ES2330078T3 - Acidos nucleicos que codifican polipeptidos poliepitope. - Google Patents
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Abstract
Un ácido nucleico que codifica un polipéptido híbrido cuya secuencia comprende una secuencia señal y (i) los siguientes segmentos de la cepa 16 E6 del virus del papiloma humano (HPV): AMFQDPQERPRKLPQLCTEL (SEQ ID Nº: 64), LLRREVYDFAFRDLCIVYRDGNPY (SEQ ID Nº: 65), y KISEYRHYCYSLYGTTLEQQYNK (SEQ ID Nº: 66), (ii) los siguiente segmentos de la cepa 16 H7 de HPV: TLHEYMLDLQPETTDLYSY (SEQ ID Nº: 67), QAEPDRAHYNIVTF (SEQ ID Nº: 68), y LLMGTLGIVCPICSQKP (SEQ ID Nº 69); (iii) los siguiente segmentos de la cepa 18 E6 de HPV: RRPYKLPDLCTELNTSLQDIEITCVYCKTVLELTEVFEFAFK (SEQ ID Nº: 152), y SVYGDTLEKLTNTGLYNLLIRCLRCQK (SEQ ID Nº: 153), y (iv) los siguientes segmentos de la cepa 18 E7 de HPV: KATLQDIVLHLEPQNEIPV (SEQ ID Nº: 154), HTMLCMCCKCEARI (SEQ ID Nº: 155), y AFQQLFLNTLSFVCPWC (SEQ ID Nº: 156), Siempre que el polipéptido híbrido no comprenda una secuencia idéntica a la secuencia de bien la proteína E6 entera, intacta o bien E7 entera, intacta de la cepa 16 ó 18 de HPV.
Description
Ácidos nucleicos que codifican polipéptidos
poliepítope.
Este invento se refiere generalmente a vacunas y
en particular a vacunas de ácidos nucleicos.
Los papilomavirus son virus de ADN sin cubierta
con un genoma circular de doble hebra de aproximadamente 9.000
pares de base. Más de 75 tipos de HPV han sido tipificados a nivel
de ADN, y estos pueden ser agrupados ampliamente en familias en
base de su tropismo tisular.
Evidencias histológicas, moleculares y
epidemiológicas han implicado algunas cepas de HPV en displasia
cervical y cáncer cervical. Muchos estudios apoyan la opinión que
la mayoría de neoplasias intraepiteliales cervicales moderadas y
severas (CIN) contienen ADN de HPV que son detectadas exclusivamente
en el epitelio histológicamente anormal de estas lesiones. La
infección persistente con HPV se considera que es el factor de
riesgo predominante para el desarrollo del carcinoma cervical. El
ADN de HPV se encuentra fácilmente en forma episomal dentro de las
células que exhiben un efecto citopático, si bien el ADN de HPV se
encuentra integrado dentro de los cromosomas de las células
asociadas con la mayoría de las lesiones precancerosas de alto grado
y con el cáncer. Aproximadamente 23 tipos de HPV son encontrados
comúnmente en los programas de cribado anogenital, pero sólo
10-15 están asociados con enfermedades progresivas.
Los tipos 16 y 18 son encontrados comúnmente en asociación con la
displasia cervical y el cáncer cervical.
El papilomavirus contiene nueve marcos de
lectura abierta. Los genes HPV con propiedades de transformación
han sido mapeados en los marcos de lectura abierta E6 y E7. Un
trabajo bioquímico sustancial ha demostrado que la proteína E6 HPV
inactiva la proteína p53, mientras que la proteína E7 interfiere con
la función de la proteína retinoblastoma (Rb). Puesto que el p53 y
Rb son proteínas supresoras de tumores, que funcionan como
inhibidoras de la división celular, su inactivación por E6 y E7
conduce a la célula a entrar en la fase S del ciclo celular. La
expresión de E6 y E7 es suficiente para inmortalizar algunas líneas
de células primarias, y el bloqueo de la función E6 o E7 se ha
demostrado que invierte el estado transformado.
Boursnell y otros publicó un vector virus
recombinante que codifica parte o todas las proteínas E6, E7 de HPV
16 y E6, E7 de HPV 18, (US 5719054, columna 3, líneas
2-35).
El invento está basado, en parte, en el
descubrimiento de que los segmentos polipeptídicos, cada uno de los
cuales contiene uno o más epítopos de unión a anticuerpos o a MHC de
clase 1 o clase II, pueden ser unidos en tándem para formar
polipéptidos poliepítopo, que son procesados proteolíticamente en
las células para liberar los epítopos. Estos polipéptidos híbridos
son útiles para estimular una respuesta inmune, particularmente
cuando se expresa a partir de un ácido nucleico dentro de una célula
presentadora de antígeno (APC).
El invento caracteriza un ácido nucleico que
codifica un polipéptido híbrido cuya secuencia comprende una
secuencia señal y
- (i)
- los segmentos siguientes de la cepa 16 E6 del papilomavirus humano (HPV):
- AMFQDPQERPRKLPQLCTEL (SEQ ID NO: 64),
- LLRREVYDFAFRDLCIVYRDGNPY (SEQ ID NO: 65), y
- KISEYRHYCYSLYGTTLEQQYNK (SEQ ID NO: 66);
- (ii)
- los segmentos siguientes de la cepa de HPV16 E7:
- TLHEYMLDLQPETTDLYSY (SEQ ID NO: 67),
- QAEPDRAHYNIVTF (SEQ ID NO: 68), y
- LLMGTLGIVCPICSQKP (SEQ ID NO: 69);
- (iii)
- los segmentos siguientes de la cepa de HPV18 E6:
- RRPYKLPDLCTELNTSLQDIEITCVYCKTVLELTEVFEFAFK (SEQ ID NO: 152); y
- SVYGDTLEKLTNTGLYNLLIRCLRCQK (SEQ ID NO: 153), y
- (iv)
- los segmentos siguientes de la cepa HPV18 E7
- KATLQDIVLHLEPQNEIPV (SEQ ID NO: 154),
- HTMLCMCCKCEARI (SEQ ID NO: 155), y
- AFQQLFLNTLSFVCPWC (SEQ ID NO: 156),
siempre que el polipéptido híbrido
no comprenda una secuencia idéntica a la secuencia de cada proteína
de longitud completa, E6 intacta o de longitud completa, intacta E7
de las cepas HPV 16 ó
18.
\vskip1.000000\baselineskip
Como se usa aquí, un "segmento" es una
secuencia de aminoácidos que (a) corresponde a la secuencia de una
porción (es decir, fragmento menor que la secuencia total) de una
proteína que está presente de manera natural, y (b) contiene uno o
más epítopos. Para esclarecer, el término "segmento" es usado
aquí para denotar una parte del polipéptido híbrido, mientras que
el término "porción" es usado para denotar la parte
correspondiente de la proteína que está presente de manera natural.
Por "epítopo" se refiere a un péptido que se une al surco de
unión de una molécula MHC de clase I o de clase II o a la región de
unión del antígeno de un anticuerpo. Un codón metionina es
preferentemente incluido en el extremo 5' de esta o de cualquier
secuencia codificante del invento para facilitar la traducción.
Además, el polipéptido híbrido codifica una señal diana, como se
describe con más detalle a continuación.
La relación entre los segmentos y los epítopos
en los polipéptidos híbridos se muestra esquemáticamente en la Fig.
1. El polipéptido híbrido ilustrado se compone de los segmentos 1,
2, 3 y 4, cada uno de los cuales corresponde por separado a una
porción de una proteína que está presente de manera natural. El
segmento 1 puede ser procesado proteolíticamente dentro de una
célula para generar epítopos a, b, y c. Similarmente, el segmento 2
puede ser procesado proteolíticamente para generar epítopos d, e, y
f; el segmento 3 puede ser procesado para generar epítopos g, h, i,
j, y k; y el segmento 4, tras el procesamiento, genera epítopos l,
m, n y o. Los segmentos adyacentes pueden ser contiguos, o pueden
estar separados por un aminoácido separador o un péptido
separador.
El polipéptido puede incluir opcionalmente
segmentos adicionales, como por ejemplo, puede incluir al menos 4,
5, 10, 15, 20, 25, 30, 40, 50, 60, 75, 90, o incluso 100 o más
segmentos, siendo cada uno una porción de una proteína que está
presente de manera natural a partir de un agente patogénico y/o de
un antígeno de un tumor que está presente de manera natural que
puede ser el mismo o diferente a partir de la proteína(s) de
la que los otros segmentos son derivados. Cada uno de estos
segmentos puede ser de al menos 11 aminoácidos de longitud, y cada
uno contiene al menos un epítopo (preferiblemente dos o más)
diferente de los epítopos de los otros segmentos. Al menos uno
(preferiblemente al menos dos o tres) de los segmentos en el
polipéptido híbrido puede contener, por ejemplo, 3, 4, 5, 6, 7, o
incluso 10 o más epítopos, particularmente epítopos de unión a MHC
de clase I o clase II. Dos, tres o más de los segmentos pueden estar
contiguos en el polipéptido híbrido: es decir, estar unidos extremo
con extremo, sin espaciador entre ellos. Alternativamente,
cualquiera de los dos segmentos adyacentes puede estar unido por un
aminoácido espaciador o un péptido espaciador.
Cuando el polipéptido híbrido es introducido en
una célula, es procesado proteolíticamente en al menos alguno de
sus epítopos constituyentes. Al menos algunos de los epítopos
generados a partir de los segmentos en el polipéptido pueden unirse
a las moléculas MHC de clase I o MHC de clase II presentes en la
célula, aunque algunos de los epítopos pueden ser específicos para
las moléculas MHC de clase I o clase II presentes sólo en otras
células. Los epítopos pueden alternativamente ser epítopos de
células B, que provocan respuestas inmunes mediadas por anticuerpos
tras la unión a los receptores de anticuerpos en la superficie de
una célula B.
Un segmento dado dentro del polipéptido híbrido
no necesita ser de una longitud especifica, mientras sea lo
suficientemente largo para generar al menos un epítopo, por ejemplo,
2, 3, 4, 5, o mas epítopos y es al menos 11 aminoácidos en
longitud. Por ejemplo, un segmento dado puede tener una longitud de
al menos 12 aminoácidos, por ejemplo, al menos 13, 14, 15, 20, 25,
30, 40 ó 50 aminoácidos. Un segmento dado corresponde a una proteína
particular que está presente de manera natural si cualquiera de los
11 aminoácidos consecutivos (o más) del segmento son encontrados en
exactamente el mismo orden en una porción de la proteína que está
presente de manera natural. El segmento es preferiblemente menor de
100 aminoácidos (menor e 95 aminoácidos para la proteína E7 de la
cepa HPV16) y preferiblemente menor de 70 o menor de 50 aminoácidos
(por ejemplo, 20-50). En una realización, es menor
de 15. Los segmentos dentro del polipéptido poliepítopo pueden ser
dispuestos en cualquier orden dentro del polipéptido. El
polipéptido híbrido preferiblemente no contiene una secuencia
idéntica a la secuencia de bien E6 de longitud completa, de la
proteína intacta o E7de longitud completa, intacta de la cepa HPV
16 ó 18. Las secuencias de estas proteínas se pueden encontrar en el
sitio web
(ftp://ftp-t10.lanl.gov/pub/papilloma/SWISS-PROT-files/Human-
papilloma/HPV16.swp) y (ftp://ftp-t10.lanl.gov/pub/papilloma/SWISS-PROT-files/Human-papilloma/HPV18.swp)
como se ve a 7 de Diciembre de 1999.
papilloma/HPV16.swp) y (ftp://ftp-t10.lanl.gov/pub/papilloma/SWISS-PROT-files/Human-papilloma/HPV18.swp)
como se ve a 7 de Diciembre de 1999.
Los segmentos adicionales pueden ser derivados
de un antígeno tumoral o proteínas de antígeno que está presente de
manera natural de un agente patogénico. Como se usa aquí, "agente
patogénico" se refiere a un virus o microorganismo que causa
enfermedad en un mamífero. Por "antígeno tumoral" se refiere a
una proteína o epítopo que se expresa o en una célula tumoral y no,
o en menor grado, en una célula que es el homólogo no tumoral de la
célula tumoral. Dichos antígenos tumorales sirven con frecuencia
como marcadores para diferenciar las células tumorales de sus
homólogos normales. Los ejemplos de los antígenos tumorales se
presentan en la Tabla 1, tal como una proteína codificada por el
gen Her2/neu, el gen del antígeno específico de próstata, el
antígeno de melanoma reconocido por el gen (MART) de las células T,
o el gen del antígeno del melanoma (MAGE). Ejemplos de proteínas de
los agentes patogénicos incluyen proteínas expresadas de manera
natural a partir del genoma de un virus, por ejemplo, un virus que
infecta crónicamente células, tales como el papilomavirus (HPV),
virus de la inmunodeficiencia (HIV), virus del herpes simple (HSV),
virus de la hepatitis B (HBV) o el virus de la hepatitis C (HCV);
una bacteria, tal como micobacteria, Helicobacteria spp, por
ejemplo, Helicobacter pylori, o Chiamydia spp; un
hongo; o un parásito eucariota, tal como la especie
Plasmodium.
Una lista representativa de los epítopos de
unión de clase I de proteínas apropiadas, cualquiera de las cuales
puede ser incluida en los polipéptidos poliepítopo del invento, se
incluye en la Tabla 2.
El polipéptido híbrido puede contener un primer
epítopo a partir de una proteína HPV y un segundo epítopo que no se
traslapa con el primer epítopo y es de la misma proteína HPV o de
una diferente. ("Proteína HPV diferente" puede incluir un
homólogo no idéntico de la primera proteína, derivado de una cepa
HPV diferente que de la que la primera proteína es derivada). El
primer epítopo se une a un primer alotipo de un complejo mayor de
histocompatibilidad (MHC) de clase I y el segundo epítopo se une a
un segundo alotipo de clase I MHC diferente del primer alotipo de
clase I MHC.
Puesto que el polipéptido híbrido está hecho de
fragmentos de proteína de las diferentes proteínas, o de los
fragmentos no contiguos de una proteína simple, unido opcionalmente
por aminoácidos espaciadores o secuencias espaciadoras y unido
opcionalmente a un residuo de metionina o a una señal diana (véase
más adelante), la secuencia de este polipéptido híbrido no es
idéntica a la secuencia aminoacídica de cualquiera de las proteínas
presentes de manera natural o a un fragmento de una proteína que
está presente de manera natural. Los epítopos se incluyen a partir
de la proteína E7 o E6 HPV de la cepa HPV 16 ó 18, otras cepas HPV
son 31, 33, 43 ó 45. Así pues, el polipéptido híbrido incluye
segmentos de cada una de las proteína de la cepa HPV 16 E6 y E7, y
segmentos de cada una de las proteínas E6 y E7de la cepa HPV 18. El
polipéptido híbrido es al menos 236 aminoácidos en longitud y puede
ser, por ejemplo, al menos 250 o 300 aminoácidos.
