JP2001178466A - Dna断片固定固相担体、dna断片固定固相担体の製造方法および核酸断片試料の検出方法 - Google Patents
Dna断片固定固相担体、dna断片固定固相担体の製造方法および核酸断片試料の検出方法Info
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- JP2001178466A JP2001178466A JP36379599A JP36379599A JP2001178466A JP 2001178466 A JP2001178466 A JP 2001178466A JP 36379599 A JP36379599 A JP 36379599A JP 36379599 A JP36379599 A JP 36379599A JP 2001178466 A JP2001178466 A JP 2001178466A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 固相担体表面に、予め調製したDNA断片を
迅速な反応によって安定に結合させることが可能な固定
方法、DNA断片固定固相担体、及び核酸断片の検出方
法を提供すること。 【解決手段】 表面に反応性基が導入された固相担体
に、X1−L−X2[X1は、固相担体表面の反応性基と
反応する反応性基を表し;X2は、固相担体表面の反応
性基には反応性を示さない反応性基を表し;そして、L
は、二価の連結基を表す]で表される反応性化合物を接
触させることによって、−L−X2基を該固相担体表面
に導入する工程;そして、該固相担体上の−L−X2基
に、一方の末端に反応性基を有するDNA断片を接触さ
せることによって、その反応性基と−L−X2基とを反
応させて、DNA断を−L−結合基を介して固相担体表
面に結合させる工程を含むことを特徴とするDNA断片
固定固相担体の製造方法。
迅速な反応によって安定に結合させることが可能な固定
方法、DNA断片固定固相担体、及び核酸断片の検出方
法を提供すること。 【解決手段】 表面に反応性基が導入された固相担体
に、X1−L−X2[X1は、固相担体表面の反応性基と
反応する反応性基を表し;X2は、固相担体表面の反応
性基には反応性を示さない反応性基を表し;そして、L
は、二価の連結基を表す]で表される反応性化合物を接
触させることによって、−L−X2基を該固相担体表面
に導入する工程;そして、該固相担体上の−L−X2基
に、一方の末端に反応性基を有するDNA断片を接触さ
せることによって、その反応性基と−L−X2基とを反
応させて、DNA断を−L−結合基を介して固相担体表
面に結合させる工程を含むことを特徴とするDNA断片
固定固相担体の製造方法。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、遺伝子の発現、変
異、多型等の同時解析に特に有用な多数のDNA断片や
オリゴヌクレオチドを固相表面に整列させた高密度アレ
イ(DNAチップ)の作製に必要な、DNA断片の固相
担体表面への固定方法に関する。
異、多型等の同時解析に特に有用な多数のDNA断片や
オリゴヌクレオチドを固相表面に整列させた高密度アレ
イ(DNAチップ)の作製に必要な、DNA断片の固相
担体表面への固定方法に関する。
【0002】
【従来の技術】多彩な生物の全遺伝子機能を効率的に解
析するための技術開発が進んでいる。DNAチップは、
スライドガラス等の固相担体に多数のDNA分子を整列
させたマイクロアレイであり、遺伝子の発現、変異、多
型性等の同時解析に非常に有用である。このDNAチッ
プを用いるDNAチップ技術は、DNA以外の生体分子
にも適用可能であり、創薬研究、疾病の診断や予防法の
開発等に新しい手段を提供するものとして期待されてい
る。
析するための技術開発が進んでいる。DNAチップは、
スライドガラス等の固相担体に多数のDNA分子を整列
させたマイクロアレイであり、遺伝子の発現、変異、多
型性等の同時解析に非常に有用である。このDNAチッ
プを用いるDNAチップ技術は、DNA以外の生体分子
にも適用可能であり、創薬研究、疾病の診断や予防法の
開発等に新しい手段を提供するものとして期待されてい
る。
【0003】DNAチップ技術が具体化してきたのは、
DNAの塩基配列をオリゴヌクレオチドとのハイブリダ
イゼーションによって決定する方法(SBH:sequ
encing by hybridization)が
考案されたことに始まる(Drmanac,R.et
al.,Genomics,4,page 114(1
989))。SBHは、ゲル電気泳動を用いる塩基配列
決定法の限界を克服できる方法ではあったが、実用化に
は至らなかった。
DNAの塩基配列をオリゴヌクレオチドとのハイブリダ
イゼーションによって決定する方法(SBH:sequ
encing by hybridization)が
考案されたことに始まる(Drmanac,R.et
al.,Genomics,4,page 114(1
989))。SBHは、ゲル電気泳動を用いる塩基配列
決定法の限界を克服できる方法ではあったが、実用化に
は至らなかった。
【0004】その後、DNAチップ作製技術が開発さ
れ、遺伝子の発現、変異、多型等を短時間で効率よく調
べる、いわゆるHTS(high−throughpu
t screeening)が可能となった(Fodo
r,S.P.A.,Science,251,page
767(1991)およびSchena,M.,Sc
ience,270,page 467(199
5))。
れ、遺伝子の発現、変異、多型等を短時間で効率よく調
べる、いわゆるHTS(high−throughpu
t screeening)が可能となった(Fodo
r,S.P.A.,Science,251,page
767(1991)およびSchena,M.,Sc
ience,270,page 467(199
5))。
【0005】しかし、DNAチップ作製技術を実用化す
るためには、多数のDNA断片やオリゴヌクレオチドを
固相担体表面に整列させるためのDNAチップの作製技
術が必要とされる。作製されたDNAチップ上のDNA
断片は、一般的には、標識した試料核酸断片とのハイブ
リダイゼーションによって検出される。
るためには、多数のDNA断片やオリゴヌクレオチドを
固相担体表面に整列させるためのDNAチップの作製技
術が必要とされる。作製されたDNAチップ上のDNA
断片は、一般的には、標識した試料核酸断片とのハイブ
リダイゼーションによって検出される。
【0006】DNAチップの作製方法としては、固相担
体表面で直接DNA断片を合成する方法(「オン・チッ
プ法」という。)と、予め調製したDNA断片を固相担
体表面に固定する方法とが知られている。オン・チップ
法としては、光照射で選択的に除去される保護基の使用
と、半導体製造に利用されるフォトリソグラフィー技術
および固相合成技術とを組み合わせて、微少なマトリッ
クスの所定の領域での選択的合成を行う方法(「マスキ
ング技術」という。)が代表的である。
体表面で直接DNA断片を合成する方法(「オン・チッ
プ法」という。)と、予め調製したDNA断片を固相担
体表面に固定する方法とが知られている。オン・チップ
法としては、光照射で選択的に除去される保護基の使用
と、半導体製造に利用されるフォトリソグラフィー技術
および固相合成技術とを組み合わせて、微少なマトリッ
クスの所定の領域での選択的合成を行う方法(「マスキ
ング技術」という。)が代表的である。
【0007】予め調製したDNA断片を固相担体表面に
固定する方法は、DNA断片の種類や固相担体の種類に
応じて下記の方法が知られている。 (1)固定するDNA断片がcDNA(mRNAを鋳型
にして合成した相補的DNA)やPCR産物(cDNA
をPCR法によって増幅させたDNA断片)の場合に
は、これらをDNAチップ作製装置に備えられたスポッ
タ装置を用いて、ポリ陽イオン(ポリリシン、ポリエチ
レンイミン等)で表面処理した固相担体表面に点着し、
DNAの荷電を利用して固相担体に静電結合させるのが
一般的である。また、固相担体表面の処理方法として、
アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基等を有するシラン
カップリング剤を用いる方法も利用されている(Ge
o,Z.et al.,Nuleic Acids R
esearch,22,5456−5465(199
4))。この場合には、アミノ基、アルデヒド基等は、
共有結合により固相担体表面に導入されるため、ポリ陽
イオンによる場合と比較して安定に固相担体表面に存在
する。
固定する方法は、DNA断片の種類や固相担体の種類に
応じて下記の方法が知られている。 (1)固定するDNA断片がcDNA(mRNAを鋳型
にして合成した相補的DNA)やPCR産物(cDNA
をPCR法によって増幅させたDNA断片)の場合に
は、これらをDNAチップ作製装置に備えられたスポッ
タ装置を用いて、ポリ陽イオン(ポリリシン、ポリエチ
レンイミン等)で表面処理した固相担体表面に点着し、
DNAの荷電を利用して固相担体に静電結合させるのが
一般的である。また、固相担体表面の処理方法として、
アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基等を有するシラン
カップリング剤を用いる方法も利用されている(Ge
o,Z.et al.,Nuleic Acids R
esearch,22,5456−5465(199
4))。この場合には、アミノ基、アルデヒド基等は、
共有結合により固相担体表面に導入されるため、ポリ陽
イオンによる場合と比較して安定に固相担体表面に存在
する。
【0008】DNAの荷電を利用する方法の変法とし
て、アミノ基で修飾したPCR産物をSSC(標準食塩
−クエン酸緩衝液)に懸濁させ、これをシリル化したス
ライドガラス表面に点着し、インキュベートした後、水
素化ホウ素ナトリウムによる処理および加熱処理を順に
行う方法が報告されている(Schena,M.eta
l.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA
93,10614−10619(1996))。しか
し、この固定方法では必ずしも充分な安定度が得られ難
いという問題がある。DNAチップ技術では、検出限界
が重要となる。そのため、固相担体表面に充分な量で安
定にDNAが固定されることは、DNAと標識した試料
核酸断片とのハイブリダイゼーションの検出限界の向上
に直接繋がる。
て、アミノ基で修飾したPCR産物をSSC(標準食塩
−クエン酸緩衝液)に懸濁させ、これをシリル化したス
ライドガラス表面に点着し、インキュベートした後、水
素化ホウ素ナトリウムによる処理および加熱処理を順に
行う方法が報告されている(Schena,M.eta
l.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA
93,10614−10619(1996))。しか
し、この固定方法では必ずしも充分な安定度が得られ難
いという問題がある。DNAチップ技術では、検出限界
が重要となる。そのため、固相担体表面に充分な量で安
定にDNAが固定されることは、DNAと標識した試料
核酸断片とのハイブリダイゼーションの検出限界の向上
に直接繋がる。
【0009】(2)固定するDNA断片が合成オリゴヌ
クレオチドの場合には、反応活性基を導入したオリゴヌ
クレオチドを合成し、表面処理した固相担体表面に該オ
リゴヌクレオチドを点着し、共有結合させる(「蛋白質
・核酸・酵素」、43巻、(1998)、2004−2
011、Lamture,J.B et al.,Nu
cl.Acids Res.,22,2121−212
5,1994、およびGuo,Z.,et al.,N
ucl.Acids Res.,22,5456−54
65,1994)。例えば、アミノ基を導入したスライ
ドガラスに、PDC(p−フェニレンジイソチオシアネ
ート)存在下、アミノ基導入オリゴヌクレオチドを反応
させる方法、および該スライドガラスに、アルデヒド基
導入オリゴヌクレオチドを反応させる方法が知られてい
る。上記の二つの方法は、前記(1)のDNAの荷電を
利用する方法と比べて、オリゴヌクレオチドが固相担体
表面に安定に固定される。しかし、PDCを存在させる
方法は、PDCとアミノ基導入オリゴヌクレオチドとの
反応が遅く、アルデヒド基導入オリゴヌクレオチドを用
いる方法は、反応生成物であるシッフ塩基の安定性が低
い(通常、加水分解が起こり易い)という問題点を有す
る。
クレオチドの場合には、反応活性基を導入したオリゴヌ
クレオチドを合成し、表面処理した固相担体表面に該オ
リゴヌクレオチドを点着し、共有結合させる(「蛋白質
・核酸・酵素」、43巻、(1998)、2004−2
011、Lamture,J.B et al.,Nu
cl.Acids Res.,22,2121−212
5,1994、およびGuo,Z.,et al.,N
ucl.Acids Res.,22,5456−54
65,1994)。例えば、アミノ基を導入したスライ
ドガラスに、PDC(p−フェニレンジイソチオシアネ
ート)存在下、アミノ基導入オリゴヌクレオチドを反応
させる方法、および該スライドガラスに、アルデヒド基
導入オリゴヌクレオチドを反応させる方法が知られてい
る。上記の二つの方法は、前記(1)のDNAの荷電を
利用する方法と比べて、オリゴヌクレオチドが固相担体
表面に安定に固定される。しかし、PDCを存在させる
方法は、PDCとアミノ基導入オリゴヌクレオチドとの
反応が遅く、アルデヒド基導入オリゴヌクレオチドを用
いる方法は、反応生成物であるシッフ塩基の安定性が低
い(通常、加水分解が起こり易い)という問題点を有す
る。
【0010】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、固相担体表
面に、予め調製したDNA断片を迅速な反応によって安
定に結合させることが可能な固定方法、DNA断片固定
固相担体、および核酸断片の検出方法を提供すること
を、その課題とする。
面に、予め調製したDNA断片を迅速な反応によって安
定に結合させることが可能な固定方法、DNA断片固定
固相担体、および核酸断片の検出方法を提供すること
を、その課題とする。
【0011】
【課題を解決するための手段】本発明は、表面に反応性
基が導入された固相担体に、X1−L−X2[X1は、固
相担体表面の反応性基と反応する反応性基を表し;X2
は、固相担体表面の反応性基には反応性を示さない反応
性基を表し;そして、Lは、二価の連結基を表す]で表
される反応性化合物を接触させることによって、−L−
X2基を該固相担体表面に導入する工程;そして、該固
相担体上の−L−X2基に、一方の末端に反応性基を有
するDNA断片を接触させることによって、その反応性
基と−L−X2基とを反応させて、DNA断片を−L−
結合基を介して固相担体表面に結合させる工程を含むこ
とを特徴とするDNA断片固定固相担体の製造方法にあ
る。
基が導入された固相担体に、X1−L−X2[X1は、固
相担体表面の反応性基と反応する反応性基を表し;X2
は、固相担体表面の反応性基には反応性を示さない反応
性基を表し;そして、Lは、二価の連結基を表す]で表
される反応性化合物を接触させることによって、−L−
X2基を該固相担体表面に導入する工程;そして、該固
相担体上の−L−X2基に、一方の末端に反応性基を有
するDNA断片を接触させることによって、その反応性
基と−L−X2基とを反応させて、DNA断片を−L−
結合基を介して固相担体表面に結合させる工程を含むこ
とを特徴とするDNA断片固定固相担体の製造方法にあ
る。
【0012】本発明のDNA断片固定固相担体の製造方
法の好ましい態様は以下の通りである。 (イ)X1およびX2が、互いに独立に、マレイミド基、
ハロゲン原子、イソシアン酸エステル基、イソチオシア
ン酸エステル基、スクシンイミドオキシ基、アルデヒド
基、カルボン酸基、および−CR1=CR2R3[R1、R
2およびR3は、互いに独立に、水素原子、炭素原子数が
1乃至6のアルキル基、および炭素原子数が6乃至20
のアリール基からなる群より選ばれる原子もしくは基を
表す]からなる群より選ばれる原子もしくは基である。 (ロ)X1が、ビニル基もしくは塩素原子であり、そし
て、X2が、イソシアン酸エステル基もしくはスクシン
イミドオキシ基である。 (ハ)固相担体上の反応性基が、アミノ基もしくはメル
カプト基であり、そして、DNA断片が有する反応性基
が、アミノ基もしくはメルカプト基である。 (ニ)アミノ基もしくはメルカプト基が導入された固相
担体が、固相担体表面に、アミノ基もしくはメルカプト
基を有するシランカップリング剤を接触させることによ
って作製されたものである。 (ホ)DNA断片として、その塩基配列が既知である。
法の好ましい態様は以下の通りである。 (イ)X1およびX2が、互いに独立に、マレイミド基、
ハロゲン原子、イソシアン酸エステル基、イソチオシア
ン酸エステル基、スクシンイミドオキシ基、アルデヒド
基、カルボン酸基、および−CR1=CR2R3[R1、R
2およびR3は、互いに独立に、水素原子、炭素原子数が
1乃至6のアルキル基、および炭素原子数が6乃至20
のアリール基からなる群より選ばれる原子もしくは基を
表す]からなる群より選ばれる原子もしくは基である。 (ロ)X1が、ビニル基もしくは塩素原子であり、そし
て、X2が、イソシアン酸エステル基もしくはスクシン
イミドオキシ基である。 (ハ)固相担体上の反応性基が、アミノ基もしくはメル
カプト基であり、そして、DNA断片が有する反応性基
が、アミノ基もしくはメルカプト基である。 (ニ)アミノ基もしくはメルカプト基が導入された固相
担体が、固相担体表面に、アミノ基もしくはメルカプト
基を有するシランカップリング剤を接触させることによ
って作製されたものである。 (ホ)DNA断片として、その塩基配列が既知である。
【0013】本発明は、また、上記記載の本発明の製造
方法によって製造されたDNA断片固定固相担体にもあ
る。
方法によって製造されたDNA断片固定固相担体にもあ
る。
【0014】本発明は、さらに、本発明のDNA断片固
定固相担体に、蛍光物質で標識した核酸断片試料を溶解
あるいは分散してなる水性液を点着した後、インキュベ
ートして、該DNA断片固定固相担体に固定されている
DNA断片と核酸断片試料とで形成されたハイブリッド
DNAを検出することを特徴とする、該DNA断片固定
固相担体に固定されているDNA断片に対して相補性を
有する核酸断片の検出方法にもある。
定固相担体に、蛍光物質で標識した核酸断片試料を溶解
あるいは分散してなる水性液を点着した後、インキュベ
ートして、該DNA断片固定固相担体に固定されている
DNA断片と核酸断片試料とで形成されたハイブリッド
DNAを検出することを特徴とする、該DNA断片固定
固相担体に固定されているDNA断片に対して相補性を
有する核酸断片の検出方法にもある。
【0015】
【発明の実施の形態】図1に、本発明の代表的なDNA
断片固定固相担体の製造方法および代表的なDNA断片
固定固相担体を模式的に示す。本発明のDNA断片固定
固相担体の製造方法は、(1)固相担体1の表面に反応
性基(R)が導入された固相担体(A)に、下記一般式
(I)で表される非対称性の反応性化合物を接触させる
ことによって、−L−X2基を固相担体表面に導入する
工程、および(2)固相担体上の−L−X2基に、一方
の末端に反応性基(Z)を有するDNA断片を接触さ
せ、その反応性基と−L−X2基とを反応させて、DN
A断片を固相担体表面に結合させる工程を含む。
断片固定固相担体の製造方法および代表的なDNA断片
固定固相担体を模式的に示す。本発明のDNA断片固定
固相担体の製造方法は、(1)固相担体1の表面に反応
性基(R)が導入された固相担体(A)に、下記一般式
(I)で表される非対称性の反応性化合物を接触させる
ことによって、−L−X2基を固相担体表面に導入する
工程、および(2)固相担体上の−L−X2基に、一方
の末端に反応性基(Z)を有するDNA断片を接触さ
せ、その反応性基と−L−X2基とを反応させて、DN
A断片を固相担体表面に結合させる工程を含む。
【0016】
【化1】(I) X1−L−X2
【0017】一般式(I)中、X1およびX2は、互いに
