HUT67035A - New process for the production of steroidal glycosides derivatives - Google Patents
New process for the production of steroidal glycosides derivatives Download PDFInfo
- Publication number
- HUT67035A HUT67035A HU9401374A HU9401374A HUT67035A HU T67035 A HUT67035 A HU T67035A HU 9401374 A HU9401374 A HU 9401374A HU 9401374 A HU9401374 A HU 9401374A HU T67035 A HUT67035 A HU T67035A
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- tigogenin
- zinc
- cellobioside
- keto
- heptaalkanoate
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07J—STEROIDS
- C07J71/00—Steroids in which the cyclopenta(a)hydrophenanthrene skeleton is condensed with a heterocyclic ring
- C07J71/0005—Oxygen-containing hetero ring
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Steroid Compounds (AREA)
Description
A találmány tárgya eljárás szteroid glikozid-származékok előállítására; a találmány tárgya közelebbről a közbenső termékként alkalmazott szteroid peracil glikozid-származékok előállítására szolgáló eljárás.
A tigogenin β-Ο-cellobiozid ismert vegyület, amely vegyületet a hypercholesterolemia és atherosclerosis kezelésére alkalmaznak (Malinow, 4,602,003; és a 4,602,005 számú Amerikai Egyesült Államok-beli szabadalmi leírás; Malinow és társai: Steroids, 48. kötet, 197 - 211. oldal, /1986/). Mindkét szabadalmi leírásban e vegyület előállítását ismertetik, ahol kiindulási anyagként α-D-cellobióz-okta-acetátot használnak. Az első eljárásnál glikozil-bromid-hepta-acetátot tigogeninnel kapcsolnak össze ezüst-karbonát jelenlétében, majd a kapott vegyületet hidrolizálják. A második megoldásnál ón-klorid katalizátor jelenlétében a cellobióz-okta-acetátot közvetlenül tigogeninnel kapcsolják össze metilén-klorid jelenlétében, majd hidrolízist végeznek. A Malinow és munkatársai szerint ismertetett műveletnél cellobióz-okta-acetátot titánium-tetrabromiddal reagáltatva cellobiozil-bromid-hepta-acetátot kapnak, amit tigogeninnel kapcsolnak össze higany-cianid segítségével, majd a kapott vegyületet hidrolizálják. Mindezen módszerek számos hátránnyal rendelkeznek, amikor gyógyászati készítményhez felhasználandó termék előállításáról van szó. A találmány szerinti megoldás célja, hogy olyan megoldást dolgozzon ki, amelyhez nem szükséges toxikus és/vagy drága reagenseket alkalmazni és amely módszer segítségével a tigogenin β-0-cellobiozidot tiszta állapotban lehet előállítani, anélkül, hogy hosszadalmas és költséges tisztítási lépéseket kelljen beiktatni.
Schmidt: Angew. Chem. Int. Ed. Engl. angol nyelvű kiadás 25. kötet 212 - 235. oldalán (1986) az O-glikozil-trikór-acetamidát-származékok előállítását és reakcióit ismertetik, ahol e vegyületet olyan cukrokból kiindulva állítják elő, amelyben 1-hidroxi-csoport van (de ahol az egyéb hidroxid-csoportok védőcsoporttal, így például benzilvagy acetilcsoporttal vannak ellátva); a művelet során a vegyületet egy bázis jelenlé• * ···
-3tében triklór-acetonitrillel reagáltatják. A reakció során elsősorban α-anomer képződik, ha nátrium-hidridet alkalmaznak bázisként; abban az esetben, ha bázisként kálium-karbonát szerepel főleg β-anomer képződik. Abban az esetben, ha a tetrabenzil-glikozil-triklór-acetimidát α-anomerjét koleszterinnel kapcsolják össze anomer-elegy képződik, amelynek jellege függ az alkalmazott katalizátortól (p-toluol-szulfonsav vagy bór-trifluorid-éterát) és a hőmérséklettől (-40 és +20 °C közötti hőmérséklet). Ezen túlmenően megállapították, hogy a tetraacetil-glikozil-analógból mind az a- mind a β-anomer esetén kizárólag β-anomer termék képződik.
Fentiekből következik, hogy ezen a szakterületen a szteroid glikozidok sztereospecifikus előállítására vonatkozóan folyamatosan történtek újabb és újabb kísérletek.
A találmány tárgya tiogenin β-Ο, 11-ketotigogenin β-Ο, hecogenin β-Ο, vagy diosgenin β-Ο cellobiozid hepta-alkanoát előállítására szolgáló eljárás, ahol nagyobb β-anomer szelektivitást tudunk elérni kedvezőbb hozammal. A találmány szerinti eljárás különösen alkalmas tigogenin β-Ο-cellobiozid hepta-alkanoátok előállítására, amely vegyület az ismert hipocholesterolemiás hatású tigogenin β-Ο-cellobiozid kiindulási anyaga. A találmány szerinti eljárás során a-cellobiozil-bromid-hepta-alkanoátot és β-tigogenint, 11-B-ketotigogenint, β-hecogenint vagy β-diosgenint reagáltatunk cink-fluorid vagy cink-cianid jelenlétében olyan körülmények között, amelyek alkalmasak a tigogenin β-Ο-, 11-ketotigogenin β-Ο, hecogenin β-Ο-, vagy diosgenin β-0-cellobiozid-hepta-alkanoát előállítására.
A találmány szerinti megoldás előnyeit és jellegzetességeit a leírásban részletezzük.
Az α-cellobiozil-bromid-hepta-alkanoát és a β-tigogenin, 11-keto-B-tigogenin, β-hecogenin vagy β-diosgenin sztereospecifikus reakciójához fémsóként célszerűen cink-fluoridot vagy cink-cianidot alkalmazunk. Különösen előnyös ha fémsóként cink• · — 4-fluorid szerepel. Előnyös, ha a fémsót mintegy 0,5 ekvivalens - mintegy 4 ekvivalens, még előnyösebben mintegy 1,5 ekvivalens - mintegy 2,25 ekvivalens mennyiségben alkalmazzuk.