Los alotipos MHC de clase I a los que los
epítopos en el polipéptido híbrido se unen pueden ser cualquier
alotipo de clase I humano, por ejemplo, HLA-A1,
HLA-A2, HLA-A3,
HLA-A11, y/o HLA-A24. Un epítopo
dado puede ser promiscuo, es decir, se une a más de un alotipo.
El polipéptido híbrido puede incluir también un
tercer epítopo de una proteína HPV. Este epítopo, que puede ser
derivado de la misma proteína HPV o diferente como el primer epítopo
y/o segundo, se une a un tercer alotipo MHC de clase I diferente
del primer y segundo alotipo MHC de clase I. Puede, por supuesto,
unirse también al primer y/o segundo alotipo MHC de clase I, además
de al tercero. El polipéptido híbrido puede incluir, por ejemplo,
al menos 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 15, 25, 35, 40, 50, 60, 80 o incluso
100 o más epítopos de unión con alotipos MHC de clase I a partir de
una o más proteínas HPV. Algunos de estos epítopos pueden
solaparse.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
A menos que se especifique lo contrario, los
epítopos en los polipéptidos híbridos del invento se pueden solapar
en cierto grado, por ejemplo, el primer epítopo puede solapar (es
decir, compartir al menos un residuo aminoacídico, y compartir
todos excepto un residuo) con el tercer epítopo, o pueden no
solaparse.
El polipéptido incluye una señal diana. Una
señal diana es un péptido que dirige el transporte intracelular o
la secreción de un péptido que es adjuntado. La señal diana puede
ser al final del amino, por ejemplo, una secuencia señal o el final
carboxi, o dentro del polipéptido híbrido, mientras funcione en ese
sitio.
La señal diana puede ser cualquier secuencia
señal reconocida, por ejemplo, una secuencia señal de la proteína
E3 de adenovirus. Una señal diana preferida es el péptido señal de
HLA-Dr\alpha: Met Ala Ile Ser Gly Val Pro Val Leu
Gly Phe Phe Ile Ile Ala Val Leu Met Ser Ala Gln Glu Ser Trp Ala (SEQ
ID No:63).
La señal diana puede ser opcionalmente
modificada para introducir una sustitución de aminoácidos en
la(s)
unión(es) entre la señal diana y el (los) segmento(s) adyacente(s) para promover el corte de la secuencia diana de los epítopos por ejemplo, una peptidasa señal.
unión(es) entre la señal diana y el (los) segmento(s) adyacente(s) para promover el corte de la secuencia diana de los epítopos por ejemplo, una peptidasa señal.
Cualquiera de los segmentos dentro del
polipéptido híbrido puede ser separados de los otros por un
aminoácido espaciador o una secuencia espaciadora.
El ácido nucleico del invento puede codificar un
polipéptido híbrido que incluye un primer epítopo y un segundo
epítopo, en el que el primer epítopo es de la primera proteína HPV y
el segundo epítopo es de una segunda proteína HPV diferente de la
primera proteína HPV, siempre que la secuencia del segundo epítopo
no tenga lugar dentro de la primera proteína HPV, es decir, que
sean derivadas necesariamente de las diferentes proteínas. Las
diferentes proteínas pueden ser de las mismas o distintas cepas de
HPV, por ejemplo, de los tipos 16 y 18. El polipéptido híbrido
puede, por supuesto, incluir epítopos adicionales de las mismas o
diferentes proteínas HPV, o de otros antígenos patógenos o
tumorales.
También dentro del invento está un ácido
nucleico que codifica un polipéptido híbrido que incluye una
pluralidad de epítopos de unión de MHC de clase I de una proteína
HPV (por ejemplo, al menos 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 15, 20, ó
30). La secuencia del polipéptido híbrido entero no es idéntica a la
secuencia de o bien una proteína HPV que está presente de manera
natural o un fragmento de una proteína HPV que está presente de
manera natural, por virtud de inser-
ciones de secuencia, deleciones internas, o sustituciones, completas, por ejemplo, por técnicas de ingeniería genética.
ciones de secuencia, deleciones internas, o sustituciones, completas, por ejemplo, por técnicas de ingeniería genética.
El ácido nucleico codifica un polipéptido
híbrido que incluye una pluralidad de epítopos de unión HLA de una
proteína E7 de cepa HPV 16, una pluralidad de epítopos de unión HLA
de una proteína E6 de cepa HPV 18 y una pluralidad de epítopos de
una proteína E7 de cepa HPV 18. Cada pluralidad de epítopos puede
incluir un epítopo seleccionado del grupo que consiste en un
epítopo de unión A1-HLA, un epítopo de unión
A2-HLA, un epítopo de unión A3-HLA,
un epítopo de unión A11-HLA y un epítopo de unión
A24-HLA y preferiblemente al menos dos o tres
seleccionados de este grupo. Los miembros de cada pluralidad de
epítopos son diferentes de los miembros de cada uno de la otra
pluralidad de epítopos. Cada pluralidad de epítopos puede incluir al
menos dos epítopos de unión A1-HLA, al menos dos
epítopos de unión A2-HLA, al menos dos epítopos de
unión A3-HLA, al menos dos epítopos de unión
A11-
HLA, y/o al menos dos epítopos de unión A24-HLA. Una pluralidad dada puede ser distribuida en más de un segmento.
HLA, y/o al menos dos epítopos de unión A24-HLA. Una pluralidad dada puede ser distribuida en más de un segmento.
El ácido nucleico del invento codifica un
polipéptido híbrido que comprende los segmentos peptídicos de la
Fig. 5 (SEQ ID NO: 157). El polipéptido incluye los segmentos y una
secuencia señal y no comprende una secuencia idéntica a la
secuencia de o bien la longitud completa de E6 intacta o bien la
proteína E7 intacta de longitud completa de la cepa HPV 16 ó
18.
Los segmentos pueden ser procesados para
producir múltiples epítopos. El polipéptido híbrido puede incluir
los segmentos peptídicos de la Fig. 5, así como la secuencia
adicional E7 o E6 HPV. Más preferiblemente, el segmento es menor
que 100, 70, 50, 40, 30 ó 20 aminoácidos. El polipéptido híbrido no
contiene una secuencia idéntica a la secuencia de o bien la proteína
E7 intacta, de longitud completa o E6 intacta, de longitud completa
de la cepa HPV 16 ó 18.
Los ácidos nucleicos descritos anteriormente
pueden ser proporcionados en un plásmido, en un vector viral o
bacterial. Cuando los ácidos nucleicos son usados in vivo, es
preferible usar vectores plasmídicos que contienen los ácidos
nucleicos descritos anteriormente. El vector es preferiblemente un
vector de expresión que contiene una o más secuencias reguladoras
(que pueden incluir un promotor) que permite la expresión en una
célula de interés. La(s) secuencia(s)
reguladora(s) están operativamente unidas a la secuencia que
codifica el polipéptido híbrido, de modo que dirijan la expresión
de la última.
Una célula en la que el ácido nucleico del
invento ha sido introducido (por ejemplo, por transfección o
infección) en la forma del plásmido, vector bacteriano o viral, o
bien de modo transitorio o de modo estable puede ser, por ejemplo,
una célula B, una célula dendrítica (CD), una célula de Langerhans u
otra célula presentadora de antígenos (APC). La célula puede ser
cultivada o por el contrario mantenida, en condiciones que permiten
la expresión del polipéptido híbrido a partir del ácido nucleico,
por ejemplo, del plásmido, que lo codifica.
Como se usa aquí, "ADN aislado" cubre ambos
(1) una secuencia de ADN completa que no está presente dentro de
ningún ADN presente de manera natural, y (2) una secuencia de ADN
completa que no está presente dentro de ningún ADN presente de
manera natural, pero que carece de los genes que flanquean la
secuencia en el genoma del organismo en el que la secuencia está
presente de manera natural. El término por tanto, incluye un ADN
recombinante incorporado en un vector, en un plásmido de replicación
autónoma o en un virus, o en el ADN genómico de un procariota o
eucariota. También incluye una molécula separada, tal como un cADN,
un fragmento genómico, un fragmento producido por una reacción en
cadena de la polimerasa (PCR), o un fragmento de restricción.
El invento incluye además polipéptidos híbridos
codificados por los ácidos nucleicos descritos anteriormente. Los
polipéptidos híbridos descritos aquí pueden incluir opcionalmente un
residuo metionina amino terminal. Los polipéptidos híbridos
descritos aquí pueden también incluir opcionalmente un GLAG (u otro
determinante de anticuerpo monoclonal) o un sitio de reconocimiento
de anticuerpo (por ejemplo, un myc o su tag) localizado
directamente 3' de la última secuencia que codifica el epítopo.
También incluidos en el polipéptido híbrido están los segmentos,
como se trata anteriormente. Al menos alguno de los segmentos
corresponde a las porciones de una o más proteínas presentes de
manera natural. Pueden ser separadas por aminoácidos espaciadores o
péptidos espaciadores.
El polipéptido híbrido descrito aquí puede ser
un polipéptido sustancialmente puro. "Polipéptido sustancialmente
puro" cubre ambos (1) un polipéptido de secuencia completa que no
es idéntica a la de ningún polipéptido presente de manera natural,
y (2) un polipéptido que tiene la secuencia de un polipéptido
presente de manera natural, pero que está separado de estos
componentes (proteínas y otras moléculas orgánicas presentes de
manera natural) que lo acompañan de manerea natural en el contexto
biológico (por ejemplo, células) en el que está presente de manera
natural. Típicamente, el polipéptido es sustancialmente puro cuando
constituye al menos 60%, en peso, de la proteína en la preparación.
Preferiblemente, al menos 75%, más preferiblemente al menos 90% y
más preferiblemente al menos 99%, en peso, de la proteína en la
preparación es el polipéptido.
Los ácidos nucleicos (por ejemplo, vectores
virales, bacterianos o plásmidos) o los polipéptidos híbridos
pueden ser proporcionados opcionalmente en una macropartícula que
incluye también una matriz polimérica. En las realizaciones
preferidas, la matriz polimérica consiste esencialmente en ácido
poliláctico (PLA), ácido poliglicólico (PGA), o un copolímero de
ácido poliláctico coglicólico (PLGA). La micropartícula tiene
preferiblemente un diámetro de, por ejemplo, 0,02 a 20 micrones, o
menos de alrededor de 11 micrones. Una pluralidad de las
micropartículas tiene preferiblemente un diámetro promedio de, por
ejemplo, 0,02 a 20 micrones, menos de alrededor de 11 micrones, o
menos de alrededor de 5 micrones.
Los ácidos nucleicos y los polipéptidos híbridos
descritos aquí pueden ser incorporados alternativamente en
liposomas o complejos de estimulación inmune (ISCOMS) o
suministrados con polímeros presentes de manera natural, polímeros
sintéticos, biopolímeros, lípidos catiónicos, agentes de
condensación, dendrímeros, otros biomateriales, adyuvantes que
contienen aceite, y otros adyuvantes tales como el QS21 o saponina.
Los ácidos nucleicos y los polipéptidos híbridos descritos aquí
pueden ser administrados alternativamente usando cualquiera de los
excipientes de suministro adecuado conocidos en la técnica, o pueden
ser suministrados sin un excipiente de suministro (aparte de la
solución acuosa), por ejemplo, "ADN desnudo".
El invento además incluye una composición
terapéutica que contiene los ácidos nucleicos descritos
anteriormente o polipéptidos, un soporte farmacéuticamente
aceptable, y opcionalmente, uno de los excipientes de suministro
tratados anteriormente.
También se propone un método para generar una
respuesta inmune (por ejemplo, una respuesta de anticuerpos o una
respuesta inmune celular, que incluye una respuesta inmune mediada
por MHC de clase I o de clase II) en un mamífero mediante
administración en el mamífero de los ácidos nucleicos descritos
anteriormente o de los polipéptidos híbridos. Preferiblemente, el
mamífero lleva al menos un alotipo MHC de clase I o II que se une
con un epítopo derivado del polipéptido poliepítopo. El mamífero
puede ser, por ejemplo, un humano, un primate no humano, un perro,
un gato, un conejo, una vaca, un caballo, una oveja, un cerdo, un
ganso, un ratón, una rata, una cobaya o un hámster.
Cuando al menos uno de los epítopos es un
epítopo HPV, los sujetos apropiados para el método incluyen, por
ejemplo, un humano que sufre, o tiene un riesgo de sufrir,
condiloma, por ejemplo, condiloma exofítico, condiloma plano,
cáncer cervical, otras enfermedades cancerosas o estados asociados a
HPV, papiloma respiratorio, papiloma conjuntival, infección por HPV
de tracto genital o tracto anal, o displasia cervical. El ácido
nucleico o el polipéptido híbrido, o el excipiente de suministro
que contiene uno o más de estos compuestos, puede ser administrado
directamente en un tejido mucoso, por ejemplo, vaginal, nasal,
respiratorio bajo, ocular o aplicado en tejido gastrointestinal
(por ejemplo, rectal, cervical o dérmico) del mamífero.
Alternativamente, el ácido nucleico o el polipéptido híbrido, o un
excipiente de suministro que contiene el mismo puede ser
administrado sistémicamente: por ejemplo, intravenoso,
intramuscular, intradérmico, oralmente, subcutáneo, intra arterial,
intra peritoneal o intratecal.
Por "aminoácido espaciador" se refiere a un
residuo único insertado entre dos segmentos vecinos. ("A" y
"B", en ese orden) en un polipéptido del invento, donde el
residuo es diferente del aminoácido que flanquea el extremo amino
de B en las respectivas proteínas de longitud completa de las cuales
A y B fueron derivadas ("X" e "Y", respectivamente). Así
pues, el aminoácido espaciador forma un punto de discontinuidad a
partir de la secuencia A derivada de X y la secuencia B derivada de
Y, en el polipéptido del invento. Típicamente, el aminoácido será
uno de los veinte aminoácidos presentes de manera natural, por
ejemplo, Ala, Leu, Ile, o Gly y en general puede ser cualquier
aminoácido excepto (1) el que flanquea de manera natural el extremo
carboxilo de A en la proteína X, y (2) el que flanquea de manera
natural el extremo amino de B en la proteína Y.
