HU201100B - Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect - Google Patents

Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect Download PDF

Info

Publication number
HU201100B
HU201100B HU881050A HU105088A HU201100B HU 201100 B HU201100 B HU 201100B HU 881050 A HU881050 A HU 881050A HU 105088 A HU105088 A HU 105088A HU 201100 B HU201100 B HU 201100B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
interferon
ifn
cells
ethanol
solution
Prior art date
Application number
HU881050A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT49894A (en
Inventor
Ferenc Peterfy
Zsolt Pallai
Laszlo Bali
Original Assignee
Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar filed Critical Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar
Priority to HU881050A priority Critical patent/HU201100B/hu
Priority to IN179/MAS/89A priority patent/IN169468B/en
Priority to IN178/MAS/89A priority patent/IN169467B/en
Priority to JP1050210A priority patent/JPH01281097A/ja
Priority to DE3906871A priority patent/DE3906871A1/de
Priority to AT0047989A priority patent/AT391482B/de
Priority to IT8919634A priority patent/IT1228560B/it
Priority to IT8919633A priority patent/IT1228559B/it
Priority to CN89102018.7A priority patent/CN1036961A/zh
Publication of HUT49894A publication Critical patent/HUT49894A/hu
Publication of HU201100B publication Critical patent/HU201100B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/52Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • C07K14/555Interferons [IFN]
    • C07K14/56IFN-alpha

