は、免疫応答を操作する新規な試みを呼び起こした。以前には細胞接着および抗原特異的な認識に関与する分子が治療用免疫学的介入の標的とされたが、最近ではコスティミュラトリー（ co-stimulatory）分子と呼ばれる細胞表面分子のサブグループに関心が集まっている［ブレッチャー（Bretcher,P.）：「２１年後のリンパ球活性化の２シグナルモデル」、Immunol.Today １３：７３（１９９２）；ジェンキンス（Jenkins, MK）、ジョンソン（Johnson,JG）：「Ｔ細胞コスティミュレーションに関与する分子」、Curr.Opin.Immunol.５：３５１、１９９３；ゲッパート（Geppert,T.）、デービス（Davis,L.）、ガー（Gur,H.)、ワコルツ（Wacholtz,M.）、リプスキー（Lipsky,P.）：「Ｔ細胞活性化に関与するアクセサリー細胞」、Immunol.Rev .１１７：５（１９９０；ウィーバー（Weaver,CT）、ウナウエ（Unaue,ER）：「抗原提示細胞のコスティミュラトリー機能」、Immunol.Today １１：４９（１９９０）；ステナム（Stennam,RM）、ヤング（Young,JW）：「抗原提示細胞から生じるシグナル」、Curr.Opin.Immunol.３：３６１（１９９１）］。コスティミュラトリー分子は、抗原特異的なＴ細胞応答およびエフェクター機能の生成および増幅を開始はしないが、むしろ可能にする［ブレッチャー：「２１年後のリンパ球活性化の２シグナルモデル」、Immunol.Today １３：７３（１９９２）；ジェンキンス、ジョンソン：「Ｔ細胞コスティミュレーションに関与する分子」、Cu rr.Opin.Immunol .５：３５１、１９９３；ゲッパート、デービス、ガー、ワコルツ、リプスキー：「Ｔ細胞活性化に関与するアクセサリー細胞」、Immunol.Rev.１１７：５（１９９０）；ウィーバー、ウナウエ：「抗原提示細胞のコスティミュラトリー機能」、Immunol.Today １１：４９（１９９０）；ステナム、ヤング：「抗原提示細胞から生じるシグナル」、Curr.Opin.Immnunol.３：３６１（１９９１）；ジュン（June,CH）、ブルーストーン（Bluestone,JA）、リンスレイ（Linsley,PS）、トンプソン（Thomps on,CD）：「Ｔ細胞活性化におけるＣＤ２８受容体の役割」、Immunol.Today １５：３２１（１９９４）]。最近、Ｂ７：ＣＤ２８と称する一つの特異的なコスティミュラトリー経路が、Ｂ細胞およびＴ細胞活性化におけるその有意の役割のために、異なる研究グループにより研究された［ジュン、ブルーストーン、リンスレイ、トンプソン：「Ｔ細胞活性化におけるＣＤ２８受容体の役割」、Immunol.Today １５：３２１（１９９４）；ジュン、レッドベター（Ledbetter,JA）：「Ｔ細胞の抗原への応答の間のＣＤ２８受容体の役割」、Ann.Rev.Immunol．１１：１９１（１９９３）；シュワルツ（Schwartz,RH）：「Ｔリンパ球のコスティミュレーション：インターロイキン２の産生および免疫療法におけるＣＤ２８、ＣＴＬＡ−４およびＢ７／ＢＢ１の役割」、Cell ７１：１０６５（１９９２）；ジェンシキンス（Jenki ns MK）、テイラー（Taylor PS）、ノートン（Norton SD）、アーダール（Urdha l KB）：「ＣＤ２８はヒトＴ細胞による抗原特異的なＩＬ−２産生に関与するコスティミュラトリーシグナルを放出する」Journal of Immunology １４７：２４６１−２４６６（１９９１）］。このリガンド：受容体経路は４年前に発見されたので、Ｂ７：ＣＤ２８相互作用が免疫応答性とアレルギーとを決定するうえでの重大な接点の一つを代表することを示唆する膨大な証拠が得られてきている［ジュン、ブルーストーン、リンスレイ、トンプソン：「Ｔ細胞活性化におけるＣＤ２８受容体の役割」、Immunol.Today １５：３２１（１９９４）；ジュン、レッドベター：「Ｔ細胞の抗原への応答の際のＣＤ２８受容体の役割」、Ann.Rev. Immunol ．１１：１９１（１９９３）；シュワルツ：「Ｔリンパ球のコスティミュレーション:インターロイキン２の産生および免疫療法におけるＣＤ２８、ＣＴＬＡ−４およびＢ７／ＢＢ１の役割」、Cell ７１：１０６５（１９９２）；コーエン（Cohen,J.）：「望んでいない免疫応答に対して開始される攻撃」（ニュースコメント）Science ２５７：７５１（１９９２）；コーエン：「“コスティミュレーター”として注目を浴びる新たなタンパク質」（ニュースコメント）Science ２６２：８４４（１９９３）］。とりわけ、ヒトＢ７抗原、すなわちヒトＢ７.１およびＢ７.２は、Ｔ細胞活性化においてコスティミュラトリーな役割を果たすことが報告されている［たとえば、ギミ（Gimmi CD）、フリーマン（Freeman GJ）、グリッベン（Gribben JG）、スギタ（Sugita K）、フリードマン（Freedman AS）、モリモト（Morimoto C ）、ナドラー（Nadler LM）：「Ｂ細胞表面抗原Ｂ７はＴ細胞の増殖およびインターロイキン２分泌を誘発するコスティミュラトリーシグナルを提供する」Proc ．Natl．Acad．Sci.（ＵＳＡ）８８：６５７５−６５７９（１９９１）を参照］。１．Ｔ細胞活性化におけるＢ７.１およびＢ７.２のコスティミュラトリーな役割首尾よい免疫応答の精巧さは、Ｔ細胞と抗原提示細胞との間の一連の特異的な相互作用に依存する。このプロセスにおける最初の必須のステップはＭＨＣクラスII分子との関連での抗原のＴ細胞受容体への結合に依存するが［レイン（Lane ,P.J.L.）、.マッコネル（F.M.McConnell）、シーベン（G.L.Schieven）、クラーク（E.A.Clark）、およびレッドベター（１９９０）、「ヒトＢ細胞活性化におけるクラスII分子の役割」、The ournal of Immunology、１４４：３６８４− ３６９２］、この相互作用だけでは所定の抗原に対する継続した応答に必要なすべての事象を引き起こすのに充分ではない［シュワルツ、「Ｔリンパ球クローナルアネルギーの細胞培養モデル」、Science ２４８：１３４９；ジェンキンス（１９９２）「クローナルアネルギーの誘発における細胞分裂の役割」、Immunolo gy Today 、１３：６９；アズマ（Azuma,M.）、カタビアブ（M.Catabyab）、バック（D.Buck）、フィリップス（J.H.Phillips）およびラニエ（L,L,Lanier）（１９９２）、「ヒトナチュラルキラー白血病細胞株により媒体されるＭＨＣ非制限細胞毒性へのＣＤ２８の関与」、The Journal of Immunology、１４９：１５５６−１５６１；アズマ、カタビアブ、バック、フィリップスおよびラニエ（１９９２）、「ＣＤ２８とＢ７との相互作用は、小さな静止Ｔリンパ球によって媒体される一次同種増殖応答および細胞毒性をコスティミュレートする」、J.Exp.Med.１７５：３５３−３６０；ノートン、ズッカーマン（L,Zuckerman）、アーダール、シェフナー（R.She fner）、ミラー（J.Mi11er）およびジェンキンス（１９９２）、「ＣＤ２８リガンドであるＢ７はＴ細胞にコスティミュラトリーシグナルを提供することによりＩＬ−２産生を促進する」、The Journal of Immunology、２４９：１５５６− １５６１；シュワルツ（１９９２）、「Ｔリンパ球のコスティミュレーション：インターロイキン−２産生および免疫療法におけるＣＤ２８、ＣＴＬＡ−４、およびＢ７／ＢＢ１の役割」、Cell ７１：１０６５−１０６８］。ある種の他のコスティミュラトリー分子の関与が必要である［ノートン（Ｎor ton,S.D.）、ズッカーマン、アーダール、シェフナー、ミラーおよびジェンキンス（１９９２）「ＣＤ２８リガンドであるＢ７はＴ細胞にコスティミュラトリーシグナルを提供することによりＩＬ−２産生を促進する」、The Journal of Imm unology 、１４９：１５５６〜１５６１］。「Ｔ細胞上で発現されたホモダイマーＣＤ２８およびＣＴＬＡ−４」［ジューン、レッドベター、リンスレイおよびトンプソン（１９９０）「Ｔ細胞活性化におけるＣＤ２８受容体の役割」、Immu nology Today 、１１：２１１〜２１６；リンスレイ、ブラディー、アーンズ、グロスメア（L.S.Grosmaire）、ダムル（N.K.Damle）およびレッドベター（１９９１）、「ＣＴＬＡ−４はＢ細胞活性化抗原Ｂ７の第二の受容体である」、J.Exp. Med .１７４：５６１］が、抗原提示細胞上で発現されたＢ７.１（ＣＤ８０）およびＢ７.２（ＣＤ８６）とともに、持続された免疫応答に必要なコスティミュラトリー分子の主要なペアである［アズマ、イッセル（H.Yssel）、フィリップス、スピッツ（H.Spits）およびラニエ（１９９３）、「活性化Ｔリンパ球上でのＢ７／ＢＢ１の機能的発現」、J.Exp.Med.１７７：８４５〜８５０；フリーマン（Freeman,G.J.）、フリードマン（A.S.Freedman）、セジル（J.M.Segil）、リー（G.Lee）、ホワイトマン（J.F.Whitman）およびナドラー（LM.Nadler）（１９８９）、「活性化された新生物Ｂ細胞上でのみ発現されるＩｇスーパーファミリーの新たな成員であるＢ７」、The Journal of Immunology、１４３：２７１４〜２７２２；ハスコック（Hathcok,K.S.）、ラスロ（G.Laslo）、ディックラー（H.B.Dickler）、ブラッドショー（J.Bradshaw）、リンスレイおよびホーズ（R.J.Hodes）（１９９３）、「Ｔ細胞活性化のコスティミュラトリーの他のＣＴＬＡ−４リガンドの同定」、Science、２６２：９０５〜９１１；ハート（Hart,D.N.J.）、スターリング（ G.C.Starling）、カルダー（V.L.Calder）およびフェルナンド（N.S.Fernando）（１９９３）、「Ｂ７／ＢＢ１は、活性化により誘発されたヒト樹状細胞上の白血球分化抗原である」、Immunology、７９：６１６〜６２０］。インビトロでは、これらコスティミュラトリーシグナルの不在が未発達のＴ細胞活性化経路および特定の抗原に対する応答の欠如すなわちアネルギーを導くことを示すことができる［たとえば、ハーディング（Harding,F.A.）、マッカーサー（J.G.McArthur ）、グロス（J.A.Gross）、ラウレット（D.M.Raulet）およびアリソン（J.P.All ison）（１９９２）、「ＣＤ２８により媒体されたシグナル伝達は、マウスＴ細胞をコスティミュレートし、Ｔ細胞クローンにおけるアネルギーの誘発を防ぐ」、Nature、３５６：６０７〜６０９；ギミ、フリーマン、グリベン、グレイ（G. Gray）およびナドラー（１９９３）、「ヒトＴ細胞クローナルアネルギーは、Ｂ７コスティミュレーションの不在下での抗原提示により誘発される」、Proc.Nat l.Acad.Sci .、９０：６５８６〜６５９０；タン（Tan,P.）、アナセフティ（C.A nasefti）、ハンセン（J.A.Hansen）、メルローズ（J.Melrose）、ブランバンド（M.Brunvand）、ブラッドショー、レッドベターおよびリンスレイ（１９９３）、「ＣＤ２８とその天然リガンドであるＢ７／ＢＢ１との間の相互作用を阻止することによるヒトＴリンパ球でのアロ抗原特異的な低応答性の誘発」、J.Exp.Me d .１７７：１６５〜１７３］。インビボの寛容の達成は、免疫抑制のメカニズムおよび臓器移植拒絶や自己免疫疾患の治療のための実行可能な療法を構成する。このことは、ＣＴＬＡ−４−Ｉｇ投与後の実験モデルでは達成されている［レンショー（Lenshow,D.J.）、ゼング（Y.Zeng）、ジスルスウェイト（R.J.Thistlet hwaite）、モンタグ（A.Montag）、ブラディー、ギブソン（M.G.Gibson）、リンスレイおよびブルーストーン（J.A.Bluestone）（１９９２）、「ＣＴＬＡ４−Ｉｇにより誘発された異種個体膵臓島移植の長期生存］、Science、２５７：７８９〜７９５］。Ｂ７.１分子およびＢ７.２分子はＣＤ２８かまたはＣＴＬＡ−４のいずれかに結合することができるが、Ｂ７.１はＣＤ２８には２００ＮｍのＫｄで結合し、ＣＴＬＡ−４には２０倍高い親和性で結合する［リンスレイ、クラークおよびレッドベター（１９９０）、「Ｔ細胞抗原ＣＤ２８は、活性化抗原Ｂ７／ＢＢ１と相互作用することによりＢ細胞との接着を媒体する」、Proc.Natl.Acad.Sci.、８７：５０３１〜５０３５；リンスレイら（１９９３）、「抗原へのＴ細胞応答の際のＣＤ２８受容体の役割」、Annu.Rev.Immunol.、１１：１９１〜１９２；リンスレイら（１９９３）、「Ｂ７／ＢＢ１とＣＤ２８との連動が、ＣＤ２８合成の一過性のダウンレギュレーションおよびＣＤ２８シグナル伝達に対する長期化した応答の欠如を誘発する」、The Journal of Immunology、１５０：３１５１〜３１６９］。Ｂ７.１は活性化されたＢ細胞およびインターフェロン誘発された単球上では発現されるが、静止状態のＢ細胞では発現されない［フリーマン、グレイ、ギミ、ロマルド（D.B.Lomarrd）、ゾウ（L−J.Zhou）、ホワイト、フィンゲロス（J.D.Fingeroth）、グリベンおよびナドラー（１９９１）、「ヒトＢリンパ球活性化抗原Ｂ７のマウスホモログの構造、発現およびＴ細胞コスティミュラトリー活性」、J.Exp.Med.、１７４：６２５〜６３１］。一方、Ｂ７.