ES2290950T3 - Mutantes recombinantes para inducir respuestas inmunitarias especificas. - Google Patents
Mutantes recombinantes para inducir respuestas inmunitarias especificas. Download PDFInfo
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Abstract
UN PLASMIDIO RECOMBINANTE CONSTA DE GENES DE BORDETELLA CYAC Y CYAA QUE DIRIGEN LA EXPRESION DE BORDETELLA, CYCLASE DE ADENYLATE EN UNA CELULA HUESPED TRANSFORMADA. UNA MOLECULA DE ADN RECOMBINANTES PUEDE CONSTAR DE GENES BORDETELLA CYAA QUE CONTIENEN AL MENOS UNA INSERCION DE UNA SECUENCIA DE ADN HETEROLOGA EN AL MENOS UN EMPLAZAMIENTO PERMISIVO. SE PROPORCIONAN METODOS PARA INDUCIR UNA CELULA ESPECIFICA B, CELULA DE AYUDA T, Y RESPUESTA INMUNE A CELULAS TCL.
Description
Mutantes recombinantes para inducir respuestas
inmunitarias específicas.
La invención se refiere a una composición para
inducir una respuesta inmunitaria, en la que dicha composición
comprende una adenilato ciclasa recombinante obtenida mediante la
expresión del gen cyaC de Bordetella sp. unido
funcionalmente a una secuencia de control de la expresión, y de un
gen cyaA recombinante de Bordetella sp. que codifica para la
adenilato ciclasa unido funcionalmente a una secuencia de control
de la expresión, en la que dicho gen cyaA contiene al menos una
inserción de una secuencia de ADN heteróloga en al menos un sitio
permisivo y en la que la adenilato ciclasa carece de actividad
catalítica: y en la que dicha expresión adicional se realiza en una
célula huésped seleccionada del grupo de bacterias, células
eucariotas y levaduras.
Esta solicitud describe una molécula de ADN
recombinante que comprende el gen de la toxina de adenilato ciclasa
(cyaA) o un fragmento del mismo que contiene una inserción de una
secuencia de ADN heteróloga en un sitio permisivo, en la que el
fragmento codifica para un polipéptido que muestra las mismas
propiedades inmunológicas que el producto génico CyaA. En
realizaciones específicas de esta invención, la secuencia de ADN
heteróloga codifica para un epítopo inmunológico. Puede obtenerse
CyaA a partir de cualquier microorganismo o de otra manera.
Esta solicitud también describe una adenilato
ciclasa recombinante que comprende un epítopo heterólogo en un
sitio permisivo. En realizaciones específicas de esta invención, el
epítopo heterólogo se inserta en el dominio catalítico
N-terminal de la adenilato ciclasa recombinante y
puede presentarse al sistema inmunitario, en asociación con el
complejo mayor de histocompatibilidad (CMH) de clase I. En otras
realizaciones de esta invención, el epítopo heterólogo se inserta
en el dominio catalítico C-terminal y puede
presentarse al sistema inmunitario en asociación con el CMH de
clase II.
También se describen métodos para inducir
respuestas inmunitarias específicas en animales inmunizados con
composiciones inmunológicas que comprenden adenilato ciclasas
recombinantes. En realizaciones específicas de esta invención, se
inducen específicamente respuestas de células B, CD4^{+} y células
T citotóxicas. Con la llegada de las técnicas de ADN recombinante
para modificar secuencias de proteínas, se ha dirigido un trabajo
considerable hacia alterar o mejorar específicamente proteínas
existentes. Se ha logrado la modificación de aminoácidos
específicos de enzimas de estructura conocida para alterar la
especificidad mediante mutagénesis dirigida al sitio. Aunque el
conocimiento de la estructura tridimensional se restringe a un
número limitado de proteínas, las comparaciones de secuencia entre
miembros de familias de proteínas homólogas, así como las
predicciones cada vez más precisas de las estructuras secundaria y
terciaria, ofrecen una base útil para rediseñar la función de la
enzima.
Otro enfoque de gran interés potencial es la
inserción de nuevas secuencias peptídicas dentro de una proteína
definida. Se ha usado eficazmente la mutagénesis por inserción para
estudiar la topología de proteínas de membrana (Charbit et
al., 1986, 1991) y, en el caso de proteínas solubles, para
determinar regiones de flexibilidad natural (Barany, 1985a, 1985b;
Freimuth y Ginseberg, 1986; Starzyk et al., 1989; Freimuth
et al., 1990; Kumar y Black, 1991). Además, la inserción de
un péptido exógeno específico dentro de una enzima podría alterar
sus propiedades catalíticas o reguladoras, proporcionando así una
base racional para la ingeniería proteica. Adicionalmente, puede
usarse la ingeniería proteica para alterar o dirigir específicamente
la respuesta inmunitaria hacia un epítopo definido alterando el
entorno del epítopo.
La respuesta inmunitaria puede dividirse en dos
sistemas distintos, inmunidad celular e inmunidad humoral. La
inmunidad humoral está mediada por moléculas solubles,
principalmente anticuerpos. En cambio, la inmunidad celular está
mediada por células intactas, principalmente linfocitos T. La
respuesta inmunitaria exacta generada por un antígeno extraño
depende de la naturaleza del antígeno y del entorno en el que se
presenta el antígeno o un epítopo del antígeno al sistema
inmunitario.
El acontecimiento iniciador en una respuesta
inmunitaria humoral es la unión de un epítopo B a una
inmunoglobulina (Ig) asociada a membrana en un subconjunto
específico de células B. Esta unión estimula la entrada de las
células B en el ciclo celular, dando como resultado finalmente la
producción de anticuerpos que reconocen específicamente el epítopo
B. La respuesta de anticuerpos provocada por un epítopo B puede ser
dependiente de células T o independiente de células T. Las
respuestas dependientes de células T se caracterizan por una
respuesta primaria muy baja seguida por una respuesta de memoria de
IgG. La respuesta independiente de células T, en cambio, se
caracteriza por una respuesta de anticuerpos IgM rápida, intensa y
prolongada.
La respuesta inmunitaria mediada por células se
activa mediante epítopos T. Los epítopos T se encuentran
generalmente en dos categorías. Muchos epítopos pueden activar
tanto células T como células B y, por tanto, son tanto epítopos T
como epítopos B. Otros epítopos son formas desnaturalizadas de
determinantes antigénicos naturales y no pueden activar una
respuesta inmunitaria humoral mediada por células B.
