ES2655868T3 - Método para aumentar la respuesta inmunitaria con un péptido - Google Patents

Método para aumentar la respuesta inmunitaria con un péptido Download PDF

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ES2655868T3
ES2655868T3 ES08751882.5T ES08751882T ES2655868T3 ES 2655868 T3 ES2655868 T3 ES 2655868T3 ES 08751882 T ES08751882 T ES 08751882T ES 2655868 T3 ES2655868 T3 ES 2655868T3
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Junichi Matsuda
Kazuyoshi Kaminaka
Chikateru Nozaki
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Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken
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    • C07K14/4711Alzheimer's disease; Amyloid plaque core protein

Abstract

Un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria mediante la inducción de un anticuerpo específico para el péptido, en donde dicho péptido inmunogénico comprende un péptido ß-amiloide o una porción del mismo que comprende al menos los 28 aminoácidos N-terminales del SEQ ID NO: 34 y que tiene una adición o inserción de al menos una cisteína, en donde la cisteína se inserta entre los residuos de aminoácido 18º y 19º, entre los residuos de aminoácido 25º y 26º, o entre los residuos de aminoácido 28º y 29º contados desde el extremo N terminal de dicho péptido ß amiloide o una porción del mismo.

Description

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DESCRIPCION
Método para aumentar la respuesta inmunitaria con un péptido Campo técnico
La presente invención se refiere a un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria, que comprende un péptido derivado de amiloide p (Ap), una sustancia causante de la enfermedad de Alzheimer, o una porción del mismo con adición o inserción de cisteína en donde se inserta cisteína entre los residuos de aminoácido 18° y 19°, entre los residuos de aminoácido 25° y 26°, o entre los residuos de aminoácido 28° y 29° contados a partir del extremo N terminal de un péptido p amiloide o una porción del mismo. La presente invención también se refiere a un medicamento para prevenir o tratar la enfermedad de Alzheimer que comprende como ingrediente activo dicho péptido. El péptido inmunogénico de la presente invención, puesto que induce suficientemente un aumento de respuesta inmunitaria por sí mismo sin coadyuvante, puede utilizarse de forma segura como medicamento para la prevención o el tratamiento sin una reacción adversa al fármaco asociada con el uso de coadyuvante.
Técnica anterior
La inmunidad es uno de los mecanismos autoprotectores de defensa biológica contra la invasión de organismos extraños, tales como bacterias y virus, e incluye la inmunidad innata asociada con la fagocitosis de leucocitos, etc., y la inmunidad adquirida contra un antígeno/patógeno específico. Una vacuna es un medicamento para inducir con seguridad la inmunidad adquirida contra un patógeno y recientemente se ha utilizado no solo para la protección sino también para el tratamiento.
Una vacuna incluye una vacuna viva, una vacuna inactivada, una vacuna de componentes y similares. Una vacuna viva es altamente inmunogénica y tiene un efecto inmunológico prolongado, pero también tiene el riesgo de que la patogenicidad permanezca o se revierta. Una vacuna inactivada, preparada mediante el tratamiento de virus con formalina, etc. para eliminar la patogenicidad, es más segura que una vacuna viva pero tiene el defecto que la inmunidad resultante no se prolonga.
Una vacuna de componentes comprende como un componente principal una proteína antigénica, preparada extrayendo y purificando una proteína que tiene un efecto vacunal de un patógeno o preparada artificialmente mediante técnicas de ingeniería genética o procedimientos químicos, y es altamente segura sin contaminación de proteínas no deseadas. Recientemente, se ha estudiado en profundidad una vacuna peptídica como una de las vacunas de componentes. Un péptido se refiere a una molécula que consiste en aminoácidos unidos entre sí a través del enlace peptídico. Generalmente, un péptido con 10 o menos residuos de aminoácido se denomina oligopéptido, un péptido con menos de 100 residuos de aminoácido se denomina polipéptido (tanto el oligopéptido como el polipéptido se denominan en la presente memoria "péptido"), y uno con 100 o más residuos de aminoácido se denomina proteína.
Recientemente, se han determinado secuencias de aminoácidos de diversas proteínas y proteínas antigénicas víricas. Un péptido sintetizado artificialmente basándose en dicha secuencia de aminoácidos se utiliza como vacuna, que se denomina vacuna peptídica. La ventaja de utilizar un péptido como vacuna es que se puede obtener un antígeno altamente puro artificialmente sin manipular microorganismos patógenos. Por otro lado, es difícil obtener un efecto inmunológico suficiente ya que los péptidos tienen un peso molecular pequeño y, por lo tanto, no se reconocen como una sustancia extraña en el organismo vivo durante la inmunización. Por lo tanto, un péptido se combina con una proteína grande denominada proteína transportadora para que sea reconocido como una sustancia extraña y/o se administra junto con un coadyuvante (inmunomodulador) para potenciar el efecto inmunológico. Sin embargo, con estos tratamientos, es posible que se produzca un anticuerpo contra una proteína transportadora o que se induzca inesperadamente un efecto secundario adverso de un coadyuvante. Además, aunque se ha demostrado que un coadyuvante es eficaz a nivel de investigación, solo se permite el uso de un gel de hidróxido de aluminio en Japón para uso humano.
Por otro lado, se ha intentado utilizar una vacuna peptídica para prevenir y/o tratar enfermedades tales como la enfermedad de Alzheimer. La enfermedad de Alzheimer es uno de los trastornos de demencia y se asocia con la disminución de la función cognitiva y un cambio en la personalidad como síntomas principales. El número creciente de pacientes junto con el rápido aumento del envejecimiento de la población se ha convertido en un problema social. Las indicaciones patológicas de la enfermedad de Alzheimer incluyen tres características de atrofia y/o caída de las neuronas, formación de placas seniles debido a la agregación y/o deposición de Ap y cambios neurofibrilares debidos a proteínas tau anormales. El comienzo de la enfermedad de Alzheimer se inicia mediante el depósito de péptidos Ap (formación de placa senil) seguido de desnaturalización y caída de neuronas con aumento del depósito de Ap. El depósito de péptidos Ap desencadena el depósito de proteínas tau seguido de cambios neurofibrilares. El péptido Ap se obtiene a partir de un precursor de péptido amiloide (APP) que existe en el cerebro y el cuerpo. En el procedimiento normal, el APP se escinde mediante a-secretasa en el medio y a continuación mediante Y-secretasa
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en el extremo C-terminal para generar un péptido P3 que posteriormente se degrada por completo. En el caso de el depósito de péptido Ap, el APP se escinde mediante p-secretasa y a continuación mediante Y-secretasa en el extremo C terminal para generar péptidos Ap que consisten en 40 o 42 aminoácidos (Ap40, AIÍ42). Entre estos, Ap42, fácilmente agregado y depositado, se secreta extracelularmente para ser insolubilizado, y se agrega y se deposita para formar placas seniles. El aumento de la producción y la acumulación de péptidos Ap42 afectaría a una sinapsis. Además, se reúnen células microgliales y astrocitos alrededor de los péptidos Ap agregados. Se cree que los daños en la sinapsis y la neurita progresan ulteriormente para conducir a la degeneración y la muerte celular de las neuronas, lo que produce demencia.
Hoy en día, la elección como diana de péptidos Ap se considera un método de tratamiento para disminuir los péptidos Ap, incluyendo, por ejemplo, la inhibición de la acción de secretasas que producen péptidos Ap, el uso de una enzima que degrada Ap que puede degradar los péptidos Ap producidos, el uso de una vacuna o un anticuerpo para eliminar los excretados extracelularmente y los agregados, y similares.
