JP2000023680A - 昆虫アセチルコリン受容体サブユニットをコ―ドする核酸 - Google Patents
昆虫アセチルコリン受容体サブユニットをコ―ドする核酸Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/705—Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants
- C07K14/70571—Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants for neuromediators, e.g. serotonin receptor, dopamine receptor
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2217/00—Genetically modified animals
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Abstract
(57)【要約】 (修正有)
【課題】 昆虫アセチルコリン受容体サブユニットをコ
ードする核酸の提供。 【解決手段】 特定な3種類の塩基配列に示される昆虫
アセチルコリン受容体サブユニットをコードする核酸、
その発現手段および対応するポリペプチド及び植物保護
のための新規な有効化合物の発見方法。
ードする核酸の提供。 【解決手段】 特定な3種類の塩基配列に示される昆虫
アセチルコリン受容体サブユニットをコードする核酸、
その発現手段および対応するポリペプチド及び植物保護
のための新規な有効化合物の発見方法。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は特に昆虫アセチルコ
リン受容体サブユニットをコードする核酸に関する。
リン受容体サブユニットをコードする核酸に関する。
【0002】
【従来の技術】ニコチン性アセチルコリン受容体は動物
界で神経伝達において重要なリガンド調節性イオンチャ
ネルである。受容体へのアセチルコリンまたは他のアゴ
ニストの結合によりチャネルは一時的に開口し、そして
陽イオンが通過する。受容体は孔の周りに集まった5個
のサブユニットからなると考えられる。これらのサブユ
ニットの各々は細胞外N末端部分、それに続く3個の膜
貫通領域、細胞内部分、4番目の膜貫通領域及び短い細
胞外C末端部分からなるタンパク質である(Chang
eux等、1992)。
界で神経伝達において重要なリガンド調節性イオンチャ
ネルである。受容体へのアセチルコリンまたは他のアゴ
ニストの結合によりチャネルは一時的に開口し、そして
陽イオンが通過する。受容体は孔の周りに集まった5個
のサブユニットからなると考えられる。これらのサブユ
ニットの各々は細胞外N末端部分、それに続く3個の膜
貫通領域、細胞内部分、4番目の膜貫通領域及び短い細
胞外C末端部分からなるタンパク質である(Chang
eux等、1992)。
【0003】アセチルコリン受容体は脊椎動物において
特によく調べられている。これに関連して、3つの群を
それらの解剖学的位置及びそれらの機能特性(チャネル
の導電性(conducting propertie
s)、脱感作、並びにアゴニスト及びアンタゴニスト並
びにα−ブンガロトキシンのような毒素に対する感受
性)に基づいて分類することができる。その分類は受容
体の分子組成と相関する。筋肉に見いだされるサブユニ
ット組成α2βγδを有するヘテロオリゴマー受容体
(Noda等、1982、Claudio等、198
3、Devillers−Thiery等、1983、
Noda等、1983a、b)、α2−α6及びβ2−
β4群からのサブユニットを含有し、神経系に見いださ
れるヘテロオリゴマー受容体(Wada等、1988、
Schoepfer等、1990、Cockcroft
等、1991、Heinemann等、1997)並び
にα7−α9群からのサブユニットを含有し、同様に神
経系に見いだされるホモオリゴマー受容体(Linds
trom等、1997、Elgoyhen等、199
7)がある。また、この分類は異なるサブユニットの遺
伝子配列の相関性の試験によっても裏付けられる。典型
的に、異なる種からの機能的に相同なサブユニットの配
列は異なる群からであるが同じ種からのサブユニットの
配列より相互に類似している。従って、例えば、ラット
筋肉αサブユニットはシビレエイ トルペド・カリフォ
ルニカ(Torpedo californica)の
ものと78%のアミノ酸同一性及び84%のアミノ酸類
似性を示すが、ラットα2サブユニット(ヘテロオリゴ
マー、神経型)と48%の同一性及び59%の類似性、
そしてラットα7サブユニット(ホモオリゴマー、神経
型)と36%の同一性及び45%の類似性を示すだけで
ある。さらに、全ての既知のアセチルコリン受容体サブ
ユニットの遺伝子配列は相互にだけでなくいくつかの他
のリガンド調節性イオンチャネル(例えば、5HT3型
のセロトニン受容体、GABA調節性塩素イオンチャネ
ル及びグリシン調節性塩素イオンチャネル)のものにも
ある程度類似している。従って、全てのこれらの受容体
は1つの共通の前駆体に由来し、そしてそれらは1つの
超遺伝子ファミリーに分類されると考えられる(Ort
ells等、1995)。
特によく調べられている。これに関連して、3つの群を
それらの解剖学的位置及びそれらの機能特性(チャネル
の導電性(conducting propertie
s)、脱感作、並びにアゴニスト及びアンタゴニスト並
びにα−ブンガロトキシンのような毒素に対する感受
性)に基づいて分類することができる。その分類は受容
体の分子組成と相関する。筋肉に見いだされるサブユニ
ット組成α2βγδを有するヘテロオリゴマー受容体
(Noda等、1982、Claudio等、198
3、Devillers−Thiery等、1983、
Noda等、1983a、b)、α2−α6及びβ2−
β4群からのサブユニットを含有し、神経系に見いださ
れるヘテロオリゴマー受容体(Wada等、1988、
Schoepfer等、1990、Cockcroft
等、1991、Heinemann等、1997)並び
にα7−α9群からのサブユニットを含有し、同様に神
経系に見いだされるホモオリゴマー受容体(Linds
trom等、1997、Elgoyhen等、199
7)がある。また、この分類は異なるサブユニットの遺
伝子配列の相関性の試験によっても裏付けられる。典型
的に、異なる種からの機能的に相同なサブユニットの配
列は異なる群からであるが同じ種からのサブユニットの
配列より相互に類似している。従って、例えば、ラット
筋肉αサブユニットはシビレエイ トルペド・カリフォ
ルニカ(Torpedo californica)の
ものと78%のアミノ酸同一性及び84%のアミノ酸類
似性を示すが、ラットα2サブユニット(ヘテロオリゴ
マー、神経型)と48%の同一性及び59%の類似性、
そしてラットα7サブユニット(ホモオリゴマー、神経
型)と36%の同一性及び45%の類似性を示すだけで
ある。さらに、全ての既知のアセチルコリン受容体サブ
ユニットの遺伝子配列は相互にだけでなくいくつかの他
のリガンド調節性イオンチャネル(例えば、5HT3型
のセロトニン受容体、GABA調節性塩素イオンチャネ
ル及びグリシン調節性塩素イオンチャネル)のものにも
ある程度類似している。従って、全てのこれらの受容体
は1つの共通の前駆体に由来し、そしてそれらは1つの
超遺伝子ファミリーに分類されると考えられる(Ort
ells等、1995)。
【0004】昆虫では、アセチルコリンは中枢神経系の
最も重要な興奮性神経伝達物質である。従って、昆虫の
中枢神経系神経節の調製物においてアセチルコリン受容
体を電気生理学的に検出することができる。受容体はシ
ナプス後及びシナプス前神経終末並びに介在ニューロ
ン、運動ニューロン及び調節(modulatory)
ニューロンの細胞体の両方で検出される(Breer
等、1987、Buckingham等、1997)。
受容体のあるものはα−ブンガロトキシンにより阻害さ
れ、一方、あるものは反応しない(Schloβ等、1
988)。さらに、アセチルコリン受容体は重要な天然
(例えば、ニコチン)及び合成の殺虫剤(例えば、クロ
ロニコチニル)の攻撃の分子地点である。
最も重要な興奮性神経伝達物質である。従って、昆虫の
中枢神経系神経節の調製物においてアセチルコリン受容
体を電気生理学的に検出することができる。受容体はシ
ナプス後及びシナプス前神経終末並びに介在ニューロ
ン、運動ニューロン及び調節(modulatory)
ニューロンの細胞体の両方で検出される(Breer
等、1987、Buckingham等、1997)。
受容体のあるものはα−ブンガロトキシンにより阻害さ
れ、一方、あるものは反応しない(Schloβ等、1
988)。さらに、アセチルコリン受容体は重要な天然
(例えば、ニコチン)及び合成の殺虫剤(例えば、クロ
ロニコチニル)の攻撃の分子地点である。
【0005】多数の昆虫のニコチン性アセチルコリン受
容体の遺伝子配列がすでに知られている。例えば、ドロ
ソフィラ・メラノガスタでは5個の異なるサブユニット
の配列が記述されており(Bossy等、1988、H
ermanns−Borgmeyer等、1986、S
awruk等、1990a、1990b、Schulz
等、未公開、EMBL受託番号Y15593)、一方、
ロクスタ・ミグラトリア(Locusta migra
toria)では同様に5個が記述されており(Ste
tzer等、未公開、EMBL受託番号AJ00039
0−AJ000393)、シストセルカ・グレガリア
(Schistocerca gregaria)では
1個が記述されており(Marshall等、199
0)、ミズス・ペルシカエ(Myzus Persic
ae)では2個が記述されており(Sgard等、未公
開、EMBL受託番号X81887及びX8188
8)、そしてマンズカ・セクスタ(Manduca s
exta)では1個が記述されている(Eastham
等、1997)。さらに、ドロソフィラ・メラノガスタ
からの多数の部分遺伝子配列がいわゆる発現配列タグ
(expressed sequence tag)と
して特性化されている(ジーンバンク(Genban
k)受託番号AA540687、AA698155、A
A697710、AA697326)。個々の配列が他
の昆虫からのものに非常に似ているということから、こ
れらのサブユニットが機能的相同物であることが示唆さ
れる。
容体の遺伝子配列がすでに知られている。例えば、ドロ
ソフィラ・メラノガスタでは5個の異なるサブユニット
の配列が記述されており(Bossy等、1988、H
ermanns−Borgmeyer等、1986、S
awruk等、1990a、1990b、Schulz
等、未公開、EMBL受託番号Y15593)、一方、
ロクスタ・ミグラトリア(Locusta migra
toria)では同様に5個が記述されており(Ste
tzer等、未公開、EMBL受託番号AJ00039
0−AJ000393)、シストセルカ・グレガリア
(Schistocerca gregaria)では
1個が記述されており(Marshall等、199
0)、ミズス・ペルシカエ(Myzus Persic
ae)では2個が記述されており(Sgard等、未公
開、EMBL受託番号X81887及びX8188
8)、そしてマンズカ・セクスタ(Manduca s
exta)では1個が記述されている(Eastham
等、1997)。さらに、ドロソフィラ・メラノガスタ
からの多数の部分遺伝子配列がいわゆる発現配列タグ
(expressed sequence tag)と
して特性化されている(ジーンバンク(Genban
k)受託番号AA540687、AA698155、A
A697710、AA697326)。個々の配列が他
の昆虫からのものに非常に似ているということから、こ
れらのサブユニットが機能的相同物であることが示唆さ
れる。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】例えば、新規な殺虫剤
を探索する目的のために、新規な昆虫アセチルコリン受
容体サブユニットを利用できるようにすることは非常に
実用的に重要であり、機能的相同物間の場合より既知の
サブユニットと大きく異なるサブユニットが特に目的の
ものである。
を探索する目的のために、新規な昆虫アセチルコリン受
容体サブユニットを利用できるようにすることは非常に
実用的に重要であり、機能的相同物間の場合より既知の
サブユニットと大きく異なるサブユニットが特に目的の
ものである。
【0007】
【課題を解決するための手段】従って、本発明は特に新
規な昆虫アセチルコリン受容体サブユニットをコードす