Célszerű a cink-fluorid vagy cink-cianid segítségével aktivált kapcsolási reakciót valamely egyéb cinksó, így például cink-halogenid (cink-bromid, cink-klorid, cink-jodid) vagy bázikus cinksó (így például cink-oxid, cink-hidroxid, cink-hidroxi-fluorid, cink-karbonát, stb.) jelenlétében végezni. íly módon a promoterként alkalmazott cink-fluorid vagy cink-cianid fémsó hatását fokozzuk vagy a promotert megfelelően pufferoljuk. Pufferként célszerűen használhatunk trialkil-tercier-aminokat (így például diizopropil-etil-amint, trietil-amint, tributil-amint), tetraalkil-karbamidot (így például tetrametil-karbamidot, tetraetil-karbamidot) vagy dialkil-anilin-származékokat (így például diizopropil-anilint, dibutil-anilint), ezen adalékanyagokat általában 10-50 mólekvivalens mennyiségben alkalmazzuk a promoter móljaira számítva.
Noha bármely, 1-4 szénatomos alkanoáttal szubsztituált a-cellobiozil-bromid-származékot alkalmazhatjuk, előnyös, ha acetátot használunk. E vegyületeket hagyományos kiindulási anyagokból állíthatjuk elő K. Freudenberg és W. Nagai módszere szerint (Ann., 494, 63 /1932/ {lásd a 3. példát}). Előnyös, ha mintegy 0,5 ekvivalens - 3 ekvivalens, még előnyösebb, ha 1 ekvivalens - mintegy 2 ekvivalens mennyiségű 1 - 4 szénatomos alkanoáttal szubsztituált α-cellobiozil-bromidokat használunk.
Bármely közömbös oldószert alkalmazhatunk a reakcióhoz. A fentiekben és a leírás egyéb helyein alkalmazott a reakcióra nézve közömbös oldószer kifejezés olyan oldószerre vonatkozik, amely nem reagál a kiindulási vegyületekkel közbenső vegyületekkel vagy a végtermékkel és ezek hatására nem is bomlik el olyan mértékben, hogy ez a végtermék hozamát kedvezőtlenül befolyásolná. Általában az oldószer egy vagy több komponensből állhat. Előnyösen az oldószer nem-protonos, a reakcióra nézve közömbös és különösen előnyös, ha az oldószer acetonitril, figyelembe véve • ··
-5ezen oldószer kiváló sztereoszelektivitását. Az egyéb célszerűen alkalmazható oldószerek közül megemlítjük a metilén-kloridot, etil-acetátot és nitrometánt.
Előnyös, ha a reakcióhoz savas katalizátort használunk, minthogy ez a β-cellobiozid termék szelektivitását az α-cellobiozid anomer termékhez viszonyítva fokozza. Savként előnyösen ásványi savat használunk. Különösen eredményes, ha hidrogén-bromidot használunk a B-cellobiozid termék hozamának fokozására. Az egyéb előnyösen alkalmazható savak között említjük meg a sósavat, hidrogén-fluoridot, valamint a kénsavat. Előnyös, ha az alkalmazott katalizátor mennyisége mintegy 0,05 ekvivalens és mintegy 2 ekvivalens között, célszerűen mintegy 0,1 ekvivalens és mintegy 0,5 ekvivalens között van.
A β-tigogenin előállítását az irodalomban részletesen leírják (2,991,282 számú és a 3,303,187 számú Amerikai Egyesült Államok-beli szabadalmi leírás /Rubin/, a 3,935,194 számú Amerikai Egyesült Államok-beli szabadalmi leírás /Lökén, B./, valamint Caglioti és munkatársainak a Tetrahedron 19, 1127 /1963/ helyen megjelent közleménye). A β-tigogenin szerkezetét az (A.) képlet mutatja be.
A β-hecogenin előállítását Russel, E. Marker és munkatársai: J. Amer. Chem. Soc., 69, 2167 - 2211 (1947) szakirodalmi helyen ismertetik. A vegyület szerkezetét a (E ) képlet szemlélteti.
A 11-keto-B-tiogeninben a karbonilcsoport a 12-helyzetböl a 11-helyzetbe megy át a (B ) képlet esetében. A 11-keto-B-tiogenint hecogeninböl kiindulva állítják elő az alábbiak szerint: Conforth és munkatársai által kidolgozott eljárásnál (J. Chem. Soc., 907, /1954/) hecogenint acetilezik, brómozzák, nátrium-hidroxiddal kezelik, majd cinkkel redukálják. így 12-hidroxi-11-keto-analógot kapnak. Ezt követően a 12-hidroxi-11-keto-analógot acetilezik, majd kalciummal és ammóniával redukálják, így 11-keto-tigogenint kapnak.
• ·
-6Α β-diosgenin előállítását Diosgenin and Other Steroidal Drug Precursors monográfiában ismertetik (Asolkar, L. V., Chadha, Y. R. és Rawat, P. S.: Council of
Scientific and Industrial Research, New Delhi, India, 183. oldal /1979/; e vegyület előállítását írják le Kawasaki T. és munkatársai is: Chem., Pharm. Bull., Japan, 10, 698 /1962/). E vegyület szerkezetét a (C ) képlet mutatja.
Célszerűen mintegy 1 ekvivalens - mintegy 2 ekvivalens szteroidot alkalmaznak. Különösen előnyös, ha mintegy 1 ekvivalens - mintegy 1,5 ekvivalens szteroid kerül felhasználásra. A tigogenin, 11-keto-tigogenin, hecogenin- és diosgenin-S-O-cellobiozid-hepta-alkanoát előállításánál általában olyan reakciókörülmények (így például hőmérséklet, idő, oldószer) alkalmazhatók, amelyek e vegyületek előállítását elősegítik. Célszerű azonban, hogyha a reakciót mintegy 20 °C és mintegy 100 °C között, előnyösen mintegy 50 °C és mintegy 65 °C között végezzük. 20 °C hőmérséklet alatt a reakció lelassul, 100 °C hőmérséklet felett pedig nemkívánatos mellékreakciók (így például anomerizáció) indulhat el. A műveletet célszerűen légköri nyomáson végezzük, de alkalmazhatunk mintegy 0,5 és mintegy 3 atm közötti nyomást is.
