ES2287277T3 - Variantes de proteasas alcalinas y agentes de lavado y de limpieza que contienen estas variantes de proteasas alcalinas. - Google Patents
Variantes de proteasas alcalinas y agentes de lavado y de limpieza que contienen estas variantes de proteasas alcalinas. Download PDFInfo
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Abstract
Proteasa alcalina, del tipo subtilisina, caracterizada porque presenta isoleucina en la posición 199 y glicina en la posición 211, según la enumeración de la subtilisina procedente de Bacillus lentus DSM 5483 y, además, presenta uno de los aminoácidos correspondientes a la treonina, en la posición 3, o a la isoleucina, en la posición 4.
Description
Variantes de proteasas alcalinas y agentes de
lavado y de limpieza que contienen estas variantes de proteasas
alcalinas.
La presente invención se refiere a nuevas
variantes de proteasas alcalinas, que se derivan de proteasas de
subtilisina naturales o modificadas. Éstas presentan las dos
posiciones de aminoácidos 199I y 211G frente a las subtilisinas
conocidas hasta ahora, en la enumeración de la subtilisina
procedente de Bacillus lentus y, al menos, una modificación
que contribuye a una estabilización de la molécula, en concreto tras
la mutación puntual, los aminoácidos correspondientes a la treonina
en la posición 3 y/o a la isoleucina en la posición 4. Es
especialmente preferente la variante de la proteasa alcalina
S3T/V4I/V199I/L211G procedente de B. lentus. Estas
variantes se caracterizan, frente a otras variantes de proteasa por
una mejor contribución al rendimiento del lavado en los agentes de
lavado y de limpieza. Por lo tanto, la presente invención se
refiere, además de a estas enzimas, a sus posibilidades de
aplicación en diversos procesos industriales y, especialmente, en
agentes de lavado y de limpieza con estas nuevas variantes de
proteasas
alcalinas.
alcalinas.
Las proteasas del tipo subtilisina (subtilasas,
subtilopeptidasas, EC 3.4. 21. 62) se asocian a las proteasas de
serina debido a los aminoácidos con actividad catalítica. Éstas se
forman y se secretan de manera natural por microorganismos,
especialmente por especies de Bacillus. Éstas actúan como
endopeptidasas no específicas, es decir que hidrolizan cualquier
enlace de amida de ácido, que se encuentre en el interior de
péptidos o de proteínas. Su óptimo al pH se encuentra en la mayoría
de los casos en la región claramente alcalina. Una recopilación
sobre esta familia se encuentra, por ejemplo, en el artículo
"Subtilases: Subtilisin-like Proteases" de R.
Siezen, páginas 75-95 en "Subtilisin enzymes",
publicado por R. Bott y C. Betzel, New York, 1998. Las subtilisinas
son adecuadas para una pluralidad de posibilidades de aplicación
industrial, especialmente como componentes activos para los agentes
de lavado o de limpieza.
Desde hace décadas se emplean ya las proteasas
como componentes activos en los agentes de lavado y de limpieza,
además de enzimas tales como por ejemplo las amilasas, las lipasas o
las celulasas. Éstas disponen de una capacidad de degradación de
impurezas que contienen proteínas sobre los objetos a ser limpiados,
tales como, por ejemplo, artículos textiles o la vajilla.
Los productos de hidrólisis son arrastrados por
flotación con el baño de lavado debido a su elevada solubilidad o
son atacados, disueltos, emulsionados o suspendidos por los
restantes componentes de los agentes de lavado o de limpieza. Por
lo tanto, pueden presentarse efectos sinérgicos entre los enzimas y
los restantes componentes de los agentes de lavado y de limpieza
correspondientes.
Las subtilisinas adquieren una posición
preponderante entre las proteasas para los agentes de lavado y de
limpieza debido a sus propiedades enzimáticas favorables tales como
la estabilidad o el óptimo al pH. A continuación se enumerarán las
proteasas de subtilisina más importantes, empleadas actualmente en
los agentes de lavado, que están constituidas, en parte, por
moléculas naturales, en parte por variantes, que se derivan por
mutagénesis de estos enzimas naturales.
La subtilisina BPN', que procede de Bacillus
amyloliquefaciens, o bien de B. subtilis, se conoce por
los trabajos de Vasantha et al. (1984) en J. Bacteriol.
Volume 159, páginas 811-819 y de J. A. Wells et
al. (1983) en Nucleic Acids Research, Volume 11, páginas
7911-7925. En las solicitudes de patente WO 95/07991
y WO 95/30010 se presentan variantes de este enzima, obtenidas
mediante mutaciones puntuales en las regiones del bucle, con un
enlace disminuido sobre el substrato, simultáneamente con una
elevada velocidad de hidrólisis. En la solicitud de patente WO
95/29979 se divulgan, por ejemplo, agentes de lavado con dichas
variantes de la BPN'.
En las regiones del bucle no se encuentran dos
de las posiciones de aminoácidos consideradas en la presente
solicitud de patente, concretamente las posiciones 3 y 4; los restos
199 y 211 son homólogos en las posiciones 205, respectivamente 217
de la BPN', que se encuentran en el 6º bucle de la molécula, como se
ha descrito, por ejemplo, en las solicitudes citadas. Éste
participa en el enlace con el substrato. En la posición 205 se
encuentra naturalmente una isoleucina (I) en la BPN'. En la
solicitud WO 95/07991 se han propuesto numerosos aminoácidos
posibles, con los que puede intercambiarse la tirosina (Y), que se
encuentra, de manera natural, en la posición 217, sin embargo no se
reivindica en combinación con mutaciones estabilizantes de la
molécula; en el caso que se reivindique una variante 217G, esto se
ha hecho únicamente en relación con otras mutaciones puntuales,
catalíticamente compensadoras en este bucle de enlace con el
substrato. La única variante realmente divulgada (página 14) con
intercambios en las posiciones 205 y/o 217 son aquellas en las que
ambos restos han sido intercambiados por aminoácidos voluminosos,
incluso alifáticos en la mayoría de los casos. Lo mismo ocurre con
la solicitud WO 95/29979. Las subtilisinas de la solicitud WO
95/30010 presentan, cuando tienen una mutación en el 6º bucle, al
menos también otra mutación en otro bucle. Como variantes 217G se
han divulgado, por ejemplo la Y217G/S188D o aquellas con un número
mayor de intercambios en otro bucle diferente del 6º, cuyos
aminoácidos homólogos permanecen inalterados en las variantes según
la invención.
La subtilisina BPN' sirve como enzima de
referencia de las subtilisinas, especialmente en lo que se refiere
a la enumeración de las posiciones. De este modo se indicarán, por
ejemplo, también las mutaciones puntuales relacionadas con todas
las subtilisinas de la solicitud EP 130756 en la enumeración de la
BPN'. Entre éstas se encuentra también la posición 217, que
corresponde a la posición 211 en el enzima según la invención. Otras
posiciones relevantes no han sido preestablecidas por esta
descripción.
La proteasa subtilisina de Calrsberg ha sido
presentada en las publicaciones de E. L. Smith et al. de 1968
en J. Biol. Chem., Volume 243, páginas 2184-2191 y
de Jacobs et al. (1985), Nucl. Acids Res., tomo 13, páginas
8913-8926. Ésta se forma de manera natural por
Bacillus licheniformis y puede adquirirse bajo la marca
registrada Alcalase® de la firma Novozymes A/S, Bagsværd, Dinamarca.
Se conocen, por ejemplo, por la solicitud WO 96/28566 las variantes
de la misma, obtenidas mediante mutaciones puntuales, con enlace
disminuido sobre el substrato, simultáneamente con velocidad de
hidrólisis acrecentada. En este caso se trata de variantes, como en
el caso de las solicitudes anteriormente consideradas de la BPN', en
las que se han realizado intercambios simples o múltiples en las
regiones del bucle de la molécula; en dicha publicación no ha sido
descrita una variante 204I/216G (en la enumeración de
Carlsberg).
Carlsberg).
La proteasa PB92 es producida, de manera
natural, por la bacteria alcalífila Bacillus nov. spec. 92 y
puede adquirirse bajo la marca registrada Maxacal® de la firma
Gist-Brocades, Delft, Países Bajos. Ésta se
describe, en su secuencia original, en la solicitud de patente EP
283075. En las solicitudes WO 94/02618 y EP 328229 se divulgan
variantes de este enzima, obtenidas por mutación puntual, que son
adecuadas para su empleo en agentes de lavado y de limpieza. Entre
las primeras, únicamente la variante L211G/N212D tiene un
intercambio idéntico al de las variantes aquí reivindicadas; en las
segundas no se encuentra ninguna variante relevante.
Las subtilisinas 147 y 309 se comercializan bajo
las marcas registradas Esperase®, o bien Savinase® de la firma
Novozymes. Éstas proceden de cepas de Bacillus clausii, que
han sido divulgadas en la solicitud GB 1243784. Se divulgan, por
ejemplo, en las solicitudes WO 89/06279, WO 95/30011, WO 99/27082 y
WO 00/37599 variantes de estos enzimas, desarrolladas por medio de
mutagénesis puntual desde punto de vista de su aplicación en los
agentes de lavado y de limpieza.
La solicitud WO 89/06279 trataba de conseguir
una mayor estabilidad de las proteasas frente a la oxidación,
mayores velocidades de proteólisis y mejores rendimientos de lavado.
De esta publicación se desprende (página 14) que únicamente los
intercambios en determinadas posiciones modificarían las propiedades
físicas o químicas de las moléculas de subtilisina 147 o 309; entre
éstas no se han citado las posiciones 3, 4 o 211. En la solicitud
WO 95/30011 se han propuesto variantes de la subtilisina 309, que
presentan mutaciones puntuales en las regiones del bucle de la
molécula y, por lo tanto, presentan una absorción disminuida sobre
el substrato simultáneamente con una mayor velocidad de hidrólisis;
entre éstas no se encuentran mutaciones en las posiciones 3 o 4; la
única mutación puntual, realmente coincidente con las variantes de
la presente solicitud, es el intercambio L211G, que, sin embargo,
no se correlaciona en modo alguno con un intercambio V199I. En la
solicitud WO 99/27082 se desarrollan variantes tomándose como
ejemplo la subtilisina 309, cuyo rendimiento del lavado se mejora
por acrecentamiento de los bucles activos mediante inserción de más
de un aminoácido. Por lo tanto, no se trata de substituciones como
es el caso en la presente
solicitud.
solicitud.
Otras proteasas estabilizadas para la
utilización en los agentes de lavado y de limpieza son, por
ejemplo:
- \bullet
- la proteasa 164-A1, que puede obtenerse a partir de Bacillus spec. de las firmas Chemgen Corp., Gaithersburg, MD, USA, y Vista Chemical Company, Austin, TX, USA (WO 93/07276);
- \bullet
- la proteasa alcalina procedente de Bacillus sp. PD138 NCIMB 40338 de la firma Novozymes (WO 93/ 18140);
- \bullet
- la proteinasa K-16 procedente de Bacillus sp. ferm. BP-3376 de la firma Kao Corp., Tokio, Japón, (US 5344770);
- \bullet
- la subtilisina DY descrita por Nedkov et al. 1985 en Biol. Chem Hoppe-Seyler, tomo 366, páginas 421-430, que ha sido optimizada en la solicitud WO 96/28557 especialmente para su empleo en agentes de lavado y de limpieza y, en concreto, también por medio de mutaciones puntuales específicas en los bucles activos, desde luego sin que se encuentre entre las mismas una variante V204I sola o en combinación con otros intercambios (que corresponde a la posición 199 en el enzima según la invención); y
- \bullet
- la termitasa formada por Thermoactinomyces vulgaris (Meloun et al., FEBS Lett. 1983, páginas 195-200) y optimizada por ejemplo según la solicitud WO 96/28558.
En la publicación citada en último lugar se
describe también, entre un gran número de posibles variantes de la
termitasa, la que presenta el intercambio L221G (que corresponde a
la posición 211 en el enzima según la invención). Puesto que el
enzima presenta, de manera natural, isoleucina en la posición 209
(que corresponde a la 199 en el enzima según la invención), han
sido descritos con anterioridad, de este modo, dos de los
aminoácidos, esenciales según la invención, en las posiciones
correspondientes (que corresponden a 199I/L211G), sin embargo sin la
característica adicional de que se estabiliza adicionalmente la
molécula en presencia de estos dos aminoácidos en estas posiciones.
En particular, no se han descrito con anterioridad estabilizaciones
realizadas por medio de treonina en la posición 3 y/o por medio de
isoleucina en la posición 4 (según la proteasa alcalina de B.
lentus). En las posiciones 10 y 11, homólogas con estas dos
posiciones de la proteasa alcalina procedente de B. lentus,
la termitasa presenta, sin embargo, los aminoácidos formados por
serina y arginina (véase la alineación en la publicación WO
91/00345).
91/00345).
Además, la termitasa está constituida por una
molécula que presenta, en conjunto, considerables desviaciones
secuenciales con relación a las subtilisinas restantes (Meloun et
al., página 198). De este modo, la homología entre las
proteínas maduras formadas por la termitasa y la proteasa alcalina
de B. lentus tiene una identidad del 45% (62% de aminoácidos
similares). Algo parecido ocurre con la proteinasa K (WO 96/28556).
Cuya homología con respecto a la proteasa alcalina procedente de
B. lentus en el plano de las proteínas maduras es,
únicamente, de un 33% de identidad (46% de aminoácidos
similares).
Otras proteasas han sido descritas, por ejemplo,
en las solicitudes EP 199404, EP 251446, WO 91/06637 y WO 95/10591,
que han sido denominadas por la firma Procter & Gamble Comp.,
Cincinnati, OH, USA, como "Protease A", "Protease B",
"Protease C", o bien como "Protease D" y que pueden ser
empleadas en los agentes de lavado y de limpieza (véase la
publicación WO 00/47707, página 73). Las proteasas de la solicitud
EP 199404 son diversas variantes, que están basadas en la patente
EP 130756, que, sin embargo, no presentan variaciones en las
posiciones relevantes para la presente solicitud (véase la
publicación EP 199404 A2, columna 20). En el ejemplo 10 de la
patente EP 251446 B1 (página 49) se indica que las variantes Y217G
son menos estables que el enzima natural y, por lo tanto, no se ha
continuado con este intercambio. Las "proteasas C" se
caracterizan, según la solicitud WO 91/06637 por mutaciones
puntuales en las posiciones 123 y 274. Todas las variantes de la
"proteasa D" portan, según la publicación WO 95/10591,
mutaciones en la posición 76, que permanece invariable en las
proteasas presentes y que es idéntica a la de la BPN'; lo mismo es
válido en la solicitud, respectivamente en las patentes WO
95/10615, US 6017871 y US 6066611.
Otras proteasas conocidas son los enzimas, que
pueden ser adquiridos bajo las marcas registradas Durazym®,
Relase®, Everlase®, Nafizym, Natalase® y Kannase® de la firma
Novozymes, bajo las marcas registradas Purafect®, Purafect OxP® y
Properase® de la firma Genencor, bajo las marcas registradas
Protosol® de la firma Advanced Biochemicals Ltd., Thane, Indien y
bajo las marcas registradas Wuxi® de la firma Wuxi Snyder
Bioproducts Ltd.,
China.
China.
Para mejorar el rendimiento de limpieza de las
subtilisinas se ha seguido en un gran número de solicitudes la
estrategia de la inserción de aminoácidos adicionales en los bucles
activos, por ejemplo también en las solicitudes que han sido
publicadas bajo los números WO 00/37599, WO 00/37621 hasta
WO00/37627 y WO 00/71683 hasta WO 00/71691, además de las que ya
han sido citadas.
Otra estrategia consiste en modificar las cargas
superficiales de la molécula. De este modo, se ha propuesto en las
solicitudes WO 91/00334, WO 91/00335, WO 91/00345, EP 479870, EP
945502 o EP 563103 un gran número de intercambios de aminoácidos,
con los cuales puede aumentarse o disminuirse el punto isoeléctrico
de la molécula. La solicitud WO 00/24924 deriva de las mismas un
procedimiento para la identificación de las variantes adecuadas
correspondientes. Lo mismo es válido con relación a la publicación
WO 96/34935, según la cual puede variarse también la hidrofobicidad
de la molécula de acuerdo con el mismo principio.
Otra estrategia, para mejorar el rendimiento del
lavado de las subtilisinas consiste en introducir, de manera
estadística, mutaciones puntuales en moléculas conocidas y en
ensayar las variantes obtenidas en cuanto a su contribución al
rendimiento del lavado. La patente US 5700676 sigue, por ejemplo,
esta estrategia; en esta publicación se describe respectivamente,
además de otros muchos intercambios, un intercambio en la posición
217 (en la enumeración de la BPN'), como la única posición que
corresponde a la presente invención. Lo mismo sucede también con
las patentes US 5310675, US 5801038 US 5955340 y para las
solicitudes WO 99/20723 y WO 99/20727. También en la patente US
4760025 se ha propuesto como única mutación, relevante para la
presente invención, una mutación en la posición 217 y,
concretamente, debido a que con la misma queda afectado el centro
activo. En ninguna de estas publicaciones se ha sugerido que los
otros intercambios, según la invención, podrían jugar un papel con
relación al rendimiento del lavado.
Una orientación moderna del desarrollo de los
enzimas consiste en combinar elementos procedentes de proteínas
conocidas, emparentadas entre sí, por medio de procedimientos
estadísticos para dar nuevos enzimas, que presenten propiedades no
alcanzadas hasta ahora. Tales procedimientos quedan abarcados
también por el concepto de evolución dirigida -Directed Evolution-.
A éstos pertenecen, por ejemplo, los siguientes procedimientos: el
método StEP (Zhao et al. (1998), Nat. Biotechnol., tomo 16,
páginas 258-261), Random priming recombination (Shao
et al., (1998), Nucleic Acids Res., tomo 26, páginas
681-683), DNA-Shuffling (Stemmer,
W.P.C. (1994), Nature, tomo 370, páginas 389-391) o
RACHITT (Coco, W.M. et al. (2001), Nat. Biotechnol., tomo 19,
páginas 354-
359).
359).
Otra estrategia, especialmente complementaria,
consiste en aumentar la estabilidad de las proteasas
correspondientes y, de este modo, en aumentar su actividad. Una
estabilización de este tipo ha sido descrita para proteasas, que se
emplean en productos cosméticos, por ejemplo en la publicación US
5230891. Por el contrario, se conocen estabilizaciones mediante
mutaciones puntuales para los agentes de lavado y de limpieza. De
este modo pueden estabilizarse las proteasas, según las
publicaciones US 6087315 y US 6110884, por intercambio de
determinados restos de tirosina por otros restos. Otras
posibilidades consisten, por ejemplo en:
- \bullet
- el intercambio de determinados restos de aminoácidos por prolina según la publicación EP 583339;
- \bullet
- la inserción de grupos polares o cargados sobre la superficie de la molécula según la publicación EP 995801;
- \bullet
- la modificación del enlace de los iones metálicos, especialmente de los puntos de enlace para el calcio, por ejemplo según las enseñanzas de las solicitudes WO 88/08028 y WO 88/08033;
Otras posibilidades para la estabilización de
las subtilisinas, especialmente de aquellas que se derivan de
Bacillus lentus, han sido dadas en las patentes US 5340735,
US 5500364, US 5985639 y US 6136553.
Las proteasas alcalinas procedentes de
B.lentus están constituidas por proteasas de elevada
alcalinidad procedentes de Bacillus species. Una de estas
cepas ha sido depositada con el número DSM 5483 (publicación WO
91/02792, respectivamente EP 493398 y US 5352604). En las
publicaciones WO 92/21760, WO 95/23221 y WO 98/30669 se publican
variantes de este enzima que se obtienen mediante mutación puntual,
que pueden emplearse en los agentes de lavado y de limpieza.
El enzima natural procede de un productor, que
ha sido obtenido originalmente por medio de un cribado para la
obtención de cepas de Bacillus alcalifilas, y presenta
incluso una estabilidad frente a la oxidación comparativamente
elevada y frente el efecto de los detergentes. En las solicitudes WO
91/02792, respectivamente EP 493398 y US 5352604, se describe su
expresión heteróloga en el huésped Bacillus licheniformis
ATCC 53926. En las reivindicaciones de la patente US citada se
citan las posiciones 208, 210, 212, 213 y 268 como características
para la proteasa alcalina de B. lentus, sin embargo no
se ha indicado ninguna variante con intercambios en las posiciones
61 y
211.
211.
Del mismo modo, la solicitud WO 92/21760 divulga
el enzima natural de la proteasa alcalina de B. lentus en la
SEQ ID NO:52 en su secuencia de aminoácidos y en la SEQ ID NO:106 en
su secuencia de nucleótidos. Además, se divulgan en esta solicitud
51 variantes diferentes, que se diferencian, con respecto al tipo
natural, en un gran número de posiciones, encontrándose entre las
mismas también la S3T, la V41 y la V199I.
Se deduce de las solicitudes WO 95/23221 y WO
98/30669 el empleo en agentes de lavado y de limpieza de variantes
adecuadas de la proteasa alcalina de B. lentus, que
coinciden con el enzima según la invención en las posiciones S3T,
V41 y V199I. Además, todas ellas tienen dos o tres mutaciones
puntuales adicionales con relación al enzima natural procedente de
B. lentus DSM 5483. En parte portan una mutación adicional en
la posición 211, concretamente la 211 D (variantes F49, F54 y F55);
por lo tanto se reivindican en esta solicitud los intercambios 211
D y
211 E.
211 E.
Tal como han demostrado todos estos trabajos,
que se han desarrollado durante un prolongado período de tiempo,
existe una gran necesidad de proteasas alternativas para el empleo
en los agentes de lavado y de limpieza. Las publicaciones más
recientes, tales como por ejemplo las WO 00/71683 hasta WO 00/71691
demuestran que existe todavía la necesidad de efectuar una
optimación en lo que se refiere a sus posibilidades de aplicación en
los agentes de lavado y de limpieza incluso para la familia de las
proteasas de subtilisina establecidas desde hace mucho tiempo. Esto
está relacionado con un gran número de trabajos relativos a la
variación en la secuencia de aminoácidos de los enzimas
correspondientes. Desde luego no puede deducirse, sin más, el
comportamiento de estos enzimas en el contexto de una receta para
agentes de lavado o de limpieza a partir de las propiedades
enzimáticas posiblemente calculables (véanse las publicaciones US
5801039, US 5985639 y US 6136553). En este caso juegan un papel
otros factores tales como la estabilidad frente a los agentes
oxidantes, la desnaturalización provocada por los tensioactivos,
los efectos de pliegue o las sinergias deseadas con otros
componentes.
La tarea, en la que está basada la presente
invención, consistía en encontrar subtilisinas que mostrasen
rendimientos mejorados en las aplicaciones industriales.
Especialmente deberían encontrarse aquellas que mejorasen el
rendimiento del lavado y respectivamente de la limpieza de los
agentes de lavado y/o de limpieza.
Una tarea parcial consistía en mejorar las
proteasas no solamente desde el punto de vista de su actividad a la
hidrólisis sino también en su obtención estable en las recetas
correspondientes para agentes de lavado y de limpieza.
La presente solicitud de patente ha seguido, con
relación a este problema, la estrategia de mejorar adicionalmente
la subtilisina procedente de Bacillus lentus DSM 5483
especialmente con respecto a las moléculas divulgadas en las
solicitudes WO 91/02792, WO 92/21760 y WO 95/23221, para el empleo
en los agentes de lavado y de
limpieza.
limpieza.
Sorprendentemente, se ha encontrado que los
aminoácidos que constituyen la isoleucina y la glicina en las
posiciones 199 y 211 proporcionan una elevada contribución al
rendimiento del lavado y éste se refuerza por los aminoácidos
constituidos por la treonina y por la isoleucina en las posiciones 3
y respectivamente 4 probablemente por medio de un efecto de
estabilidad.
Según la invención, se resuelve esta tarea
mediante proteasas alcalinas del tipo subtilisina, caracterizadas
porque presentan isoleucina en la posición 199 y glicina en la
posición 211 de acuerdo con la enumeración de la subtilisina
procedente de Bacillus lentus DSM 5483 y, adicionalmente,
presentan uno o ambos de los aminoácidos treonina en la posición 3
e isoleucina en la posición 4.
Igualmente se resuelve por medio de variantes de
la subtilisina, caracterizadas porque presentan treonina en la
posición 3, isoleucina en la posición 4, isoleucina en la posición
199 y glicina en la posición 211 de acuerdo con la enumeración de
la subtilisina procedente de Bacillus lentus DSM 5483.
Especialmente se resuelve por medio de las
correspondientes proteasas alcalinas del tipo subtilisina,
caracterizadas porque se forman de manera natural por un Bacillus o
pueden derivarse de una subtilisina de este tipo, especialmente de
Bacillus lentus.
De manera muy especialmente preferente se
resolverá por medio de las proteasas alcalinas, que se forman, de
manera natural, por Bacillus lentus DSM 5483 o que pueden
derivarse de tales proteasas alcalinas y entre éstas,
especialmente, la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B.
lentus según la secuencia de aminoácidos indicada en la figura
1 (variante según la invención).
La variante de la proteasa alcalina M131 de
B. lentus, con los intercambios caracterizantes,
S3T/V4I/A188P/
V193M/V199I, debe ser considerada como la variante de la publicación WO 92/21760, que presenta la máxima coincidencia con respecto a la variante, según la invención, de la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B. lentus. Ésta coincide en tres posiciones con la variante según la invención. La diferencia está constituida por ambos intercambios A188P y V193M, en cuyos puntos son idénticas la variante según la invención y la variante natural. Tal como puede verse por ejemplo por la solicitud WO 95/30011, el aminoácido 193 de la subtilisina de B. lentus se encuentra al principio del 6º bucle, mientras que el aminoácido 188 no está asociado con un bucle, sino que está asociado con la región compacta de la proteína, situada entremedias. Por lo tanto ambas mutaciones se encuentran en regiones estructuralmente diferentes de la molécula. Con la presente invención se encontró, sorprendentemente, que una inversión de ambas posiciones 188 y 193 con respecto a los aminoácidos del tipo natural y que una mutación adicional en la posición 211, es decir en la región situada por detrás del 6º bucle, se produce un enzima que sobrepasa a los enzimas conocidos hasta el presente, especialmente a las variantes conocidas hasta ahora de la proteasa alcalina de B. lentus en cuanto a su rendimiento del lavado y respectivamente de
limpieza.
V193M/V199I, debe ser considerada como la variante de la publicación WO 92/21760, que presenta la máxima coincidencia con respecto a la variante, según la invención, de la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B. lentus. Ésta coincide en tres posiciones con la variante según la invención. La diferencia está constituida por ambos intercambios A188P y V193M, en cuyos puntos son idénticas la variante según la invención y la variante natural. Tal como puede verse por ejemplo por la solicitud WO 95/30011, el aminoácido 193 de la subtilisina de B. lentus se encuentra al principio del 6º bucle, mientras que el aminoácido 188 no está asociado con un bucle, sino que está asociado con la región compacta de la proteína, situada entremedias. Por lo tanto ambas mutaciones se encuentran en regiones estructuralmente diferentes de la molécula. Con la presente invención se encontró, sorprendentemente, que una inversión de ambas posiciones 188 y 193 con respecto a los aminoácidos del tipo natural y que una mutación adicional en la posición 211, es decir en la región situada por detrás del 6º bucle, se produce un enzima que sobrepasa a los enzimas conocidos hasta el presente, especialmente a las variantes conocidas hasta ahora de la proteasa alcalina de B. lentus en cuanto a su rendimiento del lavado y respectivamente de
limpieza.
El enzima especialmente preferente, según la
invención, se diferencia de las variantes de las solicitudes WO
95/23221 y WO 98/30669 en que están invertidas varias posiciones, es
decir que son idénticas a las del tipo natural y se encuentra en la
posición 211 el aminoácido constituido por la glicina, que no es
voluminoso y que no está cargado, en lugar de la leucina del tipo
natural o del aspartato de las variantes citadas.