る核酸を利用できるようにするという目的に基づく。
規な昆虫アセチルコリン受容体サブユニットをコードす
る核酸を利用できるようにするという目的に基づく。
【0008】この目的は(a)配列番号1、配列番号3
または配列番号5の配列、(b)(a)に定義された配
列の少なくとも14塩基対の長さの部分配列、(c)6
0℃で2 x SSC中、好ましくは60℃で0.5x
SSC中、特に好ましくは60℃で0.2 x SSC中
で(a)に定義された配列にハイブリダイズする配列
(Sambrook等、1989)、(d)配列番号1
の場合の位置1295ないし位置2195の間、または
配列番号3の場合の位置432ないし位置1318の
間、または配列番号5の場合の位置154ないし位置1
123の間で、(a)に定義された配列と少なくとも7
0%の同一性を示す配列、(e)(a)に定義された配
列に相補的な配列、及び(f)遺伝暗号の縮重のため
に、(a)ないし(d)に定義された配列と同じアミノ
酸配列をコードする配列から選択される配列を含んでな
る核酸を提供することにより達成される。
または配列番号5の配列、(b)(a)に定義された配
列の少なくとも14塩基対の長さの部分配列、(c)6
0℃で2 x SSC中、好ましくは60℃で0.5x
SSC中、特に好ましくは60℃で0.2 x SSC中
で(a)に定義された配列にハイブリダイズする配列
(Sambrook等、1989)、(d)配列番号1
の場合の位置1295ないし位置2195の間、または
配列番号3の場合の位置432ないし位置1318の
間、または配列番号5の場合の位置154ないし位置1
123の間で、(a)に定義された配列と少なくとも7
0%の同一性を示す配列、(e)(a)に定義された配
列に相補的な配列、及び(f)遺伝暗号の縮重のため
に、(a)ないし(d)に定義された配列と同じアミノ
酸配列をコードする配列から選択される配列を含んでな
る核酸を提供することにより達成される。
【0009】好ましくは標準設定でGCGプログラムパ
ッケージ、バージョン9.1からのGAPプログラムを
用いて核酸配列の同一性の程度を決定する(Dever
eux等、1984)。
ッケージ、バージョン9.1からのGAPプログラムを
用いて核酸配列の同一性の程度を決定する(Dever
eux等、1984)。
【0010】本発明は昆虫が特にホモオリゴマーアセチ
ルコリン受容体のサブユニットをコードする遺伝子を保
有するという驚くべき発見に基づく。
ルコリン受容体のサブユニットをコードする遺伝子を保
有するという驚くべき発見に基づく。
【0011】本発明はさらに新規な核酸の少なくとも1
つを含有するベクターに関する。分子生物学研究所にお
いて用いられる全てのプラスミド、ファスミド、コスミ
ド、YACまたは人工染色体をベクターとして用いるこ
とができる。新規な核酸を発現させる目的のためにこれ
らのベクターを通常の調節配列に連結することができ
る。そのような調節配列の選択は発現のために原核もし
くは真核細胞、または無細胞系のいずれを用いるかによ
る。SV40、アデノウイルスまたはサイトメガロウイ
ルス初期または後期プロモーター、lac系、trp
系、ラムダファージの主要なオペレーター及びプロモー
ター領域、fd外被タンパク質の制御領域、3−ホスホ
グリセリン酸キナーゼプロモーター、酸性ホスファター
ゼプロモーター並びに酵母α−接合因子プロモーターは
特に好ましい発現制御配列の例である。
つを含有するベクターに関する。分子生物学研究所にお
いて用いられる全てのプラスミド、ファスミド、コスミ
ド、YACまたは人工染色体をベクターとして用いるこ
とができる。新規な核酸を発現させる目的のためにこれ
らのベクターを通常の調節配列に連結することができ
る。そのような調節配列の選択は発現のために原核もし
くは真核細胞、または無細胞系のいずれを用いるかによ
る。SV40、アデノウイルスまたはサイトメガロウイ
ルス初期または後期プロモーター、lac系、trp
系、ラムダファージの主要なオペレーター及びプロモー
ター領域、fd外被タンパク質の制御領域、3−ホスホ
グリセリン酸キナーゼプロモーター、酸性ホスファター
ゼプロモーター並びに酵母α−接合因子プロモーターは
特に好ましい発現制御配列の例である。
【0012】発現させるために、本発明の核酸を適当な
宿主細胞中に導入することができる。原核細胞、好まし
くはエシェリキア・コリ、及び真核細胞、好ましくは哺
乳類または昆虫細胞は宿主細胞としての使用のために適
当である。適当な単細胞宿主細胞の他の例は:シュード
モナス、バシラス、ストレプトミセス、酵母、HEK−
293、シュナイダーS2、CHO、COS1及びCO
S7細胞、細胞培養の植物細胞並びに両生類細胞、特に
卵母細胞である。
宿主細胞中に導入することができる。原核細胞、好まし
くはエシェリキア・コリ、及び真核細胞、好ましくは哺
乳類または昆虫細胞は宿主細胞としての使用のために適
当である。適当な単細胞宿主細胞の他の例は:シュード
モナス、バシラス、ストレプトミセス、酵母、HEK−
293、シュナイダーS2、CHO、COS1及びCO
S7細胞、細胞培養の植物細胞並びに両生類細胞、特に
卵母細胞である。
【0013】本発明は本発明の核酸によりコードされる
ポリペプチド及びそれらから合成されるアセチルコリン
受容体、好ましくはホモオリゴマーアセチルコリン受容
体にも関する。
ポリペプチド及びそれらから合成されるアセチルコリン
受容体、好ましくはホモオリゴマーアセチルコリン受容
体にも関する。
【0014】本発明の核酸によりコードされるポリペプ
チドを製造するために、本発明の核酸の少なくとも1つ
を含有する宿主細胞を適当な条件下で培養することがで
きる。その後、常法で細胞または培養培地から所望する
ポリペプチドを単離することができる。
チドを製造するために、本発明の核酸の少なくとも1つ
を含有する宿主細胞を適当な条件下で培養することがで
きる。その後、常法で細胞または培養培地から所望する
ポリペプチドを単離することができる。
【0015】本発明はさらに上記のポリペプチドまたは
受容体に特異的に結合する抗体に関する。これらの抗体
を常法で調製する。例えば、抗体を生産するために有効
な本発明のアセチルコリン受容体ポリペプチドまたはそ
のフラグメントの量を実質的に免疫適格の宿主に注入
し、続いてこれらの抗体を単離することによりそのよう
な抗体を製造することができる。さらに、モノクローナ
ル抗体を生産する不死化された細胞系をそれ自体既知の
方法で得ることができる。必要な場合、抗体を検出試薬
で標識することができる。そのような検出試薬の好まし
い例は酵素、放射性標識された元素、蛍光化学薬品また
はビオチンである。完全な抗体の代わりに、所望する特
異的結合特性を保有するフラグメントを用いることもで
きる。
受容体に特異的に結合する抗体に関する。これらの抗体
を常法で調製する。例えば、抗体を生産するために有効
な本発明のアセチルコリン受容体ポリペプチドまたはそ
のフラグメントの量を実質的に免疫適格の宿主に注入
し、続いてこれらの抗体を単離することによりそのよう
な抗体を製造することができる。さらに、モノクローナ
ル抗体を生産する不死化された細胞系をそれ自体既知の
方法で得ることができる。必要な場合、抗体を検出試薬
で標識することができる。そのような検出試薬の好まし
い例は酵素、放射性標識された元素、蛍光化学薬品また
はビオチンである。完全な抗体の代わりに、所望する特
異的結合特性を保有するフラグメントを用いることもで
きる。
【0016】本発明の核酸を特にトランスジェニック無
脊椎動物を作製するために用いることができる。これら
の後者を野生型のものと異なる本発明の受容体またはそ
れらの変異体の発現に基づく試験系に用いることができ
る。さらに、これは本発明の受容体またはそれらの変異
体の発現の変化が他の遺伝子または遺伝子制御配列(プ
ロモーター)を改変した結果として起こる全てのトラン
スジェニック無脊椎動物を含む。
脊椎動物を作製するために用いることができる。これら
の後者を野生型のものと異なる本発明の受容体またはそ
れらの変異体の発現に基づく試験系に用いることができ
る。さらに、これは本発明の受容体またはそれらの変異
体の発現の変化が他の遺伝子または遺伝子制御配列(プ
ロモーター)を改変した結果として起こる全てのトラン
スジェニック無脊椎動物を含む。
【0017】例えば、ドロソフィラ・メラノガスタにお
いてP因子による遺伝子導入(Hay等、1997)を
用いるかまたはセノラブディティス・エレガンスにおい
てトランスポゾンによる遺伝子導入(例えば、Tc1を
用いて、Plasterk、1996)を用いるかによ
りトランスジェニック無脊椎動物を作製する。
いてP因子による遺伝子導入(Hay等、1997)を
用いるかまたはセノラブディティス・エレガンスにおい
てトランスポゾンによる遺伝子導入(例えば、Tc1を
用いて、Plasterk、1996)を用いるかによ
りトランスジェニック無脊椎動物を作製する。
【0018】従って、本発明は本発明の核酸配列の少な
くとも1つを含有するトランスジェニック無脊椎動物、
好ましくは種ドロソフィラ・メラノガスタまたはセノラ
ブディティス・エレガンスのトランスジェニック無脊椎
動物、及びそれらのトランスジェニック子孫にも関す
る。好ましくは、トランスジェニック無脊椎動物は野生
型のものと異なる形態の本発明の受容体を含有する。
くとも1つを含有するトランスジェニック無脊椎動物、
好ましくは種ドロソフィラ・メラノガスタまたはセノラ
ブディティス・エレガンスのトランスジェニック無脊椎
動物、及びそれらのトランスジェニック子孫にも関す
る。好ましくは、トランスジェニック無脊椎動物は野生
型のものと異なる形態の本発明の受容体を含有する。
【0019】本発明の核酸を常法で調製することができ
る。例えば、核酸分子を完全に化学的に合成することが
できる。さらに、本発明の配列の短いセグメントのみを
化学的に合成することができ、そしてこれらのオリゴヌ
クレオチドを放射性または蛍光色素で標識することがで
きる。昆虫のmRNAから調製されたcDNAライブラ
リーをスクリーニングするために標識オリゴヌクレオチ
ドを用いることができる。問題のDNAを単離するため
に標識オリゴヌクレオチドにハイブリダイズするクロー
ン(「陽性クローン」)を選択する。単離されたDNA
を特性化した後、本発明の核酸が容易に得られる。
る。例えば、核酸分子を完全に化学的に合成することが
できる。さらに、本発明の配列の短いセグメントのみを
化学的に合成することができ、そしてこれらのオリゴヌ
クレオチドを放射性または蛍光色素で標識することがで
きる。昆虫のmRNAから調製されたcDNAライブラ
リーをスクリーニングするために標識オリゴヌクレオチ
ドを用いることができる。問題のDNAを単離するため
に標識オリゴヌクレオチドにハイブリダイズするクロー
ン(「陽性クローン」)を選択する。単離されたDNA
を特性化した後、本発明の核酸が容易に得られる。
【0020】また、化学的に合成されたオリゴヌクレオ
チドを用いてPCR法により本発明の核酸を調製するこ
ともできる。
チドを用いてPCR法により本発明の核酸を調製するこ
ともできる。
【0021】コーディング領域に隣接して生来存在する
調節領域を単離及び特性化するために本発明の核酸を用
いることができる。従って、本発明はこれらの調節領域
にも関する。
調節領域を単離及び特性化するために本発明の核酸を用
いることができる。従って、本発明はこれらの調節領域
にも関する。
【0022】モジュレーターとして、特にアゴニストま
たはアンタゴニストとして本発明のアセチルコリン受容
体の導電性を変える化合物のような、植物保護のための
新規な有効化合物を同定するために本発明の核酸を用い
ることができる。このために、本発明の少なくとも1つ
の核酸を包含する組み換えDNA分子を適当な宿主細胞
中に導入する。本発明の受容体の発現を可能にする条件
下で、化合物または多数の化合物を含んでなるサンプル
の存在下で宿主細胞を培養する。以下の実施例2に記述
したように、受容体特性の変化を検出することができ
る。この方法を用いて、殺虫剤物質を見いだすことが可
能である。
たはアンタゴニストとして本発明のアセチルコリン受容
体の導電性を変える化合物のような、植物保護のための
新規な有効化合物を同定するために本発明の核酸を用い
ることができる。このために、本発明の少なくとも1つ
の核酸を包含する組み換えDNA分子を適当な宿主細胞
中に導入する。本発明の受容体の発現を可能にする条件
下で、化合物または多数の化合物を含んでなるサンプル
の存在下で宿主細胞を培養する。以下の実施例2に記述
したように、受容体特性の変化を検出することができ
る。この方法を用いて、殺虫剤物質を見いだすことが可
能である。
【0023】本発明の核酸は本発明の受容体に結合する