異なる反応性基を表す。即ち、X1は、固相担体表面の
反応性基(R)と反応する反応性基であって、DNA断
片が有する反応性基(Z)とは反応しない反応性基を表
し、X2は、固相担体上の反応性基(R)とは反応せ
ず、DNA断片が有する反応性基(Z)とのみ反応する
反応性基を表す。X1およびX2がとり得る基もしくは原
子は、反応性基(R)とX1との反応の種類、X2と反応
性基(Z)との反応の種類、およびこれらの組み合わせ
によって決定される。X1およびX2は、上記で説明した
性質を有する反応性基であるため、固相担体表面上に導
入された−L−X2基のX2もまた、固相担体上の反応性
基(R)と結合することがない。即ち、一般式(I)が
固相担体表面に対して架橋構造を形成することがない。
異なる反応性基を表す。即ち、X1は、固相担体表面の
反応性基(R)と反応する反応性基であって、DNA断
片が有する反応性基(Z)とは反応しない反応性基を表
し、X2は、固相担体上の反応性基(R)とは反応せ
ず、DNA断片が有する反応性基(Z)とのみ反応する
反応性基を表す。X1およびX2がとり得る基もしくは原
子は、反応性基(R)とX1との反応の種類、X2と反応
性基(Z)との反応の種類、およびこれらの組み合わせ
によって決定される。X1およびX2は、上記で説明した
性質を有する反応性基であるため、固相担体表面上に導
入された−L−X2基のX2もまた、固相担体上の反応性
基(R)と結合することがない。即ち、一般式(I)が
固相担体表面に対して架橋構造を形成することがない。
【0018】X1およびX2は、互いに独立に、マレイミ
ド基、ハロゲン原子(F、Cl、Br、I等)、スルホ
ニルクロリド基、ハロホルミル基、イソシアン酸エステ
ル基、イソチオシアン酸エステル基、スクシンイミドオ
キシ基、アルデヒド基、カルボン酸基、および−CR1
=CR2R3基からなる群より選ばれる原子もしくは基で
あることが好ましい。スクシンイミドオキシ基は、−O
SO2−炭素原子数が1乃至6のアルキル基、−OSO2
−炭素原子数が6乃至20のアリール基、−OSO
3M、−OCO−炭素原子数が1乃至6のアルキル基、
−OCO−炭素原子数が1乃至6のハロゲン化アルキル
基、炭素原子数が1乃至6のアルキル基を有する炭素原
子数が7乃至26のアラルキル基、−NH−炭素原子数
が1乃至6のアルキレン基−OSO3M、および四級ピ
リジニウム基からなる群より選ばれる置換基を有してい
てもよい。四級ピリジニウム基は、さらに置換基を有し
ていてもよい。
ド基、ハロゲン原子(F、Cl、Br、I等)、スルホ
ニルクロリド基、ハロホルミル基、イソシアン酸エステ
ル基、イソチオシアン酸エステル基、スクシンイミドオ
キシ基、アルデヒド基、カルボン酸基、および−CR1
=CR2R3基からなる群より選ばれる原子もしくは基で
あることが好ましい。スクシンイミドオキシ基は、−O
SO2−炭素原子数が1乃至6のアルキル基、−OSO2
−炭素原子数が6乃至20のアリール基、−OSO
3M、−OCO−炭素原子数が1乃至6のアルキル基、
−OCO−炭素原子数が1乃至6のハロゲン化アルキル
基、炭素原子数が1乃至6のアルキル基を有する炭素原
子数が7乃至26のアラルキル基、−NH−炭素原子数
が1乃至6のアルキレン基−OSO3M、および四級ピ
リジニウム基からなる群より選ばれる置換基を有してい
てもよい。四級ピリジニウム基は、さらに置換基を有し
ていてもよい。
【0019】上記アルキル基、アリール基、アルキレン
基、アラルキル基およびハロゲン化アルキル基は、さら
に置換されていてもよい。四級ピリジニウム基が有して
いてもよい置換基としては、−アルキレン基−SO3 -お
よび−NH−アルキレン基−SO3 - を挙げることがで
きる。これらのアルキレン基としては、メチレン基もし
くはエチレン基であることが好ましい。四級ピリジニウ
ム基は、ハロゲン化酸塩を形成していてもよく、塩酸塩
であることが特に好ましい。Mは、水素原子、アルカリ
金属原子(Na、K等)および置換基を有していてもよ
いアンモニウム基からなる群より選ばれる原子もしくは
基を表す。ここで、アンモニウム基とは、一般式(I)
の化合物がアンモニウム塩として存在する、あるいは水
溶液でアンモニウムイオンとして存在するためのその基
を表し、以下、カチオンを省略して示す。置換基を有し
ていてもよいアンモニウム基としては、 NH(C
2H5)3、NH(CH2CHOHCH3)3、NH3C
2H5、NH3(n−C3H7)、NH3(n−C4H9)、N
H2(C2H2OH)2 、NH2(C2H5)2 、NH2(i−
C3H7)2 、NH2(n−C3H7)2 、NH2CH3(n
−C4H9) 、NH2(CH3)2 、NH2(n−C4H9)
2 、NHC2H5(i−C3H7)2、もしくはNHCH
3(n−C4H9)2 を挙げることができる。Mは、ナト
リウム原子、もしくはカリウム原子であることが特に好
ましい。
基、アラルキル基およびハロゲン化アルキル基は、さら
に置換されていてもよい。四級ピリジニウム基が有して
いてもよい置換基としては、−アルキレン基−SO3 -お
よび−NH−アルキレン基−SO3 - を挙げることがで
きる。これらのアルキレン基としては、メチレン基もし
くはエチレン基であることが好ましい。四級ピリジニウ
ム基は、ハロゲン化酸塩を形成していてもよく、塩酸塩
であることが特に好ましい。Mは、水素原子、アルカリ
金属原子(Na、K等)および置換基を有していてもよ
いアンモニウム基からなる群より選ばれる原子もしくは
基を表す。ここで、アンモニウム基とは、一般式(I)
の化合物がアンモニウム塩として存在する、あるいは水
溶液でアンモニウムイオンとして存在するためのその基
を表し、以下、カチオンを省略して示す。置換基を有し
ていてもよいアンモニウム基としては、 NH(C
2H5)3、NH(CH2CHOHCH3)3、NH3C
2H5、NH3(n−C3H7)、NH3(n−C4H9)、N
H2(C2H2OH)2 、NH2(C2H5)2 、NH2(i−
C3H7)2 、NH2(n−C3H7)2 、NH2CH3(n
−C4H9) 、NH2(CH3)2 、NH2(n−C4H9)
2 、NHC2H5(i−C3H7)2、もしくはNHCH
3(n−C4H9)2 を挙げることができる。Mは、ナト
リウム原子、もしくはカリウム原子であることが特に好
ましい。
【0020】図1の固相担体(B2)には、X1が−C
R1=CR2R3基である場合の反応例を示す。即ち、反
応性基(R)を−CR1=CR2R3基に付加反応するこ
とによって、−L−X2基を固相担体1上に導入する。
ここで、R1、R2およびR3は、互いに独立に、水素原
子、炭素原子数が1乃至6のアルキル基および炭素原子
数が6乃至20のアリール基からなる群より選ばれる原
子もしくは基を表す。炭素原子数が1乃至6のアルキル
基としては、メチル基、エチル基、n−プロピル基、n
−ブチル基、もしくはn−ヘキシル基であることが好ま
しく、メチル基であることが特に好ましい。上記アリー
ル基としては、フェニル基もしくはナフチル基であるこ
とが好ましく、フェニル基であることが特に好ましい。
R1、R2およびR3は、共に、水素原子であることが好
ましい。上記アルキル基およびアリール基は、さらに置
換されていてもよい。X1およびX2は、共に−CR1=
CR2R 3基であってもよい。このような場合しては、X
1(もしくはX2)がビニル基であり、そして、X2(も
しくはX1)がフェニルビニル基(R3:フェニル基)で
ある例を挙げることができる。
R1=CR2R3基である場合の反応例を示す。即ち、反
応性基(R)を−CR1=CR2R3基に付加反応するこ
とによって、−L−X2基を固相担体1上に導入する。
ここで、R1、R2およびR3は、互いに独立に、水素原
子、炭素原子数が1乃至6のアルキル基および炭素原子
数が6乃至20のアリール基からなる群より選ばれる原
子もしくは基を表す。炭素原子数が1乃至6のアルキル
基としては、メチル基、エチル基、n−プロピル基、n
−ブチル基、もしくはn−ヘキシル基であることが好ま
しく、メチル基であることが特に好ましい。上記アリー
ル基としては、フェニル基もしくはナフチル基であるこ
とが好ましく、フェニル基であることが特に好ましい。
R1、R2およびR3は、共に、水素原子であることが好
ましい。上記アルキル基およびアリール基は、さらに置
換されていてもよい。X1およびX2は、共に−CR1=
CR2R 3基であってもよい。このような場合しては、X
1(もしくはX2)がビニル基であり、そして、X2(も
しくはX1)がフェニルビニル基(R3:フェニル基)で
ある例を挙げることができる。
【0021】X1およびX2は、互いに独立に、ビニル
基、ハロゲン原子、イソシアン酸エステル基、置換基を
有していてもよいスクシンイミドオキシ基、アルデヒド
基もしくはカルボン酸基であることが好ましく、ビニル
基、塩素原子、イソシアン酸エステル基もしくは置換基
を有していてもよいスクシンイミドオキシ基であること
が特に好ましい。
基、ハロゲン原子、イソシアン酸エステル基、置換基を
有していてもよいスクシンイミドオキシ基、アルデヒド
基もしくはカルボン酸基であることが好ましく、ビニル
基、塩素原子、イソシアン酸エステル基もしくは置換基
を有していてもよいスクシンイミドオキシ基であること
が特に好ましい。
【0022】Lは、二価の連結基を表す。二価の連結基
は、炭素原子数が1乃至6のアルキレン基、炭素原子数
が1乃至6のアルケニレン基、炭素原子数が3乃至16
の脂肪族環基、炭素原子数が6乃至20のアリーレン
基、N、SおよびPからなる群より選ばれるヘテロ原子
を1乃至3個含む炭素原子数が2乃至20の複素環基、
−O−、−S−、−SO−、−SO2−、−SO3−、−
NR11−、−CO−、−CO2−、およびこれらの組み
合わせから群より選ばれる基を一つあるいは複数個組み
合わせてなる基であることが好ましい。R11は、水素原
子、炭素原子数が1乃至15のアルキル基、炭素原子数
が6乃至20のアリール基、および炭素原子数が1乃至
6のアルキル基を有する炭素原子数が7乃至21のアラ
ルキル基からなる群より選ばれる原子もしくは基である
ことが好ましく、水素原子もしくは炭素原子数が1乃至
6のアルキル基であることがさらに好ましく、水素原
