ES2229016T3 - Proteina que aumenta la supervivencia de celulas fotorreceptoras bastones y el acido nucleico que la codifica. - Google Patents
Proteina que aumenta la supervivencia de celulas fotorreceptoras bastones y el acido nucleico que la codifica.Info
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Abstract
Ácido nucleico que codifica un polipéptido con la secuencia aminoacídica de tamaño completo que se muestra en la Figura 2, o una forma secretada natural de dicho polipéptido, o el complemento de dicho ácido nucleico.
Description
Proteína que aumenta la supervivencia de células
fotorreceptoras bastones y el ácido nucleico que la codifica.
La presente invención hace referencia en general
a la identificación y aislamiento de un nuevo DNA y a la producción
recombinante de polipéptidos nuevos codificados por dicho DNA.
Las proteínas extracelulares juegan un papel
importante en la formación, diferenciación y mantenimiento de
organismos multicelulares. El destino de muchas células
individuales, p.ej., su proliferación, migración, diferenciación o
interacción con otras células está gobernado generalmente por la
información recibida de otras células y/o el entorno inmediato. Esta
información, a menudo se transmite por polipéptidos secretados (por
ejemplo, factores mitogénicos, factores de supervivencia, factores
citotóxicos, factores de diferenciación, neuropéptidos y hormonas)
que, a su vez, son recibidos e interpretados por diversos receptores
celulares o proteínas unidas a membrana. Estos polipéptidos
secretados o moléculas de señalización tras su secreción por la
célula de forma específica alcanzan su sitio de acción en el entorno
extracelular.
Las proteínas secretadas tienen diversas
aplicaciones industriales, incluyendo las farmacéuticas,
diagnósticas, los biosensores y los bioreactores. La mayoría de
fármacos proteicos disponibles en la actualidad, como los agentes
trombolíticos, los interferones, las interleucinas, las
eritropoyetinas, los factores estimulantes de la formación de
colonias y diversas otras citocinas, son proteínas de secreción. Sus
receptores, que son proteínas de membrana, también tienen un
potencial como agentes terapéuticos o diagnósticos. Se han
realizado numerosos esfuerzos, tanto en la industria como en el
ámbito académico para identificar nuevas proteínas de secreción.
Muchos de los esfuerzos se han concentrado en el rastreo de
librerías de DNA recombinante de mamífero para identificar
secuencias codificantes de nuevas proteínas secretadas. En la
literatura se describen diversos ejemplos de procedimientos y
técnicas de rastreo [véase por ejemplo, Klein y col., Proc. Natl.
Acad. Sci., 93:7108-7113 (1996); patente americana
U.S. 5.536.637)].
Las proteínas unidas a membrana y los receptores
pueden desempeñar una importante función en la formación,
diferenciación y mantenimiento de los organismos multicelulares. El
destino de muchas células individuales, p.ej., su proliferación,
migración, o interacción con otras células está gobernado en general
por la información recibida de otras células y/o el entorno
inmediato. Esta información, a menudo se transmite por polipéptidos
secretados (por ejemplo, factores mitogénicos, factores de
supervivencia, factores citotóxicos, factores de diferenciación,
neuropéptidos y hormonas) que, a su vez, son recibidos e
interpretados por diversos receptores celulares o proteínas unidas a
membrana. Dichas proteínas unidas a membrana y receptores celulares
incluyen, pero no se limitan a, los receptores de citocinas, los
receptores quinasas, los receptores fosfatasas, los receptores
implicados en las interacciones célula-célula y las
moléculas de adhesión como las selectinas e integrinas. Por ejemplo,
la transducción de señales que regulan el crecimiento y la
diferenciación celular está regulada en parte por la fosforilación
de diversas proteínas celulares. Las
protein-tirosina quinasas, enzimas que catalizan
dicho proceso, también pueden actuar como receptores de factores de
crecimiento. Se incluyen como ejemplos el receptor del factor de
crecimiento de fibroblastos y el factor de crecimiento nervioso.
Las proteínas unidas a membrana y las moléculas
de receptor tienen diversas aplicaciones industriales, por ejemplo,
como agentes farmacéuticos y diagnósticos. Los receptores
inmunoadhesinas, por ejemplo, pueden utilizarse como agentes
terapéuticos para bloquear la interacción con el
receptor-ligando. Las proteínas unidas a membrana
también pueden utilizarse para el rastreo de inhibidores potenciales
de moléculas pequeñas o de péptidos de la interacción relevante
receptor/ligando. Se han realizado esfuerzos tanto en la
investigación industrial como académica para identificar nuevas
proteínas receptoras nativas. Muchos esfuerzos se han centrado en el
rastreo de librerías de DNA recombinantes para identificar las
secuencias codificantes de nuevas proteínas receptoras.
En la presente invención se describe la
identificación y la caracterización de nuevos polipéptidos de
secreción y transmembrana, así como los nuevos ácidos nucleicos que
los codifican.
CD24 es una proteína que se halla asociada a la
superficie celular de un gran número de células distintas del
sistema inmune de mamíferos, incluyendo por ejemplo, los
neutrófilos, los monocitos y algunos linfocitos, por ejemplo, los
linfocitos B. Se ha demostrado que CD24 es un ligando para la
glicoproteína P-selectina asociada a la superficie
de plaquetas (también conocida como proteína granular de
membrana-140 o GMP-140), una
glicoproteína que se sintetiza constitutivamente tanto en plaquetas
como en células endoteliales y queda expuesta en la superficie de
las plaquetas cuando se activan dichas células. De este modo, la
P-selectina media la adhesión dependiente de calcio
de las plaquetas activadas y de las células endoteliales con
diversas células del sistema inmune que expresan uno o más ligandos
para la molécula P-selectina, en particular CD24.
Este mecanismo permite el reclutamiento de células del sistema
inmune en localizaciones donde más se las necesita, por ejemplo, el
lugar de una lesión. En consecuencia, es de crucial interés
identificar polipéptidos nuevos que presenten homología con los
antígenos de superficie celular de las células del sistema inmune.
Se describe aquí la identificación y caracterización de un nuevo
polipéptido que tiene homología con la proteína CD24, en donde
dicho nuevo polipéptido se denomina PRO617.
Los solicitantes han identificado un clon de cDNA
que codifica un nuevo polipéptido con homología para CD24, y en
donde dicho polipéptido se denomina en la presente solicitud como
"PRO617".
En una realización, tal como se define en las
reivindicaciones, la invención proporciona una molécula de ácido
nucleico que comprende el DNA que codifica un polipéptido PRO617. En
un aspecto de la invención, el ácido nucleico que comprende el DNA
que codifica el polipéptido PRO617 tiene los residuos aminoacídicos
1 a 67 de la Figura 2 (SEC ID Nº 2), o es el complemento de dicha
secuencia de ácido nucleico y permanece unida de forma estable en
condiciones de astringencia moderada y opcionalmente elevada. La
secuencia de ácido nucleico aislado puede comprender el inserto del
cDNA del vector DNA48309-1280, depositado el 5 de
marzo de 1998 como ATCC 209656, que incluye la secuencia
nucleotídica que codifica PRO617.
En otra realización, también definida en las
reivindicaciones, la invención proporciona el polipéptido PRO617
aislado. En particular, la invención proporciona la secuencia
nativa aislada del polipéptido PRO617, el cual en una realización,
incluye una secuencia aminoacídica que comprende los residuos 1 a
67 de la Figura 2 (SEC ID Nº 2). Opcionalmente, el polipéptido
PRO617 se obtiene o es obtenible expresando el polipéptido
codificado por el inserto de cDNA del vector
DNA48309-1280, depositado el 5 de marzo de 1998 como
ATC 209656.
En otras realizaciones de la presente invención,
la invención proporciona los vectores tal como se define en las
reivindicaciones que comprenden el DNA que codifica los
polipéptidos PRO617. También se proporciona una célula huésped que
comprende cualquiera de dichos vectores. A modo de ejemplo, las
células huésped pueden ser células CHO, E. coli o levaduras.
Se proporciona además un proceso para la producción de polipéptidos
PRO617, tal como se define en las reivindicaciones y comprende las
células huésped en condiciones adecuadas para la expresión y
recuperación del polipéptido PRO617 del cultivo celular.
En otras realizaciones, la invención proporciona
moléculas quiméricas, tal como se define en las reivindicaciones,
que comprenden los polipéptidos PRO617 fusionados con un
polipéptido o secuencia aminoacídica heteróloga. Un ejemplo de una
tal molécula comprende un polipéptido PRO617 fusionado a una
secuencia de etiqueta epitópica o a una región Fc de una
inmunoglobulina.
En otra realización, la invención proporciona una
anticuerpo, tal como se define en las reivindicaciones, que se une
específicamente a un polipéptido PRO617. Opcionalmente, el
anticuerpo es un anticuerpo monoclonal.
La Figura 1 muestra una secuencia nucleotídica
(SEC ID Nº 1) de una secuencia nativa correspondiente al cDNA de
PRO617, en donde la SEC ID Nº 1 es un clon denominado aquí como
"UNQ353" y/o "DNA48309-1280".
La Figura 2 muestra la secuencia aminoacídica
(SEC ID Nº 2) derivada de la secuencia codificante de la SEC ID Nº
1, mostrada en la Figura 1.
Los términos "polipéptido PRO" y "PRO",
tal como se usan aquí, y cuando van seguidos inmediatamente por una
designación numérica se refieren a varios polipéptidos, en donde la
designación completa (es decir, PRO/número) se refiere a secuencias
polipeptídicas específicas como se describe aquí. Los términos
"PRO/número polipéptido" y "PRO número" tal como se usan
aquí comprenden secuencias polipeptídicas nativas y variantes
polipeptídicas (que se definen con más en profundidad más
adelante). Los polipéptidos PRO descritos aquí pueden aislarse de
una variedad de fuentes, tales como tejidos humanos o de otra fuente
o preparados mediante métodos de recombinación o sintéticos.
Una "secuencia nativa de un polipéptido PRO"
comprende un polipéptido que tiene la misma secuencia aminoacídica
que el correspondiente polipéptido PRO natural. Dicha secuencia
nativa de polipéptidos PRO puede aislarse a partir de la naturaleza
o puede producirse mediante métodos recombinantes o sintéticos. El
término "secuencia nativa de polipéptido PRO" comprende
específicamente las formas truncadas normales en la naturaleza o las
formas secretadas de un polipéptido PRO específico (p.ej., una
secuencia de un dominio extracelular), formas variantes normales en
la naturaleza (p.ej., formas procedentes de ayuste alternativo) y
variantes alélicas del polipéptido normales en la naturaleza. En
diversas realizaciones de la invención, la secuencia nativa del
polipéptido PRO617 es una secuencia nativa madura o completa del
polipéptido PRO617 que comprende los aminoácidos del 1 al 67 de la
Figura 2 (SEC ID NO:2).
El "dominio extracelular" del polipéptido
PRO o "ECD" se refiere a una forma del polipéptido PRO que
esencialmente está libre de los dominios transmembrana y
citoplasmático. Ordinariamente, un ECD de un polipéptido PRO tendrá
menos de un 1% de dichos dominios transmembrana y/o citoplasmáticos
y preferentemente, tendrá menos de un 0,5% de dichos dominios.
Deberá entenderse que cualquier dominio transmembrana identificado
para los polipéptidos PRO de la presente invención se identifican
según lo acordado con el criterio rutinariamente empleado en la
materia para identificar ese tipo de dominio hidrofóbico. Los
límites exactos de un dominio transmembrana pueden variar pero no
más de alrededor de 5 aminoácidos en cualquier extremo del dominio
como inicialmente se identificó. Opcionalmente, por tanto, un
dominio extracelular de un polipéptido PRO puede contener alrededor
de 5 o menos aminoácidos en cada uno de los extremos del dominio
transmembrana como inicialmente se identificó.
"Variante de un polipéptido PRO" significa
un polipéptido PRO activo como se definió anteriormente o más
adelante que tiene al menos un 80% de identidad en la secuencia
aminoacídica con la secuencia nativa completa del polipéptido PRO,
tal como se describe aquí. Dichas variantes de polipéptido PRO
incluyen, por ejemplo, polipéptidos PRO en donde uno o más residuos
aminoacídicos se añaden o eliminan, en el extremo N- o C- terminal
de la secuencia aminoacídica nativa completa. Ordinariamente, una
variante de un polipéptido PRO tendrá al menos un 80% de identidad
de secuencia aminoacídica, preferentemente al menos un 85% de
identidad de secuencia aminoacídica, e incluso más preferiblemente
al menos alrededor de un 90% de identidad de secuencia
aminoacídica, incluso más preferentemente al menos un 91% de
identidad de secuencia aminoacídica, incluso más preferentemente al
menos alrededor de un 93% de identidad de secuencia de aminoácidos,
incluso más preferentemente al menos alrededor de un 94% de
identidad de secuencia de aminoácidos, incluso más preferentemente
al menos alrededor de un 95% de identidad de secuencia de
aminoácidos, todavía más preferentemente al menos alrededor de un
96% de identidad de secuencia de aminoácidos, todavía más
preferentemente al menos alrededor de un 97% de identidad de
secuencia de aminoácidos, todavía más preferentemente al menos
alrededor de un 98% de identidad de la secuencia de aminoácidos, y
más preferentemente al menos alrededor de un 99% de identidad de
secuencia de aminoácidos con la secuencia de aminoácidos de la
secuencia aminoacídica nativa completa tal y como se describe
aquí.
El "Porcentaje (%) de identidad de secuencia
aminoacídica" con respecto a las secuencias del polipéptido PRO
identificadas aquí, se define como el porcentaje de residuos
aminoacídicos en una secuencia candidata que son idénticos a los
residuos de aminoácidos en la secuencia específica del polipéptido
PRO, después de alinear las secuencias e introducir huecos, si
fuera necesario, para conseguir el máximo porcentaje de identidad
de secuencia, y sin considerar ninguna substitución conservadora
como parte de la identidad de secuencia. Se pueden realizar
alineamientos con el objetivo de determinar el porcentaje de
identidad en la secuencia aminoacídica de maneras diversas que están
dentro del ámbito de la materia, por ejemplo, usando programas
disponibles públicamente tales como los programas BLAST,
BLAST-2, ALIGN o Megalign (DNASTAR). El programa de
alineamiento preferido es el BLAST. Los expertos en la materia
pueden determinar los parámetros adecuados para medir el
alineamiento, incluyendo cualquier algoritmo necesario para
conseguir el máximo alineamiento a lo largo de la totalidad de las
secuencias que están comparándose. Los valores de % de identidad
usados aquí se han generado con el programa de ordenador
WU-BLAST-2 (Altschul y col., Methods
in Enzymology 266:460-480
(1996);http://blast.wustl/edu/blast/README.html). La mayoría de los
parámetros de búsqueda del
WU-BLAST-2 se ajustan a los valores
por defecto. Los parámetros ajustables se ajustan con los valores
siguientes: tramo de solapamiento = 1, fracción de solapamiento =
0,125 valor umbral(T) = 11 y puntuación de matriz =
BLOSUM62. Los parámetros HSP S y HSP S2, que son valores dinámicos
usados por el BLAST-2, los establece el propio
programa dependiendo de la composición de la secuencia de interés y
de la composición del banco de datos con el que se está comparando
la secuencia. Sin embargo, los valores pueden ajustarse para
aumentar la sensibilidad. Un valor en % de identidad de secuencia
se determina por la fracción de residuos idénticos dividido por el
número total de residuos en la región alineada.
"Porcentaje (%) de identidad de secuencia
nucleotídica" con respecto a las secuencias de ácidos nucleicos
que codifican PRO e identificadas aquí se define como el porcentaje
de nucleótidos que en una secuencia candidata son idénticos a los
nucleótidos en las secuencia de ácidos nucleicos del PRO de interés,
después de alinear las secuencias e introducir huecos, si es
necesario, para conseguir el máximo porcentaje de identidad de
secuencia. Pueden realizarse alineamientos con el propósito de
determinar el porcentaje de identidad de una secuencia nucleica de
diversas maneras, que se hallan dentro del ámbito de la materia,
por ejemplo, usando programas disponibles públicamente como los
programas BLAST, BLAST-2, ALIGN o Megalign
(DNASTAR). Los expertos en la materia pueden determinar los
parámetros adecuados para medir el alineamiento, incluyendo
cualquier algoritmo necesario para conseguir el máximo alineamiento
a lo largo de la totalidad de las secuencias que están comparándose.
Los valores de identidad usados aquí se generan mediante el módulo
BLASTN del WU-BLAST-2 fijado a los
parámetros por defecto, con tramo de solapamiento y fracción de
solapamiento fijados a 1 y 0,125 respectivamente.
El término "positivos", en el contexto de la
comparación de secuencias realizado tal y como se describe arriba,
incluye residuos en las secuencias comparadas que no son idénticos
pero tienen propiedades similares (p. ej., como resultado de
substituciones conservadoras). El valor de % de positivos se
determina a través de la fracción de residuos que puntúan un valor
positivo en la matriz BLOSUM 62 dividido por el número total de
residuos en la región alineada, tal como se define
anteriormente.
El término epitopo etiquetado se refiere aquí a
un polipéptido quimérico que comprende el polipéptido PRO, o un
dominio de su secuencia, fusionado con un "polipéptido
etiqueta". El polipéptido etiqueta tiene suficientes residuos
para proporcionar un epitopo contra el que se puede generar un
anticuerpo, o que puede ser identificado por algún otro agente,
pero es suficientemente corto como para no interferir en la
actividad del polipéptido PRO de interés. El polipéptido etiqueta
preferentemente es bastante único de forma que el anticuerpo no
reacciona substancialmente de forma cruzada con otros epitopos. Los
polipéptidos etiqueta apropiados generalmente tienen al menos seis
residuos de aminoácidos y usualmente alrededor de entre 8 y 50
residuos aminoacídicos (preferentemente entre 10 y 20
residuos).
"Aislado", cuando se usa para describir
varios polipéptidos usados aquí, significa aquél polipéptido que ha
sido identificado y separado y/o recuperado de un componente de su
entorno natural. Los componentes contaminantes de su entorno
natural son materiales que típicamente interferirían con los usos
diagnósticos o terapéuticos del polipéptido, y pueden incluir
enzimas, hormonas, y otros solutos de naturaleza proteica o no
proteica. En las realizaciones preferidas, el polipéptido será
purificado (1) en un grado suficiente para obtener al menos 15
residuos de la secuencia aminoacídica N-terminal o
interna mediante el uso de un secuenciador de spinning cup,
o(2) a homogeneidad mediante SDS-PAGE bajo
condiciones no reductoras o reductoras usando azul de Comassie o,
preferentemente, tinción con plata. El aislamiento del polipéptido
incluye el polipéptido aislado en células recombinantes, en los que
al menos un componente del entorno natural del polipéptido PRO no
estará presente. Habitualmente, sin embargo, el polipéptido aislado
se preparará mediante al menos una etapa de purificación.
Un ácido nucleico que codifica para un
polipéptido PRO "aislado" es una molécula de ácido nucleico que
se identifica y separa de al menos una molécula contaminante de
ácido nucleico con la cual está asociado habitualmente en la fuente
natural del ácido nucleico del polipéptido PRO. Una molécula de
ácido nucleico de un polipéptido PRO aislado es aquella cuya forma
es distinta de la que se encuentra en la naturaleza. Las moléculas
de ácido nucleico para un polipéptido PRO aislado se distinguen,
por tanto, de la molécula de ácido nucleico del polipéptido PRO
específico ya que existe en células naturales. Sin embargo, una
molécula de ácido nucleico para un polipéptido PRO incluye
moléculas de ácido nucleico para el polipéptido PRO contenidas en
las células que ordinariamente expresan el polipéptido PRO en donde,
por ejemplo, la molécula de ácido nucleico se encuentra en una
localización cromosómica diferente de la de las células
naturales.
El término "secuencias control" hace
referencia a secuencias de DNA necesarias para la expresión de una
secuencia codificante unida operativamente en un organismo huésped
particular. Las secuencias control que son adecuadas para
procariotas, por ejemplo, incluyen un promotor, opcionalmente una
secuencia operadora, y un sitio de unión al ribosoma. Las células
eucariotas utilizan promotores, señales de poliadenilación e
intensificadores.
El ácido nucleico está "unido
operativamente" cuando está situado en una relación funcional
con otra secuencia de ácido nucleico. Por ejemplo, el DNA para una
presecuencia o un líder secretor está unido operativamente al DNA
correspondiente a un polipéptido si se expresa como una preproteína
que participa en la secreción del polipéptido; un promotor o un
intensificador está unido operativamente a una secuencia
codificante si afecta a la transcripción de la secuencia; o un sitio
de unión al ribosoma está unido operativamente a una secuencia
codificante si está situado de manera que facilite la traducción.
Generalmente "unido operativamente" significa que las
secuencias de DNA que están unidas son contiguas, y, en el caso de
un líder secretor, contiguo y en la misma pauta de lectura. Sin
embargo, los intensificadores no tienen porqué ser contiguos. La
unión se consigue mediante ligación en dianas de restricción
adecuadas. Si tales dianas no existen, se usan adaptadores o
engarces de oligonucleótidos sintéticos según prácticas
convencionales.
El término "anticuerpo" se usa en el sentido
más amplio de la palabra y abarca específicamente anticuerpos
monoclonales contra un solo polipéptido PRO (incluyendo agonistas,
antagonistas y anticuerpos de neutralización) y composiciones de
anticuerpos anti-polipéptido PRO con especificidad
poliepitópica. El término "anticuerpo monoclonal" tal y como
se usa aquí se refiere a un anticuerpo obtenido de una población de
anticuerpos substancialmente homogéneos, es decir, los anticuerpos
individuales que comprenden la población son idénticos excepto por
posibles mutaciones naturales que puedan estar presentes en
cantidades inferiores.
"Activo" o "actividad" para los
objetivos de esta invención se refiere a forma(s) del
polipéptido PRO que retienen la actividad biológica y/o
inmunológica del polipéptido PRO nativo o natural.
"Tratamiento" se refiere tanto al
tratamiento terapéutico como a las medidas profilácticas o
preventivas. Aquellos con necesidad de tratamiento incluyen los que
ya presentan el trastorno, como los propensos a padecerlo.
"Mamífero" para los propósitos de
tratamiento se refiere a cualquier animal clasificado como mamífero,
incluyendo humanos, animales domésticos, de granja y del zoo, de
competición deportiva o mascotas tales como ovejas, perros,
caballos, gatos, vacas, y similar. Preferentemente, el mamífero aquí
es un humano.
"Vehículos", tal y como se usa aquí, incluye
los vehículos, excipientes o estabilizantes farmacéuticamente
aceptables que no son tóxicos para la célula o el mamífero que se
está exponiendo al mismo a las dosis y concentraciones empleadas. A
menudo, el vehículo fisiológicamente aceptable es una solución
acuosa tamponada. Entre los ejemplos de vehículos fisiológicamente
aceptables se incluyen tampones como el fosfato, citrato y otros
ácidos orgánicos; antioxidantes incluyendo ácido ascórbico;
polipéptidos de bajo peso molecular (menos de 10 residuos);
proteínas, como albúmina sérica, gelatina o inmunoglobulinas;
polímeros hidrofílicos como la polivinilpirrolidona; aminoácidos
como la glicina, la glutamina, la asparraguina, la arginina o la
lisina; monosacáridos, disacáridos y otros carbohidratos, incluyendo
glucosa, manosa, o dextrinas; agentes quelantes como el EDTA;
alcoholes de azúcares como el manitol o el sorbitol; iones que
forman sales como el sodio; y/o tensoactivos no iónicos como el
TWEEN,^{TM} el polietilénglicol (PEG) y el PLURONICS^{TM}.
