ES2337455T3 - Constructos de fusion, que contienen secciones activas de ligandos tnf. - Google Patents
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Abstract
Proteína de fusión recombinante, que contiene una secuencia de aminoácidos, que comprende: (a) en la sección de la proteína de fusión situada por el extremo N-terminal, la sección Fc de una inmunoglobulina o una parte de una sección Fc de una inmunoglobulina que mantiene su capacidad de dimerización como componente (A), (b) en la sección de la proteína de fusión más C-terminal la parte extracelular de un ligando TNF o una secuencia parcial de la parte extracelular de un ligando TNF como componente (B) y, si se desea, una zona de transición entre el componente (A) y el componente (B), que contiene un ligador, caracterizada porque, el componente (B) es la parte extracelular del ligando TNF EDA1 o una secuencia parcial de la parte extracelular del ligando TNF EDA1 que presenta por lo menos la secuencia de aminoácidos 246 a 391 de la secuencia nativa de EDA1.
Description
Constructos de fusión, que contienen secciones
activas de ligandos TNF.
En el estado de la técnica, se conocen un gran
número de receptores que pertenecen a la clase de los receptores de
TNF y que cada uno interactúa con por lo menos un ligando TNF como
ligando fisiológico. Los receptores de la familia de receptores de
TNF son proteínas de membrana del tipo I (Nagata et al,
Science, 267: 1449, 1995). Un ejemplo de un sistema de receptor de
TNF/ligando TNF bien investigado es el receptor Fas (Fas, FasR,
CD95), que entra en interacción con el ligando natural Fas y por ese
camino dispara una señal intracelular. En particular, se ha
investigado detalladamente la importancia del sistema FasL/FasR para
la muerte celular específica de la célula. El ligando Fas de la
rata (Suda et al, Cell 75. 1169, 1993; Lynch et al,
Immunity 1: 131, 1994) y la forma humana (Takahashi et al,
International Immunology 6: 1567, 1994) se han clonado a nivel de
ADNc. Como miembro de la familia de los ligandos TNF, FasL pertenece
a la categoría de las proteínas de membrana del tipo II, es decir,
FasL presenta un dominio carboxi-terminal
extracelular y un dominio amino-terminal
intracelular. A la familia de los ligandos TNF pertenecen también,
por ejemplo, las proteínas TNFa (factor de necrosis tumoral a) o
TNF\beta (factor de necrosis tumoral \beta, Eck et al,
Journal of Biological Chemistry 264: 17595, 1989). Cada ligando TNF
se une a su receptor de TNF fisiológico. Entre los otros ejemplos
de ligandos de este tipo del estado de la técnica, se incluyen OX40L
(se une a OX40R), CD27L (se une a CD27R), CD30L (se une a CD30R),
RANKL (se une a RANK-R), CD40L (se une a CD40R),
TRAIL (se une a TRAIL-R1, R2, R3 o R4) o TWEAK (se
une a Fn14).
Sin embargo, las formas nativas de los ligandos
de la familia de proteínas de membrana del tipo II no son aptas
como tales para ser utilizadas en la medicina. Como proteínas de
membrana, no pueden administrarse como tales, en particular también
debido al dominio transmembrana hidrófobo. Por tanto, en el estado
de la técnica, se ha intentado poner a disposición fragmentos de
ligandos TNF que todavía podrían presentar una actividad
fisiológica, pero sin presentar las secciones intracelulares o el
dominio transmembrana. Por ejemplo, se han realizado experimentos
in vitro e in vivo con fragmentos de FasL que
presentaban exclusivamente zonas de los dominios FasL dispuestas en
su forma nativa en la parte extracelular (sFasL, "soluble
FasL", FasL soluble). Sin embargo, los fragmentos de proteína de
este tipo han podido cumplir la función fisiológica de los ligandos,
en particular en el caso de FasL, sólo de forma insuficiente,
observándose en parte incluso efectos inversos no deseados del
dominio de FasL soluble extracelular frente a la proteína
transmembrana FasL, que en las condiciones fisiológicas estaba
presente en su forma activa obviamente como trímero.
En la patente US nº 6 316 256, se han descrito
proteínas de fusión que contienen una parte de un ligando FasL así
como una región Fc. En la patente US nº 6.046.310 se han descrito
también proteínas de fusión con un ligando Fc:Fas.
Bulfone-Paus et al. (Transplantation, 2000,
7: 1386-1391) han descrito una proteína de fusión
con un ligando
IL-2-IgG-Fas.
Fanslow et al. (Seminars in Immunology, 1994, 5:
267-278) han descrito una proteína de fusión
CD40L-Fc. Baum et al. (EMBO J., 1994, 13:
3992-4001) ha descrito una proteína de fusión
murina OX40L-Fc. En el documento WO 01/83525, se han
descrito proteínas de fusión que contienen una sección Fc y una
sección de un ligando de la familia TNF. En el documento WO01/49866,
se han descrito proteínas de fusión que contienen una sección de
una TNF-citoquina y una sección multimerizante de
una proteína seleccionada del grupo constituido por la familia de
proteínas C1q y de las collectinas. Holler et al. ha descrito
proteínas de fusión Fas:COMP y CD40:COMP.
Los documentos citados anteriormente no
describen ninguna proteína de fusión según la reivindicación 1 de
la presente solicitud de patente.
Por tanto, el objetivo de la presente invención
es proporcionar secuencias que no sólo imiten y reproduzcan los
efectos fisiológicos de los ligandos TNF, sino también sean solubles
y, por tanto, aptas para ser utilizadas como agente farmacéutico,
en particular también para la preparación de un medicamento.
Según la invención, se proporcionan constructos
de fusión, es decir, tanto secuencias de nucleótidos como las
secuencias de proteínas derivadas a partir de las mismas, que
permiten en particular también eliminar el fenotipo de las
enfermedades causadas por factores genéticos. Los constructos de
fusión del tipo según la invención presentan una estructura según
la reivindicación 1. La sección de inmunoglobulina (Ig) situada en
el constructo de fusión en el extremo N-terminal, es
decir, el componente (A), no presenta, según la invención, la
región variable característica de las inmunoglobulinas, que es
responsable del reconocimiento de antígenos, sino exclusivamente
dominios o secciones de dominios de la región constante de las
inmunoglobulinas, por ejemplo el dominio o los dominios de
CH_{1}, CH_{2} y/o CH_{3}. Por tanto, según la invención, las
secciones de los dominios CH citados anteriormente pueden unirse
según la invención entre sí como componente (A), es decir, por
ejemplo el dominio CH_{1} y el dominio CH_{3}, con lo cual el
componente (A), al ser utilizado según la invención para la
preparación de un medicamento para el tratamiento en útero, no
debería perder su capacidad de unirse a los receptores Fc
fisiológicos. En caso de ser utilizado para la preparación de un
medicamento para el tratamiento postnatal, la situación puede ser
tal que fuese ventajoso si los constructos según la invención no se
uniesen a los receptores Fc. Por tanto, al ser utilizado para la
preparación de un medicamento destinado a la terapia postnatal,
puede ser preferible si el componente (A) precisamente ya no
presenta la propiedad de unirse funcionalmente a los receptores Fc.
Una pérdida de funcionalidad de este tipo puede conseguirse, por
ejemplo, por inserción, deleción o sustitución de las secuencias Fc
funcionales.
La secuencia de inmunoglobulina presente en el
constructo de fusión según la invención como componente (A) y
constituida por la región Fc es capaz de dimerizar con otro
constructo de fusión. Preferentemente, el componente (A) es capaz
de dimerizar con un constructo de fusión según la invención
preferentemente idéntico, pero, de forma alternativa, también con
otro constructo de fusión según la invención, por ejemplo un
constructo de fusión que contiene otro componente (B). La
dimerización puede realizarse por medio de la región "hinge",
situada en su forma nativa entre los dominios CH_{1} y CH_{2}, a
través de un puente de disulfuro o también a través de una
secuencia introducida artificialmente (o, por ejemplo, también por
sustitución/inserción de una cisteína), que puede dimerizar de
forma covalente (puente de disulfuro) o no covalente (por ejemplo
cremallera de leucina u otras secciones de secuencias aptas para
dimerizar).
En una forma de realización preferida, la región
constante del anticuerpo en la proteína de fusión puede ser de
origen humana, por ejemplo proceder del anticuerpo GI2765420, y
pertenecer a la clase de inmunoglobulinas IgG, en particular de las
clases IgG1, IgG2, IgG3 o IgG4, preferentemente de las clases IgG2 o
IgG4. De forma alternativa, pueden utilizarse también regiones
constantes de inmunoglobulinas de la clase IgG de otros mamíferos,
en particular de roedores o primates, pero pueden utilizarse según
la invención también regiones constantes de las clases de
inmunoglobulinas IgD, IgM, IgA o IgE. Típicamente, los fragmentos de
anticuerpos contenidos en el constructo según la invención
comprenden el dominio CH_{3} de la región Fc o partes del mismo y
por lo menos secciones parciales del dominio CH_{2} de la región
Fc. Opcionalmente, constructos de fusión según la invención que
presentan el dominio CH_{3} y la región "hinge" como
componente (A) para la dimerización también son posibles.
Sin embargo, pueden utilizarse también derivados
de las secuencias de inmunoglobulinas que ocurren en su forma
nativa, en particular las variantes que presentan por lo menos una
sustitución, deleción y/o inserción (aquí denominadas globalmente
con el término "variante"). Típicamente, las variantes de este
tipo presentan una identidad de secuencia con la secuencia nativa
de por lo menos un 90%, preferentemente de por lo menos un 95%, y
de forma particularmente preferida de por lo menos un 98%. Las
variantes particularmente preferidas son variantes de sustitución
típicamente con menos de 10, preferentemente menos de 5 y de forma
particularmente preferida menos de tres sustituciones en
comparación con la secuencia nativa correspondiente. Entre las
sustituciones que pueden citarse como preferidas, se incluyen: Trp
por Met, Val, Leu, Ile, Fen, His, Tir o viceversa; Ala por Ser,
Tre, Gli, Val, Ile, Leu o viceversa; Glu por Gln, Asp, Asn o
viceversa; Asp por Glu, Gln, Asn o viceversa; Arg por Lis o
vicevesa; Ser por Tre, Ala, Val, Cis o viceversa; Tir por His, Fen,
Trp o viceversa; Gli o Pro por uno de los otros 19 aminoácidos
nativos o viceversa.
