ES2425997B2 - Biocatalizador con actividad nucléosido desoxirribosiltransferasa inmovilizado sobre partículas magnéticas de quitosano - Google Patents
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Abstract
Biocatalizador con actividad nucléosido desoxirribosiltransferasa inmovilizado sobre partículas magnéticas de quitosano.#La invención se refiere a un nuevo biocatalizador basado en la inmovilización covalente de la nucléosido 2?-desoxirribosiltransferasa de Lactobacillus reuteri en partículas magnéticas obtenidas a partir de quitosano y Fe{sub,3}O{sub,4} (magnetita). Asimismo, la invención se refiere al procedimiento para elaborar dicho biocatalizador y al procedimiento para utilizarlo en la síntesis de distintos nucleósidos de interés terapéutico como ara-A, ara-C, 2?-fluoro-2?-desoxiadenosina y 2?-fluoro-2'-desoxicitidina.
Description
Biocatalizador con. actividad nucléosido desoxirrihosiltransferasa inmovilizado sobre partículas magnéticas-de quitosano.
Sector de la técnica La presente invención se encuadra en el sector de la Biotecnología. Más concretamente, se refiere a la síntesis de nucleósidos naturales y no naturales con actividad terapéutica mediante métodos biotecnológicos. Dicha síntesis se puede realizar mediante la utilización de un nuevo biocatalizador enzimático, cuya preparación incluye la inmovilización covalente de la nucléosido 2'-desoxirribosiltransferasa en partículas magnéticas obtenidas a partir de quitosano y Fe304 (magnetita).
Estado de la técnica Los nucleósidos modificados son moléculas de gran interés en la industria fannacéutica ya
que presentan actividad antiviral y antitumoral, y pueden ser utilizados como sustratos de partida en la síntesis de oligonucleótidos antisentido [Robak T. et al., PurÍne nucleoside analogs as immunosuppressive and antineoplastic agents: mechanism of action and, c1inical activity. Curro Med. Chem. 13,3165-3189,2006; de Clercq E. Highlights in the discovery ofantiviral drugs: a personal retrospective. 1. Med. Chem. 53, 1438-1450,2010]. Los efectos adversos de los análogos de nucleósidos disponibles en la actualidad, así como la aparición de resistencias debido a su utilización prolongada, ha suscitado el interés por el desarrollo de nuevos análogos de nude6sidos con propiedades terapéuticas mejoradas. Estos análogos tradicionalmente se han sintetizado mediante métodos químicos que suponen con frecuencia muchas etapas de protección y desprotección de grupos funcionales, tanto en la base como en el azúcar del nucleósido natural de partida. En este sentido, cualquier proceso enzimático de síntesis de dichos análogos de nudeósidos es una alternativa interesante al proceso químico descrito, ya que supondría una tecnología respetuosa con el medio ambiente, utilizando enzimas como biocatalizadores con una elevada enantioespecificidad y regioselectividad en condiciones muy suaves de reacción [Lewkowicz E.S., ¡ribarren A.M., Nuc1eoside phosphorylases. Curro Drg. Chem. lO, 11971215, 2006; Li N. el al., Biocatalytic transfonnation of nucleoside derivatives. Biotechnol. Adv. 28, 348-366, 2010; Mikhailopulo LA. Biotechnology of nucleic acid constituents: state of the art and perspectives. Curro Org. Chem. 11, 317-333, 2007]. Para la síntesis enzimática de nucleósidos se pueden utilizar nucleósido fosforilasas o nucJeósido desoxirribosiltransferasas, enzimas procedentes de microorganismos que catalizan la reacción de transferencia de residuos glicosilados a bases nitrogenadas aceptoras. A diferencia de las nucleósido fosforilasas, las nucleósido desoxirribosiltransferasas (EC 2.4.2.6) presentan corno ventaja su capacidad de catalizar, en el mismo proceso enzimático, la ruptura del enlace glucosídico de un desoxirribonucleósido y la posterior transferencia del resto glicosilado a una hase púrica o pirimidínica que actúa como aceptor. Dicha reacción enzimática es regioselectiva (ya que la transferencia ocurre en la posición N-l de la base pirimidínica o en la posición N-9 de la base púrica) y enantioselectiva (ya que s610 se sintetizan los anómeros con conformación P). A diferencia de las purina desoxirribosiltransferasas (PDTs) que catalizan exclusivamente la transferencia de la 2'desoxirribosa entre bases púricas, las nucleósido 2'-desoxirribosiltransferasas (NDTs) son capaces de catalizar dicha transferencia entre bases púricas y/o pirimidínicas [Kaminsiki
P.A. Functional cloning, heterologous expression, and purification of two different Ndeoxyribosyltransferases from Laclobacillus helveticus. J. BioL Chem. 277, 14400-14407, 2002]. Desde un punto de vista industrial, las transglicosilaciones en un solo paso catalizadas por las NDTs son más ventajosas que las basadas en la utilización de fosforilasas microbianas ya que, estas últimas, requieren la participación de una purina nucleósido fosforilasa y una pirimidina nucleósido fosforilasa [Lewkowicz E.S., lribarren A.M., Nucleoside phosphorylases. Curro Org. Chem. 10, 1197-1215,2006]. Las principales NDTs bacterianas descritas para estos procesos proceden de Lactobaeillus fermentum , Lactobaeillus leichmanni¡ [Kaminsiki P.A. el al., In vivo reshaping the catalytic site of nucleoside 2'-deoxyribosyltransferase for dideoxy-and didehydronucleosides via a single amino acid substitution J. Biol. Chem. 283, 20053-20059, 20081, Laelobaeillus helvelieus [Kaminsiki P.A. Functional cloning, heterologous expression, and purification of two different N-deoxyribosyltransferases from Lactobacillus helvetieus. 1. BioL Chem. 277, 14400-14407,2002], Laclobacillus reuleri [Femández-Lucas J. el al., Laclobacillus reuleri 2'-deoxyribosyltransferase, a novel biocatalyst for tailoring of nucleosides. AppL Environ. Microbio!. 76, 1462-1470, 201OJ, Y Laelocoeeus laetis subsp. laelis [Miyamoto el al., Characterization of N-deoxyribosyltransferase from Laelococeus lactis subsp. laclis. Biochim. Biophys. Acta 1774, 1323-1330, 2007].