Por "secuencia espaciadora" se refiere a la
secuencia de dos o más aminoácidos insertados entre dos segmentos
vecinos, por ejemplo, "A" y "B", en un polipéptido del
invento. La secuencia del espaciador es diferente de las secuencias
que flanquean el extremo carboxilo de A y el extremo amino de B en
las respectivas proteínas de longitud completa ("X" e
"Y") de las que A y B fueron derivadas. Así pues, la secuencia
espaciadora forma un punto de discontinuidad de ambas secuencias A
derivada de X y la secuencia B derivada de Y en el polipéptido del
invento.
Los ejemplos de las secuencias espaciadoras
incluyen Ala Ala, Ala Leu, Leu Leu, Leu Ala, Leu Ile, Ala Ala Ala,
Ala Gly Leu, Phe Ile Ile, etc. Generalmente, la secuencia
espaciadora incluirá aminoácidos no polares, aunque los residuos
polares tales como Glu, Gln, Ser, His y Asn pueden estar también
presentes, particularmente para las secuencias espaciadoras mayores
de tres residuos. El único límite externo en la longitud total y la
naturaleza de cada secuencia espaciadora deriva de las
consideraciones de facilidad de síntesis, proceso proteolítico y la
manipulación del polipéptido y/o ácido nucleico. No es generalmente
necesario y probablemente no es deseado usar secuencias
espaciadoras mayores de alrededor de cuatro o cinco residuos, aunque
pueden ser, por ejemplo, hasta 6, 8, 10, 15, 20, 30, ó 50 residuos.
Por supuesto, pueden ser incluso mayores de 50 residuos.
Los aminoácidos y las secuencias espaciadoras
son útiles para promover el proceso de liberación de epítopos. Los
espaciadores son típicamente eliminados del polipéptido por un
proceso proteolítico en la célula, junto con cualquier secuencia
entre epítopos dentro de un segmento dado. Esto deja a los epítopos
intactos para unirse con las moléculas MHC o (tras la secreción de
la célula) con los anticuerpos. Ocasionalmente un aminoácido
espaciador o parte de una secuencia espaciadora permanecerá unida a
un epítopo a través del proceso incompleto. Esto generalmente
tendrá un pequeño o ningún efecto en la unión con la molécula
MHC.
Una ventaja del invento es que permite
suministrar epítopos de unión a MHC de clase I o clase II de los
polipéptidos que tienen solo una secuencia parcial de una proteína
de un antígeno patógeno o tumoral. Así pues, los problemas
asociados con la interferencia de la presentación antígena por
proteínas virales o efectos perjudiciales vistos en
sobreexpresiones de las proteínas virales particulares o los
antígenos tumorales, son evitados.
Otra ventaja del invento es que la secuencia de
ácidos nucleicos, o los excipientes de suministro que contienen las
secuencias de ácidos nucleicos, pueden promover respuestas inmunes
asociadas, por ejemplo, IL-12 e
\gamma-interferón (IFN) liberados de los
macrófagos, células NK y de las células T. Por ejemplo, la
fagocitosis de las microesferas que contienen el ADN en general
pueden promover la secreción TNF e IFN por APCs humanas.
Una ventaja adicional del invento es que el
surtido de epítopos dentro de los polipéptidos poliepítopo descritos
aquí aumenta la posibilidad de que al menos uno de los epítopos
será presentado por cada uno de una variedad de alotipos HLA. Esto
permite la inmunización de una población de individuos polimórficos
en el locus HLA, usando un polipéptido híbrido único o un ácido
nucleico que codifica el polipéptido. Los polipéptidos híbridos
pueden ser específicos para un patógeno particular, que incluye dos
o más cepas del mismo patógeno, o pueden contener epítopos
derivados de uno o más patógenos. Además, los polipéptidos híbridos
pueden ser específicos para un antígeno tumoral particular, o
pueden contener epítopos derivados de dos o más antígenos
tumorales.
A menos que se defina lo contrario, todos los
términos técnicos y científicos usados aquí tienen el mismo
significado como se entiende comúnmente por los profesionales con
conocimientos comunes en la técnica a la cual pertenece el invento.
Los métodos adecuados y los materiales son descritos a continuación,
aunque los métodos y los materiales si-
milares o equivalentes a los descritos aquí pueden ser también usados en la práctica o ensayados en el presente invento.
milares o equivalentes a los descritos aquí pueden ser también usados en la práctica o ensayados en el presente invento.
Además, los materiales, los métodos y los
ejemplos son sólo ilustrativos y no intentan ser limitantes.
Otras características y ventajas del invento
serán aparentes a partir de la descripción detallada a continuación
y de las reclamaciones.
La Fig. 1 es un dibujo esquemático de un
polipéptido poliepítopo que incluye cuatro segmentos, cada segmento
incluye múltiples epítopos.
La Fig. 2 es un dibujo esquemático de un
polipéptido poliepítopo que incluye las secuencias aminoacídicas de
los segmentos derivados de las proteínas E6 y E7 de la cepa HPV
16.
La Fig. 3 es un gráfico que ilustra los
resultados de un ensayo in vitro en el que las células T
humanas estimuladas con el péptido HPV 16 E7 44-52
fueron ensayadas frente a dianas que expresan
HLA-A1/A3 infectadas bien con el vector de la
vacuna de tipo salvaje (ciclos abiertos) o bien con el vector de la
vacuna que codifica el HPV 16 E7 44-52 como parte
de un polípeptido poliepítopo HPV 16 E6/E7.
La Fig. 4 es un dibujo esquemático de un
polipéptido poliepítopo que incluye las secuencias aminoacídicas de
los segmentos derivados de la cepa HPV E6 18 y las proteínas E7.
La Fig. 5 es un dibujo esquemático de un
polipéptido poliepítopo que incluye las secuencias aminoacídicas de
los segmentos derivados de las proteínas E6 y E7 de las cepas HPV 16
y 18.
La Fig. 6 es un gráfico que ilustra los
resultados de un ensayo in vitro en el que las células T de
los ratones de ADN inmunizado fueron expandidas in vitro por
exposición al péptido 124 o el péptido 272 y ensayadas
subsiguientemente contra las células diana infectadas con el vector
de la vacuna de tipo salvaje, el vector de la vacuna que codifica
el HPV Dra 16/18, o el vector de la vacuna que codifica el HPV
16/18.
El presente invento proporciona ácidos nucleicos
que codifican los polipéptidos poliepítopo que incluyen segmentos
inmunogénicos múltiples, cada segmento contiene uno o más epítopos
restringidos a MHC de clase I o II, o ambos. Los ácidos nucleicos y
los polipéptidos del invento son útiles para la generación o la
mejora profiláctica o las respuestas inmune terapéuticas contra
patógenos, tumores o las enfermedades autoinmunes en una población
de individuos que tienen varios alotipos MHC. Además, los ácidos
nucleicos y los polipéptidos del invento son también útiles como
testigos positivos en los ensayos de estimulación de células T in
vitro, y como herramientas para comprender el procesamiento de
los epítopos dentro de las células.
Uno o más de los segmentos presentes dentro del
polipéptido poliepítopo pueden ser procesados en epítopos definidos
múltiples para formar o bien epítopos de unión a MHC de clase I, que
están asociados típicamente con las respuestas inmune (CTL) de la
célula T citotóxica, o los epítopos de unión a MHC de clase II, que
están asociados típicamente con las respuestas inmune de las células
T ayudante. Otros epítopos pueden ser los epítopos de la célula B
que estimula la producción de los anticuerpos de epítopos
específicos.
Incluido en el invento están los ácidos
nucleicos que codifican los polipéptidos poliepítopo útiles para la
prevención o el tratamiento de las infecciones HPV asociadas,
particularmente las infecciones asociadas con las verrugas, la
displasia cervical o anal, el cáncer cervical y otros cánceres
asociados a HPV. Por ejemplo, los polipéptidos y los ácidos
nucleicos del invento pueden ser usados como vacunas profilácticas o
terapéuticas en sujetos que se conoce están infectados por HPV, que
son sospechosos de estar infectados por HPV, o que tienen
probabilidad de estar infectados por HPV. Otros sujetos adecuados
incluyen aquellos que muestran síntomas de, o que probablemente
desarrollan, los estados asociados a HPV. Los polipéptidos
inmunogénicos y los ácidos nucleicos que codifican estos
polipéptidos, pueden ser también usados como vacunas para la
prevención o el tratamiento de las condiciones asociadas con las
infecciones de la cepa HPV 16, por ejemplo, papulosis bowenoide,
displasia anal, papilomas respiratorios o conjuntivales, displasia
cervical, cáncer cervical, cáncer de la vulva o cáncer de próstata.
Pueden ser también usados para tratar condiciones asociadas con
otras cepas HPV, especialmente aquellas asociadas con las cepas HPV
6, 11, 18, 31, 33, 35, y 45. Estas condiciones incluyen, por
ejemplo, condiloma exofítico (cepas HPV 6 y 11), condiloma plano,
especialmente de cérvix (cepas HPV 6, 11, 16, 18, y 31), condiloma
gigante (cepas HPV 6 y 11), cáncer cervical (cepas HPV 18, 31, y 33
además de la cepa HPV 16), papilomas conjuntival y respiratorio
(HPV 6 y 11), y la infección con HPVs de tracto genital (HPV 6, 11,
16, 18, 31, 33 y 35).
Para que un epítopo genere respuestas eficaces
de célula T citotóxicas (CTL), debe unirse a una molécula MHC de un
antígeno que presenta la célula (APC), y el complejo ligando
receptor resultante debe ser reconocido por un receptor de la
célula T expresado en el CTL. Los epítopos que se unen a un alelo
MHC específico pueden ser identificados sintetizando primero una
serie de fragmentos peptídicos que se traslapan a partir de una
proteína de interés, por ejemplo, una proteína HPV tal como la HPV
E6 ó E7, y por el ensayo de los péptidos en los estudios de unión
reconocidos en la técnica con un péptido radiomarcado conocido por
unirse al alelo MHC. Si un péptido de ensayo demuestra una unión
específica a un alelo MHC medido, por ejemplo, por la competencia
con el péptido de ensayo radiomarcado(es decir, es un
epítopo), el epítopo puede ser combinado con epítopos adicionales
(solapados o adjuntos) para producir o definir un segmento.
Alternativamente, los epítopos pueden ser
identificados replegando las moléculas MHC solubles en presencia de
®2microglobulina radiomarcada y un péptido de ensayo. El complejo
completo replegará y producirá un receptor del tamaño correcto. La
®2 microglobulina se disocia del complejo a una velocidad medible
que está correlacionada directamente con la afinidad de unión del
péptido de ensayo (Garboczi y otros, Proc. Nat. Acad. Sci.
USA 89: 3429-33, 1992; Parker y otros, J.
Biol. Chem. 267: 5451-5459, 1992; y Parker y
otros, J. Immunol. 149: 1896-1904, 1992). El
análisis de este tipo de datos ha resultado en un algoritmo que
predice los tiempos de disociación de un péptido de ensayo dado para
un receptor HLA-A2 (Parker y otros, J.
Immunol. 152: 163-175, 1994). Una rápida
disociación ha sido correlacionada con afinidad baja, y una
disociación lenta con alta afinidad. Este algoritmo ha sido
expandido y está disponible para predecir la afinidad de unión de
los epítopos para los alotipos HLA-A, -A1, -A2, -A3,
-A11 y -A24. El algoritmo se puede encontrar en el sitio web
(\underbar{http://www.bimas.dort.nih.gov/molbio/hla\_bind/index.html})
La mayoría de los epítopos HPV E6 16 y E7 que se conoce en la
técnica que unen uno de los cinco receptores HLA-A
listados son predichos por este algoritmo para causar tiempos de
disociación de microglobulina ®2 mayores de 2 h.
La unión al epítopo puede ser también
determinada usando los epítopos identificados previamente derivados
del HPV 16 E6 y E7 (Kast y otros, J. Immunol. 152:
3904-12, 1994). Los estudios de unión adicional en
otros epítopos putativos HPV, por ejemplo, los epítopos derivados
HPV E6 18 y E7, son realizados usando los 8, 9 ó
10-mers solapantes de las proteínas HPV E6 18 y E7
en los ensayos de unión que implica cada uno de los cinco alotipos
HLA-A, usando uno de los protocolos descritos
anteriormente.
Alternativamente, los epítopos pueden ser
identificados identificando los péptidos de unión a MHC de clase I
o clase II usando las técnicas descritas en, por ejemplo, el
documento de patente norteamericana No. 5.827.516. y el documento
de patente norteamericana 09/372.380.
Los epítopos que se unen in vitro con las
moléculas MHC como se describe anteriormente pueden ser analizados
en lo que respecta a su eficacia en la estimulación de respuestas de
célula T humanas en un ensayo de inmunización in vitro. El
ensayo ha sido usado anteriormente para identificar epítopos de
respuesta de célula T humana y murina, que incluyen varios que son
derivados de la proteína HPV (Alexander y otros., Amer. J.
Obstet y Gynecol. 175: 1586-1593, 1996; Tarpey y
otros., Immunology 81: 222-27, 1994). Estos
ensayos han sido también usados para generar un amplio número de
CTL especifico para la inmunoterapia (Tsai y otros., Crit.
Rev. Immunol. 18: 65-75, 1998). Para asegurar la
fiabilidad, es deseable realizar la primera ronda de estimulación
de la célula T en presencia de las células dendríticas (CDs)
pulsadas con el péptido de ensayo. Así mismo, la inclusión de
IL-10 durante la estimulación puede suprimir las
respuestas no específicas que pueden aumentar a veces durante el
cultivo de las células. La activación de la célula T puede ser
entonces examinada usando un ensayo ELISA para medir la secreción
de ©-IFN, o por el uso de FACS para determinar el aumento en las
células CD8+, CD16- que contienen ©-IFN por análisis tricolor.
Alternativamente, la activación de la célula T puede ser medida
usando un ensayo CTL liberado ^{91}Cr o un ensayo basado en
tetrámeros.