Para la utilización para la preparación de un
medicamento destinado al tratamiento en útero, se prefieren en
particular las modificaciones del tipo citado anteriormente si la
unión a los receptores Fc en posición membrana queda por lo menos
no perjudicada, o incluso optimizada. En cambio, cuando los
constructos según la invención se utilizan para la preparación de
un medicamento para la terapia postnatal, se prefiere minimizar o
incluso eliminar su capacidad de unión a los receptores Fc. Puesto
que los constructos de fusión según la invención deben contener,
como el componente (A), secuencias que deben conservar su capacidad
de unión para los receptores fisiológicos correspondientes para la
sección constante de las inmunoglobulinas, los aminoácidos en el
fragmento de anticuerpos de un constructo de fusión según la
invención utilizado como componente (A) no estarán modificados en
particular en las posiciones 230 a 240, más preferentemente en las
posiciones 234 a 237 del dominio CH_{2}, o estarán provistos sólo
de las variantes de secuencias que no perjudican el comportamiento
de unión por ejemplo a los receptores Fc. En cambio, se prefieren
sustituciones o deleciones en comparación con la secuencia nativa
de las regiones constantes de las inmunoglobulinas en particular en
las posiciones que dan lugar a una eliminación o introducción de
sitios de glicosilación y una introducción o eliminación de puentes
de disulfuro, que perjudican la estabilidad o solubilidad o mejoran
el paso por la membrana celular, una vez efectuada la unión a los
receptores Fc. Se prefieren en particular las variantes que no
presentan modificaciones de la estructura o sólo modificaciones
mínimas en comparación con el plegamiento tridimensional de la
secuencia nativa. Una identidad estructural de este tipo (y por
tanto homología funcional) puede determinarse registrando espectros
adecuados, por ejemplo un espectro de dicroismo circular de la
secuencia nativa o de la variante correspondiente. La curva de los
espectros, especialmente en un intervalo de longitudes de onda
medido entre 190 y 240 nm, permite determinar la identidad
estructural en todo momento. En este contexto, se hace referencia
en particular a la literatura corriente de los fabricantes de los
aparatos de medición de DC (por ejemplo Jasco,
Japón).
Japón).
En el extremo C-termial del
fragmento de inmunoglobulina, un constructo de fusión según la
invención contiene típicamente, pero no necesariamente, una zona de
transición entre los componentes (A) y (B), que por su parte puede
contener una secuencia de ligador, siendo dicha secuencia de ligador
preferentemente una secuencia peptídica. Dicha secuencia peptídica
puede presentar una longitud comprendida entre 1 y hasta 70, si se
desea, también más aminoácidos, preferentemente entre 10 y 50
aminoácidos, y, de forma particularmente preferida, entre 12 y 30
aminoácidos. En las Figuras 1b a 1j, se han representado ejemplos de
secuencias de transición particularmente preferidas (marcados
adecuadamente en dichas figuras). La zona de ligador de la secuencia
de transición puede ser enmarcado por otras secuencias peptídicas
cortas, que pueden ser por ejemplo puntos de corte de restricción
de ADN. Pueden utilizarse, para esto, todos los puntos de corte de
restricción conocidos por los expertos en la técnica de la biología
molecular. Las secuencias de ligador preferidas son secuencias
artificiales que presentan un gran número de radicales de prolina
(por ejemplo en cada segunda posición de la secuencia de ligador) y
además de estos preferentemente los con un carácter global
hidrófilo. Se prefiere una secuencia de ligador con un contenido de
por lo menos un 30% de radicales de prolina. El carácter hidrófilo
puede ser causado preferentemente por al menos un aminoácido con
carga positiva, por ejemplo lisina o arginina, o carga negativa,
por ejemplo aspartato o glutamato. En total, otra razón por la cual
la zona de ligador presenta preferentemente un gran número de
radicales de glicina y/o prolina es para conferir a la zona de
ligador la flexibilidad y/o rigidez necesarias.
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Sin embargo, los ligadores utilizados pueden ser
también secuencias nativas, por ejemplo los fragmentos de ligandos
de la familia de ligandos TNF que están dispuestos en la zona
extracelular, pero directamente en, es decir delante de, la
membrana celular, si se desea, también después de una sustitución,
deleción o inserción de las secciones nativas. Dichos fragmentos
son preferentemente los 50 AA que siguen a la región transmembrana
o subfragmentos de dichos primeros 50 AA. Sin embargo, se prefiere
una identidad de secuencia de dichas secciones con las secuencias
humanas naturales correspondientes de por lo menos un 85%, de forma
particularmente preferida de por lo menos un 95%, y de forma
especialmente preferida de por lo menos un 99%, con el fin de
limitar la inmunogenicidad de dichas zonas de ligadores en la
proteína de fusión según la invención y no provocar un reacción de
defensa humoral endógena. Para los fines de la presente invención,
la regla general es que la zona de ligador preferentemente no
debería presentar inmunogenicidad alguna.
Sin embargo, alternativamente a las secuencias
peptídicas unidas al fragmento de anticuerpo y al ligando TNF o un
fragmento de un ligando TNF de este tipo a través de enlaces del
tipo amida, también es posible utilizar compuestos del tipo no
peptídico o del tipo seudopeptídico o que se basan en enlaces no
covalentes. Entre los ejemplos de compuestos de este tipo, pueden
citarse en particular ésteres de
N-hidroxisuccinimido y ligadores
heterobifuncionales, tales como por ejemplo
N-succinimidil-3-(2-piridiltio)propionato
(SPDP) o reticuladores similares.
En una proteína según la invención hacia la
parte carboxi-terminal de la zona de transición
sigue el componente (B). Para los fines de la presente invención,
se prefieren fragmentos que presentan en particular la parte de la
sección extracelular del ligando EDA1, situada por la parte
carboxi-terminal más extrema. Con relación a la
secuencia nativa de la sección extracelular de la proteína citada
anteriormente, se hace referencia a las entradas correspondientes
en la base de datos SwissProt
(http://www.expasy.ch/sprot/sprot-top.html).
Con relación a EDA1, se prefieren los fragmentos
de los aminoácidos 140 a 391 o fragmentos más acortados en el
extremo N-terminal (por ejemplo 157, 160, 181 ó 182
a 391), en particular 200 a 391, especialmente 245 a 391 o
fragmentos acortados aún más en el extremo
N-terminal (por ejemplo 246 a 391). Sin embargo, en
la zona N-terminal de las secuencias contenidas en
la proteína de fusión según la invención como componente (B),
pueden utilizarse también todas las secciones de secuencias entre
los intervalos citados anteriormente como preferidos, terminando
una proteína de fusión según la invención en el extremo
C-terminal típicamente con el extremo
C-terminal nativo del ligando TNF EDA1. Sin embargo,
si se desea, por lo menos un aminoácido, típicamente de 2 a 10, en
casos raros también más de 10, aminoácidos pueden haberse eliminado
por deleción en la zona C-terminal del fragmento
extracelular EDA1 utilizado como componente (B) en la proteína de
fusión según la invención.
El ligando TNF EDA1 contenido en la proteína de
fusión según la invención puede presentar igualmente por lo menos
una sustitución, deleción y/o inserción en comparación con la
secuencia nativa, con el fin de desplegar efectos biológicos
deseados, tales como por ejemplo solubilidad, estabilidad o una
inmunogenicidad modificada. Alternativamente a la secuencia del
ligando TNF nativa, en la proteína de fusión según la invención,
puede utilizarse según la invención, como componente (B), una
variante que presenta una identidad de secuencia típicamente de un
75%, preferentemente de un 85%, y de forma particularmente preferida
de por lo menos un 95%, en comparación con la secuencia nativa, y
despliegue la misma acción biológica y por tanto es en este sentido
funcionalmente homóloga. Una identidad estructural de este tipo (y
por tanto homología funcional) puede determinarse registrando
espectros adecuados, por ejemplo un espectro de dicroismo circular
de la secuencia nativa o de la variante correspondiente. La curva
de los espectros, especialmente en un intervalo de longitudes de
onda medido entre 190 y 240 nm permite determinar la identidad
estructural en todo momento. En este contexto, se hace referencia
en particular, a la literatura corriente de los fabricantes de los
aparatos de medición de DC (por ejemplo Jasco, Japón).
Las variantes particularmente preferidas son
variantes de sustitución típicamente con menos de 10,
preferentemente menos de 5 y de forma particularmente preferida
menos de tres sustituciones en comparación con la secuencia nativa
correspondiente. Entre las sustituciones que pueden citarse como
preferidas, se incluyen: Trp por Met, Val, Leu, Ile, Fen, His, Tir
o viceversa; Ala por Ser, Tre, Gli, Val, Ile, Leu o vice versa; Glu
por Gln, Asp, Asn o viceversa; Asp por Glu, Gln, Asn o viceversa;
Arg por Lis o vicevesa; Ser por Tre, Ala, Val, Cis o viceversa; Tir
por His, Fen, Trp o viceversa; Gli o Pro por uno de los otros 19
aminoácidos nativos o viceversa.