La clonación e hiperexpresión del gen ndl que codifica la nucléosido 2'desoxirribosiltransferasa de Laclobaeillus reuleri ha pennitido la caracterización funcional
y estructural de la enzima ~soluble, así como poner de manifiesto su potencial como biocatalizador en la síntesis de diferentes nucleósidos naturales y no naturales de interés terapéutico. Además, esta nucléosido 2'-desoxirribosiltransferasa presenta una actividad inesperada para este tipo de enzimas, que consiste en su capacidad para sintetizar arabinonucleósidos, capacidad que no comparte con las otras enzimas nucléosido 2'desoxirribosiltransferasa conocidas [Femández-Lucas J. el al., Lactobacillus reuleri 2'deoxyribosyltransferase, a novel biocatalyst foc tailoring of nucleosides. Appl. Environ. Microbiol. 76, 1462-1470, 2010]. Sin embargo, la inmovilización de la NDT de L. reuteri es un requisito previo fundamental para que un posible proceso industrial de síntesis enzimática de nucleósidos sea factible económicamente ya que permitiría su reutilización en múltiples ciclos así como su estabilización en un amplio rango de condiciones experimentales. En la literatura científica sólo aparecen descritos dos biocatalizadores inmovilizados a partir de nucléosido 2'-desoxirribosiltransferasas. El primero está preparado a partir de la enzima nativa y semipurificada de Lactobacillus leichmannii irunovilizada sobre un copolímero sintético [Hicks N., Hutchinson D.W. Synthesis of nucleoside analogs using immobilized N-deoxyribosyltransferases. Biocatalysis 11, 1-7, 1994] y, como ya se ha comentado, no presenta actividad arabinosiltransferasa, mientras que el segundo está preparado con la enzima recombinante pura de 1. reuteri unida covalentemente al soporte comercial Sepabeads® [Femández-Lucas J, el al., Enzymatic synthesis of nucleoside analogues using immobilized 2'-deoxyribosyltransferase from Laclobacillus reuleri. App!. Microbio!. Biotechno!. 91, 317-327, 2011]. En este segundo caso, al ser inmovilizada, la enzima pierde su capacidad para sintetizar arabinosilnucleósidos, y los autores del trabajo especulan sobre la posibilidad de que esa pérdida de actividad se deba a la unión de tipo covalente que tiene lugar para la inmovilización.
Explicación de la invención La presente invención se refiere a un biocatalizador que comprende la enzima nucléosido 2'-desoxirribosiltransferasa inmovilizada en un soporte biodegradable que incluye partículas magnéticas obtenidas a partir de quitosano y Fe)04 (magnetita). En la inmovilización de enzimas, los soportes biodegradables presentan la ventaja de ser menos contaminantes que los soportes sintéticos. Esta característica, unida al hecho de que la reacción catalizada por la enzima inmovilizada transcurre en condiciones suaves y en medio acuoso de reacción, permite la obtención de nucle6sidos de interés terapéutico a través de un proceso biosostenible. En una realización de la invención la enzima es de origen procariota Y. preferentemente, es la nucle6sido Z'-desoxirribosiltransferasa de Lactobaci//us reuteri (LrNDT), caracterizada por SEQ ID NO: 2. La invención también incluye biocatalizadores que tienen inmovilizados polipéptidos con, al menos, un 80% de identidad con SEQ ID NO: 2 y que conservan la actividad nucleósido 2'desoxirribosiltransferasa. Se entiende por "porcentaje de identidad" de la secuencia aminoacídica el porcentaje de coincidencias de los mismos aminoácidos entre dos secuencias alineadas, a lo largo de la longitud completa de ambas secuencias.