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

A találmány tárgya új eljárás humán leukocita [/-interferon előállítására a vér fehérvérsejtdús frakciójának elválasztása, a vörősvértestek ammóniumkiorid-oldattal történő eltávolítása, a leukocitáknak foszfátsókkal pufferolt, az élettanilag szükséges aminosavakat, ásványi sókat és vitaminokat tartalmazó tápoldatban való szuszpendálása, a szuszpenzió humán leukocita oC-interferonnal történő előkezelése, az interferontermelés Sendai-virus hozzáadásával történő indukálása, az oC-interferontartalmú folyadéknak a sejtektől való elválasztása és a nyers humán oC-interferon tisztítása útján, oly módon, hogy a tisztítást szabályozott pórusméretű üvegen való adszorbeáltatásnak (controlled poré glass vagy CPG-kromatográfia) és alkoholos frakcionálásnak a kombinációjával végezzük.
A CPG-kromatográfia voltaképpen gél— permeációs kromatográfia, amely a vizes közegben duzzasztott üveggél pórusaiban végbemenő szelektív adszorpción alapuló szeparációs technika. Alkalmazása a találmány szerinti eljárásban előnyösen valósítható meg a .CPG' jelű (Sigma katalógusszám: 44710-12) üveg oszloptöltettel, melyet használat előtt az alkalmazott pufferben elöduzzasztunk.
A humán leukocita oC-interferon (oC-IFN) antivirális aktivitással rendelkező fehérjecsalád.
Az antivirális hatáson kivül számos biológiai hatással is rendelkezik: sejtproliferációt gátló hatású, aktiválja a természetes ölő sejteket, és egyéb módokon is befolyásolja az immunrendszer működését. Ezen tulajdonságok alapján az oí-IFN hatékonyan felhasználható terápiás készítményként is.
A terápiásán felhasználható oC-interferon gyártására alkalmas eljárásnak több különleges követelményt is ki kell elégítenie.
így csak szigorúan limitált mennyiségben tartalmazhat bakteriális endotoxínt, úgy hogy az eljárásnak még vírussal szennyezett alapanyagok felhasználása esetén is önmagában biztosítania kell a vírusmentességet és a biológiailag aktív altípusok minél szélesebb spektrumával kell rendelkeznie, továbbá a gazdaságosság érdekében a kihozatalnak is megfelelőnek kell lennie.
Megfelelő tisztaságú oí-IFN előállítására számos módszert alkalmaztak, igy például Sephadex G-100 vagy G-150 [Bodo, G.: Methods. Enzymol 78, 69 (1981)] illetve Ultragel AcA 54 [Whitman, J.E. et al: J. Interferon Rés. 1, 305 (1981)] kroniatográfiát, szulfo-propil-Sephadex-en végzett kromatográfiát [Bridgen, P.. et al., J. Bioi. Chem. 252, 6585 (1977)], Phenyl Sepharose-pn végzett kromatográfiát [Whitman, J.E. et al., J. Interferon Rés. 1, 305 (1981), Cu-kelát kromatográfiát [Berg.K., Scand.J.Immunoi. 11, 489 (1980)], CPG-kromatográfiát [Chanda,K.C. J.Interferon Rés. 2, 229, (1982)].
Noha a fenti módszerek kombinációival homogén oí-IFN preparátum nyerhető, a kitermelés meglehetősen alacsony, és nem mindegyik eljárás alkalmas a technológiai méretek növelésére.
Nagy mennyiségű, terápiás minőségű ct-IFN előállítására a következő módszereket dolgozták ki eddig.
Cantell és munkatársai olyan tisztítási eljárást dolgoztak ki, amely egy sorozat pH-kontrollált precipitációs lépésből áll, s amelynek eredményeként 2x10® IU/mg fehérje specifikus aktivitású oí-IFN nyerhető 50%-os kitermeléssel. A nyers leukocita oí-IFN-t pH=3,5 mellett KSCN-dal kicsapják, majd savas etanolban oldják, a szennyező anyagokat a pH lépcsőzetes emelésével (5,3, majd 5,8) szelektíven kicsapják. Az etanolos oldatból az cC-IFN-t, a pH 8,0-ra történő emelésével viszik csapadékba, majd 0,1 mól foszfátpufferben visszaoldják. A puffer 0,5 mól KSCN-ot is tartalmaz. A szennyezéseket a pH 5,2-re történő csökkentésével precipitólják. A még oldatban lévő cC-IFN-t pH=3,0-nál csapják ki. Ezt követően 0,1 mól pH=8,0 foszfátpufferben a csapadékot feloldják és foszfátokkal pufferolt fiziológiás sóoldattal (PBS) szemben dializálják [Cantell et al., Methods of Enzymol. 78, 499 (1981)].
