JP2000511898A

JP2000511898A - Ｍｈｃクラスｉｉ抗原提示系及びｃｄ４▲上＋▼ｔ細胞の活性化方法

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Publication number: JP2000511898A
Application number: JP10500616A
Authority: JP
Inventors: スーザンアールウェッブ; オラウィンクヴィスト; ラースカールソン; マイケルアールジャクソン; ペルエイピーターソン
Original assignee: Scripps Research Institute
Current assignee: Scripps Research Institute
Priority date: 1996-05-23
Filing date: 1997-05-22
Publication date: 2000-09-12
Anticipated expiration: 2017-05-22
Also published as: US20050059144A1; DK0969865T3; DE69737070D1; US6355479B1; JP5006998B2; AU723355B2; WO1997046256A1; JP2012143245A; EP0969865A4; AU3210397A; PT969865E; DE69737070T2; IL126843A; US20050054090A1; EP0969865A1; US7074617B1; EP0969865B1; ES2278390T3; CA2254975A1; IL126843A0

Abstract

(57)【要約】本発明は、合成抗原提示マトリックス、それらの製造方法およびそれらの使用方法に関する。そのようなマトリックスの１つは、ＭＨＣ抗原提示分子を１つ以上のアクセサリー分子とともに産生させるためにトランスフェクトした細胞である。当該マトリックスは、末感作ＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させるとともに、進行中の活性化状態をＴｈ１またはＴｈ２細胞のどちらかの好ましい分化集団に移行させるために用いられる。

Description

【発明の詳細な説明】ＭＨＣクラスII抗原提示系及びＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化方法関連出願の相互参照この出願は上記と同じ発明の名称を有する、1996年５月23日に出願された同時継続米国特許仮出願第60/018,175号（これらの開示が参考として本明細書に含まれる）の一部継続出願である。技術分野本発明は特別な抗原ペプチドに対する特異性を有するＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化する物質及び方法、種々の症状の治療の治療のためのインビボでの活性化Ｔ細胞の使用、並びにこれらの使用に適した組成物に関する。背景Ｔ細胞レパートリーは主として胸腺中のＴ細胞発生中に成形されるが、成熟ＣＤ４⁺Ｔ細胞がまた胸腺外で調節される。活性化の或る条件はアネルギーまたはクローン排除を反映する寛容をもたらすが、その他の条件は観察される応答の型の変化をもたらす。ＣＤ4⁺Ｔ細胞について、機能性表現型のこの変化は主として産生されるサイトカインのパターンの変化である。急性活性化を受けるＣＤ４⁺ Ｔ細胞は多種サイトカインを産生する能力を維持するが、慢性刺激の条件下で得られたＴ細胞はサイトカイン産生の更に制限されたパターンを頻繁に示す。例えば、インビトロでの反復刺激により維持されたＴ細胞クローンは、Ｔｈ１型細胞及びＴｈ２型細胞と称されるＣＤ４⁺Ｔ細胞の２種の主要な機能性カテゴリーを形成した。Ｔｈ１型細胞は主としてインターロイキン−２（ＩＬ−２）、インターフェロン−γ(ＩＦＮ-γ）及び腫瘍壊死因子(ＴＮＦ)を産生し、これらの全てが炎症性サイトカインと称される。対照的に、Ｔｈ２型細胞は典型的にはＩＬ− ４、ＩＬ−５、及びＩＬ−１０を産生し、抗体産生及びＴｈ１型細胞の応答の調節に重要である。サイトカイン産生におけるこのような極度の分離はしばしばインビボＴ細胞応答中に見られないが、リーシュマニアの如き或る型の感染症からの回復はＩＬ− ２/ＩＦＮ-γの優先産生と関連する。リーシュマニアに対するＴｈ２応答を上昇するマウスは感染を抑制することができず、最終的に死亡する。Ｔｈ２型応答のサイトカインの不適当な産生はアレルギー型疾患、例えば、喘息及び接触過敏症に頻繁に関連していた。ＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化及びアレルギー疾患における役割に関する総説について、Hetzel及びLamb,ClinicalIElunol.Immunopath.,73:1 −10(1994)を参照のこと。おそらく、ヒト疾患とサイトカイン産生の非対称のパターンの最も強い関連はＴｈ１応答及びＴｈ１型サイトカインと自己免疫疾患の関連である。実験モデルにおける強力な証拠は、糖尿病を含む自己免疫の多くの型、多発性硬化症、自己免疫甲状腺炎等の実験モデルがＴｈ１型ＣＤ４⁺Ｔ細胞により媒介されることを示す。これらのモデル中のＩＬ−４の如きＴｈ２関連サイトカインの発現は自己免疫疾患の発生を阻害する。Ｔｈ２型サイトカインはＴｈ１型細胞の応答を低下させ、一方、Ｔｈ１型サイトカインはＴｈ２型応答の発生を拮抗作用する。特別な活性化Ｔ細胞サブセットと特別な症状の関連に鑑みて、それ故、疾患の進行を変化するのに極めて有益であるプロセスである所望のＴ細胞サブセットへのＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖及び活性化を誘導することができるようにとの要望が存する。一つの可能な解決は必要によりアレルギーまたは自己免疫症状を有してもよい被験者から最初に単離されるＣＤ４⁺Ｔ細胞をインビトロで活性化して好ましいサイトカインプロフィールを分泌する細胞を生産することである。次いで得られる活性化Ｔ細胞が被験者に再度導入されて疾患の進行を変化し、そしておそらく長期治癒さえも与える。本発明により今解決された、このアプローチにおける挑戦は所望の治療サイトカインプロフィールを生じるＣＤ４⁺Ｔ細胞サブセットを再現して生じる活性化条件を特定することの難しさである。特別なサイトカインの発現は特別な抗原提示細胞(ＡＰＣ)及びそれらの関連アクセサリー(補助)分子と関連している。Ｔ細胞同時刺激に関係するアクセサリー分子として利用できる表面タンパク質の総説について、Mondino及びJenkins,J.Leukocyte Biol.,55:805-815(1994)を参照のこと。ＡＰＣにより産生されたサイトカイン及び協調して発現されたアクセサリー分子の両方それ自体が抗原の型、Ｔ細胞レセプター(ＴＣＲ)−抗原相互作用のアフィニティー、抗原濃度等を含む多くの因子により調節されるので、抗原提示後のＴ細胞活性化の成果の予想は伝統的に非常に困難である。実際に、付加的なアクセサリー分子がインビボでの活性化プロセスに提案されていたので、多くの多様な分子がＴ細胞応答の調節に関係し、コンビナトリアル様式で作用してＴ細胞活性化の成果に影響することが次第に明らかになってきている。本発明の以前には、一種以上の選択されたアクセサリー分子と一緒に選択されたＭＨＣクラスII分子の同時発現は可能ではなかった。今、本発明はＴ細胞の再現可能な活性化により好ましいＴ細胞表現型を予測可能に生成してＴｈ１またはＴｈ２型Ｔ細胞を生じることの解決を提供する。本発明は特定のアクセサリー分子と組み合わせてＭＨＣクラスII分子を中性バックグラウンドで提供する合成ＡＰＣの生成を記載する。ＭＨＣクラスII分子及び特定のアクセサリー分子は非哺乳類昆虫細胞中で発現され、その分子を示す昆虫細胞を含む合成ＡＰＣの種々の形態で提示し得る。本発明のＭＨＣクラスII／アクセサリー分子組成物について発現及び提示ビヒクルとして昆虫細胞を使用することの利点は、細胞が調節サイトカインを内因的に産生せず、しかも哺乳類アクセサリー分子を発現しないことである。これはＴ細胞応答を変化することができる多くの分子を発現する哺乳類ＡＰＣを使用することの特有の予測不能を解決する。加えて、本発明に記載された昆虫細胞発現系は或る種の制限環境、例えば、温度要件下で生成し得る結合ペプチドを含まないＭＨＣクラスII分子（即ち、“エンプティー”分子）の発現を与える。生理温度で、これらの“エンプティー”分子は通常細胞表面に達することができない。何となれば、結合ペプチドを含まないクラスIIは非常に熱不安定であるからである。本発明は内因的にローディングされたカウンターパートを与える能力とともに選択されたペプチドの外因的ローディングを可能にする“エンプティー”ＭＨＣクラスII組成物の能力を利用する。組換えグリコシル−ホスファチジルイノシトール(ＧＰＩ)修飾ＭＨＣクラスＩ分子(ＨＬＡ-Ａ２．１：ＧＰＩ／β₂ｍ)がTykocinskiの国際公開番号WO 96/12009に記載されたようにして上記昆虫細胞系中で生成されて抗原提示細胞を生産した。その公開において、組換えＧＰＩ修飾ＭＨＣクラスＩ分子はその後の細胞膜への再とり込みのためにアフィニティー精製により昆虫細胞から単離される。その他の局面において、その公開はＧＰＩ修飾Ｂ７．１同時刺激分子と細胞膜に同時固定されたＧＰＩ修飾ＭＨＣクラスＩ分子の調製を記載している。その公開はＧＰＩ修飾ＭＨＣクラスII分子がＭＨＣクラスＩのそれらについて記載されたようにして調製し得ることを記載しているが、その公開はこのような調製について詳細を示していない。対照的に、本発明はＢ７．１の如き一種以上のアクセサリー分子と一緒に選択されたＭＨＣクラスIIハプロタイプを同時発現してＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化して特別なＴ細胞サブセット、Ｔｈ１細胞またはＴｈ２細胞（これらは好ましいサイトカインプロフィールに影響する）への分化をもたらすことに基く特異な手段を提供し、記載する。本発明は好ましいＴ細胞サブセットへインビトロでＣＤ４⁺ Ｔ細胞を選択的に活性化し、その後に患者への活性化Ｔ細胞の再導入を可能にするという利点を与える。こうして、本発明は個々の提示分子を選択された組み合わせの発現のための特別なアクセサリー分子と化合する能力を与え、これがその他のアプローチでは利用可能ではない所望のＴ細胞サブセットへのＣＤ４⁺Ｔ細胞の選択的活性化について再現性及び予測可能住を可能にする。発明の簡単な要約同時刺激分子及び付着分子を含む選択されたアクセサリー分子と組み合わせて発現された組換えＭＨＣクラスII分子はＭＨＣクラスII分子ヘテロダイマーがペプチドとの複合体形成のために発現される標的細胞を認識する武装化（armd）エフェクターＴ細胞になるようにＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化するのに有効であることが今発見された。活性化は特別なサイトカインを分泌するエフェクターＴ細胞サブセット、Ｔｈ１及びＴｈ２への増殖及び分化を特徴とする。Ｔｈ１型Ｔ細胞及びＴｈ２型Ｔ細胞は夫々炎症細胞及びＴヘルパー細胞と称される。こうして、本発明はＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化するために一種以上のアクセサリー分子と組み合わせて哺乳類、好ましくはヒトＭＨＣクラスII分子を生成し、提示するための合成抗原提示系（また、ＡＰＣと称される）に関する。一実施態様において、その系は担体と担体に機能的に結合され、かつ選択されたペプチドに結合することができるＭＨＣクラスIIヘテロダイマー分子の少なくとも細胞外部分とを有する合成抗原提示マトリックスに関する。また、マトリックスは担体に機能的に結合されたアクセサリー分子を含む。アクセサリー分子はＣＤ４⁺Ｔ細胞に存在する特定のレセプターと相互作用する。ＭＨＣクラスII分子及びアクセサリー分子は、ペプチドがＭＨＣ分子の細胞外部分に結合される時にＭＨＣクラスII/ペプチド組み合わせに特異性のＣＤ４⁺Ｔ細胞の集団を活性化するのに充分な数で存在する。アクセサリー分子と一緒に、ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーまたはそのＭＨＣに特異性のペプチドをローディングされたその少なくとも細胞外部分を有する抗原提示マトリックスはＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化する際に相乗反応を与えることがわかった。アクセサリー分子の例はＢ７．１及びＢ７．２を含む同時刺激分子、付着分子、例えば、細胞内付着分子−１（ＩＣＡＭ−１）及びリンパ球機能関連抗原−３(ＬＦＡ−３)、並びにサバイバル分子(survival molecule)、例えば、Ｆａｓリガンド(ＦａｓＬ)及びＣＤ７０である。幾つかの実施態様において、このようなアクセサリー分子の細胞外部分がまた本発明に使用し得る。マトリックスに使用される担体は幾つかの異なる形態をとり得る。担体の例として、固体担体、例えば、金属またはプラスチック、多孔質材料、例えば、樹脂または変性セルロースカラム、ミクロビーズ、ミクロタイタプレート、赤血球及びリポソームが挙げられる。担体の別の型は細胞フラグメント、例えば、細胞膜フラグメントである。全細胞がまた担体として意図されている。この実施態様において、マトリックスは実際に少なくとも一種のアクセサリー分子とともにＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖の発現のための遺伝子を含む一種以上の発現ベクターで形質転換された細胞である。次いで発現されたタンパク質が細胞膜に輸送され、そこでクラスII鎖のトランスメンブランドメインがアンカーを与え、細胞外ドメインが外細胞表面に露出されることを可能にし、それにより合成抗原提示細胞(ＡＰＣ)を生じる。発現ベクターは構成的または誘導性であるプロモーターに機能的に結合された選択された遺伝子（ｃＤＮＡ配列の形態であることが好ましい）を含む。ＭＨＣα鎖及びβ鎖は一緒に会合してＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを形成し、これがそのヘテロダイマーに特異性のペプチドに結合する。本発明により、ペプチドをＭＨＣクラスIIヘテロダイマーにローディングする二つの方法が意図されている。一実施態様において、ペプチドがペプチドフラグメントへの内在化無傷タンパク質のタンパク質分解プロセシング後に細胞内にローディングされる。次いでペプチドが新たに生成されたＭＨＣクラスII分子にローディングされ、その間それらは依然として細胞内にある。また、ＭＨＣクラスII分子は細胞表面でエンプティー分子として発現され、次いで合成または処理ペプチド試薬がＭＨＣクラスIIヘテロダイマーに細胞外でローディングされる。ベクター中のプロモーターに機能的に結合された少なくとも一種のアクセサリー分子遺伝子をコードするためのヌクレオチド配列がまた細胞に導入される。発現後に、アクセサリー分子はＭＨＣクラスII/ペプチド複合体に特異性のＣＤ４⁺ Ｔ細胞リンパ球の集団を活性化するのに充分な数でＭＨＣクラスIIヘテロダイマーと一緒に細胞の表面に協調的に固定される。抗原プロセシング補助分子と称されるその他の分子がまた組換えＡＰＣを生成する際の使用について意図されている。これらの分子はＡＰＣとして使用される細胞により、または上記のような発現ベクター系により外因的に与えられる。このような抗原プロセシング補助分子の例として、不変鎖、リソソーム酵素並びにＨ２−Ｍ分子及びＨ２−Ｏ分子が挙げられる。細胞系は、上記遺伝子の少なくとも一つが細胞系が由来する細胞中に自然に存在しないという点で合成である。変温細胞系を使用することが好ましい。何となれば、ＭＨＣ分子が熱不安定であるからである。或る範囲の種がこの目的に有益である。例えば、この使用のための多数の種を説明するPetersenらの米国特許第 5,314,813号（その開示が参考として本明細書に含まれる）を参照のこと。真核生物細胞及び好ましくは昆虫細胞がＡＰＣとして使用される。好ましい昆虫細胞として、ドロソフィラ(Drosophila)（ショウジョウバエ）及びスポドプテラ(Spo doptera)（チョウ）が挙げられる。ＭＨＣクラスII分子は昆虫細胞、例えば、ドロソフィラ細胞及びスポドプテラ細胞中で発現された。これらの細胞は哺乳類免疫系の全ての成分を有しないので、ペプチドローディング機構に関係する種々のタンパク質がこのような細胞には不在である。哺乳類ペプチドローディング機構の欠如は、細胞が28℃のような熱安定温度制限条件で培養される時に導入された哺乳類ＭＨＣクラスII分子が細胞表面でエンプティー分子として発現されることを可能にする。対照的に、37℃ で、エンプティークラスＩ分子は熱不安定であり、崩壊する傾向がある。こうして、ＭＨＣクラスII発現ドロソフィラ細胞を固定ＭＨＣクラスII分子に特異的に結合するペプチドとともにインキュベートすることにより、実際に夫々のクラス II分子が一つの同じペプチドでローディングされる。更に、本発明はあらゆる既知のＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖遺伝子を発現ベクターに導入し、それによりいずれか一種の哺乳類中で発現されるＭＨＣクラスII分子の数の固有の制限を解消する手段を提供する。本発明において、ＣＤ４⁺Ｔ細胞をサイトカインインターロイキン−２（ＩＬ −２）の増加を特徴とするＴｈ１型応答に誘導するのに特に有効な相乗反応はペプチド、同時刺激分子、及び付着分子で結合されたＭＨＣクラスII分子を有するドロソフィラ抗原提示細胞から生じる。特に、ＣＤ４⁺増殖と対にされたＩＬ− ２産生の高度に有効な相乗的発生はＢ７．２及びＩＣＡＭ−１の組み合わせから生じる。対照的に、ＩＣＡＭ−１ではなく、Ｂ７．１またはＢ７．２では、ペプチドをローディングされたドロソフィラＡＰＣ系はＩＬ−４の増加を特徴とするＴｈ２型応答を誘導した。こうして、ＩＣＡＭ−１はＴｈ２型応答を拮抗作用してＴｈ１型表現型をもたらす。増殖応答と対にされたＩＬ−２産生を特徴とするＴｈ１表現型はまたＢ７．２を用いて、またはそれを用いずにＩＣＡＭ−１と同時に発現されたＣＤ７０を有する合成抗原提示細胞から生じた。それ故、本発明のＡＰＣ中の発現のための少なくとも一種のアクセサリー分子遺伝子と組み合わせたＭＨＣクラスII遺伝子の選択はＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖及び表現型活性化を行うのに所望される成果に応じて適応し得る。また、本発明は、ＭＨＣクラスIIヘテロダイマー及びアクセサリー分子の遺伝子を含む少なくとも一種の発現ベクターが導入される上記合成ＡＰＣ系をつくる方法に関する。インビトロで活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を生産する方法がまた意図されている。一つの好ましい方法はインビトロでＣＤ４⁺細胞を抗原特異的様式でＣＤ４⁺Ｔ細胞の集団を活性化するのに充分な期間にわたって上記の合成ＭＨＣクラスII／アクセサリー分子を有するＡＰＣと接触することを含む。更に、その方法は(1)活性化ＣＤ４⁺細胞を抗原提示マトリックスから分離し、(2)活性化ＣＤ4⁺細胞を許されるキャリヤーまたは賦形剤中で懸濁させ、そして(3)その懸濁液を治療を要する個体に投与することを含んでもよい。先に説明したように、抗原は天然または未分解のタンパク質またはポリペプチドを含んでもよく、またはそれらは哺乳類ＭＨＣクラスIIヘテロダイマー分子と一緒のインキュベーションの前に少なくとも８アミノ酸残基を含むペプチドフラグメントに開裂または合成された抗原ポリペプチドを含んでもよい。上記の所望のＴ細胞サブセットへのＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化を誘導することができるという実用性に加えて、あらゆるＭＨＣクラスII分子を発現する能力はその特別なＭＨＣクラスII分子に特異性の未知のＣＤ４⁺活性化ペプチドを同定する手段を与える。このようなものとして、本発明は特別なＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを発現する合成ＡＰＣによるペプチドライブラリーのスクリーニングによるＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化を意図している。更に別の実施態様において、本明細書に記載された合成ＡＰＣ系は細胞の異種集団からの反応性ＣＤ４⁺Ｔ細胞の単離に有益である。このような単離は患者の症状で進行中のＣＤ４⁺Ｔ細胞介在性応答を監視することができることを与える。上記の別の変化において、ＣＤ４⁺Ｔ細胞を好ましいサイトカインプロフィールを産生するための特別なＴ細胞サブセットに選択的に活性化することができることに鑑みて、本発明は望ましくないＣＤ４⁺応答により媒介される患者の症状の治療方法に関する。Ｔｈ１型応答またはＴｈ２型応答を特徴とするこのような症状として、自己免疫疾患、アレルギー及び癌が挙げられる。治療目標は好ましいＴ細胞サブセットに活性化されたＣＤ４⁺Ｔ細胞を導入して進行中のＣＤ４⁺Ｔ細胞応答を拮抗作用することである。こうして、その方法は(1)患者から静止または未感作（naive）ＣＤ４⁺細胞を含む液体サンプルを得、(2)インビトロでＣＤ４⁺細胞を抗原特異的様式でＣＤ４⁺細胞を活性化するのに充分な期間にわたって本発明の選択された合成ペプチドローディングされたＡＰＣと接触させ、そして(3)活性化ＣＤ４⁺細胞を患者に投与することを含む。その他の実施態様は当業者に明らかである。図面の簡単な説明図１Ａ〜１Ｃは発現プラスミドｐＲｍＨａ−２及びｐＲｍＨａ−３の構築を図示する。図ＩＡ中、ｐＲｍＨａ−２構築が示され、図ＩＢ中、ｐＲｍＨａ−３構築が示され、また図１Ｃ中、ｐＲｍＨａ−３ベクターが示され、制限部位、ポリリンカー、プロモーター、及びポリアデニル化部位、並びにヌクレオチド配列が発現のために挿入し得る部位を示す。図２は表面発現されたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーにローディングされたオボアルブミン(ＯＶＡ)ペプチドを用いて、またはそれを用いずにドロソフィラ細胞系の存在下で培養した時のＤＯ１０Ｔ細胞レセプター(ＴＣＲ)トランスジエニックマウス細胞系（Ｔｇ細胞）の増殖応答を示す。増殖は実施例５に記載されるようにして分析される。増殖はＸ軸の次第に増加する濃度(μM)のＯＶＡペプチドに対しＹ軸にプロットされたようにカウント／分(ｃｐｍ)×1000で測定される。T-S(ダイヤモンドでマークした線)は対照脾臓ＡＰＣによる応答を示す。組換えＭＨＣクラスII単独による増殖応答が閉じた円を有する線で示される。同時刺激分子Ｂ７．１またはＢ７．２と組み合わされたＭＨＣクラスIIによる増殖応答が夫々開いた正方形及び閉じた正方形を有する線で示される。図３は組換えＭＨＣクラスII単独(閉じた円を有する線)、ＭＨＣクラスII＋Ｂ７．２(閉じた正方形を有する線)、ＭＨＣクラスＩＩ＋ＩＣＡＭ−１(開いた三角形を有する線)、及びＭＨＣクラスII＋Ｂ７．２及びＩＣＡＭ−１（開いたダイヤモンドを有する線）の増殖応答を示す。その他の詳細について図２脚注を参照のこと。図４Ａ〜４Ｄは組換えＭＨＣクラスII単独またはＢ７．１もしくはＢ７．２同時刺激分子と組み合わせた組換えＭHＣクラスIIを有するドロソフィラＡＰＣの存在下で培養した時のＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化に応答して生じたサイトカインプロフィールを示す。脾臓ＡＰＣ(T-Sと標識した)は対照アッセィである。