La enzima nucleósido 2'-desoxirribosiltransferasa se puede obtener recombinante mediante la expresión del gen ndt de L. reuteri, caracterizado por SEQ ID NO: 1, en una bacteria fácilmente manipulable como, por ejemplo, Escherichia eolio La enzima recombinante se puede obtener, así mismo, partiendo de secuencias con, al menos, un 70% de identidad con el gen ndl, cuya expresión da lugar a polipéptidos que conservan la actividad nucleósido 2' -desoxirribosiltransferasa, entendiendo por "porcentaje de identidad" de la secuencia el porcentaje de coincidencias de los mismos nucleótidos entre dos secuencias alineadas, a lo largo de toda la longitud de ambas secuencias.
Así mismo, la presente invención se refiere al procedimiento de preparación de dicho biocatalizador. El gen ndl de L. reuleri, caracterizado por SEQ ID NO: 1, que codifica la nucléosido 2' -desoxirribosiltransferasa, caracterizada por SEQ ID NO: 2, o secuencias nucleotídicas con, al menos un 70% de identidad con SEQ ID NO: 1 y cuya expresión da lugar a polipéptidos que conservan la actividad nucleósido 2' -desoxirribosiltransferasa, se pueden clonar en un vehículo de expresión procariota que, insertado en una bacteria de fácil manipulación en el laboratorio, como Escheriehia eoli, permite la hiperexpresión y purificación a homogeneidad de la proteína. Una vez purificada la proteína, se une a partículas magnéticas que comprenden magnetita atrapada en quitosano. Este tipo de partículas magnéticas ha sido utilizado para la inmovilización de detenninadas enzimas y para su posterior utilización como biocatalizadores (CNIOI748113A, CN1904043A, CNI01270352A). La obtención de las partículas magnéticas para la irunovilización enzimática se divide en tres fases, explicadas con más detalle en los ejemplos:
- (a)
- el atrapamiento de la magnetita en la matriz polimérica del quitosano. Para ello, se prepara una solución de quitosano (1-3%) en ácido acético diluido (0,5-3%), en la que se dispersa homogéneamente una cantidad variable de magnetita que puede estar comprendida entre el 25% Y el 50% con respecto al quitosano. La suspensión resultante se añade mediante goteo sobre una solución de NaOH permitiendo la obtención de unas primeras partículas que se mantienen en agitación durante 0,5-3 horas en la mencionada solución de sosa.
- (b)
- el entrecruzamiento de las cadenas poliméricas del quitosano, lo que permite una estabilización de las partículas y el mantenimiento permanente de la magnetita atrapada en el quitosano. Este proceso se consigue mediante incubación de las partículas de la fase anterior, una vez lavadas con agua destilada, en una solución que incluya un agente entrecruzante. Dicho agente entrecruzante puede ser, por ejemplo, epiclorhidrina (2-5% a 50"C) o glutaraldehido (0,0025-2,5%, a 25"C).
- (c)
- la activación de las partículas magnéticas, que favorece la formación de enlaces covalentes de tipo base de Schiff con los grupos e-amino de las Iisinas situadas en la superficie de la enzima. Para ello, se incuban las partículas de la etapa anterior, y lavadas con agua destilada, en una solución tamponada de glutaraldehído (al 2,5% preferentemente) a 25°C. Si el quitosano ha sido entrecruzado con glutaraldehído al 1-2,5% en la fase anterior, no es necesaria esta etapa ya que el soporte se encontraría ya activado.
Para obtener el biocatalizador inmovilizado, se realiza un cuarto paso:
(d) la unión de la enzima nucléosido 2'-desoxirribosiltransferasa. Se consigue poniendo en contacto la enzima purificada con las partículas magnéticas de quitosano funcionalizadas con grupos aldehido. Para ello, una cantidad variable de enzima (J 1-70 ~g) se pone en contacto con las partículas magnéticas (17-50 mg) en un tampón fosfato de pH 7,0 durante 2-5 horas a temperatura ambiente.
Tal y como aparece descrito en los ejemplos de la presente memona descriptiva, el biocatalizador obtenido es eficaz en la síntesis de distintos nucleósidos naturales y no naturales y, dentro de estos últimos, arabinosil-nuclcósidos como el arabinósido de adenina (ara-A) y arabinósido de citosina (ara-e), así como diferentes 2'-fluoro-2 'desoxiribonucleósidos como la 2'-fluoro-2' -desoxiadenosina y la 2'-fluoro-2'desoxicitidina (Figura 1). El arabinósido de arlenina (ara-A), también conocido como vidarabina, es un fánnaco indicado en el tratamiento de la queratoconjuntivitis aguda y queratitis epitelial recurrente causada por los virus del herpes simple tipos 1 y 2 [Superti,
M.G. el al. New advances in anti-HSV chemotherapy. Curro Med. Chern. 15, 900--911, 2008].