２は、静止状態の単球、樹状細胞およびＢ細胞上で非常に低レベルではあるが構成的に発現され、その発現は活性化されたＴ細胞、ＮＫ細胞およびＢリンパ球では促進される［アズマ、イトー（D.Ito）、ヤギタ（H.Yagita）、オクムラ（K.Oku mura）、フィリップス、ラニエおよびゾモザ（C.Zomoza）（１９９３）、「Ｂ７０抗原はＣＴＬＡ−４およびＣＤ２８の第二のリガンドである」、Nature、３６６：７６〜７９］。Ｂ７.１およびＢ７.２は同じ細胞型上で発現されうるが、Ｂ細胞上での発現は異なる動力学で起こる［レンショー、ス（G.H.Su）、ズッカーマン、ナバビ（N.Nabavi）、ジェリス（C.L.Jellis）、グレイ、ミラーおよびブルーストーン（１９９３）、「ＣＴＬＡ-４の別のリガンドの発現および機能的有意」、Proc.Natl.Acad.Sci .USA、９０：１１０５４〜１１０５８；ブショティス（Boussiotis,V.A.）、フリーマン、グリベン、ダリー（J.Daley）、グレイおよびナドラー（１９９３）、「活性化されたヒトＢリンパ球は、Ｔ細胞活性化をコスティミュレートする３つのＣＴＬＡ−４対応受容体を発現する」、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、９０：１１０５９〜１１０６３］。ＲＮＡレベルでさらに分析したところ、Ｂ７.２ｍＲＮＡが構成的に発現されるのに対して、Ｂ７.ＩＭＲＮＡは活性化の４時間後に検出され、初期低レベルのＢ７.１タンパク質は刺激から２４時間後までは検出できなかった［ブショティス、フリーマン、グリベン、ダリー、グレイおよびナドラー（１９９３）、「活性化されたヒトＢリンパ球は、Ｔ細胞活性化をコスティミュレートする３つのＣＴＬＡ-４副受容体を発現する」、Proc.Natl.Acad. Sci .USA、９０：１１０５９〜１１０６３］。それゆえ、ＣＴＬＡ−４／ＣＤ２８対応（counter）受容体は、Ｂ細胞活性化後の種々の時間に発現される。さらに最近では、第二のＴ細胞関連副受容体ＣＴＬＡ−４が明らかにランナウエイ（runaway）免疫系を無効にし妨害する負のモデュレーターとして機能することが示唆されている［クラメル（Krummel M）、アリソン（Allison J）：「ＣＤ２８とＣＴＬＡ−４とは刺激に対するＴ細胞の応答に対して反対の作用を有する」、J.Exp.Med．１８２：４５９−４６６（１９９５）］。ＣＴＬＡ−４受容体は、ＣＴＬＡ−４ノックアウトマウスで証明されるように、免疫応答をダウンレギュレートするうえで重要な役割を果たしている。ＣＴＬＡ−４遺伝子を発現する能力をもたずに生まれてきたノックアウトマウスは、重篤なリンパ増殖性疾患のために３〜４週間以内に死亡する［チボル（Tivol EA）、ボリエロ（Borrie llo G）、シュワイツァー（Schweitzer AN）、リンチ（Lynch WP）、ブルーストーン（Bluestone JA）、シャープ（Sharpe AH）：「ＣＴＬＡ-４の喪失は広範囲のリンパ増殖および致死的な多臓器組織破壊に導き、ＣＴＬＡ−４の重要な負の制御的役割を明らかにする」、Immunity ３：５４１−５４７（１９９５）］。ＣＴＬＡ−４は、アポトーシスの誘発と連動したシグナル伝達機構により機能すると考えられており［グリッベン、フリーマン、ブシオチス（Boussiotis VA）、レナート（Remmert P）、ジェリス（J ellis CL）、グリーンフィールド（Greenfield E）、バーバー（Barber M）、レスティボ（Restivo Jr．VA）、ケ（Ke X）、グレイ（Gray GS）、ナドラー：「ＣＴＬＡ−４はヒトＴ細胞の抗原特異的なアポトーシスを媒介する」、Proc ．Na tl.Acad．Sci．(ＵＳＡ) ９２：８１１−８２５（１９９５）］、該受容体上の特定部位への未だ定かでないリガンド結合により誘起される。Ｂ７.１／Ｂ７.２依存性コスティミュラトリーシグナルの種々の仕方での阻止は未発達の（aborted ）Ｔ細胞活性化経路および特定の抗原に対する非応答性の発達を導くことがインビトロで示されている［レダーマン（Lederman S）、チェス（Chess L）、イェリン（Yellin MJ）：「Ｔリンパ球の表面上のヒト糖タンパク質を認識するマウスモノクローナル抗体（５ｃ８）、それを含有する組成物」、米国特許第５,４７４,７７１（１９９５年１２月１２日）；リンズレイ（Linsley PS）、レッドベター、ダムル（Damle NK）、ブラディー（Brady W）：「キメラＣＴＬＡ４受容体およびその使用方法」、米国特許第５,４３４,１３１（１９９５年７月１８日）；ハーディング、１９９２；ギミ、フリーマン、ブリッベン、グレイ、ナドラー：「ヒトＴ細胞クローナルアネルギーはＢ７コスティミュレーションの不在下での抗原提示により誘発される」、Ｐroc．Natl．Acad．Sci．(ＵＳＡ)９０：６５８６−６５９０（１９９３）；タン、アナセッティ、ハンセン、メルローズ、ブランバンド、ブラッドショー、レッドベター、リンスレイ：「ＣＤ２８とその天然リガンドＢ７／ＢＢ１との相互作用を阻止することによるアロ抗原特異的な過応答性の誘発」、J ．Exp．Med、１７７：１６５−１７３（１９９３）］。インビボ免疫寛容、アネルギー、または抗原特異的なＴ細胞の枯渇は、免疫抑制機構および臓器移植拒絶のための実行可能な療法または自己免疫疾患のもっともらしい治療を構成する。Ｂ７.１およびＢ７.２の差異的な時間をずらした（differential temporal）発現は、これら２つの分子とＣＴＬＡ−４および／またはＣＤ２８との相互作用がＴ細胞への別個だが関連したシグナルを送達することを示唆している［ラサル（LaSalle,J.M.）、トレンチーノ（P.J.Tolentino）、フリーマン、ナドラーおよびハフラー（D.A.Hafler）（１９９２）、「ＣＤ２８およびＴ細胞抗原受容体シグナル伝達は、スーパー抗原刺激に応答したインターロイキン２遺伝子発現を共同的に制御する」、J.Exp.Med.、１７６：１７７〜１８６；バンデンベルグ（Vandenberghe,P.）、フリーマン、ナドラー、フレッチャー（M.C.Fle tcher）、カモウン（M.Kamoun）、ツルカ（L.A.Turka）、レッドベター、トンプソンおよびジュン（１９９２）、「抗体およびＢ７／ＢＢ１媒体されたＣＤ２８受容体のライゲーションはヒトＴ細胞においてチロシンリン酸化を誘発する」、The Journal of Experimental Medicine 、１７５：９５１〜９６０］。Ｔ細胞に対するＣＴＬＡ-４およびＣＤ２８の正確なシグナル伝達機能は、現在のところ知られていない［ジェインウェイ（Janeway,C.A.,Jr.）およびボトムリー（K.Bo ttomly）（１９９４）、「リンパ球応答のシグナルおよび信号」、Cell、７６. ２７５２８５］。しかしながら、１セットの受容体がＴ細胞活性化の初期刺激および第二の持続されたシグナルを提供し、該経路のさらなる精巧さ（elaboratio n）およびクローン拡張が起こるのを可能にしうる可能性がある［リンスレイ、グリーン（J.L.Greene）、タン、ブラッドショー、レッドベター、アナヤッティ（C.Anasetti）およびダムル（１９９２）、「活性化Ｔリンパ球上でのＣＴＬＡ −４およびＣＤ２８の同時発現および機能的協同」、J.Exp.Med.、１７６：１５９５〜１６０４］。現在のデータは、Ｔ細胞拡張、リンホカイン分泌およびエフェクター機能の完全な発達のためにＴＣＲとコスティミュラトリーシグナルの両者が必要である［グリーナン（Greenan,V.）およびクレーマー（G.Kroemer）（１９９３）、「細胞免疫寛容への複数の経路」、Immunology Today、１４：５７３］というジェンキンスおよびシュワルツにより提唱された２シグナル仮説［シュワルツ（１９９０）、「Ｔリンパ球クローナルアネルギーのための細胞培養モデル」、Science、２４８：１３４９；ジェンキンス（１９９２）、「クローナルアネルギーの誘発における細胞分裂の役割」、Immunology Today、１３：６９］を支持している。第二のシグナルの送達ができないとＴ細胞がＩＬ−２を分泌できず、細胞は抗原に対して非応答性となる。構造的には、Ｂ７.１およびＢ７.２の両者ともに、細胞外免疫グロブリンスーパーファミリーＶおよびＣ様ドメイン、疎水性膜貫通領域および細胞質テールを含む［フリーマン、グリベン、ブショティス、ング（J.W.Ng）、レスティボ（V.Restivo,Jr.）、ロンバード（L.A.Lombard）、グレイおよびナドラー（１９９３）、「Ｂ７.２のクローニング：ヒトＴ細胞増殖をコスティミュレートするＣＴＬＡ−４対応受容体」、Science、２６２：９０９］。Ｂ７.１およびＢ７. ２はともに高程度にグリコシル化されている。Ｂ７.１は、２２３アミノ酸の細胞外ドメイン、２３アミノ酸の膜貫通ドメインおよび６１アミノ酸の細胞質テールからなる４４〜５４ｋＤの糖タンパク質である。Ｂ７.１は、３つの潜在的なプロテインキナーゼリン酸化部位を含む［アズマ、イッセル、フィリップス、スピッツおよびラニエ（１９９３）、「活性化Ｔリンパ球上でのＢ７／ＢＢ１の機能的発現」、J.Exp.Med.、１７７：８４５〜８５０］。Ｂ７.２は、３０６アミノ酸の膜糖タンパク質である。Ｂ７.２は、２２０アミノ酸の細胞外領域、２３アミノ酸の疎水性膜貫通ドメインおよび６０アミノ酸の細胞質テールからなる［フリーマン、フリードマン、セジル、リー、ホワイトマンおよびナドラー（１９８９）、「活性化された新生物Ｂ細胞上でのみ発現されるＩｇスーパーファミリーの新たな成員であるＢ７」、The Journal of Immunology、１４３：２７１４〜２７２２］。Ｂ７.１およびＢ７.２の両遺伝予は同じ染色体領域中に局在するが［フリーマン、ロンバード、ギミ、ブロッド（S.A.Brod）、リー、レイニング（J.C.Laning）、ハフラー、ドーフ（M.E.Dorf）、グレイ、レイサー（H.Reiser ）、ジュン、トンプソンおよびナドラー（１９９２）、「ＣＴＬＡ-４およびＣＤ２８のＭＲＮＡは活性化後に大抵のＴ細胞で同時に発現される」、The Journa l of Immunology 、１４９：３７９５〜３８０１；シュワルツ（１９９２）、「Ｔリンパ球のコスティミュレーション：ＣＤ２８、ＣＴＬＡ−４およびＢ７／ＢＢ１の役割」、セルバクマール（Selvakumar,A.）、モハンラジュ（B.K.Mohanra j）、エディ（R.L.Eddy）、ショーズ（T.B．Shows）、ホワイト（P.C.White）、ペリン（C.Perrin）およびデュポン（B.Dupont）（１９９２）、「Ｂリンパ球活性化抗原Ｂ７をコードするヒト遺伝子のゲノム構成および染色体位置」、Immuno genetics 、３６：１７５〜１８１］、これら抗原は高レベルのホモロジーを共有してはいない。Ｂ７.１とＢ７.２との間の全体のホモロジーは２６％であり、マウスＢ７.１とヒトＢ７.１との間の全体のホモロジーは２７％である［アズマ、イッセル、フィリップス、スピッツおよびラニエ（１９９３）、「活性化Ｔリンパ球上でのＢ７／ＢＢ１の機能的発現」、J.Exp.Med.、１７７：８４５〜８５０；フリーマン、フリードマン、セジル、リー、ホワイトマンおよびナドラー（１９８９）、「活性化された新生物Ｂ細胞上でのみ発現されるＩｇスーパーファミリーの新たな成員であるＢ７」、The Journal of Immunology、１４３：２７１４〜２７２２］。ヒトＢ７.１、ヒトＢ７.２およびマウスＢ.１配列のアラインメントは、長いホモロジーを示す領域は殆どないことを示すが、これら３つの分子はすべてヒトＣＴＬＡ−４およびＣＤ２８に結合することが知られている。従って、これら３つの分子に共通する隣接しているかまたは立体配置的な共通した密接に関連した相同領域が存在する可能性が高い。この領域は、Ｂ７.１分子およびＢ７.２分子の対応受容体への結合部位を構成する。これらエピトープに対して産生された抗体は、Ｔ細胞上でのＢ７と対応受容体との相互作用を阻止する可能性がある。さらに、Ｂ７.１分子とＢ７.２分子との両者の上の該領域と交差反応する抗体は、Ｂ７.１またはＢ７.２に対して別々に向けられた抗体よりも実際的に有利である可能性がある。２．Ｂ７／ＣＤ２８相互作用の阻止Ｂ７／ＣＤ２８相互作用の阻止は特異的な免疫抑制の可能性を与え、長期間持続する抗原特異的な治療効果が得られる可能性がある。この相互作用を一時的に妨害する抗体または薬剤は、長期間の抗原特異的な治療効果を生成する効力を有する有用で特異的で安全な臨床免疫抑制剤となり得る。Ｂ７.１かまたはＢ７.２のいずれかに対する抗体は、インビトロでのＩＬ−２産生の抑制により測定されるようにＴ細胞活性化を阻止することが示されている［デュボア（DeBoer,M.）、パレン（P.Parren）、ドーブ（J.Dove）、オッセンドープ（F.Ossendorp）、ファン・デア・ホルスト（van der Horst）およびリーダー（J.Reeder）（１９９２）、「新規な抗Ｂ７モノクローナル抗体の機能的特徴付け」、Eur.Journal of Immunology、２２：３０７１〜３０７５；アズマ、イッセル、フィリップス、スピッツおよびラニエ（１９９３）、「活性化Ｔリンパ球上でのＢ７／ＢＢ１の機能的発現」、J.Exp.Med.、１７７：８４５〜８５０］。しかしながら、種々の抗体が免疫抑制能においてさまざまであることが示されており、これは親和性かまたはエピトープ特異性のいずれかを反映しているかもしれない。このことの一つの可能な説明として、アポトーシスや活性化Ｔ細胞でのＣＴＬＡ−４受容体を介した幾つかの他の負のシグナル伝達は促進しながら、Ｂ７とＣＤ２８との結合のみを阻止する幾つかの抗体の能力がある。Ｂ７.１またはＢ７.２に対する幾つかの抗体は、実際、ＣＴＬＡ −４結合ドメインと交差反応することによりＣＴＬＡ-４の活性を妨害する。ＣＴＬＡ−４／Ｉｇ融合タンパク質および抗ＣＤ２８Ｆａｂは、ＩＬ−２産生のダウンレギュレーションに対して同様の作用を有することが示された。