ES2549481T3

ES2549481T3 - Composiciones y métodos para el tratamiento de enfermedad celíaca

Info

Publication number: ES2549481T3
Application number: ES09828453.2T
Authority: ES
Inventors: Robert Paul Anderson; Jessica Anne Stewart; James Anthony Dromey; Jason Allan Tye-Din
Original assignee: Immusant Inc
Current assignee: Immusant Inc
Priority date: 2008-11-30
Filing date: 2009-11-30
Publication date: 2015-10-28
Anticipated expiration: 2029-11-30
Also published as: US20150050303A1; DK2367561T3; EP3269379A1; HK1162918A1; US20170158743A1; US20210115096A1; AU2009321481A1; CN105079781A; JP6027215B2; JP5851243B2; CA3042826A1; JP2016128402A; CA2744787A1; CN105079781B; HUE027237T2; ES2642096T3; BRPI0922122A2; MX346450B; MX2011005632A; EP2367561B1

Abstract

Una composición que comprende i) un primer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos: LQPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 13), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, ii) un segundo péptido que comprende la secuencia de aminoácidos: QPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 14), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, y iii) un tercer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos: PEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 16), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva.

Description

Composiciones y métodos para el tratamiento de enfermedad celíaca

5 Campo de la invención

La presente invención se refiere a composiciones y métodos para el tratamiento de un sujeto que es sensible al gluten, en particular a un sujeto que tiene enfermedad celíaca, y diagnóstico del mismo y ensayos y kits para su uso en el mismo.

Antecedentes de la invención

La enfermedad celíaca, también conocida como esprúe celíaco, afecta a aproximadamente el 1% de las personas en Europa y Norteamérica. En muchos de los afectados, la enfermedad celíaca no está reconocida, pero este

15 descuido clínico se está rectificando ahora con mayor consciencia clínica. Una dieta sin gluten es el único tratamiento actual para la enfermedad celíaca, y debido a que la ingesta regular de tan poco como 50 mg de gluten (equivalente a 1 centésima de una rebanada de pan convencional) daña el intestino delgado, la inflamación crónica del intestino delgado es habitual en sujetos con una dieta sin gluten. Se ha mostrado que la inflamación persistente del intestino delgado aumenta el riesgo de cáncer, osteoporosis y muerte. Como el gluten se usa tan ampliamente, por ejemplo, en sopas comerciales, salsas, helados, etc., el mantenimiento de una dieta sin gluten es difícil.

La enfermedad celíaca se produce en individuos genéticamente susceptibles que poseen HLA-DQ2 codificado por HLA-DQA1*05 y HLA-DQB1*02 (que representan aproximadamente el 90% de los individuos), variantes de HLA-DQ2 o HLA-DQ8. Dichos individuos montan una respuesta inmunitaria mediada por linfocitos T CD4+ restringida a

25 HLA-DQ2 y/o DQ8 inapropiada a péptidos derivados de proteínas insolubles acuosas de harina de trigo, gluten y proteínas relacionadas en el centeno y la cebada.

Todas las proteínas del gluten se consideran tóxicas en enfermedad celíaca. En el 2006, la base de datos pública del NCBI Genbank incluyó 345 entradas para proteínas del gluten de trigo panificable (Triticum aestivum), cebada (Hordein vulgare) y centeno (Secale cereale).

Los enfoques predictivos han catalogado varios cientos de péptidos de gluten potencialmente “tóxicos” distintos basándose en búsquedas de homólogos de epítopos conocidos de clones de linfocitos T intestinales o de secuencias de gluten que se ha predicho o se ha demostrado que se unen con HLA-DQ2 in vitro, que tienen el

35 motivo que favorece la desamidación por transglutaminasa tisular (tTG) y/o secuencias resistentes a proteólisis.

Revisiones acreditadas informan de que hay aproximadamente cincuenta epítopos de linfocitos T “inmunodominantes” en gluten relevantes para la enfermedad celíaca. Sin embargo, los linfocitos T inducidos contra hordeína o cebada aún no se han estudiado, y los epítopos de linfocitos T restringidos a HLA-DQ2 derivados de glutenina de alto peso molecular (HMW) aún no se han definido.

A pesar del gran número de péptidos de gluten implicados en la enfermedad celíaca, el de 33 unidades de -gliadina resistente a proteasa LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEC ID Nº: 1; 2-gliadina 56-88) desamidado por tTG: LQLQPFPQPELPYPQPELPYPQPELPYPQPQPF (SEC ID Nº: 2) se considera ampliamente el

45 péptido estimulador óptimo (para líneas de linfocitos T intestinales inducidas contra gluten digerido por proteasa) en enfermedad celíaca asociada a HLA-DQ2. El subrayado de restos Q en SEC ID Nº: 1, y a lo largo de la presente divulgación, indica un resto de glutamina susceptible de desamidación catalizada por tTG o coherente con el motivo de aminoácidos que predice susceptibilidad a desamidación por tTG, es decir, Q→E.

Este péptido de 33 unidades de -gliadina (SEC ID Nº: 1; 2-gliadina 56-88) se recuperó de un producto de digestión de la 2-gliadina recombinante, incorpora múltiples epítopos solapantes previamente identificados usando clones y líneas de linfocitos T intestinales, y también linfocitos T de sangre periférica nuevos de donantes HLA-DQ2+ afectados por enfermedad celíaca después de exposición a gluten in vivo. Estos epítopos incluyen DQ2--I: PFPQPELPY (SEC ID Nº: 3); DQ2--II: PQPELPYPQ (SEC ID Nº: 4); y DQ2--III: PYPQPELPY (SEC ID Nº: 5). De

55 hecho, la exposición a gluten in vivo en pacientes de enfermedad celíaca HLA-DQ2+ induce linfocitos T CD4+ de sangre periférica que son específicos para una única secuencia de 11 unidades en la secuencia de proteína gliadina, p60-70 PFPQPQLPYPQ (SEC ID Nº: 6), que es óptimamente bioactiva cuando está flanqueada por tres restos adicionales en los extremos tanto N como C terminales, -gliadina p57-73 QLQPFPQPQLPYPQPQS (SEC ID Nº: 7) y desamidada por tTG o Q65 que sustituye glutamato, -gliadina p57-73 QE65 QLQPFPQPELPYPQPQS (SEC ID Nº: 8) que incluye DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4). Sin embargo, hay cientos de proteínas del gluten de trigo, centeno y cebada, y los epítopos de DQ2--I, DQ2--II y DQ2--III representan juntos típicamente no más de la mitad de las propiedades estimulantes de linfocitos T tóxicas del gluten en enfermedad celíaca HLA-DQ2+. Se desvelan epítopos adicionales relevantes para la enfermedad celíaca en los documentos WO 01/25793, WO 03/104273 y WO 05/105129.

Aunque no se ha inducido linfocitos T contra hordeína de cebada o secalina de centeno, proteínas estrechamente relacionadas con el gluten del trigo, la toxicidad de la cebada y el centeno se atribuyen a linfocitos T específicos para epítopos en el gluten del trigo, especialmente DQ2--I (SEC ID Nº: 3) o DQ2--II (SEC ID Nº: 4), que son reactivos de forma cruzada con secuencias de hordeína y secalina relacionadas desamidadas por tTG, en particular

5 PFPQPQQPF (SEC ID Nº: 9) desamidada a H9/S9 PFPQPEQPF (SEC ID Nº: 10; DQ2-G-I) o PQPQQPFPQ (SEC ID Nº: 11) desamidada a H2/S2 PQPEQPFPQ (SEC ID Nº: 12), respectivamente.

Entre las autoridades en este campo, hay desacuerdo con respecto a la dominancia, jerarquía y redundancia de péptidos particulares en la inducción de la estimulación de linfocitos T en enfermedad celíaca.

10 El entendimiento de la uniformidad y contribución relativa de péptidos particulares a la capacidad estimulante de linfocitos T de gluten tiene su aplicación. Siempre que representen uniformemente una proporción sustancial de la respuesta de linfocitos T al gluten, los péptidos estimulantes de linfocito T dominantes podrían por sí solos colectivamente permitir el desarrollo de productos terapéuticos y de diagnóstico específicos de antígeno.

15 En principio, la terapia específica de antígeno es una estrategia atractiva para tratar enfermedades autoinmunitarias y alérgicas. Los enfoques basados en proteína completa para desensibilización son eficaces para afecciones alérgicas humanas y también el tratamiento y la prevención de autoinmunidad y rechazo de aloinjertos en modelos animales experimentales, sin embargo, la aplicación más amplia de terapia específica de antígenos basada en

20 proteínas se ha limitado por el riesgo bajo pero reconocido de anafilaxis y porque los antígenos relevantes pueden no ser adecuados como productos farmacéuticos o simplemente no se entienden con suficiente detalle para permitir el desarrollo farmacéutico.

El riesgo de anafilaxis puede minimizarse y los problemas de formulación superarse usando péptidos lineales cortos,

25 solubles acuosos, que abarcan secuencias del antígeno relevante para la enfermedad reconocido por linfocitos T CD4+ patógenos. Las vacunas terapéuticas basadas en péptidos son eficaces en modelos de ratón endogámicos de autoinmunidad y rechazo de aloinjertos en los que se definen epítopos inmunodominantes relevantes y sus linfocitos T CD4+ afines. Sin embargo, incluso para enfermedades inmunitarias humanas fuertemente asociadas con HLA, la identificación de epítopos de linfocitos T CD4+ patógenos con suficiente confianza para apoyar un diseño racional de

30 fármacos y desarrollo farmacéutico ha sido muy limitada.

En muchos casos, esta incertidumbre se debe al hecho de que las respuestas de linfocitos T indicadas en pacientes están en los límites de la detección, dependen habitualmente de la expansión in vitro que puede ser respuestas de linfocitos T primarios o de recuerdo, y pueden con frecuencia también encontrarse en individuos de HLA

35 coincidentes sanos. Estos restos técnicos han dado como resultado la solución intermedia de que la selección peptídica para vacunas terapéuticas tiende a basarse en afinidad de unión in vitro para moléculas de HLA relevantes para la enfermedad, en lugar de su definición inequívoca como epítopos para linfocitos T patógenos inmunodominantes. Una consecuencia adicional es que los compuestos basados en péptidos diseñados de esta manera tienen a abarcar un cóctel de péptidos consumido. Podría esperarse que cuanto mayor sea el cóctel, mayor

40 será la probabilidad de que aparezcan dificultades en la formulación, estabilidad y efectos adversos, pero también es más probable que los linfocitos T específicos para péptidos en el cóctel realicen uniformemente una contribución sustancial a la respuesta de linfocitos T patógena en pacientes.

Dado el gran número de péptidos de gluten tóxicos, los inventores han intentado identificar un conjunto óptimo no

45 redundante de péptidos inmunodominantes del que podría seleccionarse una mezcla mínima para su uso en inmunoterapia basada en péptidos capaz de modular la respuesta inmunitaria de un individuo al gluten. Los inventores han intentado identificar péptidos inmunodominantes útiles en el tratamiento de enfermedad celíaca modificando específicamente la respuesta de linfocitos T patógena al gluten y proporcionar por lo tanto una vacuna eficaz contra la enfermedad celíaca. La misma mezcla de péptidos también es útil en el diagnóstico y control de

50 productos terapéuticos inmunomoduladores en enfermedad celíaca.

Sumario de la invención

Los presentes inventores han identificado tres péptidos estimulantes de linfocitos T dominantes que juntos pueden

55 usarse como un agente en una inmunoterapia o vacuna para modular la respuesta de linfocitos T a tres o más péptidos del gluten y para proporcionar tolerancia al gluten, permitiendo el tratamiento de la enfermedad celíaca. En consecuencia, en un aspecto la presente invención proporciona un agente que comprende

i) un primer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos LQPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 13), o un

60 fragmento biológicamente activo o variante del mismo, ii) un segundo péptido que comprende la secuencia de aminoácidos QPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 14), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo, y iii) un tercer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos PEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 16), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo.

SEC ID Nº: 13 (LQPFPQPELPYPQPQ) abarca dos epítopos solapantes, PFPQPELPY (SEC ID Nº: 3) y PQPELPYPQ (SEC ID Nº: 4), SEC ID Nº: 14 (QPFPQPEQPFPWQP) abarca dos epítopos solapantes, PFPQPEQPF (SEC ID Nº: 10) y PQPEQPFPW (SEC ID Nº: 15; DQ2--II), y SEC ID Nº: 16 PEQPIPEQPQPYPQQ abarca el epítopo PIPEQPQPY (SEC ID Nº: 17; DQ2-Hor-I) y también el epítopo predicho EQPIPEQPQ (SEC ID Nº: 18)

5 intercambiable con QQPIPEQPQ (SEC ID Nº: 19).

En una realización, los primer, segundo y/o tercer péptidos comprenden un grupo acetilo N terminal o grupo piroglutamato y/o un grupo amida C terminal. Más preferentemente, los primer, segundo y/o tercer péptidos comprende un grupo piroglutamato N terminal y un grupo amida C terminal.

En una realización adicional, los primer, segundo y/o tercer péptidos se conjugan con un compuesto. Los ejemplos de compuestos adecuados incluyen, pero sin limitación, un adyuvante y una molécula de MHC o fragmento de unión de la misma.

15 En una realización preferida, cada péptido se proporciona como una molécula separada. Sin embargo, en una realización alternativa, dos o tres de los primer, segundo y tercer péptidos, o fragmento biológicamente activo o variante de uno o más de los mismos, están en una única cadena polipeptídica.

En una realización adicional, el agente comprende uno o más péptidos adicionales que comprenden una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209, 210, o un fragmento biológicamente activo o variante de uno cualquiera de los mismos.

25 Los péptidos adicionales permiten un grupo de tratamiento eficaz más amplio y mayor amplitud de tratamiento o diagnóstico. Particularmente, el uso de péptidos adicionales puede aumentar la probabilidad de que el agente pueda anular la inflamación o el daño de respuesta a ingesta de gluten y permitir que un sujeto con enfermedad celíaca tenga una dieta normal. Adicionalmente, cuando el agente se usa como un diagnóstico, es ventajoso tener más dianas y esto se consigue proporcionando más péptidos que podrían estar en su forma desamidada o de tipo silvestre de la lista SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209, 210.

35 En otro aspecto, la presente invención proporciona un agente que comprende uno o más polinucleótidos que codifican

i) un primer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos LQPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 13), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo, ii) un segundo péptido que comprende la secuencia de aminoácidos QPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 14), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo, iii) un tercer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos PEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 16), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo, y iv) opcionalmente uno o más péptidos adicionales que comprenden una secuencia de aminoácidos seleccionada del

45 grupo que consiste en SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209, 210, o un fragmento biológicamente activo o variante de uno cualquiera o más de los mismos.

El o los péptidos, o fragmentos biológicamente activos o variantes de los mismos, pueden codificarse por uno o más polinucleótidos. Por lo tanto, al menos algunos del o los péptidos, o fragmentos biológicamente activos o variantes de los mismos, pueden transcribirse y traducirse a partir de un único polinucleótido como una única cadena polipeptídica.

55 El agente también puede ser una mezcla de péptidos y polinucleótidos. Por lo tanto, en un aspecto adicional la presente invención proporciona un agente que comprende

i) un primer péptido como se define en el presente documento o un polinucleótido para el mismo, ii) un segundo péptido como se define en el presente documento o un polinucleótido para el mismo, y iii) un primer péptido como se define en el presente documento o un polinucleótido para el mismo. Como apreciará el experto en la materia, uno o más de los péptidos pueden ser un fragmento biológicamente activo o variante de la secuencia peptídica definida.

En otro aspecto, la presente invención proporciona un péptido sustancialmente purificado y/o recombinante que

65 comprende, más preferentemente que consiste en, una secuencia de aminoácidos como se muestra en una cualquiera o más de SEC ID Nº: 16, 69, 73, 75, 78, 80, 87, 91, 92, 95, 96, 98, 100, 104, 107, 113, 116, 117, 123,

138, 144, 147, 149, 153, 155, 156, 159, 161, 163, 165, 179, 181, 185, 187, 189, 195, 196, 198, 202, 204, 205, 207, 209, 215 o 223, o un fragmento biológicamente activo o variante de uno cualquiera adicional o más de los mismos. En una realización preferida de este aspecto, el péptido es de 19 aminoácidos de longitud o menos.

5 En una realización preferida adicional del aspecto anterior, el péptido comprende la secuencia de aminoácidos PEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 16), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo.

En un aspecto adicional, se proporciona un polinucleótido aislado y/o exógeno que codifica al menos un péptido de la invención.

En un aspecto adicional, se proporciona una vacuna que comprende un agente de la invención, un péptido de la invención y/o un polinucleótido de la invención, y un vehículo farmacéuticamente aceptable.

En una realización, la vacuna comprende un adyuvante.

15 En otro aspecto, se proporciona una célula presentadora de antígenos aislada que comprende un agente de la invención, un péptido de la invención y/o un polinucleótido de la invención. Los ejemplos de células presentadoras de antígenos útiles para la invención incluyen, pero sin limitación, una célula dendrítica, macrófago, linfocito B o una célula endotelial sinusoide del hígado. En una realización preferida, la célula presentadora de antígenos es una célula dendrítica.

En un aspecto, se proporciona un método para modular una respuesta a linfocitos T a un péptido de gluten en un sujeto que es sensible al gluten, comprendiendo el método administrar al sujeto una cantidad eficaz del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención, la vacunad de la invención y/o la célula

25 presentadora de antígenos de la invención.

En otro aspecto, se proporciona un método para inducir tolerancia inmunitaria a un péptido de gluten en un sujeto que es sensible al gluten, comprendiendo el método administrar al sujeto una cantidad eficaz del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención, la vacuna de la invención y/o la célula presentadora de antígenos de la invención.

En un aspecto adicional, se proporciona un método para tratar la enfermedad celíaca, comprendiendo el método administrar a un sujeto que es sensible al gluten una cantidad eficaz del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención, la vacuna de la invención y/o la célula presentadora de antígenos de la

35 invención.

En otro aspecto más, se proporciona un método para modificar la secreción de citocinas en un sujeto que es sensible al gluten, comprendiendo el método administrar al sujeto una cantidad eficaz del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención, la vacuna de la invención y/o la célula presentadora de antígenos de la invención.

En una realización, se reduce la secreción de interleucina 2 (IL-2), interferón gamma (IFN) y/o factor de necrosis tumoral alfa (TNF). En otra realización, se aumenta la secreción de interleucina 10 (IL-10).

45 También se proporciona el uso del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención, la vacuna de la invención y/o la célula presentadora de antígenos de la invención para la fabricación de un medicamento para modular una respuesta de linfocitos T, inducir tolerancia inmunitaria, tratar la enfermedad celíaca y/o modificar la secreción de citocinas, en un sujeto que es sensible al gluten.

En un aspecto adicional, la presente invención proporciona un método para diagnosticar enfermedad celíaca en un sujeto, comprendiendo el método poner en contacto una muestra del sujeto con el agente de la invención, el péptido de la invención y/o la vacuna de la invención y determinar in vitro si uno o más de los péptidos definidos en el presente documento se unen con linfocitos T en la muestra, en el que la unión de uno o más de los péptidos con linfocitos T indica que el sujeto tiene, o es susceptible de, enfermedad celíaca.

55 También se proporciona el uso del método de diagnóstico anterior para controlar la progresión de enfermedad celíaca y/o para determinar la eficacia de un método que implica administrar al sujeto que es sensible al gluten una cantidad eficaz del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la vacuna de la invención y/o la célula presentadora de antígenos de la invención.

En otro aspecto, la presente invención proporciona un kit para llevar a cabo el método de diagnóstico anterior, comprendiendo el kit el agente de la invención, el péptido de la invención y/o la vacuna de la invención, y medios para detectar la unión de uno o más de los péptidos con linfocitos T. El kit también puede incluir instrucciones para su uso. El kit también puede comprender medios para detectar el reconocimiento del agente por linfocitos T.

En un aspecto adicional, la presente invención proporciona un método para producir la célula presentadora de antígenos de la invención, comprendiendo el método

i) obtener una célula presentadora de antígenos y 5 ii) poner en contacto la célula in vitro con el agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención y/o la vacuna de la invención.

También se proporciona el uso del agente de la invención, el péptido de la invención, el polinucleótido de la invención, la vacuna de la invención y/o la célula presentadora de antígenos de la invención en diagnóstico o terapia.

En otro aspecto, la presente invención proporciona un método para preparar una vacuna de la invención, comprendiendo el método combinar los primer, segundo y tercer péptidos, y opcionalmente uno o más péptidos adicionales seleccionados del grupo que consiste en SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125,

15 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209, 210, o un fragmento biológicamente activo o variante de una cualquiera o más de las mismas, con un vehículo farmacéuticamente aceptable y opcionalmente un adyuvante.

En otro aspecto, la presente invención proporciona un método para determinar si una composición o alimento es capaz de causar enfermedad celíaca, comprendiendo el método detectar la presencia del agente de la invención, el péptido de la invención y/o el polinucleótido de la invención en la composición o una muestra de alimento.

En un aspecto adicional, la presente invención proporciona un método para identificar una proteasa que puede escindir un péptido como se define en el presente documento, comprendiendo el método poner en contacto el

25 péptido con una proteasa en condiciones para efectuar la escisión específica del péptido para producir un producto proteolítico y detectar el producto proteolítico producido.

En otro aspecto, se proporciona un método para mejorar la semivida y/o biodisponibilidad de un péptido cuando se administra a un sujeto, comprendiendo el método modificar el extremo N terminal del péptido para incluir un acetilo o piroglutamato N terminal y modificar el extremo C terminal del péptido para incluir una amida C terminal.

En una realización, el péptido es para administrar a un sujeto para inducir tolerancia inmunitaria.

Como resultará evidente, los elementos y características preferidos de un aspecto de la invención son aplicables a 35 muchos otros aspectos de la invención.

A lo largo de la presente memoria descriptiva se entenderá que la palabra “comprender”, o variaciones tales como “comprende” o “que comprende”, implica la inclusión de un elemento, número entero o etapa, o grupo de elementos, números enteros o etapas indicados, pero no la exclusión de ningún otro elemento, número entero o etapa, o grupo de elementos, números enteros o etapas.

La invención se describe en lo sucesivo en el presente documento por medio de los siguientes Ejemplos no limitantes y con referencia a las figuras adjuntas.

45 Breve descripción de los dibujos

Figura 1: muestra las frecuencias relativas de linfocitos T específicos de péptidos de gluten detectados por ELISpot de IFN en PBMC recogidas el día 6 después de que los donantes de enfermedad celíaca HLA-DQ2+ comiencen la exposición a trigo frente a polimorfismos de -gliadina 57-73 y -gliadina 57-73 QE65 (SEC ID Nº: 7 y 8, respectivamente).

Figura 2: muestra las respuestas de ELISpot de IFN de linfocitos T de sangre periférica a una diversidad de epítopos de linfocitos T (SEC ID Nº: 2, 46, 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43 y 44).

55 Figura 3: muestra que las frecuencias de linfocitos T específicos de péptidos de gluten detectadas por ELISpot de IFN en PBMC recogidas el Día 6 después de que los donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+ comiencen la exposición a trigo, cebada o centeno revelan una clara jerarquía de las respuestas.

Figura 4: muestra que los linfocitos T en sangre después de exposición a trigo respondieron a una jerarquía altamente uniforme de péptidos de gluten.

Figura 5: muestra el mapeo fino del péptido -gliadina inmunodominante, PQQPQQPQQPFPQPQQPFPWQP (SEC ID Nº: 52).

65 Figura 6: muestra clara jerarquía de péptidos en las bibliotecas de péptidos exhaustivas.

Figura 7: muestra las secuencias de péptidos verificados como péptidos estimulantes de linfocitos T, su jerarquía, dominancia y reconocimiento por clones de linfocitos T inducidos contra los péptidos más activos después de exposición a gluten de trigo, cebada o centeno.

5 Figura 8: muestra que la jerarquía de péptidos estimulantes de linfocitos T difiere según si los donantes de enfermedad celíaca se someten a exposición a trigo, cebada o centeno.

Figura 9: muestra que ciertas mezclas de péptidos de gluten estimulantes de linfocitos T dominantes activan números sustancialmente mayores de linfocitos T en sangre recogida después de exposición in vivo con granos que contienen gluten.

Figura 10: muestra que la combinación de NPL001 (SEC ID Nº: 228), NPL002 (SEC ID Nº: 229) y NPL003 (SEC ID Nº: 230) (NexVax2) activa linfocitos T específicos para NPL001 (SEC ID Nº: 228), en el intestino (ganglios linfáticos mesentéricos, MLN) así como el bazo y ganglios linfáticos poplíteos de drenaje local (PLN) después de

15 administración subcutánea a la pata posterior. La proliferación de linfocitos T específicos de NPL001 es muy similar a los tres sitios anatómicos a pesar de que los péptidos se suministran a la pata posterior. La proliferación de linfocitos T depende de la dosis.

Figura 11: muestra que la administración repetida de NexVax2 (SEC ID Nº: 228, 229 y 230) conduce a la reducción de la proporción (A) y número (B) de linfocitos T CD4+ específicos de gliadina en el bazo.

Figura 12: muestra que la administración repetida de NexVax2 conduce a la inducción de linfocitos Treg.

Figura 13: muestra que la administración repetida de NexVax2 (SEC ID Nº: 228, 229 y 230) da como resultado un 25 aumento de la proporción de células productoras de IFN e IL-10 directamente ex vivo.

Figura 14: muestra que la capacidad proliferativa de linfocitos T específicos de gliadina para antígeno afín se reduce después de la administración repetida de NexVax2 (SEC ID Nº: 228, 229 y 230) y se restaura en presencia de IL-2.

Figura 15: muestra que los linfocitos T de ratones tratados con NexVax2 (SEC ID Nº: 228, 229 y 230) son capaces de suprimir la proliferación de linfocitos T específicos de gliadina sin tratamiento previo.

Figura 16: muestra la producción de citocinas in vitro.

35 Figura 17: programa para dosificación, comidas y recogida de sangre del protocolo de vacunación.

Descripción detallada de la invención

Técnicas y definiciones generales

A no ser que se defina específicamente de otro modo, se interpretará que todos los términos técnicos y científicos usados en el presente documento tienen el mismo significado que se entiende habitualmente por un experto habitual en la materia (por ejemplo, en cultivo celular, genética molecular, inmunología, inmunohistoquímica, química proteica y bioquímica).

45 A no ser que se indique de otro modo, la proteína recombinante, el cultivo celular y las técnicas inmunológicas utilizadas en la presente invención son procedimientos convencionales, bien conocidos por los expertos en la materia. Dichas técnicas se describen y se explican a lo largo de la bibliografía en fuentes tales como J. Perbal, A Practical Guide to Molecular Cloning, John Wiley and Sons (1984); J. Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbour Laboratory Press (1989); T. A. Brown (editor), Essential Molecular Biology: A Practical Approach, Volúmenes 1 y 2, IRL Press (1991); D. M. Glover y B. D. Hames (editores), DNA Cloning; A Practical Approach, Volúmenes 1-4, IRL Press (1995 y 1996); F. M. Ausubel et al. (editores), Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience (1988, incluyendo todas las actualizaciones hasta la actualidad); Ed Harlow and David Lañe (editores) Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbour

55 Laboratory, (1988); y J. E. Coligan et al. (editores), Current Protocols in Immunology, John Wiley & Sons (incluyendo todas las actualizaciones hasta la actualidad).

Como se usa en la memoria descriptiva objeto, las formas singulares “un” y “el” incluyen aspectos plurales a no ser que el contexto claramente indique otra cosa. Por lo tanto, por ejemplo, la referencia a “un péptido” incluye un único péptido, así como dos o más péptidos y así sucesivamente. Además, una célula presentadora de antígenos se proporciona habitualmente como una población de dichas células.

La expresión “enfermedad celíaca” se refiere a una enfermedad inflamatoria crónica del intestino delgado. La enfermedad abarca un espectro de afecciones caracterizadas por diversos grados de sensibilidad al gluten,

65 incluyendo una forma grave caracterizada por una mucosa del intestino delgado plana (atrofia vellosa hiperplásica) y otras formas caracterizadas por síntomas más leves incluyendo fatiga, diarrea crónica, mala absorción de nutrientes,

pérdida de peso, distensión abdominal, anemia así como un riesgo sustancialmente potenciado del desarrollo de osteoporosis y tumores malignos intestinales (linfoma y carcinoma).

La expresión “sensible al gluten” se refiere al estado en el que un sujeto expuesto al gluten, o fragmento peptídico

5 del mismo, muestra uno cualquiera o más de los síntomas de la enfermedad celíaca o una respuesta de linfocitos T inapropiada. En un sujeto que no es sensible al gluten, hay poca o ninguna respuesta de linfocitos T provocada por ingestión del gluten. Por el contrario, en un sujeto sensible al gluten hay una respuesta inmunitaria mediada por linfocitos T CD4+ inapropiada a péptidos derivados del gluten después de la ingesta de los mismos.