La invención se refiere asimismo a la
utilización de una proteína de fusión según la invención para la
preparación y confección de un medicamento para la reversión de
enfermedades provocadas por causas genéticas. Dicha utilización
según la invención es aplicable a todos los vertebrados con
placenta, en particular en la medicina humana y veterinaria. Dicha
utilización según la invención para la preparación de un medicamento
es apta, tras un diagnóstico de una enfermedad provocada por causas
genéticas en el embrión, por ejemplo por corionbiopsia o
amniocentesis, o cuando se sospecha una enfermedad provocada por
causas genéticas, debido a una disposición genética de parientes,
en particular del padre y/o de la madre, para tratar el embrión y
revertir su fenotipo heredo-genético ya como
profilaxis. La utilización para la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento se realiza a través de una proteína de
fusión según la invención, tal como se ha descrito anteriormente, si
se desea, en una confección adecuada, administrándose el
medicamento idóneamente en el momento más temprano posible del
embarazo a la madre o de la preñez al animal madre. Ventajosamente,
la administración de una proteína de fusión según la invención de
este tipo se realiza por vía parenteral, preferentemente por vía
intravenosa o intraarterial.
Según la invención, una proteína de fusión según
la invención del tipo descrito anteriormente se une como componente
(A) a los receptores Fc de la placenta a través de su parte Fc,
llegando de esta manera al embrión tras internalización,
típicamente a través de los vasos de la placenta, que conectan el
embrión a la circulación maternal.
\global\parskip1.000000\baselineskip
La dosificación depende de la enfermedad
genética misma y del momento de administración (es decir, del
estadio de desarrollo del embrión), siendo apto el medicamento
preparado para el tratamiento en el momento más temprano posible
del desarrollo del embrión. El medicamento preparado permite
administrar constructos de Fc:ligando según la invención de este
tipo, por ejemplo Fc:EDA1 o Fc:EDA2, por lo menos una vez, más
preferentemente regularmente durante el primer, segundo y/o tercer
mes del embarazo/preñez, de forma particularmente preferida por
ejemplo cada segundo día durante por lo menos 14 días en caso del
embrión humano, pero, si se desea, también en intervalos mayores,
en función de la dosificación seleccionada.
Sin embargo, en principio, la dosificación de un
constructo de fusión según la invención depende del procedimiento
de tratamiento. En caso de ser utilizado para la preparación de un
medicamento para el tratamiento del desarrollo embrionario, se
recomiendan típicamente dosificaciones del constructo administrado
de menos de una décima parte, preferentemente menos de una
centésima parte y de forma aún más preferida menos de una milésima
parte de la concentración nativa del ligando TNF en un neonato. En
caso de ser utilizado para la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento de un neonato o bebé con la proteína de
fusión según la invención, las dosificaciones serán por lo menos
1/100, más preferentemente por lo menos 1/10 (siempre relativo a la
actividad del ligando TNF) de la concentración de suero típica para
un paciente sano de la misma edad.
La utilización de una proteína de fusión según
la invención para la confección como medicamento en un procedimiento
de este tipo es especialmente preferida cuando se administra un
constructo de fusión según la invención que lleva en el extremo
N-terminal del constructo de fusión una parte Fc y
en el extremo C-terminal una sección del ligando
TNF EDA1 como componente (B), en particular de EDA1 de origen
humano, especialmente una sección extracelular de dichas proteínas
que se extiende por lo menos del aminoácido 200 al aminoácido 391
(EDA1), de forma particularmente preferida del aminoácido 245 a 391
(EDA1). Los constructos de fusión según la invención de este tipo
son aún más preferidos para la utilización correspondiente tal como
se ha representado en las Figuras 1d.
Dichos constructos de fusión según la invención
son aptos para revertir en la medicina veterinaria el fenotipo de
la descendencia de los ratones tabby por tratamiento durante el
embarazo/preñez. Según esto, la utilización de las proteínas de
fusión según la invención para la preparación de medicamentos que
son aptos para dicho procedimiento, es aplicable también al
tratamiento terapéutico de la enfermedad humana análoga, es decir,
una enfermedad genética que se basa en el mismo defecto genético, es
decir, la displasia ectodérmica hipohidrótica ligada a X (XLHED,
síndrome de
Christ-Siemens-Touraine), la forma
más frecuente de displasias ectodérmicas. XLHED se basa en un
defecto del gen ED1, que corresponde en la medicina humana con el
siguiente cuadro clínico: enanismo, demencia de grado distinto,
nariz en silla de montar, anhidrosis, falta de dientes o desarrollo
anormal de los dientes, hipertricosis o alopecia, o disfunción o
falta de glándulas sudoríparas ecrinas, por lo cual las pacientes
afectadas son especialmente sensibles a la hipertermia. Además de su
aptitud para XLHED, los medicamentos según la invención son aptos
también para otras displasias ectodérmicas basadas en otras causas
heredogenéticas.
Por tanto, la presente invención se refiere
asimismo a la utilización de los constructos de fusión según la
invención para la preparación de un medicamento para el tratamiento
de las enfermedades provocadas por causas genéticas en el ser
humano y los animales, siendo aptos en particular los constructos de
fusión según la invención que contienen secciones del ligando TNF
EDA1, por ejemplo, constructos de fusión según la Figura 1d,
generalmente para la preparación de un medicamento destinado al
tratamiento de anomalías de la piel provocadas por causas
genéticas, en particular anomalías de la estructura de la piel o
también anomalías de las estructuras ectodérmicas, tales como por
ejemplo las anomalías del pelo, de los dientes o de las glándulas
(anhidrosis o dishidrosis de diferente génesis). Un ejemplo que
puede citarse es la utilización de los constructos de fusión según
la invención para la preparación de un medicamento en el sector
cosmético, por ejemplo para el tratamiento de alopecia (adquirida
por ejemplo en forma de alopecia areata, alopecia atrófica, alopecia
seborreica o alopecia prematura) o innata (especialmente como
síndrome de la anhidrosis hipotricótica) o hirsutismo. Sin embargo,
los constructos de fusión según la invención pueden utilizarse
también generalmente para la preparación de un medicamento para el
tratamiento de todas las formas de displasias ectodérmicas. Por
tanto, los constructos de fusión según la invención, en particular
los en los que participa EDA1, son aptos para la preparación de un
medicamento para el tratamiento de la estimulación del crecimiento
del pelo, de la inhibición del crecimiento del pelo, el tratamiento
de trastornos de crecimiento de los dientes o también para el
tratamiento de trastornos de la función de glándula, incluidas las
glándulas sudoríparas y/o sebáceas, o también para la formación de
folículos pilosos o para la curación de heridas, en particular para
la curación de heridas de pacientes para asegurar un crecimiento
del pelo adecuado en la parte del pelo afectada. Los constructos de
fusión según la invención de este tipo pueden utilizarse para la
preparación de un medicamento para ser administrado al paciente,
preferentemente en fase postnatal, de forma particularmente
preferida en la terapia humana dentro del primer año de vida, de
forma aún más preferida durante los primeros 6 meses de vida, de
forma aún más preferida durante los primeros dos meses de vida, de
forma aún más preferida durante las primeras 2 semanas de vida, de
forma aún más preferida durante los primeros 3 días tras el
nacimiento, o para ser administrado a la madre embarazada (o al
animal madre preñada), por ejemplo, por inyección en útero. Por
tanto, los constructos de fusión según la invención pueden
utilizarse también para la preparación de un medicamento para el
tratamiento de los síndromes citados anteriormente, enfermedades
genéticas o trastornos durante el desarrollo embrionario por
administración a la madre o al animal madre, con la excepción de
los procesos en los que la identidad genética de la línea germinal
del ser humana queda modificada.
En caso de preparar un medicamento destinado al
tratamiento en particular de la alopecia o en particular para la
curación de heridas, por ejemplo tras quemaduras de la piel o
enfermedades de la piel inflamatorias, por ejemplo durante el
tratamiento de partes de la piel neurodermíticas o afectadas de
forma atópica, en particular del cuero cabelludo, utilizando los
constructos según la invención, también es posible la administración
de los mismos a adultos, si se desea, utilizando sustancias
auxiliares, vehículos o aditivos adicionales, si se desea, también
otras sustancias activas (por ejemplo para el tratamiento de
alopecia: relaxina, sustancias con efecto antiandrógeno, por
ejemplo finasterida, SKL-105657, estrógeno, acetato
de ciproterona, espironolactona, flutamida, minoxidil y/o RU58841),
por ejemplo por administración intravenosa o intraarterial o
subcutánea, tras procesamiento (confección) adecuado, pero también
por vía oral o como crema, loción, ungüento para la aplicación
tópica.
Otro campo de aplicación posible de los
constructos según la invención es su utilización durante la
preparación de tejido de la piel ex vivo. Por ejemplo, los
constructos según la invención pueden utilizarse, por ejemplo en
forma de proteínas, ácidos nucleicos o vectores de expresión para
(re)generar la funcionalidad natural de la piel de pacientes
que sufren de enfermedades de la piel (por ejemplo úlceras
diabéticas) o quemaduras con la formación de glándulas ecrinas,
folículos pilosos y pelo. Esto se consigue adicionando los
constructos según la invención a células o tejidos in vitro.