A reakcióhoz használt szteroid-származék, fémsó és oldószer elegyét visszafolyató hűtő alkalmazásával és kellő mennyiségű oldószer felhasználásával azeotrópos desztillációnak vetjük alá, így lényegében az összes jelenlévő vizet eltávolítjuk. Ezt követően a cellobiozil-bromid-hepta-acetátot a fenti elegyhez adagoljuk, majd mintegy 0,5 - mintegy 6,0 óra hosszat az elegyet hőkezeljük, általában nitrogéngáz bevezetése közben. Az előállítani kívánt vegyületet ezt követően szokásos módszerekkel különítjük el.
így például a glikozid-származékokat a nyers, szűrt reakcióelegyböl (így például acetonitriles oldatból) lecsapással oly módon különítjük el, hogy az elegyhez mintegy 25 % - 75 % vizet és a megmaradt mennyiségű alkoholt (így például metanolt) adunk. Abban az esetben, ha a terméket a vizes metanol/acetonitril tartalmú oldatból
-7lecsapással különítjük el, a művelet egyszerűbb, mintha extrakciós elkülönítést végzünk, és a terméket nagyobb tisztasággal is kapjuk.
A szteroid peracil-glikozid-származékokat hagyományos módszerrel dezacilezhetjük, e művelethez metanolos trietil-amint, bázikus anioncserélö gyantát vagy nátrium-metoxidnak metanolos oldatát vagy metanol/THF-eleggyel készült oldatát (lásd az alább következő 2. példát) használjuk. így például a dezacetilezett terméket oly módon állíthatjuk elő, hogy nem-katalitikus mennyiségű nátrium-metoxid jelenlétében visszafolyató hűtő alkalmazásával a metanol/THF elegyet forraljuk, majd az elegyet szokásos módon feldolgozzuk. A fluor-cukor elbontásához metoxid-felesleget használunk az esetben, ha β-cellobiozil-fluorid-heptaacetát van jelen, egyébként a dezacetilezés nátrium-metoxidban katalitikusán megy végbe. A tigogenil-S-O-cellobiozidot és ennek analógjait szokásos módon különítjük el, így például szűréssel.
Noha a fenti eljárás a β-konfigurációjú szteroid-glikozid-származékok előállítására lett tervezve, a ternodinamikai szempontból stabilabb α-anomerek is előállíthatok, ha a β-glikozid-származékokat savval katalizálva izomerizáljuk. így például tigogenil a-O-cellobiozid-hepta-alkanoátot állíthatunk elő tigogenil-B-O-cellobiozid-hepta-alkanoátból kiindulva, ha β-glikozidot hidrogén-bromidot tartalmazó metilén-kloridos oldatban hökezelünk.
A reakciókomponensek sztöchiometrikus arányának, a hőmérsékletnek, az alkalmazott oldószereknek és molekulaszűröknek, továbbá a felhasznált hidrogén-bromidnak a sztereoszelektivitásra és a tigogenil-&-O-cellobiozid-hepta-acetát hozamára kifejtett hatását az 1. táblázat foglalja össze (az előállítást az 1. példában leírtak szerint végezzük).
-81. Táblázat
Cink-fluoríddal vagy cianiddal katalizált eljárás glikozidnak tigogeninnel való kapcsolásánál
Ekvivalensek
Glikozil-Br 2,00 | Aktivátor ZnF2 (4,00) | Tiqoaenin 1,0 | Oldószer CH3CN | Szűrők nincs | Idő/hőmérséklet 2,5 óra/ 65 ’C | β-qlikozid hozam 79 % |
1,50 | ZnF2 (3,00) | 1,0 | ch3cn | nincs | 2,5 óra /65 ’C | 68 % |
0,50 | ZnF2 (1,00) | 1,0 | ch3cn | nincs | 3,0 óra /65 ’C | 32 % |
0,50 | ZnF2 (1,00) Hbr(0,38) | 1,0 | ch3cn | nincs | 1,5 óra/65 ’C | 30% |
2,00 | ZnF2 (4,00) | 1,0 | ch2ci2 | nincs | 3,0 óra /43 ’C | 10 % 25 % (a-ano- mer) |
2,00 | ZnF2 (4,00) | 1,0 | Toloul | 4Á | 20 óra /65 °C | 41 % |
2,00 | ZnF2 (4,00) | 1,0 | CH2Cl2/CH3CN (2/13) | nincs | 1,5 óra /65 ’C | 64% |
1,00 | ZnF2 (2,00) Hbr (0,75) | 2,0 | CH3CN | nincs | 1,0 óra/65 ’C | 30 % |
0,50 | ZnF2 (0,50) | 1,0 | ch3cn | nincs | 22 óra /50 °C | 38 % |
2,00 | ZnF2 (4,00) | 1,0 | ch3cn | nincs | 1,75 óra /80 ’C | 76 % |
0,50 | ZnF2 (0,50) | 1,0 | ch3cn | nincs | 1,75 óra /80 ’C | 53 % |
1,25 | ZnF2 (2,25) | 1,0 | ch3cn | nincs | 1,75 óra/80 ’C | 61 % |
2,00 | Zn(CN)2 (4,00) | 1,0 | ch3cn | nincs | 2,0 óra /65 ’C | 63 % |
2,10 | Zn(CN)2 (5,60) | 1,0 | ch3cn | nincs | 3,0 óra /65 ’C | 55 % |
1,50 | Zn(CN)2 | 1,0 | ch3cn | nincs | 2,5 óra/65 ’C | 45 % |
(4,00)
A cink-fluoriddal aktivált glikozid kapcsolást megismételjük hecogeninnel és diosgeninnel az 1. példában a β-tigogenin-glikozidos kapcsolásnál leírtak analógiájára. Az egyéb származékokkal nyert eredményeket a 2. táblázatban foglaljuk össze.
• ·
-92. Táblázat
Cink-fluorid jelenlétében végzett glikozid kapcsolások hecogenin vagy diosgenin esetében
Ekvivalensek ··· • · ·· ···
Glikozil-Br | Aktivátor | Szterin | Oldószer | Szűrök | Idő/hőmérséklet | β-qlikozid hozam |
2,00 | 2,25 | koleszterin | CH3CN | nincs | 2,25 óra/65 °C | 63 % |
(1,0) | ||||||
2,00 | 2,25 | hecogenin | ch3cn | nincs | 3,0 óra/65 °C | 72 % |
(1,0) | ||||||
2,00 | 2,25 | diosgenin | ch3cn | nincs | 2,5 óra/65 °C | 65 % |
A találmány szerinti megoldással jelentős előrehaladás történik a szteroid glikozidák szintézise területén; a találmány szerinti megoldással jó eredménnyel állíthatók elő szteroid peracil glikozid-származékok. A dezacetilezés után kapott végtermékek eredményesen alkalmazhatók a magas koleszterinszint csökkentésére.