Las expresiones “tolerancia inmunitaria”, “tolerancia inmunológica”, “tolerancia” o “desensibilización” se definen en el presente documento como hacer a un sujeto sensible o hipersensible, menos sensible, y sensible o no reactivo al gluten reduciendo la reactividad inmunológica de un sujeto al gluten. Puede generarse tolerancia inmunitaria, por ejemplo, por exposición de superficies mucosas a fragmentos antigénicos inductores de tolerancia del gluten como se define en el presente documento. La administración mucosa de antígeno tanto de dosis alta como de dosis baja

15 puede dar como resultado tolerancia inmunitaria, en la que la respuesta inmunitaria a administración sistémica posterior del antígeno se reduce. Pueden existir al menos dos mecanismos de tolerancia inmunitaria. La tolerancia a altas dosis de un antígeno parece producirse por inactivación o deleción clonal de linfocitos Th1 y Th2. Por el contrario, la tolerancia a bajas dosis de antígeno conduce a supresión inmunitaria testigo mediada por estimulación de linfocitos Treg para producir citocinas supresoras tales como interleucina 4 (IL-4), interleucina 10 (IL-10) y TGF.

La expresión “inducir tolerancia inmunitaria” como se usa en el presente documento se refiere a ocasionar, producir

o provocar tolerancia inmunitaria al gluten en un sujeto sensible al gluten.

El término “hipersensible” se define en el presente documento como fisiológicamente susceptible de forma anómala 25 al gluten.

El término “anergia” se refiere a un estado de insensibilidad o hiposensibilidad reversible de un linfocito T (o linfocito B) en un antígeno.

Como se usa en el presente documento, “Treg” se refiere a una subclase de linfocitos T cuyo papel principal es proporcionar inmunidad mediada por linfocitos T durante una reacción inmunitaria con un fin, y suprimir linfocitos T autorreactivos que han escapado a la selección negativa en el timo. Una “respuesta de Treg”, como se usa en el presente documento, se caracteriza por la diferenciación y proliferación de la población de linfocitos Treg CD4+ o CD8+ que expresan el factor de transcripción de la familia forkhead FOXP3 (caja de forkhead p3) y/o la proteína 35 asociada al MHC de Clase II LAG-3 y/o expresan altos niveles de la cadena alfa del receptor de IL-2 (CD25). Hay también una población menor de linfocitos Treg que expresan FOXP3 CD8+ restringidos al MHC de Clase I. La presencia de linfocitos Treg en la circulación periférica o el bazo puede determinarse mediante análisis de la expresión de CD4+/CD25+. Esto puede conseguirse convenientemente usando citometría de flujo. Además, pueden cuantificarse linfocitos Treg determinando los niveles de ARNm de FOXP3 en células mononucleares derivadas de sangre periférica o de bazo por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) de transcriptasa inversa cuantitativa. Además, la inducción de una respuesta de Treg in vivo puede evaluarse por la medición de citocinas asociadas con Treg a partir de linfocitos mononucleares derivados de sangre periférica o ganglios linfáticos. Los linfocitos Treg muestran típicamente mayores niveles de expresión de las citocinas antiinflamatorias tales como IL-10 y TGF y la presencia de estos mediadores puede determinarse por métodos conocidos en la técnica, tales como citometría de

45 flujo, tinción inmunohistoquímica o ELISA.

La expresión “péptido estimulante de linfocitos T” o “péptido estimulante” se refiere a un péptido o epítopo capaz de activar un linfocito T.

La expresión “activar” o “que activa” o “activación” en relación con un linfocito T se refiere a la presentación por una molécula del MHC en una célula de un epítopo a un receptor de linfocitos T apropiado en un segundo linfocito (T), junto con la unión de una molécula coestimulante por el linfocito T, induciendo de este modo una “respuesta de linfocitos T”.

55 Como se usa en el presente documento, “péptido tóxico” se refiere a un péptido que estimula la activación de linfocitos T en un sujeto.

El término “expansión” como se usa en el presente documento se refiere a la proliferación y amplificación de una población de linfocitos T después de activación de linfocitos T.

El término “inmunodominante” se refiere a una subunidad de un péptido (epítopo) que se reconoce más fácilmente por el sistema inmunitario y por lo tanto influye más en la especificidad de una respuesta inmunitaria inducida, tal como una respuesta de linfocitos T. “Inmunodominante” puede usarse indistintamente con “dominante” en el presente documento.

Como se usa en el presente documento, la expresión “modular una respuesta de linfocitos T” se refiere a regular o ajustar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten, de modo que la respuesta de linfocitos T al gluten se reduzca o disminuya.

5 Como se usa en el presente documento, “modificar la secreción de citocinas” se refiere a cambiar o alterar en alguna medida la secreción de citocinas por un sujeto sensible al gluten, de modo que los efectos de la sensibilidad al gluten en el sujeto se reduzcan o disminuyan. La expresión abarca tanto secreción aumentada de una citocina particular o combinación de citocinas como la secreción reducida de una citocina particular o combinación de citocinas.

Como se usa en el presente documento, “epítopo” se refiere a la parte de un antígeno o un péptido que se reconoce por el sistema inmunitario, por ejemplo, un receptor de linfocitos T o el complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) de clase I o de clase II, un anticuerpo, un receptor de linfocitos B, cuya parte es suficiente para unión de alta afinidad. En general, un epítopo lineal para reconocimiento será de al menos aproximadamente 7 aminoácidos de

15 longitud, y puede ser de 8 aminoácidos, 9 aminoácidos, 10 aminoácidos o más.

El término “poliepítopo” se refiere a la presencia de dos o más epítopos (péptidos) unidos en una única cadena polipeptídica.

Como se usa en el presente documento, “antígeno” e “inmunógeno” y variaciones de los mismos se usan en general indistintamente y se refieren a la estructura que contiene epítopos reconocida por el sistema inmunitario.

La expresión “gluten” o “proteína del gluten” abarca gliadinas alfa (), beta (), gamma () y omega (), y gluteninas de bajo y alto peso molecular (LMW y HMW) en trigo, hordeínas B, C y D en cebada, secalinas ,  y  en centeno y 25 opcionalmente aveninas en avena. Los “péptidos de gluten” son péptidos derivados de, o abarcados dentro de, una

o más de las proteínas del gluten.

El término “gliadina” se refiere a la fracción soluble en alcohol acuoso del gluten, particularmente, pero no exclusivamente, gluten derivado de trigo, por ejemplo Triticum aestivum.

El término “glutenina” se refiere a la fracción insoluble en alcohol acuoso del gluten, particularmente pero no exclusivamente, el gluten derivado de trigo, por ejemplo Triticum aestivum.

Como se usa en el presente documento, “hordeína” u “hordeína de cebada” se refiere al gluten derivado de cebada, 35 Hordein vulgare.

Como se usa en el presente documento, “secalina” o “secalina de centeno” se refiere al gluten derivado de centeno, Secale cereale.

Como se usa en el presente documento, “avedina” o “avedina de avena” se refiere al gluten derivado de avena, Avena sativa.

La “transglutaminasa” tisular es un factor crucial en enfermedad celíaca porque promueve las respuestas de linfocitos T específicas de gluten. La transglutaminasa tisular provoca desamidación selectiva del gluten, que a su

45 vez provoca la generación de una serie de péptidos de gluten que se unen con moléculas HLA-DQ2 o -DQ8 con alta afinidad. La interacción de péptido de gluten HLA-DQ2 (DQ8) resultante desencadena la respuesta de linfocitos T CD4 proinflamatoria. Por lo tanto, el término “desamidación” se refiere a la conversión de glutamina a ácido glutámico, o a la conversión de asparagina a ácido aspártico. Como se usa en el presente documento, la desamidación se refiere particularmente a la conversión de glutamina a ácido glutámico en gluten, un proceso que aumenta la propensión de los péptidos de gluten para activar linfocitos T.

Las expresiones “antígeno de leucocitos humanos” y “HLA” se definen en el presente documento como una identificación genética en glóbulos blancos y plaquetas humanos, compuesta de proteínas que desempeñan un papel crítico en la activación del sistema inmunitario del cuerpo para responder a organismos ajenos. En seres

55 humanos y otros animales, el HLA también se denomina “complejo mayor de histocompatibilidad” (MHC).

Como se usa en el presente documento, el término “agente” se refiere a una colección de péptidos y/o polinucleótidos. Los péptidos y/o polinucleótidos pueden estar en la misma composición (tal como una vacuna), en diferentes composiciones o una combinación de las mismas (por ejemplo, el primer y segundo epítopo definidos en el presente documento en una composición, y el tercero en una composición separada). Si están en composiciones diferentes, preferentemente estarán en proximidad estrecha, tal como en un kit. En consecuencia, los métodos de la invención contemplan proporcionar (por ejemplo, administrar a un sujeto) los péptidos y/o polinucleótidos componentes individuales de un agente de la invención en una única composición (vacuna), o secuencialmente en diferentes composiciones o una combinación de los mismos.

El término “sujeto” incluye entre otros a un individuo, paciente, diana, hospedador o receptor independientemente de si el sujeto es un animal humano o no humano incluyendo especies de mamífero y también especies aviares. El término “sujeto”, por lo tanto, incluye un ser humano, un primate no humano (por ejemplo gorila, tití, Mono Verde Africano), ganado (por ejemplo, oveja, vaca, cerdo, caballo, burro, cabra), animal de ensayo de laboratorio (por

5 ejemplo, rata, ratón, conejo, cobaya, hámster), animal de compañía (por ejemplo, perro, gato), animal salvaje en cautividad (por ejemplo, zorro, ciervo, animales de caza) y especies aviares incluyendo aves de corral (por ejemplo, pollos, patos, gansos, pavos). El sujeto preferido, sin embargo, es un ser humano, más preferentemente un ser humano que es HLA-DQ2+.

Péptidos

Los términos “péptido”, “polipéptido” y “proteína” pueden usarse en general indistintamente y abarcan fragmentos biológicamente activos, variantes incluyendo homólogos y sales. Sin embargo, el término “péptido” se usa típicamente para hacer referencia a moléculas relativamente cortas que comprenden menos de 50, más

15 preferentemente menos de 25 aminoácidos.

La longitud global de cada péptido definido en el presente documento puede ser, por ejemplo, de 7 a 50 aminoácidos, tales como 7, 8, 9 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 25, 30, 35, 40, 45 o 50 aminoácidos. Se contempla que péptidos más cortos pueden demostrar ser útiles, particularmente los de 20 o menos aminoácidos de longitud, en productos terapéuticos para reducir la probabilidad de anafilaxis pero es probable que péptidos más largos con múltiples epítopos sean tan eficaces como múltiples péptidos cortos en diagnóstico basado en linfocitos T funcional in vitro.

Como se usa en el presente documento, un “fragmento biológicamente activo” consiste en menos aminoácidos que

25 los del péptido de referencia definido, por ejemplo, por la secuencia de SEC ID Nº: 13, 14 o 16. Preferentemente, los fragmentos biológicamente activos son capaces de generar una respuesta de linfocitos sustancialmente igual o mayor en un sujeto sensible al gluten que el péptido del que deriva. En otra realización, los fragmentos biológicamente activos son capaces de generar al menos 50%, más preferentemente al menos 75% de la respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten del péptido del que deriva. En una realización, los fragmentos biológicamente activos son de 14, 13, 12, 11, 10, 9, 8 y no menos de 7 aminoácidos de longitud. Se contemplan particularmente deleciones y/o adiciones en uno de los extremo de cualquiera de los péptidos.

Son ejemplos de fragmentos biológicamente activos del péptido proporcionado como SEC ID Nº: 13 los que incluyen PELP (SEC ID Nº: 234), que se ha descubierto que es esencial para el reconocimiento de linfocitos T.

35 Los fragmentos de 7 unidades adecuados en consecuencia de SEC ID Nº: 13 incluyen, pero sin limitación: QPELPYP (SEC ID Nº: 235); PELPYPQ (SEC ID Nº: 236); PQPELPY (SEC ID Nº:237) y FPQPELP (SEC ID Nº: 238).

Los fragmentos de 8 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen, pero sin limitación: PELPYPQP (SEC ID Nº: 239); QPELPYPQ (SEC ID Nº: 240); PQPELPYP (SEC ID Nº:241); FPQPELPY (SEC ID Nº:242) y PFPQPELP (SEC ID Nº: 243).

Los fragmentos de 9 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen, pero sin limitación:

45 PELPYPQPQ (SEC ID Nº: 244); QPELPYPQP (SEC ID Nº: 245); PQPELPYPQ (SEC ID Nº: 246); FPQPELPYP (SEC ID Nº: 247); PFPQPELPY (SEC ID Nº: 248) y QPFPQPELP (SEC ID Nº: 249).

Los fragmentos de 10 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen, pero sin limitación: QPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 250); PQPELPYPQP (SEC ID Nº: 251); PQPELPYPQP (SEC ID Nº: 252); FPQPELPYPQ (SEC ID Nº: 253); PFPQPELPYP (SEQ ID NO: 254); QPFPQPELPY (SEC ID Nº: 255) y LQPFPQPELP (SEC ID Nº: 256).

Los fragmentos de 11 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen, pero sin limitación: PQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 257); FPQPELPYPQP (SEC ID Nº: 258); PFPQPELPYPQ (SEC ID Nº: 259);

55 QPFPQPELPYP (SEC ID Nº: 260) y LQPFPQPELPY (SEC ID Nº: 261).

Los fragmentos de 12 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen pero sin limitación: FPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 262); PFPQPELPYPQP (SEC ID Nº: 263); QPFPQPELPYPQ (SEC ID Nº: 264) y LQPFPQPELPYP (SEC ID Nº: 265).

Los fragmentos de 13 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen pero sin limitación: PFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 266); QPFPQPELPYPQP (SEC ID Nº: 267) y LQPFPQPELPYPQ (SEC ID Nº: 268).

Los fragmentos de 14 unidades adecuados de SEC ID Nº: 13 incluyen pero sin limitación: 65 QPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 269) y LQPFPQPELPYPQP (SEC ID Nº: 270).

Son ejemplos de fragmentos biológicamente activos del péptido proporcionado como SEC ID Nº: 14 los que incluyen QPEQPF (SEC ID Nº: 317), que se ha descubierto que es esencial para el reconocimiento de linfocitos T.

Los fragmentos de 7 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: 5 QPEQPFP (SEC ID Nº: 271) y PQPEQPF (SEC ID Nº: 272).

Los fragmentos de 8 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: QPEQPFPW (SEC ID Nº: 273); PQPEQPFP (SEC ID Nº.274) y FPQPEQPF (SEC ID Nº: 275).

Los fragmentos de 9 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: QPEQPFPWQ (SEC ID Nº: 276); PQPEQPFPW (SEC ID Nº: 277); FPQPEQPFP (SEC ID Nº: 278) y PFPQPEQPF (SEC ID Nº: 279).

Los fragmentos de 10 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: 15 QPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 280); PQPEQPFPWQ (SEC ID Nº: 281); FPQPEQPFPW (SEC ID Nº: 282); PFPQPEQPFP (SEC ID Nº: 283) y QPFPQPEQPF (SEC ID Nº.284).

Los fragmentos de 11 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: PQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 285); FPQPEQPFPWQ (SEC ID Nº: 286); PFPQPEQPFPW (SEC ID Nº: 287) y QPFPQPEQPFP (SEC ID Nº: 288).

Los fragmentos de 12 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: FPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 289); PFPQPEQPFPWQ (SEC ID Nº: 290) y QPFPQPEQPFPW (SEC ID Nº: 291).

25 Los fragmentos de 13 unidades adecuados de SEC ID Nº: 14 incluyen, pero sin limitación: PFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 292) y QPFPQPEQPFPWQ (SEC ID Nº: 293).

Son ejemplos de fragmentos biológicamente activos del péptido proporcionado como SEC ID Nº: 16 los que incluyen PIPEQPQ (SEC ID Nº: 294), que se espera que sea esencial para el reconocimiento de linfocitos T.

Los fragmentos de 8 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: PIPEQPQP (SEC ID Nº: 295) y QPIPEQPQ (SEC ID Nº: 296).

Los fragmentos de 9 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: 35 PIPEQPQPY (SEC ID Nº: 297); QPIPEQPQP (SEC ID Nº: 298) y EQPIPEQPQ (SEC ID Nº: 299).

Los fragmentos de 10 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: PIPEQPQPYP (SEC ID Nº: 300); QPIPEQPQPY (SEC ID Nº: 301); EQPIPEQPQP (SEC ID Nº: 302) y PEQPIPEQPQ (SEC ID Nº: 303).

Los fragmentos de 11 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: PIPEQPQPYPQ (SEC ID Nº: 304); QPIPEQPQPYP (SEC ID Nº: 305); EQPIPEQPQPY (SEC ID Nº: 306) y PEQPIPEQPQP (SEC ID Nº: 307).

45 Los fragmentos de 12 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: PIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 308); QPIPEQPQPYPQ (SEC ID Nº: 309); EQPIPEQPQPYP (SEC ID Nº: 310) y PEQPIPEQPQPY (SEC ID Nº: 311).

Los fragmentos de 13 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: QPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 312); EQPIPEQPQPYPQ (SEC ID Nº: 313) y PEQPIPEQPQPYP (SEC ID Nº: 314).

Los fragmentos de 14 unidades adecuados de SEC ID Nº: 16 incluyen, pero sin limitación: EQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 315) y PEQPIPEQPQPYPQ (SEC ID Nº: 316).

55 En una realización, el agente o vacuna comprenden más de un fragmento peptídico biológicamente activo del péptido de SEC ID Nº: 13, 14 y/o 16. Por ejemplo, el péptido de SEC ID Nº: 13 podría sustituir dos péptidos separados, uno reconocido por linfocitos T específico para DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y el otro reconocido por linfocitos T específicos para DQ2--II (SEC ID Nº: 4).

Se ha determinado que dentro del fragmento PELP de SEC ID Nº: 13 esencial para el reconocimiento de linfocitos T, la E debe estar presente o puede ser opcionalmente una D. Ninguna otra sustitución permite el reconocimiento de linfocitos T. En consecuencia, cualquier variante o fragmento de SEC ID Nº: 13 debe comprender la región PELP o PDLP.

65 Las variantes biológicamente activas incluyen péptidos que varían en uno o más aminoácidos con respecto al péptido definido, que también se conocen en la técnica como homólogos. Por ejemplo, una variante puede

comprender una o más sustituciones de aminoácidos en uno cualquiera o más de los péptidos. Como se usa en el presente documento, “sustituido” o “sustitución” incluye sustitución, reemplazo, adición, inserción, omisión y/o deleción (ya que dichas variantes también pueden ser fragmentos) de un resto o restos de aminoácidos. En particular, esto se refiere a péptidos que tienen sustitución conservativa sin perder o disminuir significativamente su

5 uso en los métodos de la invención. Preferentemente, las variantes biológicamente activas son capaces de generar una respuesta de linfocitos T sustancialmente igual o mayor en un sujeto sensible al gluten que el péptido del que deriva. En otra realización, las variantes biológicamente activas son capaces de generar al menos 50%, más preferentemente al menos 75% de la respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten del péptido del que deriva.

10 Las variantes biológicamente activas de los péptidos pueden identificarse modificando la secuencia de cada péptido y ensayando después el péptido resultante con respecto a la capacidad para estimular una respuesta inmunitaria, por ejemplo, producción de linfocitos T.

15 En una realización, se varían no más de 5, más preferentemente no más de 4, más preferentemente no más de 3, más preferentemente no más de 2 y aún más preferentemente solamente 1 aminoácido en un péptido definido (por sustitución, deleción o adición), en comparación con una secuencia peptídica definida en el presente documento.

En una realización alternativa, el porcentaje de identidad entre una secuencia particular (variante) y una secuencia

20 de referencia (péptido definido en el presente documento) es de al menos aproximadamente 60%, al menos aproximadamente 70%, al menos aproximadamente 80%, al menos aproximadamente 90%, al menos aproximadamente 95% o mayor tal como al menos aproximadamente 96%, 97%, 98%, 99% o mayor. El porcentaje de identidad puede determinarse usando paquetes de software disponibles fácilmente, tales como BLAST (www.ncbi.nlm.nih.gov/) y GAP.

25 En una realización, el segundo péptido comprende la secuencia de aminoácidos PQQPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 320), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo.

En otra realización, el tercer péptido comprende la secuencia de aminoácidos FPEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 30 321), o un fragmento biológicamente activo o variante del mismo.

Los aminoácidos naturales incluyen alanina (A), arginina (R), asparagina (N), ácido aspártico (D), cisteína (C), glutamina (Q), ácido glutámico (E), glicina (G), histidina (H), isoleucina (I), leucina (L), lisina (K), metionina (M), fenilalanina (F), prolina (P), serina (S), treonina (T), triptófano (W), tirosina (Y), valina (V), hidroxiprolina (O y/o Hyp),

35 isoditirosina (IDT) y diisoditirosina (di-IDT). La hidroxiprolina, isoditirosina y diisoditirosina se forman postraduccionalmente. Se contempla en particular el uso de aminoácidos naturales, en particular los 20 aminoácidos codificados genéticamente.

Las sustituciones pueden ser sustituciones de aminoácidos conservativas, en las que el aminoácido sustituido tiene

40 propiedades estructurales o químicas similares con el aminoácido correspondiente en la secuencia de referencia. Como alternativa, las sustituciones pueden ser sustituciones de aminoácidos no conservativas siempre que se mantenga la actividad deseada.

Como ejemplo, las sustituciones de aminoácidos conservativas implican la sustitución de un aminoácido alifático o

45 hidrófobo, por ejemplo, alanina, valina, leucina e isoleucina, con otro; sustitución de un aminoácido que contiene hidroxilo, por ejemplo, serina y treonina, con otro; sustitución de un resto ácido, por ejemplo, ácido glutámico o ácido aspártico, con otro; reemplazo de un resto que contiene amida, por ejemplo, asparagina y glutamina, con otro; reemplazo de un resto aromático, por ejemplo fenilalanina y tirosina, con otro; reemplazo de un resto básico, por ejemplo, lisina, arginina e histidina, con otro; y reemplazo de un aminoácido pequeño, por ejemplo, alanina, serina,

50 treonina, metionina y glicina con otro.

Dichas sustituciones conservativas se muestran en la Tabla 1 bajo el encabezamiento de sustituciones preferidas. Si dichas sustituciones no dan como resultado un cambio en la actividad funcional, entonces pueden introducirse cambios más sustanciales, denominados sustituciones ejemplares en la Tabla 1, y la variante resultante puede

55 analizarse con respecto a actividad funcional.

Tabla 1. Sustituciones de aminoácidos.

Resto Original Sustituciones Ejemplares Sustitución Preferida

Ala (A) Val; Leu; He Val Arg (R) Lys; Gln; Asn Lys Asn (N) Gln; His; Lys; Arg Gln Asp (D) Glu Glu Cys (C) Ser Ser Gln (Q) Asn Asn Glu (E) Asp Asp

Gly (G) Pro Pro His (H) Asn; Gln; Lys; Arg Arg lie (I) Leu; Val; Met; Ala; Phe; norleucina Leu Leu (L) norleucina; He; Val; Met; Ala; Phe Ile Lys (K) Arg; Gln; Asn Arg Met (M) Leu; Phe; He Leu Phe (F) Leu; Val; lie; Ala Leu Pro (P) Gly Gly Ser (S) Thr Thr Thr (T) Ser Ser Trp (W) Tyr Tyr Tyr (Y) Trp; Phe; Thr; Ser Phe Val (V) Leu, He, Met; Phe; Ala; norleucina Leu

Pueden producirse variantes peptídicas por mutagénesis u otros métodos químicos. La exploración de alanina es una técnica útil para identificar aminoácidos importantes. En esta técnica, se reemplaza un resto de aminoácido por Ala y se determina su efecto en la actividad del péptido. Por ejemplo, pueden sustituirse restos de cisteína para

5 minimizar la dimerización mediante enlaces disulfuro. Cada uno de los restos de aminoácidos del péptido se analiza de esta manera para determinar las regiones importantes del péptido. Se entienden bien en la técnica medios para preparar dichos péptidos.

Además de aminoácidos de origen natural, también se contemplan y están dentro del alcance de la invención

10 aminoácidos de origen no natural o aminoácidos modificados. De hecho, como se usa en el presente documento, “aminoácido” se refiere a aminoácidos de origen natural, aminoácidos de origen no natural y análogos de aminoácidos, y a los estereoisómeros D o L de cada uno.

Una lista no limitante de aminoácidos no convencionales y/o no naturales que puede usarse como sustituciones 15 adecuadas para los aminoácidos de origen natural y sus abreviaturas convencionales se exponen en la Tabla 2.

Tabla 2. Aminoácidos no convencionales. ácido -aminobutírico Abu -amino--metilbutirato Mgabu -metilaminoisobutirato Maib -metil--aminobutirato Mgabu -metilciclohexilalanina Mchexa -metilciclopentilalanina Mcpen -metil--naftilalanina Manap -metilpenicilamina Mpen -naftilalanina Anap ácido -aminobutírico Gabu aminociclopropano-carboxilato Cpro ácido aminoisobutírico Aib aminonorbornil-carboxilato Norb ciclohexilalanina Chexa ciclopentilalanina Cpen D-alanina Dal D-arginina Darg D-ácido aspártico Dasp D-cisteína Dcys D-glutamina Dgln D-ácido glutámico Dglu D-histidina Dhis D-isoleucina Dile D-leucina Dleu D-lisina Dlys D-metionina Dmet D-ornitina Dorn D-fenilalanina Dphe D-prolina Dpro D-serina Dser D-treonina Dthr D-triptófano Dtrp D-tirosina Dtyr D-valina Dval D--metilalanina Dmala

D--metilarginina Dmarg D--metilasparagina Dmasn D--metilaspartato Dmasp D--metilcisteína Dmcys D--metilglutamina Dmgln D--metilhistidina Dmhis D--metilisoleucina Dmile D--metilleucina Dmleu D--metillisina Dmlys D--metilmetionina Dmmet D--metilornitina Dmorn D--metilfenilalanina Dmphe D--metilprolina Dmpro D--metilserina Dmser D--metiltreonina Dmthr D--metiltriptófano Dmtrp D--metiltirosina Dmty D--metilvalina Dmval D-N-metilalanina Dnmala D-N-metilarginina Dnmarg D-N-metilasparagina Dnmasn D-N-metilaspartato Dnmasp D-N-metilcisteína Dnmcys D-N-metilglutamina Dnmgln D-N-metilglutamato Dnmglu D-N-metilhistidina Dnmhis D-N-metilisoleucina Dnmile D-N-metilleucina Dnmleu D-N-metillisina Dnmlys D-N-metilmetionina Dnmmet D-N-metilornitina Dnmorn D-N-metilfenilalanina Dnmphe D-N-metilprolina Dnmpro D-N-metilserina Dnmser D-N-metiltreonina Dnmthr D-N-metiltriptófano Dnmtrp D-N-metiltirosina Dnmtyr D-N-metilvalina Dnmval L-t-butilglicina Tbug L-etilglicina Etg L-homofenilalanina Hphe L-metiletilglicina Metg L-norleucina Nle L-norvalina Nva L--metilalanina Mala L--metilarginina Marg L--metilasparagina Masn L--metilaspartato Masp L--metil-t-butiglicina Mtbug L--metilcisteína Mcys L--metilglutamato Mglu L--metilglutamina Mgln L--metilhistidina Mhis L--metilhomofenilalanina Mhphe L--metilisoleucina Mile L--metilleucina Mleu L--metillisina Mlys L--metilmetionina Mmet L--metilnorleucina Mnle L--metilnorvalina Mnva L--metilornitina Morn L--metilfenilalanina Mphe L--metilprolina Mpro

L--metilserina Mser L--metiltreonina Mthr L--metiltriptófano Mtrp L--metiltirosina Mtyr L--metilvalina Mval L-N-metilalanina Nmala L-N-metilarginina Nmarg L-N-metilasparagina Nmasn L-N-ácido metilaspártico Nmasp L-N-metilcisteína Nmcys L-N-metilglutamina Nmgln L-N-ácido metilglutámico Nmglu L-N-metilhistidina Nmhis L-N-metilisoleucina Nmile L-N-metilleucina mleu L-N-metillisina Nmlys L-N-metilmetionina Nmmet L-N-metilnorleucina Nmnle L-N-metilnorvalina Nmnva L-N-metilornitina Nmorn L-N-metilfenilalanina Nmphe L-N-metilprolina Nmpro L-N-metilserina Nmser L-N-metiltreonina Nmthr L-N-metiltriptófano Nmtrp L-N-metiltirosina Nmtyr L-N-metilvalina Nmval L-N-metiletilglicina Nmetg L-N-metil-t-butilglicina Nmtbug L-N-metilhomofenilalanina Nmhphe L-O-metilserina Omser L-O-metilhomoserina Omhser N-(4-aminobutil)glicina Nglu N-(2-aminoetil)glicina Naeg N-(3-aminopropil)glicina Norn N-(2,2-difeniletil)glicina Nbhm N-(3,3-difenilpropil)glicina Nbhe N-(3-guanidinopropil)glicina Narg N-(1-hidroxietil)glicina Nthr N-(3-indoliletil)glicina Nhtrp N-(2-carbamiletil)glicina Ngln N-(2-carboxietil)glicina Nglu N-(1-metilpropil)glicina Nile N-(2-metilpropil)glicina Nleu N-(1-metiletil)glicina Nval N-(2-metiltioetil)glicina Nmet N-amino--metilbutirato Nmaabu N-bencilglicina Nphe N-(carbamilmetil)glicina Nasn N-(carboximetil)glicina Nasp N-ciclobutilglicina Ncbut N-cicloheptilglicina Nchep N-ciclohexilglicina Nchex N-cicIodecilglicina Ncdec N-cilcododecilglicina Ncdod N-ciclooctilglicina Ncoct N-ciclopropilglicina Ncpro N-cicloundecilglicina Ncund N-(hidroxietil)glicina Nser N-(p-hidroxifenil)glicina Nhtyr N-(imidazoliletil)glicina Nhis N-metil--aminobutirato Nmgabu N-metilaminoisobutirato Nmaib N-metilciclohexilalanina Nmchexa N-metilciclopentilalanina Nmcpen

N-metilglicina Nala N-metil--naftilalanina Nmanap N-metilpenicilamina Nmpen N-(tiometil)glicina Ncys penicilamina Pen N-(N-(3,3-difenilpropil)carbamilmetil)glicina Nnbhe N-(N-(2,2-difeniletil)carbamilmetil)glicina Nnbhm 1-carboxi-1-(2,2-difeniletilamino)ciclopropano Nmbc

Se incluyen dentro del alcance de la presente invención un agente que comprende un péptido que se modifica durante o después de la traducción o síntesis (por ejemplo, por farnesilación, prenilación, miristoilación, glucosilación, palmitoilación, acetilación, fosforilación (tal como fosfotirosina, fosfoserina o fosfotreonina), amidación,

5 derivatización por grupos de bloqueo/protección conocidos, escisión proteolítica, enlace con una molécula de anticuerpo u otro ligando celular, y similares). Puede utilizarse cualquiera de los numerosos métodos de modificación química conocidos dentro de la técnica incluyendo, pero sin limitación, escisión química específica por bromuro de cianógeno, tripsina, quimiotripsina, papaína, proteasa V8, NaBH4, acetilación, formilación, oxidación, reducción, síntesis metabólica en presencia de tunicamicina, etc.