アッセイは実施例５に記載されるようにして行われる。図４Ａ〜４ＤはＹ軸にプロットされたようにサイトカインＩＬ−２、ＩＬ−４、工ＦＮ−γ及びＩＬ−１０ (単位ng/ml)を夫々示す。サイトカインプロフィールは培養の３日目〜５日目の３日間にわたって評価された。図５Ａ〜５Ｄは組換えＭＨＣクラスII単独またはＢ７．２同時刺激分子、ＩＣＡＭ−１並びにＢ７．２とＩＣＡＭ−１と組み合わせた組換えＭＨＣクラスIIを有するドロソフィラＡＰＣの存在下で培養した時のＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化に応答して生じたサイトカインプロフィールを示す。図５Ａ〜５ＤはＹ軸にプロットされたようにサイトカインＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＦＮ−γ及びＩＬ−１０(単位ng/ml)を夫々示す。その他の詳細について図４脚注を参照のこと。発明の詳細な説明Ａ．定義アミノ酸残基：ペプチド結合の位置におけるポリペプチドの化学消化（加水分解）後に生成されたアミノ酸。本明細書に記載されたアミノ酸残基は“Ｌ”異性体であることが好ましい。しかしながら、“Ｄ”異性体の残基は、所望の機能性がポリペプチドにより保持される限り、あらゆるＬ−アミノ酸残基を置換し得る。ＮＨ₂はポリペプチドのアミノ末端に存在する遊離アミノ基を表す。ＣＯＯＨはポリペプチドのカルボキシ末端に存在する遊離カルボキシ基を表す。通常のポリペプチド命名法（J.Biol.Chem.，243:3552-3559（1969）に記載され、37 CFR §1.822(b)(2)で採用される）を遵守して、アミノ酸残基の略号が下記の対応表に示される。対応表記号アミノ酸１文字３文字Ｙ Tyr チロシンＧ Gly グリシンＦ Phe フェニルアラニンＭ Met メチオニンＡ Ala アラニンＳ Ser セリンＩ Ile イソロイシンＬ Leu ロイシンＴ Thr スレオニンＶ Val バリンＰ Pro プロリンＫ Lys リシンＨ His ヒスチジンＱ Gln グルタミンＥ Glu グルタミン酸Ｚ Glx Glu及び／またはGln Ｗ Trp トリプトファンＲ Arg アルギニンＤ Asp アスパラギン酸Ｎ Asn アスパラギンＢ Asx Asn及び／またはAsp Ｃ Cys システインＸ Xaa 未知またはその他式により本明細書に表される全てのアミノ酸残基配列はアミノ末端からカルボキシ末端への通常の方向で左から右への配向を有することが注目されるべきである。加えて、“アミノ酸残基”という用語は対応表にリストされたアミノ酸並びに修飾アミノ酸及び特異アミノ酸、例えば、37 CFR§1.822(b)(4)にリストされ、また本明細書に参考として含まれるものを含むように広く定義される。更に、アミノ酸残基配列の最初または最後のダッシュは一つ以上のアミノ酸残基の更に別の配列に結合されたペプチドまたはＮＨ₂もしくはアセチルの如きアミノ末端基もしくはＣＯＯＨの如きカルボキシ末端基への共有結合を示す。組換えＤＮＡ（ｒＤＮＡ）分子：二つのＤＮＡセグメントを機能的に結合することにより生成されたＤＮＡ分子。こうして、組換えＤＮＡ分子は自然には通常一緒に見られない少なくとも二つのヌクレオチド配列を含むハイブリッドＤＮＡ分子である。共通の生物起源を有しない、即ち、進化上異なるｒＤＮＡが“異種 ”と称される。ベクター：細胞中で自律複製することができ、ＤＮＡセグメント、例えば、遺伝子またはポリヌクレオチドが付着セグメントの複製をもたらすように機能的に結合し得るｒＤＮＡ分子。一種以上のポリペプチドをコードする遺伝子の発現を誘導することができるベクターが本明細書中“発現ベクター”と称される。上流：ＤＮＡ転写の方向と反対の方向で、それ故、非コーディングストランドでは5'から3'に進み、またはｍＲＮＡでは3'から5'に進む。下流：配列転写または読み取りの方向にＤＮＡ配列に沿って、即ち、ＤＮAの非コーディングストランドに沿って3'から5'の方向またはＲＮＡ転写産物に沿って5'か3'の方向に移動している。読み取り枠：遺伝子の構造タンパク質をコードする部分、または構造遺伝子を形成する翻訳に使用される連続のヌクレオチドトリプレット（コドン）の特別な配列。読み取り枠は翻訳開始コドンの位置に依存する。ポリペプチド：連続アミノ酸残基のα−アミノ基とカルボキシ基の間のペプチド結合により互いに連結された線状の一連のアミノ酸残基。タンパク質：ポリペプチドのように互いに連結された線状の一連の50より大きいアミノ酸残基。レセプター：レセプターは別の分子に特異的に（非ランダムに）結合し得る分子、例えば、タンパク質、糖タンパク質等である。実質的に精製され、または単離された：ポリペプチドまたはタンパク質に関して使用される場合、その用語はそれらと自然に随伴する成分から分離された分子を記載する。典型的には、モノマータンパク質は、サンプルの少なくとも約60％〜75％が単一ポリペプチド主鎖を示す時に実質的に純粋である。少量の変異体または化学修飾が典型的には同じポリペプチド配列を共有する。実質的に精製されたタンパク質は典型的にはタンパク質サンプルの約85％〜90％以上、更に通常約 95％を構成し、好ましくは約99％以上純粋であろう。タンパク質またはポリペプチドの純度または等質性は当業界で公知の幾つかの手段、例えば、サンプルのポリアクリルアミドゲル電気泳動、続いて染色によるその視覚化により示し得る。或る目的には、高分解能が必要とされ、高速液体クロマトグラフィー(ＨＰＬＣ) または同様の精製手段が利用される。合成ペプチド：天然産タンパク質及びそのフラグメントを含まないペプチド結合により一緒に結合されたアミノ酸残基の化学的に生成された鎖。Ｂ．ＭＨＣクラスIIヘテロダイマー、アクセサリー分子及び抗原プロセシング補助分子本発明はＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化するのに使用するための合成抗原提示系に関する。Ｔ細胞レパートリーは主として胸腺中のＴ細胞発生中に形成されるが、成熟ＣＤ４⁺Ｔ細胞がまた胸腺外で調節される。活性化の或る条件がアネルギーまたはクローン排除を反映するトレランスをもたらすが、その他の条件は観察される応答の型の変化をもたらす。ＣＤ4⁺Ｔ細胞について、機能性表現型のこの変化は主として産生されるサイトカインのパターンの変化である。急性活性化を受けるＣＤ４⁺Ｔ細胞は多種サイトカインを産生する能力を維持するが、慢性刺激の条件下で得られたＴ細胞はサイトカイン産生の更に制限されたパターンを頻繁に示す。例えば、インビトロの反復刺激により維持されたＴ細胞クローンはＴｈ１型細胞及びＴｈ２型細胞と称されるＣＤ４⁺Ｔ細胞の二つの主要な機能性カテゴリーを形成した。Ｔｈ１型細胞は主としてインターロイキン−２(ＩＬ−２)、インターフェロン−γ(ＩＦＮ-γ)及び腫瘍壊死因子(ＴＮＦ)を産生し、これらの全てが炎症性サイトカインと称される。このようなものとして、Ｔｈ１細胞は時折炎症性Ｔ細胞と称され、これらはその後にマクロファージを活性化して、ＣＤ４⁺Ｔ細胞に提示された病原タンパク質のプロセシングから生成されたペプチドにより媒介されるようにそれらが宿している小胞内病原体を死滅させる。対照的に、Ｔｈ２型細胞は典型的にはＩＬ−４、ＩＬ−５、及びＩＬ−１０を産生し、抗体産生及びＴｈ１型細胞の応答の調節に重要である。このようなものとして、Ｔｈ２細胞はヘルパーＴ細胞と時折称され、これらはＢ細胞を活性化して、CＤ４⁺Ｔ細胞細胞に提示される細胞外病原体及び毒素に由来するペプチドに応答して抗体をつくる。ＣＤ4⁺Ｔ細胞はＣＤ３複合体のタンパク質と会合したα：βまたはγ：Δヘテロダイマーレセプターの存在と一緒にその細胞表面でＣＤ４⁺コレセプターを有するＴ細胞またはＴリンパ球と定義される。ＣＤ４⁺Ｔ細胞サブセットの活性化は抗原提示細胞により誘発された刺激の型に依存性の上記のサイトカインの選択産生と協調した応答住Ｔ細胞集団の増殖を特徴とする。後者は抗原を処理でき、リンパ球活性化に必要とされる分子と一緒に細胞表面でそれらのペプチドフラグメントを露出する高度に特殊化された細胞と定義される。ＣＤ４⁺Ｔ細胞活性化の特異性は抗原提示細胞(ＡＰＣ)の表面のＭＨＣクラスIIヘテロダイマーに結合されたペプチド抗原のＴ細胞抗原レセプター(ＴＣＲ)認識に基いている。Ｔ細胞の主要ＡＰＣは樹状細胞、マクロファージ及びＢ細胞である。加えて、ＡＰＣ誘導非抗原性同時刺激シグナルがＣＤ４⁺Ｔ細胞活性化に寄与する役割を果たす。本発明は上記の自然免疫応答メカニズムに基いて合成抗原提示系を使用して、同時刺激分子と広く称される一種以上のアクセサリー分子と一緒に組換えＭＨＣクラスII分子によりＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化を操作する。後者として、特定の同時刺激分子、付着分子及びサバイバル分子等が挙げられる。本発明のその他の局面において、合成抗原提示系はペプチドローディングされたＭＨＣクラスII分子を生成するのに有益である抗原プロセシング補助分子を更に含む。本発明に関して、合成抗原提示系はＣＤ４⁺Ｔ細胞をインビトロ及びインビボで活性化するのに有益である。これらの局面がＣＤ４⁺細胞応答の変更方法に関する節Ｅに説明される。こうして、上記のように、本発明の抗原提示系は少なくとも２種の主成分を有する。第一成分はＴＣＲによる認識によりＣＤ４⁺Ｔ細胞活性化の特異性を与えるペプチドに結合することができる組換えＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの少なくとも細胞外の部分である。第二主成分はＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化において非抗原特異性同時刺激シグナルを与える少なくとも一種のアクセサリー分子の少なくとも細胞外の部分である。別の実施態様において、抗原提示系及び非抗原同時刺激シグナルの全分子が使用される。説明を容易にするために、ＭＨＣ分子の細胞外部分が本発明の或る局面で使用し得ることを理解して、ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーが一般に説明される。本発明に必要なＭＨＣ分子の部分はＣＤ４⁺Ｔ細胞への提示のために抗原ペプチドに結合する部分である。本発明は組換えＭＨＣクラスIIヘテロダイマーがＭＨＣクラスIIヘテロダイマーと既に複合体形成されたペプチドでベクター形質転換された合成抗原提示細胞により産生されることを可能にする。また、それらと複合体形成されたペプチドを未だ有していないエンプティーＭＨＣクラスIIヘテロダイマーが生成される。この後者の実施態様が特に有益である。何となれば、それは特別なペプチドとの複合体形成またはＭＨＣクラスIIヘテロダイマーが発現された後のペプチドのライブラリーのスクリーンを可能にするからである。１．ＭＨＣクラスII遺伝子及びコードされたヘテロダイマーＭＨＣクラスII分子は二つの鎖、α及びβ（これらの両方が膜をスパンする）の非共有結合複合体からなる細胞表面糖タンパク質である。ペプチド結合クレフトが共同鎖の間に形成される。ＭＨＣクラスII分子を結合するペプチドは長さが可変であり、ペプチドの末端から種々の距離にあるアンカー残基を有し、それにより結合ポケットのクレフト中にしっかりと結合されていない末端を有するペプチドをもたらす。Janeway及びTravers,Immunobiology,Section4-4,Current Biol ogy LTD,第２編，1996を参照のこと。抗原提示ペプチドの更に別の局面が節Ｄに説明される。インビボでは、エンプティーＭＨＣクラスIIヘテロダイマーは不安定化されるようになり、続いて細胞表面から除去され、それによりＭＨＣ分子が周囲の細胞外液体からのペプチド（これらはＴ細胞に特異的に有害に作用するであろう）を獲得することを阻止する。本発明において、合成抗原提示細胞系は不安定化イベントを受けていない細胞表面でエンプティーＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの生成を可能にする。その結果として、表面発現された組換えＭＨＣクラスII ヘテロダイマーへの抗原ペプチドのローディングがＣＤ４⁺Ｔ細胞活性化及びサイトカイン産生を操作する際のその後の使用のために促進される。本発明、協調抗原との選択されたＭＨＣクラスII分子の特別な組み合わせはＭＨＣクラスII遺伝子中のコンセンサスヌクレオチド配列の存在により促進される。以下更に記載されるこれらの領域は哺乳類中のＭＨＣ複合体中の多種ＭＨＣクラスII遺伝子並びに夫々の遺伝子の多種対立遺伝子の読み出し及び使用を可能にする。換言すれば、ＭＨＣは幾つかの遺伝子及び夫々の遺伝子の多種対立遺伝子を有する多遺伝子性かつ多形性の両方である。ヒトでは、ＭＨＣはＨＬＡと称され、一方、マウスでは、それはＨ−２と称される。ヒトのＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖遺伝子の三つの対がＨＬＡ−ＤＰＮＨＬＡ−ＤＱ及びＨＬＡ−ＤＲと称された。ＨＬＡ−ＤＲクラスターは特別のβ鎖遺伝子を含む。このようなものとして、これらの遺伝子の三つの組がＭＨＣクラスII分子の四つの型を生じ得る。ＭＨＣクラスII遺伝子及びヒト遺伝子から得られるコードされたα鎖及びβ鎖はヒト起源であると言われる。マウスでは、ＭＨＣクラス遺伝子がＨ２−Ｍ、Ｈ２−Ａ及びＨ２−Ｅと称される。夫々のＭＨＣクラスII分子は異なる範囲のペプチドを結合するので、多遺伝子座の存在は、夫々のクラスの唯一のＭＨＣクラスII分子が細胞表面で発現された場合よりも広範囲の異なるペプチドを提示する能力を個体に与える。多形性ＭＨＣクラスII遺伝子は唯一または二三のアミノ酸だけ変化する相当するタンパク質をコードするが、異なる対立遺伝子変異体は20までのアミノ酸を異にする。その結果として、ＭＨＣクラスII多様性はＴ細胞による抗原認識の能力を拡大する。更に、ＭＨＣ制限により、Ｔ細胞は特別なＭＨＣ分子に関してペプチドを認識するが、別の分子に提示された時に認識しないことが示された。こうして、Ｔ細胞レセプター特異性はペプチド及びそれを結合するＭＨＣ分子の両方により付与される。選択されたα鎖及びβ鎖を含む本発明のＭＨＣクラスIIヘテロダイマーはオリゴヌクレオチドプライマーの特定の対によるＭＨＣクラスIIをコードする遺伝子及びその対立遺伝子変異体の増幅により得られる。プライマーのヌクレオチド配列は遺伝子のカテゴリー内の遺伝子中に存在する5'及び3'コンセンサスヌクレオチド配列に基いてＭＨＣクラスII遺伝子及びその対立遺伝子変異体の多様性の増幅を可能にする。ヒトＨＬＡ−ＤＰ遺伝子、ＨＬＡ−ＤＱ遺伝子及びＨＬＡ−ＤＲ遺伝子のα鎖及びβ鎖を増幅するためのプライマー対、並びにマウスＩＡ^dをコードするヘテロダイマーを増幅するためのプライマー対の特定のヌクレオチド配列が実施例２Ａに示される。ＭＨＣクラスIIをコードする遺伝子はＢ細胞、マクロファージ及び樹状細胞（これらの全てが血液中に存在する）を含む種々の細胞源から増幅可能である。本発明のプライマーで増幅されたＭＨＣクラスIIをコードする遺伝子を得るための増幅条件が節Ｃに記載される。本発明のα鎖及びβ鎖を含むＭＨＣヘテロダイマーは固定形態または可溶性形態で有益である。固定形態では、組換えＭＨＣヘテロダイマーはそれが発現される合成抗原提示細胞に固定される。また、組換えＭＨＣヘテロダイマーは可溶性形態で分泌された後に本発明に記載された担体を含むマトリックスに固定される。後者は、終止コドンが増幅操作中またはその後にトランスメンブランドメインに先行する特別のＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖をコードするヌクレオチド配列に操作される時に生成される。２．アクセサリー遺伝子及びコードされた分子同時刺激分子、付着分子及びサバイバル分子を含む本発明のアクセサリー分子はＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化して標的細胞を認識する武装化エフェクターＴ細胞になる際にペプチドと複合体形成されたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーと協力して有効である。未感作Ｔ細胞は、それらがＡＰＣの表面でペプチドローディングされたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーにより提示された時のそれらの特異的抗原と出会う時に活性化されて武装化エフェクターＴ細胞に増殖し、分化する。活性化はＭＨＣクラスIIヘテロダイマーに結合された外来ペプチドフラグメントの認識を必要とするだけでなく、それはＡＰＣにより同時発現された同時刺激シグナルの同時の送出を必要とする。こうして、本発明の合成ＡＰＣまたはマトリックスは特別なＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの存在だけでなく、アクセサリー分子と広く定義される一種以上の同時刺激分子の存在を特徴とする。特定の同時刺激分子、付着分子、及びサバイバル分子を含むアクセサリー分子の少なくとも三つの型が本発明の合成ＡＰＣまたはマトリックスを調製する際の使用について意図されている。ａ．同時刺激分子アクセサリー分子の第一の型はＢ７．１(Ｂ７として既に知られており、またＣＤ８０として知られている)及びＴ細胞のＣＤ２８に結合するＢ７．２（またＣＤ８６として知られている）の如き同時刺激分子を含む。Ｂ７．１及びＢ７．２は免疫グロブリンスーパーファミリーのホモダイマー員である構造関連糖タンパク質である。その他の同時刺激分子は抗ＣＤ２８抗体またはこのような抗体の機能性部分、例えば、ＣＤ２８に結合するＦａｂ部分である。上記分子によるＣＤ２８の結合が未感作Ｔ細胞の成長を同時刺激することが示された。活性化Ｔ細胞では、付加的なレセプターであるＣＴＬＡ−４がＣＤ２８とのアフィニティーより高いアフィニティーでＢ７分子を結合する。本発明の合成ＡＰＣまたはマトリックスに使用するための組換えＢ７同時刺激分子はＭＨＣクラスII分子について記載されたようなＰＣＲにより得られる。好ましいオリゴヌクレオチドプライマー及びそれからの増幅のための細胞源が実施例２Ｃに記載される。ｂ．付着分子本発明のアクセサリー分子の別の主要な型はＴ細胞活性化にまた機能する付着分子である。アクセサリー付着分子として、種々のＩＣＡＭ分子が挙げられ、これらとして、細胞間付着分子(ＩＣＡＭ)ＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ −３、リンパ球機能関連抗原(ＬＦＡ)ＬＦＡ−１及びＬＦＡ−３が挙げられる。これらの分子の全てが免疫グロブリンスーパーファミリーの員である。全てのＩＣＡＭ関連員がＴ細胞インテグリン、ＬＦＡ−１に結合する。樹状細胞、マクロファージ及びＢ細胞を含むＡＰＣで発現されることに加えて、ＩＣＡＭ−１及びＩＣＡＭ−２はまた内皮で発現され、それにより細胞付着及び循環白血球と内皮の間のその後の遊出を媒介する。しかしながら、ＩＣＡＭ−３は白血球にのみ発現され、Ｔ細胞とＡＰＣの間の付着に重要な役割を果たすと考えられる。ＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２及びＩＣＡＭ−３の間の相互作用は、ＡＰＣ及びＴ細胞表面で夫々発現されるＬＦＡ−３(ＣＤ５８)とＬＦＡ−２(ＣＤ２)の間の第二の付着相互作用と相乗作用する。本発明の合成ＡＰＣまたはマトリックスに使用するための組換え付着分子はＭＨＣクラスII分子について記載されたようなＰＣＲにより得られる。好ましいオリゴヌクレオチドプライマー及びそれからの増幅のための細胞源が実施例２Ｃに記載される。ｃ．サバイバル分子サバイバル分子は刺激から細胞死滅誘発に至る範囲の代謝応答に役割を果たすアクセサリー分子の別の型である。こうして、サバイバル分子はまた細胞死滅調節分子と称される。サバイバル分子は典型的にはタンパク質であるが、その他の型の巨大分子、例えば、炭水化物、脂質等を含んでもよい。本発明の組成物及び方法に使用するためのサバイバル分子として、Ｆａｓリガンド、ＴＮＦ-レセプター、ＴＮＦ、ＣＤ７０、II型トランスメンブランタンパク質（これはＴＮＦレセプターファミリーの員であるＣＤ２７に結合するＴＮＦファミリーの員である）が挙げられる。ＦａｓリガンドはＦａｓと称されるレセプターに結合し、レセプター占有がＦａｓレセプターを発現する細胞のアポトーシス細胞死滅の誘発をもたらす。ＣＤ２７は静止Ｔ細胞及びＢ細胞で発現され、一方、ＣＤ７０は活性化Ｔ細胞及びＢ細胞で発現される。そのレセプター、ＣＤ２７へのＣＤ７０の結合はＴ細胞同時刺激を誘発し、その相互作用が未感作Ｔ細胞プールからのＴ細胞の動員に重要であるかもしれない。その他の或る条件下で、ＴＮＦによるＴＮＦレセプターの活性化が同様の応答を生じる。本発明の合成ＡＰＣまたはマトリックス中の使用について上記された組換えサバイバル分子はＭＨＣクラスII分子について記載されたようなＰＣＲにより得られる。好ましいオリゴヌクレオチドプライマー及びそれからの増幅のための細胞源が実施例２Ｃに記載される。実施例に示されるように、一種以上の上記組換えアクセサリー分子と一緒に使用される組換えＭＨＣクラスII分子に結合されたペプチドの特別な組み合わせはＴ細胞を武装化エフェクターＴ細胞（これらはＴｈ１炎症性Ｔ細胞及びＴｈ２ヘルパーＴ細胞に区別できる）に活性化する。３．抗原プロセシング補助遺伝子及びコードされた分子ａ．ＨＬＡ−ＤＭヒト中のＨＬＡ−ＤＭ及びマウス中のＨ２−ＭはＭＨＣクラスII様分子であり、これはまたＭＨＣクラスII遺伝子クラスター中でコードされる。ＨＬＡ−ＤＭは、ＭＨＣクラスIIのように、ヘテロダイマーを形成するα鎖遺伝子及びβ鎖遺伝子の両方を含む。しかしながら、ＭＨＣクラスIIと違って、ペプチドローディングが分子を安定化するのに必要とされない。ＨＬＡ−ＤＭは以下に更に記載されるような非変異鎖の除去後に新たに形成されたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーへのタンパク質のローディングを促進する。組換えＨＬＡ−ＤＭは内部処理されたペプチドのローディングを補助するために本発明の組成物及び方法における使用について意図されている。ｂ．非変異鎖非変異鎖は新たに形成されたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーに結合し、それによりＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの夫々のサブユニットとトリマーを形成する特殊化タンパク質である。トリマー化分子は小胞体中に存在する細胞内ペプチドのローディングを阻止するが、それはまたその区画からのその分子の輸送を促進する。その後、非変異鎖は多工程により開裂されてＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを生じ、次いでこれが処理ペプチドと複合体形成し得る。こうして、組換え非変異鎖は内部処理されたペプチドのローディングを補助するために本発明の組成物及び方法における使用について意図されている。Ｃ．核酸及びポリヌクレオチド１．ＭＨＣクラスII及びアクセサリー分子をコードする遺伝子を得るためのＰＣＲ本発明のＭＨＣクラスII分子、アクセサリー分子及び抗原プロセシング補助分子をコードする核酸配列は、直接合成、クローニング、このような遺伝子を含む細胞からのＤＮＡの精製等を含む当業者に良く知られている幾つかの方法で得られる。本明細書に記載された組成物及び方法に使用される分子をコードするための遺伝子を得るための一つの適切な手段は以下に更に記載されるような選択されたオリゴヌクレオチドプライマー対による選択された核酸鋳型のポリメラーゼ連鎖(ＰＣＲ)増幅による。