A találmány szerinti megoldást az alábbi példák szemléltetik a korlátozás szándéka nélkül. A találmány tárgya nem korlátozódik a példákban ismertetett adott megoldásra, számos módosítás és eltérés iktatható be anélkül, hogy a találmány szerinti megoldás lényegétől és szellemétől eltérnénk.
1. PÉLDA
Tigogenilü-O-cellobiozid-hepta-acetát
Mechanikus keverővei, hőmérővel és visszafolyató hűtővel ellátott száraz lombikba 4,16 g (0,01 mól) β-tigogenint, 4,13 g (0,04 mól) vízmentes cink-fluoridot és 160 ml vízmentes acetonitrilt adunk. A szuszpenziót visszafolyató hütő alkalmazásával forrásig melegítjük (85 °C), majd desztillálást végzünk, 90 ml desztillátumot eltávolítunk, a maradékhoz 60 ml friss vízmentes acetonitrilt adunk. Az elegyet 25 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd Kari Fisher-vízmeghatározáshoz mintát veszünk ki (K. F. = 0,02 % H2O).
·· · · · • ·
- ΙΟΙ 4,00 g (0,02 mól) α-cellobiozil-bromid-hepta-acetátot adunk a lombik tartalmához, majd a szuszpenziót nitrogénatmoszférában 65 °C-ra felmelegítjük. Ezt követően az elegyet 2,5 óra hosszat 65 °C hőmérsékleten tartjuk, a vékonyrétegkromatográfiás vizsgálat (tlc) [Fre .denberg K. és Nagasi W. Ann. 494, 63 (1932)] tanúsága szerint a reakció ezen időpontban teljessé válik. Ezt követően a reakcióelegyet szobahőmérsékletre lehűtjük, majd 130 ml metilén-kloridot adunk hozzá. A híg szuszpenziót Celite-n átszűrjük, a szűrletet (300 ml) telített nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, majd 70 ml vízzel mossuk. Ezt követően a szerves fázist vízmentes nátrium-szulfáttal (20 g) szárítjuk, majd szűrjük; az oldatot ezt követően 50 ml térfogatra betöményitjük a desztillációt atmoszférikus nyomáson végezve. A még meleg koncentrátumhoz 200 ml 2B-etanolt adunk, majd a zavaros oldatot mintegy 50 ml-re betöményitjük. A híg szuszpenziót 25 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd szobahőmérsékleten 90 percig daráljuk. A nyers terméket leszűrjük, a szűrletben maradó anyagot 25 ml 2B-etanollal mossuk, majd 40 °C hőmérsékleten vákuumban 17 óra hosszat szárítjuk, így 10,8 g fehér színű kristályos szilárd anyagot kapunk (o.p. = 226 - 231 °C).
A szilárd anyagot 25 ml metilén-kloridban feloldjuk, majd 75 ml 2B-etanolt adunk hozzá. A híg szuszpenziót visszafolyató hűtő alkalmazásával (105 Pa; 760 mmHg) forrásig felmelegítjük, majd 35 ml térfogatot ledesztillálunk. Az így kapott szuszpenziót szobahőmérsékletre lehűtjük, majd 90 percig daráljuk. A β-glikozidot szűrjük, majd vákuumban 40 °C hőmérsékleten 18 órán át szárítjuk, így 9,65 g fehér színű kristályos terméket kapunk (o.p. = 229 - 234 °C). A vékonyrétegkromatográfiás vizsgálat, továbbá a magasnyomású folyadékkromatográfiás ellenőrzés (hplc) azt mutatja, hogy a termék 77 % (tömeg/tömeg) tigogenil β-Ο-cellobiozid-hepta-acetátot és 15 % (tömeg/tömeg) α-cellobiozil-fluorid-hepta-acetátot tartalmaz. Az a-cellobiozil-fluorid-hepta-acetátot legkönnyebben a dezacetilezési lépés alatt távolíthatjuk el a terméktől.
-11 .· ·** ·“. *··· · : ”·« ··: ·*'. ........ ; · ..
2. PÉLDA
Tigogenil β-0-cellobiozid
50,0 g (0,048 mól) nyers tigogenil B-O-cellobiozid-hepta-acetátot 250 ml tetrahidrofurán és 250 ml metanol elegyében feloldunk, miközben az elegybe nitrogéngázt vezetünk be. A zavaros oldatot Celite ágyon átszűrjük, majd a szűriethez 0,46 g (0,008 mól) nátrium-metoxidnak 10 ml metanollal készült oldatát adjuk. Az oldatot ezután 60 °C hőmérsékletre melegítjük, majd visszafolyató hűtő alkalmazásával 1,25 óra hosszat ezen a hőmérsékleten tartjuk; így sűrű fehér színű szuszpenzió képződik. A reakcióelegyből aliquot részt veszünk ki, ezt vékonyrétegkromatográfiás vizsgálatnak vetjük alá, az eredmény szerint ezen időpontig a reakció teljesen végbemegy. 200 ml desztillátumot eltávolítva a szuszpenziót ezt követően betöményitjük, majd 200 ml vizet adunk a még forrásban lévő szuszpenzióhoz. További 200 ml desztillátumot távolítunk el, majd további 200 ml vizet adunk hozzá. A szuszpenziót szobahőmérsékletre lehűtjük, majd szűrjük. A szűrőn maradt terméket 50 ml vízzel mossuk, majd leszivatjuk. A nedves anyagot 600 ml THF és 92 ml víz elegyében visszafolyató hűtő alkalmazásával 65 °C hőmérsékletre melegítjük. 1,53 g DARCO G-60 aktív szenet adunk az oldathoz, az oldatot 15 percig keverjük, majd Celite-n átszűrjük. 460 ml desztillátumot eltávolítva az oldatot betöményitjük, majd 460 ml metanolt adunk hozzá. A metanol adagolást és betöményitést kétszer megismételjük, így egy további 80 ml desztillátumot eltávolítunk és 800 ml friss metanolt adunk a maradékhoz. Az így kapott szuszpenziót 20 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd 1 óra hosszat daráljuk. A terméket leszűrjük, 50 ml friss metanollal átöblítjük, majd a nedves terméket 300 ml friss metanolban 24 °C hőmérsékleten újra szuszpendáljuk. A kapott terméket szűrjük, majd 40 °C hőmérsékleten vákuumban 1 éjszakán át szárítjuk. 24,4 g (0,036 mól) tigogenil B-O-cellobiozidot különítünk el 74 %-os összhozammal. A spektrumadatok és a mért fizikai tulajdonságok egy hiteles minta jellemzőivel azonosak voltak.
