ES2550335T3 - Extracto de semillas de Fraxinus excelsior y aplicaciones terapéuticas para el mismo - Google Patents

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Abstract

Extracto de semillas de Fraxinus excelsior que comprende: desde aproximadamente el 1% hasta aproximadamente el 15% de nuzhenida en peso, desde aproximadamente el 1% hasta aproximadamente el 17% de GI3 en peso, desde aproximadamente el 0,5% hasta aproximadamente el 1% de éster metílico de oleósido en peso, desde aproximadamente el 0,03% hasta aproximadamente el 0,12% de excélsido B en peso, desde aproximadamente el 0,1% hasta aproximadamente el 1,7% de GI5 en peso, y desde aproximadamente el 0,08% hasta aproximadamente el 0,7% de salidrósido en peso.

Description

DESCRIPCIÓN
Extracto de semillas de Fraxinus excelsior y aplicaciones terapéuticas para el mismo.
Antecedentes de la invención 5
La diabetes mellitus tipo 2 (DM-2) es una enfermedad global común caracterizada por deficiencia de insulina e insensibilidad a la insulina. La DM-2 se considera una enfermedad grave que crea un problema sanitario asociado con una alta morbimortalidad, y es la sexta causa principal de muerte en los Estados Unidos [Miniño et al, 2007, National Vital Statistical Report, 55]. Se espera que el número de pacientes diabéticos puede aumentar hasta 300 10 millones en todo el mundo para el año 2025 [King et al, 1998, Diabetes Care, 21, 1414-31]. En los Estados unidos, el 7 por ciento de la población (20,8 millones de niños y adultos) se ven afectados por diabetes [French, 2007, Inside, 12, 46-7] y se estima que costó en los Estados Unidos 132 mil millones de dólares en 2002 en gastos médicos y pérdida de productividad [Hogan et al, 2003, Diabetes Care, 26, 917-32]. Los métodos de tratamiento para DM-2 incluyen el uso de insulina, análogos de insulina o insulina modificada, potenciar la liberación de insulina y la acción 15 de insulina, inhibir la producción de glucosa hepática e inhibir la captación de glucosa [Moller, 2001, Nature, 414, 821-27]. Además de estos agentes terapéuticos, también se usan en todo el mundo medicinas tradicionales para el tratamiento de DM-2. Se han usado más de 1.200 especies de organismos de manera etnofarmacológica o experimental para tratar síntomas de DM-2 [Marles y Farnsworth, 1996, Protocol J. Botanical Med., 1, 85-137].
20
Generalmente se reconoce que la prevalencia en rápido aumento de la obesidad representa un grave problema para la sanidad pública en los Estados Unidos. Según datos de la National Health and Nutrition Examination Survey (NHANES, encuesta nacional de examen de salud y nutrición) de 1999-2000, casi dos tercios (el 64,5%) de la población adulta de los Estados Unidos tienen sobrepeso en comparación con el 55,9% según se detalla por la investigación NHANES III realizada entre 1988 y 1994. La prevalencia de la obesidad también ha aumentado 25 drásticamente desde el 22,9% hasta el 30,5% a lo largo del mismo periodo. El creciente número de personas obesas corren probablemente un alto riesgo de desarrollar una variedad de enfermedades relacionadas con la obesidad que incluyen diabetes [Flegal et al, 2002, JAMA. 288, 1723-1727 y Kuczmarski et al 1994, JAMA. 272, 205-221].
Fraxinus excelsior L., una planta de la familia de las oleáceas, se denomina comúnmente “fresno común” o “fresno 30 europeo” en los países de Europa y Asia templada [Gilman y Watson, 1993, Fact Sheet ST-264, Noviembre]. Esta planta también está ampliamente distribuida en todo Tafilalet, la región sudoriental de Marruecos, y allí se conoce como “l’ssane l’ousfour”. La región Tafilalet se ha considerado entre las regiones de Marruecos en las que el conocimiento sobre fitoterapia está más desarrollado [Eddouks et al, 2002, J. Etnopharmacol. 82, 97-103]. Recientes estudios han indicado que F. excelsior (FE) presenta actividades antibacterianas y antioxidantes. Un extracto en 35 metanol de FE mostró una potente actividad antioxidante con CR50 de 1,35 x 10-2 en el ensayo cualitativo de ,-difenil--picrilhidrazilo (DPPH). Los extractos en n-hexano y diclorometano de FE también fueron activos contra ocho especies de bacterias patógenas Gram-positivas y Gram-negativas sometidas a prueba incluyendo Staphylococcus aureus resistente a meticilina con valores de concentración inhibitoria mínima (CIM) dentro de 1,25 x 10-1 mg/mL [Middleton et al, 2005, Indian J. Pharma. Res., 2, 81-6]. Se notificó el efecto hipotensivo de FE sobre ratas tanto 40 normotensas como espontáneamente hipertensas. La administración oral diaria del extracto acuoso de semillas de FE produjo una disminución significativa en la tensión arterial sistólica y potenció significativamente la micción en ambos tipos de ratas [Eddouks et al, 2005, J. Etnopharmacol., 99, 49-54]. Los extractos acuosos de semillas de FE presentaron una potente actividad hipoglicémica y anti-hiperglicémica en ratas normales e inducidas por estreptozotocina (STZ) sin afectar a las concentraciones de insulina en plasma basales [Maghrani et al, 2004, J. 45 Etnopharmacol., 91, 309-16]. El efecto similar a florizina de la inhibición de la reabsorción de la glucosa renal puede ser uno de los mecanismos para el efecto hipoglicémico de FE [Eddouks et al, 2004, J. Etnopharmacol., 94, 149-54].
Se informó que FE contiene principalmente cumarinas, secoiridoides y feniletanoides. [Kostova y Iossifova, 2007, Fitoterapia 78, 85-106]. Los secoiridoides encontrados en FE se derivan de oleósido. Estos tipos de secoiridoides 50 sólo existen en plantas de la familia de las oleáceas [Egan et al, 2004, Biochem. Sys. Ecol., 32, 1069-71].
Explicación de la invención
La presente invención se refiere a secoiridoides novedosos que se han aislado del extracto de semillas de Fraxinus 55 excelsior (nombre común, fresno). Los dos compuestos se identificaron como (1) éster metílico del ácido (2S, 3E, 4S) 3-etiliden-2-[(6-O--D-glucopiranosil--D-glucopiranosil)oxi]-3,4-dihidro-5-(metoxicarbonil)2H-piran-4-acético, denominado excélsido A, que tiene la fórmula química C22H32O16 (figura 1-1); y (2) éster etílico del ácido (2S, 3E, 4S) 3-etiliden-2-[(6-O--D-glucopiranosil--D-glucopiranosil)oxi]-3,4-dihidro-5-(metoxicarbonil)2-(4-hidroxifenil)2H-piran-4-acético, denominado excélsido B, que tiene la fórmula C30H40O17 (figura 1-2). Ambos compuestos son secoiridoides 60 de tipo oleósido caracterizados por una funcionalidad 8, 9-olefínica exocíclica.
La presente invención también se refiere a un procedimiento de obtención de una composición derivada de FE aislada. La composición puede obtenerse mediante un único procedimiento de extracción y aislamiento. Se trituran las semillas para dar gránulos con un tamaño de partícula en un intervalo de desde 0,1 mm hasta 30 mm para 65 aumentar el área superficial para que entre en contacto con el disolvente y para aumentar la eficacia de extracción.