既知の部分及び推定のヒト白血球抗原(ＨＬＡ)、ヒトＭＨＣの遺伝的名称、アミノ酸配列及びコンセンサス配列を含むヌクレオチド配列が公表されており(例えば、Zemmour及びParham，Immunogenetics 33:310-320（1991）を参照のこと) 、ＨＬＡ変異体を発現する細胞系が同様に知られており、一般にATCCから多く利用できる。それ故、ＰＣＲを使用して、ＭＨＣクラスIIをコードするヌクレオチド配列が本発明の発現ベクターに容易に機能的に結合され、次いでこれがその中の発現に適した細胞を形質転換するのに使用される。本発明の組換え分子を生成するのに特に好ましい方法は本明細書に記載されるようにＰＣＲ反応産物を生成するためにＰＣＲのプライマーとして前もって選択されたオリゴヌクレオチドの使用に頼る。遺伝子がＰＣＲ増幅により得られる場合、一般に、ＰＣＲプライマー対を含む２種のプライマーが増幅される核酸の夫々のストランドについて使用される。簡素化のために、例示のＭＨＣクラスIIヘテロダイマーをコードする遺伝子の合成が説明されるが、記載されるＰＣＲ増幅方法は完全配列が現在知られていないものを含むＭＨＣクラスII対立遺伝子変異体、アクセサリー分子及び抗原プロセシング補助分子の合成に同等に適用可能であることが明らかに理解されるべきである。一般に、第一プライマーはフォワード(forward)プライマーまたは5'と称される。何となれば、それは鋳型ＤＮＡの上部ストランドと同じ配列を有し、こうして下部相補ストランドにハイブリッドを形成するからである。第二プライマーはバックワード(backward)プライマーまたは3'と称される。何となれば、それは下部ストランドと同じ配列を有し、こうして上部ストランドの相補ストランドにハイブリッドを形成するからである。典型的には、換言すれば、一つのプライマーはヌクレオチド配列の負(-)または下部のストランドに相補性であり、別のプライマーは正(＋)または上部のストランドに相補性である。好ましい局面において、第一プライマー及び第二プライマーの両方がＭＨＣクラスII遺伝子内の保存領域にハイブリッドを形成するように（即ち、相補性であるように）選ばれる。しかしながら、プライマーはコンセンサス配列ではなく特異な配列にハイブリッドを形成することにより特定のＭＨＣクラスII遺伝子及びその対立遺伝子変異体を増幅するように設計し得る。この局面について、鋳型配列がこのようなプライマー対の設計について知られていることが好ましい。第一プライマー及び第二プライマーの一方または両方はエンドヌクレアーゼ認識部位を形成するヌクレオチド配列を増幅産物に導入するように設計し得る。その部位は増幅されるＭＨＣクラスII遺伝子に異種であってもよく、典型的にはプライマーの5'末端付近に現れる。それはまた4-塩基スペーサー配列を制限部位に近位に配置して酵素による増幅産物の切断の効率を改良するのに有益であり得る。特定のヌクレオチド配列を単離するための本発明のプライマーは相当するヌクレオチド配列を有するかなりの数の核酸の重合の特定の開始を与えるように充分な長さ及び適当な配列のオリゴヌクレオチドを含む。詳しくは、本明細書に使用されるオリゴヌクレオチドプライマーという用語は二つ以上、好ましくは三つより多く、更に好ましくはほぼ20のデオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチドを含む配列を表し、その配列はプライマー伸長産物の合成を開始することができる。合成を行う実験条件として、ヌクレオチドトリホスフェートの存在並びに重合及び伸長のための薬剤、例えば、熱安定性ポリメラーゼ、及び好適な緩衝剤、温度及びpHが挙げられる。プライマーは増幅の最大効率のために一本鎖であることが好ましいが、二本鎖であってもよい。二本鎖の場合、プライマーは最初に処理されて二つのストランドを分離し、その後に伸長産物を調製するのに使用される。プライマーはオリゴデオキシリボヌクレオチドであることが好ましい。プライマーはヌクレオチドの重合及び伸長の誘導剤の存在下で伸長産物の合成を開始するのに充分に長く、かつ実質的に相補性である必要がある。プライマーの正確な長さは温度、緩衝剤、及びヌクレオチド組成を含む多くの因子に依存するであろう。オリゴヌクレオチドプライマーは典型的には15〜22またはそれ以上のヌクレオチドを含むが、それは更に少ないヌクレオチドを含んでもよい。また、当業界で公知であるように、ヌクレオシドトリホスフェートの混合物がバイアスされて突然変異の形成に影響して特異なペプチドをＣＤ4⁺Ｔ細胞に提示するのに使用するための突然変異した組換えＭＨＣクラスIIをコードする分子のライブラリーを得ることができる。本発明のオリゴヌクレオチドプライマーは指数増殖量のヌクレオチド配列を生成する酵素連鎖反応であるＰＣＲ増幅方法に使用される。変性核酸へのプライマーのアニール、続いて熱安定性ポリメラーゼ、例えば、テルモフィルス・アクアチクス(Taq)及びピロコッカス・フリオサス（Pfu）(Hoffman La-Roche，Basal，スイス)、及びヌクレオチドによる伸長が新たに合成された(＋)鎖及び(-)鎖をもたらす。これらの新たに合成された配列はまた鋳型であるので、変性、プライマーアニール、及び伸長の反復サイクルがプライマーにより形成されたＤＮＡフラグメントの指数的生成をもたらす。連鎖反応の産物は使用された特定のプライマーの末端に相当する末端を有する不連続の核酸二重らせんである。当業者は標的核酸のコピー数を増加するのにまた使用し得るその他の増幅方法を知っているであろう。これらとして、例えば、連結反応活性化転写(ＬＡＴ)、リガーゼ連鎖反応(ＬＣＲ)、及びストランド置換活性化(ＳＤＡ)が挙げられるが、以下にリストされる米国特許に記載されたようなＰＣＲが好ましい方法である。本発明のオリゴヌクレオチドプライマーは、あらゆる好適な方法、例えば、相補オリゴヌクレオチドの合成またはその自動化実施態様について上記された通常のホスホトリエステル方法及びホスホジエステル方法を使用して調製し得る。修飾固体担体上にオリゴヌクレオチドを合成するための一つの方法が米国特許第4, 458,066号明細書に記載されている。ＭＨＣクラスII遺伝子、アクセサリー分子遺伝子、及び抗原プロセシング補助分子遺伝子を増幅するのに好ましいプライマーが実施例２に記載される。ＰＣＲ増幅方法が米国特許第4,683,192号、同第4,683,202号、同第4,800,159 号、同第4,965,188号及び同第5,395,750号(これらの開示が参考として本明細書に含まれる)、並びに“PCR Technology:Principles and Applications for DNA Amplification”，H.Erlich編集，Stockton Press，New York(1989);及び“PCR Protocols:A Guideto Methods and Applications”，Innisら編集,AcademicPres s，San Diego，California（1990）を含む少なくとも幾つかの書籍に詳しく記載されている。ここに使用される種々の好ましい方法及びプライマーが以下に記載され、またZemmourら,Immunogenetics,33:310-20(1991)、Ausebelら,In Current Protocols in Molecular Biology,Wiley and Sons,New York(1993)及びSambroo kら,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory ，(1989)により記載されている。当業者に公知であるネステッド(nested)ＰＣＲ、オーバーラップＰＣＲ、逆転写酵素−ＰＣＲ等を含む特別なＰＣＲ方法が本発明の組換え分子を得る際の使用について意図されている。別の実施態様において、ＰＣＲ方法は種々のＭＨＣクラスIIをコードする分子を生成するのに使用されるだけでなく、高度に多形性のＭＨＣ遺伝子座中に観察されるものと匹敵し得る突然変異を誘発し、または単一の親クローンから多様性を生じ、それにより更に大きな異質性を有するＭＨＣクラスIIをコードするＤＮＡ“ライブラリー”を得るのに使用される。２．発現ベクター本発明はＭＨＣクラスIIをコードする遺伝子、アクセサリー分子遺伝子及び抗原プロセシング補助遺伝子の発現を誘導して相当する組換えタンパク質を生成することができる実質的に純粋な形態のプラスミド発現ベクターを意図している。簡素化のために、上記遺伝子がポリペプチドをコードするヌクレオチド配列と本明細書で集約的に称される。それらが機能的に結合される遺伝子の発現を誘導することができるベクターは本明細書で“発現ベクター”または“発現プラスミド ”と称され、これらの両方がまた“プラスミド”と称される。本明細書に使用される“ベクター”または“プラスミド”という用語は異なる遺伝子環境の間でそれが機能的に結合された別の核酸を輸送することができる核酸分子を表す。好ましいベクターはそれらが機能的に結合されるＤＮＡセグメント中に存在する構造遺伝子産物の自律複製及び発現の可能なベクターである。それ故、ベクターは宿主選択系と適合性であるレプリコン及び選択可能なマーカーを含むことが好ましい。好ましいベクターの一つの型はエピソーム、即ち、染色体外複製の可能な核酸である。本発明のプラスミドは本発明の翻訳可能なポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の転写を活性化することができる要素を有する調節領域を少なくとも含む環状二本鎖プラスミドである。プラスミドは、本発明の所望のコードされたポリペプチドが発現される翻訳可能なヌクレオチド配列を更に含む。こうして、ベクターは相当する発現可能な遺伝子からコードされたような本明細書に記載された組換えポリペプチドの発現を誘導することができると言われる。本発明の使用に好ましいベクターはプラスミドである。それは高コピー数プラスミドであることが更に好ましい。また、特別なベクターが選択された宿主中の発現に最適であることが好ましい。このような発現ベクターは宿主中の挿入された遺伝子配列の有効な転写を促進する調節領域中にプロモーター配列を含む。ベクターは誘導プロモーター配列を含むことが好ましい。何となれば、誘導プロモーターはこのようなベクター（これらは未変性またはキメラのヌクレオチド配列を有するようにしばしば構築される）が導入された細胞に対し選択圧力を制限する傾向があるからである。また、発現ベクターは典型的には複製起点並びに形質転換細胞の表現型選択を可能にする特定の遺伝子を含む。ＤＮＡセグメントは調節要素、例えば、プロモーター( 例えば、Ｔ７プロモーター、メタロチオネインＩプロモーター、またはポリヘドリンプロモーター)に機能的に結合されたベクター中に存在し得る。別の実施態様において、プラスミドはまたその発現が宿主細胞に導入または形質転換された時に選択的利点、例えば、薬剤耐性をその細胞に与える遺伝子を含む。典型的な原核生物及び真核生物の薬剤耐性遺伝子は夫々アンピシリンまたはテトラサイクリン及びネオマイシン(Ｇ４１８またはゲネチシン)に対する耐性を与える。その他の薬剤耐性マーカーとして、クロラムフェニコール、カナマイシン、ストレプトマイシン、カルベニシリン、水銀、リファムプシン、リファムピシン、フサル酸等が挙げられる。本発明の調節領域及びポリペプチドをコードするヌクレオチド配列が機能的に結合されるベクターの選択は、当業界で公知であるように、所望される機能的性質、例えば、複製またはタンパク質発現、及び形質転換される宿主細胞に直接依存し、これらは組換えＤＮＡ分子を構築する技術に固有の制限である。機能的な結合はＤＮＡの一つのストランド（一本鎖形態または二本鎖形態を問わない）への好ましくは通常のホスホジエステル結合によるヌクレオチド配列の共有結合を表す。更に、ヌクレオチド配列の結合は本明細書に記載されたようなプロモーター及び下流のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列との調節領域中の応答要素の如き機能要素の結合をもたらす。インサートを発現プラスミドに機能的に結合するための一つの典型的な方法は方向性連結反応による。これは方向性連結反応に適しているヌクレオチドの配列により行われる。このような配列は(1)複製のために機能的に結合し、上流及び下流の翻訳可能なＤＮＡ配列を輸送し、(2)ベクターへのＤＮＡ配列の方向性連結反応のための部位または手段を与えるＤＮＡ発現ベクターの領域であるポリリンカーと普通称される。典型的には、方向性ポリリンカーは二つ以上の制限エンドヌクレアーゼ認識配列、または制限部位を形成するヌクレオチドの配列である。制限開裂後に、二つの部位は、翻訳可能なＤＮＡ配列がＤＮＡ発現ベクターにつながれる付着末端を生じる。二つの制限部位は、制限開裂後に、非相補性であり、それにより、カセットへの翻訳可能なＤＮＡ配列の方向性挿入を可能にする付着末端を与えることが好ましい。種々の宿主−発現ベクター系がヌクレオチド配列によりコードされたポリペプチドを発現するのに使用し得る。これらとして、微生物、例えば、ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む組換えバクテリオファージＤＮＡ、プラスミドＤＮＡまたはコスミドＤＮＡ発現ベクターで形質転換されたバクテリア；ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む組換え酵母発現ベクターで形質転換された酵母；ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む組換えウイルス発現ベクター(例えば、カリフラワーモザイクウイルス、ＣａＭＶ；タバコモザイクウイルス、ＴＭＶ)で感染され、または組換えプラスミド発現ベクター（例えば、Ｔｉプラスミド）で形質転換された植物細胞系；ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む組換えウイルス発現ベクター（例えば、バキュロウイルス）で感染された昆虫細胞系；またはポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む組換えウイルス発現ベクター（例えば、レトロウイルス、アデノウイルス、ワクシニアウイルス）で感染された動物細胞系、または安定な発現について操作された形質転換された動物細胞系が挙げられるが、これらに限定されない。グリコシル化が重要であり得る場合、翻訳修飾及び後翻訳修飾を与える発現系、例えば、哺乳類発現系、昆虫発現系、酵母発現系または植物発現系が使用し得る。これらの系のいずれもが本発明の方法を実施するのに有益である。上記発現系のいずれかにより、選択された宿主がその後にペプチドのローディングに実際のメカニズムに応じて、即ち、内部または外部に応じて抗原プロセシング補助分子を用いて、または用いずに少なくとも一種のＭＨＣクラスIIヘテロダイマー単独または少なくとも一種のアクセサリー分子と一緒の発現に使用される。使用される宿主／ベクター系に応じて、構成的プロモーター及び誘導プロモーター、転写エンハンサー要素、転写ターミネーター等を含む幾つかの好適な転写要素及び翻訳要素のいずれかが発現ベクター中に使用し得る(例えば、Bitterら, Methods in Enzymology，153:516-544，（1987）を参照のこと)。例えば、バクテリア系中のクローニングの場合、誘導プロモーター、例えば、バクテリオファージλのＰ１、Ｐｌａｃ、Ｐｔｒｐ、Ｐｔａｃ（Ｐｔｒｐ−ｌａｃハイブリッドプロモーター）等が使用し得る。哺乳類細胞系中のクロ-ニングの場合、哺乳類細胞のゲノムに由来するプロモーター（例えば、メタロチオネインプロモーター）または哺乳類ウイルスに由来するプロモーター（例えば、レトロウイルス長末端リピート；アデノウイルス後期プロモーター；ワクシニアウイルス7.5Kプロモーター）が使用し得る。組換えＤＮＡまたは合成技術により生成されたプロモーターがまたポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の転写を与えるのに使用し得る。バクテリア系では、幾つかの発現ベクターが本発明の方法に従ってポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の発現に有利に選択し得る。例えば、多量が生成される場合、容易に精製し得る融合タンパク質産物の高レベルの発現を誘導するベクターが望ましいかもしれない。開裂部位を含んでタンパク質の回収を助けるように操作されるものが好ましい。このようなベクターとして、E.coli発現ベクターｐＵＲ２７８(Rutherら，EMB0 J.，2:1791，(1983))（そのポリペプチドをコードするヌクレオチド配列はハイブリッドポリペプチド−ＬａｃＺタンパク質が生成されるようにＬａｃＺコーディング領域とインフレームでベクターにつながれてもよい）；ｐＩＮベクター(Inouye＆Inouye,Nuc.Acids Res.,13:3101-3 109,(1985);Van Heeke ＆ Schuster，J.Biol.Chem.，264:5503-5509,(1989))等が挙げられるが、これらに限定されない。一実施態様において、使用されるベクターはバクテリア中のベクターの増殖を促進する原核生物配列、即ち、バクテリア宿主細胞に導入された時に染色体外で組換えＤＮＡ分子の自律複製及び維持を誘導する能力を有するＤＮＡ配列を含む。このようなレプリコンは当業界で公知である。また、原核生物レプリコンを含むこれらのベクターは典型的には本発明の組換えＤＮＡ分子の挿入に都合の良い制限部位を含む。このようなベクタープラスミドの代表はバイオラド・ラボラトリィズ（リッチモンド、CA）からのｐＵＣ８、ぷＣ９、ｐＢＲ３２２、及びｐＢＲ３２９及びファーマシア（ピスキャットアウェイ、NJ）からのｐＰＬ,並びにストラタゲン（ラジョラ、CA）から入手し得るｐブルースクリプト及びｐＢＳである。また、本発明のベクターはMolecular Cl oning:A Laboratory Manual,第二編,Maniatisら編集，Cold Spring Harbor，NY （1989）に記載されたλベクターを含むλファージであってもよい。別の好ましい実施態様において、本発明に使用するためのプラスミドベクターはまた真核生物細胞と適合住である。真核細胞発現ベクターは当業界で公知であり、幾つかの商業源から入手し得る。典型的には、このようなベクターは所望の組換えＤＮＡ分子の挿入に都合の良い制限部位を与え、更に先に説明したような真核生物細胞中で発現することができるコードされた遺伝子の発現のためのプロモーターを含む。このようなベクターの代表はｐＳＶＯ及びｐＫＳＶ−１０(ファーマシア)、及びｐＰＶＶ−１/ＰＭＬ２ｄ(インターナショナル・バイオテクノロジー社)、並びにｐＴＤＴ１（ATCC、No．31255)である。加えて、真核生物プラスミドでは、真核生物細胞中でのみ発現される一つ以上の転写単位が存在する。真核生物転写単位は非コーディング配列及び選択可能なマーカーをコードする配列からなる。また、本発明の発現ベクターは正確かつ有効なポリアデニル化に必要とされる特異な配列要素を含む。加えて、成熟ｍＲＮＡを発生するためのスプライシングシグナルがベクター中に含まれる。真核生物プラスミド発現ベクターはウイルスレプリコンを含むことができ、その存在がクローン化遺伝子の発現のレベルの増加を与える。好ましい複製配列がシミアンウイルス40またはＳＶ４０パポバウイルスにより与えられる。本発明に使用するための組換え分子を生成するのに好ましい発現系は昆虫系である。一つのこのような系において、オートグラファ・カリフォルニカ核多角体病ウイルス(ＡｃＮＰＶ)が外来遺伝子を発現するためのベクターとして使用される。そのウイルスはスポドプテラ・フルギペルダ(Ｓｆ９)細胞中で増殖する。本発明のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列はそのウイルスの非必須領域（スポドプテラ・フルギペルダ中、例えば、ポリヘドリン遺伝子）にクローン化され、ＡｃＮＰＶプロモーター（例えば、ポリヘドリンプロモーター）の制御下に置かれてもよい。ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の成功裏の挿入はポリヘドリン遺伝子の不活化及び非閉塞性（non-occluded）組換えウイルス（即ち、ポリヘドリン遺伝子によりコードされたタンパク質外殻を欠いているウイルス）の生産をもたらすであろう。次いでこれらの組換えウイルスは、挿入遺伝子が発現される細胞を感染するのに使用される。Smithら,J.Biol.Chem.,46:584 ，(1983); Smithの米国特許第4,215,051号を参照のこと。好ましい実施態様において、宿主細胞集団はｐ２５−ｌａｃＺ（Bello及びCou ble，Nature，346:480（1990）を参照のこと）またはｐＲｍＨａ−１、−２、もしくは−３（Bunchら，Nucl.Acids Res.，16:1043−1061（1988）を参照のこと）のようなベクターに機能均等のベクターを含む適合性ベクターを必要とするドロソフィラ細胞培養物である。好ましい実施態様において、ベクターはｐＲｍＨａ−３であり、これが図１Ｃに示される。このベクターはメタロチオネインプロモーターを含み、これはＭＨＣ配列が挿入される部位の上流にあることが好ましく、ポリアデニル化部位が前記ＭＨＣ配列の下流にあることが好ましい。昆虫細胞、特にドロソフィラ細胞が本発明によれば好ましい宿主である。節Ｄに更に記載されるようなシュナイダー−２(Ｓ２)細胞の如きドロソフィラ細胞はプロモーターの活性化に必要とされる必要なトランス作用性因子を有し、こうして更に好ましい。発現ベクターｐＲｍＨａ−３はバクテリアプラスミドｐＲｍＨａ−１（図１Ａ）をベースとし、その後者はプラスミドｐＵＣ１８をベースとし、ATCC（ロックビル、MD）に寄託され、受理番号37253を有する。ｐＲｍＨａ−３ベクターは図１Ｃに示されるようにプロモーター、EcoRI部位及びStu Ｉ部位を除去されたメタロチオネイン遺伝子の5'未翻訳リーダー配列を含む。それはまたポリアデニル化部位を含むドロソフィラＡＤＨ遺伝子の3'部分を含む。それ故、クローン化ＤＮＡはメタロチオネインプロモーターにより転写調節され、ポリアデニル化される。ｐＲｍＨａ−１プラスミドの構築がBunchら，Nucl.Acids Res.16:1043−106 1(1988)に記載されてい。ｐＲｍＨａ−３プラスミド及びｐＲｍＨａ−２プラスミド（その後者はEcoRIフラグメントとして除去されてもよいメタロチオネインプロモーター配列を有する）の構築が実施例に記載される。ｐＲｍＨａ−３、本発明による使用に好ましいプラスミドに関して、ＰＳｔＩ、ＳｐｈＩ及びＨｉｎｄIIIがプロモーターフラグメント中にあり、それ故、特異ではない。ＸｂａＩはＡＤＨフラグメント（その3'末端から４塩基）にあり、また特異ではない。しかしながら、下記の制限部位がｐＲｍＨａ−３中で特異であり、本発明の組換え遺伝子のクローニングを促進する。ＥｃｏＲＩ、ＳａｃＩ、ＫｐｎＩ、ＳｍaＩ、ＢａｍＨＩ、ＳａｌＩ、Ｈｉｎｃ２、及びＡｃｃＩ。発現を誘導するために組換えウイルスまたはウイルス要素を使用する哺乳類細胞系が操作し得る。例えば、アデノウイルス発現ベクターを使用する場合、ポリペプチドのコーディング配列がアデノウイルス転写／翻訳調節複合体、例えば、後期プロモーター及び三部分リーダー配列に結合されてもよい。このキメラ遺伝子はその後にインビトロまたはインビボ組換えによりアデノウイルスゲノムに挿入されてもよい。ウイルスゲノムの非必須領域（例えば、領域E1またはE3）中の挿入は、生存しており、感染宿主中でポリペプチドを発現することができる組換えウイルスを生じるであろう(例えば、Logan & Shenk,Proc.Natl.Acad.Sci.,USA ,81:3655-3659，（1984）を参照のこと)。