-123. PÉLDA a-D-cellobiozíl-bromid-hepta-acetát α-D-cellobiozil-bromid-hepta-acetátot állíthatunk elő a-D-cellobioz-oktaacetátból és hidrogén-bromidból kiindulva jégecetes közegben; Freudenberg és Nagari1 módosított eljárása szerint járunk el (Freudenberg, K. és Nagari, W., Ann. 494, 63 /1932/).
%-os (tömeg/tömeg) hidrogén-bromid-oldatot (178,7 g; 0,44 mól HBr) készítünk jégecetes közegben oly módon, hogy gáz állapotú hidrogén-bromidot vezetünk jégecetbe mindaddig, amíg az oldat sűrűsége 1,212 nem lesz. Egy speciális száraz reaktorban nitrogéngáz beáramlása közben 50,0 g (0,074 mól) a-D-cellobioz-oktaacetátot oldunk fel 408 ml metilén-kloridban. A hidrogén-bromid tartalmú ecetsavoldatot ezután hozzáadjuk a diszacharid-oldathoz, így sárga színű elegyet kapunk. Az elegyet 2 óra hosszat mintegy 17 - 25 °C hőmérsékleten keverjük, majd az oldatból egy kis mennyiségű aliquot részt kiveszünk és vizsgáljuk, hogy a reakció teljes mértékben végbement-e. Amikor a vékonyrétegkromatográfiás vizsgálat (Merck-féle 60F-254 típusú előre elkészített vékonyrétegkromatográfiás célra szánt szilikagéllel bevont lemezek, amelyhez eluálószerként toluol és ecetsav 4 : 1 elegyét alkalmazzuk; a lemezeket 10 tömeg/tömeg%-os vizes kénsavoldattal bepermetezzük, majd felmelegítjük) azt mutatja, hogy a reakció teljes mértékben végbement, az oldatot 10 °C-ra lehűtjük és 0,5 I vizet adunk hozzá. Az elegyet 10 percig keverjük. A keverést leállítjuk, majd a rétegeket hagyjuk elkülönülni. A metilén-kloridos fázist dekantáljuk, majd 7,5 tömeg%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal (0,5 I), ezt követően 0,5 I vízzel mossuk. A metilén-kloridos oldatot 8 g vízmentes magnézium-szulfáttal szárítjuk, majd leszűrjük. A vízmentesítéshez használt magnézium-szulfátot 50 ml friss metilén-kloriddal átmossuk, majd a szürletet és a mosófolyadékot egyesítjük. A metilén-kloridos oldatot atmoszféra-nyomáson végzett desztillációval mintegy 0,15 I térfogatra betöményitjük, «··
-13majd szobahőmérsékletre lehűtjük. A maradékhoz lassan, mintegy 15 perc alatt keverés közben 0,6 I diizopropil-étert adagolunk, így sűrű szuszpenziót kapunk. A kapott terméket 1 óra hosszat 25 °C-on daráljuk, ezt követően leszűrjük, majd vákuumban 40 °C hőmérsékleten 4,5 óra hosszat szárítjuk. 47,6 g (92 %-os hozam) a-cellobiozil-bromid-hepta-acetátot kapunk fehér színű kristályos szilárd anyag formájában (o. p. = = 192 - 194 °C). A kapott szilárd anyag 1H-NMR-spektruma (CDCI3) a várt szerkezettel összhangban van.
4. PÉLDA
11-Keto-tigogenil-B-O-cellobiosid-hepta-acetát l-es háromnyakú gömblombikba 305 ml acetonitrilt, 5,00 g (0,011 mól) 11-keto-tigogenint és 1,65 g (0,016 mól) kristályos cink-fluoridot adunk. A szuszpenziót visszafolyató hűtő alkalmazásával 80 °C hőmérsékletre felmelegítjük, majd az elegyböl 100 ml-t ledesztillálunk. A maradék szuszpenziót szobahőmérsékletre lehűtjük, majd a maradékhoz 15,39 g (0,022 mól) α-cellobiozil-bromid-hepta-acetátot adunk. A reakcióelegyet ezt követően 60 - 65 °C hőmérsékletre felmelegítjük, majd 2 óra hosszat ezen a hőmérsékleten tartjuk. A reakcióelegyböl mintát veszünk és ellenőrizzük, hogy a reakció teljes mértékben végbement-e. A vékonyrétegkromatográfiás vizsgálathoz eluálószerként etil-acetát és hexán 1,5 : 1 arányú elegyét alkalmazzuk; a vizsgálatból kitűnik, hogy a glikozil-bromid kiindulási anyag teljes mértékben eltűnt, ezt követően a reakcióelegyet 25 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd 152 ml metilén-kloridot adunk hozzá. Az elegyet ezután 10 percig keverjük, majd Celite-n átszűrjük, a szűrőt 25 ml CH2CI2-vel átmossuk. A szúrletet és mosófolyadékot egyesítjük, 81 ml vízzel, 75 ml nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, majd 137 ml vízzel mossuk. A szerves fázist végül 11 g vízmentes magnézium-szulfáttal szárítjuk. A szárításhoz használt magnézium-szulfátot leszűrjük, majd 16 ml friss metilén-kloriddal átmossuk. A szürletet és a mosófolyadékot egyesítjük, majd csökkentett nyomás alatt eredeti térfogatának (300 • «
- 14ml) mintegy 1/4-ére betöményitjük. A kapott oldathoz 2B-etanolt (250 ml) adunk, majd az oldatot fele térfogatára (170 ml) betöményitjük. A szuszpenziót 20 - 25 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd 1 óra hosszat daráljuk. A kapott fehér színű, viaszos jellegű szilárd anyagot leszűrjük, friss 2B-etanollal (50 ml) mossuk, majd vákuumban szárítjuk 1 éjszakán át 40 °C hőmérsékleten. 9,7 g 11-keto-tigogenil-B-O-cellobiozid-hepta-acetátot kapunk (o.p. = 205 - 219 °C) 84 %-os összhozammal. A kromatográfiás és spektrumvizsgálatok eredményei szerint a kapott vegyület azonos a 11-keto-tigogenil-β-Ο-cellobiozid-hepta-acetát hiteles mintájával. Nyers 11-keto-tigogenil-B-0-cellobiozidot különíthetünk el 64 %-os hozammal a következő vizes elkülönítési módszer szerint: a nyers reakcióelegyet további friss 50 ml acetonitrillel meghigítjuk, majd Celite-n átszűrjük. A szűrlethez 290 ml metanolt adunk, majd a kapott oldatot visszafolyató hűtő alkalmazásával 1 óra hosszat 65 °C hőmérsékleten tartjuk. A forrásban levő oldathoz lassan 100 ml ionmentesített vizet adagolunk, így zavaros elegyet kapunk. Az elegyet 20 percig visszafolyató hűtő alatt forrásban tartjuk (72 °C), majd lassan szobahőmérsékletre lehűtjük, ezt követően 23 - 25 °C hőmérsékleten 1 óra hosszat daráljuk. A nyers terméket leszűrjük, vízzel mossuk, a szűrőn maradt anyagot 75 ml 2B-etanolban szuszpendáljuk, majd az elegyet visszafolyató hűtő alkalmazásával forraljuk. Ezután az elegyet szobahőmérsékletre lehűtjük, szűrjük, majd a kapott anyagot vákuumban 40 °C hőmérsékleten 1 éjszakán át szárítjuk. 64 %-os összhozammal 11-keto-tigogeηίΙ-β-Ο-cellobiozid-hepta-acetátot kapunk.