Para activar una respuesta inmunitaria mediada
por células, el epítopo T debe asociarse con moléculas del complejo
mayor de histocompatibilidad (CMH). El CMH es una región de genes
altamente polimórficos cuyos productos se expresan sobre la
superficie de diversas células. Existen en principio dos grupos de
CMH. El CMH de clase I es una proteína transmembrana compuesta de
dos cadenas polipeptídicas. La molécula contiene una región de
unión a péptido extracelular que es polimórfica en el sitio de unión
al péptido, una región similar a inmunoglobulina, una región
transmembrana y un dominio citoplasmático que contiene sitios de
fosforilación para una proteína cinasa dependiente de AMPc.
El CMH de clase I se encuentra en prácticamente
todas las células nucleadas. El CMH de clase I se asocia
generalmente con epítopos T sintetizados endógenamente para la
presentación al sistema inmunitario mediado por células. Dado que
esta asociación del CMH de clase I con antígenos específicos se
produce en el retículo endoplasmático, los antígenos que se
internalizan mediante una célula presentadora de antígenos por medio
de la ruta endocitótica generalmente no se asociarán con el CMH de
clase I. La asociación de un epítopo T específico con el CMH de
clase I y la incorporación del complejo antígeno-CMH
de clase I sobre la superficie de una célula estimula a linfocitos
T citotóxicos (CTL) específicos. Entonces, los linfocitos T
citotóxicos estimulados pueden destruir las células que expresan el
complejo antígeno-CMH mediante exocitosis por
gránulos de una proteína formadora de poros de membrana que provoca
la lisis celular y la secreción de una toxina celular que activa
enzimas que degradan el ADN. Sin embargo, la activación de las
células CTL también requiere la activación de células T
cooperadoras en determinados
casos.
casos.
La otra clase principal de proteínas del CMH es
el CMH de clase II. El CMH de clase II también tiene proteínas
transmembrana. Como el CMH de clase I, el CMH de clase II comprende
dos cadenas polipeptídicas e incluye una región de unión a péptido
polimórfica, una región similar a inmunoglobulina, una región
transmembrana y un dominio citoplasmático. Sin embargo, a
diferencia del CMH de clase I, las moléculas de clase II se expresan
sólo sobre "células presentadoras de antígeno" tales como
linfocitos B, macrófagos, células dendríticas, células endoteliales
y otras pocas. Los epítopos T se asocian con el CMH de clase II
cuando un antígeno que comprende el epítopo T se une a la
superficie de una célula presentadora de antígeno. El antígeno entra
en la célula por fagocitosis o mediante endocitosis mediada por
receptor en vesículas recubiertas de clatrina. Alternativamente,
pueden internalizarse antígenos solubles mediante pinocitosis en
fase fluida. Una vez que el antígeno se internaliza, se procesa
mediante proteasas celulares en vesículas ácidas dando como
resultado péptidos de 10-20 aminoácidos de
longitud. Estos epítopos se unen a moléculas del CMH de clase II en
vesículas intracelulares y el complejo se transporta a la
superficie celular. La presencia del complejo CMH de clase
II-antígeno sobre la superficie de células
presentadoras de antígeno da como resultado la estimulación de
subpoblaciones de células T cooperadoras. Estas células ayudan en
la función de los CTL así como en las respuestas de células B.
Además, las células T cooperadoras pueden mediar respuestas
inflamatorias.
Dos factores importantes para determinar el
carácter de una respuesta inmunitaria son la naturaleza del antígeno
que se reconoce y la selección como diana intracelular o
extracelular del antígeno. Por tanto, un epítopo de célula T que
puede seleccionarse como diana para entrar en una célula
presentadora de antígeno de una forma dependiente de endocitosis
mediada por receptor se asociará con el CMH de clase II y activará
células T cooperadoras pero no células CTL. Además, si un epítopo
de célula T extraño puede dirigirse al citoplasma de una célula
diana de una manera independiente de endocitosis mediada por
receptor, el epítopo se asociará con el CMH de clase I y permitirá
la activación de células CTL. Por tanto, existe una necesidad en la
técnica de seleccionar epítopos como diana específicamente con el
fin de activar selectivamente una respuesta inmunitaria humoral o
mediada por células.
La invención se refiere a una composición para
inducir una respuesta inmunitaria, en la que dicha composición
comprende una adenilato ciclasa recombinante obtenida mediante la
expresión del gen cyaC de Bordetella sp. funcionalmente
unido a una secuencia de control de la expresión, y de un gen cyaA
recombinante de Bordetella sp. que codifica para la
adenilato ciclasa funcionalmente unido a una secuencia de control de
la expresión, en la que dicho gen cyaA contiene al menos una
inserción de una secuencia de ADN heteróloga en al menos un sitio
permisivo y en la que la adenilato ciclasa carece de actividad
catalítica; y en la que dicha expresión adicional se realiza en una
célula huésped seleccionada del grupo de bacterias, células
eucariotas y levaduras.
Se describe un plásmido recombinante útil para
expresar adenilato ciclasa, en el que el plásmido comprende los
genes cyaA y cyaC de la adenilato ciclasa de Bordetella sp.,
u homólogos de los mismos, unidos funcionalmente a una secuencia de
control de la expresión, en el que el plásmido recombinante dirige
la expresión de la adenilato ciclasa de Bordetella sp. en
una célula huésped transformada seleccionada del grupo que consiste
en bacterias, células eucariotas y levaduras. En una realización
específica de esta invención, el gen cyaA y el gen cyaC son el gen
cyaA y el gen cyaC de Bordetella pertussis. En otras
realizaciones específicas de esta invención, la célula huésped es
E. coli, la secuencia de control de la expresión comprende el
promotor lac, o el gen cyaA comprende ADN que codifica para un
epítopo heterólogo. En una realización específica, el plásmido
recombinante es pCACT3.
Esta solicitud también describe una molécula de
ADN recombinante que comprende el gen de la adenilato ciclasa cyaA
de Bordetella sp. u homólogos del mismo, en la que el gen
cyaA contiene al menos una inserción de una secuencia de ADN
heteróloga en al menos un sitio permisivo. En realizaciones de esta
invención, la secuencia de ADN heteróloga codifica para menos de 25
aminoácidos, entre 10-20 aminoácidos y 16
aminoácidos. En realizaciones específicas de esta invención, la
secuencia de ADN heteróloga es un epítopo del virus de la
poliomelitis, virus VIH, virus de la gripe; o virus de la
coriomeningitis linfocítica y se inserta en el dominio catalítico
N-terminal o el dominio
C-terminal.