El enfoque del tratamiento de la enfermedad de Alzheimer con una vacuna fue referido por primera vez por Schenk et al. (Referencia no relacionada con patentes 1), que comprende administrar péptidos Ap42 junto con un coadyuvante mediante inyección intramuscular para producir de este modo un anticuerpo contra Ap para eliminar los péptidos Ap acumulados. Se realizó un ensayo clínico para la vacuna administrando por vía intramuscular un medicamento que comprende el péptido Ap42 junto con una saponina purificada como coadyuvante. Como resultado, se demostró que se producía un anticuerpo específico para el péptido Ap en pacientes con enfermedad de Alzheimer mediante la administración de la vacuna y que la producción del anticuerpo específico para el péptido Ap podía retrasar el desarrollo de trastornos cognitivos en pacientes con enfermedad de Alzheimer (Referencia no relacionada con patentes 2) y se demostró que las placas seniles desaparecieron (Referencia no relacionada con patentes 3). Sin embargo, dado que se observó meningoencefalitis grave en algunos sujetos, se suspendió el ensayo clínico. Se supone que una de las causas del efecto secundario adverso es el coadyuvante contenido en la vacuna. Por consiguiente, para una vacuna peptídica, se desea fervientemente el desarrollo de una formulación que sea eficaz y segura.
Anteriormente, se han descrito sustancias específicas para amiloides, más específicamente, aptámeros específicos de amiloides, así como su uso para diagnóstico y/o tratamiento de, p.ej., enfermedad de Alzheimer, mientras que se describe que estos aptámeros específicos de amiloide están estabilizados frente a nucleasas (Referencia de Patente 1).
Referencia no relacionada con patentes 1: Schenk D, Barbour R, Dunn W, Gordon G, Grajeda H, Guido T, et al., Immunization with amyloid-beta attenuates Alzheimer disease -disease-like pathology in the PDAPP mouse. Nature 1999; 400: pág. 173-177
Referencia no relacionada con patentes 2: Fox NC, Black RS, Gilman S, Rossor MN, Griffith SG, Jenkins L, et al. Effects of A beta immunization (AN1792) on MRI measures of cerebral volume in Alzheimer disease. Neurology 2005; 64: pág. 1563-1572
Referencia no relacionada con patentes 3: Nicoll JA, Wilkinson D, Holmes C, Steart P, Markham H, Weller RO. Neuropathology of human Alzheimer disease after immunization with amyloid-beta peptide: a case report. Nat Med 2003; 9: pág. 448-452
Referencia de patente 1: Documento DE 199 16 417 A1
Descripción de la invención
(Problema técnico a resolver por la invención)
Como se mencionó anteriormente, existe la preocupación de que las sustancias que se sabe que tienen un efecto coadyuvante pueden ejercer efectos secundarios adversos contrarios al efecto coadyuvante. Por lo tanto, un objeto de la presente invención es proporcionar un nuevo método para potenciar una respuesta inmunitaria utilizando una sustancia que ya se ha confirmado que es segura para el organismo vivo y un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria para utilizar en dicho método.
(Medios para resolver los problemas)
Los autores de la presente invención han investigado seriamente un método para la inmunización y para mejorar la inmunización que es seguro para el organismo vivo, eficaz y económico, y como resultado, han encontrado que la capacidad de inducir un aumento de la respuesta inmunitaria de un péptido de interés puede mejorarse mediante la adición o inserción de un residuo de cisteína, un aminoácido que constituye una proteína natural, para así completar la presente invención.
Por lo tanto, se describe un método para aumentar una propiedad inductora de la respuesta inmunitaria de un péptido derivado de Ap, que es una sustancia causante de la enfermedad de Alzheimer, o una porción de la misma,
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caracterizado por la adición o inserción de cisteína al péptido Ap o una porción del mismo. La presente invención se
caracteriza en las reivindicaciones. Por lo tanto, se relaciona con los siguientes puntos (1) a (11).
(1.) Un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria mediante la inducción de un anticuerpo específico para el péptido, en donde dicho péptido inmunogénico comprende un péptido p-amiloide o una porción del mismo
que comprende al menos los 28 aminoácidos N-terminales del SEQ ID NO: 34 y que tiene una adición o inserción de al menos una cisteína, en donde cisteína se inserta entre los residuos de aminoácido 18° y 19°, entre los residuos de aminoácido 25° y 26°, o entre los residuos de aminoácido 28° y 29° contados desde el extremo N terminal de dicho péptido p-amiloide o una porción del mismo.
(2.) El péptido inmunogénico del punto (1.), que
consiste en una secuencia de aminoácidos seleccionada de los grupos que consisten en el SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 12, SEQ. ID NO: 21, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 32, SEQ ID
NO: 38, SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 42, SEQ ID NO: 46, SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 50, SEQ ID NO: 52,
SEQ ID NO: 54 y SEQ ID NO: 56.
(3.) Un medicamento que comprende el péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2).
(4.) Un medicamento que comprende el péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2) junto con un coadyuvante.
(5.) Una vacuna de ADN que comprende un fragmento génico que codifica la secuencia de aminoácidos del péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2).
(6.) El péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2) para su uso en el aumento de una respuesta inmunitaria. (7.) El péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2) junto con un coadyuvante para uso en el aumento de una respuesta inmunitaria.
(8.) Una vacuna de ADN que comprende un vector que contiene un fragmento génico que codifica una secuencia de aminoácidos del péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2) para su uso en el aumento de una respuesta inmunitaria.
(9.) El uso del péptido inmunogénico de los puntos (1) o (2) para la preparación de un medicamento para el aumento de una respuesta inmunitaria.
(10.) El uso del péptido inmunogénico de (1) o (2) junto con un coadyuvante para la preparación de un medicamento para potenciar una respuesta inmunitaria.
(11.) El uso de la vacuna de ADN de los puntos (5) u (8) para la preparación de un medicamento para el aumento de una respuesta inmunitaria.
Efectos de la invención
La presente invención proporciona un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria y suficiente incluso si se utiliza solo sin un coadyuvante. De acuerdo con la presente invención, meramente mediante la adición o inserción de residuos de cisteína en el péptido p-amiloide o una porción del mismo, en donde la cisteína se inserta entre los residuos de aminoácidos 18° y 19°, entre los residuos aminoácido 25° y 26°, o entre los residuos de aminoácido 28° y 29° contados a partir del extremo N de un péptido p-amiloide o una porción del mismo, se puede aumentar la producción de anticuerpos de un péptido inmunogénico.
Por lo tanto, no existe desventaja asociada con el uso de un coadyuvante para permitir un diseño más fácil de una formulación de fármaco.
El péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria, cuando se administra al organismo vivo, puede inducir rápida y abundantemente un anticuerpo específico para el péptido en la sangre. No se conoce toxicidad de la cisteína, sino que se sabe que la cisteína y sus sustancias relacionadas tienen un efecto antitóxico en el organismo vivo y, por lo tanto, el péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria puede utilizarse en el cuerpo de forma muy segura.
El péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria, cuando se utiliza como una vacuna peptídica, puede ser la vacuna más simple que comprende como ingrediente activo solo el péptido inmunogénico con adición o inserción de cisteína. Dicho péptido inmunogénico con adición o inserción de cisteína se puede preparar mediante síntesis química sin síntesis biológica y, por tanto, con una mayor uniformidad que las vacunas de componentes convencionales. Además, con el menor riesgo de toxicidad, infección y disminución de la calidad debido a la contaminación, se puede proporcionar una vacuna más segura.
Una preparación de péptido que comprende el péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria puede administrarse no solo mediante inyección tal como administración subcutánea o intramuscular sino también mediante administración oral, transnasal o transdérmica, que evitaría el estrés y los accidentes médicos causados por la aguja de la jeringa.