En una realización del procedimiento, la temperatura de extracción está en un intervalo de desde 20ºC hasta 100ºC. En una realización preferida, la temperatura de extracción está en un intervalo de desde 50ºC hasta 70ºC. La razón de material vegetal con respecto a la mezcla disolvente usada en el procedimiento de extracción varía desde 1:1 hasta 1:10 en una base de gramos con respecto a mililitros. En una realización del procedimiento, la razón es de desde 1:3 hasta 1:8. El periodo de incubación durante el cual el material vegetal está en contacto con la mezcla 5 disolvente es un periodo de tiempo de desde aproximadamente 2 h hasta aproximadamente 24 h. Los disolventes de extracción pueden ser agua, una mezcla de agua-alcohol (desde el 1% hasta el 99% de alcohol en agua) y alcohol. Los alcoholes preferidos son etanol (EtOH) y metanol (MeOH). Tras incubarse el material vegetal y el disolvente, se separa el disolvente del material vegetal residual y se concentra la composición de extracción hasta que la composición de extracción tiene un componente sólido que generalmente contiene aproximadamente el 1% - 35% 10 de secoiridoides de F. excelsior. Los secoiridoides incluyen dos nuevos glucósidos de tipo oleósido, excélsido A y excélsido B, secoiridoides diméricos, nuzhenida (3) (figura 1-3), GI 3 (4) (figura 1-4) y GI 5 (5) (figura 1-5), así como ligstrósido, éster dimetílico de oleósido (6) (figura 1-6) y 11-éster metílico de oleósido. Otros componentes incluyen compuestos fenólicos, salidrósido, cumarinas y flavonoides. Tras completarse la formación del extracto, se aíslan los secoiridoides. Los secoiridoides pueden aislarse a partir del extracto de FE mediante un procedimiento 15 cromatográfico.
Los secoiridoides se aíslan a partir de un extracto de FE en polvo seco. Se disuelve el polvo en un alcohol y se extraen los secoiridoides mediante alcohol del polvo. Entonces se evapora el alcohol y se carga el residuo restante que incluye secoiridoides en una columna de cromatografía cargada con resina C-18 de fase inversa. Se eluyen 20 varias fracciones que contienen diferentes compuestos con una serie de sistema de agua y el 10% de MeOH/el 90% de agua y MeOH. Se comparan las fracciones mediante análisis por cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC) y se combinan los eluatos que tienen patrones de HPLC similares. Se separan las fracciones combinadas sobre cromatografía en columna de gel de sílice de fase normal y se eluyen con cloroformo (CHCl3), mezcla de CHCl3-metanol que comienza desde el 90%, el 80% de CHCl3 hasta el 100% de MeOH para dar varias 25 subfracciones. Se comparan las subfracciones mediante HPLC y se combinan las fracciones que contienen excélsido A y excélsido B, respectivamente. Se purifican adicionalmente las fracciones combinadas mediante una combinación de cromatografía en columna sobre resinas C-18, MCI GEL CHP-20P y/o Sephadex LH-20 para proporcionar excélsido A y excélsido B puros.
30
Las nuevas estructuras químicas de excélsido A y excélsido B se esclarecen usando métodos espectroscópicos incluyendo resonancia magnética nuclear (RMN), ultravioleta (UV), infrarrojos (IR) y espectroscopía de masas (MS), y también se determinan propiedades físicas. Las estructuras químicas conocidas de los secoiridoides se identifican mediante comparación directa de los espectros de RMN con los de la bibliografía. Los espectros de IR se registraron en un espectrofotómetro Perkin-Elmer 1600 FTIR usando placas de KBr. Los espectros de RMN se tomaron en un 35 instrumento Varian INOVA 400 con metanol deuterado (CD3OD) como disolvente. Todos los espectros de correlación en 2D se obtuvieron usando secuencias de pulsos en gradiente convencionales de software para RMN de Varian. Los espectros de correlación incluyen COSY (espectroscopía de correlación), TCOSY (espectroscopía de correlación total), HMQC (coherencia cuántica múltiple heteronuclear), HMBC (correlación heteronuclear de enlaces múltiples) y ROESY (espectroscopía de potenciación de Overhauser de marco rotatorio). El análisis por HPLC se 40 realizó usando un sistema de HPLC modelo Agilent 1100 equipado con una bomba cuaternaria, un inyector automático, un desgasificador en línea de cuatro canales, un detector por red de fotodiodos y software Agilent Chemstation. Se determinaron los pesos moleculares usando CL/EM en modo ESI/APCI en un espectrómetro de masas por trampa de iones Finnigan LCQ. Se adquirieron espectros UV en un espectrofotómetro UV-visible Schimadzu, UV-1700. 45
La presente invención también se refiere al efecto inhibidor de dos secoiridoides diméricos, GI5 (5) y nuzhenida (3), sobre una célula 3T3-L1 no diferenciada. El componente principal de aumento de peso es la deposición de tejido adiposo en el cuerpo mediante un procedimiento de adipogénesis. La adipogénesis se caracteriza por un aumento en el número y el tamaño de células adiposas. La inhibición de la adipogénesis inhibiendo la síntesis de células 50 adiposas para reducir el número y el tamaño de células adiposas conduce al control del peso corporal.
La presente invención se refiere a la activación de PPAR-alfa mediante Fraxinus excelsior (FE) y los secoiridoides aislados a partir de FE, éster dimetílico de oleósido (6), excélsido A (1) y GI3 (4). Los receptores activados por proliferador de peroxisoma (PPAR) son receptores nucleares que controlan muchos procesos celulares y 55 metabólicos. PPAR-alfa se expresa predominantemente en el hígado en el que tiene un papel crucial en el control de la oxidación de ácidos grasos [Reddy y Hashimoto, 2001, Annu Rev Nutr., 21, 193-230]. La inducción de oxidación de ácidos grasos mediante activación de PPAR-alfa mejora los perfiles lipídicos en plasma. En una variedad de modelos de ratón, agonistas de PPAR-alfa reducen los triglicéridos en plasma, reducen la adiposidad y mejoran la esteatosis hepática y muscular, mejorando por consiguiente la sensibilidad a la insulina y reduciendo la glucosa en 60 sangre [Guerre-Millo et al, 2000, J. Biol. Chem., 275, 16638-42 y Kim et al, 2003, Diabetes, 52, 1770-8].
La presente invención también se refiere a la composición anterior, que es útil para tratar síndromes metabólicos para reducir la glucosa en sangre en un sujeto con DM-2, para ayudar a perder peso y para equilibrar el nivel de insulina para prevenir la hiperinsulinemia, un síntoma de la resistencia a la insulina en un paciente con DM-2. 65 Cuando se alimenta a ratones C57BL/6J macho con una dieta con alto contenido en grasa, desarrollan obesidad,
hiperglicemia e hiperinsulinemia. La administración de una cantidad eficaz de FE puede reducir significativamente el nivel de glucosa en ratones, reducir su peso corporal y grasa corporal y disminuir los niveles de insulina en plasma.
En un ensayo clínico con seres humanos, a 16 voluntarios sanos en ayunas se les administraron 50 gramos de glucosa para inducir glicemia posprandial y se les administró FE o un placebo (salvado de trigo). El grupo con 5 extracto de FE redujo la concentración de glucosa en plasma posprandial incremental en comparación con el placebo. Redujo estadísticamente (P = 0,02) el área bajo la curva de glucosa en sangre (AUC) glicémica. El extracto de semillas de FE también indujo una secreción significativa (P = 0,002) de insulina a los 90 min. tras la administración de glucosa.