Desde el punto de vista enzimológico es
sorprende que el efecto del rendimiento mejorado en el lavado y
respectivamente en la limpieza se consiga por medio de un
intercambio de un aminoácido, que participa, probablemente, en el
enlace con el substrato y/o en la catálisis de la reacción y,
concretamente, mediante la substitución de la cadena lateral
hidrófoba, voluminosa, de la leucina por la cadena lateral de una
glicina, reducida a un protón. Simultáneamente, no era necesario
invertir en este caso la segunda posición del 6º bucle, mutada con
respecto al tipo natural, concretamente la 199, de la isoleucina
por la valina del tipo natural. En comparación con las solicitudes
WO 95/23221 o WO 98/30669, la mutagénesis puntual para dar un grupo
ácido, es decir L211D o L211E, hubiese sido más evidente que la
inversión para dar la secuencia del tipo natural en otras posiciones
mutadas. Las publicaciones citadas al principio, relativas a la
variación del bucle activo de las diversas subtilisinas,
especialmente la WO 95/30011, habrían sugerido en el caso de la
variación de la posición 211 una modificación adicional en otro
bucle activo, o una modificación drástica dentro del mismo bucle,
tal como por ejemplo la V199S/L211D, la P204E/L211G o la
G196S/L211G, para compensar la modificación desde el punto de vista
catalítico pero, en ningún modo, han sugerido la retención del
intercambio V199I.
Desde el punto de vista de la aplicación
industrial, especialmente en los agentes de lavado y de limpieza,
es sorprendente que esto conduzca a una mejora del rendimiento,
especialmente a una mejora de la contribución de tales enzimas al
rendimiento en el lavado y en la limpieza sobre las suciedades más
diversas. El gran éxito del empleo de la subtilisina según la
invención, en las correspondientes recetas de los agentes de lavado
o bien de limpieza (véanse los ejemplos 2 a 5) permite suponer que
también es suficientemente elevada la estabilidad de las variantes
correspondientes como para mantener activo el enzima durante un
período de tiempo suficientemente prolongado y, por lo tanto, ha
contribuido a mejorar el rendimiento.
Un objeto de la presente invención consiste en
una proteasa alcalina del tipo subtilisina, caracterizada porque
presenta isoleucina en la posición 199 y glicina en la posición 211,
según la enumeración de la subtilisina procedente de Bacillus
lentus DSM 5483 y, adicionalmente, presenta uno de los
aminoácidos constituidos por la treonina en la posición 3, o por la
isoleucina en la posición 4.
Otras formas de realización del objeto de la
invención son proteasas alcalinas del tipo subtilisina,
caracterizadas porque presentan treonina en la posición 3,
isoleucina en la posición 4, isoleucina en la posición 199 y glicina
en la posición 211, de acuerdo con la enumeración de la subtilisina
procedente de Bacillus lentus DSM 5483; porque son
subtilisinas, que se forman de manera natural por un Bacillus,
especialmente de Bacillus lentus, o que se derivan de un
Bacillus de este tipo; porque son subtilisinas formadas de manera
natural por Bacillus lentus DSM 5483 o que se derivan del
mismo, especialmente la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de
B. lentus según la secuencia de aminoácidos indicada
en la figura 1 (variante según la invención).
Otras formas de realización del objeto de la
invención son las proteasas alcalinas, derivadas de las
correspondientes proteasas alcalinas del tipo subtilisina,
especialmente mediante fermentación o mediante mutagénesis por
deleción, mediante mutagénesis por inserción, mediante mutagénesis
por substitución o mediante fusión de una parte, al menos, con, al
menos, otra proteína; aquellas, que están caracterizadas, además,
porque están derivatizadas adicionalmente, porque presentan una
actividad proteolítica, preferentemente una actividad proteolítica
acrecentada frente a la molécula de partida, o bien frente a la
molécula no derivatizada, y de manera muy especialmente preferente
presentan un rendimiento mejorado; y/o porque están estabilizadas
adicionalmente.
Otro objeto de la invención está constituido por
los ácidos nucleicos, que codifican las proteasas alcalinas citadas
en el primer objeto de la invención, especialmente los ácidos
nucleicos que codifican proteasas de subtilisina, cuya secuencia de
nucleótidos coincide con la secuencia de nucleótidos indicada en
la SEQ ID NO. 3, especialmente en las regiones que codifican la 199
isoleucina y la 211 glicina y, de manera muy especialmente
preferente, en las regiones que codifican la 3 treonina, la 4
isoleucina, la 199 isoleucina y la 211 glicina.
Otro objeto de la invención está constituido por
vectores, que contienen una región de los ácidos nucleicos
anteriormente indicada y que contienen, especialmente, una región de
los ácidos nucleicos que codifica una de las proteasas indicadas en
el primer objeto de la invención o derivados de la misma. En las
formas preferentes de realización, éstos son vectores de clonación,
que contienen una región de ácidos los nucleicos citada
precedentemente y, especialmente, que contienen una región de los
ácidos nucleicos que codifica una de las proteasas, citadas en el
primer objeto de la invención, o sus derivados; o están constituidos
por vectores de expresión, que contienen una región de los ácidos
nucleicos citada precedentemente y, especialmente, que contienen una
región de los ácidos nucleicos, que codifique una de las proteasas,
citadas en el primer objeto de la invención, o sus derivados y que
posibilita su
biosíntesis.
biosíntesis.
Otro objeto de la invención consiste en células,
que contienen un vector según el objeto de la invención citado
precedentemente; que expresen, preferentemente, una de las proteasas
citadas en el primer objeto de la invención, o sus derivados o que
puedan estimularse para producir esta expresión, especialmente con
empleo de un vector de expresión citado precedentemente;
caracterizadas preferentemente porque son bacterias, especialmente
aquellas que secretan al medio circundante la proteína formada;
caracterizadas, preferentemente, porque son bacterias del género
Bacillus, especialmente de las especies Bacillus lentus, Bacillus
licheniformis, Bacillus amyloliquefaciens, Bacillus subtilis o
Bacillus alcalophilus; o caracterizadas porque son células
eucariotas, especialmente aquellas que modifican
post-traducción a la proteína formada.
Otro objeto de la invención consiste en
procedimientos para la obtención de un enzima proteolítico o un
derivado del mismo según el primer objeto de la invención con
empleo de una célula huésped, anteriormente citada y/o con empleo
de un vector anteriormente citado y/o con empleo de un ácido
nucleico anteriormente citado.
Otro objeto de la invención consiste en agentes
caracterizados porque contienen enzimas proteolíticos según el
primer objeto de la invención, especialmente agentes de lavado o de
limpieza, de forma muy especialmente preferente en una cantidad
desde 2 \mug hasta 20 mg por g del agente; preferentemente
aquellos caracterizados porque contienen, adicionalmente, otros
enzimas, especialmente otras proteasas, amilasas, celulasas,
hemicelulasas y/o
lipasas.
lipasas.
Otro objeto de la invención está constituido por
agentes para el tratamiento de materias primas para artículos
textiles o para el mantenimiento de los artículos textiles,
caracterizados porque contienen solo, o junto con otros componentes
activos, un enzima proteolítico según el primer objeto de la
invención, especialmente para fibras o para artículos textiles con
componentes naturales y, de forma muy especialmente preferente, con
lana o seda.
Otro objeto de la invención está constituido por
procedimientos para la limpieza mecánica de los artículos textiles
o de las superficies duras, caracterizados porque se activa, al
menos en una de las etapas del procedimiento, un enzima
proteolítico según el primer objeto de la invención, preferentemente
en una cantidad desde 40 \mug hasta 4 g, de forma especialmente
preferente desde 400 \mug hasta 400 mg por aplicación.
Otro objeto de la invención está constituido por
procedimientos para el tratamiento de materias primas para los
artículos textiles o para el mantenimiento de los artículos
textiles, caracterizados porque se activa en, al menos, una de las
etapas del procedimiento, un enzima proteolítico según el primer
objeto de la invención, especialmente para materias primas para los
artículos textiles o para artículos textiles con componentes
naturales, especialmente para aquellos con lana o seda.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para la limpieza de los artículos textiles o de las
superficies duras, preferentemente en una cantidad desde 40 \mug
hasta 4 g, de forma especialmente preferente desde 400 \mug hasta
400 mg por aplicación.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para la activación o para la desactivación de los
componentes de los agentes de lavado o de
limpieza.
limpieza.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para el análisis bioquímico o para la síntesis de
compuestos de bajo peso molecular o de
proteínas.
proteínas.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para la preparación, para la purificación o para la
síntesis de productos naturales o de materiales biológicos.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para el tratamiento de las materias primas
naturales, especialmente para el tratamiento de superficies, de
manera muy especialmente preferente en un procedimiento para el
tratamiento del cuero.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para la obtención o para el tratamiento de
materiales en bruto o de productos semielaborados en la fabricación
de artículos textiles, especialmente para la eliminación de capas
protectoras sobre los
tejidos.
tejidos.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para el tratamiento de las materias primas los
artículos textiles o para el mantenimiento de los artículos
textiles, especialmente para el tratamiento de lana o de seda o de
los artículos textiles mixtos, que contengan lana o que contengan
seda.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para el tratamiento de películas fotográficas,
especialmente para la eliminación de las capas protectoras de tipo
gelatina o similares.
Otro objeto de la invención está constituido por
las aplicaciones de un enzima proteolítico, según el primer objeto
de la invención, para la obtención de artículos comestibles o de
piensos para los animales.
Otro objeto de la presente invención está
constituido por productos cosméticos con un enzima proteolítico,
según el primer objeto de la invención, o por procedimientos
cosméticos con incorporación de un enzima proteolítico, según el
primer objeto de la invención, o por el empleo de un enzima
proteolítico, según el primer objeto de la invención, con fines
cosméticos, especialmente en el ámbito de los procedimientos
correspondientes o en agentes
correspondientes.
correspondientes.
En el sentido de la presente solicitud se
entenderá por proteína un polímero constituido por aminoácidos
naturales, formado ampliamente de manera lineal, que adquiere, en
la mayoría de los casos, una estructura tridimensional para ejercer
su función. En la tabla 1 se han reunido los 19 aminoácidos L
proteinógenos, que se presentan de manera natural, junto con los
códigos con 1 y 3 letras, con los que se han abreviado en la
presente solici-
tud.
tud.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La combinación de una de estas denominaciones
con un número designa en la proteína correspondiente, qué resto de
aminoácido porta en la posición correspondiente. De este modo, S3
significa, por ejemplo, un resto serina en la posición 3,
comenzándose con la enumeración por el extremo N de la proteína
correspondiente. Una mutación puntual en este punto, por ejemplo
por el aminoácido constituido por la treonina, se abreviará, según
esta nomenclatura, con la denominación S3T. Para la designación de
variantes con varias mutaciones puntuales se separarán entre sí
estos intercambios con barras inclinadas.
La variante S3TN4I se caracteriza, por lo tanto,
porque en la misma ha sido intercambiada la serina, inicialmente
presente en la posición 3, por una treonina y se ha intercambiado
por isoleucina la valina en la posición 4.
Las indicaciones de posición en la presente
invención se refieren, en tanto en cuanto no se diga otra cosa, a
las correspondientes formas maduras de la proteína correspondiente,
es decir sin el péptido de señal (véase más adelante).
En el sentido de la presente invención se
entenderá por un enzima, una proteína que ejerce una determinada
función bioquímica. A modo de ejemplo, deberán entenderse por
enzimas proteolíticas o enzimas con función proteolítica, en
general, aquellas que hidrolicen los enlaces de amida de ácido de
las proteínas, especialmente aquellas que se encuentran en el
interior de la proteína y que pueden llamarse también, por lo tanto,
endo-peptidasas. Las proteasas de subtilisina son
aquellas endo-peptidasas, que se forman y que son
secretadas, en la mayoría de los casos, de manera natural por las
bacterias gram-positivas, o que se derivan de las
mismas, por ejemplo a través de métodos de la biología molecular y
que pueden homologarse a lo largo de regiones parciales, como las
regiones estructurantes o portadoras de funciones, con las proteasas
naturales de la subtilisina. Éstas se han descrito, por ejemplo, en
el artículo "Subtilases: Subtilisin-like
Proteases" de R. Siezen, páginas 75-95 en
"Subtilisin enzymes", publicado por R. Bott y C. Betzel, New
York, 1996.
Muchas proteínas se forman como las denominadas
preproteínas, es decir junto con un péptido de señal. Bajo este
concepto debe entenderse entonces la parte
N-terminal de la proteína, cuya función consiste, en
la mayoría de los casos, en garantizar la segregación de la
proteína formada, a partir de la célula productora, en el
periplasma o en el medio circundante y/o en garantizar su plegado
correcto. A continuación se recorta de la proteína restante el
péptido de señal bajo condiciones naturales por medio de una
peptidasa de señal, de tal manera que éste ejerza su actividad
catalítica propiamente dicha sin los aminoácidos
N-terminales inicialmente presentes. Según la
figura 1 de la publicación WO 91/02792, la preproteína de la
subtilisina procedente de Bacillus lentus DSM 5483 contiene
380 aminoácidos. Por el contrario, la proteína madura tiene
únicamente 269; la enumeración comienza por el primer aminoácido de
la proteína madura, por lo tanto en este caso con la alanina, que
recibiría el número 112 tras la secuencia de la preproteína. Según
las SEQ ID NO. 1 y 2, el péptido de señal de la subtilisina
procedente de B. licheniformis ATCC 68614 tiene una
longitud de 111 aminoácidos y el péptido maduro tiene 269
aminoácidos. En ausencia de esta subdivisión, la proteína completa
tiene una longitud de 380 aminoácidos, como puede verse en la SEQ ID
NO. 2. Lo mismo sucede en el caso de las SEQ ID NO. 3 y 4 para las
formas de realización especialmente preferentes.
Los péptidos maduros son preferentes frente a
las preproteínas, para las aplicaciones industriales, debido a su
actividad enzimática, es decir los enzimas procesados tras su
obtención.
Las pro-proteínas son
precursores inactivos de las proteínas. Sus precursores con
secuencia de señal se denominan como
pre-pro-proteínas.
En el sentido de la presente solicitud se
entenderán por ácidos nucleicos las moléculas, que sirven como
portadores de información, constituidas, de manera natural, por
nucleótidos, que codifican la serie lineal de los aminoácidos en
las proteínas o en los enzimas. Éstos pueden presentarse en forma de
cadena simple, en forma de una cadena simple complementaria de esta
cadena simple o en forma de cadena doble. El ácido nucleico ADN es
preferente para los trabajos en biología molecular como el portador
de informaciones duradero, de manera natural. Por el contrario, se
formará un ARN para la realización de la invención en un ambiente
natural, tal como por ejemplo en una célula expresante, por lo cual
las moléculas de ARN, esenciales según la invención, representan,
igualmente, formas de realización de la presente invención.
También se denominará como gen, en el sentido de
la presente solicitud, a la unidad de información de un ácido
nucleico, correspondiente a una proteína. En el ADN deben tenerse en
consideración las secuencias de ambas cadenas complementarias en
cada uno de los tres marcos de lectura posibles. Además, debe
tenerse en consideración que diferentes tripletes de codón pueden
codificar los mismos aminoácidos de tal manera, que una determinada
serie de aminoácidos puede derivarse de varias secuencias de
nucleótidos diferentes y que presenten, posiblemente, sólo una
pequeña identidad (degenerabilidad del código genético). Además,
diversos organismos presentan diferencias en la utilización de este
codón. Por estos motivos deben incluirse en la consideración del
ámbito de la protección tanto las secuencias de aminoácidos como
también las secuencias de nucleótidos y las secuencias dadas de los
nucleótidos deben considerarse, respectivamente, sólo como una
codificación ejemplificativa de una serie determinada de
aminoácidos.
Un técnico en la materia tiene la posibilidad de
preparar genes completos, por medio de las secuencias conocidas de
ADN y/o de aminoácidos, con ayuda de los métodos actualmente
conocidos en general, tales como, por ejemplo, la síntesis química
o la reacción en cadena de la polimerasa (RCP) en combinación con
los métodos usuales de la biología molecular y/o de la química de
proteínas. Un punto de partida ideal a este respecto lo constituyen
las preparaciones de ADN procedente de microorganismos depositados
y/o comercialmente adquiribles. Tales métodos son conocidos, por
ejemplo, por la publicación "Lexikon der Biochemie", Spektrum
Akademischer Verlag, Berlin, 1999, tomo 1, páginas
267-271 y tomo 2, páginas
227-229.
Se denominarán mutaciones a las variaciones de
la secuencia de nucleótidos, como las que pueden provocarse, por
ejemplo, con ayuda de los métodos de la biología molecular en sí
conocidos. Según el tipo de la modificación se conocen, por
ejemplo, las mutaciones por deleción, por inserción o por
substitución o aquellas en las que se fusionan entre sí (shuffling)
diversos genes o partes de genes; éstas son mutaciones génicas. Los
organismos correspondientes se denominan mutantes. Las proteínas,
derivadas de los ácidos nucleicos mutados se denominan variantes.
De este modo, por ejemplo, las mutaciones por deleción, por
inserción o por substitución o las fusiones conducen a genes
mutados por deleción, por inserción, por substitución o a genes de
fusión y, en el plano de las proteínas, conducen a las variaciones
correspondientes por deleción, por inserción o por substitución, o
bien a las proteínas de fusión.
En el sentido de la presente invención se
entenderán como vectores aquellos elementos constituidos por ácidos
nucleicos, que contengan un gen interesante como región de ácidos
nucleicos, caracterizante. Éstos son capaces de establecer al mismo
en una especie o en una línea celular a través de varias
generaciones o divisiones celulares como elemento genéticamente
estable, que se replica independientemente del resto del genoma. Los
vectores son plásmidos especiales especialmente para la utilización
en bacterias, es decir que son elementos genéticos circulares. En
la ingeniería genética se distingue, por un lado, entre aquellos
vectores que sirven para el almacenamiento y, por lo tanto, en
cierta medida sirven también para el trabajo en ingeniería genética,
que se denominan vectores de clonación y, por otro lado, aquellos
que cumplen la función de realizar el gen interesante en la célula
huésped, es decir que posibilitan la expresión de la proteína
correspondiente. Estos vectores se denominan vectores de
expresión.
Mediante la homologación, es decir la
comparación con enzimas conocidos, como la que se lleva a cabo, por
ejemplo, por medio de una alineación, puede deducirse la actividad
enzimática de un enzima considerado a partir de la secuencia de
aminoácidos o de nucleótidos. Ésta puede modificarse de manera
cualitativa o cuantitativa por medio de otras regiones de la
proteína, que no participen en la reacción propiamente dicha. Esto
podría corresponder, por ejemplo, a la estabilidad del enzima, a la
actividad, a las condiciones de la reacción o a la especificidad
del substrato.
Por lo tanto, debe entenderse por el concepto de
un enzima proteolítico o de una proteasa, mas allá de las funciones
de algunos pocos restos de aminoácidos del centro catalíticamente
activo, todas aquellas funciones como las que se producen bajo la
acción de toda la proteína restante, o de una parte o de varias
partes de la proteína restante, sobre la región catalíticamente
activa, propiamente dicha. También se considerarán como actividad
proteolítica, en el sentido de la invención, únicamente aquellas
funciones modificadoras o actividades parciales, en tanto en cuanto
favorezcan una reacción de proteólisis. A tales funciones auxiliares
o actividades parciales pertenecen, por ejemplo, el enlace de un
substrato, de un producto semielaborado o de un producto final, la
activación o la inhibición o la inducción de un efecto regulador
sobre la actividad hidrolítica. En este caso puede tratarse, por
ejemplo, también de la formación de un elemento estructural que se
encuentre alejado del centro activo. La segunda condición previa
para que se trate de una proteína según la invención consiste,
desde luego, en que se produzca una hidrólisis de los enlaces
péptidos mediante el comportamiento químico del resto activo
propiamente dicho, solo o además mediante la acción de la parte
modificadora. Además, es posible modificar también de manera
cualitativa o cuantitativa las actividades de otras proteasas por
medio de una o varias partes, por ejemplo de la proteína según la
invención. Este influjo de otros factores se considerará como
actividad proteolítica. Los enzimas con actividad proteolítica son
también aquellos, cuya actividad queda bloqueada en un instante
dado, por ejemplo por medio de un inhibidor. Es decisiva su
adecuación en principio con respecto a la correspondiente reacción
de proteólisis.
Se entenderá por fragmentos todas las proteínas
o los péptidos, que sean menores que la proteína natural o aquellos
que correspondan a genes completamente traducidos, y que pueden
obtenerse, por ejemplo, también sintéticamente. Debido a sus
secuencias de aminoácidos pueden asociarse a las correspondientes
proteínas completas. Éstas pueden adquirir, por ejemplo, las mismas
estructuras o pueden ejercer actividades proteolíticas o actividades
parciales, tales como, por ejemplo, la formación de complejos con
un substrato. En principio son equivalentes los fragmentos y las
variantes por deleción de las proteínas de partida; mientras que los
fragmentos representan un trozo más pequeño, los mutantes por
deleción carecen, por el contrario, únicamente de regiones cortas y,
por lo tanto, carecen únicamente de algunas funciones
parciales.
En el sentido de la presente solicitud se
entenderá por proteínas quiméricas o híbridas aquellas proteínas
que estén constituidas por elementos que procedan, de manera
natural, de diversas cadenas polipéptidas del mismo organismo o que
procedan de organismos diferentes. Este proceder se denomina también
Shuffling o mutagénesis por fusión. El objeto de una fusión de este
tipo puede consistir, por ejemplo, en incorporar o modificar una
función enzimática con ayuda de la parte de la proteína incorporada
por fusión según la invención. En el sentido de la presente
invención carece de importancia el que una proteína quimérica de
este tipo esté constituida por una cadena polipéptida individual o
por varias subunidades, sobre las cuales pueden distribuirse
diversas funciones. Para la realización de la alternativa, indicada
en último lugar, es posible, por ejemplo, trocear
post-traducción una cadena polipéptida quimérica
individual en varias o hacerlo solamente después de una etapa de
purificación, por medio de un corte proteolítico específico.
Se entenderán por proteínas obtenidas mediante
mutación por inserción, aquellas variantes que se obtengan, con
ayuda de métodos en sí conocidos, mediante la inserción de un
fragmento de ácido nucleico, o bien de un fragmento de proteína en
las secuencias de partida. Éstas deben clasificarse como proteínas
quiméricas debido a su equivalencia de principio. Éstas se
diferencian de aquellas únicamente en la relación de tamaño entre
la parte no modificada de la proteína y el tamaño de la proteína en
su conjunto. En tales proteínas moduladas por inserción, la parte
de proteína foránea es menor que en las proteínas quiméricas.
La mutagénesis por inversión, es decir una
inversión parcial de la secuencia, puede considerarse como forma
especial tanto de la deleción así como, también, de la inserción. Lo
mismo es válido para una nueva agrupación de diversas partes de la
molécula que se desvíe de la serie original de los aminoácidos. Ésta
puede considerarse como variante por deleción, como variante por
inserción, así como, también, como variante Shuffling de la
proteína original.
En el sentido de la presente solicitud, se
entenderán por derivados, aquellas proteínas cuya cadena pura de
aminoácidos haya sido modificada químicamente. Tales
derivatizaciones pueden llevarse a cabo, por ejemplo,
biológicamente en conjunción con la biosíntesis de la proteína por
medio de los organismos huésped. En este caso pueden emplearse
métodos industriales de la biología molecular. Sin embargo, también
pueden llevarse a cabo por vía química, por ejemplo mediante una
transformación química de una cadena lateral de un aminoácido o
mediante el enlace covalente de otro compuesto sobre la proteína. Un
compuesto de este tipo puede estar constituido, por ejemplo, por
otras proteínas que se enlacen, por ejemplo, con la proteína según
la invención a través de compuestos químicos bifuncionales. Tales
modificaciones pueden influenciar, por ejemplo, la especificidad
con el substrato o las fuerzas de enlace sobre el substrato o pueden
provocar un bloqueo provisional de la actividad enzimática, cuando
la substancia acoplada esté constituida por un inhibidor. Esto puede
ser conveniente, por ejemplo, para el período de tipo del
almacenamiento. Del mismo modo, debe entenderse por derivatización,
el enlace covalente sobre un soporte macromolecular.
En el sentido de la presente invención se
agruparán todos los enzimas, las proteínas, los fragmentos y los
derivados, en tanto en cuanto no sea preciso citarlos expresamente
como tales, bajo el concepto de proteínas.
Se entenderá por rendimiento de un enzima su
actividad en el sector industrial considerado en cada caso. Esta se
basa en la actividad enzimática propiamente dicha, dependiendo
además de otros factores relevantes para el proceso
correspondiente. A éstos pertenecen, por ejemplo, la estabilidad, el
enlace con el substrato, la interacción con el material que porta
el substrato o las interacciones con otros componentes,
especialmente las sinergias.
En el sentido de la presente solicitud se
entenderá por rendimiento del lavado o por rendimiento de la
limpieza de un agente, el efecto que ejerce el agente considerado
sobre los artículos ensuciados, por ejemplo los artículos textiles
o los objetos con superficies duras. Los componentes individuales de
tales agentes, por ejemplo los enzimas individuales, se evaluarán
con relación a su contribución al rendimiento del lavado o de la
limpieza del conjunto del agente. Así pues, no puede deducirse, sin
más, a partir de las propiedades enzimáticas de un enzima, su
contribución al rendimiento del lavado de un agente. En este caso
juegan un papel, como factores adicionales, por ejemplo la
estabilidad, el enlace con el substrato, el enlace con el producto a
ser limpiado o las interacciones con otros componentes del agente,
especialmente las sinergias, para la eliminación de las
suciedades.
Según el Tratado de Budapest sobre el
reconocimiento internacional del depósito de microorganismos del 28
de abril de 1977 se ha depositado el 10.8.1989 en relación con la
solicitud WO 91/02792 el siguiente microorganismo en la Deutsche
Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH (Colección
Alemana de Microorganismos y de Cultivos Celulares S.L.) en
Braunschweig (DSMZ): el Bacillus lentus DSM 5483. Éste ha
recibido allí el número de registro DSM 5483
(PA5-A0155, cepa 2-1). Los datos
fundamentales sobre las características de este material biológico
se han agrupado en la publicación WO 91/02792, tabla 1 (páginas 5 a
7). La secuencia de ADN y de aminoácidos de las proteasas
alcalinas, especialmente relevantes para la presente solicitud, de
este organismo pueden verse en la SEQ ID NO:106, respectivamente en
la SEQ ID NO:52.
Son especialmente esenciales para la invención
las posiciones 3, 4, 199 y 211 de las proteínas maduras, según la
enumeración de la subtilisina de Bacillus lentus DSM 5483 (WO
92/21760). Éstas pueden homologarse, según la tabla 2, con las de
las subtilisinas más importantes; esta homologación puede
extrapolarse a todas las demás subtilisinas. De este modo, se ha
representado en el artículo "Subtilases:
Subtilisin-like Proteases" de R. Siezen, páginas
75-95 en "Subtilisin enzymes", publicado por R.
Bott y C. Betzel, New York, 1996, una alineación de 20 subtilisinas
con relación a la secuencia conocida de la subtilisina BPN'.
Una alineación de las secuencias de aminoácidos
de una variante de proteasa alcalina de B.lentus, según la
invención, con estas subtilisinas más importantes, descritas
precedentemente, en concreto la subtilisina 309 (Savinase®), la
subtilisina PB92, la subtilisina de Carlsberg y la subtilisina BPN'
se muestra, también, en la figura 1 de esta solicitud de
patente.
Debido a la elevada coincidencia estructural
entre las diversas subtilisinas conocidas y a que es idéntico el
mecanismo de reacción, ejercido por las mismas, para la hidrólisis
de los enlaces endógenos de las amidas de ácido, es de esperar que
las citadas mutaciones puntuales desarrollen efectos comparables
respectivamente en el contexto de la molécula correspondiente.
Especialmente es de esperar, en base a las enseñanzas de la
presente solicitud de patente, que quedan adicionalmente mejoradas
aquellas subtilisinas, que ya han sido desarrolladas en el estado
de la técnica, en lo que se refiere a su empleo en los agentes de
lavado y de limpieza, respecto a su contribución al rendimiento del
lavado y respectivamente de limpieza mediante la adquisición de
estas mutaciones puntuales.