Esta solicitud describe además una adenilato
ciclasa de Bordetella pertussis recombinante que comprende
un epítopo heterólogo en un sitio permisivo. En una realización de
esta invención, la adenilato ciclasa está en forma detoxificada. En
realizaciones específicas de esta invención, el epítopo heterólogo
se inserta en el dominio catalítico N-terminal y el
epítopo heterólogo se presenta a linfocitos T CD8^{+} en
asociación con moléculas del complejo mayor de histocompatibilidad
de clase I. En otras realizaciones específicas de esta invención,
el epítopo heterólogo se inserta en el dominio
C-terminal y se presenta a linfocitos T CD4^{+}
en asociación con moléculas del complejo mayor de
histocompatibilidad de clase II.
En una realización específica de esta invención,
el sitio permisivo de la adenilato ciclasa de Bordetella
pertussis se selecciona del grupo que consiste en los residuos
137-138, los residuos 224-225, los
residuos 228-229, los residuos
235-236 y los residuos 317-318. En
otras realizaciones específicas de esta invención, el epítopo
heterólogo de la adenilato ciclasa de Bordetella pertussis
recombinante es el epítopo 118-132 de la
nucleoproteína del virus de la coriomeningitis linfocítica, un
epítopo del virus VIH, en particular el epítopo incluido en el
bucle V3, un epítopo del virus de la gripe, o un epítopo del virus
de la poliomelitis, en particular el epítopo
103-116 del virus de la poliomelitis.
Además, esta solicitud describe un método para
inducir una respuesta inmunitaria de células B que comprende
inmunizar animales con bacterias vivas que expresan una adenilato
ciclasa recombinante o una composición inmunológica que comprende
una adenilato ciclasa recombinante o un fragmento de AC, en el que
la adenilato ciclasa recombinante comprende un epítopo B
heterólogo.
En realizaciones específicas de esta invención,
las bacterias usadas en el método para inducir una respuesta
inmunitaria de células B son E. coli. En una realización
adicional, los animales inmunizados con la composición inmunológica
o las bacterias son seres humanos. En realizaciones específicas, el
epítopo B heterólogo es un epítopo B del virus de la poliomelitis,
un epítopo B de VIH, un epítopo B del virus de la coriomeningitis
linfocítica, o un epítopo B del virus de la gripe.
También se describe un método para inducir una
respuesta inmunitaria de células T CD4^{+}, en el que el método
comprende inmunizar animales con una composición inmunológica que
comprende una adenilato ciclasa recombinante, en el que la
adenilato ciclasa recombinante comprende un epítopo T heterólogo en
un sitio permisivo en el dominio C-terminal de
dicha adenilato ciclasa recombinante.
En una realización específica de esta invención,
la composición inmunológica comprende además un adyuvante adecuado.
En una realización adicional, el epítopo T heterólogo es un epítopo
T del virus de la poliomelitis, VIH, virus de la gripe o virus de
la coriomeningitis linfocítica.
Esta solicitud describe además un método para
inducir una respuesta inmunitaria de células T CD8^{+}, en el que
el método comprende inmunizar animales con una composición
inmunológica que comprende una adenilato ciclasa recombinante, en
el que la adenilato ciclasa recombinante comprende al menos un
epítopo de CTL heterólogo en al menos un sitio permisivo en el
dominio catalítico N-terminal de la adenilato
ciclasa recombinante.
En una realización específica de esta invención,
la composición inmunológica comprende además un adyuvante adecuado,
tal como hidróxido de aluminio. En una realización adicional, el
epítopo T heterólogo es un epítopo T del virus de la poliomelitis,
VIH, virus de la coriomeningitis, particularmente el epítopo
118-132 de la nucleoproteína del virus de la
coriomeningitis, o virus de la gripe.
La figura representa esquemáticamente un método
para construir el plásmido pCACT3.
La invención se refiere a una composición para
inducir una respuesta inmunitaria, en la que dicha composición
comprende una adenilato ciclasa recombinante obtenida mediante la
expresión del gen cyaC de Bordetella sp. unido
funcionalmente a una secuencia de control de la expresión, y de un
gen cyaA recombinante de Bordetella sp. que codifica para la
adenilato ciclasa unido funcionalmente a una secuencia de control de
la expresión, en la que dicho gen cyaA contiene al menos una
inserción de una secuencia de ADN heteróloga en al menos un sitio
permisivo y en la que la adenilato ciclasa carece de actividad
catalítica: y en la que además dicha expresión se realiza en una
célula huésped seleccionada del grupo de bacterias, células
eucariotas y levaduras.
Esta solicitud describe moléculas de ADN
recombinante que comprenden el gen cyaA de Bordetella
pertussis, en las que el gen cyaA contiene una inserción de una
secuencia de ADN heteróloga en un sitio permisivo. Esta invención
también se refiere a una adenilato ciclasa recombinante de
Bordetella pertussis que comprende un epítopo heterólogo en
un sitio permisivo.
También se describe un método para inducir una
respuesta inmunitaria de células T CD4^{+} que comprende
inmunizar animales con una composición inmunológica, en el que la
composición inmunológica comprende una adenilato ciclasa
recombinante de Bordetella pertussis con un epítopo T
heterólogo en un sitio permisivo dentro del dominio
C-terminal. También se describe un método para
inducir una respuesta inmunitaria de células T CD8^{+} que
comprende inmunizar animales con una composición inmunológica en el
que la composición inmunológica comprende una adenilato ciclasa
recombinante de Bordetella pertussis con un epítopo T
heterólogo en un sitio permisivo dentro del dominio catalítico
N-terminal.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "secuencia de control de la expresión" se refiere a una
secuencia de ácido nucleico que regula la transcripción y/o la
traducción de un gen estructural. Esta regulación puede ser directa
o indirecta. Por tanto, los ejemplos de secuencias de control de la
expresión incluyen promotores, operadores, sitios de unión a
ribosomas y ADN que codifica para sitios de unión a ribosomas.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "secuencia de ADN heteróloga" se refiere a una
secuencia de ADN derivada del ADN de una especie distinta al ADN
del resto de la molécula o gen en el que se ubica la secuencia
heteróloga. La secuencia de ADN heteróloga puede sintetizarse
enzimática o químicamente. Alternativamente, la secuencia de ADN
heteróloga puede aislarse directamente de un microorganismo
fuente.