可溶性のＣＴＬＡ−４／Ｉｇ融合タンパク質のインビボ投与は、マウスにおいてＴ細胞依存性の抗体応答を抑制することが示されており［リンスレイ、グリーン、タン、ブラッドショー、レッドベター、アナセッティおよびダムル（１９９２）、「活性化Ｔリンパ球上でのＣＴＬＡ−４およびＣＤ２８の同時発現および機能的協同」、J.Exp.Med.、１７６：１５９５〜１６０４；リン（Lin,H.）、ビリング（S.F.Builing）、リンスレイ、ウェイ（R.O.Wei）、トンプソンおよびツルカ（L.A.Turka）（１９９３）、「ＣＴＬＡ-４−Ｉｇとドナー特異的な輸血によって誘発された主要組織適合複合体の不適合な心臓同種移植の長期受容」、J. Exp.Med .、１７８：１８０１］、さらに大用量の投与は第二の免疫に対する応答を抑制することができ、このアプローチが抗体に媒体された自己免疫疾患の治療に対して実行可能であることが示されている。さらに、ＣＴＬＡ−４−Ｉｇは、Ｔ細胞とＢ７.１／Ｂ７.２抗原提示細胞との間の相互作用を直接抑制することにより、マウスにおいて膵臓島細胞の拒絶を防ぐことができた［レンショー、ス、ズッカーマン、ナバビ、ジェリス、グレイ、ミラーおよびブルーストーン（１９９３）、「ＣＴＬＡ−４の別のリガンドの発現および機能的有意」、Proc.Natl. Acad.Sci .USA、９０：１１０５４〜１１０５８］。この場合、長期のドナー特異的な寛容が達成された。３．抗体選択のための組換えファージ提示（Display）法今日まで、Ｂ７.１およびＢ７.２の両者に交差反応するモノクローナル抗体は報告されていない。さらに、Ｂ７.１またはＢ７.２に特異的で受容体ＣＤ２８結合を同時に活性化することに限定された抗原上の特定の部位を認識するモノクローナル抗体は報告されていない。または、Ｂ７.１またはＢ７.２に特異的でＣＴＬＡ−４受容体結合に限定された抗原上の特定の部位を認識するモノクローナル抗体は報告されていない。記載したように、かかる抗体は免疫抑制剤として非常に望ましいものである。ファージ提示法は免疫応答の際に産生される抗体を単離するための従来法に置き換わりつつある。なぜなら、従来法を用いた場合に比べてはるかに高いパーセントの免疫範囲（immune repertoire）を評価することが可能であるからである。このことは、一部、ＰＥＧ融合の非効率性、染色体の不安定性、およびヘテロハイブリドーマ産生に伴う大量の組織培養およびスクリーニングによるものである。対照的にファージ提示法は、所定の抗原に応答した免疫グロブリン遺伝子の全範囲を潜在的に捕捉するための分子技術に依存している。この技術はバーバー（Barber）らのProc.Natl.Acad.Sci.USA、８８、７９７８〜７９８２（１９９１）に記載されている。本質的に、免疫グロブリンの重鎖遺伝子をＰＣＲ増幅し、繊維状ファージＭ１３のマイナーコートタンパク質をコードする遺伝子を含むベクター中に重鎖融合タンパク質が生成されるような仕方でクローニングする。重鎖融合タンパク質は、それが組み立てられるときに軽鎖遺伝子とともにＭ１３ファージ粒子中に取り込まれる。各組換えファージはそのゲノム内に異なる抗体Ｆａｂ分子の遺伝子を含み、これはファージの表面上に提示される。これらライブラリー内に１０⁶を越える異なる抗体がクローニングされ、提示されうる。ファージライブラリーを抗原をコーティングしたマイクロタイターウエル上でえり分け、非特異的なファージを洗い落とし、抗原結合したファージを溶出する。抗原特異的なクローンからのゲノムを単離し、さらに特徴付けるために可溶性のＦａｂ形態で抗体が発現できるように遺伝子IIIを切り出す。潜在的な治療候補として単一のＦａｂが一旦選択されたら、これを容易に全抗体に変換することができる。Ｆａｂ配列を全抗体に変換するために以前に記載された発現系は、ＩＤＥＣの哺乳動物発現ベクターＮＥＯＳＰＬＡである。このベクターは、ヒトガンマ１かまたはガンマ４のいずれかの定常領域遺伝子を含む。ＣＨＯ細胞をＮＥＯＳＰＬＡベクターでトランスフェクションし、増幅後、このベクター系は非常に高い発現レベル（＞３０ｐｇ／細胞／日）を達成できることが報告された。４．霊長類化抗体組換え抗体を生成するための他の非常に効率的な手段がニューマン（Newman）によって開示されている［ニューマン（１９９２）、Biotechnology、１０、１４５５〜１４６０］。さらに詳しくは、この技術によりサル可変ドメインおよびヒト定常配列を含む霊長類化抗体を得ることができる。上記文献を参照のためその全体を本明細書中に引用する。さらに、この技術はまた、本願と同一の出願人である１９９５年１月２５日に出願した米国特許出願第０８／３７９，０７２号（これは１９９２年７月１０日に出願した米国特許出願第０７／９１２，２９２号（これは１９９２年３月２３日に出願した米国特許出願第０７／８５６，２８１号（これは１９９１年７月２５日に出願した米国特許出願第０７／７３５，０６４号の一部継続出願である）の一部継続出願である）の継続出願である）にも記載されている。米国特許出願第０８／３７９，０７２号およびその親出願を参照のためその全体を本明細書中に引用する。この技術は、抗体をヒトに投与したときに抗原的に拒絶されないように修飾するものである。この技術は、ヒト抗原または受容体でカニクイザルを免疫することによっている。この技術は、ヒト細胞表面抗原に向けられた高親和性のモノクローナル抗体を産生するために開発された。ファージ提示ライブラリーまたはＢ７.１および／またはＢ７.２で免疫したサルからのＢリンパ球を用いて得られたサルヘテロハイブリドーマをスクリーニングすることによるヒトＢ７.１およびＢ７.２に対するマカークザル抗体の同定はまた、本願と同一出願人に係る米国特許出願第０８／４８７,５５０号（１９９５年６月７日出願；その全内容を参照のため本明細書中に引用する）に記載されている。さらに詳しくは、米国特許出願第０８／４８７,５５０号は、Ｂ７：ＣＤ２８経路を阻害し、それゆえ有効な免疫抑制剤として機能する４つのモノクローナル抗体７Ｂ６、１６Ｃ１０、７Ｃ１０および２０Ｃ９を提供している。このようにしてこれら同一出願人に係る出願により記載された仕方で生成された抗体は、ヒトエフェクター機能を示すこと、免疫原性が低減していること、および長期の血清半減期を有することが以前に報告されている。この技術は、カニクイザルがヒトと系統発生的には類似しているという事実にもかかわらず、カニクイザルが依然として多くのヒト抗原を異物として認識し、それゆえ免疫応答を誘起するという事実によっている。さらに、カニクイザルがヒトに系統発生的に近接しているため、これらサルで産生された抗体はヒトで産生された抗体に対して高度のアミノ酸ホモロジーを有することが見出された。実際、マカークザルの免疫グロブリン軽鎖および重鎖可変領域遺伝子を配列決定したところ、各遺伝子ファミリーはヒトにおけるその対応遺伝子と８５〜９８％相同であることがわかった［ニューマンら（１９９２）、上掲］。このようにして産生された最初の抗体である抗ＣＤ４抗体は、ヒト免疫グロブリンフレームワーク領域のコンセンサス配列に９１〜９２％相同であつた［ニューマンら、Biotechnology、１０、１４５８〜１４６０（１９９２）］。ヒトＢ７抗原に特異的なモノクローナル抗体は、以前に文献に記載されている。たとえば、ワイル（Weyl）ら［Hum.Immunol.、３１（４）、２７１〜２７６（１９９１）］は、天然および変異抗原変異体を用いたＨＬＡ−Ｂ−２７に対するヒトモノクローナル抗体のエピトープマッピングを記載している。また、トウバート（Toubert）ら［Clin.Exp.Immunol.、８２（１）、１６〜２０（１９９０）］は、３５ＫＤの細菌外膜タンパク質とも反応するＨＬＡ−Ｂ−２７モノクローナル抗体のエピトープマッピングを記載している。また、バル（Valle）ら［Inmlu nol .、６９（４）、５３１〜５３５（１９９０）］は、活性化Ｂ細胞およびＨＴＬＶ−１形質転換Ｔ細胞で発現されたＢ７抗原を認識するＩｇＧ１サブクラスのモノクローナル抗体を記載している。さらに、トウバートら［J.Immunol.、１４１（７）、２５０３〜９（１９８８）］は、ＨＬＡ−Ｂ−２７およびＨＬＡ−Ｂ −７抗原遺伝子の対立遺伝子間でのハイブリッド遺伝子を大腸菌で作成することにより構築したドメイン内組換え体を用いたこれら抗原のエピトープマッピングを記載している。Ｂ７抗原の高発現が自己免疫疾患と相関関係を有することが何人かの研究者によって示されている。たとえば、イオネスコ−チルゴビスト（Ionesco−Tirgovi ste）ら［Med.Interre、２４（１）、１１〜１７（１９８６）］は、１型インスリン依存性糖尿病での増大したＢ７抗原発現を報告している。また、乾癬患者から得た皮膚樹状細胞上でのＢ７抗原の関与が報告されている［ネッスル（Nestle）ら、J.Clin.Invest.、９４（１）、２０２〜２０９（１９９４）］。さらに、アフィニティー精製した可溶性ＨＬＡ-Ｂ７を用いた抗ＨＬＡ-Ｂ７同種反応性ＣＴＬの抑制が文献で報告されている［ザバザバ（Zavazava）ら、Tran splantation 、５１（４）、８３８〜４２（１９９１）］。さらに、動物モデルにおいてＢ７活性を阻止するためのＢ７受容体可溶性リガンドＣＴＬＡ−４−Ｉｇの使用［たとえば、レンショーら、Science、２５７、７８９、７９５５（１９９２）を参照］およびＢ７を抑制しうるＢ７−１−Ｉｇ融合タンパク質が報告されている。この開示では、ＣＤ２８受容体結合に限定されたＢ７.１抗原上の特定の部位を認識するモノクローナル抗体の同定のための証拠が提供される。さらに、本明細書では、ＣＴＬＡ−４受容体結合を排除するＢ７.１抗原上の特定の部位を認識するモノクローナル抗体の同定のための証拠が提供される。それゆえ、本明細書では、ヒトＢ７.１（ＣＤ８０）コスティミュラトリー抗原上の独特の抗原結合部位の存在を支持する証拠が提供される。これら主張に係る部位は、抗Ｂ７. １ PRIMATIZED^R抗体により認識され、同時活性化受容体ＣＤ２８との結合に限定されたＢ７.１抗原上の相互作用部位への結合を確認する証拠が提供される。発明の要約および目的本発明の目的は、ヒトＢ７抗原に特異的な新規な抗体を同定することにある。より詳しくは、ヒトＢ７.１抗原に特異的であり、ＣＤ２８受容体へのＢ７.１の結合をも阻止し得る抗体を同定することが本発明の目的である。ヒトＢ７.１抗原に特異的であり、ＣＴＬＡ−４へのＢ７.１の結合を阻害し得る抗体を同定することもまた本発明の目的である。それゆえ、本発明の目的は、Ｂ７.１抗原上の特定の部位を認識する抗原を同定することであり、その際、認識される部位は、ＣＤ２８受容体結合に限定されＣＴＬＡ−４受容体結合を排除するものである。本発明の他の目的は、ヒトＢ７.１抗原に特異的であるがヒトＢ７.２抗原を認識することはできない抗体を同定することである。本発明の他の目的は、ヒトＢ７.１抗原上の特定の部位を認識し、ＩＬ−２産生およびＴ細胞増殖を阻害し、有効な免疫抑制剤として機能するモノクローナル抗体およびその霊長類化形態を同定することである。さらに詳しくは、本発明の目的は、Ｂ７.１に特異的であり、ＩＬ−２産生を阻害し得る抗体を同定することである。本発明の他の目的は、ドナー脾臓細胞培養中での抗原誘発応答、たとえば、抗原特異的なＩｇＧ応答、ＩＬ−２産生および細胞増殖を阻害する、モノクローナル抗体およびその霊長類化形態を提供することにある。本発明の他の特別の目的はまた、有利な特性、すなわち親和性、免疫抑制活性を有する、治療剤として有用な、ヒトＢ７.１抗原に特異的な特定のサルモノクローナル抗体およびその霊長類化形態を同定することにある。さらに詳しくは、これら抗体およびその霊長類化形態は、たとえば免疫抑制剤として、すなわち抗原誘発免疫応答を阻止するため、自己免疫疾患（乾癬、慢性関節リウマチ、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、１型糖尿病、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、アレルギー、炎症性胆汁疾患など）を治療するため、および臓器移植拒絶を防ぐために用いることができる。本発明の他の目的は、ヒトＢ７.１抗原に特異的な１またはそれ以上のモノクローナル抗体またはその霊長類化形態および薬理学的に許容しうる担体または賦形剤を含む医薬組成物を提供することにある。これら組成物は、たとえば、自己免疫疾患、たとえば、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）や全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）を治療するため、抗原誘発免疫応答を阻止するため、および移植受容者における臓器移植拒絶を防ぐための免疫抑制剤として用いられるであろう。本発明の他の目的は、ヒトＢ７.１抗原に特異的に結合する１またはそれ以上の霊長類化モノクローナル抗体の治療学的有効量を投与することによる新規な治療方法を提供することにある。そのような治療方法は、Ｂ７：ＣＤ２８経路の阻害により治療可能な疾患、たとえば、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、１型糖尿病、乾癖、慢性関節リウマチ、多発性硬化症、再生不能性貧血などの自己免疫疾患の治療、並びに移植患者において移植拒絶を防ぐために有用である。本発明のさらに他の目的は、ヒトＢ７.１抗原に特異的なモノクローナル抗体の少なくとも可変重鎖および軽鎖ドメインを発現するトランスフェクタント、たとえばＣＨＯ細胞を提供することにある。定義本発明を一層明確に理解できるように下記術語を定義する。枯渇（Depleting）抗体 − 活性化Ｂ細胞または他の抗原提示細胞を殺す抗体。