Especialmente, la adquisición de los aminoácidos
constituidos por la isoleucina 199 y por la glicina 211 en las
posiciones homólogas debería contribuir, en el caso de los enzimas
conocidos por el estado de la técnica, a una mejora de su
contribución al rendimiento del lavado y respectivamente de la
limpieza en los agentes correspondientes. Tomando como base las
experiencias realizadas con la proteasa alcalina de B.
lentus, estos intercambios favorecen, sin embargo, al menos una
estabilización adicional de las moléculas correspondientes.
La estabilidad de las proteasas según la
invención con las posiciones de los aminoácidos 199I y 211G puede
aumentarse, por ejemplo, mediante copulación sobre polímeros. Un
método de este tipo ha sido descrito, por ejemplo, en la
publicación US 5230891. Éste requiere que las proteínas sean
enlazadas con un polímero de este tipo por medio de una etapa de
copulación química, como paso previo a su empleo en los agentes
correspondientes.
Son preferentes las estabilizaciones que sean
posibles por medio de la propia mutagénesis de la molécula. Dado
que éstas no requieren otras etapas de trabajo después de la
obtención de la proteína. Algunas mutaciones puntuales, adecuadas a
este respecto, son conocidas en sí mismas por el estado de la
técnica. De este modo pueden estabilizarse las proteasas, según las
publicaciones US 6087315 y US 6110884, por intercambio de
determinados restos de tirosina por otros restos. Extrapolado a las
proteínas según la invención, derivadas de Bacillus lentus,
esto significaría el intercambio de los restos de tirosina en las
posiciones 89, 161, 165, 208 y 257 según la SEQ ID NO. 2; las otras
dos posiciones allí indicadas están ocupadas ya en la proteasa
alcalina de B. lentus, en cualquier caso, por tirosina.
Otras posibilidades son, por ejemplo:
- \bullet
- el intercambio de determinados restos de aminoácidos por prolina según la publicación EP 583339; esto significaría los intercambios S55P, A96P, A166P, A188P y/o S253P para los enzimas, que se derivan de B. lentus);
- \bullet
- la inserción de grupos polares o cargados sobre la superficie de la molécula según la publicación EP 995801;
- \bullet
- la modificación del enlace de los iones metálicos, especialmente de los puntos de enlace del calcio, por ejemplo según las enseñanzas de las solicitudes WO 88/08028 y WO 88/08033. Según la primera de estas publicaciones tendrían que intercambiarse uno o varios de los restos de aminoácido, participantes en el enlace del calcio, por aminoácidos cargados negativamente. Según las enseñanzas de la segunda publicación tendrían que incorporarse, simultáneamente, mutaciones puntuales de arginina/glicina en al menos una de las series de ambos restos; esto corresponde, por ejemplo, a las series NG, en subtilisinas procedentes de Bacillus lentus, en las posiciones 60/61, 115/116 y 212/213.
- \bullet
- según la patente US 5453372 pueden protegerse las proteínas contra el efecto de agentes desnaturalizantes, tales como los tensioactivos, con ayuda de determinadas mutaciones sobre la superficie; las posiciones allí indicadas corresponden en la proteasa alcalina de B. lentus a las posiciones 134, 155, 158, 164, 188 y/o 189.
- Otras posibilidades, comparables, han sido indicadas en las patentes US 5340735, US 5500364, US 5985639 y US 6136553.
Según la invención se lleva a cabo la
estabilización por medio de los restos de aminoácidos de la treonina
en la posición 3 y/o de la isoleucina en la posición 4 según la
enumeración de la subtilisina de Bacillus lentus DSM
5483.
Las variantes, ensayadas en los ejemplos de la
presente invención, permiten suponer que su mayor estabilidad es el
factor decisivo para proporcionarles un rendimiento del lavado mejor
en conjunción con los aminoácidos 199I y 211G.
Independientemente de esta teoría, todas las
proteasas alcalinas del tipo subtilisina, caracterizadas porque
presentan isoleucina en posición 199 y glicina en la posición 211,
según la enumeración de la subtilisina procedente de Bacillus
lentus DSM 5483, y que presentan, además, uno de los dos
aminoácidos formados por la treonina en la posición 3 y por la
isoleucina en la posición 4, representan soluciones de la tarea
según la invención.
Además, son preferentes aquellas variantes que
presenten, además de la 199 isoleucina y de la 211 glicina, tanto
la treonina en la posición 3 como también la isoleucina en la
posición 4.
Son preferentes las variantes correspondientes
de aquellas proteasas alcalinas, que estén formadas de manera
natural por un Bacillus o que se deriven del mismo. Puesto que las
proteasas de Bacillus presentan, desde un principio, propiedades
favorables para diversas posibilidades de aplicación industrial. A
éstas pertenece una cierta estabilidad frente a la temperatura,
frente a los agentes oxidantes o desnaturalizantes. Además, se han
adquirido las máximas experiencias con las proteasas microbianas en
lo que se refiere a su producción biotecnológica, lo cual está
relacionado, por ejemplo, con la construcción de vectores de
clonación convenientes, con la elección de las células huésped y
con las condiciones de fermentación o con la estimación de los
riesgos, tal como por ejemplo la alergenicidad.
Las subtilisinas de Bacillus lentus, o
bien las subtilisinas, que se derivan de estas proteasas formadas
de manera natural, se han establecido, de forma muy preferente, en
el estado de la técnica, por ejemplo para el empleo en los agentes
de lavado y de limpieza. A éstas pertenecen las proteasas citadas al
principio formadas por la subtilisina 147, la subtilisina 309 y por
la proteasa alcalina de B. lentus. Las experiencias
que han sido adquiridas para la obtención y el empleo de estas
proteasas son favorables, según la invención, para ulteriores
desarrollos de estos enzimas. A éstas pertenecen, por ejemplo, su
compatibilidad con otros compuestos químicos, tales como, por
ejemplo, los componentes de los agentes de lavado o de limpieza.
Una forma de realización especialmente
preferente se refiere a las proteasas según la invención, que puedan
derivarse de aquellas que están formadas por Bacillus lentus
DSM 5483. Entre éstas quedan abarcadas, por ejemplo, las de las
variantes que han sido descritas en las solicitudes WO 92/21760 o WO
95/23221 o WO 98/30669. Las formas de realización especialmente
preferentes de la presente invención están caracterizadas por los
desarrollos adicionales de estos enzimas con las substituciones,
según la invención, en las posiciones 199, 211, 3 y/o 4.
La proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de
B. lentus, ensayada en la presente solicitud, es un
desarrollo adicional de la subtilisina de B. lentus DSM
5483, que ha sido divulgada en el protocolo de secuencias de la
solicitud WO 92/21760 bajo la SEQ ID NO:52 en su secuencia de
aminoácidos y en la SEQ ID NO:106 en su secuencia de
nucleótidos.
Se ha podido comprobar la contribución de estas
nuevas variantes al rendimiento del lavado, respectivamente al
rendimiento de la limpieza de los agentes correspondientes, mayor
que la de los enzimas comparables y establecidos para esta
finalidad en el estado de la técnica de la proteasa alcalina de
B. lentus F49 y Savinase® (ejemplos
2-5). En el protocolo de secuencias se ha indicado
la secuencia de aminoácidos de esta variante con el número SEQ ID
NO. 2. El gen, que codifica esta serie de aminoácidos, ha sido
indicado en el protocolo de secuencias con el número SEQ ID NO. 1.
Como consecuencia de la tendencia a la degeneración del código
genético puede imaginarse, además, un gran número de otros ácidos
nucleicos, que codifiquen igualmente esta variante y que
representen, simultáneamente, alternativas preferentes dentro de
este objeto de la invención.
Una cepa bacteriana, especialmente una cepa de
Bacillus, que forma la variante proteasa alcalina
S3T/V4I/V199I/
L211G de B. lentus con las secuencias de ADN y de aminoácidos indicadas en el protocolo de secuencias, puede prepararse, por ejemplo, de acuerdo con el ejemplo 1 del procedimiento indicado en la presente solicitud.
L211G de B. lentus con las secuencias de ADN y de aminoácidos indicadas en el protocolo de secuencias, puede prepararse, por ejemplo, de acuerdo con el ejemplo 1 del procedimiento indicado en la presente solicitud.
Con ayuda de los métodos de biología molecular,
establecidos en el estado de la técnica, pueden derivarse otras
proteínas de las proteasas alcalinas citadas hasta ahora. Tales
métodos han sido tratados detalladamente por ejemplo en el manual
de Fritsch, Sambrook y Maniatis "Molecular cloning: a laboratory
manual", Cold Spring Harbour Laboratory Press, New York,
1989.
A éstas pertenecen, por ejemplo, aquellas
variantes a las que se les ha proporcionado propiedades adicionales
por medio de mutagénesis de substitución o por medio de otras
mutaciones puntuales, que están predestinadas en lo que se refiere
a sus posibilidades específicas de aplicación, por ejemplo por medio
de modificaciones de las cargas superficiales, como las que se han
divulgado en la publicación WO 00/36069, o por medio de
modificaciones de los bucles que participan en la catálisis o en
los enlaces con el substrato, como se han divulgado por ejemplo en
la publicación WO 99/27082. También pueden someterse a una
mutagénesis regiones parciales mayores de las variantes. De este
modo, por ejemplo, puede ser el objetivo de una formación de
fragmentos o de una mutagénesis por deleción, la elección de
funciones parciales específicas de la proteasa o, por el contrario,
su exclusión, por ejemplo el enlace con el substrato, o bien las
interacciones con otros compuestos ejercidas a través de
determinadas regiones de la molécula.
Mediante la inserción, la substitución o la
fusión pueden dotarse las proteasas según la invención con funciones
adicionales. Entre éstas pueden imaginarse, por ejemplo, la
copulación con determinados dominios, por ejemplo el enlace sobre
dominios para el enlace con la celulosa, como se ha descrito, por
ejemplo en las publicaciones WO 99/57154 hasta WO 99/57159. Los
enlazadores de los aminoácidos, aquí descritos, pueden realizarse
por formación de una proteína unitaria de fusión, constituida por
la proteasa, por la región del enlazador y por el dominio para el
enlace. Un dominio para el enlace de este tipo podría proceder,
también, de la misma proteasa o de otra proteasa, por ejemplo para
reforzar el enlace de la proteína según la invención sobre un
substrato de proteasa. Esto aumenta la concentración local en
proteasa, lo cual puede ser ventajoso en algunas aplicaciones, por
ejemplo en el tratamiento de materias primas.
Adicionalmente, las proteasas citadas pueden
estar derivatizadas, especialmente para optimizarlas para su
respectiva finalidad de aplicación. Entre éstas se encuentran las
modificaciones químicas, como las que se han descrito, por ejemplo,
en la solicitud DE 40 13 142. También pueden modificarse, por
ejemplo, por copulación de compuestos químicos de bajo peso
molecular o de elevado peso molecular, como se lleva a cabo de
manera natural por parte de diversos organismos en conjunción con
la biosíntesis de las proteínas, tal como por ejemplo el enlace de
un resto de ácido graso cerca del extremo N o la glicosilación en la
síntesis por medio de células huésped eucariotas. Por lo tanto, los
enzimas o los fragmentos proteolíticos, que estén derivatizados
adicionalmente, representan formas de realización de la presente
invención.
En relación con el empleo de las proteínas según
la invención en los agentes de lavado o de limpieza es especialmente
conveniente, por ejemplo, la copulación con otras substancias o
enzimas con actividad de lavado. En las solicitudes de patente WO
00/18865 y WO 00/57155 se han descrito, por ejemplo, combinaciones
por copulación comparables para los dominios del enlace de la
celulosa. De manera análoga, pueden efectuarse también copulaciones
sobre compuestos macromoleculares, tal como por ejemplo el
polietilenglicol, para modificar la molécula en lo que se refiere a
otras propiedades tales como la estabilidad o la compatibilidad con
la piel.
Una modificación de este tipo ha sido descrita,
por ejemplo, en la patente US 5230891, para adecuar mejor a las
proteasas correspondientes para su empleo en productos
cosméticos.
Podrán entenderse por derivados de las proteínas
según la invención, en el sentido más amplio de la palabra, también
las preparaciones de estos enzimas. Según la manera de obtención, la
elaboración o la preparación de una proteína, podrá asociarse la
misma con otros productos diferentes, por ejemplo procedentes del
cultivo de microorganismos productores. Puesto que los
sobrenadantes del cultivo de los microorganismos productores de
proteasas presentan ya una actividad proteolítica, esto indica que
pueden encontrar ya una aplicación correspondiente los extractos en
bruto, por ejemplo para la inactivación de otras actividades
proteinógenas.
Una proteína puede combinarse también
específicamente con otros productos determinados, por ejemplo para
aumentar su estabilidad al almacenamiento. Por lo tanto,
corresponden a la invención también todas las preparaciones de la
proteína según la invención propiamente dicha. Esto es independiente
también de que ésta desarrolle o no su actividad enzimática en una
preparación determinada. Puesto que puede ser deseable que no tenga
actividad o que únicamente tenga una baja actividad durante el
almacenamiento y que únicamente desarrolle su función proteolítica
en el momento de su aplicación. Esto puede depender, por ejemplo,
del estado en que se encuentre plegada la proteína o del enlace
reversible de uno o varios productos acompañantes de la preparación
sobre una proteína según la invención. Especialmente, se conoce por
el estado de la técnica (WO 00/01826) la preparación conjunta de
proteasas con inhibidores de la proteasa. Entre éstas se encuentran
también las proteínas de fusión, en las cuales están enlazados con
las proteasas correspondientes los inhibidores a través de
enlazadores, especialmente enlazadores de aminoácidos (WO
00/01831).
Son especialmente deseables los desarrollos
ulteriores citados, las derivatizaciones y las preparaciones de
proteínas según la invención, cuando ejerzan, además, actividad
proteolítica puesto que esto constituye la condición previa para
sus posibilidades de aplicación según la invención. Preferentemente,
las proteasas, obtenidas por medio de todos los tipos de
mutagénesis y/o de derivatizaciones, disponen de una mayor actividad
proteolítica con relación a la molécula de partida, o bien con
relación a la molécula no derivatizada y, de forma muy
especialmente preferente, tienen un rendimiento mejorado en lo que
se refiere a su respectivo campo de aplicación industrial,
previsto. A este respecto pertenece, especialmente, la mejora de su
rendimiento del lavado y/o de la limpieza para el empleo en los
agentes de lavado o de limpieza.
Esto es posible, por ejemplo, mediante la
combinación de las mutaciones puntuales según la invención con otras
mutaciones puntuales, que se refieran a la reacción catalítica, por
ejemplo en el centro activo. De este modo, sería posible, por
ejemplo, mediante la aplicación de las enseñanzas de la solicitud WO
95/30011 someter a una mutación en las regiones del bucle a las
proteasas según la invención constituidas por aquellas que se
deriven de la subtilisina de Bacillus lentus o sería posible
la inserción de aminoácidos adicionales. Estos trabajos han sido
descritos en las solicitudes que han sido publicadas con los números
WO 00/37599, WO 00/37621 hasta WO 00/37627 y WO 00/71683 hasta WO
00/71691.
La deleción de una región del enzima, que
interaccione con otros productos activos en el medio de la reacción
y que, por lo tanto, tenga un efecto negativo sobre el conjunto de
la reacción, por ejemplo a través del efecto de pliegue, podría
representar un desarrollo deseado de este tipo. De manera análoga
puede imaginarse la fusión con otros enzimas activos, por ejemplo
con otras proteasas, para conseguir una mayor velocidad de
hidrólisis.
A modo de ejemplo, el bloqueo reversible de una
actividad proteolítica durante el almacenamiento puede impedir la
autoproteólisis por enlace de un inhibidor y, de este modo, puede
provocar una elevada velocidad de proteólisis en el instante de la
dilución en el medio de la reacción. A modo de ejemplo, la
copulación con dominios especiales de enlace puede aumentar,
durante el proceso de limpieza, la concentración de la proteasa en
las proximidades del substrato con relación a la del baño y, por lo
tanto, puede aumentar la contribución del enzima al rendimiento del
agente.
Se conoce por el estado de la técnica un gran
número de posibilidades para aumentar la estabilidad de los
enzimas, especialmente de aquellos que se utilizan en los agentes de
lavado y de limpieza (véase más arriba). Entre éstos son
especialmente relevantes, por motivos de practicabilidad, aquellos
métodos que estén basados en la mutagénesis puntual. También pueden
emplearse en combinación todas las posibilidades, ya citadas
anteriormente, en las variantes según la invención. Puesto que
puede suponerse, según la publicación WO 89/09819, que varias
mutaciones estabilizantes tienen una acción aditiva. De este modo,
pueden estabilizarse adicionalmente aquellas variantes según la
invención que estén estabilizadas ya por uno de los dos aminoácidos
formados por 3T o por 4I, o por ambos, mediante copulación con un
polímero. No obstante pueden presentar también una mutación
estabilizante adicional sobre otro punto de la molécula, por
ejemplo mediante substitución de uno o varios de los restos de
tirosina, anteriormente descritos, inserción de determinados restos
de prolina, modificación de las cargas superficiales o mediante la
modificación de los puntos de enlace para el calcio.
Los ácidos nucleicos forman el punto de partida
prácticamente de todos los ensayos usuales de biología molecular y
de los desarrollos ulteriores de las proteínas así como para su
producción. A éstos pertenecen, especialmente, la secuenciación de
los genes y la derivación de las secuencias correspondientes de
aminoácidos, cualquier tipo de mutagénesis y la expresión de las
proteínas. Tales métodos han sido descritos, como ya se ha indicado
más arriba, por ejemplo en el manual de Fritsch, Sambrook y Maniatis
"Molecular cloning: a laboratory manual", Cold Spring Harbour
Laboratory Press, New York, 1989. El segundo objeto de la invención
está constituido, por lo tanto, por los ácido nucleicos que
codifican las proteínas del primer objeto de la invención o sus
derivados.
En el plano de los ADN pueden someterse a una
optimación a los enzimas esenciales para la invención por medio de
todos los métodos agrupados bajo el concepto de "ingeniería de las
proteínas -Protein Engineering-" con relación a diversas
aplicaciones. Especialmente, pueden alcanzarse de este modo las
propiedades siguientes, que se realizan en el plano de las
proteínas: una mejora de la estabilidad frente a la oxidación de la
proteína derivada, la estabilidad frente a los agentes o proteasas
desnaturalizantes, frente a las temperaturas elevadas, frente a
condiciones ácidas o fuertemente alcalinas, una modificación de la
sensibilidad frente al calcio o frente a otros cofactores, una
reducción de la inmunogenidad o del efecto alergénico.
A los genes, mutados según la invención,
pertenecen, por ejemplo, aquellos que sean responsables de
intercambios específicos de bases individuales, o de mutaciones
puntuales estadísticas, de las deleciones de bases individuales o
de secuencias parciales, de fusiones con otros genes o con
fragmentos génicos o de las inversiones. Tales mutaciones o
modificaciones pueden predestinar para aplicaciones específicas al
enzima derivado de los ácidos nucleicos correspondientes. Una
mutagénesis de este tipo puede llevarse a cabo en los genes clonados
de una manera específica o por métodos estadísticos, por ejemplo
con un procedimiento subsiguiente de reconocimiento y/o de
selección (cribado y selección), dirigidos a la actividad.
Especialmente en el caso de los ácidos
nucleicos, que codifican fragmentos de proteína, deben tenerse en
consideración los tres marcos de lectura tanto en la orientación
codificante (sense) así como también en la orientación no
codificante (antisense). Dado que tales oligonucleótidos
pueden emplearse a través de la reacción en cadena de la polimerasa
(RCP) como punto de partida para la síntesis de ácidos nucleicos
emparentados. Tales ácidos nucleicos quedarán incluidos
expresamente en el ámbito de protección de la presente invención
cuando cubran, especialmente, una de las regiones que correspondan
a las cuatro posiciones de los aminoácidos 3, 4, 199 y/o 211. Esto
es válido, también, para aquellos que presenten ya en estas
posiciones secuencias variables de tal manera, que pueda estar
presente dentro de una población de muchos cebadores también, al
menos, uno que codifique una posición de este tipo para una
secuencia parcial correspondiente a la SEQ ID NO. 3. Lo mismo es
válido para los oligonucleótidos no codificantes
(antisentido), que pueden ser empleados, por ejemplo, para
la regulación de la expresión.
El desarrollo ulterior de las proteasas según la
invención puede dirigirse especialmente a los razonamientos
presentados en la publicación "Protein engineering" de
P.N.Bryan (2000) en Biochim. Biophys. Acta, tomo 1543, páginas
203-222.
Son preferentes los ácidos nucleicos que
codifiquen proteasas de subtilisina, cuya secuencia de nucleótidos
coincida con la secuencia de nucleótidos indicada en la SEQ ID NO.
3. Esto es válido, especialmente, para las regiones que codifiquen
la 199 isoleucina y la 211 glicina, y de una manera muy
especialmente preferente para las que codifiquen la 3 treonina, la
4 isoleucina, la 199 isoleucina y la 211 glicina.
Esto es válido, preferentemente, para las que
pueden derivarse de una secuencia para una proteasa de Bacillus
lentus y, especialmente, cuando puedan derivarse de una
secuencia para una proteasa de Bacillus lentus DSM 5483. En
el caso muy especialmente preferente, el ácido nucleico codifica la
variante según la invención de la proteasa alcalina
S3T/V4I/V199I/L211G de B. lentus y/o coincide con la
secuencia de nucleótidos dada en la SEQ ID NO. 3.
En el ámbito de protección quedan abarcados, por
ejemplo, también aquellos ácidos nucleicos que codifiquen mutantes
por inserción o por fusión con actividad proteolítica. De este modo,
pueden estar fusionadas las regiones responsables de esta
actividad, por ejemplo con dominios enlazantes de la celulosa o
portan mutaciones puntuales en regiones sin actividad catalítica
para posibilitar la copulación de la proteína derivada sobre el
polímero o para reducir su alergenicidad.
Para manipular los ácidos nucleicos según la
invención, éstos se encajarán, adecuadamente, en vectores. A éstos
pertenecen, por ejemplo, los vectores que se deriven de plásmidos
bacterianos, de virus o de bacteriófagos, o de vectores
preponderantemente sintéticos. Éstos forman puntos de partida
adecuados para los ensayos de biología molecular y bioquímicos del
gen correspondiente, de su expresión o de la proteína
correspondiente. Un objeto inventivo de la presente invención
corresponde, por lo tanto, a las moléculas de ácidos nucleicos
anteriormente citadas, especialmente a aquellas que codifiquen los
enzimas proteolíticos anteriormente citados.
Los vectores de clonación son formas de
realización preferentes de este objeto de la invención. Éstos son
adecuados para la caracterización por biología molecular del gen
correspondiente, además de para el almacenamiento, para la
amplificación biológica o para la selección del gen interesante.
Simultáneamente, representan formas transportables y almacenables
de los ácidos nucleicos reivindicados y constituyen, también, puntos
de partida para técnicas de biología molecular, que no estén
relacionadas con la célula, tales como por ejemplo la RCP o los
procedimientos de mutagénesis In-vitro. Son
preferentes aquellos vectores de clonación que contengan regiones
de ácidos nucleicos que codifiquen los enzimas proteolíticos
anteriormente citados.
Los vectores de expresión, según la invención,
son la base para realización de los ácidos nucleicos del segundo
objeto de la invención en sistemas de producción biológicos y, de
este modo, para producir las proteínas del primer objeto de la
invención. Las formas preferentes de realización de este objeto de
la invención consisten en vectores de expresión, que porten todos
los elementos genéticos necesarios para la expresión, por ejemplo
el promotor natural, localizado originalmente por delante de este
gen, o un promotor procedente de otro organismo. Estos elementos
pueden ordenarse, por ejemplo, en forma de un denominado casete de
expresión. Son preferentes aquellos vectores de expresión que
contengan regiones de ácidos nucleicos, que codifiquen los enzimas
proteolíticos anteriormente citados.
Otra posibilidad de aplicación de la presente
invención corresponde a las células, que contengan un vector según
el tercer objeto de la invención. Éstas forman, por lo tanto, la
dimensión microbiológica de la presente invención posibilitando,
por ejemplo, la amplificación de los genes correspondientes, así
como, también, su mutagénesis o su transcripción y su traducción y,
finalmente, la producción biotecnológica.
Una forma de realización de este objeto de la
invención consiste en células huésped, que expresen una de las
proteínas según la invención o que puedan ser estimuladas para su
expresión. Por lo tanto, estas posibilitan su producción
biotecnológica. Para ello deben contener el gen correspondiente, en
el caso más adecuado por medio de un vector, es decir que se
presenten en estado transformado. Este vector puede presentarse en
la célula huésped en estado extracromosomal a modo de elemento
genético propio o puede integrarse en un cromosoma. Preferentemente
se trata en este caso de uno de los vectores de expresión
anteriormente descritos.
Como células huésped son adecuados, en
principio, todos los organismos, es decir los procariotas, los
eucariotas o los cianofitos. Son preferentes aquellas células
huésped que puedan manipularse perfectamente por vía genética en lo
que se refiere, por ejemplo, a la transformación con el vector de
expresión y a su establecimiento estable, por ejemplo hongos o
bacterias monocelulares. Además, las células huésped se caracterizan
preferentemente por una buena aptitud a la manipulación
microbiológica y biotecnológica. Esto se refiere, por ejemplo, a la
fácil posibilidad de cultivo, a las elevadas velocidades de
crecimiento, a los reducidos requisitos con respecto a los medios
de fermentación y a las buenas velocidades de producción y de
secreción para las proteínas foráneas. Frecuentemente debe
determinarse experimentalmente, para cada caso individual, el
sistema óptimo de expresión entre la pluralidad de los distintos
sistemas disponibles según el estado de la técnica. Cada proteína,
según la invención, puede obtenerse, de este modo, a partir de una
pluralidad de organismos huésped.
Las formas preferentes de realización
corresponden a aquellas células huésped que puedan regularse en
cuanto a su actividad debido a los elementos genéticos
correspondientes, por ejemplo mediante adición controlada de
compuestos químicos, mediante modificación de las condiciones de
cultivo o en función de la correspondiente densidad celular. Esta
expresión controlable posibilita una producción muy económica de las
proteínas interesantes.
Una forma preferente de realización está
constituida por células huésped bacterianas, especialmente aquellas
que secreten la proteína formada en el medio circundante. Puesto que
las bacterias se caracterizan por tiempos cortos para la generación
y por pequeños requisitos en relación a las condiciones de cultivo.
De este modo pueden establecerse procedimientos de bajo coste. En
el caso de las bacterias gram-negativas, tal como
por ejemplo E. coli, se secretará una pluralidad de
proteínas en el recinto periplasmático. Esto puede ser ventajoso
para aplicaciones especiales. Las bacterias
gram-positivas, tales como por ejemplo los Bacillus,
emiten, por el contrario, proteínas secretadas igualmente en el
medio nutriente que circunda a la célula, a partir de cual pueden
purificarse directamente las proteínas expresadas, según la
invención, de acuerdo con otra forma preferente de realización. En
la solicitud WO 01/81597 se divulga incluso un procedimiento según
el cual se consigue que incluso las bacterias
gram-negativas descarguen proteínas expresadas.
Una forma de realización de la presente
invención aprovecha el propio Bacillus lentus DSM 5483, para
expresar proteínas según la invención (homólogos). Por el
contrario, es preferente, sin embargo, la expresión heteróloga. A
las bacterias, que son preferentes para la expresión heteróloga,
pertenecen aquellas del género Bacillus, especialmente aquellas de
las especies Bacillus licheniformis, Bacillus amyloliquefaciens,
Bacillus subtilis u otras especies o cepas de Bacillus
alcalophilus. Puesto que éstas forman las propias subtilisinas
comparables, puede obtenerse a través de este procedimiento una
mezcla de proteínas según la invención con las subtilisinas
endógenas formadas por las cepas huésped. A modo de ejemplo, se ha
descrito en la solicitud WO 91/02792 (EP 493398 B1) dicha
coexpresión de la proteasa alcalina de B. lentus en
Bacillus licheniformis ATCC 53926; en dicha publicación se
encuentra también un gran número de posibles vectores de expresión.