Mejor modo de llevar a cabo la invención
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Para preparar el péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria, se puede añadir o insertar un residuo de cisteína al péptido Ap o en una porción del mismo, en donde se inserta cisteína entre los residuos de aminoácido 18° y 19°, entre el 25° y los residuos de aminoácido 25° y 26°, o entre los residuos de aminoácido 28° y 29° contados a partir del extremo N terminal de un péptido p-amiloide o una porción del mismo, o alternativamente se puede añadir o insertar una secuencia de nucleótidos que codifica cisteína a la secuencia de ADN o ARN del péptido Ap o una porción del mismo para su expresión. Con respecto a la posición de adición o inserción de cisteína al péptido Ap o una porción del mismo, en el caso de la adición, se describe que la cisteína se puede añadir al extremo N o C o ambos del péptido y en el caso de la inserción, la cisteína puede insertarse en cualquier posición en el péptido. Es preferible la adición al extremo C del péptido en donde se pueden añadir 1 o 2 residuos de cisteína. Sin embargo, en la medida en que se pueda obtener el efecto de aumento de la respuesta inmunitaria, la posición de adición e inserción o la cantidad de residuos de cisteína no están especialmente limitadas. En otro aspecto de la presente invención, también se puede añadir un péptido que contenga cisteína, en lugar de cisteína, al extremo C terminal del péptido.
El péptido Ap consta de 42 residuos de aminoácido (Ap42) y tiene la siguiente secuencia de aminoácidos: DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVVIA (SEQ ID NO: 34). Se puede añadir o insertar cisteína (Cys) al péptido Ap o una porción del mismo para proporcionar el péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria. Una porción del péptido Ap incluye aquellas que consisten en una secuencia de aminoácidos que comprende al menos los aminoácidos 1°-28° de la secuencia de aminoácidos de Ap42 antes mencionada. Alternativamente, se puede añadir un péptido que contenga cisteína al péptido Ap o a una porción del mismo. El péptido inmunogénico así obtenido que induce un aumento de la respuesta inmunitaria es eficaz para prevenir o tratar la enfermedad de Alzheimer.
Específicamente, un ejemplo preferido del péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria incluye los siguientes péptidos Ap con adición o inserción de cisteína en donde un residuo de cisteína añadido o insertado está subrayado.
(1) Péptido con adición de 1 molécula en el terminal C:
28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
29AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGC (SEQ ID NO: 8)
30AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAC (SEQ ID NO: 10)
31AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIC (SEQ ID NO: 12)
35AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMC (SEQ ID NO: 21)
36AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVC (SEQ ID NO: 23)
37AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGC (SEQ ID NO: 25)
38AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGC (SEQ ID NO: 27)
39AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVC (SEQ ID NO: 29)
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40AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGWC (SEQ ID NO: 32)
42AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGWIAC (SEQ ID NO: 36)
(2) Péptido con la adición de 2 moléculas en el extremo C-terminal:
28AACysCys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCC (SEQ ID NO: 38)
(3) Péptido con adición de 1 molécula en el extremo N-terminal:
Cys28AA:
CDAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 40)
(4) Péptido con adición de cada 1 molécula en el extremo C-terminal y el extremo N-terminal:
Cys28AACys:
CDAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 42)
(5) Péptido con inserción de 1 molécula:
28AA18Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVCFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 46)
28AA25Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGCSNK (SEQ ID NO: 48)
33AA28Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCGAIIG (SEQ ID NO: 50)
35AA28Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCGAIIGLM (SEQ ID NO: 52)
(6) Péptido con adición de 1 molécula en el extremo C terminal + adición de un péptido exógeno (el péptido exógeno se coloca en el extremo C terminal del residuo de cisteína añadido):
28AACysTTD:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCTTD (SEQ ID NO: 54)
28AACysEIFEFTTD:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCEIFEFTTD (SEQ ID NO: 56)
Entre los péptidos Ap con adición o inserción de cisteína, el péptido Ap de 28 aminoácidos con adición de cisteína (28AACys: SeC ID No: 6), el péptido Ap de 29 aminoácidos con adición de cisteína (29AACys: SEC ID NO: 8), el péptido Ap de 31 aminoácidos con adición de cisteína (31AACys: SEC ID NO: 12), el péptido Ap de 35 aminoácidos con adición de cisteína (35AACys: SEC ID NO: 21), el péptido Ap de 36 aminoácidos con adición de cisteína (36AACys: SEQ ID NO: 23), el péptido Ap de 39 aminoácidos con la adición de cisteína (39AACys: SEQ ID NO: 29), el péptido Ap de 40 aminoácidos con adición de cisteína (40AACys: SEQ ID NO: 32), el péptido Ap de 42 aminoácidos con la adición de cisteína (42AACys: SEQ ID NO: 36), el péptido Ap de 28 aminoácidos con la adición de 2 cisteínas en el extremo C-terminal (28AACysCys: SEQ ID NO: 38) y El péptido Ap de 28 aminoácidos con la
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inserción de cisteína entre los residuos de aminoácido 18°-19° (28AA18Cys: SEQ ID NO: 46) anteriormente mencionados podrían inducir particularmente el aumento de la respuesta inmunitaria y, por lo tanto, se pueden utilizar para prevenir o tratar la enfermedad de Alzheimer de manera eficaz.
De acuerdo con la presente invención, se puede preparar un péptido que induce un aumento de la respuesta inmunitaria insertando cisteína entre los residuos de aminoácido 18° y 19°, entre los residuos de aminoácido 25° y 26°, o entre los residuos de aminoácido 28° y 29° contados a partir del extremo N de un péptido p-amiloide o una porción del mismo.
Que un péptido obtenido después de la adición o inserción de cisteína ejerce un efecto de aumento de la respuesta inmunitaria puede corroborarse mediante la inmunización de ratones con el péptido utilizando las técnicas convencionales y determinando un título de anticuerpos IgG anti-Ap en sangre. Por lo tanto, también se describe un método para preparar un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria caracterizado por la adición de una o más cisteínas al extremo N-terminal, al extremo C-terminal o tanto al extremo N-terminal como al extremo C-terminal del péptido Ap o una porción del mismo o la inserción de una o más cisteínas al péptido, inmunizando un animal con el péptido resultante, y a continuación determinando un título de anticuerpos IgG anti-Ap en la sangre del animal.
Una preparación de péptido que contiene el péptido inmunogénico de la presente invención que tiene una propiedad inductora del aumento de la respuesta inmunitaria puede administrarse por cualquier vía de administración tal como subcutánea, transdérmica, intramuscular, oral o transnasal.
Si bien el péptido inmunogénico de la presente invención que induce un aumento de la respuesta inmunitaria puede proporcionar suficiente inmunización incluso si se administra solo sin un coadyuvante, puede proporcionar una inmunización adicional suficiente si se combina con un coadyuvante. Por lo tanto, será posible seleccionar varios tipos de coadyuvantes, tales como p.ej. un coadyuvante que otorgue importancia a un efecto de aumento de la inmunización o un coadyuvante que otorgue importancia a la seguridad.
Además, un vector que comprende un fragmento génico que codifica cada uno de los péptidos inmunogénicos de la presente invención enumerados anteriormente que induce un aumento de la respuesta inmunitaria obtenido por adición o inserción de cisteína al péptido Ap o una porción del mismo puede utilizarse como vacuna de ADN para prevenir y tratar eficazmente la enfermedad de Alzheimer. Una secuencia de nucleótidos que codifica cisteína incluye, p.ej. tgt pero puede ser cualquier secuencia en la medida en que codifique cisteína. A continuación se describe un fragmento génico que codifica la secuencia de aminoácidos del péptido Ap (Ap42) que consiste en los 42 residuos de aminoácido mencionados anteriormente (SEQ ID NO: 34). Sin embargo, la secuencia de nucleótidos descrita a continuación representa una secuencia génica típica del péptido Ap, pero puede emplearse cualquier secuencia génica en la medida en que codifique la misma secuencia de aminoácidos.
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac
tcatggtggg cggtgttgtc atagcg (SEQ ID NO: 35)
Un ejemplo de un fragmento génico que codifica cada uno de los péptidos inmunogénicos de la presente invención enumerados anteriormente que induce un aumento de la respuesta inmunitaria obtenido mediante la adición o inserción de cisteína al péptido Ap o una porción del mismo incluye los descritos a continuación. Sin embargo, las secuencias de nucleótidos descritas a continuación representan una secuencia génica típica que codifica cada uno de los péptidos mencionados anteriormente, pero puede emplearse cualquier secuencia génica en la medida en que codifique la misma secuencia de aminoácidos.