10
Breve descripción de los dibujos
Rasgos, ventajas y características adicionales de la presente invención resultarán evidentes para un experto habitual en la técnica en vista de la siguiente discusión detallada de realizaciones preferidas de la presente invención, realizada con referencia a los dibujos adjuntos, en los que: 15
Las figuras 1-1 a 1-6 ilustran la estructura molecular de excélsido A, excélsido B, nuzhenida, GI3, GI5 y éster dimetílico de oleósido, respectivamente;
la figura 2 ilustra la actividad de captación de glucosa (cpm) de compuestos GI5 (5) y nuzhenida (3) para 1 sin tratar, 20 2, insulina, 3 insulina y MeOH, 4 nuzhenida a concentraciones del 0,004%, el 0,02%, el 0,05% y el 0,1%; 5 GI5 a concentraciones del 0,004%, el 0,02%, el 0,05% y el 0,1%;
la figura 3 ilustra la activación relativa de receptor de fusión GAL4/PPAR mediante extracto de semillas de Fraxinus excelsior L. y 100 M de fenofibrato (control positivo) en comparación con el efecto de DMSO (condiciones de 25 control) (los valores son la media ± DE (n=4). *P<0,05, **P<0,01; ***P<0,001. Prueba de la t de Student);
la figura 4 ilustra resultados de glucosa en sangre en ayunas (mg/dL) de ratones tratados con bajo contenido en grasa (LF), alto contenido en grasa (HF) y Fraxinus (HF + extracto de FE) tras un tratamiento de 16 semanas;
30
la figura 5 ilustra los resultados de peso corporal promedio (g) de ratones tratados con bajo contenido en grasa (LF), alto contenido en grasa (HF) y Fraxinus (HF + extracto de FE) a diferentes semanas de tratamiento;
la figura 6 ilustra el potencial de activación de PPAR relativo (%) en líneas celulares indicadoras usando concentraciones que oscilaban entre 10-5 M -10-9 M para el activador de PPAR sintético selectivo WY 14,643 así 35 como los compuestos aislados a una concentración de 10-4 M y una disolución acuosa 1:10 de extracto de semillas de FE, con etiqueta de compuesto: FE19028 (nuzhenida, 3), FE20015 (GI3, 4), FE20031 (éster dimetílico de oleósido, 6), FE21008 (excélsido A, 1) y FE21023 (GI5, 5);
la figura 7 ilustra el peso (g) de la grasa omental de ratones individuales de los grupos LF (n = 10), HF (n = 10) y 40 extracto de semillas de FE, respectivamente;
la figura 8 ilustra el peso (g) de la grasa retroperitoneal de ratones individuales de los grupos LF (n = 10), HF (n = 10) y extracto de semillas de FE, respectivamente;
45
la figura 9 ilustra los niveles de insulina en plasma en ayunas (ng/mL) de ratones individuales de los grupos LF (n = 10), HF (n = 10) y extracto de semillas de FE, respectivamente;
las figuras 10A y 10B ilustran respectivamente una comparación (mmol/L frente al tiempo) entre extracto de semillas de Fraxinus Excelsior L (FE) (1,0 g) y placebo de salvado de trigo correspondiente (1,0 g) sobre la glicemia en 50 voluntarios sanos a los que se les administraron 50 g de glucosa, para (A) glicemia incremental en puntos de tiempo individuales, y (B) área bajo la curva de glucosa en sangre (AUC), siendo los valores la media ± EEM. *P = 0,02, prueba de la t de Student para datos emparejados (n = 16);
las figuras 11A y 11B ilustran respectivamente una comparación (mU/L frente al tiempo) entre extracto de semillas 55 de Fraxinus Excelsior L (1,0 g) y placebo de salvado de trigo correspondiente (1,0 g) sobre los niveles de insulina en voluntarios sanos a los que se les administraron 50 g de glucosa, para (A) insulinemia incremental en puntos de tiempo individuales, y (B) el área bajo la curva (AUC) insulinémica, siendo los valores la media ± EEM. **P = 0,002, prueba de la t de Student (n = 16).
60
Descripción detallada de la invención
Con referencia a los dibujos y a los siguientes ejemplos, ahora se describirá una realización preferida de la presente invención para un extracto de semillas de Fraxinus excelsior.
65
Ejemplo 1
Extracción de secoiridoides a partir de Fraxinus excelsior con agua. Se secó un total de 2,5 kg de las semillas de F. excelsior en aire y después se trituraron para dar polvo grueso con un tamaño de partícula de aproximadamente 1-2 mm. Se empapó el polvo grueso en agua en un instrumento de percolación a 80-90ºC durante 5 horas y se drenó 5 el extracto en agua del instrumento de percolación. Se repitió tres veces el procedimiento de extracción. Se combinaron entre sí todos los extractos en agua y se concentraron en un evaporador a vacío rotatorio. Tras evaporarse el agua, se obtuvo un total de 550 gramos de extracto en polvo seco. El análisis por HPLC indica que este extracto en polvo contenía dos secoiridoides principales, el 11,4% (peso/peso) de nuzhenida y el 6,2% de GI3. La composición también contenía el 0,19% de 11-éster metílico de oleósido, el 0,41% de excélsido B, el 0,63% de 10 GI5, el 0,2% de salidrósido, junto con algunos secoiridoides minoritarios incluyendo ligstrósido, éster dimetílico de oleósido y excélsido A.
Ejemplo 2
15
Extracción de secoiridoides a partir de Fraxinus excelsior con agua, agua-EtOH y EtOH. Se prepararon 5 muestras y cada muestra contenía 5 gramos de semillas de F. excelsior. Se molió cada muestra para dar polvo y se sometió a extracción con disolvente con 200 mL de agua, el 25% de EtOH/el 75% de agua, el 50% de EtOH/el 50% de agua, el 75% de EtOH/ el 25% de agua y EtOH, respectivamente. Tras la extracción durante 24 horas a temperatura ambiente (22-24ºC), se evaporaron los disolventes y se analizaron los sólidos residuales mediante HPLC. El 20 contenido en secoiridoides y los salidrósidos se indican en la tabla 1.
Tabla 1. Contenido en secoiridoides principales y salidrósidos usando diferentes disolventes (resultados expresados como porcentaje en peso).