Es de esperar que puedan prepararse con ayuda de estos vectores y/o
en este sistema huésped las nuevas variantes encontradas según la
invención, especialmente las de Bacillus lentus y de manera
muy especialmente preferente la proteasa alcalina S3TN41N199I/L211G
de B. lentus.
Otra forma preferente de realización de este
objeto de la invención está constituido por células huésped
eucariotas, especialmente aquellas que modifiquen
post-traducción a la proteína formada. Ejemplos de
eucariotas adecuados son los hongos tales como los actinomicetos o
las levaduras tales como Saccharomyces o
Kluyveromyces. A las modificaciones, que llevan a cabo tales
sistemas especialmente en conjunción con la síntesis de las
proteínas pertenecen, por ejemplo, el enlace de compuestos de bajo
peso molecular tales como anclajes con la membrana o los
oligosacáridos. Tales modificaciones con oligosacáridos pueden ser
deseables, por ejemplo, para reducir la alergenicidad de las
proteínas preparadas.
Un objeto independiente de la invención está
constituido por procedimientos para la obtención de un enzima
proteolítico o sus derivados, según la invención. De este modo
pueden sintetizarse, por ejemplo, los oligopéptidos o los
oligonucleótidos correspondientes hasta incluso los genes y
proteínas completos según los métodos conocidos de la biología
molecular, por medio de las secuencias de ADN y de aminoácidos
anteriormente citadas, como las que pueden deducirse, por ejemplo,
también del protocolo se secuencias. A partir de los microorganismos
conocidos, productores de la subtilisina, pueden aislarse también
otros productores naturales de las subtilisinas, pueden
determinarse sus secuencias de subtilisina y pueden desarrollarse
adicionalmente de acuerdo con las premisas aquí dadas. Tales
especies de bacterias pueden cultivarse y emplearse también para los
procedimientos de obtención correspondientes. De manera análoga
pueden desarrollarse nuevos vectores de expresión, de acuerdo con
la muestra de los vectores divulgados por ejemplo en la solicitud WO
91/02792. También pueden ser formas de realización de la presente
invención los sistemas de expresión exentos de células, en base a
las secuencias correspondientes de ácidos nucleicos, en los que se
imagine la biosíntesis de proteínas in vitro. Todos los
elementos ya indicados anteriormente pueden combinarse para dar
nuevos procedimientos, para la preparación de las proteínas según
la invención. En este caso puede imaginarse una pluralidad de
posibilidades de combinación de las etapas del procedimiento para
cada proteína según la invención de tal manera, que deberá
determinarse por vía experimental el procedimiento óptimo para cada
caso particular concreto.
Un objeto de independiente de la invención
consiste en agentes caracterizados porque contienen un enzima
proteolítico según la invención.
Prácticamente todas las posibilidades de
aplicación industrial de los enzimas, según la invención, dependen
de que utilice el enzima capaz de funcionar en un medio
correspondiente. De este modo, las posibilidades de empleo
microbiológico requieren, por ejemplo, agentes en los que se ponga
en contacto el enzima, en la mayoría de los casos en forma de
preparaciones de gran pureza, con los participantes necesarios de la
reacción o con los cofactores. Los agentes para el tratamiento de
materiales en bruto o las preparaciones cosméticas están
caracterizados igualmente por recetas específicas. Todas estas
recetas deben considerarse, según la invención, como agentes con el
enzima según la invención.
Se asocian con este objeto de la invención los
agentes de lavado o de limpieza como formas preferentes de
realización. Dado que, tal como se ha mostrado en los ejemplos de
realización de la presente solicitud, se ha podido observar,
sorprendentemente, que una variante de la subtilisina 199I/211G
(numeración según la proteasa alcalina de B. lentus),
o bien una variante de Bacillus lentus con los intercambios
S3T/V4I/V199I/L211G, especialmente la variante de proteasa alcalina
S3T/V4I/V199I/L211G de B. lentus,derivada de Bacillus
lentus DSM 5483, proporciona un claro aumento del rendimiento
sobre diversas suciedades (véanse los ejemplos 2 y 3). Esto
sobrepasa el nivel de las proteasas establecidas en los agentes de
lavado con empleo de igual actividad. Lo mismo es válido para los
agentes para el fregado a máquina de la vajilla correspondientes
(véanse los ejemplos 4 y 5). Este efecto se presenta, de manera
reproducible, tanto a temperaturas diferentes así como, también, a
concentraciones diferentes.
A este objeto de la invención pertenecen todos
los tipos imaginables de agentes de limpieza, tanto concentrados
así como también agentes que deban ser empleados sin dilución; para
el empleo a escala comercial, en las máquinas lavadoras o en la
colada a mano, o bien en la limpieza a mano. A éstos pertenecen, por
ejemplo, los agentes de lavado para los artículos textiles, las
alfombras o las fibras naturales, para los que se utiliza la
denominación de agente de lavado según la presente invención. A
éstos pertenecen, por ejemplo, también los agentes para el fregado
de la vajilla para las máquinas friegaplatos o los agentes para el
fregado a mano de la vajilla o limpiadores para superficies duras
tales como metal, vidrio, porcelana, cerámica, baldosines, piedra,
superficies barnizadas, materiales sintéticos, madera o cuero; para
éstos se utilizará la denominación de agentes de limpieza según la
presente invención. Cada tipo de agente de limpieza representa una
forma de realización de la presente invención en tanto en cuanto
esté enriquecido con una proteína según la invención.
Las formas de realización de la presente
invención abarcan todas las formas de administración establecidas
según el estado de la técnica y/o todas las formas de administración
convenientes de los agentes según la invención. A éstas pertenecen,
por ejemplo, los agentes sólidos, en forma de polvo, líquidos, en
forma de gel o pastosos, en caso dado incluso con varias fases,
comprimidos o no comprimidos; además a éstos pertenecen, por
ejemplo: los cuerpos extruidos, los granulados, las tabletas o las
bolsitas, tanto en recipientes de gran tamaño como también
empaquetados en forma de porciones.
Los agentes según la invención contienen los
enzimas según la invención en una cantidad desde 2 \mug hasta 20
mg y de manera más preferente desde 5 \mug hasta 17,5 mg, desde 20
\mug hasta 15 mg, desde 50 \mug hasta 10 mg, desde 100 \mug
hasta 7,5 mg, desde 200 \mug hasta 5 mg y desde 500 \mug hasta 1
mg por gramo del agente. De este modo se presentan desde 40 \mug
hasta 4 g y de manera más preferente desde 50 \mug hasta 3 g,
desde 100 \mug hasta 2 g, desde 200 \mug hasta 1 g y, de forma
especialmente preferente, desde 400 \mug hasta 400 mg por
aplicación.
La actividad de las proteasas en tales agentes
puede determinarse de acuerdo con los métodos descritos en la
publicación Tenside, tomo 7 (1970), páginas 125-132.
Por lo tanto, se indicará en PE (unidades de proteasa). La
actividad de la proteasa de los agentes puede tomar un valor de
hasta 1.500.000 unidades de proteasa por gramo de preparación.
Además de un enzima según la invención, un
agente según la invención contiene, en caso dado, otros componentes
tales como los tensioactivos, por ejemplo los tensioactivos no
iónicos, aniónicos y/o anfóteros, y/o los agentes de blanqueo y/o
los adyuvantes así como, en caso dado, otros componentes
usuales.
Como tensioactivos no iónicos se emplearán,
preferentemente, alcoholes alcoxilados, preferentemente etoxilados,
especialmente primarios con, preferentemente, 8 hasta 18 átomos de
carbono y en promedio 1 hasta 12 moles de óxido de etileno (EO) por
mol de alcohol, en los que el resto alcohólico puede ser lineal o
puede estar ramificado por metilo en la posición 2, o bien puede
contener en mezcla restos lineales y ramificados con metilo de tal
manera que esté presente usualmente un resto de oxoalcohol. Sin
embargo son especialmente preferentes los alcoholetoxilatos con
restos lineales procedentes de alcoholes de origen natural con 12
hasta 18 átomos de carbono, por ejemplo de alcohol de coco, de
palma, de grasa de sebo o alcohol oleílico y, en promedio, 2 hasta
8 EO por mol de alcohol. A los alcoholes etoxilados preferentes
pertenecen, por ejemplo, los alcoholes con 12 hasta 14 átomos de
carbono con 3 EO o con 4 EO, los alcoholes con 9 hasta 11 átomos de
carbono con 7 EO, los alcoholes con 13 hasta 15 átomos de carbono
con 3 EO, con 5 EO, con 7 EO o con 8 EO, los alcoholes con 12 hasta
18 átomos de carbono con 3 EO, con 5 EO o con 7 EO y mezclas de los
mismos, tales como mezclas formadas por alcoholes con 12 a 14
átomos de carbono con 3 EO y alcoholes con 12 a 18 átomos de carbono
con 5 EO. Los grados de etoxilación indicados representan valores
estadísticos medios, que pueden ser un número entero o un número
fraccionario para un producto especial. Los alcoholetoxilatos
preferentes presentan una distribución estrecha de los homólogos
(narrow range ethoxylates, NRE). Además de estos tensioactivos no
iónicos pueden emplearse también alcoholes grasos con más de 12 EO.
Ejemplos a este respecto son alcoholes grasos de sebo con 14 EO,
con 25 EO, con 30 EO o con
40 EO.
40 EO.
Otra clase preferente de tensioactivos no
iónicos, empleables, que se emplean bien como únicos tensioactivos
no iónicos o en combinación con otros tensioactivos no iónicos, son
los ésteres de alquilo de los ácidos grasos alcoxilados,
preferentemente etoxilados o etoxilados y propoxilados,
preferentemente con 1 hasta 4 átomos de carbono en la cadena
alquilo, especialmente los ésteres de metilo de los ácidos
grasos.
Otra clase de tensioactivos no iónicos que
pueden ser empleados de manera ventajosa son los
alquilpoliglicósidos (APG). Los alquilpoliglicósidos empleables
cumplen la fórmula general RO(G)_{z}, en la que R
significa un resto alifático lineal o ramificado, especialmente
ramificado con metilo en la posición 2, saturado o insaturado, con
8 hasta 22, preferentemente con 12 hasta 18 átomos de carbono y G es
el símbolo que significa una unidad de glicosa con 5 o con 6 átomos
de carbono, preferentemente significan glucosa. El grado de
glicosilación z está comprendido, en este caso, entre 1,0 y 4,0,
preferentemente entre 1,0 y 2,0 y, especialmente, entre 1,1 y 1,4.
Preferentemente se emplearán alquilpoliglucósidos, es decir
alquilpoliglicósidos en los cuales el resto de poliglicosilo es un
resto de glucosa y el resto alquilo es un resto
n-alquilo.
También pueden ser adecuados los tensioactivos
no iónicos del tipo de los óxidos de amina, especialmente los
óxidos de
N-cocoalquil-N,N-dimetilamino
y los óxidos de
N-seboalquil-N,N-dihidroxietilamina,
y del tipo de las alcanolamidas de los ácidos grasos. La proporción
de estos tensioactivos no iónicos no se encuentra, preferentemente,
por encima de la de los alcoholes grasos etoxilados, especialmente
no es mayor que la mitad de los mismos.
Otros tensioactivos adecuados son las amidas de
los ácidos polihidroxigrasos de la fórmula (II),
en la que RCO significa un resto
acilo alifático con 6 hasta 22 átomos de carbono, R^{1} significa
hidrógeno, un resto alquilo o hidroxialquilo con 1 hasta 4 átomos
de carbono y [Z] significa un resto polihidroxialquilo lineal o
ramificado con 3 hasta 10 átomos de carbono y con 3 hasta 10 grupos
hidroxilo. Las amidas de los ácidos polihidroxigrasos están
constituidas por productos conocidos que, usualmente, pueden
obtenerse por aminación por reducción de un azúcar reductor con
amoníaco, con una alquilamina o con una alcanolamina y subsiguiente
acilación con un ácido graso, con un éster de alquilo de ácido graso
o con un cloruro de ácido
graso.
Al grupo de las amidas de los ácidos
polihidroxigrasos pertenecen, también, los compuestos de la fórmula
(III),
en la que R significa un resto
alquilo o alquenilo lineal o ramificado con 7 hasta 12 átomos de
carbono, R^{1} significa un resto alquilo lineal, ramificado o
cíclico o un resto arilo con 2 hasta 8 átomos de carbono y R^{2}
significa un resto alquilo, lineal, ramificado o cíclico o significa
un resto arilo o un resto oxi-alquilo con 1 hasta 8
átomos de carbono, siendo preferentes los restos alquilo con 1 a 4
átomos de carbono o los restos fenilo y [Z] significa un resto
polihidroxialquilo lineal, cuya cadena alquilo está substituida con,
al menos, dos grupos hidroxilo, o derivados alcoxilados,
preferentemente etoxilados o propoxilados de estos
restos.
Preferentemente, [Z] se obtiene mediante
aminación por reducción de un azúcar reductor, por ejemplo la
glucosa, la fructosa, la maltosa, la lactosa, la galactosa, la
manosa o la xilosa. Los compuestos substituidos por
N-alcoxi o por N-ariloxi pueden
transformarse, por ejemplo, mediante reacción con ésteres de metilo
de los ácidos grasos en presencia de un alcóxido a modo de
catalizador para dar las amidas de los ácidos polihidroxigrasos
deseadas.
Como tensioactivos aniónicos se emplearán, por
ejemplo, aquellos del tipo de los sulfonatos y de los sulfatos.
Como tensioactivos del tipo sulfonato entran en consideración en
este caso, preferentemente, los bencenosulfonatos de alquilo con 9
hasta 13 átomos de carbono, los olefinasulfonatos, es decir mezclas
formadas por alquenosulfonatos e hidroxialcanosulfonatos así como
disulfonatos, tales como por ejemplo los que están constituidos por
monoolefinas con 12 hasta 18 átomos de carbono con el doble enlace
situado en el extremo o en el interior de la cadena por sulfonación
con trióxido de azufre gaseoso y subsiguiente hidrólisis alcalina o
ácida de los productos de la sulfonación. También son adecuados los
alcanosulfonatos, que se obtienen a partir de alcanos con 12 hasta
18 átomos de carbono, por ejemplo, mediante sulfocloración o
mediante sulfoxidación con hidrólisis o bien neutralización
subsiguiente. Del mismo modo son adecuados los ácidos
\alpha-sulfograsos (éstersulfonatos), por ejemplo
los ésteres de metilo \alpha-sulfonados de los
ácidos grasos de coco, de semillas de palma o de sebo,
hidrogenados.
Otros tensioactivos aniónicos adecuados son los
ésteres de glicerina de los ácidos grasos, sulfonados. Se entenderá
por ésteres de glicerina de los ácidos grasos los monoésteres, los
diésteres y los triésteres así como sus mezclas, como las que se
obtienen en la fabricación por esterificación de una monoglicerina
con 1 hasta 3 moles de ácido graso o en la transesterificación de
los triglicéridos con 0,3 hasta 2 moles de glicerina. Los ésteres
de glicerina de los ácidos grasos, sulfonados, preferentes son en
este caso los productos de sulfonación de los ácidos grasos
saturados, con 6 hasta 22 átomos de carbono, por ejemplo del ácido
caprónico, del ácido caprílico, del ácido caprínico, del ácido
mirístico, del ácido láurico, del ácido palmítico, del ácido
esteárico o del ácido behénico.
Como sulfatos de alqu(en)ilo serán
preferentes las sales alcalinas y, especialmente, las sales de sodio
de los semiésteres del ácido sulfúrico con alcoholes grasos con 12
hasta 18 átomos de carbono, por ejemplo constituidos por los
alcoholes grasos de coco, los alcoholes grasos de sebo, el alcohol
laurílico, el alcohol miristílico, el alcohol cetílico o el alcohol
estearílico o de los oxoalcoholes con 10 hasta 20 átomos de carbono
y aquellos semiésteres de alcoholes secundarios con estas
longitudes de la cadena. Además son preferentes los sulfatos de
alqu(en)ilo con las longitudes de las cadenas citadas,
que contengan un resto alquilo de cadena lineal sintético,
fabricado sobre la base petroquímica, que tengan un comportamiento a
la degradación similar al de los compuestos adecuados a base de
materias primas de la química de grasas. Desde el punto de vista
industrial para el lavado son preferentes los sulfatos de alquilo
con 12 hasta 16 átomos de carbono y los sulfatos de alquilo con 12
hasta 15 átomos de carbono así como los sulfatos de alquilo con 14
hasta 15 átomos de carbono. También los sulfatos de
2,3-alquilo son tensioactivos aniónicos
adecuados.
adecuados.
Del mismo modo son adecuados los monoésteres del
ácido sulfúrico de los alcoholes con 7 hasta 21 átomos de carbono
de cadena lineal o de cadena ramificada, etoxilados con 1 hasta 6
moles de óxido de etileno, tales como los alcoholes con 9 a 11
átomos de carbono ramificados con 2-metilo con un
promedio de 3,5 moles de óxido de etileno (EO) o los alcoholes
grasos con 12 hasta 18 átomos de carbono con 1 hasta 4 EO. Éstos se
emplearán en los agentes de limpieza únicamente en cantidades
relativamente pequeñas, debido a su elevado comportamiento a la
formación de espuma, por ejemplo en cantidades de hasta un 5% en
peso, usualmente desde un 1 hasta 5% en peso.
Otros tensioactivos aniónicos adecuados son
también las sales de los ácidos alquilsulfosuccínicos, que se
denominan también como sulfosuccinatos o como ésteres del ácido
sulfosuccínico y que representan monoésteres y/o diésteres del
ácido sulfosuccínico con alcoholes, preferentemente con alcoholes
grasos y, especialmente, con alcoholes grasos etoxilados. Los
sulfosuccinatos preferentes contienen restos de alcoholes grasos con
8 hasta 18 átomos de carbono o mezclas formadas por los mismos. Son
especialmente preferentes los sulfosuccinatos que contengan un
resto de alcohol graso, que se derive de alcoholes grasos
etoxilados, que considerados en sí mismos sean tensioactivos no
iónicos (para la descripción véase más arriba). En este caso son
especialmente preferentes, a su vez, los sulfosuccinatos, cuyos
restos de alcohol graso se derivan de alcoholes grasos etoxilados
con una distribución estrecha de los homólogos. Del mismo modo, es
posible, también, emplear ácidos alqu(en)ilsuccínicos
preferentemente con 8 hasta 18 átomos de carbono en la cadena de
alqu(en)ilo o sus sales.
Como otros tensioactivos aniónicos entran en
consideración especialmente los jabones. Son adecuados los jabones
de ácidos grasos saturados, tales como las sales del ácido láurico,
del ácido mirístico, del ácido palmítico, del ácido esteárico, del
ácido erúcico hidrogenado y del ácido behénico así como,
especialmente, las mezclas de jabones derivadas de los ácidos
grasos naturales, tales como los ácidos grasos de coco, de semillas
de palma o de sebo.
Los tensioactivos aniónicos con inclusión de los
jabones pueden presentarse en forma de sus sales de sodio, de
potasio o de amonio así como en forma de sales solubles de bases
orgánicas, tales como la monoetanolamina, la dietanolamina o la
trietanolamina. Preferentemente los tensioactivos aniónicos se
presentan en forma de sus sales de sodio, de potasio, especialmente
en forma de sus sales de sodio.
Los tensioactivos pueden estar contenidos en los
agentes de lavado o de limpieza, según la invención, en total en
una cantidad desde aproximadamente un 5% en peso hasta un 50% en
peso, especialmente desde un 8% en peso hasta un 30% en peso,
referido al agente acabado.
Los agentes según la invención pueden contener
agentes de blanqueo. Entre los compuestos suministradores de
H_{2}O_{2} en agua, que sirven como agentes de blanqueo, tienen
un significado especial el percarbonato de sodio, el tetrahidrato
de perborato de sodio y el monohidrato de perborato de sodio. Otros
agentes de blanqueo empleables son, por ejemplo, los
peroxopirofosfatos, los citratoperhidratos así como las sales
perácidas o los perácidos suministradores de H_{2}O_{2}, tales
como los persulfatos o bien el ácido persulfúrico. También puede
emplearse el peroxohidrato de urea percarbamida, que puede
describirse por medio de la fórmula
H_{2}N-CO-NH_{2}\cdotH_{2}O_{2}.
Especialmente podrán estar contenidos también, en caso deseado,
agentes de blanqueo del grupo de los agentes de blanqueo orgánicos,
cuando se utilicen los agentes para la limpieza de superficies
duras, por ejemplo en el fregado a máquina de la vajilla, aún cuando
su empleo sea posible en principio, también, en los agentes para el
lavado de los artículos textiles. Los agentes de blanqueo orgánicos
típicos son los peróxidos de diacilo, tal como por ejemplo el
peróxido de dibenzoilo. Otros agentes de blanqueo orgánicos típicos
son los peroxiácidos, citándose como ejemplos especialmente los
alquilperoxiácidos y los arilperoxiácidos. Los representantes
preferentes son el ácido peroxibenzoico y sus derivados de
substitución en el anillo, tales como los ácidos
alquilperoxibenzoicos, así como también el ácido
peroxi-\alpha-naftoico y el
monoperftalato de magnesio, los peroxiácidos alifáticos o alifáticos
substituidos, tales como el ácido peroxiláurico, el ácido
peroxiesteárico, el ácido
\varepsilon-ftalimidoperoxicaprónico (ácido
ftalimidoperoxihexanoico, PAP), el ácido
o-carboxibenzamidoperoxicaprónico, el ácido
N-nonenilamidoperadípico y el
N-nonenilamidopersuccinato, y los ácidos
peroxidicarboxílicos alifáticos y aralifáticos, tales como el ácido
1,12-diperoxicarboxílico, el ácido
1,9-diperoxiazelaico, el ácido diperoxisebácico, el
ácido diperoxibrasílico, los ácidos diperoxiftálicos, el ácido
2-decildiperoxibutano-1,4-dioico,
el ácido
N,N-tereftaloil-di(6-aminopercaprónico).
El contenido de los agentes en agentes de
blanqueo puede estar comprendido entre un 1 y un 40% en peso y,
especialmente, entre un 10 y un 20% en peso, empleándose
ventajosamente el monohidrato de perborato o el percarbonato.
Con el fin de conseguir un efecto de blanqueo
mejorado cuando se lleve a cabo la colada a temperaturas de 60ºC y
por debajo de este valor y, especialmente, en el tratamiento previo
de la colada, los agentes podrán contener también activadores de
blanqueo. Como activadores de blanqueo pueden emplearse compuestos
que generen, bajo condiciones de perhidrólisis, ácidos
peroxocarboxílicos alifáticos con, preferentemente, 1 hasta 10
átomos de carbono, especialmente con 2 hasta 4 átomos de carbono,
y/o ácidos perbenzoicos substituidos en caso dado. Son adecuadas
las substancias que porten grupos de O-acilo y/o de
N-acilo con el número de átomos de carbono citado
y/o que porten grupos benzoilo substituidos en caso dado. Son
preferentes las alquilendiaminas poliaciladas, especialmente la
tetraacetiletilendiamina (TAED), los derivados de triazina acilados,
especialmente la
1,5-diacetil-2,4-dioxohexahidro-1,3,5-triazina
(DADHT), los glicolurilos acilados, especialmente el
1,3,4,6-tetraacetilglicolurilo (TAGU), las
N-acilimidas, especialmente la
N-nonanoilsuccinimida (NOSI), los fenolsulfonatos
acilados, especialmente los oxibencenosulfonatos de
n-nonanoilo o de isononanoilo (n- respectivamente
iso-NOBS), los ácidos hidroxicarboxílicos acilados,
tales como el citrato de
trietil-O-acetilo (TEOC), los
anhídridos de los ácidos carboxílicos, especialmente el anhídrido
del ácido isatoico y/o el anhídrido del ácido succínico, las amidas
de los ácidos carboxílicos, tal como la
N-metildiacetamida, los glicoluros, los alcoholes
polivalentes acilados, especialmente la triacetina, el diacetato de
etilenglicol, el acetato de isopropenilo, el
2,5-diacetoxi-2,5-dihidrofurano
y los ésteres de enol, conocidos por las solicitudes de patente
alemanas DE 196 16 693 y DE 196 16 767 así como el sorbitol y el
manitol acetilados o bien sus mezclas (SORMAN) descritas en la
solicitud de patente europea EP 0 525 239, los derivados sacáricos
acilados, especialmente la pentaacetilglucosa (PAG), la
pentaacetilfructosa, la tetraacetilxilosa y la octaacetillactosa
así como la glucamina acetilada, en caso dado
N-alquilada o bien la gluconolactona, el triazol o
bien los derivados de triazol y/o las caprolactamas y/o los
derivados de caprolactama, en forma de partículas, preferentemente
las lactamas N-aciladas, por ejemplo la
N-benzoilcaprolactama y la
N-acetilcaprolactama, que se conocen por las
solicitudes de patente internacionales WO 94/27970, WO 94/28102, WO
94/28103, WO 95/00626, WO 95/14759 y WO 95/17498. Del mismo modo se
emplearán, preferentemente, los acilacetales substituidos de manera
hidrófila, conocidos por la solicitud de patente alemana DE 196 16
769 y las acillactamas descritas en la solicitud de patente alemana
DE 196 16 770 así como en la solicitud de patente internacional WO
95/14075. También pueden emplearse las combinaciones de los
activadores de blanqueo convencionales conocidas por la solicitud
de patente alemana DE 4443 177. Del mismo modo pueden emplearse
derivados del nitrilo tales como las cianopiridinas, los
nitrilquats, por ejemplo los
N-alquilamonioacetonitrilos, y/o los derivados de
cianamida. Los activadores de blanqueo preferentes son el
4-(octanoiloxi)-bencenosulfonato de sodio, el
oxibencenosulfonato de n-nonanoilo o de isononanoilo
(n- respectivamente iso-NOBS), el
oxibencenosulfonato de undecenoilo (UDOBS), el
dodecanoiloxibencenosulfonato de sodio (DOBS), el ácido
decanoiloxibenzoico (DOBA, OBC 10) y/o el oxibencenosulfonato de
dodecanoilo (OBS 12), así como el acetonitrilo de
N-metilmorfolino (MMA). Dichos activadores de
blanqueo pueden estar contenidos en las cantidades usuales desde un
0,01 hasta un 20% en peso, preferentemente en cantidades desde un
0,1 hasta un 15% en peso, especialmente desde un 1% en peso hasta
un 10% en peso, referido al conjunto de la composición.
Además de los activadores de blanqueo
convencionales o en su lugar pueden estar contenidos también los
denominados catalizadores de blanqueo. Estos productos están
constituidos por sales de los metales de transición o bien
complejos de los metales de transición, que refuerzan el blanqueo,
tales como por ejemplo los complejos de sales o los complejos de
carbonilo de Mn, de Fe, de Co, de Ru o de Mo. También son adecuados
como catalizadores de blanqueo los complejos de Mn, de Fe, de Co,
de Ru, de Mo, de Ti, de V y de Cu con ligandos tripodo que
contengan N así como los complejos de amina con Co, con Fe, con Cu y
con Ru, empleándose preferentemente aquellos compuestos que han
sido descritos en la publicación DE 197 09 284 A1. Según la
publicación WO 99/63038 los derivados del acetonitrilo y los
compuestos de los complejos de los metales de transición,
activadores de blanqueo según la publicación WO 99/63041 pueden
desplegar un efecto activador del blanqueo en combinación con
amilasas.
Los agentes según la invención contienen, por
regla general, uno o varios adyuvantes, especialmente zeolitas,
silicatos, carbonatos, coadyuvantes orgánicos y -cuando no se
opongan a su empleo motivos ecológicos- también los fosfatos. Estos
últimos son productos estructurantes a ser empleados preferentemente
en particular en los agentes de limpieza para el fregado a máquina
de la vajilla.