Tal como se usa en el presente documento con
referencia a una proteína, el término "sitio permisivo" se
refiere a un sitio dentro de la molécula de proteína, en el que
pueden añadirse aminoácidos exógenos sin afectar apreciablemente a
las propiedades funcionales de la proteína.
Tal como se usa en el presente documento con
referencia a un ácido nucleico, el término "sitio permisivo"
se refiere a un sitio dentro del ácido nucleico, en el que pueden
añadirse nucleótidos exógenos mientras se mantiene el marco de
lectura sin afectar apreciablemente a las propiedades funcionales de
una proteína expresada a partir del ácido nucleico.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "epítopo" se refiere a una secuencia de aminoácidos, u
otra molécula o fragmento de la misma, que puede inducir una
respuesta inmunitaria.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "epítopo B" se refiere a una secuencia de aminoácidos,
u otra molécula o fragmento de la misma, que puede inducir una
respuesta inmunitaria que implica a los linfocitos B.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "epítopo heterólogo" se refiere a un epítopo que puede
insertarse en una proteína mediante técnicas recombinantes en el que
el epítopo insertado no se encuentra de manera natural en esta
proteína.
La cepa XL-1 de E. coli
que contiene pCACT3 se depositó con la Collection Nationale de
Cultures de Microorganisms (Colección nacional de cultivos de
microorganismos) del Instituto Pasteur, 28 rue du Docteur Roux,
75724 París, Distrito 15, Francia, con el número de registro
I-1201 el 8 de abril de 1992.
Los mecanismos por los que se controla la
inmunogenicidad de los epítopos peptídicos definidos implican tanto
las características intrínsecas de un epítopo dado como factores
medioambientales. Estos factores medioambientales incluyen si el
epítopo se expone como parte de estructuras complejas y organizadas,
tales como parásitos o bacterias. Mediante la expresión de un
epítopo peptídico dado en diferentes sitios permisivos de diversas
proteínas bacterianas, es posible alterar los factores
medioambientales y, por tanto, modificar específicamente la
inmunogenicidad del epítopo peptídico.
La adenilato ciclasa de Bordetella
pertussis representa un vehículo adecuado para especificar la
respuesta inmunogénica de un epítopo peptídico heterólogo en las
realizaciones de esta invención. La adenilato ciclasa de
Bordetella pertussis constituye una de las toxinas esenciales
de este microorganismo que es el agente causante de la tos ferina.
La adenilato ciclasa se secreta por Bordetella pertussis y
posee la capacidad de entrar en células eucariotas diana en las
que, activada mediante la calmodulina (CaM), cataliza la síntesis
del AMP cíclico (AMPc) afectando así al metabolismo celular. La
adenilato ciclasa (AC) se sintetiza y secreta en forma de un
polipéptido de 1706 aminoácidos: la actividad catalítica dependiente
de calmodulina se localiza en los primeros 400 aminoácidos. La
parte C-terminal de aproximadamente 1300 residuos es
responsable de la unión a las células diana y de la translocación
del dominio catalítico N-terminal a través de la
membrana citoplasmática de estas células. Además, esta parte
C-terminal posee una actividad hemolítica débil.
Varias características de la AC de Bordetella
pertussis indican que esta toxina puede usarse como vehículo
para inducir una respuesta inmunogénica específica:
- 1)
- esta adenilato ciclasa puede entrar en muchas células diferentes, especialmente en diversos tipos de células asociadas con el sistema inmunitario;
- 2)
- la adenilato ciclasa puede internalizarse por las células diana independientes de un proceso de endocitosis mediado por receptor, lo que sugiere que el dominio catalítico de la toxina puede penetrar directamente a través de la membrana citoplasmática de las células diana;
- 3)
- el dominio catalítico N-terminal experimenta una rápida proteolisis dentro de las células diana lo que permite que los epítopos asociados con este dominio entren en la ruta del CMH de clase I de la presentación de antígenos; y
- 4)
- están identificados varios aminoácidos implicados en la actividad catalítica de la AC, lo que permite la construcción de toxinas de AC modificadas que carecen de actividad enzimática y, por tanto, ya no son citotóxicas. Véase Sakamoto, H., Sebo, P., Ladant., J. Biol. Chem., 267:13598-13602 (1992).
El locus genético (cya) que codifica para la
toxina de adenilato ciclasa (Cya) de Bordetella pertussis
está compuesto de cinco genes (cyaA-E). El gen cyaA
codifica para la adenilato ciclasa. La expresión del gen cyaA en
E. coli conduce a la producción de un producto génico de 200
kDa que muestra actividad catalítica, pero que carece de
actividades invasivas y hemolíticas. Sin embargo, la coexpresión del
producto génico cyaC produce la holotoxina de cyaA invasiva y
hemolítica en un sistema de expresión reconstituido en E.
coli. La coexpresión de los genes cyaB, D, y E en posición
trans con respecto a cyaA no confiere invasividad ni actividad
hemolítica sobre la holotoxina, ni potencia las actividades
provocadas por el producto génico cyaC.
Se cree que la activación mediada por CyaC de
CyaA resulta de una modificación tras la traducción. Esta
modificación no se pierde durante la purificación de la toxina a
partir de B. pertussis mediante un procedimiento que incluye
la extracción en urea 8 M o la separación en
SDS-PAGE (Hewlett et al., 1989). Este
hallazgo indica que la modificación es covalente.
Se compararon las actividades invasivas y
hemolíticas de las toxinas de CyaA producidas de manera recombinante
en E. coli o de manera natural en B. pertussis. Los
resultados indican que las proteínas activadas por CyaC producidas
en E. coli muestran una actividad hemolítica 5 veces menor
que la toxina producida en B. pertussis. La razón de
actividad hemolítica frente a invasiva no cambió significativamente
con la purificación de las proteínas, lo que indica que la
disminución de la actividad hemolítica no se debe a algún factor
inhibitorio presente en los extractos de E. coli, sino que
más bien refleja una propiedad intrínseca de las toxinas producidas
en E. coli. Dos argumentos adicionales apoyan esta
interpretación. En primer lugar, el transcurso de tiempo de la
hemolisis es casi lineal, independientemente de la fuente de las
toxinas, lo que indica que las estabilidades de las proteínas
purificadas a partir de E. coli y B. pertussis son
similares. En segundo lugar, pueden descartarse las posibles
diferencias en la conformación inicial de las toxinas producidas en
los dos microorganismos ya que los procedimientos de purificación
suponen la desnaturalización completa en urea 8 M.