化合物を見いだすことも可能にする。これらの化合物を
同様に植物に対する殺虫剤として用いることができる。
例えば、本発明の核酸配列を含有し、そして対応する受
容体もしくはポリペプチドを発現する宿主細胞または遺
伝子産物自体を宿主細胞、受容体または個々のポリペプ
チドと少なくとも1つの化合物の相互作用を可能にする
条件下で化合物または化合物の混合物と接触させる。
化合物を見いだすことも可能にする。これらの化合物を
同様に植物に対する殺虫剤として用いることができる。
例えば、本発明の核酸配列を含有し、そして対応する受
容体もしくはポリペプチドを発現する宿主細胞または遺
伝子産物自体を宿主細胞、受容体または個々のポリペプ
チドと少なくとも1つの化合物の相互作用を可能にする
条件下で化合物または化合物の混合物と接触させる。
【0024】また、受容体の発現を変える物質を見いだ
すためにも、本発明の核酸を含有する宿主細胞またはト
ランスジェニック無脊椎動物を用いることができる。
すためにも、本発明の核酸を含有する宿主細胞またはト
ランスジェニック無脊椎動物を用いることができる。
【0025】上記の本発明の核酸、ベクター及び調節領
域をさらに昆虫において機能的に類似したアセチルコリ
ン受容体の合成に関与するポリペプチドをコードする遺
伝子を見いだすために用いることができる。本発明で
は、機能的に類似した受容体はアミノ酸配列は本公開に
記述されるポリペプチドと異なるが本質的に同じ機能を
保有するポリペプチドを包含する受容体であると理解さ
れる。配列表及び図面の説明 :配列番号1は位置1で始まり、
位置2886で終わる、単離されたDa7 cDNAの
ヌクレオチド配列を示す。配列番号1及び配列番号2は
Da7 cDNA配列から推定されるタンパク質のアミ
ノ酸配列も示す。
域をさらに昆虫において機能的に類似したアセチルコリ
ン受容体の合成に関与するポリペプチドをコードする遺
伝子を見いだすために用いることができる。本発明で
は、機能的に類似した受容体はアミノ酸配列は本公開に
記述されるポリペプチドと異なるが本質的に同じ機能を
保有するポリペプチドを包含する受容体であると理解さ
れる。配列表及び図面の説明 :配列番号1は位置1で始まり、
位置2886で終わる、単離されたDa7 cDNAの
ヌクレオチド配列を示す。配列番号1及び配列番号2は
Da7 cDNA配列から推定されるタンパク質のアミ
ノ酸配列も示す。
【0026】配列番号3は位置1で始まり、位置370
0で終わる、単離されたHva7−1 cDNAのヌク
レオチド配列を示す。配列番号3及び配列番号4はHv
a7−1 cDNA配列から推定されるタンパク質のア
ミノ酸配列も示す。
0で終わる、単離されたHva7−1 cDNAのヌク
レオチド配列を示す。配列番号3及び配列番号4はHv
a7−1 cDNA配列から推定されるタンパク質のア
ミノ酸配列も示す。
【0027】配列番号5は位置1で始まり、位置310
9で終わる、単離されたHva7−2 cDNAのヌク
レオチド配列を示す。配列番号5及び配列番号6はHv
a7−2 cDNA配列から推定されるタンパク質のア
ミノ酸配列も示す。
9で終わる、単離されたHva7−2 cDNAのヌク
レオチド配列を示す。配列番号5及び配列番号6はHv
a7−2 cDNA配列から推定されるタンパク質のア
ミノ酸配列も示す。
【0028】図1はニコチンの添加後に実施例2に記述
したように組み換えで改変されている細胞中で起こる細
胞内カルシウムの増加を示す。細胞にFura−2−ア
セトキシメチルエステル(1%ウシ血清アルブミン及び
5mM塩化カルシウムを含有する無血清最小必須培地中
5−10μM)を添加し、N−(2−ヒドロキシエチ
ル)ピペラジン−N’−(2−エタンスルホン酸)(5
mM HEPES)緩衝Tyrode溶液で洗浄し、3
40nm及び380nmの波長の光で蛍光顕微鏡(Ni
kon Diaphot)下で交互に照射した。測定点
は2つの波長でのビデオ画像対に対応する(画像当たり
の露出時間、100ms)。2つの測定点の間の時間間
隔は3秒である。8画像を取った後(測定点4.0)、
ニコチンを500μMの最終濃度まで添加し、測定シリ
ーズを続けた。380nmの波長の光を照射した場合の
細胞の蛍光強度を対応する340nmでの強度で割り、
それにより比率を得る。
したように組み換えで改変されている細胞中で起こる細
胞内カルシウムの増加を示す。細胞にFura−2−ア
セトキシメチルエステル(1%ウシ血清アルブミン及び
5mM塩化カルシウムを含有する無血清最小必須培地中
5−10μM)を添加し、N−(2−ヒドロキシエチ
ル)ピペラジン−N’−(2−エタンスルホン酸)(5
mM HEPES)緩衝Tyrode溶液で洗浄し、3
40nm及び380nmの波長の光で蛍光顕微鏡(Ni
kon Diaphot)下で交互に照射した。測定点
は2つの波長でのビデオ画像対に対応する(画像当たり
の露出時間、100ms)。2つの測定点の間の時間間
隔は3秒である。8画像を取った後(測定点4.0)、
ニコチンを500μMの最終濃度まで添加し、測定シリ
ーズを続けた。380nmの波長の光を照射した場合の
細胞の蛍光強度を対応する340nmでの強度で割り、
それにより比率を得る。
【0029】
【実施例】実施例1 記述されるポリヌクレオチド配列の単離 組み換えDNA技術の標準法を用いてポリヌクレオチド
を操作した(Sambrook、等、1989)。GC
Gプログラムパッケージバージョン9.1(GCG G
enetics Computer Group,In
c.、Madison Wisconsin、USA)
を用いてヌクレオチド及びタンパク質配列の生物情報科
学処理を実施した。 部分ポリヌクレオチド配列 ホモオリゴマーアセチルコリン受容体を形成する能力が
知られている遺伝子からのタンパク質配列のコドンを逆
翻訳することにより縮重オリゴヌクレオチドを推定する
領域を同定するために配列比較(「Clustal
w」)を用いた。全部で、5つのそのようなオリゴヌク
レオチド対をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)のために
選択した。1つの組み合わせのみ(以下参照)がヘリオ
チス(Heliothis)cDNA及びドロソフィラ
cDNAの両方から生成物を生じた。
を操作した(Sambrook、等、1989)。GC
Gプログラムパッケージバージョン9.1(GCG G
enetics Computer Group,In
c.、Madison Wisconsin、USA)
を用いてヌクレオチド及びタンパク質配列の生物情報科
学処理を実施した。 部分ポリヌクレオチド配列 ホモオリゴマーアセチルコリン受容体を形成する能力が
知られている遺伝子からのタンパク質配列のコドンを逆
翻訳することにより縮重オリゴヌクレオチドを推定する
領域を同定するために配列比較(「Clustal
w」)を用いた。全部で、5つのそのようなオリゴヌク
レオチド対をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)のために
選択した。1つの組み合わせのみ(以下参照)がヘリオ
チス(Heliothis)cDNA及びドロソフィラ
cDNAの両方から生成物を生じた。
【0030】トリゾール(Trizol)試薬(Gib
co BRL、製造業者の使用説明書に従って)を用い
て全ヘリオチス・ビレッセンス(Heliothis
virescens)胚(孵化直前)からRNAを単離
した。同じ方法をドロソフィラ胚(25℃で24時間)
に採用した。これらのRNAの10μgを第一cDNA
鎖合成に用いた(第一cDNA鎖合成のためのスーパー
スクリプト前増幅システム(Superscript
Pre−amplification Sytem f
or first cDNA strand synt
hesis)、Gibco BRL、製造業者の使用説
明書に従って、反応温度45℃)。
co BRL、製造業者の使用説明書に従って)を用い
て全ヘリオチス・ビレッセンス(Heliothis
virescens)胚(孵化直前)からRNAを単離
した。同じ方法をドロソフィラ胚(25℃で24時間)
に採用した。これらのRNAの10μgを第一cDNA
鎖合成に用いた(第一cDNA鎖合成のためのスーパー
スクリプト前増幅システム(Superscript
Pre−amplification Sytem f
or first cDNA strand synt
hesis)、Gibco BRL、製造業者の使用説
明書に従って、反応温度45℃)。
【0031】続いて、オリゴヌクレオチドα7−1s:
(5’−GAYGTIGAYGARAARAAYCA−
3’)及びα7−2a:(5’−CYYTCRTCIG
CRCTRTTRTA−3’)を用いたポリメラーゼ連
鎖反応(PCR)に上記の第一鎖cDNAの1/100
を各場合で用いた(組み換えTaq DNAポリメラー
ゼ、Gibco BRL)。PCRパラメーターは以下
の通りであった:Hva7−1及びHva7−2:94
℃、2分;35回(94℃、45秒;50℃、30秒;
72℃、60秒)並びにDa7:96℃、2分;35回
(96℃、45秒;50℃、30秒;72℃、60
秒)。各場合で、これはドロソフィラcDNAの場合及
びヘリオチスcDNAの場合の両方でアガロースゲル
(1%)において約0.2kbの検出できるバンドをも
たらした。DNAフラグメントをSrfScript
(Stratagene)を用いてサブクローン化し、
そしてそれらの配列を決定した後、2つの異なるDNA
フラグメントがヘリオチスcDNAから増幅されている
ことが分かり;これらは228−11=Hva7−1
(部分的、165bpを含有する)及び228−8=H
va7−2(部分的、171bpを含有する)であっ
た。ドロソフィラcDNAからは1つのDNAフラグメ
ントのみが単離され;これは248−5=Da7(部分
的、150bpを含有する)であった。 ヘリオチス・ビレッセンス組織からのポリA含有RNA
の単離及びcDNAライブラリーの構築 トリゾール試薬(Gibco BRL、製造業者の使用
説明書に従って)を用いて全ヘリオチス・ビレッセンス
胚(孵化直前)からcDNAライブラリーIのためのR
NAを単離した。トリゾール試薬(Gibco BR
L、製造業者の使用説明書に従って)を用いて500匹
のヘリオチス・ビレッセンス幼虫(段階4−5)からの
全頭神経節からcDNAライブラリーIIのためのRNA
を単離した。次に、Dynaビーズ280(Dyna
l)で精製することによりこれらのRNAからポリA含
有RNAを単離した。続いて、これらのポリA含有RN
Aの5μgをλ−ZAPE発現ベクターを用いたcDN
AライブラリーI及びIIの構築に用いた(cDNA合成
キット、ZAP−cDNA合成キット及びZAP−cD
NA Gigapack III Goldクローニンキッ
ト、全てStratageneから)。製造業者の使用
説明書と異なり、45℃の合成温度でcDNAを合成す
るためにSuperscript逆転写酵素(Gibc
o BRL)を用いた。さらに、放射性標識されたデオ
キシヌクレオシド三リン酸を添加しなかった。さらに、
合成されたcDNAをキット中に含まれるゲル濾過媒質
を通してではなく代わりにSize Sep 400
Spunカラム(Pharmacia)を通して分画し
た。 完全なポリヌクレオチド配列 Hva7−1クローンを単離する場合の一次スクリーニ
ングラウンドは別として、全てのスクリーニングをDI
G系を用いて実施した(BoehringerMann
heimからの全ての試薬及び消耗品、「The DI
G System User’s Guide for
Filter Hybridization」中の使
用説明書に従って、Boehringer Mannh
eim)。用いるDNAプローブをジゴキシゲニンで標
識されたdUTPを用いてPCRにより調製した。ハイ
ブリダイゼーションをDIG Easy Hyb(Bo
ehringer Mannheim)中で42℃で一
晩実施した。標識されたDNAをX線フィルム(Hyp
erfilm MP、Amersham)を用いて化学
発光(CDP−Star、Boehringer Ma
nnheim)によりナイロン膜上に検出した。単離さ
れた遺伝子ライブラリープラスミドの最初の部分シーク
エンシングをT3及びT7プライマーを用いて同定目的
のために実施した(ABIプリズム色素ターミネーター
サイクルシークエンシングキット(ABI Prism
Dye Terminator Cycle Seq
uencing Kit)、ABI、ABI Pris
m 310遺伝子分析器(Genetic Analy
zer)を用いる)。サイクルシークエンシングを用い
たプライマー歩行により、Qiagen、Hilden
により実施された委託シークエンシングとして、Hva