El término "agonista" se usa para referirse
a análogos peptídicos y no peptídicos de los polipéptidos PRO
nativos (en donde polipéptido PRO nativo se refiere a un
pro-polipéptido PRO, un
pre-polipéptido PRO, un
prepro-polipéptido PRO o un polipéptido PRO maduro)
de la presente invención y a los anticuerpos que específicamente se
unen a dichos polipéptidos PRO nativos; debido a que retienen al
menos una actividad biológica de un polipéptido PRO nativo.
Preferentemente, los agonistas de la presente invención retienen las
propiedades cualitativas de reconocimiento de unión y las
propiedades de activación del receptor del polipéptido PRO
nativo.
El término "antagonista" se usa aquí para
referirse a una molécula que inhibe una actividad biológica de un
polipéptido PRO nativo de la presente invención en donde el
polipéptido PRO nativo se refiere a un
pro-polipéptido PRO, un
pre-polipéptido PRO, un
prepro-polipéptido PRO o un polipéptido PRO maduro.
Preferentemente, los antagonistas aquí inhiben la unión de un
polipéptido PRO nativo de la presente invención a una pareja de
unión. Un "antagonista" del polipéptido PRO es una molécula
que previene, o interfiere con, una función efectora antagonista PRO
(p.ej., una molécula que previene o interfiere con la unión y/o
activación del polipéptido PRO a un receptor del polipéptido PRO.).
Dichas moléculas pueden ser cribadas por su capacidad para inhibir
competitivamente la activación del receptor del polipéptido PRO
mediante la monitorización de la unión de un polipéptido PRO
nativo en presencia y ausencia de la molécula antagonista a
analizar. Un antagonista de la invención incluye también un
polinucleótido antisentido contra el gen del polipéptido PRO,
polinucleótido antisentido que bloquea la transcripción o
traducción del gen del polipéptido PRO, de ese modo inhibe su
expresión y su actividad biológica.
La "astringencia" de las reacciones de
hibridación se determina fácilmente por los expertos en la materia
y generalmente es un cálculo empírico que depende de la longitud de
la sonda, la temperatura de lavado, y la concentración de sales. En
general las sondas más largas requieren temperaturas más altas para
que la hibridación sea adecuada, mientras que las sondas más cortas
necesitan temperaturas más bajas. La hibridación generalmente
depende de la capacidad del DNA desnaturalizado para rehibridarse
cuando las cadenas complementarias están presentes en un entorno
por debajo de sus temperaturas de fusión. Cuanto mayor es el grado
de homología deseado entre la sonda y la secuencia a hibridar,
mayor es la temperatura relativa que puede usarse. Como resultado,
se deriva que temperaturas relativas más altas tenderían a hacer las
condiciones de reacción más astringentes, mientras que temperaturas
más bajas lo serían menos. Para detalles y explicaciones sobre la
astringencia de las reacciones de hibridación véase Ausubel y col.,
Current Protocols in Molecular Biology, Wiley Interscience
Publishers, (1995).
"Condiciones de astringencia" significa (1)
emplear fuerzas iónicas bajas y temperaturas altas para el lavado,
por ejemplo cloruro sódico 0,015M/citrato sódico 0,0015M/dodecil
sulfato sódico 0,1% a 50ºC, o (2) emplear un agente
desnaturalizante durante la hibridación, como por ejemplo formamida
al 50% (vol/vol) con albúmina sérica bovina al 0,1%/Ficoll al
0,1%/polivinilpirrolidona al 0,1%/tampón de fosfato sódico 50 nM a
pH 6,5 con cloruro sódico 750 mM, citrato sódico 75 mM a 42ºC. Otro
ejemplo es usar formamida al 50%, 5X de SSC (NaCl 0,75M, citrato
sódico 0,075M), fosfato sódico 50mM (pH 6/8), pirofosfato sódico al
0,1%, solución Denhart 5X, DNA de esperma de salmón sonicado (50
\mug/ml), SDS al 0,1%, y sulfato de dextrano al 10% a 42ºC en SSC
2X y SDS al 0,1%. Otro ejemplo más de hibridación usa un tampón de
sulfato de dextrano al 10%, SSC 2X (cloruro sódico/citrato sódico) y
formamida al 50% a 55ºC, seguido de un lavado a alta astringencia
que consiste en SSC 0,1X conteniendo EDTA a 55ºC.
"Condiciones moderadamente astringentes" se
describen en Sambrook y col., supra, e incluye el uso de una
solución de lavado y de condiciones de hibridación (p.ej.,
temperatura, fuerza iónica y % de SDS) menos astringentes que las
descritas anteriormente. Un ejemplo de condiciones moderadamente
astringentes es una incubación durante la noche a 37ºC en una
solución compuesta por: formamida al 20%, SSC 5X (150 mM de NaCl,
15mM de citrato trisódico), fosfato sódico 50 mM (pH 7,6), solución
Denhart 5X, sulfato de dextrano al 10% y 20 mg/ml de DNA de esperma
de salmón fragmentado y desnaturalizado, seguido de un lavado de los
filtros en SSC 1X a aproximadamente 37-50ºC. El
personal capacitado reconocerá como ajustar la temperatura, la
fuerza iónica, etc., como sea necesario para adaptarse a factores
como la longitud de la sonda y similares.
El "análisis de Southern" o la
"transferencia de Southern" es un método por el cual la
presencia de secuencias de DNA en un DNA digerido con enzimas de
restricción o una composición que contenga DNA se confirma por
hibridación a un oligonucleótido marcado o a un fragmento de DNA
conocidos. El análisis de Southern implica habitualmente la
separación electroforética del DNA digerido en geles de agarosa, la
desnaturalización del DNA después de la separación electroforética y
la transferencia del DNA a un soporte de membrana de nitrocelulosa,
nylon o cualquier otro soporte adecuado para el análisis con una
sonda marcada radioactivamente, biotinilada o marcada
enzimáticamente como se describe en las secciones
9.37-9.52 de Sambrook y col., Molecular Cloning: A
laboratory Manual (New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press,
1989).
El "análisis de Northern" o la
"transferencia de Northern" es un método usado para
identificar secuencias de RNA que hibridan a una sonda conocida como
un oligonucleótido, un fragmento de DNA, un fragmento de su cDNA o
un fragmento de RNA. La sonda se marca con un radioisótopo como
P^{32}, o por biotinilización o enzimáticamente. El RNA que va a
analizarse habitualmente se separa electroforéticamente en gel de
agarosa o poliacrilamida, transferido a una membrana de
nitrocelulosa, nylon, o cualquier otra membrana adecuada, e
hibridada con la sonda, usando técnicas estándar bien conocidas en
el área como las descritas en las secciones
7.39-7.52 de Sambrook y col., supra.
Tal y como se usa aquí, el término
"inmunoadhesina" designa moléculas tipo anticuerpo que combinan
la unión específica a una proteína heteróloga (una
"adhesina") con las funciones efectoras de los dominios
constantes de una inmunoglobulina. Estructuralmente, las
inmunoadhesinas comprenden una fusión entre una secuencia
aminoacídica con la especificidad de unión deseada que no es otra
que los sitios de reconocimiento del antígeno y el sitio de unión de
un anticuerpo (es decir, es "heteróloga"), y la secuencia de
un dominio constante de inmunoglobulina. La región adhesina de una
molécula de inmunoadhesina típicamente es una secuencia aminoacídica
contigua que comprende al menos el sitio de unión de un receptor o
un ligando. La secuencia del dominio constante de inmunoglobulina
en la inmunoadhesina puede obtenerse a partir de cualquier
inmunoglobulina como los subtipos IgG-1,
IgG-2, IgG-3, o
IgG-4, IgA (incluyendo IgA-1 e
IgA-2), IgE, IgD o IgM.
El término administración "crónica" se
refiere a la administración del agente(s) de modo continuo
contrariamente a un modo agudo, para mantener el efecto terapéutico
inicial (actividad) durante un periodo de tiempo prolongado.
Administración "intermitente" es aquel tratamiento que no se
realiza consecutivamente sin interrupción, sino que tiene una
naturaleza cíclica.
La administración "en combinación con" uno o
más agentes terapéuticos incluye la administración simultánea
(concurrente) y consecutiva en cualquier orden.
El término "vector de expresión" se usa para
definir un vector, en el cual un ácido nucleico que codifica para
el polipéptido PRO está unido operativamente a secuencias control
capaces de afectar su expresión en una célula huésped adecuada. Los
vectores habitualmente llevan un sitio de replicación (aunque éste
no es necesario si se produce integración cromosómica). Los
vectores de expresión también incluyen secuencias marcadoras que
son capaces de proporcionar una selección fenotípica en las células
transformadas. Por ejemplo E. coli típicamente se transforma
con PBR322, un plásmido derivado de una especie de E. coli
(Bolivar, y col., Gene 2:95[1977]). El PBR322 contiene genes
que codifican para resistencia a ampicilina y tetraciclina y por
tanto proporciona un método sencillo para identificar las células
transformadas para objetivos de clonaje o expresión. Los vectores
de expresión óptimamente también contendrán secuencias útiles para
el control de la transcripción y la traducción, p.ej., promotores y
secuencias Shine-Dalgarno (para procariotas) o
promotores e intensificadores (para células mamíferas). Los
promotores pueden ser, pero no necesariamente, inducibles; incluso
promotores fuertes constitutivos como el promotor del CMV para
huéspedes mamíferos se ha observado que produce el LHR sin
toxicidad para la célula huésped. Aunque es posible que los
vectores de expresión no necesiten contener ningún control de
expresión, secuencias replicativas o genes de selección, su
ausencia puede dificultar la identificación de transformantes
híbridos y el logro de niveles de expresión elevados de la
inmunoglobulina híbrida.
El término "lipopolisacárido" o "LPS"
se usa aquí como sinónimo de endotoxina. Los lipopolisacáridos (LPS)
son componentes característicos de la membrana externa de bacterias
Gram-negativas, p.ej., Escherichia coli.
Consisten en una parte de polisacárido y una lipídica denominada
lípido A. El polisacárido, que varía de una especie bacteriana a
otra, está compuesto por una cadena específica O (constituida a
base de unidades repetidas de tres a ocho azúcares) y el núcleo de
dos partes. El lípido A virtualmente siempre incluye dos azúcares
de glucosamina modificados por un fosfato y un número variable de
ácidos grasos. Para más información véase, por ejemplo, Rietschel
and Brade, Scientific American Agosto
1992,54-61.
El término "choque séptico" se usa aquí en
el sentido más amplio, incluyendo algunas definiciones descritas en
Bone, Ann. Intern. Med. 114, 332-333 (1991).
Específicamente, el choque séptico comienza con una respuesta
sistémica a la infección, un síndrome llamado sepsis. Cuando este
síndrome resulta en hipotensión y disfunción orgánica, se denomina
choque séptico. El choque séptico puede ser iniciado por organismos
Gram-positivos y hongos, así como por organismos
Gram-negativos que contengan endotoxina. Por
consiguiente, la definición indicada no se limita al "choque por
endotoxina".
Las frases "amplificación génica" y
"duplicación génica" son intercambiables y se refieren a un
proceso por el cual en una célula o línea celular particular se
forman múltiples copias de un gen o de fragmentos de un gen. La
región duplicada (un tramo de DNA amplificado) se denomina
frecuentemente como "amplicón". Habitualmente la cantidad de
RNA mensajero (mRNA) producido, es decir, el nivel de expresión
génica, también aumenta en proporción con el número de copias
hechas del gen particular expresado.
"Tumor" tal y como se usa aquí, se refiere a
todo crecimiento y proliferación celular neoplásico, tanto maligno
o benigno, y a todas las células y tejidos
pre-cancerosos y cancerosos. Los términos
"cáncer" y "canceroso" se refieren a o describen la
condición fisiológica en mamíferos que se caracteriza típicamente
por un crecimiento celular no regulado. Los ejemplos de cáncer
incluyen, aunque no se limitan a, carcinoma, linfoma, blastoma,
sarcoma y leucemia. Ejemplos más particulares de dichos cánceres
incluyen el cáncer de mama, de próstata, de colon, el carcinoma de
las células espinales, el cáncer de pulmón de células pequeñas, el
cáncer de pulmón de células no pequeñas, el cáncer
gastrointestinal, el cáncer de páncreas, el glioblastoma, el cáncer
de cérvix, el cáncer de ovarios, el cáncer hepático, el cáncer de
vejiga, el hepatoma, el cáncer colorectal, el carcinoma de
endometrio, el carcinoma de glándulas salivares, el cáncer de
riñón, el cáncer de vulva, el cáncer de tiroides, el carcinoma
hepático, y varios tipos de cáncer de cabeza y cuello.
El término "agente citotóxico" tal y como se
usa aquí se refiere a una substancia que inhibe o previene la
función de las células y/o que causa destrucción celular. El
término incluye isótopos radioactivos (p.ej., I^{131}, I^{125},
Y^{90}, y Re^{186}), agentes quimioterapéuticos, y toxinas como
toxinas activas enzimáticamente de origen bacteriano, fúngico, de
plantas o animales, o sus fragmentos.
Un "agente quimioterapéutico" es un
compuesto químico útil para el tratamiento del cáncer. Entre los
ejemplos de agentes quimioterapéuticos se incluyen adriamicina,
doxorrubicina, epirrubicina, 5-fluorouracil,
arabinósido de citosina ("Ara-C"),
ciclofosfamida, tiotepa, busulfan, taxoides, p.ej., paclitaxel
(Taxol, Bristol-Myers Squibb Oncology, Princeton,
NJ) y doxetaxel (Taxotere®, Rhone-Poulenc Rorer,
Antony, France), taxotere, metotrexato, cisplatino, melfalan,
vinblastina, bleomicina, etopósido, ifosmamida, mitomicina C,
mitoxantrone, vincristina, vinorelbina, carboplatino, tenipósido,
daunomicina, carminomicina, aminopterina, dactinomicina,
mitomicinas, esperamicinas (véase patente americana US 4.675.187),
melfalan y otras mostazas nitrogenadas relacionadas. También se
incluyen en esta definición agentes hormonales que regulan o
inhiben la acción de hormonas sobre tumores como tamoxifeno y
onapristona.
Un "agente inhibidor del crecimiento" cuando
se usa aquí se refiere a un compuesto o composición que inhibe el
crecimiento de una célula, especialmente una célula cancerosa que
sobreexprese cualquiera de los genes identificados aquí, tanto
in vitro como in vivo. Por tanto, el agente inhibidor
del crecimiento es aquel que reduce significativamente el
porcentaje de células que sobreexpresan dichos genes en fase S.
Entre los ejemplos de inhibidores del crecimiento se incluyen
agentes que bloquean la progresión del ciclo (en otra fase distinta
de la fase S), como aquellos agentes que inducen la quiescencia
celular en fase G1 y M. Entre los agentes que clásicamente bloquean
la fase M se incluyen las vincas (vincristina y vinblastina), el
taxol, e inhibidores de la topo II como la doxorrubicina,
epirrubicina, daunorrubicina, etopósido, y bleomicina. Aquellos
agentes que producen quiescencia en G1 también producen quiescéncia
en fase S, por ejemplo agentes alquilantes del DNA como tamoxifeno,
prednisona, dacarbazida, mecloretamina, cisplatino, metotrexato,
5-fluorouracilo y ara-C. Puede
encontrarse información adicional en The Molecular Basis of Cancer,
Mendelsohn e Israel, eds., Capítulo 1, titulado "Cell cycle
regulation, oncogens and antineoplastic drugs " por Murakami y
col. (WB Saunders: Philadelphia, 1995), especialmente pag 13.
La "doxorrubicina" es un antibiótico
antraciclina.
El término "citoquina" es un término
genérico para proteínas liberadas por una población celular que
actúa sobre otras células como mediadores intercelulares. Entre los
ejemplos de citoquinas están las linfoquinas, las monoquinas, y las
hormonas polipeptídicas tradicionales. Entre las citoquinas se
incluyen hormonas de crecimiento como la hormona del crecimiento
humana, la hormona del crecimiento humana
N-metionil, la hormona del crecimiento bovina, la
hormona paratiroidea, la tiroxina, la insulina, la proinsulina, la
relaxina, la prorelaxina y similares. Tal y como se usa aquí el
término citoquina incluye proteínas de origen natural u obtenidas a
partir de cultivos celulares recombinantes con una actividad
biológica equivalente a las de las citoquinas nativas.
"Anticuerpos nativos" e "inmunoglobulinas
nativas" son glicoproteínas heterotetraméricas de alrededor de
150.000 daltons, compuestas por dos cadenas ligeras (L) idénticas y
dos cadenas pesadas (H) idénticas. Cada cadena ligera está unida a
una cadena pesada mediante un enlace covalente disulfuro, mientras
el número de enlaces disulfuro varía entre las cadenas pesadas de
diferentes isotipos de inmunoglobulinas. Cada cadena pesada y
ligera también tiene puentes disulfuro intracatenarios espaciados
regularmente. Cada cadena pesada tiene en su extremo un dominio
variable (VH) seguido por un número de dominios constantes. Cada
cadena ligera tiene un dominio variable en un extremo (VL) y un
dominio constante en su otro extremo; el dominio constante de la
cadena ligera se alinea con el primer dominio constante de la cadena
pesada, y el dominio variable de la cadena ligera se alinea con
dominio variable de la cadena pesada. Se considera que los residuos
aminoacídicos particulares forman una superficie entre los dominios
variables de las cadenas ligera y pesada.
El término "variable" se refiere al hecho de
que ciertas porciones de los dominios variables difieren
extensamente en secuencia entre anticuerpos y se usan en la unión y
en la especificidad de cada anticuerpo particular por su antígeno.
Sin embargo, la variabilidad no está distribuida regularmente por
todos los dominios variables de los anticuerpos. Se concentra en 3
segmentos denominados regiones determinantes de complementariedad
(CDRs) o regiones hipervariables tanto en los dominios variables de
la cadena ligera y la cadena pesada. Las regiones de los dominios
variables más altamente conservadas se denominan regiones de
entramado (FR). Cada uno de los dominios variables de las cadenas
ligera y pesada nativas comprende cuatro regiones FR, que adoptan
una configuración de hoja beta, conectadas por 3 CDRs, los cuales
forman bucles de conexión, y en algunos casos forman parte de la
estructura hoja beta. Los 3 CDRs en cada cadena están unidos en
proximidad con las regiones FR y, con los CDRs de la otra cadena,
contribuyen a la formación del sitio de unión del antígeno de los
anticuerpos (véase Kabat y col, NIH Publ.
Nº91-3242, Vol I páginas 647-669
(1991)). Los dominios constantes no están implicados directamente
en la unión del anticuerpo al antígeno, pero muestran diversas
funciones efectoras, como la participación del anticuerpo en la
toxicidad celular dependiente del anticuerpo.
Los "fragmentos de anticuerpos" comprenden
fracciones de un anticuerpo intacto, preferentemente las regiones de
unión al antígeno o las región variables del anticuerpo intacto.
Entre los ejemplos de fragmentos de anticuerpo se incluyen los
fragmentos Fab, Fab', F(ab')2 y Fv; anticuerpos
biespecíficos, anticuerpos lineales (Zapata y col., Protein Eng.
8(10): 1057-1062 [1995]); moléculas de
anticuerpos de cadena simple; y anticuerpos multiespecíficos
formados a partir de fragmentos de anticuerpos.
La digestión con papaína de los anticuerpos
produce dos fragmentos idénticos de unión a antígeno, llamados
fragmentos "Fab", cada uno con un sitio simple de unión a
antígeno, y un fragmento residual "Fc", una designación que
refleja la capacidad de cristalizar fácilmente. El tratamiento con
pepsina da lugar a un fragmento F(ab')2 que tiene dos sitios
de combinación de antígeno y que todavía es capaz de unirse al
antígeno.
El fragmento "Fv" es el fragmento mínimo que
contiene un sitio de reconocimiento del antígeno y de unión
completa. Esta región consiste en un dímero de un dominio variable
de cadena pesada y otro de cadena ligera en estrecha asociación no
covalente. Es en esta configuración que las tres CDRs de cada
dominio variable interaccionan para definir un sitio de unión
antígeno-anticuerpo en la superficie del dímero
VH-VL. Colectivamente, las seis CDRs confieren la
especificidad de unión del anticuerpo al antígeno. Sin embargo,
incluso un solo dominio variable (o la mitad de un Fv que comprende
solo tres CDRs específicas para un antígeno) tienen la capacidad de
reconocer y unirse al antígeno, aunque con menor afinidad que el
sitio de unión completo.
El fragmento Fab también contiene el dominio
constante de la cadena ligera y el primer dominio constante (CH1) de
la cadena pesada. Los fragmentos Fab difieren de los fragmentos
Fab' por la adición de unos pocos residuos en el extremo carboxilo
del dominio CH1 de la cadena pesada incluyendo una o más cisteínas
de la región bisagra del anticuerpo. Fab'-SH es la
designación usada aquí para Fab' en el cual el/los
residuo(s) de cisteína de los dominios constantes llevan un
grupo tiol libre. Los fragmentos F(ab')2 de un anticuerpo
originalmente se produjeron como pares de fragmentos Fab' que
tienen cisteínas bisagra entre ellos. También se conocen otros
acoplamientos químicos de fragmentos de anticuerpos.
Las "cadenas ligeras" de los anticuerpos
(inmunoglobulinas) de cualquier especie de vertebrado pueden
asignarse a uno de los dos tipos claramente diferenciados, llamados
kappa y lambda, basados en las secuencias aminoacídicas de sus
dominios constantes.
Dependiendo de la secuencia aminoacídica del
dominio constante de sus cadenas pesadas, las inmunoglobulinas
pueden asignarse a diferentes clases. Hay 5 clases fundamentales de
inmunoglobulinas: IgA, IgD, IgE, IgG, y IgM, y varias de ellas
pueden ser divididas en subclases (isotipos), p.ej., IgG1, IgG2,
IgG3, IgG4, IgA1 e IgA2.
Los fragmentos de anticuerpo "Fv de cadena
simple" o "sFv" comprenden los dominios VH y VL del
anticuerpo, en donde dichos dominios se presentan en una cadena
polipeptídica simple. Preferentemente, el polipéptido Fv comprende
además un engarce polipeptídico entre los dominios VH y VL que
permite al sFv formar la estructura deseada para la unión del
antígeno. Para una revisión sobre sFv, véase Pluckthun en The
Pharmacology of Monoclonal Antibodies, vol. 113, Rosenburg y Moore
eds., Springer-Verlag, New York, pp
269-315 (1994).
El término "anticuerpos biespecíficos" se
refiere a pequeños fragmentos de anticuerpo con dos sitios de unión
del antígeno, fragmentos que comprenden un dominio variable de
cadena pesada (VH) conectado a un dominio variable de cadena ligera
(VL) en la misma cadena polipeptídica (VH-VL).