Es posible que no todo individuo con un alotipo
dado responda a un epítopo particular. Por ejemplo, un individuo
cuyas células soportan el alotipo HLA-A2 puede
responder a un epítopo dado, mientras que un segundo individuo tal,
no pueda. Una razón para esta respuesta diferente puede ser que
estos individuos que han sido infectados con HPV previamente tengan
una frecuencia de célula T precursora mayor que un individuo naive
(no expuesto). Otra puede estar relacionada con las diferencias en
el repertorio de células T entre dos individuos. Para superar esta
dificultad, las células T de dos donantes e incluso más
preferiblemente tres donantes, para cada alotipo HLA pueden ser
ensayadas. Para los alelos más comunes (es decir,
HLA-A2 y A3) hasta cuatro donantes son ensayados
preferiblemente.
Cada epítopo es ensayado inicialmente con las
células de un donante. Si un epítopo no estimula una respuesta de
la célula T usando células del primer donante, se ensaya de nuevo
con células de un segundo donante y después con un tercer donante.
Si el epítopo no demuestra una reacción de células T después de dos
o tres intentos, es preferible no representarlo en los polipéptidos
del invento.
Alterando el método por el cual la presentación
in vitro del antígeno es realizada puede potenciar el
análisis. Una estimulación inicial de las células T con CDs es
típicamente parte de la inmunización in vitro. Para
potenciar la inmunización, el CDs se puede añadir en cada vuelta de
estimulación para asegurar la presentación del antígeno adecuada y
la estimulación de la célula T, por ejemplo, usando CDs previamente
generadas y subsiguientemente congeladas.
Leucopaks o muestras de sangre pueden ser
obtenidas de individuos con lesiones intraepiteliales escamosas de
alto grado (HSIL) o cáncer cervical. Estos individuos pueden haber
sido preparados in vivo y pueden haber aumentado el número
de las células T en su sangre.
Alternativamente, los epítopos pueden ser
seleccionados para ser incluidos en la construcción basándose
únicamente en su afinidad de unión con las moléculas HLA, o
identificados tras el análisis de los péptidos procesados
naturalmente, como se describe aquí y en Chicz y otros, J.
Exp. Med. 178: 27-47, 1993 y en el documento de
patente norteamericana 5.827.516.
La secuencia aminoacídica de un polipéptido
híbrido (SEQ ID NO: 126) basada en las secuencias encontradas en
las proteínas E6 y E7 de la cepa HPV 16 se muestra en la Fig. 2. El
polipéptido híbrido es creado por la fusión de fragmentos de la
proteína E6 (aminoácidos 7-26 (SEQ ID NO:64),
44-67 (SEQ ID NO:65), y 79-101 (SEQ
ID NO:66)) y la proteína E7 (aminoácidos 7-25 (SEQ
ID NO:67), 44-57 (SEQ ID NO:68), y
82-98 (SEQ ID NO:69)). Para evitar que la proteína
retinoblastoma (Rb) se una con el polipéptido híbrido, los
aminoácidos 26 y 27 de la proteína E7 no están incluidos. Además,
la cisteína en el aminoácido 24 has sido convertido en un residuo
de suero. En el contexto definido anteriormente, esto da como
resultado del residuo de suero, junto con el residuo 25, una
"secuencia espaciadora" entre los segmentos que corresponden a
los residuos de la proteína E7 7-23 y
44-57, respectivamente.
La secuencia aminoacídica de un segundo
polipéptido híbrido (SEQ ID NO: 159) basada en las secuencias
encontradas en las proteínas E6 y E7 de la cepa HPV 18 se muestra
en la Fig. 4. El polipéptido híbrido es creado por la fusión de los
fragmentos de la proteína E6 (aminoácidos 9-50 (SEQ
ID NO: 152), y 84-110 (SEQ ID NO: 153)), y la
proteína E7 (aminoácidos 5-23 (SEQ ID NO: 154),
59-72 (SEQ ID NO: 155) y 85-101 (SEQ
ID NO: 156)).
La secuencia aminoacídica de un tercer
polipéptido híbrido (SEQ ID NO: 157) basada en las secuencias
encontradas en las proteína E6 y E7 de las cepas HPV 16 y 18 es
mostrada en la Fig. 5. El polipéptido híbrido es creado por la
fusión de los fragmentos de la proteína E6 de la cepa HPV 16
(aminoácidos 7-26 (SEQ ID NO: 64),
44-67 (SEQ ID NO: 65) y 79-101 (SEQ
ID NO: 66)), la proteína E7 de la cepa HPV 16 (aminoácidos
7-25 (SEQ ID NO: 67), 44-57 (SEQ ID
NO: 68) y 82-98 (SEQ ID NO: 69)), la proteína E6 de
la cepa HPV 18 (aminoácidos 9-50 (SEQ ID NO: 152),
y 84-110 (SEQ ID NO: 153)), y la proteína E7 de la
cepa HPV 18 (aminoácidos 5-23 (SEQ ID NO: 154),
59-72 (SEQ ID NO: 155) y 85-101 (SEQ
ID NO: 156)). Como se describe anteriormente con respecto al
polipéptido híbrido de la SEQ ID NO: 126, estos aminoácidos de la
proteína E7 de la cepa HPV 16 que podrían causar la unión del
polipéptido con la proteína RB son excluidos. Además, una secuencia
espaciadora insertada idéntica a la presente en la SEQ ID NO: 126
yace entre los segmentos correspondientes a los residuos
7-23 y 44-57, respectivamente.
Cualquiera de los polipéptidos híbridos
descritos aquí puede incluir opcionalmente una metionina iniciadora,
una secuencia líder o cualquier secuencia diana (por ejemplo, un
dominio transmembrana). Los términos "secuencia diana" y
"secuencia de tráfico" son usados indistintamente aquí. Por
ejemplo, cuando el tercer polipéptido híbrido tiene una metionina
añadida a su extremo amino, tiene la secuencia aminoacídica de la
SEQ ID NO: 158. Además, cuando el tercer polipéptido híbrido tiene
una secuencia líder HLA-DR\alpha añadida a su
extremo amino, tiene la secuencia aminoacídica de la SEQ ID NO:
160.
La Tabla 3 lista otros epítopos de unión a MHC
de E6 y E7 de la cepa HPV 16 y los polipéptidos E7 y E6 de la cepa
HPV 18. Cualquiera de estos epítopos puede ser incorporado en un
polipéptido híbrido del invento.
Los ácidos nucleicos que codifican los
polipéptidos poliepítopo que contienen epítopos identificados como
se describe anteriormente pueden ser generados usando técnicas
estándar, por ejemplo, solapando PCR o uniones de oligonucleótidos.
Preferiblemente, los codones son seleccionados por inclusión en la
construcción para optimizar la producción de los polipéptidos
poliepítopo en los sistemas bacterianos o mamíferos.
Segmentos diferentes en el polipéptido
poliepítopo, por ejemplo, los segmentos derivados de las diferentes
proteínas, o de las regiones no adyacentes de la misma proteína,
pueden ser comprobados usando un programa de análisis de secuencia,
por ejemplo, el programa BLAST, para determinar si las secuencias
aminoacídicas en las uniones de los segmentos muestran
inadvertidamente similitudes con las proteínas humanas. Si existe
homología, el polipéptido puede ser rediseñado para alterar el orden
de los epítopos en el polipéptido para eliminar las regiones de
homología. Si un epítopo en particular es idéntico por encima del
75% a una porción de una proteína humana conocida, preferiblemente
no es incluido en el polipéptido poliepítopo.
El orden de los segmentos dentro de un
polipéptido poliepítopo dado puede corresponder al orden en el que
los segmentos aparecen en la proteína nativa, aunque alguna
secuencia del aminoácido (es decir, al menos un residuo) entre los
segmentos individuales en la proteína nativa puede ser suprimida.
Alternativamente, el orden de los segmentos puede diferir del de la
proteína que está presente de manera natural. La última disposición
es preferible si una alineación natural resulta en un polipéptido
que tiene regiones de homología con una proteína humana.
Para los epítopos derivados de HPV, la
construcción de ácidos nucleicos preferiblemente no codifica un
epítopo que contiene el sitio conocido de unión de la proteína
retinoblastoma (Rb) a la proteína E7 de HPV. La construcción puede
codificar, por ejemplo, un polipéptido que incluye los segmentos de
cada uno de los E6 de HPV 16, E7 de HPV 16, E6 de HPV 18 y las
proteínas E7 de HPV 18, donde cada segmento contiene epítopos para
la unión con uno o más de los alelos HLA HLA-A1,
HLA-A2, HLA-A3,
HLA-A11 y HLA-A24. Esto corresponde
a alrededor de 12-20 epítopos por alelo HLA, para
alrededor de 60-100 epítopos en el polipéptido
poliepítopo.
Los elementos reguladores pueden ser incluidos
en la construcción para facilitar la expresión del ácido nucleico
que codifica el polipéptido poliepítopo. Estos elementos incluyen
las secuencias para potenciar la expresión en las células humanas o
de otros mamíferos, por ejemplo, promotores, secuencias de
estabilización de ARN 5' y/o 3' en la secuencia codificantes,
intrones (que pueden ser colocados en cualquier sitio dentro o
adyacentes a la secuencia codificada), y los sitios de adición poli
(A), así como un origen de duplicación y uno o más genes que
codifican los marcadores seleccionables que permiten que las
construcciones se dupliquen y pueden ser seleccionados en los
hospedantes procarióticos y/o eucarióticos. Un promotor polimerasa
T7 u otro tipo de promotor (por ejemplo, un promotor específico de
tejido tal como un promotor específico de musculo, o un promotor
específico de célula tal como un promotor APC específico) está
presente opcionalmente en el extremo 5' de la secuencia codificante
y una secuencia que codifica un FLAG u otro determinante mAb está
presente opcionalmente directamente en el extremo 3' del ultimo
epítopo que codifica la secuencia. La construcción puede también
contener otras señales transcripcionales y traduccionales, tal como
una secuencia Kozak.
La construcción puede además incluir una
secuencia que codifica una señal diana que dirige el polipéptido
poliepítopo a un compartimento intracelular deseado, estando la
señal diana unida al polipéptido poliepítopo. Las señales diana
pueden dirigir el polipéptido poliepítopo al reticulo endoplásmico
(ER), el Golgi, el núcleo, un lisosoma, un compartimento de carga
de péptidos de clase II, o un endosoma e incluye péptidos señal (las
secuencias de extremos amino que dirigen las proteínas en el ER
durante la traducción), los péptidos de retención del ER tal como
KDEL (SEQ ID NO:111) y los péptidos de lisosoma de dirección tal
como KFERQ (SEQ ID NO:112), QREFK (SEQ ID NO:113), y otros
pentapéptidos que tiene el Q flanqueado en un lado por cuatro
residuos seleccionados del K, R, D, E, F, I, V y L. También
incluidas están las señales diana que dirigen la inserción del
polipéptido en una membrana (por ejemplo, una secuencia
transmembrana). Los polipéptidos que incluyen una secuencia de
inserción de membrana pueden ser construidos o bien con o sin un
extremo citoplasmático.
Un ejemplo de una secuencia diana de ER es la
secuencia líder HLA-DR\alpha, Met Ala Ile Ser Gly
Val Pro Val Leu Gly Phe Phe Ile Ile Ala Val Leu Met Ser Ala Gln Glu
Ser Trp Ala (SEQ ID NO: 63). La secuencia diana puede incluir sólo
una porción (por ejemplo, al menos diez residuos aminoácidos) de
esta secuencia de 25 residuos especificada, siempre que la porción
sea suficiente para causar la dirección del polipéptido al ER.
Las secuencias de localización nuclear incluyen
señales diana nucleares nucleoplasmina y de tipo SV40, como se
describe en Chelsky y otros, Mol. Cell Biol 9: 2487, 1989;
Robbins, Cell 64: 615, 1991, y Dingwall y otros, TIBS 16:
478, 1991. Algunas secuencias de localización nuclear incluyen
AVKRPAATKKAGQAKKK (SEQ ID NO: 114), RPAATKKAGQAKKKKLD (SEQ ID NO:
115) y AVKRPAATKKAGQAKKKLD (SEQ ID NO: 116).
En algunos casos es deseable modificar la
secuencia aminoacídica de la señal diana para facilitar el corte
por una señal peptidasa u otro agente proteolítico. Las secuencias
de reconocimiento para las señales peptidasas como se describe en
Von Heijne, Nucleic Acids Research 14: 4683, 1986. Las reglas -3, -1
de von Heijne pueden ser usadas para seleccionar una secuencia que
aumenta la probabilidad de éxito de corte por una señal peptidasa
cuando la señal diana está presente.
Los ácidos nucleicos que codifican el
polipéptido poliepítopo descritos aquí pueden codificar
opcionalmente un residuo de metionina en el extremo amino del
polipéptido para facilitar la traducción.
Si se desea, un aminoácido espaciador o una
secuencia espaciadora puede ser insertada entre cada par de
segmentos. Los espaciadores alanina han sido usados con éxito para
separar los epítopos individuales múltiples codificados en una
construcción de ADN única (Toes y otros, Proc. Nat. Acad.
Sci. (USA) 94: 14660-65, 1997).
Los segmentos que contienen epítopos derivados
de una proteína única pueden aparecer en el orden (es decir, a
partir del extremo amino al extremo carboxi) en el que aparecen en
la proteína. Alternativamente, los segmentos de una proteína dada
pueden ser colocados en un orden, distinto de en el que aparecen en
la proteína nativa, y pueden ser agrupados juntos o mezclados con
segmentos de una o más de las otras proteínas. La construcción
puede codificar un polipéptido poliepítopo único o polipéptidos
poliepítopo múltiples, cada uno bajo el testigo de un promotor
diferente, por ejemplo, vectores promotores duales. Un vector
promotor dual permite dos polipéptidos poliepítopo más cortos para
remplazar la versión más larga única, sin pérdida en el número de
los epítopos producidos a partir de un vector dado. También
permite la adición de nuevos epítopos sin alteración de la
secuencia y quizás el procesamiento del primer polipéptido
poliepítopo.
Los ácidos nucleicos que codifican los
polipéptidos poliepítopo pueden ser usados en cualquier vector que
permite la expresión en las células presentadoras de antígeno (APC)
del paciente. El vector es preferiblemente un vector viral no
integrado o es un vector no viral tal como un vector plásmídico o
bacteriano. Un ejemplo de un vector adecuado es la familia de los
vectores de expresión de mamífero pcDNA (Invitrogen), que permiten
la clonación directa y rápida de los productos de PCR. El vector
puede ser modificado para incluir los epítopos adicionales, por
ejemplo, los epítopos restringidos a MHC de clase I
HLA-A1, -2, -3, -11 y 24 a partir de las proteína
E6 y E7 de HPV de las cepas HPV 16 y 18.