Estos datos indican que pueden separarse las
actividades invasiva y hemolítica de la toxina de CyaA. Esto
sugiere que distintos determinantes estructurales dentro de la
toxina de CyaA están implicados en las actividades invasivas y
hemolíticas. La disminución de la actividad hemolítica de la toxina
producida en E. coli también podría explicarse mediante una
diferencia en la naturaleza de las modificaciones tras la traducción
que tienen lugar en los dos microorganismos o mediante la presencia
de un factor adicional presente en B. pertussis que es
necesario para conferir una actividad hemolítica completa a la
toxina.
Se construyeron vectores de expresión que
dirigían la expresión tanto del gen cyaA como del gen cyaC (Sebo
et al., 1991). Adicionalmente, se construyó otro vector de
expresión plasmídico, pCACT3, que contiene ambos genes cyaA y cyaC.
Este vector de expresión permite que un segundo plásmido compatible
lleve los genes necesarios para la secreción de la AC citotóxica en
E. coli, tales como hlyB y hlyD, tal como se describe en
Meckman et al., 1985.
El plásmido pCACT3 se construyó en varias etapas
(véase la figura 1):
- 1)
- Se construyó el plásmido pAHL1 mediante la inserción entre los sitios individuales PstI y EcoRI del plásmido pACM384, del oligonucleótido 5' CTG CAGG TCG ACT CTA GAG GAT CCC CGG GTA CCT AAG TAAC TAA GAA TTC 3';
- 2)
- se subclonó el fragmento PvuII-EcoRI de 1,4 kb de pAHL1 en un sitio de clonación múltiple del fagémido pTZ19R (Pharmacia) entre el sitio PstI (transformado en un extremo romo con la polimerasa de T4) y el sitio de EcoRI. El plásmido resultante es pACDL21;
- 3)
- se insertó un fragmento Bell-Seal de 5,4 kb a partir del plásmido pACT7 (Sebo et al., 1991) entre los sitios individuales Bell-Seal de pACDL21 para dar el plásmido pDLACT1;
- 4)
- se subclonó un fragmento NaeI-DdeI de 0,636 kb del plásmido pDIA4 (Glaser et al., 1988) que contenía el gen cyaC en el sitio SmaI del vector pTZ18R (Pharmacia) para dar el plásmido pCYACI en el que el gen cyaC está bajo el control del promotor lac;
- 5)
- se subclonó el fragmento HindIII-ScaI de pDLACT1 que contenía el gen cyaA (6,2 kb) entre los sitios HindIII y ScaI de pCYAC1 para dar el plásmido pCACT3.
Por tanto, la toxina de AC puede expresarse en
E. coli y/o secretarse mediante esta bacteria en grandes
cantidades, y se purifica fácilmente (cromatografía de afinidad
sobre resina CaM Affi-Gel).
Se ha desarrollado una metodología que
posibilita identificar fácilmente, usando una selección doble
(resistencia a un antibiótico y prueba calorimétrica sobre placas
mediante \alpha-complementación), inserciones de
oligonucleótidos (que conservan el marco de lectura) en la parte
del gen que codifica para el dominio catalítico
N-terminal de la toxina. Las consecuencias
funcionales de estas mutaciones sobre la actividad catalítica de la
toxina pueden analizarse fácilmente, tanto genética
(complementación funcional de una cepa cya de E. coli) como
bioquímicamente (caracterización de la estabilidad de las AC
modificadas, de su actividad enzimática, de su interacción con CaM,
etc.). Esta metodología ha permitido que se examinen un gran número
de mutaciones con el fin de identificar los sitios que son
potencialmente ventajosos para la inserción de determinantes
antigénicos. Los plásmidos que se utilizan para esta identificación
fueron derivados de pDIA5240 (P. Sebo, P. Glaser, H. Sakamoto y A.
Ullman, Gene 1991, 104, 19-24, cuyo contenido se
incorpora al presente documento como referencia) que contenían los
primeros 459 codones del gen cyaA y que expresaban la parte
N-terminal de la AC (399 aminoácidos), desprovista
de toda actividad invasiva o
citotóxica.
citotóxica.
Específicamente, se ligó un fragmento
PvuII-Bst de pDIA5240 que comprende codones de 373
bp de CyaA a la parte 3' terminal del gen (3999 pares de bases -
1333 codones). La proteína resultante recobra así, en presencia del
producto del gen cyaC, su poder invasivo. Entonces se insertaron
secuencias peptídicas adicionales de 10 a 20 aminoácidos en los
sitios identificados anteriormente con el fin de analizar la
citotoxicidad de las toxinas recombinantes. En realizaciones
específicas de esta invención, esta inserción se produce en los
sitios de restricción del gen cyaA. Las toxinas modificadas que
conservan su citotoxicidad (es decir, cuyo dominio catalítico
N-terminal se transporta normalmente hacia el
citoplasma de las células diana) pueden usarse como vehículo para
la presentación de determinantes antigénicos. Véase Ladant et
al., 1992, cuyo contenido se incorpora al presente documento
como referencia. De esta manera, se han definido cinco sitios
permisivos en la parte N-terminal de la AC
(inserción entre los aminoácidos 137-138,
224-225, 228-236,
228-229, 235-236 y
317-318). Un mapeo más exhaustivo permitirá al
experto habitual en la técnica localizar otros sitios permisivos
usando los métodos descritos en el presente documento.
