ES2787174T3 - Procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche - Google Patents
Procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche Download PDFInfo
- Publication number
- ES2787174T3 ES2787174T3 ES14870998T ES14870998T ES2787174T3 ES 2787174 T3 ES2787174 T3 ES 2787174T3 ES 14870998 T ES14870998 T ES 14870998T ES 14870998 T ES14870998 T ES 14870998T ES 2787174 T3 ES2787174 T3 ES 2787174T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- milk
- specific substance
- bacteria
- lysis
- anionic surfactant
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 title claims abstract description 110
- 239000008267 milk Substances 0.000 title claims abstract description 110
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 title claims abstract description 110
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 title claims abstract description 82
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 80
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims abstract description 43
- 239000002736 nonionic surfactant Substances 0.000 claims abstract description 32
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 claims abstract description 30
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 claims abstract description 30
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 claims abstract description 30
- 239000003945 anionic surfactant Substances 0.000 claims abstract description 30
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 claims abstract description 30
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 claims abstract description 30
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 claims abstract description 30
- 230000002934 lysing effect Effects 0.000 claims abstract description 27
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims abstract description 20
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 63
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 claims description 56
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims description 40
- 208000004396 mastitis Diseases 0.000 claims description 28
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 claims description 23
- 235000021243 milk fat Nutrition 0.000 claims description 21
- -1 polyoxyethylene Polymers 0.000 claims description 19
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 18
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 17
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 16
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 claims description 14
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 13
- 244000144972 livestock Species 0.000 claims description 10
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 claims description 8
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 claims description 6
- 230000008030 elimination Effects 0.000 claims description 6
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 claims description 6
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N ether Substances CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 claims description 5
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 claims description 4
- 150000008051 alkyl sulfates Chemical class 0.000 claims description 4
- 239000003550 marker Substances 0.000 claims description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 3
- 101000925662 Enterobacteria phage PRD1 Endolysin Proteins 0.000 description 23
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 22
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 21
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 21
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 20
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 19
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 19
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 15
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 15
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 14
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 14
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 14
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 14
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 14
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 14
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 14
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 13
- 235000019333 sodium laurylsulphate Nutrition 0.000 description 10
- 101000575173 Homo sapiens 60S ribosomal protein L12 Proteins 0.000 description 9
- 101000659995 Homo sapiens Ribosomal L1 domain-containing protein 1 Proteins 0.000 description 9
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 9
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 9
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 9
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 8
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 8
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 8
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 8
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 8
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 8
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 7
- 102000008837 Ribosomal protein L7/L12 Human genes 0.000 description 7
- 108050000743 Ribosomal protein L7/L12 Proteins 0.000 description 7
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 7
- 235000013365 dairy product Nutrition 0.000 description 6
- 238000011161 development Methods 0.000 description 6
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 6
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 6
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 6
- 241000588748 Klebsiella Species 0.000 description 5
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 5
- 210000000481 breast Anatomy 0.000 description 5
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 5
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 5
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 5
- 230000002101 lytic effect Effects 0.000 description 5
- NUFBIAUZAMHTSP-UHFFFAOYSA-N 3-(n-morpholino)-2-hydroxypropanesulfonic acid Chemical compound OS(=O)(=O)CC(O)CN1CCOCC1 NUFBIAUZAMHTSP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 4
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 4
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 4
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 4
- 235000020247 cow milk Nutrition 0.000 description 4
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 4
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 4
- 239000003365 glass fiber Substances 0.000 description 4
- 239000002563 ionic surfactant Substances 0.000 description 4
- 102100025643 60S ribosomal protein L12 Human genes 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N Isopropanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N N-Butanol Chemical compound CCCCO LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000020 Nitrocellulose Substances 0.000 description 3
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 3
- DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N Propylene glycol Chemical compound CC(O)CO DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 108010000605 Ribosomal Proteins Proteins 0.000 description 3
- 102000002278 Ribosomal Proteins Human genes 0.000 description 3
- FJWGYAHXMCUOOM-QHOUIDNNSA-N [(2s,3r,4s,5r,6r)-2-[(2r,3r,4s,5r,6s)-4,5-dinitrooxy-2-(nitrooxymethyl)-6-[(2r,3r,4s,5r,6s)-4,5,6-trinitrooxy-2-(nitrooxymethyl)oxan-3-yl]oxyoxan-3-yl]oxy-3,5-dinitrooxy-6-(nitrooxymethyl)oxan-4-yl] nitrate Chemical compound O([C@@H]1O[C@@H]([C@H]([C@H](O[N+]([O-])=O)[C@H]1O[N+]([O-])=O)O[C@H]1[C@@H]([C@@H](O[N+]([O-])=O)[C@H](O[N+]([O-])=O)[C@@H](CO[N+]([O-])=O)O1)O[N+]([O-])=O)CO[N+](=O)[O-])[C@@H]1[C@@H](CO[N+]([O-])=O)O[C@@H](O[N+]([O-])=O)[C@H](O[N+]([O-])=O)[C@H]1O[N+]([O-])=O FJWGYAHXMCUOOM-QHOUIDNNSA-N 0.000 description 3
- 230000001420 bacteriolytic effect Effects 0.000 description 3
- BTANRVKWQNVYAZ-UHFFFAOYSA-N butan-2-ol Chemical compound CCC(C)O BTANRVKWQNVYAZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000003093 cationic surfactant Substances 0.000 description 3
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 3
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 3
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 3
- MTHSVFCYNBDYFN-UHFFFAOYSA-N diethylene glycol Chemical compound OCCOCCO MTHSVFCYNBDYFN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 3
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 3
- 238000003317 immunochromatography Methods 0.000 description 3
- 229920001220 nitrocellulos Polymers 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 3
- BDERNNFJNOPAEC-UHFFFAOYSA-N propan-1-ol Chemical compound CCCO BDERNNFJNOPAEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- KCXFHTAICRTXLI-UHFFFAOYSA-M propane-1-sulfonate Chemical compound CCCS([O-])(=O)=O KCXFHTAICRTXLI-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 3
- RMVRSNDYEFQCLF-UHFFFAOYSA-N thiophenol Chemical compound SC1=CC=CC=C1 RMVRSNDYEFQCLF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- KWIUHFFTVRNATP-UHFFFAOYSA-N Betaine Natural products C[N+](C)(C)CC([O-])=O KWIUHFFTVRNATP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 2
- LZZYPRNAOMGNLH-UHFFFAOYSA-M Cetrimonium bromide Chemical compound [Br-].CCCCCCCCCCCCCCCC[N+](C)(C)C LZZYPRNAOMGNLH-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 2
- ROSDSFDQCJNGOL-UHFFFAOYSA-N Dimethylamine Chemical compound CNC ROSDSFDQCJNGOL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000006395 Globulins Human genes 0.000 description 2
- 108010044091 Globulins Proteins 0.000 description 2
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- ZRALSGWEFCBTJO-UHFFFAOYSA-N Guanidine Chemical compound NC(N)=N ZRALSGWEFCBTJO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000588747 Klebsiella pneumoniae Species 0.000 description 2
- KWIUHFFTVRNATP-UHFFFAOYSA-O N,N,N-trimethylglycinium Chemical compound C[N+](C)(C)CC(O)=O KWIUHFFTVRNATP-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 2
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 2
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 2
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 description 2
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 2
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 2
- 229960003237 betaine Drugs 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 230000014670 detection of bacterium Effects 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 2
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 2
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- ZXEKIIBDNHEJCQ-UHFFFAOYSA-N isobutanol Chemical compound CC(C)CO ZXEKIIBDNHEJCQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000006651 lactation Effects 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 2
- 239000011259 mixed solution Substances 0.000 description 2
- ZPIRTVJRHUMMOI-UHFFFAOYSA-N octoxybenzene Chemical compound CCCCCCCCOC1=CC=CC=C1 ZPIRTVJRHUMMOI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920002113 octoxynol Polymers 0.000 description 2
- 239000000123 paper Substances 0.000 description 2
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 2
- BASFCYQUMIYNBI-UHFFFAOYSA-N platinum Chemical compound [Pt] BASFCYQUMIYNBI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 2
- 238000003127 radioimmunoassay Methods 0.000 description 2
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 2
- LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K tripotassium phosphate Chemical compound [K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])([O-])=O LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- LDVVTQMJQSCDMK-UHFFFAOYSA-N 1,3-dihydroxypropan-2-yl formate Chemical compound OCC(CO)OC=O LDVVTQMJQSCDMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IYLLULUTZPKQBW-UHFFFAOYSA-N Acrinol Chemical compound CC(O)C(O)=O.C1=C(N)C=CC2=C(N)C3=CC(OCC)=CC=C3N=C21 IYLLULUTZPKQBW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010062877 Bacteriocins Proteins 0.000 description 1
- 208000031462 Bovine Mastitis Diseases 0.000 description 1
- FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N Butyric acid Chemical compound CCCC(O)=O FERIUCNNQQJTOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000014914 Carrier Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010078791 Carrier Proteins Proteins 0.000 description 1
- CXRFDZFCGOPDTD-UHFFFAOYSA-M Cetrimide Chemical compound [Br-].CCCCCCCCCCCCCC[N+](C)(C)C CXRFDZFCGOPDTD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- GHXZTYHSJHQHIJ-UHFFFAOYSA-N Chlorhexidine Chemical class C=1C=C(Cl)C=CC=1NC(N)=NC(N)=NCCCCCCN=C(N)N=C(N)NC1=CC=C(Cl)C=C1 GHXZTYHSJHQHIJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000588923 Citrobacter Species 0.000 description 1
- 235000013162 Cocos nucifera Nutrition 0.000 description 1
- 244000060011 Cocos nucifera Species 0.000 description 1
- 241000143940 Colias Species 0.000 description 1
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 1