Para determinar si el polipéptido es procesado y
los epítopos deseados están presentes por HLA, un ensayo de
estimulación de la célula T in vitro puede ser realizado
usando células PBL autólogos o células transformadas por EBV,
infectadas con un virus de vacuna recombinante que contiene el
polipéptido poliepítopo que codifica la secuencia. Estas células
diana son generadas por incubación del PBL con la vacuna
recombinante en un m.o.i de 3-10 pfu/célula a 37ºC
durante 2 h. Después de la infección, las células son precipitadas,
lavadas y usadas como dianas en el ensayo de estimulación in
vitro. Las células T estimuladas de uno o más individuos con
los alotipos HLA diferentes son incubadas con las células diana y la
capacidad de las células diana para estimular las células T es
medida, por ejemplo, por la expresión
\gamma-interferon o por secreción.
Alternativamente, el procesamiento epítopo del
polipéptido poliepítopo puede ser examinado usando proteasomas
purificados de las células humanas (Theobald y otros, J. Exp.
Med. 188: 1017, 1998; Kisselev y otros, J. Biol. Chem. 289:
3363, 1999; y Nussbaum y otros, Proc. Nat. Acad. Sci (USA)
95: 12404, 1998).
En adición a los ensayos de las células T, un
ensayo que utiliza animales transgénicos puede ser usado para
verificar que la construcción funciona (por ejemplo, los epítopos
son procesados y presentados correctamente) cuando se suministran
in vivo. Para medir la presentación restringida
HLA-A2, la construcción poliepítopo en un vector de
expresión de mamífero (por ejemplo, un plásmido) es encapsulada en
microesferas e introducida en ratones transgénicos
HLA-A2 por una ruta tal como inyección intramuscular
o subcutánea. La construcción puede ser alternativamente
administrada sin el excipiente de suministro micro esférico, por
ejemplo, en un virus de vacuna recombinante o como un ADN desnudo.
Las respuestas de la célula T son subsiguientemente examinadas
in vitro (Hedley y otros, Nature Med. 4:
365-68, 1998). Las células diana son células T2A2
(células T2 transfectadas con ADN que codifica el
HLA-A2) o las células EL4.A2 (las células EL4
transfectadas con ADN que codifica el HLA-A2)
pulsadas con el epítopo A2 que ha sido ensayado y las células T2A2
en las que se ha introducido un ácido nucleico del invento.
Estudios paralelos son realizados usando células T2A2 pulsadas sin
péptido o con un péptido irrelevante. De este modo, son
identificados los epítopos HLA-A2 que son procesados
y presentados in vivo siguiendo la administración del ácido
nucleico del invento. Un resultado positivo sugiere que el
procesamiento del polipéptido poliepítopo se produce como se
predice.
El ácido nucleico que codifica el polipéptido
poliepítopo, así como el polipéptido poliepítopo mismo, puede ser
usado en la fabricación de un medicamento para la prevención o
tratamiento de un tumor o una infección con un patógeno (por
ejemplo, HPV) o las condiciones asociadas con dicha infección.
Diversos sistemas de suministro reconocidos en
la técnica pueden ser usados para suministrar polipéptidos
poliepítopo, o ácidos nucleicos que codifican polipéptidos
poliepítopo, en las células apropiadas. Una ventaja del suministro
de ADN de los epítopos antigénicos MHC de clase I restringida es que
los epítopos son producidos dentro de la célula diana misma, donde
la interacción con una molécula MHC de clase I con la que el epítopo
inmunogénico se une es favorecida cinéticamente. Esto está en
contraste con los protocoles de vacunas estándar que no dirigen
específicamente los epítopos antigénicos a las moléculas MHC
intracelulares de modo que los epítopos puedan unirse con las
moléculas MHC antes de la presentación de las moléculas MHC en la
superficie celular.
Los polipéptidos poliepítopo y los ácidos
nucleicos que codifican los polipéptidos poliepítopo pueden ser
suministrados en un soporte farmacéuticamente aceptable tal como
salino, o como suspensiones coloidales, o como polvos, con o sin
diluyentes. Pueden ser "desnudos" o asociados con los
excipientes de suministro y suministrados usando los sistemas de
suministro conocidos en la técnica, tal como lípidos, liposomas,
microesferas, micro partículas o micro cápsulas, partículas de oro,
ISCOMS, nanopartículas, polímeros, agentes de condensación,
polisacáridos, ácidos poliaminos, dendrímeros, saponinas, QS21,
materiales que potencian la adsorción, adyuvantes o ácidos grasos.
Los ejemplos de las micro partículas adecuadas son presentados a
continuación.
Los polipéptidos poliepítopo, o los ácidos
nucleicos que codifican los polipéptidos poliepítopo, pueden ser
administrados usando los métodos estándar, por ejemplo, aquellos
descritos en Donnelly y otros, J. Imm. Methods 176: 145,
1994 y Vitiello y otros, J. Clin. Invest. 95: 341, 1995 y
pueden ser suministrados en los sujetos de cualquier manera
conocida en la técnica, por ejemplo, intramuscular, oral,
intravenosa, intraarterial, intratecal, intradérmica,
intraperitoneal, intranasal, intrapulmonar, intraocular,
intravaginal, intrarectal o subcutáneamente. Pueden ser
introducidos en el tracto gastrointestinal o en el tracto
respiratorio, por ejemplo, por inhalación de una disolución o de un
polvo que contiene las micro partículas. La administración puede
ser local (por ejemplo, en el cérvix, en la piel u otro sitio de
infección HPV) o sistémica.
Es deseado que una dosis de aproximadamente 0,1
a 100 \mumoles del polipéptido, o alrededor de 1 a 2000 \mug de
ADN, fuera administrada por kg de peso corporal por dosis. Donde el
paciente es un humano adulto, los regímenes de vacunación pueden
incluir, por ejemplo, administraciones intramusculares,
intravenosas, orales o subcutáneas de 10-1000
\mug de un ADN plásmido cuando se suministra en una micro
partícula, o alrededor de 10-2500 \mug, por
ejemplo, 100 a 2000, o 500 a 1000 \mug del ADN plásmido desnudo
suministrado intramuscular o intradérmicamente, repetidas de
3-6 veces. Desde luego, como es bien conocido en las
técnicas medicas, la dosis para cualquiera de los pacientes dados
depende de muchos factores, que incluyen el tamaño del paciente, la
salud general, el sexo, el área de superficie corporal, la edad, el
compuesto particular a ser suministrado, el tiempo y la ruta de
administración y otros fármacos que son administrados al mismo
tiempo. La determinación de la dosis óptima está dentro de las
capacidades de un farmaceuta con conocimiento común.
Otros métodos del suministro estándar, por
ejemplo, la transferencia biolística o el tratamiento ex
vivo, pueden ser también usados. En el tratamiento ex
vivo, las células presentadoras de antígenos (APCs) tales como
las células dendríticas, las células mononucleares de sangre
periférica, o las células de medula espinal pueden ser obtenidas de
un paciente o de un donante apropiado y activadas ex vivo con
las composiciones inmunogénicas, y luego implantadas o reinfundidas
en el paciente.
Los ácidos nucleicos que codifican los
polipéptidos poliepítopo, o los polipéptidos poliepítopo mismos,
pueden ser administrados solos o en combinación con otras terapias
conocidas en la técnica, por ejemplo, los regímenes
quimioterapéuticos, las radiaciones y la cirugía, para tratar
tumores o infecciones, por ejemplo, las infecciones HPV o las
enfermedades asociadas con las infecciones HPV. Además, los
polipéptidos y los ácidos nucleicos del invento pueden ser
administrados en combinación con otros tratamientos diseñados para
potenciar las respuestas inmunes, por ejemplo, por coadministración
con adyuvantes o citoquinas (o ácidos nucleicos que codifican las
citoquinas), tan bien conocidos en la técnica.
En un método de suministro preferido, los ácidos
nucleicos que codifican los polipéptidos poliepítopo o los
polipéptidos poliepítopo mismos, son suministrados usando
microesferas. Las microesferas, incluidas aquellas descritas en el
documento de patente Norteamericana No. 5.783,567, pueden ser usadas
como excipientes para el suministro de macromoléculas tales como
ADN, ARN o polipéptidos en las células. Las microesferas contienen
macromoléculas introducidas en una matriz polimérica o encerradas en
una cascara vacía de un polímero. Las microesferas sólidas pueden
ser también formadas por ejemplo como en el documento de patente WO
95/24929, incorporado aquí por referencia. El término microesfera,
como se usa aquí, incluye micropartículas y microcápsulas. Las
microesferas actúan para mantener la integridad de las
macromoléculas, por ejemplo, manteniendo el ADN encapsulado en un
estado no degradado. Las microesferas de un tamaño apropiado o la
combinación de tamaños puede ser también usadas para el suministro
pulsado de la macromolécula y para el suministro a un sitio
específico o a una población de células diana específicas. La
matriz polimérica puede ser un polímero biodegradable tal como el
poliláctido-co-glicólido (PLG), el
poliglicol, polianhídrido, poliortoéster, policaprolactona,
polifosfaceno, polímero proteináceo, polipéptido, poliéster, o un
polímero que está presente de manera natural tal como un almidón,
alginata, chitosan, y gelatina.
Las microesferas pueden incluir también uno o
más compuestos estabilizantes (por ejemplo, un carbohidrato, un
compuesto catiónico, un plurónico, por ejemplo,
Pluronic-F68^{TM} (Sigma-Aldrich
Co, St. Louis, MO), un lípido o un agente de condensación de ADN).
Un compuesto estabilizante es un compuesto que actúa para proteger
el ácido nucleico (por ejemplo, para mantenerlo superenrollado o
protegido de la degradación) en cualquier momento durante la
producción de microesferas o después del suministro in vivo.
El compuesto estabilizador puede mantenerse asociado con el ADN
después de una liberación posterior a partir del sistema de
suministro polimérico.
Los ejemplos de los compuestos estabilizadores
incluyen tris (hicroximetilo) aminometano (TRIS), ácido
etilenodiaminetetracetilo (EDTA), o una combinación de TRIS y EDTA
(TE). Otros compuestos estabilizadores incluyen dextrosa, sacarosa,
lactosa, dextrano, trehalosa, ciclodextrina, dextrano sulfato,
péptidos catiónicos, plurónicos, por ejemplo,
Plurónico-F68^{TM} (Sigma-Aldrich
Co, St. Louis, MO) y lípidos tales como bromuro
hexadecitrimetilamonio. La preparación de las microesferas que
contienen los agentes estabilizadores está descrita en el documento
de patente USSN 09/266.463.
El lípido puede ser un lípido cargado tal como
un lípido catiónico, un lípido aniónico (tal como
PEG-DSPE, ácido taurocólico o fosfatidilinositol) o
un lípido zwitteriónico, o puede no tener carga. Los ejemplos de
los lípidos incluyen cetiltrimetilamonio y fosfolípidos, por
ejemplo, fosfatidilcolina. Las microesferas pueden contener uno o
más de un tipo de lípidos, por ejemplo, aquellos lípidos presentes
en las preparaciones lipídicas de lecitina y pueden incluir también
uno o más compuestos estabilizadores como se describe
anteriormente.
Las microesferas pueden ser usadas para
maximizar la liberación de las moléculas de ADN en las células
fagocitóticas de un sujeto. Alternativamente, las microesferas
biodegradables pueden ser inyectadas o implantadas en un tejido,
donde forman un depósito. Cuando el depósito se rompe, el ácido
nucleico es liberado gradualmente durante un tiempo e incorporado
por las células vecinas (incluyendo las APCs) como ADN libre.
Los polipéptidos poliepítopo, o los ácidos
nucleicos que los codifican, pueden ser también administrados a los
sujetos usando otros agentes tal como lípidos, dendrímeros o
liposomas usando técnicas que son bien conocidas en la técnica. Por
ejemplo, los liposomas que llevan o bien los polipéptidos
inmunogénicos o los ácidos nucleicos que codifican los epítopos
inmunogénicos se conoce que provocan respuestas CTL in vivo
(Reddy y otros, J. Immunol. 148: 1585, 1992; Collins y
otros, J. Immunol. 148: 3336-3341, 1992; Fries
y otros, Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 89: 358, 1992; Nabel
y otros, Proc Natl. Acad. Sci (USA) 89: 5157, 1992).
Los polipéptidos y los ácidos nucleicos del
invento pueden ser también administrados mediante el uso de los
Complejos de Estimulación Inmune (ISCOMS), que están cargados
negativamente, estructuras tipo jaula de 30-40 nm
en tamaño formadas espontáneamente en una mezcla de colesterol y
Quil A (saponina) o a partir del saponina solo. Los polipéptidos y
los ácidos nucleicos del invento pueden ser acomplejos con ISCOMs, y
luego administrados o pueden ser administrados separadamente.
La inmunidad protectora ha sido generada en una
variedad de modelos experimentales de infección, incluyendo la
toxoplasmosis y los tumores inducidos por virus
Epstein-Barr, usando ISCOMs como excipiente de
suministro para los antígenos (Mowat y otros, Immunology
Today 12: 383-385, 1991). Se ha encontrado que dosis
del antígeno tan bajas como 1 \mug encapsulado en ISCOMs producen
respuestas CTL mediada por clase I, donde o bien la glicoproteína
HIV-1-IIIB gp 160 de la envuelta
intacta purificada o bien la hemagglutinina influenza son el
antígeno (Takahashi y otros, Nature 344:
873-875, 119).
La capacidad de los polipéptidos poliepítopos, o
de los ácidos nucleicos que los codifican, para provocar una
respuesta inmune en un mamífero hospedante puede ser ensayada usando
los métodos para la medida de las respuestas inmune que son bien
conocidos en la técnica. Por ejemplo, la generación de las células T
citotóxicas puede ser demostrada en un ensayo de liberación de
^{51}Cr patrón, midiendo la expresión o secreción de citoquina
intracelular, o usando tetrámeros MHC. Los ensayos estándar, tal
como ELISA o ELISPOT, pueden ser usados para medir los perfiles de
citoquinas atribuibles a la activación de la célula T. La
proliferación de la célula T puede ser medida usando ensayos tales
como la ingesta de ^{3}H-timidina y otros ensayos
conocidos en la técnica. Las respuestas de célula B pueden ser
medidas usando los ensayos reconocidos en la técnica tales como
ELISA.