10 Las expresiones “grupo protector” y “grupo de bloqueo” como se usa en el presente documento, se refieren a modificaciones del péptido que lo protegen de reacciones químicas indeseables, particularmente in vivo. Los ejemplos de dichos grupos protectores incluyen ésteres de ácidos carboxílicos y ácidos borónicos, éteres de alcoholes y acetales, y cetales de aldehídos y cetonas. Los ejemplos de grupos adecuados incluyen grupos

15 protectores de acilo tales como, por ejemplo, furoílo, formilo, adipilo, celaílo, suberilo, dansilo, acetilo, tehílo, benzoílo, trifluoroacetilo, succinilo y metoxisuccinilo; grupos protectores de uretano aromático tales como, por ejemplo, benciloxicarbonilo (Cbz), grupos protectores de uretano alifático tales como, por ejemplo, t-butoxicarbonilo (Boc) o 9-fluorenilmetoxi-carbonilo (FMOC); piroglutamato y amidación. Los expertos en la materia conocerán muchas otras modificaciones que proporcionan potencia aumentada, actividad prolongada, facilidad de purificación

20 y/o semivida aumentada.

En una realización, pueden generarse uno o más restos de glutamato de uno o más de los péptidos por actividad tTG sobre un péptido. En una realización alternativa, esta reacción sucede in vivo después de la administración.

25 Los péptidos pueden comprender una o más modificaciones, que pueden ser modificaciones postraduccionales naturales o modificaciones artificiales. La modificación puede proporcionar un resto químico (típicamente por sustitución de un hidrógeno, por ejemplo, de un enlace C-H), tal como un grupo amino, acetilo, acilo, carboxi, hidroxi

o halógeno (por ejemplo, flúor), o un grupo de carbohidrato. Típicamente, la modificación está presente en el extremo N o C terminal. Además, uno o más de los péptidos pueden estar PEGilados, en los que el PEG (grupo de

30 polietilenoxi) proporciona un tiempo de vida potenciado en el torrente sanguíneo. Uno o más de los péptidos también pueden combinarse como una proteína de fusión o quimérica con otras proteínas, o con agentes de unión específicos que permiten la dirección a restos específicos en una célula diana.

Pueden obtenerse variantes peptídicas en las que el péptido se ha modificado químicamente en el nivel de las 35 cadenas laterales de aminoácidos, de quiralidad de aminoácidos y/o de la cadena principal peptídica.

Pueden realizarse cambios particulares a los péptidos que tengan SEC ID Nº: 13, 14 y/o 16 para mejorar la resistencia a degradación u optimizar las propiedades de solubilidad o mejorar de otro modo la biodisponibilidad en comparación con el péptido parental, proporcionando de este modo péptidos que tengan propiedades terapéuticas,

40 de diagnóstico y/o farmacocinéticas similares o mejoradas. Una de dichas modificaciones preferida incluye el uso de un grupo acetilo o piroglutamato N terminal y/o una amida C terminal. Se han mostrado modificaciones tales en la Tabla 5 que aumentan significativamente la semivida y biodisponibilidad de los péptidos en comparación con los péptidos precursores que tienen un extremo N y C terminal libre. Aunque se ha sugerido la acetilación N terminal y amidación C terminal en la técnica en relación con péptidos terapéuticos, el uso de un piroglutamato N terminal en el

45 contexto de inducción de tolerancia inmunitaria no se ha analizado previamente. Se anticipa que otros péptidos útiles para inducir tolerancia inmunitaria también podrían beneficiarse de un acetilo o piroglutamato N terminal y/o una amida C terminal y en consecuencia, en un aspecto adicional, se proporciona un método para mejorar la semivida y/o biodisponibilidad de un péptido que comprende modificar el extremo N terminal del péptido mediante la adición de un acetilo o piroglutamato N terminal y modificar el extremo C terminal del péptido mediante la adición de una

50 amida C terminal. En una realización particular, el péptido comprende la secuencia de aminoácidos proporcionada como SEC ID Nº: 228, 229 y/o 230.

En una realización, la variante peptídica de SEC ID Nº: 13 tiene la secuencia:

piroELQPFPQPELPYPQPQ-amida (SEC ID Nº: 228; NPL001); o

55 Ac-QLQPFPQPELPYPQPQ-amida (SEC ID Nº: 231; NPL030). En otra realización, la variante peptídica de SEC ID Nº: 14 tiene la secuencia: piroEQPFPQPEQPFPWQP-amida (SEC ID Nº: 229; NPL002); o Ac-QQPFPQPEQPFPWQP-amida (SEC ID Nº: 232; NPL031).

En otra realización, la variante peptídica de SEC ID Nº: 16 tiene la secuencia: piroEPEQPIPEQPQPYPQQ-amida (SEC ID Nº: 230; NPL003); o Ac-FPEQPIPEQPQPYPQQ-amida (SEC ID Nº: 233; NPL032).

5 El término “piroE” indica piroglutamato N terminal y el término “Ac” indica acetilo N terminal.

En una realización particular, el agente o vacuna comprende NPL001, NPL002 y NPL003. Dicho agente o vacuna se describe en el presente documento como NexVax2.

En otra realización, la variante peptídica de SEC ID Nº: 13 tiene la secuencia:

LPYPQPELPYPQ (SEC ID Nº: 60; W01-E7).

En otra realización, al menos una glutamina, en uno cualquiera de los péptidos se sustituye por un glutamato.

15 Ciertos péptidos descritos en el presente documento pueden existir en formas geométricas o estereoisoméricas particulares. La presente invención contempla todas estas formas, incluyendo isómeros cis (Z) y trans (E), enantiómeros R y S, diastereómeros, (D)-isómeros, (L)-isómeros, las mezclas racémicas de los mismos, y otras mezclas de los mismos, como quedan dentro del alcance de la invención. Pueden estar presentes átomos de carbono asimétrico adicionales en un sustituyente, tal como un grupo alquilo. Se pretende que todos estos isómeros, así como mezclas de los mismos, se incluyan en la presente invención.

En otro ejemplo, para evitar la escisión por peptidasas, uno cualquiera o más de los péptidos pueden incluir un enlace peptídico no escindible en lugar de un enlace peptídico particularmente sensible para proporcionar un péptido más estable. Dichos enlaces peptídicos no escindibles pueden incluir aminoácidos beta.

25 En ciertas realizaciones, uno cualquiera o más de los péptidos pueden incluir un grupo funcional, por ejemplo, en lugar del enlace peptídico escindible, que facilita la inhibición de una proteasa de tipo serina, cisteína o aspartato, según sea apropiado. Por ejemplo, la invención incluye una peptidil dicetona o un peptidil ceto éster, una péptido haloalquilcetona, un péptido sulfonil fluoruro, un peptidil boronato, un péptido epóxido, un peptidil diazometano, un peptidil fosfonato, isocoumarinas, benzoxacin-4-onas, carbamatos, isocianatos, anhídridos isatoicos o similares. Dichos grupos funcionales se han proporcionado en otras moléculas peptídicas, y se conocen rutas generales para su síntesis.

Una variante puede ser un mimético. Se entiende que el término “mimético” se refiere a una sustancia que tiene

35 alguna similitud química con la molécula que imita y conserva una actividad particular de interés (por ejemplo, que induce tolerancia). El fundamento subyacente detrás del uso de miméticos peptídicos, es que la cadena principal peptídica de proteínas existe principalmente para orientar cadenas laterales de aminoácidos de tal manera que faciliten las interacciones moleculares, tales como las de linfocitos T y péptidos MHC, anticuerpo y antígeno, enzima y sustrato o proteínas de armazón. Un mimético peptídico se diseña para permitir interacciones moleculares similares a la molécula natural. Los miméticos incluyen olefinas, fosfonatos, análogos de aza-aminoácidos y similares. Los expertos en la materia apreciarán fácilmente métodos para diseñar miméticos de péptidos y podrán utilizarlos para diseñar miméticos de los péptidos definidos en el presente documento.

Los péptidos pueden analizarse por análisis de hidrofilia, que puede usarse para identificar las regiones hidrófobas e

45 hidrófilas del péptido, ayudando de este modo al diseño de péptidos para manipulación experimental, tal como en experimentos de unión, síntesis de anticuerpos, etc. También puede realizarse análisis estructural secundario para identificar regiones de un péptido que adopten motivos estructurales específicos. Puede conseguirse manipulación, traducción, predicción de estructura secundaria, perfiles de hidrofilia e hidrofobicidad, predicción de fase abierta de lectura y representación, y determinación de homologías de secuencia, usando programas de software informático disponibles en la técnica. También pueden usarse otros métodos de análisis estructural incluyendo, pero sin limitación, cristalografía de rayos X, espectrometría de masas y cromatografía de gases, modelación informática, dispersión rotatoria óptica (ORD) o dicroísmo circular (CD).

Los péptidos, fragmentos o variantes pueden estar en una forma de sal, preferentemente, una forma de sal

55 farmacéuticamente aceptable. “Una forma de sal farmacéuticamente aceptable” incluye las sales no tóxicas convencionales o sales de amonio cuaternario de un péptido, por ejemplo, de ácido orgánicos o inorgánicos no tóxicos. Las sales no tóxicas convencionales incluyen, por ejemplo, las derivadas de ácidos inorgánicos tales como clorhidrato, bromhídrico, sulfúrico, sulfónico, fosfórico, nítrico y similares; y las sales preparadas a partir de ácidos orgánicos tales como acético, propiónico, succínico, glicólico, esteárico, láctico, málico, tartárico, cítrico, ascórbico, palmítico, maleico, hidromaleico, fenilacético, glutámico, benzoico, salicílico, sulfanílico, 2-acetoxibenzoico, fumárico, toluenosulfónico, metanosulfónico, etano disulfónico, oxálico, isotiónico y similares.

Los péptidos pueden proporcionarse en el agente o vacuna como péptidos separados o unidos, por ejemplo, en una estructura poliepitópica. En una realización, los péptidos pueden presentarse en una única cadena polipeptídica

65 (serie poliepitópica), es decir, en una disposición lineal o circular. En otra realización, los péptidos pueden presentarse en un sistema de presentación de antígenos múltiple, particularmente basándose en una cadena

principal de dendrímero tal como polilisina. Una cadena principal de polilisina proporciona una disposición no lineal, ramificado, de epítopos. Este sistema proporciona la ventaja sobre una serie poliepitópica de que los péptidos no interfieren entre sí o son lábiles a la escisión en epítopos crípticos y por lo tanto son capaces de inducir una respuesta de linfocitos T completa.

5 Conjugados

Uno o más de los péptidos pueden conjugarse con un compuesto usando métodos convencionales. Los ejemplos de compuestos con los que pueden conjugarse los péptidos incluyen pero sin limitación un radioisótopo, un marcador fluorescente, un compuesto quimioluminiscente, un marcador enzimático, un radical libre, un marcador de avidinabiotina, un marcador de bacteriófagos, un compuesto que aumenta la semivida del péptido en un sujeto, un adyuvante, una molécula del MHC o fragmento de la misma.

El compuesto puede facilitar la detección y/o el aislamiento o aumentar la inmunogenicidad del péptido conjugado.

15 “Conjugado” como se usa en el presente documento significa acoplado mediante enlaces covalentes o no covalentes. Aunque se prefieren enlaces covalentes, el compuesto también puede unirse con el péptido mediante formación de complejos sin enlace covalente, por ejemplo, mediante enlaces de hidrógeno o interacción electrostática, hidrófoba, etc.

Los isótopos radiactivos típicos incluyen 3H, 125I, 1311, 32P, 35S, 14C, 51Cr, 36Cl, 57Co, 58Co, 59Fe, 75Se y 152Eu.

Los marcadores fluorescentes típicos incluyen fluoresceín isotiocianato, rodamina, ficoeritrina, ficocianina, aloficocianina, o-ftaldehído y fluorescamina.

25 Los compuestos quimioluminiscentes típicos incluyen luminol, isoluminol, ésteres de acridinio aromáticos, imidazoles, sales de acridinio y los ésteres de oxalato. Los compuestos bioluminiscentes típicos incluyen luciferina, luciferasa y aecuorina.

Los marcadores enzimáticos típicos incluyen fosfatasa alcalina, beta-galactosidasa, glucosa-6-fosfato deshidrogenasa, maleato deshidrogenasa, glucosa oxidasa y peroxidasa.

En una realización, se incluye un enlazador no específico entre el compuesto y el péptido con el que se conjuga. Dicho enlazador no está implicado en la actividad peptídica. En su lugar el enlazador puede actuar como un

35 espaciador entre el péptido y un resto funcional. Los usos para un enlazador incluyen inmovilización del péptido, tal como para ayudar a la purificación o detección. Como alternativa, un enlazador puede permitir la unión de un compuesto con el péptido que permite el suministro específico del péptido con una diana particular, tal como una célula o un tejido, espacial o temporalmente. Cuando se usan como una vacuna, uno o más de los péptidos pueden acoplarse con un enlazador que actúa como un espaciador entre el péptido y un vehículo inmunógeno, o permite el acoplamiento mejorado entre el péptido y el vehículo inmunógeno y evita la formación de epítopos crípticos.

En una realización, uno o más de los péptidos se acoplan covalentemente con un adyuvante (proteína vehículo inmunógena), tal como toxoide diftérico (DT), hemocianina de lapa californiana (KLH), toxoide del tétanos (TT) o la proteína nuclear del virus de la gripe (NP), para aumentar su inmunogenicidad, usando cualquiera de varias

45 químicas de conjugación conocidas en la técnica. Puede estar presente un enlazador no específico entre el péptido y el vehículo inmunógeno y se une preferentemente con el péptido o se sintetiza conjuntamente para facilitar el acoplamiento con el vehículo inmunógeno y/o para actuar como un espaciador entre el péptido y el vehículo inmunógeno.

Cuando se usa como un agente de diagnóstico, se conjugan preferentemente uno o más de los péptidos con un vehículo inmunógeno que no se ha usado previamente para vacunación. Cuando se controla el éxito de la vacunación, esto evita que el agente de diagnóstico reaccione con anticuerpos que se han formado contra la fracción de vehículo de la vacuna.

55 En una realización, el compuesto es una molécula del MHC de clase II o fragmento de unión a péptidos de la misma. La molécula del MHC de clase II puede purificarse a partir de una muestra biológica. Como alternativa, la molécula del MHC de clase II puede producirse de forma recombinante. Puede obtenerse un fragmento de unión a péptidos de la molécula del MHC de clase II, por ejemplo, mediante escisión enzimática de la molécula intacta purificada o recombinante. Como alternativa, el fragmento de unión a péptidos puede producirse de forma recombinante. En una realización preferida, el compuesto es una molécula del MHC de clase II de dos dominios recombinante.

En su forma más básica, la molécula del MHC de clase II de dos dominios comprende el dominio 1 y 1 de una molécula de MHC de clase II de mamíferos en la que el extremo amino terminal del dominio 1 está unido covalentemente con el extremo carboxilo terminal del dominio 1 y en el que el polipéptido no incluye los dominios

65 2 o 2. La molécula del MHC de clase II de dos dominios se asocia por interacción covalente o no covalente con un péptido definido en el presente documento. En ciertas realizaciones, el péptido se une covalentemente con el

extremo amino terminal del dominio 1 de la molécula de clase II. La molécula del MHC de clase II de dos dominios también puede comprender un marcador detectable, tal como un marcador fluorescente, o una toxina. Cuando el marcador detectable o toxina va a unirse covalentemente con la molécula del MHC de una manera dirigida (es decir, en lugar de unirse aleatoriamente) se unirá generalmente con un extremo carboxilo terminal de la molécula para

5 minimizar la interferencia con el antígeno peptídico unido en el extremo amino terminal.

In vitro, la molécula del MHC de clase II de dos dominios puede usarse para detectar y cuantificar linfocitos T y regular la función de linfocitos T. Por lo tanto, dichas moléculas cargadas con un péptido seleccionado pueden usares para detectar, controla y cuantificar la población de linfocitos T que son específicos para ese péptido. El conjugado de péptido/molécula del MHC de clase II de dos dominios también puede usarse para inducir anergia de linfocitos T específicos de gluten, aliviando síntomas asociados con la enfermedad celíaca. Como alternativa, dichas moléculas pueden conjugarse con una toxina para destruir más directamente los linfocitos T causantes de la enfermedad. Las toxinas adecuadas incluyen toxinas proteicas (por ejemplo, ricina, toxina diftérica y toxina de Pseudomonas), agentes quimioterapéuticos (por ejemplo, doxorrubicina, daunorrubicina, metotrexato, citotoxina y

15 ARN antisentido), anticuerpos para una molécula de superficie de linfocitos T citotóxica, lipasas, y radioisótopos que emiten radiación “dura”, por ejemplo, beta.

Diseño de molécula del MHC de clase II 11 recombinante

Las secuencias de aminoácidos de proteínas de cadena  y  del MHC de clase II de mamífero, así como ácidos nucleicos que codifican estas proteínas, se conocen bien en la técnica y están disponibles de numerosas fuentes incluyendo GenBank.

Típicamente, se considera que el dominio 1 comprende aproximadamente los restos 1-90 de la cadena  madura.

25 La región enlazadora peptídica nativa entre los dominios 1 y 2 de la proteína del MHC de clase II abarca de aproximadamente el aminoácido 76 a aproximadamente el aminoácido 93 de la cadena , dependiendo de la cadena  particular que se considere. Por lo tanto, un dominio 1 puede incluir aproximadamente los restos de aminoácidos 1-90 de la cadena , pero un experto en la materia reconocerá que el punto de corte C terminal de este dominio no está necesariamente definido de forma precisa y, por ejemplo, podría aparecer en cualquier punto entre los restos de aminoácidos 70-100 de la cadena . La composición del dominio 1 también puede variar fuera de estos parámetros dependiendo de la especie de mamífero y la cadena  particular en cuestión.

De forma similar, se considera típicamente que el dominio 1 comprende aproximadamente los restos 1-90 de la cadena  madura. La región enlazadora entre los dominios 1 y 2 de la proteína del MHC de clase II abarca de

35 aproximadamente el aminoácido 85 a aproximadamente el aminoácido 100 de la cadena , dependiendo de la cadena  particular que se considere. Por lo tanto, la proteína 1 puede incluir aproximadamente los restos de aminoácidos 1-100, pero un experto en la materia reconocerá de nuevo que el punto de corte C terminal de este dominio no está necesariamente definido de forma precisa y, por ejemplo, podría aparecer en cualquier punto entre los restos de aminoácidos 75-105 de la cadena .

Cuando se selecciona la secuencia de un dominio particular para inclusión en una molécula recombinante, es preferible que se incluya el dominio completo; para asegurar que se hace esto, la secuencia de dominio puede extenderse para incluir parte del enlazador, o incluso parte del dominio adyacente. El número preciso de aminoácidos en los dominios 1 y 1 varía dependiendo de la especie de mamífero así como entre clases de genes

45 dentro de una especie. En lugar de una definición estructural precisa basada en el número de aminoácidos, lo que es importante cuando se selecciona la secuencia de aminoácidos de un dominio particular es el mantenimiento de la función de dominio. Además, un experto en la materia apreciará que la función de dominio también puede mantenerse si se utiliza algo menos de la secuencia de aminoácidos completa del dominio seleccionado. Por ejemplo, pueden omitirse varios aminoácidos en los extremos amino o carboxilo terminales del dominio 1 sin afectar a la función de dominio. Típicamente, sin embargo, el número de aminoácidos omitidos de uno de los extremos terminales de la secuencia de dominio no será mayor de 10, y más típicamente no será mayor de 5. De forma similar, los dominios 1 y 1 pueden incluir una o más variaciones de secuencia de aminoácidos en comparación con la forma de origen natural siempre que se mantenga la función de dominio.

55 La actividad funcional de un dominio seleccionado particular puede evaluarse en el contexto de la molécula del MHC de clase II 11 cargada con el péptido. Por ejemplo, para ensayar un dominio 1 particular, se unirá con un dominio 1 funcional, el péptido de molécula del MHC de clase II 11 resultante se cargará y se ensayará con respecto a su capacidad para unirse con y/o inhibir la función de linfocitos T específicos de antígenos, por ejemplo, proliferación de linfocitos T.

Pueden producirse moléculas de ácido nucleico que codifiquen estos dominios mediante medios convencionales, tales como amplificación por la PCR. Pueden emplearse enfoques convencionales para diseñar cebadores para amplificar fases abiertas de lectura que codifican estos dominios. Las bibliotecas adecuadas para la amplificación de estos dominios incluyen, por ejemplo, bibliotecas de ADNc preparadas a partir de la especie de mamífero en

cuestión; dichas bibliotecas están disponibles en el mercado, o pueden prepararse por métodos convencionales. Por lo tanto, por ejemplo, pueden producirse construcciones que codifican los polipéptidos 1 y 1 por PCR usando cuatro cebadores: cebadores B1 y B2 correspondientes a los extremos 5’ y 3’ de la región codificante 1, y cebadores A1 y A2 correspondientes a los extremos 5’ y 3’ de la región codificante 1. Después de amplificación por 5 PCR de las regiones codificantes de dominio 1 y 1, estas moléculas de ácido nucleico amplificadas pueden clonarse cada una en vectores de clonación convencionales, o las moléculas pueden ligarse entre sí y después clonarse en un vector adecuado. Para facilitar la clonación conveniente de las dos regiones codificantes, pueden diseñarse sitios de reconocimiento de endonucleasas de restricción en los cebadores de PCR. Por ejemplo, los cebadores B2 y A1 pueden incluir cada uno un sitio adecuado de modo que los fragmentos amplificados puedan 10 ligarse fácilmente entre sí después de amplificación e ingestión con la enzima de restricción seleccionada. Además, los cebadores B1 y A2 pueden cada uno incluir sitos de restricción para facilitar la clonación en el sitio de polienlazador del vector seleccionado. Se realiza ligamiento de las dos regiones codificantes de dominios de modo que las regiones codificantes se unan operativamente, es decir, para mantener la fase abierta de lectura. Cuando las regiones codificantes amplificadas se clonen por separado, los fragmentos pueden liberarse posteriormente del

15 vector de clonación y purificarse en gel, como preparación para el ligamiento.

En ciertas realizaciones, se proporciona un enlazador peptídico entre los dominios 1 y 1. Típicamente, este enlazador es de entre 2 y 25 aminoácidos de longitud, y actúa para proporcionar flexibilidad entre los dominios de modo que cada dominio es libre para plegarse en su conformación nativa. La secuencia enlazadora puede

20 proporcionarse convenientemente diseñando los cebadores de PCR para que codifiquen la secuencia enlazadora. Por lo tanto, en el ejemplo descrito anteriormente, la secuencia enlazadora puede codificarse por uno de los cebadores B2 o A1, o una combinación de cada uno de estos cebadores.

Pueden producirse polipéptidos de dominio del MHC variantes manipulando la secuencia de nucleótidos de la 25 molécula que codifica el dominio, por ejemplo, por mutagénesis dirigida o la PCR.

Enlace genético de péptido antigénico con molécula del MHC de clase II 11

La molécula del MHC de clase II 11 se usa junto con un péptido definido en el presente documento. La molécula

30 del MHC de clase II 11 puede “cargarse” con el péptido de varias maneras, incluyendo por unión covalente del péptido con la molécula del MHC. Esto puede conseguirse convenientemente uniendo operativamente una secuencia de ácido nucleico que codifique el péptido seleccionado con el extremo 5’ de la construcción que codifica la molécula del MHC de modo que el péptido expresado se una con el extremo N terminal de 1 de la molécula del MHC de clase II 11. Un modo conveniente de obtener este resultado es incorporar una secuencia que codifique el

35 péptido en los cebadores de PCR usados para amplificar las regiones codificantes de MHC. Típicamente, se incluirá una secuencia que codifique una secuencia peptídica enlazadora entre las moléculas que codifiquen el péptido antigénico y el polipéptido del MHC. Para unir antígenos del MHC, el enlazador debería ser suficientemente largo para permitir que el péptido antigénico entre en el surco peptídico del polipéptido del MHC.

40 Este sistema genético para enlace del péptido antigénico con la molécula del MHC es particularmente útil cuando se van a producir varias moléculas del MHC con diferentes péptidos antigénicos. El sistema descrito permite la construcción de un vector de expresión en el que se incluye un sitio de escisión único en el extremo 5’ de la región codificante del MHC (es decir, en el extremo 5’ de 1 de la molécula del MHC de clase II 11). Junto con dicha construcción, se realiza una biblioteca de secuencias codificantes de péptidos antigénicos, con cada región

45 codificante de antígenos flanqueada por sitios para la enzima de restricción seleccionada. La inclusión de un antígeno particular en la molécula del MHC se realiza después simplemente (a) liberando la región codificante de antígeno con la enzima de restricción seleccionada, (b) escindiendo la construcción del MHC con la misma enzima restricción y (c) ligando la región codificante de antígenos en la construcción del MHC. De esta manera, se pueden preparar un gran número de construcciones de polipéptidos del MHC y expresarse en un corto periodo de tiempo.

Carga de antígenos de moléculas 11 y 12 vacías

Cuando la molécula del MHC de clase II 11 se expresa y purifica en una forma vacía (es decir, sin péptido antigénico unido), el péptido antigénico puede cargarse en las moléculas usando métodos convencionales. Dichos

55 métodos incluyen coincubación sencilla de la molécula del MHC purificada con una preparación purificada del péptido.

Como ejemplo, pueden cargarse moléculas del MHC de clase II 11 vacías (1 mg/ml; 40 M) mediante incubación con un exceso molar 10 veces del péptido (1 mg/ml; 400 M) a temperatura ambiente, durante 24 horas. A

60 continuación, el péptido no unido en exceso puede retirarse por diálisis contra PBS a 4 ºC durante 24 horas. Como se conoce en la técnica, la unión del péptido con moléculas del MHC de clase II 11 puede cuantificarse por cromatografía de capa fina en gel de sílice (TLC) usando péptido radiomarcado. Basándose en dicha cuantificación, la carga puede alterarse (por ejemplo, cambiando el exceso molar de péptido o el tiempo de incubación) para obtener el resultado deseado.

Polinucleótidos

Las expresiones “ácido nucleico”, “molécula de ácido nucleico”, “secuencia de ácido nucleico” y “polinucleótido” pueden usarse en general indistintamente y abarcan fragmentos biológicamente activos, y variantes incluyendo 5 homólogos.

La longitud global de cada polinucleótido constituyente de un agente puede ser, por ejemplo, de 21 a 150 nucleótidos, tal como 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 50, 60, 70, 80, 90, 100, 110, 120, 130, 140, 150 nucleótidos.