5. PÉLDA
11-Keto-tigogenil^-O-cellobiozid
11-keto-tigogenil-B-O-cellobiozid-hepta-acetátot (9,7 g; 9,2 mmól) 50 ml metanol és 50 ml tetrahidrofurán elegyében szuszpendálunk. Az elegyen nitrogéngázt áramoltatunk át, majd 0,10 g (1,9 mmól) nátrium-metoxidnak 1 ml metanollal készült oldatát adjuk hozzá. Az oldatot ezután visszafolyató hűtő alkalmazásával 61 °C hőmér-15* »· «·· ***· *··» 1 .:,. ♦ · ··: .· . » sékletre felmelegítjük, majd az elegyet 1 óra hosszat ezen a hőmérsékleten tartjuk. A kapott szuszpenzióból kivett mintán vékonyrétegkromatográfiás vizsgálatot végzünk (eluálószerként CHjCiymetanol 4 : 1 arányú elegyét alkalmazva). Ebből kitűnik, hogy a reakció teljes mértékben végbement. Atmoszféra-nyomáson végzett desztillálóval a tetrahidrofuránt teljes mértékben eltávolítjuk, esetleg 220 ml metanollal ezt elősegítjük. Összesen 180 ml desztillátumot fogunk föl. A szuszpenziót 20 - 25 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd 1 éjszakán át keverjük. A kapott terméket szűrjük, 20 - 20 ml metanollal átmossuk, majd a kapott nedves leszűrt anyagot 100 ml ionmentesített vízben újra szuszpendáljuk. A szuszpenziót leszűrjük, a kapott anyagot vákuumban 25 °C hőmérsékleten 1 éjszakán át szárítjuk, így 4,7 g 11-keto-tigogenil-B-0-cellobiozidot különíthetünk el 65,5 %-os összhozammal. Vékonyrétegkromatográfiás vizsgálatot végzünk, eszerint a termék homogénnek tekinthető; az analitikai vizsgálati eredmények a vegyület szerkezetét igazolják.
6. PÉLDA
Hidrogén-bromid előállítás in situ körülmények között
5,00 g (7,15 mmól) α-cellobiozil-bromid-hepta-acetátot és 50 ml acetonitrilt 75 ml gömblombikba viszünk, a lombikra mechanikus keverőt, hőmérőt és vákuumdesztillációs feltétet helyezünk. A reakcióelegyet nitrogéngázzal átáramoltatjuk, majd a nyomást mintegy 5.6.104 Pa-ra (425 mmHg-re) csökkentjük. Az oldatot 56 - 58 °C hőmérsékletre felmelegítjük, majd az elegyből 13 ml-t ledesztillálunk. Ezt követően az oldatot szobahőmérsékletre lehűtjük, majd a vákuumot lassan megszüntetjük. 37 ml metilén-kloridot adunk a glikozil-bromid-oldathoz, majd az oldatot kétszer 25 ml vízzel extraháljuk. A vizes fázisokat egyesítjük, majd 0,1005 n nátrium-hidroxid-oldattal fenolftalein végpontig titráljuk.
Az α-cellobiozil-bromid-hepta-acetát Hbr-sav milliekvivalens mennyiségét meghatározzuk az azeotrópos desztilláló előtt és azt követően. Az eredményeket az
··« ·« alábbi táblázat foglalja magában. A víztartalomtól függően az azeotrópos desztilláció
8-10-szeresre növeli a savtartalmat.
TITRÁLT SAVAK | |
Kiindulási a-cellobiozil-bromid-hepta-acetát-oldat | 2,1 milliekvivalens |
Azeotrópos a-cellobiozil-bromid-hepta-acetát-oldat | 16,9 milliekvivalens |
Az 1. példában leírtak szerint eljárva azeotrópos desztillációt végzünk, így a glikozil-bromid-oldatot vízmentesítjük és a savtartalmat növeljük; a reakcióidő így 65 °C hőmérsékleten 1,0 órára csökken. Ezen túlmenően magas hozamot és kedvező β-anomer szelektivitást lehetett elérni.
7. PÉLDA
Tigogenil-R-O-cellobiozid-hepta-acetát vizes elkülönítése
Cink-fluorid segítségével 0,915 mól β-tigogenint kapcsolunk össze 1,830 mól α-cellobiozil-bromid-hepta-acetáttal, a műveletet acetonitriles közegben végezzük az
1. példában leírtak szerint. Amikor a reakció teljessé vált, a nyers reakcióelegyet vizes módszerrel dolgozzuk fel, így jó minőségű tigogenil-B-O-cellobiozid-hepta-acetátot nyerünk az alábbi lépések segítségével.