Otras metodologías, por ejemplo, imagen digital
y citológica, colposcopia y evaluaciones histológicas, pueden ser
también usadas para evaluar los efectos de los epítopos
inmunogénicos y de los ácidos nucleicos que codifican los epítopos
inmunogénicos, en las lesiones asociadas a patógenos o en otros
niveles virales o patogénicos generalmente.
Los siguientes son ejemplos de la práctica del
invento. No han de ser considerados como limitación del alcance del
invento de ninguna manera.
\vskip1.000000\baselineskip
Los alelos HLA son aislados de las líneas
celulares que expresan un alotipo HLA-A único. De
10-20 litros de cada línea celular (alrededor de
1-2 x 10^{10} células) crecen en un medio
RPMI-1640 completo (10% FCS, HEPES, Pen/Strep,
aminoácidos esenciales, glutamina) en botellas rodantes, y las
células recogidas por centrifugación (10-15 gm
células de peso húmedo/10 L de cultivo). Una preparación de membrana
es generada lisando las células en Tris 10 mM, DTT 1 mM, PMSF 0,1
mM, durante 30 min. Los restos celulares son precipitados, después
de lo cual el lisado aclarado es homogenizado en un tampón de lisis
y precipitado de nuevo. El precipitado es homogenizado en un
tampón que contiene 4% de NP-40 y ultra
centrifugado. El material soluble en detergente es usado para la
purificación de HLA.
La preparación de la membrana disoluble es
bombeada a través de columnas de prelavado (matriz cromatográfica y
matriz de suero de ratón normal) antes de que la proteína/ligando
que contiene el residuo sea dirigido a una, o una serie de,
columna(s) inmunoafin(es) específica(s). Las
columnas de inmunoafinidad que contiene mAb W6/32 anti
pan-clase I pueden ser usadas para aislar las
moléculas de clase I del alotipo único que expresan las líneas
celulares. Alternativamente, el mAb específico de alotipo tal como
BB7.2 es usado para extraer un alotipo HLA único
(HLA-A2) de un lisado celular que expresa alotipos
múltiples. El acoplamiento de mAb a, los sorbentes de perfusión a
través de grandes poros, de fuerza alta (revestidos y entrelazados
con una fase estacionaria hidrofílica y unida covalentemente a la
Proteina A) pueden ser utilizados para seguir los caudales rápidos.
Las columnas de inmunoafinidad son luego lavadas extensamente y el
complejo de proteína/ligando es eluído del soporte de
inmunoafinidad que usa carbonato/0,1% 50 mM DOC/0,05% NaN_{3} a pH
11,5.
La separación por cromatografía líquida de alta
resolución multimodal (HPLC) de las células HLA es conseguida por
el acoplamiento de los procedimientos cromatográficos en las series
con válvulas de cambio automático, que dirigen la proteína/ligando,
que contiene el residuo, a las columnas subsiguientes en la
secuencia. Cada residuo de columna puede ser monitorizado a
múltiples longitudes de onda de UV, presiones y pH.
Los alelos HLA purificados son después usados en
los ensayos de competición de unión a epítopo.
La unión por un epítopo putativo es comparada
con la unión de los epítopos de unión HLA descritos anteriormente.
Ejemplos de epítopos conocidos y de sus alotipos respectivos
incluyen: HLA-A1, YLEPAIAKY (SEQ ID NO: 117);
HLA-A2, FLPSDYFPSV (SEQ ID NO: 118);
HLA-A3, KVFPYALINK (SEQ ID NO: 119);
HLA-A11, AVDLYH
FLK (SEQ ID NO: 120); y HLA-A24, AYIDNYNKF (SEQ ID NO: 121). Las condiciones del ensayo general son como siguen: las proteínas de clase I son incubadas en NP-40/PBS 0,05% con 5 nM de epítopo patrón radiomarcado y el epítopo inhibidor de ensayo en presencia de \beta2microglobulina humana 1 \muM, y una mezcla de los inhibidores de proteasas (concentración final de PMSF 1 mM, 1.10 fenaltrolina 1,3 mM, pepstatin 73 \muM, EDTA 8 mM y
N-\alpha-p-tosil-L-lisina clorometil cetona 200 \muM) a 23ºC durante 48 h. La concentración final de cada alotipo HLA es determinada experimentalmente como se explica a continuación. Las concentraciones de los péptidos inhibidores son valoradas en concentraciones que oscilan entre 1 nM a 100 \muM.
FLK (SEQ ID NO: 120); y HLA-A24, AYIDNYNKF (SEQ ID NO: 121). Las condiciones del ensayo general son como siguen: las proteínas de clase I son incubadas en NP-40/PBS 0,05% con 5 nM de epítopo patrón radiomarcado y el epítopo inhibidor de ensayo en presencia de \beta2microglobulina humana 1 \muM, y una mezcla de los inhibidores de proteasas (concentración final de PMSF 1 mM, 1.10 fenaltrolina 1,3 mM, pepstatin 73 \muM, EDTA 8 mM y
N-\alpha-p-tosil-L-lisina clorometil cetona 200 \muM) a 23ºC durante 48 h. La concentración final de cada alotipo HLA es determinada experimentalmente como se explica a continuación. Las concentraciones de los péptidos inhibidores son valoradas en concentraciones que oscilan entre 1 nM a 100 \muM.
Los péptidos libres y unidos son separados por
cromatografía de exclusión de tamaño HPLC que usa una columna SEC
TSK 2000^{TM} y NP-40/PBS 0,5%. El residuo es
monitorizado por radioactividad y la fracción de la unión del
péptido al HLA relativa a la cantidad total del péptido ofrecido es
calculada a partir de la relación del péptido en el volumen vacío
del péptido total recuperado. La concentración final de
HLA-A1, -A2, -A3, -A11 y -A24 para ser usada en los
ensayos de unión subsiguientes puede ser determinada
experimentalmente basada en la eficacia de unión para el péptido
patrón radiomarcado. La concentración de proteína necesaria para los
estudios de inhibición cae típicamente entre 10-40
nM. Cada alotipo es ensayado para la unión del péptido radiomarcado
por la realización de disoluciones serie de la concentración de la
proteína desde 1 nM hasta 1 \muM de la molécula HLA al principio
del muestreo.
La afinidad de unión de los epítopos peptídicos
potenciales a los receptores del antígeno de leucocitos humano
(HLA) puede ser estudiada usando ensayos de unión comparativos
(Sette y otros, Molecular Immunology 31:
813-822, 1994). Estos ensayos requieren (1)
receptores HLA purificados, (2) un péptido sintético que se une al
receptor del HLA de interés y que contiene un aminoácido tirosina en
una posición que puede ser marcada con yodo 125 radiactiva sin
interrumpir la capacidad del péptido para unir, (3) microglobulina
beta-2 (\beta_{2}m) purificada, y los epítopos
peptídicos sintéticos que tienen que ser ensayados. Las
concentraciones del receptor HLA experimental óptimas son
establecidas por la valoración de la cantidad del receptor HLA en
cada ensayo de unión requerido para conseguir al menos 10% de unión
del péptido marcado total (fijado a 5 nM) (la concentración
\beta_{2}m está también fijada a 1 \muM). Con esos tres
parámetros (la concentración del receptor, \beta_{2}m, y la
concentración del péptido radiomarcado) mantenidos constantes, la
valoración del péptido de ensayo sin marcar es realizada. Cada
reacción de unión es incubada a temperatura ambiente durante
30-80 h para permitir el intercambio de péptidos.
La cuantificación del intercambio del péptido es determinada
separando la fracción unida al complejo péptido/receptor
radiomarcado del exceso de péptido libre y \beta_{2}m mediante
cromatografía de exclusión por tamaño. Usando un sistema HPLC que
encaja con un detector radioisótopo, el porcentaje del péptido
radiomarcado unido al receptor HLA puede ser cuantificado. La
capacidad del péptido de ensayo sin marcar de inhibir la unión del
péptido marcado es después puesta en una gráfico como una función de
su concentración. La afinidad del péptido de ensayo es presentada
como la concentración del péptido de ensayo requerida para inhibir
el 50% del total de la unión del péptido radiomarcado (un valor
llamado IC-50).
Diversos péptidos derivados de las proteínas E6
y E7 de las cepas del virus del papiloma humano (HPV) 16 y 18 han
sido identificadas como, péptido de unión de alta afinidad a HLA
usando este tipo de ensayo. En estos experimentos, los receptores
HLA A1 y A11 fueron purificados a partir de las células humanas que
habían sido transfectadas con los genes HLA-A*0101
y HLA-A*1101, respectivamente (Gorga y otros,
J. Biol. Chem. 262: 16087-16094, 1987). En el caso
de los receptores HLA A3 y A24, los receptores recombinantes HLA
(HLA-A*0301 y HLA-A*2402) fueron
usados, los cuales habían sido producidos en E. coli y
replegados (Garboczi y otros, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:
3429-3433, 1992). Los ejemplos de las condiciones
experimentales y los datos recogidos son presentados en la Tabla
4.
Si se desea, el algoritmo de unión predictivo
descrito anteriormente puede ser usado para priorizar los epítopos
putativos según los tiempos de disociación para cada alelo, con
epítopos que tienen el tiempo de disociación más largo ensayados
primero. Después de que 5-10 epítopos con afinidades
razonables para cada uno de los alelos HLA-A
dominantes (es decir, < 500 nM) son identificados, los ensayos
pueden ser detenidos. Si no se encuentran epítopos con una afinidad
de unión menor de 500 nM, entonces los 5-10 mejores
adaptadores de cada proteína pueden ser seleccionados para los
análisis siguientes.
Los péptidos pueden ser también identificados,
por ejemplo, según los métodos de Parker y otros (J. Immunol.
149: 1896-1904, 1992; J. Immunol. 149:
2580-3587, 1992; J. Biol. Chem. 267:
5451-5459, 1992) y Garboczi y otros (PNAS
89: 3429-3433, 1992).
\vskip1.000000\baselineskip
Las células mononucleares de sangre periférica
(PBMC) a partir de voluntarios normales son purificadas mediante
centrifugación de densidad con Ficoll-Paque TM
(Pharmacia, Piscataway, NJ) a partir de productos de leucoféresis
cribada como HIV, HBV, y HCV seronegativos. Las células dendríticas
(CD) son generadas en cultivos tisulares a partir de fracciones de
PBMC enriquecidos por monocitos como se describe (Tsai y otros,
Crit. Rev. Immunol. 18: 65-75, 1998; Wilson y
otros, J. Immunol. 162: 3070-78, 1999). 10^{7}
PBMC/ml en medio RPMI 1640 libre de
suero(Gibco-BRL) son sembrados en frascos e
incubados 1,5-2,0 h a 37ºC. Las células no
adherentes son eliminadas mediante lavados suaves, y los monocitos
adherentes a plástico que contienen precursores de CD son cultivados
en medio completo en presencia de 50 ng/ml de
GM-CSF y 1000 U/ml de IL-4 (ambos de
R&D Systems, Minneapolis MN) durante 6-7 días.
El medio completo consiste en RPMI 1640 suplementado con 5% de suero
AB humano reunido (C-6 Diagnostics, Mequon, WI),
L-glutamina, penicilina/estreptomicina,
2-ME (Gibco-BRL, Gaithersburg, MD)
y HEPES (JRH Biosciences, Lenexa, KS) a las concentraciones
recomendadas.
Las células no adherentes son recogidas mediante
centrifugación y preparadas directamente para su uso con APC o
criopreservadas. Se determina que las células son CD mediante
morfología y mediante la expresión de un fenotipo CD3/CD16
negativo, MCH de clase I^{hi}, MHC de clase II^{hi},
CD86-positivo como se evalúa mediante
citofluorometría.
A día 0, 5x10^{5} PBL no adherentes son
sembrados con 2,5 x 10^{4} CD irradiados estimulados mediante un
pulso de CD. Las CD están en placas de 48 pocillos en 0,5 ml de
medio RPMI-1640 completo con 10% de suero AB humano
normal suplementado con 10 ng/ml de IL-7. Las CD son
incubadas con los PBL a 37ºC en un incubador de CO_{2}. 10 ng/ml
de IL-10 es añadido 24 h más tarde. A día 7, PBL
autólogos son descongelados e irradiados. 1x10^{6} células por
pocillo son puestas en placas en una placa de 48 pocillos y dejadas
que se adhieran durante 2 h. Los epítopos son añadidos, y las
células son estimuladas con un pulso durante 2 h. Las células son
lavadas una vez, y las que responden son transferidas a pocillos con
estimuladores adherentes. 10 ng/ml de IL-10 es
añadido 24 h más tarde. 20 U de IL-2/ml son añadidos
a día 9 y 100 U/ml de IL-2 a día 11. Las células
son reestimuladas a día 15 de la misma manera. A día 22, las células
en 1-2 pocillos de cada cultivo individual son
cultivadas y contadas. Las que responden son las células que tienen
un número celular aumentado 1,5-3 veces más a día
16 del inicio. Los rendimiento de cultivo totales generalmente
deberían ser al menos 2x10^{6} células.
Las células a ser usadas como dianas son
cultivadas y ajustadas a 6,67 x 10^{5} células/ml en medio. Dos
mls de células son estimuladas con un pulso de 50 ug/ml de cada uno
de los epítopos apropiados (por ejemplo, Flu M1, Test nº 1, ensayo
nº 2, ensayo nº 3, ensayo nº 4). Los efectores son recogidos y
resuspendidos a 1x10^{6} células/ml en medio. 100 \mul son
colocados en placas en cada pocillo de una placa de 96 pocillos de
fondo redondo.
150 \mul de cada célula diana respectiva es
alicuotada al pocillo que contiene las células efectoras apropiadas
para un volumen total de 250 \mul/pocillo. Las placas son
incubadas durante 24 h en un incubador de CO_{2} a 37ºC.
Los kits ELISA de INF\gamma de ENDOGEN
(Woburn, MA) son usados para medir la secreción de INF\gamma. El
ensayo es realizado según las instrucciones del fabricante, y los
sobrenadantes son ensayados en duplicado. Patrones de INF\gamma
de 1000 pg/ml, 400 pg/ml, 160 pg/ml, 64 pg/ml, 25,6 pg/ml, y 0 pg/ml
son ensayados en duplicado. La placa de ensayo es leida en un
Lector de microplacas Molecular Devices Kinetics y los resultados
analizados con un software Vax Plate Reader/SOFTMAX TM.