En este caso deben citarse los silicatos de
sodio estratificados de la fórmula general
NaMSi_{x}O_{2x+1}\cdotyH_{2}O, en la que M significa sodio
o hidrógeno, x significa un número desde 1,6 hasta 4,
preferentemente desde 1,9 hasta 4,0 e y significa un número desde 0
hasta 20 y siendo preferentes para x los valores 2, 3 o 4. Tales
silicatos estratificados cristalinos han sido descritos, por
ejemplo, en la solicitud de patente europea EP 0164 514. Los
silicatos estratificados cristalinos preferentes de la fórmula
indicada son aquellos en los cuales M significa sodio y x toma los
valores 2 o 3. Son especialmente preferentes tanto los disilicatos
de sodio \beta así como también los disilicatos de sodio \delta
Na_{2}Si_{2}O_{5}\cdotyH_{2}O. En el comercio se
encuentran tales compuestos por ejemplo bajo la denominación SKS®
(firma Clariant). De este modo el SKS-6® está
constituido preponderantemente por un disilicato de sodio \delta
con la fórmula Na_{2}Si_{2}O_{5}\cdotyH_{2}O, en el caso
del SKS-7® se trata preponderantemente del
disilicato de sodio \beta. Mediante la reacción con ácidos (por
ejemplo con el ácido cítrico o con el ácido carbónico) se obtienen a
partir de los disilicatos de sodio \delta la canemita
NaHSi_{2}O_{5}\cdotyH_{2}O, que se encuentra en el comercio
bajo las denominaciones SKS-9® o bien
SKS-10® (firma Clariant). También puede ser
ventajoso emplear modificaciones químicas de estos silicatos
estratificados. De este modo puede influenciarse adecuadamente la
alcalinidad de los silicatos estratificados. Los silicatos
estratificados dopados con fosfato o bien con carbonato presentan,
en comparación con el disilicato de sodio \delta, morfologías
cristalinas modificadas, se disuelven más rápidamente y presentan,
en comparación con el disilicato de sodio \delta, una mayor
capacidad de enlace con el calcio. De este modo se han descrito
silicatos estratificados con la fórmula empírica general x Na_{2}O
\cdot y SiO_{2} \cdot z P_{2}O_{5}, en la que la relación
entre x e y corresponde a un número desde 0,35 hasta 0,6, la
relación entre x y z corresponde a un número desde 1,75 hasta 1.200
y la relación entre y con respecto a z corresponde a un número
desde 4 hasta 2.800, en la solicitud de patente DE 196 01 063. La
solubilidad de los silicatos estratificados puede aumentarse también
si se emplean silicatos estratificados especialmente finos. También
pueden emplearse mixturas constituidas por silicatos estratificados
cristalinos con otros componentes. En este caso deben citarse,
especialmente, las mixturas con los derivados de la celulosa, que
presentan ventajas en cuanto a su acción desintegradora y,
especialmente, que se emplean en las tabletas de agentes de lavado,
así como mixturas con policarboxilatos, por ejemplo el ácido
cítrico, o bien con ácidos policarboxílicos polímeros, por ejemplo
copolímeros del ácido acrílico.
También pueden emplearse silicatos de sodio
amorfos con un módulo Na_{2}O : SiO_{2} desde 1:2 hasta 1:3,3,
preferentemente desde 1:2 hasta 1:2,8 y, especialmente, desde 1:2
hasta 1:2,6, que se disuelven de manera retardada y que presentan
propiedades de lavado secundario. El retardo de la disolución frente
a los silicatos de sodio amorfos tradicionales puede provocarse en
este caso de diversas maneras, por ejemplo mediante el tratamiento
superficial, mediante la formación de mixturas, por
compactación/recalcado o mediante sobresecado. En el ámbito de esta
invención se entenderá por el concepto "amorfo" también
"amorfo a los rayos X". Es decir que los silicatos no
proporcionan reflejos nítidos a los rayos X en los experimentos de
difracción de los rayos X, como los que son típicos para las
substancias cristalinas, sino que, en todo caso, presentan uno o
varios máximos en la irradiación dispersada de los rayos X, que
presentan una anchura de varias unidades de grado en el ángulo de
difracción. Sin embargo puede conducir incluso a propiedades
adyuvantes especialmente buenas el que las partículas de silicato
proporcionen en los experimentos de difracción electrónica máximos
de difracción acrecentados e incluso nítidos. Esto debe
interpretarse de tal manera, que los productos presentan zonas
microcristalinas con un tamaño de 10 hasta algunos cientos de nm,
siendo preferentes valores de hasta 50 nm como máximo y,
especialmente preferentes, de hasta 20 nm como máximo. Son
especialmente preferentes los silicatos amorfos
recalcados/compactados, los silicatos amorfos en forma de mixturas y
los silicatos amorfos a los rayos X sobresecados.
Una zeolita, empleable en caso dado, finamente
cristalina, sintética y que contenga agua enlazada es, por ejemplo,
la zeolita A y/o P. Como zeolita P será especialmente preferente la
zeolita MAP® (producto comercial de la firma Crosfield). Sin
embargo son adecuadas también la zeolita X así como las mezclas
formadas por A, X y/o P. También puede obtenerse en el comercio y
puede emplearse en el ámbito de la presente invención,
preferentemente, por ejemplo un cocristalizado formado por zeolita
X y por zeolita A (aproximadamente 80% en peso de zeolita X), que
se comercializa por la firma CONDEA Augusta S.p.A. bajo la marca
registrada VEGOBOND AX® y que puede describirse por medio de la
fórmula
nNa_{2}O \cdot
(1-n)K_{2}O \cdot Al_{2}O_{3} \cdot (2 -
2.5)SiO_{2} \cdot (3.5 - 5.5)
H_{2}O.
Las zeolitas adecuadas presentan un tamaño medio
de las partículas menor que 10 \mum (distribución en volumen;
método de medición: Coulter Counter) y preferentemente contienen
desde un 18 hasta un 22% en peso, especialmente desde un 20 hasta
un 22% en peso de agua enlazada.
Evidentemente, es posible también el empleo de
los fosfatos conocidos en general como substancias adyuvantes, en
tanto en cuanto un empleo de este tipo no deba ser evitado por
motivos ecológicos. Entre la pluralidad de fosfatos adquiribles en
el comercio han adquirido un gran significado los fosfatos de los
metales alcalinos y han adquirido un significado especialmente
preferente los trifosfatos de pentasodio y respectivamente de
pentapotasio (tripolifosfato de sodio y respectivamente
tripolifosfato de potasio) en la industria para los agentes de
lavado y de limpieza.
La expresión fosfatos de metales alcalinos
abarca en este caso las sales de los metales alcalinos
(especialmente de sodio y de potasio) de los diversos ácidos
fosfóricos, entre los cuáles se puede distinguir entre el ácido
metafosfórico (HPO_{3})_{n} y el ácido ortofosfórico
H_{3}PO_{4} además de representantes de mayor peso molecular.
Los fosfatos reúnen en este caso varias ventajas en sí mismos:
actúan como portadores de álcali, impiden los depósitos de cal
sobre las partes de las máquinas o bien las incrustaciones de cal en
los tejidos y contribuyen, además, a la potencia de limpieza.
El hidrógenofosfato de sodio, NaH_{2}PO_{4},
existe en forma de dihidrato (densidad 1,91 gcm^{-3}, punto de
fusión 60ºC) y a modo de monohidrato (densidad 2,04 gcm^{-3}).
Ambas sales son blancas, polvos muy fácilmente solubles en agua,
que pierden el agua de cristalización por calentamiento y que se
transforman en 200ºC en el difosfato débilmente ácido
(hidrógenodifosfato disódico, Na_{2}H_{2}P_{2}O_{7}), a
temperaturas más elevadas en el trimetafosfato de sodio
(Na_{3}P_{3}O_{9}) y en la sal de Maddrell (véase más
adelante). El NaH_{2}PO_{4} tiene reacción ácida; se forma
cuando se ajusta ácido fosfórico con lejía de hidróxido de sodio a
un valor del pH de 4,5 y se pulveriza el caldo. El
dihidrógenofosfato de potasio (fosfato de potasio primario o
monobásico, bifosfato de potasio, KDP), KH_{2}PO_{4}, es una sal
blanca con una densidad de 2,33 gcm^{-3}, tiene un punto de
fusión de 253ºC [descomposición con formación de polifosfato de
potasio (KPO_{3})_{x}] y es fácilmente soluble en
agua.
El hidrógenofosfato disódico (fosfato sódico
secundario), Na_{2}HPO_{4}, es una sal incolora, cristalina,
muy fácilmente soluble en agua. Existe en estado anhidro y con 2
moléculas de agua (densidad 2,066 gmc^{-3}, pérdida de agua a
95ºC), con 7 moléculas de agua (densidad 1,68 gcm^{-3}, punto de
fusión 48ºC con pérdida de 5 H_{2}O) y con 12 moléculas de agua
(densidad 1,52 gcm^{-3}, punto de fusión 35ºC con pérdida de 5
H_{2}O), a 100ºC se vuelve anhidro y se transforma, por
calentamiento más pronunciado, en el difosfato
Na_{4}P_{2}O_{7}. El hidrógenofosfato disódico se prepara por
neutralización de ácido fosfórico con solución de carbonato de
sodio con empleo de fenolftaleína como indicador. El
hidrógenofosfato dipotásico (fosfato de potasio secundario o
dibásico), K_{2}HPO_{4}, es una sal blanca, amorfa, que es
fácilmente soluble en agua.
El fosfato trisódico, fosfato de sodio
terciario, Na_{3}PO_{4}, está constituido por cristales
incoloros, que presentan, en forma de dodecahidrato, una densidad
de 1,62 gcm^{-3} y un punto de fusión de 73-76ºC
(descomposición), a modo de decahidrato (lo que corresponde a un
19-20% de P_{2}O_{5}) un punto de fusión de
100ºC y en forma anhidra (lo que corresponde a un
39-40% de P_{2}O_{5}), presenta una densidad de
2,536 gcm^{-3}. El fosfato trisódico es fácilmente soluble en agua
con reacción alcalina y se prepara por concentración por
evaporación de una solución formada exactamente por 1 mol de fosfato
disódico y 1 mol de NaOH. El fosfato tripotásico (fosfato de
potasio terciario o tribásico) K_{3}PO_{4}, es un polvo blanco,
granular, esparcible, con una densidad de 2,56 gcm^{-3}, tiene un
punto de fusión de 1.340ºC y es fácilmente soluble en agua con
reacción alcalina. De manera ejemplificativa se forma por
calentamiento de escoria de Thomas con carbón y sulfato de potasio.
A pesar del precio mayor son preferentes muchas veces en la
industria de los agentes de limpieza los fosfatos de potasio más
fácilmente solubles, por lo tanto más activos, frente a los
compuestos de sodio correspondientes.
El difosfato tetrasódico (pirofosfato de sodio),
Na_{4}P_{2}O_{7}, existe en forma anhidra (densidad 2,534
gcm^{-3}, punto de fusión 988ºC, también se ha dado con 880ºC) y a
modo de decahidrato (densidad 1,815-1,836
gcm^{-3}, punto de fusión 94ºC con pérdida de agua). Ambas
substancias son cristales incoloros, solubles en agua con reacción
alcalina. El Na_{4}P_{2}O_{7} se forma por calentamiento de
fosfato disódico a temperaturas de > 200ºC o por reacción de
ácido fosfórico con carbonato de sodio en proporción estequiométrica
y eliminación del agua de la solución mediante pulverización. El
decahidrato forma sales complejas con los metales pesados y con los
formadores de la dureza y reduce, por lo tanto, la dureza del agua.
El difosfato de potasio (pirofosfato de potasio),
K_{4}P_{2}O_{7}, existe en forma de trihidrato y representa un
polvo incoloro, higroscópico, con una densidad de 2,33 gcm^{-3},
que es soluble en agua, siendo el pH de la solución al 1%, a 25ºC,
de 10,4.
Mediante condensación del NaH_{2}PO o bien del
KH_{2}PO_{4} se forman fosfatos de sodio y de potasio de
elevado peso molecular, entre los cuales pueden distinguirse
representantes cíclicos, los metafosfatos de sodio o bien de
potasio y tipos en forma de cadenas, los polifosfatos de sodio o
bien de potasio. Especialmente se utiliza una gran cantidad de
denominaciones para estos últimos: fosfato por fusión o por
calcinación, sal de Graham, sal de Kurrol y de Maddrell. Todos los
fosfatos de sodio y de potasio superiores se denominan, en
conjunto, fosfatos condensados.
El trifosfato pentasódico, industrialmente
importante, Na_{5}P_{3}O_{10} (tripolifosfato de sodio), es
una sal anhidra o que cristaliza con 6 H_{2}O, no higroscópica,
blanca, soluble en agua de la fórmula general
NaO-[P(O)(ONa)-O]_{n}-Na
con n=3. A temperatura ambiente se disuelven, en 100 g de agua,
aproximadamente 17 g, a 60ºC, aproximadamente 20 g, a 100ºC
aproximadamente 32 g de la sal exenta de agua de cristalización; al
cabo de un calentamiento de dos horas de la solución a 100ºC se
forma, por hidrólisis, aproximadamente un 8% de ortofosfato y un
15% de difosfato. En la fabricación del trifosfato pentasódico se
hace reaccionar ácido fosfórico con solución de carbonato de sodio
o con lejía de hidróxido de sodio en proporción estequiométrica y
se libera la solución del agua, mediante pulverización. De manera
similar a lo que ocurre en el caso de la sal de Graham y del
difosfato de sodio, el trifosfato pentasódico disuelve muchos
compuestos metálicos insolubles (también jabones de cal, etc.). El
trifosfato pentapotásico, K_{5}P_{3}O_{10} (tripolifosfato de
potasio), se comercializa por ejemplo en forma de una solución al
50% en peso (> 23% de P_{2}O_{5}, 25% de K_{2}O). Los
polifosfatos de potasio encuentran una amplia aplicación en la
industria de los agentes de lavado y de limpieza. Además existen
también tripolifosfatos de sodio y de potasio que igualmente pueden
emplearse en el ámbito de la presente invención. Éstos se forman,
por ejemplo, cuando se hidroliza con KOH el trimetafosfato
de
sodio:
sodio:
(NaPO_{3})_{3} + 2\ KOH
\rightarrow Na_{3}K_{2}P_{3}O_{10} +
H_{2}O
Estos fosfatos pueden emplearse, según la
invención, exactamente igual que el tripolifosfato de sodio, el
tripolifosfato de potasio o las mezclas de ambos, también pueden
emplearse, según la invención, mezclas de tripolifosfato de sodio y
tripolifosfato de sodio y de potasio o mezclas constituidas por
tripolifosfato de potasio y tripolifosfato de sodio y de potasio o
mezclas constituidas por tripolifosfato de sodio y tripolifosfato
de potasio y tripolifosfato de sodio y de potasio.
Como coadyuvantes orgánicos pueden utilizarse en
los agentes de lavado y de limpieza según la invención,
especialmente policarboxilatos o ácidos policarboxílicos,
policarboxilatos polímeros, ácido asparagínico, poliacetales,
dextrinas oxidadas en caso dado, otros coadyuvantes orgánicos (véase
lo expuesto posteriormente), así como fosfonatos. Estas clases de
substancias se describen a continuación.
Las substancias estructurantes orgánicas,
adecuadas son, por ejemplo, los ácidos policarboxílicos que pueden
utilizarse en forma de sus sales de sodio, entendiéndose por ácidos
policarboxílicos aquellos ácidos carboxílicos que llevan más de una
función ácida. Éstos son, por ejemplo, el ácido cítrico, ácido
adípico, ácido succínico, ácido glutárico, ácido málico, ácido
tartárico, ácido maleico, ácido fumárico, ácidos sacáricos, ácidos
aminocarboxílicos, ácido nitrilotriacético (NTA), siempre que este
tipo de uso no pueda rechazarse por motivos ecológicos, así como
mezclas de los mismos. Las sales preferidas son las sales de los
ácidos policarboxílicos, tales como ácido cítrico, ácido adípico,
ácido succínico, ácido glutárico, ácido tartárico, ácidos sacáricos
y mezclas de las mismas.
También pueden utilizarse los ácidos en sí
mismos. Además de su efecto de adyuvante, los ácidos tienen también
típicamente la propiedad de un componente de acidificación y, con
ello, sirven también para el ajuste de un valor de pH bajo y suave
de los agentes de lavados y de los agentes de limpieza. Aquí deben
nombrarse especialmente el ácido cítrico, ácido acético, ácido
tartárico, ácido málico, ácido láctico, ácido glicólico, ácido
succínico, ácido glutárico, ácido adípico, ácido glucónico y
cualquier mezcla de éstos. Además pueden servir como reguladores
del pH, también, los ácidos minerales, especialmente el ácido
sulfúrico o las basas, especialmente los hidróxidos de amonio o
alcalinos. Tales reguladores están contenidos en los agentes, según
la invención, en cantidades preferentemente no mayores que el 20%
en peso, especialmente desde un 1,2% en peso hasta un 17% en
peso.
Además, como adyuvante son adecuados los
policarboxilatos polímeros, estos son, por ejemplo, las sales de
metales alcalinos del ácido poliacrílico o del ácido
polimetacrílico, por ejemplo aquellas con un peso molecular
relativo de 500 a 70.000 g/mol.
En cuanto a los pesos moleculares indicados para
los policarboxilatos polímeros se trata, en el sentido de este
documento, de pesos moleculares M_{w} promedio en peso de la forma
respectiva del ácido, que se determinaron básicamente mediante la
cromatografía de permeación en gel (GPC), para lo cual se utilizó un
detector de rayos UV. A este respecto, la medición se realizó
frente a un patrón externo de ácido poliacrílico, que proporciona
valores de peso molecular similares a los reales debido a su
afinidad estructural con los polímeros analizados. Estos datos
difieren marcadamente de los datos de pesos moleculares para los
cuales se utiliza un patrón de ácidos poliestirenosulfónicos. Los
pesos moleculares medidos frente a los ácidos poliestirenosulfónicos
son en general marcadamente más altos que los pesos moleculares
indicados en este documento.
Los polímeros adecuados son especialmente
poliacrilatos, que presentan preferentemente un peso molecular de
2.000 a 20.000 g/mol. Debido a su solubilidad superior, de este
grupo pueden preferirse a su vez los poliacrilatos de cadena corta,
que presentan pesos moleculares de 2.000 a 10.000 g/mol y, de forma
especialmente preferente, de 3.000 a 5.000 g/mol.
Además, son adecuados los policarboxilatos
copolímeros, especialmente aquellos del ácido acrílico con ácido
metacrílico y del ácido acrílico o el ácido metacrílico con ácido
maleico. Han demostrado ser especialmente adecuados los copolímeros
del ácido acrílico con ácido maleico, que contienen del 50 al 90% en
peso de ácido acrílico y del 50 al 10% en peso de ácido maleico. Su
peso molecular relativo, referido al ácido libre, es generalmente
de 2.000 a 70.000 g/mol, preferentemente de 20.000 a 50.000 g/mol y
especialmente de 30.000 a 40.000 g/mol. Los policarboxilatos
(co)polímeros pueden utilizarse o bien como polvo o bien como
solución acuosa. El contenido de policarboxilatos
(co)polímeros en los agentes es preferentemente del 0,5 al
20% en peso, especialmente del 1 al 10% en peso.
Para mejorar la solubilidad, los polímeros
pueden contener también ácidos alilsulfónicos como monómeros, como
por ejemplo ácido aliloxibencenosulfónico y ácido
metalilsulfónico.
También se prefieren especialmente los polímeros
biodegradables de más de dos unidades de monómeros diferentes, por
ejemplo aquellos que contienen como monómeros, sales del ácido
acrílico y del ácido maleico, así como alcohol vinílico o derivados
del alcohol vinílico, o contienen como monómeros, sales del ácido
acrílico y del ácido 2-alquilalilsulfónico, así
como derivados sacáricos.
Otros copolímeros preferentes son aquellos que
presentan como monómeros preferentemente acroleína y ácido
acrílico/sales del ácido acrílico o bien acroleína y acetato de
vinilo.
También deben mencionarse como substancias
adyuvantes preferidas los ácidos aminodicarboxílicos polímeros, sus
sales o sus substancias precursoras. Se prefieren especialmente los
ácidos poliasparagínicos o sus sales y derivados.
Otras substancias adyuvantes adecuadas son los
poliacetales, que pueden obtenerse por reacción de dialdehídos con
ácidos policarboxílicos, que presentan de 5 a 7 átomos de carbono y
al menos 3 grupos hidroxilo. Los poliacetales preferentes se
obtienen a partir de dialdehídos, tales como glioxal,
glutaraldehído, tereftalaldehído, así como sus mezclas, y a partir
de ácidos poliolcarboxílicos, tales como ácido glucónico y/o ácido
glucoheptónico.
Otras substancias adyuvantes orgánicas adecuadas
son dextrinas, por ejemplo oligómeros o polímeros de hidratos de
carbono, que pueden obtenerse por hidrólisis parcial de almidones.
La hidrólisis puede realizarse según procedimientos usuales, por
ejemplo catalizados por ácidos o enzimas. Preferentemente se trata
de productos de hidrólisis con pesos moleculares promedio en el
intervalo de 400 a 500.000 g/mol. En este sentido, se prefiere un
polisacárido con un equivalente de dextrosa (ED) en el intervalo de
0,5 a 40, especialmente de 2 a 30, con lo que ED es una medida
usual para el efecto reductor de un polisacárido en comparación con
la dextrosa, que tiene un ED de 100. Son aptas, tanto las
maltodextrinas con un ED de entre 3 y 20 y los jarabes de glucosa
secos con un ED de entre 20 y 37, como también las denominadas
dextrinas amarillas y dextrinas blancas con mayores pesos
moleculares en el intervalo de 2.000 a 30.000 g/mol.
En cuanto a los derivados oxidados de este tipo
de dextrinas se trata de sus productos de reacción con agentes
oxidantes, que sean capaces de oxidar al menos una función de
alcohol del anillo del sacárido para dar una función de ácido
carboxílico. Los adyuvantes orgánicos, especialmente preferentes
para los agentes, según la invención, son los almidones oxidados, o
bien sus derivados conocidos por las solicitudes EP 472 042, WO
97/25399 y EP 755 944.
Otros coadyuvantes adecuados son también los
oxidisuccinatos y otros derivados de los disuccinatos,
preferentemente etilendiaminodisuccinato. En este caso, el ácido
N,N'-etilendiamino-N,N-disuccínico
(EDDS) se utiliza preferentemente en forma de sus sales de sodio o
magnesio. En este contexto se prefieren además los disuccinatos de
glicerina y trisuccinatos de glicerina. Las cantidades de uso
adecuadas son del 3 al 15% en peso, en formulaciones que contienen
zeolita y/o silicato.
Otros adyuvantes orgánicos adecuados son, por
ejemplo, los ácidos hidroxicarboxílicos acetilados o sus sales,
que, en caso dado, también pueden estar presentes en forma de
lactona y que contienen al menos 4 átomos de carbono y al menos un
grupo hidroxilo, así como un máximo de dos grupos ácidos.
Otra clase de substancias con propiedades de
coadyuvante son los fosfonatos. En este caso se trata especialmente
de fosfonatos de hidroxialcanos o aminoalcanos. Bajo los fosfonatos
de hidroxialcanos, el 1,1-difosfonato de
1-hidroxietano (HEDP) tiene una especial importancia
como coadyuvante. Se utiliza preferentemente como sal de sodio,
reaccionando la sal disódica neutra y la sal tetrasódica alcalina
(pH 9). Como fosfonatos de aminoalcano se consideran
preferentemente el fosfonato de etilendiaminotetrametileno (EDTMP),
el fosfonato de dietilentriaminopentametileno (DTPMP), así como sus
homólogos superiores. Se utilizan preferentemente en forma de las
sales de sodio de reacción neutra, por ejemplo como la sal
hexasódica de EDTMP o como sal heptasódica y octasódica de DTPMP.
En este sentido, de la clase de los fosfonatos se utiliza
preferentemente como adyuvante el HEDP. Además, los fosfonatos de
aminoalcano tienen un marcado poder de unión de metales pesados. De
manera correspondiente puede preferirse el uso de fosfonatos de
aminoalcano, especialmente de DTPMP, especialmente cuando los
agentes también contienen agentes de blanqueo, o el uso de mezclas
de los fosfonatos mencionados.
Además, todos los compuestos capaces de formar
complejos con iones alcalinotérreos pueden utilizarse como
coadyuvante.
Las substancias adyuvantes pueden estar
contenidas en los agentes, según la invención, en caso dado en
cantidades de hasta un 90% en peso. Preferentemente éstas están
contenidas en cantidades de hasta un 75% en peso. Los agentes de
lavado, según la invención, presentan contenidos en adyuvantes
especialmente desde un 5% en peso hasta un 50% en peso. En los
agentes según la invención para la limpieza de superficies duras,
especialmente para la limpieza mecánica de la vajilla, el contenido
en las substancias adyuvantes se encuentra preferentemente entre un
5% en peso y un 88% en peso, no empleándose materiales adyuvantes
solubles en agua preferentemente en tales agentes. En una forma
preferente de realización de los agentes según la invención
especialmente para la limpieza mecánica de la vajilla está
contenido desde un 20% en peso hasta un 40% en peso de adyuvantes
orgánicos solubles en agua, especialmente de citratos alcalinos,
desde un 5% en peso hasta un 15% en peso de carbonatos alcalinos y
desde un 20% en peso hasta un 40% en peso de disilicatos
alcalinos.
Los disolventes, que pueden ser empleados en las
composiciones líquidas hasta en forma de gel de los agentes de
lavado y de limpieza proceden, de manera ejemplificativa, del grupo
de alcoholes monovalentes o polivalentes, de las alcanolaminas o de
los glicoléteres, en tanto en cuanto éstos sean miscibles con agua
en el intervalo de concentración indicado. Preferentemente se
seleccionan los disolventes entre el etanol, el n- o
i-propanol, los butanoles, el
etilenglicolmetiléter, el etilenglicoletiléter, el
etilenglicolpropiléter, el
etilenglicolmono-n-butiléter, el
dietilenglicol-metiléter, el dietilenglicoletiléter,
el propilenglicolmetil-, -etil- o -propil-éter, el
dipropilenglicolmonometil- o -etiléter, el metoxi-, etoxi- o
butoxitriglicol, el
1-butoxietoxi-2-propanol,
el
3-metil-3-metoxibutanol,
el
propilen-glicol-t-butiléter,
así como mezclas de estos disolventes.
Los disolventes pueden emplearse en los agentes
de lavado y de limpieza líquidos hasta en forma de gel, según la
invención, en cantidades comprendidas entre un 0,1 y un 20% en peso,
preferentemente sin embargo por debajo del 15% en peso, y,
especialmente, por debajo del 10% en peso.
Para el ajuste de la viscosidad pueden añadirse
a las composiciones, según la invención, uno o varios espesantes, o
bien sistemas espesantes. Estos productos de elevado peso molecular,
que se denominan también agentes de hinchamiento, absorben la
mayoría de las veces los líquidos y se hinchan para, finalmente,
transformarse en soluciones viscosas reales o en soluciones
coloidales.
Los espesantes adecuados son compuestos
inorgánicos u orgánicos polímeros. A los espesantes inorgánicos
pertenecen, por ejemplo, los ácidos polisilícicos, los minerales de
arcilla tales como montmorillonita, zeolitas, ácidos silícicos y
bentonitas. Los espesantes orgánicos proceden de los grupos de los
polímeros naturales, de los polímeros naturales modificados y de
los polímeros completamente sintéticos. Los polímeros que proceden
de la naturaleza son por ejemplo, el agar-agar, el
carrageno, el tragacanto, la goma arábiga, los alginatos, las
pectinas, las poliosas, el harina de guar, el harina de algarroba,
los almidones, las dextrinas, las gelatinas y las caseínas. Los
productos naturales modificados, que se emplean como espesantes,
proceden ante todo del grupo de los almidones y de las celulosas
modificadas.
De manera ejemplificativa pueden citarse en este
caso la carboximetilcelulosa y otros éteres de celulosa, la
hidroxi-
etil- y -propilcelulosa así como éteres de flor de harina. Los espesantes completamente sintéticos son polímeros tales como compuestos de poliacrilato y de polimetacrilato, polímeros vinílicos, ácidos policarboxílicos, poliéteres, poliiminas, poliamidas y poliuretanos.
etil- y -propilcelulosa así como éteres de flor de harina. Los espesantes completamente sintéticos son polímeros tales como compuestos de poliacrilato y de polimetacrilato, polímeros vinílicos, ácidos policarboxílicos, poliéteres, poliiminas, poliamidas y poliuretanos.
