ES2498745T3 - Formulaciones que comprenden nucleótidos antisentido para conexinas - Google Patents

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Abstract

1.Una formulación para uso en el tratamiento de un ser humano mediante una terapia, cuya formulación comprende un polinucleótido antisentido de conexina 43; junto con un soporte o un vehículo farmacéuticamente aceptable.

Description

Formulaciones que comprenden nucleótidos antisentido para conexinas
Esta invención se refiere a las formulaciones para usar en tratamientos terapéuticos, particularmente aquellos en los que una interrupción localizada en la comunicación directa célula-célula es deseable.
Antecedentes
Las uniones intercelulares son estructuras de membrana celular que facilitan la comunicación directa célula-célula. Un canal de unión intercelular está formado por dos hemicanales (conexones), cada uno está compuesto por seis subunidades de conexinas. Estas conexinas son una familia de proteínas, comúnmente denominadas según sus pesos moleculares o clasificadas según una base filogenética, es decir, en una clase  y una clase .
Una capacidad para controlar la expresión de las conexinas (y en particular para disminuir sus niveles) proporcionaría por lo tanto una oportunidad para modular la comunicación célula-célula en un paciente, para propósitos terapéuticos y/o de remedio. Sin embargo, ya que un número de proteínas conexinas se expresa ampliamente a través del cuerpo, no se desea un efecto de disminución general de los niveles para inducir un efecto terapéutico en un sitio específico.
Los oligonucleótidos antisentidos (ODNs) tienen un potencial considerable como agentes para la manipulación de la expresión génica específica (revisado: Stein y otros, 1992; Wagner 1994). Sin embargo, quedan dificultades que necesitar ser superadas. Estas incluyen la vida media corta de tales ODNs (oligómeros fosfodiéster sin modificar tienen típicamente una vida media intracelular de sólo 20 minutos debido a la degradación por nucleasas intracelulares (Wagner 1994)) y su liberación de modo consistente y fiable a los tejidos diana.
Fue con la intención de superar al menos parcialmente estas dificultades que los solicitantes concibieron la presente invención.
Compendio de la invención
Consecuentemente, en un primer aspecto, la invención proporciona una formulación para uso en el tratamiento del cuerpo humano mediante una terapia, cuya formulación comprende: un polinucleótido antisentido de conexina 43 junto con un soporte o un vehículo farmacéuticamente aceptable.
En una forma preferida, la formulación contiene polinucleótidos sólo para una proteína conexina. Muchos aspectos de la invención se describen con referencia a los oligodesoxinucleótidos. Sin embargo, se
comprende que otros polinucleótidos adecuados (tales como polinucleótidos ARN) pueden ser usados en estos aspectos. Alternativamente, la formulación contiene oligodesoxinucleótidos para más de una proteína conexina, siempre que
una de las proteínas conexinas a la que se dirigen los oligodesoxinucleótidos sea conexina 43. Otras proteínas conexinas a las que los oligodesoxinucleótidos están dirigidos incluyen conexina 26, conexina 31.1 y conexina 32. Convenientemente se selecciona el oligodesoxinucleótido para conexina 43 de:
GTA ATT GCG GCA AGA AGA ATT GTT TCT GTC;
GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC; y
GGC AAG AGA CAC CAA AGA CAC TAC CAG CAT,
o tiene al menos 70%, 80%, 90%, 95%, 97% ó 99% de homología con un polinucleótido seleccionado de: GTA ATT GCG GCA AGA AGA ATT GTT TCT GTC; y GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC.
Lo más convenientemente el oligodesoxinucleótido para la conexina 43 es: GTA ATT GCG GCA AGA AGA ATT GTT TCT GTC Convenientemente el oligodesoxinucleótido para la conexina 26 y es: TCC TGA GCA ATA CCT AAC GAA CAA ATA Convenientemente el oligodesoxinucleótido para la conexina 31.1 es: CGT CCG AGC CCA GAA AGA TGA GGT C
Convenientemente el oligodesoxinucleótido para la conexina 32 es:
TTT CTT TTC TAT GTG CTG TTG GTG A.
El polinucleótido en la formulación puede ser: (i) ADN o ARN; (ii) un oligodesoxinucleótido; (iii) un oligonucleótido con fosfodiéster no modificado; (iv) un oligonucleótido con fosfodiéster químicamente modificado; (v) un oligonucleótido químicamente modificado seleccionado de fosforotioatos, metilfosfonatos, fosforamidatos, fosforoditioatos, N3'P5'-fosforoamidatos, oligoribonucleótido fosforotioatos y sus análogos 2'-O-alquilo, 2'-Ometilribonucleótido metilfosfonatos y oligonucleótidos con núcleo mixto; (vi) entre 6 y 40 nucleótidos de longitud, tal como entre 12 y 20 nucleótidos de longitud; (vii) monocatenario; o (viii) bicatenario.
En una realización, el polinucleótido es un oligómero fosfodiéster no modificado de 30 nucleótidos de longitud.
Los polinucleótidos antisentido se pueden formular para administración parenteral, intramuscular, intracerebral, intravenosa, subcutánea o transdérmica. Los polinucleótidos antisentido se administran preferentemente de forma tópica (en la parte a ser tratada). Adecuadamente, los polinucleótidos antisentido se combinan con un excipiente, vehículo o diluyente farmaceúticamente aceptables para proporcionar una composición farmacéutica.
Excipientes o vehículos farmacéuticamente aceptables adecuados incluyen cualquiera de los comúnmente usados para administración tópica. La formulación tópica puede estar en forma de crema, ungüento, gel, emulsión, loción o pintura. La formulación de la invención se puede presentar también en forma de un apósito impregnado.
Materiales excipiente adecuados incluyen cualquier excipiente o vehículo comúnmente usado como base para cremas, lociones, geles, emulsiones, lociones o pinturas para la administración tópica. Los ejemplos incluyen agentes de emulsificación, excipientes inertes que incluyen bases hidrocarbonadas, bases de emulsificación, disolventes no tóxicos o bases hidrosolubles. Ejemplos particularmente adecuados incluyen lanolina, parafina dura, parafina liquida, parafina amarilla blanda o parafina blanca blanda, cera de abeja blanca, cera de abeja amarilla, cetoestearil alcohol, cetilalcohol, dimeticonas, ceras emulsionantes, isopropil miristato, cera microcristalina, alcohol oleílico y alcohol estearílico.
Preferentemente, el excipiente farmacéuticamente aceptable o vehículo es un gel, un gel copolímero polioxietilenopolioxipropileno no iónico adecuado, por ejemplo, un gel Plurónico, preferentemente Plurónico F-127 (BASF Corp.). Este gel es particularmente preferido, ya que es líquido a baja temperatura pero rápidamente se fija a temperaturas fisiológicas, que limitan la liberación del componente ODN al sitio de aplicación o inmediatamente adyacente a ese sitio. La formulación puede comprender Pluronic F-127 en forma de gel o líquida.
El excipiente farmacéuticamente aceptable puede seleccionarse de disolución salina isotónica, disolución salina tamponada con fosfato, un agente catiónico o lipofectante.
Un agente auxiliar tal como caseína, gelatina, albúmina, pegamento, alginato sódico, carboximetilcelulosa, metilcelulosa, hidroxietilcelulosa o polivinil alcohol se pueden incluir también en la formulación de la invención.
La composición farmacéutica se puede formular para proporcionar una liberación sostenida del polinucleótido antisentido.
Convenientemente, la formulación incluye además un tensioactivo para ayudar con la penetración oligodesoxinucleotídica a la célula o la formulación puede contener cualquier agente de carga adecuado. Cualquier tensioactivo no tóxico adecuado puede ser incluído, tal como DMSO. Alternativamente, se puede incluir un agente de penetración transdérmica tal como la urea.
En un aspecto más, la invención proporciona un método de reducción, de sitio específico, de los niveles de expresión de la proteína conexina con fines terapéuticos y/o cosméticos, que comprende administrar una formulación como se define anteriormente a un sitio o en un paciente en el se requiere dicha reducción.
Convenientemente, la formulación se administra en una cantidad suficiente para reducir los niveles de expresión de dicha(s) proteína(s) conexina(s) durante al menos 24 horas después de la administración.
El polinucleótido puede administrarse por administración continua durante 24 horas o más.
El polinucleótido puede administrarse a una dosis de 0,1 a 100 mg/kg de peso corporal ó 1 a 40 mg/kg de peso corporal.
En otro aspecto más, la invención proporciona una formulación para uso en el tratamiento de un ser humano para una herida o para inflamación cuya formulación comprende un polinucleótido antisentido para una conexina 43 junto con un excipiente o vehículo farmacéuticamente aceptable.
Preferentemente, dicha herida es una quemadura.
Alternativamente, dicha herida es el resultado de un trauma físico en el tejido, incluyendo tejidos neuronales como el cerebro, la médula espinal o el nervio óptico.
En otro aspecto más, la formulación se proporciona para uso en un método de estimular la cicatrización de heridas, tratar inflamación o disminuir la formación de cicatrices.
La invención también proporciona el uso de una formulación como se ha definido en una cualquiera de las reivindicaciones precedentes en la fabricación de un medicamento para estimular la cicatrización de heridas, tratar inflamación o disminuir la formación de cicatrices.
De nuevo, la herida puede ser el resultado de trauma o cirugía, aplicándose la formulación en la herida inmediatamente antes a la reparación quirúrgica y/o cierre de ésta.
Preferentemente, la formulación es una crema o gel.