Fragmento génico que codifica 26AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcatgt (SEQ ID NO: 2)
Fragmento génico que codifica 27AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa ctgt (SEQ ID NO: 4)
5
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20
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30
Fragmento génico que codifica 28AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaatgt (SEQ ID NO: 7) Fragmento génico que codifica 29AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggttgt (SEQ ID NO: 9) Fragmento génico que codifica 30AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca tgt (SEQ ID NO: 11)
Fragmento génico que codifica 31AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atctgt
(SEQ ID NO: 13)
Fragmento génico que codifica 32AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcatttgt
(SEQ ID NO: 15)
Fragmento génico que codifica 33AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggat gt (SEQ ID NO: 17)
Fragmento génico que codifica 34AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac tctqt (SEQ ID NO: 19)
Fragmento genético que codifica 35AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac tcatqtgt (SEQ ID NO: 22)
Fragmento génico que codifica 36AACys:
5
10
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30
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac tcatggtgtq t (SEQ ID NO: 24)
Fragmento génico que codifica 37AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac tcatggtggg ctqt (SEQ ID NO: 26)
Fragmento génico que codifica 38AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac tcatggtggg cggttgt (SEQ ID NO: 28)
Codificación del fragmento gen 39AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac tcatggtggg cggtgtttgt (SEQ ID NO: 30)
Fragmento génico que codifica 40AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac
tcatggtggg cggtgttgtc tgt (SEQ ID NO: 33)
Fragmento génico que codifica 42AACys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt
ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaaggtgca atcattggac
tcatggtggg cggtgttgtc atagcqtgt (SEQ ID NO: 37)
Fragmento génico que codifica 28AACysCys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaatqttqt (SEQ ID NO: 39) Fragmento génico que codifica Cys28AA:
tqtgatgcag aattccgaca tgactcagga tatgaagttc atcatcaaaa attggtgttc tttgcagaag atgtgggttc aaacaaa (SEQ ID NO: 41) Fragmento génico que codifica Cys28AACys:
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tgtqatqcag aattccgaca tgactcaggatat gaagttc atcatcaaaa attggtgttc tttgcagaag atgtgggttc aaacaaatgt (SEQ ID NO: 43)
Fragmento génico que codifica 28AA18Cys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt qgtqtqtttc tttgcagaag atgtgggttc aaacaaa (SEQ ID NO: 47)
Fragmento génico que codifica 28AA25Cys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttqttcaaa caaa (SEQ ID NO: 49)
Fragmento génico que codifica 33AA28Cys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaatgtggt gcaatcattg ga (SEQ ID NO: 51)
Fragmento génico que codifica 35AA28Cys:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaatgtggt gcaatcattg gactcatg (SEQ ID NO: 53)
Fragmento génico que codifica 28AACysTTD:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaatgtact actgac (SEQ ID NO: 55)
Fragmento génico que codifica 28AACysEIFEFTTD:
gatgcagaat tccgacatga ctcaggatat gaagttcatc atcaaaaatt ggtgttcttt gcagaagatg tgggttcaaa caaatgtgaa atcttcgaat tcactactga c (SEQ ID NO: 57)
La presente invención se explica con más detalle por medio de los siguientes ejemplos, pero no se debe considerar que se limita a los mismos.
Ejemplo 1
Comparación de la capacidad de inducción de anticuerpos entre péptidos AB con y sin adición de cisteína
(1) Preparación de péptidos AB con adición de cisteína 28AA:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 5)
28AACys:
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40
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50
55
60
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
35AA:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLM (SEQ ID NO: 20)
35AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMC (SEQ ID NO: 21)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml. A 100 pL de la solución de partida se le añadieron 900 pL de solución salina a 0,5 mg/ml de la concentración y la mezcla se dispensó en un tubo de 1,5 mL (inmunógeno) y se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 16 ratones se dividieron en 4 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró 28AA; al Grupo 2 se le administró 28AACys; al Grupo 3 se le administró 35AA; y al Grupo 4 se le administró 35 AACys.
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 pL/ratón de un inmunógeno a cada ratón utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613s) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 pg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la 2a inmunización, se recogieron de 50 a 150 pl de sangre de la vena de la cola. Adicionalmente, el Día 7 de la tercera inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
El péptido Ap (secuencia de 1-40 aminoácidos: DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVV (SEQ ID NO: 31) sintetizado por Hokkaido System Science Co., Ltd.), diluido a 10 pg/ml con tampón de carbonato 0,1 M, pH 9,6, se añadió a tiras de 8 pocillos (Nalge Nunc KK, Immobilizer Amino) a 100 pL/pocillo y se dejaron incubando a 4°C durante la noche para su inmovilización. Al día siguiente, cada pocillo se lavó 3 veces con 300 pL de PBS que contenía Tween20 (PBST) al 0,05%, se añadió etanolamina 10 mM a 300 pL/pocillo y se dejó incubando a temperatura ambiente durante 1 hora.
Después de 1 hora, la etanolamina 10 mM se eliminó por completo y se añadió una muestra diluida con PBST de 50 a 10000 veces a cada pocillo a 100 pL/pocillo. Después de la reacción a temperatura ambiente durante 1 hora, el suero diluido añadido se descartó y cada pocillo se lavó 3 veces con 300 pL/pocillo de PBST. Después del lavado, la solución de lavado en el pocillo se retiró por completo, se añadió un anticuerpo de cabra anti-IgG de ratón marcado con HRP (American Curlex, A131PS) diluido con la solución para la dilución de muestra a 2000 pL/pocillo seguido de reacción a temperatura ambiente durante 1 hora. Después de la reacción, la solución para la dilución del anticuerpo marcado se descartó y cada pocillo se lavó dos veces con 300 pL/pocillo de PBST y dos veces con la cantidad equivalente de agua destilada, a la cual se le añadieron 100 pL/pocillo de una solución de sustrato cromogénico TMB+ (Dako Inc.) seguido de reacción a temperatura ambiente durante 30 min. bajo sombreado. A continuación, se añadieron 100 pL/pocillo de ácido sulfúrico 1 N para detener el desarrollo y se midió la densidad óptica a 450 nm (valor DO450).
Se utilizó un anticuerpo monoclonal comercialmente disponible para Ap (CHEMI-CON Corporation, MAB1560) como suero patrón. El suero patrón se diluyó con PBST a 0,156, 0,3125, 0,625, 1,25, 2,5, 5, 10 ng/ml para preparar patrones para la medición del título del anticuerpo. Se determinó un anticuerpo IgG anti-Ap de cada muestra de
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suero murino y simultáneamente se midió el valor de DO450 de cada muestra diluida. Se calculó un título de anticuerpos IgG anti-Ap de cada espécimen de suero murino utilizando la unidad de los patrones resultantes y la curva patrón del valor DO450.
La Tabla 1 muestra el título de anticuerpos anti-Ap calculado del suero murino en cada uno de los grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 1, en comparación con la inmunización con fragmentos de péptido Ap sin adición de cisteína (28AA, 35AA), la inmunización con fragmentos de péptido Ap con adición de cisteína (28AACys, 35AACys) proporcionó un título de anticuerpos más elevado contra Ap. Se observó un aumento del título de anticuerpos para el 28AA con la adición de cisteína de aproximadamente 39 veces y para el 35AA con la adición de cisteína de aproximadamente 26 veces.