Los espesantes pueden estar contenidos en
cantidades de hasta un 5% en peso, preferentemente desde un 0,05
hasta un 2% en peso y, de forma especialmente preferente, desde un
0,1 hasta un 1,5% en peso, referido a la composición acabada.
Los agentes de lavado y de limpieza según la
invención pueden contener en caso dado a modo de otros componentes
usuales, agentes secuestrantes, electrolitos y otros productos
auxiliares tales como abrillantadores ópticos, inhibidores del
agrisado, inhibidores de la corrosión de la plata, inhibidores del
corrido de los colores, inhibidores de la espuma, productos
abrasivos, colorantes y/o productos odorizantes, así como productos
activos microbianos y/o absorbedores de los UV.
Los agentes para el lavado de los artículos
textiles, según la invención, pueden contener abrillantadores
ópticos del tipo de los derivados del ácido
diaminoestilbendisulfónico o bien de sus sales de metales alcalinos.
Son adecuadas por ejemplo, sales del ácido
4,4'-bis(2-anilino-4-morfolino-1,3,5-triazinil-6-amino)estilben-2,2'-disulfónico
o compuestos de constitución similar, que porten, en lugar del
grupo morfolino, un grupo dietanolamino, un grupo metilamino, un
grupo anilino o un grupo 2-metoxietilamino. Además
pueden estar presentes abrillantadores del tipo de los
difenilestirilos substituidos, por ejemplo las sales alcalinas del
4,4'-bis(2-sulfoestiril)-difenilo,
del
4,4'-bis(4-cloro-3-sulfoestiril)-difenilo,
o del
4-(4-cloroestiril)-4'-(2-sulfoestiril)-difenilo.
También pueden emplearse mezclas de los abrillantadores
anteriormente citados.
Los inhibidores del agrisado tienen como
cometido mantener en suspensión en el baño la suciedad desprendida
de las fibras textiles. Para ello son adecuados los coloides
solubles en agua, la mayoría de las veces de naturaleza orgánica,
por ejemplo los almidones, las colas, las gelatinas, las sales de
los ácidos etercarboxílicos o de los ácidos etersulfónicos de los
almidones o de la celulosa o sales de ésteres ácidos del ácido
sulfúrico de la celulosa o de los almidones. También son adecuadas
para esta finalidad poliamidas que contienen grupos ácidos,
solubles en agua. Además pueden emplearse otros derivados del
almidón diferentes de los que se han citado precedentemente por
ejemplo aldehídoalmidones. Preferentemente se emplearán éteres de
celulosa tales como carboximetilcelulosa (sal de Na),
metilcelulosa, hidroxialquilcelulosa y éteres mixtos, tales como
metilhidroxietilcelulosa, metilhidroxipropilcelulosa,
metilcarboximetilcelulosa y sus mezclas, por ejemplo en cantidades
desde 0,1 hasta 5% en peso, referido a los agentes.
Con objeto de provocar una protección contra la
corrosión de la plata, pueden emplearse en los agentes de limpieza
según la invención para la vajilla inhibidores de la corrosión de la
plata. Éstos son conocidos por el estado de la técnica, por ejemplo
benzotriazoles, cloruro férrico(III) o CoSO_{4}. Tal como
se conoce, por ejemplo, por la memoria descriptiva de la patente
europea EP 0 736084 B1, son especialmente adecuados para el empleo
conjunto con enzimas los inhibidores de la corrosión de la plata
constituidos por sales y/o complejos de manganeso, de titanio, de
circonio, de hafnio, de vanadio, de cobalto o de cerio, en los
cuales están presentes los metales citados en uno de los niveles de
oxidación II, III, IV, V o VI. Ejemplos de tales compuestos son
MnSO_{4}, V_{2}O_{5}, V_{2}O_{4}, VO_{2}, TiOSO_{4},
K_{2}TiF_{6}, K_{2}ZrF_{6},
Co(NO_{3})_{2}, Co(NO_{3})_{3},
así como sus mezclas.
Los productos activos "desprendedores de la
suciedad" "Soil-Release" o
"Soil-Repellents" son, en la mayoría de los
casos, polímeros, que proporcionan a las fibras de la colada
propiedades que la hacen repeler la suciedad cuando se emplean en
un agente de lavado y/o favorecen la capacidad desprendedora de la
suciedad de los restantes componentes de los agentes de lavado. Un
efecto comparable puede observarse también cuando se emplean en
agentes de limpieza para superficies duras.
Los productos activos, desprendedores de la
suciedad (Soil-Release) especialmente activos y
conocidos desde hace mucho tiempo son copoliésteres con unidades de
ácidos dicarboxílicos, de alquilenglicol y de polialquilenglicol.
Ejemplos a este respecto son copolímeros o polímeros mixtos
constituidos por tereftalato de polietileno y polioxietilenglicol
(DT 16 17 141, o bien DT 22 00 911). Se han citado en la solicitud
de patente alemana publicada, no examinada DT 22 53 063 agentes
ácidos que contienen, entre otras cosas, un copolímero constituido
por un ácido carboxílico dibásico y por un alquilen- o
cicloalquilenpoliglicol. Los polímeros constituidos por tereftalato
de etileno y por tereftalato de óxido de polietileno y su empleo en
los agentes de lavado están descritos en las memorias descriptivas
de las patentes alemanas DE 28 57 292 y DE 33 24 258 y en la
memoria descriptiva de la patente europea EP 0 253 567. La patente
europea EP 066944 se refiere a agentes, que contienen un
copoliéster constituido por etilenglicol, polietilenglicol, ácidos
dicarboxílicos aromáticos y ácidos dicarboxílicos aromáticos
sulfonados en determinadas proporciones molares. Se conocen por la
patente europea EP 0 185 427 poliésteres cerrados en los extremos
con grupos metilo o con grupos etilo con unidades de tereftalato de
etileno y/o de propileno y con unidades de tereftalato de óxido de
polietileno y agentes de lavado que contienen tales polímeros
desprendedores de la suciedad. La patente europea EP 0 241984 se
refiere a poliéster que contiene, además de grupos de oxietileno y
de unidades de ácido tereftálico, también unidades de etileno
substituidas así como unidades de glicerina. Se conocen por la
patente europea EP 0 241 985 poliésteres que contienen, además de
grupos de óxido de etileno y de unidades de ácido tereftálico,
grupos de 1,2-propileno,
1,2-butileno y/o
3-metoxi-1,2-propileno
así como unidades de glicerina y que están cerrados en los grupos
extremos con grupos alquilo con 1 a 4 átomos de carbono. Se conocen
por la solicitud de patente europea EP 0 272033 poliésteres
cerrados en los grupos extremos al menos en parte por restos alquilo
o por restos acilo con 1 a 4 átomos de carbono con unidades de
tereftalato de poli-propileno y tereftalato de
polioxietileno. La patente europea EP 0 274 907 describe
poliésteres desprendedores de la suciedad que contienen tereftalato
cerrados en los grupos extremos con sulfoetilo. Según la solicitud
de patente europea EP 0 357 280 se preparan mediante sulfonación de
los grupos extremos insaturados, poliésteres desprendedores de la
suciedad con unidades de tereftalato, de alquilenglicol y de
poli-glicol con 2 a 4 átomos de carbono. La
solicitud de patente internacional WO 95/32232 se refiere a
poliésteres ácidos, aromáticos, con capacidad para el
desprendimiento de la suciedad. Se conocen por la solicitud de
patente internacional WO 97/31085 productos activos no polímeros
repelentes a la suciedad para materiales constituidos por algodón
con varias unidades funcionales: una primera unidad, que puede ser
catiónica, por ejemplo, es capaz de adsorberse sobre la superficie
del algodón mediante interacción electrostática, y una segunda
unidad, que está formada de manera hidrófoba, que es responsable de
la permanencia del producto activo sobre la superficie límite entre
el agua/algodón.
A los inhibidores del corrido de los colores que
entran en consideración para el empleo en los agentes de lavado de
artículos textiles, según la invención, pertenecen, especialmente,
las polivinilpirrolidonas, los polivinilimidazoles, los N-óxidos
polímeros tal como el poli-(N-óxido de vinilpiridina) y los
copolímeros de vinilpirrolidona con vinilimidazol.
Cuando se emplean en procedimientos de limpieza
a máquina puede ser ventajoso añadir los agentes inhibidores de la
espuma. Como inhibidores de la espuma son adecuados, por ejemplo,
jabones de origen natural o sintético, que presenten una elevada
proporción en ácidos grasos con 18 a 24 átomos de carbono. Los
inhibidores de la espuma de tipo no tensioactivos, adecuados, son,
por ejemplo, órganopolisiloxanos y sus mezclas con ácido silícico
microfino, en caso dado silanizado así como parafinas, ceras, ceras
microcristalinas y sus mezclas con ácido silícico silanizado o
biesteariletilendiamida. Ventajosamente se emplearán también mezclas
constituidas por diversos inhibidores de la espuma, por ejemplo
aquellas constituidas por siliconas, parafinas o ceras. Son
preferentes los inhibidores de la espuma, especialmente los
inhibidores de la espuma que contienen silicona y/o parafina,
enlazados sobre una substancia de soporte granular, soluble en agua
o bien dispersable en agua. Son especialmente preferentes en este
caso mezclas constituidas por parafinas y por
biesteariletilendiamidas.
Un agente de limpieza según la invención para
superficies duras puede contener, además, componentes con actividad
abrasiva, especialmente del grupo que comprende harina de cuarzo,
harina de madera, harina de material sintético, cretas y
microesferas así como sus mezclas. Los productos abrasivos están
contenidos en los agentes de limpieza según la invención
preferentemente en una proporción no mayor que el 20% en peso,
especialmente desde el 5% en peso hasta el 15% en peso.
A los agentes de lavado y de limpieza se les
añaden colorantes y productos odorizantes para mejorar la impresión
estética de los productos y para poner a disposición del usuario,
además del rendimiento del lavado y de la limpieza. Un producto
"típico e inconfundible" desde el punto de vista estético y
sensorial. Como esencias perfumantes o bien productos odorizantes
pueden utilizarse compuestos odorizantes individuales, por ejemplo
los productos sintéticos del tipo de los ésteres, de los éteres, de
los aldehídos, de las cetonas, de los alcoholes y de los
hidrocarburos. Los compuestos odorizantes del tipo de los ésteres
son, por ejemplo, el acetato de bencilo, el isobutirato de
fenoxietilo, el acetato de p-terc.-butilciclohexilo,
el acetato de linalilo, el acetato de dimetilbencilcarbinilo, el
acetato de feniletilo, el benzoato de linalilo, el formiato de
bencilo, el glicinato de etilmetilfenilo, el propionato de
alilciclohexilo, el propionato de estiralilo y el salicilato de
bencilo. A los éteres pertenecen, por ejemplo, el benciletiléter, a
los aldehídos pertenecen, por ejemplo los alcanales lineales con 8
a 18 átomos de carbono, el citral, el citronelal, el
citroneliloxiacetaldehído, el ciclamenaldehído, el
hidroxicitronelal, el lilial y el bourgeonal, a las cetonas
pertenecen, por ejemplo la ionona, la
\alpha-isometilionona y la metilcedrilcetona, a
los alcoholes pertenecen el anetol, el citronelol, el eugenol, el
geraniol, el linalool, el alcohol feniletílico y el terpineol, a los
hidrocarburos pertenecen, principalmente, los terpenos, tales como
limoneno y el pineno. Sin embargo se prefieren mezclas de diferentes
productos odorizantes, que produzcan, en conjunto, una nota de olor
agradable. Tales esencias perfumantes también pueden contener
mezclas de productos odorizantes naturales, como a las que pueden
obtenerse a partir de fuentes vegetales, por ejemplo la esencia de
pino, de cítricos, de jazmín, de pachulí, de rosas o
Ylang-Ylang. También son adecuadas la esencia de
salvia romana, la esencia de manzanilla, la esencia de clavel, la
esencia de melisa, la esencia de de menta, la esencia de de hojas
de canela, la esencia de pétalos de tilo, la esencia de bayas de
enebro, la esencia de vetiver, la esencia de olibano, la esencia de
galbano y de labdano, así como esencia de azahar, la esencia de
neroli, la esencia de cáscara de naranja y de madera de sándalo.
Usualmente el contenido de los colorantes en los agentes de lavado
y de limpieza se encuentra por debajo del 0,01% en peso, mientras
que los productos odorizantes pueden constituir hasta un 2% en peso
del conjunto de la formulación.
Los productos odorizantes pueden incorporarse
directamente en los agentes de lavado y de limpieza, no obstante
también puede ser ventajoso disponer los productos odorizantes sobre
soportes, que refuercen la adherencia del perfume sobre la ropa y
que se encarguen de que el olor de los materiales textiles se
mantenga por mucho tiempo mediante una liberación lenta del olor,
especialmente de los artículos textiles tratados. Se han acreditado,
por ejemplo, como materiales de soporte las ciclodextrinas,
pudiéndose revestir los complejos de
ciclodextrina-perfume adicionalmente con otros
agentes auxiliares. Otro soporte preferente para los productos
odorizantes es la zeolita X, descrita, que puede absorber también
productos odorizantes en lugar de o en mezcla con los tensioactivos.
Son preferentes los agentes de lavado y de limpieza, que contengan
la zeolita X, descrita, y los productos odorizantes, que estén al
menos parcialmente absorbidos en la zeolita.
Los colorantes preferentes, cuya elección no
constituye ninguna dificultad para el técnico en la materia, tienen
una elevada estabilidad al almacenamiento y son insensibles frente a
los restantes componentes del agente y contra la luz así como están
exentos de cualquier substantividad marcada frente a las fibras
textiles para no colorearlas.
Para la lucha contra los microorganismos, los
agentes de lavado o de limpieza pueden contener productos activos
antimicrobianos. En este caso se distingue según el espectro
antimicrobiano y el mecanismo de actuación entre bacteriostáticos y
bactericidas, fungistáticos y fungicidas, etc. Los productos
importantes de estos grupos son, por ejemplo, el cloruro de
benzalconio, los alquilarilsulfonatos, los halógenofenoles y el
mercuriacetato de fenol. Las expresiones de efecto antimicrobiano y
producto activo antimicrobiano tienen en el ámbito de las
enseñanzas según la invención el significado usual en el ramo, que
se han dado por ejemplo en la publicación de K. H.
Wallhäußer en "Praxis der Sterilisation, Desinfektion -
Konservierung: Keimidentifizierung - Betriebshygiene" (5ª
edición - Stuttgart; New York: Thieme, 1995), pudiéndose emplear
todas las substancias allí descritas con efecto antimicrobiano. Los
productos activos antimicrobianos adecuados se eligen,
preferentemente, entre el grupo de los alcoholes, las aminas, los
aldehídos, los ácidos antimicrobianos o bien sus sales, los ésteres
de los ácidos carboxílicos, las amidas de ácido, los fenoles, los
derivados de fenol, los difenoles, los difenilalcanos, los
derivados de urea, los acetales así como los formales oxigenados y
nitrogenados, las benzamidinas, las isotiazolinas, los derivados de
ftalimida, los derivados de piridina, los compuestos tensioactivos
antimicrobianos, las guanidinas, los compuestos anfóteros
antimicrobianos, las quinolinas, el
1,2-dibromo-2,4-dicianobutano,
el
yodo-2-propil-butil-carbamato,
el yodo, los yodóforos, los compuestos peroxo, los compuestos
halogenados así como mezclas arbitrarias de los precedentes.
El producto activo antimicrobiano puede elegirse
en este caso entre etanol, n-propanol,
i-propanol, 1,3-butanodiol,
fenoxietanol, 1,2-propilenglicol, glicerina, ácido
undecilénico, ácido benzoico, ácido salicílico, ácido dihidracético,
o-fenilfenol,
N-metilmorfolinacetonitrilo (MMA),
2-bencil-4-clorofenol,
2,2'-metilen-bis-(6-bromo-4-clorofenol),
4,4'-dicloro-2'-hidroxidifeniléter
(Dichlosan),
2,4,4'-tricloro-2'-hidroxidifeniléter
(Trichlosan), clorohexidina,
N-(4-clorofenil)-N-(3,4-diclorofenil)-urea,
dihidrocloruro de
N,N'-(1,10-decan-diildi-1-piridinil-4-iliden)-bis-(1-octanoamina),
N,N'-bis-(4-clorofenil)-3,12-diimino-2,4,11,13-tetraaza-tetradecanodiimidoamida,
glucoprotaminas, compuestos cuaternarios tensioactivos
antimicrobianos, guanidinas con inclusión de las biguanidinas y de
las poliguanidinas, tales como por ejemplo el dihidrocloruro de
1,6-bis-(2-etilhexil-biguanido-hexano),
el tetrahidrocloruro del
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-fenildiguanido-N_{5},N_{5}')-hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-fenil-N_{1},N_{1}-metildiguanido-N_{5},N_{5}')-hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-o-clorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')-hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-2,6-diclorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-[N_{1},N_{1}'-beta-(p-metoxifenil)
diguanido-N_{5},N_{5}']-hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-alfa-metil-.beta.-fenildiguanido-N_{5},N_{5}')-hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-p-nitrofenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
dihidrocloruro de
omega:omega-di-(N_{1},N_{1}'-fenildiguanido-N_{5},N_{5}')-di-n-propiléter,
tetrahidrocloruro de
omega:omega'-di-(N_{1},N_{1}'-p-clorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')-di-n-propiléter,
tetrahidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-2,4-diclorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-p-metilfenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
tetrahidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-2,4,5-triclorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
dihidrocloruro de
1,6-di-[N_{1},N_{1}'-alfa-(p-clorofenil)etildiguanido-N_{5},N_{5}']hexano,
dihidrocloruro de
omega:omega-di-(N_{1},N_{1}'-p-clorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')m-xileno,
dihidrocloruro de
1,12-di-(N_{1},N_{1}'-p-clorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')-dodecano,
tetrahidrocloruro de
1,10-di-(N_{1},N_{1}'-fenildiguanido-N_{5},N_{5}')-decano,
tetrahidrocloruro de
1,12-di-(N_{1},N_{1}'-fenildiguanido-N_{5},N_{5}')-dodecano,
dihidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-o-clorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
tetrahidrocloruro de
1,6-di-(N_{1},N_{1}'-o-clorofenildiguanido-N_{5},N_{5}')hexano,
etilen-bis-(1-tolilbiguanido),
etilen-bis-(p-tolil biguanida),
etilen-bis-(3,5-dimetilfenilbiguanida),
etilen-bis-(p-terc.-amilfenilbiguanida),
etilen-bis-(nonilfenilbiguanida),
etilen-bis-(fe-
nilbiguanida), etilenbis-(N-butilfenilbiguanida), etilen-bis(2,5-dietoxifenilbiguanida), etilen-bis (2,4-dimetilfenil biguanida), etilen-bis (o-difenilbiguanida), etilen-bis (amil naftilbiguanida mixta), N-butil-etilen-bis-(fenilbiguanida), trimetileno bis (o-tolilbiguanida), N-butil-trimetilo-bis-(fenilbiguanida) y las sales correspondientes tales como los acetatos, los gluconatos, los hidrocloruros, los hidrobromuros, los citratos, los bisulfitos, los fluoruros, los polimaleatos, los N-cocoalquilsarcosinatos, los fosfitos, los hipofosfitos, los perflúoroctanoatos, los silicatos, los sorbatos, los salicilatos, los maleatos, los tartratos, los fumaratos, los etilendiaminotetraacetatos, los iminodiacetatos, los cinamatos, los tiocianatos, los arginatos, los piromelitatos, los tetracarboxibutiratos, los benzoatos, los glutaratos, los monoflúorfosfatos, los perflúorpropionatos así como mezclas arbitrarias de los mismos. Además son adecuados los derivados halogenados del xileno y del cresol, tales como el p-clorometacresol o el p-clorometa-xileno, así como productos activos antimicrobianos naturales de origen natural (por ejemplo procedentes de especias o de hierbas aromáticas), de origen animal así como microbiano. Preferentemente pueden emplearse compuestos cuaternarios antimicrobianos, de acción tensioactiva, un producto activo antimicrobiano natural de origen vegetal y/o un producto activo antimicrobiano natural de origen animal, de manera extraordinariamente preferente al menos un producto activo antimicrobiano natural de origen vegetal del grupo que comprende la cofeína, la teobromina y la teofilina así como esencias etéreas tales como eugenol, timol y geraniol, y/o al menos un producto activo antimicrobiano natural de origen animal del grupo que comprende los enzimas tales como la proteína de leche, la lisozima y la lactoperoxidasa, y/o al menos un compuesto cuaternario antimicrobiano, de acción tensioactiva, con un grupo amonio, sulfonio, fosfonio, yodonio o arsonio, compuestos peroxo y compuestos clorados. También pueden emplearse productos de origen microbiano, las denominadas bacteriocinas.
nilbiguanida), etilenbis-(N-butilfenilbiguanida), etilen-bis(2,5-dietoxifenilbiguanida), etilen-bis (2,4-dimetilfenil biguanida), etilen-bis (o-difenilbiguanida), etilen-bis (amil naftilbiguanida mixta), N-butil-etilen-bis-(fenilbiguanida), trimetileno bis (o-tolilbiguanida), N-butil-trimetilo-bis-(fenilbiguanida) y las sales correspondientes tales como los acetatos, los gluconatos, los hidrocloruros, los hidrobromuros, los citratos, los bisulfitos, los fluoruros, los polimaleatos, los N-cocoalquilsarcosinatos, los fosfitos, los hipofosfitos, los perflúoroctanoatos, los silicatos, los sorbatos, los salicilatos, los maleatos, los tartratos, los fumaratos, los etilendiaminotetraacetatos, los iminodiacetatos, los cinamatos, los tiocianatos, los arginatos, los piromelitatos, los tetracarboxibutiratos, los benzoatos, los glutaratos, los monoflúorfosfatos, los perflúorpropionatos así como mezclas arbitrarias de los mismos. Además son adecuados los derivados halogenados del xileno y del cresol, tales como el p-clorometacresol o el p-clorometa-xileno, así como productos activos antimicrobianos naturales de origen natural (por ejemplo procedentes de especias o de hierbas aromáticas), de origen animal así como microbiano. Preferentemente pueden emplearse compuestos cuaternarios antimicrobianos, de acción tensioactiva, un producto activo antimicrobiano natural de origen vegetal y/o un producto activo antimicrobiano natural de origen animal, de manera extraordinariamente preferente al menos un producto activo antimicrobiano natural de origen vegetal del grupo que comprende la cofeína, la teobromina y la teofilina así como esencias etéreas tales como eugenol, timol y geraniol, y/o al menos un producto activo antimicrobiano natural de origen animal del grupo que comprende los enzimas tales como la proteína de leche, la lisozima y la lactoperoxidasa, y/o al menos un compuesto cuaternario antimicrobiano, de acción tensioactiva, con un grupo amonio, sulfonio, fosfonio, yodonio o arsonio, compuestos peroxo y compuestos clorados. También pueden emplearse productos de origen microbiano, las denominadas bacteriocinas.
Los compuestos de amonio cuaternario (QAV),
adecuados como productos activos antimicrobianos, de la fórmula
general (R^{1})(R^{2})(R^{3})(R^{4}) N^{+} X^{-}, en la
que R^{1} hasta R^{4} son restos alquilo con 1 hasta 22 átomos
de carbono, restos aralquilo con 7 hasta 28 átomos de carbono o
restos heterocíclicos, iguales o diferentes, formando dos restos o,
en el caso de un enlace aromático tal como en la piridina, incluso
tres restos, junto con el átomo de nitrógeno del heterociclo, por
ejemplo un compuesto de piridinio o un compuesto de imidazolinio y
X^{-} significa iones halogenuro, iones sulfato, iones hidroxi o
iones similares. Para un efecto antimicrobiano óptimo uno de los
restos presenta al menos preferentemente una longitud de la cadena
de 8 hasta 18, especialmente de 12 hasta 16 átomos de
carbono.
carbono.
Los QAV pueden obtenerse mediante reacción de
aminas terciarias con agentes de alquilación, tales como por
ejemplo cloruro de metilo, cloruro de bencilo, sulfato de dimetilo,
bromuro de dodecilo así como también con óxido de etileno. La
alquilación de las aminas terciarias con un resto alquilo largo y
dos grupos metilo se consigue de forma especialmente sencilla,
también la cuaternización de las aminas terciarias con dos restos
largos y un grupo metilo puede llevarse a cabo con ayuda de cloruro
de metilo bajo condiciones suaves. Las aminas, que disponen de un
resto alquilo largo o de un resto alquilo substituido por hidroxi,
son menos reactivas y se cuaternizarán preferentemente con sulfato
de dimetilo.
Los QAV adecuados son, por ejemplo, el cloruro
de benzalconio (cloruro de
N-alquil-N,N-dimetil-bencilamonio,
CAS No. 8001-54-5), benzalcona B
(cloruro de
m,p-diclorobencil-dimetil-alquilamonio
con 12 átomos de carbono, CAS No.
58390-78-6), cloruro de benzoxonio
(cloruro de
bencil-dodecil-bis-(2-hidroxietil)-amonio),
bromuro de cetrimonio (bromuro de
N-hexadecil-N,N-trimetil-amonio,
CAS No. 57-09-0), cloruro de
bencetonio (cloruro de
N,N-dimetil-N-[2-[2-[p-1,1,3,3-tetrametilbutil)-fenoxi]etoxi]etil]-bencilamonio,
CAS No. 121-54-0), cloruro de
dialquildimetilamonio tales como el cloruro de
di-n-decil-dimetil-amonio
(CAS No.
7173-51-5-5),
bromuro de didecildi-metilamonio (CAS No.
2390-68-3), cloruro de
dioctil-dimetil-amonio, cloruro de
1-cetilpiridinio (CAS No.
123-03-5) y yoduro de tiazolinio
(CAS No. 15764-48-1) así como sus
mezclas. Los QAV especialmente preferentes son los cloruros de
benzalconio con restos alquilo con 8 hasta 18 átomos de carbono,
especialmente el cloruro de
alquil-bencil-dimetil-amonio
con 12 hasta 14 átomos de carbono.
Los halogenuros de benzalconio y/o los
halogenuros de benzalconio substituidos son obtenibles
comercialmente por ejemplo como Barquat® ex Lonza, Marquat® ex
Mason, Variquat® ex Witco/Sherex y Hyamine® ex Lonza, así como
Bardac® ex Lonza. Otros productos activos antimicrobianos,
adquiribles en el comercio son el cloruro de
N-(3-cloroalil)-hexaminio tales como
Dowicide® y Dowicil® ex Dow, cloruro de benzoetonio tal como
Hyamine® 1622 ex Rohm & Haas, cloruro de metilbenzoetonio tal
como Hyamine® 10X ex Rohm & Haas, cloruro de cetilpiridinio tal
como Cepacolchlorid ex Merrell Labs.
Los productos activos antimicrobianos se emplean
en cantidades desde 0,0001% en peso hasta 1% en peso,
preferentemente desde 0,001% en peso hasta 0,8% en peso, de forma
especialmente preferente desde 0,005% en peso hasta 0,3% en peso y,
especialmente, desde 0,01 hasta 0,2% en peso.
Los agentes pueden contener absorbedores de los
UV (absorbedores UV), que se absorban en los artículos textiles
tratados y que mejoren la estabilidad frente a la luz de las fibras
y/o la estabilidad frente a la luz de otros componentes de la
receta. Se entenderán por absorbedores de los UV substancias
orgánicas (filtros protectores contra la luz), que sean capaces de
absorber la irradiación ultravioleta y de desprender de nuevo la
energía absorbida por ejemplo en forma de irradiación de longitud
de onda más larga, por ejemplo en forma de calor.
Los compuestos que presentan estas propiedades
deseadas son, por ejemplo, los compuestos activos mediante
desactivación en ausencia de irradiación y los derivados de la
benzofenona con substituyentes en la posición 2 y/o en la posición
4. Además son adecuados también los benzotriazoles substituidos, los
acrilatos substituidos por fenilo en la posición 3 (derivados del
ácido cinámico, en caso dado con grupos ciano en la posición 2),
salicilatos, complejos orgánicos de Ni así como productos naturales
tales como la umbeliferona y los ácidos urocanoicos corporales.