非枯渇（Non-depleting）抗体 − Ｂ７とＴ細胞活性化リガンドＣＤ２８およびＣＴＬＡ−４とのコスティミュラトリー作用を阻止する抗体。それゆえ、この抗体は免疫性を減少させる（anergizes）が抗原提示細胞を排除はしない。霊長類化抗体 − サル抗体、とりわけカニクイザル抗体の可変重鎖および軽鎖ドメインを含み、ヒト定常ドメイン配列、好ましくはヒト免疫グロブリンガンマ１またはガンマ４定常ドメイン（またはＰＥ変異体）を含むように設計した組換え抗体。かかる抗体の調製は、ニューマンら（１９９２）、「ヒト疾患の免疫療法のための組換え抗体の霊長類化：ヒトＣＤＨに対するマカークザル／ヒトキメラ抗体」、Biotechnology、１０：１４５８〜１４６０；および本願と同じ出願人に係る米国特許出願第０８／３７９，０７２号（両文献を参照のため本明細書中にその全体を引用する）に記載されている。これら抗体は、ヒト抗体と高程度のホモロジー、すなわち８５〜９８％のホモロジーを示し、ヒトエフェクター機能を示し、免疫原性が減少しており、ヒト抗原に対して高い親和性を示すことが報告されている。Ｂ７抗原 − 本願におけるＢ７抗原は、たとえばヒトＢ７.１抗原およびＢ７.２抗原を含む。これら抗原はＣＤ２８および／またはＣＴＬＡ−４に結合する。これら抗原はＴ細胞活性化においてコスティミュラトリー機能を有する。また、これら抗原はすべて、細胞外免疫グロブリンスーパーファミリ−ＶおよびＣ様ドメイン、疎水性膜貫通領域および細胞質テールを含み［フリーマンら、Scie nce 、２６２：９０９（１９９３）を参照］、高度にグリコシル化されている。抗Ｂ７抗体 − ヒトＢ７抗原、たとえばヒトＢ７.１抗原および／またはＢ７.２抗原に充分な親和性にて特異的に結合してＢ７：ＣＤ２８相互作用を阻止し、それによって免疫抑制を誘発するサルモノクローナル抗体またはその霊長類化形態。図面の簡単な説明図１は、マカークザル免疫グロブリン配列に基づくプライマーを含む、繊維状ファージの表面に示されたＢ７に対して産生された組換え免疫グロブリンライブラリーをスクリーニングするのに用いるｐＭＳベクターを示す。図２は、本願発明のヒトＢ７.１抗原に特異的な霊長類化抗体を発現させるのに用いるＮＥＯＳＰＬＡ発現ベクターを示す。図３ａは、７Ｃ１０の軽鎖の霊長類化形態のアミノ酸配列および核酸配列を示す。図３ｂは、７Ｃ１０の重鎖の霊長類化形態のアミノ酸配列および核酸配列を示す。図４ａは、７Ｂ６の軽鎖の霊長類化形態のアミノ酸配列および核酸配列を示す。図４ｂは、７Ｂ６の重鎖の霊長類化形態のアミノ酸配列および核酸配列を示す。図５ａは、１６Ｃ１０の霊長類化軽鎖のアミノ酸配列および核酸配列を示す。図５ｂは、１６Ｃ１０の霊長類化重鎖のアミノ酸配列および核酸配列を示す。図６は、Ｐ１６Ｃ１０がＢ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞へのＣＴＬＡ−４Ｉｇ−ビオチン結合を阻止できないことを示す。図７は、ＣＴＬＡ−４ＩｇがＢ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞へのＰ１６Ｃ１０−ビオチン結合を阻止できないことを示す。図８は、ＢＢ−１がＢ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞へのＣＴＬＡ− ４Ｉｇ−ビオチンの結合を完全に阻止することを示しており、さらにＢＢ−１がＢ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞へのＰ１６Ｃ１０−ビオチン結合に有意の影響を及ぼすことができないことを示している。図９は、ＣＴＬＡ−４Ｉｇ−ビオチンがＰ１６Ｃ１０以外のすべてのＢ７.１阻害剤により有効に阻止されることを示している。図１０は、Ｐ１６Ｃ１０がＣＤ２８／Ｂ７−ＩＩｇ相互作用の結合を阻止する能力を示す。示したデータは、４つの別個の実験から得られた値の平均である。発明の詳細な説明上記のように、本発明は、ヒトＢ７.１抗原に特異的であり、ＣＤ２８受容体へのＢ７.１の結合を阻害することができ、ＣＴＬＡ−４受容体へのＢ７.１の結合を阻害することができないモノクローナル抗体またはその霊長類化形態の同定に関する。正のコスティミュレーションに対するアンタゴニスト作用と負のシグナル伝達に対するアゴニスト作用との組み合わせを可能としながら上記同定された抗体を用いてＣＤ２８とＢ７.１（ＣＤ８０）との間の主要な活性化部位を阻止することは、再発形態の自己免疫疾患に介入するための有用な治療学的アプローチであろう。同定された抗体の機能的な活性は、Ｔ細胞刺激性サイトカインＩＬ−２の産生の阻止により定められる。同定された抗体は、第二の作動リガンドＢ７.２の存在下にもかかわらず、ＩＬ−２の産生を５０％を超えて阻止する能力を示し、他の文献において定められる他の抗Ｂ７.１抗体で観察される作用では一般に認められない別の作用機構が存在することを示唆していた。ヒトＢ７.１および／またはＢ７.２抗原に特異的に結合する新規なサルモノクローナル抗体並びにそれから得られた霊長類化抗体の製造は、同時出願中の米国特許出願第０８／４８７,５５０号に記載されており、本明細書にも記載してある。これら抗体はヒトＢ７.１および／またはＢ７.２に対する高い親和性を有し、それゆえＢ７：ＣＤ８６経路を阻害する免疫抑制剤として用いることができる。サルモノクローナル抗体の調製は、ファージ提示ライブラリーのスクリーニングにより、またはＢ７（たとえば、ヒトＢ７.１および／またはＢ７.２）で免疫したサルから得たＢリンパ球を用いたサルヘテロハイブリドーマの調製により、行うことができる。記載のように、抗Ｂ７抗体の第一の製造方法は、組換えファージ提示技術を含む。この技術は一般に上記文献に記載されている。本質的に、この技術は、繊維状ファージの表面上に提示されたＢ７抗原に対する組換え免疫グロブリンライブラリーを合成し、Ｂ７.１抗原および／またはＢ７.２抗原に対する高い親和性を有する抗体を分泌するファージを選択することを含むであろう。上記に記載したように、ヒトＢ７.１およびＢ７.２の両者に結合する抗体を選択するのが好ましいであろう。かかる方法を行うため、本発明者らは組換えの可能性を減少させ安定性を改善したサルライブラリーのための独特のライブラリーを作成した。このベクターｐＭＳは以下に詳細に記載するが、図１に示してある。本質的に、マカークザルライブラリーに使用するファージ提示を採用するため、このベクターはサル免疫グロブリン遺伝子をＰＣＲ増幅するための特定のプライマーを含んでいる。これらプライマーは、霊長類化技術を開発する際に得られるマカークザル配列およびヒト配列を含むデータベースに基づく。適当なプライマーは、本願と同じ出願人に係る米国特許出願第０８／３７９, ０７２号（参照のため本明細書中に引用する）に開示されている。第二の方法は、ヒトＢ７抗原、好ましくはヒトＢ７.１抗原およびＢ７.２抗原に対してサル、すなわちマカークザルを免疫することを含む。マカークザルをモノクローナル抗体の再生に使用することの本来的な利点は上記に記載してある。とりわけ、かかるサル、すなわちカニクイザルはヒト抗原または受容体に対して免疫することができる。さらに、得られた抗体は、ニューマンら、Biotechnology 、１０、１４５５〜１４６０（１９９２）およびニューマンらの本願と同じ出願人に係る米国特許出願第０８／３７９，０７２号（１９９５年１月２５日出願）（その全体を参照のため本明細書中に引用する）に記載の方法に従って霊長類化抗体を作成するのに用いることができる。カニクイザルから得られる抗体の有意な利点は、これらサルが多くのヒトタンパク質を異物として認識し、それゆえ所望のヒト抗原、たとえばヒト表面タンパク質および細胞受容体に対して高い親和性を有する抗体を作成できることである。さらに、カニクイザルはヒトと系統発生的に近接しているため、それから得られる抗体はヒトで産生される抗体と高度のアミノ酸ホモロジーを示す。上記に記載したように、マカークザルの免疫グロブリン軽鎖および重鎖可変領域遺伝子の配列決定したところ、各遺伝子ファミリーの配列はヒトの対応配列と８５〜８８％相同であることがわかった（ニューマンら（１９９２）、上掲）。本質的に、カニクイザルにヒトＢ７抗原、たとえばヒトＢ７.１抗原および／またはヒトＢ７.２抗原を投与し、それからＢ細胞を単離し、たとえばリンパ節生検を該動物から採取し、ついでポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いてＢリンパ球をＫＨ６／Ｂ５（マウス×ヒト）と融合させる。ついで、ヒトＢ７抗原、たとえばヒトＢ７.１抗原および／またはヒトＢ７.２抗原に結合する抗体を分泌するヘテロハイブリドーマを同定する。Ｂ７.１およびＢ７.２の両者に結合する抗体が望ましい。なぜなら、そのような抗体は、Ｂ７と同様にＢ７.１およびＢ７.２とその対応受容体、すなわちヒトＣＴＬＡ−４およびＣＤ２８との相互作用を抑制するのに用いることができるからである。これらエピトープに対する抗体は、ヒトＢ７.１およびヒトＢ７.２の両者がＴ細胞上の対応受容体と相互作用するのを抑制する。このことは、相乗作用を付与する可能性がある。しかしながら、ヒトＢ７抗原、Ｂ７.１抗原またはＢ７.２抗原の一方のみに結合する抗体もまた、これら分子がともにＴ細胞活性化、クローン拡張、リンホカイン（ＩＬ−２）分泌、および抗原に対する応答性に関与することから非常に望ましい。ヒトＢ７.１およびＢ７.２の両者がヒトＣＴＬＡ−４およびＣＤ２８に結合するなら、おそらく、それに対してマカークザル抗体が潜在的に産生される少なくとも一つの共通したまたは相同な領域（おそらく、共通する立体配置エピトープ）が存在するに違いない。開示した発明は、特定の抗体を産生するようにプライミングした動物の使用を含む。かかる手順に有用な動物には、これらに限られるものではないが、以下のものが挙げられる：マウス、ラット、モルモット、ハムスター、サル、ブタ、ヤギおよびウサギ。ＳＣＩＤマウスを用いてヒト抗体を産生するための好ましい手段は、本願と同一出願人に係る同時出願中の米国特許出願第０８／４８８，３７６号に開示されている。本発明者らは、マカークザルの免疫を、ＣＨＯ細胞中で産生されＬ３０７.４ −セファロースアフィニティーカラムを用いたアフィニティークロマトグラフィーにより精製した組換え可溶性Ｂ７.１抗原に対して行うことを選択した。しかしながら、特定の投与Ｂ７抗原および潜在的に他のＢ７抗原に対して特異的な抗体応答となるに充分な純度を有する限りにおいて、ヒトＢ７抗原、ヒトＢ７.１抗原またはヒトＢ７.２抗原の特定の採取源は重要ではない。ヒトＢ７抗原、ヒトＢ７.１抗原（ＣＤ８０とも称される）遺伝子およびヒトＢ７.２抗原（ＣＤ８６とも称される）遺伝子はクローニングおよび配列決定されており、それゆえ組換え法により容易に製造することができる。好ましくは、投与するヒトＢ７抗原、ヒトＢ７.１抗原および／またはヒトＢ７.２抗原は、たとえば膜貫通ドメインと細胞質ドメインを除去することによって細胞外部分、すなわち細胞外スーパーファミリーＶおよびＣ様ドメインのみを有するＢ７、Ｂ７.１またはＢ７.２遺伝子を発現させることにより、可溶性の形態で投与されるであろう［たとえば、グルメット（Grumet）ら、Hum.Immunol.、４０（３）、２２８〜２３４、１９９４（可溶性形態のＢ７の発現を教示する；参照のためその全体を本明細書中に引用する）を参照］。マカークザルをＢ７抗原、Ｂ７.１抗原および／またはＢ７.２抗原、好ましくはその可溶性形態で、これら抗原に対する抗体が産生される条件下にて免疫するであろう。好ましくは、可溶性のヒトＢ７抗原、Ｂ７.１抗原またはＢ７.２抗原をアジュバント、たとえばフロントの完全アジュバント（ＣＦＡ）、アルミニウム、サポニンまたは他の公知のアジュバント並びにそれらの組み合わせとともに投与されるであろう。一般に、これには、たとえば繰り返し注射することにより数カ月にわたって繰り返し免疫することが必要であろう。たとえば、可溶性のＢ７.１抗原の投与をアジュバント中でブースター免疫とともに３〜４カ月間行い、ヒトＢ７.１抗原に結合する抗体を含む血清を生成した。免疫後、Ｂ細胞をたとえば免疫動物からリンパ節生検を採取することにより回収し、ポリエチレングリコールを用いてＢ細胞をＫＨ６／Ｂ５（マウス×ヒト）ヘテロハイブリドーマと融合させる。かかるヘテロハイブリドーマの作成方法は知られており、１９９５年１月２５日に出願されたニューマンらの米国特許出願第０８／３７９,０７２号（参照のため本明細書中に引用する）に記載されている。ついで、ヒトＢ７、Ｂ７.１および／またはＢ７.２に結合する抗体を分泌するヘテロハイブリドーマを同定する。このことは公知技術により行うことができる。たとえば、このことは酵素または放射性核種で標識したヒトＢ７、Ｂ７.１および／またはＢ７.２を用いたＥＬＩＳＡまたはラジオイムノアッセイにより決定することができる。ついで、ヒトＢ７、Ｂ７.１および／またはＢ７.２抗原に対する所望の特異性を有する抗体を分泌する細胞株をサブクローニングしてモノクローナル化する。本発明においては、本発明者らは、ＥＬＩＳＡアッセイにおける可溶性Ｂ７. １抗原コーティングプレート、抗原陽性Ｂ７.１細胞、および細胞表面上にヒトＢ７.１抗原を発現するＣＨＯトランスフェクタントに結合する能力について精製抗体をスクリーニングした。さらに、混合リンパ球反応（ＭＬＲ）におけるＩＬ−２産生およびトリチウム化チミジンの取り込みにより測定されるように（Ｂ７結合は¹²⁵Ｉ放射性標識した可溶性Ｂ７.１（ＳＢ７.１）を用いて検出）、Ｂ細胞／Ｔ細胞相互作用を阻止する能力について抗体をスクリーニングした。また、マカークザルからのアフィニティー精製した抗体を、Ｂ７.１／Ｉｇ融合タンパク質を発現するＣＨＯトランスフェクタントに対する反応性、およびヒトＢ７.２抗原を産生するＣＨＯ細胞に対する反応性について試験した。これら結果は、Ｂ７.