10 Un “fragmento biológicamente activo” de una molécula de ácido nucleico consiste en menos nucleótidos que los de la secuencia polinucleotídica codificante del péptido de referencia y tiene una longitud de al menos aproximadamente 21 nucleótidos, y puede tener una longitud de al menos aproximadamente 35 nucleótidos.

15 Las expresiones “variante biológicamente activa” y “fragmento biológicamente activo” tienen significados análogos a los atribuidos anteriormente con respecto a los péptidos definidos en el presente documento.

Una “variante biológicamente activa” puede comprender una secuencia de nucleótidos que tiene al menos 60% de identidad con la secuencia polinucleotídica codificante del péptido de referencia. El porcentaje de identidad puede 20 determinarse usando paquetes de software fácilmente disponibles, tales como BLAST (www.ncbi.nlm.nih.gov/) y GAP.

Como alternativa, o además, la “variante biológicamente activa” puede hibridar con la secuencia de nucleótidos codificante del péptido de referencia (o una forma complementaria de la misma) en condiciones de baja rigurosidad. 25 La referencia en el presente documento a “baja rigurosidad” se refiere a formamida de al menos aproximadamente 0 a al menos aproximadamente 15% v/v y sal de al menos aproximadamente 1 M a al menos aproximadamente 2 M para hibridación, y sal de al menos aproximadamente 1 M a al menos aproximadamente 2 M para condiciones de lavado. En general, la baja rigurosidad es de aproximadamente 25-30 ºC a aproximadamente 42 ºC. La temperatura pude alterarse y pueden usarse temperaturas mayores para reemplazar formamida y/o para proporcionar 30 condiciones de rigurosidad alternativas. Las condiciones de rigurosidad alternativas pueden aplicarse cuando sea necesario, tales como rigurosidad media o alta. La referencia en el presente documento a “rigurosidad media” se refiere a formamida de al menos aproximadamente 16% v/v a al menos 30% v/v y sal de al menos aproximadamente 0,5 M a al menos aproximadamente 0,9 M para hibridación, y sal de al menos aproximadamente 0,5 M a al menos aproximadamente 0,9 M para condiciones de lavado. La referencia en el presente documento a “alta rigurosidad” se

35 refiere a formamida de al menos aproximadamente 31% v/v a al menos aproximadamente 50% v/v y sal de al menos aproximadamente 0,01 M a al menos aproximadamente 0,15 M para hibridación, y sal de al menos aproximadamente 0,01 M a al menos aproximadamente 0,15 M para condiciones de lavado.

En general, se lleva a cabo lavado a Tm = 69,3 + 0,41 (G+C) %. Sin embargo, la Tm de una molécula de ácido 40 nucleico bicatenaria se reduce en 1 ºC con cada aumento del 1% en el número de pares de bases desapareadas. La formamida es opcional en estas condiciones de hibridación.

Los niveles de rigurosidad particularmente preferidos se definen de la siguiente manera: la baja rigurosidad es tampón SSC 6x, SDS 0,1% p/v a 25-42 ºC; la rigurosidad moderada es tampón SSC 2x, SDS 0,1% p/v a 20-65 ºC; la 45 alta rigurosidad es tampón SSC 0,1 X, SDS 0,1% p/v a al menos 65 ºC.

Las variantes biológicas incluyen polinucleótidos que varían en uno o más nucleótidos del polinucleótido de referencia. Por ejemplo, una variante puede comprender una sustitución de uno o más nucleótidos de origen natural con un análogo (tal como el anillo de morfolina), nucleótido metilado, modificaciones internucleotídicas tales como

50 enlaces sin carga (por ejemplo, metilfosfonatos, fosfotriésteres, fosfoamidatos, carbamatos, etc.), enlaces con carga (por ejemplo, fosforotioatos, fosforoditioatos, etc.), restos colgantes (por ejemplo, polipéptidos), intercaladores (por ejemplo, acridina, psoraleno, etc.), quelantes, alquilantes y enlaces modificados (por ejemplo, ácidos nucleicos aoméricos, etc.).

55 Pueden proporcionarse en un vector polinucleótidos que codifican uno o más de los péptidos.

Un polinucleótido que codifica uno o más de los péptidos definidos en el presente documento puede usarse para la producción recombinante de los péptidos usando técnicas bien conocidas en este campo. Como alternativa, el polinucleótido puede usarse para inmunizar/hacer tolerante a un sujeto al gluten.

60 Un polinucleótido para su uso en la invención incluye una secuencia de ADN que puede derivarse de uno o más de los péptidos, teniendo en cuenta la degeneración del uso codónico. Esto se conoce bien en la técnica, así como el conocimiento del uso codónico en diferentes hospedadores de expresión, lo que es útil para optimizar la expresión recombinante de los péptidos.

Cuando el polinucleótido se usa para la producción recombinante de uno o más de los péptidos, el polinucleótido puede incluir la secuencia codificante para los péptidos solamente o la secuencia codificante para los péptidos en fase de lectura con otras secuencias codificantes, tales como las que codifican una secuencia líder o secretora, una secuencia de pre, pro o prepro proteína, secuencia de péptido enlazador u otras partes de péptidos de fusión. Por

5 ejemplo, puede codificarse una secuencia marcadora que facilita la purificación del péptido fusionado. En ciertas realizaciones, la secuencia marcadora es un péptido de hexahistidina, como se proporciona en el vector pQE (Qiagen, Inc.), o es un marcador HA, o es glutatión-S-transferasa. El polinucleótido también puede contener secuencias 5’ y 3’ no codificantes, tales como secuencias transcritas, no traducidas, señales de corte y empalme y poliadenilación, sitios de unión a ribosomas y secuencias que estabilizan el ARNm.

Células presentadoras de antígenos

El agente y/o los péptidos definidos en el presente documento pueden suministrarse cargando APC con, por ejemplo, los primer, segundo y tercer péptidos, un fragmento biológicamente activo o variante de uno o más de los

15 mismos y/o un polinucleótido que codifica uno o más de los mismos.

Preferentemente, las APC se seleccionan del grupo que consiste en células dendríticas, macrófagos, linfocitos B y células endoteliales sinusoides del hígado que expresan moléculas del MHC de clase II compartidas con el fenotipo del MHC del sujeto. Por ejemplo, las APC pueden expresar HLA-DQ2 (por ejemplo, HLA DQA1*05 y HLA DQB1*02) y/o HLA DQ8. Las APC empleadas para este fin pueden aislarse del sujeto al que van a suministrarse después de cargar, o pueden obtenerse de un sujeto alocoincidente.

Por “cargar” una APC se entiende que la APC se incuba o transfecta con los péptidos, un fragmento biológicamente activo o variante de uno o más de los mismos, o un polinucleótido que codifica uno o más de los mismos. La carga

25 de una APC puede conseguirse mediante el uso de métodos de transfección de ácidos nucleicos convencionales, tales como transfección mediada por lípidos, electroporación y transfección de fosfato de calcio.

Producción peptídica

Los péptidos pueden prepararse de cualquier manera adecuada. Por ejemplo, los péptidos pueden producirse de forma recombinante y/o sintética.

Los péptidos pueden sintetizarse por técnicas de química convencionales, incluyendo síntesis por procedimiento automático usando un sintetizador peptídico disponible en el mercado. En general, se preparan análogos peptídicos

35 por metodología de síntesis de péptidos de fase sólida que puede implicar acoplar cada resto de aminoácido protegido con un suporte de resina, preferentemente una resina de 4-metilbenzhidrilamina, mediante activación con diciclohexilcarbodiimida para producir un péptido con una amida C terminal. Como alternativa, puede usarse una resina de clorometilo (resina Merrifield) para producir un péptido con un ácido carboxílico libre en el extremo C terminal. Después de haberse unido el último resto, la resina peptídica protegida se trata con fluoruro de hidrógeno para escindir el péptido de la resina, así como desproteger los grupos funcionales de cadena lateral. El producto en bruto puede purificarse adicionalmente por filtración en gel, cromatografía líquida de alta presión (HPLC), cromatografía de partición o cromatografía de intercambio iónico.

Si se desea, y como se ha destacado anteriormente, pueden introducirse diversos grupos en el péptido del agente

45 durante la síntesis o durante la expresión, lo que permite la unión con otras moléculas o con una superficie. Por ejemplo, pueden usarse cisteínas para realizar tioéteres, histidinas para unirse con un complejo de iones metálicos, grupos carboxilo para formar amidas o ésteres, grupos amino para formar amidas, y similares.

Los péptidos también puede producirse usando sistemas de traducción sin células. Los sistemas de traducción convencionales, tales como lisados de reticulocitos y extractos de germen de trigo, usan ARN como molde; mientras que los sistemas “acoplados” y “unidos” comienzan con moldes de ADN, que se transcriben a ARN y después se traducen.

Como alternativa, los péptidos pueden producirse transfectando células hospedadoras con vectores de expresión 55 que comprenden un polinucleótido o polinucleótidos que codifican uno o más péptidos.

Para producción recombinante, se introduce una construcción recombinante que comprende una secuencia que codifica uno o más de los péptidos en células hospedadoras por métodos convencionales tales como transfección de fosfato cálcico, transfección mediada por DEAE-dextrano, microinyección, transfección mediada por lípidos catiónicos, electroporación, transducción, carga por raspado, introducción balística o infección.

Uno o más de los péptidos pueden expresarse en células hospedadoras adecuadas, tales como, por ejemplo células de mamífero (por ejemplo, células COS, CHO, BHK, 293 HEK, VERO, HeLa, HepG2, MDCK, W138 o NIH 3T3), levadura (por ejemplo, Saccharomyces o Pichia), bacteria (por ejemplo, E. coli, P. pastoris o B. subtilis), células de 65 insectos (por ejemplo, baculovirus en células Sf9) u otras células bajo el control de promotores apropiados usando técnicas convencionales. Después de la transformación de la cepa hospedadora adecuada y el crecimiento de la

cepa hospedadora hasta una densidad celular apropiada, las células se recogen por centrifugación, se rompen por medios físicos o químicos, y el extracto en bruto resultante se conserva para purificación adicional del péptido o variante del mismo.

5 Los vectores de expresión adecuados incluyen, por ejemplo, polinucleótidos cromosómicos, no cromosómicos y sintéticos, por ejemplo, derivados de SV40, plásmidos bacterianos, ADN de fagos, plásmidos de levadura, vectores derivados de combinaciones de plásmidos y ADN de fagos, ADN viral tal como virus vaccinia, adenovirus, virus adenoasociado, lentivirus, virus de viruela del canario, virus de viruela aviar, seudorrabia, baculovirus, virus del herpes y retrovirus. El polinucleótido puede introducirse en el vector de expresión por procedimientos convencionales conocidos en la técnica.

El polinucleótido que codifica uno o más péptidos puede unirse operativamente con una secuencia de control de la expresión, es decir, un promotor, que dirige la síntesis de ARNm. Los ejemplos representativos de dichos promotores incluyen el promotor de LTR o SV40, el lac o trp de E. coli, el promotor de PL de fago lambda y otros

15 promotores que se sabe que controlan la expresión de genes en células eucariotas o procariotas o en virus. El vector de expresión también puede contener un sitio de unión a ribosomas para inicio de la traducción y un terminador de la transcripción.

Los vectores de expresión también pueden incluir un origen de replicación y un marcador seleccionable, tal como el gen de resistencia a ampicilina de E. coli para permitir la selección de células transformadas, es decir, células que expresan el polinucleótido heterólogo. La molécula de ácido nucleico que codifica uno o más de los péptidos puede incorporarse en el vector en fase con secuencias de inicio y terminación de la traducción.

Uno o más de los péptidos pueden recuperarse y purificarse de cultivos celulares recombinantes (es decir, de las

25 células o el medio de cultivo) por métodos bien conocidos incluyendo precipitación con sulfato de amonio o etanol, extracción ácida, cromatografía de intercambio aniónico o catiónico, cromatografía de fosfocelulosa, cromatografía de interacción hidrófoba, cromatografía de afinidad, cromatografía de hidroxiapatita, cromatografía de lectinas y HPLC. Puede emplearse técnicas bien conocidas para replegar proteínas para regenerar la conformación activa cuando el péptido se desnaturaliza durante el aislamiento y/o la purificación.

Para producir un péptido glucosilado, se prefiere usar técnicas recombinantes. Para producir un péptido glucosilado, se prefiere emplear células de mamífero tales como COS-7 y Hep-G2 en las técnicas recombinantes.

Los péptidos también pueden prepararse por escisión de péptidos más largos, especialmente de extractos de 35 alimentos.

Pueden sintetizarse sales farmacéuticamente aceptables de los péptidos a partir de los péptidos que contienen un resto básico o ácido por métodos químicos convencionales. Generalmente, las sales se preparan haciendo reaccionar la base o el ácido libre con cantidades estequiométricas o con un exceso del ácido o base orgánico o inorgánico formador de sales deseado en un disolvente adecuado.

Vacunas y administración

La invención también proporciona una vacuna que comprende los primer, segundo y tercer péptidos, un fragmento

45 biológicamente activo o variante de uno o más de los mismos y/o un polinucleótido que codifica uno o más de los mismos. También se proporciona una vacuna que comprende un péptido de la invención y/o un polinucleótido de la invención.

Como se usa en el presente documento, el término “vacuna” se refiere a una composición que comprende o que codifica péptidos que pueden administrarse a un sujeto sensible al gluten para modular la respuesta del sujeto al gluten. La vacuna puede reducir la reactividad inmunológica de un sujeto al gluten. Preferentemente, la vacuna induce tolerancia al gluten.

La administración de la vacuna a un sujeto puede inducir tolerancia por supresión clonal de poblaciones de linfocitos

55 T efectores específicos del gluten, por ejemplo, linfocitos T CD4+ específicos del gluten, o mediante inactivación (anergia) de dichos linfocitos T de modo que se hagan menos sensibles, preferentemente, no sensibles a exposición posterior al gluten (o péptidos de los mismos).

Como alternativa, o además, la administración de la vacuna puede modificar el perfil de secreción de citocinas del sujeto (por ejemplo, dar como resultado IL-4, IL-2, TNF y/o IFN reducidos y/o IL-10 aumentado). La vacuna puede inducir subpoblaciones de linfocitos T supresores, por ejemplo linfocitos Treg, para producir IL-10 y/o TGF y de este modo suprimir linfocitos T efectores específicos del gluten.

La vacuna de la invención puede usarse para tratamiento profiláctico de un sujeto capaz de desarrollar sensibilidad

65 al gluten, por ejemplo, que se ha diagnosticado que porta el gen de HLA-DQ2 y/o HLA-DQ8 y/o tratamiento continuo de un sujeto que es sensible al gluten, por ejemplo, un sujeto que tiene enfermedad celíaca. Hay datos animales

considerables para apoyar la actividad profiláctica de péptidos inmunodominantes para diversas afecciones autoinmunitarias e inmunitarias modelo, por ejemplo, encefalitis alérgica experimental.

Como se usa en el presente documento, el término “tratamiento” incluye anular, inhibir, ralentizar o invertir la 5 progresión de una enfermedad o afección, o aliviar o prevenir un síntoma clínico de la enfermedad (por ejemplo, enfermedad celíaca) o afección.

La cantidad de vacuna (o agente, péptido, polinucleótido y/o APC) para administrar se denomina la “cantidad eficaz”. La expresión “cantidad eficaz” significa la cantidad suficiente para proporcionar el efecto terapéutico o fisiológico deseado cuando se administra en condiciones apropiadas o suficientes. Pueden administrarse dosis individuales o múltiples. En ocasiones se manifiestan efectos indeseables, por ejemplo, efectos secundarios, junto con el efecto terapéutico deseado; por lo tanto, un practicante equilibra los beneficios potenciales contra los riesgos potenciales al determinar una “cantidad eficaz” apropiada. La cantidad exacta requerida variará entre sujetos, dependiendo de la especie, la edad, la talla y la condición general del sujeto, modo de administración y similares. Por lo tanto, puede

15 que no sea posible especificar una “cantidad eficaz” exacta. Sin embargo, una “cantidad eficaz” en cualquier caso individual puede determinarse por un experto habitual en la materia usando solamente experimentación rutinaria.

La vacuna (o agente, péptido, polinucleótido y/o APC) modifica la respuesta de linfocitos T al trigo, la cebada y el centeno en el sujeto, y preferentemente al trigo, la cebada, el centeno y la avena, como se representa por las proteínas gliadina, secalina, hordeína, glutenina y opcionalmente avedina. Por lo tanto, un sujeto que se trata de acuerdo con la invención preferentemente es capaz de comer al menos trigo, centeno, cebada y opcionalmente avena sin una respuesta de linfocitos T significativa que normalmente conduciría a síntomas de enfermedad celíaca.

Los componentes individuales de un agente de la invención pueden administrarse en la misma composición o en

25 composiciones diferentes o una combinación de las mismas (por ejemplo, el primer y segundo péptido definido en el presente documento en una composición, y el tercer péptido en una composición separada). Si están en composiciones diferentes, se pueden administrar simultáneamente o secuencialmente.

El agente o la vacuna pueden incluir un vehículo farmacéuticamente aceptable. La expresión “vehículo farmacéuticamente aceptable” se refiere a entidades moleculares y composiciones que no producen una reacción alérgica, tóxica o de otro modo adversa cuando se administra a un sujeto, particularmente un mamífero, y más particularmente un ser humano. El vehículo farmacéuticamente aceptable puede ser sólido o líquido. Los ejemplos útiles de vehículos farmacéuticamente aceptables incluyen, pero sin limitación, diluyentes, excipientes, disolventes, tensioactivos, agentes de suspensión, agentes tamponantes, agentes lubricantes, adyuvantes, vehículos,

35 emulsionantes, absorbentes, medios de dispersión, recubrimientos, estabilizantes, coloides protectores, adhesivos, espesantes, agentes tixotrópicos, agentes de penetración, agentes secuestrantes, agentes de retardo de la absorción e isotónicos que no afectan a la actividad de los agentes activos de la invención.

El vehículo puede ser cualquiera de los usados convencionalmente y está limitado solamente por consideraciones quimicofísicas, tales como solubilidad y falta de reactividad con el agente activo, y por la vía de administración. Los vehículos adecuados para la presente invención incluyen los usados convencionalmente, por ejemplo, agua, solución salina, dextrosa acuosa, lactosa, solución de Ringer, una solución tamponada, hialuronano, glicoles, almidón, celulosa, glucosa, lactosa, sacarosa, gelatina, malta, arroz, harina, tiza, gel de sílice, estearato de magnesio, estearato de sodio, glicerol monoestearato, cloruro sódico, glicerol, propilenglicol, agua, etanol y

45 similares. También pueden usarse liposomas como vehículos.

Se conocen en general en este campo técnicas para preparar composiciones farmacéuticas como se ejemplifica en Remington's Pharmaceutical Sciences, 16ª Ed. Mack Publishing Company, 1980.

El término “adyuvante” se refiere en general a una sustancia inmunoestimulante diseñada para potenciar la inmunogenicidad de uno o más péptidos definidos en el presente documento. Preferentemente, el adyuvante no produce una respuesta de Th1 y además promueve la tolerancia inmunitaria y/o reduce la inflamación. Los adyuvantes adecuados incluyen 1) un adyuvante de sal mineral basado en aluminio, por ejemplo un gel de Al(OH)3 o fosfato de aluminio, pero también pueden ser una sal de calcio, hierro o cinc; y 2) dexametasona (Kang et al., 2008).

55 La administración puede ser por vía oral, tópica (percutánea), parenteral, por pulverización de inhalación o por vía rectal en formulaciones unitarias de dosificación que contienen vehículos farmacéuticamente aceptables no tóxicos convencionales. El término “parenteral”, como se usa en el presente documento incluye inyección intravenosa, intraarterial, intraperitoneal, intramuscular, subcutánea, subconjuntival, intracavitaria, transdérmica y subcutánea, aerosol para administración a los pulmones o la cavidad nasal, o administración por infusión, por ejemplo, mediante bomba osmótica.

Los compuestos activos de la invención pueden estar en una forma adecuada para uso oral, por ejemplo, como comprimidos, trociscos, grageas, suspensiones acuosas u oleosas, polvos dispersables o gránulos, emulsiones, 65 cápsulas duras o blandas, o jarabes o elixires. Pueden prepararse composiciones destinadas a uso oral de acuerdo con métodos conocidos en la técnica para la fabricación de composiciones farmacéuticas y dichas composiciones

pueden contener uno o más agentes seleccionados del grupo que consiste en agentes edulcorantes, agentes saporíferos, agentes colorantes y agentes conservantes para proporcionar preparaciones farmacéuticamente elegantes y apetitosas.

5 Comprimidos

También pueden fabricarse por métodos conocidos comprimidos que contienen el principio activo en mezcla con excipientes farmacéuticamente aceptables. Los excipientes usados pueden ser por ejemplo, (1) diluyentes inertes tales como carbonato cálcico, lactosa, fosfato cálcico o fosfato sódico; (2) agentes de granulación o disgregantes tales como almidón de maíz, o ácido algínico; (3) agentes de unión tales como almidón, gelatina o goma arábiga y

(4) agentes lubricantes tales como estearato de magnesio, ácido esteárico o talco. Los comprimidos pueden no estar recubiertos o pueden estar recubiertos por técnicas conocidas para retardar la disgregación y absorción en el tracto gastrointestinal y de este modo proteger una acción sostenida a lo largo de un periodo más largo. Por ejemplo, puede emplearse un material de retardo temporal tal como gliceril monoestearato o gliceril diestearato. También

15 pueden recubrirse para formar comprimidos terapéuticos osmóticos para liberación controlada.

En algunos casos, las formulaciones para uso oral pueden estar en forma de cápsulas de gelatina dura en las que el principio activo se mezcla con un diluyente sólido inerte, por ejemplo, carbonato cálcico, fosfato cálcico o caolín. También pueden estar en forma de cápsulas de gelatina blanda en las que el principio activo se mezcla con agua o un medio oleoso, por ejemplo aceite de cacahuete, parafina líquida o aceite de oliva.

Suspensiones acuosas

Las suspensiones acuosas contienen normalmente los materiales activos en mezcla con excipientes adecuados

25 para la fabricación de suspensiones acuosas. Dichos excipientes pueden incluir: (1) agentes de suspensión tales como carboximetilcelulosa sódica, metilcelulosa, hidroxipropilmetilcelulosa, alginato sódico, polivinilpirrolidona, goma de tragacanto y goma arábiga; o (2) agentes de dispersión o humectantes tales como ésteres de PEG de ácidos grados C2-C18, Tween 80 o polietileno óxido sorbitán monooleato, Brij o alcohol de polioxietileno, Triton-X o Polietilenglicol p-isooctilfenil éter, Triton-N y Triton A-20 o 4-(1,1,3,3-tetrametilbutil) fenol, polímero con formaldehído y oxirano, DECON, Tris o 2-amino-2-hidroximetil-1,3-propanodiol y Cremophor EL.

Las suspensiones acuosas también pueden contener uno o más conservantes, por ejemplo, etil o n-propil phidroxibenzoato; uno o más agentes colorantes; uno o más agentes saporíferos; y uno o más agentes edulcorantes tales como sacarosa, aspartamo o sacarina.

Suspensiones oleosas

Pueden formularse suspensiones oleosas suspendiendo el principio activo en un aceite vegetal, por ejemplo aceite de cacahuete, aceite de oliva, aceite de sésamo o aceite de coco, un aceite de pescado que contenga ácido graso omega 3, o en un aceite mineral tal como parafina líquida. Las suspensiones oleosas pueden contener un agente espesante, por ejemplo cera de abejas, parafina dura o alcohol cetílico. Pueden añadirse agentes edulcorantes y agentes saporíferos para proporcionar una preparación oral apetitosa. Estas composiciones pueden conservarse mediante la adición de un antioxidante tal como ácido ascórbico.

45 Polvos y gránulos dispersables

Son adecuados polvos y gránulos dispersables para la preparación de una suspensión acuosa. Proporcionan el principio activo en una mezcla con un agente dispersante o humectante, un agente de suspensión y uno o más conservantes. Los agentes de dispersión o humectantes adecuados y agentes de suspensión se ejemplifican por los ya mencionados anteriormente. También pueden estar presentes excipientes adicionales, por ejemplo, los agentes edulcorantes, saporíferos y colorantes descritos anteriormente.

Emulsión

55 La composición o las composiciones farmacéuticas también pueden estar en forma de emulsiones de aceite en agua. La fase oleosa puede ser un aceite vegetal tal como aceite de oliva o aceite de cacahuete, o un aceite mineral tal como parafina líquida o una mezcla de los mismos. Los agentes emulsionantes adecuados incluyen goma arábiga, goma de tragacanto, soja, lecitina, polioxietilen óxido sorbitán monooleato (Tween 80). Las emulsiones también pueden contener agentes edulcorantes y saporíferos.

Jarabes y elixires

Los jarabes y elixires pueden formularse con agentes edulcorantes, por ejemplo, glicerol, propilenglicol, sorbitol, aspartamo o sacarosa. Dichas formulaciones también pueden contener un demulcente, conservante, saporífero y

65 agentes colorantes.

Inyectables

La composición o las composiciones farmacéuticas pueden estar en forma de una suspensión acuosa u oleaginosa inyectable estéril. Esta suspensión puede formularse de acuerdo con métodos conocidos usando los agentes de

5 expresión o humectantes adecuados y agentes de suspensión que se han mencionado anteriormente. La preparación inyectable estéril puede ser una suspensión en un diluyente o disolvente no tóxico parenteralmente aceptable, por ejemplo como una solución en 1.3-butanodiol. Entre los vehículos aceptables que pueden emplearse están agua, solución de Ringer y solución de cloruro sódico isotónica. Además, se emplean convencionalmente aceites estériles, fijos, como un disolvente o medio de suspensión. Para este fin, puede emplearse cualquier aceite fijo insípido incluyendo mono o diglicéridos sintéticos. Además, ácidos grasos tales como ácido oleico encuentran uso en la preparación de inyectables.

Las composiciones adecuadas para administración parenteral incluyen, pero sin limitación, soluciones de inyección estéril acuosas y no acuosas. Los ejemplos de mecanismos de suministro apropiados para administración

15 subcutánea incluyen, pero sin limitación, implantes, depósitos, agujas, cápsulas y bombas osmóticas.

Composiciones de liberación sostenida

Pueden prepararse composiciones de liberación sostenida. Los ejemplos adecuados de preparaciones de liberación sostenida incluyen matrices semipermeables de polímeros hidrófobos sólidos estando dichas matrices en forma de artículos moldeados, por ejemplo, películas o microcápsulas. Los ejemplos de matrices de liberación sostenida incluyen poliésteres, hidrogeles (por ejemplo, poli(2-hidroxietil-metacrilato), o poli(vinilalcohol)), polilactidas, copolímeros de L-ácido glutámico y  etil-L-glutamato, etilenvinil acetato no degradable, copolímeros de ácido láctico-ácido glicólico degradables tales como LUPRON DEPOT™ (microesferas inyectables compuestas de

25 copolímero de ácido láctico-ácido glicólico y acetato de leuprolide) y ácido poli-D-(-)-3-hidroxibutírico. Aunque polímeros tales como etilenvinil acetato y ácido láctico-ácido glicólico permiten la liberación de moléculas durante más de 100 días, ciertos hidrogeles liberan proteínas durante periodos de tiempo más cortos.

El agente activo puede atraparse en microcápsulas preparadas, por ejemplo, por técnicas de coacervación o por polimerización interfacial, por ejemplo, hidrometilcelulosa o microcápsulas de gelatina y microcápsulas de poli(metilmetacrilato), respectivamente, en sistemas de suministro de fármacos coloidales (por ejemplo, liposomas, microesferas de albúmina, microemulsiones, nanopartículas y nanocápsulas) o en macroemulsiones.

La microencapsulación para liberación sostenida se ha realizado con éxito con hormona del crecimiento humana

35 (rhGH), interferón (rhIFN), interleucina 2 y MN rgp120. Las formulaciones de liberación sostenida de estas proteínas se desarrollaron usando polímero de PLGA debido a su biocompatibilidad y amplia serie de propiedades biodegradables. Los productos de degradación de PLGA, ácidos láctico y glicólico, pueden eliminarse rápidamente dentro del cuerpo humano. Además, la capacidad de degradación de este polímero puede ajustarse de meses a años dependiendo de su peso molecular y composición.

Terapia génica

En una realización adicional, se inserta un polinucleótido que codifica uno o más péptidos definidos en el presente documento en un vector de expresión recombinante para los fines de administración al sujeto.

45 La expresión “vector de expresión recombinante” se refiere a un plásmido, virus u otro vehículo conocido en la técnica que se ha manipulado por inserción o incorporación de ácido nucleico que codifica uno o más péptidos. Dichos vectores de expresión contienen una secuencia promotora que facilita la transcripción eficaz en el hospedador de la secuencia genética insertada. El vector de expresión contiene típicamente un origen de replicación, un promotor, así como genes específicos que permiten la selección fenotípica de las células transformadas.

En una realización, el vector viral deriva de virus adenoasociado (AAV) y comprende un promotor constitutivo o regulable capaz de conducir niveles suficientes de expresión de los péptidos definidos en el presente documento.