7−1、Hva7−2及びDa7の完全なポリヌクレオ
チド配列を決定した。 a.Da7クローンの単離 λファージ中のドロソフィラ・メラノガスタcDNAラ
イブラリーからの10 6個のファージ(Canton−
S胚、2−14時間、Uni−ZAP XRベクター
中、Stratagene)をDIGで標識された24
8−5をプローブとして用いてスクリーニングした(製
造業者(Stratagene)の使用説明書に従っ
て)。フィルターを洗浄する場合の最高のストリンジェ
ンシーは0.2x SSC;0.1% SDS;42℃;
2 x 15分であった。1個のクローン(クローン43
2−1)が単離され、そのインサートは2940bpの
大きさであった(Da7、配列番号1)。この配列の最
も大きいオープンリーディングフレームは示される配列
の位置372で始まり、位置1822で終わる。これか
ら推定される770アミノ酸のポリペプチド(配列番号
2)は87.01kDの計算分子量を有する。 a.Hva7−1クローンの単離 ヘリオチス・ビレッセンス胚cDNAライブラリー(ラ
イブラリーI)からの106個のファージがスクリーニ
ングに含まれた。3回のスクリーニングの1回目をα−
32Pで標識された228−11 DNAをプローブとし
て用いて実施した。Quick−hyb(Strata
gene)中68℃で1時間プローブをフィルターにハ
イブリダイズさせた。次に、フィルターを2 x SS
C;0.1% SDS中室温で2回各15分間、そして
0.1 x SSC;0.1% SDS中42℃で2回各
30分間洗浄した。ハイブリダイズしたプローブをXR
X線フィルム(Kodak)を用いて且つ増幅スクリ
ーン(Amersham)を用いて−80℃で一晩オー
トラジオグラフィーにより検出した。さらに2回のスク
リーニングをDIG系(Boehringer Man
nheim)を用いて実施した。
(5’−GAYGTIGAYGARAARAAYCA−
3’)及びα7−2a:(5’−CYYTCRTCIG
CRCTRTTRTA−3’)を用いたポリメラーゼ連
鎖反応(PCR)に上記の第一鎖cDNAの1/100
を各場合で用いた(組み換えTaq DNAポリメラー
ゼ、Gibco BRL)。PCRパラメーターは以下
の通りであった:Hva7−1及びHva7−2:94
℃、2分;35回(94℃、45秒;50℃、30秒;
72℃、60秒)並びにDa7:96℃、2分;35回
(96℃、45秒;50℃、30秒;72℃、60
秒)。各場合で、これはドロソフィラcDNAの場合及
びヘリオチスcDNAの場合の両方でアガロースゲル
(1%)において約0.2kbの検出できるバンドをも
たらした。DNAフラグメントをSrfScript
(Stratagene)を用いてサブクローン化し、
そしてそれらの配列を決定した後、2つの異なるDNA
フラグメントがヘリオチスcDNAから増幅されている
ことが分かり;これらは228−11=Hva7−1
(部分的、165bpを含有する)及び228−8=H
va7−2(部分的、171bpを含有する)であっ
た。ドロソフィラcDNAからは1つのDNAフラグメ
ントのみが単離され;これは248−5=Da7(部分
的、150bpを含有する)であった。 ヘリオチス・ビレッセンス組織からのポリA含有RNA
の単離及びcDNAライブラリーの構築 トリゾール試薬(Gibco BRL、製造業者の使用
説明書に従って)を用いて全ヘリオチス・ビレッセンス
胚(孵化直前)からcDNAライブラリーIのためのR
NAを単離した。トリゾール試薬(Gibco BR
L、製造業者の使用説明書に従って)を用いて500匹
のヘリオチス・ビレッセンス幼虫(段階4−5)からの
全頭神経節からcDNAライブラリーIIのためのRNA
を単離した。次に、Dynaビーズ280(Dyna
l)で精製することによりこれらのRNAからポリA含
有RNAを単離した。続いて、これらのポリA含有RN
Aの5μgをλ−ZAPE発現ベクターを用いたcDN
AライブラリーI及びIIの構築に用いた(cDNA合成
キット、ZAP−cDNA合成キット及びZAP−cD
NA Gigapack III Goldクローニンキッ
ト、全てStratageneから)。製造業者の使用
説明書と異なり、45℃の合成温度でcDNAを合成す
るためにSuperscript逆転写酵素(Gibc
o BRL)を用いた。さらに、放射性標識されたデオ
キシヌクレオシド三リン酸を添加しなかった。さらに、
合成されたcDNAをキット中に含まれるゲル濾過媒質
を通してではなく代わりにSize Sep 400
Spunカラム(Pharmacia)を通して分画し
た。 完全なポリヌクレオチド配列 Hva7−1クローンを単離する場合の一次スクリーニ
ングラウンドは別として、全てのスクリーニングをDI
G系を用いて実施した(BoehringerMann
heimからの全ての試薬及び消耗品、「The DI
G System User’s Guide for
Filter Hybridization」中の使
用説明書に従って、Boehringer Mannh
eim)。用いるDNAプローブをジゴキシゲニンで標
識されたdUTPを用いてPCRにより調製した。ハイ
ブリダイゼーションをDIG Easy Hyb(Bo
ehringer Mannheim)中で42℃で一
晩実施した。標識されたDNAをX線フィルム(Hyp
erfilm MP、Amersham)を用いて化学
発光(CDP−Star、Boehringer Ma
nnheim)によりナイロン膜上に検出した。単離さ
れた遺伝子ライブラリープラスミドの最初の部分シーク
エンシングをT3及びT7プライマーを用いて同定目的
のために実施した(ABIプリズム色素ターミネーター
サイクルシークエンシングキット(ABI Prism
Dye Terminator Cycle Seq
uencing Kit)、ABI、ABI Pris
m 310遺伝子分析器(Genetic Analy
zer)を用いる)。サイクルシークエンシングを用い
たプライマー歩行により、Qiagen、Hilden
により実施された委託シークエンシングとして、Hva
7−1、Hva7−2及びDa7の完全なポリヌクレオ
チド配列を決定した。 a.Da7クローンの単離 λファージ中のドロソフィラ・メラノガスタcDNAラ
イブラリーからの10 6個のファージ(Canton−
S胚、2−14時間、Uni−ZAP XRベクター
中、Stratagene)をDIGで標識された24
8−5をプローブとして用いてスクリーニングした(製
造業者(Stratagene)の使用説明書に従っ
て)。フィルターを洗浄する場合の最高のストリンジェ
ンシーは0.2x SSC;0.1% SDS;42℃;
2 x 15分であった。1個のクローン(クローン43
2−1)が単離され、そのインサートは2940bpの
大きさであった(Da7、配列番号1)。この配列の最
も大きいオープンリーディングフレームは示される配列
の位置372で始まり、位置1822で終わる。これか
ら推定される770アミノ酸のポリペプチド(配列番号
2)は87.01kDの計算分子量を有する。 a.Hva7−1クローンの単離 ヘリオチス・ビレッセンス胚cDNAライブラリー(ラ
イブラリーI)からの106個のファージがスクリーニ
ングに含まれた。3回のスクリーニングの1回目をα−
32Pで標識された228−11 DNAをプローブとし
て用いて実施した。Quick−hyb(Strata
gene)中68℃で1時間プローブをフィルターにハ
イブリダイズさせた。次に、フィルターを2 x SS
C;0.1% SDS中室温で2回各15分間、そして
0.1 x SSC;0.1% SDS中42℃で2回各
30分間洗浄した。ハイブリダイズしたプローブをXR
X線フィルム(Kodak)を用いて且つ増幅スクリ
ーン(Amersham)を用いて−80℃で一晩オー
トラジオグラフィーにより検出した。さらに2回のスク
リーニングをDIG系(Boehringer Man
nheim)を用いて実施した。
【0032】このスクリーニングで単離されたクローン
241−5は3630bpのインサートを含有した。こ
のインサート(Hva7−1、配列番号3)は示される
核酸配列の位置335で始まり、位置1821で終わる
最も長いオープンリーディングフレームを保有する。こ
れから推定される496アミノ酸のポリペプチド(配列
番号4)は56.36kDの計算分子量を有する。 a.Hva7−2クローンの単離 ヘリオチス・ビレッセンス神経節cDNAライブラリー
(ライブラリーII)からの106個のファージがスクリ
ーニングに含まれた。Digで標識された228−8
DNAをプローブとして用いた。フィルターを洗浄する
場合の最高のストリンジェンシーは0.1 x SSC;
0.1% SDS;42℃;2 x 15分であった。
241−5は3630bpのインサートを含有した。こ
のインサート(Hva7−1、配列番号3)は示される
核酸配列の位置335で始まり、位置1821で終わる
最も長いオープンリーディングフレームを保有する。こ
れから推定される496アミノ酸のポリペプチド(配列
番号4)は56.36kDの計算分子量を有する。 a.Hva7−2クローンの単離 ヘリオチス・ビレッセンス神経節cDNAライブラリー
(ライブラリーII)からの106個のファージがスクリ
ーニングに含まれた。Digで標識された228−8
DNAをプローブとして用いた。フィルターを洗浄する
場合の最高のストリンジェンシーは0.1 x SSC;
0.1% SDS;42℃;2 x 15分であった。
【0033】このスクリーニングで単離されたクローン
241−5は3630bpのインサートを含有した。こ
のインサート(Hva7−2、配列番号5)は示される
核酸配列の位置95で始まり、位置1598で終わる最
も長いオープンリーディングフレームを保有する。これ
から推定される501アミノ酸のポリペプチド(配列番
号6)は56.71kDの計算分子量を有する。
241−5は3630bpのインサートを含有した。こ
のインサート(Hva7−2、配列番号5)は示される
核酸配列の位置95で始まり、位置1598で終わる最
も長いオープンリーディングフレームを保有する。これ
から推定される501アミノ酸のポリペプチド(配列番
号6)は56.71kDの計算分子量を有する。
【0034】実施例2 発現構築物の作製 a.Da7 配列番号1の位置372から位置2681までの配列領
域をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅した。
このために配列GCGAATTCACCACCATGA
AAAATGCACAACTG及びCGAGACAAT
AATATGTGGTGCCTCGAGを有するデオキ
シオリゴヌクレオチドを用いた。Stratagene
からのPfuポリメラーゼを製造業者の使用説明書に従
ってDNAポリメラーゼとして用いた。増幅後に、生成
されたセグメントを制限エンドヌクレアーゼEco R
I及びXho Iで消化し、そして同様にEco RI及
びXho Iで消化されたベクター、すなわち、pcD
NA3.1/Zeo(Invitrogen)中にクロ
ーン化した。 b.Hva7−1 配列番号3の位置335から位置1822までの配列領
域をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅した。
このために配列GCAAGCTTACCACCATGG
GAGGTAGAGCTAGACGCTCGCAC及び
GCCTCGAGCGACACCATGATGTGTG
GCGCを有するデオキシオリゴヌクレオチドを用い
た。StratageneからのPfuポリメラーゼを
製造業者の使用説明書に従ってDNAポリメラーゼとし
て用いた。増幅後に、生成されたセグメントを制限エン
ドヌクレアーゼHindIII及びXho Iで消化し、そ
して同様にHindIII及びXho Iで消化されたベク
ター、すなわち、pcDNA3.1/Zeo(Invi
trogen)中にクローン化した。 c.Hva7−2 配列番号5の位置95から位置1597までの配列領域
をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅した。こ
のために配列GCAAGCGCCGCTATGGCCC
CTATGTTG及びTTGCACGATGATATG
CGGTGCCTCGAGCGを有するデオキシオリゴ
ヌクレオチドを用いた。StratageneからのP
fuポリメラーゼを製造業者の使用説明書に従ってDN
Aポリメラーゼとして用いた。増幅後に、生成されたセ
グメントを制限エンドヌクレアーゼHindIII及びX
ho Iで消化し、そして同様にHindIII及びXho
Iで消化されたベクター、すなわち、pcDNA3.