Se ha desarrollado una segunda metodología
(resistencia a un antibiótico y prueba de hemolisis en placas Petri
que contienen sangre), lo que permite inserciones de
oligonucleótidos en marco en la parte del gen que codifica para la
parte C-terminal hemolítica de la toxina que va a
identificarse. Estas inserciones se llevan a cabo en un plásmido
que permite la coexpresión de ambos genes cyaA y cyaC, tal como
pCACT3. Véase anteriormente. La ventaja de caracterizar los sitios
"permisivos" para la inserción de secuencias peptídicas
adicionales en la parte carboxilo terminal de la toxina reside en
el hecho de que, a diferencia del dominio
N-terminal, este dominio permanece asociado con la
superficie externa de la membrana citoplasmática. Por tanto, los
epítopos insertados en esta región de la toxina podrían dirigirse
hacia la ruta de la presentación antigénica específica del CMH de
clase II. Por tanto, pueden construirse toxinas que están doblemente
modificadas (en el dominio catalítico N-terminal y
en el domino C-terminal) y que pueden poseer ambos
epítopos dirigidos hacia el CMH de clase I y otros epítopos
dirigidos hacia el CMH de clase II.
La toxina de AC de B. pertussis se
utiliza para presentar epítopos de importancia en vacunas al sistema
inmunitario. Esta toxina recombinante puede utilizarse como un
componente de la vacuna, o bien solo o en presencia de
otra(s) preparación(es) antigénica(s). Puede
utilizarse en forma tóxica o en forma detoxificada. La forma
detoxificada puede obtenerse mediante mutagénesis dirigida. Por
ejemplo, mediante la sustitución de la Lys58 o la Lys65 (Glaser
et al., 1989, cuyo contenido se incorpora al presente
documento como referencia) por un residuo de Gln. Alternativamente,
la forma detoxificada puede obtenerse mediante la inserción del
oligonucleótido CTG CAG en el sitio EcoRV en la posición 564 de la
fase codificante del gen cyaA. Véase Ladant et al., 1992.
El ADN que codifica para el derivado de
adenilato ciclasa de B. pertussis de la invención puede
obtenerse, a modo de ejemplo, de la siguiente forma.
Se lineariza el plásmido pDIA5240 en un sitio de
restricción en el que va a insertarse el ADN que codifica para un
epítopo heterólogo. En las realizaciones específicas de esta
invención, el sitio de restricción es NruI cuando el sitio
permisivo está en los residuos 137-138 o en los
residuos 235-236. En otras realizaciones el sitio
de restricción es HindIII cuando el sitio permisivo está en los
residuos 224-225, en los residuos
228-229, o en los residuos 317-318.
El derivado de pDIA5240 resultante que contiene el/los
epítopo(s) heterólogo(s) en un sitio permisivo está
limitado con PvuII y BstBI. Se aísla un fragmento de 1,4 Kb que
contiene la parte del gen de la adenilato ciclasa que codifica para
el dominio catalítico N-terminal y que comprende un
epítopo heterólogo. Entonces se fusiona el fragmento de restricción
al resto del gen cyaA insertándolo entre el sitio HindIII
(conectado a un extremo romo mediante la ADN polimerasa de T4) y el
sitio BstBI de pCACT3. El epítopo heterólogo puede insertarse en
pDIA5240 como parte de un ligador que es compatible con un sitio
permisivo apropiado. En realizaciones específicas de esta
invención, el ligador codifica para aproximadamente 16
aminoácidos.
Puede introducirse cualquier epítopo reconocido
por las células del sistema inmunitario, los linfocitos B o T, en
los sitios permisivos de la AC. Cada molécula de toxina puede
comprender una o más copias del mismo epítopo, o una combinación de
epítopos diferentes, B o T, situados en diversos sitios de la
toxina.
Puede introducirse en la toxina cualquier
epítopo reconocido por los linfocitos B y capaz de inducir
anticuerpos que poseen actividad biológica. Por tanto, por ejemplo,
se introducirá en la toxina el epítopo C3 del virus de la
poliomielitis o el epítopo V3 del virus VIH, que pueden inducir
anticuerpos que neutralizan estos virus. En una realización
preferida de esta invención, el epítopo V3 del virus VIH que va a
insertarse es RIQRGPGRAFVTIGK (residuos 315-329).
En el caso del epítopo V3, pueden introducirse epítopos V3 que
corresponden a los diversos aislados del virus en diversos sitios
de la toxina.
De manera similar, pueden prepararse toxinas
recombinantes que poseen otros epítopos del virus VIH (y en
particular epítopos conservados). Cada molécula de toxina puede
presentar, por tanto, diferentes epítopos B, en presencia o
ausencia de otros epítopos (y en particular de epítopos T). Las
preparaciones de vacuna pueden comprender moléculas de toxina
recombinante que poseen diferentes epítopos T.
Alternativamente, estos epítopos pueden
expresarse dentro de otras proteínas vectores. Por ejemplo, pueden
usarse las dos proteínas de la envuelta de E. coli, LamB y
MalE. Cuando el epítopo se expresa en la superficie de bacterias
transformadas como parte de la proteína de membrana externa LamB, se
induce una respuesta de anticuerpos independiente de células T
caracterizada por una rápida inducción de anticuerpos IgM e IgG. Por
el contrario, cuando el epítopo se expresa como parte de la
proteína periplásmica MalE, se induce una respuesta de anticuerpo
dependiente de células T, que pertenecen a la clase IgG.
La inmunización con las moléculas de toxinas
recombinantes y la detección de los anticuerpos se lleva a cabo tal
como se describe en Leclerc et al., 1991, que se incorpora al
presente documento como referencia.
Las moléculas de toxina recombinante también
pueden usarse para presentar epítopos reconocidos por linfocitos T
CD4'. Estos epítopos se insertarán o bien solos o en combinación con
otros epítopos T o B. Por tanto, pueden insertarse los epítopos T
103-116 del virus de la poliomielitis, solos o en
continuidad con el epítopo B 93-103, los epítopos T
del virus VIH, y en particular el epítopo T incluido en el bucle V3,
o el epítopo T del virus de la coriomeningitis linfocítica incluido
en la región 118-132 de la nucleoproteína. La
secuencia de la región 118-132 de la nucleoproteína
del virus de la coriomeningitis linfocítica es RPQASGVYMGNLTAQ.
La secuencia del epítopo B
93-103 del virus de la poliomielitis (Epítopo C3)
es:
- DNPASTTNKDK
La secuencia del epítopo T es:
- KLFAVWKITYKDT.
Para la generación de las respuestas T
cooperadoras CD4^{+}, los epítopos T se insertarán preferiblemente
en la región C-terminal de la toxina que puede
introducirse en la célula presentadora mediante una ruta de
endocitosis. Pueden usarse moléculas de toxina que poseen actividad
AC o que están mutadas para perder esta actividad, dependiendo del
tipo de respuesta CD4^{+} deseada. La molécula recombinante puede
consistir en un fragmento de la proteína adenilato ciclasa completa
que expresa epítopo(s) extraño(s).