Descripción de los dibujos
La Figuras 1 a 5 muestran secciones de lesiones cerebrales de rata tratadas con gel Plurónico que contiene oligodesoxinucleótidos antisentido específico para la conexina 43, o para lesiones testigo, gel Plurónico solo. En todos los casos, las lesiones fueron seccionadas seriamente en un plano coronal y las secciones de punto medio usadas para análisis. Cada imagen (excepto la Figura 5) muestra 4 mm por 5,33 mm de tejido. La Figura 5 es aproximadamente de 1,2 mm por 2 mm.
Figura 1: las Figuras 1A y 1C muestran dos lados de una lesión testigo 24 horas después de la lesión. La lesión ha sido tratada con gel Plurónico solo. Las secciones han sido teñidas con Nissl (núcleos azules) y el anticuerpo etiquetado con el marcador neuronal N-Neuronal (células marrones). Las Figuras 1B y 1D muestran una escala gris de las imágenes 1A y 1C respectivamente con el borde de la lesión marcada. Nótese el gran tamaño de la lesión y la extensión irregular de los bordes. La lesión se ha extendido hacia abajo en dirección al cuerpo calloso (línea discontínua) dentro de las 24 horas después de la lesión.
La Figura 2: Una lesión testigo 24 horas después de la herida. La figura 2A muestra tinción Nissl (núcleos azules) y marcado N-Neuronal de neuronas viables. La Figura 2B es una escala de grises equivalente con el borde de la lesión marcado y la parte superior del cuerpo calloso marcado (línea discontínua). La marca de la aguja original es clara pero la muerte neuronal ha tenido lugar más atrás del borde de la lesión como se indica mediante el marcado del N-Neuronal. Los bordes de la lesión son irregulares y la lesión, dentro de las 24 horas, se ha extendido hacia abajo en el cuerpo calloso.
Figura 3: Las Figuras 3A y 3B son imágenes de escalas de color y de grises de una lesión tratada con antisentido para conexina 43, 48 horas después de lesionarse. El perfil de la lesión se ha marcado en la Figura 3B para mostrar la extensión de la lesión y la parte superior del cuerpo calloso se ha marcado (línea discontinua). La Figura 3A se ha teñido con Nissl (núcleos azules) y N-Neuronal (células rosadas). Nótese como es de compacta la lesión, incluso después de 48 horas, comparado con las lesiones testigo (Figuras 1 y 2). Mientras que hay una extensión hacia el lado derecho, el lado izquierdo de la lesión sigue esencialmente la marca de la aguja original con pequeños signos de extensión. El lado izquierdo de la lesión es bastante recto y no se ha propagado al cuerpo calloso.
Figura 4: Las Figuras 4A y 4B muestran otra lesión que ha sido tratada con antisentido para conexina 43, 48 después de la herida. El marcaje es el mismo que en la Figura 3 con la lesión perfilada en la imagen de la escala de grises (Figura 4B). Incluso después de 48 horas esta lesión es extremadamente compacta con pequeñas extensiones sólo hacia la izquierda (lado medio). Nótese como de recto es el lado derecho de la lesión con neuronas viables hacia el borde de la marca de la aguja (y verdaderamente sobreviven dentro del área lesionada). La lesión está muy por encima del cuerpo calloso (línea discontinua) indicando que virtualmente no hay ninguna extensión hacia abajo.
Figura 5: Un aumento mayor de la vista muestra el borde de una lesión tratada con el antisentido de la conexina 43. El borde de la lesión se ha marcado mostrando las neuronas viables (marcadas con N-Neuronal) por encima hasta el borde de la marca de la aguja lesionante, incluso 48 horas después de la lesión.
Figura 6: Marcaje inmunohistoquímico de GFAP (rojo) y conexina 43 (verde) de una lesión tratada con un antisentido específico para conexina 43, 24 horas después de la lesión. La imagen está tomada en el borde lateral de la lesión en un punto medio del camino hacia debajo de la profundidad de la lesión. Los niveles de astrocitos activados son elevados comparados con los de los testigos (Figura 7) y los niveles de conexina 43, están notablemente reducidos. El resto de marcaje de conexina está asociado generalmente con los vasos sanguíneos(flechas).
Figura 7: Marcaje inmunohistoquímico de GFAP (rojo) y conexina 43 (verde) de una lesión testigo, 24 horas después de la lesión. La imagen está tomada en el borde medio de la lesión y muestra niveles de GFAP ligeramente elevados por encima de córtex no lesionado. Nótese el extenso marcaje de la conexina 43, a menudo colocalizada con el marcador de astrocitos GFAP (flechas).
Figura 8 muestra una comparación las áreas de la mitad inferior de las secciones transversales de la lesión 24 horas (círculos) y 48 horas (rombos) después de la lesión. El análisis se llevó a cabo en una media sección de un corte de la lesión seccionada en serie, cortada en el plano coronario. Las lesiones fueron evaluadas usando anticuerpos marcados con N-Neuronal para delinear las neuronas viables. Las lesiones tratadas con DBI (marcadores verdes) han sido tratadas con oligodesoxinucleótidos antisentido específicos para conexina 43. El grupo de lesión tratada sólo con gel (marcadores rojos) también incluye lesiones vacías mientras que el grupo HB3 (marcadores violetas) es tratado con el gel que contiene una secuencia aleatoria de oligodesoxinucleótidos testigo. Nótese que, mientras las lesiones tratadas con antisentido para conexina 43 pueden ser grandes (presumiblemente en las que el antisentido no ha sido bien liberado), las lesiones más pequeñas son todas tratadas con antisentido para conexina 43. Las lesiones fueron hechas hasta una profundidad de 2 mm y los análisis cubren 1 mm y por debajo, de manera a excluir el borde exterior donde el antisentido no se asentó.
Figura 9: las lesiones en la médula espinal de la rata 24 horas después del tratamiento con ODNs homosentido y antisentido para conexina 43. Las lesiones homosentido no fueron diferentes de los testigos sin tratar mientras que las lesiones tratadas con antisentido eran más pequeñas y con una inflamación reducida.
Figura 10: lesiones en las patas delanteras de un ratón neonatal 24 horas después del tratamiento con ODNs homosentido para conexina 43 (pata izquierda) u ODNs antisentido (pata derecha). Nótese la reducción de la inflamación y el aumento en la velocidad de cicatrización en la pata tratada con antisentido.
Figura 11: secciones a través del centro de las heridas de 24 horas mostradas en la Figura 10. Las secciones han sido teñidas con azul de toluidina para mostrar los neutrófilos. Hay considerablemente menos neutrófilos en la herida tratada con antisentido que estaba además menos inflamada.
Figura 12: pares de lesiones en las patas de ratas cinco días después de la lesión, que han sido tratadas con ODNs antisentido específicos para conexina 43 u testigo ODNs homosentido. Las lesiones tratadas con antisentido se curan más rápido y muestran menos signos de formación de cicatrices.
Figura 13: pares de lesiones en las patas de las ratas hechas en el estadío neonato, y observadas aquí 8 días después de la lesión. Las lesiones fueron tratadas con ODN antisentido específico de conexina 43 u homosentido testigo. El pelo ha crecido y está claro que el tratamiento antisentido ha dado como resultado cicatrices más pequeñas y menor pérdida de pelo. El sitio de la lesión permanece destacado en el testigo tratado con homosentido pero es difícil de detectar en la extremidad tratada con antisentido.
Descripcion de la invención
La invención se define en las reivindicaciones.
Como se ha definido anteriormente de modo amplio, el enfoque de la invención es la reducción de los niveles de modo específico de sitio de la expresión de la conexina. Esto tendrá el efecto de reducir la comunicación directa célula-célula en el sitio en el que la expresión de la conexina está disminuída, lo que genera numerosas aplicaciones terapéuticas/cosméticas, como se describe a continuación.
La disminución de los niveles de la expresión de la conexina está basada generalmente en la aproximación antisentido usando polinucleótidos antisentido (tales como polinucleótidos ADN o ARN), y de modo más particular en el uso de oligodesoxinucleótidos (ODN) antisentido. Estos polinucleótidos (por ejemplo ODN) tienen como objetivo reducir los niveles de las proteínas conexina. Típicamente los polinucleótidos son de hebra única, pero pueden ser de doble hebra.
Los polinucleótidos antisentido pueden inhibir la transcripción y/o la traducción de la conexina. Preferiblemente, el polinucleótido es un inhibidor específico de la transcripción y/o traducción a partir del gen de la conexina, y no inhibe la transcripción y/o la traducción a partir de otros genes. El producto se puede unir al gen o mARN de la conexina bien (i) en 5’ de la secuencia codificante, y/o (ii) a la secuencia codificante, y/o (iii) en 3’de la secuencia codificante.
Generalmente, el polinucleótido antisentido causará la expresión de mARN y/o proteína de conexina en una célula que ha de ser reducida.
El polinucleótido antisentido es generalmente antisentido para el mARN de la conexina. Tal polinucleótido puede ser capaz de hibridar con el mARN de la conexina y puede así inhibir la expresión de la conexina interfiriendo con uno o más aspectos del metabolismo del mARN de la conexina incluyendo la transcripción, procesamiento del mARN, transporte del mARN desde el núcleo, la traducción o la degradación de mARN. El polinucleótido antisentido hibrida típicamente con el mARN de la conexina para formar un dúplex que puede causar inhibición directa de la traducción y/o desestabilización del mARN. Tal dúplex puede ser susceptible de degradación por nucleasas.
El polinucleótido antisentido puede hibridar con todo o parte del mARN de la conexina. Típicamente, el polinucleótido antisentido hibrida con la región de unión del ribosoma o con la región codificante del mARN de la conexina. El polinucleótido puede ser complementario a todo o a una región del mARN de la conexina. Por ejemplo, el polinucleótido puede ser el complemento exacto de todo o de una parte del mARN de la conexina. Sin embargo, no
se requiere la complementariedad absoluta y los polinucleótidos que tienen suficiente complementariedad para formar un dúplex, que tienen una temperatura de fusión mayor de 20°C, 30°C o 40°C en condiciones fisiológicas, son particularmente adecuados para usar en la presente invención.