Tabla 1
Grupo
Núm. de Animal Título de anticuerpos (ng/mL)
Día 7 desde la 3a administración
Día 7 desde la 2a administración
28AA
1 216,6 35,1
2
149,7 21,0
3
2531,0 5075,0
4
79,9 10851,0
Media
744,30 3995,53
28AACys
1 20265,0 74096,0
2
2337,0 30542,0
3
69198,0 389239,0
4
12372,0 137192,0
Media
26043,00 157767,25
35AA
1 78,7 34,4
2
435,2 3584,0
3
236,2 1745,0
4
409,5 23739,0
Media
289,90 7275,60
35AACys
1 3231,0 382533,0
2
3240,0 37390,0
3
3237,0 88795,0
4
3237,0 257920,0
Media
3236,25 191659,50
Ejemplo 2
Comparación de la capacidad inductora de anticuerpos entre el péptido AP con la adición de cisteína y el péptido AP conectado a un portador (con/sin coadyuvante)
(1) Preparación del péptido con adición de cisteína y péptido Ap conectado a un portador 28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
28AA-KLH:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK-C-KLH
Los péptidos anteriores se sintetizaron (KITAYAMA LABES Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener
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una solución de partida de 1 mg/ml que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso. La KLH (hemocianina de lapa californiana) es una proteína portadora de 60 kDa. Se utilizó Cys en el 28AA-KLH como un conector para combinar el péptido 28AA con KLH y no se pretendía que mejorara el efecto de la respuesta inmunitaria. La combinación de una proteína portadora con el péptido inmunogénico utilizando Cys es un método de rutina para la inmunización con péptidos.
(2) Coadyuvante
Se utilizaron como coadyuvantes coadyuvante completo de Freund (en lo sucesivo denominado "FCA"), coadyuvante incompleto de Freund (en lo sucesivo denominado "FICA"), (GERBU, Núm. 1841, Núm. 1842), coadyuvante MM de Gerbu (GERBU, Núm. 3001.0106) y Alhydrogel '85' al 2% (Brenntag) que estaban disponibles comercialmente.
(3) Ratones que van a recibir la administración
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (9 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un entorno SPF.
(4) Grupos de inmunización
Los 25 ratones se dividieron en 5 grupos que comprendían cada uno 5 ratones: al Grupo 1 se le administró 28AACys; al Grupo 2 se le administró 28AA-KLH; al Grupo 3 se le administró 28AA-KLH + FCA/FICA; al Grupo 4 se le administró 28AA-KLH + coadyuvante Gerbu MM; y al Grupo 5 se le administró 28AA-KLH + Alhydrogel '85' al 2%.
(5) Dosis y preparación de la muestra para su administración
Una dosis primaria de péptido Ap fue de 100 |jg por animal, y la segunda y tercera dosis fueron de 50 |jg por animal. A saber, para preparar la dosis primaria para el grupo al que se administró 28 AACys, se mezclaron 0,5 mL de 28 AACys y 0,5 mL de solución salina, y para preparar la segunda y tercera dosis, se mezclaron 0,25 mL de 28 AACys y 0,75 mL de solución salina. Para preparar la dosis primaria para el grupo al que se administró 28AA-KLH, se mezclaron 0,5 mL de 28AA-KLH y 0,5 mL de solución salina, y para preparar la segunda y tercera dosis, se mezclaron 0,25 mL de 28AA-KLH y 0,75 mL de solución salina. Para preparar la dosis primaria para el grupo al que se administró 28AA-KLH + FCA/FiCa, se mezclaron 0,5 mL de 28AA-KLH y 0,5 mL de FcA para su emulsión, y para preparar la segunda y tercera dosis, se mezclaron 0,25 mL de 28AA-KLH, 0,25 mL de solución salina y 0,5 mL de FICA para su emulsión. Para preparar la dosis primaria para el grupo al que se administró 28AA-KLH + coadyuvante MM de Gerbu, se mezclaron 0,5 mL de 28AA-KLH, 0,4 mL de solución salina y 0,1 mL de coadyuvante MM de Gerbu, y para preparar la segunda y tercera dosis, se mezclaron 0,25 mL de 28AA-KLH, 0,65 mL de solución salina y 0,1 mL de coadyuvante MM de Gerbu. Para preparar la primera dosis para el grupo al que se administró 28AA- KLH + Alhydrogel '85' al 2%, se mezclaron 0,5 mL de 28AA-KLH y 0,5 mL de Alhydrogel '85' al 2%, y para preparar la segunda y tercera dosis, se mezclaron 0,25 mL de 28AA-KLH, 0,25 mL de solución salina y 0,5 mL de Alhydrogel '85' al 2%.
(6) Inmunización y calendario
Se administraron 200 jL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 jg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(7) Muestra de sangre
El día 7 de la tercera inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(8) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 2 muestra el título de anticuerpos anti-Ap calculado del suero murino en cada uno de los grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 2, el fragmento del péptido Ap con la adición de una KLH portadora junto con el coadyuvante completo/incompleto de Freund proporcionó el título de anticuerpos más alto contra Ap. El segundo título de anticuerpo más alto lo proporcionó el fragmento de péptido Ap con adición de cisteína, que fue significativamente más elevado que aquellos en los que como coadyuvante se utilizaron coadyuvante MM de Gerbu (GERBU) o
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Alhydrogel '85' al 2% o del fragmento de péptido Ap con adición de una KLH portadora.
Tabla 2
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 5 Media
1. 28AACys
1714,4 5949,1 10122,3 716,6 2685,0 4237,48
2. 28AA-KLH
47,8 33,9 430,4 42,7 42,2 119,40
3. 28AA-KLH + FCA/FICA
12162,5 11484,1 12132,3 12161,9 2329,9 10054,14
4. 28AA-KLH + GERBU
417,5 324,7 2846,0 3910,9 1774,3 1854,68
5. 28AA-KLH + ALHYDROGEL '85' al 2%
51,4 37,7 35,0 33,3 159,6 63,40
Ejemplo 3
Comparación de la capacidad de inducción de anticuerpos entre péptidos AB con adición de cisteína que tiene una secuencia de 26-40 aminoácidos de longitud
(1) Preparación de péptidos Ap con adición de cisteína
26AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSC (SEQ ID NO: 1)
27AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNC (SEQ ID NO: 3)
28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
29AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGC (SEQ ID NO: 8)
30AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAC (SEQ ID NO: 10)
31AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIC (SEQ ID NO: 12)
32AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIC (SEQ ID NO: 14)
33AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGC (SEQ ID NO: 16)
34AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLC (SEQ ID NO: 18)
35AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMC (SEQ ID NO: 21)
36AACys:
5
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35
40
45
50
55
60
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVC (SEQ ID NO: 23)
37AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGC (SEQ ID NO: 25)
38AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGC (SEQ ID NO: 27)
39AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVC (SEQ ID NO: 29)
40AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGWC (SEQ ID NO: 32)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml. A 100 pL de la solución de partida se le añadieron 900 pL de solución salina a 0,5 mg/ml de la concentración y la mezcla se dispensó a un tubo de 1,5 mL (inmunógeno) y se almacenó a - 80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 60 ratones se dividieron en 15 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró
26AACys; al Grupo 2 se le administró 27AACys; al Grupo 3 se le administró 28AACys; al Grupo 4 se le administró
29AACys; al Grupo 5 se le administró 30AACys; al Grupo 6 se le administró 31AACys; al Grupo 7 se le administró
32AACys; al Grupo 8 se le administró 33AACys; al Grupo 9 se le administró 34AACys; al Grupo 10 se le administró
35 AACys; al Grupo 11 se le administró 36AACys; al Grupo 12 se le administró 37AACys; al Grupo 13 se le administró 38 AACys; al Grupo 14 se le administró 39 AACys; y al Grupo 15 se le administró 40 AACys.
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 pL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613s) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 pg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la tercera inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 3 muestra el título de anticuerpos anti-Ap calculado del suero murino en cada uno de los grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 3, se observó que, entre los grupos a los que se habían administrado péptidos Ap con adición de cisteína que tienen 26 a 40 residuos de aminoácido de longitud, aquellos con 28 o más residuos de aminoácido de longitud tenían la capacidad inductora de anticuerpos contra Ap. En particular, 28AACys, 29AACys, 31AACys, 35AACys, 36AACys, 39AACys y 40AACys mostraron el mayor título de anticuerpos.
5
10
15
20
25
30
35
Tabla 3
Título de anticuerpos (ng/mL)
Grupo Núm. de Animal 1 2 3 4 Media
1.
26AACys 39 19 21 19 24,5
2.
27AACys 15 19 24 19 19,0
3.
28AACys 8120 2191 115618 86736 51916,1
4.