A Wellcome Research Laboratories tisztitási eljárást dolgozott ki Namalva sejtekből származó DÍ-IFN-ra. Az így nyerhető átlagos specifikus aktivitás 6.107 IU/mg fehérje. [Reuveny, S. et al., Ann.Virol. 133, 191 (1982)].
A nyers limfoblasztoid oí-IFN-t 2,5% triklórecetsavval kicsapják, majd a csapadékot 94%-os etanollal extrahálják pH=3,5-nél. Az etanolos extraktumot a pH lépésenként! emelésével tisztítják. Az így nyert of-interferont poliklonális ellenanyag-affinitás kromatográfiával tisztítják tovább.
Egy kétlépéses kromatográfiás eljárást dolgoztak ki magas tisztaságú oí-IFN előállítására a New York Blood Center munkatársai [Horowitz.B. Methods of Enzymol. 119, 39 (1986)]. A nyers oC-IFN-t CPG-10/75 tölteten adszorbeáltatják, majd 50% etilénglikolt tartalmazó pufferrel eluálják. A eluátumot monoklonális ellenanyag-affinitás kromatográfiával (NK2-Sepharose, Celltech) tisztítják tovább. A kapott anyag specifikus aktivitása 3,6x10® IU/mg fehérje, a kitermelés 50%-os.
A találmány szerinti eljárás alkalmazásával olyan termék nyerhető, amely az interferon-preparátummal, illetve az előállítási eljárással szemben támasztott alábbi követelményeknek megfelel:
- a termék endotoxintartalma a nemzetközileg elfogadott határértéknél kisebb, nem több mint 5 IU/106 iU oí-IFN;
- az eljárás önmagában biztosítja a végtermék nagyfokú tisztaságét és vírusmentességét még akkor is, ha a kiindulási anyagok vírussal szennyezettek voltak - a ké3
HU 201100 Β szitmény fajlagos aktivitása mintegy 1-5xl07 IU/mg fehérje (vö. a Cantell-módszer szerinti 2x10® IU/mg fehérje értékkel);
- a termék a biológiailag aktív altípusok minél szélesebb spektrumával rendelkezzék, beleértve a savlabilis komponenseket is;
- az eljárás üzemi méretben gazdaságosan alkalmazható legyen.
Találmányunk tárgya magas titerű nyers oC-IFN előállítása és ennek tisztítása controlled poré glass kromatográfla, etilalkoholos frakcionálás és membrántechnika kombinációjával. Az eljárás egyes lépései együttesen biztosítják a termék (oC-IFN) előnyös tulajdonságait, ezért módszerünk az önmagában ismert műveleti lépések előnyös, új kombinációját valósítja meg.
Eljárásunk során a humán vérből származó fehérsejteket a szennyező vörösvértestektól ammóniumkloridos hemolízissel tisztítjuk meg. Előnyösen járhatunk el úgy, ha a hemolízist 0-5 °C hőmérsékletű pH=7,2-7,4 értékre pufferolt 0,83%-os ammóniumklorid-oldattal végezzük két lépésben. Az első lépésben a sejtszuszpenzió/ammóniumklorid arány 1:3, a második lépésben 1:9. A hemolizáló közegből a fehérvérsejteket 1000-2000 -vei történő centrifugálással ülepítjük ki. Az igy nyert fehérvérsejt-szuszpenziót alkalmas tépoldatban szuszpendáljuk. Ilyen alkalmas tápoldatok a szakember számára jólismert módon azok az élettanilag szükséges sókat, aminosavakat és vitaminokat tartalmazó, közvetlenül felhasználható, pl. liofilizált tápoldatkészítmények, amelyeknek gyári jelzése pl. .Eagle MÉM (Serva), .RPMI vagy a magyar szakirodalomból (Béládi Ilona és munkatársai; 182.209 lajstromszámú magyar szabadalom) ismert .MSKD’ jelű tápoldat. A szuszpenzió koncentrációja 1-1,3x10’ sejt/ml. A tápoldat 0,5-2,5 mg/ml gammaglobulin-mentes humán szérumot is tartalmaz.
Előkezelés (priming) céljából 37 °C-on 100-200 IU/ml humán oC-IFN-nal inkubáljuk a sejtkultúrát 1,5-3 órán keresztül. Ezt követően 100-200 hemagglutinációs (HA) egység/ml Sendai-vírussal indukáljuk az oC-IFN termelést. A fehérvérsejteket centrifugálással választjuk el a tápoldattól; s a termék a nyers oC-IFN.
A nyers c<-IFN-t a lebegő szennyezésektől, sejttörmelékektól membránszüréssel tisztítjuk meg, majd CPG 10/75 töltetet tartalmazó oszlopon nyomjuk keresztül. A töltetet előbb PBS-sel átmossuk. Az oC-IFN-t 0,05-0,1 mól Tris.HCl + 1,5 mól NaCl-t tartalmazó 8,0 pH-jú oldattal eluáljuk.