25
Compuestos
EtOH 75% de EtOH 50% de EtOH 25% de EtOH agua
Nuzhenida
9,05 15,04 15,43 14,10 1,50
GI3
9,20 14,77 17,06 9,18 1,14
Éster dimetílico de oleósido
0,57 0,91 0,78 0,74 0,96
Excélsido B
0,06 0,09 0,10 0,12 0,03
GI5
0,91 1,45 1,70 0,83 0,10
Salidrósido
0,08 0,17 0,16 0,18 0,74
Ejemplo 3
Aislamiento de secoiridoides a partir de F. excelsior. Se añadieron 3,5 litros de metanol y se mezclaron con 500 gramos de extracto en polvo obtenido a partir del procedimiento mostrado en el ejemplo 1, durante 3 horas a 30 temperatura ambiente. Se separó la disolución en metanol del polvo mediante un procedimiento de filtración. Se repitió el mismo procedimiento una vez y se combinaron los dos extractos en metanol y se concentraron a presión reducida para proporcionar un total de 54 gramos de extracto en metanol seco. Volvió a disolverse en agua el extracto en metanol y se filtró para eliminar las sustancias no solubles en agua. Se sometió adicionalmente el filtrado a separación cromatográfica en columna de fase inversa sobre resina C-18 lavada con agua y sistema de disolvente 35 en gradiente de MeOH-agua de desde el 10% de MeOH en agua hasta el 100% de MeOH. Se recogió un total de 7 fracciones. Se evaporó cada fracción eluida de columna a vacío y se combinó mediante análisis por HPLC. Se cargaron las fracciones 2, 3 y 7 en una columna cromatográfica cargada con resina de gel de sílice y se eluyó con sistema de cloroformo-metanol comenzando a partir de CHCl3, el 10% de MeOH/CHCl3, el 20% de MeOH/CHCl3 hasta el 100% de MeOH. Se compararon las fracciones recogidas a partir de la columna de gel de sílice mediante 40 análisis por HPLC y se sometió repetidamente cada eluato separado a cromatografías en columna sobre resinas MCI GEL CHP-20P y/o Sephadex LH-20 y se eluyeron con sistema de agua-metanol hasta que se obtuvo un único compuesto puro. Se descubrieron dos nuevos compuestos, excélsido A y excélsido B, junto con varios compuestos conocidos, nuzhenida, GI3, GI5, ligstrósido, éster dimetílico de oleósido, 11-éster metílico de oleósido y salidrósido. Se esclarecieron todas las estructuras químicas mediante métodos espectroscópicos. 45
Ejemplo 4
Elucidación de la estructura de excélsido A y excélsido B: Se obtuvo excélsido A (1) como polvo amorfo. Se determinó su fórmula molecular, C22H32O16, basándose en su EM y se confirmó mediante datos de 1H y 13C-RMN 50 (tabla 2). El espectro UV mostró una absorción típica a 232 (sh) nm derivada de un sistema de enol-éter iridoídico conjugado con un grupo carbonilo. El espectro IR mostró grupos funcionales hidroxilo a máx 3401, éster a 1734, 1717 y éster ,-insaturado a 1626 cm-1. El análisis detallado de sus espectros de correlación 1H, 13C-RMN y 2D indicó que excélsido A llevaba un resto glucósido de secoiridoide de tipo oleósido que estaba soportado por las señales de protones a H 7,51 (s, H-3), 5,93 (s, H-1), 6,08 (qd, J = 7,2, 0,8 Hz, H-8), 1,72 (d, J = 7,6 Hz, H3-10) y 55 4,80 (d, J = 8,0 Hz, H-1’), las correspondientes señales de carbono 13- a C 155,2 (C-3), 94,8 (C-1), 124,7 (C-8), 13,6 (C-10) y 100,5 (C-1’). Dos señales metoxilo a H 3,62 (OCH3, C 51,9) y 3,70 (OCH3, C 52,3) mostraron correlación con C-7 (C 173,7) y C-11 (C 168,6) en el espectro de gHMBC, respectivamente, indicando que
excélsido A tenía una unidad de 7,11-éster dimetílico de oleósido [Boros y Stermitz, 1991, J. Nat. Prod., 54, 1173-246]. Aparte de esto, la aparición de señales de RMN adicionales debidas a un resto -glucopiranosilo (C 100,6, 77,6, 77,8, 71,6, 75,3 y 70,1) sugirió que A era un 7,11-éster dimetílico de oleósido que llevaba otro glucosilo. Se determinó que la posición del glucosilo estaba unida a C-6’ del resto oleósido ya que había un desplazamiento campo abajo de 7,5 ppm de la señal en C-6’ y desplazamientos campo arriba de 0,5 y 2,6 ppm en C-3’ y C-5’, 5 respectivamente, en comparación con excélsido A con la misma posición de la señal de 7,11-dimetilo oleósido. Esta deducción se respaldó adicionalmente mediante el espectro de correlación gHMBC, en el que se observaron picos cruzados entre H-1”’ a H 4,35 y C-6’ a C 70,1 ppm, así como entre H-6’ (H 4,15 y 3,84 ppm) y C-1”’ (C 105,3 ppm). Se colocó un grupo metilo en una configuración E en un enlace 8,9-olefínico y estaba respaldado por el espectro ROESY en el que se observó una fuerte correlación entre H-10 (H 1,72) y H-5 (H 3,96). En el mismo espectro, una 10 correlación entre H-1 (H 5,93) y H-6 (2,51) sugirió que el glucosilo en C-1 adoptó una configuración . Por tanto, se determinó que la estructura de excélsido A era el éster metílico del ácido (2S,3E,4S)3-etiliden-2-[(6-O--D-glucopiranosil--D-glucopiranosil)oxi]-3,4-dihidro-5-(metoxicarbonil)2H-piran-4-acético, denominado excélsido A. Las asignaciones de datos de 1H y 13C-RMN completas se facilitan en la tabla 2.
15
Se aisló excélsido B (2) como un polvo amorfo incoloro. Se determinó que su fórmula molecular era C30H40O17 mediante EM y se confirmó mediante datos de RMN. En el espectro UV de 2, además de la absorción típica a 230 nm de un enol-éter iridoídico conjugado con un grupo carbonilo, las absorciones adicionales a 275 y 283 nm indicaron la existencia de un fenol. IR mostró hidroxilo a νmáx 3400, éster ,-insaturado a 1701, 1636, y anillo aromático a 1518 cm-1. Los espectros de 1H-RMN y 13C de excélsido B presentaron las señales típicas debidas a un 20 resto oleósido: la señal olefínica a H 7,50 (s, H-3), C 155,2 (C-3), un acetal alílico a H 5,94 (s, H-1), C 94,7 (C-1), una señal anomérica de glucosilo a H 4,82 (d, H-1’), C 100,3 (C-1’), un protón olefínico de grupo etilideno a H 6,05 (d, H-8), C 124,8 (C-8) y metilo del etilideno a H 1,61 (d, H3-10), C 13,6 (C-10). Las señales de feniletanoide observadas así como un sistema de espín AA’BB’ en el anillo aromático a H 6,71 (2H, dd, J = 6,8, 2,8 Hz) y H 7,02 (2H, dd, J = 6,8, 2,8 Hz) sugirieron un patrón sustituido en para del feniletanoide. La correlación de 1H-13C de largo 25 alcance encontrada en gHMBC entre H-1” a H 4,26 y C-7 a C 67,0 ppm sugirió que el feniletanol estaba unido en la posición C-7, lo que relacionaba la estructura de excélsido B a ligstrósido, un éster de oleósido metílico de para-hidroxifeniletanol [Takenaka et al, 2000, Phytochemistry, 55, 275-84]. De manera similar al excélsido A, se sugirió que la unidad de -glucopiranosilo adicional aparente en excélsido B estaba unida en C-6’. Esto se confirmó mediante desplazamiento químico campo abajo de 7,3 ppm en la señal de C-13 en C-6’ de excélsido B y 30 desplazamientos campo arriba de 0,7 y 2,9 ppm en C-3’ y C-5’, respectivamente, en comparación con los de ligstrósido. Se observó una confirmación adicional de tal conexión en el espectro gHMBC en el que la fuerte correlación entre la señal anomérica del glucosilo a H 4,31 (H-1”’) y a C 70,1 (C-6’). Se asignó la posición del grupo metilo a C-11 debido al pico cruzado de largo alcance observado de las señales a H 3,69 (OCH3) y C 168,7 (C-11) en el espectro gHMBC. Por tanto, el compuesto excélsido B se denominó éster etílico del ácido (2S,3E,4S)3-etiliden-35 2-[(6-O--D-glucopiranosil--D-glucopiranosil)oxi]-3,4-dihidro-5-(metoxicarbonil)2-(4-hidroxifenil)2H-piran-4-acético, denominado excélsido B. Las asignaciones de datos de 1H y 13C-RMN se facilitan en la tabla 2.