- 241000588914 Enterobacter Species 0.000 description 1
- 241000283086 Equidae Species 0.000 description 1
- 241000588722 Escherichia Species 0.000 description 1
- 206010016334 Feeling hot Diseases 0.000 description 1
- 241000192125 Firmicutes Species 0.000 description 1
- 102000002464 Galactosidases Human genes 0.000 description 1
- 108010093031 Galactosidases Proteins 0.000 description 1
- 102000004366 Glucosidases Human genes 0.000 description 1
- 108010056771 Glucosidases Proteins 0.000 description 1
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 241000588749 Klebsiella oxytoca Species 0.000 description 1
- LEVWYRKDKASIDU-IMJSIDKUSA-N L-cystine Chemical compound [O-]C(=O)[C@@H]([NH3+])CSSC[C@H]([NH3+])C([O-])=O LEVWYRKDKASIDU-IMJSIDKUSA-N 0.000 description 1
- 108010053229 Lysyl endopeptidase Proteins 0.000 description 1
- MSFSPUZXLOGKHJ-UHFFFAOYSA-N Muraminsaeure Natural products OC(=O)C(C)OC1C(N)C(O)OC(CO)C1O MSFSPUZXLOGKHJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- OVRNDRQMDRJTHS-UHFFFAOYSA-N N-acelyl-D-glucosamine Natural products CC(=O)NC1C(O)OC(CO)C(O)C1O OVRNDRQMDRJTHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MNLRQHMNZILYPY-MDMHTWEWSA-N N-acetyl-alpha-D-muramic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](C)O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@@H]1NC(C)=O MNLRQHMNZILYPY-MDMHTWEWSA-N 0.000 description 1
- OVRNDRQMDRJTHS-FMDGEEDCSA-N N-acetyl-beta-D-glucosamine Chemical compound CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O OVRNDRQMDRJTHS-FMDGEEDCSA-N 0.000 description 1
- MBLBDJOUHNCFQT-LXGUWJNJSA-N N-acetylglucosamine Natural products CC(=O)N[C@@H](C=O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO MBLBDJOUHNCFQT-LXGUWJNJSA-N 0.000 description 1
- CHJJGSNFBQVOTG-UHFFFAOYSA-N N-methyl-guanidine Natural products CNC(N)=N CHJJGSNFBQVOTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 239000002033 PVDF binder Substances 0.000 description 1
- 102000057297 Pepsin A Human genes 0.000 description 1
- 108090000284 Pepsin A Proteins 0.000 description 1
- 108010013639 Peptidoglycan Proteins 0.000 description 1
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 241000588769 Proteus <enterobacteria> Species 0.000 description 1
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 1
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 1
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 1
- 101000582398 Staphylococcus aureus Replication initiation protein Proteins 0.000 description 1
- DKGAVHZHDRPRBM-UHFFFAOYSA-N Tert-Butanol Chemical compound CC(C)(C)O DKGAVHZHDRPRBM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 1
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 1
- XORRBJAIEZPGSE-UHFFFAOYSA-N [Cl-].C(CCCCCCCCCCCCCCCCC)C(C1=CC=CC=C1)([NH+](C)C)CCCCCCCCCCCCCCCCCC Chemical compound [Cl-].C(CCCCCCCCCCCCCCCCC)C(C1=CC=CC=C1)([NH+](C)C)CCCCCCCCCCCCCCCCCC XORRBJAIEZPGSE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 1
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 1
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 description 1
- 230000004520 agglutination Effects 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 150000003973 alkyl amines Chemical class 0.000 description 1
- 125000005210 alkyl ammonium group Chemical group 0.000 description 1
- 150000005215 alkyl ethers Chemical class 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 229960000686 benzalkonium chloride Drugs 0.000 description 1
- CADWTSSKOVRVJC-UHFFFAOYSA-N benzyl(dimethyl)azanium;chloride Chemical compound [Cl-].C[NH+](C)CC1=CC=CC=C1 CADWTSSKOVRVJC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- XLIRVORAQHWLJE-UHFFFAOYSA-N butanoate;dodecyl(dimethyl)azanium Chemical class CCCC([O-])=O.CCCCCCCCCCCC[NH+](C)C XLIRVORAQHWLJE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000001364 causal effect Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000002738 chelating agent Substances 0.000 description 1
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 1
- 229960003260 chlorhexidine Drugs 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 239000012501 chromatography medium Substances 0.000 description 1
- 239000013065 commercial product Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 230000037029 cross reaction Effects 0.000 description 1
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 1
- 229960003067 cystine Drugs 0.000 description 1
- 230000034994 death Effects 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000003398 denaturant Substances 0.000 description 1
- SWSQBOPZIKWTGO-UHFFFAOYSA-N dimethylaminoamidine Natural products CN(C)C(N)=N SWSQBOPZIKWTGO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PZQQAVOXDFHIKI-UHFFFAOYSA-N dimethylazanium;propane-1-sulfonate Chemical class C[NH2+]C.CCCS([O-])(=O)=O PZQQAVOXDFHIKI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000007598 dipping method Methods 0.000 description 1
- RDDIURJEUPAGTQ-NTEVMMBTSA-L disodium;(2s)-2-(hexadecanoylamino)pentanedioate Chemical compound [Na+].[Na+].CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)N[C@H](C([O-])=O)CCC([O-])=O RDDIURJEUPAGTQ-NTEVMMBTSA-L 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 description 1
- GVGUFUZHNYFZLC-UHFFFAOYSA-N dodecyl benzenesulfonate;sodium Chemical compound [Na].CCCCCCCCCCCCOS(=O)(=O)C1=CC=CC=C1 GVGUFUZHNYFZLC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MOTZDAYCYVMXPC-UHFFFAOYSA-N dodecyl hydrogen sulfate Chemical compound CCCCCCCCCCCCOS(O)(=O)=O MOTZDAYCYVMXPC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MHTXWQHGOUEGJO-UHFFFAOYSA-N dodecyl propane-1-sulfonate Chemical compound C(CC)S(=O)(=O)OCCCCCCCCCCCC MHTXWQHGOUEGJO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940043264 dodecyl sulfate Drugs 0.000 description 1
- 230000035622 drinking Effects 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 150000002170 ethers Chemical class 0.000 description 1
- 230000027950 fever generation Effects 0.000 description 1
- 239000011152 fibreglass Substances 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 230000006870 function Effects 0.000 description 1
- 210000004907 gland Anatomy 0.000 description 1
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 1
- 239000010931 gold Substances 0.000 description 1
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 210000004408 hybridoma Anatomy 0.000 description 1
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 238000007689 inspection Methods 0.000 description 1
- 230000009545 invasion Effects 0.000 description 1
- 239000004816 latex Substances 0.000 description 1
- 229920000126 latex Polymers 0.000 description 1
- 229940094506 lauryl betaine Drugs 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000013528 metallic particle Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 239000011859 microparticle Substances 0.000 description 1
- 210000004877 mucosa Anatomy 0.000 description 1
- 229950006780 n-acetylglucosamine Drugs 0.000 description 1
- DVEKCXOJTLDBFE-UHFFFAOYSA-N n-dodecyl-n,n-dimethylglycinate Chemical compound CCCCCCCCCCCC[N+](C)(C)CC([O-])=O DVEKCXOJTLDBFE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 229940111202 pepsin Drugs 0.000 description 1
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 1
- 229910052697 platinum Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920000515 polycarbonate Polymers 0.000 description 1
- 239000004417 polycarbonate Substances 0.000 description 1
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 229920002981 polyvinylidene fluoride Polymers 0.000 description 1
- 229910000160 potassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011009 potassium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 210000001236 prokaryotic cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 description 1
- 150000003242 quaternary ammonium salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 1
- 239000012488 sample solution Substances 0.000 description 1
- 108700004121 sarkosyl Proteins 0.000 description 1
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 1
- 238000011896 sensitive detection Methods 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- WBHQBSYUUJJSRZ-UHFFFAOYSA-M sodium bisulfate Chemical compound [Na+].OS([O-])(=O)=O WBHQBSYUUJJSRZ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 229940080264 sodium dodecylbenzenesulfonate Drugs 0.000 description 1
- KSAVQLQVUXSOCR-UHFFFAOYSA-M sodium lauroyl sarcosinate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCC(=O)N(C)CC([O-])=O KSAVQLQVUXSOCR-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229950005425 sodium myristyl sulfate Drugs 0.000 description 1
- KHCOJQDJOCNUGV-UHFFFAOYSA-M sodium;2-[methyl(tetradecanoyl)amino]acetate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCCC(=O)N(C)CC([O-])=O KHCOJQDJOCNUGV-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- UPUIQOIQVMNQAP-UHFFFAOYSA-M sodium;tetradecyl sulfate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O UPUIQOIQVMNQAP-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 150000005846 sugar alcohols Polymers 0.000 description 1
- 150000003871 sulfonates Chemical class 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000008961 swelling Effects 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009885 systemic effect Effects 0.000 description 1
- 238000010998 test method Methods 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 230000014616 translation Effects 0.000 description 1
- GPRLSGONYQIRFK-MNYXATJNSA-N triton Chemical compound [3H+] GPRLSGONYQIRFK-MNYXATJNSA-N 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004711 α-olefin Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
- G01N33/56911—Bacteria
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/06—Lysis of microorganisms
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
- C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
- G01N33/54386—Analytical elements
- G01N33/54387—Immunochromatographic test strips
- G01N33/54388—Immunochromatographic test strips based on lateral flow
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/195—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2469/00—Immunoassays for the detection of microorganisms
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Hematology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Pathology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Procedimiento para lisar bacterias coliformes contenidas en la leche, que comprende la etapa de mezclar un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico con la leche para lisar las bacterias coliformes existentes en la leche, en el que, en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final del surfactante aniónico no es inferior al 0,01 % ni superior al 0,15 %.
Description
DESCRIPCIÓN
Procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche
Sector técnico
La presente invención se refiere a un procedimiento de lisis y un procedimiento de detección para detectar bacterias coliformes, que son bacterias causales de mastitis, en la leche de ganadería.
Estado de la técnica anterior
La leche de animales de ganadería, de los cuales los ejemplos típicos son vacas, ovejas y cabras, puede no ser estéril, y puede estar contaminada con ciertos microorganismos debido a enfermedades o al medio ambiente. En particular, se sabe que los animales con una enfermedad causada por la infección de un microorganismo en la ubre a menudo descargan muchos de los microorganismos en la leche. Entre las enfermedades típicas de los animales de ganadería causadas por la infección de un microorganismo se incluye la mastitis.
La mastitis es la inflamación del sistema laticífero o del tejido de la glándula de la leche, y está causada en gran parte por la invasión, colonización y proliferación de un microorganismo en la ubre. Aunque muchos tipos de animales contraen mastitis, se dice que, especialmente con respecto a la mastitis vacuna en vacas lecheras, del 15 al 40 % del total de las vacas lecheras contraen mastitis, por lo que es una de las enfermedades extremadamente importantes para los productores de leche. Si una vaca lechera contrae mastitis, no solo se inhibe la función de síntesis de leche para reducir la cantidad de lactancia, o incluso detener la lactancia, según sea el caso, sino que también se imponen enormes pérdidas económicas a los productores de leche, tales como el coste del tratamiento de atención médica y la penalización del precio de la leche debido a la degradación de la calidad de la leche. Además, también aumenta el trabajo de los productores de leche, ya que, por ejemplo, el ordeño de las ubres que padecen mastitis debe realizarse por separado para prevenir la infección.
La mastitis está causada por la infección de diversos microorganismos. Entre las bacterias causales, las bacterias coliformes, cuyos ejemplos típicos son Escherichia colia y Klebsiella, causan síntomas sistémicos tales como pirexia y síntomas locales tales como sensación de calor, hinchazón e induración de la ubre.