Por ejemplo, los constructos según la invención pueden utilizarse
dentro del procedimiento tradicional de "skin grafting", es
decir, por ejemplo el tejido de la piel autólogo no enfermo del
paciente, el tejido de la piel alógeno de personas fallecidas o de
donantes ajenos o el tejido de animales puede estimularse, antes de
ser trasplantado, por tratamiento con los constructos de fusión
según la invención para la formación de folículos pilosos, glándulas
ecrinas, por ejemplo dentro de un tratamiento previo o dentro de un
cultivo extracorpóreo, Sin embargo, también es posible aislar
células precursoras multipotentes a partir del tejido de la piel no
enfermo (o de otro tejido) del paciente mismo. Dichas células se
convierten en tejido de la piel adicionando factores de
diferenciación adecuados. Dichas células precursoras multipotentes
pueden transfectarse por transfecciones adecuadas con las secuencias
según la invención o vectores de expresión, o bien a las mismas
pueden adicionarse constructos de fusión durante la formación del
tejido de la piel. Esto permite utilizar los constructos según la
invención en el denominado "tissue engineering" (ingeniería
tisular, cultivo tisular), antes de retrasplantar el tejido
cultivado al paciente. En principio, a tal fin, primero se aísla el
tejido a trasplantar (célula precursora, célula madre, célula
tisular (en particular queratinocitos de la epidermis) o células
madre embrionarias no humanas (autólogas o alógenas) y, a
continuación, se cultiva en un sistema abierto en una matriz
(natural, sintética o xenógena) o estructura biodegradable,
adicionando un suministro suficiente de las células con nutrientes,
oxígeno, factores de crecimiento y los constructos según la
invención y eliminando los metabolitos nocivos. Por ello, la
presente invención se refiere también a un procedimiento in
vitro para el cultivo de tejido de la piel que presenta
glándulas ecrinas y un crecimiento del pelo natural.
La presente invención ser refiere también a los
constructos de ADN recombinantes que forman la base de las
proteínas de fusión según la invención. Para los fines de la
presente invención, los constructos de ADN y de proteínas se
tratarán juntos bajo el término "constructo de fusión". Así,
por ejemplo, un constructo de nucleótidos según la invención puede
codificar para los dominios CH2 y CH3 de IgG como componente (A) y
EDA1, si se desea, ligados por una zona de transición que contiene
un ligador. Por tanto, las secuencias de nucleótidos recombinantes
según la invención que sirven de base codifican para todos los
constructos de fusión de proteínas según la invención que se han
citado anteriormente. Se prefieren en particular las secuencias de
nucleótidos de los constructos de fusión citados en la Figura 1d.
Los constructos de nucleótidos según la invención pueden obtenerse
por medio de procedimientos de clonaje o por síntesis química como
ADNc, ADN genoma o en forma sintética, para los que son aptos un
gran número de procedimientos del estado de la técnica. Con relación
a las secuencias del dominio de la parte Fc de inmunoglobulinas que
pueden ocurrir en un constructo de nucleótidos según la invención,
se hace referencia por ejemplo a la publicación "Sequences of
Proteins of Immunologic Interest", 1st Edition, Kabat et
al., US Department of Health and Human Services, 1991'',
incorporándose dicha publicación con todo su contenido en la
presente memoria de patente por referencia.
Las secuencias contenidas en un constructo de
nucleótidos según la invención estarán típicamente presentes en
segmentos ligados por restricción y ligación. Típicamente, una
secuencia de nucleótidos según la invención contendrá secuencias
controladoras de la expresión que están unidos operativamente a la
secuencia de nucleótidos para una proteína de fusión, e incluirá
promotores, sitios de unión de ribosomas, sitios de poliadenilación,
y/o sitios de terminación de transcripción y, si se desea,
enhancers. Una proteína de fusión según la invención puede
expresarse, por ejemplo en vectores plasmídicos, en células
bacterianas, células de levadura, células de plantas, células de
insectos y preferentemente células de mamíferos por transfección de
segmentos de ADN que contienen elementos reguladores de este tipo,
utilizando, por ejemplo, el procedimiento de fosfato cálcico,
electroporación o técnicas similares. Para la expresión en células
eucarióticas, se utilizarán el promotor y, si se desea, la
secuencia de enhancer por ejemplo de genes de inmunoglobulina, SV40,
retrovirus, citomegalovirus, del factor de elongación 1\alpha,
etc. Las líneas de células huésped preferidas comprenden células
CHO, células COS, células Hela, células NIH3T3 y varias líneas de
células mieloma o hibridoma, incluidas P2/0 y NS/0. La presente
invención se refiere tanto a las secuencias de ADN según la
invención de este tipo que codifican para una proteína de fusión
recombinante según la invención como a los vectores de expresión que
contienen una secuencia de ADN de este tipo y a las células huésped
transfectadas con un vector de expresión según la invención de este
tipo.
El vector plasmídico que contiene un constructo
de ADN según la invención contendrá por lo general un marcador
seleccionable, tales como por ejemplo gpt, neo, hig o DHFR, y un gen
amp, tet, kan, etc., para su expresión en E. coli. Un gran
número de vectores plasmídicos que son aptos para la expresión de
proteínas heterólogas están disponibles en el estado de la técnica.
Ventajosamente, una proteína de fusión según la invención contiene
una secuencia N-terminal, por ejemplo una secuencia
constituida por hemaglutinina y/o secuencias tag y/o por lo menos
otra secuencia "LEADER" en el extremo
amino-terminal de la proteína de fusión, con el fin
de facilitar la secreción de las proteínas de fusión hacia fuera de
la célula, en particular el paso al espacio extracelular o al medio
a través del RE.
Los procedimientos para la construcción de
constructos de nucleótidos según la invención que codifican para
los constructos de proteína según la invención, su ligación con
secuencias de control de expresión y/o su inserción en plásmidos,
su transfección en células y la selección y opcionalmente
amplificación génica de la línea de célula que expresa la proteína
de fusión puede realizarse por medio de procedimientos conocidos de
la ingeniería génica, incluidas la digestión de las enzimas de
restricción, ligación, síntesis de oligonucleótidos y reacción PCR
(Sambrook et al, Molecular Cloning: Laboratory Manual, 3rd
Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001), incorporándose
dicha publicación al respecto con todo su contenido por
referencia.
Una línea de células transfectada que expresa y
secreta una proteína de fusión según la invención se selecciona y
puede, si se desea, cultivar en un medio libre de suero (hibridoma
SFM), reduciendo continuamente la concentración, y puede finalmente
subclonarse. La proteína de fusión según la invención puede ser
purificada después de la selección a partir del medio
preferentemente libre de suero en el que la línea de célula se ha
cultivado. Los procedimientos estándares para la purificación de
proteínas comprenden la filtración, precipitación, cromatografía de
afinidad de proteína A, filtración en gel, cromatografía de
intercambio de iones, procedimientos electroforéticos o similares.
Las fracciones sustancialmente puras de la proteína de fusión con
una homogeneidad comprendida por lo menos entre un 90 y un 95% y
preferentemente por lo menos entre un 98 y un 99% o más alta se
utilizan a continuación preferentemente para su utilización
farmacéutica.
La preparación de un medicamento que contiene la
proteína de fusión según la invención típicamente incluye su
formulación en un vehículo farmacéuticamente aceptable. Típicamente,
dicho vehículo será un vehículo acuoso, utilizándose agua para su
inyección (WFI) o agua en un tampón de fosfato, citrato, o acetato,
etc. y ajustándose el pH a un valor comprendido típicamente entre
5,0 y 8,0, preferentemente entre 6,0 y 7,0. El vehículo
farmacéuticamente aceptable contiene además preferentemente
componentes de sal, por ejemplo cloruro sódico, cloruro potásico u
otros componentes que hacen la solución isotónica. Además, el
vehículo puede contener componentes adicionales, tales como por
ejemplo albúmina de suero humana, polisorbato 80, azúcar o
aminoácidos. Una composición de este tipo según la invención puede
combinarse en forma de una inyección o también de un kit en una
combinación adecuada con un vehículo farmacéuticamente aceptable o
un mediador, tal como por ejemplo agua esterilizada o solución
fisiológica de cloruro sódico, aceites vegetales, aceites minerales,
alcoholes de alto peso molecular, ácidos de grasa de alto peso
molecular, disolventes orgánicos no tóxicos y proveerse, si se
desea, de aditivos adicionales. Entre los ejemplos de aditivos
adicionales aptos, se incluyen cargas (por ejemplo sacáridos
(lactosa, sucrosa, manitol o sorbitol), fosfato cálcico, celulosa o
sus derivados), aglutinantes (por ejemplo almidón, gelatina,
polivinilpirrolidina), estabilizantes, conservantes,
antiadsorbentes, sustancias tensoactivas, colorantes o
aromatizantes, emulsionantes, tampones, agentes isotónicos,
antioxidantes, analgésicos o similares. Preferentemente, en las
formulaciones se incorporan por ejemplo alginato sódico,
polietilenglicol y/o dióxido de titanio. Las formulaciones
correspondientes de un medicamento son conocidas de Remington
(1980), a la que se hace referencia al respecto.
La concentración de la proteína de fusión según
la invención en las formulaciones de este tipo puede variar en un
intervalo amplio comprendido entre 0,001 y 10 mg por ml,
preferentemente en un intervalo comprendido entre 0,5 y 5 mg/ml. La
formulación se inyecta al paciente o a la madre embarazada
preferentemente por vía parenteral, es decir, intravenosa,
intraarterial, subcutánea, intramuscular. Alternativamente, en un
tratamiento por medio de un procedimiento según la invención,
también es posible introducir la formulación directamente en el
sistema de vasos de la placenta del embrión o inyectarla en la bolsa
amniótica.
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A continuación, la invención se ilustrará con
mayor detalle por medio de las siguientes figuras:
La Figura 1 muestra las secuencias de
nucleótidos y aminoácidos de los constructos Fc:ligando.
La Figura 1a representa esquemáticamente a
título de ejemplo las secciones de secuencia de los constructos
Fc:ligando. En la parte N-terminal de una proteína
de fusión codificada por una secuencia de nucleótidos que sirve de
base, se encuentra típicamente un péptido señal, seguido de una
sección Fc de IgG (componente (A)), seguida de una zona de ligador
(opcional), por la parte más C-terminal seguida de
una secuencia de punto de corte de proteasa (opcional), y por la
parte más C-terminal (y en el extremo
C-terminal de un constructo de fusión según la
invención) seguida de una secuencia que típicamente representa una
secuencia parcial de un miembro de la familia de ligandos de TNF
(componente (B)). Dicha secuencia parcial que sirve de componente
(B) incluye otra vez típicamente la parte C-terminal
de la sección extracelular de un ligando de la familia TNF.