29AACys 143754 5545 74235 114322 84464,2
5.
30AACys 10705 72 7335 1414 4881,5
6.
31AACys 110312 377757 5809 51904 136445,4
7.
32AACys 27 18 213 19 69,4
8.
33AACys 44 28 35 27 33,4
9.
34AACys 24 25 74 18 35,3
10.
35AACys 382533 37390 88795 257920 191659,5
11.
36AACys 36535 16261 44439 13262 27624,4
12.
37AACys 228 3003 2763 1061 1761,1
13.
38AACys 4936 952 478 4371 2684,3
14.
39AACys 447512 196147 85137 13445 185560,2
15.
40AACys 22998 15192 204464 26604 67041,8
Ejemplo 4
Comparación de la capacidad de inducción de anticuerpos entre péptidos AB sin adición de cisteína, con la adición de 1 molécula de cisteína y con la adición de 2 moléculas de cisteína
(1) Preparación de péptidos Ap sin y con adición de cisteína.
28AA:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 5)
28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
28AACysCys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCC (SEQ ID NO: 38)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml, que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 12 ratones se dividieron en 3 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró 28AA; al Grupo 2 se le administró 28AACys; y al Grupo 3 se le administró 28AACysCys.
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 pL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de
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1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 |jg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la cuarta inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 4 muestra el título calculado de anticuerpos anti-Ap del suero murino en cada uno de los Grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 4, se encontró casi la misma capacidad inductora de anticuerpos en los grupos a los que se habían administrado 28AACys o 28AACysCys.
Tabla 4
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 Media
28AA
69 54 67 42 58,0
28AACys
211 365 19578 127 5070,2
28AACysCys
139 19262 451 2928 5695,3
Ejemplo 5
Comparación de la capacidad de inducción de anticuerpos entre los péptidos AP con la adición de cisteína en el extremo C-terminal, el extremo N-terminal y ambos extremos terminales
(1) Preparación de péptidos Ap con adición de cisteína
28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
Cys28AA:
CDAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 40)
Cys28AACys:
CDAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 42)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml, que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 12 ratones se dividieron en 3 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró 28 AACys; al Grupo 2 se le administró Cys28AA; y al Grupo 3 se le administró Cys28AACys.
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 jL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 jg). Los
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40
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55
ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la cuarta inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl) y se sacrificaron los ratones. La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 5 muestra el título calculado de anticuerpos anti-Ap del suero murino en cada uno de los grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 5, independientemente de la posición de la adición de Cys, se encontró la capacidad inductora de anticuerpos en todos los grupos.
Tabla 5
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 Media
28AACys
290461 94 139927 192986 155867,0
Cys28AA
7708 423 15328 108 5891,8
Cys28AACys
772 49849 1537 48 13051,6
Ejemplo 6
Comparación de la capacidad de inducción de anticuerpos entre secuencias de péptidos AP con inserción de cisteína
(1) Preparación de péptidos Ap con inserción de cisteína 28AA7Cys:
DAEFRHDCSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 44)
28AA10Cys:
DAEFRHDSGYCEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 45)
28AA18Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVCFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 46)
28AA25Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGCSNK (SEQ ID NO: 48)
33AA28Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCGAIIG (SEQ ID NO: 50)
35AA28Cys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCGAIIGLM (SEQ ID NO: 52)
28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Sigma-Aldrich Japan K.K.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml, que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
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35
40
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50
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 28 ratones se dividieron en 7 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró 28AA7Cys; al Grupo 2 se le administró 28AA10Cys; al Grupo 3 se le administró 28AA18Cys; al Grupo 4 se le administró 28AA25Cys; al Grupo 5 se le administró 33AA28Cys; al Grupo 6 se le administró 35AA28Cys; y al Grupo 7 se le administró 28 AACys.
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 pL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 pg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la cuarta inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 6 muestra el título calculado de anticuerpos anti-Ap del suero murino en cada uno de los Grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 6, la capacidad inductora de anticuerpos se encontró en los grupos a los que se habían administrado 28AA18Cys, 28AA25Cys, 33AA28Cys, 35AA28Cys o 28AACys. En particular, se encontró una mayor capacidad inductora de anticuerpos para el grupo al que se administró 28AA18Cys, el péptido Ap de 28 aminoácidos con inserción de cisteína entre el residuo de aminoácidos 18 y 19, en comparación con el grupo al que se administró 28AACys, el péptido Ap de 28 aminoácidos con la adición de cisteína en el extremo C-terminal.
Tabla 6
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 Media
28AA7Cys
21 24 17 30 23,0
28AA10Cys
26 19 18 8 17,7
28AA18Cys
2163676 92083 54037 137801 611899,2
28AA25Cys
14972 4721 4483 3267 6860,8
33AA28Cys
245 1932 29 14214 4105,0
35AA28Cys
1753 17265 2103 6469 6897,5
28AACys
20883 10503 38907 5491 18946,0
Ejemplo 7
Evaluación de la capacidad inductora de anticuerpos del péptido Ap con la adición de cisteína ¡unto con la adición de la secuencia de aminoácidos exógenos (no derivada del péptido Ap)
(1) Preparación de péptidos Ap con y sin adición de cisteína
28AA:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 5)
19
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
28AACysTTD:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCTTD (SEQ ID NO: 54)
28AACysEIFEFTTD:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKCEIFEFTTD (SEQ ID NO: 56)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml, que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 16 ratones se dividieron en 4 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró 28AA; al Grupo 2 se le administró 28AACys; al Grupo 3 se le administró 28AACysTTD; y al Grupo 4 se le administró 28AACysTTD.
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 pL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 pg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la cuarta inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 7 muestra el título calculado de anticuerpos anti-Ap del suero murino en cada uno de los Grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 7, la capacidad inductora de anticuerpos se encontró en los grupos a los que se habían administrado 28AACys, 28AACysTTD o 28AACysEIFEFTTD. Por lo tanto, se descubrió que la capacidad inductora de anticuerpos de la secuencia Ap con la adición de Cys permanecía incluso si una secuencia peptídica exógena adicional se unía a dicha secuencia Ap.
Tabla 7
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 Media
28AA
69 54 67 42 58,0
28AACys
211 365 19578 127 5070,2
28AACysTTD
46 106899 4316 1855 28279,3
28AACysEIFEFTTD
8196 28782 2162 45257 21099,2
Ejemplo 8
Administración nasal, intradérmica y oral del péptido Ap con adición de cisteína
(1) Preparación del péptido Ap con adición de cisteína
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
35AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMC (SEQ ID NO: 21)
El péptido anterior se sintetizó (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyó con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml, que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 9 ratones se dividieron en 3 grupos que comprendían cada uno 3 ratones: Grupo 1 administración por vía nasal; Grupo 2 administración por vía intradérmica; y Grupo 3 administración por vía oral.
(4) Inmunización y calendario Inmunización primaria
Común para cada uno de los Grupos, a 200 pL de la solución de partida se les añadieron 1800 pL de solución salina a 0,5 mg/mL de concentración y se administraron 200 pL de la mezcla a los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 pg). Las inmunizaciones segunda, tercera y cuarta (final) de los ratones de cada grupo se realizaron a intervalos semanales después de la inmunización primaria como se describe a continuación.
Grupo 1: Administración nasal
Se administraron 20 pL de la solución de partida a cada uno de los ratones a través de la cavidad nasal utilizando Pipetman P-20 (Gilson) (dosis por ratón: 100 pg).
Grupo 2: Administración intradérmica
El día antes de la administración, se afeitó el dorso de los ratones. Bajo anestesia de isoflurano, la zona afeitada se desinfectó con alcohol del 70% y se secó antes de la administración y a continuación se administraron 20 pL de la solución de partida gota a gota a los ratones utilizando Pipetman P-20 (Gilson) (dosis por ratón: 100 pg).