55 Preferentemente, el vector viral comprende secuencias de repeticiones terminales invertidas de AAV, tales como las descritas en el documento WO 93/24641. En una realización preferida, el vector viral comprende secuencias polinucleotídicas del plásmido pTR-UF5. El plásmido pTR-UF5 es una versión modificada de la serie pTR.sub.BS-UF/UF1/UF2/UFB de plásmidos (Zolotukiin et al., 1996; Klein et al., 1998).

Los promotores útiles con la invención objeto incluyen, por ejemplo, el promotor temprano inmediato de citomegalovirus (CMV), el promotor 1- del factor de elongación humano (EF1), los promotores de ARN nuclear pequeño (U1a y U1b), el promotor de cadena pesada de -miosina, promotor de virus de Simio 40 (SV40), promotor del virus del sarcoma de Rous (RSV), promotor tardío mayor de adenovirus, promotor de -actina y elemento regulador híbrido que comprende un potenciador de CMV/promotor de -actina. Se ha mostrado que estos

65 promotores están activos en una amplia serie de células de mamífero.

Los promotores se unen operativamente con polinucleótido heterólogo que codifica uno o más péptidos definidos en el presente documento. Por “se une operativamente”, se entiende que el elemento promotor se sitúa en relación con la secuencia codificante para ser capaz de efectuar la expresión de la secuencia codificante.

5 También se contempla para uso con los vectores de la presente invención promotores específicos de tipo celular e inducibles, por ejemplo, promotores inducibles por Tet (Clontech, Palo Alto, Calif.) y promotores de VP16-LexA (Nettelbeck et al., 1998).

También pueden incluirse en el vector elementos potenciadores de la transcripción que pueden actuar para aumentar los niveles de transcripción a partir de un promotor dado. Los potenciadores pueden colocarse en general en cualquiera de las orientaciones, 3’ o 5’, con respecto a secuencias promotoras. Además de los potenciadores naturales, pueden usarse en la presente invención potenciadores sintéticos, por ejemplo, puede usarse en el vector un potenciador sintético ensamblado de forma aleatoria a partir de elementos derivados de Spc5-12 incluyendo elementos específicos de músculo, elemento de unión a factor de respuesta a suero (SRE), factor potenciador

15 específico de miocitos 1 (MEF-1), factor potenciador específico de miocitos 2 (MEF-2), factor potenciador de la transcripción 1 (TEF-1) y SP-1 (Li et al, 1999; Deshpande et al, 1997; Stewart et al., 1996; Mitchell y Tjian, 1989; Briggs et al., 1986; Pitluk et al., 1991).

Los métodos de terapia génica pueden realizarse por tratamiento ex vivo o in vivo de las células o los tejidos del paciente. Pueden introducirse vectores en células, líneas celulares o tejidos adecuados usando métodos conocidos en la técnica. Las partículas virales y los vectores pueden introducirse en células o tejidos in vitro o in vivo. Los métodos contemplados incluyen transfección, transducción, inyección e inhalación, por ejemplo, pueden introducirse vectores en células usando liposomas que contienen los vectores objeto, por transfección directa con vectores solamente, electroporación o por bombardeo de partículas.

Dosificación

Es especialmente ventajoso formular el activo en forma de dosificación unitaria para facilitar la administración y tener uniformidad de dosificación. La “forma de dosificación unitaria” como se usa en el presente documento se refiere a unidades físicamente discretas adecuadas como dosificaciones unitarias para el sujeto para tratar; conteniendo cada unidad una cantidad predeterminada de agente activo que se ha calculado que produce el efecto terapéutico deseado en asociación con el vehículo farmacéutico requerido. La especificación para las formas de dosificación unitarias se dicta por y depende directamente de las características únicas del agente activo y el efecto terapéutico particular que se pretende conseguir, y las limitaciones inherentes en la técnica de la formación de compuestos tales

35 como un agente activo para el tratamiento de sujetos. Como alternativa, las composiciones pueden presentarse en forma de multidosis.

Los ejemplos de unidades de dosificación incluyen ampollas selladas y viales y pueden almacenarse en una condición liofilizada que requiere solamente la adición del vehículo líquido estéril inmediatamente antes de su uso.

El agente o vacuna también puede incluirse en un recipiente, envase o dosificador junto con instrucciones para su administración.

La cantidad real administrada (o dosis o dosificación) y la velocidad y ciclo temporal de administración dependerán

45 de la naturaleza y gravedad de la afección que se trate. La receta del tratamiento, por ejemplo, decisiones sobre la dosificación, momento, frecuencia, etc., está dentro de la responsabilidad de los practicantes generales o especialistas (incluyendo practicante médico humano, veterinario o científico médico) y típicamente tiene en cuenta el trastorno para tratar, la condición del sujeto, el sitio de suministro, el método de administración y otros factores conocidos por los practicantes. Pueden encontrarse ejemplos de técnicas y protocolos en Remington's Pharmaceutical Sciences, 18ª Ed. (1990), Mack Publishing, Company, Easton, PA, EE.UU.). La dosis, frecuencia de dosis, duración, vía de administración y necesidad de terapia de mantenimiento podrían basarse en los criterios de otros productos inmunoterapéuticos peptídicos.

Las cantidades eficaces pueden medirse de ng/kg de peso corporal a g/kg de peso corporal por minuto, hora, día, 55 semana o mes.

Cuando se emplea administración in vivo de un agente o vacuna de la invención, las cantidades de dosificación normal pueden variar de aproximadamente 10 ng/kg hasta 100 mg/kg de peso corporal de mamífero o más al día, preferentemente de aproximadamente 1 g/kg/día a 10 mg/kg/día, dependiendo de la vía de administración. En la bibliografía se proporcionan directrices con respecto a dosificaciones y métodos de suministro particulares.

La toxicidad y eficacia terapéutica del agente o la vacuna pueden determinarse por procedimientos farmacéuticos convencionales en cultivos celulares o animales experimentales determinando la CI50 y la dosis tolerada máxima. Los datos obtenidos de estos ensayos de cultivo celular y estudios animales pueden usarse para formular un

65 intervalo adecuado para seres humanos.

Diagnóstico y eficacia de tratamiento

Los péptidos definidos en el presente documento también son útiles como un agente de diagnóstico.

5 En un ejemplo, al tolerancia al gluten se evalúa midiendo IL-10 y/o TGF secretados de células estimuladas, por ejemplo, linfocitos Treg, expuestas a los péptidos definidos en el presente documento. Los linfocitos Treg se caracterizan por su capacidad para producir grandes cantidades de IL-10 y TGF. Se considera que IL-10 es una de las principales citocinas implicadas en la inmunosupresión; una diana para la supresión parece ser el control transcripcional de IL-2 en células efectoras.

En otro ejemplo, la tolerancia al gluten se evalúa midiendo IFN secretado de células estimuladas, por ejemplo, linfocitos T CD4+ específicos de gluten.

El ensayo de diagnóstico puede realizarse in vitro usando sangre completa o células aisladas y/o fraccionadas a 15 partir de la misma.

En un ejemplo, las células se han expuesto previamente a uno o más de los péptidos (bien solos, conjugados con una molécula del MHC o un fragmento de los mismos, o bien APC cargadas con péptidos). En otro ejemplo, las células se estimulan in vitro mediante coincubación con los péptidos (bien solos, conjugados con una molécula de MHC o fragmento de la misma, o bien APC cargadas con péptidos).

Los efectos mediados por linfocitos T directos del agente pueden controlarse por ensayos funcionales utilizando células aisladas de sangre periférica o tejido (por ejemplo, el intestino delgado). Los efectos de la administración de péptidos corriente abajo para linfocitos T afines podrían evaluarse usando tipos celulares inmunitarios, tejidos,

25 fluidos biológicos (por ejemplo, plasma, secreciones intestinales, orina o heces).

En general los efectos biológicos de los péptidos reconocidos por linfocitos T afines son bien proinflamatorios o bien tolerogénicos, dependiendo del régimen de dosis, el modo de administración y si los péptidos se modifican o coadministran con otro compuesto que tiene propiedades inmunológicas, por ejemplo, un adyuvante. Estos y otros péptidos seleccionados para uso en vacunas terapéuticas basadas en péptidos son generalmente cortos (< 29 aminoácidos), solubles en agua, sin efectos inmunitarios innatos y se reconocen por una proporción sustancial de linfocitos T patógenos. Basándose en observaciones en modelos animales de enfermedad medida por linfocitos T y en otras enfermedades humanas, la administración inicial se seguiría de activación de linfocitos T afines. Sin embargo, se espera que la administración repetida del agente induzca anergia de linfocitos T y/o tolerancia. Se

35 esperaría que la administración de péptidos regular continua mantenga la tolerancia al gluten, suprima la inflamación en el intestino delgado e inhiba los linfocitos T específicos de gluten proinflamatorios en todo el cuerpo.

Por lo tanto, el marcador clave del éxito terapéutico sería la ausencia de inflamación en el intestino delgado después de ingesta de gluten deliberada. Los marcadores sustitutos de inmunidad que probablemente predigan tejido intestinal normal o inflamado después de la ingesta de gluten incluyen una amplia serie de ensayos que utilizan mezclas puras o en bruto de células inmunitarias, fluidos biológicos, o muestras tisulares, para medir las proteínas solubles o asociadas a células o moléculas pequeñas asociadas con activación inmunitaria, inflamación o tolerancia. Estos ensayos se conocen bien por los inmunólogos, inmunohistólogos y especialistas clínicos familiarizados con enfermedades inmunitarias en roedores, seres humanos y, en particular, enfermedad celíaca. Los marcadores, más

45 específicamente, que evalúan la actividad de la enfermedad celíaca e inmunidad inducida por gluten incluyen histología del intestino delgado, gliadina específica de IgA e IgG del suero (proteína o péptido) y para diversas proteínas hospedadoras incluyendo tTG.

Los marcadores genéricos y específicos de inmunidad en enfermedad celíaca que podrían adaptarse para su uso en el control de la inmunoterapia peptídica para enfermedad celíaca o para diagnóstico de enfermedad celíaca incluyen los siguientes:

(a) Los efectos directos de los péptidos en el linfocito T CD4+ aislado de sangre o tejido pueden controlarse ex

vivo/in vitro por liberación de citocinas estimuladas por péptidos, proliferación de linfocitos T o determinación de 55 marcadores de linfocitos T CD4+ que pueden alterarse in vivo.

(b) La frecuencia y el fenotipo de linfocitos T CD4+ individuales específicos para los péptidos o el gluten en general pueden evaluarse por enumeración directa de células, por ejemplo, por análisis de FACS. Se sabe que la ingesta oral del gluten en pacientes con enfermedad celíaca normalmente después de una dieta sin gluten estimula a los linfocitos T específicos de los péptidos y el gluten en general. Un ensayo clínico tal como una exposición al gluten puede usarse para evaluar los linfocitos T inducidos en sangre u otros tejidos. El fenotipo de linfocitos T aislados puede después evaluarse de nuevo o después de expansión a corto plazo in vitro. Los ensayos de linfocitos T pueden basarse en complejos de MHC-péptido, citocina intracelular estimulada por antígenos, u otros marcadores de superficie celular inducidos en linfocitos T activados por antígeno. El estado funcional de linfocitos T CD4+ se correlaciona con la presencia de diversos marcadores de superficie celular e intracelulares, por ejemplo, marcadores

65 de activación incluyendo CD25 y CD69, o de “tolerancia” y función de linfocitos T reguladores, por ejemplo, GITR y FOXP3. La producción de citocinas tales como IFN, IL-4, IL-5 e IL-13, y de IL-17 se consideraría proinflamatoria

para respuestas inmunitarias proinflamatorias Th1, Th2 o Th17 clásicas. Por el contrario, la secreción de IL-10 y TGF se asocian con respuestas inmunitarias tolerogénicas. Se esperaría que los marcadores de respuestas inmunitarias proinflamatorias se redujeran y/o los marcadores de respuestas inmunitarias tolerogénicas se reforzarían.

5 (c) Los efectos de los péptidos en linfocitos T CD4+ también pueden medirse usando mezclas de células, por ejemplo, sangre completa, PBMC, células mononucleares aisladas de tejido, o usando tejido incubado con los péptidos. Los ensayos capaces de medir proteínas individuales o múltiples o proteínas inmunológicas relevantes que codifican ARN o asociadas con enfermedad tales como citocinas y quimiocinas podrían evaluarse después de incubación a corto plazo con los péptidos. Los ensayos tales como ELISpot de IFN usando PBMC antes y/o después de la administración de gluten o péptidos en sí mismos al paciente, o ensayos múltiples de quimiocinas y citocinas usando PBMC son capaces de detectar los efectos biológicos de linfocitos T específicos de péptidos de pacientes. El efecto terapéutico de los péptidos se indicaría por un desplazamiento de los marcadores asociados con respuestas inmunitarias proinflamatorias a marcadores asociados con tolerancia inmunitaria (por ejemplo, IL-10) y reducción general en marcador proinflamatorios tales como IFN.

15 (d) Los efectos de los péptidos en el tejido pueden ser prácticos; los ensayos funcionales podrían tomar la forma de aplicación directa del péptido a la piel para evaluar la hipersensibilidad de tipo retardado, como en el ensayo de Mantoux para tuberculosis, que implica aplicación intradérmica de PPD (derivado de proteína purificada) y evaluación del diámetro de la rojez en el sitio de inyección 24-72 horas después. Los péptidos también pueden aplicarse a otros sitios de mucosa y piel para evaluar de la misma manera. En la práctica clínica, en enfermedad celíaca es importante la respuesta inmunitaria estimulada tanto por proteína derivada de grano como por el péptido. Por ejemplo, se ha predicho que la inmunoterapia usando los péptidos seleccionados no conduciría solamente a la supresión de la respuesta inmunitaria estimulada por linfocitos T específicos para los péptidos sino que también la “tolerancia” sería “infecciosa” y también conduciría a supresión de la inmunidad proinflamatoria a otros péptidos derivados del gluten y el gluten en sí mismo. Por lo tanto, los efectos de la terapia peptídica también podrían

25 controlarse usando gluten de diversos granos (trigo, centeno, cebada) en enfermedad celíaca, en lugar del péptido en los ensayos descritos anteriormente. De hecho, la terapia peptídica para asma sensible a gatos se ha controlado por un ensayo cutáneo tal utilizando el antígeno de proteína completa del que derivan los péptidos terapéuticos (Oldfield et al., 2002).

(e) En última instancia, los efectos clínicos de la inmunoterapia peptídica se evaluarían por examen histológico de tejidos expuestos a gluten de la dieta, típicamente el intestino delgado, pero en situaciones experimentales también se han evaluado la mucosa oral y rectal, y en principio también podría evaluarse otros sitios tales como el esófago y el colon. Se podría recoger tejido de estos sitios por visualización directa, típicamente por biopsia endoscópica. La visualización directa por endoscopia también se ha usado para diagnosticar enfermedad celíaca de acuerdo con la apariencia de la mucosa, puede evaluarse la atrofia vellosa por patrón así como endoscopia de cápsula y aumento.

35 Por lo tanto, los efectos tolerogénicos de los péptidos pueden evaluarse simplemente por detección de daño al tejido macroscópico en el tracto gastrointestinal.

(f): La inmunoglobulina específica para los péptidos u otros péptidos del gluten, o autoantígenos relevantes para la enfermedad celíaca proporcionaría marcadores de inmunidad del gluten relevantes para la actividad de enfermedad, y para la actividad de opsonización que puede comprometer los efectos terapéuticos de los péptidos en sí mismos.

(g): La presencia de marcadores asociados con anafilaxis, tales como IgE específico de péptido o gluten o liberación de histamina por basófilos de sangre periférica también puede usarse para predecir complicaciones de la inmunoterapia peptídica y es necesario ajustar o cesar la terapia.

Ensayo de alimentación

45 La invención también proporciona un método para determinar si una composición o alimento es capaz de provocar enfermedad celíaca, comprendiendo el método detectar la presencia del agente de la invención, el péptido de la invención y/o el polinucleótido de la invención en la composición o una muestra de alimento. Típicamente esto se realiza usando un ensayo de unión en el que uno o más compuestos que se unen con uno o más péptidos definidos en el presente documento de una manera específica se ponen en contacto con la composición y se detecta la formación de un complejo o complejos de péptido/compuesto y se usa para evaluar la presencia del péptido o los péptidos. En un ejemplo, el compuesto es un anticuerpo. Puede usarse cualquier formato adecuado de ensayo de unión. Típicamente, el ensayo utiliza anticuerpos monoclonales para péptidos del gluten en un ELISA de tipo sándwich, no competitivo. Las muestras de alimentos pueden extraerse en primer lugar, opcionalmente diluirse y

55 después ensayarse en la prueba.

La composición o el alimento típicamente comprenden material de una planta que expresa gluten. Dicho material puede ser una parte de planta, tal como un producto recolectado (por ejemplo, semilla). El material puede ser productos procesados del material vegetal, tal como una harina o alimento que comprenda gluten. El procesamiento de material de alimento y su ensayo en pruebas de unión adecuadas es rutinario (véase por ejemplo, Kricka, 1998). La composición o el material alimentario pueden tratarse con tTG antes de ponerse en contacto con el compuesto.

En una realización, la composición o el material alimentario se pone en contacto con al menos 2, 3, 5, 10 o más anticuerpos que son específicos para péptidos definidos en el presente documento en forma desamidada y/o no 65 desamidada. Preferentemente, los anticuerpos se dirigen contra secuencias que son resistentes a proteasa y permiten la detección de gliadinas , ,  y , y gluteninas LMW y HMW en trigo, hordeínas B, C y D en cebada,

secalinas ,  y  en centeno y opcionalmente aveninas en avena.

Pueden proporcionarse anticuerpos dirigidos contra los péptidos/epítopos definidos en el presente documento en forma de kit para su uso en un ensayo para la detección y/o cuantificación de gluten en los alimentos. 5 Identificación de proteasa

La presente invención también proporciona un método para identificar una proteasa que puede escindir un péptido como se define en el presente documento, comprendiendo el método poner en contacto el péptido con una proteasa 10 en condiciones para efectuar la escisión específica del péptido para producir un producto proteolítico y detectar el producto proteolítico producido. En un ejemplo, el producto proteolítico se detecta, por ejemplo, usando SDS-PAGE, HPLC, ELIZA o Transferencia de Western. En un ejemplo adicional, el péptido se fusiona con un donante fluorescente y un aceptor interruptor para permitir la transferencia de energía de resonancia intramolecular entre el donante fluorescente y el aceptor interruptor. Tras la escisión, el donante y el aceptor se separan, permitiendo la

15 detección de la emisión de fluorescencia del donante. Típicamente el péptido separa el donante fluorescente y el aceptor interruptor a una distancia de menos de aproximadamente 100 Angstrom. El donante fluorescente puede unirse con el extremo C terminal del péptido, y el aceptor interruptor puede unirse con el extremo N terminal del péptido, o viceversa.

20 Ejemplos

Ejemplo 1: determinación de péptidos inmunodominantes

Sujetos

25 Los voluntarios fueron adultos de 18-70 años de edad y que seguían una dieta estricta sin gluten. Todos los voluntarios poseían genes que codificaban tanto HLA DQAB1*05 como HLA DQB1*02 como se determinó por PCR con mezclas de cebadores específicos de secuencia de ADN de sangre periférica (Bunce et al., 1995; Olerup et al., 1993; Mullighan et al., 1997). Se diagnosticó a los voluntarios con enfermedad celíaca basándose en los criterios de

30 ESPGAN (Report of Working Group of European Society of Paediatric Gastroenterology and Nutrition, 1990). Los sujetos con enfermedad celíaca que se sometían a exposición a gluten tomaban una dieta sin gluten durante al menos 1 mes y afirmaron seguirla (tTG-IgA positivo o EMA fue un motivo de exclusión). Los sujetos HLA DQ2 sanos (negativos para IgA endomisial) habían seguido una dieta sin gluten estricta durante 4 semanas antes de comenzar la exposición al gluten.

Exposición al gluten de tres días

Exposición a trigo: dos rebanadas de 50 g para el desayuno y para el almuerzo de “pan de sándwich blanco convencional” de Sainsbury (Reino Unido, para evaluar la biblioteca Piloto), o de otro modo “barra en bloque de pan 40 blanco” de Baker's Delight. Exposición a cebada: cebada perlada (Ward McKenzie, Altona, Australia) cocinada como risotto (150 g de peso seco diarios). Las raciones de risotto se dividieron en raciones iguales para el desayuno, el almuerzo y la cena. Exposición a centeno: consumo diario de 100 g en peso seco de harina de centeno en forma de magdalenas comidas a lo largo del día comenzando en el desayuno. La harina de centeno se obtuvo bien de centeno cultivado

45 en “aislamiento” en la estación de investigación de Long Ashton, Reino Unido, y posteriormente molido a mano (para evaluación de la biblioteca piloto), o de harina de centeno Biodynamic (Eden Valley Biodynamic Farm, Dumbleyung, Australia).

Exposición a trigo, cebada y centeno combinada: se comieron cada día dos magdalenas consistentes en 25 g de harina de trigo (White Wings, Goodman Fielder, Australia), 22 g de harina de cebada (Four Leaf Milling, Tarlee, 50 Australia Meridional) y 22 g de harina de centeno (Four Leaf Milling, Tarlee, Australia Meridional) cada día.

Antígenos

Se obtuvieron péptidos sintéticos (pureza >70%) de Research Genetics (Estados Unidos), Mimotopes (Australia), o

55 Pepscan (Países Bajos). La desamidación con tTG de hígado de cobaya (Sigma T5398) fue como se ha descrito previamente (Anderson et al., 2000). Se incubaron péptidos (2 mg/ml) o gliadina (Sigma G3375) durante 4 horas a 37 ºC en un exceso de 10 veces con quimiotripsina (Sigma C3142) o tripsina (Sigma T1426) en bicarbonato de amonio (pH 8), o con pepsina (Sigma P6887) en ácido acético 5% (pH 2,5), después se neutralizaron hasta pH 7 con NaOH, y finalmente se hirvieron durante 15 minutos. Las concentraciones de proteínas prolamina se determinaron

60 por el método de BCA (Pierce, Estados Unidos). Se prepararon fracciones de hordeína y secalina a partir de centeno y cebada cultivados en aislamiento de otros granos, harina molida a mano, y se fraccionaron de acuerdo con métodos publicados (Tatham, A. S., Gilbert, S. M., Fido R. J., y Shewry, R. Extraction, separation, and purification of wheat gluten proteins and related proteins of barley, rye, and oats. En: Marsh M, ed., Celiac disease methods and protocols. Totowa: Humana (2000) pp 55-73).

Bibliotecas de péptidos

Se diseñaron bibliotecas de péptidos de gluten de trigo, cebada y centeno por alineamiento y filogenia (biblioteca “Piloto”, véase el listado de secuencias, Tablas 3 y 4, o usando un algoritmo adaptado aplicado a entradas para gliadinas, gluteninas, hordeínas y secalinas en Genbank de NCBI en 2006 en su secuencia codificada por genoma (tipo silvestre) (biblioteca “exhaustiva”), o secuencia desamidada de tTG tanto de tipo silvestre como por ordenador (biblioteca de “verificación”) de acuerdo con motivos de desamidación definidos (Beissbarth, et al., 2005).

Ensayo de ELISpot

Se realizaron ensayos de ELISpot de IFN (Mabtech, Suecia) usando placas de 96 pocillos (MSIP-S45-10; Millipore, Bedford, MA) usando células mononucleares de sangre Periférica (PBMC) de sangre extraída entre las 8 horas y el 5 mediodía del sexto día después de comenzar la exposición al gluten como se ha descrito previamente. Brevemente, se recubrieron placas de ELISpot con anticuerpos anticitocina de captura estéril a una concentración 1:100 (50 l/pocillo) diluido en PBS y envuelto en papel metálico durante una noche a 4 ºC. Antes de su uso, cada placa se lavó tres veces con PBS estéril y se bloqueó la unión no específica mediante la adición de RPMI con FCS 10% (50 l/pocillo) durante 2 horas a 37 ºC. Se añadió antígeno a concentración 5X a cada pocillo (25 l) seguido de adición de PBMC recién aisladas suspendidas en medio completo (100 l) y se incubó durante una noche (16-20 horas) a 37 ºC en un incubador de CO2 al 5%. Las células y el medio de cultivo se descartaron después y la placa se lavó una vez con agua destilada fría, después tres veces con PBS con Tween-20 0,05% (Sigma P2287, St Louis, Estados Unidos) y tres veces en PBS (200 l/pocillo cada lavado). Se incubó mAb anti citocina biotinilado (1:1000) diluido en PBS con FCS 0,5% (50 l/pocillo) durante 2 horas a temperatura ambiente. Los pocillos se lavaron seis veces con

15 PBS (200 l/pocillo) y se añadió estreptavidina-ALP (1:1000) (50 l/pocillo) y se incubaron durante 1 hora a temperatura ambiente. Después de lavar, se añadió sustrato de revelado BCIP-NBT (50 l/pocillo) y se permitió que los puntos se revelaran. El desarrollo se terminó lavando con agua fría cuando los puntos fueron visibles por primera vez. Se enumeró el número de unidades formadoras de puntos (UFP) en pocillos individuales con análisis de imágenes de video asistido por ordenador (AID ELISpot Reader System, AID Autoimmun Diagnostika GmbH, Strassberg, Alemania). El derivado de proteína purificada de Mycobacterium tuberculosis (PPD RT49) (5 g/ml) y/o toxoide del tétanos (CSL) (10 unidades formadoras de luz/ml) fueron antígenos de control positivo.

Aislamiento de clones de linfocitos T

25 Se aislaron PBMC de sangre completa heparinizada usando Ficoll-Paque Plus en tubos de Leucosep. Se aislaron células mononucleares de lámina propia (LPMC) de biopsias del intestino delgado tratando en primer lugar las muestras con DTT 1 mM en PBS, seguido de dos incubaciones a 37 ºC durante 30 minutos en Dispasa II 2,4 U/ml. Las biopsias se trituraron después y se incubaron a 37 ºC durante 1 hora en Liberease Blendzyme 3 2 U/ml y RPMI. Las PBMC y LPMC se lavaron tres veces en PBS. Típicamente, se recuperaron entre 0,5 y 1 x 106 LPMC y se mezclaron con 1,5-3 millones de PBMC autólogas irradiadas a 2000 rad.

Se tiñeron PBMC y LPMC con CFSE 0,1 M y se sembraron en placas de 96 pocillos a 2 x 105 células/pocillo, como se ha descrito previamente (Mannering et al., 2003; Mannering et al., 2005). Se usaron antígenos peptídicos y proteicos a 32 g/ml y 100 g/ml respectivamente. Entre 7 y 10 días después, se midió la proliferación de CD4+ por 35 citometría de flujo (FACSAria, BD). Se clasificaron células CD4+CFSEdim PI en un único pocillo de una placa de 96 pocillos que contenía 2 x 105 PBMC (irradiadas a 2000 rad), 2 x 104 JY-EBV (irradiadas a 5000 rad), IL-2 humana recombinante 20 U/ml, IL-4 humana recombinante 5 ng/ml y anti CD3 30 ng/ml (OKT3) en medios. Las células se alimentaron cada 7 días durante 2 semanas con medio que contenía citocinas para proporcionar una concentración final de IL-2 20 U/ml e IL-4 5 ng/ml. El día 25, se identificaron clones en crecimiento y se expandieron en placas de 48 pocillos en medios que incluían IL-2 20 U/ml e IL-4 5 ng/ml. La especificidad de antígeno se determinó por ensayo de proliferación de 3H-timidina o ELISpot de IFN. Se llevó a cabo expansión a gran escala de clones específicos en matraces de cultivo que contenían OKT3 30 ng/ml en 15 ml de medio con 5 x 107 PBMC (irradiadas con 2000 rad) y 5 x 106 JY-EBV (irradiadas con 5000 rad). Después de 24 horas, se añadió IL-2 a una concentración final de 50 U/ml. El día 3, la expansión se lavó y se resuspendió en 25 ml de medio que contenía IL-2 50 U/ml. El día

45 7, las células se dividieron por la mitad y se cubrieron con 12,5 ml de medio que contenía IL-2 a una concentración final de 50 U/ml. Las células expandidas se examinaron con respecto a la especificidad de antígenos el día 10 por ensayo de proliferación de 3H-timidina o ELISpot de IFN.

Caracterización de clones de linfocitos T

Se ensayaron clones específicos de antígeno expandidos con respecto a clonalidad usando el lOTest Beta Mark (Beckman Coulter). Los clones negativos se conformaron como clonales por PCR de las cadenas V de TCR. La restricción de HLA se determinó por anticuerpos anti HLA-DR (clon L243 10 g/ml) y HLA-DQ (Clon SPVL3 10 g/ml). La secreción de IFN, IL-4, IL-5, IL-10, IL-13 e IL-17 por clones para antígeno afín se determinó en ensayos

55 de ELISpot usando APC irradiadas (2000 rad) de donantes HLA DQ2+ HLA DQ8-. Las exploraciones de lisina de SEC ID Nº: 228, 229 y 230 (NPL001, NPL002 y NPL003, respectivamente) se llevaron a cabo en ensayos de ELISpot o proliferación usando clones específicos para estos péptidos.