Tabla 2. Datos de 1H, 13C-RMN y HMBC para compuestos excélsido A (1) y excélsido B (2) (CD3OD)
40
1 2
N.º
H C HMBC (H a C) H C HMBC (H a C)
1
5,93 s 94,8 d 8, 1’ 5,94 s 94,7 d 8, 1’
3
7,51 s 155,2 d 1, 4, 5, 11 7,50 s 155,2 d 1, 4, 5, 11
4
109,3 s 109,3 s
5
3,96 dd (9,0, 4,3) 31,9 d 1, 3, 4, 6, 7, 8, 9, 11 3,95 dd (9,6, 4,0) 32,0 d 7, 11
6
2,76 dd (14,4, 4,4) 41,1 t 4, 5, 7, 9 2,72 dd (14,0, 4,0) 41,3 t 7
2,51 dd (14,0, 10,0) 4, 5, 7, 9 2,50 dd (14,0, 9,6) 7
7
173,7 s 173,4 s
8
6,08 dq (7,2, 0,8) 124,7 d 1, 5, 10 6,05 d (6,8) 124,8 d 1, 5, 9, 10
9
130,4 s 130,1 s
10
1,72 d (7,6) 13,7 q 8, 9 1,61 d (7,2) 13,6 q 8, 9
11
168,7 s 168,7 s
OCH3
3,70 s 52,3 q 11 3,69 s 51,9 q 11
OCH3
3,62 s 51,9 q 7
1’
4,80 d (8,0) 100,6 d 1 4,82 d (7,6) 100,4 d 1, 2’
2’
3,24-3,68 m 77,6 d 3,12-3,55 m 77,5 d
3’
3,24-3,68 m 77,8 d 3,12-3,55 m 77,8 d
4’
3,24-3,68 m 71,6 d 3,12-3,55 m 71,5 d
5’
3,24-3,68 m 75,3 d 3,12-3,55 m 75,1 d
6’
4,15 dd (12,0, 1,6) 70,1 t 1’’’ 4,15 d (10,4) 70,1 t 5’, 1’’’
3,84 d.a. (12,0) 3,81 dd (11,6, 2,4)
1’’
4,26 m 67,0 t 7, 2’’, 3’’
4,06 m 7, 2’’, 3’’
(continuación)
1 2
N.º
H C HMBC (H a C) H C HMBC (H a C)
2’’
2,80 t (6,8) 35,2 t
3’’
130,3 s
4’’
7,02 dd (6,8, 2,8) 131,1 d 2’’, 3’’, 6’’
5’’
6,71 dd (6,8, 2,8) 116,4 d 3’’, 4’’, 6’’
6’’
157,0 s
7’’
6,71 dd (6,8, 2,8) 116,4 d
8’’
7,02 dd (6,8, 2,8) 131,1 d
1’’’
4,35 d (8,0) 105,2 d 6’ 4,31 d (8,0) 105,2 d 6’
2’’’
3,24-3,68 m 74,7 d 3,12-3,55 m 74,7 d
3’’’
3,24-3,68 m 77,7 d 3,12-3,55 m 77,6 d
4’’’
3,24-3,68 m 71,5 d 3,12-3,55 m 71,4 d
5’’’
3,24-3,68 m 77,8 d 3,12-3,55 m 77,6 d
6’’’
3,98 dd (9,6, 4,4) 62,7 t 3,74 dd (12,0, 6,8) 62,6 t
3,75 dd (12,0, 6,8) 3,62 dd (12,0, 6,8)
Desplazamientos químicos  expresados en partes por millón (ppm) frente a tetrametilsilano (TMS) como patrón de referencia; la multiplicidad de señal se notifica como singlete (s), doblete (d), triplete (t), cuartete (q), doblete de dobletes (dd), doblete de cuartetes (dq) y multiplete (m); la constante de acoplamiento entre paréntesis se expresa 5 como Hz; el disolvente empleado para tomar los espectros de RMN es CD3OD.
Ejemplo 5
Efecto inhibidor de GI5 (5) y nuzhenida (3) sobre células 3T3-L1 no diferenciadas. El componente principal del 10 aumento de peso es la deposición de tejido adiposo en el cuerpo mediante el procedimiento de adipogénesis. La adipogénesis se caracteriza por un aumento en el tamaño y el número de células adiposas. Los secoiridoides, GI5 y nuzhenida aislados a partir de F. excelsior, han mostrado una actividad inhibidora de la adipogénesis significativa y leve, respectivamente, bloqueando la ruta de células 3T3-L1 no diferenciadas para dar adipocitos diferenciados para obtener un efecto sobre el control del peso corporal y la pérdida de grasa corporal. Se indujeron preadipocitos 3T3-15 L1 para diferenciarse con cóctel hormonal de metilisobutilxantina, dexametasona e insulina (MDI) en presencia o ausencia de compuestos. Diez días tras la inducción de diferenciación, se sometieron a ensayo las células tratadas para determinar su actividad de captación de glucosa respectiva, que es una medida indirecta de la diferenciación (adipogénesis) porque los preadipocitos no pueden realizar la captación de glucosa mediada por transportador de glucosa 4 (GLUT4), inducida por insulina, mientras que los adipocitos completamente diferenciados pueden realizar 20 esta captación. Se usaron compuestos, GI5 y nuzhenida, a cuatro concentraciones diferentes: el 0,004%, el 0,02%, el 0,05% y el 0,1%. Se usaron células no tratadas (no diferenciadas) como control negativo mientras que se usó insulina como control positivo. También se usó metanol (MeOH), el disolvente de los compuestos, como control. El resultado mostró que GI5 y nuzhenida aislados a partir de F. excelsior presentan una actividad inhibidora de la adipogénesis significativa y leve, respectivamente, bloqueando la ruta de células 3T3-L1 no diferenciadas para dar 25 adipocitos diferenciados para obtener un efecto sobre el control del peso corporal y pérdida de grasa corporal (véase la figura 2).
Ejemplo 6
30
Activación de PPAR-alfa de Fraxinus excelsior. Los receptores activados por proliferador de peroxisoma (PPAR) son receptores nucleares que controlan muchos procesos celulares y metabólicos. PPAR-alfa se expresa predominantemente en el hígado y en el que tiene un papel crucial en el control de la oxidación de ácidos grasos (Reddy y Hashimoto, 2001, Annu Rev Nutr., 21, 193-230). La inducción de oxidación de ácidos grasos mediante la activación de PPAR-alfa mejora los perfiles lipídicos en plasma. En una variedad de modelos de ratón, los agonistas 35 de PPAR-alfa reducen los triglicéridos en plasma, reducen la adiposidad y mejoran la esteatosis hepática y muscular, mejorando por consiguiente la sensibilidad a la insulina y reduciendo la glucosa en sangre [Guerre-Millo et al, 2000, J. Biol. Chem., 275, 16638-42 y Kim et al, 2003, Diabetes, 52, 1770-8].