子、メチル基もしくはエチル基であることが特に好まし
い。Lが−NR11−、−SONR11−、−CONR
11−、−NR11COO−、および−NR11CONR11−
からなる群より選ばれる基を二個以上組み合わせてなる
基である場合には、それらのR11同士が結合して環を形
成していてもよい。
は、炭素原子数が1乃至6のアルキレン基、炭素原子数
が1乃至6のアルケニレン基、炭素原子数が3乃至16
の脂肪族環基、炭素原子数が6乃至20のアリーレン
基、N、SおよびPからなる群より選ばれるヘテロ原子
を1乃至3個含む炭素原子数が2乃至20の複素環基、
−O−、−S−、−SO−、−SO2−、−SO3−、−
NR11−、−CO−、−CO2−、およびこれらの組み
合わせから群より選ばれる基を一つあるいは複数個組み
合わせてなる基であることが好ましい。R11は、水素原
子、炭素原子数が1乃至15のアルキル基、炭素原子数
が6乃至20のアリール基、および炭素原子数が1乃至
6のアルキル基を有する炭素原子数が7乃至21のアラ
ルキル基からなる群より選ばれる原子もしくは基である
ことが好ましく、水素原子もしくは炭素原子数が1乃至
6のアルキル基であることがさらに好ましく、水素原
子、メチル基もしくはエチル基であることが特に好まし
い。Lが−NR11−、−SONR11−、−CONR
11−、−NR11COO−、および−NR11CONR11−
からなる群より選ばれる基を二個以上組み合わせてなる
基である場合には、それらのR11同士が結合して環を形
成していてもよい。
【0023】上記アルキレン基、アルケニレン基、脂肪
族環基、アリーレン基、R11のアルキル基、R11のアリ
ール基、およびR11のアラルキル基は、置換されていて
もよい。このような置換基としては、水酸基、炭素原子
数が1乃至6のアルコキシ基、炭素原子数が1乃至6の
アルケニル基、炭素原子数が2乃至7のカルバモイル
基、炭素原子数が1乃至6のアルキル基、炭素原子数が
2乃至7のアラルキル基、炭素原子数が6乃至20のア
リール基、スルファモイル基(もしくはそのNa塩、K
塩等)、スルホ基(もしくはそのNa塩、K塩等)、カ
ルボン酸基(もしくはそのNa塩、K塩等)、ハロゲン
原子、炭素原子数が1乃至6のアルケニレン基、炭素原
子数が6乃至20のアリーレン基、スルホニル基、およ
びこれらの組み合わせからなる群より選ばれる原子もし
くは基を挙げることができる。
族環基、アリーレン基、R11のアルキル基、R11のアリ
ール基、およびR11のアラルキル基は、置換されていて
もよい。このような置換基としては、水酸基、炭素原子
数が1乃至6のアルコキシ基、炭素原子数が1乃至6の
アルケニル基、炭素原子数が2乃至7のカルバモイル
基、炭素原子数が1乃至6のアルキル基、炭素原子数が
2乃至7のアラルキル基、炭素原子数が6乃至20のア
リール基、スルファモイル基(もしくはそのNa塩、K
塩等)、スルホ基(もしくはそのNa塩、K塩等)、カ
ルボン酸基(もしくはそのNa塩、K塩等)、ハロゲン
原子、炭素原子数が1乃至6のアルケニレン基、炭素原
子数が6乃至20のアリーレン基、スルホニル基、およ
びこれらの組み合わせからなる群より選ばれる原子もし
くは基を挙げることができる。
【0024】Lの好ましい具体例を以下に示す。但し、
aは、1乃至6の整数であり、1もしくは2であること
が好ましく、1であることが特に好ましい。bは、0乃
至6の整数であり、2もしくは3であることが好まし
い。m、nおよびpは、それぞれ、1乃至6の整数であ
ることが好ましく、kは、0または1であることが好ま
しい。
aは、1乃至6の整数であり、1もしくは2であること
が好ましく、1であることが特に好ましい。bは、0乃
至6の整数であり、2もしくは3であることが好まし
い。m、nおよびpは、それぞれ、1乃至6の整数であ
ることが好ましく、kは、0または1であることが好ま
しい。
【0025】
【化2】
【0026】
【化3】
【0027】Lとしては、上記記載の二価の連結基の他
に、上記アルキレン基の水素原子がビニルスルホニル基
によって置換された基であることも好ましい。
に、上記アルキレン基の水素原子がビニルスルホニル基
によって置換された基であることも好ましい。
【0028】以下、本発明で好ましく用いられる反応性
化合物の具体例を示す。
化合物の具体例を示す。
【0029】
【化4】
【0030】
【化5】
【0031】
【化6】
【0032】
【化7】
【0033】
【化8】
【0034】
【化9】
【0035】
【化10】
【0036】
【化11】
【0037】本発明において、一般式(I)で表される
反応性化合物は、二種類以上を混合して用いてもよい。
反応性化合物は、二種類以上を混合して用いてもよい。
【0038】一方の末端に反応性基(Z)を有するDN
A断片は、図1において、2で表される化合物である。
クロスリンカー(Y)は、必須ではないが、2の調製の
都合上、反応性基(Z)とリン酸エステル基との間に存
在させるのが一般的である。−リン酸エステル基−NN
NN・・・NNは、DNA断片を表す。R4は、反応性
基(R)とX1との反応によって、Z1は、X2と反応性
基(Z)との反応によってそれぞれ決定される基であ
る。
A断片は、図1において、2で表される化合物である。
クロスリンカー(Y)は、必須ではないが、2の調製の
都合上、反応性基(Z)とリン酸エステル基との間に存
在させるのが一般的である。−リン酸エステル基−NN
NN・・・NNは、DNA断片を表す。R4は、反応性
基(R)とX1との反応によって、Z1は、X2と反応性
基(Z)との反応によってそれぞれ決定される基であ
る。
【0039】固相担体としては、疎水性の担体、あるい
は親水性の低い板状の担体であることが好ましい。ま
た、その表面が凹凸を有する平面性の低いものであって
も好ましく用いることができる。固相担体の材質として
は、ガラス、セメント、陶磁器等のセラミックスもしく
はニューセラミックス、ポリエチレンテレフタレート、
酢酸セルロース、ビスフェノールAのポリカーボネー
ト、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等のポリ
マー、シリコン、活性炭、多孔質ガラス、多孔質セラミ
ックス、多孔質シリコン、多孔質活性炭、織編物、不織
布、濾紙、短繊維、メンブレンフィルター等の多孔質物
質などを挙げることができる。多孔質物質の細孔の大き
さは、2乃至1000nmの範囲にあることが好まし
く、2乃至500nmの範囲にあることが特に好まし
い。固相担体の材質は、ガラスもしくはシリコンである
ことが特に好ましい。これは、表面処理の容易さや電気
化学的方法による解析の容易さによるものである。固相
担体の厚さは、100乃至2000μmの範囲にあるこ
とが好ましい。
は親水性の低い板状の担体であることが好ましい。ま
た、その表面が凹凸を有する平面性の低いものであって
も好ましく用いることができる。固相担体の材質として
は、ガラス、セメント、陶磁器等のセラミックスもしく
はニューセラミックス、ポリエチレンテレフタレート、
酢酸セルロース、ビスフェノールAのポリカーボネー
ト、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等のポリ
マー、シリコン、活性炭、多孔質ガラス、多孔質セラミ
ックス、多孔質シリコン、多孔質活性炭、織編物、不織
布、濾紙、短繊維、メンブレンフィルター等の多孔質物
質などを挙げることができる。多孔質物質の細孔の大き
さは、2乃至1000nmの範囲にあることが好まし
く、2乃至500nmの範囲にあることが特に好まし
い。固相担体の材質は、ガラスもしくはシリコンである
ことが特に好ましい。これは、表面処理の容易さや電気
化学的方法による解析の容易さによるものである。固相
担体の厚さは、100乃至2000μmの範囲にあるこ
とが好ましい。
【0040】固相担体は、DNA断片を固定させるた
め、その表面がポリ陽イオン(例えば、ポリ−L−リシ
ン、ポリエチレンイミン、ポリアルキルアミン等である
ことが好ましく、ポリ−L−リシンであることがさらに
好ましい)で被覆処理(この場合、固相担体表面へ導入
される反応性基(R)は、アミノ基である)、または固
相担体表面へ導入される活性基(R)を有するシランカ
ップリング剤によって接触処理されていることが好まし
く、反応性基(R)を有するシランカップリング剤によ
って接触処理されていることが特に好ましい。反応性基
(R)としては、アミノ基もしくはメルカプト基である
ことが好ましい。ポリ陽イオンによる場合には、アミノ
基が静電結合によって固相担体表面に導入されるのに対
して、シランカップリング剤による場合には、共有結合
によって導入されるため、アミノ基もしくはメルカプト
基が固相担体表面に安定に存在する。アミノ基およびメ
ルカプト基の他に、アルデヒド基、エポキシ基、カルボ
キシル基あるいは水酸基も好ましく導入することができ
る。
め、その表面がポリ陽イオン(例えば、ポリ−L−リシ
ン、ポリエチレンイミン、ポリアルキルアミン等である
ことが好ましく、ポリ−L−リシンであることがさらに
好ましい)で被覆処理(この場合、固相担体表面へ導入
される反応性基(R)は、アミノ基である)、または固
相担体表面へ導入される活性基(R)を有するシランカ
ップリング剤によって接触処理されていることが好まし
く、反応性基(R)を有するシランカップリング剤によ
って接触処理されていることが特に好ましい。反応性基
(R)としては、アミノ基もしくはメルカプト基である
ことが好ましい。ポリ陽イオンによる場合には、アミノ
基が静電結合によって固相担体表面に導入されるのに対
して、シランカップリング剤による場合には、共有結合
によって導入されるため、アミノ基もしくはメルカプト
基が固相担体表面に安定に存在する。アミノ基およびメ
ルカプト基の他に、アルデヒド基、エポキシ基、カルボ
キシル基あるいは水酸基も好ましく導入することができ
る。
【0041】アミノ基を有するシランカップリング剤と
しては、γ−アミノプロピルトリエトキシシラン、N−
β(アミノエチル)γ−アミノプロピルトリメトキシシ
ランあるいはN−β(アミノエチル)γ−アミノプロピ