A nyers reakcióelegyet Celite-n átszűrjük, így mintegy 20 I arany színű szűrletet kapunk. A szürletet 55 - 60 °C hőmérsékletre felmelegítjük, majd csökkentett nyomáson mintegy 10 l-re betöményitjük. A betöményített oldatot 50 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd 5,0 I metanolt, ezt követően lassan mintegy 30 perc alatt 7,5 I ionmentesített vizet adagolunk hozzá. 2 liter víz hozzáadása után az oldatból szilárd anyag válik le. Az így kapott elegyet visszafolyató hűtő alkalmazásával 73 °C hőmérsékletre felmelegítjük, majd 2 óra hosszat ezen a hőmérsékleten tartjuk. Ezután a szuszpenziót 25 °C hőmérsékletre lehűtjük, majd 1 éjszakán át keverjük. A kapott nyers terméket szűréssel elkülönítjük, kétszer 1,5 I térfogatú metanollal mossuk, majd vákuumban
-17··’·!· ·' ' .
·· J · ·· °C hőmérsékleten szárítjuk. 1,01 kg nyers szilárd terméket kapunk, ami a vékonyrétegkromatográfiás vizsgálat szerint 95,5 % tisztaságú. Az így kapott nyers termék mindössze 1,3 % tigogenil a-O-cellobiozid-hepta-acetátot tartalmaz, a termékben nem mutatható ki β-cellobiozil-fluorid-hepta-acetát jelenléte.
1,0 kg nyers tigogenil β-0-cellobiozid-hepta-acetátot 10,2 I 2B-etanolban szuszpendálunk nitrogéngáz bevezetése közben, majd az elegyet visszafolyató hűtő alkalmazásával 78 °C hőmérsékletre felmelegítjük. A szuszpenziót visszafolyató hűtő alkalmazásával 1,5 óra hosszat forraljuk, majd 25 °C hőmérsékletre lehűtjük és ezen a hőmérsékleten 12 óra hosszat kevertetjük. Az így kapott terméket szűréssel elkülö10 nítjük, kétszer 300 ml friss etanollal mossuk, végül 40 °C hőmérsékleten vákuumban 1 éjszakán át szárítjuk. 0,89 kg tigogenil-B-O-cellobiozid-hepta-acetátot különítünk el (74 %-os összhozam a tigogeninre számítva). A kapott fehér színű kristályos termék 98,9 %-os tisztaságú a magasnyomású folyadékkromatográfiás vizsgálat eredményei szerint; az így kapott termék mindössze 0,5 tömeg% izomer α-anomert tartalmaz.
Claims (12)
- SZABADALMI IGÉNYPONTOK1. Eljárás tigogenin-, 11-keto-tigogenin-, hecogenin- vagy diosgenin-B-O-cellobiozid-heptaalkanoát előállítására, azzal jellemezve, hogy valamely (I) általános képletű a-cellobiozil-bromid-hepta-alkanoátot - ahol a képletben R jelentése 1 - 4 szénatomos alkilcsoport -, egy szteroiddal, így β-tigogeninnel, 11-keto-B-tigogeninnel, B-hecogeninnel vagy B-diosgeninnel reagáltatunk cink-fluorid vagy cink-cianid jelenlétében.
- 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fémsóként cink-fluoridot alkalmazunk, továbbá a kiindulási anyagban R jelentése metilcsoport, valamint a reakciót nem-protonos közömbös oldószerben végezzük.
- 3. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy szteroidként B-tigogenint vagy 11-keto-B-tigogenint alkalmazunk.
- 4. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a műveletet savval katalizáljuk.
- 5. A 4. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a savas katalízishez hidrogén-bromidot vagy hidrogén-fluoridot használunk.
- 6. Az 5. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a műveletet cink-bromid, cink-klorid, cink-jodid, cink-hidroxi-fluorid, cink-oxid, cink-karbonát, cink-hidroxid, trialkil-tercier-amin, tetraalkil-karbamid vagy Ν,Ν-dialkil-anilin-származék jelenlétében végezzük.
- 7. A 6. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a műveletet mintegy 20 °C és mintegy 100 °C közötti hőmérsékleten végezzük és kiindulási anyagként mintegy 1-2 ekvivalens 11-keto-B-tigogenint, mintegy 0,5 - 4 ekvivalens cink-fluoridot, és mintegy 0,5 - 3 ekvivalens α-cellobiozil-bromid-heptaalkanoátot alkalmazunk.
- 8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy oldószerként acetonitrilt és mintegy 0,05 - 2 ekvivalens hidrogén-bromidot használunk.
- 9. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az acetonitriles közegből az 1-O-szteroid szerkezetű peracil-B-glikozid-származékokat mintegy 25 %- 75 % vizet tartalmazó alkohollal csapjuk ki.
- 10. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a tigogenil-B-O-cello-5 biozid-heptaalkanoátot dezacetilezve tigogenil-B-O-cellobiozidot állítunk elő.
- 11. A 10. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a dezacetilezést nátrium-metoxidnak metanolos oldatával végezzük.