De este modo el polinucleótido es típicamente un homólogo del mARN. El polinucleótido puede ser un polinucleótido que hibrida con el mARN de la conexina en condiciones de media a alta rigurosidad tal como cloruro sódico 0,03 M y citrato sódico 0,03 M a partir de alrededor de 50 a alrededor de 60 grados centígrados.
El polinucleótido será típicamente desde 6 a 40 polinucleótidos de longitud. Preferiblemente será de 12 a 20 nucleótidos de longitud. Los polinucleótidos pueden ser al menos 40, por ejemplo al menos 60 o al menos 80, nucleótidos de longitud y hasta de 100, 200, 300, 400, 500, 1000, 2000 o 3000 o más nucleótidos de longitud.
La proteína conexina o proteínas diana para el ODN serán dependientes del sitio en el que se ha de efectuar la disminución de los niveles. Esto refleja la estructura no uniforme de las uniones intercelulares en diferentes sitios a través del cuerpo en términos de la composición de subunidades de conexina. La conexina puede ser cualquier conexina presente de manera natural en un humano o animal. El gen de la conexina (incluyendo la secuencia codificante) tiene generalmente homología con cualquiera de las conexinas específicas mencionadas aquí, tal como la homología con la secuencia codificante de la conexina 43 mostrada en la Tabla 1. La conexina es típicamente una conexina α o β. Preferiblemente, la conexina se expresa en la piel o tejido nervioso (incluyendo las células del cerebro).
Algunas proteínas conexinas son sin embargo más ubicuas que otras, en términos de distribución en el tejido. Una de las más extendidas es la conexina 43. Los ODNs que están dirigidos hacia la conexina 43 se usan en la presente invención.
También se contempla que los ODNs que están dirigidos hacia proteínas de conexina por separado pueden ser usados en combinación (por ejemplo pueden estar dirigidos a 1, 2, 3, 4, o más conexinas diferentes). Los ODNs dirigidos a la conexina 43, y uno o más miembros de la familia de la conexina (tal como la conexina 26, 31.1, 32, 36, 40 y 45) se pueden usar en combinación.
Los polinucleótidos antisentido individuales pueden ser específicos para una conexina particular, o pueden estar dirigidos hacia 1, 2, 3 o más conexinas diferentes. Los polinucleótidos específicos estarán dirigidos generalmente a secuencias en el gen o mARN de las conexinas que no están conservadas entre las conexinas, mientras que los polinucleótidos no específicos alcanzarán secuencias conservadas.
Los ODNs para usar en la invención serán generalmente oligómeros fosfodiéster sin modificar. Variarán en longitud aunque un ODN de 30 mer es particularmente adecuado.
Los polinucleótidos antisentido pueden ser químicamente modificados. Esto puede potenciar su resistencia a las nucleasas y puede potenciar su capacidad para entrar en las células. Por ejemplo, se pueden usar oligonucleótidos fosfotioato. Otros desoxinucleótidos análogos incluyen metilfosfonato, fosforamidatos, fosforoditioatos, N3’P5’fosforamidatos y oligoribo-nucleótidos fosforotioatos y sus análogos 2’-O-alquil y 2’-O-metilfosfonatos metilribonucleótido.
Alternativamente se pueden usar oligonucleótidos de cadenas mixtas (MBOs). Los MBOs contienen segmentos de oligodesoxinucleótidos fosfotioato y segmentos colocados apropiadamente de oligodesoxi u oligoribonucleótidos modificados. Los MBOs tienen segmentos de uniones fosforotioato y otros segmentos de otros oligonucleótidos modificados, tales como metilfosfonato, que es no iónico, y muy resistente a las nucleasas o 2’-O-alquiloligoribonucleótidos.
La secuencia exacta del polinucleótido antisentido usado en la invención dependerá de la proteína conexina diana. Para la conexina 43, el solicitante ha encontrado que los ODNs, que tienen las siguientes secuencias son particularmente adecuados:
GTA ATT GCG GCA AGA AGA ATT GTT TCT GTC;
GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC; y
GGC AAG AGA CAC CAA AGA CAC TAC CAG CAT
Los ODNs dirigidos a otras proteínas conexina pueden ser seleccionados en términos de su secuencia nucleotídica mediante cualquier aproximación cómoda y convencional. Por ejemplo, se pueden usar los programas informáticos MacVector y OligoTech (de Oligos etc. Eugene, Oregón, USA). Por ejemplo, los ODNs para las conexinas 26, 31.1 y 32 tienen las siguientes secuencias:
5’TCC TGA GCA ATA CCT AAC GAA CAA ATA (conexina 26)
5’CGT CCG AGC CCA GAA AGA TGA GGT C (conexina 31,1)
5’TTT CTT TTC TAT GTG CTG TTG GTG A (conexina 32)
Una vez seleccionado, los ODNs pueden ser sintetizados usando un sintetizador de ADN.
Para el uso en la invención, el ODN(s) requiere una liberación específica de sitio. También requiere la liberación a lo largo de un período extenso de tiempo. Mientras que está claro que el período de suministro dependerá tanto del sitio en que se inducirá la reducción de los niveles como del efecto terapéutico que se desea, se requerirán con frecuencia liberaciones continuas de 24 horas o más.
De acuerdo con la presente invención, esto se logra mediante la inclusión del ODN(s) en una formulación junto con un excipiente o vehículo farmacéuticamente aceptable, particularmente en la forma de una formulación para administración tópica.
Una vez preparadas, las formulaciones para uso según la invención tienen utilidad en cualquier aproximación terapéutica /cosmética donde se desea una interrupción transitoria y específica de sitio de la comunicación célulacélula. Esto incluye el tratamiento del daño neuronal en el cerebro, la médula espinal o el nervio óptico (en el que el daño ha de ser localizado tanto como sea posible), en la promoción de la cicatrización de la herida y en la reducción de la formación de cicatriz después de, por ejemplo, operaciones cosméticas o quemaduras.
En particular, las formulaciones tópicas tales como cremas pueden ser empleadas para regular la división de las células basales epiteliales y el crecimiento (usando ODNs dirigidos a la conexina 43) y la queratinización de la capa externa (usando ODNs dirigidos a la conexina 31,1).
Los polinucleótidos antisentido (incluyendo el ODN) pueden estar presentes en una forma aislada sustancialmente. Se entenderá que el producto se puede mezclar con excipientes o diluyentes que no interferirán con el propósito del producto que se pretende designar y aún considerarse como sustancialmente aislado. Un producto de la invención puede estar también en una forma sustancialmente purificada, en cuyo caso comprenderá generalmente el 90%, por ejemplo al menos 95%, 98% ó 99% del polinucleótido o masa seca de la preparación.
Administración
Los polinucleótidos antisentido (que incluyen ODNs) para uso según la invención (típicamente en la forma de la formulación tratada aquí) puede ser así administrada a una persona o a un animal en necesidad del tratamiento, tal como una persona o animal con cualquiera de las enfermedades o estados mencionados aquí. El estado de la persona o animal puede ser así mejorado. El polinucleótido y la formulación pueden ser así usados en el tratamiento del cuerpo humano o animal mediante terapia. Se pueden usar en la fabricación de un medicamento para tratar cualquiera de los estados aquí mencionados.
Los polinucleótidos antisentido pueden ser administrados típicamente (en el lugar a ser tratado). Preferiblemente, los polinucleótidos antisentido se combinan con un excipiente o diluyente farmacéuticamente aceptables para producir una composición farmacéutica. Los excipientes y diluyentes adecuados incluyen disoluciones salinas isotónicas, por ejemplo tampón fosfato salino. La composición puede ser formulada para administración parenteral, intramuscular, intracerebral, intravenosa, subcutánea o transdérmica.
La dosis en la que el polinucleótido antisentido es administrado al paciente dependerá de una variedad de factores tales como la edad, peso y estado general del paciente, la condición que está siendo tratada, y el polinucleótido antisentido particular que está siendo administrado. Una dosis adecuada puede sin embargo ser desde 0,1 a 100 mg/kg del peso corporal tal como de 1 a 40 mg/kg del peso corporal.
La ingesta de ácidos nucleicos por las células de mamíferos es potenciada mediante varias técnicas de transfección conocidas, por ejemplo aquellas que incluyen el uso de agentes de transfección. La formulación que es administrada puede contener tales agentes. Ejemplo de estos agentes incluye agentes catiónicos (por ejemplo fosfato cálcico y DEAE-dextrano) y lipofectantes (por ejemplo lipofectam™ y transfectam™).
Las rutas de administración y dosificaciones descritas anteriormente pretenden ser sólo una guía, ya que un médico con experiencia será capaz de determinar fácilmente la ruta óptima de administración y dosificación para cualquier paciente y condición particular.
Homólogos
La homología y los homólogos se tratan aquí (por ejemplo, los polinucleótidos pueden ser homólogos de secuencia en el mARN de conexina). Tales polinucleótidos tienen típicamente al menos 70% de homología, preferiblemente al menos 80, 90%, 95%, 97% ó 99% de homología con la secuencia relevante, por ejemplo a lo largo de una región de al menos 15, 20, 40, 100 nucleótidos contiguos más (de la secuencia homóloga).
La homología puede ser calculada basándose en cualquier método de la técnica. Por ejemplo, el paquete UWGCG proporciona el programa BESTFIT que puede ser usado para calcular la homología (por ejemplo, usado en sus ajustes por defecto) (Devereux y otros (1984) Nucleic Acids Research 12, p387-395). Los algoritmos PILEUP y BLAST pueden ser usados para calcular la homología, o alinear las secuencias (típicamente en sus ajustes por
defecto), por ejemplo como se describe en Altschul S.F. (1993) J Mol Evol 36: 290-300; Altschul, S, F y otros (1990) J Mol Biol 215: 403-10.