Como procedimiento para detectar bacterias coliformes en la leche, se utilizan ampliamente los procedimientos basados en el cultivo. Dado que los procedimientos basados en el cultivo requieren varios días para obtener un resultado, no son adecuados para la identificación rápida de las bacterias causales. Por el contrario, los procedimientos de identificación basados en una reacción antígeno-anticuerpo, utilizando un anticuerpo dirigido a un ingrediente específico de una bacteria causal, especialmente el procedimiento inmunocromatográfico, pueden proporcionar el resultado en varias decenas de minutos y, por lo tanto, son ampliamente utilizados como procedimientos de inspección rápidos y convenientes (por ejemplo, el documento de patente 1). Los inventores de la presente invención han examinado la utilización de un procedimiento inmunocromatográfico también como un procedimiento para detectar una sustancia contenida en la leche de animales de ganadería (documento de patente 2).
En cuanto a la detección de bacterias basada en una reacción antígeno-anticuerpo, cuando un ingrediente contenido en las células bacterianas es una diana de la detección, también se han examinado procedimientos para lisar células bacterianas y detectar un ingrediente de las mismas. Por ejemplo, se da a conocer un procedimiento para medir el recuento de células microbianas, permitiendo que una enzima de un microorganismo actúe sobre una sustancia no fluorescente para generar una sustancia fluorescente, y midiendo esta sustancia fluorescente, en el que se añade un agente para lisar las membranas celulares del microorganismo solo, o lisozima y el agente de lisis de la membrana celular (documento de patente 3). Además, como procedimiento para detectar múltiples tipos de microorganismos, se da a conocer un procedimiento para utilizar un tratamiento con una enzima lítica y/o una bacteriocina que tiene una actividad bacteriolítica, un surfactante y un desnaturalizante de proteínas (documento de patente 4). El documento de patente 3 describe la utilización de un sobrenadante obtenido por centrifugación de una muestra homogeneizada de alimento. El documento de patente 4 describe la utilización de la suspensión celular cultivada, pero no describe que los efectos de la lisis se puedan obtener en una solución con alto contenido de proteínas y grasas, tal como la leche.
Referencias del estado de la técnica anterior
Documentos de patente
Documento de patente 1: Publicación no examinada de patente japonesa (KOKAI) No. 1-244370
Documento de patente 2: Publicación no examinada de patente japonesa (KOKAI) No. 2012-122921 Documento de patente 3: Publicación no examinada de patente japonesa (KOKAI) No. 63-167799
Documento de patente 4: Publicación de Patente Internacional WO2005/064016 (Patente Japonesa No. 4621919) Documento de Patente 5: Publicación no examinada de patente japonesa (KOKAI) No. 7-196463
Documentos no de patente
Documento no de patente 1: Comp. Immun. Microbiol Infect. Dis., Vol. 6, No. 3, págs. 235-245, 1983
La Patente US 2010/099115 Al enseña sistemas y procedimientos para preparar y analizar muestras, por ejemplo, muestras de mucosa, para un microorganismo de interés, incluida la detección de uno o más analitos característicos de un microorganismo de interés mediante un procedimiento inmunocromatográfico que utiliza un dispositivo inmunocromatográfico, tal como el que se da a conocer en la misma.
La Patente JP 2010-154851 A da a conocer un agente de extracción de proteínas que es un agente lítico para extraer una proteína a partir de un microorganismo y que contiene un surfactante catiónico (A) cuyo contraión es un anión carboxilato (a) y un surfactante no iónico (B) que tiene un HLB de 9-13,5, y su utilización en un procedimiento de producción de la proteína.
La Patente JP 2012-122921 A da a conocer un procedimiento inmunocromatográfico y un aparato de inmunocromatografía para detectar una sustancia en la leche de un animal doméstico, mediante la utilización de una reacción antígeno-anticuerpo.
La Patente WO 01/07599 A1 da a conocer un proceso para purificar ADN plasmídico de células procariotas.
Características de la invención
Objetivo a conseguir por la invención
La mastitis está causada por la infección de diversos microorganismos y, por lo tanto, los antibióticos que exhiben eficacia contra la mastitis pueden diferir según el tipo de microorganismo causal. Además, cuando la mastitis está causada por ciertos tipos específicos de bacterias, se pueden transmitir a otras mamas del individuo o a otros individuos y, por lo tanto, es extremadamente importante identificar de manera rápida, conveniente y altamente sensible las bacterias causales existentes en la leche. Especialmente, en cuanto a las bacterias coliformes, que muestran una mayor tasa de proliferación en comparación con las bacterias grampositivas y por lo tanto desarrollan fácilmente una infección más grave, causan mastitis muy aguda y a menudo provocan incluso la muerte, es extremadamente importante descubrirlas y realizar el tratamiento en una etapa temprana de infección para prevenir el daño de la mastitis.
Los procedimientos basados en cultivo, ampliamente utilizados, tales como los procedimientos para detectar una bacteria, tienen el problema de que requieren varios días para obtener un resultado. Por el contrario, los procedimientos de medición inmunológica basados en una reacción antígeno-anticuerpo, tales como el procedimiento inmunocromatográfico, tienen la ventaja de que permiten una detección más rápida y conveniente de bacterias causales en comparación con los procedimientos basados en cultivo.
Para detectar de manera altamente sensible una sustancia específica contenida en las células de una bacteria causal mediante un procedimiento de medición inmunológica, es necesario lisar las células de manera muy eficiente para liberar antígenos en el interior de las células hacia el exterior de las células. Sin embargo, se ha revelado que cuando se utiliza leche como muestra de ensayo, las técnicas convencionales no pueden proporcionar una lisis suficiente, debido a la influencia de proteínas, tales como la caseína, los glóbulos de grasa láctea y demás contenidos en la leche en grandes cantidades. Por lo tanto, se ha deseado un procedimiento para lisar de manera altamente eficiente las bacterias coliformes en la leche para la detección altamente sensible de bacterias causales de mastitis. Sin embargo, no se conoce ningún procedimiento eficaz de lisis para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche.
Un objetivo de la presente invención es dar a conocer un procedimiento de lisis, un procedimiento de detección que utiliza un dispositivo inmunocromatográfico y una utilización in vitro de un kit de detección que comprende un dispositivo inmunocromatográfico para detectar si las bacterias causales de mastitis son bacterias coliformes o no, mediante la utilización de leche de un animal de ganadería.
Medios para conseguir el objetivo
Los inventores de la presente invención consideraron que, para detectar con gran sensibilidad las bacterias coliformes en la leche, que tiene un alto contenido de proteínas y grasas, y muestra diferencias individuales, es necesario extraer de manera muy eficiente los antígenos diana contenidos en las células, y descubrieron que al utilizar simultáneamente una enzima lítica y una pluralidad de tipos de surfactantes para lisar bacterias coliformes contenidas en la leche de manera muy eficiente, se mejora la eficacia de la lisis, y se pueden detectar las bacterias coliformes contenidas en la leche de manera muy sensible. En particular, se sabe que, si se utiliza la lisozima como enzima lítica en combinación con un surfactante aniónico, especialmente laurilsulfato de sodio (dodecilsulfato de sodio), la lisozima pierde su actividad enzimática (documento de patente 5, mencionado anteriormente). Sin
embargo, como resultado de las investigaciones de los inventores de la presente invención, se descubrió que, si se utiliza un surfactante aniónico a una concentración dentro de un intervalo apropiado, por el contrario, la proporción de lisis mejora notablemente, y se pueden detectar las bacterias coliformes contenidas en la leche de manera muy sensible, y llevaron a cabo la presente invención.
De este modo, la presente invención da a conocer los siguientes puntos.
[1] Un procedimiento para lisar bacterias coliformes contenidas en la leche, que comprende la etapa de mezclar un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico con la leche para lisar las bacterias coliformes existentes en la leche,
en el que, en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final del surfactante aniónico no es inferior al 0,01 % ni superior al 0,15 %.
[2] El procedimiento de lisis, según el punto [1], en el que el surfactante aniónico comprende un sulfato de alquilo; y/o el surfactante no iónico comprende un alquilfeniléter polioxietilenado.
[3] El procedimiento de lisis, según el punto [1] o [2], en el que, en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final de lisozima no es inferior a 0,1 mg/ml ni superior a 200 mg/ml; y/o en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final del surfactante no iónico no es inferior al 0,03 % ni superior al 10 %.
[4] Un procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche, que comprende:
1. la etapa de mezclar un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico con la leche para lisar las bacterias coliformes existentes en la leche, la concentración final del surfactante aniónico no es inferior al 0,01 % ni superior al 0,15 %.
2. la etapa de eliminar los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche utilizando un material que tiene poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche, y
3. la etapa de detectar una sustancia específica derivada del interior de las bacterias coliformes y liberada mediante la lisis;
en el que
las etapas se llevan a cabo en el orden de 1, 2 y 3; y las etapas 2 y 3 se llevan a cabo mediante un procedimiento inmunocromatográfico.
[5] El procedimiento, según el punto [4], en el que el surfactante aniónico comprende un sulfato de alquilo, y/o el surfactante no iónico comprende un alquilfeniléter polioxietilenado.
[6] El procedimiento, según cualquiera de los puntos [4] a [5], en el que el procedimiento inmunocromatográfico comprende: (1) la etapa de poner en contacto la leche que contiene la sustancia específica con una tira reactiva que tiene una primera parte que retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica, o la sustancia específica que está marcada, una segunda parte dispuesta aguas abajo de la primera parte, en la que se inmoviliza un segundo anticuerpo dirigido a la sustancia específica, y una tercera parte dispuesta aguas arriba de la primera parte o la segunda parte y que tiene poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche, en la tercera parte o una parte existente aguas arriba de la misma, y (2) la etapa de hacer fluir la leche hasta la segunda parte o hasta una parte existente aguas abajo de la misma para obtener una señal detectable del marcador en la segunda parte o una parte existente aguas abajo de la misma.
[7] El procedimiento, según el punto [6],
en el que el primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica es retenida en la primera parte.
[8] El procedimiento, según el punto [6] o [7],
en el que la tercera parte está constituida por dos o más tipos de miembros que tienen poros que pueden eliminar glóbulos de grasa láctea de diferentes tamaños de partícula, respectivamente.
[9] El procedimiento, según el punto [8], en el que la tercera parte está constituida por un primer miembro dispuesto aguas abajo y un segundo miembro dispuesto aguas arriba, y el tamaño de retención de partícula del segundo miembro es mayor que el tamaño de retención de partícula del primer miembro.
[10] Utilización in vitro de un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico para el diagnóstico de la mastitis en un animal de ganadería.