Tienen un significado especial los derivados de bifenilo y, ante
todo, los derivados los estilbeno como los que se han descrito por
ejemplo en la publicación EP 0728749 A y que pueden adquirirse en
el comercio como Tinosorb® FD o Tinosorb® FR ex Ciba. Como
absorbedores de las UV-B pueden citarse: el
3-bencilidenalcanfor o bien el
3-bencilidennoralcanfor y sus derivados, por ejemplo
el 3-(4-metilbenciliden)alcanfor, como se
describe en la publicación EP 10693471 B1; los derivados del ácido
4-aminobenzoico, preferentemente el
4-(dimetilamino)benzoato de 2-etilhexilo, el
4-(dimetilamino)benzoato de 2-octilo y el
4-(dimetilamino)benzoato de amilo; los ésteres del ácido
cinámico, preferentemente el 4-metoxicinamato de
2-etilhexilo, el 4-metoxicinamato
de propilo, el 4-metoxicinamato de isoamilo, el
2-ciano-3-fenil-cinamato
de 2-etilhexilo (octocrileno); los ésteres del
ácido salicílico, preferentemente el salicilato de
2-etilhexilo, el salicilato de
4-isopropilbencilo, el salicilato de homometilo;
los derivados de la benzofenona, preferentemente la
2-hidroxi-4-metoxibenzofenona,
la
2-hidroxi-4-metoxi-4'-metilbenzofenona,
la
2,2'-dihidroxi-4-metoxibenzofenona;
los ésteres del ácido benzalmalónico, preferentemente el
4-metoxibenzalmalonato de
2-etilhexilo; los derivados de triazina, tales como,
por ejemplo, la
2,4,6-trianilino-(p-carbo-2'-etil-1'-hexiloxi)-1,3,5-triazina
y la octil triazona, como se han descrito en la publicación EP
0818450 A1 o dioctil butamido triazona (Uvasorb® HEB); las
propano-1,3-dionas tal como, por
ejemplo, la
1-(4-terc.-butilfenil)-3-(4'-metoxifenil)propano-1,3-diona;
los derivados de cetotriciclo(5.2.1.0)decano, tales
como los que se han descrito en la publicación EP 0694521 B1.
Además, son adecuados el ácido
2-fenilbencimidazol-5-sulfónico
y sus sales alcalinas, alcalinotérreas, de amonio, de alquilamonio,
de alcanolamonio y de glucamonio; los derivados de ácidos
sulfónicos de benzofenonas, preferentemente el ácido
2-hidroxi-4-metoxibenzofenona-5-sulfónico
y sus sales; los derivados de ácidos sulfónicos del
3-bencilidenalcanfor tales como, por ejemplo, el
ácido
4-(2-oxo-3-bornilidenmetil)bencenosulfónico
y el ácido
2-metil-5-(2-oxo-3-borniliden)sulfónico
y sus sales.
Como filtros típicos contra los
UV-A típicos entran en consideración de derivados
del benzoilmetano, tales como, por ejemplo, la
1-(4'-terc.-butilfenil)-3-(4'-metoxifenil)propano-1,3-diona,
el
4-terc.-butil-4'-metoxidebenzoilmetano
(Parsol 1789), la
1-fenil-3-(4'-isopropilfenil)-propano-1,3-diona
así como compuestos de enamina, como los que se han descrito en la
publicación DE 19712033 A1 (BASF). Los filtros para los
UV-AS y UV-B pueden emplearse
también, evidentemente, en mezcla. Además de los productos solubles,
citados, entran en consideración para esta finalidad también
pigmentos insolubles, protectores contra la luz, en concreto óxidos
metálicos finamente dispersados o bien sales. Ejemplos de los
óxidos metálicos adecuados son, especialmente, el dióxido de titanio
y, además, los óxidos de hierro, de circonio, de silicio, de
manganeso, de aluminio y de cerio así como sus mezclas. Como sales
pueden emplearse silicatos (talco), sulfato de bario o estearato de
cinc. Los óxidos y las sales se emplearán en forma de pigmentos
listos para emulsiones destinadas al cuidado de la piel y para la
protección de la piel y para productos cosméticos decorativos. Las
partículas deben presentar en este caso un diámetro medio menor que
100 nm, preferentemente comprendido entre 5 y 50 nm y,
especialmente, comprendido entre 15 y 30 nm. Éstas pueden presentar
una forma esférica, sin embargo, pueden emplearse también aquellas
partículas que tengan una forma elipsoide o que se diferencie de la
configuración esférica de otro modo. Los pigmentos pueden
presentarse también tratados superficialmente, es decir hidrofilado
o hidrofobado, Ejemplos típicos son dióxidos de titanio revestidos,
tales como, por ejemplo dióxido de titanio T 805 (Degussa) o
Eusolex® T2000 (Merck); como agentes de revestimiento hidrófobos
entran en consideración todas las siliconas y, en este caso,
especialmente los trialcoxioctilsilanos o simeticonas.
Preferentemente se empleará el óxido de cinc micronizado. Otros
filtros adecuados, protectores contra la luz UV pueden verse en la
recopilación de P.Finkel en SÖFW-Journal
122, (1966), página
543.
543.
Los absorbedores de los UV se emplearán
usualmente en cantidades desde 0,01% en peso hasta 5% en peso,
preferentemente desde 0,03% en peso hasta 1% en peso.
A los componentes usuales para los agentes de
lavado y de limpieza pertenecen, en general, también enzimas con
actividad de lavado y respectivamente con actividad de limpieza. Al
mismo tiempo los agentes de lavado o de limpieza, que están
caracterizados por otros enzimas adicionales, además de la proteína
según la invención, representan formas preferentes de realización
de la presente invención. A éstas pertenecen otras proteasas, así
como también óxidorreductasas, cutinasas, esterasas y/o
hemicelulasas y, de forma especialmente preferente, las lipasas,
las amilasas, las celulasas y/o las
\beta-glucanasas.
Desde hace décadas se utilizan los enzimas tales
como las proteasas, las amilasas, las lipasas o las celulasas como
componentes activos en los agentes de lavado y de limpieza. Su
contribución respectiva con relación al rendimiento del lavado o
bien de limpieza del agente correspondiente consiste, en el caso de
las proteasas, en la capacidad que tienen para degradar las
impurezas que contienen proteína, en el caso de las amilasas, en la
degradación de las impurezas que contienen almidón y, en el caso de
las lipasas, en la actividad disociadora de la grasa. Las celulasas
son empleadas, especialmente, debido a su contribución a las
prestaciones secundarias de lavado de un agente de lavado y debido
a su efecto sobre las fibras en los artículos textiles,
preferentemente en los agentes de lavado. Los respectivos productos
de hidrólisis son atacados por los restantes componentes de los
agentes de lavado y de limpieza disueltos, emulsionados o
suspendidos o, debido a su elevada solubilidad en el baño de
lavado, se separan por flotación de tal manera, que se producen
efectos sinérgicos entre los enzimas y los restantes
componentes.
Las proteasas pueden ejercer sobre las fibras
naturales, especialmente sobre lana o sobre seda un efecto
comparable con el de la contribución al rendimiento del lavado
secundario de un agente por medio de la celulasa. Mediante el
efecto sobre la estructura superficial de tales tejidos pueden
ejercer un efecto alisante sobre el material y, por lo tanto,
oponerse al afieltrado.
Otros enzimas amplían en rendimiento de limpieza
del material correspondiente y su correspondiente rendimiento
enzimático específico. A éstos pertenecen, por ejemplo, las
\beta-glucanasas (WO 99/06515 y WO 99/06516), las
lacasas (WO 00/39306) o los enzimas que disuelven la pectina (WO
00/42145), que se utilizan especialmente en agentes de lavado
especiales.
Para el empleo en los agentes según la invención
entran en consideración, en primer lugar los enzimas obtenidos a
partir de microorganismos, tales como bacterias u hongos. Éstos se
obtienen, de manera conocida, mediante procesos de fermentación a
partir de microorganismos adecuados, que han sido descritos, por
ejemplo, en las solicitudes de patente alemanas publicadas, no
examinadas DE 1940488, y DE 2121397, en las memorias descriptivas
de las patentes norteamericanas US 3623957, US 4264738, en la
solicitud de patente europea EP 006638 así como en la solicitud de
patente internacional WO 91/02792.
Una proteína según la invención y/o otra
proteína contenida pueden protegerse, especialmente durante el
almacenamiento, mediante estabilizantes por ejemplo contra la
desnaturalización, contra la descomposición o contra la inactivación
por ejemplo debido a influjos físicos, a la oxidación o a la
disociación proteolítica.
Un grupo de estabilizantes está constituido por
los inhibidores reversibles de la proteasa, que se disocien en el
momento de la dilución del agente con el baño de lavado. Para esta
finalidad se han establecido el hidrocloruro de benzamidina y la
leupeptina. Frecuentemente se emplean borax, ácidos bóricos, ácidos
borónicos o sus sales o ésteres, entre ellos ante todo los
derivados con grupos aromáticos, por ejemplo los ácidos
fenilborónicos ortosubstituidos según la publicación WO 95/12655,
metasubstituidos según la publicación WO 92/19707 y
para-substituidos según la publicación US 5 972
873, o bien sus sales o ésteres. En las solicitudes WO 98/13460 y EP
583 534 se han divulgado peptidoaldehídos, es decir oligopéptidos
con un extremo C reducido y, concretamente, aquellos con 2 hasta 50
monómeros, para la inhibición reversible de las proteasas en los
agentes de lavado y de limpieza. A los inhibidores reversibles
péptidos de las proteasas pertenecen, entre otros, el Ovomucoid (WO
93/00418). De manera ejemplificativa se han divulgado en la
solicitud WO 00/01826 inhibidores reversibles de los péptidos,
específicos, para la subtilisina de proteasa para el empleo en
agentes que contienen proteasa y en la publicación WO 00/01831 se
han divulgado proteínas de fusión, correspondientes, a partir de
proteasas e inhibidores.
Otros estabilizantes enzimáticos son los
aminoalcoholes tales como la mono-, la di-, la trietanol- y
-propanolamina y sus mezclas, los ácidos carboxílicos alifáticos
con hasta 12 átomos de carbono, como los que se conocen por ejemplo
por las solicitudes EP 0 378 261 y WO 97/05227, tales como el ácido
succínico, otros ácidos dicarboxílicos o sales de los ácidos
citados. En la solicitud DE 196 50 537 se han divulgado para esta
finalidad alcoxilatos de amidas de ácidos grasos cerrados en los
grupos extremos. Algunos ácidos orgánicos, empleados como adyuvantes
son capaces de estabilizar además un enzima contenido como se ha
divulgado en la publicación WO 97/18287.
Los alcoholes alifáticos inferiores, ante todo
sin embargo los polioles, tales como por ejemplo la glicerina, el
etilenglicol, el propilenglicol o la sorbita son otros
estabilizantes de los enzimas empleados frecuentemente. Del mismo
modo se utilizan sales de calcio, tal como por ejemplo el acetato de
calcio o el formiato de calcio divulgado en la memoria descriptiva
de la patente EP 0 028 865 con esta finalidad, y las sales de
magnesio, por ejemplo según la solicitud europea EP 0 378 262.
Los oligómeros de poliamida (WO 99/43780) o los
compuestos polímeros tales como la lignina (WO 97/00932), los
copolímeros de vinilo solubles en agua (EP 828 762) o, como se ha
divulgado en la publicación EP 702 712, los éteres de la celulosa,
los polímeros acrílicos y/o las poliamidas estabilizan las
preparaciones enzimáticas entre otras cosas frente a los efectos
físicos o frente a las oscilaciones del valor del pH. Los polímeros
que contienen N-óxidos de poliamina (EP 587 550 y EP 581 751) actúan
simultáneamente como estabilizantes de los enzimas y como
inhibidores del corrido de los colores. Otros estabilizantes
polímeros son los polioxialquilenos con 8 hasta 18 átomos de
carbono lineales divulgados en la publicación WO 97/05227 junto a
otros componentes. Los alquilpoliglicósidos pueden estabilizar los
componentes enzimáticos del agente según la invención como en las
solicitudes WO 97/43377 y WO 98/45396 e incluso pueden acrecentar su
rendimiento. Los compuestos que contienen N, reticulados, como los
que se han divulgado en la publicación WO 98/17764, cumplen una
doble función como agentes desprendedores de la suciedad
(Soil-release) y como estabilizantes de los enzimas.
Los polímeros hidrófobos, no iónicos, actúan en una mezcla con
otros estabilizantes según la solicitud WO 97/32958 de manera
estabilizante sobre una celulasa de tal manera, que también pueden
ser adecuados tales componentes u otros componentes similares para
el enzima esencial según la invención.
Los agentes reductores y los antioxidantes
aumentan la estabilidad de los enzimas frente a la descomposición
por oxidación como se ha divulgado entre otras, en la publicación EP
780 466. Los agentes reductores que contienen azufre son conocidos,
por ejemplo, por las memorias descriptivas de las patentes EP 0 080
748 y EP 0 080 223. Otros ejemplos son el sulfito de sodio (EP 533
239) y los azúcares reductores (EP 656 058).
Muchas veces se utilizan también combinaciones
de estabilizantes, por ejemplo constituidas por polioles, ácido
bórico y/o borax como se divulga en la solicitud WO 96/31589, la
combinación de ácido bórico o de borato, de sales reductoras y de
ácido succínico o sus derivados como se divulga en la solicitud EP
126 505 o la combinación de ácido bórico o de borato con polioles o
con compuestos poliamínicos y con sales reductoras como se divulga
en la solicitud EP 080 223. El efecto de los estabilizantes
aldehídicos de los péptidos se aumenta, según la publicación WO
98/13462 mediante la combinación con ácido bórico y/o con derivados
del ácido bórico con polioles y, según la publicación WO 98/13459
se refuerza todavía más mediante el empleo adicional de iones
calcio.
Los agentes con actividades enzimáticas
estabilizadas representan formas de realización preferentes de la
presente invención. Son especialmente preferentes aquellas con
enzimas que están estabilizados según varias de las formas
indicadas.
Puesto que los agentes según la invención pueden
ofrecerse en todas las formas imaginables, representan enzimas
según la invención, respectivamente proteínas en todas las
formulaciones o respectivamente en todas las formas de realización
convenientes para la adición a los agentes correspondientes. A éstas
pertenecen, por ejemplo, las formulaciones líquidas, los granulados
sólidos o las cápsulas.
La forma encapsulada es adecuada para proteger a
los enzimas o a otros componentes contra los otros componentes
tales como por ejemplo los agentes de blanqueo o para posibilitar
una liberación controlada (controlled release). Según el tamaño de
estas cápsulas se distingue entre milicápsulas, microcápsulas y
nanocápsulas, siendo especialmente preferentes las microcápsulas
para los enzimas. Tales cápsulas han sido divulgadas, por ejemplo,
en la solicitudes de patente WO 97/24177 y DE 199 18 267. Un
posible método para la encapsulación consiste en encapsular la
proteína, a partir de una mezcla de la solución de proteína con una
solución o suspensión de almidón o de un derivado el almidón, en
esta substancia. Un procedimiento de encapsulación de este tipo ha
sido descrito en la solicitud alemana DE 199 56 382 con el título
"Procedimiento para la obtención de enzimas
microencapsulados".
En el caso de agentes sólidos, las proteínas
pueden emplearse, por ejemplo, en forma seca, granulada y/o
encapsulada. Éstas pueden emplearse por separado, es decir en forma
de una fase propia, o junto con otros componentes en la misma fase,
con o sin compactación. Cuando deban administrarse los enzimas
microencapsulados en forma sólida, podrá eliminarse el agua con los
procedimientos conocidos en el estado de la técnica a partir de las
soluciones acuosas que se forman durante la elaboración, tal como
mediante secado por pulverización, eliminación por centrifugación o
mediante transolubilización. Las partículas obtenidas de este modo
tienen usualmente un tamaño de partícula comprendido entre 50 y 200
\mum.
Pueden añadirse a los agentes líquidos, en forma
de gel o pastosos, según la invención, los enzimas y también la
proteína, esencial según la invención, a partir de una obtención de
la proteína llevada a cabo según el estado de la técnica y
preparación en soluciones, suspensiones o emulsiones concentradas
acuosas o no acuosas, así como también en forma de gel o
encapsuladas o como polvo seco. Tales agentes de lavado o de
limpieza, según la invención, se preparan, por regla general,
mediante simple mezcla de los componentes, que pueden añadirse en
substancia o en forma de solución a un mezclador automático.
Además del rendimiento primario de lavado, las
proteasas contenidas en los agentes de lavado pueden cumplir
también la función de activar otros componentes enzimáticos mediante
la disociación proteolítica o desactivarlo después de un tiempo de
actuación correspondiente tal como se ha descrito, por ejemplo, en
las solicitudes WO 94/29426 o EP 747 471. Son posibles funciones
reguladoras comparables también por medio del enzima según la
invención. Una forma de realización de la presente invención
consiste, además, en aquellos agentes con cápsulas de material
sensible a las proteasas, que se hidrolicen por ejemplo por las
proteínas según la invención en el momento previsto y que liberen
su contenido. Un efecto comparativo puede conseguirse también con
otros agentes polifásicos.
Un objeto propio de la invención está
representado por agentes para el tratamiento de materias primas para
artículos textiles o para el mantenimiento de los artículos
textiles, caracterizados porque contienen un enzima proteolítico
según la invención solo o junto con otros componentes. Puesto que
las fibras, especialmente naturales, tales como por ejemplo la lana
o la seda, se caracterizan por una estructura superficial
microscópica, singular, ésta puede conducir, como se ha indicado
por ejemplo en el caso de la lana en el artículo de R. Breier en
Melliand Textilberichte del 1.4.2000 (página 263) a largo plazo a
efectos no deseados, tal como por ejemplo el afieltrado. Para
evitar tales efectos se tratan las materias primas naturales con los
agentes según la invención, que contribuyen por ejemplo a alisar la
estructura superficial en forma de escamas basadas en las
estructuras proteínicas y, de este modo, se oponen a un afieltrado.
Una forma de realización especialmente preferente está representada
por aquellos agentes para fibras de artículos textiles con
componentes naturales y de forma muy preferente con lana o
seda.
En una forma de realización de la presente
invención se ha concebido el agente con una proteasa según la
invención de tal manera, que pueda emplearse regularmente como
agente de mantenimiento, por ejemplo añadiéndose en el proceso de
lavado, empleándose tras el lavado o aplicándose independientemente
del lavado. El efecto deseado consiste en obtener una estructura
superficial lisa del textil y/o en prevenir y/o reducir un deterioro
del tejido.
Un objeto propio de la invención consiste en un
procedimiento para la limpieza mecánica de artículos textiles o de
superficies duras, caracterizado porque se activa un enzima
proteolítico, según la invención, al menos en una de las etapas del
procedimiento.
Los procedimientos para la limpieza mecánica de
los artículos textiles se caracterizan en general porque se aplican
sobre el material a ser limpiado en varias etapas del procedimiento
diversas substancias con actividad limpiadora y se eliminan por
lavado después del tiempo de actuación o porque el producto a ser
limpiado se trata de otro modo con un agente de limpieza o con una
solución de este agente. Lo mismo es válido para los procedimientos
de limpieza mecánica ante todo de otros materiales diferentes de los
artículos textiles, que se reúnen bajo el concepto de superficies
duras. Tales procedimientos pueden enriquecerse con proteínas según
la invención al menos en una de las etapas del procedimiento y
representan las formas de partida de la presente invención.
Son preferentes los procedimientos en los que el
enzima según la invención se utilice en cantidades desde 40 \mug
hasta 4 g y con más preferencia desde 50 \mug hasta 3 g, desde 100
\mug hasta 2 g, desde 200 \mug hasta 1 g y, de forma
especialmente preferente, desde 400 \mug hasta 400 mg por
aplicación.
Puesto que el enzima según la invención tiene de
manera natural ya una actividad disolvedora de las proteínas y la
desarrolla también en medios que, en otro caso, no tendrían fuerza
limpiadora, tal como por ejemplo en el simple tampón, puede
consistir una etapa parcial individual de un procedimiento de este
tipo para la limpieza a máquina de los artículos textiles en que,
en caso dado, se aplique el enzima según la invención como único
componente con actividad limpiadora junto a los compuestos
estabilizantes, las sales y las substancias tampón. Esto representa
una forma de realización especialmente preferente de la presente
invención.
Un objeto propio de la invención consiste en
procedimientos para el tratamiento de materias primas para artículos
textiles o para el mantenimiento de los artículos textiles
caracterizados porque se activa un enzima proteolítico, según la
invención, al menos en una de las etapas del procedimiento. En este
caso puede tratarse de procedimientos en los cuales se preparen
materiales para la elaboración en artículos textiles, por ejemplo
para el acabado antiafieltrante o, por ejemplo, puede tratarse de
procedimientos que enriquezcan con un componente de mantenimiento
la limpieza de los artículos textiles usados. Debido al efecto,
anteriormente descrito, de las proteasas sobre determinados
tejidos, las formas preferentes de realización consisten en materias
primas para artículos textiles o artículos textiles con componentes
naturales, especialmente con lana o seda.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para la
limpieza de artículos textiles o de superficies duras. Los enzimas
según la invención pueden emplearse, especialmente de acuerdo con
los procedimientos anteriormente descritos, para eliminar de los
artículos textiles o de las superficies duras las impurezas que
contengan proteína. Las formas preferentes de realización consisten
en el empleo fuera de un procedimiento mecánico, por ejemplo en la
colada a mano o en la eliminación a mano de manchas de artículos
textiles o de superficies duras.
Es preferente el empleo de un enzima según la
invención en una cantidad desde 40 \mug hasta 4 g y de una manera
más preferente desde 50 \mug hasta 3 g, desde 100 \mug hasta 2
g, desde 200 \mug hasta 1 g y, de forma especialmente preferente,
desde 400 \mug hasta 400 mg por aplicación.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico según la invención para la
activación o la desactivación de los componentes de los agentes de
lavado o de limpieza. Puesto que, como se sabe, los componentes
proteínicos de los agentes de lavado o de limpieza pueden
inactivarse mediante la acción de una proteasa. El establecimiento
específico de este efecto, que en otro caso no es deseado,
constituye un objeto de la presente invención. Del mismo modo es
posible activar otro componente solo por medio de la proteólisis,
por ejemplo cuando represente una proteína híbrida constituida por
el enzima propiamente dicho y por el inhibidor adecuado para el
mismo como se ha divulgado por ejemplo en la solicitud WO 00/01831.
Otro ejemplo de una regulación de este tipo consiste en que se
presente encapsulado en un material un componente activo para la
protección o para el control de su actividad, que sea atacado por
proteólisis. Las proteínas según la invención pueden emplearse, por
lo tanto, para reacciones de inactivación, de activación o de
liberación.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para el
análisis bioquímico o mediante biología molecular, especialmente en
el ámbito de un procedimiento de análisis enzimático. Según la
invención y de acuerdo con la publicación Römpp, "Lexikon
Chemie" (Version 2.0, Stuttgart/New York: Georg Thieme Verlag,
1999) es entenderá por análisis enzimático cualquier analítica
bioquímica que utilice enzimas o substratos específicos para
determinar, por un lado, substratos en cuanto a su identidad o su
concentración o, por otro lado, para determinar enzimas en cuanto a
su identidad o a su actividad. Los campos de aplicación son todos
los campos de trabajo emparentados con la bioquímica. Una forma
preferente de realización de este objeto de la invención consiste
en el empleo para la determinación de grupos extremos en el ámbito
de un análisis
secuencial.
secuencial.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para la
preparación, la purificación o la síntesis de artículos comestibles
o de materiales biológicos. De este modo puede ser necesario en el
transcurso de la elaboración de los artículos comestibles o de los
materiales biológicos, por ejemplo, liberar a éstos de impurezas
proteínicas. En este caso puede tratarse por ejemplo de compuestos
de bajo peso molecular, de todos los componentes celulares o de
materiales de reserva o de proteínas. Esto puede llevarse a cabo
tanto a escala de laboratorio así como también a escala industrial,
por ejemplo tras la fabricación mediante biotecnología de un
material valioso.
El empleo de un enzima proteolítico, según la
invención, para la síntesis de proteínas o de otros compuestos
químicos de bajo peso molecular se lleva a cabo mediante la
inversión de la reacción catalizada de manera natural por los
mismos, por ejemplo cuando se enlacen entre sí fragmentos de
proteína o deban enlazarse aminoácidos sobre un compuesto que no
esté constituido preponderantemente por proteína. Tales
posibilidades de aplicación se han presentado por ejemplo en la
solicitud EP 380362.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para el
tratamiento de materias primas naturales, cuando éstas deban
liberarse de impurezas proteínicas. Entre éstas deben entenderse en
primer lugar las materias primas que deben ser obtenidas de manera
no microbiológica, por ejemplo en la agricultura.
Una forma de realización preferente consiste en
el empleo para el tratamiento de superficies y de una manera muy
preferente en un procedimiento para el tratamiento de la materia
prima económicamente importante constituida por el cuero. De este
modo, en el transcurso del procedimiento de curtición, especialmente
en la etapa del ablandado alcalino (Römpp, "Lexikon Chemie",
Version 2.0, Stuttgart/New York: Georg Thieme Verlag, 1999) se
desprenderán del material de la piel las proteínas solubles en agua
con ayuda de los enzimas proteolíticos. Para ello son adecuadas las
proteasas según la invención, especialmente cuando reinen
condiciones alcalinas y estén presentes agentes
desnaturalizantes.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para la
obtención o el tratamiento de materiales en bruto o de productos
semielaborados en la fabricación de artículos textiles. Un ejemplo
a este respecto es la elaboración del algodón, que tiene que
liberarse de los componentes de la cápsula en un proceso denominado
encolado; otro ejemplo consiste en el tratamiento de la lana;
también se ha configurado de manera similar la elaboración de la
cera en bruto. Los procedimientos enzimáticos son ventajosos en
comparación con los procedimientos químicos especialmente en cuanto
a su compatibilidad con el medio ambiente.
En una forma preferente de realización se
emplean las proteínas según la invención para eliminar las capas
protectoras de los artículos textiles, especialmente de los
productos semielaborados o de los materiales valiosos y para alisar
su superficie, como paso previo a su elaboración ulterior en la
etapa siguiente de transformación.
En un objeto propio de la invención se utilizan
las proteínas según la invención para el tratamiento de materias
primas para artículos textiles o para el mantenimiento de los
artículos textiles, especialmente para el tratamiento de las
superficies de lana o de seda o de materiales mixtos que contengan
lana o que contengan seda. Esto es válido tanto para la fabricación
de tales artículos textiles así como también para el mantenimiento
durante el uso, por ejemplo, en relación con la limpieza de los
artículos textiles (véase más arriba).
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para el
tratamiento de películas fotográficas, especialmente para la
eliminación de las capas protectoras que contengan gelatina o
similares. Puesto que con tales capas protectoras, especialmente con
aquellas que contengan emulsiones de gelatina que contengan sales
de plata se recubren películas, tales como por ejemplo las películas
para rayos X, que tienen que desprenderse del material de soporte
después de la exposición a la luz. A este respecto pueden emplearse
especialmente las proteasas según la invención bajo condiciones de
la reacción, alcalinas o ligeramente desnaturalizantes.
Un objeto propio de la invención consiste en el
empleo de un enzima proteolítico, según la invención, para la
obtención de artículos comestibles o de piensos para animales. De
este modo se emplean proteasas desde hace mucho tiempo para la
fabricación de artículos comestibles. Un ejemplo a este respecto es
el empleo de cuajo para el proceso de maduración del queso o de
otros productos lácteos. Tales procesos pueden enriquecerse con una
proteína según la invención o pueden completarse con la misma.
También los artículos comestibles ricos en hidratos de carbono o
las materias primas para los artículos comestibles con finalidades
no destinadas a la alimentación, tales como por ejemplo el harina o
la dextrina, pueden tratarse con proteasas correspondientes para
liberarlos de las proteínas acompañantes. También es adecuada para
tales aplicaciones una proteasa según la invención, especialmente
cuando deban llevarse a cabo bajo condiciones alcalinas o
ligeramente desnaturalizantes.