１免疫血清がＢ７.２トランスフェクトーマに結合することを示した。Ｂ７.２抗原への抗体の結合は、可溶性のＢ７.２−Ｉｇ試薬を用いて確認することができる。実施例に記載するように、このことは、Ｂ７.２−Ｉｇ−セファロースアフィニティーカラムを調製するのに充分な量でＢ７.２−ＩｇをＣＨＯトランスフェクトーマから調製および精製することにより行う。Ｂ７.２に交差反応する抗体はＢ７.２−Ｉｇ−セファロースカラムに結合するであろう。ついで、ヒトＢ７抗原、Ｂ７.１抗原および／またはＢ７.２抗原に特異的に結合する抗体を発現する細胞株を用い、本質的にニューマンら（１９９２）、上掲、および１９９５年１月２５日に出願されたニューマンらの米国特許出願第０８／３７９,０７２号（ともに参照のため本明細書中に引用する）に記載されたようにして霊長類化抗体を作成するために可変ドメイン配列をクローニングする。本質的に、このことには、該細胞株からのＲＮＡの抽出、ｃＤＮＡへの変換、およびＩｇ特異的プライマーを用いたＰＣＲによる増幅が含まれる。適当なプライマーは、ニューマンら（１９９２）、上掲、および米国特許出願第０８／３７９，０７２号明細書（とりわけ、米国特許出願第０８／３７９，０７２号の図１を参照）に記載されている。ついで、クローニングしたサル可変遺伝子を、ヒト重鎖および軽鎖定常領域遺伝子を含む発現ベクター中に挿入する。好ましくは、このことはIDEC,Inc.の特許発現ベクターであるＮＥＯＳＰＬＡを用いて行う。このベクターは図２に示してあり、サイトメガロウイルスプロモーター／エンハンサー、マウスβグロビン主要プロモーター、ＳＶ４０の複製起点、ウシ成長ホルモンポリアデニル化配列、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼエクソン１およびエクソン２、ヒト免疫グロブリンκまたはλ定常領域、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子、ヒト免疫グロブリンγ１またはγ４ＰＥ定常領域およびリーダー配列を含む。このベクターは、サル可変領域遺伝子の導入、ＣＨＯ細胞中でのトランスフェクション、ついでＧ４１８含有培地中での選択およびメトトレキセート増幅の後に非常に高レベルの霊長類化抗体が発現されることがわかった。たとえば、この発現系は、これまでにＣＤ４その他のヒト細胞表面受容体に対して高い結合活性（Ｋｄ≦１０^-10Ｍ）を有する霊長類化抗体が得られることが開示されている。さらに、これら抗体は、もともとのサル抗体と同じ親和性、特異性および機能的活性を示すことがわかっている。このベクター系は、本願と同じ出願人に係る米国特許出願第３７９，０７２号（参照のため本明細書中に引用する）、および１９９３年１１月３日に出願された米国特許出願第０８／１４９，０９９号（参照のためその全体を本明細書中に引用する）に実質的に開示されている。この系は高発現レベル、すなわち＞３０ｐｇ／細胞／日を提供する。以下に記載するように、本発明者らは、Ｂ７.１抗原に特異的に結合する４つの先導（lead）候補サルモノクローナル抗体を選択した。これらサルモノクローナル抗体は、本明細書において７Ｂ６、１６Ｃ１０、７Ｃ１０および２０Ｃ９と称する。以下にさらに詳細に記載するように、これら抗体を、Ｔ細胞結合についてのＴ細胞結合実験のための混合リンパ球反応中でのＩＬ−２産生およびトリチル化チミジンの取り込みによって測定されるように、Ｂ細胞／Ｔ細胞相互作用を阻止する能力について評価し、ヒト体コート（human body coat）末梢血リンパ球をＰＨＡ刺激物質の存在下で３〜６日間培養した。Ｂ７結合を¹²⁵Ｉ−放射性標識した可溶性Ｂ７.１を用いてラジオアッセイした。観察した結果は、減少したＩＬ −２産生および混合リンパ球培養の減少した増殖により示されるように、これらすベての抗体がＢ７.１抗原と高い親和性にて結合し、Ｂ細胞／Ｔ細胞相互作用を有効に阻止することを示す。これら特定のサルモノクローナル抗体の特性は、まとめると以下のとおりである。１．スキャッチャード分析は、Ｂ７−Ｉｇコーティングプレートヘ結合するサル抗体のみかけの親和性定数（Ｋｄ）がおよそ以下のとおりであることを示した：ａ：７Ｃ１０：６.２ × １０^-9Ｍｂ：１６Ｃ１０：８.１ × １０^-9Ｍｃ：７Ｂ６：１０.７ × １０^-9Ｍｄ：２０Ｃ９：１０.８ × １０^-9Ｍ２．抗体を混合リンパ球反応アッセイ（ＭＬＲ）においてインビトロで試験した。ＭＬＲは、４つのすべての抗Ｂ７.１抗体が下記ＩＣ₅₀値に示されように異なる程度にＩＬ−２産生を阻害することを示した：ａ：７Ｂ６：５.０μｇ／Ｍｂ：１６Ｃ１０：＜０.１μｇ／Ｍｃ：２０Ｃ９：２.０μｇ／Ｍｄ：７Ｃ１０：５.０μｇ／Ｍ３．サル抗Ｂ７.１抗体を、ヒト末梢血リンパ球（ＰＢＬ）上のＢ７に結合する能力について試験した。ＦＡＣＳ分析は、４つのすべてのサル抗体が陽性であることを示した。４．サル抗体１６Ｃ１０、７Ｂ６、７Ｃ１０および２０Ｃ９をＦＡＣＳ分析によりＣ１ｑ結合について試験した。その結果は、Ｂ７.１ＣＨＯトランスフェクション細胞とともにインキュベートした後に７Ｃ１０サルＩｇが強いヒトＣ１ｑ結合を有することを示した。１６Ｃ１０は陽性であったが、２０Ｃ９および７Ｂ６サル抗体は陰性であった。５．病理−毒性（path-tox）研究のための動物モデルを選択するため、異なる種からの動物血でサル抗体を試験した。サル抗Ｂ７.１抗体は、ヒト、チンパンジーと交差反応した。これら特性に基づき、３つのサルモノクローナル抗体、１６Ｃ１０、７Ｃ１０および２０Ｃ９が最も有利な特性を備えていると思われ、そのうちでも１６Ｃ１０および７Ｃ１０は２０Ｃ９に比べて若干優れていた。上記技術および本願と同じ出願人に係る米国特許出願第０８／３７９，０７２号に開示された技術を用い、本発明者らは７Ｃ１０、７Ｂ６および１６Ｃ１０の可変ドメインをクローニングし、７Ｃ１０軽鎖、７Ｃ１０重鎖、７Ｂ６軽鎖、７Ｂ６重鎖、１６Ｃ１０軽鎖および１６Ｃ１０重鎖の霊長類化形態のアミノ酸配列および核酸配列を提供する。これらアミノ酸配列および核酸配列は、図８ａおよび８ｂ、９ａおよび９ｂ、および１０ａおよび１０ｂに示されている。ヒトガンマ１定常ドオインのＤＮＡ配列およびアミノ酸配列は米国特許出願第０８／３７９,０７２号に記載されている。上記に記載したように、これら霊長類化抗体は図２に示したＮＥＯＳＰＬＡ発現ベクター（実質的に、本願と同じ出願人に係る米国特許出願第０８／３７９，０７２号および０８／１４９，０９９号（両出願を参照のため本明細書中に引用する）に記載されている）を用いて発現させるのが好ましい。上記で記載したように、本発明の霊長類化抗体はヒト免疫グロブリンガンマ１またはガンマ４定常領域のいずれかを含むのが好ましく、ガンマ４は２つの位置にて突然変異させてガンマ４ＰＥを作成するのが好ましいであろう。このガンマ４ＰＥ変異体は２つの変異、すなわち残留ＦＣＲ結合を排除するために導入したＣＨ２領域中のグルタミン酸、および重鎖ジスルフィド結合相互作用の安定性を増大させることを意図したヒンジ領域におけるプロリン置換を含んでいる［アレグル（Alegre）ら、J.Immunol.、１４８、３４６１〜３４６８（１９９２）；およびエンジェル（Angel）ら、Mol.Immunol.、３０、１０５〜１５８（１９９３）；ともに参照のため本明細書中に引用する］。本発明の霊長類化抗体がガンマ１、ガンマ４またはガンマ４ＰＥ定常領域のいずれを含むかは、特定の疾患標的にほぼ依存する。好ましくは、枯渇および非枯渇霊長類化ＩｇＧ１およびＩｇＧ４抗体を作成し、特定の疾患標的に対して試験する。本発明のサルモノクローナル抗体が上記結合特性および機能的特性を有するとするなら、これら抗Ｂ７.１モノクローナル抗体およびその霊長類化形態はＢ７：ＣＤ２８相互作用を阻止するための治療剤として充分に適しているに違いなく、かくして免疫抑制剤が提供される。とりわけ、混合リンパ球培養におけるＩＬ −２産生およびトリチウム化チミジンの取り込みによって測定されるようなＢ７ .１抗原への高親和性およびＢ細胞／Ｔ細胞相互作用を阻止する能力、並びに減少した抗原特異的ＩｇＧ応答、ＩＬ−２産生および細胞増殖によって示されるようなドナー牌臓細胞培養において抗原誘発応答を有効に抑制する能力を有するとするなら、これらサルモノクローナル抗体およびその霊長類化形態はＢ７：ＣＤ２８経路を調節する有効な免疫抑制剤として機能するに違いない。このことは、免疫抑制が治療学上望ましい多くの疾患、たとえば自己免疫疾患を治療するため、望ましくない抗原特異的ＩｇＧ応答を抑制するため、および臓器移植拒絶および移植片対宿主病を防ぐために重要である。本質的に、本発明の抗体は、Ｂ７：ＣＤ２８経路の抑制が治療学上望ましいあらゆる疾患を治療するうえで有用であろう。本発明の抗Ｂ７.１抗体の重要な治療適応症としては、例として、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、１型糖尿病、多発性硬化症、再生不能性貧血、乾癖、アレルギー、炎症性胆汁疾患および慢性関節リウマチなどの自己免疫疾患が挙げられる。本発明の抗Ｂ７.１抗体の他の治療適応症は、臓器移植および骨髄移植（ＢＭＴ）の際の移植片対宿主病（ＧＶＨＤ）を防ぐことである。本発明の抗体は、ドナー特異的な同種抗原に対する宿主寛容を誘発し、それによって移植を容易にし、移植拒絶の発生を低減するのに用いることができる。同種抗原心臓移植のマウスモデルにおいて、ＣＴＬＡ４−Ｉｇの静脈内投与が免疫抑制あるいは同種抗原に対する寛容の誘発とさえなりうることが示されている［リン（Lin）ら、J.Exp .Med .１７８］１８０１、１９９３；トルカ（Torka）ら、Proc.Natl.Acad.Sci.U SA 、８９：１１１０２、１９９２］。本発明の霊長類化抗Ｂ７.１抗体は同様またはそれ以上の活性を示すであろうことが期待される。上記方法によりまたは同等の技術により産生した抗体は、機能的生物学的アッセイにおいて特徴付けるためにアフィニティークロマトグラフィーとサイズ排除クロマトグラフィーとの組み合わせにより精製することができる。これらアッセイには、特異性および結合親和性の決定並びに発現されたイソ型に伴うエフェクター機能、たとえばＡＤＣＣ、または補体固定化が含まれる。かかる抗体は、多くのヒト疾患、たとえば、Ｂ細胞リンパ腫、ＨＩＶ／ＡＩＤＳなどのウイルス性疾患を含む感染疾患、自己免疫疾患、炎症性疾患、および移植に対する受動および能動治療剤として用いることができる。これら抗体は、その天然型か、または抗体／キレート複合体、抗体／薬剤複合体もしくは抗体／毒素複合体の一部として用いることができる。さらに、全抗体または抗体フラグメント（Ｆａｂ₂、Ｆａｂ、Ｆｖ）を造影試薬として、または抗イディオタイプ応答を生成するための能動免疫療法における潜在的なワクチンまたは免疫原として用いることができる。治療効果を得るのに有用な抗体の量は、当業者によく知られた標準法により決定することができる。これら抗体は一般に、標準法により薬理学的に許容しうる緩衝液中にて提供され、所望の経路にて投与できる。本願の請求に係る抗体の有効性およびヒトによる寛容のため、ヒトにおける種々の疾患または疾患状態を治療するためにこれら抗体を繰り返し投与することが可能である。本発明の抗Ｂ７.１抗体（またはそのフラグメント）は、免疫抑制を誘発するのに、すなわちヒトまたは動物の免疫系の抑制を誘発するのに有用である。それゆえ、本発明は、本発明の抗体の有効な非毒性量を免疫抑制を必要とするヒトその他の動物に投与することによる、かかるヒトその他の動物において免疫抑制を予防的または治療的に誘発する方法に関する。本発明の化合物が免疫抑制を誘発する能力は、この目的のために使用される標準的な試験、たとえば、混合リンパ球反応試験またはチミジンの取り込みにより測定されるＴ細胞増殖の抑制を測定する試験で示される。本発明の抗体が免疫抑制を誘発するうえで有用性を有するという事実は、本発明の抗体が移植臓器または組織（たとえば、腎臓、心臓、肺、骨髄、皮膚、角膜など）に対する抵抗または拒絶の治療または予防；自己免疫疾患、炎症疾患、増殖性および過増殖性疾患、および免疫学的に媒体された疾患の皮膚症状（たとえば、慢性関節リウマチ、エリテマトーデス、全身性エリテマトーデス、橋本甲状腺炎、多発性硬化症、重症筋無力症、１型糖尿病、ぶどう膜炎、ネフローゼ症候群、乾癬、アトピー性皮膚炎、接触皮膚炎、およびさらなる（further）湿疹性皮膚炎、脂漏性皮膚炎、偏平苔せん、天疱瘡、水泡性天疱瘡、表皮水泡症、蕁麻疹、血管浮腫、脈管炎、紅斑、皮膚好酸球増加症、円形脱毛症など）の治療または予防；可逆性閉塞性気道疾患（reversible obstructive airways disease）、胃腸炎症およびアレルギー（たとえば、炎症性胆汁疾患、小児脂肪便症、直腸炎、好酸球増加性胃腸炎、肥満細胞症、クローン病および潰瘍性大腸炎）、食物関連アレルギー（たとえば、偏頭痛、鼻炎および湿疹）および他のタイプのアレルギーの治療に有用であるに違いないことを示している。当業者であれば日常的な実験により、免疫抑制を誘発する目的のための抗体の有効かつ非毒性の量を決定できるであろう。しかしながら、一般に、有効投与量は１日当たり体重１ｋｇ当たり約０.０５〜１００ｍｇの範囲であろう。本発明の抗体（またはそのフラグメント）はまた、哺乳動物において腫瘍を治療するうえでも有用であるに違いない。一層詳しくは、本発明の抗体は、腫瘍のサイズを小さくし、腫瘍の増殖を抑制し、および／または腫瘍を有する動物の生存時間を延ばすのに有用であるに違いない。さらに、本発明はまた、ヒトその他の動物に有効かつ非毒性量の抗体を投与することによるヒトその他の動物における腫瘍の治療方法にも関する。当業者であれば日常的な実験により、発癌性腫瘍を治療する目的のための抗Ｂ７抗体の有効かつ非毒性の量を決定できるであろう。しかしながら、一般に、有効投与量は１日当たり体重１ｋｇ当たり約０.