ルメチルジメトキシシランを用いることが好ましく、γ
−アミノプロピルトリエトキシシランを用いることが特
に好ましい。
しては、γ−アミノプロピルトリエトキシシラン、N−
β(アミノエチル)γ−アミノプロピルトリメトキシシ
ランあるいはN−β(アミノエチル)γ−アミノプロピ
ルメチルジメトキシシランを用いることが好ましく、γ
−アミノプロピルトリエトキシシランを用いることが特
に好ましい。
【0042】ポリ陽イオンを用いる処理に、シランカッ
プリング剤による処理を組み合わせて行ってもよい。疎
水性、あるいは親水性の低い固相担体とDNA断片との
静電的相互作用を促進することができる。ポリ陽イオン
処理がされた固相担体表面上に、さらに、電荷を有する
親水性高分子等からなる層や架橋剤からなる層を設けて
もよい。このような層を設けることによって、ポリ陽イ
オン処理がされた固相担体の凹凸を軽減することができ
る。固相担体の種類によっては、その担体中に親水性高
分子等を含有させることも可能であり、このような処理
を施した固相担体も好ましく用いることができる。
プリング剤による処理を組み合わせて行ってもよい。疎
水性、あるいは親水性の低い固相担体とDNA断片との
静電的相互作用を促進することができる。ポリ陽イオン
処理がされた固相担体表面上に、さらに、電荷を有する
親水性高分子等からなる層や架橋剤からなる層を設けて
もよい。このような層を設けることによって、ポリ陽イ
オン処理がされた固相担体の凹凸を軽減することができ
る。固相担体の種類によっては、その担体中に親水性高
分子等を含有させることも可能であり、このような処理
を施した固相担体も好ましく用いることができる。
【0043】DNA断片は、目的によって二通りに分け
ることができる。遺伝子の発現を調べるためには、cD
NA、cDNAの一部、EST等のポリヌクレオチドを
使用することが好ましい。これらのポリヌクレオチド
は、その機能が未知であってもよいが、一般的にはデー
タベースに登録された配列を基にしてcDNAのライブ
ラリー、ゲノムのライブラリーあるいは全ゲノムをテン
プレートとしてPCR法によって増幅して調製する(以
下、「PCR産物」という。)。PCR法によって増幅
しないものも好ましく使用することができる。また、遺
伝子の変異や多型を調べるには、標準となる既知の配列
をもとにして、変異や多型に対応する種々のオリゴヌク
レオチドを合成し、これを使用することが好ましい。さ
らに、塩基配列分析の場合には、4n(nは、塩基の長
さ)種のオリゴヌクレオチドを合成したものを使用する
ことが好ましい。DNA断片の塩基配列は、一般的な塩
基配列決定法によって予めその配列が決定されているこ
とが好ましい。DNA断片は、2乃至50量体であるこ
とが好ましく、10乃至25量体であることが特に好ま
しい。
ることができる。遺伝子の発現を調べるためには、cD
NA、cDNAの一部、EST等のポリヌクレオチドを
使用することが好ましい。これらのポリヌクレオチド
は、その機能が未知であってもよいが、一般的にはデー
タベースに登録された配列を基にしてcDNAのライブ
ラリー、ゲノムのライブラリーあるいは全ゲノムをテン
プレートとしてPCR法によって増幅して調製する(以
下、「PCR産物」という。)。PCR法によって増幅
しないものも好ましく使用することができる。また、遺
伝子の変異や多型を調べるには、標準となる既知の配列
をもとにして、変異や多型に対応する種々のオリゴヌク
レオチドを合成し、これを使用することが好ましい。さ
らに、塩基配列分析の場合には、4n(nは、塩基の長
さ)種のオリゴヌクレオチドを合成したものを使用する
ことが好ましい。DNA断片の塩基配列は、一般的な塩
基配列決定法によって予めその配列が決定されているこ
とが好ましい。DNA断片は、2乃至50量体であるこ
とが好ましく、10乃至25量体であることが特に好ま
しい。
【0044】DNA断片の一方の末端には、反応性基
(Z)を導入することが好ましい。前記記載の図1で
は、反応性基(Z)を有するDNA断片を示した。この
ような反応性基(Z)は、アミノ基、メルカプト基、イ
ミノ基、ヒドラジノ基、カルバモイル基、ヒドラジノカ
ルボニル基、もしくはカルボキシイミド基であることが
好ましく、アミノ基であることが特に好ましい。クロス
リンカー(Y)は、アルキレン基あるいはN−アルキル
アミノ−アルキレン基であることが好ましく、ヘキシレ
ン基あるいはN−メチルアミノ−ヘキシレン基であるこ
とがさらに好ましく、ヘキシレン基であることが特に好
ましい。
(Z)を導入することが好ましい。前記記載の図1で
は、反応性基(Z)を有するDNA断片を示した。この
ような反応性基(Z)は、アミノ基、メルカプト基、イ
ミノ基、ヒドラジノ基、カルバモイル基、ヒドラジノカ
ルボニル基、もしくはカルボキシイミド基であることが
好ましく、アミノ基であることが特に好ましい。クロス
リンカー(Y)は、アルキレン基あるいはN−アルキル
アミノ−アルキレン基であることが好ましく、ヘキシレ
ン基あるいはN−メチルアミノ−ヘキシレン基であるこ
とがさらに好ましく、ヘキシレン基であることが特に好
ましい。
【0045】DNA断片が有する反応性基(Z)および
固相担体表面の反応性基(R)の種類によって、使用し
うる前記記載の反応性化合物は異なるが、反応性基
(Z)および固相担体表面の反応性基(R)が何れもア
ミノ基である場合には、前記記載の(A1)乃至(A
3)の内の何れかの反応性化合物を用いることが好まし
く、反応性基(Z)がメルカプト基であって、反応性基
(R)がアミノ基である場合には、(B1)乃至(B1
4)の内の何れかの反応性化合物を用いることが好まし
い。
固相担体表面の反応性基(R)の種類によって、使用し
うる前記記載の反応性化合物は異なるが、反応性基
(Z)および固相担体表面の反応性基(R)が何れもア
ミノ基である場合には、前記記載の(A1)乃至(A
3)の内の何れかの反応性化合物を用いることが好まし
く、反応性基(Z)がメルカプト基であって、反応性基
(R)がアミノ基である場合には、(B1)乃至(B1
4)の内の何れかの反応性化合物を用いることが好まし
い。
【0046】DNA断片の点着は、DNA断片を水性媒
体に溶解あるいは分散した水性液を、96穴もしくは3
84穴プラスチックプレートに分注し、分注した水性液
をスポッター装置等を用いて固相担体表面上に滴下して
行うことが好ましい。
体に溶解あるいは分散した水性液を、96穴もしくは3
84穴プラスチックプレートに分注し、分注した水性液
をスポッター装置等を用いて固相担体表面上に滴下して
行うことが好ましい。
【0047】図1の固相担体(B1)もしくは(B2)
の表面に反応性基(Z)を有するDNA断片2を点着さ
せると、X2と該DNA断片2との反応が起こるが、固
相担体(B1)もしくは(B2)の表面には該DNA断
片2が結合していない未反応のX2も存在する。このよ
うなX2は、標識された核酸断片試料とのハイブリダイ
ゼーションにおいて非特異的な反応を生じる可能性があ
り、結果的に非特異的な結合をも測定してしまうおそれ
が生じるため、予め該X2をマスク処理しておくことが
好ましい。マスク処理は、固相担体(C1)もしくは
(C2)の表面に、アミノ基もしくはメルカプト基を有
するアニオン性化合物を接触させることによって行うこ
とが好ましい。該DNA断片2は、負の電荷を有するた
め、固相担体(C1)もしくは(C2)の表面にも負の
電荷を発生させることによって、DNA断片2が未反応
のX2と反応するのを防止することができる。このよう
なアニオン性化合物としては、X2と反応し、かつ負の
電荷(COO-、SO3 -、OSO 3 -、PO3 -、もしくは
PO2 -)を有するものであれば何れのものも用いること
ができるが、アミノ酸であることが好ましく、グリシン
もしくはシステインであることが特に好ましい。また、
タウリンも好ましく用いることができる。
の表面に反応性基(Z)を有するDNA断片2を点着さ
せると、X2と該DNA断片2との反応が起こるが、固
相担体(B1)もしくは(B2)の表面には該DNA断
片2が結合していない未反応のX2も存在する。このよ
うなX2は、標識された核酸断片試料とのハイブリダイ
ゼーションにおいて非特異的な反応を生じる可能性があ
り、結果的に非特異的な結合をも測定してしまうおそれ
が生じるため、予め該X2をマスク処理しておくことが
好ましい。マスク処理は、固相担体(C1)もしくは
(C2)の表面に、アミノ基もしくはメルカプト基を有
するアニオン性化合物を接触させることによって行うこ
とが好ましい。該DNA断片2は、負の電荷を有するた
め、固相担体(C1)もしくは(C2)の表面にも負の
電荷を発生させることによって、DNA断片2が未反応
のX2と反応するのを防止することができる。このよう
なアニオン性化合物としては、X2と反応し、かつ負の
電荷(COO-、SO3 -、OSO 3 -、PO3 -、もしくは
PO2 -)を有するものであれば何れのものも用いること
ができるが、アミノ酸であることが好ましく、グリシン
もしくはシステインであることが特に好ましい。また、
タウリンも好ましく用いることができる。
【0048】点着後のDNA断片の乾燥を防ぐために、
DNA断片が溶解あるいは分散してなる水性液中に、高
沸点の物質を添加してもよい。高沸点の物質としては、
DNA断片が溶解あるいは分散してなる水性液に溶解し
得るものであって、試料核酸断片とのハイブリダイゼー
ションを妨げることがなく、かつ粘性の大きくない物質
であることが好ましい。このような物質としては、グリ
セリン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシドお
よび低分子の親水性ポリマーを挙げることができる。親
水性ポリマーとしては、ポリアクリルアミド、ポリエチ
レングリコール、ポリアクリル酸ナトリウム等を挙げる
ことができる。ポリマーの分子量は、103乃至106の
範囲にあることが好ましい。高沸点の物質としては、グ
リセリンあるいはエチレングリコールを用いることがさ
らに好ましく、グリセリンを用いることが特に好まし
い。高沸点の物質の濃度は、DNA断片の水性液中、
0.1乃至2容量%の範囲にあることが好ましく、0.