また、ワクシニアウイルス7.5Kプロモーターが使用されてもよい(例えば、Mackettら，Proc.Natl.Acad.Sci.，USA ,79:7415-7419，(1982);Mackettら，J.Virol.，49:857-864(1984);Panicaliら， Proc.Natl.Acad.Sci.，USA，79:4927-4931，(1982)を参照のこと)。染色体要素として複製する能力を有するウシパピローマウイルスをベースとするベクターが特に重要である(Sarverら,Mol.Cell.Biol.,1:486,(1981))。マウス細胞へのこのＤＮＡのエントリーの直後に、プラスミドが細胞当たり約100〜200のコピーまで複製する。挿入されたｃＤＮＡの転写は宿主の染色体へのプラスミドの組込みを必要とせず、それにより高レベルの発現を生じる。これらのベクターは、プラスミド中に選択可能なマーカー、例えば、neo遺伝子を含むことにより安定な発現に使用し得る。また、レトロウイルスゲノムが宿主細胞中の本発明のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の発現を導入し、誘導することができるベクターとしての使用のために修飾し得る(Cone&Mulligan，Proc.Natl.Acad.Sci.，USA ，81:6349-6353，(1984))。また、メタロチオニンIIＡプロモーター及び熱ショックプロモーターを含むが、これらに限定されない誘導プロモーターを使用して、高レベルの発現が達成し得る。組換えタンパク質の長期の高収率の生産には、安定な発現が好ましい。ウイルス複製起点を含む発現ベクターを使用するのではなく、宿主細胞が適当な発現調節要素（例えば、プロモーター配列及びエンハンサー配列、転写ターミネーター、ポリアデニル化部位等）により調節されたｃＤＮＡ、及び選択可能なマーカーで形質転換し得る。上記のように、組換えプラスミド中の選択可能なマーカーは選択に対する耐性を与え、細胞がプラスミドをそれらの染色体に組込み、成長してフォーカスを形成し、これらが順に細胞系にクローン化され、拡大されることを可能にする。例えば、外来ＤＮＡの導入後に、操作された細胞が濃縮培地中で１〜２日間増殖され、ついで選択培地に切り換えられる。単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ(Wiglerら，Cell，11:223，(1977))、ヒポキサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(Szybalska & Szybalski，Proc.Natl.Acad.Sci.，USA， 48:2026，(1962))、及びアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(LoWyら,Ce ll，22:817，(1980))遺伝子（これらは夫々ｔｋ−細胞、ｈｇｐｒＴ細胞またはａｐｒＴ細胞中で使用し得る）を含むが、これらに限定されない幾つかの選択系が使用し得る。また、抗代謝産物耐性を与える遺伝子が選択の基礎として使用し得る。例えば、ｄｈｆｒ（これはメトトレキセートに対する耐性を与える (Wiglerら,Proc.Natl.Acad.Sci.，USA，77:3567，(1980); O'Hareら，Proc.Natl .Acad.Sci.,USA，78:1527，(1981));ｇｐｔ（これはミコフェノール酸に対する耐性を与える）(Mulligan & Berg，Proc.Natl.Acad.Sci.，USA，78:2072，(1981 ));ｎｅｏ(これはアミノグリコシドＧ−４１８に対する耐性を与える)(Colberre -Garapinら，J.Mol.Biol.,150:1，(1981));及びｈｙｇｒｏ(これはヒグロマイシンに対する耐性を与える)(Santerreら，Gene，30:147，(1984))の遺伝子。最近、付加的な選択可能な遺伝子、即ち、ｔｒｐＢ（これは細胞にトリプトファンに代えてインドールを使用させる）;ｈｉｓＤ(これは細胞にヒスチジンに代えてヒスチノールを使用させる)(Hartman & Mulligan，Proc.Natl.Acad.Sci.，USA，85 :804，(1988));及びＯＤＣ(オルニチンデカルボキシラーゼ)(これはオルニチンデカルボキシラーゼインヒビター、２−（ジフルオロメチル）−ＤＬ−オルニチン、ＤＦＭＯに対する耐性を与える)(McConlogue L.，In:Current Communicatio ns in Molecular Biology，Cold Spring Harbor Laboratory編集，(1987)が記載されている。原核生物発現ベクター及び真核生物発現ベクターの両方がベクター構築の当業者に良く知られており、Ausebelら，In Current Protocols in Molecular Biolo gy，Wiley and Sons，New York（1993）及びSambrookら，Molecular Cloning:A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Laboratory，(1989)により記載されている。本発明の組成物及び方法に使用するための組換えＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖、アクセサリー分子及び抗原プロセシング補助分子を生成するために、夫々のヌクレオチド領域が本明細書に記載された本発明の発現ベクターに機能的に挿入される。節Ｂに記載されたように、本発明の組換えポリペプチドをコードする核酸は幾つかの方法で得られ、その一つがＰＣＲ増幅による。べクター配列に機能的に結合されるヌクレオチドセグメントの一つはＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖の少なくとも一部をコードする。完全α鎖及びβ鎖をコードする夫々のヌクレオチド配列がそれからの発現のための発現ベクターに別々に挿入されることが好ましい。しかしながら、また幾つかの非コーディングＭＨＣ配列を同様に含むベクターを構築することが実施可能である。アクセサリー分子及び抗原プロセシング補助分子をコードする配列が別の発現ベクターに同様に挿入される。また、本発明は同じベクター中に存在する一つより多いポリペプチドをコードする遺伝子の存在を意図しており、その発現はプロモーターの如き別の調節要素により誘導される。換言すれば、α鎖及びβ鎖の両方をコードする核酸がアクセサリー分子をコードする一種以上の核酸配列を用いて、または用いずに同じ発現ベクターに機能的に結合されてもよい。こうして、本発明の組換えタンパク質を生成するための発現ベクター構築の全ての可能な組み合わせが意図されている。上記の完全なコードする核酸配列に加えて、本発明の発現された組換えポリペプチドの可溶性形態が意図されている。可溶性形態は、それがトランスメンブランドメインまたはその他の機能性配置の前に挿入された“終止”コドンを含んで可溶性非膜固定可能なタンパク質を生じる点で非可溶性形態とは異なる。Ｄ．合成抗原提示細胞及びペプチド提示のためのマトリックス１．合成抗原提示細胞及びマトリックス本発明によれば、組換えＭＨＣクラスIIヘテロダイマー及び少なくとも一種のアクセサリー分子が担体を含むマトリックスに機能的に結合され、その結果、ＭＨＣ分子の細胞外部分に複合体形成されたペプチドで提示された時に、ＭＨＣクラスII及びアクセサリー分子がＣＤ４⁺Ｔ細胞リンパ球の集団を活性化するのに充分な数で存在する。ペプチドは、それが担体に結合される前または後にＭＨＣクラスIIヘテロダイマーに結合し得る。担体は多くの異なる形態をとり得る。それは固体担体、例えば、プラスチック材料または金属材料であってもよく、それは分離カラムに普通に使用されるような多孔質材料であってもよく、それはリポソームまたは赤血球であってもよく、またはそれは細胞または細胞フラグメントであってもよい。以下に更に詳しく説明されるように、細胞が担体として利用できる場合、ＭＨＣクラスII分子及びアクセサリー分子がその細胞上の提示のために、または別の細胞を含み得る別の担体上の提示のために細胞により生成し得る。前者の状況では、ＭＨＣ分子はその後にＭＨＣクラスIIの可溶性形態中に存在しない細胞質ドメインではないとしても少なくともトランスメンブランドメインにより細胞に結合される。後者の状況では、ＭＨＣクラスII分子及びアクセサリー分子の細胞外部分が担体に固定された抗体に反応するエピトープを用意することにより担体に結合し得る。加えて、ＭＨＣ分子またはアクセサリー分子は担体の部分を形成する際にニッケルと反応する(Ｈｉｓ)₆で生成され、またはそれに結合し得る。ＭＨＣ分子を担体に固定または結合するためのその他の手段が当業界で公知である。先に説明したように、担体は細胞膜または全細胞であってもよい。このような場合、真核生物細胞系がＭＨＣクラスIIに関するペプチドをＴ細胞リンパ球に提示するのに使用するための合成抗原提示細胞系になるように修飾される。エンプティーＭＨＣ分子は熱不安定性であるので、細胞培養物は変温性であることが好ましく、種々の細胞系が以下に詳しく説明される。本発明の好ましい細胞系は培養中に連続増殖することができ、かつ細胞表面で哺乳類ＭＨＣクラスII分子及びアクセサリー分子を発現することができる。バクテリア細胞系、酵母細胞系、昆虫細胞系、及び哺乳類細胞系を含む種々の形質転換された細胞もしくは細胞系または未形質転換細胞もしくは細胞系のいずれもがこの目的に適している(例えば、種々の細胞系、例えば、E.coli及びサルコミセス・セレビジエを培養し、使用するための要約及び操作について、Current Prot ocols in Molecular Biology，Joln Wiley & Sons，NY（1991）を参照のこと) 。細胞系は真核細胞系であることが好ましい。細胞系は変温性（即ち、哺乳類細胞系よりも温度攻撃に対し感受性ではない）であることが更に好ましい。それは昆虫細胞系であることが更に好ましい。蛾(ATCC CCL 80)、アワヨトウガ(ATCC C CL 1711)、蚊の幼虫(ATCC系列CCL 125、CCL 126、CRL 1660、CRL 1591、CRL 658 5、CRL 6586)、カイコ(ATCC CRL 8851)及びチョウ（スポドプテラ・フルギペルダ(Ｓｆ９細胞、ATCC CRL 1711)を含む種々の昆虫細胞系が本発明による使用に利用できる。好ましい実施態様において、細胞系はドロソフィラ細胞系、例えば、シュナイダー細胞系である(Schneider，J.Embryol.Exp.Morph.，27:353-365(197 2))。細胞系はM3培地中の増殖に適したシュナイダー２(Ｓ２)細胞系(Ｓ２／Ｍ３ )であることが好ましい(Lindquistら，Drosophila Information Service，58:16 3(1982)を参照のこと)。シュナイダー２(Ｓ２)細胞はブタペスト条約要件に従って1992年２月18日にＡＴＣＣ（ロックビル、MD）に寄託され、受理番号CRL 1097 4を指定された。本発明の合成抗原提示細胞を生成するため、一種以上のアクセサリー分子と一緒に選択されたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの発現を誘導するための一種以上の発現ベクターがレシピエント宿主細胞に導入される。加えて、別の実施態様において、ＨＬＡ−ＤＭ及び非変異鎖を含む抗原プロセシング補助分子を発現するためのベクターがまたレシピエント細胞に導入される。上記のための遺伝子が節Ｂ及びＣに記載された。こうして、合成抗原提示細胞またはマトリックスを調製するために、本発明の組換えポリペプチドをコードする発現ベクターが選択された宿主細胞にトランスフェクト、即ち、導入される。発現ベクターの選択並びにその構築は以下に繰り返して言われるように先に説明したようなＣＤ４⁺活性化に所望の成果に依存する。トランスフェクション（また、形質転換と称される）はリン酸カルシウム方法、ＤＥＡＥ−デキストラン方法、安定移入方法、エレクトロポレーションを含む多数の方法により、またはリポソーム媒介方法により行われてもよい。多数の書籍が入手でき、これらは既知のトランスフェクション方法及びヌクレオチドを細胞に導入するためのその他の操作を記載している。例えば、Current Protocol s in Molecular Biology，John Wiley & Sons，NY（1991）を参照のこと。一種以上のベクターの導入後に、レシピエント細胞は形質転換されると言われ、その選択は一時的または安定のいずれであってもよい。細胞の培養物が最初に樹立される。細胞系がトランスフェクションについて選択される。何となれば、それは導入される遺伝子の少なくとも一つを欠いているからである。昆虫細胞が有利であることがわかった。何となれば、それらが変温性であるからだけでなく、それらがこれらの遺伝子及びメカニズムを欠いているからであり、そうしないとペプチドに結合されたＭＨＣ分子を生成するであろう。これはペプチド結合ＭＨＣ分子の生成、及びエンプティーＭＨＣ分子の生成に対する更に大きな調節を可能にする。次いで選択された細胞が第一プロモーターに機能的に結合された発現可能なＭＨＣクラスIIα鎖遺伝子及び第二プロモーターに機能的に結合された発現可能なＭＨＣクラスIIβ鎖遺伝子を含む発現ベクターの導入により形質転換される。ベクター中の第三プロモーターに機能的に結合された第一の発現可能なアクセサリー分子遺伝子がまた上記細胞に導入される。更に別の実施態様において、ベクター中の第四プロモーターに機能的に結合された発現可能な抗原プロセシング補助遺伝子が上記細胞に導入される。更に好ましい実施態様において、ベクターは節Ｃに記載されたドロソフィラ発現プラスミドｐＲｍＨａ−３を含み、これには上記組換えタンパク質をコードする発現可能なヌクレオチド配列が本明細書に開示された技術を使用して挿入されていた。ＭＨＣクラスII鎖をコードするヌクレオチド配列、少なくとも一種のアクセサリー分子をコードするヌクレオチド配列及び抗原プロセシング補助分子をコードするヌクレオチド配列は培養された細胞に個々に同時トランスフェクトされる別々の発現プラスミドに機能的に結合されることが好ましい。また、ヌクレオチド配列は同じ発現プラスミド中の別々のプロモーターに機能的に結合され、その同じプラスミドにより同時トランスフェクトされてもよい。ＭＨＣクラスII α鎖及びβ鎖は異種からのものであることが好ましく、定温動物、例えば、哺乳類、最適にはヒトからのものであることが更に好ましい。遺伝子の少なくとも一種、特に、ＭＨＣクラスII鎖遺伝子は誘導プロモーターに結合されることが好ましい。これはＭＨＣ分子の生成に調節を与え、その結果、関係するペプチドが内部または外部で利用でき、培養物中で提示されて生成されたＭＨＣ分子と反応する時にのみそれらが生成される。これは望ましくないＭＨＣ分子／ペプチド複合体を最小にする。こうして、好ましい細胞系は夫々が第一プロモーター及び第二プロモーターに夫々機能的に結合されたＭＨＣクラスIIα鎖及びβ鎖を含む別々のベクターを有する変温性細胞系である。プロモーターはＭＨＣクラスII鎖の発現を調節するように誘導性であることが好ましい。加えて、細胞は第三プロモーターに機能的に結合された第一の発現可能なアクセサリー分子遺伝子を少なくとも含む第三ベクターを含む。更に別の実施態様において、細胞はまた第四プロモーターに機能的に結合された発現可能な抗原プロセシング補助遺伝子を含む第四ベクターを含む。細胞はエンプティ−ＭＨＣ分子を集合し、それらを細胞表面に提示し、その結果、特別なＭＨＣクラスIIハプロタイプまたは変異体対立遺伝子に特異性のペプチドが所望に応じて選択し得ることが好ましい。一種以上の特別なアクセサリー分子をコードする遺伝子と一緒に使用するための適合性ＭＨＣクラスIIα鎖遺伝子及びβ鎖遺伝子の選択は所望されるＴ細胞活性化プロフィールに依存する。例えば、実施例に記載されるように、組換えＢ７．１またはＢ７．２は単独で、またはドロソフィラＡＰＣの表面で発現された組換えマウスＩＡ^dＭＨＣクラスIIと一緒に、ＩＬ−４及びＩＬ−１０の増大された産生のＴｈ２プロフィールを有するＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖をもたらした。対照的に、Ｂ７．１またはＢ７．２が同じＭＨＣ分子とともにＩＣＡＭ−１と一緒にドロソフィラＡＰＣの表面で発現された時、ＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化は増大されたＩＬ−２産生並びに減少されたＩＬ−４及びＩＬ−１０産生を有するＴｈ１プロフイールをもたらした。こうして、本発明は本発明のアクセサリー分子のいずれか一つとのＭＨＣクラスIIハプロタイプヘテロダイマーのあらゆる組み合わせを細胞表面に有する合成ＡＰＣの生成を意図している。特に好ましい組み合わせはＢ７．１またはＢ７．２を含む同時刺激分子、ＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ−３またはＬＦＡ−３を含む付着分子、またはＦａｓリガンド(ＦａｓＬ2)を含むサバイバル分子とともにＭＨＣクラスIIを含む。上記のように、アクセサリー分子の夫々のカテゴリーの一種より多くが、例えば、Ｂ７．１及びＢ７．２として同時発現し得る。別の好ましい実施態様は、異なるカテゴリーの２種のアクセサリー分子が細胞表面で同時発現される順列を含む。換言すれば、同時刺激分子と一緒の付着分子、及びサバイバル分子と一緒の付着分子、サバイバル分子と一緒の同時刺激分子。更に別の実施態様において、本明細書に記載された異なるカテゴリーの３種のアクセサリー分子がＡＰＣ表面で同時発現される。また、これらの実施態様の全てにおいて、特別なカテゴリーの一種より多くの員がその他のカテゴリーの一種より多くの員と一緒に発現し得ることが意図されている。特別な選択された組み合わせは、それらが発現される細胞の表面で有効であり、または本発明のマトリックスの表面に固定された時に有効である。調製される実際の組み合わせは抗原ペプチドと複合体形成された発現されたＭＨＣクラスII分子に鑑みてＴ細胞活性化の成果に基いて選択される。こうして、ＭＨＣクラスII／ペプチドの複合体に応じて、Ｔ細胞活性化の成果は同じ発現されたアクセサリー分子を有するにもかかわらず異なり得る。更に別の実施態様において、抗原プロセシング補助遺伝子は上記組み合わせのいずれかで同時トランスフェクトされて増進された内部ペプチドプロセシング及びローディングを与える。こうして、この局面はその後のペプチド複合体形成のための細胞表面におけるエンプティ−ＭＨＣクラスII分子の生成を伴わない。むしろ、非変異鎖、ＨＬＡ-ＤＭまたはリソソーム酵素の発現が利用されて細胞内在化後のタンパク質分解ペプチドフラグメントの最適のプロセシング及びローディングを可能にする。こうして、本発明のＡＰＣは細胞内または細胞外でローディングされる組換えＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを有するモチーフで機能し得る。成功裏に形質転換された細胞、即ち、本発明のヌクレオチド配列の発現を誘導することができる少なくとも一種の発現ベクターを含む細胞は公知の技術により同定し得る。例えば、本発明のｃＤＮＡまたはｒＤＮＡの導入により得られる細胞はクローン化されて個々のコロニーを生じ得る。これらのコロニーからの細胞が回収され、溶解され、それらのＤＮＡ含量がSouthern，J.Mol.Biol．98:503(1 975)により記載された方法の如き方法を使用してｒＤＮＡの存在について試験し得る。ｒＤＮＡの存在について直接分析することに加えて、成功裏の形質転換またはトランスフェクションは、ｒＤＮＡがアクセサリー分子の主題ＭＨＣクラス IIタンパク質の発現を誘導することができる時に公知の免疫学的方法により確認し得る。例えば、一種以上の発現ベクターで成功裏に形質転換された細胞は、適当な抗体、例えば、特別なハプロタイプの抗クラスIIを使用して容易に測定される特別な抗原性を示すタンパク質を生産し得る。加えて、成功裏の形質転換／トランスフェクションは上記されたようなマーカー配列、例えば、ネオマイシン耐性を有する付加的な、ベクターの使用により確かめられてもよい。また、培養物は安定であり、低下した温度で持続成長することができることが好ましい。例えば、培養物はほぼ室温、例えば、約24〜27℃で維持されることが好ましい。別の実施態様において、培養物は、特にＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化のプロセス中に高温で維持される。こうして、本発明の培養物は約30℃〜約37℃の温度攻撃に耐えることができることが好ましい。本発明の少なくとも一種のアクセサリー分子及び必要により抗原プロセシング補助分子と一緒にエンプティーまたはＭＨＣクラスII分子の発現のための培養物を調製するために、培養物は前もって決められた期間にわたって、例えば、ＣｕＳＯ₄誘導による刺激を最初に必要とし得る。好適な誘導期間、例えば、約12〜4 8時間後に、ペプチドが前もって決められた濃度(例えば、約0.2μｇ/ml〜20μｇ /ml)で添加し得る。内部ローディング及び外部ローディングの両方のためのタンパク質及びペプチドは以下に説明されるように調製される。更なるインキュベーション期間、例えば、27℃で約12時間後に、培養物がＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化における使用に供される。この追加のインキュベーション期間は短縮され、またはおそらく省かれてもよいが、培養物は静止または未感作ＣＤ４⁺Ｔ細胞の添加の前に或る時間にわたってインキュベートされる場合に温度攻撃に対し次第に安定になる傾向がある。例えば、ペプチドが添加された本発明の培養物は、37℃で延長された期間にわたってインキュベートされる時でさえもペプチドローディングされたＭＨＣクラスII分子のかなりの量を発現することができる。形質転換された宿主細胞の培養に有益な栄養培地は当業界で公知であり、多数の商業源から入手し得る。宿主細胞が哺乳類である実施態様において、“無血清 ”培地が使用されることが好ましい。得られる組換え発現されたＭＨＣクラスII分子は特別なペプチドに結合し、ＡＰＣの表面で少なくとも一種のアクセサリー分子とともに充分な数で存在してＭＨＣクラスII／ペプチド複合体に対しＴ細胞リンパ球の集団を活性化する。細胞系が一種以上の所望の分子を既に生産する場合、培養物を細胞中に欠けている遺伝子について発現可能な遺伝子でトランスフェクトすることのみが必要である。例えば、細胞がそれらの表面でＭＨＣ分子を既に提示する場合、培養物をアクセサリー分子について発現可能な遺伝子を含むベクターでトランスフェクトすることのみが必要である。既に説明したように、タンパク質またはペプチドは、細胞が内部プロセシングのためにＭＨＣクラスII分子を生産している時に細胞培養物に導入し得る。浸透圧シヨックの如き方法により、ペプチドが細胞に導入でき、生産されたＭＨＣ分子に結合する。また、特に変温性細胞系の場合、ＭＨＣ分子は細胞表面でエンプティーに提示されるであろう。次いでペプチドが培養物に添加されて、所望されるようにＭＨＣ分子に結合し得る。簡素化のために、一種のペプチドが本明細書に記載されるが、本発明の方法は本発明の治療方法に使用するための新規な抗原ペプチドを同定するためのペプチドライブラリーのスクリーニングを意図している。