Las subfiguras 1b a 1j muestran secuencias
específicas de constructus utilizando varios miembros de la familia
de los ligandos de TNF, es decir, FasL (Figuras 1b y 1c, con y sin
punto de corte de proteasa), EDA1 y EDA2 (Figuras 1d y 1e), TNFa
(Figura 1f), CD40L (Figura 1g), TRAIL (Figura 1h), BAFF (Figura 1j)
y APRIL (Figura 1i). Las secuencias parciales de los miembros de la
familia de ligandos de TNF citados anteriormente son todas de
origen humano y presentan cada una las secciones de secuencias
extracelulares situadas en el extremo C-terminal de
los ligandos nativos hasta el extremo C-terminal
nativo. El dominio Fc situado en el extremo
N-terminal (componente (A)) está unido a la sección
del ligando TNF (componente (B)) situada en el extremo
C-terminal de la proteína de fusión a través de una
región de ligador que contiene los aminoácidos PQPQPKPQPKPEPE.
Además de esto, las secuencias de los constructos de fusión según
la invención representadas en las Figuras 1b, 1i y 1j contienen un
punto de corte de proteasa, cada uno con la secuencia LEVLFQGP, por
lo cual la proteasa PreSCISSION
(Amersham-Pharmacia) es capaz de cortar los
constructos de fusión provistos de un punto de corte de proteasa de
este tipo, permitiendo separar el dominio de inmunoglobulina del
constructo de fusión de la sección de ligando TNF. Sin embargo,
entre las secuencias aptas como puntos de corte de proteasa, se
incluyen todas las secuencias con una longitud de por lo menos 4
AA que pueden ser reconocidas por cualquier proteasa, por ejemplo
una proteasa de cisteína o aspartato. Entre el dominio Fc y el
ligador o el ligador y el dominio del ligando TF, pueden estar
presentes otras secuencias, típicamente cortas, es decir, con una
longitud de dos a ocho aminoácidos. Las secuencias de las
Subfiguras 1b a 1j, contienen los aminoácidos
ARG-SER entre la sección Fc y y el ligador,
mientras que en las Subfiguras 1c, 1d, 1e, 1f y 1h, en el extremo
C-terminal del componente (B), se encuentra por lo
menos el tetrapéptido GSLQ, si se desea, prolongado en el extremo
C-terminal de Q con otros aminoácidos. Los
constructos de fusión que presentan también un corte de fusión de
proteasa, es decir, los constructos de fusión de las Figuras 1b, 1i
y 1j contienen el tetrapéptido citado anteriormente en el extremo
C-terminal del punto de corte de proteasa. El
ligador y el punto de corte de proteasa estarán separados entre sí
típicamente por lo menos por dos aminoácidos, según la figura por el
dipéptido GS. Toda la zona entre el componente (A) y el componente
(B) se denomina zona de transición.
Todos los constructos de fusión de las Figuras
1b a 1j presentan en el extremo N-terminal, es
decir, en el extremo N-terminal del dominio Fc un
pentadecapéptido (MAIIYLILLFTAVRG), que corresponde en los casos
representados a una secuencia de hemaglutinina. En todos los casos
representados, dicha secuencia señal está unida a la sección Fc del
constructo de fusión a través del dipéptido LD (componente (A)).
Las secuencias unidas de las Figuras 1b a 1j no
enmarcadas corresponden típicamente a puntos de corte de enzimas de
restricción utilizadas para unir los componentes de secuencia
individuales.
Todos los constructos de fusión representados en
las subfiguras se clonaron en un vector de expresión
PCR-3 de mamífero (Invitrogen).
La Figura 2 muestra una representación de
Western Blot en la que se ha representado la purificación del
constructo de fusión Fc:FasL. La proteína purificada (5
\mug/traza) se investigó en condiciones reductoras (+DTT) o no
reductoras (-DTT) en SDS-Page de 12%, utilizando el
constructo de fusión TRAILR2:Fc (es decir, un constructo de un
dominio de inmunoglobulina y de un receptor de TNF) como control en
las trazas indicadas por encima del Western Blot con una marca (+).
A mano izquierda del Western Blot se han indicado marcas del peso
molecular en kDa y a mano derecha del Western Blot se han indicado
con una marca de flecha los pesos moleculares (110 kDa y 57 kDa,
respectivamente) para el constructo de fusión Fc:Fas, que varían,
como es de esperar, en función de la formación de puentes de
disulfuro (sólo en condiciones no reductoras).
La Figura 3 representa el resultado de la
cromatografía de permeación en gel. A tal fin, Fc:FasL (300 \mug
en 200 \mul de PBS) se aplicó a una columna
Superdex-200 equilibrada en PBS y se eluyó con una
velocidad de 0,5 ml/min. El perfil UV se registró "online" a
280 nm y se recogieron fracciones de 0,5 ml en cada caso. La
posición de elución se ha trazado por debajo de la Figura 3, y el
peso molecular (m kDa) y los estándares de calibración se han
indicado por encima del perfil. El peso molecular aparente de los
dos picos de Fc:FasL se derivó de las curvas de calibración
trazadas en la representación derecha de la Figura 3. El resultado
se ha representado por encima de los dos picos (850 kDa y 440 kDa,
respectivamente). Por debajo del perfil, se han representado las
cotas de las fracciones examinadas en su orden de elución.
En la Figura 4, se han representado las fotos
tomadas con microscopio electrónico en el orden de las subfiguras
de FasL (Figura 4a), de ACRP\Delta-FasL (Figura
4b), ACRP-FasL (Figura 4c) y finalmente
Fc-FasL (Figura 4d). Cada una de las subfiguras
individuales contiene preparaciones distintas de las secuencias de
aminoácidos inyectadas en vistas de arriba alternativas, estando
representada por debajo de las grabaciones una interpretación
esquemática de la foto tomada con microscopio electrónico. De las
fotos tomadas con el microscopio electrónico según la Figura 4a se
obtiene un modelo de puntos para FasL (3 ch, es decir, el trímero
esperado del FasL multimerizante), para
ACRP\Delta-FasL (Figura 4b) un modelo en forma de
barra con un extremo en forma de punto, marcando el punto el
componente FasL y la forma en barra el dominio de colágeno de
ACRP\Delta. Según la Figura 4c, para ACRP:FasL se obtiene una
estructura en forma de cerezas gemelas de dos barras conectadas
(dominio de colágeno ACRP30 con la adición del dominio FasL).
Finalmente, por la Figura 4d, puede apreciarse la estructura de
Fc:FasL, donde los puntos claros representan FasL y los puntos
oscuros la parte Fc de IgG1. La línea blanca que conecta las
diferentes subunidades reproduce su conectividad.
La Figura 4e es una representación en forma de
modelo de la estructura tridimensional de un complejo Fc:ligando.
Para el ligando se seleccionó la estructura de linfotoxina A (número
de acceso PDB: 1TNR) y para el componente Fc de IgG 2a (número de
acceso PDB: 1IGT).
La Figura 5 muestra la especificidad de la unión
de los ligandos Fc con sus respectivos receptores. En este caso, la
unión de los ligandos a sus receptores (en forma de la proteína de
fusión constituida por el receptor y la proteína COMP) por medio de
un ELISA, utilizando las siguientes etapas: (a) recubrimiento con
IgG murina anti-humana, (b) adición de los ligandos
Fc correspondientes en la concentración deseada (como sobrenadantes
celulares), (c) adición del constructo de fusión correspondiente
constituida por el receptor y la proteína COMP (que en cada caso
lleva una marca del tipo "tag" y se adicionó también como
sobrenadante celular), (d) adición del anticuerpo monoclonal
anti-tag biotinilado, (e) adición de esteptavidina
ligada a "horse raddish peroxidase" (peroxidasa de rábano
picante, HRP), (f) desarrollo de la coloración del ensayo por
adición del reactivo OPD y medición de la absorbancia a 490 nm.
Por los diagramas representados en la Figura 5,
puede apreciarse claramente que existe una fuerte especificidad de
los constructos de fusión para los receptores de TNF específicos
respectivos de los ligandos (o secciones de ligandos) contenidos en
el constructo según la invención, es decir, de FasL para Fas, de
Trail para Trail R2, de EDA1 para el receptor EDA, y, como era de
esperar, de BAFF y APRIL para el receptor BCMA aquí bifuncional, de
TNF para TNFR2 y de CD40L para CD40R. Esto significa que la
representación como constructo con una parte Fc no repercute en el
comportamiento de unión del componente (B) de un constructo al
receptor correspondiente.
La Figura 6 representa los resultados de los
experimentos de unión con Fc:BAFF. Según la Figura 6a, células BJAB
(células BAFF-R positivas) y células
HED-293 (células BAFF-R negativas)
se incubaron en un volumen final de 100 microlitros con 0,05, 0,2,
0,5, 2,5, 20 ó 50 \mul de sobrenadantes celulares que contenían
Fc:BAFF. El Fc:BAFF unido se identificó por medio de un anticuerpo
antihumano conyugado con PE y análisis de FACS. El resultado de una
cuantificación de la fluorescencia media (MFI) se muestra en la
representación derecha de la Figura 6a. Tras el análisis de las
aplicaciones directas de las células BAFF-R
negativas y HEK 293, puede apreciarse claramente por la aplicación
secundaria (Figura 6a, extremo derecho) que la fluorescencia media
como medida de la unión a las células en caso de las células BJAB
aumenta claramente, mientras que las células BAFF-R
negativas y HEK-293 no presentan una fluorescencia
media sustancialmente aumentada incluso cuando las concentraciones
de Fc:BAFF según la invención son altas. Esto quiere decir que la
unión de Fc:BAFF no esperada a las células BAFF-R
negativas no se produce, al contrario de la situación con las
células BAFF-R positivas.