El ara-A obtenido sirve, además, como intennediario en la síntesis de la fludarabina (2Fara-A) y su fosfato (Fludara®), análogo utilizado como fánnaco antineoplásico en el tratamiento de la leucemia -linfocítica crónica y en terapias de rescate para ¡infoma no Hodgkin y leucemias agudas [Robak T. el al., Purine nucleoside analogs as irnmunosuppressive and antineoplastic agents: mechanism of aedon and, clinical activity. CUlT. Med. Chem. 13, 3165-3189, 2006]. A partir de ara-A se puede obtener otro arabinosil·nucleósido de interés como la clofarabina (2·cloro-2'·arabino·fluoro-2'deoxiadenosina, CAFdA, CI-F-ara·A), recientemente aprobado para tratar leucemias en pacientes pediátricos (Clolar®. Evolta®) [Zhenchuk A. el al. Mechanisms of anti·cancer action and pharmacology of clofarabine. Biochem Phannacol 78, 1351-1359, 2009]. En cuanto al arabinósido de citosina (ara·C), conocido como citarabina, ha sido el agente terapéutico utilizado desde finales de la década de 1950 para el tratamiento de la leucemia linfoide aguda [Robak T, Wierbowska A. Current and emerging therapies [or acute myeloid leukemia. Clio. Ther. 31,2349-2370, 2009]. Otro de los compuestos sintetizados por la enzima inmovilizada es la 2' ·fluoro·2 ' -desoxicitidina, nucleósido sintético que exhibe una actividad antiviral muy potente frente a la replicación del virus Boma, sin presentar prácticamente citotoxicidad [Bajramovic J.J. el al. 2'-Fluoro-2'-deoxycytidine inhibits Boma disease virus replication and spread. Antimicrob. Agents Chemother. 48, 1422-1425, 2004].
Otro aspecto de la invención, por lo tanto, se refiere al método para sintetizar nucJeósidos naturales y/o no naturales mediante la utilización del biocatalizador inmovilizado de la presente invención a través de una reacción enzimática de transferencia, entre un nuc1eósido donador de residuos glicosilados (que contiene una base púrica y/o pirimidínica) y una base nitrogenada aceptora de residuos glicosilados. De este modo, y empleando dicho biocatalizador, se puede sintetizar enzimáticamente en un solo paso nucleósidos como los que se indican a continuación (Figura 1): 2'-desoxiadenosina a partir
de 2'·desoxiuridina y aden¡na, ara-C a partir de ara-U y citosina, ara-A a partir de ara-U y
adenioa, 2'-fluoro-2' -desoxicitidina a partir de 2'-fluoro-2' -desoxiuridina y citosina, y 2'
fluoro-2' -adenosina a partir de 2' -fluera-2 ' -desoxiuridina yadenina. La síntesis de dichos
compuestos se describe con mayor detalle en los ejemplos que se dan posteriormente. El
biocatalizador permite realizar dichas reacciones de transferencia a distintas temperaturas
(20-800 C) y diferentes valores de pH (4,5-8,5), Y con agitación de tipo orbital o magnética.
En una realización preferida de la invención, las condiciones que se utilizan son 400C y pH
6,5 en las cuales la enzima inmovilizada presenta una mayor tennoestabilidad. Tras
completar la reacción de transferencia, la separación del biocatalizador es sencilla (por
ejemplo, mediante filtración, aplicación de un campo magnético, decantación o
centrifugación), y pennite que el mismo biocatalizador se reutilice en ciclos sucesivos de
reacción.
Breve descripción de los dibujos
Figura 1. Estructuras químicas de varios nucleósidos no naturales descritos en la presente
patente.
Figura 2. Efecto de la temperatura sobre la actividad enzimática de la LrNDT
inmovilizada en partículas magnéticas de quitosano. Se midió la actividad estándar del
biocatalizador inmovilizado a las diferentes temperaturas indicadas.
Figura 3. Desactivación térmica de la LrNDT inmovilizada en partículas magnéticas de
quitosano a 40 oC (O) y 60 oC (e). Se midió la actividad estándar del biocatalizador
inmovilizado después de su incubación en tampón MES pH 6,5 a los distintos tiempos de
incubación y temperaturas indicados.
Modo de realización de la invención
Habiendo descrito la presente invención, se ilustra adicionalmente mediante los siguientes
ejemplos.
Ejemplo 1. Producción y purificación de la enzima LrNDT
La enzima se produjo y se purificó a homogeneidad siguiendo el protocolo descrito por
Femández-Lucas el al. [Fernández-Lucas 1. el al., Laclobacillus reuteri 2'
deoxyribosyltransferase, a novel biocatalyst [or tailoring of nucleosides. Appl. Environ.