1/Zeo(Invitrogen)中にクローン化し
た。 d.Hva7−1/5HT3及びHva7−2/5HT3
キメラ 重複伸長の方法(Jespersen等、1997)を
用いて、配列番号3の位置335から位置1036まで
の領域(Hva7−1/5HT3キメラ)及び配列番号
5の位置95から位置763までの領域(Hva7−2
/5HT3キメラ)を各々ムス・ムスキュラス(Mus
musculus)5−HT3受容体cDNA(EM
BLデータベース中の配列:M774425)の位置7
78から位置1521までの領域に融合させた。次に、
TAクローニング(Invitrogen、製造業者の
使用説明書に従って)によりそれら2つのフラグメント
をpcDNA3.1/Zeoベクター中にクローン化し
た。ベクター中のそれら2つのフラグメントの正しい方
向を含有する構築物をT7プライマー(Invitro
gen)を用いてシークエンシングにより同定した。 細胞培養及び遺伝子導入 L型Caチャネル(Zong等、1995、Stetz
er等、1996)のα−サブユニットを発現するHE
K293細胞を5% CO2及び20℃から37℃までで
ダルベッコの修正イーグル培地及び10%ウシ胎仔血清
中で培養した。FuGENE 6(Boehringe
r Mannheim GmbH、Mannheim、
Germany)を製造業者の使用説明書に従って遺伝
子導入に用いた。遺伝子導入後24時間から48時間ま
でで細胞をマイクロタイタープレート中に様々な密度で
接種した。ダルベッコの修正イーグル培地及び10%ウ
シ胎仔血清及び150−500μg/mlのゼオシン
(Zeocin)/ml中で3から4週までの期間にわ
たって生育することにより、組み換えで改変された細胞
を選択した。個々の耐性クローンを以下に記述するよう
に分析した。 Fura−2測定 細胞内カルシウム濃度の変化をFura−2を用いて測
定した。ジメチルスルホキシド(DMSO)中に2mM
のFura−2−アセトキシメチルエステル(Sigm
a)を含有するストック溶液を1%ウシ血清アルブミン
及び5mM塩化カルシウムを含有する無血清最小必須培
地(MEM、Gibco)中で5−10μMの最終濃度
に希釈した。マイクロタイタープレート中でこの溶液中
で細胞を45から60分間までインキュベートした。次
に、細胞をN−(2−ヒドロキシエチル)ピペラジン−
N’−(2−エタンスルホン酸)(5mM HEPE
S)緩衝Tyrode溶液(130mM NaCl、5
mM KCl、2mM CaCl2、1mM MgCl2、
5mM NaHCO3、10mMグルコースを含有するH
EPES緩衝塩溶液)中で2回を洗浄した。100μl
のTyrodeバッファーをマイクロタイタープレート
のウェルに添加し、340nm及び380nmの波長の
光で蛍光顕微鏡(Nikon Diaphot)下で細
胞を交互に照射した。一連のビデオ画像(画像当たりの
露出時間100ms)を3秒の中断で取り、デジタル化
された画像として画像分析コンピューター(Leic
a、Quantimet 570)中に保存した。8画
像を取った後(図1の測定点4.0)、ニコチンを50
0μMの最終濃度まで添加し、測定シリーズを続けた。
380nmの波長の光を照射した場合の細胞の蛍光強度
を対応する340nmでの強度で割り、このようにして
カルシウム濃度の相対的増加を表す比率を得た(Gry
nkiewicz等、1985)。
域をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅した。
このために配列GCGAATTCACCACCATGA
AAAATGCACAACTG及びCGAGACAAT
AATATGTGGTGCCTCGAGを有するデオキ
シオリゴヌクレオチドを用いた。Stratagene
からのPfuポリメラーゼを製造業者の使用説明書に従
ってDNAポリメラーゼとして用いた。増幅後に、生成
されたセグメントを制限エンドヌクレアーゼEco R
I及びXho Iで消化し、そして同様にEco RI及
びXho Iで消化されたベクター、すなわち、pcD
NA3.1/Zeo(Invitrogen)中にクロ
ーン化した。 b.Hva7−1 配列番号3の位置335から位置1822までの配列領
域をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅した。
このために配列GCAAGCTTACCACCATGG
GAGGTAGAGCTAGACGCTCGCAC及び
GCCTCGAGCGACACCATGATGTGTG
GCGCを有するデオキシオリゴヌクレオチドを用い
た。StratageneからのPfuポリメラーゼを
製造業者の使用説明書に従ってDNAポリメラーゼとし
て用いた。増幅後に、生成されたセグメントを制限エン
ドヌクレアーゼHindIII及びXho Iで消化し、そ
して同様にHindIII及びXho Iで消化されたベク
ター、すなわち、pcDNA3.1/Zeo(Invi
trogen)中にクローン化した。 c.Hva7−2 配列番号5の位置95から位置1597までの配列領域
をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅した。こ
のために配列GCAAGCGCCGCTATGGCCC
CTATGTTG及びTTGCACGATGATATG
CGGTGCCTCGAGCGを有するデオキシオリゴ
ヌクレオチドを用いた。StratageneからのP
fuポリメラーゼを製造業者の使用説明書に従ってDN
Aポリメラーゼとして用いた。増幅後に、生成されたセ
グメントを制限エンドヌクレアーゼHindIII及びX
ho Iで消化し、そして同様にHindIII及びXho
Iで消化されたベクター、すなわち、pcDNA3.
1/Zeo(Invitrogen)中にクローン化し
た。 d.Hva7−1/5HT3及びHva7−2/5HT3
キメラ 重複伸長の方法(Jespersen等、1997)を
用いて、配列番号3の位置335から位置1036まで
の領域(Hva7−1/5HT3キメラ)及び配列番号
5の位置95から位置763までの領域(Hva7−2
/5HT3キメラ)を各々ムス・ムスキュラス(Mus
musculus)5−HT3受容体cDNA(EM
BLデータベース中の配列:M774425)の位置7
78から位置1521までの領域に融合させた。次に、
TAクローニング(Invitrogen、製造業者の
使用説明書に従って)によりそれら2つのフラグメント
をpcDNA3.1/Zeoベクター中にクローン化し
た。ベクター中のそれら2つのフラグメントの正しい方
向を含有する構築物をT7プライマー(Invitro
gen)を用いてシークエンシングにより同定した。 細胞培養及び遺伝子導入 L型Caチャネル(Zong等、1995、Stetz
er等、1996)のα−サブユニットを発現するHE
K293細胞を5% CO2及び20℃から37℃までで
ダルベッコの修正イーグル培地及び10%ウシ胎仔血清
中で培養した。FuGENE 6(Boehringe
r Mannheim GmbH、Mannheim、
Germany)を製造業者の使用説明書に従って遺伝
子導入に用いた。遺伝子導入後24時間から48時間ま
でで細胞をマイクロタイタープレート中に様々な密度で
接種した。ダルベッコの修正イーグル培地及び10%ウ
シ胎仔血清及び150−500μg/mlのゼオシン
(Zeocin)/ml中で3から4週までの期間にわ
たって生育することにより、組み換えで改変された細胞
を選択した。個々の耐性クローンを以下に記述するよう
に分析した。 Fura−2測定 細胞内カルシウム濃度の変化をFura−2を用いて測
定した。ジメチルスルホキシド(DMSO)中に2mM
のFura−2−アセトキシメチルエステル(Sigm
a)を含有するストック溶液を1%ウシ血清アルブミン
及び5mM塩化カルシウムを含有する無血清最小必須培
地(MEM、Gibco)中で5−10μMの最終濃度
に希釈した。マイクロタイタープレート中でこの溶液中
で細胞を45から60分間までインキュベートした。次
に、細胞をN−(2−ヒドロキシエチル)ピペラジン−
N’−(2−エタンスルホン酸)(5mM HEPE
S)緩衝Tyrode溶液(130mM NaCl、5
mM KCl、2mM CaCl2、1mM MgCl2、
5mM NaHCO3、10mMグルコースを含有するH
EPES緩衝塩溶液)中で2回を洗浄した。100μl
のTyrodeバッファーをマイクロタイタープレート
のウェルに添加し、340nm及び380nmの波長の
光で蛍光顕微鏡(Nikon Diaphot)下で細
胞を交互に照射した。一連のビデオ画像(画像当たりの
露出時間100ms)を3秒の中断で取り、デジタル化
された画像として画像分析コンピューター(Leic
a、Quantimet 570)中に保存した。8画
像を取った後(図1の測定点4.0)、ニコチンを50
0μMの最終濃度まで添加し、測定シリーズを続けた。
380nmの波長の光を照射した場合の細胞の蛍光強度
を対応する340nmでの強度で割り、このようにして
カルシウム濃度の相対的増加を表す比率を得た(Gry
nkiewicz等、1985)。
【0035】
【表1】
【0036】
【表2】
【0037】
【表3】
【0038】
【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> Bayer Aktiengesellschaft <120> Nucleic acids which encode insect acetylcholine receptor subunits <130>9904058 <150> DE-198 19 829.9 <151> 1998-05-04 <160> 6 <170> PatentIn Ver. 2.1 <210> 1 <211> 2886 <212> DNA <213> Drosophila melanogaster <220> <221> CDS <222> (372)..(2681) <400> 1 ggcacgagaa aaagttgtgg tataaacttt tattgtagga aaacgcataa aaataataga 60 aaaacgctct tcgggttgta aagaaaataa gaagacaaaa gaaagacatg aaaacgttgc 120 aaacaataaa gcatatactt gccatattga tataaaggga aatcgtgaaa aggcggtgaa 180 aatttcgtaa gattagttgg tattaagggc agcccatgca cacagctaaa aagggaacta 240 aaaaaacccc gcacagaaca atgaaagctg cagcagctgg ataaggccga caaaaccgaa 300 aattatatta ttgtaatcta gtagagagca gacaacatat ccgctggcaa caaccaacac 360 cgaaagagac t atg aaa aat gca caa ctg aaa ctg act gaa gtt gac gat 410 Met Lys Asn Ala Gln Leu Lys Leu Thr Glu Val Asp Asp 1 5 10 gat gag ctg tgg ctg gca gta aga tta gcg cac tgc agc agc aac ttt 458 Asp Glu Leu Trp Leu Ala Val Arg Leu Ala His Cys Ser Ser Asn Phe 15 20 25 agc agc agt agc agc aca aga acc acc agc agc aac cag agg cac aac 506 Ser Ser Ser Ser Ser Thr Arg Thr Thr Ser Ser Asn Gln Arg His Asn 30 35 40 45 cag caa ctc aca aca ctg caa cca agg agc tta agt aca aaa cac cac 554 Gln Gln Leu Thr Thr Leu Gln Pro Arg Ser Leu Ser Thr Lys His His 50 55 60 agc aac att gca agc gag cag cac aat agc cag caa cag gag cca gca 602 Ser Asn Ile Ala Ser Glu Gln His Asn Ser Gln Gln Gln Glu Pro Ala 65 70 75 tcg aag gac gag gat gta gcc aac cac ggt aga agc aat gac cag cag 650 Ser Lys Asp Glu Asp Val Ala Asn His Gly Arg Ser Asn Asp Gln Gln 80 85 90 acg cat ctg caa cag cta gac agc agc aac atg ttg tcg cca aag aca 698 Thr His Leu Gln Gln Leu Asp Ser Ser Asn Met Leu Ser Pro Lys Thr 95 100 105 gcc gca gca gca act gct gcc ggc gat gaa gca aca acc caa caa cca 746 Ala Ala Ala Ala Thr Ala Ala Gly Asp Glu Ala Thr Thr Gln Gln Pro 110 115 120 125 aca aac ata aga ctg tgt gca cgc aag cga caa cga ttg cgt cgc cga 794 Thr Asn Ile Arg Leu Cys Ala Arg Lys Arg Gln Arg Leu Arg Arg Arg 130 135 140 cga aaa aga aaa cca gca acc cca aac gaa aca gat atc aag aaa caa 842 Arg Lys Arg Lys Pro Ala Thr Pro Asn Glu Thr Asp Ile Lys Lys Gln 145 150 155 cag caa ctt agc atg cct ccc ttc aaa acg cgc aaa tcc acg gac acc 890 Gln Gln Leu Ser Met Pro Pro Phe Lys Thr Arg Lys Ser Thr Asp Thr 160 165 170 tac agc aca cca gca gca aca acc agc tgt ccg aca gcc acc tac atg 938 Tyr Ser Thr Pro Ala Ala Thr Thr Ser Cys Pro Thr Ala Thr Tyr Met 175 180 185 caa tgt cga gcc agc gac aat gag ttc agt att ccg ata tcg aga cat 986 Gln Cys Arg Ala Ser Asp Asn Glu Phe Ser Ile Pro Ile Ser Arg His 190 195 200 205 gat aga gta tcc acg gcc aca ttc gcc tgg gtg ttg cat gtg ctg cag 1034 Asp Arg Val Ser Thr Ala Thr Phe Ala Trp Val Leu His Val Leu Gln 210 215 220 gtg ctg ctc gtg tcg ctg caa cag tgg caa ctt cac gtg caa cag cga 1082 Val Leu Leu Val Ser Leu Gln Gln Trp Gln Leu His Val Gln Gln Arg 225 230 235 tcg gtg cta ctg ttc aga agg atc gca gcg agc acc atc gcc ttc att 1130 Ser Val Leu Leu Phe Arg Arg Ile Ala Ala Ser Thr Ile Ala Phe Ile 240 245 