En la Figura 6b, se han representado los
resultados de los experimentos de inmunoprecipitación. A tal fin,
células BJAB (5x10^{7} por experimento) se incubaron en 2 ml de un
medio en presencia de 3 \mug de Fc:FasL o de Fc:BAFF durante 15
minutos. Las células se cosecharon, se lavaron en PDS, se lisaron en
un tampón de lisis (que contiene NP-40 al 1%) y se
sometieron a una inmunoprecipitación con
proteína-A-sefarosa. Los IPs y los
extractos celulares totales se analizaron por medio de la técnica de
Western Blot utilizando anticuerpos monoclonales murinos
anti-hBAFF-R. Resulta que las
células BJAB BAFF-R positivas se unen a Fc:BAFF
durante la incubación (traza derecha en la Figura 6b) y, por tanto,
pueden detectarse en la mezcla de IP a través de anticuerpos
adecuados.
En la Figura 7, se ha representado la
citotoxicidad de Fc:FasL, utilizando diluciones en serie de Fc:FasL
según la invención (opcionalmente el material introducido en la
columna, la fracción de 850 kDa y la fracción de 440 kDa, tal como
se ha representado en la Figura 3). Dichas diluciones en serie se
pusieron sobre células Jurkat sensitivas a FasL y se incubaron a
37ºC durante 16 horas. A continuación, la viabilidad de las células
se observó por medio de un ensayo PMS/MTS. Resulta que tanto la
fracción total como las fracciones individuales presentan un perfil
muy similar con relación a la supervivencia de las células.
La Figura 8 muestra las diferencias fenotípicas
entre ratones tabby tratados según la invención con Fc:EDA1 (ver la
Figura 1d) y ratones tabby sin tratar 10 días tras su nacimiento.
Como control servían ratones WT (a mano derecha). A tal fin, a
ratones tabby preñados, se les inyectaron 400 \mug de Fc:EAD1 los
días 11, 13 y 15 de su preñez. Se examinaron las descendencias de
ratones tabby tratados, ratones tabby sin tratar y ratones de tipo
salvaje (WT). La Figura 8a se centra en la apariencia de la parte de
la oreja, en particular en el crecimiento del pelo. El crecimiento
del pelo en los animales tratados corresponde al crecimiento del
pelo en los animales WT. Igual que en los ratones WT, la parte de la
cola de los ratones tratados también presenta tanto una pilosidad
correspondiente como la forma usual. La diferencia de los ratones
sin tratar es directamente obvia.
La Figura 8b muestra imágenes de cortes de
tejido histológicos de la región retroauricular, del lado corporal,
de la cola y de la garra en parafina utilizando una coloración de
hemotoxilina y eosina. Por debajo de la oreja de los ratones tabby
sin tratar puede apreciarse una región calva pronunciada. Con
relación a su fenotipo, los ratones tabby tratados se parecen a los
ratones WT. El lado corporal de los ratones tabby tratados muestra
un aumento del número de los folículos pilosos de tipo salvaje (WT)
frente a los ratones tabby sin tratar. En la zona de la cola, los
ratones tratados presentan la misma pilosidad que los ratones WT. En
cambio, los ratones tabby sin tratar carecen de pelo por la zona de
la cola. En el tejido de la garra de los ratones tratados (centro),
pueden apreciarse, indicadas por flechas, glándulas sudoríparas
igual que en los animales WT. En cambio, los ratones tabby sin
tratar no han desarrollado glándulas sudoríparas.
Las siguientes características se
compararon:
En la Figura 9, se han comparado los resultados
del tratamiento de ratones tabby en útero con el constructo según
la invención según la Figura 1 d y de los animales de control
correspondientes.
La Figura 9a muestra una comparación de ratones
tabby tratados (centro) y de ratones tabby sin tratar (a mano
izquierda) adultos (6 semanas tras su nacimiento). El tratamiento se
realizó tal como se ha representado según el Ejemplo de Realización
4. A mano derecha, se ha incluido la apariencia de ratones sanos
como control. Los animales tratados presentan la misma piel que los
animales WT (también en la parte crítica de la cola), la cola de
los ratones tratados no presenta una apariencia dentellada, el pelo
de los ratones tratados muestra el tipo de pelo "monótrico"
típico en particular para los ratones WT, especialmente un pelo de
cubierta largo monótrico, que está ausente por completo en los
ratones tabby sin tratar.
La Figura 9b compara la estructura de mandíbula
y de dientes de los ratones tabby tratados, no tratados y ratones
WT. Los ratones tabby sin tratar presentan una estructura de
mandíbula anormal, y los dientes también presentan deformaciones,
en particular cúspides poco pronunciados. El tratamiento por medio
del procedimiento según la invención durante el periodo de preñez
(tratamiento del animal madre) ha sido capaz de restaurar la forma
dental natural.
La Figura 9c muestra unos cortes de tejido del
párpado y de la cornea de ratones sin tratar, ratones tabby
tratados según la invención con Fc:EDA1 y animales WT de control. En
los ratones tabby sin tratar, faltan las glándulas Moebius del
párpado de forma característica. Sin embargo, tras un tratamiento
según la invención, dichas glándulas reaparecen. Dicha regeneración
de las glándulas Moebius también evita la queratinización de la
cornea, tal como ocurre en los ratones tabby sin tratar, lo cual
puede apreciarse claramente por el corte de tejido según la Figura
9c.
En la Figura 9d, se han representado los
resultados de las pruebas del sudor, que demuestran que en los
ratones tabby tratados según la invención pueden observarse
glándulas sudoríparas funcionales en la garra, que están
principalmente ausentes en los ratones tabby sin tratar. Glándulas
sudoríparas recuperadas de este tipo tras un tratamiento con
Fc:EAD1 permiten comprobar las reacciones fisiológicas típicas a
estímulos tales como por ejemplo calor y estrés. La prueba del
sudor misma se ha descrito en el Ejemplo de forma de Realización
4.
La Figura 10 representa los resultados del
tratamiento postnatal intraperitoneal de los ratones tabby con el
constructo de fusión según la invención Fc:EDA1 en comparación con
ratones tabby sin tratar y animales WT de control.
En la Figura 10a, se han comparado distintas
partes corporales en los tres grupos de animales citados
anteriormente con relación a su fenotipo. La parte de la piel
detrás de las orejas no presentó pilosidad alguna incluso en los
animales adultos tratados postnatalmente al contrario de los
animales WT. En cambio, una inyección postnatal de Fc:EDA1 permitió
regenerar por un lado casi por completo la pilosidad de la cola
igual que en los animales WT y por otro lado el tamaño de la
abertura de los ojos típica de los animales WT. El tratamiento
postnatal según la invención permitió eliminar casi por completo la
forma de cola "doblada". Además de esto, los cortes de tejido
de la cola colorados con hemotoxilina y eosina muestran tanto un
gran número de folículos pilosos como glándulas sebáceas asociadas
a los folículos pilosos.
La Figura 10b representa los fenotipos de los
tres grupos con relación a las glándulas sudoríparas de las garras
tanto microscópica como macroscópicamente. Se observaron un gran
número de glándulas sudoríparas en las garras tras el tratamiento
de los animales tabby adultos tratados postnatalmente, que eran
distinguibles de las glándulas sudoríparas de los animales WT, tal
como puede apreciarse por los cortes de tejido de la Figura 10b
colorados con hemotoxilina y eosina. Dichas glándulas sudoríparas en
los animales tabby tratados resultaban funcionales en una prueba
del sudor correspondiente y respondían a estímulos tales como por
ejemplo calor o estrés.
\vskip1.000000\baselineskip
Por tanto, en resumen, puede constatarse que la
reversión del fenotipo observada tras el nacimiento - en caso de un
tratamiento en útero - ya no desaparece en el animal adulto igual
que las reversiones del fenotipo que ocurren tras un tratamiento
postnatal con las sustancias según la invención en el animal joven
se mantienen también en el animal adulto.
A continuación, la presente invención se
ilustrará con mayor detalle haciendo referencia a los siguientes
ejemplos de formas de realización.
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1. Ejemplo de Forma de Realización
1
Las proteínas de fusión según la invención
preferidas se componen de una parte Fc de inmunoglobulina humana
(componente (A)), en la que la secuencia de ADN que sirve de base no
contiene el codón de parada del fragmento de inmunoglobulina, y de
una sección C-terminal de un fragmente de una
familia de ligandos de TNF (componente (B)) (con el codón de parada
de la secuencia de ADN que sirve de base). Las proteínas de fusión
según la invención preferidas presentan la siguiente estructura: en
el extremo N-terminal, se encuentra un péptido
señal, luego siguen una sección Fc, por ejemplo de IgG, una zona de
transición, que contiene una zona de ligador y un punto de corte de
proteasa y una sección C-terminal del ligando TNF
EDA1. Una representación esquemática de una proteína de fusión
según la invención se ha representado en la Figura 1d.
Para la preparación de una proteína de fusión
según la invención, por ejemplo de una proteína de fusión que
presenta una estructura preferida según la Figura 1d, se clonaron
constructos de ácido nucleico en vectores de expresión de mamíferos
y se expresaron en líneas celulares de riñón humanas embrionarias
estables (en células HEK-293 o CHO (Chinese hamster
ovary)). Las proteínas de fusión recombinantes secretadas se
obtuvieron a partir del medio acondicionado por cromatografía de
afinidad sobre una columna de
proteína-A-sefarosa. Los
rendimientos eran de varios mg por litro del medio utilizado.
\newpage
2. Ejemplo de Forma Realización
2
La caracterización bioquímica de Fc:FasL se
realizó por análisis de SDS-PAGE, que dio un peso
molecular aparente de 57 kDa y aproximadamente 110 dDa en
condiciones reductoras y no reductoras, respectivamente. Esto
demuestra la presencia de dímeros (2 ch) unidos a través de puentes
de disulfuro, tal como era de esperar de proteínas de fusión que
contienen Fc y una "región hinge" (ver también la Figura
2).