- Microbio!. 76,1462-1470,2010] Y utilizando para ello la cepa de E. coJi CECT 7435, que
- contiene el plásmido pT28ndt. que produce la proteína con actividad enzimática nucleótido
- 2'-desoxirribosiltransferasa recombinante de Lactobacillus reuteri (LrNDT), caracterizada
- por SEQ 10 NO: 2 LFernández-Lucas J. el al., Lactobacillus reuteri 2'
- S
- deoxyribosyltransferase, a novel biocatalyst foc tailoring of nucleosides. AppI. Environ.
- Microbio!. 76, 1462-1470,2010]. Para ello, E. coJi CECT 7435 se incubó a 37°C en medio
- líquido LB al que se había añadido kanamicina (50 ~glI), Cuando el cultivo alcanzó una
- densidad óptica de 0,8 a 600nm (00600), se indujo la expresión del gen ndl mediante la
- adición de 0,4 mM IPTG (isopropil-f3-D-tiogalact6sido) y se mantuvo durante 2,5 horas. A
- 10
- continuación, se recogieron las células por centrifugación a 3500 xg durante 15 minutos, se
- resuspendieron en tampón fosfato potásico 10mM, pH 7 (tampón A) y se lisaron mediante
- sonicación. La proteína se purificó por cromatografia utilizando cartuchos Econo-Pac High
- Q (Bio-Rad) equilibrados con tampón A. La columna se lavó con el mismo tampón A y la
- proteína se eluyó en un gradiente linear de O a 0,5 M NaCI en tampón A. Se juntaron las
- 15
- fracciones que contenían la nucleósido 2'-desoxirribosiltransferasa realizando el
- correspondiente perfil cromatográfico de proteína a 280 run, junto con un control
- electroforético en geles de poliacrilamida al 12,5% en presencia de SDS (SDS-PAGE)
- [Laemmli U.K. Claveage of structural proteins during the assembly of the head of
- bacteriophage T4. Nature 227, 680-685, 1970] para comprobar que cada una de las
- 20
- fracciones seleccionadas contenía la enzima parcialmente purificada. Una vez juntadas las
- fracciones, y comprobada ]a actividad nucleósido 2'-desoxirribosiltransferasa, se
- concentraron empleando polietilen glicol 35000 (Sigma), para realizar posterionnente una
- cromatografia de penetrabilidad en una columna Superose 12 Fast Flow (Amersham
- Biosciences), equilibrada con tampón fosfato potásico 50mM a pH 7 (tampón B). Se
- 25
- realizó el correspondiente perfil cromatográfico de proteína a 280 run, junto con un control
- electroforético, para comprobar que cada una de las fracciones seleccionadas contenía la
- enzima pura a homogeneidad. Finalmente, las fracciones que contenían la enzima pura se
- juntaron en un mismo volumen final, y se comprobó la actividad nucleósido 2'
- desoxirribosiltransferasa de dicho volumen, así como su concentración de proteína
- 30
- mediante el método colorimétrico de Bradford [Bradford M.M. A rapid and sensitive
- method for quantification of microgram quantities of protein utilizing the principie of
- protein-dye binding. Anal. Biochem. 72,248-252, 1976].
- Ejemplo 2. Producción de las partículas magnéticas
- Las partículas magnéticas se obtuvieron a partir de un quitosano suministrado por la casa
- comercial Primex (Islandia) con un peso molecular de 644 kDa y un grado de
- desacetilación del 90%, y magnetita (Fe304) suministrada por la casa Sigma. La
- 5
- preparación de las partículas magnéticas de quitosano, y su posterior activación con el fin
- de favorecer la unión covalente de la enzima, se detallan a continuación. A 10 ml de
- solución de quitosano al 3% (P/v) en ácido acético al 2% (v/v), se le añadieron 150 rng de
- magnetita (50% p/p respecto al polímero), y posterionnente se dejó agitar a temperatura
- ambiente hasta que se consiguió la dispersión total de la magnetita en la solución de
- 10
- quitosano. A continuación, se añadieron 3 mL de la suspensión resultante mediante goteo a
- una solución de NaOH 2M (50 mL). Las partículas formadas (de aproximadamente 1.5
- mm de diámetro) se mantuvieron en agitación a temperatura ambiente durante 2 horas.