250 tcc tat tta ggc agc ttt gca gcg caa ctg aaa aat agc agc agc agc 1178 Ser Tyr Leu Gly Ser Phe Ala Ala Gln Leu Lys Asn Ser Ser Ser Ser 255 260 265 agt agc agc agc aac agc agc aac aac agc agc acg caa ata tta aac 1226 Ser Ser Ser Ser Asn Ser Ser Asn Asn Ser Ser Thr Gln Ile Leu Asn 270 275 280 285 gga ctt aat aaa cac tca tgg ata ttt tta ttg ata tat ttg aat tta 1274 Gly Leu Asn Lys His Ser Trp Ile Phe Leu Leu Ile Tyr Leu Asn Leu 290 295 300 tct gct aaa gtt tgc cta gca gga tat cat gaa aag aga ctg tta cac 1322 Ser Ala Lys Val Cys Leu Ala Gly Tyr His Glu Lys Arg Leu Leu His 305 310 315 gat ctt ttg gat cct tat aat aca cta gaa cgt ccc gtt ctc aat gaa 1370 Asp Leu Leu Asp Pro Tyr Asn Thr Leu Glu Arg Pro Val Leu Asn Glu 320 325 330 tcg gac ccg tta caa tta agc ttt ggt tta act tta atg caa att atc 1418 Ser Asp Pro Leu Gln Leu Ser Phe Gly Leu Thr Leu Met Gln Ile Ile 335 340 345 gat gtg gac gag aaa aat caa ttg cta gtc act aat gtg tgg tta aaa 1466 Asp Val Asp Glu Lys Asn Gln Leu Leu Val Thr Asn Val Trp Leu Lys 350 355 360 365 ctg gag tgg aac gac atg aat ctc cgc tgg aac acc tcc gac tat ggc 1514 Leu Glu Trp Asn Asp Met Asn Leu Arg Trp Asn Thr Ser Asp Tyr Gly 370 375 380 gga gtt aag gat ctg cga ata ccg ccg cat cgc atc tgg aag ccg gac 1562 Gly Val Lys Asp Leu Arg Ile Pro Pro His Arg Ile Trp Lys Pro Asp 385 390 395 gtg ctg atg tac aac agt gcg gat gag gga ttt gac ggc acc tac cag 1610 Val Leu Met Tyr Asn Ser Ala Asp Glu Gly Phe Asp Gly Thr Tyr Gln 400 405 410 acg aac gtg gtg gtg cgg aac aac ggc tcg tgt cta tac gtt ccg ccg 1658 Thr Asn Val Val Val Arg Asn Asn Gly Ser Cys Leu Tyr Val Pro Pro 415 420 425 ggg atc ttc aag tcg acg tgc aag atc gac atc acg tgg ttc ccc ttc 1706 Gly Ile Phe Lys Ser Thr Cys Lys Ile Asp Ile Thr Trp Phe Pro Phe 430 435 440 445 gat gac cag cgg tgc gag atg aag ttc ggc agt tgg acc tac gac gga 1754 Asp Asp Gln Arg Cys Glu Met Lys Phe Gly Ser Trp Thr Tyr Asp Gly 450 455 460 ttc cag ctg gat tta caa tta caa gat gaa act ggc ggt gat atc agc 1802 Phe Gln Leu Asp Leu Gln Leu Gln Asp Glu Thr Gly Gly Asp Ile Ser 465 470 475 agt tac gtg ctc aac ggc gag tgg gaa cta ctg ggt gtg ccc ggc aaa 1850 Ser Tyr Val Leu Asn Gly Glu Trp Glu Leu Leu Gly Val Pro Gly Lys 480 485 490 cgt aac gag atc tat tac aac tgc tgc ccg gaa ccc tat ata gac atc 1898 Arg Asn Glu Ile Tyr Tyr Asn Cys Cys Pro Glu Pro Tyr Ile Asp Ile 495 500 505 acc ttc gcc atc atc atc cgc cga cga aca ctg tac tat ttc ttc aac 1946 Thr Phe Ala Ile Ile Ile Arg Arg Arg Thr Leu Tyr Tyr Phe Phe Asn 510 515 520 525 ctg atc ata cct tgt gta ctg att gcc tcc atg gcc ttg ctc gga ttc 1994 Leu Ile Ile Pro Cys Val Leu Ile Ala Ser Met Ala Leu Leu Gly Phe 530 535 540 acc ctg ccg cca gat tcg ggt gaa aaa tta tcg ctg ggt gtt acc atc 2042 Thr Leu Pro Pro Asp Ser Gly Glu Lys Leu Ser Leu Gly Val Thr Ile 545 550 555 ttg ctc tcg ctg acc gtg ttt ctg aat atg gtt gcc gag aca atg ccg 2090 Leu Leu Ser Leu Thr Val Phe Leu Asn Met Val Ala Glu Thr Met Pro 560 565 570 gct act tcc gat gcg gtg cca ttg tgg ata cgc atc gtg ttt ttg tgc 2138 Ala Thr Ser Asp Ala Val Pro Leu Trp Ile Arg Ile Val Phe Leu Cys 575 580 585 tgg ctg cca tgg ata ttg cga atg agt cgc cca gga cga ccg ctg atc 2186 Trp Leu Pro Trp Ile Leu Arg Met Ser Arg Pro Gly Arg Pro Leu Ile 590 595 600 605 cta gag ttc ccg acc acg ccc tgt tcg gac aca tcc tcc gag cgg aag 2234 Leu Glu Phe Pro Thr Thr Pro Cys Ser Asp Thr Ser Ser Glu Arg Lys 610 615 620 cac cag ata ctc tcc gac gtt gag ctg aaa gag cgc tcg tcg aaa tcg 2282 His Gln Ile Leu Ser Asp Val Glu Leu Lys Glu Arg Ser Ser Lys Ser 625 630 635 ctg ctg gcc aac gta cta gac atc gat gat gac ttc cgg cac aat tgt 2330 Leu Leu Ala Asn Val Leu Asp Ile Asp Asp Asp Phe Arg His Asn Cys 640 645 650 cgc ccc atg acg ccc ggc gga aca ctg cca cac aac ccg gct ttc tat 2378 Arg Pro Met Thr Pro Gly Gly Thr Leu Pro His Asn Pro Ala Phe Tyr 655 660 665 cgc acg gtt tat gga caa ggc gac gat ggc agc att ggg cca att ggc 2426 Arg Thr Val Tyr Gly Gln Gly Asp Asp Gly Ser Ile Gly Pro Ile Gly 670 675 680 685 agc acc cga atg ccg gat gcg gtc acc cat cat acg tgc atc aaa tca 2474 Ser Thr Arg Met Pro Asp Ala Val Thr His His Thr Cys Ile Lys Ser 690 695 700 tca act gaa tat gaa tta ggt tta atc tta aag gaa att cgc ttt ata 2522 Ser Thr Glu Tyr Glu Leu Gly Leu Ile Leu Lys Glu Ile Arg Phe Ile 705 710 715 act gat cag cta cgt aaa gat gac gag tgc aat gac att gcc aat gat 2570 Thr Asp Gln Leu Arg Lys Asp Asp Glu Cys Asn Asp Ile Ala Asn Asp 720 725 730 tgg aaa ttt gca gct atg gtc gtt gac aga ctg tgc ctt atc ata ttc 2618 Trp Lys Phe Ala Ala Met Val Val Asp Arg Leu Cys Leu Ile Ile Phe 735 740 745 aca atg ttc gca ata tta gcc aca ata gct gta cta cta tcg gca cca 2666 Thr Met Phe Ala Ile Leu Ala Thr Ile Ala Val Leu Leu Ser Ala Pro 750 755 760 765 cat att att gtc tcg tagccatatg ggcgaggtgg ttattgttat tggttttatt 2721 His Ile Ile Val Ser 770 ataaaatcaa tttgttaatt attaaattaa taacgaaact ctttaagtaa attaaaacta 2781 aaaagacact aaaaaagcac aaaaaaatag gaaaatacat gataaaaccc atgaactaaa 2841 taatacatcc aagaaaaacc aaaacaaaaa aaaaaaaaaa aaaaa 2886 <210> 3 <211> 3701 <212> DNA <213> Heliothis virescens <220> <221> CDS <222> (335)..(1822) <400> 3 ggcacgagcc gctgccccac ggtcggccgc actccgctga acaacaatgc tcaaaaacac 60 gccgtgactc cacacacatc ccctcggcgc agtaggcgat gtttgaggat cggacggcac 120 gcgtggccgt cggcgagcgg tcgtgaacaa gttgcataca tatgaaaacc gtaaaaagat 180 tgaattttaa gccgatcgtg ttcgatagat cctaatagag aagcgggagt gcggcgtttg 240 gtaggcgggg gtcgagtcgc gcggtcgggg gaaatggcgc ggcgcggggc ggcggcggcg 300 gcggcgcgcg gcgcggcggc gtcgcggcgc tgac atg ggc ggg cgg gcg cgc cgc 355 Met Gly Gly Arg Ala Arg Arg 1 5 tcg cac ttg gcg gcg ccc gcg ggc ctg ctg ctg ctg ctg tgc ctg ctc 403 Ser His Leu Ala Ala Pro Ala Gly Leu Leu Leu Leu Leu Cys Leu Leu 10 15 20 tgg ccg agg ggg gca cgc tgc ggg tac cac gag aag cgg cta ctg cac 451 Trp Pro Arg Gly Ala Arg Cys Gly Tyr His Glu Lys Arg Leu Leu His 25 30 35 cac cta ttg gac cac tac aac gta ctg gag agg ccc gtc gtc aac gag 499 His Leu Leu Asp His Tyr Asn Val Leu Glu Arg Pro Val Val Asn Glu 40 45 50 55 agc gac ccg ctg cag ctc tcc ttc ggc ctc acg ctc atg cag atc atc 547 Ser Asp Pro Leu Gln Leu Ser Phe Gly Leu Thr Leu Met Gln Ile Ile 60 65 70 gac gtg gac gag aag aac cag ctt tta ata aca aac atc tgg cta aaa 595 Asp Val Asp Glu Lys Asn Gln Leu Leu Ile Thr Asn Ile Trp Leu Lys 75 80 85 cta gag tgg aat gat atg aac ttg agg tgg aac act tca gat ttc ggc 643 Leu Glu Trp Asn Asp Met Asn Leu Arg Trp Asn Thr Ser Asp Phe Gly 90 95 100 ggg gtc aaa gat tta aga gtg cca ccc cac aga cta tgg aaa cca gac 691 Gly Val Lys Asp Leu Arg Val Pro Pro His Arg Leu Trp Lys Pro Asp 105 110 115 gtc ctt atg tac aac agc gcg gac gaa ggg ttc gac agc acg tat cca 739 Val Leu Met Tyr Asn Ser Ala Asp Glu Gly Phe Asp Ser Thr Tyr Pro 120 125 130 135 acg aac gtg gtg gtg cgg aac aac ggc tcg tgt ctg tac gtg ccg ccc 787 Thr Asn Val Val Val Arg Asn Asn Gly Ser Cys Leu Tyr Val Pro Pro 140 145 150 ggc atc ttc aag agc acc tgc aag atc gac atc acc tgg ttc ccc ttc 835 Gly Ile Phe Lys Ser Thr Cys Lys Ile Asp Ile Thr Trp Phe Pro Phe 155 160 165 gac gac caa cga tgc gag atg aag ttt ggc agc tgg act tat gat ggt 883 Asp Asp Gln Arg Cys Glu Met Lys Phe Gly Ser Trp Thr Tyr Asp Gly 170 175 180 tat cag ttg gat cta caa cta cag gat gaa ggg ggc