Análisis de datos

Las respuestas de ELISpot se consideraron significativas cuando las UFP fueron tanto mayores de cuatro veces en medio solamente como mayores de 10 UFP/pocillo. Los ensayos de proliferación se consideraron significativos cuando los índices de estimulación (IE) fueron mayores de 3. Los conjuntos de datos se normalización con respecto a variabilidad entre donantes o entre clones expresando UFP o IE como un porcentaje del péptido, grupo de 65 péptidos o cóctel más reactivos ensayados. Se asignó a los péptidos y grupos de péptidos reactivos una

“puntuación” entre 0 y 100, igual a la respuesta normalizada media de donantes que respondían a al menos un péptido o grupo.

Ejemplo 2: Determinación de los péptidos dominantes primarios usando linfocitos T policlonales nuevos 5 inducidos por exposición a gluten in vivo

En estudios previos, se ha descubierto que los linfocitos T específicos de gluten alcanzan un máximo en sangre 6 días después de que los donantes de enfermedad celíaca HLA DQ2+ comiencen la exposición a gluten oral. El día 6, las respuestas de ELISpot de IFN de PBMC de donantes con enfermedad celíaca a concentraciones óptimas de gliadina tratada con tTG (500 g/ml) y -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) que abarcan los epítopos DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4) se correlacionaron significativamente (r=0,80, p<0,0001). La mediana de las respuestas de ELISpot de IFN al péptido de 17 unidades fueron del 51% (n=17, intervalo: 0-155%) de las de gliadina tratada con tTG (500 g/ml). Sin embargo, la -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) no siempre fue inmunodominante. Las respuestas de ELISpot de IFN fueron equivalentes a menos del 5% de las de gliadina

15 tratada con tTG en 3/17 donantes (Anderson et al., 2005).

Basándose en estas observaciones, resulta evidente que los péptidos del gluten adicionales a la -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) y péptidos incluyendo los péptidos SEC ID Nº: 4 y/o 5 también deben estimular una población sustancial de linfocitos T inducidos por exposición al gluten in vivo. Los inventores no estaban seguros de que una inmunoterapia basada en péptidos que utiliza -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) y péptidos que incluían los epítopos SEC ID Nº: 4 y/o 5 se dirigirían solos uniformemente a una proporción suficientemente grande de la población de linfocitos T específicos de gluten relevantes para la enfermedad. Los inventores plantearon la hipótesis de que la -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) y péptidos que incluían los epítopos SEC ID Nº: 4 y/o 5 eran agonistas parciales y que las secuencias relacionadas con SEC ID Nº: 8, 4 y/o 5 estimularían sustancialmente más

25 linfocitos T, o que péptidos adicionales que abarcaban epítopos inmunodominantes estaban presentes entre proteínas de gluten expresadas por trigo, cebada o centeno.

Búsquedas de homología

Casi todas las sustituciones de los cinco aminoácidos principales, PELPY (SEC ID Nº: 22) de -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) anulan su reconocimiento por linfocitos T de sangre periférica inducidos por exposición al gluten.

Se buscaron en las bases de datos SwissProt y Trembl genes de cereales que codificaban péptidos de 17 unidades

35 con la secuencia PELPY (SEC ID Nº: 22), la secuencia de tipo silvestre equivalente, PQLPY (SEC ID Nº: 23). Se descubrieron trece péptidos de 17 unidades de -gliadina de trigo con PQLPY y uno con PQLSY (SEC ID Nº: 24) en las posiciones 8-12, pero ninguno tenía la secuencia PELPY. En referencia a la Figura 1, se muestran las respuestas de ELISpot a partir de una diversidad de péptidos de 17 unidades con los epítopos de linfocitos T DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4) y DQ2--III (SEC ID Nº: 5), que derivan de una región altamente polimórfica de la familia de -gliadina de proteínas. Se muestran en la Figura 1 respuestas de ELISpot de IFN normalizadas de PBMC de 8 donantes con enfermedad celíaca (6 días después de comenzar la exposición al gluten de trigo) a catorce péptidos de 17 unidades de -gliadina de origen natural, cada uno de los cuales incluye la secuencia central PQLPY (SEC ID Nº: 23) o PQLSY (SEC ID Nº: 24). Se evalúan los péptidos de 17 unidades con o sin pretratamiento con tTG o cuando la glutamina en la posición 9 (Q9) se reemplaza por glutamato (E9). Los datos representan la

45 mediaETM de respuestas de ELISpot de donantes normalizadas frente a la de -gliadina p57-73 QE65 (25 g/ml).

Dos péptidos de 17 unidades que diferían de la -gliadina p57-73 QE65 (SEC ID Nº: 8) solamente por tener prolina o leucina sustituida con serina en el extremo C terminal eran tan activos como SEC ID Nº: 8 cuando se pretrataron con tTG o cuando la glutamina sustituyó al glutamato en la posición 9. Los péptidos de 17 unidades incluyendo tanto DQ2--II (SEC ID Nº: 4) como DQ2--I (SEC ID Nº: 3) o DQ2--III (SEC ID Nº: 5) estimulan mayores números de linfocitos T. Estos hallazgos estuvieron de acuerdo con los indicados en Arentz-Hansen et al., 2000 en el que un panel de clones de linfocitos T intestinales reconocían cinco de once -gliadinas recombinantes estructuralmente distintas, pero solamente las que incluían DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4) o DQ2--III (SEC ID Nº: 5). Varios otros polimorfismos desamidados de -gliadina p57-73 estaban débilmente activos y uno que no estaba

55 entre los estudiados por Arentz-Hansen et al., 2000, PQPQPFLPQLPYPQPQS (SEC ID Nº: 25; W09), eran casi tan activos como los péptidos de 17 unidades que abarcaban DQ2--II (SEC ID Nº: 4) y DQ2--III (SEC ID Nº: 5) cuando se pretrataron con tTG o con glutamato en la posición 9, PQPQPFLPELPYPQPQS (SEC ID Nº: 26). Basándose en una exploración de sustitución previa de -gliadina p57-73 QE65, los inventores emprendieron una búsqueda más permisiva de homólogos con una secuencia central PQ[ILMP][PST] (SEC ID Nº: 27) (Anderson et al, 2006).

Se sintetizaron doce secuencias de gliadina, glutenina, hordeína y secalina pero solamente una, el péptido de gliadina, AAG17702 (141-157) fue más activa que el medio solamente. Este péptido de -gliadina PQQPFPQPQLPFPQQSE (SEC ID Nº: 28; AAD17702 (141-157)) fue 32  6% tan activo como -gliadina p57-73

QE65 cuando se pretrató con tTG o con glutamato en la posición 9, PQQPFPQPELPFPQQSE (SEC ID Nº: 29) (25 g/ml; mediaETM, n=5 donantes).

Epítopos para clones intestinales y linfocitos T policlonales de sangre periférica inducidos por gluten in vivo

5 Los inventores evaluaron después los péptidos de 15 unidades desamidados que abarcaban epítopos presentados para clones de linfocitos T intestinales: GLIA-20 PFRPQQPYPQ (SEC ID Nº: 30) en su forma desamidada PFRPEQPYPQ (SEC ID Nº: 31), DQ2--I PQQSFPQQQ (SEC ID Nº: 32) en su forma desamidada PQQSFPEQE (SEC ID Nº: 33), DQ2--II IQPQQPAQL (SEC ID Nº: 34) en su forma desamidada IQPEQPAQL (SEC ID Nº: 35), DQ2--III QQPQQPYPQ (SEC ID Nº: 36) en su forma desamidada EQPEQPYPE (SEC ID Nº: 37), DQ2--IV SQPQQQFPQ (SEC ID Nº: 38) en su forma desamidada SQPEQEFPQ (SEC ID Nº: 39), Glu 5 QIPQQPQQF (SEC ID Nº: 40) en su forma desamidada QIPEQPQQF (SEC ID Nº: 41) y Glt-156 PFSQQQQSPF (SEC ID Nº: 42) en su forma desamidada PFSEQQESPF (SEC ID Nº: 43), y también DQ2--V LQPQQPFPQQPQQPYPQQPQ (SEC ID Nº: 44), y -gliadina p31-49 LGQQQPFPPQQPYPQPQPF (SEC ID Nº: 45) (sobre el intervalo de 0,1-100 g/ml). En 8/9

15 donantes con enfermedad celíaca HLA DQ2, se detectaron respuestas de ELISpot de IFN a gliadina desamidada (mediana 23, intervalo: 13-153 UFP/millón de PBMC). La Figura 2 muestra que 7 donantes respondieron a la variante de -gliadina p57-73 QE65 desamidada con leucina en la posición 17 QLQPFPQPELPYPQPQL (SEC ID Nº 46) que abarcaba DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4) (5 M) y un péptido de 33 unidades LQLQPFPQPELPYPQPELPYPQPELPYPQPQPF (SEC ID Nº: 2; 2-gliadina 56-88 desamidada) (5 M) que abarcaba repeticiones en tándem solapantes de DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4), y DQ2--III (SEC ID Nº: 5). A una concentración óptima (50 M), la diferencia entre las repuestas de ELISpot de IFN estimuladas por los péptidos de 17 unidades y 33 unidades no fue significativa. Un donante respondió al péptido de 15 unidades que abarcaba DQ2--IV desamidado (SEC ID Nº: 39), pero ninguno de los otros nueve epítopos se reconocieron por PBMC recogidas el día 6 después de exposición a gluten de trigo.

25 Los inventores concluyeron que, en la mayoría de los individuos con enfermedad celíaca HLA DQ2+, los péptidos que abarcaban DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4) o el epítopo DQ2--III (SEC ID Nº: 5) relacionado contribuyen sustancialmente a la actividad estimulante de linfocitos T de gluten in vivo, pero muchos otros epítopos de gluten publicados contribuyen muy poco, si lo hacen, de forma uniforme a los péptidos reconocidos por linfocitos T CD4+ inducidos en sangre después de exposición a gluten in vivo. Por el contrario, otras secuencias que podrían tener actividad estimulante de T potente pueden haberse pasado por alto porque solamente una minoría de las proteínas del gluten se han evaluado sistemáticamente en ensayos funcionales. Fue necesario un nuevo enfoque para evaluar exhaustivamente los epítopos de linfocitos T candidatos en el gluten de trigo, centeno y cebada con respecto a su contribución a la respuesta de linfocitos T específicos de gluten asociada con la enfermedad celíaca.

35 Biblioteca de péptidos de gliadina de Triticum aestivum exhaustiva

En 2001, había 111 entradas en Genbank para proteínas ,  y -gliadina de T. aestivum. Los enfoques tradicionales para mapeo de epítopos de linfocitos T CD4+ con péptidos de 15-20 unidades solapantes en 10-12 aminoácidos que abarcaban cada polipéptido habrían producido bibliotecas de un tamaño grande poco práctico para sintetizar y explorar. No obstante el análisis filogenético y el alineamiento de secuencias de gliadina por ClustalW indican similitudes de secuencia sustanciales dentro de y entre cada subfamilia filogenética de gliadinas (Anderson, 1991). El alineamiento de polipéptidos y diseño sistemático pero no asistido por ordenador indicó que una biblioteca de 652 miembros de péptidos de 20 unidades solapantes en 12 aminoácidos sería suficiente para abarcar los

45 péptidos de 12 unidades únicos en 111 entradas de gliadinas entonces presentes en Genbank (véase Tabla 3). Dividida en 83 grupos de hasta 8 péptidos con y sin pretratamiento por tTG, esta biblioteca era práctica de explorar antes y el día 6 después de la exposición a gluten (un pocillo para cada grupo) usando PBMC de 100 ml de sangre en ensayos de ELISpot de IFN durante una noche. Después podría usarse una recogida adicional de 100 ml de sangre el día 7 para verificar los hallazgos y evaluar los péptidos individuales en grupos positivos.

Especificidad de enfermedad de respuestas de linfocitos T a grupos de péptidos de gliadina

En el estudio inicial, la biblioteca de gliadina piloto se evaluó usando ensayos de ELISpot durante una noche para medir las frecuencias de linfocitos T secretores de IFN en sangre de donantes de enfermedad celíaca HLA

55 DQ2+DQ8-en dietas sin gluten a largo plazo (GFD) (n=9) y también voluntarios HLA-DQ2+DQ8-sanos (n=9) con GFD durante 4 semanas, el suficiente tiempo para que la exposición a gluten sea capaz de inducir linfocitos T de sangre periférica en voluntarios celíacos (Anderson et al., 2005). Entre los donantes sanos, los aumentos en las respuestas a tres de 83 grupos alcanzaron significación estadística después de la exposición al gluten (p<0,05, suma de rangos emparejados de Wilcoxon), pero fueron irregulares, débiles y no se vieron afectadas por desamidación (véase Figura 3).

Entre los nueve sujetos celíacos hubo 7 “sensibles” que, el día 6 después de comenzar la exposición a gluten, tuvieron al menos un grupo de péptidos que estimularon una respuesta de más de 10 UFP/pocillo y más de cuatro veces la inducida por el medio solamente (“fondo”). Comparando UFP el día 6 con el día 0 en los 9 donantes con

65 enfermedad celíaca, hubo una inducción significativa (p<0,05, suma de rangos emparejados de Wilcoxon de una

cola) de linfocitos T específicos para 34 grupos incluyendo uno (grupo 20) que también se reconocía débilmente por donantes sanos después de exposición a gluten. Entre los donantes con enfermedad celíaca, el pretratamiento con tTG aumentó (p<0,05, suma de rangos emparejados de Wilcoxon de una cola) la frecuencia de linfocitos T de sangre periférica que reconocían gliadina pretratada con quimiotripsina y también 11 de los grupos de péptidos ensayados.

5 Para definir una jerarquía basándose en la uniformidad y contribución relativa de los grupos (o en experimentos posteriores, péptidos) a la población de linfocitos T específicos de gliadina global, se calculó una “puntuación” entre 0 y 100 de acuerdo con el promedio de “sensibles”, respuestas de ELISpot de IFN (UFP/pocillo) por encima del “fondo” el día 6 o día 7 expresado como un porcentaje de su respuesta máxima a cualquier grupo (o péptido de biblioteca).

A partir del total de 83 grupos tratados con tTG, 18 (22%) tuvieron una “puntuación” de más de 10 el día 6 y todos se asociaron con inducción significativa de respuestas entre el día 0 y el día 6, mientras que 5/9 y 7/12 grupos que tenían una puntuación entre 5 y 10 o entre 1 y 5, respectivamente, el día 6 se asociaron con inducción significativa

15 de respuestas entre el día 0 y el día 6. Otros seis grupos se asociaron con inducción significativa de respuestas pero tuvieron puntuaciones menores de 1. Durante análisis posterior de bibliotecas peptídicas, se estableció una “puntuación” de 5 o más para grupos o péptidos como un valor de punto de corte arbitrario para que las respuestas de linfocitos T se consideraran “positivas” y garantizaran mapeo adicional.

También resultó evidente a partir de esta experiencia inicial que la utilización de grupos de péptidos de gladina fue relativamente ineficaz ya que casi un cuarto de los grupos fueron positivos y requirieron desconvolución. En experimentos posteriores, se evaluaron péptidos individuales en lugar de grupos. Para permitir explorar tantos péptidos como fuera posible usando PBMC a partir de una única recogida de sangre de 300 ml, todos los péptidos se trataron con tTG (ya que el tratamiento de tTG nunca se asoció con reducción de respuestas de ELISpot) y las

25 bibliotecas se exploraron solamente el día 6 o el día 0.

En 4/7 “sujetos sensibles”, los grupos de -gliadina 10 o 12 con péptidos de 20 unidades que abarcaban los epítopos DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4) y/o DQ2--III (SEC ID Nº: 5) fueron los más activos, y en otros 3 sensibles, el grupo de -gliadina 81 fue el más activo. En general, el grupo de -gliadina 12 tuvo la mayor puntuación (78) y a continuación estaba el grupo de -gliadina 81 (72). Se evaluaron péptidos tratados con tTG individuales a partir de los grupos 7-13, 42-53, 68 y 78-82 con PBMC recogidas de 5/7 sujetos sensibles el día 7 (véase Figura 4).

En todos los casos, varios péptidos de cada grupo fueron reactivos. Se confirmó que los péptidos que abarcaban los

35 epítopos DQ2--II (SEC ID Nº: 4) y DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y/o DQ2--III (SEC ID Nº: 5) eran los cinco más activos en la biblioteca de 20 unidades de gliadina, pero cuatro péptidos de 20 unidades de -gliadina de los grupos 80 y 81 eran 53-65% tan activos como el péptido de 20 unidades de -gliadina más activo. Los cuatro péptidos de 20 unidades de -gliadina incluían secuencias homólogas de DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y/o DQ2--II (SEC ID Nº: 4), concretamente, QPFPQPQQPFPW (SEC ID Nº: 47; W03; B01), PFPQPQQPIPV (SEC ID Nº: 48; W04), QPFPQPQLPFPQ (SEC ID Nº: 49; W06) abarcadas en SEC ID Nº: 28, y tres incluían secuencias que se ha indicado que se reconocían por el epítopo DQ2--VII QQPQQPFPQ (SEC ID Nº: 50) cuando se desamidó para clones de linfocitos T intestinales específicos de EQPEQPFPQ (SEC ID Nº: 51).

La Figura 5 muestra respuestas de ELISpot de IFN de PBMC de donantes con enfermedad celíaca después de

45 exposición a trigo para mapear con precisión la región inmunogénica de PQQPQQPQQPFPQPQQPFPWQP (SEC ID Nº: 52) (como se ha descrito previamente en el documento WO 2005/105129). Péptidos de 15 unidades tratados con transglutaminasa tisular que abarcan SEC ID Nº: 52 se expresan como un porcentaje del péptido de 15 unidades más activo para cada donante (media+ETM, n=8) (A). La actividad estimulante de linfocitos T de SEC ID Nº: 52 podría atribuirse casi completamente a la secuencia desamidada que abarca homólogos de DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4), QPFPQPQQPFPW (SEC ID Nº: 47). La Figura 5B muestra respuestas de ELISpot de IFN de PBMC de donantes con enfermedad celíaca después de exposición a trigo normalizadas frente a respuestas de donantes individuales máximas a la variante Q3 E10 (media+ETM, n=6). La desamidación de Q10 en QPQQPFPQPQQPFPWQP (SEC ID Nº: 53) a QPQQPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 54) es suficiente para transmitir inmunogenicidad óptima y la secuencia doble desamidada, QPEQPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 55;

55 W03-E7), es equivalente en bioactividad. La Figura 5C muestra respuestas de ELISpot de IFN de PBMC de donantes con enfermedad celíaca después de exposición a trigo (n=7), cebada (n=9) o centeno (n=10) normalizadas frente al péptido de 15 unidades sustituido con lisina más activo para donantes individuales (media+ETM). La sustitución de lisina de la secuencia PQPEQPF central (SEC ID Nº: 272) de NPL002: piroEQPFPQPEQPFPWQPamida (SEC ID Nº: 229) (32 g/ml) anuló la bioactividad de este péptido. La preincubación de PBMC de homocigotos HLA DQA1*05 DQB1*02 y heterocigotos con anti HLA-DQ pero no -DR anuló respuestas de ELISpot de IFN de una noche a este péptido (datos no mostrados).

La jerarquía peptídica observada en el experimento inicial se verificó evaluando por separados los 652 péptidos de 20 unidades individuales en la biblioteca de Gliadina Piloto usando PBMC recogidas 6 días después de la exposición 65 a trigo de 13 donantes HLA-DQ2+8+ adicionales (véase Figura 4). De nuevo no hubo ninguna clara diferencia en la

actividad entre péptidos de 20 unidades incluyendo DQ2--II (SEC ID Nº: 4) y DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y/o DQ2--III (SEC ID Nº: 5), lo que sugiere que los linfocitos T policlonales nuevos son en pocas ocasiones específicos para DQ2--I (SEC ID Nº: 3) pero no DQ2--III (SEC ID Nº: 5) o viceversa.

5 Se exploraron PBMC de 6 donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+8+ el día 6 después de comenzar la exposición a trigo frente a cada uno de los 652 péptidos de 20 unidades individuales en la biblioteca de gliadina Piloto (véase Figura 4). Los péptidos de -gliadina que eran más activos en donantes con enfermedad celíaca HLADQ2+8+ también eran los más activos en 4 donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+8+ después de exposición a gluten.

10 Se exploraron PBMC de 6 donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+8+ el día 6 después de comenzar la exposición de 3 días con centeno puro frente a cada uno de los 652 péptidos de 20 unidades individuales en la biblioteca de gliadina Piloto (véase Figura 4). La jerarquía de péptidos de 20 unidades de gliadina estimulantes de linfocitos T fue sorprendentemente diferente de la observada después de exposición con trigo (véase Figura 4). Los

15 linfocitos T medidos por el ensayo de ELISpot de IFN durante una noche en sangre después de exposición a centeno reconocieron en pocas ocasiones péptidos de 20 unidades que incluyen epítopos DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4), o DQ2--III (SEC ID Nº: 5). En su lugar los péptidos de 20 unidades de -gliadina incluyendo QPFPQPQQPFPW (SEC ID Nº: 47) y QPFPQPQQPIPV (SEC ID Nº: 48) fueron inmunodominantes.

20 Esta observación sugirió que aunque los clones de linfocitos T inducidos contra gluten o gliadina de trigo desamidado in vitro pueden con frecuencia ser promiscuos en su reconocimiento de péptidos de gliadina inmunodominantes como se indica en Vader et al., 2003, los linfocitos T policlonales nuevos inducidos por exposición a gluten in vivo sí diferencian entre secuencias estrechamente relacionadas. Por lo tanto, la conclusión de Vader et al., 2003 de que la actividad estimulante de linfocitos T de hordeína y secalinas de cebada y centeno fue

25 sustancialmente atribuible a las variantes desamidadas de secuencias PFPQPQQPF (SEC ID Nº: 9) y PQPQQPFPQ (SEC ID Nº: 11) que son homólogas de DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4) no se confirmó usando PBMC nuevas de donantes con enfermedad celíaca después de exposición in vivo con centeno. Además, resultó evidente que una proporción sustancial de linfocitos T específicos para las secuencias dominantes QPFPQPQQPFPW (SEC ID Nº: 47) y PFPQPQQPIPV (SEC ID Nº: 48) inducidos por exposición a centeno in vivo no

30 reconocieron los epítopos DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4), o DQ2--III (SEC ID Nº: 5).

Además, cuando se comparó con los linfocitos T específicos para los péptidos de  y -gliadina inmunodominantes, los linfocitos T específicos para muchos epítopos presentados para clones de linfocitos T específicos de gliadina contribuyen poco o nada a la población de linfocitos T específicos de gliadina global presente en sangre el día 6 de

35 la exposición a trigo (véase Figura 2). Por lo tanto, los inventores concluyeron que la inmunodominancia y la relevancia de epítopos del gluten previamente indicados para líneas de linfocitos T intestinales y clones in vitro frecuentemente divergen de la medida por un ensayo durante una noche de linfocitos T policlonales en sangre recién aislada de donantes con enfermedad celíaca después de exposición a gluten in vivo.

40 A continuación los inventores buscaron confirmar y extender la jerarquía de péptidos estimulantes de linfocitos T a todas las proteínas de gluten de trigo panificable (T. aestivum), cebada y centeno en donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+8-. Para enfrentarse al número creciente de proteínas de gluten en el Genbank del NCBI y para diseñar bibliotecas peptídicas para gluteninas LMW, gluteninas HMW, hordeínas y secalinas, los inventores han desarrollado un nuevo algoritmo para diseñar bibliotecas adaptadas de tamaño mínimo para acomodar todas las

45 secuencias únicas de, por ejemplo, péptidos de 12 unidades dentro de péptidos más largos, por ejemplo, de 20 unidades. Beissbarth, T., et al., 2005. Las bibliotecas de 20 unidades que abarcaban todos los péptidos de 12 unidades únicos permitieron evaluar el gluten de trigo con PBMC de dos muestras de sangre de 300 ml, y hordeínas y secalinas cada una con una única recogida de sangre de 300 ml. Se diseñaron bibliotecas de péptidos de 20 unidades exhaustivas y se sintetizaron como Pepsets de uso en exploración (véase Tabla 3), que abarcaban todos

50 los péptidos de 12 unidades únicos en entradas de polipéptidos del Genbank presentes en junio de 2003 para gliadinas (108 entradas, 721 péptidos de 20 unidades que abarcaban 4465 epítopos candidatos de 12 unidades únicos), gluteninas LMW (77 entradas, 645 péptidos de 20 unidades, 3945 candidatos de 12 unidades) y gluteninas HMW (55 entradas, 786 péptidos de 20 unidades, 4799 candidatos de 12 unidades) de T. aestivum, hordeínas de H. vulgare (59 entradas, 416 péptidos de 20 unidades, 2672 candidatos de 12 unidades), y secalinas de S. cereale (14

55 entradas, 155 péptidos de 20 unidades, 957 candidatos de 12 unidades).

Se usaron PBMC de donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+8-recogidos el día 6 después de comenzar la exposición a trigo de 3 días para explorar la biblioteca de gliadina tratada con tTG y la mitad de la biblioteca de glutenina LMW (n=20), y la segunda mitad de la biblioteca de glutenina LMW y biblioteca de glutenina HMW (n=26).

60 Se usaron PBMC de 21 donantes con enfermedad celíaca 6 días después de comenzar la exposición a cebada para explorar la biblioteca de hordeína, y se usaron PBMC de 19 donantes adicionales 6 días después de comenzar la exposición a centeno para explorar la biblioteca de secalina. Las respuestas de ELISpot de IFN a péptidos de la biblioteca de Pepset tratados con tTG estaban por encima de los niveles de fondo en 27/46 donantes después de exposición a trigo, en 12/21 después de exposición a cebada y 8/19 después de exposición a centeno.

Para facilitar la selección de péptidos de 20 unidades para mapeo preciso en bibliotecas “de segundo ciclo”, los inventores adaptaron un enfoque de maximización de la expectativa (ME) usados para el análisis de datos de micromatrices (Beissbarth et al. (2005)). Todos los conjuntos de datos de donantes individuales se analizaron por el algoritmo de ME para derivar las variables  y p para describir la respuesta de ELISpot de IFN a cada péptido de 20

5 unidades. La variable  describe la fuerza relativa de la respuesta de ELISpot, y la variable p describe la proporción de donantes sensibles. Cada péptido de 20 unidades de biblioteca de primer ciclo se mapeó con precisión en bibliotecas de segundo ciclo si el producto de p era al menos 5% del péptido de biblioteca de primer ciclo más activo para cada grano.

10 Se diseñaron bibliotecas de segundo ciclo reduciendo péptidos de 20 unidades seleccionados a 9 péptidos de 12 unidades solapantes. Si cualquier péptido de 12 unidades incorporaba glutamina en la posición 7 y se adaptaba al motivo de desamidación definido para tTG (QX1PX3, o QX1X2[F,Y,W,I,L,V], en la que X1 y X3 no son prolina) entonces se diseñó un péptido de 16 unidades, por el que el péptido de 12 unidades con glutamina en la posición 7 se flanqueó por los restos nativos en las posiciones -1 y 13 y por glicina en las posiciones -2 y 14. Esta estrategia

15 permitió que el resto de glutamina potencialmente desamidada, central se alojara en las posiciones de anclaje 4, 6 o 7 en cualquier secuencia de unión a péptido HLA-DQ2 de 9 unidades potencial. Si los péptidos de 20 unidades seleccionados no incluían ninguna secuencia de 12 unidades con glutamina en la posición 7, entonces se sintetizaron dos péptidos de 16 unidades solapantes por 12 restos. Algunos péptidos de 16 unidades del segundo ciclo con un resto de glutamina central susceptible a desamidación mediada por tTG también se sintetizaron con

20 glutamina reemplazada por glutamato (desamidación por ordenador).

La biblioteca de segundo ciclo de trigo consistió en 551 péptidos de 16 unidades (incluyendo 113 péptidos de 16 unidades sustituidos con glutamato) que se ensayaron usando PBMC de 34 donantes con enfermedad celíaca después de exposición a trigo (incluyendo 26 sensibles), la biblioteca de cebada tuvo ochenta y nueve péptidos de

25 16 unidades e incluía 9 sustituidos con glutamato que se ensayaron usando PBMC de 10 donantes con enfermedad celíaca después de exposición a cebada (incluyendo 8 sensibles), y la biblioteca de centeno tuvo sesenta y cuatro péptidos de 16 unidades e incluía 11 sustituidos con glutamato que se ensayaron usando PBMC de 11 donantes con enfermedad celíaca después de exposición a centeno (incluyendo 11 sensibles).