- Transcurrido este tiempo, las partículas se recogieron mediante filtrado en placa de vidrio
- poroso y se lavaron dos veces con 50 mL de agua destilada sobre la misma placa. A
- lS
- continuación, se procedió al reticulado del quitosano con el fin de aumentar su estabilidad
- fisica y química. Para ello, se dispusieron 2,5 g de partículas en 25 mL de una solución de
- epiclorhidrina (Sigma) al 2% (v/v) disuelta en NaOH 1M. Transcurridas 2 horas de
- incubación a 500C y 200 r.p.m. de agitación en la solución de epiclorhidrina, las partículas
- reticuladas se filtraron en placa de vidrio poroso y posteriormente se incubaron en 50 mL
- 20
- de etanol frío (80% v/v) durante 30 minutos a 4° C con el fin de eliminar restos de
- epiclorhidrina. Tras retirar el etanol, se procedió a lavar las partículas magnéticas con 50
- rnL de agua destilada sobre la placa de vidrio poroso con el fin de eliminar los restos de
- alcohol y otras impurezas. Una vez preparadas, las partículas se activaron con
- glutaraldehído de tal manera que uno de sus dos grupos aldehído se unió a los grupos
- 25
- amino del quitosano, mientras que el otro quedó libre para unir mediante enlace covalente
- moléculas de enzima a través de sus grupos E-amino de la cadena lateral de los restos de
- lisina presentes en su superficie. Dicha activación se realizó de la siguiente manera: 1 g de
- partículas magnéticas de quitosano se sumergió en 4 mL de una solución de glutaraldehído
- (Sigma) al 2,5% (v/v) en tampón fosfato potásico 0.1 M pH 7,0, Y se dejó en agitación en
- 30
- dicha solución durante 2 horas a 25°C. Una vez transcurrido este tiempo de activación, las
- partículas se filtraron sobre placa de vidrio poroso y se lavaron tres veces con 10 rnL de
- agua destilada sobre la misma placa con el fin de eliminar restos de glutaraldehído.
- Ejemplo 3. Inmovilización de la enzima LrNDT en las partículas magnéticas de quitosano
- Se utilizaron las panículas magnéticas de quitosano obtenidas en el ejemplo 2 para la
- inmovilización de la LrNDT purificada como se describe en el ejemplo 1. En este sentido,
- se adicionaron 50 rng de partículas magnéticas de quitosano a 170 J..1L de una solución de
- 5
- LrNDT (0,4 mglmL) en tampón fosfato potásico 100 mM pH 7,0 Y se mantuvieron en
- agitación orbital de 350 r.p.m. durante 5 horas a 25°C. Finalmente, las partículas se lavaron
- 5 veces con 500 J..11 de tampón fosfato potásico 10 mM pH 7,0, retirando el volumen de
- lavado después de 5 minutos de contacto. En estas condiciones de inmovilización, se
- consiguió unir prácticamente toda la enzima al soporte, hecho que se determinó al
- 10
- comprobar que la enzima estaba ausente en los tampones de filtrado y lavado. La eficacia
- de unión de la enzima LrNOT al soporte se determinó valorando la presencia de proteína
- mediante el método de Bradford [Bradford M.M. A rapid and sensitive method for
- quantification of microgram quantities of protein utilizing the principie of protein-dye
- binding. Anal. Biochem. 72, 248-252, 1976] en cada uno de los tampones de filtrado y
- lS
- lavado utilizados. Finalmente, el biocatalizador obtenido se puede mantener a 4°C hasta su
- utilización en la síntesis de los distintos nucleósidos.
- Ejemplo 4. Preparación de diferentes nucle6sidos catalizada por la enzima LrNDT
- inmovilizada en partículas magnéticas de quitosano.
- 20
- A continuación, se incluyen varios ejemplos del procedimiento para la síntesis de
- diferentes nucleósidos mediante el empleo como biocatalizador de la LrNDT inmovilizada
- en las partículas magnéticas de quitosano. En los diferentes ejemplos que se presentan. los
- productos de reacción se pueden cuantificar mediante HPLC utilizando las siguientes
- condiciones: columna ACE 5 CI8-PFP (250 x 4,6 mm); fase móvil: (1) gradiente lineal
- 2S
- durante 10 minutos de acetato de trimetilamonio 0.1 M hasta alcanzar 90/1 O (v/v) acetato
- de trimetilamonio 0.1 M lacetonitrilo, (2) 10 minutos con 90/10 (vlv) acetato de
- trimetilamonio 0.1 M /acetonÍlrilo. El flujo se fija al ml/min (180 bares de presión) y el
- detector UV se ajusta a 260 runo En estas condiciones, los tiempos de retención de las bases
- y nucleósidos detectados son: adenina (Ade), 10.14 min; uracilo (Ura), 5.41 min; citosina
- 30
- (Cyt), 4.14 min; 2'-desoxiadenosina (dAdo), 15.50 min; 2'-desoxiuridina (dUrd), 9.16 min;
- 2'-desoxicitidina (dCyd), 8.22 min; 2'-fluoro-2' -desoxiuridina (2'-FdUrd), 10.3 min; 2'
- lluoro-2' -desoxiadenosina (2' -FdAde): 16.07 min; 2'-lluoro-2' -desoxicitidina (2'-FdCyd),
- 8.7 min; ara·Uracilo (ara U), 8.68; ara-Adenina (ara-A): 13.9 min; ara-Citosina (ara-e):
- 7.78 mino
- Síntesis de 2'-desoxiadenosina (medida de actividad estándar)
- 5
- Antes de utilizar el biocatalizador para la síntesis de otros nucle6sidos no naturales, se
- detenninó su actividad en una reacción estándar de síntesis de 2'·desoxiadenosina a partir
- de 2'-desoxiuridina y adenina. Para ello, se añadieron 17 mg de biocatalizador
- inmovilizado (que contenían 11.7 ~g de LrNDT inmovilizada) a 174 j.lL de una solución
- de 2'·desoxiuridina 16 mM y adenina 16 mM en tampón MES (ácido 2-(N-morfolino)
- 10
- etanosulfónico) 50 mM pH 6.5. La reacción se mantuvo en agitación a 40°C y 350 r.p.m.