Mediante el uso de un engarce demasiado corto para permitir la
unión entre los dos dominios en la misma cadena, los dominios están
forzados a unirse con los dominios complementarios de otras cadenas
y crear dos sitios de unión de antígeno. Los anticuerpos
biespecíficos se describen en mayor profundidad en, por ejemplo, la
patente europea 404.097; la patente mundial WO93/11161; y Hollinger
y col., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90: 6444-6448
(1993).
Un anticuerpo "aislado" es aquel que ha sido
identificado y separado o recuperado a partir de un componente de
su entorno natural. Son componentes contaminantes de su entorno
natural materiales que interferirían en el uso diagnóstico o
terapéutico del anticuerpo, y puede incluir enzimas, hormonas, y
otros solutos de naturaleza proteica o no proteica. En
realizaciones preferentes, el anticuerpo podrá sser purificado (1)
a más de u 95% en peso de anticuerpo determinado por el método de
Lowry, y más preferentemente a más del 99% en peso, (2) a un grado
suficiente para obtener al menos 15 residuos del extremo
N-terminal o de la secuencia aminoacídica interna
mediante el uso de un secuenciador de spinning cup o, (3) a
homogeneidad mediante SDS-PAGE bajo condiciones
reductoras o no reductoras usando azul de Comassie o,
preferentemente, tinción con plata. El anticuerpo aislado incluye el
anticuerpo localizado dentro de las células recombinantes en el que
al menos un componente del entorno natural del anticuerpo no estará
presente. Ordinariamente, sin embargo, el anticuerpo aislado se
preparará mediante una etapa de purificación.
La palabra "marca" cuando se usa aquí se
refiere a un compuesto o composición detectable que está conjugado
directa o indirectamente con el anticuerpo para generar un
anticuerpo "marcado". El marcaje puede detectarse por sí mismo
(p.ej., marcajes radioactivos o fluorescentes) o, en el caso del
marcaje enzimático, puede catalizar una alteración química de un
compuesto o composición substrato que es detectable.
Como "fase sólida" se entiende una matriz no
acuosa a la cual puede adherirse el anticuerpo de la presente
invención. Los ejemplos de fases sólidas incluyen aquellos formados
parcialmente o en su totalidad por vidrio (p.ej., vidrio de poro
controlado), polisacáridos (p.ej., agarosa), poliacrilamidas,
poliestireno, alcohol polivinílico y siliconas. En ciertas
realizaciones, dependiendo del contexto, la fase sólida puede
comprender el pocillo de una placa de ensayo; en otras es una
purificación por columna (p.ej., una columna de cromatografía de
afinidad). Este término incluye también una fase sólida discontinua
de partículas discretas, como las descritas en la patente americana
U.S. 4.275.149.
Un "liposoma" es una pequeña vesícula
compuesta por varios tipos de lípidos, fosfolípidos y/o tensoactivos
que es útil para la vehiculización de un fármaco a un mamífero. Los
componentes del liposoma se disponen comúnmente en formación de
bicapa, similar a la disposición de las membranas biológicas.
La presente invención proporciona secuencias
nucleotídicas recientemente identificadas y aisladas que codifican
para polipéptidos nombrados en la presente invención como PRO617.
En particular, los Solicitantes han identificado y aislado el cDNA
que codifica para un polipéptido PRO617, como se describe en mayor
detalle en los ejemplos mostrados más adelante. Usando los programas
de alineamiento BLAST y FastA, los Solicitantes encontraron que el
polipéptido PRO617 muestra una homología significativa con la
proteína CD34. Los Solicitantes también observaron que el DNA que
codifica para el polipéptido PRO617 muestra una homología
significativa con el DNA que codifica para la proteína CD24. Por
tanto, en este momento se considera que el polipéptido PRO617
descrito en la presente solicitud es un homólogo de CD24 recién
identificado.
Además del la secuencia nativa completa de los
polipéptidos PRO descritos aquí, se contempla que pueden prepararse
variantes del polipéptido PRO. Las variantes del polipéptido PRO
pueden prepararse mediante la introducción de cambios adecuados en
el DNA del polipéptido PRO, o mediante síntesis del polipéptido PRO
deseado. Los expertos en la materia apreciarán que los cambios
aminoacídicos pueden alterar procesos
post-traduccionales de los polipéptidos PRO, tales
como la modificación del número o la posición de sitios de
glicosilación o la alteración de las características de anclaje a
la membrana.
Las variaciones en la secuencia completa de los
polipéptidos PRO o en varios dominios de los polipéptidos PRO
descritas aquí, pueden realizarse, por ejemplo, usando cualquiera
de las técnicas y pautas sobre mutaciones conservativas y no
conservativas marcadas, por ejemplo, en la patente americana U.S.
5.364.934. Las variaciones pueden ser substituciones, deleciones, o
inserciones de un o más codones que codifican para el polipéptido
PRO que resulten en un cambio de secuencia aminoacídica del
polipéptido PRO comparado con la secuencia nativa del polipéptido
PRO. Opcionalmente, la variación es por substitución de al menos un
aminoácido por otro aminoácido en un o más dominios del polipéptido
PRO. La pauta para determinar qué residuo aminoacídico puede ser
insertado, substituido, o delecionado sin afectar adversamente la
actividad deseada puede encontrarse comparando la secuencia del
polipéptido PRO con la de moléculas proteicas homólogas conocidas y
minimizando el número de cambios en la secuencia aminoacídica en
regiones con alta homología. Las substituciones aminoacídicas
pueden ser el resultado de reemplazar un aminoácido por otro que
muestre similitud estructural y/o de propiedades químicas, como la
substitución de una leucina por una serina, es decir,
substitucines conservativas. Las inserciones o deleciones
opcionalmente pueden estar en el rango de 1 a 5 aminoácidos. La
variación permitida puede determinarse haciendo inserciones,
deleciones o substituciones de aminoácidos en la secuencia
sistemáticamente, y analizando las variaciones de actividad
resultantes en el ensayo in vitro descrito más adelante en
los ejemplos.
En realizaciones particulares, las substituciones
conservativas de interés se muestran en la Tabla 1 bajo el título
de substituciones preferentes. Si tales substituciones resultan en
un cambio en la actividad biológica, entonces se introducen cambios
más substanciales, denominados en la Tabla 1 substituciones
ejemplares, o como se describe más abajo en referencia a clase de
aminoácidos, y se analizarán los productos.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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Se llevan a cabo modificaciones substanciales en
la función o en la identidad inmunológica del polipéptido PRO
mediante la selección de substituciones que difieren
significativamente en su efecto de mantener (a) la estructura del
esqueleto del polipéptido en el área de substitución, por ejemplo,
con una conformación de hélice u hoja, (b) la carga de
hidrofobicidad de la molécula en el sitio diana, o (c) el volumen de
la cadena lateral. Los residuos que se producen de forma natural se
dividen en grupos basados en propiedades comunes de la cadena
lateral:
- (1)
- hidrofóbico: norleucina, met, ala, val, leu, ile;
- (2)
- hidrofílico neutro: cys, ser, thr:
- (3)
- acídico: asp, glu;
- (4)
- básico: asn, gln, his, lys, arg;
- (5)
- residuos que influencian la orientación de la cadena: gly, pro; y
- (6)
- aromáticos: trp, tyr, phe
Las substituciones no conservativas implicarán el
cambio de un miembro de estas clases por otro de otra clase. Tales
residuos substituidos pueden introducirse en los sitios de
substitución conservativos, o más preferentemente, en los sitios
remanentes (no conservativos).
Las variaciones pueden realizarse usando métodos
conocidos en el área tales como la mutagénesis mediada por
oligonucleótidos (dirigida), el rastreo de alanina y la mutagénesis
por PCR. La mutagénesis dirigida [Carter y col., Nucl. Acids Res.,
13:4331 (1986); Zoller y col., Nucl. Acids Res.,10:6487 (1987)], la
mutagénesis de casete [Wells y col., Gene, 34: 315(1985)], la
mutagénesis de selección por restricción [Wells y col., Philos.
Trans. R. Soc. London SerA, 317:415 (1986)] u otras técnicas
conocidas pueden ser utilizadas sobre el DNA clonado para producir
la variante de DNA del polipéptido PRO deseado.
El análisis de rastreo de aminoácidos puede
emplearse también para identificar un o más aminoácidos a lo largo
de una secuencia contigua. Entre los aminoácidos preferidos para el
rastreo están los aminoácidos neutros, relativamente pequeños.
Tales aminoácidos incluyen alanina, glicina, serina y cisteína. La
alanina es uno de los aminoácido de rastreo preferidos entre este
grupo ya que elimina la cadena lateral más allá del carbono beta y
es menos probable que altere la conformación de la cadena principal
en la variante. También se prefiere habitualmente la alanina porque
es el aminoácido más común. Además, se encuentra frecuentemente
tanto en posiciones escondidas como en las expuestas [Creghton, The
Proteins, (W. H. Freeman & Co., N.Y.); Chothia, J. Mol. Biol.,
150: 1 (1976)]. Si la sustitución por alanina no rinde suficiente
cantidad de variante, se puede utilizar un aminoácido isotérico.
Dentro del ámbito de esta invención se incluyen
modificaciones covalentes de los polipéptidos PRO. Un tipo de
modificación covalente incluye la reacción de los residuos de
aminoácidos diana del polipéptido PRO con un agente orgánico
derivatizante que es capaz de reaccionar con cadenas laterales
seleccionadas o con los residuos N- o C- terminales del polipéptido
PRO.
La modificación con agentes bifuncionales es
útil, por ejemplo, para la unión del polipéptido PRO a una matriz
de soporte insoluble en agua o a una superficie para purificar
anticuerpos anti-polipéptido PRO y viceversa. Los
agentes de unión comúnmente más usados incluyen, p. ej.,
1,1-bis(diazoacetil)-2-feniletano,
glutaraldehído, ésteres de N-hidroxisuccinimida,
por ejemplo, ésteres con el ácido
4-azidosalicílico, imidoésteres homobifuncionales,
incluidos disuccinimidil ésteres tales como el
3,3'-ditiobis(succinimidilpropionato),
maleimidas bifuncionales como
bis-N-maleimido-1,8-octano
y agentes tales como el
metil-3-[p-azidobenil)-dithio]propioimidato.
Otras modificaciones incluyen la deamidación de
residuos glutaminil y asparaginil a los correspondientes residuos
glutamil y aspartil, respectivamente, la hidroxilación de prolina y
lisina, la fosforilación de grupos hidroxilo de residuos seril o
treonil, la metilación de los grupos \alpha-amino
de las cadenas laterales de lisina, arginina e histidina [T.E.
Creighton, Proteins: Structure and Molecular Properties, W.H.
Freeman & Co., San Francisco, pp 79-86
(1983)],la acetilación de la amina N-terminal y la
amidación de cualquier grupo carboxilo
C-terminal.
Otro tipo de modificación covalente de los
polipéptidos PRO incluida dentro del ámbito de esta invención
comprende la alteración del patrón de glicosilación nativo del
polipéptido. "La alteración del patrón de glicosilación"
significa aquí, de cara a los objetivos previstos, la eliminación
de un o más grupos carbohidrato que se encuentran en una secuencia
nativa del polipéptido PRO, y/o la adición de un o más sitios de
glicosilación que están presentes en la secuencia del polipéptido
PRO nativa, y/o la alteración del ratio y/o composición de los
residuos de azúcar unidos al sitio(s) de glicosilación.
La adición de sitios de glicosilación al
polipéptido PRO puede conseguirse alterando la secuencia
aminoacídica. Esta alteración puede lograrse, por ejemplo, mediante
la adición de, o la sustitución por, un o más residuos de serinas o
treoninas a la secuencia nativa del polipéptido PRO (para lugares de
O-glicosilación). La secuencia aminoacídica del
polipéptido PRO puede ser alterada opcionalmente a través de cambios
a nivel de DNA, particularmente mutando el DNA que codifica el
polipéptido PRO en bases preseleccionadas de tal modo que los
codones que se generen se traduzcan en los aminoácidos deseados.
El acoplamiento químico o enzimático de
glicósidos al polipéptido constituye otro mecanismo para
incrementar el número de grupos carbohidrato en el polipéptido del
polipéptido PRO. Estos métodos están descritos en la materia,
p.ej., en la patente internacional WO87/05330 publicada el 11 de
Septiembre de 1987, y en Aplin y Wriston, CRC Crit. Rev. Biochem.,
pp 259-306 (1981).
La eliminación de grupos carbohidrato presentes
en el polipéptido PRO puede conseguirse químicamente o
enzimáticamente o mediante substitución mutacional de codones que
codifican para residuos aminoacídicos que sirven como dianas de
glicosilación. Las técnicas de deglicosilación química se conocen
en el área y se describen, por ejemplo, por Hakimuddin y col., Arch.
Biochem. Biophys., 259: 52 (1987) y por Edge y col., Anal. Biochem.,
118: 131 (1981). La ruptura enzimática de los grupos carbohidrato en
los polipéptidos puede lograrse usando distintas endo- y
exo-glicosidasas como describe Thotakura y col.,
Meth. Enzymol., 138: 350 (1987).
Otro tipo de modificación covalente de los
polipéptidos PRO de la invención comprende la unión del polipéptido
PRO a uno de los diversos polímeros no proteicos, e.j.
polietilénglicol, polipropilénglicol o
poli-oxialquilenos, tal y como se indica en las
patentes americanas U.S. 4.640.835; 4.496.689;
4.301.144;4.670.417;4.791.192 ó 4.179.337.
Los polipéptidos PRO de la presente invención
pueden ser modificados también para formar una molécula quimérica
que comprenda el polipéptido PRO unido a otro polipéptido heterólogo
o a una secuencia aminoacídica. En una realización tal molécula
quimérica comprende una fusión del polipéptido PRO con un
polipéptido etiqueta que proporciona un epitopo al cual un
anticuerpo anti-etiqueta puede unirse de forma
selectiva. El epitopo etiqueta generalmente se sitúa en el extremo
amino o carboxil del polipéptido PRO. La presencia de dichas formas
epitopo-etiqueta del polipéptido PRO pueden
detectarse usando un anticuerpo contra el polipéptido etiqueta.
También la provisión del epitopo etiqueta permite al polipéptido
PRO estar listo para ser purificado fácilmente por afinidad usando
un anticuerpo anti-etiqueta u otro tipo de matriz de
afinidad que se una al epitopo etiqueta. Alternativamente, la
molécula quimera puede comprender una fusión del polipéptido PRO
con una inmunoglobulina o una región particular de una
inmunoglobulina. Para una forma bivalente de la molécula quimérica,
dicha fusión podría ser a la región Fc o a una molécula IgG.
Son bien conocidos en la materia varios
polipéptidos etiqueta y sus respectivos anticuerpos. Los ejemplos
incluyen etiquetas de poli-histidina
(poli-his) o
poli-histidina-glicina; el
polipéptido etiqueta flu HA y su anticuerpo 12CA5 [Fleid y col.,
Mol. Cell. Biol., 8:2159-2165 (1988)]; la etiqueta
c-myc y sus anticuerpos, el 8F9, el 3C7, el 6E10,el
G4, el B7 y el 9E10 [Evan y col., Molecular and Cellular
Biology,5:3610-3616 (1985)] y la etiqueta de la
glicoproteína D del virus del herpes simple (gD) y su anticuerpo
[Paborsky y col., Protein Engineering, 3(6):
547-553 (1990)]. Otros polipéptidos etiqueta
incluyen el péptido Flag [Hoop y col., Biotechnology, 6:
1204-1210 (1988)]; el péptido del epitopo KT3
[Martin y col., Science, 225:192-194 (1992)]; el
péptido de un epitopo de \alpha-tubulina [Skinner
y col., J. Biol. Chem., 266:15163-15166 (1991)] y
el péptido etiqueta de la proteína 10 del gen T7.
[Lutz-Freyermuth y col., Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
87: 6393-9397 (1990).
La descripción indicada más abajo se refiere
principalmente a la producción de polipéptidos PRO mediante el
cultivo de células transformadas o transfectadas con un vector que
contiene el ácido nucleico correspondiente al polipéptido PRO
deseado. Por supuesto, se contempla que se puedan utilizar métodos
alternativos para preparar el polipéptido PRO, bien conocidos en la
materia. Por ejemplo, la secuencia del polipéptido PRO o fracciones
del mismo, pueden producirse mediante síntesis peptídica directa
usando técnicas de fase sólida [véase, p. ej. Stewart y col.,
Solid-Phas Peptide Synthesis, W.H. Freeman Co., San
Francisco, CA (1969); Merrifield, J. Am. Chem. Soc.,
85:2149-2154 (1963)]. La síntesis proteica in
vitro puede realizarse usando técnicas manuales o mediante
automatización. La síntesis automática puede conseguirse, por
ejemplo, usando un Sintetizador de Péptidos de Applied Biosystems
(Foster City, CA) siguiendo las instrucciones del fabricante. Se
pueden sintetizar químicamente varias porciones del polipéptido PRO
deseado separadamente y combinarlas usando métodos químicos o
enzimáticos para producir el polipéptido PRO completo.
El DNA que codifica para el polipéptido PRO puede
obtenerse de una librería de cDNA preparada a partir de un tejido
que se considera que posee el mRNA del polipéptido PRO y que lo
expresa en un nivel detectable. Por consiguiente, el DNA del
polipéptido PRO humano puede ser obtenido adecuadamente a partir de
una librería de cDNA preparada de un tejido humano, tal y como se
describe en los Ejemplos. El gen que codifica para el polipéptido
PRO puede obtenerse también a partir de una librería genómica o
mediante síntesis con oligonucleótidos.
Las librerías pueden ser cribadas con sondas
(como anticuerpos contra el polipéptido PRO deseado u
oligonucleótidos de alrededor de 20-80 bases)
diseñadas para identificar el gen de interés o la proteína
codificada por el mismo. El cribaje de una librería de cDNA o
genómica con la sonda seleccionada puede realizarse utilizando
procedimientos estándar, como los descritos en Sambrook y col.,
Molecular Cloning: A laboratory Manual (New York: Cold Spring
Harbor Laboratory Press, 1989). Otro medio alternativo para aislar
el gen que codifica para el polipéptido PRO deseado consiste en usar
la metodología del PCR [Sambrook y col., supra: Dieffenbach
y col., PCR Primer: A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor
Laboratory Press, 1995)].
Los Ejemplos mostrados más abajo describen
técnicas para el cribaje de librerías de cDNA. Las secuencias de
oligonucleótidos seleccionadas como sondas deben ser de longitud
suficiente y suficientemente específicas como para minimizar falsos
positivos. Preferentemente el oligonucleótido se marca de tal forma
que tras la hibridación al DNA puede ser detectado en la librería
que se está cribando. Los métodos de marcaje son bien conocidos en
el área, e incluye el uso de marcadores radioactivos como ATP
marcado con P^{32}, biotinilización o marcaje enzimático.
Sambrook y col., supra proporciona las condiciones de
hibridación, incluyendo una moderada y alta astringencia.
Las secuencias identificadas mediante dichos
métodos de cribaje de librerías pueden compararse y alinearse con
otras secuencias conocidas depositadas en bancos de datos públicos
disponibles como el GenBank u otros bancos de datos de secuencias
privadas. La identidad de la secuencia (tanto a nivel de aminoácidos
como de nucleótidos) dentro de regiones definidas o a lo largo de
la totalidad de la secuencia puede determinarse mediante el
alineamiento de secuencia usando programas de ordenador como BLAST,
ALIGN, DNAstar e INHERIT que emplean diversos algoritmos para medir
la homología.
El cribaje de librerías seleccionadas de cDNA o
genómicas permite la obtención de ácidos nucleicos que tienen una
secuencia codificante para la proteína usando la secuencia
aminoacídica deducida descrita aquí por primera vez, y si es
necesario, usando procedimientos convencionales de extensión de
cebador como se describe en Sambrook y col., supra, para
detectar precursores e intermediarios en el procesamiento del mRNA
que no han sido inversamente transcritos en cDNA.
Las células huésped se transfectan o transforman
con vectores de expresión o clonaje descritos aquí para la
producción del polipéptido PRO y se cultivan en medio de cultivo
convencional modificado para que sea más apropiado para la
inducción de promotores, la selección de transformantes, o la
amplificación de los genes que codifican para las secuencias
deseadas. Las condiciones de cultivo, tales como medio,
temperatura, pH y demás, pueden ser seleccionados por el experto en
la materia. En general, los principios, protocolos, y técnicas
prácticas, para maximizar la productividad de las células pueden
encontrarse en Mammalian Cell Biotechnology: a Practical Aproach, M
Butler, ed (IRL Press, 1991) y Sambrook y col., supra.
Los métodos de transfección son conocidos por el
experto en la materia, por ejemplo, el método del CaPO_{4} y la
electroporación. La transformación se realiza usando técnicas
estándar apropiadas para las células dependiendo de la célula
huésped utilizada. El tratamiento con calcio empleando cloruro
cálcico, como se describe en Sambrook y col., supra, o la
electroporación, generalmente se usan en procariotas u otras
células que contienen barreras importantes como las paredes
celulares. La infección con Agrobacterium tumefaciens se
utiliza para la transformación de ciertas células de plantas, como
se describe por Shaw y col., Gene,23:315 (1983) y la patente
internacional WO 89/05859 publicada el 29 de Junio de 1989. Para
células mamíferas sin tales paredes celulares, puede emplearse el
método de la precipitación con fosfato cálcico de Graham y van der
Eb, Virology,52:456-457 (1978). Se han descrito
aspectos generales de las transformaciones de sistemas de célula
huésped de mamífero en la patente americana U.S. 4.399.216. Las
transformaciones en levaduras se llevan a cabo típicamente según el
método de Van Solingen y col., J. Bact., 130:946 (1977) y Hsiao y
col., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 76:3829 (1979). Sin embargo,
pueden usarse también otros métodos para introducir DNA en las
células, tales como la microinyección nuclear, la electroporación,
la fusión de protoplastos bacterianos con células intactas o
policationes, p.ej., polibrene o poliornitina. Para diversas
técnicas de transformación de células de mamífero, véase Keown y
col., Methods in Enzymology,185:527-537 (1990) y
Mansour y col., Nature, 336:348-352 (1988).
Entre las células huésped adecuadas para clonar o
expresar el DNA en vectores se incluyen procariotas, levaduras o
células eucariotas superiores. Entre los procariotas apropiados se
incluyen, aunque no están limitados a ellos, eubacterias, tales
como organismos Gram-negativos o
Gram-positivos, por ejemplo, Enterobacteriáceas
como E. coli. Se encuentran disponibles públicamente varias
cepas de E. coli tales como la cepa E. coli K12 MM294
(ATCC 31, 446); E. coli X1776 (ATCC 31, 537); la cepa E.
coli W3110 (ATCC 27,325) y K5 772(ATCC 53,635). Otras
células huésped procariotas adecuadas incluyen Enterobacteriáceas
como Escherichia, p. ej., E. coli, Enterobacter, Erwinia,
Klebsiella, Proteus, Salmonella, p.ej. Salmonella
typhimurium, Serratia, p.ej. Serratia marcescans, y
Shigella, así como Bacilli tales como B. subtilis
y B. Licheniformis (p.ej., B. Licheniformis 41P
descrito en DD 266,710 publicado el 12 de Abril de 1989),
Pseudomonas tales como P. Aeruginosa, y
Streptomyces. Se encuentran públicamente disponibles varias
cepas de E. coli tales como la cepa E. coli K12 MM294
(ATCC 31, 446); E. coli X1776 (ATCC 31, 537); la cepa E.
coli W3110 (ATCC 27,325) y K5 772(ATCC 53,635). Estos
ejemplos son ilustrativos más que limitantes. La cepa W3110 es un
huésped particularmente preferido o un huésped parental porque es
una cepa común para la generación de productos de DNA recombinante.