Grupo 3: Administración oral
Para la segunda y tercera inmunizaciones, a 200 pL de la solución de partida se les añadieron 2300 pL de solución salina a 0,2 mg/mL de concentración y se administraron 500 pL/ratón de la mezcla al estómago de los ratones utilizando una sonda para uso oral (Natsume Seisakusho CO LTD., KN-348, para ratones) adosada a una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) (dosis por ratón: 200 pg). Para la cuarta inmunización (final), a 100 pL de la solución de partida se les añadieron 2400 pL de solución salina a 0,2 mg/mL de concentración y se administraron 500 pL/ratón de la mezcla al estómago de los ratones utilizando una sonda para uso oral adosada a una jeringa de tuberculina de 1 mL (dosis por ratón: 100 pg).
(5) Muestra de sangre
El Día 6 de la inmunización primaria, el Día 6 de la 2a inmunización y el Día 6 de la 3a inmunización, se recogieron de 50 a 150 pl de sangre de la vena de la cola. Adicionalmente, el Día 7 de la cuarta inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 8 muestra el título de anticuerpos anti-Ap calculado del suero murino en cada uno de los Grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 8, se descubrió que el fragmento de péptido Ap con la adición de cisteína mostró la capacidad de inducir
5
10
15
20
25
30
35
40
anticuerpos contra Ap independientemente de la administración nasal, percutánea u oral.
Tabla 8
Grupo
Núm. de Animal Título de anticuerpos (ng/mL)
Día 6 desde la administración primaria
Día 6 desde la 2a administración Día 6 desde la 3a administración Día 6 desde la 4a administración
Nasal
1 57,0 2564,0 19183,0 54669,0
2
554,0 5707,0 20814,0 36128,0
3
461,8 11773,0 10497,0 11895,0
Media
357,60 6681,33 16831,33 34230,67
Intradérmica
1 28,0 82,0 110,8 64,9
2
13,6 1682,0 1746,0 1148,0
3
293,2 2413,0 3809,0 11372,0
Media
111,60 1392,33 1888,60 4194,97
Oral
1 59,7 4412,0 4746,0 7301,0
2
90,1 1526,0 1522,0 3396,0
3
18,4 1960,0 1260,0 1752,0
Media
56,07 2632,67 2509,33 4149,67
Ejemplo 9
Comparación de la capacidad de inducción de anticuerpos en la administración intradérmica entre péptidos AB con y sin adición de cisteína
(1) Preparación de péptidos Ap con y sin adición de cisteína
35AA:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLM (SEQ ID NO: 20)
35AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGANGLMC (SEQ ID NO: 21)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml, que se almacenó a -80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (7 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 10 ratones se dividieron en 2 grupos que comprendían cada uno 5 ratones: al Grupo 1 se le administró el péptido Ap de 35 aminoácidos con la adición de cisteína; y al Grupo 2 se le administró el péptido Ap de 35 aminoácidos sin adición de cisteína.
(4) Inmunización y calendario
La inmunización primaria se realizó como en el Ejemplo 8. Las inmunizaciones segunda, tercera y cuarta (final) se realizaron a intervalos semanales después de la inmunización primaria como se describe a continuación. El día antes de la administración, se afeitó el dorso de los ratones. Bajo anestesia con isoflurano, la zona afeitada se desinfectó con alcohol del 70% antes de la administración, la aplicación/desprendimiento de una cinta quirúrgica (Nichiban Co., Ltd.) se repitió 10 veces para eliminar la capa corneal de la epidermis y a continuación se administraron gota a gota 20 pL de la solución de partida a los ratones utilizando Pipetman P-20 (Gilson) (dosis por
22
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
ratón: 100 |jg).
(5) Muestra de sangre
El día 7 de la cuarta inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 9 muestra el título calculado de anticuerpos anti-Ap del suero murino en cada uno de los Grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 9, se descubrió que el fragmento de péptido Ap con la adición de cisteína mostró una capacidad de inducción de anticuerpo 10 veces mayor o más en comparación con el péptido Ap sin adición de cisteína.
Tabla 9
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 5 Media
35AACys
130292 21945 13948 83671 co CM co O ■sf CO CN CO
35AA
17579 2585 1843 58 5516 5516,2
Ejemplo 10
Comparación del péptido Ap con/sin adición de cisteína y con y sin adición de coadyuvante
(1) Preparación de péptidos Ap con/sin adición de cisteína
28AA:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNK (SEQ ID NO: 5)
28AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKC (SEQ ID NO: 6)
Los péptidos anteriores se sintetizaron (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyeron con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml. A 100 jL de la solución de partida se les añadieron 900 jL de solución salina a 0,5 mg/ml de la concentración y la mezcla se dispensó a un tubo de 1,5 mL (inmunógeno) y se almacenó a - 80°C o menos hasta su uso.
(2) Coadyuvante
Como coadyuvante, se utilizaron las emulsiones Quil-A (Accurate Chemical & Scientific Corporation) y MPL+TDM disponibles en el mercado (Corixa). Quil-A se disolvió en solución salina para obtener 5 mg/ml de una solución de partida. Además, se disolvió 1 vial de emulsión MPL+TDM en 1 mL de solución salina para obtener una solución de partida, que se almacenó a 4°C hasta su uso.
(3) Ratones inmunizados
Se adquirieron ratones C57BL/6 macho (9 semanas de edad, SPF) de Japan Charles River Co., Ltd. y se criaron en un entorno SPF.
(4) Grupos de inmunización
Los 24 ratones se dividieron en 6 grupos que comprendían cada uno 4 ratones: al Grupo 1 se le administró 28AA; al Grupo 2 se le administró 28AA + Quil-A; al Grupo 3 se le administró 28AA + emulsión MPL+TDM; al Grupo 4 se le administró 28AACys; al Grupo 5 se le administró 28AACys + Quil-A; y al Grupo 6 se le administró 28AACys + emulsión MPL+TDM.
(5) Dosis y preparación de muestra para administración
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
Una dosis de péptido Ap fue de 100 |jg por animal y se administraron 0,2 mL de 500 |jg/ml de muestra para la administración. Con respecto al grupo al que se había administrado 28AA y el grupo al que se había administrado 28AACys, se mezclaron 20 jL de cada solución de partida y 180 jL de solución salina y la mezcla se almacenó a -80°C hasta la administración. Con respecto al grupo al que se había administrado 28AA + Quil-A y el grupo al que se había administrado 28AACys + Quil-A, se mezclaron 20 jL de cada solución de partida, 10 jL de la solución de partida de 5 mg/mL de Quil-A (50 jg por animal) y 170 jL de solución salina y la mezcla se almacenó a -80°C hasta la administración. Con respecto al grupo al que se había administrado 28AA + emulsión MPL+TDM y el grupo al que se había administrado 28AACys + emulsión MPL+TDM, se mezclaron 90 jL de cada solución de partida y 660 jL de solución salina para preparar la solución de partida para la administración, que se almacenó a -80°C. Se añadieron 0,5 mL de la solución de partida de emulsión MPL+TDM inmediatamente antes de la administración para obtener la suspensión (para 4,5 individuos).
(6) Inmunización y calendario
Se administraron 200 jL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 jg). Los ratones se inmunizaron 3 veces a intervalos de 2 semanas.
(7) Muestra de sangre
El día 7 de la tercera inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(8) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente. La Tabla 10 muestra el título calculado de anticuerpos anti-Ap del suero murino en cada uno de los Grupos de inmunización. Como se muestra en la Tabla 10, se encontró que la inducción de anticuerpos contra Ap apenas se podía observar para 28AA junto con Quil-A, pero se observó para 28AA junto con la emulsión MPL+TDM. En el caso de 28AACys, se puede observar un alto título de anticuerpos con Quil-A o con la emulsión MPL+TDM. La inducción de anticuerpos de 28AACys solo fue similar a la de 28AA junto con la emulsión MPL+TDM.