30 La jerarquía de péptidos estimulantes se demostró claramente para cada grano (véase Figura 6). Entre los 652 péptidos de 20 unidades combinados en el Piloto de gliadina y 2723 de 20 unidades en las bibliotecas Exhaustivas, 34 (1%) tuvieron una puntuación  a 30, 300 (9%) tuvieron una puntuación  5, mientras que 2111 tuvieron una puntuación de 0. Ciento setenta y uno de los 300 (57%) péptidos de 20 unidades de primer ciclo tratados con tTG con puntuaciones de  5 péptidos de 16 unidades tratados con tTG de segundo ciclo generados con puntuaciones 

35 5, y entre estos péptidos de 16 unidades de segundo ciclo hubo 89 secuencias únicas (véase Figura 7). Estas 89 secuencias estimulantes de linfocitos T confirmadas en el segundo ciclo incluyeron 32 derivadas de gliadinas, 1 de gluteninas LMW, 4 de gluteninas HMW, 30 de hordeínas y 29 de secalinas, 5 fueron comunes para familias de prolamina en dos granos diferentes y 1 estaba en tres familias de prolamina en los tres granos.

40 Los 89 péptidos de 16 unidades estimulantes de linfocitos T confirmados contenían prolina y/o glutamina.

La bioactividad después de desamidación de péptidos de segundo ciclo por tTG fue la misma que los péptidos de síntesis con glutamato que reemplaza restos de glutamina que se ha predicho que son susceptibles a tTG (datos no mostrados).

45 Fueron excepciones al requisito de desamidación los péptidos de 16 unidades de glutenina HMW estrechamente relacionados pero infrecuentemente reconocidos W21 QGQQGYYPISPQQSGQ (SEC ID Nº: 91), W22 QGQPGYYPTSPQQIGQ (SEC ID Nº: 92), W24 PGQGQSGYYPTSPQQS (SEC ID Nº: 95), y W29 GQGQSGYYPTSPQQSG (SEC ID Nº: 104), y la gliadina W36 QYEVIRSLVLRTLPNM (SEC ID Nº: 116). Los

50 péptidos se consideraron “dominantes” para un donante celíaco particular si indujeron al menos 70% de la respuesta del péptido más activo en cada biblioteca para ese donante. En el segundo ciclo de trigo, centeno y cebada, diez péptidos de 16 unidades y treinta y uno de 12 unidades con secuencias sustituidas con glutamato correspondientes (SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169,

55 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209, 210) fueron dominantes en al menos 1 donante, mientras que solamente cuatro péptidos de 16 unidades y veintiuno de 12 unidades (con variantes sustituidas con glutamato correspondientes) fueron dominantes en más del 10% de los donantes (SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 80, 81, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 191, 192). Los péptidos de 16 unidades

60 derivados de gluten, hordeína y secalina de trigo de segundo ciclo de mayor puntuación fueron dominantes en más del 50% y en general se reconocieron por más del 80% de los donantes.

La jerarquía y dominancia de péptidos estimulantes fue sorprendentemente diferente según el grano consumido (véase Figura 8). La capacidad estimulante de los péptidos que comparten el motivo de secuencia 65 QQPFPQPEQP(F,I)P(W,L,Y,Q)(Q,S) no fue específica de ningún grano, el péptido de 17 unidades de -gladina

W03-E7 QPEQPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 55) fue uniformemente el más activo de esta familia y es el péptido estimulante de linfocitos T dominante universal en el gluten. Otros péptidos fueron dominantes casi exclusivamente después de solamente un grano. Por ejemplo, el péptido de 17 unidades de -gliadina QLQPFPQPELPYPQPQP (SEC ID Nº: 225; que abarca SEC ID Nº: 62 (W02-E7) incluyendo DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y DQ2--II (SEC ID Nº: 4)) 5 fue dominante solamente después de exposición a gluten de trigo, el péptido de 16 unidades de hordeína B08-E7 PQQPIPEQPQPYPQQP (SEC ID Nº: 318; que abarca SEC ID Nº: 127 (B06-E7)) solamente después de exposición al gluten de cebada, y la secuencia de secalina QPFPQQPEQIIPQQ (SEC ID Nº: 323; que abarca SEC ID Nº: 190 (R11-E7)) solamente después de exposición a gluten de centeno. Otros péptidos que incluían el motivo QPFP(W,L,Y,V,I)QPEQPFPQ indujeron respuestas relativamente más fuertes después de exposición a gluten de

10 cebada o centeno que de trigo. La “especificidad de grano” de péptidos estimulantes de linfocitos T dominantes proporcionó una definición funcional para redundancia del reconocimiento de linfocitos T que complementa el enfoque tradicional para la determinación de reactividad cruzada basándose en clones de linfocitos T.

Se indujeron clones de linfocitos T a partir de biopsias intestinales o PBMC de donantes con enfermedad celíaca

15 para péptidos desamidados dominantes. Los perfiles de citocinas de clones de linfocitos T fueron Th1 o Th0, y todos se restringieron a HLA-DQ2. Las secuencias centrales mínimas se determinaron usando exploraciones de lisina del péptido parental. Los clones de linfocitos T inducidos contra NPL001 (SEC ID Nº: 228) fueron específicos para DQ2-I (SEC ID Nº: 3) o DQ2--II (SEC ID Nº: 4), y contra NPL002 (SEC ID Nº: 229) fueron específicos para DQ2--I PFPQPEQPF (SEC ID Nº: 10) o DQ2--II PQPEQPFPW (SEC ID Nº: 15). Clones de linfocitos T individuales

20 inducidos contra NPL003 (SEC ID Nº: 230) fueron específicos para DQ2-Hor-I PIPEQPQPY (SEC ID Nº: 17), y la variante completamente desamidada de SEC ID Nº: 189, piroEQPFPEQPEQIIPQQP-amida (SEC ID Nº: 226; NPL004) (péptido de 9 unidades central no determinado, DQ2-SEC-I). Un clon adicional inducido contra gliadina desamidada fue específico para W11-E7 QAFPQPEQTFPH (SEC ID Nº: 74) (núcleo de 9 unidades no determinado). Cada uno de los clones se exploró frente a las bibliotecas de gliadina/glutenina, hordeína y secalina tratadas con

25 tTG de segundo ciclo y también una biblioteca de 18 unidades de verificación adicional (véase Tabla 3) que abarcaba todos los péptidos de 10 unidades únicos codificados por gliadinas de T. aestivum, hordeínas de H. vulgare y secalinas de S. cereale en su secuencia de tipo silvestre y con desamidación por ordenador (glutamato que reemplaza glutamina de acuerdo con el motivo de desamidación de tTG). Hubo poca reactividad cruzada de clones para péptidos estimulantes dominantes, pero una sustancial redundancia de reconocimiento de péptidos para

30 muchos péptidos de gluten subdominantes. En total, 11 clones específicos para 6 epítopos, DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4), DQ2--I (SEC ID Nº: 10), DQ2--II (SEC ID Nº: 15), DQ2-Hor-I (SEC ID Nº: 17), y DQ2Sec-I (SEC ID Nº: 226) presentes en 4 péptidos estimulantes de linfocitos T dominantes, W02-E7, W03-E7, B08-E2E7, y R11-E4E7 (SEC ID Nº: 62, 55, 319, 322 respectivamente) reconocieron 22/37 secuencias de gliadina/glutenina, 26/30 secuencias de hordeína y 22/29 secuencias de secalina confirmadas como péptidos

35 estimulantes en la Figura 7.

El ensayo de ELISpot de IFN usando PBMC recogidas de donantes con enfermedad celíaca HLA-DQ2+ después de exposición a gluten con magdalenas hechas de una mezcla igual de harina de trigo, cebada y centeno se usó para comparar la frecuencia relativa de linfocitos T específicos para W02-E7, W03-E7, B08-E2E7 y R11-E4E7 (SEC ID 40 Nº: 62, 55, 319, 322 respectivamente), junto con un péptido de gliadina dominante poco habitual atípico W36 (SEC ID Nº: 116) y un homólogo de avenina de avena de Av-9A QYQPYPEQEQPILQQ (SEC ID Nº: 323; véase Figura 9A). La respuesta a la mezcla equimolar de W02-E7, W03-E7, B08-E2E7 (SEC ID Nº: 62, 55, 319; Cóctel 2) a una concentración óptima no fue diferente de la mezcla de 6 péptidos, pero fue claramente mayor que W02-E7 (SEC ID Nº: 62) y/o W03-E7 (SEC ID Nº: 55). Cuando se evaluó el Cóctel 2 (50 M) después de exposición a gluten de trigo,

45 cebada o centeno, este estimuló respuestas de ELISpot de IFN equivalentes a al menos dos tercios de la estimulada por concentraciones óptimas de gliadina, hordeína u -secalina tratadas con tTG (320 g/ml), respectivamente (véase Figuras 9B, C y D).

Para mejorar su estabilidad química y aumentar la resistencia a exopeptidasas, se sintetizaron péptidos como sales

50 de acetato de N-piroglutamato “recubierto”, C-amida: péptidos de 15 unidades o 16 unidades NPL001 (SEC ID Nº: 228), NPL002 (SEC ID Nº: 229) y NPL003 (SEC ID Nº: 230) con glutamato en sitios que se ha predicho que se desamidan por tTG. De hecho, el recubrimiento extendió las semividas de los péptidos de 10-12 minutos para péptidos libres: NPL033, NPL038 y NPL034 (SEC ID Nº: 13, 320 y 321) después de inyección intradérmica de embolada de 0,9 mg en 0,1 ml en una rata adulta a 26-28 minutos con N-piroglutamato y C-amidación (SEC ID Nº:

55 228, 229 y 230) o 19-24 minutos con N-acetilación y C-amidación (SEC ID Nº: 231, 232 y 233) (véase Tabla 4). La biodisponibilidad, como se mide por análisis de área bajo la curva, también se aumentó sustancialmente en hasta treinta y cuatro veces con adición de N-piroglutamato o N-acetilo y recubrimiento de C-amidación.

Tabla 4. Farmacocinética de péptidos estimulantes de linfocitos T derivatizados.

N y C terminales libres: N-Acetilo y C-amida N-piroGlu y C-amida

LQPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 13) NPL033 T1/2 10,2 minutos AUC 2618: N-Acetilo-QLQPFPQPELPYPQPQ-amida (SEC ID Nº: 231) NPL030 T1/2 19,4 minutos AUC 43474 piroE-LQPFPQPELPYPQPQ-amida (SEC ID Nº: 228) NPL001 T1/2 28,20 minutos AUC 89350

PQQPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 320) T1/2 13,2 minutos AUC 22393: N-Acetilo-QQPFPQPEQPFPWQP-amida (SEC ID Nº: 232) NPL031 T1/2 22,9 minutos AUC 80263 piroE-QPFPQPEQPFPWQP-amida (SEC ID Nº: 229) NPL002 T1/2 27,18 minutos AUC 81514

FPEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 321) T1/2 12,5 minutos AUC 8206: N-Acetilo-FPEQPIPEQPQPYPQQ-amida (SEC ID Nº: 233) NPL032 T1/2 24,2 minutos AUC 79439 piroE-PEQPIPEQPQPYPQQ-amida (SEC ID Nº: 230) NPL003 T1/2 25,98 minutos AUC 51390

T1/2 semivida y AUC área bajo la curva (biodisponibilidad) después de inyección de embolada intradérmica 0,9 mg en 0,1 ml de solución salina de mezcla equimolar de NPL001+2+3, NPL033+38+34 o NPL030+31+32

Los hallazgos de los inventores apoyan la noción de que los péptidos que abarcan epítopos presentes en NPL001 (SEC ID Nº: 228), NPL002 (SEC ID Nº: 229) y NPL003 (SEC ID Nº: 230), son dominantes, no redundantes y contribuyen uniformemente con una proporción sustancial de la actividad estimulante de linfocitos T del gluten. Estos 3 péptidos o los epítopos dentro de ellos son por lo tanto probablemente críticos para el diseño de una vacuna

10 terapéutica basada en péptidos o en diagnósticos funcionales que pueden aplicarse uniformemente a enfermedad celíaca asociada con HLA-DQ2.

Estos hallazgos enfatizan que los enfoques in vitro que se basan en la expansión de linfocitos T específicos de antígeno poco comunes frecuentemente no se traducen necesariamente a epítopos relevantes in vivo después de 15 reactivación de enfermedad aguda. De hecho la mayoría de los péptidos estimulantes de linfocitos T dominantes no redundantes identificados en el presente estudio no se han descrito previamente en estudios funcionales que utilizan clones y líneas de linfocitos T. Ya que el mapeo de epítopos exhaustivo usando linfocitos T inducidos in vivo por el antígeno patógeno no se ha llevado a cabo previamente, este estudio proporciona el primer verdadero ensayo de un enfoque in vitro para mapear los epítopos relevantes para una enfermedad humana inmunitaria. La técnica anterior

20 no describe la manera en que los péptidos estimulantes de linfocitos T dominantes no redundantes se seleccionarían para inmunoterapia basada en péptidos para maximizar el número de linfocitos T diana en el mayor número de pacientes minimizando al mismo tiempo el número de péptidos para simplificar la formulación.

Sin embargo, es probable que péptidos adicionales aumenten la capacidad estimulante de linfocitos T y uniformidad

25 de las respuestas de linfocitos T donantes de esta mezcla después de exposición a trigo, cebada o centeno. Los péptidos de gluten con las mayores “puntuaciones” pero no reconocidos por clones de linfocitos T específicos para DQ2--I (SEC ID Nº: 3), DQ2--II (SEC ID Nº: 4), DQ2--I (SEC ID Nº: 10), DQ2--II (SEC ID Nº: 15), o DQ2-Hor-I (SEC ID Nº: 17) tienen más probabilidad de aumentar adicionalmente la capacidad estimulante de linfocitos T de la mezcla. El aumento de la proporción de linfocitos T específicos de gluten a los que se dirige uniformemente una

30 mezcla de péptidos probablemente mejore su utilidad terapéutica o de diagnóstico para enfermedad celíaca HLADQ2+8-, pero también puede complicar la formulación, comprometer la estabilidad química y aumentar la probabilidad de efectos adversos.

Por otro lado, NPL001 (SEC ID Nº: 228) podría sustituirse con un único péptido, por ejemplo, incluyendo la

35 secuencia LPYPQPELPYPQ (SEC ID Nº: 60; W01-E7) reconocido por clones de linfocitos T específicos para DQ2--I (SEC ID Nº: 3) y también clones de linfocitos T DQ2--II (SEC ID Nº: 4). Como alternativa, NPL001 (SEC ID Nº: 228) podría sustituir dos péptidos separados, uno reconocido por clones de linfocitos T específicos para DQ2--I (SEC ID Nº: 3), y el otro reconocido por clones de linfocitos T específicos para DQ2--II (SEC ID Nº: 4). El mismo

principio podría aplicarse a NPL002 (SEC ID Nº: 229) y NPL003 (SEC ID Nº: 230). Esto podría ser ventajoso para mejorar la formulación y la estabilidad.

Ejemplo 3: NexVax2 en modelo de ratón

5 La administración óptima y el régimen de dosis de una vacuna terapéutica basada en péptidos para inducir tolerancia clínica al gluten y remisión de la enfermedad celíaca mientras se consume el gluten no se conoce. Sin embargo, una propiedad esencial de cualquier producto terapéutico basado en péptidos sería su capacidad para activar linfocitos T afines en el órgano diana in vivo.

10 La interacción entre NPL001 (SEC ID Nº: 228) y linfocitos T afines in vivo se ha modelado desarrollando ratones Black-6 transgénicos que expresan HLA-DR3 y -DQ2 funcional (pero no molécula del MHC de Clase II murinas) en células presentadoras de antígenos (APC) a las que se transfieren 3 x 106 linfocitos T CD4+ marcados con CFSE específicos para NPL001 (Chen Z., et al., 2006). El ratón donante (HH8-1) es transgénico para el receptor de

15 linfocitos T específico de NPL001 y CD4 humano expresado en linfocitos T, y también expresa HLA-DR3 DQ2 en APC. En general el 96% de los linfocitos T CD4+ en el ratón HH8-1 son clonales y específicos para NPL001 (resultados no mostrados).

Cuatros días después de la administración subcutánea (en el corvejón de la pata trasera) de una mezcla equimolar

20 de NPL001, NPL002 y NPL003 en 50 l de solución salina, se recogen el bazo, ganglios linfáticos mesentéricos de drenaje del intestino (MLN) y los ganglios linfáticos poplíteos de drenaje local (PLN). Se tiñen células mononucleares aisladas para hCD4, y las cadenas  y  del receptor de linfocitos T expresadas en los linfocitos T específicos para NPL001 HH8-1 (V8 y V8). Se mide la proliferación de células marcadas con CFSE transferidas como el % de células CFSEpos que han experimentado una o más divisiones, como se indica por dilución de la tinción de CFSE. La

25 Figura 10 muestra que se observa proliferación dependiente de dosis de linfocitos T específicos para NPL001 después de administración subcutánea de entre 0,9 y 30 g, se consigue respuesta semimáxima con 5 g. No se observa toxicidad clínica con estas o dosis de hasta 900 g, a pesar de que los linfocitos T tienen un fenotipo Th1 y secretan IFN tras la estimulación con NPL001.

30 Este modelo de ratón tiene el potencial de permitir la demostración de (i) prueba de principio, (ii) mecanismo de acción y (iii) optimización del régimen de dosis para la inducción de tolerancia después de la administración de vacuna terapéutica NexVax2 (una mezcla equimolar de NPL001, NPL002 y NPL003 en solución salina). En los estudios de ratón previos los inventores han demostrado que una única dosis de NexVax2, o el componente peptídico relevante NPL001, es bioactivo in vivo. La administración de NPL001 induce la proliferación de linfocitos T

35 específicos de gliadina HH8-1 en un modelo de transferencia adoptivo a la mayor dosis para administrar en ensayos clínicos humanos de fase 1b. La respuesta a dosis para la activación de linfocitos T específicos de NPL001 transgénicos se determinó posteriormente. Basándose en estos datos preliminares, puede abordarse la capacidad de la vacuna terapéutica NexVax2 para modular las respuestas de linfocitos T específicos de gliadina y el mecanismo de acción en un modelo de ratón biológicamente relevante.

40 El objetivo del estudio fue determinar si la administración repetida de la vacuna terapéutica, NexVax2, usando un régimen diseñado para inducir tolerancia inmunológica es capaz de modular la respuesta de linfocitos T específicos de gliadina en un modelo de ratón de TCR-Tg específico de gliadina.

45 Los animales se identificaron, se asignaron a grupos experimentales y se trataron como en la Tabla 5 posterior.

Tabla 5. Asignación de animales a grupos experimentales.

Grupo Dosis de NexVax2 Número de Dosis Número de Ratón Número por grupo

A 10 g 14 dosis diarias 5A1, 5A2 2 B3 g 14 dosis diarias 5B1, 5B2 2 C1 g 14 dosis diarias 5C1, 5C2 2 D 0,3 g 14 dosis diarias 5D1, 5D2 2 E 0 (control de 14 dosis diarias 5E 1

solución salina)

F 10 g 1 dosis el día final 5F 1 de régimen de tratamiento

La vía de administración intradérmica/subcutánea se seleccionó porque esta es la vía pretendida de administración

50 en el ser humano. La dosificación se seleccionó para abarcar el intervalo de respuesta a dosis que dio como resultado la estimulación de todos los linfocitos T específicos de gliadina en el modelo de transferencia adoptiva (10 g) para dosis baja (0,3 g) que no dio como resultado la proliferación de linfocitos T TCR-Tg específicos de gliadina marcados con CFSE en el estudio previo (Nexpep3).

Todos los péptidos fueron de uso en GMP. Las formulaciones se prepararon por Nexpep Pty Ltd, y la concentración del péptido se ajustó con respecto a pureza. NexVax2 consiste en 3 péptidos (NPL001, NPL002 y NPL003) cada uno a 6 mg/ml en solución salina.

5 La dosis indicada es la cantidad de cada péptido en NexVax2, no la concentración de péptido total (es decir, 10 g de NexVax2 contiene 10 g de NPL001, 10 g de NPL002 y 10 g de NPL003). Se proporcionó NPL001 a 6 mg/ml en solución salina. Los péptidos se almacenaron a -80 ºC antes de su inyección.

Animales y control

Todos los experimentos se llevaron a cabo con la aprobación del Comité de Ética Animal de la Universidad de Melbourne, Nº de Registro de AEC 0707287.

Se usaron catorce ratones transgénicos hembra HH8-1 y 4 hCD4.IAE-/-.DR3.DQ2 en el fondo de C57BL/6. Todos los

15 ratones se criaron en la Universidad de Melbourne, Instalación Animal del Departamento de Microbiología e Inmunología. Los ratones se criaron con una dieta sin gluten (SF07-036) proporcionada por Specialty Feeds Pty Ltd, Perth, Australia Occidental. Cada animal se numeró por perforación de la oreja de acuerdo con el protocolo de instalación animal que lo identificó individualmente dentro del estudio y que correspondía al número de ese animal. Los animales se alojaron individualmente o en grupos de hasta 4 ratones en jaulas con techos de rejilla de acero inoxidable y fondos sólidos. Se usaron virutas de madera como lecho, y se proporcionaron pañuelos de papel para material del nido. Se proporcionó a cada jaula una botella de agua que contenía agua acidificada y una torre de piensos que contenía alimento de ratón sin gluten. La habitación se mantuvo entre 21 ºC y 24 ºC. El intervalo para la humedad relativa fue del 37-58%. Estuvo funcionando un ciclo de luz/oscuridad de 12 horas (horas de luz 07001900) con un mínimo de 15 cambios de aire por hora.

25 Se diluyó NexVax2 a 200 g/ml en solución salina estéril, se separó en alícuotas y se almacenó a -80 ºC para su uso. Para cada tratamiento, una alícuota se descongeló y se diluyó en solución salina estéril. Se inyectó a grupos de ratones hembras HH8-1 (n=2) por vía subcutánea en el flanco con 50 l que contenían una dosis de valoración de NexVax2 (10 g, 3 g, 1 g y 0,3 g) diluida en solución salina o solamente solución salina. Se inyectó a los ratones diariamente durante 14 días. Un ratón recibió una única dosis de 10 g de NexVax2 el último día del régimen de tratamiento.

Los ratones se controlaron diariamente con respecto a hinchazón o irritación en el sitio de inyección, síntomas de respuesta sistémica adversa (apariencia encorvada o rugosa, letargo, escalofríos, moribundo). Se registraron la

35 aparición, intensidad y duración de cualquier señal.

Se recogió una muestra de sangre del seno retroorbital antes de la administración del péptido y por función cardiaca después de eutanasia con CO2 tras la compleción del experimento. Se almacenó sangre a 4 ºC durante una noche, se retiró el coágulo y se recogió el suero después de centrifugación. Los sueros se almacenaron a -80 ºC para su análisis futuro si fuera necesario.

Los ratones se sacrificaron por eutanasia con CO2 3 días después de la administración final del péptido y se recogieron los bazos. Se prepararon suspensiones de células individuales tamizando a través de cribas celulares de malla de nylon de 70 m. Los glóbulos rojos se retiraron de los bazos por lisis con Tris cloruro de amonio. Se

45 aislaron linfocitos T CD4+ por agotamiento negativo usando el kit de aislamiento de linfocitos T CD4+ (Miltenyi Biotech) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Los linfocitos T específicos de gliadina se enriquecieron a partir de los bazos de 4 ratones HH8-1 sin tratamiento previo usando el mismo protocolo. Se prepararon APC a partir de los bazos de tres ratones transgénicos hCD4.IAE-/-.DR3-DQ2. Se prepararon suspensiones de células individuales como anteriormente. Los esplenocitos se irradiaron con gamma (2.200 rad) antes de su uso como APC.

Las células se fenotiparon por tinción de anticuerpos y análisis de FACS. Se identificaron linfocitos T CD4+ específicos de gliadina tiñendo con TCR V8.3 y CD4 humano, y se tiñeron en su superficie con anticuerpos monoclonales anti CD25 y anti GITR. Se determinó la expresión de FoxP3 usando un kit de tinción de FoxP3 (eBiosciences) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Las muestras se fijaron en fijador de FACS

55 (paraformaldehído 1%, glucosa 2% en PBS) y se analizaron por citometría de flujo en el LSR II (BD Bioscience). Se identificaron linfocitos T productores de IFN e IL-10 mediante tinción de citocinas intracelulares después de estimulación con PMA/Ionomicina.

Brevemente, se cultivaron 1 x 106 esplenocitos de ratones tratados durante 6 horas en DMEM completo (DMEM complementado con suero de ternero fetal inactivado por calor al 10%, glutamina 2 mM, aminoácidos no esenciales, 2-mercaptoetanol 50 M, penicilina y estreptomicina) y Brefeldina A 5 g/ml con o sin PMA 500 ng/ml y Ionomicina 500 ng/ml. Las células se tiñeron después con respecto a las moléculas de superficie (TCR V8.3 y CD4 humano), se lavaron y después se fijaron con paraformaldehído 1%/30 minutos, se lavaron dos veces y después se incubaron con anticuerpo anti IFN o anti IL-10 diluido en PBS que contenía Saponina 0,2%. Las muestras se analizaron por

65 citometría de flujo en el LSR II (BD Bioscience) seleccionando en TCR V8.3+, linfocitos CD4+ humanos.

Se cultivaron 2 x 104 linfocitos T purificados de cada ratón por triplicado en placas de 96 pocillos de fondo redondo en DMEM completo con 3 x 105 APC irradiadas con gamma en presencia o ausencia de NPL001 2 g/ml a 37 ºC/CO2 5%. Después de 72 horas de cultivo, los sobrenadantes se recogieron y se almacenaron a -80 ºC para análisis de la secreción de citocinas.

5 Las muestras se ensayaron con respecto a la presencia de IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IL-12p70, TNF e IFN de ratón por flexset de matriz de perlas citométrico (CBA, BD Bioscience) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Las muestras se analizaron por citometría de flujo en el FACS Canto (BD Biosciences) y los datos se analizaron usando software de Matrices de FCAP (BD Bioscience).

Los sobrenadantes de esplenocitos cultivados se ensayaron puros y a dilución 1:10. La concentración de citocinas se determinó frente a los patrones proporcionados diluidos de 2500-10 pg/ml.

Se cultivaron 2 x 104 linfocitos T CD4 purificados de ratones HH8-1 tratados con NexVax2 con células del bazo

15 singénicas irradiadas (2.200 rad, 3 x 105/pocillo) en ensayos por triplicado en presencia de péptido NPL001 0, 0,02, 0,2, 2 o 10 g/ml. Para ensayos de supresión, se cultivaron 2 x 104 linfocitos T CD4 HH8-1 sin tratamiento previo (sensibles) con un número igual (1:1) de linfocitos T CD4+ de ratones tratados con NexVax2, péptido NPL001 valorado y células del bazo singénicas irradiadas (2.200 rad, 3 x 105/pocillo) en ensayos por triplicado. En un ensayo separado se cultivaron animales sensibles sin tratamiento previo con linfocitos T CD4+ de ratones tratados con NexVax2 a relaciones de sensible:supresor de 1:1, 3:1 y 9:1 en presencia de concentración subóptima de péptido NPL001 (0,2 g/ml) y APC.

Se midió la proliferación de linfocitos T mediante la adición de 1 Ci de 3H-timidina durante las últimas 24 horas de los cultivos de 96 horas. Los resultados se registran como cuentas por minuto (cpm), representando la media de

25 cada triplicado representado y las barras de error la desviación típica.

Se extrajo ARN de 5 x 105-2 x 106 linfocitos T purificados de ratones tratados con NexVax2 usando el kit de extracción de ARN RNAeasy plus™ (QIAGEN) de acuerdo con las instrucciones el fabricante. Se almacenó ARN a 80 ºC para análisis futuro si se requirió.

Los ratones se controlaron diariamente con respecto a cualquier respuesta adversa aparente después del tratamiento. No hubo ninguna muerte no programada durante el periodo de observación. No hubo ninguna señal adversa sistémica observada en ningún animal durante el periodo de observación. Todos los ratones permanecieron aparentemente sanos, sin ningún deterioro observable en la actividad o apariencia. No se observó ninguna

35 inflamación local en el sitio de inyección en los ratones inmunizados con péptido en solución salina o solución salina solamente.

Análisis de fenotipos

La inmunoterapia peptídica se ha asociado con la inducción de tolerancia periférica mediada por la inducción de linfocitos T reguladores (Treg) CD4+ CD25+ FoxP3+ derivados del timo o generados de novo. Adicionalmente, dicha inducción se asocia con la generación de linfocitos Treg inducidos por péptido secretor de IL-10. El efecto de la administración repetida de NexVax2 en el número y fenotipo de linfocitos T específicos de gliadina esplénicos se ha determinado. Los linfocitos T específicos de gliadina en el bazo se han identificado por la expresión de TCR V8.3 y

45 CD4. La proporción de linfocitos T específicos de gliadina en la selección de linfocitos y el número total por bazo se ha determinado. Véase Figura 11, que muestra que la administración repetida de NexVax2 conduce a la reducción en la proporción (A) y el número (B) de linfocitos T CD4+ específicos de gliadina en el bazo. Se ha inyectado a los ratones transgénicos TCR específicos de gliadina HH8-1 por vía subcutánea durante 14 días la cantidad indicada de NexVax2. Los bazos se recogieron 3 días después de la inyección final, se procesaron y se tiñeron con anticuerpos para identificar linfocitos T transgénicos (V8.3 y hCD4). El número total de linfocitos T transgénicos se calculó a partir de los recuentos de células del bazo de células totales. Los puntos indican ratones individuales.