Preferentemente, la célula huésped secreta cantidades mínimas de
enzimas proteolíticos. Por ejemplo, la cepa W3110 puede modificarse
para causar una mutación genética en los genes que codifican para
proteínas endógenas del huésped; los ejemplos de tales huéspedes
incluyen la cepa E. coli W3110 1A2, la cual tiene el
genotipo completo tonA; la cepa E. coli W3110 9E4,
que presenta el genotipo completo tonA ptr3; la cepa E.
coli W3110 27C7 (ATCC 55,244) que tiene el genotipo completo
tonA ptr3 ptr3phoA E15 (argF-lac)169 degP
ompT kan^{1}; la cepa E. coli W3110 37D6 que tiene el
genotipo completo tonA ptr3phoA E15
(argF-lac)169 degP ompT rbs7 ilvG
kan^{1}; la cepa E. coli W3110 40B4 que es la cepa 37D6
con una mutación por deleción degP no resistente a
kanamicina; y una cepa E. coli que presenta una proteasa
periplásmica mutada descrita en la patente americana U.S. 4.946.783
publicada el 7 de Agosto de 1990. Alternativamente, están
disponibles métodos de clonaje in vitro, p.ej., PCR u otras
reacciones de las polimerasas de ácidos nucleicos.
Junto a procariotas, microbios eucariotas tales
como hongos filamentosos o levaduras son huéspedes adecuados para
clonaje o expresión de vectores que codifican para el polipéptido
PRO. El Saccharomyces cerevisiae es un microorganismo
huésped eucariota inferior que se usa comúnmente. Otros incluyen
Schizosaccharomyce pombe (Beach y Nurse, Nature, 290:
140[1981]; patente europea EP 139,383 publicado el 2 de Mayo
de 1985); huéspedes Kluyveromyces (patente americana U.S.
4.943.529; Fleer y col., Bio/Technology, 9:968-975
(1991)) tales como, p. ej., K lactis
(MW98-8C,CBC683, CBS4574; Louvencort y col., J
Bacteriol., 737 [1983]), K. fragilis (ATCC 12,424) K.
bulgaricus (ATCC 16,045), K. wickeramii (ATCC 24,178),
K. waltii, (ATCC 56,500), K. drosophilarium (ATCC
36,906; Van den Berg y col., bio/Technology, 8: 135 (1990)), K.
thermotolerans y K. marxianus; yarrowia (patente europea
EP 402.226); Pichia pastoris (patente europea EP 183.070;
Sreekrishna y col., J. Basic Microbiol.,28: 265-278
[1988]); Candida; Tricoderma reesia (patente europea EP
244.234); Neurospora crassa (Case y col., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 76:5259-5263[1979]);
Schwanniomyces tales como Schwanniomyces occidentalis
(patente europea EP 394.538 publicado el 31 de Octubre de 1990); y
hongos filamentosos tales como p.ej., Neurospora, Penicillium,
Totypocladium (patente internacional WO 91/00357 publicada el 10
de Enero de 1991), y huéspedes Aspergillus tales como A.
nidulans (Ballance y col., Biochem. Biophys. Res. Commn.,
112:284-289 [1983]; Tilburn y col., Gene,
26:205-221 [1983]; Yelton y col., Proc. Natl. Acad.
USA, 81: 1470-1474 [1984] y A. niger (Kelly
y Hynes EMBO J., 4: 475-479 [1985]).Son adecuadas
aquí levaduras metilotroficas e incluyen aunque no se limitan a
ellas, levaduras capaces de crecer en metanol seleccionadas de los
géneros Hansenula, candida, Kloeckera, Pichia, Saccharomyces,
Torulopsis, y Rhodotorula. Puede encontrarse una lista
de especies específicas que son ejemplos de esta clase de levaduras
en C. Anthony, The Biochemistry of Methylotrophs, 269 (1982).
Las células huésped adecuadas para la expresión
de polipéptidos PRO glicosilados se derivan de organismos
multicelulares. Ejemplos de células de invertebrados incluyen
células de insectos como Drosophila S2 y Spodoptera Sf9, así como
células de plantas. Entre los ejemplos de líneas celulares huésped
de mamífero se incluyen las células de ovario de hámster chino
(CHO) y las células COS. Ejemplos más específicos incluyen la línea
de riñón de mono transformada por SV40 (COS-7, ATCC
CRL 1651); la línea de riñón embrionario humano (293 o células 293
subclonadas para crecer en cultivo en suspensión, Graham y col., J.
Gen. Virol., 36:59 (1977); células de ovario de hámster chino
deficientes en DHFR (CHO, Urlaub y Chasin, Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 77:4216 (1980)); células de sertoli de ratón (TM4, Mather,
Biol. Reprod., 23:243-251 (1980)); células humanas
de pulmón (W138,ATCC CCL 75); células humanas de hígado (Hep G2, HB
8065); y células de tumor mamario de ratón (MMT 060562, ATCC CCL51).
La selección de la célula huésped adecuada se tomar según el
criterio del experto en la materia.
El ácido nucleico (p.ej., cDNA o DNA genómico)
que codifica un polipéptido PRO deseado puede ser insertado en un
vector replicable para clonaje (amplificación del DNA) o para
expresión. Varios vectores están disponibles públicamente. El
vector puede estar, por ejemplo, en forma de un plásmido, un
cósmido, una partícula viral, o un fago. La secuencia del ácido
nucleico apropiada puede insertarse en el vector mediante diversos
procedimientos. En general, el DNA se inserta en un sitio(s)
apropiado reconocido por un enzima de restricción usando técnicas
conocidas en la materia. Los componentes de los vectores
generalmente incluyen, aunque no están limitados a ello, una o más
secuencias señal, un origen de replicación, uno o más genes
marcadores, un elemento intensificador, un promotor, y una
secuencia de finalización de la transcripción. La construcción de
vectores adecuados que contengan uno o más de estos componentes
requiere técnicas de ligación estándar conocidas por el experto en
la materia.
El polipéptido PRO de interés puede producirse
mediante recombinación no sólo directamente, sino también como un
polipéptido de fusión con un polipéptido heterólogo, el cual puede
ser una secuencia señal u otro polipéptido que tenga un lugar
específico de corte en el extremo N-terminal de la
proteína madura o el polipéptido. En general, la secuencia señal
puede ser un componente del vector, o puede ser una parte del DNA
del polipéptido PRO que se inserta en el vector. La secuencia señal
puede ser una secuencia señal procariota, por ejemplo, del grupo de
la fosfatasa alcalina, la penicilinasa, lpp, o líderes de
endotoxina II termoestables. Para la secreción en levaduras la
secuencia señal puede ser p.ej., la del líder de invertasa de
levadura, el líder factor alfa (incluidos los líderes de los
factores \alpha de Saccharomyces y Kluyveromyces,
este último descrito en la patente americana U.S. 5.010.182), el
líder ácido fosfatasa, la secuencia líder de la glucoamilasa de
C. Albicans (patente europea EP 362.176 publicada el 4 de
Abril de 1990) o la señal descrita en la patente internacional WO
90/13646 publicada el 15 de Noviembre de 1990. En la expresión en
células de mamífero, pueden usarse secuencias señal de mamíferos
para dirigir la secreción de la proteína, tales como las secuencias
señal de polipéptidos secretados de la misma especie o de especies
relacionadas, así como líderes secretores virales.
Tanto los vectores de expresión como los de
clonaje contienen una secuencia de ácidos nucleicos que permite al
vector replicarse en una o más células huésped seleccionadas. Tales
secuencias son bien conocidas para diversas bacterias, levaduras y
virus. El origen de replicación del plásmido pBR322 es adecuado para
muchas bacterias Gram-negativas, el origen del
plásmido \mu es adecuado para levaduras, y varios orígenes
virales (SV40, polioma, adenovirus, VSV o BPV) son útiles para
vectores de clonaje en células de mamíferos.
Los vectores de clonaje y expresión contienen
típicamente un gen de selección, también llamado marcador de
selección. Los genes de selección típicos codifican para proteínas
que (a) confieren resistencia a antibióticos u otras toxinas, ej.,
ampicilina, neomicina, metotrexato o tetraciclina (b) complementan
deficiencias auxotróficas, o (c) suplementan nutrientes críticos no
disponibles en un medio complejo, p.ej., el gen que codifica por la
D-alanina racemasa para Bacilli.
Un ejemplo de marcadores seleccionables adecuados
para células mamíferas sonaquellos que permiten la identificación
de células competentes que llevan el ácido nucleico del polipéptido
PRO, como la DHFR o la timidina quinasa. Una célula huésped
apropiada cuando se emplea la DHFR salvaje es la línea celular CHO
deficiente en DHFR, preparada y propagada como se describe por
Urlaub y col., Proc. Natl., Acad. Sci. USA 77:4216 (1980). El gen
trp1 presente en el plásmido de levadura YRp7 es un gen de
selección adecuado para ser usado en levadura [Stinchcomb y col.,
Nature, 282:39 (1979); Kingsman y col., Gene, 7:141 (1979);
Tschemper y col., Gene,10:157 (1980)]. El gen trp1
proporciona un marcador de selección para una cepa mutante de
levadura a la que le falta la habilidad de crecer en triptófano, por
ejemplo, ATCC Nº 44076 o PEP4-1 [Jones
Genetics,85:12 (1977)].
Los vectores de expresión y clonaje habitualmente
contienen un promotor unido operativamente a la secuencia de ácido
nucleico del polipéptido PRO para dirigir la síntesis del mRNA. Se
conocen promotores reconocidos por una variedad de potenciales
células huésped. Los promotores adecuados para ser usados en
huéspedes procariotas incluyen los sistemas de promotores de la
\beta-lactamasa y la lactosa [Chang y col.,
Nature, 275:615 (1978); Goeddel y col., Nature, 281:544 (1979)], la
fosfatasa alcalina, un sistema de promotor del triptófano (trp)
[Goeddel, Nucleic Acids Res., 8:4057 (1980); patente europea EP
36.776], y promotores híbridos como el promotor tac [deBoer u col.,
Proc Natl. Acad. Sci. USA, 80:21-25 (1983)]. Los
promotores para uso en sistemas bacterianos también contendrán una
secuencia Shine-Dalgarno (S. D.) unida
operativamente al DNA que codifica por el polipéptido PRO
deseado.
Entre los ejemplos de secuencias promotoras
adecuadas para ser usadas en huéspedes de levadura se incluyen los
promotores para la 3-fosfoglicerato quinasa
[Hitzeman y col., J. Biol. Chem., 255:2073 (1980)] u otros enzimas
glicolíticos [Hess y col., J. Adv. Enzyme Reg., 7: 149 (1968);
Holland, Biochemistry, 17:4900 (1978)], tales como la enolasa, la
gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenasa, la hexoquinasa, la piruvato decarboxilasa, la
fosfofructoquinasa, la
glucosa-6-fosfato isomerasa, la
3-fosfoglicerato mutasa, la piruvato quinasa, la
triosafosfato isomerasa, la fosfoglucosa isomerasa y la
glucoquinasa.
Otros promotores de levaduras, promotores
inducibles con la ventaja adicional de tener la transcripción
controlada por las condiciones de crecimiento, son las regiones
promotoras de la alcohol deshidrogenasa 2, el isocitocromo C, la
fosfatasa ácida, las enzimas degradadoras asociadas con el
metabolismo del nitrógeno, metalotioneína, la
gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenasa, y enzimas responsables de la utilización de maltosa
y galactosa. En la patente europea EP 73.657 se describen vectores
adecuados y promotores para ser usados en la expresión en
levaduras.
La transcripción del polipéptido PRO a partir de
vectores en células huésped mamíferas se controla, por ejemplo,
mediante promotores obtenidos a partir de genomas de virus como el
virus del polioma, el virus de la viruela aviar (patente inglesa UK
2.211.504 publicada el 5 de julio de 1989), el adenovirus (como el
adenovirus 2), el virus del papiloma bovino, el virus del sarcoma
aviar, el citomegalovirus, un retrovirus, el virus de la hepatitis
B, y el virus del simio 40 (SV40), a partir de promotores
heterólogos de mamíferos, p.ej., el promotor de la actina o un
promotor de inmunoglobulina, y a partir de promotores de choque
térmico, siempre que dichos promotores sean compatibles con el
sistema de célula huésped.
La transcripción de un DNA que codifica para el
polipéptido PRO deseado en eucariotas superiores puede incrementarse
insertando una secuencia intensificadora en el vector. Los
intensificadores son elementos del DNA que actúan en cis,
habitualmente de alrededor de 10 a 300 pb, que actúan sobre un
promotor para aumentar su transcripción. Actualmente se conocen
muchas secuencias intensificadoras de genes mamíferos (globina,
elastasa, albúmina, \alpha-fetoproteína e
insulina). Típicamente, sin embargo, se usará un intensificador de
un virus de célula eucariota. Los ejemplos incluyen el
intensificador SV40 en el sitio tardío del origen de replicación (pb
100-270), el intensificador del promotor temprano
del citomegalovirus, el intensificador del polioma en el sitio
tardío del origen de replicación, e intensificadores de adenovirus.
El intensificador puede empalmarse en el vector en la posición 5' o
3' de la secuencia codificante del polipéptido PRO, pero es
preferible que esté localizado en el sitio 5' del promotor.
Los vectores de expresión usados en células
huésped eucariotas (de levaduras, hongos, insectos, plantas,
animales, humanos o células nucleadas de otros organismos
multicelulares) contendrán también secuencias necesarias para la
terminación de la transcripción y para la estabilización del mRNA.
Dichas secuencias están disponibles comúnmente en las regiones no
traducidas en 5' y ocasionalmente en 3' de DNAs o cDNAs
eucarióticos o virales. Estas regiones contienen segmentos
nucleotídicos transcritos como fragmentos poliadenilados en la
región no traducida del mRNA que codifica para los polipéptidos
PRO.
Aún se describen otros métodos, vectores y
células huésped adecuadas para ser adaptadas a la síntesis de
polipéptidos PRO en cultivo de células de vertebrados recombinantes
en Gething y col., Nature,293:620-625 (1981); Mantei
y col., Nature, 281:40-46 (1979); patente europea
EP 117.060; y patente europea EP117.058.
La amplificación génica y/o la expresión pueden
medirse directamente en una muestra, por ejemplo, mediante
transferencia de Southern convencional o transferencia de Northern
para cuantificar la transcripción del mRNA [Thomas, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, 77:5201-5205 (1980)], transferencia
de puntos (análisis de DNA), o hibridación in situ, usando
una sonda adecuada marcada, basada en las secuencias proporcionadas
aquí. Alternativamente, pueden usarse anticuerpos que pueden
reconocer dúplex específicos, incluidos dúplex de DNA, de RNA y
dúplex híbridos de DNA-RNA o
DNA-proteína. Los anticuerpos a su vez pueden estar
marcados y el ensayo puede llevarse a cabo en donde el dúplex esté
unido a una superficie, por lo que una vez se ha formado el dúplex
en la superficie, puede detectarse la presencia del anticuerpo unido
al dúplex.
La expresión génica puede medirse de forma
alternativa mediante métodos inmunológicos, tales como tinción
inmunohistoquímica de las células o secciones de tejido y ensayos
del cultivo celular o de los fluidos corporales, para cuantificar
directamente la expresión del producto del gen. Los anticuerpos
útiles para la tinción inmunohistoquímica y/o ensayos sobre fluidos
de la muestra pueden ser tanto monoclonales como policlonales y
pueden prepararse en cualquier animal. Es conveniente que los
anticuerpos puedan preparase contra la secuencia nativa del
polipéptido PRO o contra un péptido sintético basado en las
secuencias de DNA proporcionadas aquí o contra una secuencia exógena
fusionada al DNA del polipéptido PRO y que codifique por un epitopo
del anticuerpo específico.
Las formas del polipéptido PRO pueden ser
recuperadas del medio de cultivo o de los lisados de las células
huésped. Si están unidos a membrana, pueden liberarse de la
membrana mediante una solución de detergente adecuada (p.ej.,
Tritón-X 100) o por ruptura enzimática. Las células
empleadas en la expresión del polipéptido PRO pueden romperse a
través de diversos mecanismos físicos o químicos como ciclos de
congelación y descongelación, sonicación, ruptura mecánica o
agentes que lisan las células.
Puede desearse purificar los polipéptido PROs a
partir de proteínas celulares recombinantes o polipéptidos. Los
siguientes métodos son ejemplos de procedimientos de purificación
adecuados: por fraccionamiento o por columna de intercambio iónico;
precipitación con etanol; HPLC de fase reversa; cromatografía sobre
sílice o sobre una resina de intercambio catiónico como DEAE;
cromatoenfoque; SDS-PAGE; precipitación con
persulfato amónico; filtración en gel usando, por ejemplo, Sephadex
G-75; columnas de proteína A Sepharose para
eliminar contaminantes como IgG; y columnas quelantes de metales
para unirse a las formas epitopo-etiqueta del
polipéptido PRO. Pueden usarse diversos métodos de purificación de
proteínas, métodos conocidos en el área y descritos por ejemplo en
Deutscher, Methods in Enzymology, 182 (1990); Scopes, Protein
Purification: Principles and Practice,
Springer-Verlag, New York (1982). El/Los
paso(s) de purificación dependerán, por ejemplo, de la
naturaleza del proceso de producción usado y en particular del
polipéptido PRO sintetizado.
Las secuencias nucleotídicas (o sus
complementarias) que codifican para los polipéptidos PRO de la
presente invención tienen diversas aplicaciones en el área de la
biología molecular, incluyendo usos como sondas de hibridación, en
mapeo cromosómico y génico y en la generación de RNA antisentido y
DNA. El ácido nucleico que codifica para el polipéptido PRO puede
también ser útil para la preparación de polipéptidos PRO mediante
las técnicas recombinantes descritas aquí.
La secuencia nativa completa del ácido nucleico
que codifica para el polipéptido PRO o porciones de la misma, pueden
usarse como sondas sobre una librería de cDNA para aislar el gen
del polipéptido PRO completo o para aislar incluso otros genes (por
ejemplo, aquellos que codifican para variantes naturales del
polipéptido PRO o polipéptidos PRO de otras especies) que tienen una
identidad de secuencia con las secuencias nucleicas del polipéptido
PRO. Opcionalmente, la longitud de las sondas podrá ser de
alrededor de 20 a 50 bases. Las sondas de hibridación pueden
derivarse de la secuencia nucleotídica de cualquiera de las
moléculas de DNA descritas aquí o a partir de secuencias genómicas
incluyendo promotores, elementos intensificadores e intrones de la
secuencia de DNA nativa que codifica para el polipéptido PRO. A modo
de ejemplo, un método de cribaje comprenderá el aislamiento de la
región codificante del gen del polipéptido PRO usando la secuencia
de DNA conocida para sintetizar una sonda seleccionada de unas 40
bases. Las sondas de hibridación pueden marcarse con diversos
marcadores, incluyendo radionucleótidos como P^{32} o S^{35}, o
marcadores enzimáticos tales como fosfatasa alcalina acoplada con la
sonda vía sistemas de acoplamiento avidina/biotina. Las sondas
marcadas que tienen una secuencia complementaria a la del gen del
polipéptido PRO específico de la presente invención pueden usarse
para analizar librerías de cDNA humano, DNA genómico o mRNA para
determinar a qué miembros de dichas librerías hibrida la sonda. Las
técnicas de hibridación se describen en más detalle más adelante en
la sección de Ejemplos.
Los ESTs descritos en la aplicación presente
pueden ser usados de forma similar como sondas, utilizando los
métodos descritos aquí.
Las sondas pueden usarse también en técnicas de
PCR para generar un banco de secuencias para la identificación de
secuencias íntimamente relacionadas con el polipéptido PRO.
Las secuencias que codifican para el polipéptido
PRO pueden usarse también para construir sondas de hibridación que
permitan mapear el gen que codifica para ese polipéptido PRO y para
el análisis genético de individuos con desórdenes genéticos. Las
secuencias nucleotídicas proporcionadas aquí pueden ser mapeadas en
un cromosoma y a regiones específicas de un cromosoma usando
técnicas conocidas como la hibridación in situ, el análisis
de ligamiento contra marcadores cromosómicos conocidos, y el
análisis de hibridación con librerías.
Cuando la secuencia codificante para el
polipéptido PRO codifica una proteína que se une a otra proteína,
el polipéptido PRO puede usarse en ensayos para identificar sus
ligandos. De forma similar, se pueden identificar inhibidores de la
unión receptor/ligando. Las proteínas implicadas en dichas
interacciones de unión pueden usarse también para la búsqueda de
péptidos o pequeñas moléculas inhibidoras o agonistas de la
interacción de unión. Los ensayos de cribaje pueden usarse para
encontrar compuestos líderes que imitan la actividad biológica del
polipéptido PRO nativo o de un ligando del polipéptido PRO. Dichos
ensayos de cribaje incluirán ensayos susceptibles de analizar
librerías químicas a gran escala, haciéndolos particularmente
adecuados para la identificación de pequeñas moléculas candidatas a
fármacos. Las pequeñas moléculas contempladas incluyen compuestos
sintéticos orgánicos o inorgánicos. Los ensayos pueden realizarse
en diversos formatos, incluyendo ensayos de unión
proteína-proteína, ensayos de análisis bioquímico,
inmunoensayos y ensayos basados en células, que están bien
caracterizados en el área.
Los ácidos nucleicos que codifican para el
polipéptido PRO o sus formas modificadas pueden usarse también para
generar tanto animales transgénicos como animales "knock out",
los cuales, a su vez, son útiles en el desarrollo y análisis de
reactivos útiles terapéuticamente. Un animal transgénico (p.ej., un
ratón o una rata) es un animal que presenta células que contienen un
transgen, el cual se introdujo en el animal o en un ancestro del
animal en un estadio prenatal, p.ej., estadio embrional. Un
transgen es un DNA que se ha integrado en el genoma de una célula a
partir de la cual se desarrolla el animal transgénico. En una
realización, el cDNA que codifica para el polipéptido PRO de interés
puede usarse para clonar el DNA genómico que codifica para el
polipéptido PRO según técnicas establecidas y las secuencias
genómicas serán usadas para generar los animales transgénicos que
contienen células que expresan el DNA que codifica para el
polipéptido PRO. Los métodos para generar animales transgénicos,
particularmente animales tales como ratones o ratas, han llegado a
ser convencionales dentro del área, por ejemplo en las patentes
americanas U.S. 4.736.866 y 4.870.009. Determinadas células podrían
ser diana para la incorporación del transgen que codifica para el
polipéptido PRO mediante intensificadores específicos de tejido. Los
animales transgénicos que incluyen una copia del transgen que
codifica para el polipéptido PRO, introducido en la línea germinal
del animal en un estadio embrional, pueden usarse para examinar el
efecto del aumento de la expresión del DNA que codifica para el
polipéptido PRO. Dichos animales pueden usarse como animales de
análisis para reactivos que confieran protección frente, a por
ejemplo, condiciones patológicas asociadas con su sobreexpresión.