０５〜１００ｍｇの範囲であることが期待される。本発明の抗体は、上記治療方法に従い、治療または予防効果が期待できる程度に充分な量にてヒトその他の動物に投与することができる。かかる本発明の抗体は、公知技術に従って本発明の抗体を通常の薬理学的に許容しうる担体または希釈液と混合することにより調製した通常の剤型にて、かかるヒトその他の動物に投与することができる。当業者であれば薬理学的に許容しる担体または希釈液の形態および特性が、混合する活性成分の量、投与経路および他のよく知られた変量によって決定されることが認識されるであろう。本発明の抗体（またはそのフラグメント）の投与経路は、経口、非経口、吸入または局所投与であってよい。本明細書において用いる非経口なる術語は、静脈内、腹腔内、筋肉内、皮下、直腸内または膣内投与を含む。皮下および筋肉内形態の非経口投与が一般に好ましい。本発明の化合物を予防的または治療的に免疫抑制を誘発するためまたは発癌性腫瘍を治療するために用いる際の毎日の非経口および経口投与計画は、一般に１日当たり体重１ｋｇ当たり約０.０５〜１００ｍｇの範囲だが、約０.５〜１０ｍｇの範囲であるのが好ましいであろう。本発明の抗体はまた吸入によっても投与することができる。「吸入」とは鼻内および経口吸入投与を意味する。かかる投与に適した剤型、たとえばエアロゾル製剤や定量吸入器（metered dose inhaler）などは通常の技術により製造できる。本発明の化合物の好ましい投与量は、一般に約１０〜１００ｍｇの範囲である。本発明の抗体はまた、局所投与することもできる。局所投与とは非全身投与をいい、本発明の抗体（またはそのフラグメント）化合物を表皮や頬面窩洞に外用したり、かかる抗体を眼、耳および鼻や血流に実質的に浸入しない場所に点滴注入することを含む。全身投与とは、経口、静脈内、腹腔内および筋肉内投与を意味する。治療または予防効果を得るのに必要な抗体の量は、もちろん、選択した抗体、治療しようとする状態の性質および重篤度および治療を受ける動物により変わるであろうが、最終的には医師の裁量による。本発明の抗体の局所投与の適当な投与量は、一般に１日当たり体重１ｋｇ当たり約１〜１００ｍｇの範囲であろう。製剤本発明の抗体またはそのフラグメントは単独でも投与することが可能であるが、医薬製剤として投与することが好ましい。活性成分は、局所投与の場合、医薬製剤の０.００１〜１０％ｗ／ｗ、たとえば１重量％〜２重量％を構成してよいが、１０％ｗ／ｗを構成してもよく、好ましくは医薬製剤の５％ｗ／ｗを越えない量、さらに好ましくは０.１〜１％ｗ／ｗである。本発明の局所製剤は、活性成分を１またはそれ以上の許容しうる担体および任意の他の治療成分とともに含む。担体は、製剤の他の成分と適合し、適用者に有害でないという意味で「許容しうる」ものでなければならない。局所投与に適した製剤としては、リニメント剤、ローション剤、クリーム剤、軟膏またはパスタ剤などの治療が必要な部位へ皮膚を通して浸透していくのに適した液状または半液状の製剤、および眼、耳または鼻に投与するのに適した滴剤が含まれる。本発明による滴剤は滅菌した水性または油性の溶液または懸濁液を含み、殺菌剤および／または殺真菌剤および／または他の適当な保存剤の適当な水溶液（好ましくは表面活性剤を含む）中に活性成分を溶解することにより調製できる。ついで、得られた溶液を濾過により清澄化し、適当な容器に移し、ついでこれを密封し、９０〜１００℃にて半時間オートクレーブまたは維持することにより滅菌する。別法として、溶液を濾過により滅菌し、無菌技術により容器に移す。滴剤中に含めるのに適した殺菌剤および殺真菌剤の例は、硝酸フェニル水銀または酢酸フェニル水銀（０.００２％）、塩化ベンザルコニウム（０.０１％）および酢酸クロルヘキシジン（０.０１％）である。油性溶液を調製するのに適した溶媒には、グリセリン、希アルコールおよびプロピレングリコールが含まれる。本発明によるローション剤には、皮膚または眼に適用するのに適したものが含まれる。眼用ローション剤は、任意に殺菌剤を含む滅菌水溶液を含み、滴剤の調製と同様の方法により調製できる。皮膚に適用するローション剤またはリニメント剤はまた、アルコールやアセトンなどの乾燥促進剤や皮膚冷却剤、および／またはグリセリンなどの加湿剤またはヒマシ油や落花生油などの油をも含む。本発明によるクリーム剤、軟膏またはパスタ剤は、活性成分の外用のための半固形製剤である。これら製剤は、微細に粉砕したまたは粉末形態の活性成分を単独で、または水性もしくは非水性流体中の溶液または懸濁液中にて、適当な機械の助けを借りて脂肪性（greasy）または非脂肪性（non−greasy）基剤を用いて混合することにより調製できる。基剤は、固形パラフィン、軟パラフィンまたは流動パラフィン、グリセリン、蜜蝋、金属石鹸などの炭水化物；粘漿薬；扁桃油、トウモロコシ油、落花生油、ヒマシ油またはオリーブ油などの天然起源の油；羊毛脂もしくはその誘導体、またはステアリン酸やオレイン酸などの脂肪酸をプロピレングリコールやマクロゴールなどのアルコールとともに含む。製剤は、陰イオン性、陽イオン性または非イオン性界面活性剤などの適当な界面活性剤、たとえば、ソルビタンエステルまたはそのポリオキシエチレン誘導体などを含んでいてよい。天然ゴム、セルロース誘導体または無機物質（シリカ（silicaceous si licas）などの懸濁化剤、およびラノリンなどの他の成分も含まれていてよい。本発明の抗Ｂ７.１抗体またはそのフラグメントはまた、Ｂ７：ＣＤ２８経路を調節する他の分子（moieties）とともに投与することもできる。かかる分子としては、その例として、ＩＬ−７やＩＬ−１０などのサイトカイン、ＣＴＬＡ４ −Ｉｇ、可溶性ＣＴＬＡ４および抗ＣＤ２８抗体およびそのフラグメントが挙げられる。本発明の抗体はまた、他の免疫抑制剤と併用して投与することができる。かかる免疫抑制剤としては、サイクロスポリンＡ（ＣＳＡ）およびＦＫ５０６などの小さな分子；抗腫瘍壊死因子ａ（抗ＴＮＦａ）、抗ＣＤ５４、抗ＣＤ１１、抗ＣＤ１１ａ、および抗ＩＬ−１などのモノクローナル抗体；およびｒＴＮＦａおよびｒＩＬ−１などの他の可溶性受容体が挙げられる。当業者には、本発明の抗体またはそのフラグメントの個々の投与量の最適量および期間（spacing）が治療しようとする状態の性質および程度、投与の形態、経路および部位、および治療しようとする特定の動物により決定されるであろうこと、およびかかる最適量が通常の技術により決定されうることが認識されるであろう。当業者にはまた、治療の最適コース、すなわち所定日数の間の１日当たりに投与する本発明の抗体またはそのフラグメントの投与の回数が治療決定試験（treatment determination tests）の通常のコースを用いて当業者により評価されうることも認識されるであろう。さらに詳述するまでもなく、当業者であれば上記の記載を用いて本発明を最大限に活用することができると思われる。それゆえ、以下に記載する製剤例は例示的な態様を示すのであって、本発明の範囲をいかなる意味においても限定することを意図するものではない。カプセル組成物カプセル剤の形態の本発明の医薬組成物は、標準的な２片（two-piece）ハードゼラチンカプセルに粉末形態の本発明の抗体またはそのフラグメント（５０ｍｇ）、乳糖（１００ｍｇ）、タルク（３２ｍｇ）およびステアリン酸マグネシウム（８ｍｇ）を充填することにより調製する。注射可能な非経口組成物注射により投与するのに適した形態の本発明の医薬組成物は、本発明の抗体またはそのフラグメント（１.５重量％）を１０容量％のプロピレングリコールおよび水の中で撹拌することにより調製する。この溶液を濾過滅菌する。軟膏組成物本発明の抗体またはそのフラグメントを１.０ｇ白色軟パラフィンを１００.０ｇまで。本発明の抗体またはそのフラグメントを少量のビヒクル中に分散させて滑らかな均一な生成物を得る。ついで、この分散液を折り畳み式金属チューブに充填する。局所クリーム組成物本発明の抗体またはそのフラグメントを１.０ｇポラワックスＧＰ２００を２０.０ｇ無水ラノリンを２.０ｇ白色蜜蝋を２.５ｇヒドロキシ安息香酸メチルを０.１ｇ蒸留水を１００.０ｇまで。ポラワックス、蜜蝋およびラノリンをいっしょに６０℃で加熱する。ヒドロキシ安息香酸メチルの溶液を加え、高速で撹拌して均一な溶液とする。ついで、温度を５０℃まで下げる。ついで、本発明の抗体またはそのフラグメントを加え、充分に分散させ、ゆっくりとした速度で撹拌して組成物を冷却する。局所ローション組成物本発明の抗体またはそのフラグメントを１.０ｇソルビタンモノラウレートを０.６ｇポリソルベート２０を０.６ｇセトステアリルアルコールを１.２ｇグリセリンを６.０ｇヒドロキシ安息香酸メチルを０.２ｇ精製水Ｂ.Ｐ.を１００−００ｍｌ（Ｂ.Ｐ.＝英国薬局方）。ヒドロキシ安息香酸メチルおよびグリセリンを７５℃の水（７０ｍｌ）中に溶解する。ソルビタンモノラウレート、ポリソルベート２０およびセトステアリルアルコールをいっしょに７５℃で溶融し、上記水溶液に加える。得られた乳濁液をホモジナイズし、連続撹拌しながら冷却させ、本発明の抗体またはそのフラグメントを残りの水中の懸濁液として加える。全懸濁液をホモジナイズされるまで攪拌する。点眼組成物本発明の抗体またはそのフラグメントを０.５ｇヒドロキシ安息香酸メチルを０.０１ｇヒドロキシ安息香酸プロピルを０.０４ｇ精製水Ｂ.Ｐ.を１００−００ｍｌヒドロキシ安息香酸メチルおよびヒドロキシ安息香酸プロピルを７０ｍｌの精製水中に７５℃にて溶解し、得られた溶液を冷却した。っいで、本発明の抗体またはそのフラグメントを加え、溶液をメンブランフィルター（０.０２２μｍの孔径）で濾過して滅菌し、適当な滅菌容器中に滅菌充填する。吸入投与のための組成物１５〜２０ｍｌ容のエアロゾル容器用：１０ｍｇの本発明の抗体またはそのフラグメントを０.２〜０.５％の滑沢剤、たとえばポリソルベート８５またはオレイン酸と混合し、ついで該混合物を好ましくは（１,２ジクロロテトラフルオロエタン）とジフルオロクロロメタンとの組み合わせ中でフレオン等のプロペラント中に分散させ、鼻内かまたは口内投与のいずれかに適合させた適当なエアロゾル容器中に入れる。吸入投与のための組成物１５〜２０ｍｌ容のエアロゾル容器用：本発明の抗体またはそのフラグメント（１０ｍｇ）をエタノール（６〜８ｍｌ）中に溶解し、ポリソルベート８５またはオレイン酸などの滑沢剤（０.１−０. ２％）を加え、このものをフレオン（好ましくは（１，２ジクロロテトラフルオロエタン）とジフルオロクロロメタンとの組み合わせ）などのプロペラント中に分散し、鼻内かまたは経口吸入投与に適合させた適当なエアロゾル容器中に入れる。本発明の抗体および医薬組成物は、非経口投与、すなわち皮下、筋肉内または静脈内投与に特に有用である。非経口投与用の組成物は一般に、許容しうる担体、好ましくは水性担体中に溶解した本発明の抗体またはそのフラグメントまたはその組み合わせの溶液を含むであろう。種々の水性担体、たとえば、水、緩衝水溶液、０.４％食塩水、０.３％グリシンなどを用いることができる。これらの溶液は滅菌してあり、一般に粒状物質を含まない。これら溶液は、通常のよく知られた滅菌法により滅菌することができる。本発明の組成物は、ｐＨ調節剤や緩衝剤など、適当な生理条件に必要とされる薬理学的に許容可能な補助物質を含んでいてよい。かかる医薬組成物中の本発明の抗体またはフラグメントの濃度は広範囲に変わりうる、すなわち約０.５重量％未満、通常少なくとも約１重量％から１５または２０重量％までであってよく、選択した特定の投与方法に従って主として流体容量、粘度などに基づいて選択されるであろう。それゆえ、本発明の筋肉内投与用医薬組成物は、１ｍｌの滅菌緩衝水溶液および５０ｍｇの本発明の抗体またはそのフラグメントを含むように調製できる。同様に、本発明の静脈内投与用医薬組成物は、２５０ｍｌまでの滅菌リンゲル溶液および１５０ｍｇの本発明の抗体またはそのフラグメントを含むように調製できる。非経口投与可能な組成物の実際の調製法は当業者によく知られているかまたは当業者には明らかであり、たとえば、レミントンズ・ファーマシューティカル・サイエンス（Remington's Pharmaceutical Science）、第１５版、マック・パブリシング・カンパニー（Mack Publishing Company）、イーストン、ペンシルベニア（参照のため本明細書中に引用する）に一層詳細に記載されている。本発明の抗体（またはそのフラグメント）は貯蔵のために凍結乾燥し、使用前に適当な担体中で再構成することができる。この技術は通常の免疫グロブリンにおいて有効であることが示されており、技術分野で公知の凍結乾燥および再構成法を用いることができる。本発明の医薬組成物は、意図する結果に依存して予防および／または治療のために投与することができる。治療の目的で適用する場合には、すでに疾患を患っている患者に該疾患およびその合併症を治癒もしくは少なくとも部分的に寛解させるに充分な量の組成物を投与する。予防の目的で適用する場合には、未だ疾患状態にない患者に本発明の抗体またはその混合物を含む組成物を投与して患者の耐性を高める。本発明の医薬組成物の単回投与または多回投与を、治療にあたった医師により選択された投与量レベルおよびパターンにて行うことができる。いずれの場合においても、本発明の医薬組成物は患者を有効に治療するのに充分な所定量の本発明の改変抗体（またはそのフラグメント）を提供できなくてはならない。本発明の抗体はまた、該抗体と同じ療法において有用なペプチド性かまたは非ペプチド性の化合物（模倣物）の設計および合成に用いることができる［たとえば、サラゴビ（Saragovi）ら、Science、２５３、７９２〜７９５（１９９１）を参照］。本発明をさらに説明するため、下記実施例を記載する。これら実施例は本発明を限定することを意図するものではない。