細胞表面にＭＨＣクラスIIヘテロダイマー及び少なくとも一種のアクセサリー分子を有する細胞が生産された後、細胞が凍結乾燥されてＣＤ４⁺Ｔ細胞リンパ球の集団を活性化するのに使用するための細胞フラグメントを生成し得る。また、細胞のトランスフェクトされた培養物がＭＨＣクラスII及びアクセサリー分子の細胞外部分を生成するのに使用される。固体担体の如き担体と一緒の細胞外部分の使用は生産の或る種の利点を有する。生細胞が合成抗原提示細胞を得るのに使用される場合、少なくとも３種の遺伝子、ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを生成するための２種とアクセサリー分子のための一種が細胞に導入される必要がある。しばしば、抗生物質耐性のための追加の遺伝子がまたトランスフェクトされる。固体担体系が使用されている場合、一種の細胞系がＭＨＣクラスII分子の細胞外部分を生成するのに使用され、一方、別の細胞系がアクセサリー分子の細胞外部分を生成するのに使用される。次いでＭＨＣクラスII部分及びアクセサリー分子部分がそれらの夫々の培養物から回収される。次いでこれらの分子がＴ細胞の集団を活性化するのに充分な数で適当な担体に結合される。生産の観点から、２種の異なる培養物が使用し得るが、同じ培養物を使用することが可能であるが、培養物がアクセサリー分子の細胞外部分を発現するための追加の遺伝子でトランスフェクトされることを必要とする。この実施態様の更なる改良は、発現可能な第二のアクセサリー分子遺伝子でトランスフェクトされる細胞の第三培養物を用意することである。例えば、細胞の第二培養物は同時刺激分子の細胞外部分を生産し、一方、細胞の第三培養物は付着分子の細胞外部分を生産する。付着分子部分が回収され、担体に結合される。担体に結合されるＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分を調製する際に、可溶性分子が既に説明されたように調製される。これらの分子は一般にＭＨＣ分子中にトランスメンブラン及び細胞質ドメインを欠いている。２．ペプチド潜在的能力をもつＭＨＣクラスIIに特異的なペプチドとして機能する関連ペプチドフラグメントを生成するために、ウイルス抗原の他に実質的に全ての細胞タンパク質を用いることができる。本発明の方法および組成物は、ＣＤ４⁺細胞を特異的に活性化させる能力が増強されたＭＨＣクラスII分子を提供する。本発明のペプチドはＭＨＣクラスII分子と結合する。この結合は、インビトロと同様にインビボでも作り出すことができる生物学的条件下で生じる。本発明の実施に当該ペプチドの結合の正確な性質を知ることは必要ではない。ＭＨＣクラスII分子と結合するペプチドの長さは様々で、さらにそのアンカー残基の当該ペプチド末端からの距離も様々である。ある実施態様では、ＭＨＣクラスII分子に付加するために調製されるペプチドは単一種に由来する。すなわち、ＭＨＣに付加される全てのペプチドのサイズおよび配列は同一で、単抗原ペプチド付加ＭＨＣクラスII分子を生じる。また別の実施態様では、ペプチドは均質ではなく、ペプチドのランダムライブラリーを含み、先に述べたように所望のＴ細胞活性化プロフィールを生じる固有のペプチドの選別を可能にすることができる。合成ランダムペプチドライブラリーの生成およびスクリーニングは当業者には周知で、米国特許第5556762号明細書、同5510240号明細書、同5498530号明細書、同5432018号明細書、同5382513号明細書、同5338665号明細書および同52701 70号明細書（これらの文献は参照により本明細書に含まれる）に記載されている。ペプチドは種々の手段によって細胞に与えることができる。好ましくは、ペプチドは、細胞内ペプチドプールに入ることができるような態様で与えられる。例えば、ペプチドは浸透圧付加によって与えることができる。典型的には、ペプチドは培養液に添加される。ペプチドは、完全なポリペプチドまたはタンパク質の形状で培養に添加される。後者は、その後細胞の一連の作用（例えば酵素分解）によって分解される。また別には、完全なポリペプチドまたはタンパク質は、細胞培養に添加する前に例えば化学的消化（例えば臭化シアン）またはプロテアーゼ（例えばキモトリプシン）のような他の手段によって分解できる。他の実施態様では、ペプチドは、特定のＭＨＣクラスIIハプロタイプと結合したより小さなセグメント（これは抗原性アミノ酸配列を含んでいてもいなくてもよい）として提示される。好ましくは、十分量のタンパク質またはペプチドは、細胞培養または合成マトリックスに添加され、ＭＨＣクラスII分子が結合して、続いて本発明の合成ＡＰＣまたはマトリックス上に高密度でペプチド（好ましくはＭＨＣヘテロダイマーの各々と結合した同じ種類のぺプチド）を提示することを可能にする。本発明の別の実施態様では、ペプチドは、細胞によって発現されるＭＨＣ分子の耐熱性を強化するために、本発明のトランスフェクト細胞に添加される。上記に記したようにペプチドは好ましくは培養液に添加される。ＭＨＣクラスII分子に結合する抗原性ペプチドは、ＭＨＣ分子に耐熱性を付与し、また細胞表面発現を高めるために役立つ。ＭＨＣ分子に結合するペプチドを添加された培養は、したがって添加ペプチドのない培養よりも温度によるチャレンジに極めて耐性を有する。Ｅ．ＣＤ４⁺Ｔ細胞反応を変化させる方法１．Ｔｈ１およびＴｈ２ＣＤ４⁺Ｔ細胞仲介疾患未感作Ｔ細胞を所望の活性化Ｔ細胞型に誘導するか、または活性化Ｔ細胞のエフェクター機能をＴｈ１型からＴｈ２型にもしくはその逆に偏向させることは、特にＣＤ４⁺Ｔ細胞仲介疾患を処置する治療方法について本発明の目的の１である。分裂中のＣＤ４⁺Ｔ細胞が炎症性Ｔ細胞またはヘルパーＴ細胞のどちらに分化するかは、感染体によって産生されるサイトカイン、主にＩＬ−１２およびＩＬ −４、アクセサリー分子の影響、並びにＭＨＣクラスII／ペプチド複合体の性質によって左右される。先に考察したように、細胞介在性免疫は、最初に細胞内寄生体（例えばマイコバクテリウム(Mycobacterium)、リーシュマニア(Leishmania )、ニューモシスチス（Pneumocystis）などの寄生体を含む）に誘導されたＴｈ１炎症性細胞によって活性化されたマクロファージによる細胞内病原体の破壊を必要とする。対照的に、液性免疫は、最初に細胞外病原体（クロストリジウム(C lostridium)、スタフィロコッカス(Staphylococcus)、ストレプトコッカス(Stre ptococcus)、ポリオウイルス、ニューモシスチス(Pneumocystis)などを含む）に誘導されたヘルパーＴ細胞によって活性化されたＢ細胞による抗体の産生に依存する。例えば、ある種のタイプの感染（例えばリーシュマニア）からの回復は、もっばらＩＬ−２／ＩＦＮ−γの産生を必要とする。リーシュマニアに対するＴｈ２応答が上昇したマウスは感染を抑制できず、最終的に死亡する。Ｔｈ２型応答の不適切なサイトカイン産生は、しばしばアレルギー型疾患（例えば喘息および接触過敏症）と密接に関係する。ヒトの疾患と歪んだサイトカイン産生パターンとの最も強い関わりは、おそらくＴｈ１応答およびＴｈ１型サイトカインの自己免疫疾患との関わりであろう。実験モデルにおける強力な証拠は、多くのタイプの自己免疫疾患（糖尿病、多発性硬化症の実験モデル、自己免疫性甲状腺炎など）はＴｈ１型ＣＤ４⁺Ｔ細胞によって仲介されること示唆している。これらのモデルにおけるＴｈ２付随サイトカイン（例えばＩＬ−４）の発現は自己免疫疾患の進行に干渉する。Ｔｈ２型サイトカインはＴｈ１型細胞の反応を低下させ、一方、Ｔｈ１型サイトカインはＴｈ２型応答の進行に拮抗する。特定の活性化Ｔ細胞サブセットと特定の疾患とのつながりという観点から、したがって所望のＴ細胞サブセットへＣＤ４⁺Ｔ細胞の分裂および活性化、すなわち疾患の流れを変えるために極めて有益である一連の作用を誘導することができることが必要である。有望な解決の１つは、場合によってアレルギーまたは自己免疫疾患をもつ対象者から最初に単離したＣＤ４⁺Ｔ細胞をインビトロで活性化し、好ましいサイトカインプロフィールを分泌する細胞を産生することである。得られた活性化Ｔ細胞を続いて当該対象者に再導入し、疾患の流れを変え、長期的治癒を提供する。また別の実施態様は、Ｔｈ１またはＴｈ２応答の何れか（その者にとって応用可能ないずれか）の進行に対して潜在的な反応性をもつ個体を”免疫する”能力を目的とする。換言すれば、特定のＴ細胞サブセットの選択的誘発は、未感作細胞が望ましくない表現型へと変化することを抑制することによって達成できる。例えば、潜在的にアトピーをもつ個体の場合、有害なＴｈ２応答を防止することはヘツェルとラム(Hetzel & Lamb，Clinical mmunol．Immnopath.，73:1−10(19 94))が記載したように有益であろう。さらに別の実施態様では、本発明の組成物および方法は、未感作Ｔ細胞を所望の表現型へ発展させるために活発に刺激するために有用である。現時点で存在する治療モデルには、ヘツェルとラム（上掲書）が概説したように、抗サイトカイン抗体と担体タンパク質の使用、外因性サイトカインの作用を長く続かせるためのイディオタイプ／ＧＭ−ＣＳＦ融合タンパク質ワクチンの使用、選択アジュバントの使用、リポソーム被包化アレルゲンの使用、ペプチド類似体の使用などが含まれる。しかしながら、著者らは、インビボでのアレルゲンに対する長期的Ｔｈ２応答については、Ｔｈ２応答の所望のダウンレギュレーションを達成する可能性に対する実験的データは殆ど存在しないと述べている。前述の観点から、本発明の組成物および方法は、上記で考察した治療的介入を達成する価値ある手段を提供する。本発明は、所望の治療用サイトカインプロフィールを産生するＣＤ４⁺Ｔ細胞サブセットの生成を再現することができる活性化条件を特定することを可能にする。特定のサイトカインの発現は、特定の抗原提示細胞（ＡＰＣ）およびそれらの付随アクセサリー分子と連携している。ＡＰＣによって産生されるサイトカインおよび統合的に発現されるアクセサリー分子は両方とも、多数の要素（抗原のタイプ、Ｔ細胞レセプター（ＴＣＲ）−抗原相互作用の親和性、抗原濃度などを含む）によってそれ自体調節されるので、抗原提示の際のＴ細胞活性化の発現を予測することはこれまでのところ極めて困難である。実際、新たなアクセサリー分子がインビボでの活性化過程について候補に挙げられたので、多くの異なる分子がＴ細胞反応の調節に必要とされ、連携的態様で作用してＴ細胞活性化を達成することがますます明らかになってきた。本発明は、好ましくは非哺乳類昆虫細胞で発現する限定されたアクセサリー分子と結合したＭＨＣクラスII分子を中性的バックグラウンドで提示する合成ＡＰＣの生成を提供する。本発明のＭＨＣクラスII／アクセサリー分子組成物を発現および提示する担体として昆虫細胞を使用する利点は、昆虫細胞は調節性サイトカインを内因的に産生することはなく、さらに哺乳類のアクセサリー分子を発現しないということである。このことによって、Ｔ細胞反応を変化させることができる多数の分子を発現させる哺乳類ＡＰＣを用いる場合の固有の非予測性が克服される。したがって本発明は、他の手段では得ることができない再現性および予測性を可能にする選択された組み合わせでの発現に向けて個々の提示分子およびアクセサリー分子を単離する能力を提供する。２．治療方法上記で述べたように、本発明は、ＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化して武装エフェクターＴ細胞サブタイプに分化させる方法に関する。本方法は、ペプチドを結合することができる組換えＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを外部表面に定着させた合成 AＰＣまたはマトリックスを提供することに関する。この組成物はまた、当該細胞表面に提示された少なくとも１つのアクセサリー分子を有する。未感作または活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞は処置される個体から取り出すことによって得ることができる。続いて、Ｔ細胞を活性化して所望のＴ細胞表現型に分裂させ分化させるために十分な時間当該ＣＤ４⁺Ｔ細胞を抗原提示細胞と接触させる。活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞をこの細胞株から分離し、許容可能な担体中に懸濁して当該個体に投与する。ヒトの遺伝子を用いるのが好ましく、したがってヒト分子類似体が製造される。先の米国特許第5314813号明細書に示されたように、ネズミの系はＴ細胞活性化の実施をテストするために有用なモデルを提供し、この工程をヒトの系で応用することができることを示した(Sykulevら、Immunity，1:15-22(1994)もまた参照のこと)。ａ．休止または活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞の単離ＭＨＣクラスIIに関して提示される特異的抗原を標的とするように未だ活性化されていない休止（または未感作）ＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞と同様に個体から抽出し、本発明の形質転換培養と保温するかまたはこれら培養に暴露する。未感作細胞は、主に細胞表面マーカーＣＤ４５５ＲＡおよびＣＤ４５を基準にプライマー細胞と区別できる。さらにまた、特異的に活性化されるべきＣＤ４⁺細胞の能力と干渉する可能性がある他の処置または療法を開始する前に、個体からＣＤ４⁺細胞を得ることが望ましい。例えば、自己免疫疾患の患者を治療しようとしている場合は、ステロイド治療のような補助的治療の開始前、または当該患者が全く治療を受けていない期間中に細胞および培養サンプルを得ることが好ましい。患者のＴ細胞仲介免疫反応を変化させるためにＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させるとき、適切な対抗治療（対抗Ｔ細胞表現型およびサイトカインの産生を含む）を開始するために、当該患者を先ず分析してＴ細胞表現型の症状を調べなければならない。サイトカインプロフィールは、ＡＴＣＣから入手可能な抗サイトカイン抗体を用い、さらに米国特許第5405751号明細書、同第5322787号明細書および同第5209920号明細書（これらの文献は参照により本明細書に含まれる）に記載された方法によって確定される。好ましいサイトカイン分析には、インターロイキン−２(ＩＬ−２)、インターフェロン−γ(ＩＦＮ−γ)、腫瘍壊死因子(ＴＮＦ) 、インターロイキン−４(ＩＬ−４)、インターロイキン−１０（ＩＬ−１０）などが含まれる。先に考察したように、特定のサイトカインプロフィールがＴ細胞表現型および疾患に付随している。特に、当該症状が自己免疫疾患（多発性硬化症、自己免疫性甲状腺炎、全身性紅斑性狼癒、重症筋無力症、クローン病および炎症性大腸疾患を含む）の場合、サイトカインプロフィールは、ＩＬ−２、ＩＦＮ−γおよびＴＮＦの増加を特徴とするＴｈ１型応答によって生じる。対照的に、当該症状がアレルギー（例えば喘息および接触過敏症）である場合は、サイトカインプロフィールは、ＩＬ−４およびＩＬ−１０の増加を特徴とするＴｈ２型応答によって生じる。患者のサイトカインプロフィールおよび症状を分析した後、下記に述べるように本発明の合成ＡＰＣＮ細胞フラグメントまたはマトリックスと患者から単離されたＣＤ４⁺Ｔ細胞をインビトロで十分な量で十分な時間接触させ、当該接触細胞を機能的に対抗するサイトカインプロフィールを産生する活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞に分裂し分化するように誘発する。すなわち、患者がＴｈ１型応答者としての特徴を有する場合、患者のＣＤ４⁺Ｔ細胞に提示されるべき抗原は、細胞がＴｈ２型に分裂し分化するように誘発するために必要なものであろう。これと反対の治療様式は、患者がＴｈ２型応答を特徴とする場合に実施される。したがって、いったん対抗する活性化細胞が患者に戻された場合、Ｔ細胞表現型の反応における変化を達成する治療成果が得られる。リンパ球の抽出方法および培養方法は周知である。例えば、米国特許第469091 5号明細書(Rosenberg)には、リンパ球フェレーシスによって大量のリンパ球を得る方法が記載されている。用いられる適切な培養条件は哺乳類細胞についてであり、典型的には３７℃で実施される。ＣＤ４⁺細胞培養の分離および／または濃縮のために種々の方法がまた用いられる。細胞の分離のためのいくつかの一般的方法には、特異的に被覆した表面に間接的に細胞を結合させるものが含まれる。別の例では、ＣＤ４⁺細胞を含むヒトの末梢血リンパ球（ＰＢＬ）がフィコールハイパーク（Ficoll-Hypaque）勾配遠心沈殿(Pharmacia，Piscataway，ニュージャージ)によって単離される。ＰＢＬリンパ芽球はその後直ちに用いてもよいが、また１０％ＤＭＳＯ（SigmaChemi cal Co.，セントルイス、ミズーリ）含有ＦＢＳ（これは細胞生命活性およびリンパ球機能を保護する）中で凍結させた後液体窒素で保存してもよい。前駆体細胞培養を分離および／または濃縮するまた別の方法には正および負の選別方法が含まれる。正の選別方法については、リンパ球濃縮ＰＢＬ集団を全血から調製した後、ＣＤ４補助レセプター抗原を標的とする親和性（アフィニティー）を基準にした分離技術によってＣＤ４⁺リンパ球の亜集団を当該集団から調製する。これらのアフィニティーを基準にした技術には、蛍光活性化細胞分類( ＦＡＣＳ)、細胞粘着、磁性ビーズ分離などの方法が含まれる。(例えば以下の成書を参照されたい:Scher & Mage,「基礎免疫学(Fundamental Immunology)」、W.E. Paul編、pp.767-780，River Press刊、ニューヨーク(1984))。アフィニティー法は、アフィニティー試薬の供給源として抗ＣＤ４補助レセプター抗体を利用する。また別には、ＣＤ４レセプターの天然のリガンドまたはリガンド類似体をアフィニティー試薬として用いてもよい。本方法で使用できる種々の抗Ｔ細胞抗体および抗ＣＤ４単クローン性抗体は、アメリカ菌培養収集所（ロックビル、メリーランド）およびファーミンゲン（Pharmingen，サンディエゴ、カリフォルニア）を含む多様な市販源から入手できる。負の選別方法は、ＣＤ４⁺細胞から非ＣＤ４細胞を除去することによって実施される。この技術ではリンパ球フェレーシスを受けた患者のＴおよびＢ細胞集団からＣＤ４⁺細胞が濃縮される。目的とする抗原にしたがって適切な抗体は異なるであろう。例えば、ヒトＴリンパ球、ヒトＴ細胞サブセットおよび活性化Ｔ細胞と反応するものとして、それぞれ単クローン性抗体ＯＫＴ４(抗ＣＤ４、ATCC No.CRL8002)、ＯＫＴ５(ATCC No.8013および8016)、ＯＫＴ８(抗ＣＤ８、ATCCNo .CRL8014)およびＯＫＴ９(ATCC No.CRL8021)がＡＴＣＣの細胞株およびハイブリドーマカタログ（ロックビル、メリーランド）で特定できる。他の種々の抗体もまたＴ細胞種（前駆体細胞並びに未感作および活性化メモリー成熟末梢Ｔ細胞を含む）の特定および単離のために利用できる。ｂ．ＣＤ４⁺細胞のインビトロ活性特定のＣＤ４⁺Ｔ細胞表現型の生成のためのインビトロ条件を最適化するために、抗原提示細胞培養は適切な培養液で維持される。好ましくは、完全な細胞である本発明の担体を用いる場合は、抗原提示細胞はショウジョウバエ(Drosophil a、ドロソフィラ)細胞で、この細胞は好ましくは血清非含有培養液(例えばエクセル（Excell）400)で維持される。しかしながらまた別の実施態様では、担体が細胞フラグメントまたは先に述べたように人工的担体マトリックスである場合は、培養液は標的細胞の生命活性を維持するために選択される。本発明の合成ＡＰＣ、細胞フラグメントまたはマトリックスを活性化させるべきＴ細胞と接触させる前に、ある量の抗原性ペプチドを当該ＡＰＣまたはマトリックスに十分量で提供し、当該ＡＰＣまたはマトリックス表面での発現のためにヒトＭＨＣクラスII分子上に付加させる。先に考察したように、ペプチド付加は細胞内または細胞外で生じるであろう。したがって両態様が本明細書で述べる活性化過程に含まれるが、単純化のためにペプチドの付加はＭＨＣクラスIIヘテロダイマーへのペプチドの提示として包括的に述べる。付加については既に考察したとおりである。さらにまた、ペプチドライブラリーと同様に個々のペプチドも、先に考察したように活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞の調製での使用が意図されている。本発明にしたがって、十分量のペプチドとは、約２００から約５０００００、好ましくは約２００から１０００以上のＭＨＣクラスII分子が各合成ＡＰＣまたはマトリックスの表面で発現されるべきペプチドで付加される量である。好ましくは、上記の組成物は０．２μｇ／ｍｌから２０μｇ／ｍｌまでのペプチドとともに保温される。続いてＣＤ４⁺細胞を活性化させるために十分な時間、単離ＣＤ４⁺細胞は、合成ＡＰＣまたはマトリックス上に発現された適切なペプチド付加ＭＨＣクラスII ヘテロダイマーと培養される。したがってＣＤ４⁺細胞は好ましくは抗原特異的態様で活性化されるであろう。ＣＤ４⁺細胞対抗原提示細胞の比は個体間で変動し、さらに、例えば各人のリンパ球の培養条件に対する順応性並びに疾患の性質および重篤度または処方された治療様式で用いられる他の条件のような変数によって左右されるであろう。しかしながら、好ましくはリンパ球：抗原提示細胞またはマトリックス比は約１：１から３００：１の範囲であろう。エフェクター／抗原提示培養は、治療的に使用可能数または有効数のＣＤ４⁺ 細胞集団を活性化させるか、またはそのような集団を濃縮するために必要な時間維持されるであろう。一般的には最適期間は約１日から５日で、最大特異レベルは一般に３から５日培養後に認められるであろう。本発明のある実施態様では、ＣＤ４⁺細胞のインビトロ活性化は、細胞株にトランスフェクトした後短時間内に検出される。好ましくは、ＣＤ４⁺細胞の活性化は抗原提示細胞に暴露してから１週間以内が最適である。好ましい実施態様ではその後、活性化細胞は、密度勾配、抗体赤血球細胞調製物によるロゼット法、カラムクロマトグラフィーなどを含む単離方法によってさらに精製される。当該精製に続いて、得られたＣＤ４⁺細胞調製物は１０⁹の活性化ＣＤ４⁺細胞集団を得るためにある期間培養を維持することによってさらに増殖させる。この期間は細胞の増殖時間にしたがって変動させることができるが、一般には１４日であろう。ｃ．合成ＡＰＣまたはマトリックスからのＣＤ４⁺細胞の分離活性化ＣＤ４⁺細胞は、種々の既知の方法の１つを用いて本発明の抗原提示組成物から効果的に分離できる。例えば、ＭＨＣクラスIIヘテロダイマー、それに付加されたペプチド、またはＣＤ４⁺細胞（またはそのセグメント）に対して特異的な単クローン性抗体を用いてそれらの適切な相補的リガンドに結合させることができる。続いて、適切な手段、例えば周知のフローサイトメトリーまたは磁性ビーズ分離法によって抗体標識細胞を刺激体−エフェクター細胞混合物から抽出することができる。密度勾配もまた芽細胞を分離するために使用することができる。ｄ．活性化ＣＤ４⁺細胞による治療活性化ＣＤ４⁺細胞の有効量は、ＣＤ４⁺集団の活性化に用いた抗原性ペプチドを発現している標的細胞の量および型に関する場合と同様に、インビトロの使用とインビボの使用との間で変動するであろう。この量はまた患者の状態によっても変動し、医師によって適切な全ての要素を考慮して決定されなければならない。しかしながら、マウスで用いられる５×１０⁶から５×１０⁷細胞と比較すると好ましくは約１×１０⁶から約１×１０¹²、より好ましくは約１×１０⁸ら約１× １０¹¹、さらに好ましくは約１×１０⁹から約１×１０¹⁰の活性化ＣＤ４⁺細胞が成人に用いられる。