Se ha demostrado que el extracto de semillas de Fraxinus excelsior obtenido usando agua como disolvente tal como 40 se describió en el ejemplo 2 (extracto de FE) activa PPAR-alfa. Se calcularon las activaciones relativas de PPAR-alfa mediante extracto de FE y fenofibrato (control positivo) en comparación con DMSO (condiciones de control) como señal de luminiscencia de luciferasa (un indicador génico) obtenida a partir de los compuestos activos tras la incubación con células transfectadas con receptor GAL4/PPAR-alfa. En primer lugar, se transfectaron de manera transitoria células COS-7 (cultivadas en DMEM + el 10% de FCS) con una proteína de fusión GAL4/PPAR-alfa y un 45 constructo de ADN que llevaba luciferasa. Para la transfección, en primer lugar se obtuvo el plásmido pGALS-TK-pGL3 insertando cinco copias del sitio de unión a ADN de GAL4 (factor de transcripción de levadura) delante del
promotor de timidina cinasa del plásmido pTK-pGL3. Después, se construyó el plásmido pGAL4-hPPAR-alfa mediante amplificación por PCR de los dominios DEF de hPPAR-alfa (aa 180-464). Se clonaron los productos de PCR resultantes en pBD-GAL4 (Stratagene, La Jolla, EE.UU.) y posteriormente se subclonó la quimera en el vector pCDNA3. Tras la transfección, se incubaron células COS-7 durante 24 h con 0 g/mL (condiciones de control), 1 g/mL, 3 g/mL, 10 g/mL, 30 g/mL, 100 g/mL, 300 g/mL y 1.000 g/mL de extracto de FE, o 100 M de 5 fenofibrato (control positivo). Se usó DMSO como disolvente. Tras la incubación, se recogieron las células y se realizó un ensayo de luciferasa. La activación de PPAR-alfa mediante extracto de FE y fenofibrato dio como resultado la expresión de luciferasa y el consiguiente aumento de las señales luminiscentes, que se midieron con un espectrofotómetro Tecan Ultra (Tecan, Austria). Los resultados se expresan como la activación relativa de GAL4/PPAR-alfa proporcional a la señal luminiscente emitida como resultado del extracto de FE y de fenofibrato en 10 comparación con la actividad luminiscente del control (DMSO). Los resultados se notifican como la media ± DE de cuatro ensayos para cada prueba (figura 3). Se calcularon diferencias entre grupos usando la prueba de la t de Student (XLSTAT 2008, Addinsoft™, EE.UU.). Los resultados de la activación de PPAR-alfa mediante extracto de FE se muestran en la figura 3. El extracto de FE alcanzó el 18% de activación de PPAR-alfa a 1.000 g/mL. Los resultados se expresan como porcentaje de fenofibrato, un activador de PPAR-alfa usado como compuesto de 15 referencia.
La capacidad del extracto de FE para activar PPAR-alfa pudo explicar, en parte, el efecto hipoglicemiante observado en estudios con animales.
20
Ejemplo 7
Actividad hipoglicémica del extracto de FE sobre ratones C57BL/6J macho. Se dividieron ratones C57BL/6J macho en tres grupos: 1) grupo control negativo en el que 20 ratones macho fueron sometidos a dieta con bajo contenido en grasa (LF) con una ingesta diaria de aproximadamente 10 kcal; 2) grupo de control positivo en el que 20 ratones 25 fueron alimentados con una dieta con alto contenido en grasa (HF) y una ingesta diaria de aproximadamente 60 kcal y debido a la alimentación con alto contenido en grasa, este grupo de ratones desarrolló obesidad, hiperglicemia e hiperinsulinemia; 3) grupo con el 0,5% de extracto de FE en el que 10 ratones macho fueron alimentados con dieta con alto contenido en grasa como los del grupo 2, pero también se mezcló la dieta con el 0,5% de extracto de FE. La ingesta de alimentos y fluidos y el peso corporal se midieron semanalmente. Se monitorizaron signos de anomalía y 30 posible toxicidad. Se extrajeron muestras de sangre de la vena de la cola y se midió el nivel de glucosa en sangre en ayunas usando un medidor de glucosa en sangre. Se determinaron datos basales antes del experimento. No había ninguna diferencia estadística entre los tres grupos.
Tras 16 semanas de tratamiento, los ratones en el grupo tratado con extracto de FE mostraron niveles de glucosa en 35 sangre en ayunas significativamente inferiores a los de los ratones en el grupo de control con alto contenido en grasa (p < 0,001), lo que indicó un fuerte efecto hipoglicémico de extracto de FE (figura 4).
Ejemplo 8
40
Actividad de reducción del peso corporal del extracto de FE en ratones C57BL/6J macho. Se midió el peso corporal de cada ratón de los mismos grupos que en el ejemplo de referencia 7. No había ninguna diferencia estadística entre los tres grupos de peso corporal basal. Tras 16 semanas de tratamiento, todos los ratones en los grupos tratados con alto contenido en grasa (grupo 2 y 3) habían aumentado significativamente más de peso corporal que aquellos en el grupo tratado con bajo contenido en grasa. Sin embargo, el grado de aumento de peso corporal en el grupo de 45 FE fue muy inferior en comparación con el grupo de control positivo, lo que indica una actividad del extracto de FE sobre el control del peso corporal (figura 5).
Ejemplo 9
50
Actividad PPAR-alfa de excélsido A (1), GI3 (4) y éster dimetílico de oleósido (6). Se sometieron a prueba cinco compuestos individuales aislados a partir de extracto en agua de semillas de Fraxinus excelsior (FE) para determinar la actividad PPAR-alfa. El activador de PPAR-alfa sintético y selectivo, WY14,643, sirvió como control positivo y DMSO, que se usó para disolver estos compuestos, como control negativo en el ensayo. Cinco secoiridoides puros fueron parcialmente activos a una concentración de 10-4 M. Los compuestos excélsido A, éster dimetílico de oleósido 55 y GI3 mostraron buena actividad (figura 6).
Ejemplo 10
Reducción de grasa del extracto de semillas de Fraxinus excelsior (FE) en ratones C57BL/6J macho. Al final del 60 experimento (del ejemplo de referencia 7), tras 16 semanas de tratamiento, se anestesiaron los ratones de todos los grupos y se sacrificaron. Se extrajo y se pesó la grasa omental y retroperitoneal de ratones individuales. Los resultados mostraron que el extracto de semillas de FE disminuye en un 18,3% el aumento de grasa omental y en un 17,8% el aumento de grasa retroperitoneal, respectivamente (figuras 7 y 8).
65
Ejemplo 11
Reducción de los niveles de insulina en plasma en ayunas del extracto de semillas de Fraxinus excelsior (FE) en ratones C57BL/6J macho. Al final del experimento (del ejemplo de referencia 7), se determinaron los niveles de insulina en plasma en ayunas usando un kit Elisa para ratones. Los ratones tratados con extracto de semillas de 5 Fraxinus tenían niveles de insulina en plasma en ayunas significativamente inferiores en comparación con los del grupo de control con alto contenido en grasa (P < 0,05) (figura 9).