Az oC-IFN tartalmú eluátumot -20 °C-on 55-75%-ob vizes etanollal frakcionálva tisztítjuk. A kicsapódott szennyező fehérjéket centrifugálással távolítjuk el. Az etanolos, oC-IFN tartalmú felülúszót ultraszűrővel a fordított ozmózis elve alapján 10-20-szorosára töményítjük, majd az etanolt diafiltrálással vagy dialízissel alkalmas pufféra cseréljük le. (Alkalmas pufferként utalunk az előzőek5 ben példaképpen megemlített pufferokra.) Eljárhatunk úgy is, hogy az cC-IFN-t az etanolos felülúszóból CPG-kromatográfia segítségével ismét adszorbeáltatjuk. Az igy nyert nagy tisztaságú oC-IFN oldat közvetlenül liofi— lezhető.
A vírusmentességet mind a CPG-kromatográfia, mind az 55-75 tf%-os etilalkoholos kezelés önmagában biztosítja. Az esetlegesen előforduló endotoxin is az alkoholos kezelés15 nél távolítható el, mivel az endotoxin a csapadékba kerül.
Minthogy az eljárás nem tartalmaz alacsony pH-η végrehajtott lépést, a savlabilis oC-IFN-altipusok sem veszítenek aktivitásuk20 ból.
1. példa
Humán vérből származó fehérvérsejtben dús vérfrakciót (buffy coat-ot) jeges hűtés mellett 10 percen keresztül háromszoros mennyiségű, 0- +4 °C-os, 0,83 tömeg%-os, pH=7,3-ra pufferolt ammóniumklorid-oldattal keverünk össze. A fehérvérsejtek kiülepitése céljából 10 perc elteltével +4 °C-on 1500 g-val centrifugálást végzünk. A fehérvérsejteket ezután PBS-(=phosphate óuffered saline)-oldatban szuszpendáljuk és a sejtszusz35 penzió kilencszeresét kitevő térfogatú, 0 -+4 °C-os, 0,83%-os ammóniumklorid-oldattal ismételten kezeljük.
A PBS-oldat összetétele az alábbi:
oldott anyag
NaCl KC1
Na2HPO4.12H2O
NaH2PO4.H2Ü
A PBS-oldat pH-ja: 7,2-7,4.
koncén tracio [mg/1] 8800 220 3500 224
Tíz perc elteltével az előbbivel azonos módon centrifugálással kiülepitjük a sejteket, majd 1,0x10’ sejt/ml koncentrációban Eagle MÉM tápoldatban szuszpendáljuk. A tépfolyadék adalékként 0,9 mg/ml gammaglobulin-mentes humán szérumot is tartalmaz. A sejtkultúrát 37 °C-os termosztátban 150 IU/ml humán oC-IFN hozzáadásával két órán át keverjük, majd 100 HA egység/ml Sendai-virussal indukáljuk az cC-IFN-termelődést és a sejteket további 15-20 órán át 37 °C-on inkubáljuk. Eztán a sejteket centrifugálással választjuk el az cC-IFN tartalmú tápfolyadéktól, amely a nyers oC-IFN.
A PBS-sel egyensúlyba hozott CPG 10/75 töltetet tartalmazó oszlopra nyomjuk a nyers
HU 201100 Β ot-IFN-oldatot 100 ml/ml CPG mennyiségben. (Az oszloptöltet megjelenési formája üvegpor, amely vízben duzzad és gélesedik, ezért mennyisége ml-ben is megadható.) Foszfátpuffért tartalmazó sóoldattal (PBS) az oszlopon meg nem kötött fehérjéket kimossuk. Majd az ot-IFN-t 0,6 mól Tris.HCl puffért és 1,5 mól NaCl-ot tartalmazó, 8,6 pH-jú oldattal eluáljuk az oszlopról. Az eluátumot -20 °C-ra lehűtjük, -20 °C-os etanollal óvatosan elegyítjük úgy, hogy a végső alkoholkoncentráció 75 tf% legyen. Az etanolos elegyet 24 órán át -20 °C-on tároljuk, majd lecentrifugáljuk.
A csapadékot eldobjuk, a felülúszót pedig -20 °C-on ultraszürővel betöményitjük. Az etanolt diafiltrálással távolítjuk el, miközben a közeget vizes pufferoldatra (PBS) cseréljük le. Az így kapott anyagot ampullákba osztjuk szét és liofílizáljuk.
2. példa
A nyers oC-IFN előállítása, majd az ezt kővető CPG-kromatográfia megegyezik az 1. példában leírtakkal, azzal a különbséggel, hogy .agammá‘-ból 1,5 mg/ml-t használunk.
A 75%-os etanolos c<-IFN-oldatból az interferont kicsapással választjuk oly módon, hogy az előbbi alkoholos IFN-oldatot 30 tf% etanolt tartalmazó, 0,05 mólos, pH=5,0 citrátpufferral szemben dializáljuk -20 °C-on. A kicsapódott interferon-fehérjét centrifugálással kiülepítjük és megfelelő mennyiségű PBS-ben felvesszük. Az igy kapott terméket is közvetlenül liofílizáljuk.
3. példa
A 2. példában leírt módon járunk el, azonban a 75%-os etanolos oC-IFN-oldatot ultraszűrővel 8-10 mg/ml fehérjekoncentráció eléréséig betöményítjük, majd 20% etanolt tartalmazó, 0,05 mólos, pH=5,0 citrátpufferral szemben dializáljuk. A továbbiakban a kicsapódott fehérjét a 2. példában leírt módon kezeljük.