Se inmunizan animales, tales como ratones de
diferentes variedades, con las moléculas de toxina recombinante en
presencia de un adyuvante adecuado, tale como el adyuvante completo
de Freunds, el adyuvante incompleto de Freunds o hidróxido de
aluminio. Dos semanas después, se determinan las respuestas T
CD4^{+} mediante la proliferación de linfocitos (ganglio
linfático de drenaje o bazo), cultivados con el péptido
correspondiente al epítopo T insertado, tal como se describió
anteriormente. Véase Fayolle, et al., 1991. A la inversa, se
determina el reconocimiento por los linfocitos de los ratones
inmunizados con péptidos de moléculas de toxina recombinante in
vitro mediante la incorporación de timidina. Véase Leclerc,
et al. 1991.
La toxina de AC posee la capacidad de entrar en
el citoplasma de las células diana. Esto posibilita suministrar
epítopos T reconocidos por linfocitos T CD8^{+} al citoplasma de
estas células y permitir la asociación de estos epítopos con
moléculas del CMH de clase I. Las fuentes de AC son Bordetella
sp., homologues de la misma, u otros microorganismos que
expresan AC. En realizaciones de esta invención, la adenilato
ciclasa es una AC dependiente de calmodulina. En realizaciones
específicas, la AC es AC de Bordetella pertussis.
Pueden obtenerse respuestas T citotóxicas
mediante la inmunización con la toxina recombinante, sola o en
presencia de un adyuvante tal como el hidróxido de aluminio. Las
vías pueden ser la vía oral, la vía subcutánea o la
intramuscular.
\newpage
La toxina recombinante expresa uno o más
epítopos reconocidos por células T citotóxicas. Pueden insertarse
otros epítopos, en particular epítopos reconocidos por linfocitos T
cooperadores CD4^{+}, en la misma molécula de toxina. La
identificación de un epítopo como un epítopo CTL o un epítopo T
cooperador se determina experimentalmente.
Como ejemplo, se ha insertado en la toxina el
epítopo 118-132 de la nucleoproteína del virus de la
coriomeningitis linfocítica (Aichele, et al. 1990), que es
tanto un epítopo CTL como T cooperador. La secuencia de aminoácidos
de este epítopo es: RPQASGVYMGNLTAQ. Pueden insertarse epítopos de
otros patógenos y en particular del VIH (epítopos CTL de las
proteínas env, gag, nef, etc.). Ejemplos de epítopos adecuados se
describen en Nixon et al., 1992, que se incorpora
expresamente al presente documento como referencia. Pueden
introducirse en la misma molécula de toxina varios epítopos que
representan la secuencias de los diversos aislados del virus VIH.
De manera similar, es posible usar una mezcla de moléculas de toxina
recombinante, presentando cada una un epítopo CTL correspondiente a
un aislado dado del virus VIH.
Se estimulan linfocitos obtenidos de animales
inmunizados con la toxina recombinante durante 5 días con células
singénicas recubiertas con el péptido correspondiente al epítopo
insertado, o en presencia de la toxina recombinante. La detección
de los efectores T citotóxicos se lleva a cabo tal como se describió
anteriormente (Fayolle et al., 1991). Las células diana,
marcadas con cromo 51 ([^{51}Cr]) y que poseen las moléculas de
clase I compatibles con las células efectoras, se incuban de
antemano con el péptido correspondiente al epítopo CTL insertado en
la toxina recombinante. Se calcula la respuesta T citotóxica
mediante la liberación de ([^{51}Cr]) por las células diana
lisadas.
La toxina de AC recombinante puede usarse para
seleccionar como diana antígenos y receptores celulares. A
continuación se facilitan ejemplos de varias construcciones que
pueden concebirse:
1) Construcción de proteínas de fusión que
contienen los primeros 1490 aminoácidos de la AC (esta forma
truncada de la toxina no puede unirse a las células diana y, por
tanto, no es tóxica), fusionada con un factor de crecimiento tal
como TGF-\alpha (en el que la diana es el receptor
del EGF (factor de crecimiento epidérmico)), con
IL-2, IL-4 o IL-6 o
cualquier otra linfocina, con regiones variables de anticuerpos que
tienen una fuerte afinidad por receptores o antígenos que van a
seleccionarse como diana, por ejemplo antígenos tumorales;
2) inserción de epítopos B en la AC para
seleccionar como diana células B específicas, o inserción de
cualquier otro ligando peptídico que reconoce receptores
específicos;
3) construcción de una AC que lleva una cisteína
adicional en el extremo C-terminal de la proteína,
que permitirá que un polipéptido específico se fusione a la AC
mediante acoplamiento químico. Debe recordarse que la AC es una
proteína que no contiene cisteína.
La posible importancia de la toxina de AC de
B. pertussis en comparación con otras inmunotoxinas reside
en el hecho de que el envenenamiento de las células diana por la AC
depende de un proceso de endocitosis mediado por receptor. Por
tanto, cualquier marcador de superficie específico para una célula
dada podría servir como un receptor para seleccionar como diana la
toxina de AC recombinante que comprende una toxina de AC truncada
fusionada con un ligando específico.