Una investigación a tal efecto por cromatografía
de permeación en gel demostró que se eluyeron dos picos bien
definidos de Fas:FasL con un peso molecular aparente de
aproximadamente 440 kDa (pico principal) y aproximadamente 850 kDa
(pico secundario) (ver la Figura 3). Suponiendo una forma globular
de Fc:FasL, la estructura multimérica calculada de FasL era de 7,7
(7,7 ch) para la especie principal en el perfil de elución. En caso
de una proteína globular que no corresponde al tipo ideal, este
cálculo se basa con gran probabilidad en una sobreestimación del
peso molecular, con lo cual un estructura de ligando dimérica (6 ch)
sería absolutamente posible. La forma de Fc:FasL, que corresponde
al pico de 440 kDa, se examinó por microscopia electrónica,
utilizándose para fines comparativos FasL (3 ch), ACRP30:FasL
oligomérico (6+ ch) y una mutante de deleción de ACRP30:FasL, es
decir, ACRP\Delta-FasL (3 ch). FasL (3 ch)
presenta una forma similar a una pelota (ver la Figura 4a),
ACRP\Delta-FasL presenta una forma similar a una
pelota con un "mango" (ver la Figura 4b) y ACRP30:FasL parece
una "cereza gemela", lo cual coincide como resultado con una
estructura de FasL dimérica (6 ch) (ver la Figura 4c).
Normalmente, Fc:FasL adopta una estructura
anular con 5 "pelotas" o una estructura abierta con 5
"pelotas" (ver la Figura 4d). Esto corresponde otra vez a un
FasL dimérico (6 ch), siendo las dos pelotas FasL y los tres
pelotas restantes los componentes Fc de IgG (3 dímeros de
polipéptido: 6 ch). Una representación en forma de modelo de un
ligando de Fc se desarrolló utilizando la estructura cristalina
conocida de linfotoxina a (un miembro de la familia de TNF) y del
componente Fc de IgG2a (números de acceso PDB 1TNR y 1IGT), en la
que la zona de ligador se ha trazado como línea continua (ver la
Figura 4e). Esto demuestra claramente que los ligandos y las partes
Fc son aproximadamente de tamaños similares, coincidiendo con la
estructura de 5 pelotas observada de Fc:FasL. En total, estos
resultados indican que el pico de 440 kDa de Fc:FasL es un FasL
dimérico (6 ch).
En la presente memoria, "ch" representa
"chain" y por tanto refleja el número de cadenas del ligando
TNF (por ejemplo APRIL, FasL, BAFF, EDA o Tweak) en la molécula
(independientemente del hecho de si se considera una proteína de
fusión o no). Si un ligando TNF está presente en forma trimérica,
presentará tres cadenas (3 ch), mientras que un dímero de un
ligando (por ejemplo, a través de la construcción Fc según la
invención) comprenderá 6 cadenas de ligando (6 ch).
La caracterización de las secuencias de
proteínas de fusión según la invención restantes representadas en
las Figuras 1b a 1j se realizó de forma análoga.
\vskip1.000000\baselineskip
3. Ejemplo de Forma de Realización
3
Según la invención, se desarrolló un ensayo
basado en ELISA para investigar las propiedades biológicas de los
constructos de Fc:ligando, es decir, su unión a sus receptores
respectivos. En dicho ensayo, se captaron los constructos de
Fc:ligando en primer lugar con un anticuerpo monoclonal murino
antihumano de IgG. En una segunda etapa, se fusionaron los
receptores solubles con el dominio de oligomerización del
"cartilage oligomeric matrix proteína" (COMP) (ver los
documentos DE 19963859 y DE 10122140, que cada uno con todo su
contenido se incorporan en la presente memoria de patente por
referencia), y se adicionó una secuencia "flag". Los receptores
con sus ligandos unidos se identificaron a través de sus marcas
"flag-tag" respectivas (ver la Figura 5). Este
procedimiento modificado de un ensayo ELISA demostró que los
constructos de Fc:ligando según la invención se unen efectivamente
a sus receptores nativos respectivos, es decir, que no pierden su
capacidad de unión como resultado de la estructura del constructo,
realizándose la unión con una alta selectividad.
Además, fue demostrado según la invención que
los constructos de Fc:ligando también son capaces de unirse a los
receptores endógenos expresados en superficie. Experimentalmente, ha
podido demostrarse que los constructos Fc:BAFF marcan las líneas
celulares BJAB BAFF-R positivas en función de la
dosificación, pero no lo hacen con la línea celular Jurkat
BAFF-R negativa (ver la Figura 6a). Además, ha
podido demostrarse que Fc:BAFF es capaz de inmunoprecipitar
específicamente el receptor endógeno BAFF de las células BJAB (ver
la Figura 6).
Además, se investigó la citotoxicidad de Fc:FasL
sobre una línea celular Jurkat sensible a FasL. Fc:Fasl resultó ser
altamente citotóxico para las células Jurkat con un IC_{50} de 1
ng/ml (ver la Figura 7). Se halló también que no existen
diferencias significativas con relación a la actividad específica
entre la preparación total de Fc:FasL y de la forma dimérica de
Fc:FasL (6 ch) aislada en el pico de 440 kDa o la forma oligomérica
de Fc:FasL (12 ch) identificada en el pico de 850 kDa. Estos
resultados demuestran que el FasL dimérico (6 ch) ya es una
molécula completamente activa y que los complejos más grandes ya no
aumentan dicha actividad.
\vskip1.000000\baselineskip
4. Ejemplo de Forma de Realización
4
Se ensayaron las proteínas de fusión Fc:FasL y
Fc:EDA in vivo.
La inyección de Fc:FasL en ratones dio el
resultado de que dicha proteína de fusión es citotóxica in
vivo.
Constructo de fusión Fc:EDA: EDA es un miembro
de la familia de ligandos TNF, que es fisiológicamente responsable
del desarrollo y de la función, en particular también de la
morfogénesis, de las estructures ectodérmicas, especialmente de las
glándulas sudoríparas, del pelo y de los dientes como estructuras
endoteliales del ectodermo. Viceversa, es conocido que las
disfunciones de EAD provocan en el ser humano el cuadro clínico de
(XL)HED, mientras que en los ratones la disfunción da lugar
al denominado fenotipo tabby, caracterizado sustancialmente por (i)
una estructura anormal de la piel, (ii) ausencia de los distintos
tipos nativos de pelo, (iii) pérdidas de pelo en la cola y en la
zona de la piel detrás de las orejas, (iv) ausencia de glándulas
sudoríparas en las garras, (v) formación de dientes y denticiones
anormales, (vi) torsiones características en la punta de la cola,
(vii) falta de las glándulas Moebius en el párpado, que secretan una
película delgada para proteger la cornea de quedarse seca, por
tanto queratinización de la cornea)
y otras glándulas, (viii) tamaño reducido de la abertura de los ojos y (ix) poco aumento de peso en los ratones jóvenes.
y otras glándulas, (viii) tamaño reducido de la abertura de los ojos y (ix) poco aumento de peso en los ratones jóvenes.
Según la invención, a ratones tabby hembra se
les inyectaron en útero 400 \mug de Fc:EDA1 los días 11, 13 y 15
de su preñez. La tolerancia con relación a esta proteína de fusión
era excelente, no observándose efectos de contraindicación en los
ratones tratados. Mientras que el tratamiento con Fc:EDA1 no provocó
efecto alguno detectable en los mismos ratones adultos hembra
tratados, se observó una reversión clara y fuerte del fenotipo
tabby en la descendencia de los animales madre preñados tratados.
Dicha reversión era obvia el día 10 tras su nacimiento. El tamaño
de la descendencia de los ratones tabby tratados durante su preñez
era mucho mayor que el de los ratones de control, y su piel era
lisa, negra y brillante (ver las Figuras 8/9). Al contrario de los
ratones tabby, también la zona retroauricular de los ratones tabby
tratados resultó ser pilosa, y sus colas eran normales, sin doblar
y pilosas con muchos folículos pilosos y las glándulas sebáceas
correspondientes, que podían observarse en la piel de la región de
la cola (ver la Figura 8b).
Además de esto, podían detectarse en los cortes
de tejido glándulas sudoríparas ecrinas, que no podían distinguirse
de las glándulas sudoríparas de tipo salvaje correspondientes, en
las garras de ratones tabby tratados, pero en los sin tratar (ver
la Figura 8b). También en los ratones tabby tratados en útero en el
estadio embrionario, dichas glándulas sudoríparas eran todavía
funcionales a su edad adulta. Para determinar la funcionalidad de
las glándulas, se realizó una prueba del sudor: A tal fin, a las
garras de los animales investigados se aplicó una solución de
I_{2} al 3,5% (p/v) en etanol y se sometieron las mismas a un
secado. A continuación, se aplicó una solución de almidón al 50%
(p/v) en aceite mineral. Después de aplicar un calor moderado con un
secador de pelo (5 s), se tomó una foto, los animales se
sacrificaron, y se prepararon cortes de tejido colorados con
hemotoxilina y eosina del párpado y de la cornea.