El software para realizar los análisis BLAST está disponible públicamente a través del Centro Nacional de Información de Biotecnología (http://www.ncbi.nlm.nih,gov/)
Este algoritmo implica el primer par de identificación de secuencia de puntuación alta (HSPs) que identifica palabras cortas de longitud W en la secuencia buscada, que bien coincide o satisface algunos umbrales de puntuación T valorados de modo positivo cuando se alinean con una palabra de la misma longitud en una secuencia de la base de datos. T se refiere al umbral de puntuación de la palabra vecina (Altschul y otros, supra). Estas palabras iniciales vecinas actúan como semillas para iniciar búsquedas para encontrar HSPs que las contienen. Los fragmentos de palabras se extienden en ambas direcciones a lo largo de cada secuencia hasta que la puntuación de alineación acumulada se pueda aumentar. Las extensiones para los fragmentos de palabras en cada dirección se detienen cuando: la puntuación de la alineación acumulada cae por debajo de la cantidad X de su máximo valor conseguido; la puntuación acumulada va a cero o por debajo, debido a la acumulación de uno o más alineamientos de residuos con puntuación negativa; o cuando se alcanza el final de cualquiera de las secuencias. Los parámetros del algoritmo BLAST W, T y X determinan la sensibilidad y velocidad del alineamiento. El programa BLAST usa por defecto una longitud de palabra (W) de 11, la matriz de puntuación BLOSUM62 (véase Henikoff y Henikoff (1992) Proc. Natl. Acad. Sci, USA 89: 10915-10919) alineamiento (B) de 50, expectación (E) de 10, M=5, N=4, y una comparación de ambas hebras.
El algoritmo BLAST realiza un análisis estadístico de la similitud entre dos secuencias; véase por ejemplo, Karlin y Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci, USA 90: 5873-5787. Una medida de similitud proporcionada por el algoritmo BLAST es la probabilidad de suma (P(N)) más pequeña, que proporciona una indicación de la probabilidad por la cual tendrá lugar por casualidad una unión entre dos nucleótidos o secuencias de aminoácidos. Por ejemplo, una secuencia se considera similar a otra secuencia si la probabilidad de suma más pequeña en comparación con la primera secuencia a la segunda secuencia es menor de alrededor de 1, preferiblemente menor que alrededor de 0,1, más preferiblemente menor que alrededor de 0,01 y más preferiblemente menor que alrededor de 0,001.
La secuencia homóloga difiere típicamente de la secuencia relevante por al menos (o por no más de) 2, 5, 10, 15, 20 mas mutaciones (que pueden ser sustituciones, deleciones o inserciones). Estas mutaciones pueden ser medidas a través de cualquiera de las regiones anteriormente mencionadas en relación a calcular la homología.
La secuencia homóloga típicamente hibrida de modo selectivo con la secuencia original a un nivel significativamente por encima del fondo. La hibridación selectiva se logra típicamente usando condiciones de media a alta rigurosidad (por ejemplo cloruro sódico 0,03 M y citrato sódico 0,03 M desde alrededor de 50°C a alrededor de 60°C). Sin embargo, tal hibridación puede ser llevada a cabo bajo cualquier condición adecuada conocida en la técnica (véase Sambrook y otros (1989), Molecular Cloning: A Laboratory Manual). Por ejemplo, si se requiere una alta rigurosidad, las condiciones adecuadas incluyen SSC 0,2x a 60°C.
Diversos aspectos de la invención serán ahora descritos con referencia a la sección experimental siguiente que se comprenderá que se proporciona a medio de ilustración y no para constituir una limitación en el alcance de la invención.
Sección experimental
Experimento 1
Materiales y métodos
Aplicación antisentido
Se usó gel F-127 Plurónico al 30% (BASF Corp) en tampón fosfato salino (agua de pureza molecular) para liberar ODNs antisentido específicos para conexina a1 sin modificar (conexina 43) al embrión de pollo en desarrollo (Simons, y otros, 1992). Los embriones de pollo fueron incubados a 38ºC y los estadíos determinados según los estadíos de Hamilton y Hamburger. A los huevos se les hicieron ventanas y las membranas vitelina y amniótica sobre el área a ser tratada fueron abiertas usando finos forceps. Después de la aplicación del antisentido, los huevos fueron sellados con cinta y recolocados en el incubador durante 48 horas, tiempo al cual la mayoría de los experimentos fueron analizados, siendo la excepción el análisis a distintos tiempos de la “eliminación de la expresión” de la conexina y su recuperación.
El gel Plurónico es líquido a bajas temperaturas, 0-4ºC, pero se asienta cuando se añade por goteo sobre el embrión a temperatura fisiológica, permaneciendo en el sitio durante al menos 12 horas. El gel tiene la ventaja adicional de ser un tensioactivo suave y éste, usado bien solo o junto con DMSO, parece acelerar notablemente la penetración de ODN en las células (Wagner, 1994). La adición de una etiqueta FITC al ODN DB1, vista usando microscopía confocal de escaneado con láser , demostró la penetración intracelular de las sondas. Las secuencias de desoxioligonucleótidos usados se muestran en la Tabla 1.
Tabla 1:El efecto sobre el desarrollo de extremidades de la aplicación de ODN entre los estadíos 8 y 14 del desarrollo del embrión de pollo.
Oligodesoxinucleótidos antisentido para la conexina 43
DB1 GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC
CG1 GGC AAG AGA CAC CAA AGA CAC TAC CAG CAT
Oligodesoxinucleótidos testigo
DB1 (homosentido) GAC AGA AAC AAT TCC TCC TGC CGC AAT TAC
DB1 (pollo) GTA GTT ACG ACA GGA GGA ATT GTT CTC GTC
CV3 (al azar) TCG AAC TGT CAA GAC TGC TAT GGC GAT CAT
Sólo el gel
Todos los ODNs fueron aplicados a una concentración final de 0,5-1,0 mM seguido de un análisis dependiente de dosis durante experimentos preliminares que cubrían un intervalo de concentraciones desde 0,05 mM a 50 mM. Los efectos de toxicidad general sólo fueron evidentes con concentraciones de ODN superiores a 10 mM. Las mezclas de gel ODN fueron preparadas a partir de disoluciones patrón concentradas almacenadas a -80ºC.
Secuencias antisentido
DB1 es una secuencia de ratón antisentido, complementaria a las bases 1094-1123 del gen de la conexina a1. Tiene cuatro errores de apareamiento con la secuencia de pollo de la conexina a1. CG es complementaria a las bases 720-749 de la conexina a1 de pollo. La eficacia de esta sonda fue mejorada con Dimetilsulfóxido (DMSO) al 1% añadido al gel. El DMSO no tuvo ningún efecto añadido sobre ningún otro resultado con ODN antisentido o testigo.
Secuencias testigo
DB1 (pollo) es el equivalente de la conexina a1 de pollo del DB1 que empareja con las bases 954-983 de la conexina a1 de pollo. El análisis indica, sin embargo, una alta probabilidad de formar estructuras de bucle de tallo (G= -7.0 kcal/mol, Tm del bucle= 92º) y homodimerización (Tm = 1,5º) y por lo tanto actúa como una secuencia testigo. Se ha demostrado que algunos oligonucleótidos homosentido pueden formar tripletes de ADN estables (Neckers y otros, 1993) que inhiben la transcripción. Sin embargo, esto no fue evidente con el DB1 (homosentido). Una secuencia testigo al azar sin estructura secundaria estable (G= 1,4 kcal/mol) y homodimerización inestable fue también usada, llamada CV3. Un testigo adicional aplicando una mezcla de DB1 y DB1 (homosentido) de igual concentración dio niveles de fondo de los defectos.
Monitorización de la eliminación de los niveles de proteína.
La localización inmunohistoquímica de una proteína de unión intercelular conexina 1 en el punto de contacto célulacélula proporciona una medida directa del efecto antisentido. Se usaron sondas de anticuerpos específicos anti péptido de la conexina 1 para teñir embriones totales y se analizó la distribución de la conexina usando microscopía de barrido con láser confocal según los procedimientos establecidos (Green y otros, 1995). El marcaje de los testigos para otras dos conexinas expresadas en el embrión de pollo en desarrollo (conexinas b1 y b2) fue llevada a cabo de igual modo, usando también anticuerpos específicos de secuencia (Becker y otros., 1995).
Resultados
Reducción de la expresión de conexina a1
Usando gel F-127 Plurónico para liberar ODNs antisentido específicos para conexina a1 no modificados al embrión de pollo en desarrollo, la expresión de la proteína puede ser interferida a puntos de tiempos elegidos y permitir que el tratamiento antisentido sea dirigido a regiones específicas de un embrión de pollo. Una gota de gel que contiene el antisentido a una concentración relativamente baja fue colocada de forma precisa en embriones individuales. El gel se asienta y permanece en su sitio durante al menos 12 horas y así se mantiene una dosis baja sostenida de antisentido en esta región. Las aplicaciones antisentido fueron dirigidas y puestas a un tiempo para bloquear la formación de la unión previamente a los períodos de expresión elevada en las extremidades, el tubo neural y la cara. Estos tiempos fueron elegidos para optimizar los efectos del antisentido reduciendo la expresión de nuevas proteínas más que dependiendo de la renovación de la proteína ya en las membranas de las células del tejido diana. Ambos ODNs de DB1 y CG1 redujeron la expresión de la proteína conexina a1 dentro de dos horas en el tubo neural y la protuberancia de la extremidad, dramáticamente dentro de 4-8 horas y persistió a 18-24 horas y 48 horas en algunos tejidos (datos no mostrados). No fue evidente la disminución de los niveles de la proteína conexina a1 en ninguno de los testigos usados. Igualmente, dos otros miembros de la familia de conexina expresada en el embrión de pollo, conexina b1 y conexina b2, no fueron afectados por el ODN antisentido específico de la conexina a1.