Claims (5)

1. Eljárás humán leukocita oC-interferon előállítására a vér fehérvérsejtdús frakciójának elválasztása, a vörösvértestek ammóniumklorid-oldattal történő eltávolítása, a leukocitáknak foszfátsókkal pufferolt, az élettanilag szükséges aminosavakat, ásványi sókat és vitaminokat tartalmazó tápoldatban való szuszpendálésa, a szuszpenzió humán leukocita oC-interferonnal történő előkezelése, az interferontermelés Sendai-vírus hozzáadásával történő indukélása, az oC-interferontartalmú folyadéknak a sejtektől való elválasztása és a nyers humán oC-interferon tisztítása útján, azzal jellemezve, hogy a vörösvértestek eltávolítására 6,0-7,5 pH-értékre pufferolt ammóniumklorid-oldatot használunk, a tápoldatot gammaglobulin-mentes humán vérszérum 0,5-2,5 mg/ml-nyi mennyiségével egészítjük ki, a fehérvérsejteket az indukcióhoz 0,5 . 10’ - 1,5 . 107 sejt/ml koncentrációban szuszpendáljuk a tápoldatban és a termék tisztítását adszorpciós kromatográfia és etanolos frakcionálás kombinációjával végezzük, oly módon, hogy az adszorpciós kromatográfiát szabályozott, átlagosan 70-80 A pórusméretű, 80-400 mesh szemcseméretű üveg állófázison hajtjuk végre.
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az adszorpciós kromatográfiás tisztításhoz állófázisként előduzzasztott üveg oszloptöltetet alkalmazunk.
3. Az 1-2. igénypont bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az oszloptöltet 1 ml-ére számítva 50-200 ml nyers oC-interferont viszünk fel.
4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az oszlopról eluálódó folyadékot vizes etanollal oly módon elegyítjük, hogy az eluátumban az etanol végkoncentrációja 55 tf%-75 tf% legyen.
5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az etanolos kezelést 0° és -40 °C közötti hőmérsékleten végezzük.
HU881050A 1988-03-04 1988-03-04 Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect HU201100B (en)

Priority Applications (9)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU881050A HU201100B (en) 1988-03-04 1988-03-04 Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect
IN179/MAS/89A IN169468B (hu) 1988-03-04 1989-03-03
IN178/MAS/89A IN169467B (hu) 1988-03-04 1989-03-03
JP1050210A JPH01281097A (ja) 1988-03-04 1989-03-03 ヒトインターフェロンの製造方法
DE3906871A DE3906871A1 (de) 1988-03-04 1989-03-03 Verfahren zur herstellung von menschlichem leukozyten-interferon
AT0047989A AT391482B (de) 1988-03-04 1989-03-03 Verfahren zur industriellen herstellung von hochreinem menschlichem leukozyteninterferon
IT8919634A IT1228560B (it) 1988-03-04 1989-03-03 Procedimento per la preparazione su scala industriale di interferon di leucocita umano ad alta purezza e terapeuticamente utile.
IT8919633A IT1228559B (it) 1988-03-04 1989-03-03 Procedimento per la preparazione di enzima mieloperossidasi.
CN89102018.7A CN1036961A (zh) 1988-03-04 1989-03-04 高纯度治疗上有用的人类白细胞干扰素的工业规模制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU881050A HU201100B (en) 1988-03-04 1988-03-04 Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT49894A HUT49894A (en) 1989-11-28
HU201100B true HU201100B (en) 1990-09-28