Lo mismo es válido para la fabricación de
artículos comestibles. En este caso puede ser interesante además de
una liberación completa de las proteínas también tratar durante un
corto período de tiempo a los productos de partida o las mezclas de
productos que contengan proteína con proteasas para hacerlas
digeribles por parte de los animales domésticos.
Un objeto propio de la invención consiste en
agentes comestibles con un enzima proteolítico según la invención o
procedimientos cosméticos con incorporación de un enzima
proteolítico según la invención o el empleo de un enzima
proteolítico según la invención con fines cosméticos, especialmente
en el ámbito de los procedimientos correspondientes o en los
agentes correspondientes.
Puesto que las proteasas juegan también en el
procedimiento de renovación celular de la piel humana (desquemación)
un papel decisivo (T. Egelrud et al., Acta Derm. Venerol.,
tomo 71 (1991), páginas 471-474). Por lo tanto se
emplearán las proteasas también como componentes bioactivos en
agentes para el cuidado de la piel para favorecer la degradación de
las estructuras dermosómicas que proliferan en la piel seca, por
ejemplo según las solicitudes WO 95/07688 o WO 99/18219. El empleo
de las proteasas de subtilisina, especialmente de las variantes de
proteasa alcalina de B. lentus, ya descrita, para
finalidades cosméticas se ha descrito, por ejemplo, en la
publicación WO 97/07770. También las proteasas según la invención,
especialmente aquellas que estén controladas en su actividad por
ejemplo tras mutagénesis o por adición de productos
correspondientes, que interaccionen con las mismas, son adecuadas
como componentes activos en agentes para la limpieza y el cuidado
de la piel o del cabello. Son especialmente preferentes aquellas
preparaciones de este enzima, que estén estabilizadas, como se ha
descrito anteriormente, por ejemplo mediante la copulación con
soportes macromoleculares (véase la publicación US 5230891) y/o que
estén derivatizadas mediante mutaciones puntuales en posiciones
altamente alergénicas de tal manera, que presenten una elevada
compatibilidad con la piel en los seres humanos.
Por lo tanto se incluye también en este objeto
de la invención el empleo de tales enzimas proteolíticos para fines
cosméticos, especialmente en agentes correspondientes tales como por
ejemplo champúes, jabones o lociones para lavado, o en agentes para
el mantenimiento, que se comercialicen por ejemplo en forma de
cremas. También queda incluido en esta reivindicación el empleo en
un medicamento descortezante.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Todas las etapas de trabajo de la biología
molecular siguen métodos establecidos, como los que se han indicado,
por ejemplo, en el manual de Fritsch, Sambrook y Maniatis
"Molecular cloning: a laboratory manual", Cold Spring Harbour
Laboratory Press, New York, 1989, o en la solicitud de patente
internacional WO 92/21760.
La mutagénesis se llevó a cabo a partir de la
variante de proteasa alcalina M131 de B. lentus. Esta
variante ha sido descrita en la publicación WO 92/21760 y se ha
depositado la cepa, que la forma, según esta solicitud bajo la
denominación Bacillus licheniformis ATCC 68614 en la American
Type Culture Collection, Rockville, MD, USA. En esta cepa está
contenido el gen en un casete de expresión en el plásmido pCB56M131,
replicante en Bacillus, constituido por el promotor, por el
punto de enlace de los ribozomas así como por el codón de
iniciación ATG y por los 22 aminoácidos aminoterminales de la
proteasa alcalina de Bacillus licheniformis ATCC 53926,
fusionado con la pre-pro-proteína y
la secuencia mutada de la proteasa alcalina de Bacillus
lentus DSM 5483. La variante de la proteasa alcalina M131 de
B. lentus presenta las mutaciones siguientes, en
comparación con la secuencia natural: S3T, V41, A188P, V193M,
V199I.
Para la mutagénesis se recortó todo el casete de
expresión por medio de los enzimas de restricción Bam HI y
Sac I y se clonaron en el vector pUC18 (Amersham Pharmacia Biotech,
Freiburg) cortado igualmente con Bam HI y Sac I. Con el
vector pUC18M131, obtenido de este modo, se llevaron a cabo a
continuación las siguientes etapas de mutagénesis. El vector
pUC18M131 está representado en la figura 2. El fragmento de ADN,
que contiene el casete de expresión de la proteasa alcalina M131 de
B. lentus, está documentado en la SEQ ID NO. 1; la SEQ ID
NO.2 muestra la secuencia de aminoácidos derivada del anterior. El
fragmento Bam HI - Sac 1, mostrado en la SEQ ID NO.
1, se extiende en el vector pUC18M131, mostrado en la figura 2,
desde las posiciones 1 hasta 1771; las regiones restantes del vector
son idénticas a las del plásmido de partida pUC18.
En primer lugar se restableció la secuencia
original de la proteasa alcalina de Bacillus lentus DSM 5483
en las posiciones 188 y 193. Para ello se utilizó el procedimiento
QuikChange® de la firma Stratagene (La Jolla, CA, USA) según las
indicaciones del fabricante. De acuerdo con este sistema se formó un
plásmido mutado en una reacción de polimerasa, con empleo de,
respectivamente, dos cebadores complementarios, que contienen la
mutación. Tras la digestión del plásmido de partida por medio de
Dpnl se transformó la mezcla de la reacción en E.
coli XL-1 blue. Los clones obtenidos pueden
reconocerse fácilmente, en caso dado, por medio de un punto de
corte por restricción introducido con ayuda de la mutación, en
cualquier caso es posible la verificación mediante la secuenciación
del ADN con ayuda de un estuche usual, según el método de la
interrupción de las cadenas.
Para la transformación del triplete CCA
(prolina), que codifica el aminoácido en la posición 188, en GCC
(alanina) se utilizaron los dos cebadores constituidos por
5'-TCA CAG TAT GGC GCC GGG CTT GAC
ATT-3' así como por 5-AAT GTC AAG
CCC GGC GCC ATA CTG TGA-3'. Éstos contienen,
directamente junto a la mutación, un punto de corte por restricción
Nar I que no modifica a la secuencia de aminoácidos.
Para la transformación del triplete ATG
(metionina), que codifica el aminoácido en la posición 193, en ATT
(isoleucina) se emplearon los dos cebadores constituidos por
5'-GGG CTT GAC ATT GTG GCA CCC GGG GTA
AAC-3' así como por 5'-GTT TAC CCC
GGG TGC CAC AAT GTC AAG CCC-3'. Éstos contienen,
directamente junto a la mutación, un punto de restricción
Xma CI, que no modifica a la secuencia de aminoácidos.
Un clon, que contiene el plásmido doblemente
mutado, proporciona entonces la matriz para la mutación siguiente
del triplete en la posición 211 TTA (leucina) en GGA (glicina). Para
ello se emplearon los dos cebadores complementarios con las
secuencias 5'- ACG TAT GCT AGC GGA AAC GGT ACA TCG - 3' así como 5'-
CGA TGT ACC GTT TCC GCT AGC ATA CGT - 3'. Éstos contienen,
directamente junto al punto de mutación, un punto de restricción
Nhe I, que no modifica a la secuencia de aminoácidos. Los
clones obtenidos, que proporcionan los fragmentos esperados con
Nhe I, se ensayaron a continuación mediante secuenciación del
ADN.
La secuencia del ADN del gen de los mutantes
BLAP-S3T, V41, V199I, L211G, que codifica toda la
proteasa, está indicada en el protocolo de secuencias en SEQ ID NO.
3. A partir de ésta puede derivarse la secuencia de aminoácidos
dada en el protocolo de secuencias en SEQ ID NO. 4. Esta variante de
la proteasa alcalina de B. lentus se denominará como
proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B. lentus
debido a las posiciones que se diferencian del enzima natural de
B. lentus DSM 5483.
El casete de expresión, con la secuencia mutada,
se reclonó en el vector pCB56M131 como fragmento Bam
HI-Sac I en lugar del fragmento mostrado en la SEQ ID NO. 1 y
se transformó en Bacillus subtilis DB104. La cepa
Bacillus subtilis DB 104 presenta el genotipo his,
nprR2, nprE18, aprA3 (Kawamura, F. y Doi, R. H.
(1984), J. Bacteriol., tomo 160, páginas 442-444).
La transformación de ADN en Bacillus se llevó a cabo según la
variante, descrita en la publicación WO 91/02792, del método de los
protoplastos desarrollado por Chang y Cohen (1979; Molec. Gen.
Genet., tomo 168, páginas 111-115).
Los clones positivos a la proteasa, obtenidos de
este modo, se incubaron, tras verificación en 500 ml de medio MLBSP
(10 g/l de Casiton; 20 g/l de Trypton, 10 g/l de extracto de
levadura, todos de la firma Becton Dickinson, Cockeysville; 5 g/l
de NaCl; 27 g/l de succinato de sodio; 100 mg/l de MgSO_{4}*7
H_{2}O; 75 mg/l de CaCl_{2}*2 H_{2}O; 0,5 \muM de
MnCl_{2}; 0,5 \muM de FeSO_{4}; 2% (p/v) de glucosa; 50 mM de
tampón PIPES (procedente de una solución madre 1 M con pH 7,2); 75
mM de KPO_{4} (procedente de una solución madre 1,5 M con pH
7,0); pH = 7,0, ajustado con KOH - así como 10 \mug/ml de
tetraciclina) en matraces para la agitación mediante aplicación de
sacudidas, de 2.000 ml, durante 72 horas a 37ºC y 200 revoluciones
por minuto. El sobrenadante, obtenido tras la separación por
centrifugación de las células, se utilizó para los ensayos
siguientes, una vez determinada la actividad de la proteasa (según
el método descrito en la publicación Tenside, tomo 7 (1970),
páginas 125-132).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
Para los dos ejemplos siguientes se emplearon
artículos textiles ensuciados de manera normalizada, que se
adquirieron en la Cooperativa para la comprobación y el ensayo de
materiales -Eidgenössischen
Material-Prüfungs-
und -Versuchsanstalt-, St. Gallen, Suiza (EMPA), o en el Instituto para la investigación de las lavanderías
-Wäschereiforschungsanstalt-, Krefeld. En el ejemplo 2 se utilizaron las siguientes suciedades/artículos textiles: A (sangre/leche/hollín sobre algodón), B (sangre/leche/tinta china sobre algodón), C (sangre/leche/tinta china sobre un tejido mixto de poliéster y de algodón) y D (huevo/hollín sobre algodón).
und -Versuchsanstalt-, St. Gallen, Suiza (EMPA), o en el Instituto para la investigación de las lavanderías
-Wäschereiforschungsanstalt-, Krefeld. En el ejemplo 2 se utilizaron las siguientes suciedades/artículos textiles: A (sangre/leche/hollín sobre algodón), B (sangre/leche/tinta china sobre algodón), C (sangre/leche/tinta china sobre un tejido mixto de poliéster y de algodón) y D (huevo/hollín sobre algodón).
Con este material se ensayaron diversas recetas
de agentes de lavado con respecto a su rendimiento del lavado en el
launderómetro. Para ello se estableció respectivamente una relación
del baño de 1:12 y se llevó a cabo la colada durante 30 minutos a
una temperatura de 40ºC. La dosificación fue de 5,88 g del agente
correspondiente por cada litro de baño para la colada. La dureza
del agua fue de 16º de dureza alemana.
Como agente de lavado de control sirvió una
receta básica de agente de lavado con la siguiente composición
(todas las indicaciones en por ciento en peso): 4% de
alquilbencenosulfonato lineal (sal de sodio), 4% de sulfato de
alcoholes grasos con 12 a 18 átomos de carbono (sal de sodio), 5,5%
de alcoholes grasos con 12 hasta 18 átomos de carbono con 7 EO, 1%
de jabón de sodio, 11% de carbonato de sodio, 2,5% de disilicato de
sodio amorfo, 20% de tetrahidrato de clorato de sodio, 5,5% de TAED,
25% de zeolita A, 4,5% de policarboxilato, 0,5% de fosfonato, 2,5%
de granulado inhibidor de la espuma, 5% de sulfato de sodio, resto:
agua, abrillantadores ópticos, sales. Éstos se combinaron para las
diversas series de ensayos con las siguientes proteasas de tal
manera, que se estableciese respectivamente una concentración final
de 2,250 PE de actividad proteolítica por litro de baño para la
colada: proteasa alcalina F49 de B. lentus (WO 95/23221;
fabricante: firma Biozym, Kundl, Austria), Savinase® (firma
Novozymes A/S, Bagsværd, Dinamarca), o bien la proteasa según la
invención constituida por la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G
de B. lentus.
Tras el lavado se midió el grado de blancura de
los artículos textiles lavados en comparación con el sulfato de
bario, que se tomó como el 100%. La medida se llevó a cabo en un
espectrómetro SF500-2 a 460 nm (filtro 3 para el
bloqueo de los UV), diafragma de 30 mm, sin brillo, tipo de luz D65,
10º, d/8º. Los resultados obtenidos se han reunido en la tabla 3
siguiente como remisión en porcentaje, es decir como indicaciones en
porcentaje en comparación con el sulfato de bario, con los
correspondientes valores iniciales. Se han dado los valores medios
de, respectivamente, cuatro mediciones. Éstos permiten una deducción
inmediata de la contribución del enzima contenido con relación al
rendimiento del lavado del agente empleado.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Se observa que la proteasa, según la invención,
presenta en el caso de todas las suciedades una contribución
claramente mayor al rendimiento del lavado del agente
correspondiente que las proteasas tradicionales constituidas por la
proteasa alcalina F49 de B. lentus y la Savinase®.
Ejemplo
3
Además de las suciedades/artículos textiles
indicados en el ejemplo 2, se utilizó en este caso la muestra E
(sangre sobre algodón). Los artículos textiles de ensayo se
analizaron de la misma manera que en el ejemplo 2 y con soluciones
de lavado correspondientes en el launderómetro. La única diferencia
con respecto al ejemplo 2 consistía en que en este caso se llevó a
cabo la colada a una temperatura de 60ºC. La evaluación de la serie
de ensayos se llevó a cabo igualmente como se ha descrito en el
ejemplo precedente; la tabla 4 muestra los resultados.
Tal como muestran estos resultados, la proteasa
alcalina S3T/V4I/V199I/L211G, según la invención, sobrepasa a las
proteasas establecidas para los agentes de lavado constituidas por
la proteasa alcalina F49 de B. lentus y la Savinase® incluso
a la temperatura de lavado de 60ºC en cuanto a su contribución al
rendimiento del lavado del agente correspondiente o al menos es
equivalente dentro de los límites de error.
Ejemplo
4
Se normalizaron recipientes con superficies
duras, lisas, dotándolos con (A) huevo blando, (B) huevo/leche, (C)
almidones mixtos y (D) carne picada y se fregaron a 45ºC con el
programa normal de una máquina friegaplatos doméstica del tipo
Miele® G 676. Por cada fregado se utilizaron 20 g de agente para el
fregado; la dureza del agua fue de 16º de dureza alemana.
Como agente para el fregado sirvió la receta
básica siguiente (todos las indicaciones están dadas respectivamente
en porcentaje en peso): 55% de tripolifosfato de sodio (calculado
como anhidro), 4% de disilicato de sodio amorfo (calculado como
anhidro), 22% de carbonato de sodio, 9% de perborato de sodio, 2% de
TAED, 2% de tensioactivo no iónico, resto: agua, colorantes,
perfume. Esta receta de base se combinó para los diversos ensayos
con la misma actividad por medio de las diversas proteasas formadas
por la proteasa alcalina F40 de B. lentus, la
Savinase®, o bien la variante de la proteasa según la invención
constituida por la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B.
lentus, de tal manera, que se estableciese respectivamente una
actividad de 10.000 PE por fregado. Esto correspondía
respectivamente a 0,1 mg aproximadamente de proteína de proteasa
por gramo del concentrado del agente de limpieza.
Tras el fregado se determinó el desprendimiento
de las suciedades A hasta C por gravimetría en porcentaje. Para
ello se relacionaron la diferencia entre el peso del recipiente
ensuciado y fregado a continuación y el peso inicial del recipiente
con respecto a la diferencia de peso del recipiente no fregado con
relación al peso inicial. Esta relación puede considerarse como
desprendimiento en porcentaje. Para la suciedad D se llevó a cabo,
tras el fregado, una evaluación a simple vista según una escala
desde 0 (= invariable, es decir suciedad muy fuerte) hasta 10 (=
ausencia completa de suciedad reconocible). Los resultados obtenidos
se han reunido en la tabla 5 siguiente. Las indicaciones en la
misma corresponden al valor medio de, respectivamente, 9
mediciones. Éstos permiten una deducción inmediata de la
contribución del enzima obtenido sobre el rendimiento de limpieza
del agente empleado.
Estos resultados muestran que la proteasa
alcalina S3T/V4I/N199I/L211G de B. lentus, según la
invención, sobrepasa a las otras proteasas ensayadas en lo que se
refiere a su contribución al rendimiento de limpieza en los agentes
para el fregado a máquina de la vajilla, siendo, al menos,
equivalente; y esto ya con una actividad empleada comparativamente
menor.
Ejemplo
5
Como en el ejemplo precedente se aplicaron a los
recipientes, de manera normalizada, las mismas suciedades y se
fregaron de la misma manera respectivamente con las mismas recetas
de los agentes de limpieza. La única diferencia consistía en que se
emplearon respectivamente 20.000 PE de las proteasas
correspondientes. Esto correspondía respectivamente a 0,2 mg
aproximadamente de proteasa en el concentrado de agente de limpieza.
Los resultados de las medidas obtenidos de la misma manera que en
el ejemplo 4, se han reunido en la tabla 6 siguiente.
\global\parskip1.000000\baselineskip
También cuando se emplean actividades mayores de
proteasa se observa la mayor contribución de la proteasa según la
invención al rendimiento total de limpieza del agente
correspondiente frente a las proteasas, establecidas para el
fregado a máquina de la vajilla, constituidas por la proteasa
alcalina F49 de B. lentus y la Savinase®.
Figura 1: Alineación de las secuencias de
aminoácidos de las variantes de las proteasas alcalinas de B.
lentus con las subtilisinas más importantes, respectivamente en
la forma madura, es decir en la forma procesada.
En este caso significa:
- variante según la invención
- la variante según la invención de la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B. lentus;
- Subtilisina 309
- la subtilisina procedente de Bacillus lentus según la publicación WO 89/06279;
- Subtilisina PB92
- la subtilisina procedente de Bacillus nov. spec. 92 según la publicación EP 283075;
Subtilisina de Carlsberg (1968) la
subtilisina procedente de Bacillus licheniformis según la
publicación de E. L. Smith et al. J. Biol. Chem., volumen
243, páginas
2184-2191;
- Subtilisina BPN'
- la subtilisina procedente de Bacillus amyloliquefaciens según la publicación de J. A. Wells et al. (1983), Nucleic Acids Research, volumen 11, páginas 7911-7925;
- Consenso
- las posiciones coincidentes en la mayoría de las secuencias indicadas.
\vskip1.000000\baselineskip
Figura 2: Vector de mutagénesis pUC18M131. El
fragmento Bam HI - Sac I, mostrado en la SEQ ID NO.
1, se extiende desde las posiciones 1 hasta 1771; las regiones
restantes del vector son idénticas a las del plásmido de partida
pUC18 (Amersham Pharmacia Biotech, Freiburg).
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> Henkel Kommanditgesellschaft auf
Aktien
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Nuevas variantes de proteasas
alcalinas y agentes de lavado y de limpieza que contienen estas
nuevas variantes de proteasas alcalinas
\vskip0.400000\baselineskip
<130> H 4727 PCT
\vskip0.400000\baselineskip
<140>
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
\vskip0.400000\baselineskip
<150> DE 10121463.4-41
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2001-05-02
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn Ver. 2.1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1773
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Bacillus licheniformis ATCC
68614
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (233)..(1375)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> mat_peptide
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (566)..(1375)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 380
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Bacillus licheniformis ATCC
68614
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1143
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Proteasa alcalina
S3T/V4I/V199I/L211G de Bacillus lentus
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1143)
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> mat_peptide
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (334)..(1143)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 380
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Proteasa alcalina
S3T/V4I/V199I/L211G de Bacillus lentus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (35)
1. Proteasa alcalina, del tipo subtilisina,
caracterizada porque presenta isoleucina en la posición 199 y
glicina en la posición 211, según la enumeración de la subtilisina
procedente de Bacillus lentus DSM 5483 y, además, presenta
uno de los aminoácidos correspondientes a la treonina, en la
posición 3, o a la isoleucina, en la posición 4.
2. Proteasa alcalina, del tipo subtilisina,
según la reivindicación 1, caracterizada porque presenta
treonina en la posición 3, isoleucina en la posición 4, isoleucina
en la posición 199 y glicina en la posición 211, según la
enumeración de de subtilisina procedente de Bacillus lentus
DSM 5483.
3. Proteasa alcalina según una de las
reivindicaciones 1 a 2, caracterizada porque es una
subtilisina formada, de manera natural, por un Bacillus,
especialmente por Bacillus lentus, o derivada de un Bacillus
de este tipo.
4. Proteasa alcalina según la reivindicación 3,
caracterizada porque es una subtilisina formada de manera
natural por Bacillus lentus DSM 5483, o derivada del
mismo.
5. Proteasa alcalina según la reivindicación 4,
constituida por la proteasa alcalina S3T/V4I/V199I/L211G de B.
lentus, según la secuencia de aminoácidos indicada en la figura
1 (variante según la invención).
6. Proteasa alcalina según una de las
reivindicaciones 1 a 5, derivada de una proteasa según una de las
reivindicaciones 1 a 5, especialmente por fragmentación o mediante
mutagénesis por deleción, mediante mutagénesis por inserción,
mediante mutagénesis por substitución o mediante fusión de, al meno,
una parte con, al menos, otra proteína, manteniéndose las
mutaciones puntuales citadas en la misma.
7. Proteasa alcalina según una de las
reivindicaciones 1 a 6, caracterizada porque está
adicionalmente derivatizada, especialmente por medio de una
modificación química, por copulación con compuestos químicos debajo
peso molecular o de alto peso molecular y/o mediante asociación con
otros productos.
8. Proteasa alcalina según la reivindicaciones 6
o 7, caracterizada porque presenta una actividad proteolítica
acrecentada con respecto a la de la molécula de partida o bien con
respecto ala de la molécula no derivatizada y, de manera muy
especialmente preferente presenta un rendimiento mejorado.
9. Proteasa alcalina según una de las
reivindicaciones 6 a 8, caracterizada porque está
estabilizada adicionalmente, especialmente por medio de la
preparación conjunta con otros productos, en particular con
inhibidores de la proteasa, mediante la formación de una proteína
de fusión con un inhibidor de la proteasa, por medio de mutaciones
estabilizantes y/o por medio de copulación con un polímero.
10. Ácido nucleico, que codifica una de las
proteasas citadas en las reivindicaciones 1 a 9.
11. Ácido nucleico, que codifica una proteasa de
subtilisina, cuya secuencia de nucleótidos coincide con la
secuencia de nucleótidos dada en la SEQ ID NO. 3, especialmente en
la regiones que codifican la 199 isoleucina y la 211 glicina y, de
una manera muy especial, en las regiones que codifican la 3
treonina, la 4 isoleucina, la 199 isoleucina y la 211 glicina
12. Vector, que contienen una región de ácidos
nucleicos citada en las reivindicaciones 10 u 11.
13. Vector de clonación según la reivindicación
12.
14. Vector de expresión según la reivindicación
12, que posibilita, especialmente, la biosíntesis de una de las
proteasas citadas en las reivindicaciones 1 a 9.
15. Célula, que contiene un vector según una de
las reivindicaciones 12 a 14.
16. Célula huésped, que expresa una de las
proteasas citadas en las reivindicaciones 1 a 9 o que puede
estimularse para su expresión, especialmente mediante el empleo de
un vector de expresión según las reivindicación 14.
17. Célula huésped, según la reivindicación 16,
caracterizada porque es una bacteria, especialmente una que
secreta la proteína formada en el medio circundante.
18. Célula huésped según la reivindicación 17,
caracterizada porque es una bacteria del género Bacillus,
especialmente de las especies Bacillus lentus, Bacillus
licheniformis, Bacillus amyloliquefaciens, Bacillus subtilis o
Bacillus alcalophilus.
19. Célula huésped, según la reivindicación 15 o
16, caracterizada porque es una célula eucariota,
especialmente una que realiza una modificación
post-traducción de la proteína formada.
20. Procedimiento para la obtención de un enzima
proteolítico, según una de las reivindicaciones 1 a 9, con empleo
de una célula huésped, según una de las reivindicaciones 15 a 19 y/o
con empleo de un vector, según una de las reivindicaciones 12 a 14
y/o con empleo de un ácido nucleico, según una de las
reivindicaciones 10 u 11.
21. Agente, caracterizado porque contiene
un enzima proteolítico según una de las reivindicaciones 1 a 9,
especialmente agente de lavado o de limpieza, de manera muy especial
en una cantidad desde 2 \mug hasta 20 mg por g del agente.
22. Agente, según la reivindicación 21,
caracterizado porque contiene, adicionalmente, otros enzimas,
especialmente otras proteasas, amilasas, celulasas, hemicelulasas
y/o lipasas.
23. Agente para el tratamiento de materia primas
para artículos textiles o para el mantenimiento de los artículos
textiles, caracterizado porque contiene un enzima
proteolítico solo o junto con otros componentes activos, según una
de las reivindicaciones 1 a 9, especialmente para fibras o para
artículos textiles con componentes naturales y, de una manera muy
especialmente preferente, con lana o con seda.
24. Procedimiento para la limpieza mecánica de
artículos textiles o de superficies duras, caracterizado
porque se activa un enzima proteolítico, al menos en una de las
etapas de procedimiento, según una de las reivindicaciones 1 a 9,
preferentemente en una cantidad comprendida entre 40 \mug y 4 g,
de forma especialmente preferente comprendida entre 400 \mug y
400 mg por aplicación.
25. Procedimiento para el tratamiento de las
materia primas para artículos textiles o para el mantenimiento de
los artículos textiles, caracterizado porque se activa un
enzima proteolítico, al menos en una de las etapas del
procedimiento, según una de las reivindicaciones 1 a 9,
especialmente para materias primas para artículos textiles o para
artículos textiles con componentes naturales, especialmente para
aquellos que contengan lana o seda.
26. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para la limpieza de artículos
textiles o de superficies duras, preferentemente en una cantidad
comprendida entre 40 \mug y 4 g, de forma especialmente
preferente comprendida entre 400 \mug y 400 mg por aplicación.
27. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para la activación o para la
desactivación de los componentes de los agentes de lavado o de
limpieza.
28. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para el análisis bioquímico o para la
síntesis de compuestos de bajo peso molecular o de proteínas.
29. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para la preparación, para la
purificación o para la síntesis de productos naturales o de
materiales biológicos.
30. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para el tratamiento de materias
primas naturales, especialmente para el tratamiento de superficies,
de manera muy especialmente preferente en un procedimiento para el
tratamiento del cuero.
31. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para la obtención o para el
tratamiento de materiales en bruto o de productos semielaborados en
la fabricación de los artículos textiles, especialmente para el
desprendimiento de las capas protectora existentes sobre los
tejido.
32. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para el tratamiento de materias
primas para artículos textiles o para el mantenimiento de los
artículos textiles, especialmente para el tratamiento de la lana o
de la seda o de artículos textiles mixtos, que contengan lana o
seda.
33. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para el tratamiento de películas
fotográficas, especialmente para el desprendimiento de las capas
protectoras de tipo gelatinoso, o similares.
34. Empleo de un enzima proteolítico, según una
de las reivindicaciones 1 a 9 para la fabricación de artículos
comestibles o de piensos para animales.
35. Productos cosméticos con un enzimas
proteolítico, según una de las reivindicaciones 1 a 9 o
procedimientos cosméticos con incorporación de un enzima
proteolítico, según una de las reivindicaciones 1 a 9, o el empleo
de un enzima proteolítico, según una de las reivindicaciones 1 a 9,
con fines cosméticos, especialmente en el ámbito de un
procedimiento correspondiente o en agentes correspondientes.
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