Se corrieron varios testigos paralelos con todos los de los experimentos. Estos incluían; DB1 homosentido, DB1 antisentido y DB1 homosentido combinados, DB1 de pollo (que forma estructuras de bucle en tallo consigo mismo), ODNs al azar CV3, gel Plurónico solo, gel Plurónico con DMSO y PBS solo). Ninguno de los testigos tuvo un efecto notable sobre la expresión de proteína de conexina a1.
Experimento 2
Introducción
Los astrocitos constituyen el tipo celular más abundante en el cerebro de mamífero. Están ampliamente acoplados entre sí y a las neuronas a través de uniones intercelulares compuestas predominantemente de conexina 43 (Giaume y McCarthy (1996)). Tras la isquemia inducida o daño cerebral físico estos canales permanecen abiertos y una onda expansiva de depresión (iniciada por potasio intersticial y señales de glutamato y apoptóticas aumentadas) es propagada (Cotrina y otros, (1998); Lin y otros (1998). Ondas de aumento de calcio citosólico y moléculas segundos mensajeros tales como IP3 se extienden lentamente vía los canales de unión intercelular a las neuronas más allá del núcleo de la región dañada, dando como resultado una extensión de la lesión en las 24-48 horas siguientes al daño. De esta manera, las células vecinas no dañadas son destruidas (Lin y otros, 1998), el así llamado efecto colateral.
Este experimento investiga la capacidad de las formulaciones de la invención para impedir los efectos colaterales.
Materiales
Los oligodesoxinucleótidos fueron preparados con las siguientes secuencias:
GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC (conexina 43)
TTG TGA TTT ATT TAG TTC GTC TGA TTT C (testigo al azar)
Métodos
Oligodesoxinucleótidos (ODNs)
Los ODNs no modificados fueron liberados en gel F-127 Plurónico (BASF) en tampón fosfato salino (PBS). El gel Plurónico es líquido a bajas temperaturas (0-4ºC) y se asienta a temperaturas fisiológicas, y también es un tensioactivo suave. Los ODNs tienen normalmente una vida media de aproximadamente 20 min en las células (Wagner, 1994) pero el método de carga del gel Plurónico proporciona un fuente de difusión contínua, actuando el gel como un reservorio Becker y otros, (1999)). Se aplicaron los ODNs específicos para la conexina 43, o los ODNs testigo al azar de composición de bases similar, a una concentración final de 2 mM. Se llevaron a cabo también testigos de sólo gel. Los ODNs fueron de 30 mer analizados para mostrar que no tuvieran lugar bucles en horquilla u homodimerización.
Formación de la lesión
Las lesiones cerebrales fueron llevadas a cabo en ratas Wistar macho de 250-300 g. Los animales fueron anestesiados con halotano 1-2% en oxígeno y la cabeza mantenida en una pinza estereotáxica. La región alrededor del sitio de la lesión fue afeitada y la piel sobre el cráneo cortada en un plano sagital con un escalpelo y tirada hacia atrás para dejar las placas del cráneo limpias. Un agujero de diámetro 0,5 mm fue perforado a través de la placa del cráneo 3 mm hacia la derecha del bregma usando un grabador Arlet y se hizo una lesión en el córtex del cerebro usando una aguja de jeringa de calibre 19G 1 ½ unida a la plataforma micrométrica. La plataforma permitió un control direccional preciso y una penetración de 2 mm de profundidad precisa que mantuvo la lesión dentro del córtex y muy por encima del cuerpo calloso.
Con el animal preparado, se aspiraron 10 ml de gel F-127 Plurónico (BASF) enfriado en hielo que contenía ODN específico para conexina 43 (o un ODN testigo) en una aguja de jeringa de calibre 19G 1 ½ preenfriada recortada a modo que tuviera una punta plana. La aguja de la jeringa fue unida a una pipeta volumétrica vía una punta de pipeta amarilla cortada en la parte inferior. El gel se asentó entonces en la aguja según se calentó a temperatura ambiente. La aguja con el tapón de gel en su punta fue transferida a una jeringa de 1 ml que contenía PBS y se colocó una funda sobre el eje de la aguja de modo que la punta de la aguja pudiera bajar a la lesión con la funda (subiendo contra el cráneo) impidiendo la sobrepenetración. Una presión suave sobre el émbolo “hizo saltar” el tapón de gel fuera de la aguja dentro de la lesión. La herida fue después tratada con peróxido de hidrógeno para parar el sangrado y la piel fue suturada de vuelta en su sitio. Los animales fueron cuidadosamente monitorizados y dejados hasta que estuvieron listos para el sacrificio 24 horas, 48 horas ó 12 días más tarde.
Corte de secciones congelados
Los animales fueron sacrificados usando Nembutal (pentobarbitona sódica, Virbac) y decapitados. Los cerebros fueron retirados intactos y congelados inmediatamente en hielo seco y almacenados a -80ºC hasta que estuvieron listos para hacer los cortes de secciones. Las criosecciones seriadas (secciones de 30 mm) fueron tomadas desde
la frente a la parte posterior (plano coronario), las secciones secas montadas sobre placas tratadas con cromo y aluminio, y almacenadas para histoquímica o inmunohistoquímica a -80ºC. La primera y la última sección de cada lesión fueron grabadas a modo que las secciones del punto medio de la lesión estuvieran claramente identificadas.
Histoquímica
Para las tinciones con hematoxilina y eoxina las secciones fueron hidratadas a través de series decrecientes de alcoholes (absoluto, 2 x 95%, 1 x 70% y agua) y teñidas en hematoxilina de Gill durante 4 minutos. Las secciones fueron después lavadas en agua, sumergidas en agua de Scott y vueltas a lavar en agua. Fueron después teñidas durante 30 segundos en eoxina en tampón de Moore. Las secciones fueron lavadas una vez más en agua antes de la deshidratación a través de una serie de alcoholes (2 x 95%, 1 x absoluto), 50:50 alcohol: xilol y sumergidas en xileno. Las secciones fueron después montadas usando medio de montaje Histomountä.
Para la tinción Nissl, las secciones fueron deshidratadas en una serie gradual creciente de alcoholes (75%, 95%, 3 x 100%), cinco minutos en cada, y las grasas eliminadas en xileno durante cinco minutos. Las secciones fueron después rehidratadas disminuyendo a través de la misma serie de alcoholes y lavadas en agua. Las secciones fueron después colocadas en un disolución de tinción Nissl (5 ml de una disolución patrón acuosa de violeta de Cresilo al 2%, 90 ml de ácido acético glacial en una disolución acuosa, 10 ml de una disolución de acetato sódico 1,35%) durante 10 minutos. Las secciones fueron después deshidratadas rápidamente en una serie de alcoholes creciente durante 5 minutos a 75%, después 2 minutos cada una a 95% y 3 x 100%, tres cambios de xileno durante 10 minutos cada uno. Fueron después cubiertas con medio de montaje Histomountä.
Inmunohistoquímica
Se dejó que las secciones congeladas volvieran primero a temperataura ambiente en PBS. Después fueron permeabilizadas en metanol durante dos minutos, lavadas en PBS y transferidas a una disolución de lisina 0,1 M y Tritón-X 100 al 0,1% en PBS para bloquear durante 30 min. Le siguieron dos lavados en PBS, de dos minutos cada uno. Se eliminó el PBS y se aplicaron 50 ml por sección de anticuerpo primario.
La inmunohistoquímica fue llevada a cabo con anticuerpos primarios contra conexina 43, núcleos neuronales (proteína nuclear NeuN específica de vertebrados) y GFAP (proteína acídica fibrilar glial). Los siguientes anticuerpos fueron usados:
Anticuerpo de conejo anti-Cx 43 (Gourdie y otros, (1991)) a una concentración de 1:300.
Anticuerpo de ratón anti-Cx 43 (Chemicon Internacional, Inc.) a una concentración de 1:100.
Anticuerpo de conejo anti-rata GFAP (DAKO, Z0334), a una concentración de 1:1000.
Anticuerpo de ratón anti-núcleos neuronales (Chemicon Internacional, Inc.) a una concentración de 1:1000.
Para el marcaje de conexina y GFAP las secciones fueron incubadas durante toda la noche a 4ºC. Fueron después lavadas tres veces durante 15 minutos en PBS en un agitador orbital. A continuación, el exceso de PBS fue eliminado y se aplicaron 50 ml por sección de Alexaä 488 anti-conejo IgG (Molecular Probes, Oregón, USA) a una concentración de 1:200. Para monoclonales y dobles marcajes, se usó un anticuerpo CY3 anti-ratón (Chemicon, 132C). Las secciones fueron incubadas en la oscuridad durante dos horas a temperatura ambiente seguida por tres lavados de 15 minutos en PBS. Para el montaje el exceso de PBS fue eliminado de las placas portaobjetos y una o dos gotas de medio antidecoloración Citifluor (disolución de glicerol/PBS) fueron aplicadas. Un cubreobjetos fue colocado sobre las secciones y sellado con esmalte de uñas. Para el marcaje de N-Neuronales el anticuerpo secundario fue un anticuerpo de cabra anti-ratón biotinilado seguido por una HRP unida a avidina y una reacción DAB (Kit Sigma ExtrAvidin o DAKO Quickstain).