- durante 10 minutos. Una vez finalizado el tiempo de reacción, se tomó un alícuota de 50
- ~L del medio de reacción a la cual se añadió 50 f.!L de etanol frío a 4°C. La mezcla se
- calentó a 95°C durante 5 minutos y, tras su posterior centrifugación a 9.000xg durante 2
- minutos, se procedió a analizar cuantitativamente los productos de síntesis (2'~
- 1S
- desoxiadenosina y uracilo), localizados en el sobrenadante, mediante HPLC. En estas
- condiciones de reacción, una unidad internacional de actividad (VI) se define como la
- cantidad de biocatalizador que produce 1 ~mol de 2'-desoxiadenosina por minuto.
- Atendiendo a lo indicado anterionnente, la enzima inmovilizada poseía una actividad de
- 3.14 UIIg de biocatalizador. Empleando la misma reacción estándar, se determinó la
- 20
- temperatura a la cual la enzima inmovilizada presenta una mayor actividad. De esta
- manera, la LrNDT inmovilizada en las partículas de quitosano magnético presenta una
- actividad máxima a 60"C y pH 6.5 (4.57 UI/g, Figura 2), veinte grados superior a la que
- presenta la enzima soluble (que se describe en J. Femández~Lucas el al., AppL Environ.
- MicrobioL 76, 1462 (2010)]. Este aumento en la estabilidad térmica de la enzima debido a
- 2S
- la inmovilización, se comprobó también mediante la incubación a 40°C y 60°C del
- biocatalizador a diferentes tiempos de almacenamiento y posterior medida de su actividad
- residual mediante la reacción estándar. De esta manera, se constató que la enzima
- inmovilizada mantiene el 100% de su actividad después de su almacenamiento en un
- tampón fosfato 10 mM pH 7.0 a 400C durante al menos 148 horas, mientras que a 600C
- 30
- pierde el 50% de actividad al cabo de 60 horas de incubación (Figura 3). Finalmente, se
- comprobó que el biocatalizador inmovilizado se puede utilizar en sucesivas reacciones
- estándar durante al menos 40 ciclos, conservando el 100% de la actividad detectada en el
- primer ciclo de actividad.
Síntesis de ara-C Para la síntesis de ara-C se procedió de la siguiente manera: se afiadieron 32 mg de biocatalizador inmovilizado (con una actividad de 3.14 UVg en la reacción estándar) a 350 ~L de una solución de ara-U 0.5 mM y citosina 0.5 mM en tampón MES 50 mM pH 6.5. La reacción se mantuvo en agitación a 40°C y 350 r.p.m. en un intervalo comprendido entre Oy 96 horas, alcanzando un rendimiento máximo del 17% a las 72 horas.
Síntesis de ara-A Para la síntesis de ara-A se procedió de la siguiente manera: se añadieron 32 mg de biocatalizador inmovilizado (con una actividad de 3.14 UI/g en la reacción estándar) a 350 JlL de una solución de ara-U 0.5 mM y adenina 0.5 mM en tampón MES 50 mM pH 6.5. La reacción se mantuvo en agitación a 40°C y 350 r.p.m. en un intervalo comprendido entre Oy 96 horas, alcanzando un rendimiento máximo del 14% a las 72 horas.
Síntesis de 2' -fluoro-2' -desoxicitidina Para la síntesis de 2'-fluoro-2' -desoxicitidina se procedió de la siguiente manera: se añadieron 32 mg de biocatalizador inmovilizado (con una actividad de 3.14 UIIg en la reacción estándar) a 350 ~L de una solución de 2'-fluoro-2' -desoxiuridina 0.5 mM y citosina 0.5 mM en tampón MES 50 mM pH 6.5. La reacción se mantuvo en agitación a 40°C y 350 r,p.m. en un intervalo comprendido entre O y 72 horas, alcanzando un rendimiento máximo del 67% a las 24 horas.
Síntesis de 2' ·fluoro-2 ' -desoxiadenosina Para la síntesis de 2'·fluoro-2 ' -desoxiadenosina se procedió de la siguiente manera: se añadieron 32 mg de biocatalizador inmovilizado (con una actividad de 3.14 UI/g en la reacción estándar) a 350 ~L de una solución de 2'-fluoro-2'-desoxiuridina 0.5 mM y adenina 0.5 mM en tampón MES 50 mM pH 6.5. La reacción se mantuvo en agitación a 400C y 350 r.p.m. en un intervalo comprendido entre O y 72 horas, alcanzando un rendimiento máximo del 10% a las 24 horas.
Claims (18)
- Reivindicacionesl. Biocatalizador inmovilizado que comprende la enzIma nucleósido 2' -desoxirribosiltransferasa inmovilizada covalentemente en partículas sólidas elaboradas a partir de 5 magnetita (Fe304) atrapada en quitosano.
- 2. Biocatalizador inmovilizado segun la reivindicación 1 en el que las partículas sólidas elaboradas a partir de magnetita (Fe304) atrapada en quitosano están activadas con glutaraldehído.
-
- 3.
- Biocatalizador inmovilizado según cualquiera de las reivindicaciones 1-2 en que la nucle6sido 2'-desoxirribosil-transferasa es de origen procariota.
-
- 4.
- Biocatalizador inmovilizado según la reivindicación 3 en que la enzima inmovilizada es
15 la nucleósido 2'-desoxirribosil-transferasa de Lactobacillus reuteri, caracterizada por SEQ ID NO: 2, o un polipéptido cuya secuencia üene, al menos, un 80% de identidad con SEQ ID NO: 2 y conserva su actividad nucleósido 2'-desoxirribosil-transferasa. - 5. Biocatalizador inmovilizado según la reivindicación 4 en que la nucleósido 2'20 desoxirribosil-transferasa es una enzima recombinante.
- 6. Biocatalizador inmovilizado según la reivindicación 5 en que la nucleósido 2'desoxirribosil-transferasa recombinante procede de la expresión del gen ndt de L. reuteri, caracterizado por SEQ ID NO: 1, o de una secuencia con, al menos, un 70% de identidad2S con SEQ ID NO: 1, recombinante en Escherichia coli.
- 7. Procedimiento para la preparación del biocatalizador inmovilizado definido en las reivindicaciones anteriores que comprende: (a) el atrapamiento de magnetita en una matriz polimérica de quitosano, (b) el entrecruzamiento de las cadenas poliméricas de quitosano,30 (c) la activación de las partículas magnéticas, (d) la unión de la enzima nucleósido 2'desoxirribosil-transferasa a las partículas magnéticas obtenidas en el paso (c).
-
- 8.
- Procedimiento según la reivindicación 7 en el que el paso (a) incluye la preparación de una solución de quitosano al 3% en ácido acético en la que se dispersa homogéneamente un 25-50% de magnetita, con respecto a la cantidad de quitosano; la adición de la suspensión resultante a una solución de NaOH mediante goteo; y la agitación de las partículas obtenidas durante 0,5-3 horas en la solución de NaOH.
-
- 9.
- Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 7-8 en que el paso (b) se realiza con epicIorhidrina al 2-5% a SO°e.
-
- 10.
- Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 7-9 en el que el paso (e) incluye la incubación de las partículas magnéticas en una solución tamponada de glutaraldehído a 25°C.
-
- 11.
- Procedimiento según la reivindicación lOen que la concentración de glutaraldehído en solución tamponada es del 2,5%.
-
- 12.
- Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 7-11 en el que el paso (d) incluye poner en contacto 11-70 J.l.g de nucleósido 2'-desoxirribosil-transferasa purificada con 17-50 mg de las partículas magnéticas del paso (e).
-
- 13.
- Procedimiento según la reivindicación 12 en el que la nucleósido 2'-desoxirribosiltransferasa se pone en contacto con las partículas magnéticas del paso (e) a pH 7 Y durante 2-5 horas a 25'C.
-
- 14.
- Procedimiento para la producción de nucleósidos naturales y no naturales mediante una reacción enzimática de transglicosilación en un solo paso, entre un nucleósido donador de residuos glicosilados (que contiene una base púrica y/o pirimidínica) y una base nitrogenada aceptora de residuos glicosilados, que comprende el uso del biocatalizador definido en las reivindicaciones 1-6.
-
- 15.
- Procedimiento según la reivindicación 14 en que el residuo glicosilado del nucleósido donador es p-D-arabinosa, 2'-desoxi-p-D-ribosa o 2'-fluoro-2' -desoxi-p-D-ribosa, y la base aceptora es citosina o adenina.
-
- 16.
- Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 14-15 en que la reacción se realiza a 40°C.
5 17. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 14-16 en que la reacción se realiza a pH 6,5. - 18. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 14-17 en que, tras la conclusión de la reacción, el biocatalizador inmovilizado se separa de la mezcla de10 reacción mediante aplicación de un campo magnético, filtración, decantación o centrifugación, y es reutilizable en reacciones de transglicosilación sucesivas.
- 19. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 14-18 en que el nucleósido producido está incluido en el siguiente grupo: 2'-desoxiadenosina; arabinosil-nude6sidos15 como el arabinósido de adenina (ara-A) y el arabinósido de citosina (ara-e); 2'-fluoro-2'desoxiribonucleósidos como la 2'-fluoro-2' -desoxiadenosina y la 2'-fluoro-2'desoxicitidina.
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