Ejemplo 12
10
Actividad de reducción del azúcar en sangre del extracto de semillas de Fraxinus excelsior (FE) en seres humanos. Para evaluar el efecto de las composiciones de esta invención en seres humanos, se realizó un estudio con diseño aleatorizado, doble ciego, controlado por placebo y con cruce en seres humanos. Se incluyó un total de dieciséis individuos sanos (11 hombres y 5 mujeres) de la India. Se requirió que los sujetos tuvieran entre 25 y 55 años de edad con un índice de masa corporal de 26 ± 2,2 kg/m2 y glucosa en sangre en ayunas de 4,4 ± 0,09 mmol/L. Se 15 usó extracto de semillas de FE para el grupo de tratamiento y se usó polvo de salvado de trigo para el grupo de placebo. La dosificación diaria por persona en este estudio fue de 1 g de extracto de semillas de FE. Se instruyó a los sujetos a que tomaran o bien dos cápsulas de extracto de semillas de FE (500 mg cada una) o bien dos cápsulas de placebo (500 mg de salvado de trigo cada una) por vía oral como una única dosis antes de la exposición a glucosa (50 g en 100 mL de agua) para la evaluación de la respuesta glicémica. Tras un periodo de lavado de una 20 semana, se cambiaron los dos grupos entre sí. Durante el estudio, se obtuvieron muestras de sangre mediante punción en el dedo a los 0, 15, 30, 45, 60, 90 y 120 minutos. Se administró el extracto de prueba/placebo con 100 mL de agua inmediatamente después de tomar la muestra de sangre en ayunas a los 0 min. Entonces, el sujeto ingirió la bebida de glucosa en el plazo de 5-8 minutos (50 g en 100 mL de agua, D-glucosa, Qualigens Co., Glaxo India). En este momento se inició el cronómetro. Se extrajeron muestras de sangre adicionales mediante punción en 25 el dedo a los 15, 30, 45, 60, 90 y 120 min. tras el inicio de la bebida de glucosa. Se determinaron las concentraciones de glucosa en sangre completa en el capilar usando un glucómetro de Bayer y una tira reactiva con glucosa de Essentia. Se calculó el área bajo la curva (AUC) incremental positiva para los grupos tanto tratado con placebo como tratado con FE para determinar las concentraciones de glucosa en sangre a diferentes intervalos de tiempo. Se calcularon diferencias significativas entre grupos usando una prueba de la t de Student para datos 30 emparejados bilateral. Se realizaron análisis usando un software XLSTAT 2008 (Addinsoft™, EE.UU.). Se fijó la significación estadística a P < 0,05. Todos los datos se notificaron como media ± EEM.
La gráfica, a partir de la comparación por parejas, de glicemia incremental mostró una disminución en los niveles de glucosa posprandial mediante extracto de semillas de FE, durante la duración del experimento desde 15 min. (2,0 ± 35 0,26 mmol/L frente a 1,7 ± 0,21 mmol/L), 30 (4,0 ± 0,41 mmol/L frente a 3,7 ± 0,33 mmol/L), 45 (4,2 ± 0,41 mmol/L frente a 3,7 ± 0,47 mmol/L), 60 (3,4 ± 0,46 mmol/L frente a 3,4 ± 0,41), 90 (1,8 ± 0,38 mmol/L frente a 1,6 ± 0,31 mmol/L) hasta 120 (0,58 ± 0,29 mmol/L frente a 0,21 ± 0,27 mmol/L) minutos en comparación con placebo de salvado de trigo correspondiente (figura 10A). La prueba de la t de Student para datos emparejados indicó que las diferencias (299,8 ± 28,8 min. mmol/L frente a 273,2 ± 25,2 min. mmol/L) en el efecto del tratamiento (FE frente a 40 placebo) sobre el AUC media fueron estadísticamente significativas (P = 0,02). Los resultados se presentan en la figura 10B.
Ejemplo 13
45
Efecto insulinotrópico agudo de extracto de semillas de Fraxinus Excelsior (FE) sobre seres humanos. Se evaluó el efecto insulinotrópico de la composición como objetivo adicional del estudio clínico descrito en el ejemplo 12. Se extrajeron muestras de sangre venosa (7-8 mL) a los 0, 30, 60, 90 y 120 min. en FE de prueba/placebo de sujetos sanos tratados en tubos de separación de suero. Se dejó coagular la sangre durante 15 minutos, y después se centrifugó a 1.500 x g durante 10 minutos. Después se analizó el suero resultante para detectar insulina usando un 50 inmunoensayo de electroquimioluminiscencia (ECLIA). Se calculó el área bajo la curva (AUC) insulinémica incremental positiva para grupos tanto tratados con placebo como tratados con FE para determinar niveles de insulina a diferentes intervalos de tiempo. Se calcularon diferencias significativas entre grupos usando una prueba de la t de Student para datos emparejados bilateral. Se realizaron análisis usando un software XLSTAT 2008 (Addinsoft™, EE.UU.). Se fijó la significación estadística a P < 0,05. Todos los datos se notifican como media ± 55 EEM. FE (55,5 ± 4,6 mU/L) indujo una secreción significativa (P = 0,002) de insulina a los 90 minutos en comparación con placebo (43,5 ± 5,0 mU/L) (figura 11A). No se observó ninguna diferencia significativa en el AUC insulinémica media (0-120 minutos) en el grupo tratado con FE (6.041,6 ± 340,5 min.mU/L) en comparación con placebo (5.996,3 ± 594,58 min.mU/L) (figura 11B).
60
La estimulación de la secreción de insulina a los 90 min. parece ser una acción directa del FE sobre células del islote pancreáticas que volvieron a la normalidad al final del estudio (120 minutos). Esto puede reducir la resistencia a la insulina y mejorar la sensibilidad a la insulina en tales casos. Además, dado que no hay ninguna diferencia significativa en el AUC insulinémica media entre el tratamiento y el placebo, el uso de extracto es seguro sin hiperinsulinemia resultante en las siguientes horas tras el tratamiento. 65
Debe entenderse que la cantidad eficaz del extracto de FE puede variar dependiendo del peso del animal o la persona que toma el tratamiento, tal como conocen los expertos habituales en la técnica. Además, el extracto de FE puede administrarse mediante cualquier medio convencional, en una formulación que da como resultado un líquido, polvo, o comprimido oblongo, comprimido o cápsula u otra forma de medicamento convencional, junto con cargas, aditivos, aglutinantes, excipientes, aromatizantes y similares tales como se usen comúnmente en especialidades 5 farmacéuticas publicitarias y productos de complemento dietético.
Un experto en la técnica apreciará que la presente invención puede protegerse por otras realizaciones distintas a las descritas, y las cantidades e intervalos numéricos dados, que se proporcionan con fines de ilustración, y no de limitación. 10
Las realizaciones particulares de la invención que pueden mencionarse incluyen las indicadas en los siguientes párrafos numerados.
Párrafo 1. Un extracto de semillas de Fraxinus excelsior que comprende: 15
desde aproximadamente el 1% hasta aproximadamente el 15% de nuzhenida en peso,
desde aproximadamente el 1% hasta aproximadamente el 17% de GI3 en peso,
20
desde aproximadamente el 0,5% hasta aproximadamente el 1% de éster metílico de oleósido en peso,
desde aproximadamente el 0,03% hasta aproximadamente el 0,12% de excélsido B en peso,
desde aproximadamente el 0,1% hasta aproximadamente el 1,7% de GI5 en peso, y 25
desde aproximadamente el 0,08% hasta aproximadamente el 0,7% de salidrósido en peso.