Captura de imágenes y Análisis
El marcaje inmunofluorescente fue llevado a cabo usando un microscopio de barrido confocal láser Leica TCS 4D. Las imágenes doblemente marcadas fueron combinadas subsiguientemente usando la función Leica combinada o en Adobe Photoshop. Las muestras teñidas con hematoxilina y eoxina, y Nissl fueron capturadas usando una cámara digital 3008 Kontron Progress (Zeis) y las áreas lesionadas analizadas usando MetaMorph (Universal Imaging Corp). Las áreas lesionadas fueron analizadas por la sección media de cada lesión.
Resultados
La bien documentada extensión de las lesiones cerebrales en las primeras 24-48 horas después del trauma tuvo lugar en los experimentos testigos con gel y en todas las lesiones, tratadas por los autores con testigos y con antisentido, y tendieron a extenderse hace el extremo exterior donde el gel es menos probable que se asiente tras la carga. Sin embargo, las lesiones testigo se extendieron hacia abajo en el cuerpo callosos y hacia los lados a partir de los extremos desiguales, en extensión (Figuras 1 y 2). El examen de los tejidos marcados con anticuerpo anti N-Neuronal reveló muerte neuronal que tuvo lugar desde muy atrás desde el extremo de la lesión, con áreas de tinción de Nissl y que no quedaron neuronas viables. Está extensión tuvo lugar predominantemente dentro de 24 horas
(Figuras 1 y 2), continuando hasta 48 horas después de la lesión. Esto es especialmente evidente en la Figura 2 en la que la muerte neuronal es evidente dentro de 24 horas desde muy atrás desde el extremo de la lesión hasta tejidos que de otro modo parecen normales, y la lesión se ha extendido hasta abajo en el cuerpo calloso. Por el contrario, las lesiones mejor tratadas con antisentido para conexina 43 permanecen confinadas hacia el sitio original 5 de la lesión y tienen niveles basales claramente definidos (Figuras 3 y 4). El marcaje de N-Neuronal colocaliza con tejidos teñidos con Nissl y ninguna de las lesiones tratadas con antisentido de conexina 43 se extendió hasta el cuerpo calloso. El marcaje N-Neuronal muestra una supervivencia neuronal hasta arriba del extremo de la lesión del tracto de la aguja original. Las neuronas supervivientes alrededor de estas lesiones definen frecuentemente límites agudos marcando el extremo del tracto de la aguja (Figuras 3 y 5). Más tejidos permanecen viables dentro de la
10 misma lesión después del tratamiento antisentido; en lesiones testigo, la muerte celular lleva a una pérdida de tejidos dentro del área lesionada (compárese la lesión testigo en la Figura 2 a 24 horas con las lesiones tratadas con antisentido en las Figuras 3 y 4 a 48 horas).
Mientras que el marcaje de anticuerpo de la proteína acídica fibrilar glial (GFAP) muestra alguna activación aumentada de astrocitos en los extremos de las lesiones, los niveles de proteína conexina 43 están claramente 15 reducidos en muchos sitios a lo largo del extremo de las lesiones tratadas con antisentido, particularmente los extremos basales y medios (Figura 6) comparado con testigos (Figura 7). En algunas áreas el único marcaje de conexina 43 que permanece 24 horas después del tratamiento con antisentido específico de conexina 43 es en las paredes de los vasos sanguíneos pese a los niveles aumentados de GFAP (Figura 6). En general, el marcaje de conexina 43 alrededor de la lesión tratada con antisentido colocaliza en mucha menor medida con el marcaje de
20 GFAP que en los testigos en los que más de la mitad del marcaje de conexina 43 está relacionada con los astrocitos. Los niveles de otras conexinas (conexinas 26 y 32) no parecen estar alterados por los tratamientos específicos de conexina 43.
36 animales fueron lesionados. El área transversal (corte central del volumen de la lesión en un plano coronario) fue analizada para 21 animales. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Tabla 2 Áreas transversales de lesiones tratadas con oligodesoxinucleótidos testigo y con oligonucleótidos específicos para conexina 43, dejadas vacías, o tratadas sólo con gel. Las medidas son para animales medidos después de 24 horas, 48 horas y 12 días. Dos grupos de figuras están incluidos- medidas de la lesión entera, y medidas desde 1 mm por debajo de la superficie. En base al análisis del segundo grupo la lesión tratada DB1 más grande (paréntesis) está excluida ya que cae fuera de las desviaciones estándar 3 a partir de la media para este grupo. Nótese que el cerebro de rata se cura (a diferencia de otras especies) y medidas de 12 días de lesión no representan la extensión original de la extensión de la lesión. DB1 está tratada con anti conexina 43 HB3 está con oligos al azar y parecen ser tóxicos
Lesión entera: (medidas en mm cuadrados)
24 horas
48 horas 12 días
DB1
2,42; 3,16; 3,78; 5,57 3,7; 6,05; 2,91; 3,41; 4,53 2,79; 2,86
HB3
7,14 13,19
Gel/vacío
5,04; 4,48 3,96; 3,41; 3,56; 5,91 2,58; 3,3
Lesiones desde 1 mm hacia abajo: (ésta es considerada una medida más precisa ya que todas las lesiones tienden a extenderse hacia el borde externo indicando que el gel de tratamiento se ha asentado en el fondo de la lesión y/o el córtex externo ha sido dañado cuando se ha perforado el cráneo o al insertar la aguja de carga del gel).
24 horas
48 horas 12 días
DB1
0,91; 1,13; 2,12; 2,41 (3,38); 0,99; 1,54; 1,44; 1,08 0,47; 1,2
HB3
5,9 5,6
Gel/vacío
3,2; 2,19 1,86; 1,5; 1,68; 2,17 1,07; 1,43
En el análisis final el área de la lesión desde una línea de 1 mm por debajo del extremo del córtex externo fue medida a modo de excluir la extensión de la lesión en el extremo exterior en el que los tratamientos antisentido tienen poco o ningún efecto (debido a que el gel se inyecta en y se asienta en el fondo de las lesiones). Un animal tratado con con antisentido cae más de tres desviaciones estándar fuera de la media para este grupo y ha sido excluido. El tamaño de la lesión media para lesiones tratadas con antisentido a 24 y 48 horas fue de 1,45 mm2 (+/0,55), para testigos 2,1 mm2 (+/- 0,6). Las cuatro más pequeñas (de 8 lesiones tratadas con antisentido y 8 lesiones testigo a 24 y 48 horas) fueron todas tratadas con antisentido para conexinas, siendo la lesión testigo más pequeña 50% más grande que éstas cuatro. Estos datos se muestran también en forma gráfica en la Figura 8. A 12 días tiene lugar la regeneración en la rata (pero no en tejido cerebral humano) y los límites de la extensión de la lesión no están claramente definidos.
Discusión
El método del tapón de gel Plurónico-ODN antisentido ha sido usado para estudiar el efecto de la eliminación de la expresión de conexina 43 durante la astrocitosis que tiene lugar tras la lesión del córtex cerebral del cerebro de mamíferos. En el cerebro, la liberación de toxinas a partir de neuronas muriendo causa lo que se conoce por efecto colateral, con las toxinas extendiéndose a células vecinas a través de canales de uniones intercelulares (Lin y otros, (1998)). En condiciones neurodegenerativas, la lenta liberación de toxinas aparentemente lleva a un aumento de los niveles de canales de conexina 43 en astrocitos para permitir el transporte y la eliminación de las toxinas a la corriente sanguínea. Sin embargo, en casos de trauma grave, este aumento de los niveles ayuda a la extensión de elevados niveles de toxina a neuronas vecinas, matándolas. El bloqueo del aumento de los niveles de conexina 43 y la eliminación de la expresión de los canales de conexina 43 impide esta extensión que lleva a lesiones hasta un 50% más pequeñas en áreas transversales. Esto tiene implicaciones significativas en el manejo de fallos isquémicos, tratamiento de enfermedades neurodegenerativas, y modulación de efectos secundarios a partir de intervención quirúrgica.
Experimento 3
Introducción
El efecto colateral en tejidos neurales mediante el cual las neuronas dañadas liberan toxinas que se extienden y matan células vecinas está bien documentado. El experimento 2 muestra que este efecto puede ser reducido en el cerebro usando una aproximación de liberación sostenida de oligodesoxinucleótidos antisentido para eliminar los niveles de la proteína de uniones intercelulares conexina 43.
Otro tejido de composición similar al cerebro es la médula espinal en la que la población neuronal está apoyada por poblaciones de células gliales, incluyendo astrocitos que son responsables para el efecto neuroprotector eliminando el glutamato y el exceso de calcio a partir del entorno neural. Este experimento investiga la capacidad de las formulaciones de la invención para reducir la extensión de las lesiones de médula espinal.
Materiales
Los oligodesoxinucleótidos fueron preparados con las siguientes secuencias:
GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC (conexina 43)
GAC AGA AAC AAT TCC TCC TGC CGC AAT TAC (testigo homosentido)
Métodos
Las ratas Wistar fueron anestesiadas y su médula espinal expuesta. Una lesión de una hemisección estándar fue después hecha en la médula y 5 ml de gel Plurónico frío, que contenía bien ODNs antisentido o bien homosentido para la conexina 43 (5 mM) fueron colocados en la lesión. Las aplicaciones fueron hechas en ciego. La médula expuesta fue después recuperada y la rata devuelta a su jaula. Algunos animales fueron sacrificados a 24 horas mientras que otros fueron mantenidos durante 12 días y dos meses para determinar la extensión de la regeneración neuronal y el tamaño final de la lesión. Para estudios de regeneración axonal las ratas fueron anestesiadas y sus axones cortados previamente a sus sitios de entrada en la médula espinal. Un precipitado de peroxidasa de rábano (HRP) fue colocada en el corte para marcar de modo retrógrado los axones a lo largo del período de 24 horas. Al día siguiente las ratas fueron sacrificadas y sus médulas espinales retiradas y fijadas en paraformaldehído 2%. Las médulas fueron después procesadas para cortes transversales y las secciones de series longitudinales de 8 mm fueron tomadas a través de las médulas. Las secciones fueron después inmunoteñidas tanto para las conexinas como para el GFAP solo con yoduro de propidio como marcador nuclear, o procesadas para revelar el HRP.