5乃至1容量%の範囲にあることが特に好ましい。ま
た、同じ目的のために、DNA断片を点着した後の固相
担体を、90%以上の湿度および25乃至50℃の温度
範囲の環境に置くことも好ましい。
DNA断片が溶解あるいは分散してなる水性液中に、高
沸点の物質を添加してもよい。高沸点の物質としては、
DNA断片が溶解あるいは分散してなる水性液に溶解し
得るものであって、試料核酸断片とのハイブリダイゼー
ションを妨げることがなく、かつ粘性の大きくない物質
であることが好ましい。このような物質としては、グリ
セリン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシドお
よび低分子の親水性ポリマーを挙げることができる。親
水性ポリマーとしては、ポリアクリルアミド、ポリエチ
レングリコール、ポリアクリル酸ナトリウム等を挙げる
ことができる。ポリマーの分子量は、103乃至106の
範囲にあることが好ましい。高沸点の物質としては、グ
リセリンあるいはエチレングリコールを用いることがさ
らに好ましく、グリセリンを用いることが特に好まし
い。高沸点の物質の濃度は、DNA断片の水性液中、
0.1乃至2容量%の範囲にあることが好ましく、0.
5乃至1容量%の範囲にあることが特に好ましい。ま
た、同じ目的のために、DNA断片を点着した後の固相
担体を、90%以上の湿度および25乃至50℃の温度
範囲の環境に置くことも好ましい。
【0049】DNA断片を点着後、紫外線、水素化ホウ
素ナトリウムあるいはシッフ試薬による後処理を施して
もよい。これらの後処理は、複数の種類を組み合わせて
行ってもよく、加熱処理と紫外線処理を組み合わせて行
うことが特に好ましい。これらの後処理は、ポリ陽イオ
ンのみによって固相担体表面を処理した場合には特に有
効である。点着後は、インキュベーションを行うことも
好ましい。インキュベート後、未点着のDNA断片を洗
浄して除去することが好ましい。
素ナトリウムあるいはシッフ試薬による後処理を施して
もよい。これらの後処理は、複数の種類を組み合わせて
行ってもよく、加熱処理と紫外線処理を組み合わせて行
うことが特に好ましい。これらの後処理は、ポリ陽イオ
ンのみによって固相担体表面を処理した場合には特に有
効である。点着後は、インキュベーションを行うことも
好ましい。インキュベート後、未点着のDNA断片を洗
浄して除去することが好ましい。
【0050】DNA断片は、固相担体表面に対して、1
02乃至105種類/cm2の範囲にあることが好まし
い。DNA断片の量は、1乃至10-15モルの範囲にあ
り、重量としては数ng以下であることが好ましい。点
着によって、DNA断片の水性液は、固相担体表面にド
ットの形状で固定される。ドットの形状は、ほとんど円
形である。形状に変動がないことは、遺伝子発現の定量
的解析や一塩基変異を解析するために重要である。ドッ
ト間の距離は、0乃至1.5mmの範囲にあることが好
ましく、100乃至300μmの範囲にあることが特に
好ましい。1つのドットの大きさは、直径が50乃至3
00μmの範囲にあることが好ましい。点着する量は、
100pL乃至1μLの範囲にあることが好ましく、1
乃至100nLの範囲にあることが特に好ましい。
02乃至105種類/cm2の範囲にあることが好まし
い。DNA断片の量は、1乃至10-15モルの範囲にあ
り、重量としては数ng以下であることが好ましい。点
着によって、DNA断片の水性液は、固相担体表面にド
ットの形状で固定される。ドットの形状は、ほとんど円
形である。形状に変動がないことは、遺伝子発現の定量
的解析や一塩基変異を解析するために重要である。ドッ
ト間の距離は、0乃至1.5mmの範囲にあることが好
ましく、100乃至300μmの範囲にあることが特に
好ましい。1つのドットの大きさは、直径が50乃至3
00μmの範囲にあることが好ましい。点着する量は、
100pL乃至1μLの範囲にあることが好ましく、1
乃至100nLの範囲にあることが特に好ましい。
【0051】本発明のDNA断片固定固相担体の製造方
法によって製造されたDNA断片固定固相担体の寿命
は、cDNAが固定されてなるcDNA固定固相担体で
数週間、オリゴDNAが固定されてなるオリゴDNA固
定固相担体ではさらに長期間である。これらのDNA断
片固定固相担体は、遺伝子発現のモニタリング、塩基配
列の決定、変異解析、多型解析等に利用される。検出原
理は、後述する標識した試料核酸断片とのハイブリダー
ゼーションである。
法によって製造されたDNA断片固定固相担体の寿命
は、cDNAが固定されてなるcDNA固定固相担体で
数週間、オリゴDNAが固定されてなるオリゴDNA固
定固相担体ではさらに長期間である。これらのDNA断
片固定固相担体は、遺伝子発現のモニタリング、塩基配
列の決定、変異解析、多型解析等に利用される。検出原
理は、後述する標識した試料核酸断片とのハイブリダー
ゼーションである。
【0052】標識方法としては、RI法と非RI法(蛍
光法、ビオチン法、化学発光法等)とが知られている
が、本発明では蛍光法を用いる。蛍光物質としては、核
酸の塩基部分と結合できるものであれば何れも用いるこ
とができるが、シアニン色素(例えば、Cy DyeTM
シリーズのCy3、Cy5等)、ローダミン6G試薬、
N−アセトキシ−N2−アセチルアミノフルオレン(A
AF)あるいはAAIF(AAFのヨウ素誘導体)を使
用することができる。
光法、ビオチン法、化学発光法等)とが知られている
が、本発明では蛍光法を用いる。蛍光物質としては、核
酸の塩基部分と結合できるものであれば何れも用いるこ
とができるが、シアニン色素(例えば、Cy DyeTM
シリーズのCy3、Cy5等)、ローダミン6G試薬、
N−アセトキシ−N2−アセチルアミノフルオレン(A
AF)あるいはAAIF(AAFのヨウ素誘導体)を使
用することができる。
【0053】試料核酸断片としては、その配列や機能が
未知であるDNA断片試料あるいはRNA断片試料を用
いることが好ましい。試料核酸断片は、遺伝子発現を調
べる目的では、真核生物の細胞や組織サンプルから単離
することが好ましい。試料がゲノムならば、赤血球を除
く任意の組織サンプルから単離することが好ましい。赤
血球を除く任意の組織は、末梢血液リンパ球、皮膚、毛
髪、精液等であることが好ましい。試料がmRNAなら
ば、mRNAが発現される組織サンプルから抽出するこ
とが好ましい。mRNAは、逆転写反応により標識dN
TP(「dNTP」は、塩基がアデニン(A)、シトシ
ン(C)、グアニン(G)もしくはチミン(T)である
デオキシリボヌクレオチドを意味する。)を取り込ませ
て標識cDNAとすることが好ましい。dNTPとして
は、化学的な安定性のため、dCTPを用いることが好
ましい。1回のハイブリダイゼーションに必要なmRN
A量は、液量や標識方法によって異なるが、数μg以下
であることが好ましい。尚、DNA断片固定固相担体上
のDNA断片がオリゴDNAである場合には、試料核酸
断片は低分子化しておくことが望ましい。原核生物の細
胞では、mRNAの選択的な抽出が困難なため、全RN
Aを標識することが好ましい。試料核酸断片は、遺伝子
の変異や多型を調べる目的では、標識プライマーもしく
は標識dNTPを含む反応系で標的領域のPCRを行っ
て得ることが好ましい。
未知であるDNA断片試料あるいはRNA断片試料を用
いることが好ましい。試料核酸断片は、遺伝子発現を調
べる目的では、真核生物の細胞や組織サンプルから単離
することが好ましい。試料がゲノムならば、赤血球を除
く任意の組織サンプルから単離することが好ましい。赤
血球を除く任意の組織は、末梢血液リンパ球、皮膚、毛
髪、精液等であることが好ましい。試料がmRNAなら
ば、mRNAが発現される組織サンプルから抽出するこ
とが好ましい。mRNAは、逆転写反応により標識dN
TP(「dNTP」は、塩基がアデニン(A)、シトシ
ン(C)、グアニン(G)もしくはチミン(T)である
デオキシリボヌクレオチドを意味する。)を取り込ませ
て標識cDNAとすることが好ましい。dNTPとして
は、化学的な安定性のため、dCTPを用いることが好
ましい。1回のハイブリダイゼーションに必要なmRN
A量は、液量や標識方法によって異なるが、数μg以下
であることが好ましい。尚、DNA断片固定固相担体上
のDNA断片がオリゴDNAである場合には、試料核酸
断片は低分子化しておくことが望ましい。原核生物の細
胞では、mRNAの選択的な抽出が困難なため、全RN
Aを標識することが好ましい。試料核酸断片は、遺伝子
の変異や多型を調べる目的では、標識プライマーもしく
は標識dNTPを含む反応系で標的領域のPCRを行っ
て得ることが好ましい。
【0054】ハイブリダイゼーションは、96穴もしく
は384穴プラスチックプレートに分注しておいた、標
識した試料核酸断片が溶解あるいは分散してなる水性液
を、上記で作製したDNA断片固定固相担体上に点着す
ることによって実施することが好ましい。点着の量は、
1乃至100nLの範囲にあることが好ましい。ハイブ
リダイゼーションは、室温乃至70℃の温度範囲で、そ
して6乃至20時間の範囲で実施することが好ましい。
ハイブリダイゼーション終了後、界面活性剤と緩衝液と
の混合溶液を用いて洗浄を行い、未反応の試料核酸断片
を除去することが好ましい。界面活性剤としては、ドデ
シル硫酸ナトリウム(SDS)を用いることが好まし