上記で考察したように好ましくは、処置される患者にＣＤｒ⁺細胞を投与する前に、活性化ＣＤ４⁺細胞は培養されている合成ＡＰＣまたはマトリックスから集められる。しかしながら、現在の治療様式または推奨されている治療様式と異なり、本方法の好ましい実施態様ではドロソフィラＡＰＣまたは無細胞マトリックスが用いられていることを特記する必要がある。したがって、細胞および完全な活性化ＣＤ４⁺細胞の分離が達成されない場合、哺乳類の腫瘍促進細胞の投与は極めて危険であるが、一方、少数の合成ＡＰＣまたはマトリックスの投与に付随する既知の固有の危険性は存在しない。細胞性成分を再導入する方法は当技術分野で既知であり、そのような方法には、米国特許第4844893号明細書（Honskiら）および米国特許第4690915号明細書(R osenberg)に例示されたような方法が含まれる。例えば、静脈内輸液による活性化ＣＤ４⁺細胞の投与が適切である。実施例以下の実施例は説明を目的とし、本発明を制限するものではない。１．ｐＲｍＨａ−３発現ベクターの調製本発明で述べたようにドロソフィラシュナイダー(Schneider)２（Ｓ２）細胞でＭＨＣタンパク質を発現する際に用いるｐＲｍＨａ−３発現ベクターを、ＳｐｈＩで直線化したｐＲｍＨａ−ＩＤＮＡ発現ベクターをｓＰｈＩ制限酵素で消化したｐＲｍＨａ−２発現ベクターから得たＤＮＡフラグメントと連結して下記に述べるｐＲｍＨａ−３発現ベクターを形成することによって構築した。直線化ｐＲｍＨａ−１のｐＲｍＨａ−２フラグメントによる本態様での連結は、ｐＲｍＨａ−１に存在する２つのＥｃｏＲＩ制限エンドヌクレアーゼクローニング部位のうちの１つを除去するために実施された。したがって、得られたｐＲｍＨａ−３発現ベクターは、実施例で述べるように種々のＭＨＣクラスIIをコードするＤＮＡフラグメントが挿入されている多クローニング部位（ポリリンカー）内にただ１つのＥｃｏＲＩ制限部位を含んでいた。Ａ．ｐＲｍＨａ−１発現ベクターの調製メタルチオネインプロモーター、金属反応コンセンサス配列（ＭＴと称する）およびポリアデニル化シグナル(Drosophila melanogasterから単離)含有アルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）遺伝子を含むｐＲｍＨａ−１発現ベクターを文献(Bunchら、Nucl.Acids Res.，16:1043-61(1988))にしたがって構築した。プラスミド発現ベクター、ｐＵＣ１８(ATCCアクセッション番号37253)を本明細書で述べる以降のベクターの由来源として用いた。ｐＵＣ１８プラスミドは、多クローニング部位の５’から３’に以下の制限部位を含む（図１のｐＵＣ由来べクターの模式図にその全てが示されているわけではない）：ＥｃｏＲＩ；ＳａｃＩ；ＫｐｎＩ；ＳｍａＩおよび同じ位置に存在するＳｍａＩ；ＢａｍＨＩ；ＸｂａＩ；ＳａＩＩ；ＡｃｃＩおよび同じ位置のＨｉｎｃII；ｐＳＴＩ；ＳｐｈＩおよびＨｉｎｄIIＩ。ｐＵＣ１８ベクターを先ずＨｉｎｄIIＩで消化し、直線化ｐＵＣ１８を形成する。続いて、マニアーティスら（「分子クローニング：実験室マニュアル(Molecular Cloning:A Laboratory Manual)」、Cold Spring Harbor Laboratory刊、ニューヨーク(1982)）の記載にしたがって、ＤＮＡポリメラーゼＩの大型フラグメントで当該ＨｉｎｄIIＩ末端を充填することによって平滑端 (blunt end)を作出した。ドロソフィラ・メラノガスター(Drosophila melanogaster)ポリアデニル化シグナルを含むＡＤＨ遺伝子のＨｉｎｆＩフラグメント(７４０塩基対(bp))と得られた直線化平滑端ｐＵＣ１８ベクターを連結した。連結するＡＤＨ対立遺伝子は先ず、ゴールドバーグら（Goldbergら、Proc．Natl．Acad．Sci．USA，77:5794- 5798(1980)）が記載したプラスミドｐＳＡＣＩから以下のようにして単離した：ＨｉｎｆＩで消化し、続いてクレノウ（Klenow）を用いて平滑端を作り配列番号：１に挙げたヌクレオチド配列を得る。ＡＤＨ対立遺伝子を含むｐＳＡＣＩべクターは、任意の高分子量（１５ｋｂ以上）を含むバクテリオファージラムダライブラリーから選別したドロソフィラＤＮＡのＥｃｏＲＩフラグメント（４．７ｋｂ）をｐＢＲ３２２(ATCCアクセッション番号31344)でサブクローニングすることによって構築した。５’ＨｉｎｆＩ制限部位は、文献(Kreitman,Nature,304:4 12-417(1983))に記載されているように１７７０位のＡＤＨ遺伝子内に天然に存在する。３’ＨｉｎｆＩ部位は、ＡＤＨ遺伝子がクローニングされたｐＵＣ１８ベクターに由来した。この位置はＡＤＨ遺伝子の２５００位にあるＸｂａＩ部位から３’側に４塩基離れていた。ＡＤＨセグメントは、ＡＤＨｍＲＮＡの３’側非翻訳部分のポリアデニル化／切断配列の３５ｂｐ上流からポリアデニル化シグナルの７００ｂｐ下流に広がっていていた。得られたＡＤＨ遺伝子フラグメントを含むｐＵＣ１８由来ベクターは図１Ａに示すようにｐＨａ−１と称した。ｐＨａ−１に挿入するためのＭＴ遺伝子のＥｃｏＲＩ／ＳｔｕＩフラグメント（４２１ｂｐ）は、ドロソフィラ・メラノガスターのゲノムＤＮＡライブラリーの約１５．３ｋｂのＤＮＡを含むクローンから得た。昆虫ＤＮＡのＭｂｏＩによる部分消化で調製したライブラリーをラムダ由来ＥＭＢＬ４でクローニングした。４２１ｂｐフラグメントが、ドロソフィラのＭＴ遺伝子のＭＴプロモーターおよび金属反応コンセンサス成分を含んでいた(Maroniら、Genetics，112:493-504 (1986))。プロモーターおよびヌクレオチドの＋１の位置の転写開始部位を含むこの領域は、ＭＴ遺伝子の−３７０の位置からヌクレオチドの＋５４の位置に対応していた(配列番号：２)。続いて、得られたフラグメントを先にＥｃｏＲＩとＳｍａＩで直線化した上記で調製したｐＨａ−１発現ベクターに連結した。ＳｔｕＩ消化で作出したＭＴの３’側平滑端は、ＳｍａＩ消化で作出したｐＨａ−１の平滑端と適合した。ドロソフィラの５’ＭＴ遺伝子フラグメントおよび３’ＡＤＨ遺伝子フラグメントを含む得られたｐＵＣ１８由来ベクターをｐＲｍＨａ− １と称した。このｐＲｍＨａ−１発現ベクターは、複製開始点(ori)および図１Ａに示すようにｐＨａ−１ベクター上のｐＵＣ由来のアンピシリン耐性（Ampr）を付与するベータ・ラクタマーゼ遺伝子を含んでいた。ｐＲｍＨａ−１はまた、５’から３’に向けてＭＴ遺伝子、多クローニング部位およびＡＤＨ遺伝子フラグメントを含んでいた。ｐＲｍＨａ−１ベクターは、下記で述べるようにｐＲｍＨａ−３発現ベクターの構築で用いられた。Ｂ．ＲｍＨａ−２発現ベクターの調製図１Ａに示したｐＲｍＨａ−２発現ベクターを構築するために、ｐＲｍＨａ− １を構築するために上記で述べた方法に少しの改変を加えながら、ｐＵＣ１８由来ベクターｐＨａ−１に上記で調製したＭＴフラグメントを挿入した。上記で調製したＥｃｏＲＩ／ＳｔｕＩ単離ＭＴ遺伝子フラグメントのＳｔｕＩ部位にＥｃｏＲＩリンカーを添加して、両端にＥｃｏＲＩ制限部位をもつメタロチオネインフラグメントを形成する。続いて得られたフラグメントを、ＥｃｏＲＩで先に直線化したＡＤＨフラグメント含有ｐＵＣ１８発現ベクターに連結した。５’ドロソフィラＭＴ遺伝子フラグメントおよび、多クローニング部位に対して５’側に２つのＥｃｏＲＩ制限部位を有する３’ＡＤＨ遺伝子フラグメントを含む得られたｐＵＣ１８由来ベクターをｐＲｍＨａ−２と称した。このｐＲｍＨａ−２発現ベクターは複製開始点(ori)およびｐＵＣ由来のアンピシリン耐性(Ampr)を付与するベータ・ラクタマーセ遺伝子を含んでいた。ｐＲｍＨａ−２の模式図はまた、ＭＴ遺伝子フラグメントの５’から３’までの連続した部位、多クローニング部位およびＡＤＨ遺伝子フラグメントを示している。このｐＲｍＨａ−２ベクターをｐＲｍＨａ−１とともに下記で述べるようにｐＲｍＨａ−３発現ベクターの構築に用いた。Ｃ．ＲｍＨａ−３発現ベクターの調製ただ１つのＥｃｏＲＩ制限部位を有するｐＲｍＨａ−３発現ベクターを調製するために、ｐＲｍＨａ−２由来フラグメントをｐＲｍＨａ−１に連結した。この構築のために、上記で調製したｐＲｍＨａ−２を先ずＳｐｈＩで消化した。得られたＳｐｈＩフラグメント（ＭＴ遺伝子の中央で始まり、多クローニング部位のＳｐｈＩ部位まで広がる）を先ずｐＲｍＨａ−２ベクターから単離し、続いてｐＲｍＨａ−１につないだ。この連結の前に、ｐＲｍＨａ−１は、ＭＴ遺伝子フラグメントに対して５’側にあるＥｃｏＲＩ制限部位を除去して改変し続いてＳｐｈＩで直線化した。この過程は図１Ｂに模式的に示した。ｐＲｍＨａ−１のＥｃｏＲＩ部位を除去するために、このベクターを先ずＥｃｏＲＩで消化し、直線化ベクターを作製し、続いてマングビーン(Mung Bean)のヌクレアーゼで平滑端を作り再び連結した。ｐＲｍＨａ−３ベクターの模式図は図１Ｃに示す。ｐＲｍＨａ−３が誘導されたｐＵＣ１８ベクターから由来した種々の制限部位の相対的な位置は図に示されている。ｐＵＣ１８から誘導されたｐＲｍＨａ−３ベクターは、ｐＵＣ１８の複製開始点およびアンピシリン耐性を付与するベータ・ラクタマーゼ遺伝子を含む。したがって、本発明で調製しｐＲｍＨａ−３の多クローニング部位でクローニングしたＭＨＣクラスIIをコードするＤＮＡフラグメントは、ＭＴプロモーターによる転写によって調節され、ＡＤＨ遺伝子を介してポリアデニル化された。２．発現性ＭＨＣクラスII遺伝子の調製と発現Ａ．ＭＨＣクラスII遺伝子の増幅と発現好ましい哺乳類のＭＨＣクラスIIのいずれかをコードする遺伝子またはｃＤＮＡはポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を用いてクローニングされる。本明細書に記載するプライマーを適切なクラスIIｃＤＮＡを増幅するために別々の反応で用い、続いてこれら増幅ｃＤＮＡをクローニングして配列を決定する。ＭＨＣクラスIIタンパク質を生成するために、完全な長さのネズミＩＡ^dα鎖およびβ鎖ｃＤＮＡを先ず入手し、続いてＰＣＲ増幅および改変を実施した。ネズミＩＡ^dα 鎖ｃＤＮＡの完全なヌクレオチド配列はベノイストら(Benoistら、Cell，34:169 -177(1983))が報告しており、またジェンバンク(GenBank)のリストにも記載されている(アクセッション番号K01923)。ネズミＩＡ^dβ鎖ｃＤＮＡの完全なヌクレオチド配列はマリセンら（Malissenら、Science,221:750-754(1983)）が記載し、ジェンバンクにも登録されている(アクセッション番号K00007およびK00008)。各鎖を増幅するために全ＲＮＡの供給源としてマウスの脾細胞を用いた。第一の鎖のｃＤＮＡは、オリゴ（ｄＴ）およびニワトリ骨髄芽球症ウイルスの逆転写酵素を用いて合成した。得られたｃＤＮＡをＰＣＲ増幅反応に用いた。増幅反応では、下記に述べる適切なプライマーおよびジーンアンプ(GeneAmp)キットおよび温度循環装置（Perkin-Elmer/Cetus，ノーウォーク、コネチカット）を利用した。反応条件は、好ましくは１μgのｃＤＮＡ鋳型、および２００ｎＭの各オリゴヌクレオチドプライマーを含んでいた。以下のように３０サイクル実施した：（ａ）９2℃で１分；（ｂ）６０℃で１分；（ｃ）７２℃で１分。続いてＰＣＲ反応物を９９℃で１０分加熱し、Ｔａｑポリメラーゼを不活化し、さらにＤＮＡ端をＴ４ポリメラーゼ（Stratagene，ラホイヤ、カリフォルニア）で平滑端にした。実施例で示したオリゴヌクレオチドプライマーの全てについて、５’プライマーはまたフォワードプライマーまたはセンスプライマーと称する。なぜならば、これは、相補的な下の鎖とハイブリダイズさせるためのｃＤＮＡの上の鎖と同じ配列を有するからである。対照的に、３’プライマーは相補的な上の鎖とハイブリダイズさせるためのｃＤＮＡの下の鎖と同じ配列を有するのでバックワードプライマーまたはアンチセンスとも称される。両方のプライマーとも５’から３’ 方向で記載されている。5'CTTGAATTCCACCATGCCGTGCAGCAGAGCTCTGA3'(配列番号：３)なるヌクレオチド配列を有する５’プライマーを用いて完全な長さのＩＡ^dα 鎖ｃＤＮＡを増幅した。またこの５’プライマーをＥｃｏＲＩ制限部位をもつようにデザインして、当該増幅生成物を方向性をもって受容体の発現ベクターに連結することを可能にした。 5'TTTGGATCCTCATAAAGGCCCTGGGTGTC3'(配列番号：４)なる３'プライマーもまたＢａｍＨＩ制限部位をもつようにデザインした。 5'CTTGAATTCCACCATGGCTCTGCAGATCCCCA3'（配列番号：５）なるヌクレオチド配列を有する５’前進プライマーを用いて完全な長さのＩＡ^dβ鎖ｃＤＮＡを増幅した。この５’プライマーもまたＥｃｏＲＩ制限部位をもつようにデザインし、当該増幅生成物を方向性をもって受容体の発現ベクターに連結することを可能にした。 5'TTTGGATCCTCACTGCAGGAGCCCTGCT3'（配列番号：６）なる３’プライマーをＢａｍＨＩ制限部位を含むようにデザインした。ネズミＩＡ^dα鎖およびＩＡ^dβ鎖をコードする改変ｃＤＮＡを別々に先ずメタロチオネイン駆動ｐＲｍＨａ−３ベクターのＥｃｏＲＩおよびＢａｍＨＩ制限部位のポリリンカーに方向性をもたせてクローニングした。続いて色素ターミネータ技術によってアプライドバイオシステム(Applied Biosystem)３７３Ａ自動配列決定装置で配列を調べた。ｐＲｍＨａ−３でクローニングしたネズミＩＡ^dα鎖およびＩＡ^dβ鎖の増幅領域の完全なヌクレオチド配列は、それぞれ配列番号：７および８で示されている。続いて、別の場所(Jacksonら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,89:12117-21(1992)) で述べたように、ドロソフィラ・メラノガスターのシュナイダー２細胞(ATCCCRL 10974、ロックビル、メリーランド)）に別々のプラスミドをトランスフェクトした。２つのクラスII鎖をコードするプラスミドの同じ量を、ネオマイシン耐性遺伝子（プラスミドphshsneo(Bunchら、Nuc．Acids Res.，16:1043-1061(1988))とともに１：３０の割合で同時にトランスフェクトして安定な細胞株を作製した。この細胞株は、１０％ウシ胎児血清(５５℃で１時間加熱処理)、１００単位／ｍｌのペニシリン、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンおよび１ｍＭのグルタミンを補充したシュナイダーのドロソフィラ培養液(Gibco/brl，グランドアイランド、ニューヨーク)での４週間を越えるＧ４１８選別によって得られた。具体的には、トランスフェクトした後に上清を注意深く取り除き、５００μｇ／ｍｌのジェネチシン（Ｇ４１８）(Gibco/BRL，グランドアイランド、ニューヨーク)を含む全容量１２ｍｌのシュナイダー培養液を入れた７５ｃｍ²のフラスコに細胞を移した。４日後、５００μｇ／ｍｌのＧ４１８とともに６ｍｌのシュナイダー培養液を含む新しいフラスコに４ｍｌの培養を移した。この操作を安定な細胞集団が出現するまで４〜７日毎に繰り返した。安定な細胞集団は弱くフラスコに付着し、約２４時間の分裂時間で増殖した。その後これらの細胞を培養し、上記で述べたように選別培地で継代した。安定的にトランスフェクトされた凍結部分標本は、遠心沈殿によって５−２０×１０⁶細胞を採集し、１ｍｌの細胞凍結培養液（９３％ウシ胎児血清／７％ジメチルスルホキシド）に再懸濁することによって調製された。続いて部分標本を−７０℃に１週間置き、その後液体窒素貯蔵庫に移した。安定的にトランスフェクトされたＭＨＣクラスIIのＩＡ^dα鎖およびβ鎖の遺伝子の発現は、０．７ｍＭの硫酸第二銅を用いて２７℃ で２４時間誘発された。トランスフェクトしたドロソフィラ細胞の細胞表面でのＭＨＣクラスIIのＩＡ^d ヘテロダイマーの発現は、ＭＫＤ６（ＩＡd特異的単クローン性抗体(Kapplerら、J．Exp．Med.，153:1198(1981)）による染色後フローサイトメトリーで調べた。簡単に記せば、細胞の一部分（５×１０⁵）を氷上の試験管に移し、遠心沈殿（１０００×ｇ５分）によって集め、適切な一次抗体（ＭＫＤ６）を含有する５％ウマ血清を含む０．１ｍｌのドロソフィラ培養液に再懸濁した。室温で２０分保温した後、ウマ血清を含む３ｍｌのシュナイダー培養液で２回洗浄し、０．１ｍｌのＦＩＴＣ標識二次抗体（Cappell，Durham,ノースカロライナ）含有培養液に再懸濁した。氷上で２０分維持した後、ウマ血清含有シュナイダー培養液で２回洗浄し、この緩衝液に１×１０⁶／ｍｌの濃度で再懸濁した。沃化プロピジウムを添加して死細胞を分析から排除した。続いてサンプルをファクスキャン（FACScan）またはファクソート(FACSort)装置(Becton Dickison)で分析した。１つ以上のアクセサリー分子とともにネズミＩＡ^dＭＨＣクラスIIハプロタイプ（本明細書で述べまた当技術分野でも周知である）を発現する本発明の合成抗原提示細胞は下記のように製造された。ＤＲ、ＤＱおよびＤＰに対する完全な長さのヒトＭＨＣクラスIIα鎖およびβ 鎖を末梢血細胞（Ｂ細胞、マクロファージおよび樹状突起細胞を含む）から増幅する。各々のハプロタイプを増幅するために用いた５’および３’プライマーは以下の配列を有する：上記ヒトハプロタイプを得るための増幅条件は、ネズミの対応物を得るために上記で述べた条件と同一である。１つ以上のアクセサリー分子とともにヒトＭＨＣクラスIIハプロタイプ（本明細書で述べまた当技術分野でも周知である）を発現する本発明の合成抗原提示細胞は下記のように製造される。Ｂ．不変鎖およびＨＬＡ−ＤＭ鎖ｃＤＮＡの増幅詳細な説明の節Ｂで述べた本発明の幾つかの態様のために、不変鎖並びにＨＬＡ−ＤＭαおよびＨＬＡ−ＤＭβを選択したＭＨＣクラスIIヘテロダイマーおよび少なくとも１つの補助因子とともに同時発現させる。本事例では、ＭＨＣクラスIIα鎖およびβ鎖、不変鎖並びにＨＬＡ−ＤＭαおよびＨＬＡ−ＤＭβを、５：５：８：１：１のモル比で受容体の抗原提示細胞にトランスフェクトする。他の遺伝子のモル比に対するアクセサリー分子の比は１：１である。続いて、得られたトランスフェクト細胞を上記のように外因性遺伝子の発現のために誘発して本発明の合成抗原提示細胞株を作製する。１）不変鎖ネズミの不変鎖ｃＤＮＡをマウスの脾臓細胞から作製した。それぞれ5'AAGAAT TCACTAGAGGCTAGAGCCAT3'（配列番号：２１）および、 5'AAGGATCCTCACAGGGTGACTTGACC3'（配列番号：２２）のヌクレオチド配列を有する５’および３’プライマーのプライマー対を用いて当該供給源から完全な長さの不変鎖を増幅させる。上記で述べたように、５’および３’プライマーをそれぞれＥｃｏＲＩおよびＢａｍＨＩ制限部位を含むようにデザインした。増幅不変鎖をＥｃｏＲＩ／ＢａｍＨＩ消化ｐＲｍＨａ−３ベクターでクローニングした後、得られたクローンの配列を調べ、配列番号：２３に挙げた配列を有することが分かった。本発明で用いるヒト不変鎖ｃＤＮＡは、γ−インターフェロン誘発ＨｅＬａ細胞（ATCCアクセッション番号CCL2）由来ＲＮＡを用いて作製した。続いて、それぞれのヌクレオチド配列をもつ５’および３’オリゴヌクレオチドプライマーを用いて、得られたｃＤＮＡはＰＣＲで鋳型として使用する。得られたＰＣＲフラグメントをＥｃｏＲＩおよびＢａｍＨＩで切断し、同様に消化したｐＲｍＨａ−３に連結する。２）ＨＬＡ−ＤＭまたγ−インターフェロン誘発ＨｅＬａ細胞由来ｍＲＮＡを用いてＨＬＡ−ＤＭｃＤＮＡのαおよびβ鎖を合成する。続いてこれらをＰＣＲで鋳型として用いる。α鎖は、それぞれのヌクレオチド配列を有する５’および３’プライマー対を用いて増幅する。β 鎖は、それぞれのヌクレオチド配列を有する５’および３’プライマー対を用いて増幅する。得られたＰＣＲフラグメントをＮｃｏＩおよびＳａｌＩで切断し、同様に消化したｐＲｍＨａ−３に別々に連結する。Ｃ．アクセサリー分子をコードする遺伝子の増幅１）付着分子ａ．ＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２およびＩＣＡＭ−３ネズミＩＣＡＭ−１を単離するために、脾臓細胞をＢａｌｂ／ｃマウスから単離した。ｍＲＮＡの単離前に、脾臓細胞を先ずファストトラック（Fast Track）キット（Invitrogen，サンディエゴ、カリフォルニア）を用い製造元の指示にしたがってｃｏｎＡで刺激した。ｃＤＮＡは上記のようにｍＲＮＡから合成した。続いて、公表されたｃＤＮＡヌクレオチド配列(G.Siuら、J.Immunol.，143:3813 −3820(1989))を基にデザインしたそれぞれ以下の５’および３’プライマーを用いて得られたｃＤＮＡをＰＣＲに付した：物を制限酵素ＥｃｏＲＩおよびＳａｌｌで切断し、同様に消化したｐＲｍＨａ− ３に連結した。続いて、上記で述べたリン酸カルシウム法を用い、上記で調製したネズミＩＡ^d α鎖およびβ鎖遺伝子とともに上記の発現構築物を、ＩＣＡＭ−１：α鎖：β 鎖を１：１：１のモル比でドロソフィラＳ２細胞に同時にトランスフェクトした。安定的にトランスフェクトされた細胞が上記のように得られた。細胞表面にＩＡ^dα鎖およびβ鎖とともにアクセサリー分子ＩＣＡＭ−１を発現している合成抗原提示ドロソフィラＳ２細胞を、続いて先に述べたように発現を誘発することによって製造した。実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、他の実施態様ではまた、ネズミＩＡ^d分子と一緒にＩＣＡＭ−１、Ｂ７．１および／またはＢ７．２をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞を製造した。ヒトＩＣＡＭ−１は同様にヒトの細胞株Ｋ５６２から単離したｍＲＮＡから増幅する。当該細胞株は、ヒトの慢性骨髄性白血病に由来し(ATCCアクセッション番号CCL-243)、推奨された条件下で培養した(すなわち、１０％ウシ胎児血清添加ＲＰＭＩで５％ＣＯ₂下３７℃)。ヒトアクセサリー分子を増幅するＰＣＲプライマーは利用可能な既知の配列を基に、適切なベクターでクローニングするために必要な５’および３’クローニング部位を考慮してデザインされる。ヒトＩＣＡＭ−１ｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、ジェンバンクアクセッション番号GB-J 03132により入手できる。ＩＣＡＭ-１の５’および３’プライマーはそれぞれ以下のヌクレオチド配列を有する：増幅ヒトＩＣＡＭ−１を得るために、先で述べたようにこれらプライマーを用いてＰＣＲを実施する。続いて、得られたＰＣＲ生成物を先に述べたようにｐＲｍＨａ−３でクローニングし、その後、これもまた先に述べたように受容細胞にトランスフェクトする。同様に、ヒトＩＣＡＭ−２およびＩＣＡＭ−３（これらのヌクレオチド配列はそれそれジェンバンクアクセッション番号GB-X15606およびGB-S50015により入手できる）は、該当するプライマー対を用いて増幅される。ＩＣＡＭ−２を増幅する５’および３’プライマーはそれぞれ以下のヌクレオチド配列を有する：５’および３’プライマーはそれぞれ以下のヌクレオチド配列を有する：ＣＡＭ生成物を別々にｐＲｍＨａ−３につなぎ、別々にドロソフィラＳ２細胞にトランスフェクトする。選択したヒトＭＨＣクラスIIハプロタイプとともにアクセサリー分子ＩＣＡＭ −１を発現している合成抗原提示ドロソフィラＳ２細胞は、続いて先に述べたように発現を誘発することによって製造される。他の実施態様では、実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、ヒトハプロタイプと合わせてＢ７．１および／またはＢ７．