Las células T2A2 son dianas adecuadas cuando se
ensayan los epítopos E6 y E7 de HPV16 y 18 en el ensayo de células
T (el péptido HPV 2,4 (SEQ ID Nº: 61) es incluido como un ejemplo de
un epítopo HPV de unión a HLA-A2 a ser ensayado de
este modo). Sin embargo, cuando se ensayan otros alotipos (por
ejemplo HLA-A1, -A3, -A11 y -A24), las células
T2A2 no son APCs apropiadas, y el epítopo FluM1 no es un epítopo
testigo positivo apropiado. Dianas apropiadas son células EBV
transformadas de modo autólogo o PBL. Epítopos testigos apropiados
para estos otros alotipos incluyen los siguientes:
HLA-A1, Flu NP 44-52;
HLA-A3, Flu NP 265-273;
HLA-A11, EBNA3 603-611 y EBNA4
416-424; HLA-A24, EBV LMP
419-427. Testigos de inmunización in vitro
adecuados incluyen HLA-A1, MAGE1
61-69; HLA-A2, HBV pol
455-463; HLA-A3, P.
Falciparum LSA-1 94-102;
HLA-A11, HIV gag 325-333; y
HLA-A24, Hiv gp 41 584-591.
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La efectividad de diversos péptidos derivados de
HPV en generar respuestas CTL fue determinada cocultivando células
dendríticas (CD) pulsadas por un péptido con células mononucleares
de sangre periférica (PBMC) de donantes que tienen alotipos HLA
definidos. Los péptidos ensayados incluyen péptidos que tienen
secuencias aminoacídicas correspondientes a la siguientes
secuencias de aminoácidos de la proteína HPV: cepa HPV 16 E7
89-97 (SEQ ID Nº: 96); cepa HPV 16 E6
92-101 (SEQ ID Nº 77); cepa HPV 18 E7
59-67 (SEQ ID Nº: 122); E6 13-21 de
la cepa HPV 18 (SEQ ID Nº: 124), y E6 97-106 de la
cepa HPV 18 (SEQ ID Nº: 125).
Las respuestas de las células T primero fueron
iniciadas usando una modificación de los protocolos publicados
(Tsair y otros, Crit Rev. Immunol. 18: 65-75, 1998;
Wilson y otros. J. Immunol. 162: 3070-78, 1999). Las
células mononucleares de sangre periférica (PBMC) fueron
purificadas a partir de productos de leucoforesis a partir de
donantes normales definidos por HLA-A que fueron
determinados como seronegativos en lo que respecta al virus de la
inmunodeficiencia humana y al virus de la hepatitis B. Las células
dendríticas (CD) fueron pulsadas durante 2 h a 20ºC con 20
\mug/ml en tampón fosfato salino suplementado con 3 \mug/ml de
microglobulina y fueron irradiadas (3000 rad) antes de su uso.
2x10^{5} CD pulsadas con péptido y lavadas fueron cocultivadas
con 2x10^{6} PBMC autólogos no adherentes en placas de cultivo de
24 pocillos en presencia de 10 ng/ml de IL-7. Un
día después, los cultivos fueron suplementados con 10 ng/ml de
IL-10. A días 7 y 14, los cultivos individuales
fueron restimulados mediante la transferencia de células PBMC no
adherentes que respondieron sobre monocitos autólogos irradiados
pulsados con péptidos 20 \mug/ml como se describen anteriormente.
10 ng/ml de Il-10 y 100 U/ml de
IL-2 fueron añadidos 1 y 2 días, respectivamente,
tras cada ciclo de reestimulación.
La reactividad inmune de los cultivos de PBMC
fue evaluada mediante su capacidad para generar una secreción de
INF\gamma específica de los cultivos que responden al péptido a
día 21 tras su incubación con células presentadoras de antígenos
pulsadas bien con el péptido inmunizante o bien con un péptido
antigénico irrelevante que se une específicamente a la misma
molécula diana HLA de clase 1. 10^{5} células efectoras fueron
incubadas con 10^{5} PBMC autólogos, pulsados con un péptido
irradiado durante 24 h a 37ºC en 200 \mul de medio completo. Los
sobrenadantes de estos cultivos fueron medidos en lo que respecta a
la secreción de INF\gamma usando un ensayo ELISA comercial. Los
resultados son mostrados en la Tabla 5. Los datos son presentados
como picogramos de INF-\gamma/ml. La reactividad
específica por un cultivo de PBMC fue definida arbitrariamente como
al menos 20 pg/ml por cultivo de ensayo y una diferencia de 1,5
veces o superior de la secreción de IFN-\gamma en
respuesta al pulso con un péptido de ensayo versus las células
estimuladoras pulsadas con un péptido irrelevante. FluM1
58-66 y los epítopos peptídicos de CTL EBNA4
416-424 fueron usados como testigos irrelevantes A2
y A11, respectivamente.
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\vskip1.000000\baselineskip
Una vez que los epítopos candidatos han sido
identificados, se genera un fragmento de ADN que codifica los
epítopos de interés. Las secuencias que codifican los epítopos son
generadas mediante PCR solapantes o mediante ligación de
oligonucleótidos. Los elemento reguladores incluyen un promotor, una
secuencia Kozak, un ATG iniciador, un codon stop, un intrón y
secuencias de poliadenilación son incluidas en la construcción.
Un promotor T7 de polimerasa está también
presente en el extremo 5' de las secuencias codificantes, y una
secuencia que codifica un mAb FLAG (u otros) determinantes pueden
estar presentes bien directamente 5' de la primera secuencia
codificante del epítopo o 3' de la última secuencia codificante del
epítopo. Las construcciones con y sin una señal diana (por ejemplo,
un péptido líder o secuencia diana de vesículas de carga
endosomales/clase II) son creadas. Las reglas -3, -1 de von Jeijne
(Nucl. Acids. Res. 14: 4683-4690, 1986) son seguidas
para asegurarse la probabilidad de corte con éxito mediante la
peptidasa señal cuando el péptido líder está presente.
El fragmento de PCR es clonado en un vector TA
(Invitrogen) que permite un clonaje directo y rápido de los
productos de PCR. La construcción es secuenciada, y si se han
incorporado errores, la PCR es repetida en condiciones más
rigurosas o sino optimizadas. El clon de PCR, o alternativamente el
ADN producido mediante ligación de oligonucleótidos, es entonces
clonado en un vector de expresión de mamíferos tales como p3K o
pcDNA (Invitrogen). Además, el fragmento es clonado en un vector
vaccinia (tal como pSC11) para la generación de virus de vaccinia
recombinante (véase a continuación) y un vector de expresión
bacteriano (tal como pGEX-5x (Pharmacia)) que
permite la expresión de una proteína de fusión GST del vector de
expresión de levadura o de baculovirus del polipéptido poliepítopo.
La transcripción/traducción in vitro (los kits de Promega T7
TNT acoplados de transcripción/traducción) es realizada según las
instrucciones del fabricante. La proteína traducida, cuando se ha
analizado por SDS-PAGE y por autorradiografía, ha
sido mostrada que produce un polipéptido del tamaño esperado.
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El ensayo de estimulación de células T descrito
en el Ejemplo 2 es usado para determinar qué epítopos son
procesados del polipéptido poliepítopo codificado por la
construcción. Los efectores generados de PBL estimulados in
vitro con cada uno de los epítopos codificados e la construcción
son ensayados en lo que respecta a la secreción de INF\gamma
cuando son incubados con las dianas apropiadas. Las dianas pueden
ser células PBL autólogas o células transformadas por EBV
infectadas con un virus vaccinia recombinante que codifica el
polipéptido poliepítopo (con y sin secuencia líder). El
procesamiento de los polipéptidos poliepítopo liberados de los
epítopos de células T, que son presentados subsiguientemente en la
superficie de las células diana.
La vaccinia recombinante fue producida mediante
procedimientos estándar insertando la construcción que codifica el
polipéptido poliepítopo en el sitio SmaI del vector pSC11
(Chakrabarti y otros, Mol. Cell. Biol. 5: 3404-09,
1985) y generando después vaccinia recombinante mediante métodos
conocidos en la técnica.
Para determinar si el polipéptido poliepítopo
codificado es procesado y los epítopos esperados son presentados
por moléculas HLA, el ensayo de estimulación in vitro pueden
ser realizados como se describe en el Ejemplo 2, con la excepción
de que las dianas son APCs tranformadas con EBV autólogo infectadas
con el virus vaccinia recombinante que contiene las secuencia
codificantes poliepítopo. En el experimento ilustrado en la Fig. 3,
las APC tranformadas por EBV a partir de un donante fueron
infectadas con virus vaccinia recombinante que codifica el péptido
de ensayo 16E7 44-52, a un m.o.i. de 5 pfu. Las
células testigo fueron infectadas con virus vaccinia salvaje. Las
células fueron incubadas con el virus durante 2,5 h en presencia de
^{51}Cr. Tras el lavado, las células diana infectadas por
vaccinia fueron puestas en contacto durante 5 h con células T
previamente activadas con 16E7 44-52. Liberación de
^{51}Cr en el sobrenadante fue tomada como medida de lisis de
células diana mediante las células efectoras. Como se muestra en la
Fig. 3, las células diana infectadas con un vector vaccinia que
codifica el péptido de ensayo fueron más eficientemente lisadas
mediante células efectoras que fueron las células diana testigo,
sugiriendo que el péptido fue expresado en las células y
presentadas de modo eficaz mediante las moléculas HLA de las
células.
En su lugar, las dianas pueden ser PBL
infectados con el virus recombinante, o células 7221 que expresan un
HAL único y que son transfectadas con la construcción p3k o pcDNA
(o cualquier vector de expresión de mamífero) que codifica el
polipéptido poliepítopo.
Los animales transgénicos HLA-A2
pueden ser usados para verifica que la construcción funciona para
generar epítopos HLA-A2 cuando son suministrados
in vivo. La construcción que codifica para el polipéptido
poliepítopo en el vector de expresión del mamífero es encapsulada
en micropartículas. Se inyectada en ratones transgénicos para
HLA-A2, y las respuestas de las células T son
examinadas subsiguientemente como se describen previamente (Hedley
y otros, Naure Med. 4: 365-68, 1998).
Alternativamente, el vector de expresión puede ser suministrado
como ADN desnudo. Las células diana son células que expresan
HLA-2 (por ejemplo, células T2A2 o
EL4-A2) pulsadas con el epítopo que se une a
HLA-A2 que es ensayado, y células similares
infectadas con el vector vaccinia que codifica el poliepítopo. De
esta manera los epítopos HLA-A2 que son procesados y
presentado in vivo tras la administración de la construcción
son identificados. Los resultados positivos indican que el
procesamiento del polipéptido poliepítopo está presente como se
predice, pero no distingue sin embargo entre los epítopos
presentado por las moléculas MHC murinas endógenas del ratón y las
presentadas por las moléculas HLA-A2 derivadas del
transgén. La inmunización de los ratones transgénicos con un
plásmido que codifica un polipéptido poliepítopo que contiene un
número de epítopos derivados de HPV, algunos de los cuales son
conocidos mediante la unión de HLA-A2 y al menos
uno de los que se conoce que unen a una molécula MHC murina
endógena, fue mostrado que produce una respuesta inmune frente a
dos epítopos, incluyendo el que se conoce que se une a la molécula
MHC murina.
\vskip1.000000\baselineskip
Las respuestas CTL fueron medidas en ratones
inmunizados con ADN encapsulado en microesferas que codifican un
polipéptido poliepítopo. El ADN usado para la inmunización fue
designado HPV cra 16/18 (secuencia nucleotídica, que codifica el
polipéptido de la SEQ ID Nº: 160). Las células efectoras generadas
en ratones inmunizados por ADN fueron ensayadas in vitro en
lo que respecta a su respuesta en presencia de células diana
infectadas con el virus vaccinia que codifican un polipéptido
poliepítopo. Dos construcciones poliepítopo fueron evaluadas
separadamente en células diana: (1) HPV Dra 16/18 (secuencia
aminoacídica de SEQ ID Nº: 160 y (2) HPV 16/18 (secuencia
aminoacídica de SEQ ID Nº: 158).
Los ratones de línea 6 HLA-A
*0201/H-2K^{b} transgénicos (C57BL/6 x B10.D2)
originada a partir de la colonia parental en la Clínica Scripps del
Instituto de Investigación y fueron mantenidas en condiciones
convencionales limpias. Los ratones
*0201/H-2K^{b} transgénicos para
HLA-A fueron inyectados intramuscularmente en las
extremidades traseras con 30 \mug de ADN p3KHPVDra 16/18
encapsulado en microesferas PEG-DSPE. Los ratones
fueron inyectados a día 30 y 48 con 50 \mug de p3KHPVDra 16/18
encapsulado en microesferas PEG-DSPE.
A día 64, los ratones fueron sacrificados y se
tomaron sus bazos. Se preparó una suspensión de célula única, las
células juntadas, las células rojas de la sangre lisadas, y la
población de células enriquecidas para CD3+ obtenidas usando una
columna de inmunoafinidad (R&D Systems, Minneapolis, MN). Los
bazos fueron reestimulados in vitro con blastos de células B
estimuladas con lipopolisacárido (LPS) singénicos de tres días
irradiados (relación 1:1) que han sido preincubados durante dos
horas a 37º con 100 \muM de péptido en RPMI 1610 (JRH
Biosciences, Lenexa, KS). Los péptidos usados para la expansión
in vitro fueron: (1) HPV16E648-56 (péptido
124: EVYDFAFRD; SEQ ID Nº:161; y (2) HPV16E786-93
(péptido 272; TLGIVCPI; SEQ ID Nº: 61). Los péptidos fueron
disueltos en 100% DMSO a 20 mg/ml y almacenados a -20ºC hasta su
uso. En cada pocillo de una placa de 6 pocillos 10^{5} efectores
fueron puestos en placas en RPMI 1610 suplementado con 10% de suero
bovino fetal (JRH Biosciences, Lenexa, KS), antibióticos (50 IU/ml
de penicilina y 50 \mug/ml de estreptomicina), HEPES (JRH
Biosciences, Lenexa, KS), 30 \muM de 2-ME
(Gibco-BRL, Gaithersburg, MD) con la concentración
del péptido final de 10 \muM. A día 65, 10 IU/ml de
mIL-2 fueron añadidos. Los efectores fueron
recogidos a día 71 y ensayados con respecto a las respuestas
específicas de péptido midiendo la liberación de
INF-\gamma en un ensayo ELISPOT, como se describe
a continuación.
La línea celular diana usada en estos
experimentos, una línea celular EL4
HLA-A2/H-2Kb, fue generada
transfectando células EL4 (C57BL/6 timoma, H-2b)
con un plásmido pSV2 que contiene la construcción quimera
HLA-A2.1 (dominio a1 y a2)/H-2Kb
(dominio a3) y cotransfectando con el plásmido pSV2 neo que contiene
el gen de resistencia a neomicina.