En concordancia con esta faceta de la invención, un animal es
tratado con el reactivo de forma que una reducción de la incidencia
de la condición patológica, comparado con animales no tratados que
llevan el transgen, indicaría un potencial terapéutico de la
intervención para la condición patológica.
Alternativamente, pueden usarse homólogos
no-humanos de los polipéptidos PRO para construir un
animal "knock out" para el polipéptido PRO el cual presenta un
gen, que codifica para el polipéptido PRO de interés, defectivo o
alterado como resultado de la recombinación homóloga entre el gen
endógeno que codifica para el polipéptido PRO y el DNA genómico
alterado que codifica para el polipéptido PRO introducido en una
célula embrional del animal. Por ejemplo, el cDNA que codifica para
el polipéptido PRO puede usarse para clonar el DNA genómico que
codifica para el polipéptido PRO según técnicas establecidas. Una
porción del DNA genómico que codifica para el polipéptido PRO puede
ser eliminada o reemplazada por otro gen, como por un gen que
codifique para un marcador seleccionable que puede utilizarse para
monitorizar la integración. Típicamente se incluyen en el vector
varias kilobases de secuencia de DNA flanqueante no modificada
(tanto en el extremo 5' como en el 3') [véase ej., Thomas and
Capecchi, Cell, 51:503 (1987) para la descripción de vectores de
recombinación homóloga]. El vector se introduce en una línea de
célula madre embrional (ej., por electroporación) y se seleccionan
aquellas células en las que el DNA introducido se ha recombinado
homólogamente con el DNA endógeno [véase ej., Li y col.,Cell,69:915
(1992)]. Las células seleccionadas se inyectan en un blastocito del
animal (ej., un ratón o una rata) para formar quimeras de
agregación [véase ej., Bradley, in Teratocarcinomas and Embryonic
Stem Cells: A practical Approach, E.J. Robertson,ed (IRL, Oxford,
1987), pp. 113-152]. Un embrión quimérico puede
entonces implantarse en un animal adoptivo que sea una hembra
pseudopreñada adecuada y el embrión se llevará a término para
generar el animal "knock out". La progenie que porta el DNA
recombinado homólogamente en sus células germinales puede
identificarse mediante técnicas estándar y puede usarse para
cruzarse con animales en los que todas las células del animal
contienen el DNA recombinado homólogamente. Los animales knockout
pueden ser caracterizados por ejemplo, para su capacidad para
defenderse de ciertas condiciones patológicas y para el desarrollo
de condiciones patológicas debido a la ausencia del polipéptido
PRO.
Cuando se emplea la administración in vivo
de un polipéptido PRO, las dosis normales pueden variar entre 10
ng/kg y 100 mg/kg de peso corporal de un mamífero o más por día,
preferentemente de 1 \mug/kg/día a 10 mg/kg/día, dependiendo de
la vía de administración. En la literatura se provee de una guía
sobre dosis particulares y métodos de administración; véase, por
ejemplo, las patentes americanas U.S. 4.657.760; 5.206.344; ó
5.225.212. Es de esperar, que diferentes formulaciones serán
efectivas para diferentes compuestos de tratamiento y diferentes
desórdenes, que la administración que tiene como objetivo un órgano
o tejido, por ejemplo, puede necesitar ser administrada de manera
diferente a la de otro órgano o tejido.
Donde se desee la administración sostenida de un
polipéptido PRO en una formulación con características de liberación
adecuadas para el tratamiento de cualquier enfermedad o desorden
que requiere la administración del polipéptido PRO, se puede
contemplar la microencapsulación del polipéptido PRO. La
microencapsulación de proteínas recombinantes para liberación
sostenida se ha realizado con éxito con la hormona del crecimiento
humana (rhGH, el interferón-(rhIFN-), la
interleucina-2 y MN rgp120. Johnson y col., Nat.
Med., 2: 795-799 (1996); Yasuda, Biomed. Ther., 27:
1221-1223(1993); Hora y col.,
Bio/Technology, 8:755-758 (1990); Cleland, "Desing
and Production of single Inmunization Vaccines Using Polylactide
Plyglycolide Microsphere Systems." en Vaccine Design: The
Subunit and Adjuvant Approach, Powell y Newman, eds, (Plenum Press:
New York, 1995), pp. 439-462; las patentes
internacionales WO 97/03692, WO 96/40072, WO 96/07399, y patente
americana U.S. 5,654.010.
Las formulaciones de liberación sostenida de
estas proteínas se desarrollaron usando el polímero de ácido
poli-láctico-coglicólico (PLGA)
debido a su biocompatibilidad y al rango amplio de propiedades
biodegradables. Los productos de degradación del PLGA, los ácidos
láctico y glicólico, pueden ser rápidamente aclarados del cuerpo
humano. Además la degradabilidad de este polímero puede ajustarse
desde meses hasta años dependiendo de su peso molecular y su
composición. Lewis, "Controlled release of bioactive agents from
lactide/glycolide polymer", en: M. Chasin y R. Langer (Eds.),
Biodegradable Polymers as Drug Delivery Systems (Marcel Dekker: New
York, 1990, pp. 1-41.
Por ejemplo, para una formulación que pueda
proveer una dosis de aproximadamente 80 g/kg/día en mamíferos con
un peso corporal máximo de 85 kg, la mayor dosis sería
aproximadamente de 6,8 mg del polipéptido PRO por día. Para
conseguir este nivel de dosis, se necesita una formulación de
liberación sostenida que contenga un máximo posible de carga de
proteína (15-20% peso/peso de polipéptido PRO) con
la menor liberación inicial posible (<20%). También es deseable
una liberación continuada (orden cero) del polipéptido PRO a partir
de micropartículas durante 1-2 semanas. Además la
proteína encapsulada que va a ser liberada debe mantener su
integridad y estabilidad durante todo el período de liberación
deseado.
Los polipéptidos PRO617 de la presente invención
que poseen una actividad biológica relacionada con la de la proteína
CD24 pueden emplearse tanto in vivo con propósitos
terapéuticos como in vitro. Los expertos en la materia
sabrán bien como emplear los polipéptidos PRO617 de la presente
invención para tales propósitos.
Los compuestos de la presente invención pueden
ser formulados de acuerdo con métodos conocidos para preparar
composiciones farmacéuticamente útiles, a través de las cuales el
polipéptido PRO se combina en adición con un vehículo
farmacéuticamente aceptable. Se describen vehículos adecuados y sus
formulaciones, inclusive de otras proteínas humanas, p.ej., albúmina
sérica humana en, por ejemplo, Remington's Pharmaceutical Sciences,
16th ed., 1980 Mack PublishingCo., editada por Oslo y col., la
descripción de la cual se incorpora aquí por referencia.
Las dosis y concentraciones deseadas de fármaco
de las composiciones farmacéuticas de la presente invención pueden
variar dependiendo del uso particular pensado. Por ejemplo, en el
tratamiento de la trombosis venosa profunda o de la enfermedad
vascular periférica, se prefieren típicamente dosis en bolo con
administraciones subsecuentes con el objetivo de mantener un nivel
sanguínneo aproximadamente constante preferentemente en el orden de
unos 3 \mug/ml.
Sin embargo, para usarse en conexión con las
instalaciones de asistencia médica de emergencia en donde la
capacidad de infusión generalmente no está disponible y debido a la
naturaleza generalmente crítica de la enfermedad subyacente (p.ej.,
embolismo, infarto), generalmente será deseable proporcionar unas
dosis iniciales mayores, tales como un bolo intravenoso.
La presente invención proporciona además
anticuerpos anti-polipéptido PRO. Se incluyen
ejemplos de anticuerpos que incluyen anticuerpos policlonales,
monoclonales, humanizados, bioespecíficos, y heteroconjugados.
Los anticuerpos contra el polipéptido PRO puede
comprender anticuerpos policlonales. El personal experto en la
materia conoce métodos para la preparación de anticuerpos
policlonales. Los anticuerpos policlonales pueden desarrollarse en
un mamífero, por ejemplo, mediante la administración de una o más
inyecciones de un agente inmunizante, y si se desea un adyuvante.
Típicamente, el agente inmunizante y/o el adyuvante se inyectarán en
el mamífero mediante múltiples inyecciones subcutáneas o
intraperitoneales. El agente inmunizante puede incluir al
polipéptido PRO o a una proteína suya de fusión. Puede ser útil
conjugar el agente inmunizante con una proteína que se conozca como
inmunogénica en el mamífero que va a ser inmunizado. Entre los
ejemplos de dichas proteínas inmunogénicas se incluyen, aunque no
están limitados a ellos, la hemocianina de lapa, la albúmina
sérica, la tiroglobulina bovina y el inhibidor de la tripsina de
soja. Entre los ejemplos de adyuvantes que pueden ser utilizados se
incluyen el adyuvante completo de Freund y el adyuvante
MPL-TDM (monofosforil lípido A, trehalosa sintética
dicorinomicolato). El protocolo de inmunización puede ser
seleccionado por los expertos en la materia.
Los anticuerpos contra el polipéptido PRO pueden
ser alternativamente anticuerpos monoclonales. Los anticuerpos
monoclonales pueden prepararse usando los métodos de hibridoma,
tales como aquellos descritos por Kohler y Milstein, Nature,256:495
(1975). En un método de hibridoma, un ratón, un hámster u otro
animal huésped adecuado, se inmuniza típicamente con un agente
inmunizante para obtener linfocitos que produzcan o sean capaces de
producir anticuerpos que se unan específicamente al agente
inmunizante. De manera alternativa, los linfocitos pueden ser
inmunizados in vitro.
Típicamente, el agente inmunizante incluirá el
polipéptido PRO de interés o una proteína de fusión del mismo.
Generalmente, se usan o bien linfocitos de sangre periférica
("PBLs") si se desean células de origen humano, o células de
bazo o células de nódulos linfáticos si se desean fuentes de
mamíferos no humanos. Los linfocitos entonces se fusionan con una
línea celular inmortalizada usando un agente de fusión adecuado,
como polietilenglicol, para formar una célula de hibridoma [Goding,
Monoclonal Antibodies: Principles and Practice, Academic Press,
(1986) pp. 59-103]. Habitualmente las líneas
celulares inmortalizadas son células de mamífero transformadas,
particularmente células de mieloma de roedores, de origen bovino y
de origen humano. Habitualmente se usan líneas celulares de mieloma
de rata o ratón. Las células de hibridoma pueden cultivarse en
medios de cultivo adecuados que preferentemente contienen una o más
sustancias que inhiben el crecimiento o la supervivencia de las
células inmortalizadas no fusionadas. Por ejemplo, si a las células
parentales les falta el enzima hipoxantina guanina fosforibosil
transferasa (HGPRT o HPRT), el medio de cultivo de los hibridomas
incluirá típicamente hipoxantina, aminopterina, y timidina ("medio
HAT"), substancias que impiden el crecimiento de células
deficientes en HGPRT.
Las líneas celulares inmortalizadas preferidas
son aquellas que se fusionan eficientemente, que sostienen niveles
estables elevados de expresión del anticuerpo por las células
seleccionadas productoras de anticuerpo, y que son sensibles a
medios tales como el medio HAT. Las líneas de mieloma murino se
encuentran entre las células inmortalizadas más preferidas, las
cuales pueden obtenerse, por ejemplo, del Salk Institute Cell
Distribution Center, San Diego, California y de la American Type
Culture Collection, Rockville, Maryland. También se han descrito
para la producción de anticuerpos monoclonales humanos las líneas
celulares de mieloma humano y de heteromieloma
ratón-humano [Kozbor, J. Immunol., 133:3001 (1984);
Brodeur y col., Monoclonal Antibody Production Techniques and
Applications, Marcel Dekker, Inc, New York, (1987) pp.
51-63].
El medio de cultivo en el que se cultivan las
células de hibridoma puede ser analizado para determinar la
presencia de anticuerpos monoclonales dirigidos contra el
polipéptido PRO de interés. Preferentemente, la especificidad de
unión de anticuerpos monoclonales producidos por las células de
hibridoma se determina por inmunoprecipitación o mediante un ensayo
de unión in vitro, tal como un radioinmunoensayo (RIA) o un
ensayo inmunoabsorbente unido a enzimas (ELISA). Dichas técnicas y
ensayos son conocidas en el área. La afinidad de unión del
anticuerpo monoclonal puede ser determinada, por ejemplo, mediante
el análisis de Scatchard de Munson y Pollard, Anal. Biochem.,
107:220 (1980).
Después de que las células de hibridoma deseadas
hayan sido identificadas, los clones pueden subclonarse mediante
procedimientos de dilución limitante y crecimiento según métodos
estándar [Goding, supra]. El medio adecuado para este
propósito incluye, por ejemplo, medios como el Dulbecco's Modified
Eagle's Medium y el RPMI-1640. Alternativamente,
las células de hibridoma pueden crecer in vivo como ascitas
en un mamífero.
Los anticuerpos monoclonales secretados por los
subclones pueden ser aislados o purificados a partir del medio de
cultivo o del fluido de los ascitas mediante procedimientos
convencionales de purificación de inmunoglobulinas tales como,
proteína-A-Sepharose, cromatografía
en hidroxilapatita, electroforesis en gel, diálisis o cromatografía
de afinidad.
Los anticuerpos monoclonales pueden prepararse
también mediante métodos de DNA recombinante, tales como los
descritos en la patente americana U.S. 4.816.567. El DNA que
codifica para los anticuerpos monoclonales de la invención puede
aislarse fácilmente y secuenciarse usando procedimientos
convencionales (p.ej., usando sondas de oligonucleótidos que son
capaces de unirse específicamente a los genes que codifican para
las cadenas pesada y ligera de los anticuerpos murinos). Las
células de hibridoma de la invención sirven como fuente preferente
de dicho DNA. Una vez aislado, el DNA puede incorporarse en
vectores de expresión, los cuales son entonces transfectados en
células huésped como las células de simio COS, las células de
ovario de hámster chino (CHO), o células de mieloma que de lo
contrario no producirían la proteína inmunoglobulina, para obtener
la síntesis de anticuerpos monoclonales en las células huésped
recombinantes. El DNA puede modificarse también, por ejemplo,
substituyendo la secuencia codificante para los dominios constantes
humanos de las cadenas pesada y ligera en lugar de las secuencias
murinas homólogas [patente americana U.S. 4.816.567; Morrison y
col., supra] o por la unión covalente de toda o parte de la
secuencia codificante para un polipéptido no inmunoglobulina a la
secuencia codificante para la inmunoglobulina. Dicho polipéptido no
inmunoglobulina puede sustituirse por los dominios constantes de un
anticuerpo de la invención, o puede ser sustituido por los dominios
variables de un sitio de combinación de antígeno de un anticuerpo de
la invención para crear un anticuerpo quimérico bivalente.
Los anticuerpos pueden ser anticuerpos
monovalentes. Los métodos para preparar anticuerpos monovalentes son
bien conocidos en el área. Por ejemplo, un método implica la
expresión recombinante de una cadena ligera de la inmunoglobulina y
una cadena pesada modificada. La cadena pesada se trunca
generalmente en cualquier punto de la región Fc para prevenir la
unión de la cadena pesada. Alternativamente, los residuos de
cisteína relevantes se sustituyen por otro residuo aminoacídico o
se delecionan para prevenir la unión.
También son adecuados métodos in vitro
para preparar anticuerpos monovalentes. La digestión de los
anticuerpos para producir fragmentos de los mismos, particularmente
fragmentos Fab, puede conseguirse usando técnicas de rutina
conocidas en el área.
Los anticuerpos anti-polipéptido
PRO de la invención pueden además comprender anticuerpos humanizados
o anticuerpos humanos. Las formas humanizadas de anticuerpos
no-humanos (p.ej., murinos) son inmunoglobulinas
quiméricas, cadenas de inmunoglobulinas o sus fragmentos (tales
como Fv, Fab, Fab', F(ab)_{2} u otras subsecuencias
de anticuerpos de unión a antígeno) que contienen una secuencia
mínima derivada de una inmunoglobulina no humana. Los anticuerpos
humanizados incluyen inmunoglobulinas humanas (anticuerpo receptor)
en las cuales se substituyen residuos de una región determinante
complementaria (CDR) del receptor por residuos de un CDR de
especies no humanas (anticuerpo donador) como ratón, rata o conejo
que tengan la especificidad, afinidad y capacidad deseadas. En
algunos casos, se reemplazan residuos de la región de
entrecruzamiento Fv de la inmunoglobulina humana por los residuos no
humanos correspondientes. Los anticuerpos humanizados pueden
comprender también residuos que no se encuentran ni en el
anticuerpo receptor ni en el CDR importado o en secuencias de la
región de entrecruzamiento. En general el anticuerpo humanizado
comprenderá substancialmente todos o al menos un, y típicamente dos,
dominios variables, en el cual todas o substancialmente todas las
regiones CDR corresponden a las de una inmunoglobulina no humana y
todas o substancialmente todas las regiones FR son las de una
secuencia de consenso de una inmunoglobulina humana. El anticuerpo
humanizado, óptimamente también comprenderá al menos una porción de
una región constante de una inmunoglobulina (Fc), típicamente
aquella de una inmunoglobulina humana [Jones y col., Nature,321:
522-525 (1986); Riechmann y col., Nature, 332:
323-329 (1988); y Presta, Curr. Op. Struct. Biol.,
2: 593-596 (1992)].
Se conocen bien en el área métodos para humanizar
anticuerpos no humanos. Generalmente, un anticuerpo humanizado tiene
un o más residuos aminoacídicos introducidos en él a partir de una
fuente que no es humana. Estos residuos aminoacídicos
no-humanos se denominan con frecuencia como residuos
"de importación", los cuales típicamente son tomados de un
dominio variable "de importación". La humanización puede ser
realizada esencialmente siguiendo el método de Winter y
colaboradores [Jones y col., Nature, 321:522-525
(1986); Riechmann y col., Nature,332:323-327
(1988); Verhoeyen y col., Science, 239: 1534-1536
(1988)], substituyendo CDRs de roedor o secuencias CDR por las
secuencias correspondientes a un anticuerpo humano. Por
consiguiente, tales anticuerpos "humanizados" son anticuerpos
quiméricos (patente americana U.S. 4.816.567), en donde
substancialmente menos de un dominio variable humano intacto ha
sido substituido por la secuencia correspondiente de una especie
no-humana. En la práctica los anticuerpos
humanizados son típicamente anticuerpos humanos en los que algunos
residuos CDR y posiblemente algunos residuos FR se substituyen por
residuos de sitios análogos en anticuerpos de roedores.
Los anticuerpos humanos pueden producirse también
usando diversas técnicas conocidas en el área, incluyendo librerías
de expresión en fagos [Hoogenboom y Winter, J. Mol. Biol., 227:381
(1991); Marks y col., J. Mol. Biol., 222:581 (1991)]. Las técnicas
de Cole y col. y Boerner y col. están también disponibles para la
preparación de anticuerpos monoclonales humanos (Cole y col.,
Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, p.77 (1985)
y Boerner y col., J Inmunol., 147(1):86-95
(1991)].
Los anticuerpos biespecíficos son anticuerpos
monoclonales, preferentemente humanos o humanizados que tienen
especificidad de unión para al menos dos antígenos diferentes. En
el caso presente, una de las especificidades de unión es por el
polipéptido PRO, y la otra es por cualquier otro antígeno,
preferentemente por una proteína de superficie celular o un receptor
o una subunidad de receptor.
Los métodos para hacer anticuerpos biespecíficos
son conocidos en el área. Tradicionalmente, la producción
recombinante de anticuerpos biespecíficos se basa en la
co-expresión de 2 parejas de inmunoglobulina de
cadena pesada/cadena ligera, en donde las dos cadenas pesadas
tienen especificidades diferentes [Milstein y Cuello, Nature,
305:537-539 (1983)]. Debido a la aleatoria variedad
de cadenas pesadas y ligeras de las inmunoglobulinas, estos
hibridomas (cuadromas) producen una mezcla potencial de diez
moléculas de anticuerpo diferentes, de los cuales sólo una tiene la
estructura biespecífica correcta. La purificación de la molécula
correcta habitualmente se consigue mediante etapas de cromatografía
de afinidad. Se describen procedimientos similares en la patente
internacional WO 93/08829 publicada el 13 de Mayo de 1993 y en
Traunecker y col., EMBO J., 10:3655-3659 (1991).
Se pueden fusionar dominios variables de
anticuerpos con las especificidades de unión deseadas (sitios de
combinación antígeno-anticuerpo) con secuencias de
dominios constantes de inmunoglobulinas. La fusión preferentemente
se produce con un dominio constante de cadena pesada de
inmunoglobulina, que comprende al menos parte de la bisagra, y las
regiones CH2 y CH3. Se prefiere que la primera región constante de
cadena pesada (CH1) contenga el sitio necesario para la unión de
la cadena ligera presente en al menos una de las fusiones. Los DNAs
que codifican para las fusiones de cadena pesada de la
inmunoglobulina y, si se desea, la cadena ligera de la
inmunoglobulina se insertan en vectores de expresión separados, y
son co-transfectados en un organismo huésped
adecuado. Para más detalles sobre la generación de anticuerpos
biespecíficos, véase, por ejemplo, Suresh y col., Methods in
Enzymology, 121: 210 (1986).
Los anticuerpos heteroconjugados están también
dentro del ámbito de la presente invención. Los anticuerpos
heteroconjugados se componen de dos anticuerpos unidos
covalentemente. Tales anticuerpos, por ejemplo, han sido propuestos
para dirigir células del sistema inmune hacia células no deseadas
[patente americana U.S. 4.676.980], y para el tratamiento de la
infección por VIH [patentes internacionales WO 91/00360; WO
92/2000373; patente europea EP 03089]. Se contempla que los
anticuerpos puedan prepararse in vitro usando métodos
conocidos en la química sintética de proteínas, incluyendo aquellos
que implican agentes de unión. Por ejemplo, las inmunotoxinas
pueden construirse usando una reacción de intercambio de disulfuro
o formando un enlace tioéter. Entre los ejemplos de reactivos
adecuados para este propósito se incluyen el iminotiolato y el
metil-4-mercaptobutirimidato y
aquellos descritos, por ejemplo en la patente americana U.S.
4.676.980.
Los anticuerpos anti-polipéptido
PRO de la invención tienen diversas utilidades. Por ejemplo, los
anticuerpos anti-polipéptido PRO pueden usarse en
ensayos de diagnóstico para un polipéptido PRO, p.ej., detectando
su expresión en células, tejidos o sueros específicos. Pueden
usarse diversas técnicas de diagnóstico conocidas en el área, tales
como los ensayos de unión competitiva, ensayos de sándwich directos
o indirectos y ensayos de inmunoprecipitación realizados tanto en
fases heterogéneas como homogéneas [Zola, Monoclonal Antibodies: A
Manual of Techniques, CRC Press, Inc. (1987) pp.
147-158]. Los anticuerpos usados en los ensayos de
diagnóstico pueden marcarse con una fracción detectable. La fracción
detectable debería ser capaz de producir, directa o indirectamente,
una señal detectable. Por ejemplo, la fracción detectable puede ser
un radioisótopo, como H^{3}, C^{14}, P^{32}, S^{35}, o
I^{125}, un compuesto fluorescente o quimioluminiscente, como el
isotiocianato de fluoresceína, la rodamina o la luciferina, o bien
un enzima como la fosfatasa alcalina, la
beta-galactosidasa o la peroxidasa de rábano. Puede
emplearse cualquier método conocido en el área para conjugar el
anticuerpo con la fracción detectable, incluyendo aquellos métodos
descritos por Hunter y col., Nature, 144: 945 (1962); David y col.,
Biochemistry,13: 1014 (1974); Pain y col., J. Immunol. Meth., 40:
219 (1981); y Nygren, J. Histochem. and Cytochem., 30:407
(1982).