２と一緒にＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２またはＩＣＡＭ−３をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞がまた作製される。本発明で使用することを目的とするまた別の変更には、ＬＦＡ−３および／またはＦａｓリガンド（ＦａｓＬ）（これらはともに下記で述べる他のアクセサリー分子である）と上記の組み合わせが含まれる。ｂ．ＬＦＡ−３ヒトＬＦＡ−３は血中リンパ球から単離される。ヒトＬＦＡ−３のｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、ジェンバンクアクセッション番号GB-109083によって入手できる。したがって、ヒトＬＦＡ−３はそれぞれ以下のヌクレオチドを有する５ ’および３’プライマーを用いて増幅される：実施例５で述べる活性化アッセイで使用する合成抗原提示細胞を作製するために、先に述べたようにヒトハプロタイプとともにヒトＬＦＡ−３のみをコードするか、または本明細書で述べた他のアクセサリー分子と一緒にヒトＬＦＡ−３をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞もまた作製される。２）同時刺激分子ａ．Ｂ７．１ＩＣＡＭ−１について上記で述べたように、マウスから単離したｍＲＮＡからｃＤＮＡを作製した。続いて、以下のそれそれ５’および３’オリゴヌクレオチドプライマーを用いて得られたｃＤＮＡをＰＣＲに付した(これらプライマーは、公表されたｃＤＮＡヌクレオチド配列(Freemanら、J．Exp．Med.，174:625-63 1(1991))を基にデザインし５’から３’の方向で表示する)：酵素ＥｃｏＲＩおよびＳａｌＩで切断し、同様に消化したｐＲｍＨａ−３に連結した。続いて、上記で調製したネズミのＩＡ^dα鎖およびβ鎖遺伝子とともに上記の発現構築物を、Ｂ７．１：α鎖:β鎖のモル比を１：１：１として上記で述べたように燐酸カルシウム法を用いてドロソフィラＳ２細胞に同時にトランスフェクトした。上記で述べたように安定的にトランスフェクトされた細胞を得た。続いて、細胞表面にＩＡ^dα鎖およびβ鎖とともにアクセサリー分子Ｂ７．１を発現する合成抗原提示細胞ドロソフィラＳ２細胞を、上記で述べたように誘発することによって作製した。実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、他の実施態様では、ネズミＩＡ^d分子と一緒にネズミＩＣＡＭ−１、Ｂ７．１および／またはＢ７．２をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞もまた製造される。ヒトＢ７．１は同様にＫ５６２細胞から単離され、上記で述べたようにｐＲｍＨａ−３でクローニングされる。ヒトＢ７．１ｃＤＮＡのヌクレオチド配列はジェンバンクァクセッション番号GB-M83071により入手できる。５’および３’プライマーはそれぞれ以下のヌクレオチド配列を有する：られたＰＣＲ生成物をｐＲｍＨａ−３に挿入し、続いてこれを増幅させクローニングしたヒトハプロタイプとともにドロソフィラＳ２細胞に同時にトランスフェクトした。続いて先に述べたように発現を誘発することによって、細胞表面に選択したヒトＭＨＣクラスIIハプロタイプとともにアクセサリー分子Ｂ７．１を発現する合成抗原提示細胞ドロソフィラＳ２細胞を作製する。実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、他の実施態様では、ヒトハプロタイプとともに本明細書で述べたアクセサリー分子を種々に組み位わせたＢ７．１をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞もまた作製される。ｂ．Ｂ７．２ネズミＩＣ−２１細胞（ATCCアクセッション番号TIB186）を１０％ウシ胎児血清含有ＲＰＭＩ１６４０培養液で増殖させた。上記のようにこれらの細胞から単離したｍＲＮＡからｃＤＮＡを合成した。続いて、得られたｃＤＮＡを以下のそれぞれ５’および３’オリゴヌクレオチドプライマーを用いてＰＣＲに付した( これらプライマーは、公表されたｃＤＮＡヌクレオチド配列(Freemanら、J．Exp ．Med.，178:2185-2192(1993))を基にデザインし５’から３’の方向で示す)：制限酵素ＥｃｏＲＩおよびＳａｌＩで切断し、同様に消化したｐＲｍＨａ−３に連結した。続いて、上記で調製したネズミのＩＡ^dα鎖およびβ鎖遺伝子とともに上記の発現構築物を、Ｂ７．２：α鎖:β鎖のモル比を１：１：１として上記で述べたように燐酸カルシウム法を用いてドロソフィラＳ２細胞に同時にトランスフェクトした。上記で述べたように安定的にトランスフェクトされた細胞を得た。続いて、細胞表面にＩＡ^dα鎖およびβ鎖とともにアクセサリー分子Ｂ７．２を発現する合成抗原提示細胞ドロソフィラＳ２細胞を、上記で述べたように誘発することによって作製した。実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、他の実施態様では、ＩＣＡＭ−１およびネズミＩＡ^d分子と一緒にネズミＢ７．２をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞もまた作製される。ヒト細胞株ＨＬ６０（前骨髄球性白血病由来）(ATCCアクセッション番号CCL− 240)からヒトＢ７．２を単離する。ヒトＢ７．２ｃＤＮＡのヌクレオチド配列はジェンバンクアクセッション番号GB-M83071により入手できる。ヒトＢ７．２を増幅するための５’および３’プライマーはそれぞれ以下のヌクレオチド配選択したヒトハプロタイプのための構築物と一緒にドロソフィラＳ２細胞にトランスフェクトするために、増幅Ｂ７．２生成物を続いて上記で述べたようにｐＲｍＨａ−３でクローニングする。トランスフェクトされた遺伝子の発現は上記のように誘発される。実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、他の実施態様では、ヒトハプロタイプとともに本明細書で述べたアクセサリー分子を種々に組み合わせたヒトＢ７．２をコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞もまた作製される。３）サバイバル分子ヒトＦａｓリガンドは活性化ヒトＴ細胞から単離される。ヒトＦａｓリガンドｃＤＮＡのヌクレオチド配列はジェンバンクアクセッション番号GB-U08137により入手できる。したがって、ヒトＦａｓリガンドは、それぞれ以下のヌクレオチド配列を有する５’および３’プライマー対を用いて増幅される：ヒトＣＤ７０（Ｔ細胞上に発現されるＣＤ２７のためのリガンド）は、それぞれ以下のヌクレオチド配列を有する５’および３’プライマー対を用いて上記のように増幅される：実施例５で述べる活性化アッセイで用いる合成抗原提示細胞を作製するために、上記で述べたように、ヒトハプロタイプとともにヒトＦａｓリガンドのみをコードするか、または本明細書で述べた他のアクセサリー分子を種々に組み合わせたヒトＦａｓリガンドをコードする遺伝子を含む合成抗原提示細胞もまた作製される。３．合成担体に定着させたＭＨＣクラスIIの調製ここで述べる実施例は、大量のＭＨＣクラスII分子および単一種のアクセサリー分子またはそれらの種々の組み合わせを、単クローン性抗体結合およびロゼット形成実験（Ｔ細胞レセプター結合）で判定したとき固有の構成で種々の表面（ハエの細胞、赤血球細胞、ラテックスビーズ）に固定させる新規な方法を提供する。本方法は、人工リン脂質膜を含む他の合成表面に範囲を広げることができる。アビジン結合リン脂質とともにホスファチジルエタノールアミンは特に本発明に適切である。これらのリン脂質は、リペックスバイオメンブレン社（Lipex Bi omembrane Inc.，バンクーバー、ブリティッシュコロンビア、カナダ）から市販ルートで入手できる。Ａ．アビジン被覆赤血球細胞上へのビオチン付加ＭＨＣクラスIIの固定 NHS-LCビオチン、ニュートロアビジン(neutravidin)およびビオチン−BMCCはピアース（Pierce，ロックフオード、イリノイ）から購入する。ヒツジ赤血球はコロラドシーラムカンパニー（Colorado Serum Company，デンバー、コロラド）から入手する。ＭＨＣクラスIIを発現しているドロソフィラＳ２細胞は上記のように調製する。ハイブリドーマ細胞培養上清として、単クローン性抗体ＭＫＤ６およびＭ５−１１４(MKD6分泌ハイブリドーマについてはATCCアクセッション番号TIB−120)を用いる。用いたプロトコルは文献に記載されている(Muzykantov & Taylor，Anal．Biochem.，223:142-148(1994))。簡単に記せば、ＳＲＢＣを４回ＰＢＳで洗浄し、NHS-LCビオチンでビオチン付加し、再びＰＢＳで４回洗浄し、３％ウシ胎児血清および０．０２％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳ中で４℃で保存する。組換え発現ＭＨＣクラスIIα鎖およびβ鎖はビオチン −BMCCを用いてビオチン付加する。ビオチン−BMCCは、チオール基と反応するマレイミド結合ビオチンである。ビオチン付加は製造元の推奨にしたがって実施する。未反応ビオチンはセントリコン(Centricon)１０で除去する。ビオチン付加ＭＨＣクラスIIα鎖およびβ鎖は、最終濃度０．２ｍｇ／ｍｌでアビジン被覆ＳＲＢＣとともに３０分保温し、続いて１０％ウシ胎児血清含有ＤＭＥＭで洗浄することによって固定される。ＭＨＣクラスII結合ＳＲＢＣは直ちに使用する。アビジン被覆ＳＲＢＣ上へのビオチン付加ＭＨＣクラスIIα鎖およびβ鎖の固定は上記のように実施する。結合は、上記の抗体を用いてフローサイトメトリーにより調べる。ロゼット形成アッセイのためには、ＭＨＣクラスII発現ドロソフィラＳ２細胞またはＭＨＣクラスII被覆ＳＲＢＣのどちらかを、特定のペプチド (実施例４参照)（０．０２ｍＭ）または無関係ペプチド（０．０２ｍＭ）とともに３０分氷上で保温する。続いて、ＣＤ４⁺Ｔ細胞を添加する(割合は、１０個のＴ細胞に対して１個のドロソフィラＳ２細胞または１０個のＳＲＢＣに対して１個のＴ細胞)。その後混合物を沈澱させ、少なくとも３０分氷上で保温する。続いて、細胞を注意深く再懸濁させてロゼットを数える。ロゼットは、少なくとも３個のＣＤ４⁺Ｔ細胞と結合したドロソフィラＳ２細胞、または少なくとも３個のＳＲＢＣと結合したＣＤ４⁺Ｔ細胞である。Ｂ．アビジン被覆ラテックスビーズ上へのビオチン付加ＭＨＣクラスIIの固定直径が６ミクロンのラテックススルフェートビーズをインターフェイシャルダイナミクス社（Interfacial Dynamics Corporation，ポートランド、オレゴン）から購入し、上記のプロトコルにしたがってビオチン付加する。アビジン被覆ラテックスビーズは、１％のラテックスビーズ懸濁液を１ｍｇ／ｍｌのニュートロアビジンを含むＰＢＳ中で１時間室温で保温して調製する。等容量の１０％ウシ胎児血清含有ＰＢＳを続いて添加する。室温で１時間保温した後、ビーズを３回洗浄し、組換えビオチン付加ＭＨＣクラスIIの結合のために使用する。組換えビオチン付加ＭＨＣクラスIIを最終濃度０．２ｍｇ／ｍｌでアビジン被覆ラテックスビーズと３０分保温し、続いて１０％ウシ胎児血清含有ＤＭＥＭ中で洗浄することによって固定される。結合ＭＨＣクラスIIを有するＳＲＢＣは直ちに使用する。ロゼット形成実験は先に述べたように実施する。Ｃ．種々の固形担体（例えばプラスチックマイクロウェルプレート）に結合したＭＨＣクラスIIの固定と検出ＭＨＣクラスII分子は、以下のようにマイクロタイタープレート（Corning）に直接結合によって固定し検出する：ＭＨＣクラスIIを所望の濃度にＰＢＳで希釈し(例えば１００ｎｇ／ウェルのために１ｍｇ／ｍｌ)、続いてプラスチック製マイクロタイタープレートの各ウェルに添加する。プレートを１時間室温で保温する。保温後、プレートをＰＢＳで１回洗浄し、さらにＰＢＳ＋トゥイーン（ＰＢＳＴ）中の２％ウシ血清アルブミン２００μｌ（０．０５％）を添加し、さらに１時間室温で保温する。プレートを３回ＰＢＳＴで洗浄し、２％ＢＳＡ含有ＰＢＳ中のビオチン付加抗ＭＨＣクラスII単クローン性抗体を添加する(１：２５００)。プレートをさらに１時間室温で保温し、ＰＢＳＴで３回洗浄する。アビジン結合ＨＲＰを２％ＢＳＡ含有ＰＢＳ中で添加する(１：２５００)。室温でさらに１時間保温した後、プレートをＰＢＳＴで３回洗浄し、Ｈ₂Ｏ₂またはトフェニルジアミン（thophenyldiamine）を添加する。反応はＨ₂ＳＯ₄で停止させる。反応生成物は４９Ｏｎｍで比色計により検出する。また別には、組換えＭＨＣクラスII分子は、基質とのビオチン−アビジン連携相互反応により結合させることができる。この実施態様では、マイクロウェルプレートは、ＰＢＳで０．００１ｍｇ／ｍｌの濃度に希釈した１００μｌのアビジンで被覆される。過剰なアビジンはＰＢＳによる洗浄で除去する。ＭＨＣクラスII結合の提示検出のための上記の過程がその後に続く。また別には、組換えＭＨＣ分子は、基質に結合させたニッケルと相互反応するＭＨＣに添加したポリヒスチジンタッグによる架橋によって固定される。結合および検出のための上記の過程の後は、ニッケルキレート被覆マイクロウェルプレート（Xenopore）およびポリヒスチジンタッグを付加された発現ＭＨＣ分子組換え体を使用する。４．ペプチド生成本発明の抗原性ペプチドは、本明細書で述べたものを含む天然に存在する供給源から得るか、または既知の方法を用いて合成してもよい。本明細書で開示する種々の実施例では、全てのペプチドは、アプライド・バイオシステム社の装置ＡＢＩ−４３１Ａ(Foster City，カリフォルニア)を基にＴ−ＢＯＣ法によって別々に化学的に合成され、Ｃ１８逆相カラムにより精製される。アミノ酸残基のランダムアソートメントにより生成されるペプチドの単離または合成もまた適切であるかもしれない。特に、ＣＤ４細胞をおそらく刺激すると考えられるペプチドを空のＭＨＣ分子に付加するために特定のエピトープを突き止めようとしている場合は適切であろう。ランダム化ペプチドの混合物は、プロテアソームを用いることによって（タンパク質またはポリペプチドを分解過程（例えばキモトリプシンによる消化）に付すことにより）または合成によって得られる。本発明の細胞株は、タンパク質またはポリペプチドをヒトＭＨＣクラスII分子に付加できるより小さなペプチドに分解することができるが、ペプチドを直接細胞に導入してより迅速な付加および発現作用を促進することが好ましい。ペプチドがアミノ酸残基を任意に取り込みながら合成される場合は、修飾アミノ酸とともにＬまたはＤ型の全てのアミノ酸変種が、各合成サイクル時に好ましくは取り込まれるであろう。しかしながら、種々のパラメーター（例えばある種のアミノ酸の溶媒不適合）が、ある種のアミノ酸を欠くペプチドを含む混合物を生じるかもしれない。したがって、この過程は、溶媒および反応条件を変更することにより必要とされるように調節して最も多様なペプチドを生成しなければならない。ネズミＭＨＣクラスIIに関して実施例５で述べるようにペプチド付加のために用いられるペプチドは、アミノ酸残基配列ISQAVHAAHAEINEAGR(配列番号：５２)を有するオボアルブミン_323-339（ＯＶＡ）である。ヒトＭＨＣクラスIIハプロタイプに特異的な好ましいペプチドには以下のペプチドが含まれる：１）ＨＬＡ-ＤＲＢ１＊０１０１と結合するインフルエンザヘマグルチニン_306-318PKYV KQNTLKLAT(配列番号：５３)；２）ＨＬＡ-ＤＲＢ１＊０３０１と結合する結核菌(M．tuberculosis)由来ＨＳＰ６５_2-12KTIATDEEARR(配列番号：５４)；３）ＨＬＡ-ＤＲＢ１＊０３０１と結合するクラミジア・トラコマチス（C．trachoma tis）のミトコンドリア外側タンパク質（ＭＯＭＰ）QASLALSYRLNMFTP(配列番号：５５)；４）ＨＬＡ-ＤＲＢ１＊０４０１と結合するＨＬＡ−Ａ2_33-45FVRFDSDA ASQRM(配列番号：５６)。ペプチドリガンドがどのように限定されるかについての記載とともに既知のクラスII結合ペプチドの豊富な記載はラメンシーらの報告によって提示されている(Rammenseeら、Immunogenetics，41:178-228(1995))。本発明の方法を実施するときに使用するペプチドはまたキロンミメトープ(Chiro n Mimetope)により入手できる。他の実施態様では、本明細書で述べた合成抗原提示細胞に関する本発明の方法を実施する場合はペプチドライブラリー（当業者は容易に作製できる）の使用もまた意図される。５．ペプチドとのインビトロ保温による空のＭＨＣクラスII分子の付加下記に提示する結果によって示すように、選択アクセサリー分子とともにドロソフィラ細胞株の表面に発現されたネズミＭＨＣクラスII分子は、用量依存態様で特定のペプチドと結合し、さらに抗原特異的Ｔ細胞にこれらペプチドを提示してＴ細胞活性化をもたらすことができる。(これらのドロソフィラ細胞株は、ＭＨＣクラスII分子およびアクセサリー分子をコードする種々の組み合わせのプラスミドをトランスフェクトされている。) 下記で実施する分裂および活性化アッセイのために、ドロソフィラ・メラノガスターシュナイダー２（ＳＣ２）細胞（ATCCアクセッション番号CRL10974）を、実施例２で述べたＨ２−Ａ ^dのＭＨＣクラスIIα鎖およびβ鎖をコードする遺伝子で形質転換した。選択補助細胞がＭＨＣクラスII分子と一緒に発現される他のアッセイのためには、Ｂ７．１、Ｂ７．２およびＩＣＡＭ−１のための遺伝子もまた先に述べたＭＨＣ遺伝子含有細胞に導入した。アクセサリー分子は下記に規定するような選択濃度および組み合わせで発現させ、再現性をもつ一定のＣＤ４⁺細胞活性化を可能にした。発現（硫酸銅による処置によって誘発される）に続いて、発現分子の濃度をモニターする。所望レベルの分子を発現している細胞の選択はフローサイトメトリーによる細胞株の分類によって実施する。表1は、ネズミＩＡ^dＭＨＣクラスII分子のみまたは種々のアクセサリー分子と一緒に発現するドロソフィラ細胞株を示す。この表はまた、下記でさらに述べる分裂効果の結果の要約を提示する(”−”は効果無し、”＋ ”は陽性分裂効果を示す)。合成抗原提示細胞の各タイプによって産生されたサイトカインの種類の要約もまた表示し、合わせて個々のサイトカインの産生がアップレギュレートであるか、ダウンレギュレートであるかをさらに矢印によって示す(これらは下記でもさらに説明する)。表１アクセサリー分子分裂反応産生サイトカイン無し − − Ｂ７．１＋ＩＬ−４ＩＬ−１０ＩＬ−２Ｂ７．２＋ＩＬ−４ＩＬ−１０ＩＬ−２ＩＣＡＭ−１ − − Ｂ７．１＋Ｂ７．２＋ＩＬ−４ＩＬ−１０ＩＬ−２Ｂ７．２＋ＩＣＡＭ−１＋ ↑ＩＬ−２ ↓ＩＬ−４ ↓ＩＬ−１０Ｂ７．２＋ＩＣＡＭ−１＋ ↑ＩＬ−２ ↓ＩＬ−４ ↓ＩＬ−１０ＣＤ７０＋ＩＣＡＭ−１＋ＩＬ−２ＣＤ７０ − − ＣＤ７０＋ＩＣＡＭ−１＋ ↑ＩＬ−２＋Ｂ７．２抗原提示および最終的Ｔ細胞反応の効果を評価するために、抗原特異的Ｔ細胞は、Ｔ細胞レセプター遺伝子導入マウスから得たＣＤ４⁺細胞であった。本明細書で用いた当該遺伝子導入系統は、オボアルブミンペプチド３２３−３３９に特異的なＴ細胞レセプターを発現するＤ０１であった。Ｄ０１マウス系統はデニス博士(Dr.Dennis Lo)から入手した。組換え体の表面発現ＭＨＣクラスII分子に対するＴ細胞反応性の評価のために、ホストの全てのＡＰＣを反応集団から除外するようにデザインした技術を組み合わせてＣＤ４⁺細胞を先ずリンパ節から精製した。続いて、これら高度に精製したＣＤ４⁺細胞の少数（５×１０⁴）をｏｖａペプチドの存在下または非存在下でドロソフィラ細胞株とともに培養した。アクセサリー分子（Ｂ７．１、Ｂ７．２またはＢ７．２＋ＩＣＡＭ−１）とともに、およびアクセサリー分子無しでＭＨＣクラスIIの存在下でペプチド提示の効果を、文献の記載にしたがって先ず分裂アッセイで調べた(Webbら、Cell,63:1 249(1990))。簡単に記せば、５×１０⁴ＣＤ４⁺Ｔ細胞を５×１０⁴ドロソフィラ細胞とともに３００μｌの培養液でマイクロタイターウェルで培養した。採集１８時間前に、１００μｌの上清をサイトカイン分析のために取り出し、１μＣｉの³Ｈ−チミジンを各ウェルに添加した。表示した期問で（３、４または５日）それぞれのウェルをガラスファイバー上に採集し、液体シンチレーション計測器で計測した。図２で示されるように、ＭＨＣクラスII分子のみを発現している細胞株は、放射性チミジンの低い取り込みで示されるとおりＴ細胞の分裂反応を刺激できなかった。すなわち、より高いカウントが、μＭで示した刺激ペプチドの量に対してプロットした分裂の増加を示している。しかしながら、Ｂ７．１またはＢ７．２同時刺激分子のどちらかの同時発現は、ＭＨＣクラスII提示ｏｖａペプチドの能力に強力な分裂反応刺激を付与した。比較のために、脾臓ＡＰＣ（Ｔ−Ｓと表示）を用いた結果を表２に示す。図３に示すように、付着分子ＩＣＡＭ−１とともにＭＨＣクラスII分子を発現するドロソフィラ細胞株は刺激されなかった。しかしながら、Ｂ７．２と一緒にＩＣＡＭ−１を発現させることによって、低濃度のペプチド抗原で分裂反応を刺激する合成ＡＰＣ細胞が得られた。これらの結果は、ネズミＨ２−Ａ^dＭＨＣクラスII分子および同時刺激分子（Ｂ７．１、Ｂ７．２およびＢ７．２＋ＩＣＡＭ −１）を発現しているドロソフィラ細胞株は、分裂の増加によって測定した場合未感作ＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化できることを示している。分裂に加えて、特定のサイトカインを産生する再現性のあるＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化が所望される。したがって、測定されるサイトカインに特異的な抗体を用いて標準的なＥＬＩＳＡによって上記の培養で産生されたサイトカインもまた調べた。図４Ａ−４Ｄに示したデータは、ＡＰＣ上の刺激分子に対して産生されたサイトカインの量をｎｇ／ｍｌの濃度で表示している。これらのアッセイの結果は、組換えＭＨＣクラスIIを発現するドロソフィラＡＰＣ上のアクセサリー分子の種々の組み合わせによって、図４Ａ−４Ｄおよび図５Ａ−５Ｄで示すように種々のサイトカインの産生がもたらされることを示している。ＩＬ−２産生（Ｔｈ１型応答）のためには、Ｂ７．１またはＢ７．２と一緒にＭＨＣクラスIIを発現する細胞株は図４Ａで示されるように極めて弱く刺激された。顕著なレベルのＩＬ−２を達成するためには、ドロソフィラ細胞株はＩＣＡＭ−１、Ｂ７およびクラスIIの同時発現を要求した(図５Ａ)。Ｂ７．１およびＢ７．２を発現するドロソフィラ細胞株によるγ−インターフェロンの産生もまた貧弱に誘発された(図４Ｄ)。しかしながら、ＩＬ−２に関する結果とは対照的に、ＩＣＡＭ−１の同時発現はγ−ＩＦＮの産生に影響を与えなかった(図５Ｃ)。脾臓ＡＰＣ（Ｔ−Ｓと表示）は強いγ−ＩＦＮ産生を誘発し、新たな分子がこのサイトカインの産生を調節していることを示唆した。ＩＬ−４産生（Ｔｈ２型応答）は、一般には未感作ＣＤ４⁺Ｔ細胞の一次刺激中には観察されない。これらの観察とともに、脾臓ＡＰＣ（Ｔ−Ｓ）は、Ｄ０１細胞およびｏｖａペプチドとの培養後顕著なＩＬ−４を誘発することができなかった(図５Ｂ)。しかしながら、Ｂ７．１もしくはＢ７．２のどちらかまたはその両方と一緒にクラスIIＭＨＣ分子を同時発現しているドロソフィラ細胞は、培養中に強いＩＬ−４産生を誘発した(図４Ｂおよび５Ｂ)。興味深いことには、ＩＣＡＭ−１の添加はこのサイトカインの産生に対して拮抗的影響を示した(図５Ｂ) 。同様に、図４Ｄおよび５Ｄに示すようにＩＬ−１０はＩＬ−４に対して調節された。上記に述べたように、Ｔｈ１型応答よりはむしろＴｈ２型応答のサイトカインプロフィールに関する結果が、Ｂ７およびＭＨＣクラスIIを発現している細胞株について得られた。対照的に、Ｂ７およびＩＣＡＭ−１と組み合わせたＭＨＣクラスIIの同時発現はＩＬ−４およびＩＬ−１０の産生と拮抗し、一方ＩＬ−２は強力に促進し、それによってＴｈ１型応答を誘発し、ＣＤ４⁺Ｔ細胞の所望のＴ細胞サブセットへの活性化を駆動する能力についての本発明を支持する。これらの結果は、種々のパターンのサイトカインを産生する所望のＣＤ４⁺Ｔ細胞集団を得る場合に使用するために、ドロソフィラ細胞株を規定のアクセサリー分子の組み合わせを発現するように仕立てることができることを決定的に示している。したがって、本明細書で述べた組成物および方法は、本発明の組成物および使用方法が有効であることを立証した。前述の記載は本発明を説明することを目的としており、制限を意図したものではない。数多くの変型および変更が本発明の範囲および本質から外れることなく実施可能であろう。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｋ 35/26 Ａ６１Ｋ 35/26 Ｃ０７Ｋ 14/705 Ｃ０７Ｋ 14/705 Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ 15/09 ＺＮＡ 5/00 Ｂ // Ａ６１Ｋ 38/00 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ (72)発明者ウィンクヴィストオラアメリカ合衆国カリフォルニア州 92122 サンディエゴチャーマントドライヴ 7597 (72)発明者カールソンラースアメリカ合衆国カリフォルニア州 92037 ラジョラローズモントストリート 554 (72)発明者ジャクソンマイケルアールアメリカ合衆国カリフォルニア州 92014 デルマーヴィアフェリノ 12728 (72)発明者ピーターソンペルエイアメリカ合衆国カリフォルニア州 92067 ランチョーサンタフェピーオーボックス 2323