[11] Utilización in vitro de un kit, que comprende :
un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico, y
un dispositivo inmunocromatográfico para detectar una sustancia específica contenida en la leche, que comprende una tira reactiva que tiene una primera parte que retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica, o la sustancia específica que está marcada, una segunda parte dispuesta aguas abajo de la primera parte, en la que se inmoviliza un segundo anticuerpo dirigido a la sustancia específica, y una tercera parte dispuesta aguas arriba de la primera parte o la segunda parte y que tiene poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche,
para el diagnóstico de la mastitis en un animal de ganadería.
Efecto de la invención
Según la presente invención, las bacterias coliformes contenidas en la leche se pueden detectar de manera rápida, conveniente y altamente sensible en el acto. En particular, en el caso del diagnóstico de mastitis de vaca, si se utiliza un marcador reconocible visualmente, el diagnóstico se puede realizar en una granja lechera sin utilizar ningún aparato, etc., de modo que se pueda especificar rápidamente una bacteria causal antes de un mayor empeoramiento de las condiciones de la patología, y se pueden determinar las políticas de tratamiento apropiadas, tales como la selección de antibióticos adecuados, y las contramedidas para prevenir la expansión de la infección en una etapa temprana.
Descripción breve de los dibujos
[Figura 1] La figura 1 muestra una vista, en sección esquemática, de la tira reactiva del dispositivo inmunocromatográfico utilizado en el ejemplo 2, que comprende un miembro 1 impregnado con anticuerpo marcado (primera parte), un soporte de membrana 2 para el revelado cromatográfico (segunda parte), una parte 3 para la captura, un miembro 4 que sirve como miembro para la adición de muestra y miembro para la eliminación de glóbulos de grasa (tercera parte), un miembro 5 para la absorción, un sustrato 6 y un miembro 7 para la eliminación de glóbulos de grasa (tercera parte).
[Figura 2] La figura 2 muestra el efecto del dodecilsulfato de sodio (SDS, de Sodium Dodecyl Sulfate) en presencia de lisozima y un surfactante no iónico en la detección de Escherichia coli mediante un procedimiento inmunocromatográfico.
[Figura 3] La figura 3 muestra el efecto del dodecilsulfato de sodio (SDS) en presencia de una enzima lítica y un surfactante no iónico en la detección de Escherichia coli mediante un procedimiento inmunocromatográfico.
Modos para llevar a cabo la invención
A continuación, la presente invención se explicará con más detalle. En la presente invención, cuando un intervalo de valores numéricos se representa como "de X a Y", el intervalo incluye los valores X e Y como los valores mínimo y máximo. El símbolo "%" se utiliza para indicar el porcentaje en masa, a menos que se indique especialmente. La expresión "A y/o B" significa, como mínimo, uno de A y B, incluidos los casos de referirse solo a A, solo B, y a A y B. Un agente de lisis para lisar bacterias coliformes contenidas en la leche contiene una enzima lítica y surfactantes específicos.
[Enzima lítica]
En cuanto a la bacteria causal de la mastitis, la infección por Escherichia coli, bacteria Klebsiella o Staphylococcus aureus ocurre con frecuencia y, por lo tanto, es preferente también utilizar uno o dos o más tipos de enzimas líticas que puedan mostrar una acción bacteriolítica en combinación con estos microorganismos. Por ejemplo, se pueden utilizar uno o dos o más tipos de enzimas líticas seleccionadas entre lisozima, lisostafina, pepsina, glucosidasa, galactosidasa, acromopeptidasa, p-N-acetilglucosaminidasa, etc.
Cuando se sospecha especialmente la presencia de bacterias coliformes como las bacterias causales de la mastitis, puede ser preferente utilizar una enzima lítica que exhiba específicamente una acción bacteriolítica contra las bacterias coliformes, sola o en combinación con otra enzima lítica. Por ejemplo, se ha propuesto un procedimiento para utilizar la lisozima como enzima lítica y un agente de lisis de la membrana celular (Publicación de patente japonesa no examinada (KOKAI) N° 63-167799).
La lisozima es una proteína que consiste en un péptido único de 14,6 kDa, y puede lisar las células de las bacterias al escindir el enlace glucosídico P(1-4) entre el ácido N-acetilmurámico y la N-acetilglucosamina en la capa de peptidoglucano. La lisozima se puede obtener comprando un producto comercial.
El contenido de la enzima lítica en el agente de lisis (cuando se utilizan dos o más tipos de enzimas líticas, es el contenido como la cantidad total de enzimas líticas) no está particularmente limitado, siempre que se asegure una proporción de lisis eficaz para la detección. Sin embargo, el contenido se puede determinar de modo que la concentración final de la enzima lítica en la mezcla con la leche sea de 0,1 mg/ml o superior, preferentemente, 0,2 mg/ml o superior, más preferentemente, 0,5 mg/ml o superior, más preferentemente, 1,0 mg/ml o superior, de manera particularmente preferente, 2,0 mg/ml o superior, en términos de lisozima. En cuanto al límite superior del contenido de la enzima lítica, el contenido se puede determinar, según sea necesario, desde el punto de vista económico, o similar e, independientemente de cómo se defina el límite inferior, puede ser de 200 mg/ml o inferior, preferentemente, 100 mg/ml o inferior, más preferentemente, 75 mg/ml o inferior, más preferentemente, 50 mg/ml o inferior, de manera particularmente preferente, 25 mg/ml o inferior.
[Surfactante]
Un surfactante que se ioniza y se convierte en un ion, cuando se disuelve en agua, se conoce como surfactante iónico, y un surfactante que no se convierte en un ion se denomina surfactante no iónico (no iónico). El surfactante iónico se clasifica además en surfactante aniónico, surfactante catiónico y surfactante anfolítico.
En la presente invención, junto con la enzima lítica se utiliza, como mínimo, un tipo de surfactante no iónico y, como mínimo, un tipo de surfactante aniónico en combinación.
Los tipos de surfactantes a utilizar no están particularmente limitados. Como el surfactante no iónico, preferentemente, se puede utilizar cualquiera de los de tipo éster éter, tipo éster y tipo éter. Más específicamente, entre los ejemplos se incluyen alquiléteres polioxietilenados, alquilfeniléteres polioxietilenados, ésteres de sorbitán de ácidos grasos, alquilpoliglucósidos, dietanolamidas de ácidos grasos, alquilmonogliceriléteres, etc. Entre los ejemplos especialmente preferentes se incluyen alquilfeniléteres polioxietilenados, más específicamente octilfeniléter polioxietilenado (10), etcétera. Se ha confirmado que los alquilfeniléteres polioxietilenados, tales como el octilfeniléter polioxietilenado (10), se pueden utilizar eficazmente también en el procedimiento inmunocromatográfico. El contenido del surfactante no iónico en el agente de lisis (cuando se utilizan dos o más tipos de surfactantes no iónicos, es el contenido como la cantidad total de surfactantes no iónicos) no está particularmente limitado siempre y cuando, por ejemplo, cuando se utiliza un procedimiento inmunocromatográfico, esté asegurado el flujo de una solución de revelado Sin embargo, en cualquier caso, en cuanto al límite inferior del mismo, el contenido se puede determinar de modo que la concentración final del surfactante no iónico en la mezcla con leche sea del 0,03 % o superior, preferentemente, del 0,05 % o superior, más preferentemente, del 0,075 % o superior, más preferentemente, del 0,1 % o superior, de manera particularmente preferente, del 0,3 % o superior. En cuanto al límite superior del contenido del surfactante no iónico, el contenido se puede determinar de modo que la reacción catalizada por la enzima lítica y las reacciones antígeno-anticuerpo no se inhiban significativamente y, en cualquier caso, puede ser del 10 % o inferior, preferentemente, del 7,5 % o inferior, más preferentemente, del 5 % o inferior, aún más preferentemente, del 3 % o inferior, de manera particularmente preferente, del 2 % o inferior.
Entre los ejemplos del surfactante aniónico se incluyen alquilsulfatos de sodio, tales como dodecilsulfato de sodio y miristilsulfato de sodio, N-acilsarcosinatos de sodio, tales como N-lauroilsarcosinato de sodio y N-miristoilsarcosinato de sodio, dodecilbencenosulfonato de sodio, sulfato monosódico de monoglicérido de ácidos grasos de coco hidrogenados, y N-acilglutamatos de sodio, tales como N-palmitoilglutamato de sodio, N-metil-N-acilalanina de sodio y a-olefinsulfonatos de sodio, etc., pero el surfactante aniónico no está particularmente limitado.
El contenido del surfactante aniónico en el agente de lisis (cuando se utilizan dos o más tipos de surfactantes aniónicos, es el contenido como la cantidad total de surfactantes aniónicos) es del 0,01 % o superior, pero en cualquier caso, del 0,15 % o inferior.
Entre los ejemplos del surfactante anfolítico se incluyen los del tipo aminoácido (sales alquiloamónicas de ácido graso), del tipo de betaína (alquilbetaínas), del tipo de óxido de amina (óxidos de alquilamina), etc., pero no está particularmente limitado. Entre los ejemplos más específicos se incluyen propanosulfonatos de dimetilamonio, butiratos de dodecildimetilamonio, laurilbetaína y amidopropilbetaína. Entre otros ejemplos específicos se incluyen 1-propanosulfonato de n-tetradecil-N,N-dimetil-3-amonio, 1-propanosulfonato de n-decil-N,N-dimetil-3-amonio, 1-propanosulfonato de n-dodecil-N,N-dimetil-3-amonio, 1-propanosulfonato de n-tetradecil-N,N-dimetil-3-amonio, 1-propanosulfonato de n-hexadecil-N,N-dimetil-3-amonio y butirato de N-dodecil-N,N-(dimetilamonio).
Como surfactante catiónico, se puede utilizar, preferentemente, cualquiera de los tipos de sal de amina y de sal de amonio cuaternario. Entre los ejemplos más específicos se incluyen cloruro de diestearildimetilbencilamonio, cloruro de benzalconio, bromuro de hexadeciltrimetilamonio, bromuro de hexadeciltrimetilamonio, bromuro de miristiltrimetilamonio, etc.
[Ejemplo de composición]
En una de las realizaciones más preferentes, el agente de lisis comprende lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico. Para el agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico, entre los ejemplos preferentes del surfactante no iónico se incluyen alquilfeniléteres polioxietilenados. Las concentraciones de estos ingredientes del agente de lisis se pueden determinar de modo que, en la etapa de lisar las bacterias existentes en la leche mezclando el agente de lisis con la leche, la concentración final de lisozima no sea inferior a 0,1 mg/ml ni superior a 200 mg/ml, la concentración final del surfactante aniónico no sea inferior al 0,01 % ni superior al 0,15 %, y la concentración final del surfactante no iónico no sea inferior al 0,03 % ni superior al 10 %.
[Otros ingredientes]
El agente de lisis de la presente invención puede contener, además de la enzima lítica y el surfactante, uno o más tipos de otros ingredientes, siempre que el efecto pretendido no se degrade notablemente. Entre los ejemplos preferentes de los ingredientes distintos de la enzima lítica y el surfactante se incluyen una sustancia que tenga el efecto de promover la lisis. Entre los ejemplos específicos se incluyen glutaraldehído, compuestos halogenados, clorhexidina, alcoholes (por ejemplo, metanol, etanol, 1-propanol, 2-propanol, 1-butanol, 2-butanol, 2-metil-1-propanol, 2-metil-2-propanol ), fenol, peróxido de hidrógeno, acrinol, guanidina y sus sales, agentes quelantes, ácidos orgánicos y sus sales, alcoholes polihídricos (por ejemplo, etilenglicol, propilenglicol, dietilenglicol y glicerina) y agentes reductores, tales como 2-mercaptoetanol, ditiotreitol, cistina y tiofenol, pero sin que constituyan limitación.
[Condiciones de lisis y proporción de lisis]
En la presente invención, se puede utilizar el agente de lisis mezclándolo con leche. La proporción de mezcla de la leche y el agente de lisis no está particularmente limitada, siempre que las concentraciones finales de la enzima lítica, etc., se mantengan adecuadamente y se pueda asegurar una proporción de lisis suficiente. Si el agente de lisis se utiliza en un volumen relativamente pequeño con respecto a la leche, la leche no se diluye. Por lo tanto, se puede esperar que las células se puedan detectar con mayor sensibilidad. Cuando el agente de lisis se utiliza en un volumen relativamente grande con respecto a la leche, se reducen las influencias de los glóbulos de grasa y las proteínas contenidas en la leche y, por lo tanto, se puede esperar que las células se puedan detectar en un tiempo más corto. Desde el punto de vista de que una proporción más elevada de leche en la mezcla de leche y el agente de lisis (leche/(leche agente de lisis) x 100) puede proporcionar una mayor sensibilidad de detección, la proporción puede ser, por ejemplo, del 5 % o superior, preferentemente, del 10 % o superior, más preferentemente, del 20 % o superior, más preferentemente, del 30 % o superior, independientemente de las otras condiciones. En cuanto al límite superior de la proporción, si se utiliza el agente de lisis solidificado por secado o similar, se puede hacer que la proporción de leche sea del 100 %, independientemente de las otras condiciones. La proporción de la leche puede ser del 90 % o inferior, del 80 % o inferior, del 70 % o inferior, del 60 % o inferior, o del 50 % o inferior, independientemente de las otras condiciones. En cuanto al límite superior, la proporción se puede determinar teniendo en cuenta la facilidad de mezcla, la estabilidad del agente de lisis como una solución, etc.
En la presente invención, es suficiente mezclar simplemente la leche con el agente de lisis. La temperatura en el momento de la mezcla y el tiempo de tratamiento para permitir que la enzima actúe después de la mezcla no están particularmente limitados, siempre que la enzima lítica utilizada pueda exhibir la actividad y, generalmente, la temperatura puede ser la temperatura ambiente. Los expertos en la materia pueden determinar adecuadamente el tiempo de tratamiento para permitir la reacción después de la mezcla teniendo en cuenta la proporción de lisis. En la presente invención, dado que se utilizan combinaciones y concentraciones de enzima lítica y surfactante apropiados para bacterias coliformes, el tiempo de tratamiento puede acortarse notablemente en comparación con un caso en el que solo se utiliza una enzima lítica. En la presente invención, el tiempo de tratamiento es generalmente de varias decenas de minutos a varias horas, y más específicamente, puede ser 120 minutos o inferior, preferentemente, 60 minutos o inferior, más preferentemente, 45 minutos o inferior, más preferentemente, 25 minutos o inferior, aún más preferentemente, 20 minutos o inferior, aún más preferentemente, 15 minutos o inferior. También se puede hacer que el tiempo de tratamiento sea sustancialmente 0 (después de mezclar la leche y el agente de lisis, la mezcla se somete inmediatamente a la medición). Según la presente invención, incluso mediante el tratamiento durante un tiempo tan corto, se asegura una proporción de lisis del 90 % o superior, y se pueden detectar bacterias coliformes con elevada sensibilidad.
Según las investigaciones de los inventores de la presente invención, se podría confirmar que, con las condiciones descritas en los ejemplos de la presente memoria descriptiva, se puede conseguir una proporción de lisis del 100 % tratando la leche que contiene, aproximadamente, 1 x 105 células/ml de Escherichia coli con un agente de lisis durante, aproximadamente, 10 minutos según el procedimiento de la reivindicación 1. En cuanto a la base de la proporción de lisis, la proporción de lisis observada para una suspensión de una bacteria diana sometida a un tratamiento preliminar con un surfactante no iónico de una concentración adecuada, y posteriormente sometida a ultrasonidos, y un tratamiento enzimático suficiente, según sea necesario, se puede definir como del 100 %.
[Medios de detección]
Las bacterias coliformes lisadas, según la presente invención, se pueden detectar mediante diversos tipos de procedimientos inmunológicos utilizando un ingrediente de células bacterianas como antígeno. Entre los ejemplos del procedimiento de medición inmunológica se incluyen, por ejemplo, procedimiento inmunocromatográfico, procedimiento de reacción de aglutinación, inmunoensayo enzimático (ELISA), radioinmunoensayo (RIA), fluoroinmunoensayo (FIA), etc., pero sin que constituyan limitación.
En el momento de realizar los procedimientos inmunológicos, se puede utilizar una sustancia de bloqueo, para prevenir la adsorción no específica, o una sustancia para prevenir la reacción cruzada con bacterias distintas de la bacteria diana. En particular, para evitar la reacción del anticuerpo utilizado y la proteína A de Staphylococcus aureus, se puede añadir globulina que no participa en la reacción con el antígeno. Cuando se utiliza globulina, se
puede añadir en una cantidad de 0,01 |¿g/ml o mayor, preferentemente, 0,1 |¿g/ml o mayor, más preferentemente, 1 l¿g/ml o mayor, como la concentración final en el momento de la reacción, desde el punto de vista de la supresión de resultados falsos positivos. Además, en cualquier caso, desde el punto de vista de no inhibir la reacción antígenoanticuerpo objetivo, se puede utilizar en una cantidad de 10 mg/ml o menor, preferentemente, 5 mg/ml o menor, más preferentemente, 1 mg/ml o menor. Estas condiciones relativas a la concentración final son especialmente adecuadas para el procedimiento inmunocromatográfico.
Cuando se utiliza un procedimiento inmunocromatográfico, se puede llevar a cabo normalmente de la siguiente manera.
[Procedimiento inmunocromatográfico y dispositivo inmunocromatográfico]
Se puede detectar una reacción antígeno-anticuerpo mediante el ensayo sándwich utilizando un "primer anticuerpo marcado dirigido a una sustancia específica" retenido por una primera parte, y un "segundo anticuerpo dirigido a la sustancia específica" inmovilizado en una segunda parte.
Alternativamente, una reacción antígeno-anticuerpo se puede detectar también mediante el procedimiento de competencia utilizando una sustancia específica marcada retenida por una primera parte, y un anticuerpo dirigido a la sustancia específica inmovilizada en una segunda parte. Sin embargo, en la presente invención, es preferente el procedimiento de ensayo sándwich, dado que muestra una alta sensibilidad de detección y proporciona una línea que indica la detección de anticuerpos como resultado positivo.
El dispositivo inmunocromatográfico es un dispositivo para detectar una sustancia específica contenida en la leche mediante un procedimiento inmunocromatográfico, que comprende una tira reactiva que tiene una primera parte que retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica, o la sustancia específica que está marcada, una segunda parte dispuesta aguas abajo de la primera parte, en la que se inmoviliza un segundo anticuerpo dirigido a la sustancia específica, y una tercera parte dispuesta aguas arriba de la primera parte o la segunda parte y que tiene poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche. Como un ejemplo específico de la estructura de la tira reactiva, se puede mencionar la de la tira reactiva cuya vista en sección esquemática se muestra en la figura 2. En la figura 2, un miembro 7 para la eliminación de glóbulos de grasa (tercera parte) está dispuesto aguas abajo de un miembro 4 para la adición de la muestra, y aguas arriba de un miembro 1 impregnado de anticuerpo marcado (primera parte).
El dispositivo inmunocromatográfico se puede producir de manera conocida utilizando materiales comercializados. El material utilizado para la primera parte no está particularmente limitado, siempre que se elija un material que permita la inmunocromatografía, pero entre los ejemplos preferentes se incluyen una matriz de fibras de un derivado de celulosa, etc., papel de filtro, fibra de vidrio, tela, algodón, etc.
El material utilizado para la segunda parte no está particularmente limitado, siempre que se elija un material que permita la inmunocromatografía, pero entre los ejemplos preferentes se incluyen nitrato de celulosa, éster mixto de nitrato de celulosa, fluoruro de polivinilideno, nylon, etc.
El material utilizado para la tercera parte tiene, preferentemente, poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche y que tienen un diámetro de, aproximadamente, 1 a diez y varios micrómetros. La tercera parte debe estar dispuesta aguas arriba de la segunda parte mencionada anteriormente que consiste en una membrana porosa que tiene un diámetro de poro de varias decenas a varios cientos de nm y, preferentemente, está dispuesta aguas arriba de la primera parte mencionada anteriormente, es decir, en una posición en la que una solución de muestra contacta en primer lugar con la tira reactiva y pasa a través de la misma. Los poros de la tercera parte pueden tener un tamaño que permita la eliminación de los glóbulos de grasa láctea, y el tamaño de retención de partícula es, preferentemente, de 0,1 a 10 p.m, más preferentemente, de 1 a 3,5 p.m. El material no está particularmente limitado, siempre que se elija un material que tenga poros que muestren un tamaño de retención de partícula dentro del intervalo mencionado anteriormente, pero entre los ejemplos preferentes se incluyen una matriz de fibras tales como derivados de celulosa, papel de filtro, fibra de vidrio, tela, algodón, etc. El tamaño de retención de partícula significa un tamaño de partícula tal de glóbulos de grasa láctea que los glóbulos de grasa láctea que tienen un tamaño de partícula no menor que el tamaño de retención de partícula no pueden pasar a través de los poros y son retenidos por la tercera parte, y corresponde sustancialmente al tamaño de poro promedio de los poros de la tercera parte, y el 50 % o superior, preferentemente, el 60 % o superior, más preferentemente, el 70 % o superior, aún más preferentemente, el 80 % o superior, de manera particularmente preferente, el 90 % o superior, de la manera más preferente, el 98 % o superior, de los glóbulos de grasa láctea que tienen un tamaño de partícula no menor que el tamaño de retención de partícula no pueden pasar a través de los poros y son retenidos por la tercera parte. La proporción de glóbulos de grasa láctea a retener se puede medir mediante un procedimiento bien conocido por los expertos en la materia. Por ejemplo, el catálogo de GF/B proporcionado por GE Healthcare Bioscience describe que el tamaño de retención de partícula (diámetro de partícula para el cual la eficiencia de retención es del 98 %, el término tamaño de retención de partícula utilizado en la presente memoria descriptiva tiene
este significado, a menos que se indique especialmente) del mismo es 1,0 p.m, y el tamaño de partícula, tal como se ha mencionado anteriormente se puede confirmar mediante un procedimiento bien conocido por los expertos en la materia.
La tercera parte mencionada anteriormente puede consistir en un solo tipo de material que tiene un tamaño de retención de partícula específico, o puede consistir en un laminado que comprende materiales que tienen diferentes tamaños de retención de partícula y adheridos integralmente para que el tamaño de retención de partícula se reduzca gradualmente, para aumentar la eficiencia de separación de los glóbulos de grasa láctea. Esta tercera parte, tal como se ha mencionado anteriormente, constituida por dos o más tipos de miembros que pueden eliminar glóbulos de grasa láctea de diferentes tamaños de partícula constituye una realización preferente de la presente invención, y en una realización más preferente de la presente invención, la tercera parte está constituida con un primer miembro dispuesto aguas abajo y un segundo miembro dispuesto aguas arriba, y el tamaño de retención de partícula del segundo miembro es mayor que el tamaño de retención de partícula del primer miembro. Cuando la tercera parte está constituida con estos dos tipos de miembros, es preferente que el tamaño de retención de partícula del primer miembro dispuesto aguas abajo sea de 1,0 a 2,0 pm, y el tamaño de retención de partícula del segundo miembro dispuesto aguas arriba sea de 3,0 a 3,5 p.m. Para detectar de manera altamente sensible una sustancia específica de la leche que contiene glóbulos de grasa láctea de alta concentración y distribución amplia de tamaños de partícula, especialmente leche del tipo no diluida después del ordeño, es preferente que la tercera parte esté constituida con una combinación de un miembro que tenga un tamaño de retención de partícula pequeño y un miembro que tenga un tamaño de retención de partícula grande.
La primera parte mencionada anteriormente retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a una sustancia específica, o una sustancia específica marcada. Si la primera parte retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a una sustancia específica, la sustancia específica se puede detectar mediante el procedimiento de ensayo sándwich. Si la primera parte retiene una sustancia específica marcada, la sustancia específica se puede detectar mediante el procedimiento de competencia. Dado que es más preferente el procedimiento de ensayo sándwich, que muestra una alta sensibilidad de detección y proporciona una línea que indica la detección de anticuerpos como resultado positivo para la presente invención, la primera parte, preferentemente, retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a una sustancia específica.
Cuando se hace que la primera parte retenga un primer anticuerpo marcado dirigido a una sustancia específica, se utilizan dos tipos de anticuerpos, el primer anticuerpo dirigido a la sustancia específica y un segundo anticuerpo también dirigido a la sustancia específica. Para permitir la detección de la sustancia específica por el procedimiento de ensayo sándwich, el primer anticuerpo y el segundo anticuerpo mencionados anteriormente son anticuerpos que se pueden unir simultáneamente a la sustancia específica, y es preferente que el epítopo de la sustancia específica a reconocer por el primer anticuerpo mencionado anteriormente sea diferente del epítopo de la sustancia específica a reconocer por el segundo anticuerpo mencionado anteriormente.
En la presente invención, para obtener una señal detectable, se marca el primer anticuerpo o la sustancia específica retenida por la primera parte. Entre los ejemplos del marcador utilizado para la presente invención se incluyen una partícula coloreada, un enzima, un radioisótopo, etc., y es preferente utilizar una partícula coloreada que se pueda detectar visualmente sin ningún equipo especial. Entre los ejemplos de partículas coloreadas se incluyen micropartículas metálicas, tales como las de oro y platino, partículas no metálicas, partículas de látex, etc., pero sin que constituyan limitación. La partícula coloreada puede tener cualquier tamaño, siempre que la partícula coloreada tenga un tamaño tal que se pueda transportar aguas abajo a través del interior de los poros de la tira reactiva, pero, preferentemente, tiene un tamaño desde 1 nm hasta 10 pm, más preferentemente, desde 5 nm hasta 1 pm, aún más preferentemente, desde 10 nm hasta 100 nm, de diámetro.
[Objetivo de detección]
Según la presente invención, se pueden detectar bacterias coliformes contenidas en la leche. El término "bacterias coliformes" utilizado en la presente invención, se refiere a bacterias que incluyen Escherichia coli, bacterias Klebsiella, bacterias Citrobacter, bacterias Enterobactery bacterias Proteus, a menos que se indique especialmente. Entre las bacterias Klebsiella se incluyen Klebsiella pneumoniae y Klebsiella oxytoca. Según la presente invención, se pueden detectar las bacterias coliformes contenidas en la leche obtenida de un animal de ganadería, tal como la vaca, tal como está, conteniendo una concentración elevada de glóbulos de grasa y proteínas, utilizando el agente de lisis que contiene la enzima lítica y el surfactante formulados adecuadamente.
La sustancia específica medida en la presente invención es un componente de una bacteria o una sustancia que es secretada por una bacteria. Más preferentemente, la sustancia específica es, la proteína ribosómica L7/L12 de una bacteria. Se puede obtener una alta sensibilidad de detección para la proteína ribosómica L7/L12, ya que existe en las células en un gran número de copias. Tal como se describe en los ejemplos mencionados más adelante, un anticuerpo que puede reconocer una bacteria en particular que causa mastitis al distinguirla de otras bacterias a nivel de especie o género en realidad puede obtenerse mediante el procedimiento conocido que se describe a continuación. Los tipos de bacterias son bactarias coliformes, y entre los ejemplos se incluyen Escherichia coli, bacterias que pertenecen al género Klebsiella, etc.
[Anticuerpo]
El anticuerpo mencionado anteriormente se puede preparar mediante el procedimiento descrito en la Patente WO00/06603. Cuando la proteína ribosómica bacteriana L7/L12 se utiliza como antígeno, el anticuerpo se puede preparar utilizando una proteína de longitud completa o un péptido parcial de la proteína ribosómica bacteriana L7/L12 como antígeno pero, preferentemente, se prepara utilizando la proteína de longitud completa como antígeno. Se puede obtener un antisuero que contenga un anticuerpo (anticuerpo policlonal) que reconozca la proteína ribosómica L7/L12 inoculando dicho péptido parcial o proteína de longitud completa, tal como se ha mencionado anteriormente, tal cual o reticulado con una proteína transportadora a un animal, junto con un adyuvante, según sea necesario, y recolectando el suero del animal. Además, también se puede utilizar el anticuerpo purificado a partir del antisuero. Entre los ejemplos del animal utilizado para la inoculación se incluyen ovejas, caballos, cabras, conejos, ratones, ratas, etc., y son especialmente preferentes para preparar anticuerpos policlonales las ovejas, conejos, etc. Además, es más preferente utilizar, como anticuerpo, un anticuerpo monoclonal obtenido mediante un procedimiento conocido en el que se prepara una célula de hibridoma, y en este caso, es preferente el ratón como animal. Si se recupera mediante cribado, como un anticuerpo monoclonal de este tipo, un anticuerpo monoclonal que reacciona con la proteína ribosómica L7/L12 de una bacteria específica que causa mastitis, pero no reacciona con la proteína ribosómica L7/L12 de una bacteria que causa mastitis que no sea la bacteria especificada anteriormente, se puede utilizar para diagnosticar si un animal padece infección por la bacteria o no.
También se puede utilizar un anticuerpo monoclonal que reconoce una sustancia que no sea la proteína ribosómica L7/L12 como antígeno, siempre que el anticuerpo sea un anticuerpo monoclonal que reaccione con un componente de una bacteria específica que causa mastitis o una sustancia secretada por una bacteria de este tipo, pero no reacciona con un componente de una bacteria que causa mastitis que no sea la bacteria específica anterior o una sustancia secretada por dicha bacteria.
Además, como anticuerpo monoclonal, es preferente utilizar un anticuerpo monoclonal cuya reacción antígeno-anticuerpo no esté inhibida por ningún contaminante que no sea la sustancia específica contenida en la leche. Por ejemplo, la leche contiene una gran cantidad de proteínas, tales como la caseína, y pueden inhibir la reacción de la sustancia específica y el anticuerpo monoclonal. Cuando un anticuerpo monoclonal dirigido a la sustancia específica se prepara de manera convencional, se pueden elegir y utilizar preferentemente, por ejemplo, un anticuerpo monoclonal cuya reacción antígeno-anticuerpo no esté inhibida por la caseína o similar, o un anticuerpo monoclonal cuya reacción antígeno-anticuerpo apenas se vea afectada por caseína o similares. Este anticuerpo monoclonal se puede obtener fácilmente preparando anticuerpos monoclonales que reaccionan específicamente con un antígeno de una manera habitual, y posteriormente seleccionando un anticuerpo monoclonal cuya reacción antígeno-anticuerpo no esté inhibida sustancialmente por un contaminante, tal como la caseína, al examinar si la reacción antígeno-anticuerpo se inhibe o no en presencia del contaminante.
[Otros]
En la presente invención, la tira reactiva descrita anteriormente se puede utilizar como tal como un dispositivo inmunocromatográfico, o la tira reactiva se puede almacenar en un estuche para constituir un dispositivo inmunocromatográfico. En el primer caso, si se utiliza un gran volumen de leche como muestra, el dispositivo inmunocromatográfico se utiliza preferentemente, sumergiendo directamente un extremo de la tira reactiva en la muestra contenida en un recipiente. En el segundo caso, si el volumen de leche como muestra es pequeño, el dispositivo inmunocromatográfico se utiliza preferentemente, midiendo un volumen predeterminado de la muestra con una pipeta o similar, y colocando la muestra en la tira reactiva. En este último caso, el estuche puede tener cualquier forma siempre que la tira reactiva se pueda almacenar. El estuche se puede formar con cualquier material, y entre los ejemplos preferentes se incluyen polipropileno, policarbonato, etc.
El dispositivo inmunocromatográfico de la presente invención también se puede proporcionar como un kit que comprende un recipiente tal como un microtubo y una solución aditiva, por ejemplo, una solución aditiva que contiene una enzima lítica o un surfactante para lisar la bacteria para eluir la proteína ribosómica L7/L12 en la solución.
Ejemplos
Ejemplo 1: efecto del dodecilsulfato de sodio (SDS) en presencia de lisozima y surfactante no iónico en la detección de Escherichia coli mediante el procedimiento inmunocromatográfico
(1) Preparación de anticuerpo monoclonal dirigido a la proteína ribosómica L7/L12
Como el anticuerpo a marcar con oro coloidal, se utilizó el anticuerpo monoclonal para la proteína ribosómica L7/L12 de Escherichia coli. Según el procedimiento descrito en la Publicación de Patente internacional WO00/06603, ejemplo 5, se obtuvo la proteína ribosómica L7/L12 de Escherichia coli, y se prepararon anticuerpos monoclonales utilizando esta proteína. Entre los anticuerpos monoclonales, se seleccionó una combinación de dos tipos de
anticuerpos monoclonales (EC-1 y EC-2) que pueden unirse simultáneamente a diferentes sitios de la proteína ribosómica L7/L12 de la bacteria mencionada u otras bacterias coliformes.
(2) Preparación del dispositivo inmunocromatográfico.
Se preparó un dispositivo inmunocromatográfico como sigue.
(a) Miembro impregnado de anticuerpo marcado con oro coloidal
Se mezcló una solución coloidal de oro (tamaño de partícula de 60 nm, 0,9 ml, BB International) con fosfato de potasio 0,1 M, pH 7,0, se añadió a la mezcla el anticuerpo monoclonal EC-2 (100 pg/ml) para marcar con oro coloidal, y la mezcla resultante se dejó en reposo a temperatura ambiente durante 10 minutos para que el anticuerpo se uniera a las superficies de las partículas de oro coloidal. Posteriormente, se añadió una solución acuosa al 10 % de albúmina de suero bovino (BSA) a una concentración final del 1 % en la solución de oro coloidal, de modo que las superficies restantes de las partículas de oro coloidal se bloquearon con BSA, para preparar una solución del anticuerpo monoclonal EC-2 marcado con oro coloidal (en adelante denominado "anticuerpo marcado con oro coloidal"). Esta solución se centrifugó (a 15.000 rpm durante 5 minutos) para precipitar el anticuerpo marcado con oro coloidal y el sobrenadante se eliminó para obtener el anticuerpo marcado con oro coloidal. Este anticuerpo marcado con oro coloidal se suspendió en tampón de Tris-ácido clorhídrico 20 mM (pH 7) que contenía BSA al 0,25 %, sacarosa al 2,5 % y NaCl 35 mM para obtener una solución de anticuerpo marcado con oro coloidal. Una almohadilla de fibra de vidrio con forma de tira (10 mm x 300 mm) se impregnó con la solución de anticuerpo marcado con oro coloidal (2 ml), y se secó a temperatura ambiente a presión reducida para obtener un miembro 1 impregnado de anticuerpo marcado con oro coloidal (primera parte).
(b) Parte para la captura del complejo de antígeno y anticuerpo marcado con oro coloidal
Se preparó una membrana de nitrocelulosa que tenía una anchura de 25 mm y una longitud de 300 mm como soporte de membrana 2 para el revelado cromatográfico con medio de cromatografía (segunda parte).
Se aplicó una solución que contenía el anticuerpo monoclonal EC-1 (1,5 mg/ml) en forma de línea en un volumen de 1 pl/cm en el soporte de membrana 2 para el revelado cromatográfico en una posición de 10 mm desde el extremo en el lado del punto de partida del revelado de la cromatografía, y se secó a 50 °C durante 30 minutos, y posteriormente el soporte de membrana se sumergió en una solución de sacarosa al 0,5 % durante 30 minutos, y se secó durante toda la noche a temperatura ambiente para obtener una parte 3 para la captura del complejo del antígeno de la proteína ribosómica L7/L12 de Escherichia coliy el anticuerpo marcado con oro coloidal.
(c) Preparación del dispositivo inmunocromatográfico
En la figura 1 se muestra una vista en sección del dispositivo inmunocromatográfico. Además del miembro 1 impregnado de anticuerpo marcado mencionado anteriormente y el soporte de membrana 2 para el revelado cromatográfico, se adhirieron entre sí GF/DVA de 25 mm (miembro de filtro 4 que tiene un espesor de 776 pm y que consiste en fibras de vidrio, tamaño de retención de partícula de 3,5 pm, GE Healthcare Bioscience) y GF/AVA de 20 mm (miembro de filtro 7 que tiene un espesor de 299 pm y que consiste en fibras de vidrio, tamaño de retención de partícula 1,7 pm, GE Healthcare Bioscience) como un miembro que sirve tanto de miembro para la adición de la muestra como de miembro para la eliminación de glóbulos de grasa (tercera parte), y se preparó adicionalmente papel de filtro como el miembro 5 para absorción. Después de que estos miembros se adhirieran a un sustrato 6 (espesor de 254 pm, fabricado de poliestireno, con adhesivo para adherir los miembros), se cortaron con una anchura de 5 mm para preparar el dispositivo inmunocromatográfico.
(3) Ensayo
La medición de la leche de vaca utilizando el dispositivo inmunocromatográfico se realizó de la siguiente manera. La leche (100 pl) que contenía Escherichia coli (cepa ATCC 25922) o Klebsiella pneumoniae (cepa ATCC 13883), que es un tipo de especie de bacteria coliforme, a una concentración final de 1 x 105 (ufc/ml) se colocó en un microtubo, se añadieron a la leche 150 pl de una solución de tratamiento de lisis (1 % (concentración final) de Triton X, 2,2 mg/ml de lisozima (título 0,8 mg de lisozima/mg de peso seco, Wako Pure Chemical Industries), MOPSO 0,1 M, pH 7,5) y se mezclaron en la misma a temperatura ambiente, y la mezcla resultante se dejó en reposo durante 10 minutos.
Como la leche de vaca, se utilizó la leche comercial para el consumo. El dispositivo inmunocromatográfico mencionado anteriormente se sumergió en la solución mixta anterior desde el miembro 4 para la adición de muestra, se permitió el revelado cromatográfico dejando el dispositivo en reposo a temperatura ambiente durante 30 minutos, y posteriormente para determinar la presencia o ausencia de captura del complejo del complejo del antígeno de la proteína ribosómica L7/L12 y el anticuerpo marcado con oro coloidal por la parte 3 mencionada anteriormente para
la captura, se midió una línea púrpura rojiza que se volvió más o menos visible en proporción a la cantidad de captura mediante un aparato C10066 (Hamamatsu Photonics). La proporción de lisis para cada condición se calculó como una proporción relativa a la proporción de lisis observada en una suspensión celular que contenía Triton X-100 a una concentración final del 1,0 % que se había agitado de manera preliminar durante toda la noche, sometida a ultrasonidos (intensidad 10, 1 minuto x 10 veces) y posteriormente se sometió a un tratamiento de lisis a 37 °C durante 60 minutos con 2,2 mg/ml de lisozima, MOPSO 0,1 M, pH 7,5, cuya proporción de lisis se tomó como el 100 %. Se compararon los resultados de un caso en el que se añadió dodecilsulfato de sodio (SDS) a una concentración final del 0,01 % a la solución de tratamiento de lisis mencionada anteriormente (condición 2) y un caso en el que no se añadió dodecilsulfato de sodio (SDS) (condición 1).
Los resultados se muestran en la figura 2. Se reveló que la adición de dodecilsulfato de sodio (SDS) mejoró notablemente la proporción de lisis.
Ejemplo 2: efecto del dodecilsulfato de sodio (SDS) en presencia de enzima lítica y surfactante no iónico en la detección de Escherichia coli mediante procedimiento inmunocromatográfico
La medición de la leche de vaca utilizando el dispositivo inmunocromatográfico se realizó de la siguiente manera. Se colocó leche (100 pl) que contenía Escherichia coli a una concentración final de 1 x 105 (ufc/ml) en un microtubo, se añadieron 150 pl de una solución de tratamiento de lisis (1 % (concentración final) de Triton X-100, 2,2 mg/ml de lisozima, MOPSO 0,1 M, pH 7,5) a la leche y se mezclaron en la misma a temperatura ambiente, y la mezcla resultante se dejó en reposo durante 10 minutos. Como leche de vaca, se utilizó la leche comercial para beber. El dispositivo inmunocromatográfico mencionado anteriormente se sumergió en la solución mixta anterior desde el miembro 4 para la adición de la muestra, el revelado cromatográfico se realizó dejando el dispositivo en reposo a temperatura ambiente durante 30 minutos, y posteriormente para determinar la presencia o ausencia de captura del complejo del antígeno de la proteína ribosómica L7/L12 y el anticuerpo marcado con oro coloidal por la parte 3 mencionada anteriormente para la captura, se midió una línea púrpura rojiza que se volvió más o menos visible en proporción a la cantidad de captura mediante un aparato C10066 (Hamamatsu Photonics). Se añadió SDS a la solución de tratamiento de lisis a diversas concentraciones, y se calculó la proporción de lisis para cada concentración de SDS (del 0,01 al 0,15 % como la concentración final) como una proporción de lisis relativa a la proporción de lisis observada para la suspensión celular para la cual el tratamiento de lisis se realizó de antemano, de la misma manera que se ha descrito en el ejemplo 1, que se tomó como el 100 %.
Los resultados se muestran en la figura 3. Se reveló que, dentro de un intervalo de concentración específico, la proporción de lisis mejoró notablemente con el aumento de la concentración de SDS.
Ejemplo 3: medición en muestra de leche mediante el procedimiento inmunocromatográfico.
Se realizó un procedimiento inmunocromatográfico para una muestra de leche obtenida de una vaca con mastitis. La medición se realizó de la misma manera que en el ejemplo 2, y se examinó visualmente la línea violeta rojiza que aparecía (positivo , negativo -). Se compararon los resultados obtenidos con soluciones de tratamiento de lisis que contenían el 1 % (concentración final) de Triton X, MOPSO 0,1 M, pH 7,5 y 2,2 mg/ml de lisozima, y contenían SDS al 0,01 %, o no contenían el mismo (concentración final para ambos). Por separado, para confirmar el recuento de Escherichia coli en la leche, la cuantificación se realizó por PCR cuantitativa. El ADN genómico se extrajo de la leche (100 pl) utilizando el Mini Kit de ADN (Qiagen), y posteriormente se realizó la PCR utilizando la cuantificación de Escherichia coli (todas las cepas) (PrimerDesign) para cuantificar la cantidad de Escherichia coli contenida en la leche.
Los recuentos de Escherichia coli calculados por PCR y los resultados de determinación obtenidos mediante el procedimiento inmunocromatográfico se muestran en la tabla 1. La utilización de la solución de tratamiento de lisis que contenía lisozima y SDS permitió la detección de Escherichia coli en una cantidad que no se había podido medir hasta ahora. Dado que la cantidad de Escherichia coli contenida en la leche es 106 (células/ml) o superior en la mayoría de los casos, se reveló que la utilización de esta solución de tratamiento de lisis mejora notablemente la sensibilidad del diagnóstico.
T l 1
Claims (11)
1. Procedimiento para lisar bacterias coliformes contenidas en la leche, que comprende la etapa de mezclar un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico con la leche para lisar las bacterias coliformes existentes en la leche,
en el que, en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final del surfactante aniónico no es inferior al 0,01 % ni superior al 0,15 %.
2. Procedimiento de lisis, según la reivindicación 1, en el que el surfactante aniónico comprende un sulfato de alquilo; y/o
el surfactante no iónico comprende un alquilfeniléter polioxietilenado.
3. Procedimiento de lisis, según la reivindicación 1 o 2, en el que, en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final de lisozima no es inferior a 0,1 mg/ml ni superior a 200 mg/ml; y/o
en la etapa de mezclar el agente de lisis con la leche para lisar las bacterias existentes en la leche, la concentración final del surfactante no iónico no es inferior al 0,03 % ni superior al 10 %.
4. Procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche, que comprende:
1. la etapa de mezclar un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico con la leche para lisar las bacterias coliformes existentes en la leche, la concentración final del surfactante aniónico no es inferior al 0,01 % ni superior al 0,15 %.
2. la etapa de eliminar los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche utilizando un material que tiene poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche, y
3. la etapa de detectar una sustancia específica derivada del interior de las bacterias coliformes y liberada mediante la lisis;
en el que
las etapas se llevan a cabo en el orden de 1, 2 y 3; y las etapas 2 y 3 se llevan a cabo mediante un procedimiento inmunocromatográfico.
5. Procedimiento, según la reivindicación 4, en el que el surfactante aniónico comprende un sulfato de alquilo, y/o el surfactante no iónico comprende un alquilfeniléter polioxietilenado.
6. Procedimiento, según cualquiera de las reivindicaciones 4 a 5, en el que el procedimiento inmunocromatográfico comprende: (1) la etapa de poner en contacto la leche que contiene la sustancia específica con una tira reactiva que tiene una primera parte que retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica, o la sustancia específica que está marcada, una segunda parte dispuesta aguas abajo de la primera parte, en la que se inmoviliza un segundo anticuerpo dirigido a la sustancia específica, y una tercera parte dispuesta aguas arriba de la primera parte o la segunda parte y que tiene poros que permiten la eliminación de glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche, en la tercera parte o una parte existente aguas arriba de la misma, y (2) la etapa de hacer fluir la leche hasta la segunda parte o hasta una parte existente aguas abajo de la misma para obtener una señal detectable del marcador en la segunda parte o una parte existente aguas abajo de la misma.
7. Procedimiento, según la reivindicación 6,
en el que el primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica retienes retenida en la primera parte.
8. Procedimiento, según la reivindicación 6 o 7,
en el que la tercera parte está constituida por dos o más tipos de miembros que tienen poros que pueden eliminar glóbulos de grasa láctea de diferentes tamaños de partícula, respectivamente.
9. Procedimiento, según la reivindicación 8, en el que la tercera parte está constituida por un primer miembro dispuesto aguas abajo y un segundo miembro dispuesto aguas arriba, y el tamaño de retención de partícula del segundo miembro es mayor que el tamaño de retención de partícula del primer miembro.
10. Utilización in vitro de un agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico para el diagnóstico de la mastitis en un animal de ganadería.
11. Utilización in vitro de un kit, que comprende :
un agente de lisis agente de lisis que contiene lisozima, un surfactante aniónico y un surfactante no iónico, y un dispositivo inmunocromatográfico para detectar una sustancia específica contenida en la leche, que comprende una tira reactiva que tiene una primera parte que retiene un primer anticuerpo marcado dirigido a la sustancia específica, o la sustancia específica que está marcada, una segunda parte dispuesta aguas abajo de la primera parte, en la que se inmoviliza un segundo anticuerpo dirigido a la sustancia específica, y una tercera parte dispuesta aguas arriba de la primera parte o la segunda parte y que tiene poros que permiten la eliminación de los glóbulos de grasa láctea contenidos en la leche,
para el diagnóstico de la mastitis en un animal de ganadería.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2013261824 | 2013-12-18 | ||
| PCT/JP2014/083460 WO2015093545A1 (ja) | 2013-12-18 | 2014-12-17 | 乳汁中の大腸菌群を検出する方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2787174T3 true ES2787174T3 (es) | 2020-10-15 |
Family
ID=53402889
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES14870998T Active ES2787174T3 (es) | 2013-12-18 | 2014-12-17 | Procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US10345299B2 (es) |
| EP (1) | EP3085769B1 (es) |
| JP (1) | JP6280567B2 (es) |
| DK (1) | DK3085769T3 (es) |
| ES (1) | ES2787174T3 (es) |
| NZ (1) | NZ721261A (es) |
| WO (1) | WO2015093545A1 (es) |
Families Citing this family (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2015093545A1 (ja) * | 2013-12-18 | 2015-06-25 | 旭化成株式会社 | 乳汁中の大腸菌群を検出する方法 |
| US11650213B2 (en) * | 2015-03-30 | 2023-05-16 | Entvantage Diagnostics, Inc. | Devices and assays for diagnosis of viral and bacterial infections |
| EP3535409B1 (en) * | 2016-11-04 | 2024-03-20 | CD Diagnostics, Inc. | Direct detection of microorganisms in patient samples by immunoassay |
| JP7237985B2 (ja) * | 2018-11-30 | 2023-03-13 | 旭化成株式会社 | 乳房炎の原因菌の検出方法 |
| EP4438715A1 (en) | 2021-11-24 | 2024-10-02 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Bacteriolysis method and bacteria detection method |
| WO2023095843A1 (ja) | 2021-11-24 | 2023-06-01 | 旭化成株式会社 | イムノクロマト装置及びその製造方法、並びにそれを用いた対象細菌の検出方法 |
| WO2024111665A1 (ja) | 2022-11-24 | 2024-05-30 | 旭化成株式会社 | 溶菌方法、溶菌助液、及び細菌の有無の判定方法 |
| US20240210398A1 (en) * | 2022-12-27 | 2024-06-27 | Princeton Biochemicals, Inc. | Method and System for Exposing Hidden or Masked Antigenic Sites of Viral Specimens Present in Biosamples Using a Home-Based COVID-19 Rapid Lateral Flow Immunoassay Test |
Family Cites Families (19)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0773511B2 (ja) | 1986-12-29 | 1995-08-09 | 味の素株式会社 | 微生物菌数測定法 |
| CA1312544C (en) | 1987-12-21 | 1993-01-12 | James L. Wilcox | Chromatographic binding assay devices and methods |
| KR100230909B1 (ko) | 1993-11-29 | 1999-12-01 | 다니엘 엘. 캐시앙 | 광범위의 유기체로부터 핵산 추출 방법 |
| JPH07196463A (ja) | 1993-12-28 | 1995-08-01 | Lion Corp | 口腔用組成物 |
| KR100771275B1 (ko) | 1998-07-31 | 2007-10-29 | 아사히 가세이 가부시키가이샤 | 미생물 검출용 항체 |
| PL364816A1 (en) * | 1999-07-23 | 2004-12-13 | Genentech, Inc. | Method for rnase- and organic solvent-free plasmid dna purification using tangential flow filtration |
| JP2003171291A (ja) * | 1999-10-29 | 2003-06-17 | Takeda Schering-Plough Animal Health Kk | 乳房炎用粘膜予防剤 |
| US8298758B2 (en) | 2003-12-26 | 2012-10-30 | Prima Meat Packers, Ltd. | Method of multiplex microorganism detection |
| JP4711846B2 (ja) * | 2005-02-18 | 2011-06-29 | 達也 宗島 | 甚急性乳房炎の判定方法 |
| WO2008017097A1 (en) * | 2006-08-10 | 2008-02-14 | Merck Patent Gmbh | Method for isolating cells |
| JP2010510524A (ja) | 2006-11-22 | 2010-04-02 | スリーエム イノベイティブ プロパティズ カンパニー | 試料を調製及び分析するシステム並びに方法 |
| JP2010154851A (ja) * | 2008-12-01 | 2010-07-15 | Sanyo Chem Ind Ltd | タンパク質抽出薬剤 |
| WO2010137624A1 (ja) * | 2009-05-29 | 2010-12-02 | 三洋化成工業株式会社 | 有用物質生産方法及びこの生産方法で使用される界面活性剤 |
| WO2011018858A1 (ja) * | 2009-08-14 | 2011-02-17 | エヌエーアイ株式会社 | 新規乳房炎ワクチン |
| JP5693938B2 (ja) * | 2010-12-10 | 2015-04-01 | 旭化成株式会社 | 乳汁中の特定物質を検出する方法 |
| US10048262B2 (en) * | 2012-06-13 | 2018-08-14 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Method for detecting specific substance in milk |
| JP2014066641A (ja) * | 2012-09-26 | 2014-04-17 | Prima Meat Packers Ltd | 大腸菌ｏ１５７の検出方法 |
| US10139409B2 (en) * | 2013-12-18 | 2018-11-27 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Method for detecting Streptococcus bacterium contained in milk |
| WO2015093545A1 (ja) * | 2013-12-18 | 2015-06-25 | 旭化成株式会社 | 乳汁中の大腸菌群を検出する方法 |
-
2014
- 2014-12-17 WO PCT/JP2014/083460 patent/WO2015093545A1/ja active Application Filing
- 2014-12-17 US US15/105,420 patent/US10345299B2/en active Active
- 2014-12-17 EP EP14870998.3A patent/EP3085769B1/en active Active
- 2014-12-17 JP JP2015553591A patent/JP6280567B2/ja active Active
- 2014-12-17 DK DK14870998.3T patent/DK3085769T3/da active
- 2014-12-17 NZ NZ721261A patent/NZ721261A/en unknown
- 2014-12-17 ES ES14870998T patent/ES2787174T3/es active Active
-
2019
- 2019-06-03 US US16/430,037 patent/US11567076B2/en active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US20160320387A1 (en) | 2016-11-03 |
| EP3085769A4 (en) | 2017-07-19 |
| EP3085769B1 (en) | 2020-04-15 |
| US10345299B2 (en) | 2019-07-09 |
| NZ721261A (en) | 2017-09-29 |
| JP6280567B2 (ja) | 2018-02-14 |
| US11567076B2 (en) | 2023-01-31 |
| WO2015093545A1 (ja) | 2015-06-25 |
| DK3085769T3 (da) | 2020-06-08 |
| US20190317093A1 (en) | 2019-10-17 |
| JPWO2015093545A1 (ja) | 2017-03-23 |
| EP3085769A1 (en) | 2016-10-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2787174T3 (es) | Procedimiento para detectar bacterias coliformes contenidas en la leche | |
| ES2699886T3 (es) | Procedimiento para la detección de estafilococos contenidos en la leche | |
| US10545146B2 (en) | Method for detecting specific substance in milk | |
| ES2771598T3 (es) | Procedimiento para detectar bacterias del género Streptococcus en la leche | |
| JP7237985B2 (ja) | 乳房炎の原因菌の検出方法 | |
| NZ702764B2 (en) | Method for detecting specific substance in milk |