Los anticuerpos anti-polipéptido
PRO pueden ser útiles también para la purificación por afinidad del
polipéptido PRO a partir de cultivos celulares recombinantes o
fuentes naturales. En este proceso, los anticuerpos contra el
polipéptido PRO están inmovilizados sobre un soporte adecuado, como
Sephadex o papel de filtro, usando métodos bien conocidos en el
área. El anticuerpo inmovilizado se pone entonces en contacto con
una muestra que contenga el polipéptido PRO a purificar, y a partir
de entonces se lava el soporte con un solvente adecuado que
eliminará substancialmente todo el material en la muestra excepto
el polipéptido PRO, el cuál está unido al anticuerpo inmovilizado.
Finalmente, el soporte se lava con otro solvente apropiado que
liberará el polipéptido PRO del anticuerpo.
Se ofrecen los siguientes ejemplos con propósitos
únicamente ilustrativos, y no se pretende de ningún modo limitar el
ámbito de la presente invención.
Los reactivos disponibles comercialmente
nombrados en los ejemplos se usan según las instrucciones del
fabricante a menos que se indique lo contrario. La fuente de las
células identificadas en los siguientes ejemplos, y a lo largo de
toda la especificación, por número de acceso ATCC es la American
Type Culture Collection, Rockville, Maryland.
Las secuencias del dominio extracelular (ECD)
(incluidas las secuencias correspondientes al péptido señal de
secreción, si existía) de alrededor de 950 proteínas conocidas
secretadas procedentes del banco de datos público
Swiss-Prot se utilizaron para la búsqueda de bancos
de datos EST. Los bancos de datos EST, incluyeron los bancos de
datos públicos (p.ej., Dayhoff, GenBank), y bancos de datos en
propiedad (p.ej., LIFESEC^{TM}, Incyte Pharmaceuticals, Palo Alto,
CA). La búsqueda se realizó mediante el programa informático BLAST
o BLAST2 (Altxchul y Gish, Methods in Enzymology 266:
460-480 (1996)) comparando las secuencias de
proteína ECD con secuencias EST en 6 pautas de traducción. Estas
comparaciones con una puntuación en el Blast de 70 (o en algunos
casos 90) o mayor, que no codificaban para proteínas conocidas, se
agruparon y combinaron en secuencias de DNA consenso con el
programa "phrap" (Phil Gree, University of Washington,
Seattle, WA;
(http://bozeman.mbt.washington.edu/phrap.docs/phrap.html).
Mediante esta búsqueda por homología del dominio
extracelular, se ensamblaron secuencias consenso de DNA en relación
a otras secuencias EST identificadas mediante Phrap. Además, las
secuencias de DNA consenso obtenidas, fueron a menudo (pero no
siempre) ampliadas con ciclos repetidos de BLAST y phrap para
aumentar la secuencia consenso tanto como era posible en las fuentes
de secuencias EST descritas más arriba.
En base a las secuencias consenso obtenidas tal
como se ha descrito, se sintetizaron oligonucleótidos y se
utilizaron por PCR para la identificación de una librería de cDNA
que contenía la secuencia de interés y como sondas para el
aislamiento de un clon con la secuencia codificante completa de un
polipéptido PRO. Los cebadores para la PCR, sentido de la
traducción (.f) y antisentido (.r), por lo general de 20 a 30
nucleótidos, se diseñaron frecuentemente para generar un producto
de PCR con un tamaño de 100-1000 bp. La secuencia
consenso es mayor que 1-1.5 kbp. Con el fin de
cribar algunas librerías para un clon de secuencia completa, el DNA
de las librerías se sometió a amplificación por PCR, tal como
Ausubel et al., en Current Protocols in Molecular Biology,
con el par de cebadores de PCR. Una librería positiva se utilizó a
continuación para el aislamiento de clones codificantes para el gen
de interés mediante un oligonucleóótido sonda y uno de los pare de
cebadores.
Las librerías de cDNA utilizadas para el
aislamiento de clones de cDNA se construyeron mediante métodos
estándares con reactivos disponibles comercialmente como los que
facilita la firma Invitrogen, San Diego, CA. El cDNA se cebó con un
oligo dT que contenía una diana NotI, unida con adaptadores romos
SalI tratados con quinasas, se digirió con NotI, se separó por
tamaño en electroforesis en gel y se clonó en una orientación
determinada en un vector de clonado adecuado (como por ejemplo pRKB
o pRKD; pRK5B es un precursor de pRK5D que no contiene lugares
Sfil; Holmes et al., Science, 253: 1278-1280
(1991))en las dianas únicas XhoI y NotI.
El mRNA se aislaba de un tejido humano de interés
mediante los reactivos y protocolos de Invitrogen, San Diego, CA
(Fast Track 2). Este RNA se utilizó para generar una librería de
cDNA oligodT en el vector pRK5D con los reactivos y protocolos de
Life Technologies, Gathersburg, MD (Super Script Plasmid System).
En este procedimiento, el cDNA de doble cadena mayor de 1000 bp, se
separó por tamaño y el que estaba unido a SalI/NotI se clonó en un
vector digerido con XhoI/NotI. pRK5D es un vector de clonaje que
tienen un lugar de inicio de la transcripción sp6 seguido por una
diana de restricción SfiI precedido de las dianas de clonaje
XhoI/NotI.
Una librería de cDNA secundaria se generó para
representar de manera preferencial los extremos 5' de los clones de
cDNA. El RNA Sp6 se generó de una librería primaria (descrita más
arriba) y ese RNA se utilizó para generar una librería de cDNA
cebada aleatoriamente en el vector pSST-AMY.0 con
los reactivos y protocolos de Life Technologies (Super Script
Plasmid System, a los que se ha hecho referencia más arriba). En
este procedimiento, el cDNA de doble cadena se separó por tamaño de
500-1000 bp., se unió a adaptadores romos NotI, con
SfiI y se clonó en un vector digerido por SfiI/NotI.
pSST-AMY.0 es un vector de clonaje que tienen el
promotor de la alcohol deshidrogenasa de levadura precedido por
dianas de clonaje de cDNA y la secuencia de la amilasa de ratón (la
secuencia madura sin la señal de secreción) seguida por el
terminador de la alcohol deshidrogenasa de levadura después de las
dianas de clonaje. Por tanto los cDNAs clonados en ese vector,
fusionados en la misma pauta de lectura con la secuencia de la
amilasa, permitirán la secreción de la amilasa de las colonias de
levaduras convenientemente transfectadas.
El DNA de la librería descrito en el párrafo 2
más arriba, se enfrió en hielo y se añadieron bacterias
electrocompetentes DH10B (Life Technologies, 20 ml). La bacteria y
la mezcla del vector se electroporaron según recomendaciones del
fabricante). A continuación, se añadió medio SOC (Life Technologies,
1 ml) y la mezcla se incubó a 37ºC durante 30 min. Los
transformantes se plaquearon en 20 placas de LB estándares de 150
mm, que contenían ampicilina y se incubaron durante 16 horas
(37ºC). Se aislaron las colonias positivas y se aisló el DNA de los
clones del bacteriano con protocolos estándares, p.ej., gradiente de
CsCl. Con el DNA purificado se procedió según los protocolos de
levadura que siguen.
Los métodos de levadura se separaron en tres
categorías: (1) Transformación de levadura con el plásmido combinado
con el vector de cDNA, (2) Detección y aislamiento de clones de
levadura que secretaban amilasa; (3) amplificación por PCR del
inserto directamente de la colonia de levadura y purificación del
DNA para secuenciación y análisis posteriores.
La cepa de levadura utilizada fue
HD56-5ª (ATCC-90785). Esta cepa
tiene el fenotipo siguiente: MAT alfa, ura3-52,
leu2-3, leu2-112,
his3-11, his3-15, MAL^{+},
SUC^{+}, GAL^{+}. Se suelen emplear de manera preferente,
mutantes de levadura que tienen mecanismos
post-traduccionales deficientes. Estos mutantes
pueden tener alelos deficientes translocados sec71, sec72, sec62,
siendo el sec71 truncado el más preferente. De forma alternativa,
los antagonistas (incluyendo nucleótidos antisentido y/o ligandos)
que interfieren con la acción normal de estos genes, otras proteínas
implicadas en el mecanismo post-traduccional
(p.ej., SEC61p, SEC72p, SEC62p, SEC63p, TDJ1p o
SSA1p-4p) o la formación de complejos de esas
proteínas pueden emplearse en combinación con la levadura que
expresa la amilasa.
La transformación se realizó en base al protocolo
descrito por Gietz et al., Nucl. Acid. Res., 20:1425
(1992). Las células transformadas se inocularon del agar a un medio
complejo de caldo YEPD (100 ml) y se crecieron toda la noche a
30ºC. El caldo de YEPD se preparó tal como está descrito en Kaiser
et al., Methods in Yeast Genetics, Cold Spring Harbor Press,
Cold Spring Harbor, NY, p. 207 (1994). El cultivo de toda la noche
se diluyó hasta 2 x 10^{6} células/ml (aproximadamente
OD_{600}=0,1) en caldo de YEPD (500 ml) y se dejó crecer hasta 1
X 10^{7} células/ml (aproximadamente OD_{600} =
0,4-0,5).
Las células se recogieron y prepararon para la
transformación transfiriéndolas a botellas para el rotor GS3 y se
centrifugaron en el rotor GS3 durante 5 min a 5000 rpm, el
sobrenadante se descartó y a continuación el precipitado se
resuspendió en agua estéril, y se centrifugó otra vez en tubos
falcon de 50 ml a 3500 rpm en una centrífuga Beckman
GS-6KR. El sobrenadante se descartó y las células
se lavaron subsiguientemente con LiAc/TE (10 ml, 10 mM
Tris-HCl, 1mM EDTA pH 7,5, 100 mM
Li_{2}OOCCH_{3}), y se resuspendieron en LiAc/TE (2,5 ml).
La transformación se realizó por la mezcla en
tubos de microcentrífuga de las células preparadas (100 \mul), con
DNA de esperma de salmón de cadena sencilla desnaturalizado
recientemente (Lofstrand Labs, Gaithersburg, MD)y el DNA
transformante (1 \mug, vol < 10 \mul). Las mezcla se mezcló
brevemente en el vórtex y se añadió a continuación, PEG/TE al 40%
(600 ml, 40%
polietilen-glicol-4000, 10 mM
Tris-HCl, 1 mM EDTA, 100 mM Li_{2}OOCCH_{3}, pH
7,5). La mezcla se agitó cuidadosamente en un vaso de reacción
centrifugado en una microfuga a 12000 rpm durante
5-10 segundos, se decantó y resuspendió en TE (500
\mul, 10 mM Tris-ClH, 1mM EDTA, pH 7,5) seguido
por centrifugación. Las células se diluyeron en TE (1 ml) y las
alícuotas (200 \mul) se propagaron en un medio selectivo
previamente preparado en placas de 150 mm (VWR).
De forma alternativa, a pesar de las múltiples
pequeñas reacciones, la transformación se realizó como una reacción
simple a gran escala en la que las cantidades de reactivos se
añadieron proporcionalmente.
El medio selectivo utilizado fue un agar de
dextrosa completamente sintético sin uracilo
(SCD-Ura) preparado como se ha descrito en Kaiser
et al., Methods in Yeast Genetics, Cold Spring Harbor Press,
Cold Spring Harbor, NY, p. 208-210 (1994). Los
transformantes se crecieron a 30ºC durante 2-3
días.
La detección de las colonias que secretaban
amilasa se realizó por inclusión de almidón rojo en el medio
selectivo de crecimiento. El almidón se combinó con el colorante
rojo (Reactive Red-120, Sigma) como en el
procedimiento descrito por Biely et al., Anal. Biochem. 172:
176-179 (1988). El almidón combinado se incorporó a
las placas de agar SCD-Ura a una concentración final
de 0,15% (w/v) y se tamponó con fosfato de potasio hasta un pH de
7,0 (50-100 mM de concentración final).
Las colonias positivas se picaron y se sembraron
en un medio selectivo fresco (en placas de 150 mm) con el fin de
obtener colonias aisladas identificables. Las colonias sencillas
aisladas positivas para la secreción de la amilasa se detectaron
por incorporación directa de almidón rojo en el agar
SCD-Ura tamponado. Las colonias positivas se
determinaron mediante su capacidad para romper el almidón
resultando en un halo claro rodeando las colonias positivas,
visualizable de manera directa.
Cuando se aislaba una colonia positiva, una
pequeña parte se picaba con un asa de siembra y se diluía en agua
estéril (30 \mul) en una placa de 96 pocillos. Las colonias
positivas, en ese punto, se congelaban y guardaban para un análisis
posterior o se amplificaban inmediatamente. Una alícuota de células
(5 \mul) se utilizó como molde para la reacción de PCR en un
volumen de 25 \mul que contenía 0.5 \mul Klentaq (Clontech,
Palo Alto, CA); 4,0 \mul 10 mM dNTPs (Perkin
Elmer-Cetus); 2,5 \mul tampón Kentaq (Clontech);
0,25 \mul oligo de sentido 5' 1; 0,25 \mul oligo
anti-sentido 2; 12,5 \mul agua destilada. La
secuencia del oligonucleótido 1 sentido fue:
5'-TGTAAAACGACGGCCAGTTAAATAGACCTGCAATTATTAATCT-3'(SEC
ID. NO:6)
La secuencia del oligonucleótido
anti-sentido 2 fue:
5'-CAGGAAACAGCTATGACCACCTGCACACCTGCAAATCCATT-3'(SEC
ID. NO:7)
La PCR se realizó como sigue:
a. | Desnaturalización | 92ºC, | 5 min | |
b. | 3 ciclos de | Desnaturalización | 92ºC, | 30 segundos |
Hibridación | 59ºC, | 30 segundos | ||
Extensión | 72ºC, | 60 segundos | ||
c. | 3 ciclos de | Desnaturalización | 92ºC, | 30 segundos |
Hibridación | 57ºC, | 30 segundos | ||
Extensión | 72ºC, | 60 segundos | ||
d. | 25 ciclos de | Desnaturalización | 92ºC, | 30 segundos |
Hibridación | 55ºC, | 30 segundos | ||
Extensión | 72ºC, | 60 segundos | ||
Mantener a | 4ºC |
Las regiones subrayadas de los oligonucleótidos
anillaron con las regiones promotoras de ADH y de la amilasa,
respectivamente, y amplificaron una región de 307 bp del vector
pSST-AMY.0 cuando el inserto no estaba presente. De
forma frecuente, los primeros 18 nucleótidos del extremo 5'-
terminal de esos oligonucleótidos, contenía lugares de hibridación
para los cebadores de secuenciación. Por tanto, el producto de la
reacción de PCR de un vector vacío fue de 343 bp. Sin embargo, la
secuencia señal fusionada con el cDNA resultó en secuencias largas
de nucleótidos.
A continuación de la PCR, una alícuota de la
reacción (5 \mul) se examinó por electroforesis en gel de agarosa
al 1% en tampón Tris-Borato-EDTA
(TBE) tal como se describió en Sambrook et al.,
supra. Los clones resultantes, en un único producto de PCR
mayor que 400 bp, se analizaron por secuenciación después de la
purificación con un equipo de columnas 96 Qiaquick PCR (Qiagen
Inc., Chtsworth. CA).
Una secuencia consenso se obtuvo en relación a
una variedad de secuencias EST tal como se ha descrito en el Ejemplo
1, más arriba, donde la secuencia consenso obtenida se denomina
DNA42798. En base a la secuencia DNA42698, se sintetizaron los
oligonucleótidos: 1) para identificar por PCR una librería de cDNA
que contenía la secuencia de interés, y 2) para usar como sondas
para el aislamiento de un clon de secuencia completa de la
secuencia codificante para PRO617.
Se sintetizaron un par de cebadores de PCR
(sentido y anti-sentido):
Cebador PCR sentido
5'-ACGGGCACACTGGATCCCAAATG-3' (SEC.
ID NO: 3)
Cebador PCR anti-sentido
5'-GGTAGAGATGTAGAAGGGCAAGCAAGACC-3'
(SEC. ID NO: 4)
De forma adicional, un oligonucleótido sintético
para utilizar como sonda de hibridación, se construyó a partir de
la secuencia consenso DNA42798 que tenía la siguiente secuencia de
nucleótidos como sonda de hibridación.
5'-GCTCCCTACCCGTGCAGGTTTCTTCATTTGTTCCTTTAACCAGTATGCCG-3'(SEC
ID. NO:5)
Con el fin de cribar algunas librerías como
fuente de clones de secuencia completa, el DNA de librerías se
sometió a amplificación por PCR con los cebadores de PCR
identificados más arriba. Una librería positiva se utilizó después
para el aislamiento de clones que codificaban para el gen PRO617 con
la sonda de oligonucleótidos y uno de los cebadores de PCR. El RNA
para la construcción de las librerías de cDNA se aisló de tejido
humano fetal de riñón (LIB227).
La secuenciación del DNA de los clones aislados
tal como se ha descrito más arriba rindió la secuencia completa de
DNA para PRO617 [designado como UNQ353
(DNA48309-1280)] (SEC ID NO:1) y la secuencia
derivada de la proteína para PRO617.
La secuencia completa de nucleótidos de
UNQ353(DNA 48309-1280) se muestra en la
Figura 32 (SEC ID NO.1). El clon UNQ353
(DNA48309-1280) contiene una pauta abierta de
lectura única con un lugar de inicio de la traducción aparente en
las posiciones de nucleotídicas 723-725 y un codón
de parada (codón de parada) en las posiciones nucleotídicas
924-926 (Figura 1). El precursor polipeptídico
predicho es de 67 aminoácidos de largo (Figura 2). La proteína
PRO617 completa se muestra en la Figura 2 y tiene un peso molecular
estimado alrededor de 6,981 daltons y un pI de 7,47. El análisis de
la secuencia aminoacídica de PRO617 evidencia la existencia de una
señal putativa peptídica de alrededor de 15 aminoácidos desde el
aminoácido 27 y un lugar de fosforilación putativo para protein
kinasa C desde el aminoácido 41 al 43. El clon UNQ353
(DNA48309-1280) ha sido depositado el 5 de Marzo,
1998 en la ATCC y se le asignó un número de depósito ATCC no.
209656.
El análisis de la secuencia de aminoácidos de la
secuencia completa del polipéptido PRO617, sugiere que posee una
homología significativa con la proteína CD24, indicando que el
polipéptido PRO617 puede ser un nuevo homólogo de CD24. Más
específico, un análisis del banco de datos Dayhoff (versión 35.45
SwissProt 35) evidenció una homología significativa entre la
secuencia aminoacídica de PRO617 y las siguientes secuencias de
Dayhoff, CD24_HUMANA, CD24_RATÓN, CD24_RATA, VGE BPG4, MSE5_HUMANA,
HSMHC3W36A_2, MLU15184_8, P R85075, SEPI_HUMANO Y MTCY63_13.
El procedimiento siguiente describe el uso de
secuencias de nucleótidos codificantes para polipéptidos PRO como
sondas de hibridación.
El DNA que comprende la secuencia codificante
para el polipéptido PRO de interés tal como se ha descrito, puede
emplearse como sonda o como material de base para la preparación de
sondas que permitan la búsqueda de DNAs homólogos (como los que
codifican para variantes del polipéptido PRO presentes en la
población natural) en librerías de cDNA de tejido humano o de
librerías genómicas de tejido humano.
La hibridación y el lavado de los filtros que
contienen la librería de DNAs se realizó bajo condiciones de alta
astringencia tal como se detalla a continuación. Una sonda marcada,
derivada del ácido nucleico codificante para el polipéptido PRO, se
hibrida con un filtro en formamida al 50%, SSX 5X, SDS 0,1%, 0,1%
pirofosfato sódico, fosfato sódico 50 mM, pH 6,8, solución de
Denhardts 2X, y sulfato de dextrano al 10% a 42ºC durante 20 horas.
El lavado de los filtros se realiza en una solución acuosa de SSC
0,1 X y SDS 0,1% a 42ºC.
Los DNAs que tienen una identidad de secuencia
deseada con la secuencia nativa codificante para el polipéptido
PRO, puede a continuación ser identificada con técnicas estándares
conocidas en este campo.
Este ejemplo ilustra la preparación de una forma
no glicosilada de un polipéptido PRO deseado por expresión
recombinante en E. coli.
La secuencia de DNA codificante para el
polipéptido PRO deseado se amplifica inicialmente con los cebadores
de PCR seleccionados. Los cebadores deben contener lugares de
restricción para enzimas que corresponden con los lugares de
restricción presentes en el vector de expresión seleccionado. Pueden
emplearse una variedad de vectores de expresión. Un ejemplo es el
vector disponible pBR322 (derivado de E. coli; véase Bolivar
et al., Gene, 2:95 (1977)), que contiene genes
para la resistencia a la ampicilina y la tetraciclina. Este vector,
se digiere con enzimas de restricción y se desfosforila. Las
secuencias de PCR amplificadas se ligan al vector. El vector
preferentemente incluye secuencias que codifican para un gen de
resistencia a los antibióticos, un promotor trp, un segmentos
poli-His (incluyendo los primeros seis codones
STII, secuencia poli-His, y lugares de digestión por
enteroquinasa), la región codificante para el polipéptido
específico PRO, un terminador transcripcional de lambda y un gen
argU.
La mezcla de ligación se utiliza a continuación
para transformar una cepa de E.coli seleccionada con los
métodos descritos en Sambrook et al., supra. Los
transformantes se identifican por su habilidad para crecer en
placas de LB y se seleccionan las colonias resistentes a los
antibióticos. El DNA del plásmido puede aislarse y confirmarse por
análisis de restricción y secuenciación.
Los clones seleccionados pueden crecer toda la
noche en medio de cultivo líquido como caldo LB suplementado con
antibióticos. El cultivo de toda una noche puede subsecuentemente
utilizarse para el inóculo de un cultivo a gran escala. A
continuación, se crecen las células hasta la densidad óptica
deseada, tiempo durante el cual se activa el promotor.
Después del cultivo durante algunas horas, las
células se recogen por centrifugación. El precipitado celular
obtenido por centrifugación se solubiliza con varios agentes
conocidos en la materia, y el polipéptido PRO solubilizado puede a
continuación ser purificado con una columna de quelación de metales
en condiciones que permiten la unión fuerte de la proteína.