Claims

【特許請求の範囲】１．ＣＤ４⁺Ｔ細胞の活性化ための合成抗原提示細胞（ＡＰＣ）であって、ａ）ベクター内の第一のプロモーターに機能的に結合した、ＭＨＣクラスIIα 鎖を発現することができるＭＨＣクラスIIα鎖遺伝子、ｂ）ベクター内の第二のプロモーターに機能的に結合した、ＭＨＣクラスIIβ 鎖を発現することができるＭＨＣクラスIIβ鎖遺伝子（ここでα鎖およびβ鎖遺伝子が発現したとき、当該α鎖およびβ鎖は、ペプチドをローディングすることができるＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを形成する）および、ｃ）ベクター内の第三のプロモーターに機能的に結合した、アクセサリー分子を発現することができる少なくとも１つのアクセサリー分子遺伝子を含み、クラスII遺伝子およびアクセサリー分子遺伝子の少なくとも１つを欠いていることを特徴とする細胞。２．当該α鎖およびβ鎖遺伝子がヒト起源である請求項１のＡＰＣ。３．少なくとも１つのプロモーターが誘導性である請求項１のＡＰＣ。４．当該α鎖、β鎖およびアクセサリー分子遺伝子が同じベクターに存在する請求項１のＡＰＣ。５．当該α鎖、β鎖およびアクセサリー分子遺伝子の少なくとも１つが別のベクターに存在する請求項１のＡＰＣ。６．当該ＡＰＣが昆虫細胞である請求項１のＡＰＣ。７．当該昆虫細胞がスポドプテラおよびドロソフィラからなる群から選ばれる請求項６のＡＰＣ。８．さらにベクターに機能的に結合したネオマイシン耐性遺伝子を含む請求項１のＡＰＣ。９.当該アクセサリー分子遺伝子が同時刺激分子をコードする請求項１のＡＰＣ。 10．当該同時刺激分子がＢ７．１またはＢ７．２である請求項９のＡＰＣ。 11．当該アクセサリー分子遺伝子が付着分子をコードする請求項１のＡＰＣ。 12．当該付着分子がＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ−３またはＬＦＡ− ３である請求項１１のＡＰＣ。 13．当該アクセサリー分子遺伝子がサバイバル分子をコードする請求項１のＡＰＣ。 14．当該サバイバル分子がＦａｓリガンドまたはＣＤ７０である請求項１３のＡＰＣ。 15．第一のアクセサリー分子のための遺伝子および第二のアクセサリー分子のための遺伝子を有する請求項１のＡＰＣ。 16．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子である請求項15のＡＰＣ。 17．当該同時刺激分子がＢ７．１またはＢ７．２で、当該付着分子がＩＣＡＭ− １である請求項１６のＡＰＣ。 18．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子がサバイバル分子である請求項15のＡＰＣ。 19．当該第一のアクセサリー分子がサバイバル分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子である請求項15のＡＰＣ。 20．当該サバイバル分子がＣＤ７０で、当該付着分子がＩＣＡＭ−１である請求項19のＡＰＣ。 21．当該第一および第二のアクセサリー分子が同時刺激分子である請求項15のＡＰＣ。 22．当該同時刺激分子がＢ７．１およびＢ７．２である請求項21のＡＰＣ。 23．第一のアクセサリー分子のための遺伝子、第二のアクセサリー分子のための遺伝子および第三のアクセサリー分子のための遺伝子を有する請求項１のＡＰＣ。 24．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子で、当該第三のアクセサリー分子がサバイバル分子である請求項23 のＡＰＣ。 25．当該同時刺激分子がＢ７．２で、当該付着分子がＩＣＡＭ−１で、当該サバイバル分子がＣＤ７０である請求項24のＡＰＣ。 26．当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーおよびアクセサリー分子が、ペプチドが当該ヘテロダイマー上にローディングされるときにＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させるために十分な量で当該ＡＰＣの外側表面に存在する請求項１のＡＰＣ。 27．当該ペプチドが細胞外でローディングされる請求項26のＡＰＣ。 28．当該ペプチドが細胞内でローディングされる請求項26のＡＰＣ。 29．ベクター内の第四のプロモーターに機能的に結合した、抗原プロセシング補助分子を発現することができる抗原プロセシング補助遺伝子をさらに含む請求項１のＡＰＣ。 30．ＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化するために細胞フラグメント上に機能的に結合したＭＨＣクラスIIヘテロダイマーおよび少なくとも１つのアクセサリー分子を有する請求項１のＡＰＣ由来の細胞フラグメント。 31．当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーがエンプティである請求項30の細胞フラグメント。 32．ペプチドが当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマー上にローディングされる請求項30の細胞フラグメント。 33．ＣＤ４＋Ｔ細胞を活性化するための合成抗原提示マトリックスであって、ａ）担体、ｂ）担体に機能的に連結され、さらに選択ペプチドをローディングすることができるＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分、および、ｃ）ペプチドが当該ヘテロダイマーの細胞外部分にローディングされたときにＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させるために十分な数で当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーおよびアクセサリー分子の細胞外部分が当該マトリックス上に存在するように、当該担体に機能的に結合した少なくとも１つのアクセサリー分子の細胞外部分を含むことを特徴とするマトリックス。 34．当該担体が細胞フラグメントである請求項33のマトリックス。 35．当該担体が細胞である請求項33のマトリックス。 36．当該ＭＨＣ分子の細胞外部分が、当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーのトランスメンブレンドメインによって当該細胞に結合している請求項35のマトリックス。 37．当該担体がリポソームである請求項33のマトリックス。 38．当該担体が固体表面である請求項33のマトリックス。 39．当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分が、当該担体に当該部分を連結させるために抗体と反応するエピトープに結合している請求項33のマトリックス。 40．当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分が、当該担体に当該部分が連結させるためにニッケルと反応する（Ｈｉｓ）₆に結合している請求項33のマトリックス。 41．当該担体が多孔性物質である請求項33のマトリックス。 42．当該ペプチドがＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分にローディングされる請求項33のマトリックス。 43．当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分がエンプティである請求項 33のマトリックス。 44．当該アクセサリー分子が同時刺激分子である請求項33のマトリックス。 45．当該同時刺激分子がＢ７．１またはＢ７．２である請求項44のマトリックス。 46．当該アクセサリー分子が付着分子である請求項33のマトリックス。 47．当該付着分子がＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ−３またはLＦＡ− ３である請求項46のマトリックス。 48．当該アクセサリー分子がサバイバル分子である請求項33のマトリックス。 49．当該サバイバル分子がＦａｓリガンドまたはＣＤ７０である請求項48のマトリックス。 50．第一のアクセサリー分子および第二のアクセサリー分子を有する請求項33のマトリックス。 51．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子である請求項50のマトリックス。 52．当該同時刺激分子がＢ７．１またはＢ７．２で、当該付着分子がＩＣＡＭ− １である請求項51のマトリックス。 53．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子がサバイバル分子である請求項50のマトリックス。 54．当該第一のアクセサリー分子がサバイバル分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子である請求項50のマトリックス。 55．当該サバイバル分子がＣＤ７０で、当該付着分子がＩＣＡＭ−１である請求項54のマトリックス。 56．当該第一および第二のアクセサリー分子が同時刺激分子である請求項50のマトリックス。 57．当該同時刺激分子がＢ７．１およびＢ７．２である請求項56のマトリックス。 58．さらに第三のアクセサリー分子を含む請求項50のマトリックス。 59．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子で、当該第三のアクセサリー分子がサバイバル分子である請求項58 のマトリックス。 60．当該同時刺激分子がＢ７．２で、当該付着分子がＩＣＡＭ−１で、当該サバイバル分子がＣＤ７０である請求項59のマトリックス。 61．合成抗原提示細胞（ＡＰＣ）を製造する方法であって、ａ）ベクター内の第一のプロモーターに機能的に結合した、ＭＨＣクラスIIα 鎖を発現することができる発現可能ＭＨＣクラスIIα鎖遺伝子で細胞を形質転換する工程、ｂ）ベクター内の第二のプロモーターに機能的に結合した、ＭＨＣクラスIIβ 鎖を発現することができる発現可能ＭＨＣクラスIIβ鎖遺伝子で細胞を形質転換する工程、および、ｃ）ベクター内の第三のプロモーターに機能的に結合した、アクセサリー分子を発現することができる発現可能なアクセサリー分子遺伝子で細胞を形質転換する工程を特徴とする方法。 62．当該細胞が、当該α鎖、β鎖およびアクセサリー分子遺伝子の少なくとも１つをコードする遺伝子を欠く請求項61の方法。 63．さらに、ベクター内の第四のプロモーターに機能的に結合した、抗原プロセシング補助分子を発現することができる発現可能な抗原プロセシング補助遺伝子で細胞を形質転換する工程を含む請求項61の方法。 64．当該α鎖およびβ鎖遺伝子がヒト起源である請求項61の方法。 65．少なくとも１つのプロモーターが誘導性である請求項61の方法。 66．当該α鎖、β鎖およびアクセサリー分子遺伝子が同じベクターに存在する請求項61の方法。 67．当該α鎖、β鎖およびアクセサリー分子遺伝子が別個のベクターに存在する請求項61の方法。 68．当該細胞が昆虫細胞である請求項61の方法。 69．当該昆虫細胞がスポドプテラおよびドロソフィラからなる群から選ばれる請求項61の方法。 70．さらにベクターに機能的に結合した発現可能なネオマイシン耐性遺伝子で細胞を形質転換する工程を含む請求項61の方法。 71．当該アクセサリー分子遺伝子が同時刺激分子をコードする請求項61の方法。 72．当該同時刺激分子がＢ７．１またはＢ７．２である請求項71の方法。 73．当該アクセサリー分子遺伝子が付着分子をコードする請求項61の方法。 74．当該付着分子がＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ−３またはＬＦＡ− ３である請求項73の方法。 75．当該アクセサリー分子遺伝子がサバイバル分子をコードする請求項61の方法。 76．当該サバイバル分子がＦａｓリガンドまたはＣＤ７０である請求項75の方法。 77．さらに、第二のアクセサリー分子のための遺伝子で細胞を形質転換する工程を含む請求項61の方法。 78．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子である請求項77の方法。 79．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子がサバイバル分子である請求項77の方法。 80．当該第一のアクセサリー分子がサバイバル分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子である請求項77の方法。 81．さらに、第三のアクセサリー分子のための遺伝子で細胞を形質転換する工程を含む請求項77の方法。 82．当該第一のアクセサリー分子が同時刺激分子で、当該第二のアクセサリー分子が付着分子で、当該第三のアクセサリー分子がサバイバル分子である請求項81 の方法。 83．合成抗原提示細胞（ＡＰＣ）を製造する方法であって、ａ）ＭＨＣクラスIIα鎖、ＭＨＣクラスIIβ鎖およびアクセサリー分子の少なくとも１つをコードする遺伝子を欠く細胞を提供する工程、及び、ｂ）当該細胞に欠けている（ａ）の遺伝子の各々のために発現可能であって、当該遺伝子を発現する能力を有するベクター内のプロモーターに機能的に結合した遺伝子で当該細胞を形質転換する工程からなることを特徴とする方法。 84．合成抗原提示細胞（ＡＰＣ）を製造する方法であって、ａ）ＭＨＣクラスＩＩα鎖、ＭＨＣクラスＩIβ鎖、アクセサリー分子および抗原プロセシング補助分子の少なくとも１つをコードする遺伝子を欠く細胞を提供しする工程、及び、ｂ）当該細胞に欠けている（ａ）の遺伝子の各々のために発現可能であって、当該遺伝子を発現する能力を有するベクター内の機能できる第一のプロモーターに結合した遺伝子で当該細胞を形質転換する工程からなることを特徴とする方法。 85．合成抗原提示マトリックスを製造する方法であって、ａ)組換えＭＨＣクラスIIヘテロダイマーの細胞外部分を提供する工程、ｂ）少なくとも１つの組換えアクセサリー分子の細胞外部分を提供する工程、及び、ｃ）ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーにペプチドがローディングされたときにＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させるために十分な数で、担体に当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーおよびアクセサリー分子を結合する工程からなることを特徴とする方法。 86．当該アクセサリー分子が同時刺激分子である請求項85の方法。 87．当該同時刺激分子がＢ７．１またはＢ７．２である請求項86の方法。 88．当該アクセサリー分子が付着分子である請求項86の方法。 89．当該付着分子がＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ−３またはＬＦＡ− ３である請求項88の方法。 90．当該アクセサリー分子がサバイバル分子である請求項85の方法。 91．当該サバイバル分子がＦａｓリガンドまたはＣＤ７０である請求項90の方法。 92．インビトロでＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させる方法であって、ａ）請求項26のＡＰＣを提供する工程、及びｂ）工程ａ）のＡＰＣをＣＤ４⁺Ｔ細胞と接触させ、それによって接触ＣＤ４⁺ Ｔ細胞を増殖させ、さらに活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞に分化させる工程からなることを特徴とする方法。 93．さらに、ｃ）当該ＡＰＣから活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を分離する工程を含む請求項92の方法。 94．さらに、当該活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を許容可能な担体または賦形剤に添加し懸濁物を生成する工程を含む請求項93の方法。 95．さらに、当該懸濁物を患者に投与する工程を含む請求項94の方法。 96．インビトロでＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させる方法であって、ａ）請求項30の細胞フラグメントを提供する工程、ｂ)当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーにペプチドをローディングする工程、および、ｃ）当該ペプチドがローディングした細胞フラグメントをＣＤ４⁺Ｔ細胞と接触させ、それによって当該接触ＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖および活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞への分化を誘発する工程からなるを特徴とする方法。 97．さらに、当該細胞フラグメントから活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を分離する工程を含む請求項96の方法。 98．さらに、当該活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を許容可能な担体または賦形剤に添加し懸濁物を生成する工程を含む請求項97の方法。 99．さらに、当該懸濁物を患者に投与する工程を含む請求項98の方法。 100．インビトロでＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させる方法であって、ａ）請求項33のマトリックスを提供する工程、ｂ)当該ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーにペプチドをローディングする工程、および、ｃ）当該ペプチドをローディングした細胞マトリックスをＣＤ４⁺Ｔ細胞と接触させ、それによって当該接触ＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖および活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞への分化を誘発する工程からなることを特徴とする方法。 101．さらに、当該マトリックスから活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を分離する工程を含む請求項100の方法。 102．さらに、当該活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を許容可能な担体または賦形剤に添加し懸濁物を生成する工程を含む請求項101の方法。 103．さらに、当該懸濁物を患者に投与する工程を含む請求項102の方法。 104．インビトロでＣＤ４⁺Ｔ細胞を活性化させる方法であって、ａ）請求項１のＡＰＣ、請求項30の細胞フラグメントまたは請求項33のマトリックスを十分な量でペプチドライブラリーとインビトロで十分な時間接触させ、ペプチドがローディングしたＭＨＣクラスIIヘテロダイマーを作製する工程、及び、ｂ）工程ｂ）のペプチド積載ＭＨＣクラスIIヘテロダイマーをＣＤ４⁺Ｔ細胞と接触させ、それによって当該接触ＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖および活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞への分化を誘発する工程からなることを特徴とする方法。 105．ＣＤ４⁺Ｔ細胞仲介免疫反応を変化させて患者の症状を治療する方法であって、ａ）患者に固有のサイトカインプロフィールについて患者を分析する工程、ｂ）当該患者からＣＤ４⁺Ｔ細胞を採取する工程、ｃ）当該ＣＤ４⁺Ｔ細胞を請求項２６のＡＰＣと十分な量で十分な時間インビトロで接触させ、それによって当該接触ＣＤ４⁺Ｔ細胞の増殖分裂および、工程ａ）で得られたプロフィールに機能的に対抗するサイトカインプロフィールを産生する活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞への分化を誘発する工程、および、ｄ）当該活性化ＣＤ４⁺Ｔ細胞を当該患者に戻す工程からなることを特徴とする方法。 106．当該症状が自己免疫疾患である請求項105の方法。 107．当該免疫疾患が、糖尿病、多発性硬化症、自己免疫性甲状腺炎、全身性紅斑性狼瘡、重症筋無力症、クローン病および炎症性大腸症候群から成る群から選ばれる請求項106の方法。 108．当該患者に固有のサイトカインプロフィールがＣＤ４⁺Ｔｈ１型応答によって生じる請求項106の方法。 109．当該患者に固有のサイトカインプロフィールが、インターロイキン−２、インターフェロン−γおよび腫瘍壊死因子からなる群から選ばれるサイトカインを含む請求項108の方法。 110．当該症状がアレルギーである請求項105の方法。 111．当該アレルギーが、喘息および接触過敏症からなる群から選ばれる請求項1 10の方法。 112．当該患者に固有のサイトカインプロフィールがＣＤ４⁺Ｔｈ２型応答によって生じる請求項110の方法。 113．当該患者に固有のサイトカインプロフィールが、インターロイキン−４およびインターロイキン−１０からなる群から選ばれるサイトカインを含む請求項 112の方法。