El fenotipo revertido era estable, como ha
podido comprobarse por análisis de los ratones tabby tratados en su
estado adulto (ver la Fig. 9). Eran significativamente más grandes
que los ratones tabby, y su piel presentó en particular el tipo de
pelo monótrico más largo de los animales WT, que falta por completo
en los ratones tabby. No presentaban sitios calvos en la región
retroauricular, y las garras presentaban glándulas sudoríparas
ecrinas no distinguibles de las de los animales WT. Además, dichas
glándulas sudoríparas eran funcionales (Figura 9a), como fue
comprobado en la prueba del sudor descrita anteriormente. Tras el
tratamiento, las glándulas Moebius, que siempre faltan en los
ratones tabby, estaban presentes otra vez y permitieron la formación
de cornea normal, no queratinizada, lo cual es una prueba de la
funcionalidad de las glándulas Moebius (Fig. 9c). Los dientes de
los ratones tabby tratados presentaban un tamaño normal y el patrón
de cúspides de los animales WT. En los ratones WT, el tercer molar
es pequeño y ausente en los ratones tabby. Dicho tercer molar
también faltaba en los ratones tabby tratados. Los resultados
demuestran que Fc:EDA1 según la invención, al ser administrado a
ratones preñados según la Fig. 1d, puede llegar al embrión en
desarrollo a través de los receptores Fc de la placenta y puede
iniciar en los receptores EDA la inducción de la formación
estructuras epiteliales nativas. Con relación a esto, es muy
probable que la dimerización de EDA1 (6 ch) es de importancia
central, puesto que las investigaciones genéticas y bioquímicas han
indicado que, tras la inducción y establecimiento de las
estructuras epiteliales en el embrión en desarrollo, ya no es
necesario para el mantenimiento del fenotipo nativo revertido
administrar al animal adulto EDA funcional.
\vskip1.000000\baselineskip
5. Ejemplo de Forma de Realización
5
En este ejemplo, se investigó hasta qué punto
los síntomas del fenotipo tabby del ratón pueden eliminarse por
medio de una administración tardía, postnatal de Fc:EDA1 según la
invención. Por tanto, a ratones jóvenes se administró por vía
intraperitoneal Fc:EDA1 los días 2 (40 \mug), 4 (40 \mug), 6 (60
\mug), 8 (100 \mug) y 10 (100 \mug) (o en una serie de
experimentos alternativa: los días 5 (40 \mug), 7 (60 \mug), 9
(60 \mug), 11 y 13 (100 \mug cada uno) tras el nacimiento o se
realizó ningún tratamiento en un grupo de control de ratones
tabby.
Los ratones tratados de este modo y los ratones
del grupo de control se investigaron con relación a la presencia de
las siguientes características fenotípicas: (i) cola "doblada",
(ii) pilosidad en la cola o detrás de la zona auricular, (iii)
forma de ojos. Además, en los ratones adultos, se realizó una prueba
del sudor y, en los ratones con una edad de 25 días, se
investigaron cortes de tejido de la garra y de las zonas de piel de
la cola.
También en dicha administración postnatal de
Fc:EDA1, ha sido posible inducir un gran número de los síntomas del
fenotipo tabby, en particular la restauración del pelo de la cola y
de las glándulas sudoríparas. En los ratones tabby tratados (ya el
día 2 tras el nacimiento) con Fc:EDA1, ha podido observarse el pelo
de la cola el día 15 (en lugar de los días 7 a 9 tras el nacimiento
en los ratones WT). En los ratones no tratados hasta el día 5 tras
el nacimiento, se observó la formación del pelo el día 18. En los
ratones tabby tratados, la formación del pelo ocurrió primero en el
lado ventral de la cola. En todos los ratones tabby tratados,
independientemente del día de inicio del tratamiento, la estructura
y densidad del pelo de la cola no se diferenció de las del pelo de
la cola de los animales WT. Dicha formación del pelo retardada en
los ratones tabby tratados puede explicarse perfectamente con la
inducción más tarde de la formación de los folículos pilosos,
disparada por la administración de Fc:EDA1 según la invención. La
alopecia detrás de las orejas no ha podido eliminarse en la serie
de experimentos descrita en este ejemplo de forma de
realización.
Aunque la forma de cola doblada no ha podido
revertirse por completo, la misma se revertió sustancialmente por
medio de la terapia postnatal. La abertura de los ojos de los
ratones tabby tratados quedó aumentada significativamente en
comparación con los ratones no tratados, pero no tan pronunciada
como en los animales WT (Figura 10a). En las garras de los ratones
tabby tratados, se desarrollaron glándulas sudoríparas funcionales,
como ha podido comprobarse en los cortes de tejido de ratones
tratados con una edad de 25 días (Fig. 10b). La funcionalidad de
las glándulas sudoríparas desarrolladas en los animales adultos como
consecuencia del tratamiento ha podido demostrarse en las pruebas
del sudor con animales tabby tratados.
En resumen, puede constatarse que los
experimentos según la invención pueden provocar una reversión casi
completa de un fenotipo causado genéticamente por la ausencia del
ligando TNF EDA. Las curaciones de más éxito han podido observarse
en las ratones tabby tratados ya en útero con la proteína de fusión
recombinante según la invención. Sin embargo, una administración
postnatal de las proteínas de fusión según la invención, por ejemplo
Fc:EDA1, también dio lugar a una curación de éxito notable en los
animales que presentaban este genotipo, es decir, a una reversión
(parcial) del fenotipo, en particular al desarrollo de glándulas
sudoríparas (especialmente en las garras), a la formación de pelo
en la cola y a un aumento de la abertura de los ojos.
Claims (18)
1. Proteína de fusión recombinante, que contiene
una secuencia de aminoácidos, que comprende: (a) en la sección de
la proteína de fusión situada por el extremo
N-terminal, la sección Fc de una inmunoglobulina o
una parte de una sección Fc de una inmunoglobulina que mantiene su
capacidad de dimerización como componente (A), (b) en la sección de
la proteína de fusión más C-terminal la parte
extracelular de un ligando TNF o una secuencia parcial de la parte
extracelular de un ligando TNF como componente (B) y, si se desea,
una zona de transición entre el componente (A) y el componente (B),
que contiene un ligador,
caracterizada porque, el componente (B)
es la parte extracelular del ligando TNF EDA1 o una secuencia
parcial de la parte extracelular del ligando TNF EDA1 que presenta
por lo menos la secuencia de aminoácidos 246 a 391 de la secuencia
nativa de EDA1.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Proteína de fusión recombinante según la
reivindicación 1, caracterizada porque el componente (B)
contiene la secuencia de aminoácidos 140-391,
157-391, 160-391,
181-391, 182-391,
200-391 ó 245-391 de la secuencia
nativa de EDA1.
3. Proteína de fusión recombinante según la
reivindicación 1 ó 2, caracterizada porque el componente (A)
presenta la región "hinge", el dominio CH2 y el dominio CH3 de
la sección de Fc de una inmunoglobulina de la clase de IgG, en
particular de IgG humana.
\vskip1.000000\baselineskip
4. Proteína de fusión recombinante según una de
las reivindicaciones anteriores, caracterizada porque el
componente (A) presenta la secuencia de aminoácidos
\vskip1.000000\baselineskip
5. Proteína de fusión recombinante según una de
las reivindicaciones anteriores, caracterizada porque la zona
de transición entre el componente (A) y el componente (B) contiene
la secuencia PQPQPKPQPKPEPE.
6. Proteína de fusión recombinante según una de
las reivindicaciones anteriores, caracterizada porque la zona
de transición presenta un punto de corte de proteasa.
7. Proteína de fusión recombinante según una de
las reivindicaciones anteriores, caracterizada porque el
extremo N-terminal de la proteína de fusión
recombinante presenta una secuencia señal, por ejemplo una secuencia
señal de secreción, y/o un marcador del tipo "tag", por
ejemplo "flag-tag" o
"his-tag".
8. Proteína de fusión recombinante según una de
las reivindicaciones anteriores, caracterizada porque el
extremo N-terminal presenta la secuencia
MAIIYLILLFTAVRG.
9. Proteína de fusión recombinante según una de
las reivindicaciones anteriores, caracterizada porque la
secuencia de la proteína de fusión recombinante une seis
componentes (B) funcionalmente entre sí.
10. Complejo de constructos de fusión según una
de la reivindicaciones 1 a 9, caracterizado porque el
complejo presenta 6 cadenas del componente (A).
11. Secuencia de ADN, caracterizada
porque la secuencia de ADN codifica para una proteína de fusión
recombinante según una de las reivindicaciones 1 a 9.
12. Vector de expresión, caracterizado
porque el vector de expresión contiene una secuencia de ADN según la
reivindicación 11.
13. Célula hospededora, caracterizada
porque la célula hospededora se ha transfectado con un vector de
expresión según la reivindicación 12.
14. Medicamento que contiene una proteína de
fusión recombinante según una de las reivindicaciones 1 a 9, un
complejo según la reivindicación 10, una secuencia de ADN según la
reivindicación 11, un vector de expresión según la reivindicación
12 o una célula hospededora según la reivindicación 13.
15. Utilización de una proteína de fusión
recombinante según una de las reivindicaciones 1 a 9, de un complejo
según la reivindicación 10, una secuencia de ADN según la
reivindicación 11, de un vector de expresión según la
reivindicación 12 o de una célula hospededora según la
reivindicación 13 para la preparación de un medicamento destinado
al tratamiento de enfermedades genéticas, en particular de una
displasia ectodérmica, o enfermedades, defectos o anomalías de las
estructuras ectodérmicas, tales como por ejemplo, anomalías del
pelo, de los dientes o de las glándulas, en particular para el
tratamiento de la alopecia o para la curación de heridas.
16. Utilización según la reivindicación 15 para
la preparación de un medicamento destinado al tratamiento de la
displasia ectodérmica, en particular la displasia ectodérmica
hipohidrótica ligada a X.
17. Utilización según la reivindicación 15 para
la preparación de un medicamento destinado al tratamiento de la
alopecia, el hirsutismo, para el tratamiento de heridas o de
disfunciones de las glándulas sudoríparas o sebáceas, o de una
deficiencia de las glándulas sudoríparas o sebáceas.
18. Utilización según una de la reivindicaciones
15 a 17 para la preparación de un medicamento destinado al
tratamiento de la madre/del animal madre durante el embarazo/preñez,
administrándose el medicamento proporcionado de forma parenteral en
una dosificación adecuada.
Applications Claiming Priority (4)
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DE10205368 | 2002-02-10 | ||
DE10205368 | 2002-02-10 | ||
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DE10205583 | 2002-02-11 |
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ES2337455T3 true ES2337455T3 (es) | 2010-04-26 |
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