\vskip1.000000\baselineskip
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\global\parskip0.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: INSTITUTO PASTEUR
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: 25-28 rue du Dr. Roux
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: PARÍS DISTRITO 15
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: FRANCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CÓDIGO POSTAL (ZIP): 75724
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: MUTANTES RECOMBINANTES PARA INDUCIR RESPUESTAS INMUNITARIAS ESPECÍFICAS
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 6
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- FORMA LEGIBLE POR ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: Disquete
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: IBM PC compatible
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: PatentIn Release nº 1.0, Versión nº 1.25 (EPO)
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- DATOS DE LA SOLICITUD ACTUAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- NÚMERO DE SOLICITUD: PCT/EP93/00977
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEQ ID NO: 1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 50 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..6
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = PstI
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 7..12
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = SalI
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 13..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = XbaI
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 19..24
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = BamHI
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 24..30
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = SmaI
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 28..33
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = KpnI
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCTGCAGGTCG ACTCTAGAGG ATCCCCGGGT ACCTAAGTAA CTAAGAATTC
\hfill50
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEQ ID NO: 2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 48 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 33..35
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = terminación
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 37..39
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = terminación
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_feature
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 41..43
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /marcador = Terminación
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipACGTCCAGCT GAGATCTCCT AGGGGCCCAT GGATTCATTG ATTCTTAA
\hfill48
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEQ ID NO: 3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 3:
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Arg Ile Gln Arg Gly Pro Gly Arg Ala Phe Val
Thr Ile Gly Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEQ ID NO: 4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 4:
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Arg Pro Gln Ala Ser Gly Val Tyr Met Gly Asn
Leu Thr Ala Gln}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEQ ID NO: 5:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 11 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 5:
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Asp Asn Pro Ala Ser Thr Thr Asn Lys Asp
Lys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEQ ID NO: 6:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 13 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 6:
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Lys Leu Phe Ala Val Trp Lys Ile Thr Tyr Lys
Asp Thr}
Claims (24)
-
\global\parskip0.970000\baselineskip
1. Composición para inducir una respuesta inmunitaria, en la que dicha composición comprende una adenilato ciclasa recombinante obtenida mediante la expresión del gen cyaC de Bordetella sp. unido funcionalmente a una secuencia de control de la expresión y de un gen cyaA recombinante de Bordetella sp. que codifica para la adenilato ciclasa unido funcionalmente a una secuencia de control de la expresión, en la que dicho gen cyaA contiene al menos una inserción de una secuencia de ADN heteróloga en al menos un sitio permisivo y en la que la adenilato ciclasa carece de actividad catalítica; y en la que dicha expresión adicional se realiza en una célula huésped seleccionada del grupo de bacterias, células eucariotas y levaduras. - 2. Composición según la reivindicación 1, en la que dicha respuesta inmunitaria es una respuesta inmunitaria de células T y dicha secuencia de ADN heteróloga es un epítopo T heterólogo.
- 3. Composición según la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en la que dicha adenilato ciclasa recombinante es parte de una proteína de fusión que comprende linfocina, particularmente una linfocina seleccionada del grupo que consiste en IL-2, IL-4 e IL-6.
- 4. Composición según las reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha célula huésped es E. coli.
- 5. Composición según la reivindicación 1, en la que dicha respuesta inmunitaria es una respuesta inmunitaria de células B y dicha secuencia de ADN heteróloga es un epítopo B heterólogo.
- 6. Composición según la reivindicación 5, en la que dicha composición comprende bacterias vivas que expresan el gen cyaC de Bordetella sp., y un gen cyaA recombinante de Bordetella sp. que codifica para la adenilato ciclasa, en la que dicho gen cyaA contiene al menos una inserción de una secuencia de ADN heteróloga en al menos un sitio permisivo.
- 7. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en la que el gen cyaA es el gen cyaA de Bordetella pertussis.
- 8. Composición según la reivindicación 7, en la que el gen cyaC es el gen cyaC de Bordetella pertussis.
- 9. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, en la que dichos genes cyaA y cyaC están en el plásmido recombinante pCACT3 depositado con la CNCM con el número de registro I-1201 el 8 de abril de 1992.
- 10. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, en la que dicha secuencia de ADN heteróloga codifica para menos de 25 aminoácidos.
- 11. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, en la que dicho sitio permisivo se selecciona del grupo que consiste en ADN que codifica para los residuos 137-138 del producto génico de dicho gen cyaA, ADN que codifica para los residuos 224-225 del producto génico de dicho gen cyaA, ADN que codifica para los residuos 228-229 del producto génico de dicho gen cyaA, ADN que codifica para los residuos 235-236 del producto génico de dicho gen cyaA y ADN que codifica para los residuos 317-318 del producto génico de dicho gen cyaA.
- 12. Composición según la reivindicación 11, en la que dicho sitio permisivo es ADN que codifica para los residuos 235-236 del producto génico de dicho gen cyaA.
- 13. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, en la que dicha secuencia de ADN heteróloga codifica para el epítopo C3 del virus de la poliomelitis humano.
- 14. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, en la que dicha secuencia de ADN heteróloga codifica para un epítopo del VIH.
- 15. Composición según la reivindicación 14, en la que dicho epítopo es el epítopo V3 del virus VIH.
- 16. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, en la que dicha secuencia de ADN heteróloga son los residuos 118-132 de la nucleoproteína del virus de la coriomeningitis linfocítica.
- 17. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, en la que dicho gen de la adenilato ciclasa contiene al menos una inserción de una secuencia de ADN heteróloga en el ADN que codifica para los residuos 235-236 del producto génico de dicho gen de la adenilato ciclasa y en la que dicha secuencia de ADN heteróloga codifica para el epítopo C3 del virus de la poliomelitis humano o un epítopo del virus VIH.
- 18. Composición según la reivindicación 17, en la que dicho epítopo es el epítopo V3 de VIH.
- 19. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, en la que dicho gen de la adenilato ciclasa contiene al menos una inserción de una secuencia de ADN heteróloga en un sitio permisivo ubicado en una secuencia de ADN que codifica para el dominio N-terminal del producto génico de dicho gen cyaA.
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- 20. Composición según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, en la que dicho gen de la adenilato ciclasa contiene al menos una inserción de una secuencia de ADN heteróloga en un sitio permisivo ubicado en una secuencia de ADN que codifica para el dominio C-terminal del producto génico de dicho gen cyaA.
- 21. Composición según la reivindicación 20, en la que dicha secuencia de ADN heteróloga codifica o bien para un epítopo T del virus de la poliomelitis, o bien para un epítopo T del virus VIH, particularmente un epítopo T cooperador tal como el epítopo T V3 del virus VIH, o además un epítopo T del virus de la gripe.
- 22. Composición según la reivindicación 21, en la que dicho gen cyaA recombinante comprende una segunda secuencia de ADN heteróloga que codifica para un epítopo seleccionado del grupo que consiste en un epítopo del virus de la poliomelitis, un epítopo del virus VIH y un epítopo del virus de la gripe.
- 23. Composición según la reivindicación 20, en la que dicho epítopo T es el epítopo T del virus de la coriomeningitis linfocítica incluido en la región 118-132 de la nucleoproteína de dicho virus de la coriomeningitis.
- 24. Composición según la reivindicación 17, en la que dicho gen cyaA comprende además una mutación que suprime la actividad catalítica del producto génico de cyaA.
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