Family

ID=10952636

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU881050A HU201100B (en) 1988-03-04 1988-03-04 Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect

Country Status (7)

Country Link
JP (1) JPH01281097A (hu)
CN (1) CN1036961A (hu)
AT (1) AT391482B (hu)
DE (1) DE3906871A1 (hu)
HU (1) HU201100B (hu)
IN (1) IN169468B (hu)
IT (2) IT1228559B (hu)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2888443B2 (ja) * 1989-12-07 1999-05-10 日本ケミカルリサーチ株式会社 ヒト白血球インターフェロン亜種の抗体の製造法及び測定法
CN104622777A (zh) * 2015-02-15 2015-05-20 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种白细胞提取物及其制备方法与应用

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL7907791A (nl) * 1979-10-23 1981-04-27 Stichting Rega V Z W Werkwijze voor het zuiveren van interferon.
US4382027A (en) * 1981-08-18 1983-05-03 Meloy Laboratories, Inc. Purification of human immune interferon
JPS5889196A (ja) * 1981-11-24 1983-05-27 Fujisawa Pharmaceut Co Ltd インタ−フエロンの精製法
HU184972B (en) * 1981-12-01 1984-11-28 Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar Process for preparing human gamma interferone
HU192254B (en) * 1983-12-13 1987-05-28 Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar Process for producing human leucocite and human gamma interferons in consecutive steps

Also Published As

Publication number Publication date
IT8919633A0 (it) 1989-03-03
DE3906871C2 (hu) 1991-08-14
IT8919634A0 (it) 1989-03-03
IN169468B (hu) 1991-10-19
HUT49894A (en) 1989-11-28
JPH01281097A (ja) 1989-11-13
AT391482B (de) 1990-10-10
IT1228560B (it) 1991-06-21
DE3906871A1 (de) 1989-09-21
ATA47989A (de) 1990-04-15
CN1036961A (zh) 1989-11-08
IT1228559B (it) 1991-06-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5177194A (en) Process for purifying immune serum globulins
US7125552B2 (en) Method for high yield purification of immune globulins from blood plasma and blood plasma intermediates
GB2037296A (en) Purified proteins, especially interferon and process therefor
EP0110302A2 (en) Method for producing monomeric interferons
JPS6136228A (ja) 肝炎表面抗原の精製方法
NZ203364A (en) Method for purifying human immune interferon;homogeneous human immune interferon
US4617378A (en) Purification of biologically active human immune interferon
EP0138167A1 (en) Method for purification of HBs antigen
JPS6338330B2 (hu)
JPH0428279B2 (hu)
CA1340281C (en) Process for preparing and purifying alpha-interferon
HU201100B (en) Process for large-scale production of high purity human leukocyte alpha interferon with reduced endotoxin content and with improved therapeutic effect
US5391713A (en) Interferon purification process
US4526782A (en) Process for recovering interferon
US4723000A (en) Human interferon gamma and interleukin-2
KR840001516B1 (ko) 인체 섬유아세포 인터페론의 제조방법
EP0478659B1 (en) Interferon purification process
GRAHAM et al. Separation and partial characterization of erythropoietin from human urine
MXPA06006357A (es) Proceso para purificar interferon beta.
KR960013393B1 (ko) 재조합 효모에서 발현된 알파 인터페론의 정제방법
KR920009503B1 (ko) 재조합 인 알파-인터페론의 정제방법
Herring et al. Rapid purification of leukocyte interferons by high-performance liquid chromatography
FI80599C (fi) Foerfarande foer rening av maenniskoleukocytinterferon.
KAPLAN PURIFICATION AND CHARACTERIZATION OF RAT FIBROBLAST DERIVED INTERFERON
JPS61207334A (ja) 腫瘍細胞障害性物質

Legal Events

Date Code Title Description
HC9A Change of name, address

Owner name: EGIS GYOGYSZERGYAR NYRT., HU

Free format text: FORMER OWNER(S): EGIS GYOGYSZERGYAR, HU

MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees