ES2664069T3 - Vacunas contra BTV y AHSV de genoma reordenado - Google Patents

Abstract

Composición o vacuna que comprende uno o más vectores del virus de la lengua azul (BTV) recombinantes que consisten en un polinucleótido heterólogo que codifica el polipéptido VP2 de BTV-8 y una estructura de vector derivada del genoma de BTV-1.

Description

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DESCRIPCIÓN

Vacunas contra BTV y AHSV de genoma reordenado

CAMPO DE LA DESCRIPCIÓN

[0001] La presente descripción se refiere a composiciones para combatir el Virus de la lengua azul (BTV) o infección por el virus la peste equina africana (VPE) en los animales. La presente descripción proporciona composiciones farmacéuticas que comprenden un vector recombinante de BTV o AHSV, los procedimientos de vacunación contra el BTV o AHSV, y kits para usar con tales procedimientos y composiciones.

ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN

[0002] La lengua azul (BT) es una enfermedad viral infecciosa transmitida por artrópodos de los rumiantes. El ganado vacuno y las cabras pueden infectarse fácilmente con el BTV causante pero sin lesión vascular extensa y por lo tanto estas especies generalmente no muestran signos clínicos pronunciados. En cambio, la enfermedad en el ganado ovino se caracteriza por la inflamación catarral de las membranas mucosas de la boca, la nariz y preestómagos, y por la inflamación de las bandas coronarias y láminas de los cascos. Hay una excoriación del epitelio, y en última instancia la necrosis de la mucosa bucal; la lengua y la boca hinchada e inflamada pueden tomar un color azul a partir del cual se llama la enfermedad (Spreull 1905). La tasa de mortalidad en el ganado ovino se estima en el 1-30%.

[0003] BTV es el virus prototipo del género Orbivirus (familia Reoviridae) y se compone de al menos 24 serotipos diferentes (Wilson y Mecham 2000). Las diferentes cepas de BTV se han identificado en todo el mundo a lo largo de zonas tropicales y templadas. La infección por BTV ha aparecido tan lejos como 45ºN en Europa, tan lejos como 50ºN en Asia y América del Norte, y tan lejos en el sur hasta 35º. El BTV no es contagioso entre los rumiantes, por lo tanto la distribución de BTV es dependiente de la presencia de especies de vectores de artrópodos de Culicoides sp. (mosquitos mordedores), con diferentes especies de vectores que se producen en diferentes regiones del mundo. Los datos recientes sugieren que la deriva genética y el efecto fundador contribuyen a la diversificación de los segmentos génicos individuales de cepas de campo de BTV (Bonneau, Mullens et al. 2001). Se ha demostrado que los animales seropositivos en BTV son resistentes a la reinfección con el serotipo de BTV homólogo.

[0004] La infección con BTV de los rumiantes es transitoria, mientras que la infección del vector del insecto Culicoides es persistente. La duración de la viremia depende de la especie animal y de la cepa de BTV. Se ha descrito que la viremia puede ser muy transitoria en el ganado ovino y puede durar hasta 41 días en individuos infectados con BTV, hasta 42 días en las cabras, y hasta 100 días en el ganado vacuno. Dado que la infección con BTV del ganado vacuno a menudo da lugar a viremia prolongada, pero no persistente, el ganado vacuno sirve como un depósito desde el que el virus puede ser ingerido por el vector Culicoides y a continuación transmitido a otros rumiantes (Anderson, Stott et al 1985;. MacLachlan 1994; MacLachlan y Pearson 2004). La ecología de muchas especies de vectores Culicoides es poco conocida y sus sitios de reproducción están en gran parte sin caracterizar, y sus tasas de dispersión son desconocidas. Culicoides sonorensis es el principal vector de BTV en América del Norte. Los insectos Culicoides hembra se infectan persistentemente con BTV y pueden transmitir el virus después de un período de incubación extrínseca de hasta 14 días (Mullens, Tabachnick et al. 1995). La invernación de BTV en las zonas templadas se puede producir a través de vectores de insecto infectados verticalmente, aunque los datos recientes indican que hay una reducción en la expresión de los genes de la cápside externa durante la infección persistente con BTV en estadios larvarios de los vectores de insectos (White, Wilson et al. 2005).

[0005] Los viriones de BTV tienen un diámetro de ~ 69 nm con una capa de doble envoltura (cápside) que a veces está rodeada de una "pseudo-envoltura" de lipoproteína derivada de las membranas celulares de las células infectadas. El genoma de BTV incluye 10 segmentos distintos de ARN de doble cadena que codifican colectivamente siete proteínas estructurales (VP1 a VP7) y cuatro proteínas no estructurales (NS1, NS2, NS3 y NS3a) (Roy 1996); 9 de los segmentos del genoma son monocistrónicos, mientras que el segmento 10 codifica tanto NS3 como NS3A utilizando un segundo codón de iniciación en el marco. El ARN genómico está encapsidado en la partícula del virión icosaédrica por una cápside de proteína de doble capa (Verwoerd, Els et al. 1972). El núcleo icosaédrico consiste en dos proteínas principales (VP3 y VP7) y tres proteínas minoritarias (VP1, VP4, VP6) y está rodeado por la cápside externa que consiste en VP2 y VP5 que respectivamente están codificadas por los segmentos genómicos 2 y 5 (Roy 1996). VP2 es responsable de la unión y la entrada de BTV en las células, neutralización, especificidad de serotipo y hemaglutinación. Las formas multiméricas de VP2 (dímeros y trímeros) decoran gran parte de la superficie de un andamio de VP5 en la superficie exterior de las partículas virales (Hassan y Roy 1999). VP2 varía más entre los 24 serotipos de BTV, y los niveles de anticuerpo anti-VP2 se correlacionan con la neutralización del virus in vitro e in vivo (Huismans y Erasmus 1981). VP5 también varía notablemente entre diferentes serotipos y cepas de BTV (de Mattos, de Mattos et al 1994; DeMaula, Bonneau et al 2000) y aunque no se han identificado MAb neutralizantes específicos de VP5 hasta la fecha, los datos sugieren que esta proteína tiene un papel en la neutralización y determinación del serotipo a través de su influencia conformacional en VP2 (Huismans

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y Erasmus 1981; Roy, Urakawa et al 1990; DeMaula et al, 2000). La VP2 purificada, inmunoadsorbida con suero anti

núcleo de BTV para eliminar cantidades traza de VP7, se inyectó en ovejas. Una dosis inicial de 50 microgramos de VP2

era suficiente para inducir anticuerpos precipitantes de VP2, así como anticuerpos neutralizantes e inhibidores de

5 hemaglutinación. Estas ovejas fueron completamente protegidas contra la estimulación con una cepa virulenta del mismo

serotipo de BTV. Las dosis más bajas de VP2 todavía proporcionaron un nivel significativo de protección a pesar de que

no se detectaron anticuerpos neutralizantes antes de la estimulación (Huismans, van der Walt et al. 1987). Resultados

recientes demuestran que VP2 y NS1 expresan epítopos reconocidos por linfocitos T citotóxicos (CTL) (Andrew, Whiteley

et al. 1995), mientras que es poco probable que VP7 y VP5 tengan epítopos de CTL. Hasta el momento, VP3, VP4, VP6, 10 NS2 y NS3 no han estimulado una respuesta de CTL en ovejas (Lobato, Coupar et al., 1997). La tabla 1 (modificado de

Wilson y Mecham 2000) a continuación resume los genes de BTV y su función de la proteína.

Tabla 1 Genes del virus de la lengua azul y proteínas codificadas con la ubicación, propiedades y función de las proteínas

Segmento de genoma

Proteína Ubicación Propiedades y función

L1 (3954 pb) 150 kDa)

VP1 en el subnúcleo en el eje de orden 5 ARN polimerasa dependiente de ARN

L2 (2926 pb) 111 kDa)

VP2 cápside externa (trímero) cápside externa, antígeno específico de serotipo, proteína de unión celular de mamífero, epítopos neutralizantes

L3 (2770 pb) 103 kDa)

VP3 capa de la cápside del subnúcleo (T = 2 simetría) cubierta de la cápside de las proteínas más internas, capa de la cápside del subnúcleo, autoensambla, conserva la simetría icosaédrica, unión a ARN, interactúa con proteínas menores internas

M4 (2011 pb) 76 kDa)

VP4 en el subnúcleo en el eje de orden 5 enzima de bloqueo, guanililtransferasa

M5 (1638 pb) 59 kDa)

VP5 cápside externa (trímero) proteína de la cápside externa interna, puede afectar a la características del serotipo del virus

M6 (1769 pb) 64 kDa)

NS1 citoplasma Forma túbulos en el citoplasma celular

S7 (1156 pb) 38 kDa)

VP7 núcleo externo (T = 13 simetría, trímero) proteína de superficie del núcleo externo, antígeno específico de serogrupo principal inmunodominante, proteína de unión para los anticuerpos “neutralizantes del núcleo”

S8 (1124 pb) 41 kDa)

NS2 Citoplasma, cuerpos de inclusión viral (VIB) proteínas importantes de la matriz de cuerpos de inclusión viral, unión a ARNss, fosforilada, se puede asociar con cápside externa

S9 (1046 pb) 36 kDa)

VP6 en el subnúcleo en el eje de orden 5 unión a ARNss y ARNds, helicasa, NTPasa

S10 (822 pb) 24 kDa)

NS3, NS3a Membranas celulares glicoproteínas, proteínas de membrana, implicada en la salida celular

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[0006] Los polipéptidos antigénicos de BTV de interés incluyen VP2 y VP5. El núcleo icosaédrico consiste en dos proteínas principales (VP3 y VP7) y tres proteínas minoritarias (VP1, VP4, VP6) y está rodeado por la cápside externa que consiste en VP2 y VP5 que respectivamente están codificadas por segmentos genómicos 2 y 5 (Roy 1996). VP2 es responsable de la unión y la entrada de BTV en las células, la neutralización, la especificidad de serotipo y hemaglutinación. Las formas 20 multiméricas de VP2 (dímeros y trímeros) decoran gran parte de la superficie de una estructura de VP5 en la superficie exterior de las partículas virales (Hassan y Roy 1999). VP2 varía más entre los 24 serotipos de BTV, y los niveles de anticuerpo anti-VP2 se correlacionan con la neutralización del virus in vitro e in vivo (Huismans y Erasmus 1981). VP5 también varía notablemente entre diferentes serotipos y cepas de BTV (de Mattos, de Mattos et al 1994; DeMaula, Bonneau et al 2000) y aunque no se han identificado MAb neutralizantes específicos de VP5 hasta la fecha, los datos sugieren que 25 esta proteína tiene un papel en la neutralización y determinación del serotipo a través de su influencia en la conformación de VP2 (Huismans y Erasmus 1981; Roy, Urakawa et al 1990;.. DeMaula et al, 2000). La VP2 purificada, inmunoadsorbida con suero anti-núcleo de BTV para eliminar cantidades traza de VP7, se inyectó en ovejas. Una dosis inicial de 50 microgramos de VP2 era suficiente para inducir anticuerpos precipitantes de VP2, así como anticuerpos neutralizantes e inhibidores de hemaglutinación. Estas ovejas estaban completamente protegidas contra la estimulación con una cepa 30 virulenta del mismo serotipo de BTV. Dosis más bajas de VP2 todavía proporcionaron un nivel significativo de protección aún cuando no se detectaron anticuerpos neutralizantes antes de la estimulación (Huismans, van der Walt et al.

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1987). Resultados recientes demuestran que VP2 y NS1 expresan epítopos reconocidos por linfocitos T citotóxicos (CTL) (Andrew, Whiteley et al. 1995), mientras que es poco probable que VP7 y VP5 tengan epítopos de CTL. Hasta el momento, VP3, VP4, VP6, NS2 y NS3 no han estimulado una respuesta de CTL en ovejas (Lobato, Coupar et al. 1997), véase la Tabla 1.

[0007] La peste equina africana (PEA) es una enfermedad viral transmitida por artrópodos grave, a menudo mortal, de caballos y mulas (peste equina africana, The Merck Manual Veterinary). La tasa de mortalidad puede ser de hasta el 95% en algunas formas de esta enfermedad. Las infecciones asintomáticas o leves pueden aparecer en caballos, así como cebras y burros, especialmente caballos que fueron previamente infectados con un serotipo diferente del virus. Los animales o vectores infectados pueden llevar el virus en regiones libres de PEA. Algunos autores especulan que el cambio climático podría aumentar el riesgo de propagación de enfermedades transmitidas por artrópodos, tales como la peste equina africana, tal como ha ocurrido recientemente con el virus de la lengua azul relacionado (Wilson A et al, Parasitol Res 2008; 103: 69-77). Culicoides imicola, el principal vector de esta enfermedad, ha hecho incursiones en el norte de África y el sur de Europa. Los vectores de artrópodos potenciales también existen en prácticamente todas las regiones del mundo, incluida gran parte de los Estados Unidos y el resto de las Américas.

[0008] La peste equina africana resulta de la infección con el virus de la peste equina africana, un miembro del género Orbivirus en la familia Reoviridae. Hasta la fecha, se conocen 9 serotipos de virus de la peste equina africana. El serotipo 9 del virus de la peste equina africana está muy extendido en las regiones endémicas, mientras que los serotipos 1 a 8 se encuentran principalmente en áreas geográficas limitadas. El serotipo 9 ha sido responsable de la mayoría de los brotes de peste equina africana fuera de África. El serotipo 4 causó un brote en España y Portugal entre 1987 y 1990 (Lubroth J., Equine Pract 1988; 10: 26-33).

[0009] Las primeras investigaciones sobre el virus de la peste equina africana dio como resultado el desarrollo de una vacuna contra virus vivo modificado atenuado de cerebro de ratón para el virus de la peste equina africana en la década de 1930. Estas vacunas se refinaron y dieron lugar al desarrollo de una vacuna contra virus vivo modificado (MLV) atenuado de cultivo de tejidos en la década de 1960.

[0010] A pesar de la eficacia de esta vacuna, tiene algunas limitaciones inherentes, incluyendo reacciones de la vacuna (incluida la muerte) en animales individuales, respuesta inmunitaria variada en animales individuales, dificultad en la inmunización de animales jóvenes con inmunidad materna pasiva, posibilidad de reversión a virulencia del virus de la vacuna y la recombinación de cepas de la vacuna después de la vacunación con una posible reversión a virulencia (du Plessis M. et al.1998, Onderstepoort Journal of Veterinary Research 65: 321-329). También hay implicaciones socioeconómicas con el uso de la vacuna de MLV. Sudáfrica tiene un protocolo que le permite exportar caballos a la Unión Europea y una serie de otros países. Este protocolo también hace posible que los caballos de otros países entren en Sudáfrica para competir en varios eventos o estar disponible como semental durante un período temporal. El protocolo se basa en asegurar que los caballos sean vacunados adecuadamente contra el virus de la peste equina africana. Las autoridades veterinarias son conscientes de los posibles peligros del uso de la vacuna de MLV. La mayoría de estos problemas se reducirían en gran medida mediante el desarrollo de vacunas alternativas de virus de peste equina africana.

[0011] El genoma del virus de la peste equina africana se compone de diez segmentos de ARN bicatenario (Oellermann, RA et al., 1970 Bremer, CW et al., 1976); que codifican al menos diez proteínas virales. Los segmentos del genoma se enumeran 1-10 en orden de su migración en PAGE. Siete de las proteínas virales son estructurales y forman la partícula de virus de doble envoltura. La cápside externa se compone de dos proteínas virales principales, VP2 y VP5, que determinan la variabilidad antigénica del virus de la peste equinaafricana, mientras que el cápside interior se compone de dos proteínas virales principales (VP3 y VP7) y tres minoritarias (VP1, VP4 y VP6) (Lewis SA y Grubman MJ, 1991; Martínez-Torrecuadrada JL et al, 1994); Bremer, CW, et al. 1990; Grubman, MJ & Lewis, SA, 1992). VP3 y VP7 están altamente conservadas entre los nueve serotipos (Oellermann et al, 1970; Bremer et al., 1990). Al menos tres proteínas no estructurales, NS1, NS2 y NS3, han sido identificadas (Huismans, H. & Els, HJ, 1979; van Staden, V. & Huismans, H., 1991; Mizukoshi, N. et al, 1992).

[0012] Los virus de la viruela del canario recombinantes derivados de virus atenuados se han desarrollado como vectores para la expresión de genes virales heterólogos. Un número de estas construcciones de la viruela del canario ya han sido autorizadas como vacunas en muchos países, incluyendo Sudáfrica, la Unión Europea y los Estados Unidos de América para su uso en caballos (Minke JM, et al, 2004a y b; Minke JM, et al., 2007; Siger L, et al.2006) y otras especies (Poulet H, et al, 2003).

[0013] El hecho de que estas vacunas sólo contienen genes del organismo de interés las hace inherentemente seguras (Minke JM, et al., 2004b). Además, la aparición de anticuerpos neutralizantes detectables es rápida, incluso después de una sola dosis de vacuna (Minke JM et al., 2004b). La seguridad inherente de tales vacunas y la naturaleza del desarrollo

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de anticuerpos neutralizantes hacen que dichas vacunas sean particularmente atractivas para su uso en epizootias (Minke JM et al., 2004a).

[0014] Estudios anteriores han demostrado que los caballos desarrollan anticuerpos neutralizadores para AHS cuando se inoculan con VP2 expresada de forma exógena y un adyuvante apropiado (Scanlen M, et al., 2002). Los estudios en ovejas han demostrado que la respuesta de anticuerpos neutralizantes al virus de la lengua azul se ve reforzada por la inoculación de ovejas con partículas similares a virus en la que VP2 y VP5 son coexpresadas (Pearson LD, Roy P, 1993). Una vacuna contra el virus de viruela del canario recombinante que coexpresa los genes que codifican las proteínas de la cápside externa VP2 y VP5 del virus de la lengua azul se ha demostrado recientemente que induce altos niveles de protección en ovejas (Boone JD, et al., 2007).

[0015] No se ha demostrado que los caballos desarrollen anticuerpos neutralizantes para el virus de la peste equina africana cuando se inocula con un vector que contiene y coexpresa VP2 y VP5 de AHSV. Por tanto, puede entenderse que la presente descripción satisface una necesidad en la técnica proporcionando un poxvirus recombinante que incluye composiciones y productos de los mismos, en particular recombinantes basados en ALVAC y composiciones y productos de los mismos, especialmente dichos recombinantes que expresan VP 2 y 5 de AHSV o cualquier combinación de los mismos y composiciones y productos de los mismos.

[0016] Los estudios relativos a la modificación genética de BTV o AHSV han sido descritos por Piet A van Rijn et al. (Virology Journal, 2010, 7: 261), Polly Roy et al. (Journal of Viology, 2011, 85, 19; 10213 a 10221), Polly Roy et al. (Journal of Virology, 2008, pág. 8339-8348), Massimo Palmarini et al. (PLoS pathogens, 2011, 7 (12): e1002477) y, en WO2009/068870.

[0017] Por lo tanto, sería ventajoso proporcionar composiciones mejoradas inmunogénicas y de vacuna contra BTV y AHSV, y procedimientos para fabricar y usar tales composiciones, incluyendo dichas composiciones que proporcionan para procedimientos de diagnóstico diferenciales, ensayos y kits.

[0018] Teniendo en cuenta la susceptibilidad de los animales, incluyendo seres humanos, a BTV o AHSV, un procedimiento de prevención de la infección por BTV o AHSV y la protección de los animales es esencial. En consecuencia, existe una necesidad de una vacuna eficaz contra BTV o AHSV. Una vacuna de genoma reordenado de BTV basado en virus con una cadena principal de BTV-1 y proteínas VP2 y VP5 de BTV-8 heterólogas se conoce de J. Virology, 85, 2011, 10.213

10.221.

CARACTERÍSTICAS DE LA INVENCIÓN

[0019] La presente invención a la que la presente memoria descriptiva se refiere es tal como se establece en las reivindicaciones 1-7 adjuntas a esta descripción. Se proporcionan composiciones que comprenden uno o más vectores de BTV o AHSV de genoma reordenado recombinante que comprenden uno o más polinucleótidos heterólogos que codifican al menos uno de los antígenos de BTV o AHSV.

[0020] Los procedimientos de la descripción incluyen procedimientos para fabricar las composiciones o vectores de BTV

o AHSV reordenados recombinantes. Los procedimientos también incluyen procedimientos de uso que incluyen administrar a un animal una cantidad eficaz de las composiciones o vectores para producir una respuesta inmunogénica protectora.

BREVE DESCRIPCIÓN DE LOS DIBUJOS

[0021] La siguiente descripción detallada, proporcionada a modo de ejemplo, pero que no pretende limitar la descripción únicamente a las realizaciones específicas descritas, pueden entenderse mejor conjuntamente con los dibujos adjuntos, en los que: La figura 1 muestra el gráfico esquemático de BTV-1 y BTVA-8 de genoma reordenado y un diagrama de flujo de la generación de vectores de BTV de genoma reordenado recombinante. La figura 2 representa los diámetros promedio de placa de los genomas reordenados de BTV. La figura 3 representa los análisis de la curva de crecimiento de los virus de genomas reordenados. La mayoría de los genomas reordenados crecen de manera similar a los virus parentales de tipo natural. La figura 4 representa los resultados de neutralización de BTV. La figura 5 representa la generación de genomas reordenados de BTV. La figura 6 representa el gráfico esquemático de la generación de genomas reordenados de BTV utilizando genética inversa. La figura 7 muestra la tabla que contiene la asignación de SEQ ID NO y las secuencias de ADN y proteínas. La figura 8 representa la evolución de la temperatura promedio rectal después de la estimulación.

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La figura 9 representa las dispersiones de hipertermias máximas. La figura 10 representa la evolución de las puntuaciones promedio clínicas diarias. La figura 11 representa las dispersiones de las puntuaciones clínicas globales. La figura 12 representa la evolución de títulos promedio de viremia. La figura 13 representa las dispersiones de AUC. La figura 14 representa la evolución de los títulos promedio de anticuerpos neutralizantes de BTV-8. La figura 15 representa la morfología de la placa de sBTV que contiene la proteína VP2 y VP5 de cada serotipo. La figura 16 representa los títulos virales de los virus sBTV en BHK-21. La figura 17 representa el título infeccioso, ELISA, transferencia de puntos Vp2 para VP2 de BTV1 + BTV8 (RAS10). La figura 18 representa el título infeccioso, ELISA, transferencia de puntos Vp2 para VP2/VP5 de BTV1 + BTV8 (RAS32).

DESCRIPCIÓN DETALLADA

[0022] Se proporcionan composiciones que comprenden uno o más vectores de BTV o AHSV recombinantes que comprenden uno o más polinucleótidos heterólogos que codifican al menos uno de los antígenos de BTV o AHSV que provocan una respuesta inmunogénica en un animal. En una realización, el antígeno polipeptídico es un polipéptido de BTV VP2 o VP5 o fragmento activo o variante del mismo.

[0023] Se reconoce que los polipéptidos antigénicos de la descripción pueden ser polipéptidos de longitud completa o fragmentos activos o variantes de los mismos. Por "fragmentos activos" o "variantes activas" se pretende indicar que los fragmentos o variantes conservan la naturaleza antigénica del polipéptido. Por lo tanto, la presente descripción abarca cualquier polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o AHSV que provoque una respuesta inmunogénica en un animal. El polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o AHSV puede ser cualquier polipéptido, antígeno, epítopo

o inmunógeno de BTV o AHSV, tal como, pero no limitado a, una proteína, péptido o fragmento o variante de los mismos, que provoque, induzca o estimule una respuesta en un animal, tal como un ovino, bovino, caprino o equino.

[0024] La presente descripción se refiere a vacunas o composiciones bovinas, ovinas, caprinas o equinas que pueden comprender una cantidad eficaz de un vector de BTV o AHSV recombinante y un portador, excipiente, adyuvante, o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable.

[0025] En algunas realizaciones, las vacunas comprenden además adyuvantes, tales como emulsiones de aceite-en-agua (O/W) descritas en la patente de Estados Unidos 7.371.395.

[0026] En aún otras realizaciones, los adyuvantes incluyen EMULSIGEN, hidróxido de aluminio y saponina, y CpG, o combinaciones de los mismos.

[0027] En algunas realizaciones, la respuesta en el animal es una respuesta inmunitaria protectora.

[0028] Por "animal" se pretende mamíferos, aves, y similares. Animal o huésped incluye mamíferos y humanos. El animal puede ser seleccionado del grupo que consiste en equino (por ejemplo, caballos), caninos (por ejemplo, perros, lobos, zorros, coyotes, chacales), felino (por ejemplo, leones, tigres, gatos domésticos, gatos salvajes, otros gatos grandes, y otros felinos incluyendo guepardos y lince), ovino (por ejemplo, ovejas), bovino (por ejemplo, ganado vacuno), porcino (por ejemplo, cerdo), aves (por ejemplo, pollo, pato, ganso, pavo, codorniz, faisán, loro, pinzones, halcón, cuervo, avestruz, emu y casuario), primates (por ejemplo, prosimios, tarsero, mono, gibón, simio), hurones, focas, y pescado. El término "animal" también incluye un animal individual en todas las etapas de desarrollo, incluyendo recién nacido, embrionario y etapas fetales.

[0029] A menos que se explique lo contrario, todos los términos técnicos y científicos utilizados en el presente documento tienen el mismo significado que se entiende comúnmente por un experto en la técnica a la que pertenece esta descripción. Los términos singulares "un", "una", y "el/la" incluyen los referentes plurales a menos que el contexto indique claramente lo contrario. Del mismo modo, la palabra "o" pretende incluir "y" menos que el contexto indique claramente lo contrario.

[0030] Los términos "vector o vectores de BTV o AHSV recombinantes", "vector o vectores de BTV o AHSV de genoma reordenado recombinantes", "BTV o AHSV de genoma reordenado", "genomas reordenados de BTV o AHSV" se usan indistintamente en este documento para referirse a cualquier modificación, alteración o diseño de un virus de BTV o AHSV. La modificación, alteración o diseño de un virus de BTV o AHSV pueden incluir, pero no se limitan a, la deleción de uno o más nucleótidos o aminoácidos, la deleción de todo un gen, optimización de codones de un gen, la sustitución conservativa de aminoácidos, la inserción de uno o más polinucleótidos heterólogos, la mezcla de genes, transcripciones, segmentos de ARN, segmentos de ADN de diferentes serotipos o especies en nuevas combinaciones.

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[0031] Los polipéptidos antigénicos de la descripción son capaces de proteger contra BTV y AHSV. Es decir, son capaces de estimular una respuesta inmunitaria en un animal. Por "antígeno" o "inmunógeno" se entiende una sustancia que induce una respuesta inmunitaria específica en un animal huésped. El antígeno puede comprender un organismo completo, muerto, atenuado o vivo; una subunidad o parte de un organismo; un vector recombinante que contiene un inserto con propiedades inmunogénicas; una parte o fragmento de ADN capaz de inducir una respuesta inmunitaria tras la presentación a un animal huésped; un polipéptido, un epítopo, un hapteno, o cualquier combinación de los mismos. Alternativamente, el inmunógeno o antígeno puede comprender una toxina o antitoxina.

[0032] El término "proteína, polipéptido, o péptido inmunogénico" como se usa en el presente documento incluye polipéptidos que son inmunológicamente activos en el sentido de que una vez administrados al huésped, son capaces de evocar una respuesta inmunitaria de tipo humoral y/o celular dirigida contra la proteína. Preferiblemente, el fragmento de proteína es tal que tiene sustancialmente la misma actividad inmunológica que la proteína total. Por lo tanto, un fragmento de proteína según la presente invención comprende o consiste esencialmente en o consiste en al menos un epítopo o determinante antigénico. Una proteína o polipéptido "inmunógenico", tal como se usa en el presente documento, incluye la secuencia de longitud completa de la proteína, análogos de la misma, o fragmentos inmunogénicos de la misma. Por "fragmento inmunogénico" se entiende un fragmento de una proteína que incluye uno o más epítopos y de este modo provoca la respuesta inmunológica descrita anteriormente. Tales fragmentos pueden ser identificados usando cualquier cantidad de técnicas de mapeo de epítopos bien conocidas en el sector. Véase, por ejemplo, Epitope Mapping Protocols in Methods in Molecular Biology, Vol. 66 (Glenn E. Morris, Ed., 1996). Por ejemplo, los epítopos lineales pueden determinarse mediante, por ejemplo, síntesis simultánea de grandes cantidades de péptidos sobre soportes sólidos, correspondencia de los péptidos a partes de la molécula de proteína, y reacción de los péptidos con anticuerpos, mientras los péptidos están todavía unidos a los soportes. Tales técnicas son conocidas en el sector y se describen en, por ejemplo, la patente de los Estados Unidos. No. 4.708.871; Geysen et al., 1984; Geysen et al., 1986. De manera similar, los epítopos conformacionales son fácilmente identificados mediante la determinación de la conformación espacial de aminoácidos, tales como mediante, por ejemplo, cristalografía de rayos X y resonancia magnética nuclear de 2 dimensiones. Véase, por ejemplo, Epitope Mapping Protocols, supra.

[0033] Tal como se ha descrito, la descripción abarca fragmentos activos y variantes del polipéptido antigénico. Por lo tanto, el término "proteína, polipéptido, o péptido inmunogénico" contempla además deleciones, adiciones y sustituciones en la secuencia, siempre que el polipéptido funcione para producir una respuesta inmunológica tal como se define en este documento. El término "variación conservativa" se refiere a la sustitución de un residuo de aminoácido por otro residuo biológicamente similar, o la sustitución de un nucleótido en una secuencia de ácido nucleico de tal manera que el residuo de aminoácido codificado no cambie o es otro residuo biológicamente similar. A este respecto, las sustituciones particularmente preferidas serán generalmente de naturaleza conservativa, es decir, aquellas sustituciones que tienen lugar dentro de una familia de aminoácidos. Por ejemplo, los aminoácidos se dividen generalmente en cuatro familias: (1) ácidos -aspartato y glutamato; (2) básicos -lisina, arginina, histidina; (3) no polares alanina, valina, leucina, isoleucina, prolina, fenilalanina, metionina, triptófano; y (4) polares sin carga -glicina, asparagina, glutamina, cistina, serina, treonina, tirosina. La fenilalanina, el triptófano y la tirosina se clasifican a veces como aminoácidos aromáticos. Los ejemplos de variaciones conservativas incluyen la sustitución de un residuo hidrófobo, tal como isoleucina, valina, leucina o metionina, por otro residuo hidrófobo, o la sustitución de un residuo polar por otro residuo polar, tal como la sustitución de arginina por lisina, ácido glutámico por ácido aspártico, o glutamina por asparagina, y similares; o una sustitución conservativa similar de un aminoácido por un aminoácido estructuralmente relacionado que no tendrá un efecto importante sobre la actividad biológica. Las proteínas que tienen sustancialmente la misma secuencia de aminoácidos que la molécula de referencia, pero que poseen sustituciones de aminoácidos menores que no afectan sustancialmente a la inmunogenicidad de la proteína están, por lo tanto, dentro de la definición del polipéptido de referencia. Todos los polipéptidos producidos por estas modificaciones se incluyen en el presente documento. El término "variación conservativa" también incluye el uso de un aminoácido sustituido en lugar de un aminoácido parental no sustituido, siempre que los anticuerpos producidos contra el polipéptido sustituido también inmunorreaccionen con el polipéptido no sustituido.

[0034] El término "epítopo" se refiere al sitio en un antígeno o hapteno al cual responden células B y/o células T específicas. El término también se usa indistintamente con "determinante antigénico" o "sitio determinante antigénico". Los anticuerpos que reconocen el mismo epítopo pueden identificarse en un inmunoensayo simple que muestra la capacidad de un anticuerpo para bloquear la unión de otro anticuerpo a un antígeno diana.

[0035] Una "respuesta inmunológica" a una composición o vacuna es el desarrollo en el huésped de una respuesta inmunitaria celular y/o mediada por anticuerpos a una composición o vacuna de interés. Por lo general, una "respuesta inmunológica" incluye, pero no se limita a uno o más de los siguientes efectos: la producción de anticuerpos, células B, células T auxiliares, y/o células T citotóxicas, dirigidos específicamente a un antígeno o antígenos incluidos en el composición o vacuna de interés. Preferentemente, el huésped mostrará una respuesta inmunológica terapéutica o protectora de manera que la resistencia a la nueva infección se verá reforzada y/o la gravedad clínica de la enfermedad

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se verá reducida. Dicha protección se demostrará por una reducción o ausencia de síntomas normalmente mostrados por un huésped infectado, un tiempo de recuperación más rápido y/o un título viral disminuido en el huésped infectado.

[0036] Los antígenos sintéticos también se incluyen dentro de la definición, por ejemplo, poliepítopos, epítopos flanqueantes, y otros antígenos recombinantes o derivados sintéticamente. Véase, por ejemplo, Bergmann et al., 1993; Bergmann et al., 1996; Suhrbier, 1997; Gardner et al., 1998. Los fragmentos inmunogénicos, para los propósitos de la presente invención, incluirán generalmente al menos aproximadamente 3 aminoácidos, al menos aproximadamente 5 aminoácidos, al menos aproximadamente 10-15 aminoácidos, o aproximadamente 15-25 aminoácidos o más aminoácidos, de la molécula. No hay límite superior crítico para la longitud del fragmento, que pueda comprender casi la longitud completa de la secuencia de la proteína, o incluso una proteína de fusión que comprende al menos un epítopo de la proteína.

[0037] Por consiguiente, una estructura mínima de un polinucleótido que expresa un epítopo es que comprende o consiste esencialmente en o consiste en nucleótidos que codifican un epítopo o determinante antigénico de un polipéptido de BTV

o AHSV. Un polinucleótido que codifica un fragmento de un polipéptido de BTV o AHSV puede comprender o consistir esencialmente en o consistir en un mínimo de 15 nucleótidos, aproximadamente 30-45 nucleótidos, aproximadamente 4575, o al menos 57, 87 o 150 nucleótidos consecutivos o contiguos de la secuencia que codifica el polipéptido. Los procedimientos de determinación de epítopos, tales como, la generación de bibliotecas de péptidos que se solapan, Pepscan (Geysen et al, 1984 (Hemmer et al., 1998); Geysen et al., 1985; Van der Zee. R. et al, 1989; Geysen., 1990; Multipin RTM Peptide Synthesis Kits de Chiron) y algoritmos (de Groot et al., 1999; PCT/US2004/022605) se pueden utilizar en la práctica de la invención.

[0038] El término "ácido nucleico" y "polinucleótido" se refiere a ARN o ADN que es lineal o ramificado, monocatenario o bicatenario, o un híbrido de los mismos. El término también abarca híbridos de ARN/ADN. Los siguientes son ejemplos no limitativos de polinucleótidos: un gen o fragmento de gen, exones, intrones, ARNm, ARNt, ARNr, ribozimas, ADNc, polinucleótidos recombinantes, polinucleótidos ramificados, plásmidos, vectores, ADN aislado de cualquier secuencia, ARN aislado de cualquier secuencia, sondas de ácidos nucleicos y cebadores. Un polinucleótido puede comprender nucleótidos modificados, tales como nucleótidos metilados y análogos de nucleótidos, uracilo, otros azúcares y grupos de unión, tales como fluororibosa y tiolato, y ramas de nucleótidos. La secuencia de nucleótidos se puede modificar adicionalmente después de la polimerización, tal como mediante conjugación, con un componente de marcaje. Otros tipos de modificaciones incluidas en esta definición son los bloqueos terminales, sustitución de uno o más de los nucleótidos naturales con un análogo, y la introducción de medios para unir el polinucleótido a proteínas, iones metálicos, componentes de marcaje, otros polinucleótidos o soporte sólido. Los polinucleótidos se pueden obtener mediante síntesis química o derivarse de un microorganismo.

[0039] El término "gen" se utiliza ampliamente para referirse a cualquier segmento de polinucleótido asociado con una función biológica. Por lo tanto, los genes incluyen intrones y exones como en la secuencia genómica, o sólo las secuencias codificantes como en ADNc y/o las secuencias reguladoras requeridas para su expresión. Por ejemplo, el gen también se refiere a un fragmento de ácido nucleico que expresa ARNm o ARN funcional, o codifica una proteína específica, y que incluye secuencias reguladoras.

[0040] Los términos "proteína", "péptido", "polipéptido" y "fragmento de polipéptido" se usan indistintamente en este documento para referirse a polímeros de residuos de aminoácidos de cualquier longitud. El polímero puede ser lineal o ramificado, puede comprender aminoácidos modificados o análogos de aminoácidos, y puede estar interrumpido por restos químicos distintos de aminoácidos. Los términos también abarcan un polímero de aminoácidos que ha sido modificado de forma natural o mediante intervención; por ejemplo la formación de enlaces disulfuro, glicosilación, lipidación, acetilación, fosforilación, o cualquier otra manipulación o modificación, tal como conjugación con un componente de marcaje o componente bioactivo.

[0041] Un componente biológico "aislado" (tal como un ácido nucleico o proteína u orgánulo) se refiere a un componente que se ha separado sustancialmente o purificado de otros componentes biológicos en la célula del organismo en el que se produce el componente de forma natural, por ejemplo, otro ADN y ARN cromosómico y extracromosómico, proteínas y orgánulos. Los ácidos nucleicos y proteínas que han sido "aislados" incluyen ácidos nucleicos y proteínas purificados mediante procedimientos de purificación estándar. El término también abarca ácidos nucleicos y proteínas preparados por tecnología recombinante, así como mediante síntesis química.

[0042] El término "purificado", tal como se usa en el presente documento, no requiere pureza absoluta; más bien, se entiende como un término relativo. De este modo, por ejemplo, una preparación de polipéptido purificado es aquel en el que el polipéptido está más enriquecido que el polipéptido en su medio natural. Es decir, el polipéptido se separa de los componentes celulares. Por "sustancialmente purificado" se entiende que el polipéptido representa varias realizaciones en las que al menos 60%, al menos 70%, al menos 80%, al menos 90%, al menos 95%, o al menos 98%, o más de los

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componentes o materiales celulares se han eliminado. Del mismo modo, el polipéptido se puede purificar parcialmente. Por "parcialmente purificado" se entiende que se elimina menos del 60% de los componentes o material celular. Lo mismo se aplica a los polinucleótidos. Los polipéptidos descritos en este documento se pueden purificar por cualquiera de los medios conocidos en la técnica.

[0043] Como se señaló anteriormente, los polipéptidos antigénicos o fragmentos o variantes de los mismos son polipéptidos antigénicos de BTV o AHSV. Los fragmentos y variantes de los polinucleótidos descritos y polipéptidos codificados por los mismos también están abarcados por la presente descripción. Por "fragmento" se entiende una porción del polinucleótido o una porción de la secuencia de aminoácidos antigénica codificada por el mismo. Los fragmentos de un polinucleótido pueden codificar fragmentos de proteína que retienen la actividad biológica de la proteína nativa y por lo tanto tienen actividad inmunogénica, tal como se señala en otra parte en este documento. Los fragmentos de la secuencia de polipéptido conservan la capacidad de inducir una respuesta inmunitaria protectora en un animal.

[0044] "Variantes" pretende significar secuencias sustancialmente similares. Para polinucleótidos, una variante comprende una deleción y/o adición de uno o más nucleótidos en uno o más sitios dentro del polinucleótido nativo y/o una sustitución de uno o más nucleótidos en uno o más sitios en el polinucleótido nativo. Tal como se usa en el presente documento, un polinucleótido o polipéptido “nativo” comprende una secuencia de nucleótidos o de aminoácidos de origen natural, respectivamente. Las variantes de un polinucleótido particular de la descripción (es decir, el polinucleótido de referencia) también se pueden evaluar por comparación del porcentaje de identidad de secuencia entre el polipéptido codificado por un polinucleótido variante y el polipéptido codificado por el polinucleótido de referencia. Proteína "variante" pretende significar una proteína derivada de la proteína nativa por deleción o adición de uno

o más aminoácidos en uno o más sitios en la proteína nativa y/o sustitución de uno o más aminoácidos nativa en uno o más sitios en la proteína nativa. Las proteínas variantes abarcadas por la presente invención son biológicamente activas, es decir la capacidad de provocar una respuesta inmunitaria.

[0045] En una realización, la presente descripción proporciona una composición o vacuna que comprende uno o más vectores de BTV o AHSV recombinantes que comprenden uno o más polinucleótidos heterólogos que codifican al menos un polipéptido de BTV o AHSV. Los polipéptidos pueden ser cualesquiera de polipéptidos de BTV o AHSV seleccionados del grupo que consiste en VP1, VP2, VP3, VP4, VP6, VP5, VP7, NS1, NS2 y NS3/3A. En un aspecto, los vectores de BTV

o AHSV recombinantes comprenden la estructura del vector derivado de los genomas de BTV o AHSV de serotipos 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14 , 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, y 26. En otro aspecto, los polinucleótidos heterólogos codifican los antígenos de un serotipo de BTV o AHSV que es diferente del serotipo de BTV o AHSV utilizado como estructura del vector.

[0046] En otra realización, los vectores de BTV o AHSV recombinantes comprenden polinucleótidos heterólogos que codifican polipéptidos VP1, VP2, VP3, VP4, VP5, VP7, NS1, NS2, VP6, y NS3/3A, en los que los polipéptidos pueden ser de diferentes serotipos de BTV o AHSV, tales como los serotipos 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22 , 23, 24, 25, y 26. Las diferentes combinaciones de polipéptidos de diferentes serotipos de BTV o AHSV pueden ser ilustrados en las siguientes tablas. La nomenclatura utilizada para los vectores de BTV (o AHSV) de genoma reordenado recombinantes en la presente descripción se define como: la sección en mayúscula del nombre se refiere a la estructura del virus, seguido por un subíndice que comprende la proteína o proteínas sustituidas, precedido por el origen de serotipo del segmento, por ejemplo BTV-18VP1 se refiere a un virus con una estructura de BTV-1 que contiene el gen VP1 de BTV-8.

Tabla 1 Algunos ejemplos de BTV de genoma reordenado que comprende uno o dos polipéptidos de un serotipo de BTV y nueve u ocho polipéptidos de otro serotipo de BTV

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VP2 VP3 VP4 VP5 VP6 VP7 NS1 NS2 NS3/3A

BTV-1

1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

BTV18VP1VP2

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BTV18VP2

1 8 1 1 1 1 1 1 1 1

BTV18VP3

1 1 8 1 1 1 1 1 1 1

BTV18VP4

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BTV18VP6

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BTV18VP7

1 1 1 1 1 1 8 1 1 1

BTV18NS1

1 1 1 1 1 1 1 8 1 1

BTV18NS2

1 1 1 1 1 1 1 1 8 1

BTV-18NS3/3A

1 1 1 1 1 1 1 1 1 8

BTV-8

8 8 8 8 8 8 8 8 8 8

BTV81VP1

1 8 8 8 8 8 8 8 8 8

BTV81VP2

8 1 8 8 8 8 8 8 8 8

BTV81VP3

8 8 1 8 8 8 8 8 8 8

BTV81VP4

8 8 8 1 8 8 8 8 8 8

BTV81VP5

8 8 8 8 1 8 8 8 8 8

BTV81VP6

8 8 8 8 8 1 8 8 8 8

BTV81VP7

8 8 8 8 8 8 1 8 8 8

BTV81NS1

8 8 8 8 8 8 8 1 8 8

BTV81NS2

8 8 8 8 8 8 8 8 1 8

BTV-81NS3/3A

8 8 8 8 8 8 8 8 8 1

BTV18VP1,VP2

8 8 1 1 1 1 1 1 1 1

BTV18VP2,VP3

1 8 8 1 1 1 1 1 1 1

BTV18VP2,VP5

1 8 1 1 8 1 1 1 1 1

BTV81VP1,VP2

1 1 8 8 8 8 8 8 8 8

BTV81VP2,VP3

8 1 1 8 8 8 8 8 8 8

BTV81VP2,VP5

8 1 8 8 10076 8 8 8 8 8

[0047] La presente descripción abarca los vectores de BTV recombinantes que comprenden el BTV de genoma reordenado que tiene la fórmula BTV-ABVPa, BTV-ABVPc,VPd, BTV-ABNSe, BTV-ABVPc,NSe, en los que A y B = 1, 2 , 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21,22, 23, 24, 25, y 26 (para los serotipos de BTV o 5 AHSV); c y d = 1, 2, 3, 4, 5, 6, y 7 (para VP1, VP2, VP3, VP4, VP5, VP6 o VP7); e = 1, 2, y 3/3A (para NS1, NS2 o NS3/3A).

[0048] En otro aspecto, la presente descripción proporciona un polipéptido de BTV que tiene una secuencia tal como se establece en las SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13 , 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38 , 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59,

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[0049] Además, los homólogos de polipéptidos de BTV o AHSV de animales ovinos, bovinos, caprinos o equinos pretenden

15 estar dentro del alcance de la presente descripción. Tal como se utiliza en el presente documento, el término "homólogos" incluye ortólogos, análogos y parálogos. El término "análogos" se refiere a dos polinucleótidos o polipéptidos que tienen la misma o similar función, pero que han evolucionado por separado en organismos no relacionados. El término "ortólogos"

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se refiere a dos polinucleótidos o polipéptidos de diferentes especies, pero que han evolucionado a partir de un gen ancestral común por especiación. Normalmente, los ortólogos codifican polipéptidos que tienen las mismas o similares funciones. El término "parálogos" se refiere a dos polinucleótidos o polipéptidos que están relacionados por duplicación dentro de un genoma. Los parálogos usualmente tienen diferentes funciones, pero estas funciones pueden estar relacionadas. Los análogos, ortólogos y parálogos de un polipéptido de BTV o AHSV de tipo natural pueden diferir del polipéptido de BTV de tipo natural en modificaciones posteriores a la traducción, en diferencias en la secuencia de aminoácidos, o en ambos. En particular, los homólogos de la descripción mostrarán generalmente al menos 80-85%, 8590%, 90-95%, o 95%, 96%, 97%, 98%, 99% de identidad de secuencia, con la totalidad o parte de secuencias de polinucleótidos de BTV o AHSV de tipo natural, y exhibirán una función similar. Las variantes incluyen variantes alélicas. El término "variante alélica" se refiere a un polinucleótido o un polipéptido que contiene polimorfismos que conducen a cambios en las secuencias de aminoácidos de una proteína y que existen dentro de una población natural (por ejemplo, una especie o variedad de virus). Tales variaciones alélicas naturales pueden dar lugar típicamente a 1-5% de varianza en un polinucleótido o un polipéptido. Las variantes alélicas pueden identificarse por secuenciación de la secuencia de ácido nucleico de interés en un conjunto de diferentes especies, que puede llevarse a cabo fácilmente utilizando sondas de hibridación para identificar el mismo locus genético de genes en estas especies. Cualquiera y todas de tales variaciones de ácido nucleico y polimorfismos o variaciones de aminoácidos resultantes que son el resultado de la variación alélica natural y que no alteran la actividad funcional de gen de interés, pretenden estar dentro del alcance de la descripción.

[0050] Tal como se utiliza en el presente documento, el término "derivado" o "variante" se refiere a un polipéptido, o un ácido nucleico que codifica un polipéptido, que tiene una o más variaciones conservativas de aminoácidos u otras modificaciones menores, tales que (1) el polipéptido correspondiente tiene una función sustancialmente equivalente en comparación con el polipéptido de tipo natural o (2) un anticuerpo generado contra el polipéptido es inmunorreactivo con el polipéptido de tipo natural. Estas variantes o derivados incluyen polipéptidos que tienen modificaciones menores de las secuencias de aminoácidos primaria del polipéptido de BTV o AHSV que pueden dar lugar a péptidos que tienen una actividad sustancialmente equivalente en comparación con el polipéptido homólogo sin modificar. Tales modificaciones pueden ser deliberadas, como mediante mutagénesis dirigida al sitio, o pueden ser espontáneas. El término "variante" contempla además deleciones, adiciones y sustituciones en la secuencia, siempre que el polipéptido funcione para producir una respuesta inmunológica tal como se define en este documento.

[0051] El término "variación conservativa" indica el reemplazo de un residuo de aminoácido por otro residuo biológicamente similar, o la sustitución de un nucleótido en una secuencia de ácido nucleico de tal manera que el residuo de aminoácido codificado no cambia o es otro residuo biológicamente similar . A este respecto, las sustituciones particularmente preferidas serán generalmente de naturaleza conservativa, tal como se ha descrito anteriormente.

[0052] Los polinucleótidos de la descripción incluyen secuencias que son degeneradas como resultado del código genético, por ejemplo, el uso de codones optimizado para un huésped específico. Tal como se usa en el presente documento, "optimizado" se refiere a un polinucleótido que se modifica mediante genéticamente para incrementar su expresión en una especie determinada. Para proporcionar polinucleótidos optimizados que codifican polipéptidos de BTV

o AHSV, la secuencia de ADN del gen de proteína de BTV o AHSV se puede modificar para 1) comprender codones preferidos por genes altamente expresados en una especie particular; 2) comprender un contenido de A + T o G + C en la composición de bases de nucleótidos con el que sustancialmente se encuentra en dicha especie; 3) formar una secuencia de iniciación de dicha especie; o 4) eliminar secuencias que causan la desestabilización, poliadenilación inapropiada, degradación y terminación de ARN, o que forman horquillas de estructura secundaria o sitios de empalme de ARN. El aumento de expresión de la proteína de BTV o AHSV en dicha especie se puede lograr mediante la utilización de la frecuencia de distribución de uso del codón en eucariotas y procariotas, o en una especie particular. El término "frecuencia de uso del codón preferido" se refiere a la preferencia exhibida por una célula huésped específica en el uso de codones de nucleótidos para especificar un aminoácido determinado. Hay 20 aminoácidos naturales, la mayoría de los cuales son especificados por más de un codón. Por lo tanto, todas las secuencias de nucleótidos degeneradas están incluidas en la descripción, siempre que la secuencia de aminoácidos del polipéptido de BTV o AHSV codificado por la secuencia de nucleótidos esté funcionalmente inalterada.

[0053] La identidad de secuencia entre dos secuencias de aminoácidos puede establecerse por el “blas” por parejas del NCBI (Centro Nacional de Información sobre Biotecnología) y la matriz BLOSUM62, utilizando los parámetros estándar (véase, por ejemplo, el algoritmo BLAST o BLASTX disponible en el servidor del "Centro Nacional de Información sobre Biotecnología" (NCBI, Bethesda, Md., EE.UU.), así como en Altschul et al.; y por lo tanto, este documento habla de utilizar el algoritmo o BLAST o BLASTX y la matriz BLOSUM62 por el término “blasts”).

[0054] La "identidad" con respecto a secuencias puede referirse al número de posiciones con nucleótidos o aminoácidos idénticos dividido por el número de nucleótidos o aminoácidos en la más corta de las dos secuencias en las que la alineación de las dos secuencias puede determinarse según el algoritmo de Wilbur y Lipman (Wilbur y Lipman), por ejemplo, usando un tamaño de ventana de 20 nucleótidos, una longitud de palabra de 4 nucleótidos, y una penalización

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por hueco de 4, y el análisis asistido por ordenador y la interpretación de los datos de secuencia que incluye la alineación se pueden realizar convenientemente utilizando programas disponibles comercialmente (por ejemplo, Intelligenetics® Suite, Intelligenetics Inc. CA). Cuando las secuencias de ARN se dice que son similares o tienen un grado de identidad u homología de secuencia con secuencias de ADN, la timidina (T) en la secuencia de ADN se considera igual a uracilo (U) 5 en la secuencia de ARN. Por lo tanto, las secuencias de ARN están dentro del alcance de la invención y pueden derivarse de secuencias de ADN, considerando la timidina (T) en la secuencia de ADN igual a uracilo (U) en las secuencias de ARN.

[0055] La identidad de secuencia o similitud de secuencia de dos secuencias de aminoácidos, o la identidad de secuencia entre dos secuencias de nucleótidos se puede determinar utilizando el paquete de software Vector NTI (Invitrogen, 1600

10 Faraday Ave., Carlsbad, CA).

[0056] Los siguientes documentos proporcionan algoritmos para comparar la identidad u homología relativa de secuencias, y adicionalmente o alternativamente con respecto a lo anterior, las enseñanzas de estas referencias pueden utilizarse para determinar el porcentaje de homología o identidad: Needleman SB y Wunsch CD; Smith TF y Waterman MS; Smith TF,

15 Waterman MS y Sadler JR; Feng DF y Dolittle RF; Higgins DG y Sharp PM; Thompson JD, Higgins DG y Gibson TJ; y, Devereux J, Haeberlie P y Smithies O. Y, sin demasiada experimentación, el experto puede consultar muchos otros programas o referencias para determinar el porcentaje de homología.

[0057] Las reacciones de hibridación se pueden realizar bajo condiciones de diferente "rigurosidad". Las condiciones que

20 aumentan la rigurosidad de una reacción de hibridación son bien conocidos. Véase, por ejemplo, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual", segunda edición (Sambrook et al, 1989).

[0058] La presente invención abarca además los polinucleótidos de BTV a los que pertenece la invención contenidos en una molécula vector o un vector de expresión y unido operativamente a un elemento promotor y opcionalmente a un

25 potenciador.

[0059] Un "vector" se refiere a un ADN recombinante o plásmido de ARN o virus que comprende un polinucleótido heterólogo para liberarse a una célula diana, ya sea in vitro o in vivo. El polinucleótido heterólogo puede comprender una secuencia de interés para los fines de prevención o terapia, y opcionalmente puede estar en forma de un casete de

30 expresión. Tal como se usa en este documento, un vector no necesita ser capaz de replicación en la última célula diana o sujeto. El término incluye vectores de clonación y vectores virales.

[0060] El término "recombinante" significa un polinucleótido de origen semisintético o sintético que, o bien no se produce en la naturaleza o está ligado a otro polinucleótido en una disposición no encontrada en la naturaleza.

35 [0061] "Heterólogo" significa derivado de una entidad genéticamente distinta del resto de la entidad a la que se está comparando. Por ejemplo, un polinucleótido puede colocarse mediante técnicas de ingeniería genética en un plásmido o vector derivado de una fuente diferente, y es un polinucleótido heterólogo. Un promotor eliminado de su secuencia codificante nativa y unido operativamente a una secuencia codificante distinta de la secuencia nativa es un promotor

40 heterólogo.

[0062] La presente invención se refiere a vacunas o composiciones farmacéuticas o inmunológicas ovinas, bovinas, caprinas y porcinas que pueden comprender una cantidad eficaz de un antígeno de BTV recombinante y un portador, excipiente, adyuvante, o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable.

45 [0063] La materia descrita en el presente documento se refiere, en parte, a composiciones y procedimientos relacionados con el antígeno de BTV preparado en un sistema de expresión de planta o alga que era altamente inmunogénico y animales protegidos contra la estimulación de cepas de BTV homólogas y heterólogas.

50 [0064] La presente descripción se refiere a una composición o vacuna que comprende uno o más vectores de BTV o AHSV recombinantes que comprenden uno o más polinucleótidos heterólogos que codifican al menos un polipéptido de BTV o AHSV y un portador, excipiente, adyuvante o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable.

[0065] En otra realización, el portador, excipiente, adyuvante o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable puede

55 ser una emulsión de agua-en-aceite. En aún otra realización, la emulsión de agua-en-aceite puede ser una emulsión triple de agua/aceite/agua (W/O/W).

[0066] La invención abarca además los polinucleótidos de BTV contenidos en una molécula vector o en un vector de expresión y unido operativamente a un elemento promotor y opcionalmente a un potenciador.

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[0067] En otro aspecto, la presente descripción proporciona un polipéptido que tiene al menos 70%, al menos 75%, al menos 80%, al menos 85%, al menos 90%, al menos 95%, 96%, 97%, 98% o 99% de identidad de secuencia con un polipéptido antigénico de la descripción, en particular, con los polipéptidos que tienen una secuencia, tal como se establecen en las SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 , 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36 , 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61 , 62, 133, 134, 135, 136, 137, 138, 139, 140, 141, 142, 143, 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152, 153, 154, 155, 156 , 157, 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164, 165, 166, 167, 168, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 181 , 182, 183, 184, 185, 186, 187, 188, 189, o 190.

[0068] En otro aspecto adicional, la presente descripción proporciona fragmentos y variantes de los polipéptidos de BTV identificados anteriormente (SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 133, 134, 135, 136, 137, 138, 139, 140, 141, 142, 143, 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152, 153, 154, 155, 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164, 165, 166, 167, 168, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 181, 182, 183, 184, 185, 186, 187, 188, 189, o 190), que fácilmente se pueden preparar por un experto en la técnica usando técnicas de biología molecular bien conocidas.

[0069] Las variantes son polipéptidos homólogos que tienen una secuencia de aminoácidos al menos 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, o 99% de identidad con la secuencia de aminoácidos, tal como se establece en las SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23 , 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48 , 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 133, 134, 135, 136, 137, 138, 139, 140, 141, 142, 143 , 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152, 153, 154, 155, 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164, 165, 166, 167, 168 , 169, 170, 171, 172, 173, 174, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 181, 182, 183, 184, 185, 186, 187, 188, 189, o 190.

[0070] En otro aspecto, la presente descripción proporciona un polinucleótido que codifica un polipéptido de BTV, tal como un polinucleótido que codifica un polipéptido que tiene una secuencia, tal como se establece en las SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 133, 134, 135, 136, 137, 138, 139, 140, 141, 142, 143, 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152, 153, 154, 155, 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164, 165, 166, 167, 168, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 181, 182, 183, 184, 185, 186, 187, 188, 189, o 190. En otro aspecto adicional, la presente descripción proporciona un polinucleótido que codifica un polipéptido que tiene al menos 70%, al menos 75 %, al menos 80%, al menos 85%, al menos 90%, al menos 95%, 96%, 97%, 98% o 99% de identidad de secuencia con un polipéptido que tiene una secuencia, tal como se establece en las SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23 , 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48 , 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 133, 134, 135, 136, 137, 138, 139, 140, 141, 142, 143 , 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152, 153, 154, 155, 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164, 165, 166, 167, 168 , 169, 170, 171, 172, 173, 174, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 181, 182, 183, 184, 185, 186, 187, 188, 189, o 190, o una variante conservativa, una variante alélica, un homólogo o un fragmento inmunogénico que comprende al menos ocho o al menos diez aminoácidos consecutivos de uno de estos polipéptidos, o una combinación de estos polipéptidos.

[0071] En otro aspecto, la presente descripción proporciona un polinucleótido que tiene una secuencia de nucleótidos, tal como se establece en las SEQ ID NO: 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75 , 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99, 100 , 101, 102, 103, 104, 105, 106, 107, 108, 109, 110, 111, 112, 113, 114, 115, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125 , 126, 127, 128, 129, 130, 131, o 132, o una variante de las mismas. En aún otro aspecto, la presente invención proporciona un polinucleótido que tiene al menos 70%, al menos 75%, al menos 80%, al menos 85%, al menos 90%, al menos 95%, al menos 95%, 96%, 97%, 98% o 99% de identidad de secuencia con una de un polinucleótido que tiene una secuencia, tal como se establece en las SEQ ID NO: 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99, 100, 101, 102, 103, 104, 105, 106, 107, 108, 109, 110, 111, 112, 113, 114, 115, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, o 132, o una variante de las mismas.

[0072] Los polinucleótidos de la invención pueden comprender secuencias adicionales, tales como secuencias adicionales codificante dentro de la misma unidad de transcripción, elementos de control, tales como promotores, sitios de unión a ribosomas, 5'UTR, 3'UTR, terminadores de transcripción, sitios de poliadenilación, unidades de transcripción adicionales bajo el control del mismo promotor o diferente, secuencias que permiten la clonación, expresión, recombinación homóloga y transformación de una célula huésped, y cualquier constructo, tal como pueda ser deseable para proporcionar realizaciones de la presente invención.

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[0073] Los elementos para la expresión de un polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o AHSV están presentes ventajosamente en un vector de la invención. De una manera mínima, éste comprende, consiste esencialmente en, o consiste en un codón de iniciación (ATG), un codón de terminación y un promotor, y opcionalmente también una secuencia de poliadenilación para ciertos vectores, tales como vectores plásmidos y ciertos vectores virales, por ejemplo, vectores virales distintos del virus de los poxvirus. Cuando el polinucleótido codifica un fragmento de polipéptido, por ejemplo, un péptido de BTV, ventajosamente, en el vector, un ATG se coloca en 5' del marco de lectura y un codón de parada se coloca en 3'. Pueden estar presentes otros elementos de control de la expresión, tales como secuencias potenciadoras, secuencias estabilizantes, tales como secuencias de intrones y secuencias señal que permiten la secreción de la proteína.

[0074] La presente descripción también se refiere a preparaciones que comprenden vectores, tales como vectores de expresión, por ejemplo, composiciones terapéuticas. Las preparaciones pueden comprender uno o más vectores, por ejemplo, vectores de expresión, tales como vectores de expresión in vivo, que comprenden y expresan uno o más polipéptidos, antígenos, epítopos o inmunógenos de BTV o AHSV. En una realización, el vector contiene y expresa un polinucleótido que comprende, consiste esencialmente en o consiste en un polinucleótido que codifica (y ventajosamente expresa) un antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o AHSV, en un portador, excipiente o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable. Por lo tanto, según una realización de la descripción, el otro vector o vectores en la preparación comprende, consiste esencialmente en o consiste en un polinucleótido que codifica, y bajo circunstancias apropiadas, el vector expresa una o más proteínas de un polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV, o un fragmento de los mismos.

[0075] Según otra realización, el vector o vectores en la preparación comprende, o consiste esencialmente en, o consiste en un polinucleótido o polinucleótidos que codifican una o más proteínas o fragmento o fragmentos de un polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o AHSV, expresando el vector o vectores el polinucleótido o polinucleótidos. En otra realización, la preparación comprende uno, dos, o más vectores que comprenden polinucleótidos que codifican y expresan, ventajosamente in vivo, un polipéptido de BTV o AHSV, antígeno, proteína de fusión o un epítopo del mismo. La invención también está dirigida a mezclas de vectores que comprenden polinucleótidos que codifican y expresan diferentes polipéptidos, antígenos, epítopos, proteína de fusión o inmunógenos de BTV o AHSV, por ejemplo, un polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno de BTv o AHSV de diferentes especies tales como, pero no limitado a, animales ovinos, bovinos, caprinos o porcinos.

[0076] Según una realización adicional de la invención, el vector de expresión es un vector plásmido o un vector plásmido de ADN, en particular un vector de expresión in vivo. En un ejemplo no limitativo específico, se puede utilizar el plásmido pVR1020 o 1012 (VICAL Inc.; Lucas et al, 1997; Hartikka et al, 1996, véanse, por ejemplo, las patentes de Estados Unidos Nº 5.846.946 y 6.451.769) como un vector para la inserción de una secuencia de polinucleótido. El plásmido pVR1020 se deriva de pVR1012 y contiene la secuencia señal tPA humana. En una realización, la señal tPA humana comprende desde el aminoácido M(1) al aminoácido S(23) en el Genbank bajo el número de acceso HUMTPA14. En otro ejemplo no limitativo específico, el plásmido utilizado como un vector para la inserción de una secuencia de polinucleótidos puede contener la secuencia de péptido señal de IGF1 equino desde el aminoácido M(24) al aminoácido A(48) en el Genbank con número de acceso U28070. La información adicional sobre plásmidos de ADN que pueden consultarse o emplearse en la práctica se encuentran, por ejemplo, en las patentes de Estados Unidos Nº 6.852.705; 6.818.628; 6.586.412; 6.576.243; 6.558.674; 6.464.984; 6.451.770; 6.376.473 y 6.221.362.

[0077] El término plásmido cubre cualquier unidad de transcripción de ADN que comprende un polinucleótido según la invención y los elementos necesarios para su expresión in vivo en una célula o células del huésped o diana deseados; y, en este sentido, se observa que un plásmido circular superenrollado o no superenrollado, así como una forma lineal, se pretende que estén dentro del alcance de la invención.

[0078] Cada plásmido comprende o contiene o consiste esencialmente en, además del polinucleótido que codifica un antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o AHSV, opcionalmente fusionado con una secuencia de péptido heterólogo, variante, análogo o fragmento, unido operativamente a un promotor o bajo el control de un promotor o dependiente de un promotor. En general, es ventajoso emplear un promotor funcional fuerte en células eucariotas. El promotor fuerte puede ser, pero no limitado a, el promotor de citomegalovirus inmediato temprano (CMV-IE) de origen humano o murino, o que tiene opcionalmente otro origen, tal como la rata o cobaya, el Super promotor (Ni, M. et al., Plant J. 7, 661-676, 1995). El promotor CMV-IE puede comprender parte del promotor real, que puede o no estar asociado con la parte potenciadora. Se puede hacer referencia al documento EP-A-260 148, EP-A-323 597, las patentes de Estados Unidos Nos. 5.168.062, 5.385.839, y 4.968.615, así como a la solicitud PCT No WO87/03905. El promotor CMV-IE es ventajosamente un CMV-IE humano (Boshart et al., 1985) o CMV-IE murino.

[0079] En términos más generales, el promotor tiene un origen viral, vegetal o un origen celular. Un promotor viral fuerte distinto del CMV-IE que puede emplearse de forma útil en la práctica de la invención es el promotor temprano/tardío del 14

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virus SV40 o el promotor LTR del virus del sarcoma de Rous. Un promotor celular fuerte que puede emplearse de forma útil en la práctica de la invención es el promotor de un gen del citoesqueleto, tal como por ejemplo el promotor de desmina (Kwissa et al., 2000), o el promotor de actina (Miyazaki et al., 1989).

[0080] Se puede utilizar cualquiera de los promotores constitutivos, regulables o dependientes de estímulo. Por ejemplo, los promotores constitutivos pueden incluir el promotor de manopina sintasa de Agrobacterium tumefaciens. Alternativamente, puede ser ventajoso usar promotores de genes de choque térmico, promotores de genes inducibles por sequía, promotores de genes inducibles por patógenos, promotores de genes inducibles por heridas, y promotores de genes inducibles por luz/oscuridad. Puede ser útil el uso de promotores que son controlados por reguladores del crecimiento vegetal, tales como el ácido abscísico, auxinas, citoquininas y ácido giberélico. Los promotores también pueden ser elegidos de manera que dan expresión específica de tejido (por ejemplo, promotores específicos de raíz, hoja y flor).

[0081] Los plásmidos pueden comprender otros elementos de control de expresión. Es particularmente ventajoso incorporar una secuencia o secuencias estabilizantes, por ejemplo, secuencia o secuencias de intrón, por ejemplo, intrón de alcohol deshidrogenasa de maíz (Callis et al Genes & Dev.1 (10): 1183-1200, diciembre de 1987), el primer intrón del hCMV-IE (Solicitud PCT No. WO1989/01036), el intrón II del gen de β-globina de conejo (van Ooyen et al., 1979). En otra realización, los plásmidos pueden comprender 3' UTR. La 3' UTR puede ser, pero no limitado a, nopalina sintasa de agrobacterium (Nos) 3' UTR (Nopaline synthase: transcript mapping and DNA sequence. Depicker, A. et al J. Mol Appl Genet, 1982; Bevan, NAR, 1984, 12 (22): 8711-8721).

[0082] En cuanto a la señal de poliadenilación (poliA) para los plásmidos y vectores virales distintos de los poxvirus, puede hacerse más uso de la señal de poli(A) del gen de la hormona de crecimiento bovino (bGH) (véase el documento US 5.122.458), o la señal de poli(A) del gen de β-globina de conejo o la señal de poli(A) del virus SV40.

[0083] Una "célula huésped" o "célula" indica una célula procariota o eucariota que ha sido alterada genéticamente, o es capaz de ser alterada genéticamente mediante la administración de un polinucleótido exógeno, tal como un plásmido recombinante o vector o ARNss o ARNds. Cuando se hace referencia a células genéticamente modificadas, el término se refiere tanto a la célula originalmente alterada como a la progenie de la misma.

[0084] En una realización, la materia descrita en el presente documento se refiere a un procedimiento de producción de un vector de BTV o AHSV recombinante que comprende la transfección de una célula con a) ARN que codifican uno o más polipéptidos de un serotipo de BTV o AHSV; y b) ARN que comprenden las transcripciones de todo el genoma de un serotipo diferente de BTV o AHSV y comprende la supresión de las transcripciones que codifican los antígenos en a).

[0085] En otra realización, la materia descrita en el presente documento se refiere a un procedimiento de vacunación de un animal ovino, bovino, caprino, o porcino que comprende administrar al animal ovino, bovino, caprino o porcino una cantidad eficaz de una vacuna que puede comprender una cantidad eficaz de un vector de BTV recombinante y un portador, excipiente o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable.

[0086] En una realización, la materia descrita en el presente documento se refiere a un procedimiento para provocar una respuesta inmunitaria que comprende administrar al animal ovino, bovino, caprino o porcino una vacuna que comprende un vector de BTV o AHSV de animal ovino, bovino, caprino o porcino, en el que se provoca una respuesta inmunitaria.

[0087] La administración puede ser por vía subcutánea o intramuscular. La administración puede sin aguja (por ejemplo Pigjet o Bioject).

[0088] En una realización de la invención, se puede emplear un régimen de sensibilización-refuerzo que comprende al menos una administración primaria y al menos una administración de refuerzo con al menos un polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno común. Típicamente, la composición inmunológica o vacuna utilizada en la administración primaria es de naturaleza diferente a la que se utiliza como refuerzo. Sin embargo, cabe indicar que la misma composición se puede utilizar como la administración primaria y el refuerzo. Este protocolo de administración se llama "sensibilización-refuerzo".

[0089] Una sensibilización-refuerzo de acuerdo con la presente descripción puede incluir un vector viral recombinante utilizado para expresar una secuencia codificante del BTV o fragmentos de la misma que codifica un polipéptido antigénico

o fragmento o variante del mismo. Específicamente, el vector viral puede expresar un gen de BTV o AHSV o fragmento del mismo que codifica un polipéptido antigénico. Un vector viral contemplado en este documento incluye, pero no limitado a, virus de la viruela [por ejemplo, virus vaccinia o virus vaccinia atenuado, virus de la viruela aviar o virus de la viruela aviar atenuado (por ejemplo, la viruela del canario, viruela de ave de corral, viruela de la paloma (dovepox), viruela de la paloma (pigeonpox), viruela de la codorniz, ALVAC, TROVAC; véase, por ejemplo, US 5.505.941, US 5,494,8070), virus del mapache, virus de la viruela porcina, etc.], adenovirus (por ejemplo, adenovirus humano, adenovirus canino), virus del 15

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herpes (por ejemplo, virus del herpes canino, virus del herpes de pavo, virus de la enfermedad de Marek, virus de la laringotraqueitis infecciosa, virus del herpes felino, virus de laringotraqueitis (ILTV), virus del herpes bovino, virus del herpes porcino), baculovirus, retrovirus, etc. En otra realización, el vector de expresión de la viruela aviar puede ser un vector de viruela del canario, tal como, ALVAC. En aún otra realización, el vector de expresión de la viruela aviar puede ser un vector de la viruela aviar, tal como, TROVAC. El antígeno de BTV o de AHSV de la descripción que se expresa se insertar bajo el control de un promotor de virus de viruela aviar específico, por ejemplo, el promotor 42K Amsacta moorei de entomopoxvirus (Barcena, Lorenzo et al. 2000), el promotor vaccinia 7.5 kDa (Cochran et al., 1985), el promotor de vaccinia I3L (Riviere et al., 1992), el promotor de vaccinia HA (Shida, 1986), el promotor de la viruela vacuna ATI (Funahashi et al., 1988), el promotor de vaccinia H6 (Taylor et al., 1988b; Guo et al, 1989; Perkus et al, 1989), entre otros.

[0090] En otra realización, el vector de expresión de la viruela aviar puede ser un vector de viruela del canario, tal como, ALVAC. El polipéptido, antígeno, epítopo o inmunógeno del BTV o AHSV puede ser una VP2 del BTV o AHSV o VP5 del BTV. El vector viral puede ser vCP2289, que codifica VP2 y VP5 sintéticos con codones optimizados del BTV (véase el documento US 2007/0280960).

[0091] En otro aspecto del protocolo de sensibilización-refuerzo de la invención, se administra una composición que comprende los vectores de BTV de la invención seguida de la administración de la vacuna o la composición que comprende el antígeno BTV o AHSV, o una vacuna viral inactivada, o una vacuna de ADN plásmido o composición que contiene o expresa el antígeno del BTV o AHSV. Del mismo modo, un protocolo de sensibilización-refuerzo puede comprender la administración de una vacuna o composición que comprende una vacuna viral inactivada o composición que comprende un antígeno del BTV o AHSV, o una vacuna de ADN de plásmido o composición que contiene o expresa un antígeno de BTV o AHSV, seguido de la administración de una composición que comprende los vectores de BTV o AHSV de la invención. Además, cabe indicar que tanto la administración primaria como secundaria pueden comprender la composición que comprende el antígeno del BTV de la presente invención.

[0092] Un protocolo de sensibilización-refuerzo comprende al menos una administración de sensibilización y al menos una administración de refuerzo usando al menos un polipéptido común y/o variantes o fragmentos del mismo. La vacuna utilizada en la administración de sensibilización puede ser de naturaleza diferente de la que se utiliza como vacuna de refuerzo posterior. La administración de sensibilización puede comprender una o más administraciones. Del mismo modo, la administración de refuerzo puede comprender una o más administraciones.

[0093] El volumen de dosis de composiciones para las especies diana que son mamíferos, por ejemplo, el volumen de dosis de las composiciones para animales ovinos, bovinos, caprinos o porcinos, basados en vectores virales, por ejemplo, las composiciones basadas en vectores virales no de virus de viruela, es generalmente de aproximadamente 0,1 a aproximadamente 5,0 ml, de aproximadamente 0,1 a aproximadamente 3,0 ml, y de aproximadamente 0,5 ml a aproximadamente 2,5 ml.

[0094] La eficacia de las vacunas puede analizarse aproximadamente de 2 a 4 semanas después de la última inmunización mediante estimulación de los animales, tales como ovinos, bovinos, caprinos o porcinos, con una cepa virulenta del BTV, tal como las cepas BTV-1/2/3/4/8/9/16 o 17. Por ejemplo, la cepa del BTV puede ser el serotipo 17, que originalmente fue aislada de la sangre de las ovejas del condado de Tulare, CA (ver Bonneau, DeMaula et al 2002; DeMaula, Leutenegger et al., 2002). La cepa del BTV también puede ser del serotipo 8, una vacuna inactivada para la misma se encuentra actualmente disponible en Merial Limited.

[0095] Otras cepas pueden incluir BTV1 (aislado Australia), BTV1 (aislado Sudáfrica), BTV2 (aislado EE.UU.), BTV3 (aislado Sudáfrica), BTV4-9, BTV10 (aislado EE.UU.), BTV11 (aislado EE.UU.), BTV 12, BTV 13 (aislado EE.UU.), BTV 14-17, BTV 17 (aislado EE.UU.), BTV18, BTV 19, BTV20 (aislado Australia), BTV21-24, o BTV de Córcega.

[0096] Tanto las cepas homólogas como heterólogas se utilizan para la estimulación para probar la eficacia de la vacuna. El animal puede estimularse por vía intradérmica, subcutánea, aerosol, por vía intranasal, intraocular, intratraqueal, y/o por vía oral.

[0097] Para el BTV, se evalúan animales bovinos y caprinos para determinar la lesión vascular extendida. También para el BTV, se evalúan animales ovinos para la inflamación catarral de las membranas de las mucosas de la boca, nariz y panza, la inflamación de las bandas coronarias y láminas de los cascos, excoriación del epitelio, necrosis de la mucosa bucal, y lengua y boca hinchada/inflamada/azul. Pueden recogerse hisopos de todos los animales después de la estimulación para aislar el virus. La presencia o ausencia de antígenos virales en los tejidos indicados anteriormente se puede evaluar por reacción en cadena de la polimerasa de transcriptasa inversa en tiempo real de forma cuantitativa (qRRT-PCR). Las muestras de sangre pueden recogerse antes y después de la estimulación y pueden ser analizadas para detectar la presencia de anticuerpos específicos contra el BTV.

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[0098] Las administraciones de sensibilización-refuerzo pueden llevarse a cabo ventajosamente con 2 a 6 semanas de diferencia, por ejemplo, alrededor de 3 semanas de diferencia. De acuerdo con una realización, un refuerzo semianual o un refuerzo anual, de forma ventajosa usando la vacuna basada en vector viral, también se contempla. Los animales tienen ventajosamente al menos 6 a 8 semanas de vida en el momento de la primera administración.

[0099] Las composiciones que comprenden los polipéptidos antigénicos recombinantes de la invención utilizadas en los protocolos de sensibilización-refuerzo están contenidas en un vehículo, diluyente o excipiente farmacéutica o veterinariamente aceptable. Los protocolos de la descripción protegen al animal del BTV o AHSV ovino, bovino, caprino o porcino y/o previenen la progresión de la enfermedad en un animal infectado.

[0100] Las diversas administraciones se realizan preferiblemente con 1 a 6 semanas de diferencia, y más particularmente con aproximadamente 3 semanas de diferencia. Según un modo preferido, también se contempla un refuerzo anual, preferiblemente usando la composición inmunológica de vacuna basada en vector viral. Los animales tienen preferiblemente al menos de un día de vida en el momento de la primera administración.

[0101] Debe entenderse por un experto en la técnica que la presente descripción se proporciona a modo de ejemplo y la presente invención no está limitada a la misma. A partir de la descripción de este documento y el conocimiento en la técnica, el experto en la materia puede determinar el número de administraciones, la vía de administración, y las dosis a utilizar para cada protocolo de inyección, sin ninguna experimentación excesiva.

[0102] La presente invención contempla al menos una administración a un animal de una cantidad eficaz de la composición terapéutica fabricada de acuerdo con la invención. El animal puede ser macho, hembra, hembra embarazada y recién nacido. Esta administración puede ser a través de diversas rutas incluyendo, pero no limitado a, intramuscular (IM), intradérmica (ID) o subcutánea (SC) o mediante administración intranasal o por vía oral. La composición terapéutica de acuerdo con la invención también se puede administrar mediante un aparato sin aguja (como, por ejemplo, con un Pigjet, Dermojet, Biojector, Avijet (Merial, GA, EE.UU.), o aparato Vetjet o Vitajet (Bioject, Oregon, EE.UU.). Otra estrategia para la administración de composiciones de plásmido es usar electroporación (véase, por ejemplo Tollefsen et al, 2002; Tollefsen et al., 2003; Babiuk et al, 2002; solicitud PCT No. WO99/01158). En otra realización, la composición terapéutica se libera al animal mediante pistola de genes o bombardeo de partículas de oro.

[0103] En una realización, la descripción proporciona la administración de una cantidad terapéuticamente eficaz de una formulación para la liberación y expresión de un antígeno o epítopo del BTV o AHSV en una célula diana. La determinación de la cantidad terapéuticamente eficaz es experimentación rutinaria para un experto en la técnica. En una realización, la formulación comprende un vector de expresión que comprende un polinucleótido que expresa un antígeno o epítopo del BTV o AHSV y un portador, vehículo o excipiente farmacéutica o veterinariamente aceptable. En otra realización, el portador, vehículo o excipiente farmacéutica o veterinariamente aceptable facilita la transfección u otros medios de transferencia de polinucleótidos a un animal huésped y/o mejora la conservación del vector o proteína en un huésped.

[0104] En una realización, la materia descrita en este documento proporciona un procedimiento de detección para la diferenciación entre animales infectados y vacunados (DIVA).

[0105] En la actualidad, existen varias vacunas del BTV disponibles. Merial e Intervet ofrecen vacunas de BTV8 inactivadas. Se ha descrito recientemente (Anderson, J et al, J. Virol Methods, 1993; Silvia C. Barros et al, Veterinary-Microbiology, 2009) un procedimiento para distinguir entre animales vacunados con BTV y animales infectados con BTV.

[0106] Se describe en el presente documento que el uso de la vacuna o composición de la presente descripción permite la detección de la infección por BTV o AHSV en un animal. Se describe en el presente documento que el uso de la vacuna

o composición de la presente invención permite la detección de la infección en animales mediante la diferenciación entre animales infectados y vacunados (DIVA). En el presente documento se describe un procedimiento para el diagnóstico de la infección de BTV en un animal utilizando un procedimiento de detección inmunogénica basada en BTV-NS3, tal como ELISA específico de NS3.

Artículo de fabricación

[0107] En una realización, la materia descrita en el presente documento se refiere a un kit para llevar a cabo un procedimiento para producir o inducir una respuesta inmunitaria que puede comprender una cualquiera de las composiciones o vacunas inmunológicas del BTV o AHSV recombinante, o composiciones o vacunas inmunológicas del BTV o AHSV inactivado, composiciones o vacunas virales de BTV o HASV recombinante, y las instrucciones para realizar el procedimiento.

[0108] Otra realización de la descripción es un kit para llevar a cabo un procedimiento para inducir una respuesta 17

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inmunológica o protectora contra BTV o AHSV en un animal que comprende una composición o vacuna que comprende un antígeno del BTV de la invención y una composición o vacuna inmunológica viral de BTV o AHSV recombinante, e instrucciones para realizar el procedimiento de liberación en una cantidad eficaz para provocar una respuesta inmunitaria en el animal.

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[0109] Otra realización de la descripción es un kit para llevar a cabo un procedimiento para inducir una respuesta inmunológica o protectora contra BTV o AHSV en un animal que comprende una composición o vacuna que comprende un antígeno del BTV o AHSV de la descripción y una composición o vacuna inmunológica del BTV inactivado, e instrucciones para realizar el procedimiento de liberación en una cantidad eficaz para provocar una respuesta inmunitaria

10 en el animal.

[0110] Todavía otro aspecto de la presente descripción se refiere a un kit para la vacunación de sensibilización-refuerzo de acuerdo con la presente invención tal como se ha descrito anteriormente. El kit puede comprender al menos dos viales: un primer vial que contiene una vacuna o composición para la vacunación de sensibilización de acuerdo con la presente

15 invención, y un segundo vial que contiene una vacuna o composición para la vacunación de refuerzo de acuerdo con la presente invención. El kit puede contener ventajosamente un primer y segundo viales adicionales para vacunaciones de sensibilización adicionales o vacunaciones de refuerzo adicionales.

[0111] Las siguientes realizaciones están abarcadas por la descripción En una realización, se describe una composición

20 que comprende un vector de BTV o AHSV recombinante y un portador, excipiente, adyuvante o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable. En una realización, las composiciones anteriores en las que el portador, excipiente, adyuvante

o vehículo farmacéutica o veterinariamente aceptable es una emulsión de agua en aceite o una emulsión de aceite en agua. En otra realización, se describe un procedimiento de vacunación de un animal susceptible a BTV o AHSV ovino, bovino, caprino o porcino que comprende administrar las composiciones anteriores al animal. En una realización, se 25 describe un procedimiento de vacunación de un animal susceptible a BTV o AHSV ovino, bovino, caprino o porcino que comprende un régimen de sensibilización-refuerzo. En una realización, se describe un procedimiento para diagnosticar la infección por gripe en un animal. En aún otra realización, se describe un kit para la vacunación de sensibilización-refuerzo que comprende al menos dos viales, un primer vial que contiene la composición de la presente invención, y un segundo vial que contiene una composición para la vacunación de refuerzo que comprende una composición que comprende un

30 vector viral recombinante, o una composición que comprende una composición viral inactivada, o una composición de ADN plasmídico que contiene o expresa el antígeno de BTV o AHSV.

[0112] Los portadores o vehículos o adyuvantes o excipientes farmacéutica o veterinariamente aceptables son bien conocidos por los expertos en la materia. Por ejemplo, un portador o vehículo o excipiente farmacéutica o veterinariamente 35 aceptable puede ser una solución de NaCl al 0,9% (por ejemplo, solución salina) o un tampón fosfato. Otros portadores o vehículos o excipientes farmacéutica o veterinariamentes que se pueden utilizar para los procedimientos de esta invención incluyen, pero no se limitan a, poli-(L-glutamato) o polivinilpirrolidona. Los portadores o vehículos o excipientes farmacéutic

o veterinariamente aceptables pueden ser cualquier compuesto o combinación de compuestos que faciliten la administración del vector (o proteína expresada a partir de un vector de la invención in vitro); ventajosamente, el portador,

40 vehículo o excipiente puede facilitar la transfección y/o mejorar la conservación del vector (o proteína). Las dosis y volúmenes de dosis se describen en el presente documento en la descripción general y también se pueden determinar por el experto en la materia a partir de esta descripción en relación con el conocimiento en la técnica, sin gran experimentación.

[0113] Los lípidos catiónicos que contienen una sal de amonio cuaternario que son ventajosamente, pero no 45 exclusivamente, adecuados para plásmidos, son ventajosamente aquellos que tienen la siguiente fórmula:

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en la que R1 es un radical alifático de cadena lineal saturado o insaturado que tiene de 12 a 18 átomos de carbono, R2 es otro radical alifático que contiene 2 o 3 átomos de carbono y X es un grupo amina o hidroxilo, por ejemplo, DMRIE. En otra realización, el lípido catiónico puede estar asociado con un lípido neutro, por ejemplo DOPE.

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[0114] Entre estos lípidos catiónicos, se da preferencia a DMRIE (N-(2-hidroxietil)-N,N-dimetil-2,3-bis(tetradeciloxi)-1propano amonio; WO96/34109), ventajosamente asociado con un lípido neutro, ventajosamente DOPE (dioleoil-fosfatidiletanolamina; Behr, 1994), para formar DMRIE-DOPE.

[0115] Ventajosamente, la mezcla de plásmido con el adyuvante se forma de manera extemporánea y ventajosamente simultáneamente con la administración de la preparación o poco antes de la administración de la preparación; por ejemplo, poco antes o previa a la administración, se forma la mezcla de plásmido-adyuvante, de manera ventajosa a fin de dar tiempo suficiente antes de la administración para que la mezcla forme un complejo, por ejemplo, entre aproximadamente 10 y aproximadamente 60 minutos antes de la administración, tal como aproximadamente 30 minutos antes de la administración.

[0116] Cuando DOPE está presente, la relación molar de DMRIE:DOPE es ventajosamente aproximadamente 95:aproximadamente 5 a aproximadamente 5:aproximadamente 95, más ventajosamente aproximadamente 1:aproximadamente 1, por ejemplo, 1:1.

[0117] La relación en peso de adyuvante DMRIE o DMRIE-DOPE:plásmido puede ser de entre aproximadamente 50:aproximadamente 1 y aproximadamente 1:aproximadamente 10, tal como aproximadamente 10:aproximadamente 1 y aproximadamente 1:aproximadamente 5, y aproximadamente 1:aproximadamente 1 y aproximadamente 1:aproximadamente 2, por ejemplo, 1:1 y 1:2.

[0118] En otra realización, el portador, excipiente, vehículo o adyuvante farmacéutica o veterinariamente aceptable puede ser una emulsión de agua-en-aceite. Ejemplos de emulsiones de agua-en-aceite adecuados incluyen emulsiones de aguaen-aceite vacunales de base aecite que son estables y fluidas a 4ºC que contienen: de 6 a 50% v/v de una fase acuosa que contiene el antígeno, preferiblemente de 12 a 25% v/v, de 50 a 94% v/v de una fase aceite que contiene en total o en parte un aceite no metabolizable (por ejemplo, aceite mineral, tal como aceite de parafina) y/o aceite metabolizable (por ejemplo, aceite vegetal, o ácido graso, un poliol o ésteres de alcohol), de 0,2 a 20% p/v de tensioactivos, preferiblemente de 3 a 8% p/v, estando el último en total o en parte, o en una mezcla, ya sea de ésteres de poliglicerol ésteres, siendo dichos ésteres de poliglicerol preferiblemente (poli)ricinoleatos de poliglicerol, o aceites de ricino polioxietilenados u otros aceites de ricino polioxietilenados hidrogenados. Ejemplos de tensioactivos que pueden usarse en una emulsión de aguaen-aceite incluyen ésteres de sorbitán etoxilados (por ejemplo, monooleato de sorbitán polioxietilenado (20) (TWEEN 80®), disponible de AppliChem, Inc., Cheshire, CT) y ésteres de sorbitán (por ejemplo, monooleato de sorbitán (SPAN 80®, disponible de Sigma Aldrich, St. Louis, MO). Además, con respecto a una emulsión de agua-en-aceite, véase también el documento US 6.919.084, por ejemplo, el ejemplo 8 de la misma. En algunas realizaciones, la fase acuosa que contiene antígeno comprende una solución salina que comprende uno o más agentes tamponantes. Un ejemplo de una solución tampón adecuada es solución salina tamponada con fosfato. En una realización ventajosa, la emulsión de agua-en-aceite puede ser una emulsión triple agua/aceite/agua (W/O/W) (US 6.358.500). Ejemplos de otras emulsiones adecuadas se describen en US 7.371.395.

[0119] Las composiciones y vacunas inmunológicas según la invención puede comprender o consistir esencialmente en uno o más portadores, excipientes, vehículos o adyuvantes farmacéutica o veterinariamente aceptables. Los portadores o adyuvantes adecuados para uso en la práctica de la presente invención son (1) polímeros de ácido acrílico o metacrílico, anhídrido maleico y polímeros derivados con alquenilo, (2) secuencias inmunoestimulantes (ISS), tales como secuencias de oligodesoxirribonucleótidos que tienen una o más unidades CpG no metiladas (Klinman et al, 1996;. WO98/16247), (3) una emulsión de aceite en agua, tal como la emulsión SPT descrita en la página 147 de "Vaccine Design, the Subunit and Adjuvant Approach", publicado por M. Powell, M. Newman, Plenum Press 1995, y la emulsión MF59 descrita en la página 183 de la misma obra, (4) lípidos catiónicos que contienen una sal de amonio cuaternario, por ejemplo, DDA (5) citoquinas,

(6) hidróxido de aluminio o fosfato de aluminio, (7 ) saponina u (8) otros adyuvantes tratados en cualquier documento citado e incorporado por referencia en la presente solicitud, o (9) cualquier combinación o mezclas de los mismos.

[0120] La emulsión de aceite en agua (3), que es especialmente apropiada para vectores virales, puede basarse en: aceite de parafina líquido ligero (tipo farmacopea europea), aceite de isoprenoide, tal como escualano, escualeno, aceite resultante de la oligomerización de alquenos, por ejemplo, isobuteno o deceno, ésteres de ácidos o alcoholes que tienen un grupo alquilo de cadena lineal, tales como aceites vegetales, oleato de etilo, propilenglicol, di(caprilato/caprato), tri(caprilato/caprato) de glicerol y dioleato de propilenglicol, o ésteres de alcoholes grasos o ácidos ramificados, especialmente ésteres de ácido isoesteárico.

[0121] El aceite se utiliza en combinación con emulsionantes para formar una emulsión. Los emulsionantes pueden ser tensioactivos no iónicos, tales como: ésteres de, por una parte, sorbitán, manida (por ejemplo, oleato de anhidromanitol), glicerol, poliglicerol o propilenglicol y, por otra parte, ácidos oleico, isoesteárico, ricinoleico o hidroxiesteárico, estando dichos ésteres opcionalmente etoxilados, o bloques de copolímero de polioxipropileno-polioxietileno, tal como Pluronic, por ejemplo, L121.

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[0122] Entre los polímeros adyuvantes de tipo (1), se da preferencia a polímeros de ácido acrílico o metacrílico reticulado, especialmente reticulado por polialquenil éteres de azúcares o polialcoholes. Estos compuestos son conocidos bajo el nombre de carbómero (Pharmeuropa, vol. 8, no. 2, junio de 1996). Un experto en la técnica también puede hacer referencia 5 a US 2909462, que proporciona tales polímeros acrílicos reticulados por un compuesto polihidroxílico que tiene al menos tres grupos hidroxilo, preferiblemente no más de ocho de tales grupos, estando los átomos de hidrógeno de al menos tres grupos hidroxilo sustituidos por radicales alifáticos insaturados que tienen al menos dos átomos de carbono. Los radicales preferidos son aquellos que contienen de 2 a 4 átomos de carbono, por ejemplo vinilos, alilos y otros grupos etilénicamente insaturados. Los radicales insaturados también pueden contener otros sustituyentes, tales como metilo. Los productos

10 vendidos bajo el nombre Carbopol (BF Goodrich, Ohio, EE.UU.) son especialmente adecuados. Se reticulan por alil sacarosa o por alilpentaeritritol. Entre ellos, se hace referencia a Carbopol 974P, 934P y 971P.

[0123] En cuanto a los copolímeros derivados de anhídrido maleico-alquenilo, se da preferencia a EMA (Monsanto), que son copolímeros de etileno-anhídrido maleico de cadena lineal o reticulados y están, por ejemplo, reticulados por divinil 15 éter. También se hace referencia a J. Fields et al., 1960.

[0124] Con respecto a la estructura, los polímeros de ácido acrílico o metacrílico y EMA están formados preferentemente por unidades básicas que tienen la siguiente fórmula:

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en la que: -R1 y R2, que pueden ser iguales o diferentes, representan H o CH3 -x = 0 o 1, preferiblemente x = 1

35 -y = 1 o 2, con x+ y= 2.

[0125] Para EMA, x= 0 e y = 2 ypara carbómeros x= y= 1.

[0126] Estos polímeros son solubles en agua o solución salina fisiológica (20 g/1 NaCl) y el pH se puede ajustar a de 7,3 40 a 7,4, por ejemplo, mediante sosa (NaOH), para proporcionar la solución adyuvante en la que se puede incorporar el vector

o vectores de expresión. La concentración de polímero en la composición inmunológica o de vacuna final puede oscilar entre aproximadamente 0,01 y aproximadamente 1,5% p/v, de aproximadamente 0,05 a aproximadamente 1% p/v, y de aproximadamente 0,1 a aproximadamente 0,4% p/v.

45 [0127] La citoquina o citoquinas (5) pueden estar en forma de proteína en la composición inmunológica o de vacuna, o pueden coexpresarse en el huésped con el inmunógeno o inmunógenos o epítopo o epítopos de los mismos. Se da preferencia a la coexpresión de la citoquina o citoquinas, ya sea por el mismo vector que expresa el inmunógeno o inmunógenos o epítopo epítopos del mismo, o por un vector separado de la misma.

50 [0128] La invención comprende la preparación de tales composiciones de combinación; por ejemplo mezclando los componentes activos, de forma ventajosa entre sí y con un adyuvante, portador, citoquina, y/o diluyente.

[0129] Las citoquinas que se pueden usar en la presente invención incluyen, pero no se limitan a, factor estimulante de colonias de granulocitos (G-CSF), factor estimulante de colonias de granulocitos/macrófagos (GM-CSF), interferón α 55 (IFNα), interferón β (IFN-β), interferón γ (IFN-γ), interleuquina-1α (IL-1 α), interleuquina-1 β (IL-1 β), interleuquina-2 (IL-2), interleuquina-3 (IL-3), interleuquina-4 (IL-4), interleuquina-5 (IL-5), interleuquina-6 (IL-6), interleuquina-7 (IL-7), interleuquina-8 (IL-8), interleuquina-9 (IL-9) , interleuquina-10 (IL-10), interleuquina-11 (IL-11), interleuquina-12 (IL-12), factor de necrosis tumoral α (TNF-α), factor de necrosis tumoral β (TNF-β), y factor de crecimiento transformante β (TGFβ). Se entiende que las citoquinas se pueden coadministrar y/o administrar secuencialmente con la composición 60 inmunológica o de vacuna de la presente invención. Así, por ejemplo, la vacuna de la presente invención puede también

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contener una molécula de ácido nucleico exógena que expresa in vivo una citoquina adecuada, por ejemplo, una citoquina emparejada a este huésped a vacunar o en el que debe provocarse una respuesta inmunológica (por ejemplo, una citoquina bovina para las preparaciones a administrar a animales bovinos).

5 [0130] Ventajosamente, la composición inmunológica y/o vacuna según la descripción comprenden o consisten esencialmente en o consisten en una cantidad eficaz para provocar una respuesta terapéutica de uno o más polipéptidos tal como se describe en el presente documento; y, una cantidad eficaz se puede determinar a partir de esta descripción y el conocimiento en la técnica, sin gran experimentación.

10 [0131] En el caso de una composición inmunológica y/o vacuna basada en los polipéptidos expresados, una dosis puede incluir, de aproximadamente 1 µg a aproximadamente 2000 µg, ventajosamente de aproximadamente 50 µga aproximadamente 1000 µg y más ventajosamente de aproximadamente 100 µg a aproximadamente 500 µg de antígeno, epítopo o inmunógeno de BTV o FMDV. Los volúmenes de dosis pueden ser entre aproximadamente 0,1 y aproximadamente 10 ml, ventajosamente entre aproximadamente 0,2 y aproximadamente 5 ml.

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[0132] Se proporcionan los siguientes ejemplos no limitativos.

EJEMPLOS

20 [0133] La construcción de insertos de ADN, plásmidos y vectores virales o vegetales recombinantes se llevó a cabo utilizando las técnicas estándar de biología molecular descritas por J. Sambrook et al. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2ª edición, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, Nueva York, 1989).

Ejemplo 1 Generación de BTV de genoma reordenado

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Células y virus

[0134] Las células BSR son un clon de células BHK-21 y se mantuvieron en medio Eagle modificado por Dulbecco (DMEM, Gibco) suplementado con 5% de suero bovino fetal (FBS) y 25 µg/ml de penicilina/estreptomicina (p/s, Gibco). Las células

30 Vero se mantuvieron en DMEM suplementado con FBS al 5% y p/s. Las células de CPT-Tert son una línea inmortalizada de células del plexo coroideo de oveja (59) y se mantuvieron en medio de Dulbecco modificado por Iscove (IMDM, Gibco) suplementado con 10% de FBS y p/s. Todas las células de mamíferos se incubaron a 37ºC en un incubador humidificado con 5% de CO2.

35 [0135] BTV-1 es la cepa de referencia del serotipo 1 de Sudáfrica y se ha utilizado como la base para el primer sistema de genética inversa de BTV. La cepa BTV-8 europea (BTV-8NET2008/06 (colección IAH Orbivirus)) se aisló de una vaca clínicamente afectada en los Países Bajos, y tiene una historia de pases de un solo pase en células KC seguido de un pase adicional en células BHK 21.

40 Plásmidos

[0136] Los plásmidos utilizados para el rescate de BTV-1 y BTV-8 fueron descritos anteriormente (Ratinier et al, 2011). Cada plásmido contiene una sola copia de ADNc de BTV de un segmento genómico flanqueado por un promotor T7 5’ y un sitio de restricción 3’. El promotor T7 y el sitio de restricción se dispusieron de manera que los plásmidos 45 linealizados con la enzima de restricción apropiada permitieron la transcripción in vitro de transcritos de ARN bloqueados con extremos de BTV auténticos. Se sintetizaron comercialmente plásmidos adicionales que contienen Seg-2 de aislados de campo virulentos de BTV-2, BTV-4 y BTV-9 (13) en el mismo contexto que los otros plásmidos de rescate (GenScript).

Genética inversa

50 [0137] Los plásmidos que contienen los segmentos genómicos de BTV-1 o BTV-8 o mutantes resultantes se linealizaron con las enzimas de restricción apropiadas y a continuación se purificaron por extracción con fenol/cloroformo. Los plásmidos digeridos fueron utilizados como plantilla para la transcripción in vitro usando el kit mMESSAGE mMACHINE T7 Ultra Kit (Ambion), de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Se purificaron secuencialmente ARNss mediante

55 extracción con fenol/cloroformo y a través de columnas Illustra Microspin G25 (GE Healthcare Life Sciences), siguiendo el protocolo del fabricante.

[0138] Las combinaciones de los ARN individuales se ensamblaron de acuerdo con los genomas reordenados deseados (véase la Tabla 1 y la figura 1).

60

imagen23

10

15

20

25

30

35

40

45

50

55

60

[0139] Se emplacaron 2 x 105 células BSR en placas de 12 pocillos en medio de crecimiento sin antibióticos, 24 h antes de la transfección. Las células se transfectaron dos veces con ARN usando Lipofectamine 2000. Para la primera transfección, se mezclaron 1 x 1011 copias de ARN bloqueado de tipo BTV transcrito in vitro que codifica VP1, 3, 4, 6, NS1 y NS2 con OptiMEM (Gibco) que contenía RNAsin Plus (0,5 U/µl, Promega) en un volumen final de 10 µl. Se mezclaron 2 µl de Liptofectamine 2000 10 µl de OptiMEM (con RNAsin Plus) y se incubaron durante 5 min antes de la combinación con el ARN. Se dejaron formar complejos de transfección durante 20 min antes de añadir gota a gota la mezcla de transfección a las células. Aproximadamente 18 h después de la primera transfección, el medio se reemplazó, y las células se transfectaron una segunda vez como la primera transfección, pero con todos los 10 segmentos y 3 µl de Lipofectamine. 4h después de la segunda transfección, el medio se reemplazó con una capa de agar.

[0140] Se adopta una nomenclatura estándar en este informe: la sección en mayúscula del nombre se refiere a la estructura del virus, seguido por un subíndice que comprende la proteína sustituida, precedido por el origen de serotipo del segmento, por ejemplo BTV-18VP1 se refiere a un virus con una estructura de BTV-1 que contiene el gen de VP1 de BTV-8.

[0141] El gráfico esquemático que representa la generación de BTV de genoma reordenado se muestra en la figura 6.

Curvas de crecimiento

[0142] Para el análisis de crecimiento del virus in vitro, se emplacaron 2x105 células CPT-terc/pocillo o 3 x 106 células KC/pocillo en placas de 12 pocillos en 1 ml de medio de crecimiento el día antes de la infección. Se incubaron las células en el medio que contenía el virus correspondiente durante 2 horas a 37ºC. A continuación, el medio se desechó y las células se lavaron una vez con DMEM y después se incubó con 1 ml de medio de crecimiento fresco apropiado. Se extrajeron muestras de 100 µl de sobrenadante a las 0, 8, 24, 48 y 72 horas después de la infección (p.i.), y se reemplazaron con 100 µl medio de crecimiento fresco. Las muestras de 100 µl se aclararon por centrifugación durante 5 minutos a 500 xg y después se almacenaron a 4ºC. Las muestras a continuación se titularon mediante ensayos de dilución limitante (60) en células BSR y los títulos de virus se expresaron como TCID50/ml.

Ensayos en placa

[0143] Las células CPT-terc se sembraron a una densidad de 4 x 105 células/pocillo en placas de 6 pocillos 24 h antes de la infección con BTV. Las células se infectaron durante 2 horas a 37ºC. A continuación, se desechó el medio que contenía el virus y las células se lavaron con DMEM y se incubaron durante 72 h en 3 ml de una capa semisólida (1,2% Avicel en DMEM suplementado con 4% de FBS y p/s). A continuación, la capa se desechó y las células se lavaron con PBS y a continuación se tiñeron durante > 1 h con violeta cristal en formaldehído.

Ensayos de neutralización

[0144] Se prepararon diluciones en serie de tres veces de antisuero específico de BTV-1 o BTV-8 por cuadruplicado en placas de 96 pocillos utilizando 50 µl de cada suero de ensayo diluido en DMEM que contenía 3% de FBS. A continuación, se añadieron 100 TCID50 de BTV-1, BTV-8 y genomas reordenados seleccionados a los pocillos correspondientes y las placas y se incubaron a 37ºC durante 1 h. Finalmente, se añadieron 2,5x104 células Vero a cada pocillo y la placa se incubó a 37ºC durante 5 días en un incubador humidificado con 5% de CO2, después de lo cual se evaluó visualmente el CPE viral. La dosis protectora 50 (PD50) para cada muestra de suero, definida como la dilución de suero que inhibe la infección por BTV en el 50% de cultivos de células Vero, se determinó a continuación usando el procedimiento de Reed-Muench (60). Las células BHK-21 en suspensión se ampliaron para la producción a gran escala de BTV de genoma reordenado. El BTV de genoma reordenado recogido estaba inactivado. Los adyuvantes adecuados se añadieron al BTV de genoma reordenado para la preparación de vacunas.

RESULTADOS

[0145] Se utilizó genética inversa para determinar si era posible reordenar cualquier segmento individual de BTV-1 o BTV8 en una estructura alternativa. Todas las combinaciones de virus con un único segmento de BTV-8 en la estructura de BTV-1 se rescataron con éxito, y viceversa (Figura 1). El genotipo de cada virus de genoma reordenado se comprobó mediante amplificación por RT-PCR y secuenciación de un fragmento de cada segmento (Figura 1). Los resultados mostraron que cualquier segmento de BTV puede reordenarse entre BTV-1 y VLA-8.

[0146] Las características de crecimiento in vitro de todos los virus de genoma reordenado se evaluaron utilizando el ensayo en placa y mediante la realización de curvas de crecimiento de virus. Se determinaron los diámetros promedio de placa a partir de dos rondas independientes del ensayo en placa. En la mayoría de los casos, el diámetro de la placa en gran parte no estaba afectado y difería poco de la estructura parental en el que se insertó el segmento individual alternativo (Figura 2A-B). Sin embargo, algunos virus revelaron consistentemente un fenotipo en placa más pequeña o más grande con relación a la estructura parental. La sustitución del BTV-8 Seg-8 (que codifica NS2) en la estructura de BTV-1 (BTV18NS2) dio lugar a placas que fueron aproximadamente 33% más pequeñas que BTV-1 de tipo natural (Figura 2A). Las placas del genoma reordenado contrario, es decir BTV-81NS2, también se redujeron, aunque en menor medida (Figura

imagen24

[0147] Los análisis de la curva de crecimiento se realizaron con el fin de evaluar la cinética de crecimiento de cada genoma reordenado. La mayoría de los genomas reordenados demostraron una dinámica de crecimiento similar a los

10 correspondientes virus de tipo natural (Figura 3).

[0148] Varios estudios han sugerido que el VP2 está ligado inextricablemente al serotipo de BTV. Sin embargo, también se ha sugerido que VP5 contribuye a la definición de un serotipo para cepas particulares. Para investigar las contribuciones relativas de VP2 y VP5 a la determinación del serotipo, se realizaron ensayos de neutralización en suero usando genomas

15 reordenados BTV-1, BTV-8 y genomas reordenados con la estructura de BTV-1 o BTV-8 y la VP2 heteróloga sola o VP2 y VP5 (BTV-18VP2, BTV-18VP2, VP5, BTV-81VP2 y BTV-81VP2, VP5). Los antisueros neutralizantes de BTV-1 y BTV-8 se derivaron de animales vacunados contra BTV-1 o BTV-8 y se estimularon con la cepa homóloga.

[0149] Los resultados mostraron que los antisueros de BTV-8 neutralizaron completamente BTV-8 de tipo natural, a la vez

20 que no muestra capacidad de neutralización contra BTV-1 (Figura 4A). Del mismo modo, BTV-1 se neutralizó mediante antisueros de BTV-1, pero no por antisueros de BTV-8 (Figura 4A).

[0150] Los experimentos con genomas reordenados que contienen VP2 solo o VP2 y VP5 del virus heterólogo reveló que el virus sólo se neutraliza cuando los sueros se emparejan con la proteína VP2, confirmando estudios que relacionan el

25 serotipo únicamente con VP2.

[0151] Los resultados que indican que VP2 solo puede dictar el serotipo impulsaron a generar más genomas reordenados de BTV-1que incorporan Seg-2 entre una selección de serotipos. Los virus de genoma reordenado de BTV-1 que contienen la VP2 de BTV-2, BTV-4 y BTV-9, que dan lugar a BTV-12VP2, BTV-14VP2 y BTV-19VP2, respectivamente, fueron rescatados

30 con éxito. En todos los casos fueron rescatados los virus que crecían de forma igual al virus de tipo natural (Figura 5).

Ejemplo 2 Estudio clínico y de serología de los animales vacunados

[0152] Se utilizaron dos constructos utilizando un estructura de BTV-1 y sustituyendo (VP2BTV1) o (VP2BTV1 + VP5BTV1)

35 por (VP2BTV8) o (VP2BTV8 + VP5BTV8), respectivamente, en el estudio de estimulación. Las características de los antígenos producidos para formular las vacunas probadas se resumen en la Tabla 2 a continuación.

Tabla 2 Características de los antígenos

antígeno

estructura sustitución de proteína o proteínas (y serotipo)

VP2

BTV-1 VP2 (BTV-8)

VP2 + VP5

BTV-1 VP2 (BTv-8) + VP5 (BTV-8)

40 [0153] Los virus de genomas reordenados se cultivaron, inactivaron y procesaron para producir dos lotes de antígenos. Estos antígenos se formularon en vacunas mediante la mezcla con gel de aluminio (2,7 mg de hidróxido de aluminio) y saponina (30HU de saponina por 1 ml de dosis de vacuna) como adyuvantes. Las vacunas probadas se indican en la Tabla 3.

45

Tabla 3 Características de las vacunas

antígeno

contenido de antígeno de VP2 por 1 ml de dosis de vacuna (log 10pixel*) contenido volumétrico de antígeno por 1 ml de dosis de vacuna (ml**)

VP2 dosis alta

3,2 6,39

VP2 dosis baja

2,12 0,53

VP2 + VP5

3,2 6,49

*: Contenido de VP2BTV8 medido mediante transferencia de puntos cuantitativa en el PI (principio activo) **: ml equivalentes de PI no concentrado

imagen25

[0154] Las vacunas se administraron en 1 o 2 inyecciones a ovejas BTV sero-negativas convencionales. La protección se evaluó a través de una estimulación de BTV-8 virulento llevada a cabo 21 días después de la finalización de la vacunación y el seguimiento clínico y virológico posterior. El estudio de estimulación en las ovejas se llevó a cabo de acuerdo con la Tabla 4 a continuación.

Tabla 4

Grupo

Tratamiento Vacunación Eficacia Estimulación con BTv-8 en D42

D0

D21 5 sí

G1

VP2 dosis alta x x 5 sí

G2

VP2 dosis alta - x 5 sí

G3

VP2 dosis alta - x 5 sí

G4

VP2 + VP5 x x 5 sí

G5

VP2 + VP5 - x 5 sí

G6

Vacuna BTV-8 comercial (Merial) – control positivo - x sí

G7

control negativo - - 6 sí

[0155] Antes de las sesiones de vacunación, se controló en todos los animales por su estado de salud y la temperatura

10 rectal. En D0 y/o D21, cada animal de los grupos G1 a G6 recibido una dosis de 1 ml de la vacuna apropiada, tal como se describe en la Tabla 4. Las inyecciones se realizaron por vía subcutánea en la cara lateral izquierda (D0) o derecha (D21) del tórax, junto al codo, después de la desinfección local del punto de inyección. Los animales del grupo G7 permanecieron sin tratar y sirvieron como control.

15 [0156] Para todos los animales, la temperatura rectal se registró en D42 (antes de la estimulación) y a continuación todos los días de D47 a D56. Desde D47 a D56, se registraron el comportamiento general y la condición corporal de los animales. Para la condición general: Bien se le asigna una puntuación de 0; apático se le asigna una puntuación de 1; deprimido se le asigna una puntuación de 2; postrado se le asigna una puntuación de 3. Para la condición corporal: normal se le asigna una puntuación de 0; delgado se le asigna una puntuación de 1; caquéctico se le asigna una

20 puntuación de 2.

[0157] De D47 a D56, se registraron los signos clínicos observados con frecuencia durante la infección de la lengua azul, incluyendo: -congestión y/o edema, especialmente en la cabeza: ojos, nariz, orejas, labios, chaflán, espacio intermandibular

25 -hipersalivación -descarga/costras nasales -balido quejumbroso -petequias -problemas de locomoción (cojera)

30 -problemas respiratorios (tos/disnea) -problemas digestivos (diarrea) -eritema

[0158] Se registró otro signo clínico cuando estaba presente. En los días en que no se realizó un seguimiento clínico de

35 los individuos, se comprobó diariamente el estado general de salud de la manada como parte de la atención y el mantenimiento diario.

[0159] En D0 (antes de la vacunación), D21 (antes de la vacunación), D42 (antes de la estimulación) y D56, se tomaron muestras de sangre de todas las ovejas por punción yugular con tubos lisos. Todas las muestras fueron tratadas para

40 recoger el suero. Los sueros se dividieron en alícuotas y se inactivaron por calor (56ºC, 30 min) antes de su transferencia al laboratorio de análisis clínicos. Los títulos de anticuerpos específicos de BTV-8 se determinaron en sueros individuales en todas las fechas de muestreo mediante pruebas de seroneutralización.

[0160] Se realizaron pruebas de sero-neutralización según la técnica (Nº002488) actualmente utilizadas por el Laboratorio

45 de análisis clínicos. Brevemente, los sueros se ensayaron en diluciones de tres veces (0,48 Log10), a partir de 1/3, en placas de microtitulación. Cien microlitros de suero diluido se incubaron 1 hora a 37ºC con 50 microlitros de una suspensión viral de un serotipo de BTV determinado (serotipo 8). A continuación, se añadieron a la mezcla cincuenta microlitros de una suspensión de células VERO que contenían 500.000 células por ml y se incubaron las placas a 37ºC. La lectura de las placas se basó en el efecto citopático, después de una incubación de 7 días. Los títulos de suero, expresados en Log10 (PD50%) se calcularon mediante regresión después de transformación angular.

imagen26

[0161] En D42 (antes de la estimulación), D47, D49, D51, D54 y D56, se tomaron muestras de sangre de todas las ovejas 5 mediante punción yugular con tubos de EDTA.

[0162] Con el fin de detectar y cuantificar el ARN del virus de la lengua azul en la sangre, se realizó un análisis mediante la prueba de qRT-PCR en estas muestras. Estos ensayos se realizaron de acuerdo con la técnica No. 200336 actualmente utilizada por el Laboratorio de Análisis Clínicos (procedimiento automatizado).

10 [0163] En resumen, después de la extracción utilizando un kit comercial (Nucleospin multi 96), el ARN se desnaturalizó primero por tratamiento térmico. A continuación, se incubó una parte alícuota con sonda MGB, cebadores específicos y el reactivo del kit de Invitrogen Super Script III Platinium One step, para permitir la amplificación en el termociclador. Esta etapa se realizó por duplicado. La señal fluorescente es proporcional a la cantidad de ADN sintetizado. La amplificación

15 se refiere a cualquiera de los 24 serotipos de BTV. La cuantificación de ácidos nucleicos de BTV en las muestras se hizo por comparación con muestras de ARN estandarizadas. La cantidad de ARN se expresó en número Log10 de copias de ARN por ml de sangre teniendo en cuenta los resultados obtenidos en cada duplicado cuando ambos eran positivos y sólo un positivo cuando uno de los duplicados se encontró que era negativo. El punto de corte positivo del 95% de la técnica (que se define como el número mínimo de secuencias diana por volumen de muestra que pueden detectarse en el 95%

20 de las pruebas realizadas) o se determinó el umbral de respuesta positiva del 95% (PRT95) a 3,68 log10 copias de ARN/ml. Los resultados de las muestras de titulación por debajo de 3,68 log10 copias de ARN/ml se expresaron como < PRT95 y se consideraron negativos. Los resultados de las muestras de titulación ≥ PRT95 se proporcionaron tal cual y fueron considerados positivos.

25 [0164] Para el propósito de la descripción de resultados (cálculo del promedio, desviación estándar y área bajo la curva) y el análisis, se atribuyó un título de 3,68 log 10 copias de ARN/ml a las muestras negativas.

Resultados de hipertermia

30 [0165] Las evoluciones de temperaturas promedio después de la estimulación se muestran en la figura 8. Las dispersiones de hipertermias máximas se muestran en la figura 9.

[0166] Se observó claramente un aumento de la temperatura rectal en el grupo de control, a partir de D48 (es decir, 6 días después de la estimulación) y alcanzando un máximo en D49 (41,3ºC de promedio), reduciendo luego progresivamente

35 hasta D56.

[0167] En todos los grupos vacunados, la temperatura promedio fue bastante constante durante todo el período de seguimiento. Cuando se comparó con el grupo de control (G7), las hiperterminas máximas se redujeron de forma estadísticamente significativa (p <= 0,01) en los grupos vacunados G1, G3 y G4. Las diferencias no fueron

40 estadísticamente significativas para G2 y G6.

Signos clínicos y puntuaciones clínicas

[0168] La evolución de las puntuaciones clínicas diarias promedio se muestra en la figura 10. La dispersión de GCS por 45 grupo se representa en la figura 11.

[0169] Después de la estimulación, los signos clínicos observados con mayor frecuencia fueron congestión y edema en la cabeza. Entre otros también se observaron ocasionalmente eritema, apatía, delgadez, descarga y costras nasales, problemas respiratorios y de locomoción.

50

[0170] La frecuencia y la duración de la observación de estos signos fueron marcadamente más elevadas en los controles que en los grupos vacunados.