Dos vectores vaccinia recombinantes (vVac), Vac
HPV Dra 16/18 y Vac HPV 16/18, fueron generados mediante la
inserción de bien las construcciones pSC11 HPV Dra 16/18 o bien pSC1
HPV 16/18 en el gen de timidina quinasa del virus vaccinia salvaje
(una cepa de Western Reserve adaptada a TC; ATCC Nº VR 1354). El
virus recombinante resultante sufrió tres ciclos de cribado usando
una selecciona dual con BrdU (inactivación de la actividad timidina
quinasa) y X-gal (actividad pSC11 LacZ) en células
hospedantes con un fenotipo TK- (143B, ATCC
CRL-8303). Las dianas infectadas (células EL4
HLA-A2/H-2Kb) fueron generadas con
10 MOI rVac a 37ºC durante seis horas.
Un kit ELISPOT de IFN-\gamma
murino preparado comercialmente (R&D Systems, Minneapolis, MN)
fue utilizado según el protocolo sugerido por el fabricante. Cada
pocillo de placa de 96 pocillos recubierta de una membrana de
fluoruro de polivinilideno (PVDF) hidrofóbica fue preabsorbida con
un anticuerpo monoclonal (mAb) anti IFN-\gamma y
bloqueado con 10% RPMI durante 20 minutos. Aproximadamente
10^{4}-10^{5} efectores fueron entonces
mezclado con 10^{5} dianas (células EL4
HLA-A2/H-2Kb infectadas con
vaccinia) durante 18-20 horas a 37ºC en 5%
CO_{2}. A continuación, cada pocillo fue lavado cuatro veces e
incubado toda la noche a 4ºC con un mAb anti IFN\gamma no
competitivo biotinilado. Los pocillos fueron entonces lavados tres
veces, incubados durante dos horas a temperatura ambiente con
fosfatasa alcalina estreptavidina, lavado de nuevo tres veces y
revelado con una incubación de 30 minutos con BCIP/NBT y lavada
extensamente con agua destilada. Las células que secretan
IFN-\gamma (manchas(fueron enumeradas en un
sistema lector ELISPOT automatizado (Carl Zeiss Inc. Thornwood, NY)
con software KS ELISPOT 4.2 por Zellnet Consulting, Inc. (Nueva
York, NY).
Como se muestra en la Figura 6, la inmunización
de los ratones con ADN que codifica una construcción poliepítopo
HPV generó CTLs específicos de péptido. Los datos presentados como
la medida de manchas IFN-\gamma^{+} y
representan la respuesta específica de antígeno por millón de
células CD3^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
Los ratones transgénicos HLA-A
*0201/H-2KB (descritos en el Ejemplo 6) fueron
sujetos secuencialmente a: (1) una inyección de ADN encapsulado en
microsferas que codifica un polipéptido poliepítopo; y (2) una
infección con virus de vaccinia que codifica el polipéptido
poliepítopo. El ensayo IFN-\gamma ELISPOT descrito
en el Ejemplo 6 fue usado para detectar y enumerar las células T
específicas para epítopos de CTL codificados por ADN en células de
bazo frescas, no expandidas.
El régimen del tratamiento fue como sigue (véase
Tabla 6). Ratones de diez semanas fueron inyectados con microesferas
PEG/DSPE que contiene 100 \mug de ADN. Veintiseis días después de
la inyección de la microsfera, los ratones fueron infectados
intraperitonealmente con 1x10^{7} unidades formadoras de placas
del virus vacuna que codifican el mismo polipéptido
poliepítopo.
Nueve días después de la inyección de la vacuna,
los bazos fueron recogidos, las células T CD3+ fueron enriquecidas
(columnas de enriquecimiento de células T; R&D Systems,
Minneapoils, MN), y liberación de IFN-\gamma
específica de péptido fue detectada usando un ELISPOT de
IFN-\gamma murino (R&D Systems, Minneapoils,
MN). Para cada tratamiento antigénico, cinco pocillos de
2,5x10^{5} células de bazo enriquecidas de células T fueron
coincubadas con 2x10^{5} células estimuladoras
EL4-A2/Kb que fueron bien no tratadas o prepulsadas
con epítopos peptídicos de clase I definidos. Como testigos, las
células de bazo fueron también incubadas con estimuladores bien:
(1) infectadas con 20 moi de virus vaccinia salvaje; o (2) tratadas
con 25 \mug de Con A/ml. Las placas fueron incubadas a 37ºC en
10% CO_{2} durante 48 horas y después reveladas para la detección
de IFN-\gamma. Las respuestas
IFN-\gamma específicas de HPV fueron documentadas
como el número de células formadoras de manchas (SCF)/1x10^{6}
esplenocitos enriquecidos en células T suministradas. (el valor
absoluto de SFCs son mostrados en la Tabla 7). La tasa de valor de
fondo de la secreción de IFN-\gamma fue definida
como SFC/1x10^{6} esplenocitos enriquecidos en células T
suministradas incubados con células estimuladores pulsadas con un
péptido irrelevante (epítopo cp36 de Plasmodium falciparum
restringido a HLA-A2; lote Nº 322). Las respuestas
específicas a péptido HPV fueron consideradas positivas si eran dos
veces el valor de fondo. La frecuencia de SFC específicas para
cp36/1x10^{6} células fue 0, 0 y 12 para los grupos 0, 1, y 2,
respectivamente.
\vskip1.000000\baselineskip
Mientras que el invento ha sido descrito
conjuntamente con la descripción detallada de la misma, la
descripción precedente pretende ilustrar y no limitar el alcance
del invento, que se define por el alcance de las reivindicaciones
anexas.
<110> Eisai corporation of North
America.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> ÁCIDOS NUCLEICOS QUE CODIFICAN
POLIPÉPTIDOS POLIEPÍTOPE
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 27.20.77866
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> PCT/US00/25559
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
2000-09-18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 09/398.534
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1999-09-16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 60/154.665
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1999-09-16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 09/458.173
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1999-12-09
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 60/169.846
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1999-12-09
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 161
\vskip0.400000\baselineskip
<170> FastSEQ para windows, versión
4.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
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\hskip1cm16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
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<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 9
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm19
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<210> 5
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<211> 9
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
<Z11> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1000
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1001
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1002
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1003
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1004
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1005
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
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\hskip1cm27
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm29
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<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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<400> 21
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\hskip1cm30
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<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm31
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
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<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm32
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<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm33
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm34
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<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm35
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm36
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm37
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<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm38
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la Hepatitis B
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la Hepatitis B
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm46
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la Hepatitis B
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
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<210> 39
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<211> 8
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
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\hskip1cm48
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<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
\newpage
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<211> 10
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<400> 44
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<400> 52
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
\newpage
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<400> 53
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\hskip1cm62
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<212> PRT
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<213> Virus de la Hepatitis B
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 55
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 57
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 58
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> S
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 62
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\hskip1cm71
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<210> 63
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<211> 25
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<211> 20
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 64
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\hskip1cm73
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<210> 65
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<211> 24
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 65
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<211> 23
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
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\hskip1cm75
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 67
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 68
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<211> 14
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 17
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 69
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\hskip1cm78
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<210> 70
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 70
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\hskip1cm79
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm80
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm81
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm82
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<210> 74
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
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\hskip1cm83
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
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<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm84
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 76
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 76
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm85
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm86
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm87
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
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<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm88
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm89
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm90
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm91
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
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\hskip1cm92
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 84
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 84
\vskip1.000000\baselineskip
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 122
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<210> 123
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 124
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\hskip1cm133
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<210> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 125
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\hskip1cm134
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de fusión artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 126
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 127
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 127
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm136
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 128
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 128
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm137
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 129
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 129
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm138
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 130
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<211> 10
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 130
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\hskip1cm139
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<210> 131
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 131
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<210> 132
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 132
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<210> 133
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 133
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 135
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<210> 136
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 136
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 142
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 143
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 145
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<210> 146
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 147
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 148
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<210> 149
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<210> 150
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 150
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<210> 151
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 151
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\hskip1cm160
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<210> 152
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<211> 42
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 152
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\hskip1cm161
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<210> 153
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<211> 27
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 153
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<210> 154
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<211> 19
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<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 154
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\hskip1cm163
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 155
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 155
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm164
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 156
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus del Papiloma humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 156
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm165
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 157
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 236
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de fusión artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 157
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 158
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<211> 237
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de fusión artificial
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 158
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 159
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 119
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de fusión artificial
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<400> 159
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 160
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 261
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia de fusión artificial
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<400> 160
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 161
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Virus del Papiloma humano
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<400> 161
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm170
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (20)
1. Un ácido nucleico que codifica un polipéptido
híbrido cuya secuencia comprende una secuencia señal y
- (i)
- los siguientes segmentos de la cepa 16 E6 del virus del papiloma humano (HPV):
- AMFQDPQERPRKLPQLCTEL (SEQ ID Nº: 64),
- LLRREVYDFAFRDLCIVYRDGNPY (SEQ ID Nº: 65), y
- KISEYRHYCYSLYGTTLEQQYNK (SEQ ID Nº: 66),
- (ii)
- los siguiente segmentos de la cepa 16 H7 de HPV:
- TLHEYMLDLQPETTDLYSY (SEQ ID Nº: 67),
- QAEPDRAHYNIVTF (SEQ ID Nº: 68), y
- LLMGTLGIVCPICSQKP (SEQ ID Nº 69);
- (iii)
- los siguiente segmentos de la cepa 18 E6 de HPV:
- RRPYKLPDLCTELNTSLQDIEITCVYCKTVLELTEVFEFAFK (SEQ ID Nº: 152), y
- SVYGDTLEKLTNTGLYNLLIRCLRCQK (SEQ ID Nº: 153), y
- (iv)
- los siguientes segmentos de la cepa 18 E7 de HPV:
- KATLQDIVLHLEPQNEIPV (SEQ ID Nº: 154),
- HTMLCMCCKCEARI (SEQ ID Nº: 155), y
- AFQQLFLNTLSFVCPWC (SEQ ID Nº: 156),
Siempre que el polipéptido híbrido no comprenda
una secuencia idéntica a la secuencia de bien la proteína E6
entera, intacta o bien E7 entera, intacta de la cepa 16 ó 18 de
HPV.
2. El ácido nucleico de la reivindicación 1, en
el que la secuencia señal es la secuencia líder de
HLA-Dra (SEQ ID nº: 63).
3. El ácido nucleico de la reivindicación 1, en
el que el polipéptido híbrido comprende la secuencia aminoacídica
de la SEQ ID Nº: 157.
4. El ácido nucleico de la reivindicación 1, en
el que el polipéptido híbrido comprende la secuencia aminoacídica
de la SEQ ID Nº: 160.
5. Un plásmido o vector viral que comprende el
ácido nucleico de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4.
6. Una microesfera que comprende una matriz o
cubierta polimérica y el ácido nucleico de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4.
7. La microesfera de la reivindicación 6, en la
que la matriz polimérica o cubierta consiste esencialmente en un
polímero de ácido poli-co-glicólico
(PLGA).
8. Una composición terapéutica que comprende el
ácido nucleico de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 y un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
9. La composición de la reivindicación 8,
incluyendo además un adyuvante.
10. Un liposoma que comprende el ácido nucleico
de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4.
11. El polipéptido híbrido que codifica el ácido
nucleido de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4.
12. El ácido nucleico de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, el plásmido o vector viral de la
reivindicación 5, la microesfera de la reivindicación 6 ó 7, la
composición terapéutica de la reivindicación 8 ó 9, o el liposoma
de la reivindicación 10 para su uso como medicamento.
13. El ácido nucleico de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, el plásmido o vector viral de la
reivindicación 5, la microesfera de la reivindicación 6 ó 7; la
composición terapéutica de la reivindicación 8 ó 9, o el liposoma
de la reivindicación 10 para su uso en desencadenar una respuesta
inmune en un mamífero.
14. El uso del ácido nucleico de una cualquiera
de las reivindicaciones 1 a 4, el plásmido o vector viral de la
reivindicación 5, la microesfera de la reivindicación 6 ó 7; la
composición terapéutica de la reivindicación 8 ó 9, o el liposoma
de la reivindicación 10 para la fabricación de un medicamento para
desencadenar una respuesta inmune en un mamífero.
15. El ácido nucleico, plásmido o vector viral,
microesfera, composición terapéutica o liposoma para su uso según
la reivindicación 13 o el uso de la reivindicación 14, en el que el
mamífero es un humano.
16. El ácido nucleico de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, el plásmido o vector viral de la
reivindicación 5, la microesfera de la reivindicación 6 ó 7; la
composición terapéutica de la reivindicación 8 ó 9, o el liposoma
de la reivindicación 10 para su uso en el tratamiento o prevención
del condiloma exofítico, condiloma plano, cáncer cervical, papiloma
respiratorio, papiloma conjuntival, infección por HPV del tracto
genital, displasia cervical, lesiones intraepiteliales escamosas de
alto grado, o infecciones HPV anales.
17. El uso del ácido nucleico de una cualquiera
de las reivindicaciones 1 a 4, el plásmido o vector viral de la
reivindicación 5, la microesfera de la reivindicación 6 ó 7, la
composición terapéutica de la reivindicación 8 ó 9, o el liposoma
de la reivindicación 10 para la fabricación de un medicamento para
el tratamiento o prevención del condiloma exofítico, condiloma
plano, cáncer cervical, papiloma respiratorio, papiloma conjuntival,
infección por HPV del tracto genital, displasia cervical, lesiones
intraepiteliales escamosas de alto grado, o infecciones HPV
anales.
18. El ácido nucleico, plásmido o vector viral,
microesfera, composición terapéutica o liposoma para su uso según
la reivindicación 15 o 16 o el uso de la reivindicación 15 ó 17, en
el que el medicamento es formulado para la administración directa
al tejido mucoso.
19. El ácido nucleico, plásmido o vector viral,
microesfera, composición terapéutica o liposoma para su uso según
la reivindicación 18 o el uso de la reivindicación 18, en el que el
tejido de la mucosa es tejido vaginal o anal.
20. El ácido nucleico, plásmido o vector viral,
microesfera, composición terapéutica o liposoma para su uso según
la reivindicación 15 ó 16 o el uso de la reivindicación 15 o 17, en
el que el medicamento es formulado para su administración
subcutánea o intramuscular.
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