Resultados
A 24 horas posterior a la lesión hubo una notable diferencia entre las lesiones de médulas espinales tratadas con conexina 43 homosentido y ODNs antisentido. Las lesiones homosentido no parecieron diferentes de los testigos sin tratar mientras que las lesiones tratadas con antisentido parecieron más pequeñas y menos inflamadas (Figura 9).
A dia 12 los axones marcados con HRP podían ser visto tanto en las médulas tratadas con homosentido como en las tratadas con antisentido pero en ningún caso atravesó la lesión ningún número significativo de axones regenerantes. Sin embargo, hubo una notable diferencia en el tamaño de la lesión pareciendo la lesión antisentido significativamente más pequeña que las lesiones homosentido o sin tratar.
Dos meses tras la lesión de las médulas espinales el marcaje con HRP de axones en regeneración reveló que no consiguieron atravesar el sitio de la lesión en los tratamientos tanto homosentido como antisentido. El tamaño de la lesión fue significativamente más pequeño en las médulas tratadas con antisentido indicando una reducción significativa en muerte celular neuronal secundaria.
Discusión
Usando las formulaciones de la invención, la eliminación de los niveles de conexina 43 por los oligodesoxinucleótidos antisentido redujo significativa-mente le extensión de la lesión que tiene lugar en las primeras 24-48 horas tras el daño de la médula espinal. La eliminación de los niveles de conexina 43 también reduce la inflamación, ayudando además en el efecto neuroprotector, pero no hubo cambio en la capacidad para las neuronas de crecer de nuevo a través del sitio de la lesión. Así, el tratamiento antisentido con oligodesoxinucleótidos específicos para conexina 43 no puede ayudar al crecimiento de neuronas dañadas, pero tiene un efecto nueuroprotector significativo reduciendo la extensión del insulto.
Experimento 4
Introducción
Para reparar heridas cutáneas se activan un número de tipos celulares, tales como fibroblastos, células endoteliales y queratinocitos, para proliferar, migrar y colocar matriz extracelular para rellenar la herida.
La comunicación y la señalización intercelular es una característica clave del proceso de cicatrización de heridas. Los mecanismos de señalización extracelular se cree que son las piezas clave aunque es también probable que la señalización intercelular a través de las redes extensivas de los canales de uniones intercelulares en las capas dérmicas pueda tener también un papel. Las ondas de calcio que se propagan desde las células heridas a través de la epidermis pueden señalizar su daño. En una cicatrización de heridas normal los niveles de conexinas comienzan a caer dentro de 6 horas y les lleva 6 días para recuperarse. Los papeles que estos cambios juegan no se comprenden pero una teoría es que las células se liberan de sus vecinas para dividirse rápidamente, y después las uniones reforman la migración coordinada en y sobre el sitio de la herida.
Este experimento investiga la capacidad de las formulaciones de la invención para afectar la cicatrización de heridas.
Materiales
Los oligodesoxinucleótidos fueron preparados con las siguientes secuencias:
GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC (conexina 43)
GAC AGA AAC AAT TCC TCC TGC CGC AAT TAC (testigo homosentido)
Métodos
Los ratones neonatales, de la cepa CD1, fueron anestesiados con un anestésico local mediante pulverización. Una herida con una incisión limpia, de 2 mm de largo, fue luego hecha a lo largo de la longitud de ambas patas delanteras con un cuchillo de iridectomía. Haciendo las heridas bajo un microscopio de disección se pueden hacer muy reproducibles en tamaño. Éstas cicatrizan generalmente en 3-6 días. El polvo de carbón fue rociado en las heridas para marcarlas para una identificación subsiguiente del sitio de la herida a tiempo más tardíos- esto no afecta la cicatrización de ninguna manera. 5 ml de gel Plurónico enfriado, que contenía ODNs bien homosentido o bien antisentido fueron después aplicados a las heridas. El gel Plurónico es líquido entre 0-4 ºC pero se asienta a temperaturas más altas. Una vez que se aplica a las heridas el gel se asienta en su sitio y actúa como un reservorio de liberación lenta para los ODNs así como un tensioactivo suave, ayudando a la penetración de los ODNs en el tejido. La aplicación de los ODNs homosentido fue hecha sobre una pata y el antisentido en la otra, alternando izquierda y derecha entre las distintas camadas. Los ratones neonatales fueron calentados bajo una lámpara y después devueltos a sus madres. Las heridas fueron examinadas a diario y registradas en lo que respecta a la calidad de la cicatrización. Los ratones representativos fueron seleccionados a día 1, día 5 día 8 posterior a la operación y sus patas delanteras fotografiadas antes de que los ratones fueran anestesiados y perfundidos con paraformaldehído 2%. Las patas delanteras fueron retiradas y sumergidas-fijadas en paraformaldehído 2% durante toda la noche y después procesadas para histiología de resina (1 día) o cera (2 días en adelante).
La inflamación de la herida fue evaluada 24 horas tras la herida. Las secciones de resina a través de la herida están teñidas con azul de Toluidina para revelar células positivas para nissl, neutrófilos que son las primeras células en responder al daño. Estos pueden también ser revelados usando marcadores específicos de neutrófilos.
La muerte celular y la eliminación es evaluada mediante marcaje tunel para determinar la velocidad de eliminación de células apoptóticas. La tinción de macrófagos fue usada para mostrar el período de limpieza tras la muerte celular. Estas son llevadas a cabo 3-5 días posteriores a la herida.
Angiogénesis
La granulación es una característica del tejido conectivo cicatrizante y es causada por la invasión de numerosos capilares. Se conoce que los macrófagos expresan potentes factores angiogénicos tales como VEGF. El grado de vascularización está monitorizado con anticuerpos para los receptores VEGF, anti-PCAM y anti-FLT-1 que son ambos buenos marcadores de vasos sanguíneos. La contracción de este tejido es provocada por la diferenciación de los fibroblastos de la herida en un miofibroblasto contráctil. Después de que han cicatrizado la herida mueren apoptóticamente y son eliminados por los macrófagos. Estas células pueden ser reveladas mediante anticuerpos específicos anti actina de músculo liso y su formación y eliminación puede ser seguida.
Hiperenervación
Los nervios sensoriales son muy sensibles a las señales liberadas sobre la herida y muestran liberación de señales transitorias en los sitios de las heridas en adultos. Sin embargo, en heridas neonatales esta liberación de señales es más abundante y da como resultado una hiperenervación permanente. Mientras que no está claro lo que son estas señales es probable que se liberen a partir de macrófagos inflamatorios. La hiperenervación es máxima a 7 d posteriores a la herida y la distribución nerviosa puede revelarse usando anticuerpos PGP 9,5 contra neurofilamentos.
La formación de la cicatriz es evaluada normalmente semanas o meses después del cierre de la herida. Sin embargo, una evaluación razonable puede ser hecha 12 días después de la herida. Las secciones a través de las heridas son teñidas con la tinción de colágeno Rojo de Picrosirus y examinadas por un microscopio de confocal para determinar la densidad del colágeno y la orientación en el sitio de la herida.
Resultados
Día 1
24 horas después de la herida notables diferencias fueron evidentes entre las extremidades tratadas con el homosentido y el antisentido. Las heridas tratadas con el homosentido no parecieron diferentes de las heridas sin tratar con un espectro normal de grados y velocidades de cicatrización (Figura 10). Las extremidades tratadas con antisentido fueron notablemente diferentes de los testigos, pareciendo estar menos inflamadas y la velocidad de cicatrización fue generalmente más rápida.
Las secciones de resina de las extremidades representativas teñidas con una tinción de nissl revelaron significativamente menos células neutrófilas indicando un tejido menos inflamado (Figura 11).
Dia 5
Tras estos días se habían comenzado a caer las costras de las heridas. En esta etapa la mayoría de las heridas tratadas con los antisentido parecieron ser mas pequeñas que las tratadas con homosentido con costras mas pequeñas o cicatrización menos prominente (Figura 12).
Día 8
8 días después de la herida, en las extremidades había crecido pelo. Las heridas tratadas con homosentido fueron aún visibles siendo demarcadas por una falta de pelo alrededor del sitio de la herida. Las heridas tratadas con los antisentidos fueron la mayoría invisibles, estando recubiertas por crecimiento de pelo normal. Esta diferencia en el crecimiento del pelo indica que una cicatrización reducida había tenido lugar en las heridas tratadas con los antisentido (Figura 13).
Conclusiones
La aplicación de los ODNs antisentido de la conexina 43 a una herida tiene un notable efecto sobre el proceso de cicatrización. El primer efecto notable es una reducción en la inflamación de las heridas que es notable en secciones que muestran un respuesta inflamatoria mucho menor en términos de niveles de neutrófilos. Según progresa la cicatrización, las heridas tratadas con antisentido cicatrizan mucho más rápido y con menos formación de costra que las lesiones testigo.
Esta reducción en la respuesta inflamatoria y la subsiguiente cicatrización mejorada es posible debido a la reducida comunicación con los neutrófilos y a una aceleración de los procesos de cicatrización natural. Los ODNs antisentido
pueden reducir la expresión de conexina en 4-8 horas de modo que no tendrán un efecto sobre la señalización inicial de la herida pero jugarán un papel en los eventos de señalización secundarios. Es interesante observar que los neutrófilos que invaden en respuesta a la herida expresan normalmente una gran cantidad de conexina 43. Es también posible que formen uniones intercelulares con otras células en la herida y que comuniquen con ellas. La reducción en esta forma de comunicación puede dar como resultado una reducción de los factores secretados a partir de neutrófilos y puede reducir la muerte celular en la herida así como la granulación e hiperenervación. También se conoce que en condiciones normales los niveles de proteína conexina (conexinas 26, 31.1 y 43) están reducidos tanto en las capas epiteliales como en las subdérmicas de las heridas empezando en 6 horas, y permaneciendo disminuidas durante hasta 6 días. La aproximación antisentido puede acelerar esta reducción proteica inicial bloqueando los procesos traduccionales como ocurre con la eliminación proteica de la membrana. Ciertamente, los efectos de la eliminación de los niveles de conexina 43 inmediatamente tras la herida tiene un notable efecto en reducir los niveles inflamatorios y aumentar la velocidad de cicatrización.
Experimento 5
Introducción
La inflamación y muerte celular secundaria que sigue a una quemadura es una preocupación principal. Las víctimas de quemaduras graves por encima de un alto porcentaje de su cuerpo por lo general mueren uno o dos días después del trauma. Este experimento investiga la capacidad de las formulaciones de la invención para afectar beneficiosamente el proceso de recuperación de la quemadura.
Materiales
Los oligodesoxinucleótidos fueron preparados con las siguientes secuencias:
GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC (conexina 43)
GAC AGA AAC AAT TCC TCC TGC CGC AAT TAC (testigo homosentido)
Métodos
Las quemaduras reproducibles son liberadas a la piel humedecida, y el gel Plurónico que contiene ODNs antisentido inyectados subdérmicamente a la quemadura. Una serie de quemaduras fueron hechas usando hierro de soldar hacia los lados izquierdo y derecho del cráneo de seis ratones neonatos. Las quemaduras sobre un lado de la cabeza fueron tratadas con ODN específico de conexina 43 en gel Plurónico y aquellas en el otro lado con ODN testigo homosentido en gel Plurónico.
Resultados
Tras 24 horas, las seis quemaduras tratadas con ODN de conexina 43 mostraron niveles más bajos de inflamación comparados con las quemaduras testigo. Estas diferencias fueron notables (datos no mostrados).
Utilidad
Así, de acuerdo con la invención, hay formulaciones proporcionadas mediante las cuales la comunicación célulacélula puede ser disminuida en una manera transitoria y específica de sitio. Las formulaciones tienen por lo tanto, aplicación en métodos de terapia y en tratamientos cosméticos.
La liberación del componente ODN de la formulación durante un período extendido (24 horas o más) es una ventaja particular a la hora de tratar daño neuronal. Esto es debido, en la mayoría de los casos de daño neuronal físico directo, a que la pérdida de células neuronales se extiende mas allá del sitio de la lesión concreta a las células circundantes. Ésta pérdida de células neuronales secundaria tiene lugar durante 24 horas de la lesión original y está mediada por la comunicación de uniones intercelulares célula-célula. La disminución de la expresión de proteína conexina bloquea por lo tanto o al menos disminuye los niveles de comunicación entre las células y minimiza el daño de células neuronales secundario.
Igualmente, en ejemplos de otros daños en tejidos (particularmente heridas) las formulaciones de la invención se ha encontrado que son eficaces tanto en promover el proceso de cicatrización de heridas, reduciendo la inflamación y minimizando la formación de costra. Las formulaciones tienen por lo tanto un claro beneficio en el tratamiento de las heridas, sea el resultado de un trauma externo (incluyendo quemaduras) o de intervención quirúrgica.
Se apreciará además que la descripción anterior se proporciona sólo como un ejemplo y que se pueden hacer modificaciones, tanto en términos de los ODNs específicos y los excipientes o vehículos farmacéuticamnte aceptables empleados sin salirse del alcance de la presente invención.
Tabla 1
Referencias
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42.
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Lista de secuencias
<110> Becker, David L Green, Colin R
<120> Formulaciones que comprenden nucleótidos antisentido para conexinas
<130> N78821B TJD PT
<140>
<141> 2000-01-27
<150> EP 00901236.0
<151> 2000-01-27
<150> PCT/GB00/00238
<151> 2000-01-27
<150> NZ 333928
<151> 1999-01-27
<150> NZ 500136
<151> 1999-10-07
<160> 12
<170> PatentIn Ver. 2.1
<210> 1
<211> 30
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 1 5 gtaattgcgg caagaagaat tgtttctgtc 30
<210> 2
<211> 30
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
15 <400> 2 gtaattgcgg caggaggaat tgtttctgtc 30
<210> 3
<211> 30
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 3 ggcaagagac accaaagaca ctaccagcat 30
<210> 4
<211> 27
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220> 35 <223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 4 tcctgagcaa tacctaacga acaaata 27
<210> 5
<211> 25
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
45 <220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 5 cgtccgagcc cagaaagatg aggtc 25
<210> 6
<211> 25
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 6 tttcttttct atgtgctgtt ggtga 25
<210> 7
<211> 30
<212> DNA 65 <213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 7 5 gacagaaaca attcctcctg ccgcaattac 30
<210> 8
<211> 30
<212> DNA 10 <213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
15 <400> 8 gtagttacga caggaggaat tgttctcgtc 30
<210> 9
<211> 30 20 <212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 9 tcgaactgtc aagactgcta tggcgatcat 30
<210> 10 30 <211> 28
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
<220> 35 <223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 10 ttgtgattta tttagttcgt ctgatttc 28
40 <210> 11
<211> 30
<212> DNA
<213> Secuencia artificial
45 <220>
<223> Descripción de la secuencia artificial: Oligonucleótido
<400> 11 gacagaaaca attcctcctg ccgcaattac 30
<210> 12
<211> 1149
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 12

Claims (13)

  1. REIVINDICACIONES
    1.Una formulación para uso en el tratamiento de un ser humano mediante una terapia, cuya formulación comprende un polinucleótido antisentido de conexina 43; junto con un soporte o un vehículo farmacéuticamente aceptable.
    5 2.Una formulación para uso en el tratamiento de un ser humano para una herida o para inflamación cuya formulación comprende un polinucleótido antisentido de una conexina 43; junto con un soporte o un vehículo farmacéuticamente aceptable.
  2. 3.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, que se formula para administración tópica, tal como en la forma de una crema, ungüento, gel, emulsión, loción o pintura.
    10 4.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 3, en donde el soporte o vehículo farmacéuticamente aceptable es un gel
  3. 5.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 4, en donde el gel es un copolímero no iónico polioxietileno-polioxipropileno.
  4. 6.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 4, en donde el gel es un gel de Pluronic.
    15 7.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, que comprende Pluronic F-127 en forma de gel o líquida.
  5. 8.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde el polinucleótido se formula para la administración por vía parenteral, intramuscular, intracerebral, subcutánea o transdérmica.
  6. 9.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde el tratamiento es para administrarse 20 por liberación continua durante 24 horas o más.
  7. 10.Una formulación para uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, que es una formulación de liberación retardada.
  8. 11.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde la formulación comprende uno o más de caseína, gelatina, albúmina, pegamento, alginato sódico, carboximetilcelulosa, metilcelulosa, hidroxietilcelulosa y 25 alcohol polivinílico.
  9. 12.Una formulación para uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en donde el polinucleótido es:
    (i) ADN o ARN;
    (ii) un oligodesoxinucleótido; 30 (iii) un oligonucleótido con fosfodiéster no modificado;
    (iv)
    un oligonucleótido con fosfodiéster químicamente modificado;
    (v)
    un oligonucleótido químicamente modificado seleccionado de fosforotioatos, metilfosfonatos, fosforamidatos, fosforoditioatos, N3'P5'-fosforoamidatos, oligoribonucleótido fosforotioatos y sus análogos 2'O-alquilo, 2'-O-metilribonucleótido metilfosfonatos y oligonucleótidos con núcleo mixto;
    35 (vi) entre 6 y 40 nucleótidos de longitud, tal como entre 12 y 20 nucleótidos de longitud;
    (vii) monocatenario; o
    (viii) bicatenario.
  10. 13.Una formulación para uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1, 2, 8, 9, 10 y 12, en donde el soporte farmacéuticamente aceptable se selecciona de disolución salina isotónica, disolución salina tamponada con 40 fosfato, un agente catiónico o lipofectante.
  11. 14.Una formulación para uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en donde el polinucleótido se administra a una dosis de 0,1 a 100 mg/kg de peso corporal ó 1 a 40 mg/kg de peso corporal.
  12. 15.Una formulación para uso de acuerdo con la reivindicación 13 ó 14 en donde el polinucleótido se selecciona entre:
    45 GTA ATT GCG GCA AGA AGA ATT GTT TCT GTC;
    GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC; y GGC AAG AGA CAC CAA AGA CAC TAC CAG CAT,
    o tiene al menos 70%, 80%, 90%, 95%, 97% ó 99% de homología con un polinucleótido seleccionado entre: GTA ATT GCG GCA AGA AGA ATT GTT TCT GTC; y 5 GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC.
  13. 16.Una formulación para uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en donde el polinucleótido es un oligómero fosfodiéster no modificado de 30 nucleótidos de longitud. 17.Una formulación para uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, para uso en un
    método para estimular la cicatrización de heridas, tratar inflamación o disminuir la formación de cicatrices. 10 18.El uso de una formulación como se define en una cualquiera de las reivindicaciones anteriores en la fabricación de un medicamento para estimular la cicatrización de heridas, tratar inflamación o disminuir la formación de cicatrices.
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