En la aplicación EP No. 99912321.9, el
polipéptido PRO se expresaba en E. coli en una forma unida a
un fragmento poli-His según el método que sigue a
continuación. El DNA codificante para los polipéptidos PRO se
amplificó primero los cebadores seleccionados para la PCR. Los
cebadores contenían lugares para enzimas de restricción que
corresponden a los lugares de restricción presentes en el vector de
expresión, y otras secuencias útiles que proporcionan un lugar
eficiente de inicio de la traducción, purificación rápida en una
columna de quelación de metales, y digestión proteolítica con
enteroquinasa. Las secuencias amplificadas por PCR y unidas a
secuencias poly-His se ligaron después con un
vector de expresión que se utilizó para transformar un huésped
E. coli derivado de la cepa 52 (W3110 fuhA(tonA) Ion
galE rpoHts(htpRTS)clpP(lacip). Los
transformantes se crecieron primero en LB que contenía 50 mg/ml de
carbenicilina a 30ºC con agitación hasta una O.D. de 600 desde
3-5. Los cultivos se diluyeron entre
50-100 veces en medio CRPA (preparado por mezcla de
3,57 g(NH_{4})_{2}SO_{4}, 0.71 g de citrato
sódico 2H_{2}O, 1.07 g KCl, extracto de levadura de Difco 5.36 g,
Sheffield Hycase SF 5,36 g en 500 ml de agua al mismo tiempo que
110 mM MPOS, PH 7,3, glucosa 0,55% (w/v) y MgSO_{4} 7 mM) y se
crecieron durante 20-30 horas aproximadamente a 30ºC
en agitación. Se tomaron muestras para verificar su expresión por
análisis en SDS-PAGE, y el conjunto del cultivo se
centrifugó y se obtuvo un precipitado celular. El precipitado
celular se congeló hasta su purificación y replegado.
La pasta de E. coli procedente de
fermentaciones de 0.5 a 1 L. (6-10 g de
precipitado), se resuspendió en 10 volúmenes (w/v) de guanidina 7 M,
tampón Tris 20 mM, PH 8. Se añadieron sulfito sódico sólido y
tetrationto sódico, para unas concentraciones finales de 0.1 M y
0.01, respectivamente y la solución se dejó en agitación magnética
durante toda la noche a 4ºC. Este paso resulta en desnaturalización
de la proteína, con los residuos cisteínas bloqueados por
sulfitolización. La solución se centrifugó a 40.000 rpm en una
Ultracentrífuga Beckman durante 30 min. El sobrenadante se diluyó
con 3-5 volúmenes de tampón de la columna quelante
de metales (guanidina 6 M, 20 ml Qiagen Ni-NTA
columna quelante de metales equilibrada en el tampón 53. La columna
se lavó con tampón adicional que contenía imidazol 50 mM. Las
fracciones que contenían la proteína deseada se precipitaron y
almacenaron a 4ºC. La concentración de proteína se estimó por su
absorbancia a 280 nm con el coeficiente de extinción calculado en
base a su secuencia de aminoácidos.
Las proteínas se replegaron por dilución de la
muestra lentamente en tampón de replegado preparado fresco que
consistía en: Tris 20 mM, pH 8.6, NaCl 0.3 M, urea 2.5 M, cisteína
5 mM, glicina 20 mM y EDTA 1 mM. Los volúmenes de replegado se
escogieron de manera que la concentración final de la proteína
estuviera entre 50 y 100 microgramos/ml. La solución de replegado
se dejó en agitación magnética cuidadosa durante
12-36 horas a 4ºC. La reacción de replegado se
enfrió por la adición de TFA a una concentración final de 0.4% (pH
de aproximadamente 3). Antes de una purificación ulterior de la
proteína, la solución se filtró a través de un filtro de 0.22
micras y se añadió acetonitrilo hasta una concentración final de
2-10%. La proteína replegada se cromatrografió en
una columna de fase reversa Poros R1/H con un tampón móvil de 0.1%
TFA con elución en un gradiente de acetonitrilo de 10 a 80%.
Alícuotas de fracciones con una absorbancia A280 se analizaron en
geles de poliacrilamida SDS y las fracciones conteniendo proteína
replegada homogénea se precipitaron. En general, las especias
replegadas adecuadamente de la mayoría de las proteínas, se
eluyeron a concentraciones menores de acetonitrilo ya que esas
especies son las más compactas con su hidrofobicidad interior
tapada por la interacción con la resina de fase reversa. Las
especies agregadas se eluyeron habitualmente a altas
concentraciones de acetonitrilo. Además para resolver las formas de
proteínas no plegadas completamente de la forma plegada, el paso de
la fase reversa también extrae la endotoxina de las muestras.
Las fracciones que contenían las proteínas PRO
replegadas deseadas se precipitaron y el acetonitrilo se extrajo
con evaporación de nitrógeno cuidadosamente directamente sobre la
solución. Las proteínas se formularon en Hepes 20 mM, pH 6.8
cloruro de sodio 0.14 M y manitol al 4% por diálisis o por
filtración en gel mediante resina Superfina G25 (Pharmacia)
equilibrada en el tampón formulado y filtrado de manera
estéril.
Este ejemplo ilustra la preparación de una forma
glicosilada de un polipéptido PRO deseado, mediante la expresión
recombinante en células de mamíferos.
El vector pRK5 (véase la EP 307, 247, publicada
el 15 de Marzo, 1989), se empleó como vector de expresión. De manera
opcional, el DNA codificante para el polipéptido PRO se ligó a pRK5
con enzimas de restricción seleccionadas para permitir la inserción
del DNA del polipéptido PRO por los métodos de ligación descritos
en Sambrook et al., supra. El vector resultante se
denominó pRK5-polipéptido PRO.
En otra aplicación, las células huéspedes
seleccionadas pueden ser las células 293. Las células 293 humanas
(ATCC CCL 1573) se crecen en confluencia en placas de cultivo de
tejidos en un medio tal como DMEM suplementado con suero bovino
fetal y opcionalmente con componentes nutritivos y/o antibióticos.
Unos 10 \mug de DNA de pRK5-polipéptido PRO se
mezclan con 1 \mug de DNA codificante para el gen VA RNA
[Thimmappaya et al., Cell, 31:543 (1982)] y se disuelven en
500 \mul de Tris-HCl 1 mM, 0,1 mM EDTA, 0,227 M
CaCl_{2}. A esta mezcla se añaden, en gotas, 500 \mul de HEPES
50 mM (pH 7,35), NaCl 280 mM, 1,5 mM NaPO_{4} y se deja progresar
un precipitado durante 10 minutos a 25ºC. El precipitado se
resuspende y se añade a las células 293 dejándose durante cuatro
horas a 37ºC. El medio de cultivo se aspira y se añaden 2 ml de
glicerol al 20% en PBS durante 30 segundos. Las células 293 se lavan
con medio de cultivo libre de suero, se añade medio fresco y las
células se incuban durante 5 días.
Aproximadamente 24 horas después de las
transfecciones, el medio de cultivo se extrae y se substituye por
medio de cultivo solo o por medio que contiene 200
\muCi/ml^{35}S-cisteína y 200
\muCi/ml^{35}S-metionina. Después de 12 horas
de incubación, el medio condicionante se recoge, concentra en un
filtro en centrifugación, y se carga en un gel de SDS 15%. El gel
procesado se seca y se expone por un período de tiempo que permita
revelar la presencia del polipéptido PRO. Los cultivos que
contienen las células transfectadas pueden someterse a una
incubación adicional (en medio libre de suero), analizándose el
medio en bioensayos seleccionados.
En una técnica alternativa, el polipéptido PRO
puede introducirse en las células 293 de forma transitoria
utilizando el procedimiento del dextrano de sulfato descrito por
Somparyrac y col., Proc. Natl. Acad. Sci., 12:7575 (1981). Las
células 293 se crecen a una densidad máxima en un frasco de cultivo
centrifugador y se añaden 700 \mug de DNA de
pRK5-polipéptido PRO. Las células se concentran en
el frasco centrifugador y se lavan con PBS. El precipitado de
DNA-dextrano se incuba con el sedimento celular
durante cuatro horas. Las células se tratan a continuación con
glicerol al 20% durante 90 segundos, se lavan con el medio de
cultivo de tejidos y se re-introducen en el frasco
centrifugador que contiene medio de cultivo, 5 \mug/ml de insulina
bovina y 0,1 \mug/ml de transferrina bovina. Al cabo de cuatro
días, el medio condicionado se centrifuga y se filtra para eliminar
las células y los restos celulares. La muestra que contenía el
polipéptido PRO puede entonces concentrarse y purificarse mediante
cualquier procedimiento, como la diálisis y/o la cromatografía por
columna.
En otra realización, los polipéptidos PRO pueden
expresarse en células CHO. El DNA de
pRK5-polipéptido PRO puede transfectarse en células
CHO utilizando reactivos como el CaPO4 o el
dextrano-DEAE. Tal como se describió más arriba,
los cultivos celulares pueden incubarse y el medio reemplazarse con
medio de cultivo (solo) o con medio que contenga un marcador
radioactivo como la metionina-S35. Después de
determinar la presencia del polipéptido PRO, el medio de cultivo
puede reemplazarse con medio sin suero. Preferentemente, los
cultivos se incuban durante aproximadamente 6 días y luego se
cosecha el medio condicionado. El medio que contenía el polipéptido
PRO expresado pueden a continuación concentrarse y purificarse
mediante cualquier procedimiento seleccionado.
El polipéptido PRO etiquetado epitópicamente
también puede expresarse en células huésped CHO. El polipéptido PRO
puede subclonarse en otro vector distinto al pRK5. A continuación,
mediante PCR se fusiona en la misma pauta de lectura el inserto del
subclón con una etiqueta epitópicamente seleccionada como un poli-
his en el vector de expresión en Baculovirus. El inserto polipéptido
PRO-etiquetado con poli-His se
subclona a continuación en un vector dirigido de SV40 que contiene
un marcador de selección como el DHFR para la selección de clones
estables. Por último, las células CHO se pueden transfectar (tal
como se describió anteriormente) con el vector dirigido por SV40.
El marcaje se puede realizar, tal como se describió anteriormente,
para verificar la expresión. El medio de cultivo que contenía el
polipéptido PRO etiquetado con poli-His se concentra
a continuación y se purifica mediante cualquier procedimiento
seleccionado, como por ejemplo la cromatografía de afinidad con
Ni^{2+}-quelato.
La expresión estable en células CHO se realiza
utilizando el procedimiento siguiente. Las proteínas se expresaron
como una construcción IgG (inmunoadhesina), en la que las
secuencias codificantes de la forma soluble (p.ej., dominios
extracelulares) de las proteínas respectivas se fusionan con una
región constante de IgGI que contenga la bisagra, los dominios CH2 y
CH3 y/o una forma etiquetada con un poli-His.
Después de la amplificación, los DNAs respectivos
se subclonan en un vector de expresión en CHO utilizando técnicas
estándares, tal como se describió en Ausubel y col., Current
Protocols of Molecular Biology, Unidad 3.16, John Wiley y Sons
(1997). Se construyeron vectores de expresión en CHO con dianas de
restricción compatibles en 5' y 3' del DNA de interés para permitir
el barajamiento adecuado de los cDNAs. El vector utilizado para la
expresión en CHO se describe por Lucas y col., Nucl. Acids. Res.
24:9 (1774-1779, (1996)) y utiliza el
intensificador de la transcripción del promotor temprano de SV40
para dirigir la expresión del cDNA de interés y la dihidrofolato
reductasa (DHFR). La expresión de DHFR permite la selección para el
mantenimiento estable del plásmido tras la transfección.
Se introdujeron 12 \mug del DNA plasmídico
deseado en aproximadamente 10 millones de células CHO utilizando
reactivos de transfección disponibles comercialmente Superfect®
(Quiagen), Dosper® o Fugene® (Boehringer Mannheim). Las células se
crecieron tal como se describe en Lucas y col., supra.
Aproximadamente, 3x10^{7} células se congelaron en una ampolla
para el posterior crecimiento producción tal como se describe más
adelante.
Las ampollas que contenían el DNA del plásmido se
descongelaron colocándolas en un baño y se mezclaron con el vórtex.
Los contenidos se pipetearon en un tubo de centrífuga que contenía
10 ml de medio y se centrifugaron a 1000 rpm durante 5 minutos. El
sobrenadante se aspiró y las células se resuspendieron en 10 ml de
medio selectivo (filtrado con un filtro PS20 de 0,2 \mum con suero
bovino fetal al 5% filtrado con un filtro de 0,2 \mum). Las
células se alicuotaron en tubos de centrifugación de 100 ml que
contenían 90 ml de medio selectivo. Al cabo de 1-2
días, las células se transfirieron a un frasco de 250 ml que se
rellenó con 150 ml de medio selectivo y se incubó a 37ºC. Al cabo de
2-3 días, se sembraron frascos de cultivo
centrifugadores de 250, 500 y 2000 ml con 3x10^{5} células/ml. El
medio celular se cambió por medio fresco mediante centrifugación y
resuspensión en medio de producción. Aunque puede utilizarse
cualquier tipo de medio para CHO, se utilizó un medio de producción
descrito en la patente americana U.S. 5.122.469, publicada el 16 de
junio de 1992. Un frasco de cultivo centrifugador de 3 l se sembró
con 1,2 x106 células/ml. El día 0, se determinó el número de
células y el pH. El día 1, se obtuvo una muestra del cultivo y se
inició la introducción de aire filtrado. El día 2, se obtuvo una
muestra del cultivo, la temperatura se desplazó a 33ºC, y se
añadieron 30 ml de una solución de glucosa 500g/l y 0,6 ml de
antiespumante al 10% (p.ej., emulsión de polidimetilsiloxano al
35%, Dow Corning 365 Medical Grade Emulsion). Durante la
producción, se ajustó el pH para mantenerlo a aproximadamente 7,2.
Al cabo de 10 días, o hasta que la viabilidad descendiera por
debajo del 70%, el cultivo celular se cosechó mediante
centrifugación y se filtró con un filtro de 0,22 \mum. El
filtrado se guardó a 4ºC o se cargó inmediatamente en columnas para
su purificación.
Para las construcciones etiquetadas con
poli-His, las proteínas se purificaron utilizando
una columna Ni-NTA (Quiagen). Después de la
purificación, se añadió imidazol al medio condicionado a una
concentración de 5 mM. El medio condicionado se pasó por una
columna de 6 ml N9-NTA equilibrada con Hepes 20 mM,
pH 7,4, tampón que contenía NaCl 0,3 M e imidazol 5 mM a una
velocidad de flujo de 4-5 ml/min a 4ºC. Después del
cargado, la columna se lavó con tampón de equilibrado adicional y
la proteína se eluyó con tampón de equilibrado que contenía
imidazol 0,25 mM. La proteína altamente purificada se desaló a
continuación en un tampón de almacenamiento que contenía Hepes 10
mM, NaCl 0,14 M y manitol al 4%, pH 6,8, con una columna G25
Superfine de 25 ml de Pharmacia y se guardó a -80ºC.
Las construcciones de inmunoadhesina (que
contienen Fc) se purificaron del medio condicionado de la manera
siguiente. El medio condicionado se cargó en una columna de
Proteína A de 5 ml (Pharmacia) que se había equilibrado con tampón
fosfato Na 20 mM, pH 6,8. Después de cargarse, la columna se lavó
extensamente con tampón de equilibrio antes de la elución con ácido
cítrico, pH 3,5. La proteína eluída se neutralizó inmediatamente
recogiendo alícuotas de 1 ml en tubos que contenían 275 \mul de
tampón Tris 1 M, pH 9. A continuación, se desaló la proteína
altamente neutralizada en tampón de almacenamiento, tal como se
describió anteriormente para las proteínas etiquetadas
poli-His. La homogeneidad se valoró en geles de
acrilamida-SDS y por secuenciación
N-terminal mediante degradación de Edman.
Los siguientes polipéptidos PRO se expresaron en
células COS transitoriamente:
PRO617.
Los polipéptidos PRO siguientes se expresaron de
forma estable en células CHO:
PRO 617.
El procedimiento siguiente describe la expresión
recombinante de un polipéptido PRO deseado en levaduras.
En primer lugar, los vectores de expresión en
levaduras se construyeron para la producción o la secreción
intracelular de polipéptidos PRO a partir de un promotor
ADH2/GAPDH. El DNA que codifica un polipéptido PRO deseado, una
secuencia de péptido señal y el promotor se insertaron en dianas de
restricción adecuadas en el plásmido seleccionado para dirigir la
expresión intracelular del polipéptido PRO. El DNA que codifica el
polipéptido PRO puede clonarse en el plásmido seleccionado, junto
con el DNA que codifica el promotor ADH2/GAPDH, la secuencia
líder/señal secretora del factor alfa de levaduras y las secuencias
engarces (si fuera necesario) para la expresión del polipéptido
PRO.
Las células de levaduras, como la cepa de
levaduras AB110, pueden transformarse a continuación con los
plásmidos de expresión descritos anteriormente y cultivarse en
medios de fermentación seleccionados. Los sobrenadantes de
levaduras transformadas pueden analizarse mediante precipitación con
ácido tricloroacético al 10% y separarse mediante
SDS-PAGE, seguido de la tinción de los geles con
Coomassie azul.
El polipéptido PRO recombinantes puede aislarse a
continuación y purificarse eliminando las células de levadura del
medio de fermentación mediante centrifugación y luego concentrar el
medio utilizando cartuchos de filtros seleccionados. El concentrado
que contiene el polipéptido PRO puede purificarse posteriormente
utilizando columnas de resinas cromatográficas.
El procedimiento siguiente describe la expresión
recombinante de polipéptidos PRO en células de insecto infectadas
con Baculovirus.
El polipéptido PRO deseado se fusiona cadena
arriba de una etiqueta epitópica en un vector de expresión de
baculovirus. Dicha etiqueta epitópica incluye las etiquetas
poli-his y las etiquetas de inmunoglobulinas (como
las regiones Fc de IgG). Se pueden utilizar diversos plásmidos,
incluyendo plásmidos derivados de los comercialmente disponibles
como el pVL1393 (Novagen). En resumen, el polipéptido PRO o la
porción deseada del polipéptido PRO (como la secuencia codificante
del dominio extracelular de una proteína transmembrana) se amplifica
mediante PCR con cebadores complementarios en las regiones 5' y 3'.
El cebador 5' puede incorporar dianas de restricción enzimática. El
producto se digiere a continuación con las enzimas de restricción
seleccionadas y se subclonan en el vector de expresión.
El baculovirus recombinante se genera mediante
co-transfección del plásmido anterior y el DNA del
virus Baculo
Gold^{TM} (Pharmigen) en células Spodoptera frugiperda ("Sf9") (ATCC CRL 1711) con lipofectina (disponible comercialmente de GIBCO-BRL). Al cabo de 4-5 días de incubación a 28ºC, los virus liberados se cosechan y utilizan para amplificaciones posteriores. La infección viral y la expresión de proteínas se realizan tal como se describe en O'Reilly y col., Baculovirus expression vectors: A laboratory manual, Oxford Universtiy Press (1994).
Gold^{TM} (Pharmigen) en células Spodoptera frugiperda ("Sf9") (ATCC CRL 1711) con lipofectina (disponible comercialmente de GIBCO-BRL). Al cabo de 4-5 días de incubación a 28ºC, los virus liberados se cosechan y utilizan para amplificaciones posteriores. La infección viral y la expresión de proteínas se realizan tal como se describe en O'Reilly y col., Baculovirus expression vectors: A laboratory manual, Oxford Universtiy Press (1994).
Luego, se purifica el polipéptido
PRO-etiquetado con poli-His
expresado, por ejemplo, mediante cromatografía de afinidad con
quelato-Ni-^{2+} de la manera
siguiente. Se preparan los extractos de las células Sf9 infectadas
con virus recombinantes, tal como se describe por Rupert y col.,
Nature, 362:175-179 (1993). En resumen, las células
Sf9 se lavan, se resuspenden en tampón de sonicación (25 ml de
Hepes, pH 79; MgCl2 12,5 mM; EDTA 0,1 mM; glicerol al 10%, EDTA 0,1
mM; glicerol al 10%; NP-40 al 0,1%; KCl 0,4 M) y se
sonican dos veces durante 20 s en hielo. Los sonicados se aclaran
mediante centrifugación y a continuación se diluye el sobrenadante
50 veces en tampón de carga (fosfato 50 mM, NaCl 300 mM, glicerol
al 10%, pH 7,8) y se filtra a través de un filtro de 0,45 \mum.
Se prepara una columna de agarosa Ni^{2+}-NTA
(disponible comercialmente de Quiagen) con un volumen de lecho de 5
ml, se lava con 25 ml de agua y se equilibra con 25 ml de tampón de
carga. El extracto celular filtrado se carga en la columna a una
velocidad de flujo de 0,5 ml por minuto. La columna se lava hasta
alcanzar una A_{280} basal con tampón de carga, en dicho punto la
fracción se inicia la recolecta de fracciones. A continuación, la
columna se lava con un tampón de lavado secundario (fosfato 50 mM,
NaCl 300 mM, glicerol al 10%, pH 6,0), que eluye específicamente la
proteína unida. Después de alcanzar de nuevo la A_{280} basal, se
hace pasar por la columna un gradiente de imidazol de 0 a 500 mM en
el tampón de lavado secundario. Se recogen fracciones de 1 ml y se
analizan por SDS-PAGE y tinción con plata o
transferencia de western con Ni2+-NTA conjugado con fosfatasa
alcalina (Qiagen). Las fracciones que contenían el polipéptido PRO
etiquetado con His-10 se recogen, agrupan y se
dializan contra tampón de carga.
Alternativamente, la purificación del polipéptido
PRO etiquetado con IgG (o con Fc) puede realizarse utilizando
técnicas de cromatografía conocidas, incluyendo por ejemplo,
cromatografía en columnas de Proteína A o G.
En la solicitud de patente europea EP
999.12321.9, los polipéptidos PRO se expresaron satisfactoriamente
en células de insecto Sf9 infectadas con baculovirus. Aunque la
expresión se realizó actualmente a una escala de
0,5-2 l, puede realizarse fácilmente a mayores
escalas (p.ej., 8 l). Las proteínas se expresaron como una
construcción IgG (inmunoadhesina), en la que la región extracelular
de la proteína se fusionó a una región constante de una IgG1 que
contenía la bisagra, dominios CH2 y CH3 y/o las formas etiquetadas
con poli-His.
Para la expresión en células Sf9 en baculovirus,
después de la amplificación por PCR, las secuencias codificantes
respectivas en el vector de expresión de baculovirus (pb.PH.IgG
para fusiones proteicas con IgG y pb.PH.His.c para fusiones
proteicas etiquetadas con poli-His) y el vector y el
DNA del baculovirus Baculogold® (Pharmigen) se cotransfectaron en
10^{5} células de Spodoptera frugiperda (Sf9) (ATCC CRL 1711),
utilizando Lipofectin (Gibco BRL). Los plásmidos pb.PH.His y
pb.PH.IgG son modificaciones del vector pVL1393, vector de
expresión de baculovirus ampliamente disponible comercialmente
(Pharmigen), con regiones poliengarce modificadas para incluir las
secuencias etiquetas His o Fc. Las células se crecieron en medio
Hink TNM-FH suplementado con FBS al 10% (Hyclone).
Las células se incubaron durante 5 días a 28ºC. El sobrenadante se
cosechó y se utilizó para la amplificación viral infectando células
Sf9 en medio Hink TNM-FH suplementado con FBS al 10%
a una multiplicidad de infección (MOI) de 10. Las células se
incubaron durante 30 días a 28ºC. El sobrenadante se cosechó y la
expresión de las construcciones en el vector de expresión de
baculovirus se determinó mediante unión del lote de 1 ml de
sobrenadante con 25 ml de bolas de Ni-NTA (Qiagen)
para las proteínas etiquetadas con histidina o bolas de
Proteína-A Sepharose CL-4B
(Pharmacia) para proteínas etiquetadas con IgG seguido por el
análisis de SDS-PAGE, comparándolo con una
concentración conocida de una proteína estándar teñida con de azul
de Coomassie.