gga gat ata agc 931 Tyr Gln Leu Asp Leu Gln Leu Gln Asp Glu Gly Gly Gly Asp Ile Ser 185 190 195 agt ttt gtc acg aat ggc gaa tgg gag tta ata gga gtc ccc ggc aag 979 Ser Phe Val Thr Asn Gly Glu Trp Glu Leu Ile Gly Val Pro Gly Lys 200 205 210 215 cgc aac gag atc tac tac aac tgt tgt ccg gag cca tac atc gac atc 1027 Arg Asn Glu Ile Tyr Tyr Asn Cys Cys Pro Glu Pro Tyr Ile Asp Ile 220 225 230 acg ttt gcg gtg gtg atc cgg agg aaa acg ctc tac tac ttc ttc aat 1075 Thr Phe Ala Val Val Ile Arg Arg Lys Thr Leu Tyr Tyr Phe Phe Asn 235 240 245 ctg atc gtg ccc tgc gtg ctc atc gcc tcc atg gct cta ttg ggg ttc 1123 Leu Ile Val Pro Cys Val Leu Ile Ala Ser Met Ala Leu Leu Gly Phe 250 255 260 acc ttg cct cca gac tcc gga gaa aag ttg tct tta ggt gtg acg ata 1171 Thr Leu Pro Pro Asp Ser Gly Glu Lys Leu Ser Leu Gly Val Thr Ile 265 270 275 tta ctg tcg ttg acg gtg ttc ctc aac atg gtg gcg gag acg atg cca 1219 Leu Leu Ser Leu Thr Val Phe Leu Asn Met Val Ala Glu Thr Met Pro 280 285 290 295 gcg acg tcg gac gcc gtg ccc ttg ctc ggc acc tac ttc aac tgc atc 1267 Ala Thr Ser Asp Ala Val Pro Leu Leu Gly Thr Tyr Phe Asn Cys Ile 300 305 310 atg ttc atg gtg gct tcc tcc gtc gtc tcc acc ata ctg atc ctc aac 1315 Met Phe Met Val Ala Ser Ser Val Val Ser Thr Ile Leu Ile Leu Asn 315 320 325 tac cac cac cgg cac gca gac act cac gaa atg agt gat tgg att cgt 1363 Tyr His His Arg His Ala Asp Thr His Glu Met Ser Asp Trp Ile Arg 330 335 340 tgc gtg ttc ctt tat tgg ctg ccg tgg gtg ctg cgc atg tca cgg ccc 1411 Cys Val Phe Leu Tyr Trp Leu Pro Trp Val Leu Arg Met Ser Arg Pro 345 350 355 ggc tcg gcg acg acg ccg ccg ccg gcg cgc gta cct ccg ccg ccg gac 1459 Gly Ser Ala Thr Thr Pro Pro Pro Ala Arg Val Pro Pro Pro Pro Asp 360 365 370 375 ctg gag ctg cgc gag cgc tcc tcc aag tcg ctc cta gcg aac gtg ctc 1507 Leu Glu Leu Arg Glu Arg Ser Ser Lys Ser Leu Leu Ala Asn Val Leu 380 385 390 gac atc gat gac gac ttc cgc cac ccg caa gcg cag cag ccg caa tgc 1555 Asp Ile Asp Asp Asp Phe Arg His Pro Gln Ala Gln Gln Pro Gln Cys 395 400 405 tgc cga tac tac agg ggg ggt gag gag aat ggc gcg ggg ttg gcg gcg 1603 Cys Arg Tyr Tyr Arg Gly Gly Glu Glu Asn Gly Ala Gly Leu Ala Ala 410 415 420 cac agt tgc ttc ggt gtc gac tac gag ctc tcc ctc att ctg aag gag 1651 His Ser Cys Phe Gly Val Asp Tyr Glu Leu Ser Leu Ile Leu Lys Glu 425 430 435 att aga gtc atc aca gat cag atg cgc aag gac gac gaa gat gcg gac 1699 Ile Arg Val Ile Thr Asp Gln Met Arg Lys Asp Asp Glu Asp Ala Asp 440 445 450 455 att tcg cgc gac tgg aag ttc gcc gcc atg gtc gtg gac aga ctg tgc 1747 Ile Ser Arg Asp Trp Lys Phe Ala Ala Met Val Val Asp Arg Leu Cys 460 465 470 ctt att atc ttt acc ctg ttc aca atc atc gcc acg cta gcc gtg ctg 1795 Leu Ile Ile Phe Thr Leu Phe Thr Ile Ile Ala Thr Leu Ala Val Leu 475 480 485 ctg tcc gcg cca cac atc atg gtg tcg tagcgacccg cccgcttgcg 1842 Leu Ser Ala Pro His Ile Met Val Ser 490 495 gatacgcatg cgaaaagttc tgtgataccg cgaatatttg ttaagttgtg atgagcgaag 1902 tggcgcggac ggtgacgccg cggcgtcgga gttgccgccg cctgcctcgc cgcccgcgcc 1962 cccctgtaga cataagttac cgctgactgc caaccctgta cgttcaacaa ataactgccc 2022 atccgactaa cgtcttttat ccccttgaaa aattcagcga ttgtgtaccc ctttcttcca 2082 agaatacaat gacaaatggt cgtcacgctc agtggaatca atcccgtact cttcgcccga 2142 tatttccctt agggtatgtc acgagtttga atgagcggtt ccgtatcaga cgttccgtcc 2202 ccggaacggt cgtcccctgc gataaagtgg cagtacgtgc tatacaggca cttaaggccg 2262 ccacgccacg gcgccgcggt gcgctcgggc cgcgaacccg cgaccctcac cgctgcaagt 2322 ggccacccac tagacaagac tgcggcagaa aatatttgca caaaaacgtc ttccttctta 2382 ccgatgaacg acctgattcg catttaaaat taaactttgt tagaacttct tcgattcttg 2442 aaatctattg tacagtttag agtttgggcg gtgaaacaat ggccctttgt ttccttcttg 2502 ttcgattcca tgaatcgtgg ttataatccc tagttttatt ttcggatata tttgtgtcag 2562 tagctagtat agaactttac aaacaatgtt gattcaattg gtacaggttg tgatatgcct 2622 cgttgtgaac gggtccgata ttgttataaa tggtaaaata cccatggcta tagcttaata 2682 aatcgttcgt taaaagttgt agttaaacaa atattatttt aataaagtca tatctgggtc 2742 ttccggaacg acttttacaa ataattaaat tacatattaa tatcacgttt gtacttcttt 2802 ccatacagtt acagtaattc gtatgctgaa aataatatta gcttgtaaaa ttttcttctt 2862 cgaaaattta ttcaaacaga tgcgaccatc gtttcaaaca tttacatgta atatagaact 2922 cattttataa gatatacaac attttataag tacaagaagt tgtaacatga accggttttt 2982 cgttacatag agggtataac acaaaggtgc ctacatattg acagatgcga agcacgatca 3042 gttgataagc acaggtacac tatatcctga catccgacag tcctgccgct cgtctgccac 3102 actcggaaac attcgacagt tcagtttact gctccgccat catcgattgt taagtttgtt 3162 gttctaactc atcgcattca tttcattcaa aaacattgta aacctctcaa ggggaaaacg 3222 tgttgtaaac agtgagagtg cgcgggtaca accgacacgc gaatgtaccc tcgcaaggct 3282 cctgtaatgt tttcctcttc cgaggtgttg ctgagagtaa tcttagacgg tccgatggaa 3342 gttgcggacc ggatatgatt acaagtcaat gtttttaagt catccgttta tttattgtta 3402 tatcttctta ccattcgcta gaggttgtgt gacgacccgg acggtgggcg ccgcaacccg 3462 cacacgcggg gttccatctt tgtattagat ggaagttgtg cggcatctct ccgtcggcaa 3522 tgggacaacc cgttgtcccc aacatttgtt caattgttag ggttaactct gaattgcact 3582 ttgtttatta aatataaacg aatgaaacaa aaaaaaaaaa aaaaaactcg agagtacttc 3642 tagagcggcc gcgggcccat cgattttcca cccgggtggg gtaccargta agtgtaccc 3701 <210> 5 <211> 3109 <212> DNA <213> Heliothis virescens <220> <221> CDS <222> (95)..(1597) <400> 5 ggcacgagcc ggccgcacgt tgtcccaggc cgcatgagcg cgccggcgtg ctagcgcagc 60 gtgcgcgggt gtggtatgcc cgcgcgtcgc cgct atg gcc cct atg ttg gcg gcc 115 Met Ala Pro Met Leu Ala Ala 1 5 ttg gcg ctg ctg gct ttg ctg ccc gta tcg gag caa ggt cct cac gag 163 Leu Ala Leu Leu Ala Leu Leu Pro Val Ser Glu Gln Gly Pro His Glu 10 15 20 aag aga ctc ctg aac gcg ttg ctg gcg aac tac aac acc ctg gag cga 211 Lys Arg Leu Leu Asn Ala Leu Leu Ala Asn Tyr Asn Thr Leu Glu Arg 25 30 35 ccg gtg gcc aac gag agc gaa ccg cta gag gtc agg ttc ggc ttg acc 259 Pro Val Ala Asn Glu Ser Glu Pro Leu Glu Val Arg Phe Gly Leu Thr 40 45 50 55 ttg cag caa atc att gac gtg gac gag aag aat caa cta ctt ata acc 307 Leu Gln Gln Ile Ile Asp Val Asp Glu Lys Asn Gln Leu Leu Ile Thr 60 65 70 aat ata tgg ctg tcg ttg gag tgg aat gac tac aac ctg agg tgg aac 355 Asn Ile Trp Leu Ser Leu Glu Trp Asn Asp Tyr Asn Leu Arg Trp Asn 75 80 85 gac agc gag tat ggc ggg gtc aag gac ctc agg atc acg ccc aac aag 403 Asp Ser Glu Tyr Gly Gly Val Lys Asp Leu Arg Ile Thr Pro Asn Lys 90 95 100 ttg tgg aag ccg gac gtc ctt atg tat aat agt gct gac gag ggt ttt 451 Leu Trp Lys Pro Asp Val Leu Met Tyr Asn Ser Ala Asp Glu Gly Phe 105 110 115 gac ggg acc tac cag acc aac gtg gtg gtc aga agc ggc ggc agt tgc 499 Asp Gly Thr Tyr Gln Thr Asn Val Val Val Arg Ser Gly Gly Ser Cys 120 125 130 135 ctg tac gtg cca cct ggc ata ttc aag agc aca tgc aag atg gac atc 547 Leu Tyr Val Pro Pro Gly Ile Phe Lys Ser Thr Cys Lys Met Asp Ile 140 145 150 gcg tgg ttt ccc ttc gac gac caa cac tgt gat atg aag ttc ggt agc 595 Ala Trp Phe Pro Phe Asp Asp Gln His Cys Asp Met Lys Phe Gly Ser 155 160 165 tgg aca tat gac ggc aat cag ttg gat ctg gtg cta aaa gat gag gca 643 Trp Thr Tyr Asp Gly Asn Gln Leu Asp Leu Val Leu Lys Asp Glu Ala 170 175 180 ggc ggc gat cta tcg gac ttc ata aca aat ggg gag tgg tat cta ata 691 Gly Gly Asp Leu Ser Asp Phe Ile Thr Asn Gly Glu Trp Tyr Leu Ile 185 190 195 gga atg cca ggc aaa aag aac aca ata aca tac gcg tgc tgc ccc gag 739 Gly Met Pro Gly Lys Lys Asn Thr Ile Thr Tyr Ala Cys