- 12. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy szteroidként 11-keto-tigogenint használunk.A bejelentő helyett a meghatalmazott:Aktaszámunk: 79292-4185A/FE-KOÜgyintézőnk: dr. Farkas Erzsébet
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US79757491A | 1991-11-25 | 1991-11-25 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU9401374D0 HU9401374D0 (en) | 1994-08-29 |
HUT67035A true HUT67035A (en) | 1995-01-30 |
Family
ID=25171219
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU9401374A HUT67035A (en) | 1991-11-25 | 1992-10-15 | New process for the production of steroidal glycosides derivatives |
Country Status (13)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0619822A1 (hu) |
JP (1) | JPH0826064B2 (hu) |
AU (1) | AU659506B2 (hu) |
CA (1) | CA2123684A1 (hu) |
FI (1) | FI942394A0 (hu) |
HU (1) | HUT67035A (hu) |
IL (1) | IL103797A0 (hu) |
MX (1) | MX9206761A (hu) |
NZ (1) | NZ245244A (hu) |
PT (1) | PT101088A (hu) |
TW (1) | TW232699B (hu) |
WO (1) | WO1993011150A1 (hu) |
ZA (1) | ZA929081B (hu) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5563259A (en) * | 1992-06-26 | 1996-10-08 | Pfizer Inc. | Process for making β-O-cellobiosyl steroid derivatives and trimethyl silyl steroid intermediates used therein |
US5606041A (en) * | 1992-06-26 | 1997-02-25 | Pfizer Inc. | Process for steroidal peracyl glycosides |
SK158394A3 (en) * | 1992-06-26 | 1995-05-10 | Pfizer | Steroidal glycosides |
PL311278A1 (en) * | 1993-04-28 | 1996-02-05 | Pfizer | Crystalline glycosidal spirostantil monohydrate |
US5502038A (en) * | 1993-06-21 | 1996-03-26 | Medical Research Foundation Of Oregon | Cholesterol sequestrant glycosides that inhibit intestinal cholesterol absorption |
AU7948394A (en) * | 1993-12-28 | 1995-07-17 | Pfizer Inc. | Hypocholesterolemic agents |
WO1996038466A1 (en) * | 1995-05-29 | 1996-12-05 | Pfizer Inc. | Steroidal glycosides |
US5756470A (en) * | 1996-10-29 | 1998-05-26 | Schering Corporation | Sugar-substituted 2-azetidinones useful as hypocholesterolemic agents |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4602003A (en) * | 1982-05-17 | 1986-07-22 | Medical Research Foundation Of Oregon | Synthetic compounds to inhibit intestinal absorption of cholesterol in the treatment of hypercholesterolemia |
US4602005A (en) * | 1982-05-17 | 1986-07-22 | Medical Research Foundation Of Oregon | Tigogenin cellobioside for treating hypercholesterolemia and atherosclerosis |
-
1992
- 1992-10-15 AU AU27758/92A patent/AU659506B2/en not_active Ceased
- 1992-10-15 JP JP5510090A patent/JPH0826064B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1992-10-15 CA CA002123684A patent/CA2123684A1/en not_active Abandoned
- 1992-10-15 WO PCT/US1992/008638 patent/WO1993011150A1/en not_active Application Discontinuation
- 1992-10-15 EP EP92921860A patent/EP0619822A1/en not_active Withdrawn
- 1992-10-15 HU HU9401374A patent/HUT67035A/hu unknown
- 1992-10-20 TW TW081108325A patent/TW232699B/zh active
- 1992-11-19 IL IL103797A patent/IL103797A0/xx unknown
- 1992-11-23 PT PT101088A patent/PT101088A/pt not_active Application Discontinuation
- 1992-11-24 MX MX9206761A patent/MX9206761A/es not_active IP Right Cessation
- 1992-11-24 NZ NZ245244A patent/NZ245244A/en unknown
- 1992-11-24 ZA ZA929081A patent/ZA929081B/xx unknown
-
1994
- 1994-05-24 FI FI942394A patent/FI942394A0/fi not_active Application Discontinuation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
IL103797A0 (en) | 1993-04-04 |
FI942394A (fi) | 1994-05-24 |
PT101088A (pt) | 1994-02-28 |
JPH06510794A (ja) | 1994-12-01 |
JPH0826064B2 (ja) | 1996-03-13 |
MX9206761A (es) | 1995-01-31 |
AU2775892A (en) | 1993-06-28 |
WO1993011150A1 (en) | 1993-06-10 |
CA2123684A1 (en) | 1993-06-10 |
ZA929081B (en) | 1994-05-24 |
AU659506B2 (en) | 1995-05-18 |
NZ245244A (en) | 1995-04-27 |
HU9401374D0 (en) | 1994-08-29 |
EP0619822A1 (en) | 1994-10-19 |
FI942394A0 (fi) | 1994-05-24 |
TW232699B (hu) | 1994-10-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0349481B1 (de) | 13-Alkyl-11Beta-phenylgonane | |
JP2546659B2 (ja) | ポドフイロトキシン型化合物の製造方法 | |
HUT67035A (en) | New process for the production of steroidal glycosides derivatives | |
Fujiwara et al. | Chemical synthesis of the trisaccharide unit of the species-specific phenolic glycolipid from Mycobacterium leprae | |
JP3816570B2 (ja) | アシル化剤 | |
JP2578399B2 (ja) | ステロイド−β−O−セロビオシドヘプタアルカノエートの製造方法 | |
DE3434448A1 (de) | Verfahren zur herstellung von pregnan-derivaten | |
US5530107A (en) | Method for making steroidal peracyl glycosides | |
US4565656A (en) | Preparation of 17β-hydroxyacetyl-17α-ol-steroids | |
EP0210678B1 (en) | Novel ll-methylene-oestr-15-enes, processes for their preparation, and pharmaceutical compositions | |
JPS6136294A (ja) | 弗化グリコシルからのグリコサイドの製造方法 | |
US4301276A (en) | Synthesis of daunosamine hydrochloride and intermediates used in its preparation | |
Szabó et al. | A first synthesis of sulfonic acid analogues of N-acetylneuraminic acid | |
DE69314031T2 (de) | Verfahren zur herstellung von per-acylierten glykosiden | |
CZ2007608A3 (cs) | Amidové konjugáty steroidních a žlucových kyselins D-glukosaminem a zpusob jejich prípravy | |
JPH11199598A (ja) | ウルソデオキシコール酸誘導体とその製造法 | |
JP4813838B2 (ja) | コア6型構造を有するo−結合型糖アミノ酸誘導体およびその製造方法 | |
JP4162739B2 (ja) | グリコシド誘導体の製造法 | |
JPH03264595A (ja) | 新規なグリコシル化方法 | |
HUT62305A (en) | Process for producing sugar epitops | |
McLaren et al. | A synthesis of 2, 2, 2-Trichloroethyl 2-Acetamido-3, 6-di-O-acetyl-2-deoxy-β-D-glucopyranoside | |
Lemieux et al. | A synthesis of 3-O-(2-Acetamido-2-deoxy-α-D-galactopyranosyl)-D-galactopyranose and 3-O-α-D-Galactopyranosyl-D-galactopyranose | |
EP1654271A1 (en) | Steroid modified chacotrioses and solatrioses | |
NO136727B (hu) | ||
WO2005005449A2 (en) | Steroid modified solatrioses |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
DFD9 | Temporary protection cancelled due to non-payment of fee |