Párrafo 2. Un compuesto aislado de éster metílico del ácido (2S, 3E, 4S) 3-etiliden-2-[(6-O--D-glucopiranosil--D-glucopiranosil)oxi]-3,4-dihidro-5-(metoxicarbonil)2H-piran-4-acético. 30
Párrafo 3. Un compuesto aislado de éster etílico del ácido (2S, 3E, 4S) 3-etiliden-2-[(6-O--D-glucopiranosil--D-glucopiranosil)oxi]-3,4-dihidro-5-(metoxicarbonil)2-(4-hidroxifenil)2H-piran-4-acético.
Párrafo 4. Un método de tratar terapéuticamente a un sujeto administrando un extracto de semillas de Fraxinus 35 excelsior.
Párrafo 5. Un método de bloquear la síntesis de grasa administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
40
Párrafo 6. El método del párrafo 5, en el que el extracto de semillas de Fraxinus excelsior comprende GI5.
Párrafo 7. El método del párrafo 5, en el que el extracto de semillas de Fraxinus excelsior comprende nuzhenida.
Párrafo 8. Un método de activar PPAR-alfa administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus 45 excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
Párrafo 9. El método del párrafo 8, en el que el extracto de semillas de Fraxinus excelsior es GI3.
Párrafo 10. El método del párrafo 8, en el que el extracto de semillas de Fraxinus excelsior es éster dimetílico de 50 oleósido.
Párrafo 11. El método del párrafo 8, en el que el extracto de semillas de Fraxinus excelsior es excélsido A.
Párrafo 12. Un método de provocar actividad hipoglicémica administrando una cantidad de un extracto de semillas 55 de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
Párrafo 13. Un método de reducir el peso corporal administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
60
Párrafo 14. Un método de reducir la grasa corporal administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
Párrafo 15. Un método para controlar los niveles de insulina en plasma en ayunas frente a la hiperinsulinemia administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un 65 sujeto.
Párrafo 16. Un método para promover la sensibilidad a la insulina y provocar un efecto insulinotrópico agudo beneficioso administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
5
Párrafo 17. Un método para tratar un síndrome metabólico administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
Párrafo 18. Un método para tratar diabetes mellitus tipo 2 administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto. 10
Párrafo 19. Un método para prevenir la hiperinsulinemia administrando una cantidad de un extracto de semillas de Fraxinus excelsior eficaz para tratar a un sujeto.
Párrafo 20. El método de cualquiera de los párrafos 4, 5, 8 ó 12-19, en el que el sujeto es un ser humano. 15
Párrafo 21. Un método de extraer y aislar un secoiridoide de una semilla de Fraxinus excelsior mediante el procedimiento que comprende:
triturar una semilla de Fraxinus excelsior para dar partículas; 20
poner en contacto las partículas trituradas con una mezcla de disolventes;
separar las partículas trituradas de la mezcla de disolventes;
25
disolver el polvo en un alcohol; y
evaporar el alcohol.
Párrafo 22. El método del párrafo 21, en el que las partículas trituradas tienen un diámetro de desde 30 aproximadamente 0,1 mm hasta 30 mm.
Párrafo 23. El método del párrafo 21, en el que la temperatura de extracción es de desde 20ºC hasta 100ºC.
Párrafo 24. El método del párrafo 21, en el que la temperatura de extracción es de desde 50ºC hasta 70ºC. 35
Párrafo 25. El método del párrafo 21, en el que la razón de partículas trituradas con respecto a mezcla de disolventes es de desde aproximadamente 1 gramo con respecto a 1 mililitro hasta aproximadamente 1 gramo con respecto a 10 mililitros.
40
Párrafo 26. El método del párrafo 21, en el que la razón de partículas trituradas con respecto a mezcla de disolventes es de desde aproximadamente 1 gramo con respecto a 3 mililitros hasta aproximadamente 1 gramo con respecto a 8 mililitros.
Párrafo 27. El método del párrafo 21, en el que las partículas trituradas están en contacto con la mezcla de 45 disolventes desde aproximadamente 2 horas hasta aproximadamente 24 horas.
Párrafo 28. El método del párrafo 21, en el que la mezcla de disolventes es agua, una mezcla de agua-alcohol o alcohol.
50
Párrafo 29. El método del párrafo 21, en el que la mezcla de disolventes comprende etanol.
Párrafo 30. El método del párrafo 21, en el que la mezcla de disolventes comprende metanol.

Claims (9)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Extracto de semillas de Fraxinus excelsior que comprende:
    desde aproximadamente el 1% hasta aproximadamente el 15% de nuzhenida en peso, 5
    desde aproximadamente el 1% hasta aproximadamente el 17% de GI3 en peso,
    desde aproximadamente el 0,5% hasta aproximadamente el 1% de éster metílico de oleósido en peso,
    10
    desde aproximadamente el 0,03% hasta aproximadamente el 0,12% de excélsido B en peso,
    desde aproximadamente el 0,1% hasta aproximadamente el 1,7% de GI5 en peso, y
    desde aproximadamente el 0,08% hasta aproximadamente el 0,7% de salidrósido en peso. 15
  2. 2. El extracto de semillas de Fraxinus excelsior según la reivindicación 1 para su uso como medicamento.
  3. 3. El extracto de semillas de Fraxinus excelsior según la reivindicación 1 para su uso en el tratamiento de un estado activando receptores de PPAR-alfa, en el que: 20
    (A) el tratamiento es:
    (i) provocar actividad hipoglicémica;
    25
    (ii) promover la sensibilidad a la insulina;
    (iii) controlar los niveles de insulina en plasma en ayunas frente a la hiperinsulinemia;
    o 30
    (iv) prevenir la hiperinsulinemia; o
    (B) el estado es:
    35
    (a) un síndrome metabólico; o
    (b) diabetes mellitus tipo 2.
  4. 4. Uso del extracto de semillas de Fraxinus excelsior según la reivindicación 1 para la fabricación de un 40 medicamento para tratar un estado activando receptores de PPAR-alfa, en el que:
    (A) el tratamiento es:
    i) provocar actividad hipoglicémica; 45
    (ii) promover la sensibilidad a la insulina;
    (iii) controlar los niveles de insulina en plasma en ayunas frente a la hiperinsulinemia;
    50
    o
    (iv) prevenir la hiperinsulinemia; o
    (B) el estado es: 55
    (a) un síndrome metabólico; o
    (b) diabetes mellitus tipo 2.
    60
  5. 5. El extracto para su uso según la reivindicación 3 y el uso según la reivindicación 4, en el que el tratamiento es mediante administración oral antes de una comida.
  6. 6. El extracto de semillas de Fraxinus excelsior según la reivindicación 1 para su uso en el tratamiento de un estado bloqueando la síntesis de grasas, en el que el tratamiento es un método terapéutico de controlar el 65 peso corporal o reducir la grasa corporal.
  7. 7. Uso del extracto de semillas de Fraxinus excelsior según la reivindicación 1 para la fabricación de un medicamento para tratar un estado bloqueando la síntesis de grasas, en el que el tratamiento es un método terapéutico de controlar el peso corporal o reducir la grasa corporal.
    5
  8. 8. El extracto para su uso según la reivindicación 6 y el uso según la reivindicación 7, en el que el tratamiento es mediante administración oral antes de una comida.
  9. 9. El extracto para su uso o el uso según una cualquiera de las reivindicaciones 2 a 8, en el que el uso es en un ser humano. 10
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