[0171] En el grupo de control (G7), la puntuación clínica diaria promedio alcanzó su punto máximo en D50 (es decir, 8 días

55 después de la estimulación) con un valor de 8,8 y era constantemente mayor que en cualquier grupo vacunado. La GCS promedio de G7 fue 50. En los grupos vacunados, la puntuación clínica promedia diaria fue muy baja durante todo el período de seguimiento. Cuando se comparó con el grupo de control (G7), la GCS se redujo de manera estadísticamente significativa (p <= 0,01) en todos los grupos vacunados excepto G2. Para G2, la diferencia estaba cerca de la significación estadística.

60

Resultados de viremia 25

imagen27

[0172] La evolución de títulos de viremia promedio se resumen en la figura 12. Las frecuencias de muestras positivas de PCR y AUC se muestran en la Tabla 5. La Fig. La figura 13 muestra dispersiones de AUC.

5 [0173] Todas las ovejas fueron confirmadas como RT-PCR negativas antes de la estimulación. En el grupo de control, todas las ovejas fueron positivos en D47 (es decir, 5 días después de la estimulación) y todos permanecieron positivos, a títulos bastante altos, hasta el final del período de seguimiento.

[0174] En los grupos vacunados G3 y G4, se detectó una oveja poco positiva en la fecha de muestreo inmediatamente

10 después de la inoculación. A continuación, ambas ovejas se hallaron siempre negativos. Estos resultados, poco positivos, transitorios fueron muy probablemente debidos a la detección de un resto del inóculo de estimulación y claramente no eran atribuibles a una multiplicación viral.

[0175] Cuando se compararon con el grupo control (G7), las áreas bajo la curva se redujeron de manera estadísticamente

15 significativa (p <= 0,01) en todos los grupos vacunados excepto G2. Para G2, la diferencia era próxima a la significación estadística. Se consideró que la prevención completa de la viremia se logró en G1, G3, G4 y G5.

Tabla 5 Frecuencias de muestras positivas de PCR y AUC

Grupo

Frecuencia de PCR positiva en los días Número total de muestras positivas en PCR Área bajo la curva (AUC)

D47

D49 D51 D54 D56 promedio de

G1 (VP2 dosis alta, D0/D21)

0/5 0/5 0/5 0/5 0/5 0/25 0,00 0,00

G1 2 (VP2 dosis alta, D21)

1/5 1/5 1/5 1/5 1/5 5/25 1,82 4,06

G3 (VP2 dosis baja, D21)

0/5 0/5 0/5 0/5 0/5 0/25 0,87 1,95

G4 (VP2 + VP5, D0/D21)

0/5 0/5 0/5 0/5 0/5 0/25 0,99 2,20

G5 (VP2 + VP5, D21)

0/5 0/5 0/5 0/5 0/5 0/25 0,00 0,00

G6 (vacuna comercial BR8)*

1/5 1/5 1/5 1/5 1/5 5/25 1,33 2,98

G7 (no vacunado)

6/6 676 6/6 5/5** 5/5 28/28 8,85 0,73

*: vacuna comercial BR8: vacuna de BTV-8 comercial (Merial) **: una oveja murió en el D53

20

Resultados serológicos

[0176] La evolución de títulos promedio de anticuerpos neutralizantesde BTV-8 se resume en la Figura 14. Todas las ovejas fueron confirmadas como sero-negativas antes de la vacunación y los controles permanecieron seronegativos hasta 25 la estimulación.

[0177] En los grupos vacunados 2 veces (G1 y G4), se observaron algunas sero-conversiones en D21. En D42, todas las ovejas se habían sero-convertido en ambos grupos y los títulos promedio fueron casi idénticos.

30 [0178] En los grupos vacunados una vez (G2, G3, G5 y G6), se observaron algunas sero-conversiones 21 días después de la vacunación (es decir, D42). Aunque se observó una diferencia obvia en los títulos serológicos (D42) entre los grupos vacunados una vez y dos veces (G1 vs G2 y G4 vs G5), las diferencias en los títulos serológicos de acuerdo con la carga útil de antígeno (G2 vs G3) eran menos evidentes.

imagen28

[0179] Todas las ovejas se sero-convertieron fuertemente después de la estimulación (D56) y hubo claramente un efecto 5 de refuerzo en todos los grupos vacunados.

Conclusión

[0180] Los resultados mostraron que las construcciones proporcionaban una reducción significativa de la hipertermia, una 10 reducción significativa de los signos clínicos, y la prevención completa y significativa de la viremia.

Ejemplo 3 Producción de BTV sintético de múltiples serotipos

[0181] Usando el sistema de genética inversa tal como se describe en el Ejemplo 1, se generaron genomas reordenados

15 de BTV "sintéticos" (sBTV) que cubrían 24 de los 26 serotipos diferentes, en los que cada VP2 se acopló con la proteína VP5 homóloga en una estructura de BTV-1 (proteínas VP1, VP3, VP4, NS1, VP7, NS2, VP6 y NS3) como se muestra en la Tabla 6 a continuación. El término "sintético" se utiliza para describir la plataforma porque segmentos de genoma se pueden sintetizar in vitro a partir de una secuencia conocida, en lugar de mediante la amplificación del genoma de un aislado de virus.

20 [0182] Es interesante y sorprendentemente, a pesar de que BTV-25 (Toggenburg Orbivirus) no creció en cultivo celular, mediante la introducción de las regiones no traducidas de BTV-1 en la secuencia codificante de las proteínas VP2 y VP5, los inventores fueron capaces de rescatar un sBTV del serotipo de BTV-25. De este modo, la plataforma de vacuna puede ser extremadamente útil para aquellas cepas de virus que no pueden aislarse fácilmente en cultivo de tejidos.

25

Tabla 6 Virus sBTV disponibles sintetizados mediante el sistema genético inverso

Código de virus

Serotipo Proteína VP2 Proteína VP5 Estructura Nombre alternativo+

RAS8

BTV-01 BTV-01 BTV-01 BTV-01 S1BTV-1VP2/VP5

RAS41

BTV-02 BTV-02 BTV-01 BTV-01 -/-

RAS51

BTV-02 BTV-02 BTV-02 BTV-01 S1BTV-2VP2/VP5

RFN70

BTV-02 BTV-02 BTV-02 BTV-01 -/-

RFN30

BTV-03 BTV-03 BTV-06 BTV-01 -/-

RFN52

BTV-03 BTV-03 BTV-03 BTV-01 S1BTV-3VP2/VP5

RAS40

BTV-04 BTV-04 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN53

BTV-04 BTV-04 BTV-04 BTV-01 S1BTV-4VP2/VP5

RFN71

BTV-04 BTV-04 BTV-04 BTV-01 -/-

RFN78

BTV-05 BTV-05 BTV-5 BTV-01 -/-

RFN32

BTV-06 BTV-06 BTV-06 BTV-01 S1BTV-6VP2/VP5

RFN73

BTV-07 BTV-07 BTV-01 BTV-01 -/-

RAS32

BTV-08 BTV-08 BTV-08 BTV-01 S1BTV-8VP2/VP5

RFN56

BTV-09 BTV-09 BTV-09 BTV-01 S1BTV-9VP2/VP5

RAS39

BTV-09it BTV-09 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN74

BTV-10 BTV-10 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN35

BTV-11 BTV-11 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN58

BTV-11 BTV-11 BTV-11 BTV-01 S1BTV-11VP2/VP5

RFN75

BTV-12 BTV-12 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN37

BTV-13 BTV-13 BTV-13 BTV-01 S1BTV-13VP2/VP5

RFN38

BTV-14 BTV-14 BTV-06 BTV-01 S1BTV-14VP2

RFN76

BTV-16 BTV-16 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN79

BTV-16 BTV-16 BTV-10 BTV-01 -/-

RFN80

BTV-16 BTV-16 BTV-11 BTV-01 -/-

RFN81

BTV-16 BTV-16 BTV-16 BTV-01 -/-

RFN82

BTV-16 BTV-16 BTV-21 BTV-01 -/-

RFN83

BTV-16 BTV-16 BTV-22 BTV-01 -/-

RFN84

BTV-16 BTV-16 BTV-23 BTV-01 -/-

RFN85

BTV-16 BTV-16 BTV-26 BTV-01 -/-

RFN41

BTV-17 BTV-17 BTV-01 BTV-01 -/

RFN63

BTV-17 BTV-17 BTV-17 BTV-01 S1BTV-17VP2/VP5

RFN77

BTV-18 BTV-18 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN44

BTV-20 BTV-20 BTV-10 BTV-01 -/-

RFN66

BTV-20 BTV-20 BTV-20 BTV-01 S1BTV-20VP2/VP5

RFN45

BTV-21 BTV-21 BTV-16 BTV-01 -/-

RFN67

BTV-21 BTV-21 BTV-21 BTV-01 S1BTV-21VP2/VP5

RFN46

BTV-22 BTV-22 BTV-22 BTV-01 S1BTV-22VP2/VP5

RFN47

BTV-23 BTV-23 BTV-01 BTV-01 -/-

RFN68

BTV-23 BTV-23 BTV-23 BTV-01 S1BTV-23VP2/VP5

RFN48

BTV-24 BTV-24 BTV-04 BTV-01 S1BTV-24VP2

RFN49

BTV-25 BTV-25 (1UTRs)# BTV-25 (1UTRs)# BTV-01 S1BTV-25VP2/VP5

RFN50

BTV-26 BTV-26 BTV-26 BTV-01 S1BTV-26VP2/VP5

#Región que codifica la proteína flanqueada por las regiones no traducidas de BTV-1

Caracterización y replicación in vitro de sBTV

[0183] Las reservas virales de cada uno de los virus sBTV se cultivaron y se titularon en células BSR. El fenotipo de placa 5 se evaluó mediante ensayo de placas en células de oveja a las 72 horas después de la infección (Figura 15). Tal como se mencionó anteriormente, todos los serotipos rescatados tienen la combinación VP2/VP5 homóloga.

[0184] La replicación de sBTV se determinó en células BHK-21 (infectadas con una MOI de 0,001). Los sobrenadantes celulares se recogieron a las 72 h después de la infección (Figura 16). Las muestras por triplicado se titularon

10 posteriormente mediante TCID50 en células BHK-21 (usando el procedimiento de Reed-Muench) y se representaron gráficamente como log10 TCID50/ml.

Ejemplo 4 Producción de virus de genoma reordenado inactivado

15 [0185] Se amplificaron dos cepas de construcción como BTV de genoma reordenado, una correspondiente a VP2 de BTV8 en estructura de BTV-1 y la segunda con VP2/VP5 de BTV8 en la estructura de BTV-1, en células BHK21.

Producción de células

20 [0186] Se inoculó un biorreactor de 7L (pase 48) con 5 litros de medio GMEM con 7% de suero de ternera y 2x 109 células (6BHK2M12-pase 47). El cultivo se reguló utilizando como parámetros: pH: 7,1 ± 0,1, temperatura: 37,0 ± 1,5ºC, DO2: 7,1 ± 10% y agitación: 300 rpm ± 10%. Después de 2 días de cultivo, se realizó una numeración. El volumen total de la suspensión se transfirió en un biorreactor B4 previamente esterilizado y que contenía 35 litros de medio GMEM + 7% CS. El cultivo se regula utilizando como parámetros: pH: 7,1 ± 0,1, temperatura: 7,1 ± 1,5ºC, DO2: 7,1 ± 10% y agitación:

25 150 rpm ± 10%. Después de 3 días de cultivo, la agitación del biorreactor se detuvo por decantación de las células durante aproximadamente 24 horas a +5ºC. Después de la decantación, el medio se eliminó, (volumen restante = 5 litros). Se añadió medio VMM (30 litros). Después de mezclar, se llevó a cabo un recuento de células y se añadió el inóculo: inóculo BTV1 + BTV8 VP2 (RAS10) para el primer principio activo y el inóculo BTV1 + BTV8 VP2/VP5 (RAS32) para el segundo. El volumen final en el biorreactor fue de 35 litros, se calcularon los volúmenes de inóculo para obtener una MOI igual a 5 10

30 4 CCID50/célula. Los parámetros del cultivo fueron: pH: 7,1 ± 0,1, temperatura: 37,0 ± 1,5ºC, DO2: 7,1 ± 10%, agitación: 100 rpm ± 10% y presión: 0,1 bares ± 10%. El cultivo se detuvo después de aproximadamente 46 horas por enfriamiento bajo agitación.

Tratamiento antes de la inactivación

35 [0187] La regulación de oxígeno se detuvo y se añadió cloroformo para obtener una concentración final de 0,05%. La mezcla se dejó en agitación a aproximadamente 8ºC durante una hora con una regulación del pH a 7,4 ± 0,1. La regulación del pH se detuvo y el producto se almacenó a aproximadamente +8ºC sin agitación hasta el tratamiento. Se trataron aproximadamente 24 litros del cultivo con Ultra-Turrax T50: 8 muestras de 3000 ml a 1000 vatios durante 3 minutos a la

40 temperatura del laboratorio. Las muestras se combinaron después del tratamiento.

[0188] El producto a continuación se aclaró por centrifugación (20 minutos a 3500 rpm, 20ºC). El sobrenadante se filtró y se almacenó a +5ºC antes de la inactivación.

45 Inactivación

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[0189] El filtrado sobrenadante se calentó a 37ºC y el pH se ajustó a 7,4 ± 0,1. Se añadió solución de formaldehído hasta obtener una concentración final de 0,5 mg/ml. Veinte minutos después se añadió una dosis de EI para obtener una concentración final de 1,5 mM. 18 horas después, se añadió una segunda dosis de EI (la misma concentración). La etapa de inactivación se llevó a cabo a 37ºC durante 24 horas (T0 = tiempo de la primera adición de EI). Durante esta etapa de inactivación, las muestras se llevaron a cabo y se trataron mediante una solución de L-cisteína.

Filtración y concentración

[0190] El producto inactivado se filtró (CUNO 30S). Se midió el nuevo volumen. El filtrado se concentró a temperatura de laboratorio, se calculó el factor de concentración.

Purificación y tratamiento con formaldehído

[0191] El concentrado se purificó usando la columna XK 25/100 con S6FF. Se realizaron dos rondas. Las condiciones de purificación fueron: volumen de la muestra: 15% de la columna (aproximadamente 60 ml); tampón para elución: tampón fosfato de pH 7,4; velocidad de elución: 2,5 ml/min. El pico de exclusión (principio activo), la fracción de seguridad, y el pico de proteína se recogieron por separado. La solución de formaldehído se añadió al principio activo para obtener una concentración final de 1 mg/ml almacenado a +5ºC.

[0192] Los resultados de título infeccioso, ELISA, transferencia de puntos Vp2 para BTV1 + BTV8 VP2 (RAS10) y BTV1 + BTV8 VP2/VP5 (RAS32) se muestran en las figuras 17 y 18. La producción de los dos genomas reordenados de BTV inactivado purificados se realizó con éxito. Estos dos genomas reordenados se utilizaron para formular vacunas.

[0193] Habiendo por tanto descrito en detalle las realizaciones preferida de la presente invención, debe entenderse que la invención a la que esta memoria se refiere no está limitada a los detalles particulares expuestos en la descripción anterior, ya que muchas variaciones evidentes de la misma son posibles sin apartarse del alcance de la presente invención.

REFERENCIAS

[0194]

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Claims (6)

1. imagen1

   REIVINDICACIONES

   1. Composición o vacuna que comprende uno o más vectores del virus de la lengua azul (BTV) recombinantes que

   consisten en un polinucleótido heterólogo que codifica el polipéptido VP2 de BTV-8 y una estructura de vector derivada 5 del genoma de BTV-1.
2. 2. Vector de BTV recombinante que consiste en un polinucleótido heterólogo que codifica el polipéptido VP2 de BTV-8 y una estructura de vector derivada del genoma de BTV-1.

   10 3. Procedimiento de producción de un vector de BTV recombinante que comprende transfectar una célula con: a) ARNs que codifican VP2 de BTV-8, y b) ARNs que comprenden los transcritos que codifican VP1, VP3, VP4, VP5, VP7, NS1, NS2, VP6NS4, y NS3/3A de BTV1, y en el que en términos de secuencias codificantes de BTV, éstas son las únicas moléculas de ARN con las que se transfecta la célula.

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3. 4. Composición o vector, según la reivindicación 1 o 2, para usar en la vacunación de un animal, en la que dicha composición o vector se administra a dicho animal al menos una vez.
4. 5. Composición o vector para usar, según la reivindicación 4, en la que además la composición o vector se administra de 20 acuerdo con un régimen de administración de sensibilización-refuerzo.
5. 6. Composición o vector, según la reivindicación 1 o 2, para usar en la inducción de una respuesta inmunogénica o protectora en un animal contra uno o más patógenos, en la que dicha composición o vector se administra a dicho animal al menos una vez.

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6. 7. Composición o vector para usar, según la reivindicación 6, en la que el animal es un animal bovino, ovino, caprino o equino.

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