Tabla 10
Grupo
Título de anticuerpos (ng/mL)
Núm. de Animal
1 2 3 4 Media
1.28AA
37 72 37 27 43,2
2.28AA + Quil-A
84 62 288 78 124,2
3. 28AA + Emulsión MPL+TDM
20602 26442 14814 8832 17422,6
4.28AACys
8847 9458 10446 48224 19243,7
5.28AACys + Quil-A
277061 809713 504433 55412 411654,9
6.28AACys + Emulsión MPL+TDM
455340 177449 CN CO 454037 299572,1
Ejemplo 11
Evaluación farmacológica del péptido Ap con adición de cisteína utilizando ratones modelo de la enfermedad de Alzheimer
(1) Preparación del péptido Ap con adición de cisteína 35AACys:
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGANGLMC (SEQ ID NO: 21)
El péptido anterior se sintetizó (Hokkaido System Science Co., Ltd.) y se diluyó con solución salina para obtener una solución de partida de 5 mg/ml. A 100 jL de la solución de partida se le añadieron 900 jL de solución salina a 0,5 mg/ml de la concentración y la mezcla se dispensó a un tubo de 1,5 mL (inmunógeno) y se almacenó a
5
10
15
20
25
30
35
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45
50
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60
-80°C o menos hasta su uso.
(2) Ratones inmunizados
Los ratones transgénicos (TG2576, hembra, 11 semanas de edad, SPF), que mostraron un estado patológico similar al Alzheimer con acumulación de Ap humano en el cerebro a través de la expresión de una proteína precursora Ap humana, se adquirieron de Taconic Farms, Inc. y se criaron en ambiente SPF.
(3) Grupos de inmunización
Los 6 ratones se dividieron en 2 grupos que comprendían cada uno 3 ratones: al Grupo 1 se le administró 35AACys; y al Grupo 2 no se le administró nada (control).
(4) Inmunización y calendario
Se administraron 200 pL/ratón de un inmunógeno a cada uno de los ratones utilizando una jeringa de tuberculina de 1 mL (Terumo, SS-01T2613S) por vía intradérmica o subcutánea en el abdomen (dosis por ratón: 100 pg). Los ratones se inmunizaron 4 veces a intervalos de 2 semanas a partir de las 18 semanas de edad y a continuación a intervalos mensuales con un total de 11 inmunizaciones.
(5) Muestra de sangre
El día 13 de la inmunización final, se recogió sangre de la aorta abdominal de todos los ratones bajo anestesia de pentobarbital sódico (Kyoritsu Seiyaku Corporation, Somnopentyl). La muestra de sangre se transfirió a Microtainer (Becton Dickinson Co., Ltd), se produjo una coagulación adecuada a temperatura ambiente y a continuación se centrifugó a 5.000 rpm durante 10 minutos. Cada uno de los sueros separados se dispensó a dos tubos de 0,5 mL y se almacenó a -80°C o menos hasta la medición.
(6) Extracción de Ap humano depositado en el cerebro
Después de la toma de muestras de sangre, el cerebro se aisló mediante craneotomía. Una parte del lóbulo frontal se seccionó y se pesó. A esto se le añadió TBS que contenía un inhibidor de proteinasa (Roche, Complete Protease Inhibitor Cocktail Set, 1 comprimido/50 mL de solución) (Tris 20 mM, NaCl 137 mM, pH 7,6; en lo sucesivo denominado "CP/TBS") a 150 mg (peso húmedo de cerebro)/mL y la mezcla se homogeneizó con un homogeneizador elaborado de teflón (marca registrada). A continuación, la mezcla se centrifugó a 12.000 g a 4°C durante 10 min. El sobrenadante se descartó y el precipitado resultante se resuspendió en Triton X-100 al 1%/CP/TBS (en la misma cantidad que la de cP/TBS anterior) y la suspensión se sometió a agitación vorticial durante 1 minuto. La suspensión se centrifugó a 12.000 g a 4°C durante 10 min. El sobrenadante se descartó y el precipitado resultante se resuspendió en SDS al 2%/CP/TBS (en la misma cantidad que la de CP/TBS anterior) y la suspensión se sometió a agitación vorticial durante 1 minuto. La suspensión se centrifugó adicionalmente a 12.000 g a 4°C durante 10 min. El sobrenadante resultante se usó como una fracción de muestra que contenía el Ap humano depositado en el cerebro.
(7) Medición de anticuerpos IgG anti-Ap
La medición del anticuerpo IgG anti-Ap se realizó como se describió anteriormente.
(8) Medición de Ap humano depositado en el cerebro
La medición se realizó utilizando el kit de ELISA WAKO (WAKO, número de código 296 - 64401) para p-amiloide (142) humano. A una placa de microtitulación inmovilizada con un anticuerpo humano contra Ap (BAN50) se le añadió una muestra que contenía Ap humano diluido 50 veces a 100 pL/pocillo. Después de la reacción durante la noche a 4°C, cada una de las muestras diluidas añadidas se descartó y la placa de microtitulación se lavó 5 veces con 350 pl/pocillo de la solución de lavado en el kit. Se añadió una solución de anticuerpo marcado con HRP (BC05) (100 pL) a cada uno de los pocillos seguido de una reacción de 1 hora a 4°C. Después de la reacción, la solución de anticuerpo marcado se descartó y la placa de microtitulación se lavó 5 veces con 350 pl/pocillo de la solución de lavado. Se añadió una solución de TMB (agente cromogénico, 100 pL) a cada uno de los pocillos, seguido de reacción durante 30 minutos a temperatura ambiente en la oscuridad. A continuación, se añadieron 100 pL/pocillo de la solución de parada para inactivar la reacción enzimática y se midió la densidad óptica a 450 nm (valor DO450). Se realizó una curva patrón utilizando la solución patrón adjunta (p-amiloide humano (1-42), 20 pmoles/L). En la medición de las muestras, dicha solución patrón se diluyó con la solución de dilución patrón a 0,156, 0,3125, 0,625, 1,25, 2,5, 5, 10 pmoles/ml. El valor DO450 de cada una de las soluciones patrón diluidas se midió simultáneamente con la medición de cada una de las muestras. Se calculó una concentración de Ap humano en cada una de las muestras utilizando la unidad resultante de los patrones y la curva patrón del valor DO450.

Claims (11)

  1. 5
    10
    15
    20
    25
    30
    35
    REIVINDICACIONES
    1. Un péptido inmunogénico que induce un aumento de la respuesta inmunitaria mediante la inducción de un anticuerpo específico para el péptido, en donde dicho péptido inmunogénico comprende un péptido p-amiloide o una porción del mismo que comprende al menos los 28 aminoácidos N-terminales del SEQ ID NO: 34 y que tiene una adición o inserción de al menos una cisteína, en donde la cisteína se inserta entre los residuos de aminoácido 18° y 19°, entre los residuos de aminoácido 25° y 26°, o entre los residuos de aminoácido 28° y 29° contados desde el extremo N terminal de dicho péptido p amiloide o una porción del mismo.
  2. 2. El péptido inmunogénico de la reivindicación 1, que consiste en una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en el SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 21, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 32, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 42, SEQ ID NO: 46, SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 50, SEQ ID NO: 52, SEQ ID NO: 54 y SEQ ID NO: 56.
  3. 3. Un medicamento que comprende el péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2.
  4. 4. Un medicamento que comprende el péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2 junto con un coadyuvante.
  5. 5. Una vacuna de ADN que comprende un fragmento génico que codifica la secuencia de aminoácidos del péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2.
  6. 6. El péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2 para utilizar en el aumento de una respuesta inmunitaria.
  7. 7. El péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2 junto con un coadyuvante para uso en el aumento de una respuesta inmunitaria.
  8. 8. Una vacuna de ADN que comprende un vector que contiene un fragmento génico que codifica una secuencia de aminoácidos del péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2 para su uso en el aumento de una respuesta inmunitaria.
  9. 9. El uso del péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2 para la preparación de un medicamento para el aumento de una respuesta inmunitaria.
  10. 10. El uso del péptido inmunogénico de la reivindicación 1 o 2 junto con un coadyuvante para la preparación de un medicamento para el aumento de una respuesta inmunitaria.
  11. 11. El uso de la vacuna de ADN de la reivindicación 5 u 8 para la preparación de un medicamento para el aumento de una respuesta inmunitaria.
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