実施例１繊維状ファージの表面上に提示された組換え免疫グロブリンライブラリーは、マッカファーティー（McCafferty）ら、Nature、３４８：５５２〜５５４、１９９０およびバーバス（Barbas）ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA ８８：７９７８〜７９８２、１９９１に最初に記載された。この技術を用い、高親和性抗体を免疫ヒト組換えライブラリーから単離した［バーバスら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA ５８９：１０１６４〜１０１６８、１９９２］。本発明で使用したファージ提示の概念はバーバス（１９９１、上掲）によって記載されたものと実質的に同じであるが、組換えの可能性を低減し安定性を改善するため、サルライブラリーの独特のベクターを代用することにより該技術を修飾した。このベクター、ｐＭＳ（図１）は、ポリシストロン性の重鎖および軽鎖サルＤＮＡの効率的な転写および翻訳のための単一のｌａｃプロモーター／オペレーターを含む。このベクターは、２つの異なるリーダー配列、すなわち、軽鎖のためのｏｍｐＡ［モッバ（Movv a）ら、J.Biol.Chem.、２５５：２７〜２９（１９８０）］および重鎖ＦｄのためのｐｅｌＢ［レイ（Lei）ら、J.Bact.、４３７９〜１０９：４３８３（１９８７）］を含む。両リーダー配列は、重鎖および軽鎖クローニング生成物の細胞周辺腔への分泌を指令する疎水性のシグナルペプチドに翻訳される。ペリプラスムの酸化的環境中では、これら２つの鎖は折り畳まれ、ジスルフィド結合を生成して安定なＦａｂフラグメントを形成する。本発明者らは、このベクターの骨格をファージミドであるbluescript（ストラタジーン、ラジョラ、カリフォルニア）から得た。それは、ｐＭＳＤＮＡを含む細菌にアンピシリン（カルベニシリン）耐性を付与する酵素β−ラクタマーゼの遺伝子を含む。本発明者らはまた、マルチコピープラスミドＣｏｌＥ１の複製起点および繊維状バクテリオファージｆ１の複製起点をbluescriptから得た。ファージｆ１の複製起点（いわゆる遺伝子内領域）は、一本鎖ｐＭＳＤＮＡの合成の開始、カプシド形成の開始およびウイルス酵素によるＲＮＡ合成の終止を指令する。ｐＭＳＤＮＡ鎖の複製およびファージ粒子への組み立てには、ヘルパーファージによって提供されなければならないウイルスタンパク質を必要とする。本発明者らはヘルパーファージＶＣＳＭ１３を用いたが、これはカナマイシン耐性をコードする遺伝子をも含んでいるため特にこの目的に適している。ＶＣＳＭ１３およびｐＭＳが感染した細菌は、増殖培地にカナマイシンおよびカルベニシリンの両者を加えることにより選択できる。これら細菌は、最終的にｐＭＳゲノムかまたはＶＣＳＭ１３ゲノムのいずれかを含有する繊維状ファージ粒子を生成するであろう。ヘルパーファージのパッケージングはｐＭＳのパッケージングに比べて効率が悪く、その結果、組換えｐＭＳファージを優勢に含む混合ファージ集団が得られる。このファージの両末端は各末端に特異的なマイナーコートタンパク質を拾い上げる（pick up）。本発明において特に興味深いのは、該ファージの一端に５コピーのうち３コピー中に存在する遺伝子III生成物である。この遺伝子III生成物は４０６アミノ酸残基からなり、Ｆ線毛を介した大腸菌のファージ感染に必要である。重鎖の最初の２つのドメイン、すなわち可変ドメインおよびＣＨ１ドメインは遺伝子IIIタンパク質のカルボキシ末端半分に融合している。この組換え線毛タンパク質（ｐｅｌＢリーダーにより指令される）はペリプラスムに分泌され、そこで蓄積し、ファージのコート中に組み込まれる前に軽鎖とジスルフィド結合を生成する。また、他のベクターは遺伝子IIIの下流に組み込んだＦＬＡＧ配列を含む。このＦＬＡＧは、Ｆｄタンパク質のカルボキシ末端にて発現される８アミノ酸ペプチドである。本発明者らは、ファージＦａｂの精製およびＥＬＩＳＡによる検出の両目的のために市販のモノクローナル抗ＦＬＡＧＭ２を用いている［ブリザード（Brizzard）、Bio Technology、１６（４）：７３０−７３１（１９９４）］。ベクターｐＭＳを構築した後、本発明者らは該ベクターがファージ結合Ｆａｂを産生する能力について対照の抗体遺伝子を用いて試験した。本発明者らは抗破傷風毒素抗体（カルロス・バーバス（Carlos Barbas）博士より入手）をｐＭＳ中にクローニングし、ＸＬＩ−blueを形質転換した。本発明者らはＶＣＳＭ１３および得られた抗破傷風毒素抗体を提示するファージで本発明者らの細胞を同時感染させた。本発明者らは効率実験を行い、その際、抗破傷風毒素ファージを関連のない抗体を結合した（beading）ファージと１：１００,０００にて組み合わせた。本発明者らは、混合ファージ（５０μｌ）を抗原（破傷風毒素）コーティングポリスチレンウエルに適用することにより３回のえり分けを行った。接着しなかったファージは洗い落とし、接着したファージは酸で溶出した。溶出したファージを用いてＸＬ１−Blue細菌の新たなアリコートを感染させ、ヘルパーファージを加えた。一夜増幅させた後、ファージを調製し、抗原をコーティングしたプレート上で再びえり分けた。３回のえり分けの後、本発明者らは抗破傷風毒素ファージに首尾よく富むことを示すことができた。この技術が首尾よくいくかどうかはまた、最終のえり分け生成物の特徴付けのために可溶性のＦａｂを調製する能力にも依存する。このことは、制限酵素ＮｈｅＩを用いてｐＭＳＤＮＡから遺伝子IIIを切り出し、ついで再ライゲートすることにより行った。遺伝子III を切り出した後はＦａｂはもはやファージ表面上には提示されず、細胞周辺腔中に蓄積した。可溶性のＦａｂを発現する細菌から溶解液を調製し、ＥＬＩＳＡを用いて抗原特異性を試験した。高レベルの可溶性Ｆａｂが検出された。ファージ提示法をマカークザルライブラリーに使用するため、本発明者らはサル免疫グロブリン遺伝子のＰＣＲ増幅のために特別のプライマーを開発した。これらプライマーは、霊長類化（PRIMATIZED^TM）抗体法（米国特許出願第０８／３７９,０７２号を参照；参照のため本明細書中に引用する）を開発する際に本発明者らが得たマカークザル配列およびヒト配列を含むデータベース（カバット（Kabat）ら（１９９１）、「免疫学的に興味のあるタンパク質の配列」、U.S.D ept．of Health and Human Services、National Institute of Health）に基づいていた。本発明者らは、マカークザルの範囲（repertoire）の増幅をカバーするために３セットのプライマーを開発した。本発明者らの第一のプライマーのセットは、重鎖のＶＨおよびＣＨ１（Ｆｄ）ドメインの増幅のために設計したものであった。それは、３'ＣＨ１ドメインプライマーおよびフレームワーク１領域に結合する６つの５'ＶＨファミリー特異的プライマーからなっていた。本発明者らの第二のプライマーのセットは全ラムダ鎖を増幅するためのものであり、多くのラムダ鎖サブグループをカバーしている。それは、３'プライマーおよびＶＬフレームワーク１領域に結合する３つの５'縮重プライマーからなっている。本発明者らの第三のプライマーのセットは、カッパ鎖サブグループの増幅のために設計したものであった。それは、３'プライマーおよび５つのＶＫフレームワーク１プライマーからなる。これら各セットのプライマーを用い、ライブラリーのクローニングに利用するのに充分な物質を利用できるように各プライマーセットから充分に強いシグナルを得るべくＰＣＲパラメータを最適化した。本発明者らは最近、これら最適化ＰＣＲ条件を用いて本発明者らのｐＭＳベクターにおいてマカークザル組み合わせ（combinatorial）ライブラリーを作成した。免疫グロブリンＲＮＡの採取源として骨髄生検をＣＤ４免疫サルから採取した。これらライブラリーは約１０⁶の成員を含んでおり、目下、抗原コーティングウエル上で特異的結合についてえり分けている。実施例２Ｂ７／ＣＴＬＡ−４試薬の開発本発明者らは、サルの免疫、インビトロでの結合および機能アッセイの開発、ヘテロハイブリドーマのスクリーニングおよびファージライブラリーのえり分けの目的のために多くの試薬を作成した。表１には各試薬とその意図する目的を掲げてある。Ｂ７.１の場合には、ＲＮＡをＳＢ細胞から抽出し、逆転写酵素を用いてｃＤＮＡに変換した。第一鎖のｃＤＮＡをＢ７.１特異的プライマーを用いてＰＣＲ増幅し、ＩＤＥＣのＮＥＯＳＰＬＡ哺乳動物発現ベクター中にクローニングした。このＢ７.ＩＮＥＯＳＰＬＡＤＮＡでＣＨＯ細胞をトランスフェクションし、膜結合Ｂ７.１を発現するクローンを同定した。Ｂ７.１融合タンパク質も同様にして生成したが、ヒトＣＨ２およびＣＨ３免疫グロブリン遺伝子を含むＮＥＯＳＰＬＡカセットベクター中にＰＣＲ増幅Ｂ７.１遺伝子をクローニングした。このＢ７.１／ＩｇＮＥＯＳＰＬＡＤＮＡでＣＨＯ細胞を形質転換し、Ｂ７.１／Ｉｇ融合タンパク質を分泌する安定なクローンを増幅した。一般に、Ｂ７.２およびＣＴＬＡ−４試薬も同様にして生成したが、Ｂ７.２ではＲＮＡを抗ＩｇおよびＩＬ−４で２４時間刺激したヒト脾臓細胞から単離し、ＣＴＬＡ４構築物については遺伝子の採取源はＰＨＡ活性化したヒトＴ細胞であった。表１試薬目的ＣＨＯ発現可溶性Ｂ７.１免疫、イムノアッセイ有Ｂ７.１トランスフェクタントスクリーニング、ＥＬＩＳＡ有Ｂ７.１／Ｉｇ融合タンパク質抑制試験、えり分け有Ｂ７.２トランスフェクタントスクリーニング、ＥＬＩＳＡ有Ｂ７.２／Ｉｇ融合タンパク質抑制試験、えり分け未完ＣＴＬＡ４トランスフェクタント抑制試験未完ＣＴＬＡ４／Ｉｇ抑制試験未完これら試薬が、Ｂ７.１に対するモノクローナル抗体（Ｌ３０７４）［ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）、１９９４］、Ｂ７.２に対するモノクローナル抗体（Ｆｕｎ−１）［エンジェル（Engel）ら、Blood、８４、１４０２〜１４０７（１９９４）］およびサルＦａｂフラグメントを検出すべく特別に開発した精製ヤギおよびウサギ血清とともに利用できることは、所望の特性を有する抗体の同定を容易にする。実施例３ファージ提示ライブラリーの作成組換えファージ提示ライブラリーをＢ７.１およびＢ７.２免疫サルから作成する。免疫の７〜１２日後にリンパ節および骨髄生検を採取し、ＲＮＡに富むＢ細胞および形質細胞を回収する。チョンチンスキー（Chomczynski）により記載された方法［Anal.Biochem.、１６２（１）、１５６〜１５９（１９８７）］を用い、リンパ球からＲＮＡを単離する。オリゴｄＴプライマーおよび逆転写酵素を用いてＲＮＡをｃＤＮＡに変換する。第一鎖ｃＤＮＡをアリコートに分け、以前に記載されたカッパ、ラムダ、および重鎖Ｆｄ領域のプライマーセット並びにＰｆｕポリメラーゼ（ストラタジーン、サンジエゴ）かまたはＴａｑポリメラーゼ（プロメガ、マジソン）のいずれかを用い、ＰＣＲ増幅する。重鎖ＰＣＲ増幅生成物をプールし、ＸｈｏＶＳｐｅＩ制限酵素で切断し、ベクターｐＭＳ中にクローニングする。その後、軽鎖ＰＣＲ生成物をクローニングし、ＳａｃＩ／ＸｂａＩ制限酵素で切断し、クローニングして組換えライブラリーを作成する。ＸＬＩ−Blue大腸菌を該ライブラリーＤＮＡで形質転換し、ＶＣＳＭ１３で重感染させて抗体を提示するファージを生成させる。このライブラリーを、Ｂ７.１抗原またはＢ７.２抗原をコーティングしたポリスチレンウエル上で４回えり分ける。各回のえり分けからの個々のファージクローンを分析する。ｐＭＳベクターＤＮＡを単離し、遺伝子IIIを切り出す。可溶性のＦａｂフラグメントが生成し、Ｂ７.１およびＢ７.２への結合についてＥＬＩＳＡで試験する。実施例４ファージＦａｂフラグメントの特徴付けサルファージＦａｂフラグメントを、その特異性、およびＣＴＬＡ−４−ＩｇまたはＣＴＬＡ−４トランスフェクション細胞へのＢ７.１−ＩｇおよびＢ７.２ −Ｉｇ結合を阻止する能力について特徴付ける。ファージフラグメントはまた、高親和性のフラグメントを選択するため、免疫に使用したＢ７種上で４回行った最初のえり分け後の交差反応性について特徴付けを行う。Ｂ７.１抗原またはＢ７.２抗原のいずれかをコーティングした表面上で４回えり分けたものから同定したＦａｂフラグメントを、大腸菌の２４時間発酵培養液中での感染および増殖によりスケールアップする。フラグメントを、抗ＦＬＡＧアフィニティーカラムへのコダックＦＬＡＧ結合により精製する。精製したファージＦａｂを、西洋ワサビペルオキシダーゼをコンジュゲートしたヤギ抗サルＦａｂ抗体または抗ＦＬＡＧＭＡｂを用いたＥＬＩＳＡベースの直接結合改変スキャッチャード分析［カトー（Katoh）ら、J.Chem.BioEng.、７６：４５１〜４５４（１９９３）］により親和性を試験する。抗サルＦａｂ試薬は、ヒト重鎖定常領域Ｉｇに対して吸着され、Ｂ７−Ｉｇへの交差反応性は除かれるであろう。Ｂ７.１−ＩｇまたはＢ７.２−Ｉｇをコーティングしたプレートへの直接結合の測定の後、各フラグメントについてＫｄ値を計算する。実施例５ファージＦａｂフラグメントによるＣＴＬＡ−４／Ｂ７結合の阻止最も低い濃度でＢ７−Ｉｇの結合を最も有効に阻止するＦａｂフラグメントを先導候補として選択する。選択は、ＣＴＬＡ−４−ＩｇまたはＣＴＬＡ−４トランスフェクション細胞への¹²⁵Ｉ−Ｂ７−Ｉｇ結合を競合し尽くすことにより行う。他の選択基準には、応答細胞での３Ｈ−チミジンの取り込みの抑制［アズマら、J.Exp.Med.、１７７：８４５〜８５０；アズマら、Nature、３０１：７６〜７９（１９９３）］およびＩＬ−２アッセイキットを用いたＩＬ−２産生の直接分析により測定されるように、混合リンパ球反応（ＭＬＲ）の阻止が含まれる。ＭＬＲの抑制およびＣＴＬＡ−４結合アッセイにおいて最も有効な３または４の候補が、ＣＨＯ細胞へのトランスフェクションおよびキメラサル／ヒト抗体の発現のための上記哺乳動物発現ベクター中へクローニングするために選択される。