Cys Pro Glu 200 205 210 215 ccc tac gtg gac gtc acc ttc acc atc atg ata aga aga cga acc ttg 787 Pro Tyr Val Asp Val Thr Phe Thr Ile Met Ile Arg Arg Arg Thr Leu 220 225 230 tac tac ttc ttc aac ctg atc gtc ccg tgc gtg ctg atc tca tcg atg 835 Tyr Tyr Phe Phe Asn Leu Ile Val Pro Cys Val Leu Ile Ser Ser Met 235 240 245 gca ctc ctc ggc ttc aca ctg cca cca gac tcc gga gag aaa ctc aca 883 Ala Leu Leu Gly Phe Thr Leu Pro Pro Asp Ser Gly Glu Lys Leu Thr 250 255 260 ctt gga gtc act att ctt cta tcg ctg acg gtg ttc ctc aac ctg gta 931 Leu Gly Val Thr Ile Leu Leu Ser Leu Thr Val Phe Leu Asn Leu Val 265 270 275 gcc gag acc ctg cca cag gtc tcc gac gct atc ccc ctg tta ggg acg 979 Ala Glu Thr Leu Pro Gln Val Ser Asp Ala Ile Pro Leu Leu Gly Thr 280 285 290 295 tac ttc aat tgc atc atg ttc atg gta gcg tcg tct gtg gta ctg act 1027 Tyr Phe Asn Cys Ile Met Phe Met Val Ala Ser Ser Val Val Leu Thr 300 305 310 gtg gtg gta ctc aat tac cac cat cga aca gct gat ata cat gaa atg 1075 Val Val Val Leu Asn Tyr His His Arg Thr Ala Asp Ile His Glu Met 315 320 325 cca cag tgg ata aaa tca gta ttc cta caa tgg ttg cca tgg ata ctg 1123 Pro Gln Trp Ile Lys Ser Val Phe Leu Gln Trp Leu Pro Trp Ile Leu 330 335 340 cga atg tcg agg cca ggg aag aag atc acc agg aag act ata atg atg 1171 Arg Met Ser Arg Pro Gly Lys Lys Ile Thr Arg Lys Thr Ile Met Met 345 350 355 aac acg agg atg agg gag ctg gaa ctg aag gag agg tcg tcg aag tcc 1219 Asn Thr Arg Met Arg Glu Leu Glu Leu Lys Glu Arg Ser Ser Lys Ser 360 365 370 375 ttg ctg gcg aat gtt cta gat att gat gat gac ttc aga cac ggc cct 1267 Leu Leu Ala Asn Val Leu Asp Ile Asp Asp Asp Phe Arg His Gly Pro 380 385 390 ccg cct cct aac agt act gcc tcg acc ggg aat ttg gga cct ggg tgc 1315 Pro Pro Pro Asn Ser Thr Ala Ser Thr Gly Asn Leu Gly Pro Gly Cys 395 400 405 tca ata ttc cgc acg gat ttc cgt cgg tcg ttc gtc cgt ccg tcc acg 1363 Ser Ile Phe Arg Thr Asp Phe Arg Arg Ser Phe Val Arg Pro Ser Thr 410 415 420 atg gaa gac gtg ggc ggc ggg ctg ggt agc cac cat cgc gag ctg cac 1411 Met Glu Asp Val Gly Gly Gly Leu Gly Ser His His Arg Glu Leu His 425 430 435 ctc ata ctg aga gag ctg cag ttc atc acg gcc agg atg aag aag gct 1459 Leu Ile Leu Arg Glu Leu Gln Phe Ile Thr Ala Arg Met Lys Lys Ala 440 445 450 455 gat gag gaa gcc gag ctg atc agc gac tgg aag ttt gct gcg atg gtt 1507 Asp Glu Glu Ala Glu Leu Ile Ser Asp Trp Lys Phe Ala Ala Met Val 460 465 470 gtt gat agg ttt tgc ctg ttc gtg ttc aca ctt ttc aca atc atc gcg 1555 Val Asp Arg Phe Cys Leu Phe Val Phe Thr Leu Phe Thr Ile Ile Ala 475 480 485 aca gta gct gtc ctg tta tcg gca ccg cat atc atc gtg caa 1597 Thr Val Ala Val Leu Leu Ser Ala Pro His Ile Ile Val Gln 490 495 500 tgaaccaacc actgagccgg caactccggc gcatgaatga gagaaataat tattagatcg 1657 ccgatttgta attataattg ataatgtaat taaattaaat acgtggttga aacgcacacg 1717 tctccataac aaagtcttaa gacattaaat tatgataaat ttacatattg tagttaagtc 1777 gagtgttgat ggaaatttta gccggcgcaa ggagtttcgt gaaggtctgt atatattttt 1837 tcttattgtt gtatattgta tcgttgttca tgttttcttt caggaagtga gctttgtact 1897 gtttgtttct tcgatggcag gtgcacttca gttcaggctg aaatttccat taacatttat 1957 ttaaacaaat gtgatgttga ctaggatgtt atacagataa atgttgacgt gtataatttg 2017 ttaaaataaa caatattaat tactattact aaacgatatt ataaacgaag tactaacgag 2077 ggttacttta atgggaagaa cgctaagctg gcacagagtt gcattaattt gaaaaaagaa 2137 attacggaaa aaagtttatt gaaaattgaa ctttttggaa ggaaagtaac gtttgatcaa 2197 aaaagtttgt aaaacgaaag ttcggttctg cgccaatact ggaattaaaa ttctcgtaaa 2257 tattagggaa aagaaggtcc tttaaaacaa aagatttgaa ccggcatcct ttttacaagt 2317 aatgagggat cacagatgat gacaaaaaac cttagggtat ataagtaatg tacataatgg 2377 atcaaatatc ggtagagtca agaatagtta acgatttaag attattccat tcgatattaa 2437 aattcgatta gcgattgtcg ctgcgtctac tttgatacat atcgatttga atcgatattg 2497 tataaattta gatagatcgg acattagtaa tgagtatgga cgttttaatt tttaaaaaag 2557 aatgtactac gaagattaaa tccaggaatt gttaaacagt tatggaattg ataagaaatc 2617 aacaattaat acggaaccaa aggtagacta ggtgtagcat caggagattg aattaaaaca 2677 taaattagga ccgacttaaa tggaacttgc gagtgtattg ataacttttt aatttaaaaa 2737 ctcattgtcg attaaatgga gaataacttt tgatctctcg tatcgataaa tgctcactta 2797 actatcgata gcgtaatatt ataactgtta gtatatcgat atgggagtaa gtcactagca 2857 tcagaaatag tcattaatta ggaatcggtt tgtgttaatg ttatgcttag cgaaaatatt 2917 acaatgctgt tgatatcact aaccatcacg taaccatatt gataaaatgt aaatacagaa 2977 tattgcggtg tgtatttgta tataaatttt agaaaaaaaa aaaaaaaaaa aactcgagag 3037 tacttctaga gcggccgcgg gcccatcgat tttccacccg ggtggggtac caggtaagtg 3097 tacccaattc gc 3109
【図1】ニコチンの添加後に実施例2に記述したように
組み換えで改変されている細胞中で起こる細胞内カルシ
ウムの増加を示す。
組み換えで改変されている細胞中で起こる細胞内カルシ
ウムの増加を示す。
フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C12N 5/10 C12Q 1/68 A C12Q 1/68 G01N 33/15 Z G01N 33/15 33/50 Z 33/50 C12N 5/00 B //(C12N 1/21 C12R 1:19) (72)発明者 ナドヤ・エラース ドイツ50670ケルン・シユタインフエルダ ーガツセ9 (72)発明者 トマス・シユルテ ドイツ51061ケルン・アンデアルテン6
Claims (21)
- 【請求項1】 (a)配列番号1、配列番号3または配
列番号5の配列、 (b)(a)に定義された配列の少なくとも14塩基対
の長さの部分配列、 (c)60℃で2 x SSC中、好ましくは60℃で
0.5x SSC中、特に好ましくは60℃で0.2 x
SSC中で(a)に定義された配列とハイブリダイズ
する配列、 (d)配列番号1の位置1295ないし位置2195の
間、または配列番号3の位置432ないし位置1318
の間、 または配列番号5の位置154ないし位置1123の間
で、(a)に定義された配列と少なくとも70%の同一
性を示す配列、 (e)(a)に定義された配列に相補的な配列、及び (f)遺伝暗号の縮重のために、(a)ないし(d)に
定義された配列と同じアミノ酸配列をコードする配列か
ら選択される配列を含んでなる核酸。 - 【請求項2】 請求項1の少なくとも1つの核酸を含ん
でなるベクター。 - 【請求項3】 原核または真核細胞における核酸の発現
を保証する調節配列に核酸が機能的に連結されることを
特徴とする、請求項2のベクター。 - 【請求項4】 請求項1の核酸または請求項2もしくは
3のベクターを含有する宿主細胞。 - 【請求項5】 原核または真核細胞であることを特徴と
する、請求項4の宿主細胞。 - 【請求項6】 原核細胞がエシェリキア・コリ(E.c
oli)であることを特徴とする、請求項5の宿主細
胞。 - 【請求項7】 真核細胞が哺乳類細胞または昆虫細胞で
あることを特徴とする、請求項5の宿主細胞。 - 【請求項8】 請求項1の核酸によりコードされるポリ
ペプチド。 - 【請求項9】 請求項8の少なくとも1つのポリペプチ
ドを含んでなるアセチルコリン受容体。 - 【請求項10】 (a)請求項1の核酸の発現を保証す
る条件下で請求項4ないし7のいずれかの宿主細胞を培
養し、そして(b)細胞または培養培地からポリペプチ
ドを単離することを含んでなる、請求項8のポリペプチ
ドの製造方法。 - 【請求項11】 請求項8のポリペプチドまたは請求項
9の受容体と特異的に反応する抗体。 - 【請求項12】 請求項1の核酸を含有するトランスジ
ェニック無脊椎動物。 - 【請求項13】 ドロソフィラ・メラノガスタ(Dro
sophila melanogaster)またはセ
ノラブディティス・エレガンス(Caenorhabd
itis elegans)であることを特徴とする、
請求項12のトランスジェニック無脊椎動物。 - 【請求項14】 請求項1の核酸または請求項2もしく
は3のベクターを導入することを含んでなる、請求項1
2または13のトランスジェニック無脊椎動物の製造方
法。 - 【請求項15】 請求項12または13の無脊椎動物の
トランスジェニック子孫。 - 【請求項16】 以下の工程: (a)それ自体既知の方法で完全に化学合成を実施する
か、または(b)オリゴヌクレオチドを化学的に合成
し、オリゴヌクレオチドを標識し、オリゴヌクレオチド
を昆虫cDNAライブラリーのDNAにハイブリダイズ
させ、陽性クローンを選択し、そして陽性クローンから
ハイブリダイズするDNAを単離するか、または(c)
オリゴヌクレオチドを化学的に合成し、そしてPCRに
より標的DNAを増幅することを含んでなる、請求項1
の核酸の製造方法。 - 【請求項17】 昆虫細胞において請求項1の核酸の転
写を自然に制御し、そして特異的発現を保証する調節領
域。 - 【請求項18】 以下の工程: (a)請求項4ないし7のいずれかの宿主細胞を与え、 (b)化合物または多数の化合物を含んでなるサンプル
の存在下で宿主細胞を培養し、そして (c)改変された受容体特性を検出することを含んでな
る、植物保護のための新規な有効化合物、特に請求項9
の受容体の導電性を変える化合物の発見方法。 - 【請求項19】 以下の工程: (a)請求項4ないし7のいずれかの宿主細胞、請求項
8のポリペプチドまたは請求項9の受容体を宿主細胞、
ポリペプチドまたは受容体と化合物の相互作用を可能に
する条件下で化合物または化合物の混合物と接触させ、
そして(b)受容体に特異的に結合する化合物を決定す
ることを包含する、請求項9の受容体に結合する化合物
の発見方法。 - 【請求項20】 以下の工程: (a)請求項4ないし7のいずれかの宿主細胞または請
求項11もしくは12のトランスジェニック無脊椎動物
を化合物または化合物の混合物と接触させ、 (b)受容体濃度を測定し、そして (c)受容体の発現に特異的に影響を及ぼす化合物を決
定することを含んでなる、請求項9の受容体の発現を変
える化合物の発見方法。 - 【請求項21】 植物保護のための新規な有効化合物を
発見するためまたは昆虫において機能的に類似したアセ
チルコリン受容体を合成することに関与するポリペプチ
ドをコードする遺伝子を発見するための請求項1の少な
くとも1つの核酸、請求項2もしくは3のあるベクタ
ー、請求項16のある調節領域または請求項11のある
抗体の使用。
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- 1999-04-30 US US09/303,232 patent/US6933131B2/en not_active Expired - Fee Related
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