El tratamiento con dosis múltiples de NexVax2 a la mayor dosis ensayada (10 g) dio como resultado una reducción aparente tanto de la proporción como del número de linfocitos T específicos de gliadina en aproximadamente 50

55 65%, lo que sugiere la muerte celular inducida por antígeno o el reclutamiento de estas células lejos del bazo.

Para determinar si la administración repetida de NexVax2 indujo una población de linfocitos Treg, se identificaron linfocitos T específicos de gliadina por expresión de TCR V8.3 y CD4 y se determinó la proporción de estos que expresan CD25 y FoxP3 (véase Figura 12A) o CD25 y GITR (véase Figura 12B). La Figura 12 muestra que la administración repetida de NexVax2 conduce a la inducción de linfocitos Treg. Se inyectó por vía subcutánea a ratones transgénicos TCR específicos de gliadina HH8-1 diariamente durante 14 días la cantidad indicada de NexVax2. Los bazos se recogieron 3 días después de la última inyección, se procesaron y se tiñeron con anticuerpos para TCR V8.3, CD4, CD25, FoxP3 y GITR. Se muestran representaciones de FACS de linfocitos CD4, específicos de gliadina que expresan CD25 y FoxP3 (A) o CD25 y GITR (B). El tratamiento con múltiples dosis de 10 65 g o 3 g de NexVax2 dio como resultado una proporción aumentada de linfocitos Treg específicos de gliadina en el

bazo de una manera dependiente de dosis. El Receptor de TNF inducido por glucocorticoides (GITR) se expresa predominantemente en linfocitos Treg CD25+. La tinción reveló que la población CD25+ de linfocitos T específicos de gliadina coexpresaba GITR. El porcentaje de células GITR+ aumentó en proporción con la expresión de CD25 después de la administración de NexVax2.

5 Se examinó la proporción de linfocitos T específicos de gliadina con la capacidad de producir IFN o IL-10 directamente ex vivo en respuesta a una activación no específica. Los esplenocitos se cultivaron con y sin PMA/Ionomicina en presencia de Brefeldina A. La producción de IFN e IL-10 por linfocitos T específicos de gliadina se determinó por citometría de flujo. La Figura 13 muestra que la administración repetida de NexVax2 da como

10 resultado un aumento en la proporción de células productoras de IFN e IL-10 directamente ex vivo. Los ratones HH8-1 recibieron diariamente la administración subcutánea de 10, 3, 1 o 0,3 g de NexVax2 en solución salina o solución salina solamente durante 14 días, o una única administración de 10 g de NexVax2 el día 14. Tres días después de la última inyección, los ratones se sacrificaron y se determinó la proporción de células TCR v8.3/hCD4+ esplénicas que expresan IFN (A) o IL-10 (B) por tinción de citocinas intracelulares y citometría de flujo después de

15 una incubación de 6 horas en presencia o ausencia de PMA/Ionomicina. Los puntos representan ratones individuales y la línea punteada indica la proporción de células positivas para citocinas en ratones HH8-1 sin tratamiento previo.

La repetición de la administración de 10 g de NexVax2 dio como resultado un aumento de la proporción de

20 linfocitos T específicos de gliadina productores de IFN, y un aumento pequeño pero uniforme en la proporción de linfocitos T específicos de gliadina productores de IL-10. La administración repetida de 1 o 3 g de NexVax2 dio como resultado un aumento de la frecuencia de linfocitos T productores de IFN en uno de los dos ratones ensayados en cada grupo.

25 Respuesta proliferativa a péptido

La capacidad proliferativa de linfocitos T específicos de gliadina después de la administración repetida de NexVax 2 se examinó para determinar si estas células tienen un fenotipo anérgico. La incapacidad de proliferar in vitro es una característica tanto de linfocitos Treg CD25+/FoxP3+ como de linfocitos Treg inducidos por péptido productores de IL

30 10. Esta reducción en la capacidad de proliferar es reversible mediante la adición de IL-2 a cultivos.

Se cultivan linfocitos T esplénicos CD4+ purificados en presencia de APC irradiadas con gamma de ratones transgénicos hCD4.IAE-/-.DR3.DQ2 y concentraciones graduadas de péptido afín, NPL001. La proliferación se midió mediante la incorporación de 3H-Timidina durante las últimas 24 horas del cultivo de 4 días (véase Figura 14A). La 35 Figura 14 muestra que la capacidad proliferativa de linfocitos T específicos de gliadina para el antígeno afín se reduce después de la administración repetida de NexVax2 y se restaura en presencia de IL-2. Los ratones HH8-1 recibieron administración subcutánea diaria de 10, 3, 1 o 0,3 g de NexVax2 en solución salina o solución salina solamente durante 14 días, o una única administración de 10 g de NexVax2 el día 14. Tres días después de la inyección final, los ratones se sacrificaron y se purificaron linfocitos T CD4+ y se cultivaron con péptido NPL001 y

40 APC irradiadas en presencia o ausencia de IL-2 10 U/ml. Después de 72 horas, los pocillos se pulsaron con 1 Ci de 3H-Timidina durante 24 horas y las placas se recogieron y se contaron.

A. Respuesta proliferativa de ratones tratados con la dosis indicada de NexVax2 a péptido NPL001 0,2 g/ml.

45 B. Respuesta a dosis proliferativa de administración sin tratamiento previo y repetida de 10 g de NexVax2 a NPL001.

Las barras de error representan la desviación típica de cultivos por triplicado.

50 Los linfocitos T de ratones tratados con solución salina, sin tratamiento previo con antígeno, proliferaron bien en respuesta a NPL001, mientras que los linfocitos T de ratones tratados con NexVax2 mostraron una reducción sustancial en su capacidad para responder a NPL001, particularmente evidente a una concentración peptídica subóptima (0,2 g/ml). La administración repetida con 10 g de NexVax2 condujo a una reducción del 90-97% en la respuesta proliferativa a NPL001 0,2 g/ml. La reducción en la proliferación dependió de la dosis, e incluso la dosis

55 más baja administrada (0,3 g) dio como resultado una reducción del 20-37% en la proliferación a concentraciones peptídicas sub-óptimas. La adición de IL-2 10 U/ml a los cultivos indujo un bajo nivel de proliferación en ausencia de péptido (aproximadamente dos veces el del fondo), sin embargo en presencia del péptido el estado no sensible de linfocitos T de ratones tratados con NexVax2 se invirtió, de modo que la respuesta de ratones tratados con péptido fue el equivalente al control tratado con solución salina.

60 Se observó la incapacidad de proliferar en respuesta a administración de NexVax2 sobre una serie de dosis (véase Figura 14B). Esto fue particularmente evidente después de la administración de la dosis mayor de NexVax2 (10 g) y fue menos eficaz después del tratamiento con dosis de NexVax2 menores, particularmente en respuesta a estimulación con péptidos máxima (datos no mostrados).

Supresión de la activación de linfocitos T HH8-1 sin tratamiento previo

La incapacidad observada para proliferar podría ser el resultado un fenotipo anérgico, en el que los linfocitos T en sí

5 mismos se han vuelto menos sensibles a la estimulación por antígeno, o debido a la presencia de una población de Treg. Por tanto, se evaluó la capacidad del tratamiento con NexVax2 para generar una población de Treg capaz de suprimir la respuesta proliferativa de linfocitos T específicos de gliadina sin tratamiento previo a péptido NPL001 en cultivo in vitro.

La Figura 15 muestra que linfocitos T de ratones tratados con NexVax2 son capaces de suprimir la proliferación de linfocitos T específicos de gliadina sin tratamiento previo. Los ratones HH8-1 recibieron administración subcutánea diaria de 10, 3, 1 o 0,3 g de NexVax2 en solución salina o solución salina solamente durante 14 días, o una única administración de 10 g de NexVax2 el día 14. Tres días después de la inyección final, se co-cultivaron linfocitos T CD4+ purificados de ratones tratados (supresores) con linfocitos T de ratones HH8-1 no tratados (sensibles), péptido

15 NPL001 y APC irradiadas. Después de 72 horas, los pocillos se pulsaron con 1 Ci de 3H-Timidina durante 24 horas y las placas se recogieron y se contaron. En la Figura 15A, se co-cultivaron linfocitos T de ratones tratados con 10 g de NexVax2 x 14 (panel izquierdo) o ratones tratados con solución salina (panel derecho) con un número igual de linfocitos T CD4+ HH8-1 sin tratamiento previo y péptido NPL001 valorado. En la Figura 15B, se co-cultivó un número constante de linfocitos T HH8-1 sin tratamiento previo (2 x 104) con números valorados de linfocitos T tratados con NexVax2 (2 x 10000, 6,6 x 1000, 2,2 x 1000) y NPL001 0,2 g/ml. La inhibición promedio de la proliferación de sensibles sin tratamiento previo se calculó a partir de los 2 ratones en cada grupo de tratamiento. Las barras de error representan la desviación típica de cultivos por triplicado.

Se co-cultivaron linfocitos T purificados de ratones tratados con NexVax2 con linfocitos T específicos de gliadina

25 HH8-1 sin tratamiento previo a una relación 1:1 en presencia de una dosis valorada de NPL001 (véase Figura 15A) o a una relación de sensible:supresor de 1:1, 3:1 o 9:1 en presencia de NPL011 0,2 g/ml (véase Figura 15B). Se observó supresión de la proliferación de células sensibles después de tratamiento con la administración repetida de 10 g o 3 g de NexVax2 y a una relación de sensible:supresor de 1:1 sobre un intervalo de concentraciones de péptidos estimulantes. Este resultado indica la presencia de una población reguladora. Dado que la fenotipación demostró un aumento de la proporción de linfocitos Treg específicos de gliadina solamente en ratones tratados con los 10 o 3 g de NexVax2 y que los linfocitos Treg comprendían entre 7 y 18% de la población específica de gliadina total, la inhibición de la proliferación de linfocitos T HH8-1 sin tratamiento previo observada está dentro de las expectativas.

35 Perfil de citocinas después de cultivo in vitro

La modulación inmunitaria puede alterar el perfil de citocinas de células sensibles. Por ejemplo, se ha mostrado que la administración intranasal del péptido para generar linfocitos Treg inducidos por péptidos secretores de IL-10. El perfil de producción de citocinas por linfocitos T CD4+ de ratones transgénicos TCR específicos de gliadina que se habían tratado con administración repetida de cantidades graduadas de NexVax2 se examinó después de cultivo in vitro en presencia o ausencia de NPL001 2 g/ml y APC singénicas irradiadas. Los sobrenadantes del día 3 de cultivo se recogieron y se evaluaron con respecto a la producción de citocinas asociadas con Th1 (IL-2, IFN, IL-12 y TNF) y citocinas asociadas con Th2 (IL-4, IL-5, IL-6 e IL-10) (véase Figura 16). La Figura 16 muestra producción de citocinas in vitro. Se purificaron linfocitos T CD4+ del bazo de ratones HH8-1 que recibieron administración 45 subcutánea diaria de 10, 3, 1 o 0,3 g de NexVax2 en solución salina o solución salina solamente durante 14 días, o una única administración de 10 g de NexVax2 el día 14. Se cultivaron 3 x 104 linfocitos T CD4 en presencia de 2 g de NPL001 (■) o sin péptido (□) y 3 x 100000 APC irradiadas con gamma. Se recogió el sobrenadante a las 72 horas y se ensayó por matriz de perlas citométrica para la producción de citocinas Th1 (IL-2, IFN, IL-12, TNF) y citocinas Th2 (IL-4, IL-5, IL-6 e IL-10). Los resultados muestran la producción de citocinas promedio de los dos ratones en los grupos de tratamiento. No se detectó ninguna IL-12, IL-4 o IL-5 en los sobrenadantes de los cultivos. Se observó una reducción notable en la producción de IL-2, IFN y TNF a partir de los cultivos de ratones que recibieron administración repetida de 10 g de NexVax2. Esta reducción en la producción de citocinas refleja estrechamente la respuesta proliferativa reducida al péptido NPL001 en cultivo. Además los linfocitos T de ratones que recibieron inyecciones repetidas de 10 g de NexVax2 produjeron un aumento de 3,5 veces de la cantidad de IL-10 después

55 de estimulación del péptido in vitro, lo que sugiere un sesgo potencial hacia un fenotipo de Treg productor de IL-10 en estos ratones.

Este experimento se ha diseñado para determinar si la administración repetida de la vacuna terapéutica NexVax2, usando un régimen diseñado para inducir tolerancia inmunológica, es capaz de modular la respuesta de linfocitos T específica de gliadina en un modelo de ratón transgénico para el receptor de linfocitos T específico de gliadina. Se administró NexVax2 mediante inyección subcutánea de péptido en solución salina durante 14 días consecutivos. Este tratamiento dio como resultado en primer lugar una reducción aparente del número de linfocitos T específicos de gliadina en el bazo. Los linfocitos T restantes mostraron una reducción de su respuesta proliferativa a su antígeno afín, que se invirtió en presencia de IL-2 lo que sugiere un fenotipo “anérgico” o la presencia de una población de 65 Treg. Esta respuesta proliferativa reducida se vio acompañada de una reducción de la cantidad de citocinas Th1

producidas en cultivo, y de un aumento en la producción de IL-10. También se observó un aumento en las células productoras de IL-10 específicas de gliadina directamente ex vivo junto con un aumento del número total y la proporción de linfocitos Treg FoxP3+, GITR+. En experimentos de co-cultivo, los linfocitos T de ratones tratados fueron capaces de suprimir la respuesta proliferativa de linfocitos T específicos de gliadina sin tratamiento previo que

5 respondían al péptido NPL001.

La administración repetida de NexVax2 a la mayor dosis ensayada (10 g por día, durante 14 días consecutivos) demostró la modulación de la respuesta de linfocitos T específicos de gliadina de ratones transgénicos para el receptor de linfocitos T específicos de gliadina tratados.

Los resultados proporcionan pruebas de que la administración subcutánea del péptido NexVax2 en solución salina es capaz de modificar la respuesta de linfocitos T al péptido de gliadina inmunodominante usando un modelo de ratón transgénico para TCR biológicamente relevante.

15 Ejemplo 4: Vacuna de NexVax2 para enfermedad celíaca humana

La vacuna de NexVax2 se preparó en forma de GMP para administración a pacientes humanos con enfermedad celíaca.

Estudio de Fase I para determinar la seguridad, tolerabilidad y bioactividad de NexVax2 en voluntarios HLA-DQ2+ con enfermedad celíaca después de una dieta sin gluten estricta, a largo plazo.

Objetivos

25 El objetivo primario de este estudio fue:

●: Evaluar la seguridad y tolerabilidad de inyecciones semanales de NexVax2 administrado por vía intradérmica durante 3 semanas.

Los objetivos secundarios de este estudio fueron:

●: Determinar la bioactividad de NexVax2 después de 3 dosis semanales en voluntarios con enfermedad celíaca mediante la medición de la respuesta de linfocitos T como se evalúa por la frecuencia de linfocitos T y liberación de citocinas.

●: Determinar la bioactividad de NexVax2 después de 3 dosis semanales en voluntarios con enfermedad celíaca mediante la medición de la respuesta sintomática después de exposición al gluten.

●: Medir la farmacocinética de NexVax2 después de una única inyección intradérmica en voluntarios con enfermedad celíaca.

●: Medir la inducción de anticuerpos específicos para NexVax2 seguido de 3 dosis semanales en voluntarios con enfermedad celíaca.

45 Diseño del estudio

Un estudio de aumento de dosis, controlado por placebo, de un único centro, de Fase I, de la seguridad, tolerabilidad y bioactividad de NexVax2 en voluntarios con enfermedad celíaca cuando se administró semanalmente mediante inyección intradérmica.

Se requirió que los pacientes con enfermedad celíaca acudieran a nueve visitas externas. Esto incluyó tres visitas de 8 horas para recibir las inyecciones intradérmicas de NexVax2 (durante 3 semanas) y tres visitas de 6 horas para someterse a una exposición al gluten convencional.

55 Los voluntarios permanecieron en el estudio durante aproximadamente 25 días desde la fecha de la primera inyección.

Población de estudio

Individuos con un diagnóstico de enfermedad celíaca de acuerdo con los criterios de diagnóstico de la Sociedad Europea de Gastroenterología, Hepatología y Nutrición Pediátrica aceptados (Walker-Smith et al., 1990) que seguían una dieta sin gluten estricta, que poseían genes que codificaban HLA-DQ2 (DQA1*05 y DQB1*02) pero no HLA-DQ8 (DQA1*03 y DQB1*0302).

65 Formulación de ensayo para NexVax2

NexVax2 para inyección contenía una mezcla equimolar (0,159 mol por cada 100 l, aprox. 3 mg/ml) de cada uno de NPL001, NPL002 y NPL003 en una solución estéril salina normal 0,9% proporcionada por Nexpep Pty Ltd.

Formulación de placebo

5 Solución salina normal estéril 0,9% proporcionada por Nexpep Pty Ltd.

Tratamientos de estudio

Cohorte 1: que comprende 2 centinelas, 1 dosificado con 9 g de NexVax2 por inyección intradérmica y 1 dosificado con placebo y 6 sujetos adicionales, 5 dosificados con 9 g de NexVax2 y 1 dosificado con placebo los días 1, 8 y 15.

Cohorte 2: como la Cohorte 1 pero se dosificó a los sujetos con 30 g de NexVax2 15 Cohorte 3: como la Cohorte 1 pero se dosificó a los sujetos con 90 g de NexVax2

Cohorte 4: como la Cohorte 1 pero se dosificó a los sujetos con 60 g de NexVax2

Programa para dosificación, comidas y recogida de sangre

Después de ayunar desde medianoche la noche antes de la administración del fármaco del estudio, el programa para administración de dosis, comidas, evaluaciones farmacodinámicas, exposición al gluten y recogida de sangre (suponiendo un tiempo de dosificación de 0800 horas) fue como se muestra en la Figura 17.

Evaluaciones

●: Se controló la frecuencia cardiaca en reposo, la presión sanguínea sistólica/diastólica semi-supina, la frecuencia respiratoria y la temperatura: en Exploración; concretamente a las 0700 horas antes de recibir el tratamiento los días 1, 8 y 15 y a las 4 horas después de la dosis; y los días 22, 23 y 24 antes de recibir la exposición al gluten y el día 25 al final del estudio.

●: Se recogieron muestras de sangre para ensayo de ELISpot de IFN de PBMC para enumerar la frecuencia de

linfocitos T específicos de NexVax2 los días 1, 6, 15, 20 y 25 (Final del Estudio). 35

●: Se recogieron muestras de sangre para análisis de Bioplex para determinar la liberación de citocinas de PBMC en respuesta a NexVax2 los días 1, 6, 15, 20 y 25 (Final del Estudio).

●: Se recogieron PBMC los días 1, 6, 15, 20 y 25 (Final del Estudio) y se congelaron para ensayo posterior de la función de linfocitos T.

●: Se recogió suero los días 1 y 20 para evaluación de anticuerpos específicos para NexVax2.

●: Se recogieron muestras de sangre para muestreo farmacocinético el día 15 antes de la dosis y a los 15, 30, 45, 45 60, 75, 90 minutos, 2 horas y 3 horas después de la dosis.

●: Se realizaron medidas de laboratorio clínico (bioquímica, análisis de orina y hematología): en Exploración; los días 1, 8 y 15 antes de la dosis y 4 h después de la dosis; y antes de la exposición al gluten los días 20 y 22, y después de la exposición al gluten y el día 25 (Final del Estudio).

●: Se realizó una prueba de embarazo (orina) en la Exploración, antes de la dosis el día 1, 8 y 15 y antes de la exposición al gluten los días 20, 21 y 22 y al final de estudio (día 25).

●: Se realizó una prueba de drogas de abuso en orina en la Exploración y antes de la dosis los días 1, 8 y 15. 55

● Se realizaron ECG: en Exploración; concretamente a las 0700 horas antes de recibir el tratamiento los días 1, 8 y 15 y a las 4 horas después de la dosis; y los días 20, 21 y 22 antes de recibir la exposición al gluten y el día 25 al final del estudio.

Análisis de datos Exploración, conformidad y datos de seguridad

La demografía se presentará en tablas y se resumirá. Se enumerará el examen físico (incluyendo la altura y el peso) 65 en la línea basal y el seguimiento y los datos históricos quirúrgicos/médicos en la línea basal. Se enumerarán todos

los datos de seguridad y tolerabilidad clínicos para cada sujeto.

Los valores de laboratorio fuera de los intervalos normales de laboratorio se enumerarán por separado, con comentarios acerca de su significación clínica. Los valores repetidos asociados se enumerarán juntos. Las medidas 5 de los signos vitales (frecuencia cardiaca en reposo, presión sanguínea sistólica/diastólica semi-supina, frecuencia respiratoria, temperatura) y los parámetros de ECG se presentarán en tablas y se resumirán.

Datos de tolerabilidad

Los acontecimientos adversos causados por el tratamiento se enumerarán y se resumirán. Todos los acontecimientos adversos presentados en este estudio se codificarán usando MedDRA.

Ensayos inmunológicos

15 Los inventores consideran que un único tratamiento de NexVax2 aumentará la frecuencia de linfocitos T específicos de NexVax2 en PBMC y aumentará la secreción de citocinas y quimiocinas por células mononucleares.

Los inventores consideran que las PBMC extraídas después de inyección repetida (3 a la semana) de NexVax2 tendrán una menor frecuencia de linfocitos T específicos de NexVax2 que las anteriores al tratamiento.

Los inventores consideran que en comparación con los voluntarios con enfermedad celíaca tratados con placebo, la inyección repetida (3 a la semana) de NexVax2 reducirá la frecuencia de linfocitos T específicos para NexVax2 y secreción de citocinas estimulada por NexVax2 en PBMC recogidas 6 días después de comenzar la exposición al gluten oral de 3 días con pan blanco.

25 Los datos ordinales se analizarán por ensayo de suma de rangos de Wilcoxon para muestras relacionadas de una cola. Los datos distribuidos normalmente se analizarán por ensayo de t para muestras relacionadas. Un p-valor < 0,05 se considerará significativo.

Cualquier análisis de los documentos, actas, materiales, dispositivos, artículos o similares que se ha incluido en la presente memoria descriptiva es solamente para el fin de proporcionar un contexto para la presente invención. No debe interpretarse como una admisión de que ninguna de estas materias forma parte de la base técnica anterior o eran conocimiento general común en el campo relevante para la presente invención como existía antes de la fecha de prioridad de cada reivindicación de la presente solicitud.

REFERENCIAS

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65 Zolotukiin et al., J. Virol (1996) 70/7): 4646-4654

Claims

REIVINDICACIONES

1. Una composición que comprende

5 i) un primer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos: LQPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 13), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, ii) un segundo péptido que comprende la secuencia de aminoácidos: QPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 14), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con

15 el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, y iii) un tercer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos: PEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 16), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva.
2. La composición de la reivindicación 1, en la que 25

(a) el segundo péptido comprende la secuencia de aminoácidos PQQPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 320), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva y/o el tercer péptido comprende la secuencia de aminoácidos FPEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 321), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3

35 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva;

(b)

los primer, segundo y/o tercer péptidos comprenden un grupo acetilo o grupo piroglutamato N terminal, y/o un grupo amida C terminal, preferentemente un grupo piroglutamato N terminal y un grupo amida C terminal;

(c)

los primer, segundo y/o tercer péptidos se conjugan con un compuesto, en el que el compuesto es preferentemente un adyuvante, o una molécula del MHC o fragmento de unión de la misma;

(d)

dos o tres de los primer, segundo y/o tercer péptidos, fragmentos biológicamente activos de los mismos de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaces de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o variantes biológicamente activas de los mismos que no tienen más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar

45 una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, están en una única cadena polipeptídica; y/o

(e) dicha composición comprende uno o más péptidos adicionales que comprenden una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209 y 210.
3. Una composición que comprende uno o más polinucleótidos que codifican:

55 i) un primer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos LQPFPQPELPYPQPQ (SEC ID Nº: 13), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, ii) un segundo péptido que comprende la secuencia de aminoácidos QPFPQPEQPFPWQP (SEC ID Nº: 14), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con

65 el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva; y

iii) un tercer péptido que comprende la secuencia de aminoácidos PEQPIPEQPQPYPQQ (SEC ID Nº: 16), un fragmento biológicamente activo del mismo de no menos de 7 aminoácidos de longitud y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten igual o mayor que el péptido del que deriva, o una variante biológicamente activa del mismo que no tiene más de 3 variaciones de aminoácidos en comparación con 5 el péptido del que deriva y capaz de generar una respuesta de linfocitos T en un sujeto sensible al gluten mayor

o igual que el péptido del que deriva.
4. La composición de la reivindicación 3, que comprende además uno o más polinucleótidos que codifican uno o más péptidos adicionales que comprenden una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en

10 SEC ID Nº: 47, 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209 y 210.
5. Una composición que comprende

15 i) un primer péptido como se ha definido en la reivindicación 1 o un polinucleótido que codifica el primer péptido como se ha definido en la reivindicación 1, ii) un segundo péptido como se ha definido en la reivindicación 1 o un polinucleótido que codifica el segundo péptido como se ha definido en la reivindicación 1, y

20 iii) un tercer péptido como se ha definido en la reivindicación 1 o un polinucleótido que codifica el tercer péptido como se ha definido en la reivindicación 1.
6. Una vacuna que comprende la composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, y un vehículo

farmacéuticamente aceptable. 25
7.

La vacuna de la reivindicación 6, que comprende además un adyuvante.
8.

Una célula presentadora de antígenos aislada que comprende los péptidos, el polinucleótido o los polinucleótidos

de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5. 30
9. La célula presentadora de antígenos aislada de la reivindicación 8, en la que la célula presentadora de antígenos es una célula dendrítica, macrófago, linfocito B o una célula endotelial sinusoide del hígado.
10. La composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, la vacuna de la reivindicación 6 o 7 y/o la célula 35 presentadora de antígenos de la reivindicación 8 o 9, para su uso en:

(a) un método para modular una respuesta de linfocitos T a un péptido del gluten en un sujeto que es sensible al gluten;

(b) un método para inducir tolerancia inmunitaria a un péptido del gluten en un sujeto que es sensible al gluten; 40 (c) un método para tratar la enfermedad celíaca en un sujeto que es sensible al gluten; o

(d) un método para modificar la secreción de citocinas en un sujeto que es sensible al gluten.
11. Una composición, vacuna y/o célula presentadora de antígenos de acuerdo con la reivindicación 10, para uso en un método como se ha definido en la reivindicación 10, en el que la secreción de interleucina-2 (IL-2), interferón

45 gamma (IFN) y/o factor de necrosis tumoral alfa (TNF) se reduce y/o la secreción de interleucina-10 (IL-10) se aumenta en el método.
12. Un método para diagnosticar la enfermedad celíaca en un sujeto, controlar la progresión de la enfermedad celíaca, o determinar la eficacia de un método como se ha definido en la reivindicación 10 u 11, comprendiendo el

50 método poner en contacto una muestra del sujeto con la composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 y/o la vacuna de la reivindicación 6 o 7, y determinar in vitro si uno o más de los péptidos se unen con linfocitos T en la muestra, en el que la unión de uno o más de los péptidos con linfocitos T indica que el sujeto tiene, o es susceptible de, enfermedad celíaca.

55 13. Un kit para llevar a cabo el método de la reivindicación 12, comprendiendo el kit la composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, y/o la vacuna de la reivindicación 6 o 7, y medios para detectar la unión de uno o más de los péptidos con linfocitos T.
14. Un método para producir la célula presentadora de antígenos de la reivindicación 8 o 9, comprendiendo el 60 método

i) obtener una célula presentadora de antígenos, y ii) poner en contacto la célula in vitro con la composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 y/o la vacuna de la reivindicación 6 o 7.
15.

La composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, la vacuna de la reivindicación 6 o 7 y/o la célula presentadora de antígenos de la reivindicación 8 o 9 para uso en diagnóstico o terapia.
16.

Un método para preparar la vacuna de la reivindicación 6 o 7, comprendiendo el método combinar los primer,

5 segundo y tercer péptidos, fragmentos biológicamente activos, o variantes biológicamente activas, con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
17. El método de la reivindicación 16, en el que el método comprende además combinar uno o más péptidos adicionales que comprenden una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en SEC ID Nº: 47,

10 48, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 89, 90, 91, 92, 95, 102, 103, 104, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 136, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 177, 178, 179, 180, 183, 184, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 209 y 210.
18. El método de la reivindicación 16 o 17, en el que el método comprende además combinar un adyuvante. 15
19. Un método para determinar si otra composición o un alimento es capaz de provocar enfermedad celíaca, comprendiendo el método detectar la presencia de la composición de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en la otra composición o el alimento.