実施例６サルヘテロハイブリドーマの生成モノクローナル抗体を分泌するサルヘテロハイブリドーマを、その血清がＢ７ .１および／またはＢ７.２に対して陽性と試験された生存（existing）免疫動物から作成する。いずれかまたは両方の抗原に対して陽性の動物からリンパ節生検を採取する。ハイブリドーマの産生方法は、サル抗ＣＤ４抗体の作成に使用する確立された方法［ニューマン、１９９２（上掲）］と同様である。高い血清力価を有するサルは、鼠蹊部のリンパ節の切片を麻酔下で取り除かれるであろう。組織からのリンパ球を洗浄し、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いてＫＨ６／Ｂ５ヘテロハイブリドーマ細胞［キャロル（Carrol）ら、J.Immunol.Meth.、８９：６１〜７２（１９８６）］と融合させる。ハイブリドーマをＨ.Ａ.Ｔ.培地上で選択し、９６ウエルプレート中で繰り返しサブクローニングすることにより安定化させる。Ｂ７.１抗原に特異的なサルモノクローナル抗体をＢ７.２への交差反応性についてスクリーニングする。サル抗Ｂ７抗体は、¹²⁵Ｉ−Ｂ７−Ｉｇ結合アッセイを用いてＢ７／ＣＴＬＡ−４結合の阻止について特徴付けられるであろう。３Ｈ −チミジンの取り込みおよびＩＬ−２産生の直接測定によるＭＬＲの抑制を用い、３つの候補を選択する。２つの候補はフェーズIIの試験に持ち込まれ、すべての機能的研究を繰り返しながらＣＨＯ細胞中に発現されるであろう。インビボ薬理学のための動物モデルを開発する目的のため、抗Ｂ７抗体が幾つかの動物種の細胞上で試験されるであろう。動物モデルの確立は、選択した臨床適応のために前臨床研究を行うことを可能にするであろう。実施例７上記のように上記ヘテロハイブリドーマ法を用いて４つの先導サル抗Ｂ７.１抗体：１６Ｃ１０、７Ｂ６、７Ｃ１０および２０Ｃ９が同定された。これら抗体は以下のように特徴付けられた：スキャッチャード分析は、Ｂ７−Ｉｇコーティングプレートへのサル抗体の結合の見かけの親和定数（Ｋｄ）がおよそ以下のとおりであることを示した：ａ：７Ｃ１０：６.２×１０^-9Ｍｂ：１６Ｃ１０：８.１×１０^-9Ｍｃ：７Ｂ６：１０.７×１０^-9Ｍｄ：２０Ｃ９：１６.８×１０^-9Ｍ抗体を混合リンパ球反応アッセイ（ＭＬＲ）においてインビトロで試験した。ＭＬＲは、４つのすべての抗Ｂ７.１抗体が異なる程度にＩＬ−２産生を抑制することを示した：ａ：７Ｂ６：５.０μｇ／Ｍ１ｂ：１６Ｃ１０：０.１μｇ／Ｍ１ｃ：２０Ｃ９：２.０μｇ／Ｍ１ｄ：７Ｃ１０：５.０μｇ／Ｍ１サル抗Ｂ７.１抗体を、ヒト末梢血リンパ球（ＰＢＬ）上のＢ７に結合する能力について試験した。ＦＡＣＳ分析は、４つのすべてのサル抗体が陽性であることを示した。サル抗体１６Ｃ１０、７Ｂ６、７Ｃ１０および２０Ｃ９をＦＡＣＳ分析によりＣ１ｑ結合について試験した。その結果は、７Ｃ１０サルＩｇがＢ７.１ＣＨＯトランスフェクション細胞とともにインキュベートした後に強いヒトＣ１ｑ結合を有することを示した。１６Ｃ１０もまた陽性であったが、２０Ｃ９および７Ｂ６サル抗体は陰性であった。実施例８本明細書中に参照のために引用した米国特許出願第０８／３７９,０７２号の霊長類化抗体法を用い、および図２に示すＮＥＯＳＰＬＡベクター系を用い、７Ｃ１０、７Ｂ６および１６Ｃ１０の重鎖および軽鎖可変ドメンをクローニングし、その霊長類化形態をＮＥＯＳＰＬＡベクター系を用いてＣＨＯ細胞中で合成した。霊長類化７Ｃ１０の軽鎖および重鎖、７Ｂ６の軽鎖および重鎖、および１６Ｃ１０の軽鎖および重鎖のアミノ酸配列および核酸配列を、それぞれ、図３ａ、図３ｂ、図４ａ、図４ｂ、図５ａおよび図５ｂに示す。実施例９ＣＴＬＡ−４とＢ７.１上のPRIMATIZED^R抗体結合部位との非交差反応性の確認実験ビオチン化ＣＴＬＡ−４Ｉｇを用いた競合結合アッセイにおいて（図６）、非標識霊長類化１６Ｃ１０（すなわち、Ｐ１６Ｃ１０）はＢ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞へのＣＴＬＡ−４Ｉｇ結合を阻止することができなかった。非標識ＣＴＬＡ−４Ｉｇおよび非標識Ｂ７.１はこれら条件下で有効に競合することがわかる。ビオチン化Ｐ１６Ｃ１０を用いた第二の実験において、同じ結論を得ることができる。図７に示す実験において、Ｐ１６Ｃ１０−ビオチンの結合は非標識Ｐ１６Ｃ１０およびＢ７.１Ｉｇの両者により阻害されるが、ＣＴＬＡ−４Ｉｇによっては阻害されない。ＣＴＬＡ−４Ｉｇは４〜１０倍も高い親和性を示すことが報告されているが（Ｋｄ＝０.４ｎＭ；モートンら、J ．Immunol. １５６：１０４７〜１０５４（１９９６））、１００倍過剰もの高いＣＴＬＡ−４Ｉｇ濃度でもＰ１６Ｃ１０結合の有意な阻害はみられない。同様の結果は、同実験でＰ１６Ｃ１０の代わりに霊長類化抗体７Ｃ１０（Ｐ７Ｃ１０）を用いても得られた（データは示していない）。実施例１０Ｌ３０７.４およびＢＢ−１マウス抗体がＣＴＬＡ−４Ｉｇの存在下でＢ７ＣＨＯ細胞へ結合する能力の比較マウス抗体の結合部位がＣＴＬＡ−４の結合部位と重複するか否かを決定するため、ＣＴＬＡ−４Ｉｇの存在下でのＬ３０７.４およびＢＢ−１マウス抗体の結合を調べた。Ｐ１６Ｃ１０−ビオチン、Ｌ３０７.４−ビオチンおよびＣＴＬＡ−４Ｉｇ−ビオチンを用いた競合アッセイ実験を行い、親和性の相違が競合結合の検出を妨害しないことを保証した。その結果を図８および図９に示す。図８の結果は、マウス抗体ＢＢ−１がＰ１６Ｃ１０と競合しないという以前の研究を確認している。これら結果はまた、Ｌ３０７.４に対する約５０％の若干の交差反応性が認められることを示している。図８の結果は、ＢＢ−１およびＬ３０７.４がともに互いに競合すること、およびＢＢ−１がＢ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞へのＣＴＬＡ−４Ｉｇ−ビオチンの結合を完全に阻止することを確認している。ＢＢ−１はＢ７.１陽性ＣＨＯ細胞へのＰ１６Ｃ１０結合に有意に影響を及ぼさない。図９に示す結果は、結合実験においてＣＴＬＡ−４Ｉｇ−ビオチンを用いたときに５０％よりも良好な競合を示している。図９は、ＣＴＬＡ−４Ｉｇ−ビオチンがＰ１６Ｃ１０以外のすべてのＢ７.１インヒビターにより有効に阻害されることを示しており、それゆえＰ１６Ｃ１０は負のシグナルの生成において正常なＣＴＬＡ−４リガンド結合を可能にするＢ７.１上の独特の結合決定部位を認識する。以前の機能的研究（データは示していない）は、同種ＭＬＲにおいてＩＬ −２産生を阻止するＬ３０７.４の弱められた能力を示唆しており、このことはＬ３０７.４がＣＴＬＡ−４の負のシグナル伝達に介入するという仮設と相関している。文献に報告された他のマウス抗体の多くがいかにしてＣＴＬＡ−４結合の完全な阻害をもたらすのかは明らかではない；しかしながら、Ｂ７.１特異的抗体およびＢ７.２特異的抗体の真の機能的メカニズムを定めるうえで重要な問題である。これら結果は、Ｂ７.１トランスフェクションＣＨＯ細胞への結合に対してＰ１６Ｃ１０−ビオチンと競合するＢ７−Ｉｇを用いた以前の研究を確認している。これら研究はまた、ＣＴＬＡ−４ＩｇによりＰ１６Ｃ１０が阻害されないという以前の観察をも確認するものである。これらの結果は、霊長類抗体が、ＣＤ２８と主として相互作用するＣＴＬＡ−４結合部位とは独立に独特のＢ７.１エピトープに特異的であることを強く示唆している。このタイプの相互作用は、ＣＴＬＡ−４の負のシグナル伝達機能は依然として阻害されずに起こるようにしながら、ＣＤ２８へのＢ７.１の結合を阻止する能力を有するため、有益である。このように認められる相互作用は、Ｔｈ１かまたはＴｈ２のいずれかの表現型の優勢のいかんにかかわらず、全体としてのＴ細胞活性化応答のダウンレギュレーションに導く。同様の結果は、同実験でＰ１６Ｃ１０の代わりにＰ７Ｃ１０を用いても得られた（データは示していない）。実施例１１Ｂ７.１に結合しＣＤ２８受容体とのＢ７.１の相互作用を阻止する能力を示す実験Ｂ７.１のＰ１６Ｃ１０結合がＢ７.１とＣＤ２８との相互作用を阻止し得るか否かを決定する実験を、Ｂ７.１Ｉｇを¹²⁵Ｉで放射性標識し、ついでＣＤ２８陽性非活性化末梢血Ｔリンパ球への競合結合により行った。図１０に示す結果は、非標識Ｂ７.１Ｉｇでの阻害により確認されるように、放射性標識Ｂ７.１ＩｇがＴ細胞に特異的に結合することを示している。これら結果はまた、ＣＴＬＡ−４Ｉｇ、抗ＣＤ２８およびＰ１６Ｃ１０がすべてこの相互作用を阻止し得ることをも示している。これら結果はさらに、Ｐ１６Ｃ１０がＣＤ２８／Ｂ７相互作用の結合を＜１μｇ／ｍＬのＩＣ₅₀にて阻止することを確認している。上記結果は、膜結合ＣＴＬＡ−４が発現されない条件下で得られ（リンスレイら、J ．Exp．Med. １７３：７２１〜７３０（１９９１））、抗ＣＤ２８抗体での阻止により確認された。同様の結果は、同実験でＰ１６Ｃ１０の代わりにＰ７Ｃ１０を用いても得られた（データは示していない）。これら霊長類化抗体は、それがおそらく低い抗原性を有しヒトエフェクター機能を有するために治療剤として極めて適していることが期待される。実際、霊長類化１６Ｃ１０はヒトＣ１ｑ結合を示すことが最近示されている。当業者であれば、本明細書に記載した本発明の特定の態様と等価な多くの等価物を日常的な実験を越えない実験を使用して認識もしくは確認し得るであろう。かかる等価物は以下の請求の範囲に包含されることを意図するものである。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｐ 17/06 Ａ６１Ｐ 17/06 19/02 19/02 25/00 25/00 27/14 27/14 29/00 29/00 １０１１０１ 37/06 37/06 Ｃ０７Ｋ 16/28 Ｃ０７Ｋ 16/28 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者ハンナ，ナビルアメリカ合衆国92067カリフォルニア州ランチョ・サンタ・フェ、カミノ・デリシアダ 16016番 (72)発明者ブラムズ，ピーターアメリカ合衆国92116カリフォルニア州サンディエゴ、プロクター、プレイス4303 番 (72)発明者ハード，シェリルアメリカ合衆国92024カリフォルニア州エンシニタス、ビア・モントロ1225番

Claims

【特許請求の範囲】１．ヒトＢ７.１抗原（ＣＤ８０）および／またはＢ７.２抗原（ＣＤ８６）に特異的に結合し、該Ｂ７.１抗原またはＢ７.２抗原のＣＤ２８への結合を阻害するモノクローナル抗体。２．Ｂ７.１抗原（ＣＤ８０）に特異的に結合する、請求項１に記載のモノクローナル抗体。３．Ｂ７.１抗原のＣＴＬＡ−４への結合は阻害しない、請求項２に記載のモノクローナル抗体。４．Ｂ７.２抗原（ＣＤ８６）に特異的に結合する、請求項１に記載のモノクローナル抗体。５．Ｂ７.２抗原のＣＴＬＡ−４への結合は阻害しない、請求項４に記載のモノクローナル抗体。６．Ｔ細胞によるＩＬ−２産生を阻害する、請求項１に記載のモノクローナル抗体。７．ＣＤ２８／Ｂ７.１経路を介してＢ細胞およびＴ細胞の相互作用を選択的に阻害する、請求項２に記載のモノクローナル抗体。８．ＣＤ２８／Ｂ７.２経路を介してＢ細胞およびＴ細胞の相互作用を選択的に阻害する、請求項４に記載のモノクローナル抗体。９．Ｔリンパ球によるＩＬ−２の産生をインビトロで阻害し得る、請求項１に記載のモノクローナル抗体。１０．少なくとも１０μｇ／ｍｌの濃度でＴリンパ球含有培地に加えたときにＩＬ−２産生を阻害し得る、請求項９に記載のモノクローナル抗体。１１．１６Ｃ１０または７Ｃ１０と同じＢ７.１上のエピトープに結合するか、または１６Ｃ１０または７Ｃ１０とＢ７.１との相互作用を阻害する、モノクローナル抗体。１２．霊長類化抗体である、請求項１に記載のモノクローナル抗体。１３．ヒト抗体、キメラマウス／ヒト抗体、またはヒト化抗体である、請求項１に記載のモノクローナル抗体。１４．該Ｂ７.１がヒトＢ７.１である、請求項１に記載のモノクローナル抗体。１５．該Ｂ７.２がヒトＢ７.２である、請求項１に記載のモノクローナル抗体。１６．Ｂ７.１／ＣＤ２８経路を介したＢ細胞およびＴ細胞の結合を阻害するのに充分な量の請求項２に記載のモノクローナル抗体を投与することを含む、Ｔ細胞／Ｂ細胞相互作用が関与する疾患の治療方法。１７．Ｂ７.２／ＣＤ２８経路を介したＢ細胞およびＴ細胞の結合を阻害するのに充分な量の請求項４に記載のモノクローナル抗体を投与することを含む、Ｔ細胞／Ｂ細胞相互作用が関与する疾患の治療方法。１８．該疾患が自己免疫疾患である、請求項１６に記載の方法。１９．該疾患が自己免疫疾患である、請求項１７に記載の方法。２０．該疾患が、特発性血小板減少性紫斑病、全身性エリテマトーデス、１型糖尿病、慢性関節リウマチ、乾癬、再生不能性貧血、炎症性胆汁疾患、アレルギーおよび多発性硬化症よりなる群から選ばれたものである、請求項１６に記載の方法。２１．該疾患が、特発性血小板減少性紫斑病、全身性エリテマトーデス、１型糖尿病、慢性関節リウマチ、乾癬、再生不能性貧血、炎症性胆汁疾患、アレルギーおよび多発性硬化症よりなる群から選ばれたものである、請求項１７に記載の方法。２２．該疾患が移植片対宿主病である、請求項１６に記載の方法。２３．該疾患が移植片対宿主病である、請求項１７に記載の方法。２４．該疾患が、Ｂ細胞リンパ腫、感染性疾患、および炎症性疾患よりなる群から選ばれたものである、請求項１６に記載の方法。２５．該疾患が、Ｂ細胞リンパ腫、感染性疾患、および炎症性疾患よりなる群から選ばれたものである、請求項１７に記載の方法。２６．請求項１に記載の抗体を含む、Ｂ７：ＣＤ２８結合の阻害により治療し得る疾患の治療に適した医薬組成物。２７．他の組換えタンパク質または小分子の免疫抑制剤と併用して投与する、請求項１６に記載の方法。２８．他の組換えタンパク質または小分子の免疫抑制剤と併用して投与する、請求項１７に記載の方法。