い。緩衝液としては、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、
ホウ酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等を用いる
ことができるが、クエン酸緩衝液を用いることが特に好
ましい。
は384穴プラスチックプレートに分注しておいた、標
識した試料核酸断片が溶解あるいは分散してなる水性液
を、上記で作製したDNA断片固定固相担体上に点着す
ることによって実施することが好ましい。点着の量は、
1乃至100nLの範囲にあることが好ましい。ハイブ
リダイゼーションは、室温乃至70℃の温度範囲で、そ
して6乃至20時間の範囲で実施することが好ましい。
ハイブリダイゼーション終了後、界面活性剤と緩衝液と
の混合溶液を用いて洗浄を行い、未反応の試料核酸断片
を除去することが好ましい。界面活性剤としては、ドデ
シル硫酸ナトリウム(SDS)を用いることが好まし
い。緩衝液としては、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、
ホウ酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等を用いる
ことができるが、クエン酸緩衝液を用いることが特に好
ましい。
【0055】DNA断片固定固相担体を用いるハイブリ
ダイゼーションの特徴は、標識した試料核酸断片の使用
量が非常に少ないことである。そのため、固相担体に固
定するDNA断片の鎖長や標識した試料核酸断片の種類
により、ハイブリダーゼーションの最適条件を設定する
必要がある。遺伝子発現の解析には、低発現の遺伝子も
十分に検出できるように、長時間のハイブリダイゼーシ
ョンを行うことが好ましい。一塩基変異の検出には、短
時間のハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。
また、互いに異なる蛍光物質によって標識した試料核酸
断片を二種類用意し、これらを同時にハイブリダイゼー
ションに用いることにより、同一のDNA断片固定固相
担体上で発現量の比較や定量ができる特徴もある。
ダイゼーションの特徴は、標識した試料核酸断片の使用
量が非常に少ないことである。そのため、固相担体に固
定するDNA断片の鎖長や標識した試料核酸断片の種類
により、ハイブリダーゼーションの最適条件を設定する
必要がある。遺伝子発現の解析には、低発現の遺伝子も
十分に検出できるように、長時間のハイブリダイゼーシ
ョンを行うことが好ましい。一塩基変異の検出には、短
時間のハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。
また、互いに異なる蛍光物質によって標識した試料核酸
断片を二種類用意し、これらを同時にハイブリダイゼー
ションに用いることにより、同一のDNA断片固定固相
担体上で発現量の比較や定量ができる特徴もある。
【0056】
【実施例】[実施例1]DNA断片固定固相担体の作
製、およびDNA断片の固定量の測定 (1)アミノ基が導入された固相担体(B1)の作製 2重量%アミノプロピルエトキシシラン(信越化学工業
(株)製)のエタノール溶液に、スライドガラス(25
mm×75mm)を10分間浸した後取り出し、エタノ
ールで洗浄後、110℃で10分間乾燥して、シラン化
合物被覆スライド(A)を作成した。次いで、このシラ
ン化合物被覆固相担体(A)を、クロロスルホニルイソ
シアナート(0.5g)をアセトニトリル(1mL)に
溶解したアセトニトリル溶液に2時間浸した後、取り出
し、アセトニトリルで洗浄し、1時間減圧下乾燥し、固
相担体(B1)を得た。 (2)DNA断片の点着と蛍光強度の測定 3’末端および5’末端がそれぞれアミノ基、蛍光標識
試薬(FluoroLink Cy5−dCTP、アマ
シャム・ファルマシア・バイオテック社製)で修飾され
たDNA断片(3’−CTAGTCTGTGAAGTG
TCTGATC−5’)を0.1M炭酸緩衝液(pH
8.0)に分散してなる水性液(1×10 -6M、1μ
L)を、上記(1)で得た固相担体(B1)に点着し
た。直ちに、点着後の固相担体を25℃、湿度90%に
て1時間放置した後、この固相担体を0.1重量%SD
S(ドデシル硫酸ナトリウム)と2×SSC(2×SS
C:SSCの原液を2倍に希釈した溶液、SSC:標準
食塩−クエン酸緩衝液)との混合溶液で2回、0.2×
SSC水溶液で1回順次洗浄した。次いで、上記の洗浄
後のスライドを0.1Mグリシン水溶液(pH10)中
に1時間30分浸積した後、蒸留水で洗浄し、室温で乾
燥させ、DNA断片が固定された固相担体(C1)を得
た。この固相担体(C1)表面の蛍光強度を蛍光スキャ
ニング装置で測定したところ、3210であった。本発
明の固定化方法により、DNA断片が効率よくスライド
ガラスに固定されたことが分かる。
製、およびDNA断片の固定量の測定 (1)アミノ基が導入された固相担体(B1)の作製 2重量%アミノプロピルエトキシシラン(信越化学工業
(株)製)のエタノール溶液に、スライドガラス(25
mm×75mm)を10分間浸した後取り出し、エタノ
ールで洗浄後、110℃で10分間乾燥して、シラン化
合物被覆スライド(A)を作成した。次いで、このシラ
ン化合物被覆固相担体(A)を、クロロスルホニルイソ
シアナート(0.5g)をアセトニトリル(1mL)に
溶解したアセトニトリル溶液に2時間浸した後、取り出
し、アセトニトリルで洗浄し、1時間減圧下乾燥し、固
相担体(B1)を得た。 (2)DNA断片の点着と蛍光強度の測定 3’末端および5’末端がそれぞれアミノ基、蛍光標識
試薬(FluoroLink Cy5−dCTP、アマ
シャム・ファルマシア・バイオテック社製)で修飾され
たDNA断片(3’−CTAGTCTGTGAAGTG
TCTGATC−5’)を0.1M炭酸緩衝液(pH
8.0)に分散してなる水性液(1×10 -6M、1μ
L)を、上記(1)で得た固相担体(B1)に点着し
た。直ちに、点着後の固相担体を25℃、湿度90%に
て1時間放置した後、この固相担体を0.1重量%SD
S(ドデシル硫酸ナトリウム)と2×SSC(2×SS
C:SSCの原液を2倍に希釈した溶液、SSC:標準
食塩−クエン酸緩衝液)との混合溶液で2回、0.2×
SSC水溶液で1回順次洗浄した。次いで、上記の洗浄
後のスライドを0.1Mグリシン水溶液(pH10)中
に1時間30分浸積した後、蒸留水で洗浄し、室温で乾
燥させ、DNA断片が固定された固相担体(C1)を得
た。この固相担体(C1)表面の蛍光強度を蛍光スキャ
ニング装置で測定したところ、3210であった。本発
明の固定化方法により、DNA断片が効率よくスライド
ガラスに固定されたことが分かる。
【0057】[実施例2]試料DNA断片の検出 (1)DNA断片固定固相担体の作製 3’末端が蛍光標識試薬で修飾されていないDNA断片
を用いる以外は実施例1と同様にして、DNA断片が固
定された固相担体(C1’)を得た。 (2)試料DNA断片の検出 5’末端にCy5が結合した22merの試料オリゴヌ
クレオチド(CTAGTCTGTGAAGTTCCAG
ATC−5’)をハイブリダイゼーション用溶液(4×
SSCおよび10重量%のSDSの混合溶液)(20μ
L)に分散させたものを、上記(1)で得た固相担体
(C1’)に点着し、表面を顕微鏡用カバーガラスで保
護した後、モイスチャンバー内にて60℃で20時間イ
ンキュベートした。次いで、このものを0.1重量%S
DSと2×SSCとの混合溶液、0.1重量%SDSと
0.2×SSCとの混合溶液、および0.2×SSC水
溶液で順次洗浄した後、600rpmで20秒間遠心
し、室温で乾燥した。スライドガラス表面の蛍光強度を
蛍光スキャニング装置で測定したところ、1078であ
った。本発明の固定化方法によって作製されたDNA断
片固定固相担体を用いることによって、DNA断片固定
固相担体に固定されているDNA断片と相補性を有する
試料DNA断片を検出できることが分かる。
を用いる以外は実施例1と同様にして、DNA断片が固
定された固相担体(C1’)を得た。 (2)試料DNA断片の検出 5’末端にCy5が結合した22merの試料オリゴヌ
クレオチド(CTAGTCTGTGAAGTTCCAG
ATC−5’)をハイブリダイゼーション用溶液(4×
SSCおよび10重量%のSDSの混合溶液)(20μ
L)に分散させたものを、上記(1)で得た固相担体
(C1’)に点着し、表面を顕微鏡用カバーガラスで保
護した後、モイスチャンバー内にて60℃で20時間イ
ンキュベートした。次いで、このものを0.1重量%S
DSと2×SSCとの混合溶液、0.1重量%SDSと
0.2×SSCとの混合溶液、および0.2×SSC水
溶液で順次洗浄した後、600rpmで20秒間遠心
し、室温で乾燥した。スライドガラス表面の蛍光強度を
蛍光スキャニング装置で測定したところ、1078であ
った。本発明の固定化方法によって作製されたDNA断
片固定固相担体を用いることによって、DNA断片固定
固相担体に固定されているDNA断片と相補性を有する
試料DNA断片を検出できることが分かる。
【0058】[実施例3]DNA断片固定固相担体の作
製、およびDNA断片の固定量の測定 クロロスルホニルイソシアナートの代わりに、スクシン
イミジル(4−ビニルスルホニル)ベンゾエート(0.
5g)を用いる以外は、実施例1の(1)と同様にして
固相担体(B2)を作製し、これを用いる以外は実施例
1の(2)と同様の操作を行って、DNA断片が固定さ
れた固相担体(C2)を得た。この固相担体(C2)表
面の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で測定したとこ
ろ、3250であった。本発明の固定化方法により、D
NA断片が効率よくスライドガラスに固定されたことが
分かる。
製、およびDNA断片の固定量の測定 クロロスルホニルイソシアナートの代わりに、スクシン
イミジル(4−ビニルスルホニル)ベンゾエート(0.
5g)を用いる以外は、実施例1の(1)と同様にして
固相担体(B2)を作製し、これを用いる以外は実施例
1の(2)と同様の操作を行って、DNA断片が固定さ
れた固相担体(C2)を得た。この固相担体(C2)表
面の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で測定したとこ
ろ、3250であった。本発明の固定化方法により、D
NA断片が効率よくスライドガラスに固定されたことが
分かる。
【0059】[実施例4]試料DNA断片の検出 (1)DNA断片固定固相担体の作製 3’末端が蛍光標識試薬で修飾されていないDNA断片
を用いる以外は実施例3と同様にして、DNA断片が固
定された固相担体(C2’)を得た。 (2)試料DNA断片の検出 上記(1)で得た固相担体(C2’)を用いる以外は実
施例2と同様にしてスライドガラス表面の蛍光強度を蛍
光スキャニング装置で測定したところ、2325であっ
た。本発明の固定化方法によって作製されたDNA断片
固定固相担体を用いることによって、DNA断片固定固
相担体に固定されているDNA断片と相補性を有する試
料DNA断片を検出できることが分かる。
を用いる以外は実施例3と同様にして、DNA断片が固
定された固相担体(C2’)を得た。 (2)試料DNA断片の検出 上記(1)で得た固相担体(C2’)を用いる以外は実
施例2と同様にしてスライドガラス表面の蛍光強度を蛍
光スキャニング装置で測定したところ、2325であっ
た。本発明の固定化方法によって作製されたDNA断片
固定固相担体を用いることによって、DNA断片固定固
相担体に固定されているDNA断片と相補性を有する試
料DNA断片を検出できることが分かる。
【0060】
【発明の効果】本発明の固定方法によって、固相担体表
面にDNA断片を安定かつ迅速に固定することができ
る。また、本発明の固定方法は、一般式(I)で表され
る反応性化合物が非対称型であるため、一般式(I)の
両方の反応性基が共に固相担体表面の反応性基と反応す
ることがなく、DNA断片を効率良く固定することがで
きる。特に、固相担体表面に予めアミノ基やメルカプト
基などの反応性基をシランカップリング剤を用いて導入
した場合には、アミノ基等の固相担体表面への結合、お
よびDNA断片の結合が共に共有結合であるため、強固
にDNA断片を固定することができる。DNA断片の安
定な固定は、遺伝子解析等に有効に利用することができ
る高い検出限界を有するDNA断片固定固相担体の作製
を可能とするものである。その一つの例として、本発明
によって作製されたDNA断片固定固相担体を用いて、
試料核酸断片とのハイブリダイゼーションを行うことに
より、DNA断片固定固相担体に固定されているDNA
断片に相補性を有する試料核酸断片を感度よく検出する
ことができる。また、DNA断片を点着後、グリシン等
のアニオン性化合物で固相担体表面を処理することによ
って、試料核酸断片の非特的吸着を防ぐことができ、こ
のことは相補性を有する試料核酸断片の高感度の検出に
特に有効となる。
面にDNA断片を安定かつ迅速に固定することができ
る。また、本発明の固定方法は、一般式(I)で表され
る反応性化合物が非対称型であるため、一般式(I)の
両方の反応性基が共に固相担体表面の反応性基と反応す
ることがなく、DNA断片を効率良く固定することがで
きる。特に、固相担体表面に予めアミノ基やメルカプト
基などの反応性基をシランカップリング剤を用いて導入
した場合には、アミノ基等の固相担体表面への結合、お
よびDNA断片の結合が共に共有結合であるため、強固
にDNA断片を固定することができる。DNA断片の安
定な固定は、遺伝子解析等に有効に利用することができ
る高い検出限界を有するDNA断片固定固相担体の作製
を可能とするものである。その一つの例として、本発明
によって作製されたDNA断片固定固相担体を用いて、
試料核酸断片とのハイブリダイゼーションを行うことに
より、DNA断片固定固相担体に固定されているDNA
断片に相補性を有する試料核酸断片を感度よく検出する
ことができる。また、DNA断片を点着後、グリシン等
のアニオン性化合物で固相担体表面を処理することによ
って、試料核酸断片の非特的吸着を防ぐことができ、こ
のことは相補性を有する試料核酸断片の高感度の検出に
特に有効となる。
【図1】本発明の代表的なDNA断片固定固相担体、お
よび本発明の代表的なDNA断片の固定方法を示す模式
図である。
よび本発明の代表的なDNA断片の固定方法を示す模式
図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 須藤 幸夫 埼玉県朝霞市泉水3−11−46 富士写真フ イルム株式会社内 (72)発明者 瀬志本 修 埼玉県朝霞市泉水3−11−46 富士写真フ イルム株式会社内 Fターム(参考) 4B024 AA11 AA20 CA09 HA14 4B029 AA07 AA21 BB20 CC03 CC08 FA12 4B033 NA45 NB04 NB25 NB63 NC03 NC12 ND05 ND08 4B063 QA01 QA18 QQ42 QR55 QR84 QS34
Claims (8)
- 【請求項1】 表面に反応性基が導入された固相担体
に、X1−L−X2[X 1は、固相担体表面の反応性基と
反応する反応性基を表し;X2は、固相担体表面の反応
性基には反応性を示さない反応性基を表し;そして、L
は、二価の連結基を表す]で表される反応性化合物を接
触させることによって、−L−X2基を該固相担体表面
に導入する工程;そして、該固相担体上の−L−X2基
に、一方の末端に反応性基を有するDNA断片を接触さ
せることによって、その反応性基と−L−X2基とを反
応させて、DNA断片を−L−結合基を介して固相担体
表面に結合させる工程を含むことを特徴とするDNA断
片固定固相担体の製造方法。 - 【請求項2】 X1およびX2が、互いに独立に、マレイ
ミド基、ハロゲン原子、イソシアン酸エステル基、イソ
チオシアン酸エステル基、スクシンイミドオキシ基、ア
ルデヒド基、カルボン酸基、および−CR1=CR2R3
[R1、R2およびR3は、互いに独立に、水素原子、炭
素原子数が1乃至6のアルキル基、および炭素原子数が
6乃至20のアリール基からなる群より選ばれる原子も
しくは基を表す]からなる群より選ばれる原子もしくは
基であることを特徴とする請求項1に記載のDNA断片
固定固相担体の製造方法。 - 【請求項3】 X1が、ビニル基もしくは塩素原子であ
り、そして、X2が、イソシアン酸エステル基もしくは
スクシンイミドオキシ基であることを特徴とする請求項
1もしくは2に記載のDNA断片固定固相担体の製造方
法。 - 【請求項4】 固相担体上の反応性基が、アミノ基もし
くはメルカプト基であり、そして、DNA断片が有する
反応性基が、アミノ基もしくはメルカプト基であること
を特徴とする請求項1に記載のDNA断片固定固相担体
の製造方法。 - 【請求項5】 アミノ基もしくはメルカプト基が導入さ
れた固相担体が、固相担体表面に、アミノ基もしくはメ
ルカプト基を有するシランカップリング剤を接触させる
ことによって作製されたものであることを特徴とする請
求項4に記載のDNA断片固定固相担体の製造方法。 - 【請求項6】 DNA断片として、その塩基配列が既知
であるものを用いることを特徴とする請求項1に記載の
DNA断片固定固相担体の製造方法。 - 【請求項7】 請求項1乃至6の内の何れかの項に記載
の方法によって製造されたDNA断片固定固相担体。 - 【請求項8】 請求項7に記載のDNA断片固定固相担
体に、蛍光物質で標識した核酸断片試料を溶解あるいは
分散してなる水性液を点着した後、インキュベートし
て、該DNA断片固定固相担体に固定されているDNA
断片と核酸断片試料とで形成されたハイブリッドDNA
を検出することを特徴とする、該DNA断片固定固相担
体に固定されているDNA断片に対して相補性を有する
核酸断片の検出方法。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP36379599A JP2001178466A (ja) | 1999-12-22 | 1999-12-22 | Dna断片固定固相担体、dna断片固定固相担体の製造方法および核酸断片試料の検出方法 |
US09/731,273 US20010008765A1 (en) | 1999-12-06 | 2000-12-06 | DNA chip and reactive solid carrier |
EP00126448A EP1106603A3 (en) | 1999-12-06 | 2000-12-06 | DNA chip and reactive solid carrier |
US10/120,305 US20030096257A1 (en) | 1999-12-06 | 2002-04-10 | DNA chip and reactive solid carrier |
US11/377,058 US20060147991A1 (en) | 1999-12-06 | 2006-03-16 | DNA chip and reactive solid carrier |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP36379599A JP2001178466A (ja) | 1999-12-22 | 1999-12-22 | Dna断片固定固相担体、dna断片固定固相担体の製造方法および核酸断片試料の検出方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2001178466A true JP2001178466A (ja) | 2001-07-03 |
Family
ID=18480218
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP36379599A Withdrawn JP2001178466A (ja) | 1999-12-06 | 1999-12-22 | Dna断片固定固相担体、dna断片固定固相担体の製造方法および核酸断片試料の検出方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2001178466A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2005015211A1 (ja) * | 2003-08-06 | 2005-02-17 | Toyo Kohan Co., Ltd. | 核酸分子を固定化するための固体支持体 |
-
1999
- 1999-12-22 JP JP36379599A patent/JP2001178466A/ja not_active Withdrawn
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2005015211A1 (ja) * | 2003-08-06 | 2005-02-17 | Toyo Kohan Co., Ltd. | 核酸分子を固定化するための固体支持体 |
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