El sobrenadante de la primera amplificación viral
se utilizó para infectar un cultivo en frascos centrifugadores (500
ml) de células Sf9 crecidas en medio ESF-921
(Sistemas de expresión LLC) a una MOI aproximada de 0,1. Las células
se incubaron durante 3 días a 28ºC. El sobrenadante se cosechó y
filtró. Se repitieron los análisis de unión de lote y de
SDS-PAGE, tantas veces como fue necesario, hasta
confirmar la expresión de cultivo.
El medio condicionado de las células
transfectadas (0,5 a 3 l) se cosechó mediante centrifugación para
eliminar las células y se filtró con un filtros de 0,22 \mum.
Para las construcciones etiquetadas con poli-His, la
proteína se purificó con una columna Ni-NTA
(Qiagen). Antes de la purificación, se añadió imidazol al medio
condicionado a una concentración de 5 mM. El medio condicionado se
bombeó en una columna Ni-NTA de 6 ml equilibrada con
Hepes 20 mM, pH 7,4, y un tampón que contenía NaCl 0,3 M e imidazol
5 mM a una velocidad de flujo de 4-5 ml/min a 4ºC.
Después de cargar, la columna se lavó con tampón de equilibrio
adicional y se eluyó la proteína con el tampón de equilibrio que
contenía imidazol 0,25M. La proteína altamente purificada se desaló
a continuación en un tampón de almacenamiento con Hepes 10 mM, NaCl
0,14 M y manitol al 4%, pH 6,8, con una columna G25 Superfine de 25
ml (Pharmacia) y se almacenó a -80ºC.
Las construcciones de inmunoadhesina (que
contenían Fc) de proteínas se purificaron del medio condicionado de
la manera siguiente. El medio condicionado se hizo pasara por una
columna de Proteína A de 5 ml (Pharmacia) que se había equilibrado
en tampón fosfato Na 20 mM, pH 6,8. Después de cargar, la columna se
lavó extensamente con el tampón de equilibrio antes de la elución
con ácido cítrico 100 mM, pH 3,5. La proteína eluída se neutralizó
inmediatamente recogiendo fracciones de 1 ml en los tubos con 275
ml de tampón Tris 1 M, pH 9. La proteína altamente purificada se
desaló en tampón de almacenamiento tal como se describió para las
proteínas etiquetadas con poli-His. Se verificó la
homogeneidad de las proteínas mediante electroforesis en gel de
poliacrilamida (PEG) y secuenciación aminoacídica N- terminal
mediante degradación de Edman.
El polipéptido PRO617 se expresó
satisfactoriamente en células de insecto Hi5. Aunque la expresión se
realizó en una escala de 0,5-2 l, puede realizarse a
mayor escala (p.ej., 8 l).
Para la expresión de células de insecto Hi5
infectadas con baculovirus, el DNA codificante del polipéptido PRO
se puede amplificar con sistemas adecuados, como la Pfu
(Stratagene), o fusionarse cadena arriba (5' de) de etiqueta
epitópica contenida en un vector de expresión de baculovirus.
Dichas etiquetas epitópicas incluyen las etiquetas
poli-his y las etiquetas de inmunoglobulina (como
las regiones Fc de IgG). Se pueden utilizar diversos plásmidos,
incluyendo los derivados de plásmidos disponibles comercialmente
como el pVL1393 (Novagen). En resumen, el polipéptido PRO o la
porción deseada del polipéptido PRO (como la secuencia codificante
del dominio extracelular de una proteína transmembrana) se amplifica
mediante PCR con los cebadores complementarios con las regiones 5'
y 3'. El cebador 5' puede incorporar dianas de enzimas de
restricción flanqueantes (seleccionadas). A continuación, se digiere
el producto con las enzimas de restricción seleccionadas y se
subclona en el vector de expresión. Por ejemplo, los derivados de
pVL1393 pueden incluir la región Fc de la IgG humana (pb.PH.IgG) o
una etiqueta histidina (pb.PH.His) cadena abajo (3' de) de la
secuencia NOMBRE. Preferentemente, la construcción del vector se
secuencia para su verificación.
Las células Hi5 se crecen a una confluencia del
50% en condiciones de, 27ºC, sin CO_{2}, sin
penicilina/estreptomici-
na. Para cada placa de 150 mm, 30 \mug del vector derivado de pIE que contiene el polipéptido PRO se mezcla con 1 ml de medio Ex-Cell (Medio: Ex-Cell + 1/100 L-Glu JRH Biosciences # 14401-78P (nota: este medio es sensible a la luz), y en un tubo separado, 100 \mul de CellFectin (CellFECTIN (GibcoBRL #10362-010) (agitar con ayuda del vórtex hasta mezclado completo)), se mezclan con 1 ml de medio Ex-Cell. Las dos soluciones se combinan y se incuban durante 15 minutos a temperatura ambiente. Se añaden 8 ml de medio ExCell a 2 ml de la mezcla de DNA/CellFECTIN y todo ello se dispone sobre las células Hi5 previamente lavadas una vez con medio ExCell. La placa se incuba en la oscuridad durante 1 hora a temperatura ambiente. La mezcla de DNA/CellFECTIN se aspira, y las células se lavan una vez con ExCell para eliminar el exceso de CellFECTIN. Se añaden 30 ml de medio ExCell fresco y las células se incuban durante 3 días a 28ºC. El sobrenadante se cosecha y la expresión del polipéptido PRO en el vector de expresión de baculovirus puede determinarse mediante ensayos de unión de lote de 1 ml de sobrenadante con 25 ml de bolas de Ni-NTA (Qiagen) para las proteínas etiquetadas con histidina o bolas Proteína A-Sepharose CL4B (Pharmacia) para proteínas etiquetadas con IgG, seguido del análisis de SDS-PAGE comparándolo con una concentración conocida de una proteína estándar por tinción de azul de Coomassie.
na. Para cada placa de 150 mm, 30 \mug del vector derivado de pIE que contiene el polipéptido PRO se mezcla con 1 ml de medio Ex-Cell (Medio: Ex-Cell + 1/100 L-Glu JRH Biosciences # 14401-78P (nota: este medio es sensible a la luz), y en un tubo separado, 100 \mul de CellFectin (CellFECTIN (GibcoBRL #10362-010) (agitar con ayuda del vórtex hasta mezclado completo)), se mezclan con 1 ml de medio Ex-Cell. Las dos soluciones se combinan y se incuban durante 15 minutos a temperatura ambiente. Se añaden 8 ml de medio ExCell a 2 ml de la mezcla de DNA/CellFECTIN y todo ello se dispone sobre las células Hi5 previamente lavadas una vez con medio ExCell. La placa se incuba en la oscuridad durante 1 hora a temperatura ambiente. La mezcla de DNA/CellFECTIN se aspira, y las células se lavan una vez con ExCell para eliminar el exceso de CellFECTIN. Se añaden 30 ml de medio ExCell fresco y las células se incuban durante 3 días a 28ºC. El sobrenadante se cosecha y la expresión del polipéptido PRO en el vector de expresión de baculovirus puede determinarse mediante ensayos de unión de lote de 1 ml de sobrenadante con 25 ml de bolas de Ni-NTA (Qiagen) para las proteínas etiquetadas con histidina o bolas Proteína A-Sepharose CL4B (Pharmacia) para proteínas etiquetadas con IgG, seguido del análisis de SDS-PAGE comparándolo con una concentración conocida de una proteína estándar por tinción de azul de Coomassie.
El medio condicionado de las células
transfectadas (0,5 a 3 l) se cosechó mediante centrifugación para
eliminar las células y se filtró a través de un filtro de 0,22
\mum. Para las construcciones etiquetadas con
poli-His, la proteína que comprende el polipéptido
PRO se purifica utilizando una columna de Ni-NTA
(Qiagen). Antes de la purificación, se añade imidazol al medio
condicionado a una concentración de 5 mM. El medio condicionado se
bombea a la columna de nI-NTA de 6 ml equilibrada
con Hepes 20 mM, pH 7,4, tampón que contiene NaCl 0,3 M e imidazol
5 mM a una velocidad de flujo de 4-5 ml/min, a 4ºC.
Después de cargar, la columna se lava con tampón de equilibrio
adicional y se eluye la proteína con el mismo tampón que contiene
imidazol 0,25 M. La proteína altamente purificada se desala a
continuación en un tampón de almacenamiento que contiene Hepes 10
mM, NaCl 0,14 M y manitol al 4%, pH 6,8, con una columna de G25
Superfine de 25 ml (Pharmacia) y se almacena a -80ºC.
Las construcciones de inmunoadhesina (que
contienen Fc) de proteínas se purifican del medio condicionado de
la manera siguiente. El medio condicionado se bombea en una columna
de Proteína A de 5 ml (Pharmacia) que ha sido equilibrada con
tampón fosfato Na 20 mM, pH 6,8. Después de la carga, la columna se
lava extensamente con tampón de equilibrio antes de la elución con
ácido cítrico 100 mM, pH 5,3. La proteína eluída se neutraliza
inmediatamente recogiendo fracciones de 1 ml en tubos que contienen
275 ml de tampón Tris 1 M, pH 9. La proteína altamente purificada
se desala a continuación en tampón de almacenamiento tal como se
describió anteriormente para las proteínas etiquetadas con
poli-His. La homogeneidad del polipéptido PRO se
puede valorar mediante geles de poliacrilamida-SDS
y secuenciación aminoacídica N-terminal por
degradación de Edman y otros procedimientos analíticos, según se
requiera.
Este ejemplo muestra la preparación de
anticuerpos monoclonales que se pueden unir específicamente a un
polipéptido PRO.
Las técnicas para la producción de anticuerpos
monoclonales son conocidas en la materia y se describen, por
ejemplo, en Goding, supra. Los inmunoagentes que pueden
utilizarse incluyen el polipéptido PRO purificado, las proteínas de
fusión que contienen el polipéptido PRO y las células que expresan
el polipéptido PRO recombinante en la superficie celular. La
selección del inmunógeno puede realizarse por el experto en la
materia sin excesiva
experimentación.
experimentación.
Se inmunizaron ratones Balb/c con el inmunógeno
polipéptido PRO emulsionado en adyuvante completo de Freund y se
inyectaron subcutáneamente o intraperitonealmente en una cantidad
de 1-100 microgramos. Alternativamente, el
inmunógeno se emulsionó en adyuvante MPL-TDM (Ribi
Immunochemical Research, Hamilton, MT) y se inyectó en las
almohadillas de las patas traseras del animal. Los ratones
inmunizados se estimularon a continuación 10 a 12 días más tarde con
inmunógeno adicional emulsionado con adyuvante seleccionado.
Durante varias semanas después, también podían estimularse los
ratones con inyecciones de inmunización adicionales. Se obtuvieron
muestras de suero periódicamente de los ratones mediante sangrado
retro-orbital para analizar en ensayos ELISA para
detectar los anticuerpos anti-polipéptido PRO.
Después de haber detectado un anticuerpo
adecuado, los animales "positivos" para los anticuerpos pueden
ser inyectados con una inyección intravenosa de polipéptido PRO. De
tres a cuatro días más tarde, los ratones se sacrifican y se
obtienen las células del bazo. Las células del bazo se fusionan
(utilizando polietilén glicol al 35%) a una línea celular de
mieloma murino seleccionada, como por ejemplo P3X63AgU.1,
disponible del ATCC, CRL 1597. Las fusiones generan células de
hibridoma que pueden sembrarse en placas de cultivo de 96 pocillos
con medio HAT (hipoxantina, aminopterina y timidina) para inhibir la
proliferación de células no-fusionadas, híbridos de
mieloma e híbridos de células del bazo.
Las células de hibridomas se rastrearán en un
ensayo ELISA por su reactividad contra el polipéptido PRO. La
determinación de células de hibridoma "positivas" secretoras
de anticuerpos monoclonales deseados contra el polipéptido PRO se
halla dentro del ámbito de la materia.
Las células de hibridoma positivas pueden
inyectarse intraperitonealmente en ratones Balb/c para producir
ascitas que contengan anticuerpos anti-polipéptido
PRO. Alternativamente, las células de hibridoma pueden crecerse en
frascos de cultivo o botellas de cultivo giratorias. La
purificación de los anticuerpos monoclonales producidos en las
ascitas puede lograrse utilizando la precipitación con sulfato
amónico, seguido de cromatografía de exclusión en gel.
Alternativamente, se puede utilizar la cromatografía de afinidad
mediante la unión del anticuerpo a la proteína A o la proteína
G.
Los polipéptidos PRO pueden expresarse como
proteínas quiméricas con uno o más dominios polipeptídicos
adicionales añadidos para facilitar la purificación de la proteína.
Dichos dominios facilitadores de la purificación incluyen, pero no
se limitan a, péptidos queladores de metales como los módulos
histidina-triptófano que permiten la purificación
sobre metales inmovilizados, los dominios de proteína A que
permiten la purificación sobre inmunoglobulina inmovilizada y el
dominio utilizado en el sistema de purificación por
extensión/afinidad FLAGS^{TM} (Immunex Corp., Seattle Wash.). La
inclusión de una secuencia de engarce escindible como el Factor Xa
o la enteroquinasa (Invitrogen, San Diego Calif) entre el dominio
de purificación y se secuencia del polipéptido PRO puede ser de
utilidad para facilitar la expresión del DNA codificante del
polipéptido PRO.
Los polipéptidos PRO nativos o recombinantes
pueden purificarse mediante diversas técnicas estándares en la
materia relativas a la purificación de proteínas. Por ejemplo, el
pro-polipéptido PRO, el polipéptido PRO o el
pre-polipéptido PRO se purifican mediante
cromatografía de inmunoafinidad utilizando anticuerpos específicos
para el polipéptido PRO de interés. En general, una columna de
inmunoafinidad se construye mediante acoplamiento covalente del
anticuerpo anti-polipéptido PRO con una resina
cromatográfica activada.
Las inmunoglobulinas policlonales se preparan a
partir del suero bien mediante precipitación con sulfato amónico o
mediante purificación sobre Proteína A inmovilizada (Pharmacia LKB
Biotechnology, Piscataway, N.J.). Al igual que los anticuerpos
monoclonales se preparan de ascitas de ratones mediante
precipitación con persulfato amónico o cromatografía sobre Proteína
A inmovilizada. La inmunoglobulina parcialmente purificada se une
covalentemente a una resina cromatográfica como la SEPHAROSE^{TM}
activada por CnBr (Pharmacia LKB Biotechnology). El anticuerpo se
acopla a la resina, la resina se bloquea y la resina derivada se
lava de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
Se utiliza una columna de inmunoafinidad de dicho
tipo en la purificación del polipéptido PRO mediante preparación de
una fracción de células que contienen el polipéptido PRO en una
forma soluble. Esta preparación se deriva por solubilización de las
células completas o de una fracción subcelular obtenida mediante
centrifugación diferencial con adición de detergente o por otros
procedimientos bien conocidos en la materia. Alternativamente, el
polipéptido PRO contiene una secuencia señal que puede secretarse
en cantidad útil en el medio donde crecen las células.
Una preparación que contiene el polipéptido PRO
soluble se pasa por la columna de afinidad, a continuación se lava
la columna en condiciones que permiten la absorbancia preferencial
del polipéptido PRO (p.ej., tampones de alta fuerza iónica en
presencia de detergente). A continuación, la columna se eluye en
condiciones tales que se rompe la unión anticuerpo/polipéptido PRO
(p.ej., un tampón con pH bajo de aproximadamente pH
2-3, o una concentración elevada de un agente
caotrópico como la urea o el ión tiocianato) y por último se recoge
el polipéptido PRO.
La invención es particularmente útil para el
rastreo de compuestos utilizando polipéptidos PRO o mediante la
unión a un fragmento de éste con cualquiera de las técnicas de
búsqueda de fármacos. El polipéptido PRO o un fragmento de éste que
se utilice en dicho análisis puede hallarse en libre en solución,
fijado a un soporte sólido, adherido a la superficie celular o
localizado intracelularmente. Un procedimiento de rastreo de
fármacos utiliza células eucariotas o procariotas que se
transforman establemente con los ácidos nucleicos recombinantes y
expresan el polipéptido PRO o sus fragmentos. Los fármacos se
seleccionan frente a dichas células transformadas en ensayos de
unión competitiva. Dichas células, bien en la forma viable o fija,
pueden utilizarse para ensayos de unión estándar. Se puede
cuantificar por ejemplo, la formación de complejos entre el
polipéptido PRO o un fragmento y el agente que se analiza.
Alternativamente, se puede examinar la disminución de la formación
del complejo entre el polipéptido PRO y su célula diana o sus
receptores diana que está causada pro el agente que se analiza.
En consecuencia, la presente invención
proporciona procedimientos de rastreo de fármacos o cualquier otro
agente que pueda afectar a la enfermedad o trastorno asociado con
el polipéptido PRO. Estos procedimientos comprenden el contacto con
uno de dichos agentes que contengan el polipéptido PRO o un
fragmento de éste y el análisis de (i) la presencia de un complejo
entre el agente y el polipéptido PRO o su fragmento, o (ii) la
presencia de un complejo entre el polipéptido PRO o un fragmento de
éste y la célula, mediante procedimientos bien conocidos en la
materia. En dichos ensayos de unión competitiva, el polipéptido PRO
o un fragmento de éste se marca de modo característico. Después de
una incubación adecuada, el polipéptido PRO libre o un fragmento de
éste se separa de la forma unida y la cantidad de libre o de
marcaje no presente en el complejo es una medida de la capacidad del
agente determinado para unirse al polipéptido PRO o para interferir
con el complejo polipéptido PRO/célula.
Otra técnica para el rastreo de fármacos
proporciona una selección de alto rendimiento para compuestos con
afinidad de unión adecuada por un polipéptido y se describe con
detalle en la patente internacional WO 84/03564, publicada el 13 de
septiembre de 1984. En resumen, grandes cantidades de compuestos de
pequeños péptidos distintos a analizar se sintetizan sobre un
sustrato sólido, como puntas o cualquier otra superficie. Tal como
se aplica para un polipéptido PRO, los compuestos peptídicos a
analizar se hacen reaccionar con el polipéptido PRO y se lavan. El
polipéptido PRO unido se detecta mediante procedimientos bien
conocidos en la materia. El polipéptido PRO purificado también puede
servir como recubrimientos de placas para utilizar en las técnicas
de rastreo de fármacos mencionadas anteriormente. Además, se pueden
utilizar anticuerpos neutralizantes para capturar el péptido e
inmovilizarlo sobre el soporte sólido.
La presente invención también contempla la
utilización de ensayos de rastreo competitivo de fármacos en los que
los anticuerpos neutralizantes capaces de unirse al polipéptido PRO
compiten específicamente con un compuesto test por la unión con el
polipéptido PRO o con fragmentos del mismo. De esta manera, pueden
utilizarse anticuerpos para detectar la presencia de cualquier
péptido que comparta uno o más determinantes antigénicos con el
polipéptido PRO.
El objetivo del diseño racional de fármacos es
producir análogos estructurales del polipéptido activo
biológicamente de interés (es decir, un polipéptido PRO) o de
moléculas pequeñas con las que interaccionan, p.ej., los agonistas,
antagonistas o inhibidores. Cualquiera de estos ejemplos puede
utilizarse para generar fármacos que sean formas más activas o
estables del polipéptido PRO o que intensifiquen o interfieran con
la función del polipéptido PRO in vivo (Hodgson,
Bio/Technology, 9:19-21 (1991)).
En una aproximación, la estructura tridimensional
del polipéptido PRO, o de un complejo inhibidor del polipéptido PRO,
se determina mediante cristalografía de rayos X, mediante modelado
informático o, de forma más característica, mediante una
combinación de dos aproximaciones. Es necesario conocer tanto la
forma como las cargas del polipéptido PRO para comprender la
estructura y determinar los sitios activos de la molécula. Aunque a
veces, pero no muy frecuentemente, se puede obtener información
útil sobre la estructura del polipéptido PRO mediante modelado
basado en la estructura de proteínas homólogas. En ambos casos, la
información estructural relevante se utiliza para diseñar moléculas
de tipo polipéptido-PRO análogas o para identificar
inhibidores eficientes. Ejemplos útiles del diseño racional de
fármacos puede incluir moléculas con una actividad mejorada o
estabilidad, tal como se muestra por Braxton y Wells, Biochemistry,
31:7796-7801 (1992) o que actúan como inhibidores, o
antagonistas de péptidos nativos tal como se muestra por Athauda y
col., J. Biochem., 113:742-746 (1993).
También es posible aislar un anticuerpo
específico de una diana, seleccionado mediante ensayo funcional, tal
como se describió anteriormente y a continuación resolver su
estructura cristalina. Esta aproximación, en principio, produce un
núcleo del fármaco, o farmacore, sobre el cual se pueden diseñar
otros fármacos. Es posible evitar la cristalografía de proteínas
generando anticuerpos anti-idiotipos
(anti-ids) contra una anticuerpo funcional, activo
farmacológicamente. Como una imagen en espejo de una imagen en el
espejo, el sitio de unión de los anti-ids se
esperaría que fuera un análogo del receptor original. El
anti-id podría utilizarse para identificar y aislar
péptidos a partir de bancos de péptidos producidos química o
biológicamente. Los péptidos aislados actuarían a continuación como
el farmacore.
En virtud de la presente invención, se pueden
obtener cantidades suficientes del polipéptido PRO para realizar
dichos estudios analíticos como la cristalografía por rayos X.
Además, el conocimiento de la secuencia aminoacídica del
polipéptido PRO que se proporciona aquí facilitará una guía par los
que utilicen técnicas de modelado informático en lugar de o además
de la cristalografía por rayos X.
Este ejemplo demuestra que varios polipéptidos
PRO son eficaces en aumentar la supervivencia de células neuronales
de la retina.
Se sacrificaron crías de ratas Sprague Dawley el
día 7 de su nacimiento (población mezclada de: tipos neuronales y
glías de la retina) por decapitación tras anestesia con CO_{2} y
se extrajeron los ojos en condiciones estériles. Se diseccionó la
retina neural del epitelio pigmentado y otros tejidos oculares y
luego, el tejido se disoció con tripsina al 0,25% en PBS sin
Ca^{2+} ni Mg^{2+} hasta obtener una suspensión de células
separadas. Las retinas se incubaron a 37ºC durante
7-10 minutos después de lo cual, se inactivó la
tripsina añadiendo 1 ml de inhibidor de tripsina de soja. Las
células se sembraron a 100.000 células por pocillo en placas de 96
pocillos en medio DMEM/F12 suplementado con N2 y con o sin el
polipéptido PRO específico a analizar. Las células para todos los
experimentos se crecieron a 37ºC con CO_{2} al 5%. Al cabo de
2-3 días, las células se tiñeron con calceína AM y
luego se fijaron utilizando paraformaldehído al 4% y se tiñeron con
DAPI para determinar el número total de células. El total de
células (fluorescentes) se cuantificó con el objetivo de 20x
utilizando una cámara CCD y un programa de análisis de imagen del
NIH para Macintosh. Los campos se eligieron aleatoriamente.
El efecto de varias concentraciones de
polipéptidos PRO se calculó dividiendo el número total de células
positivas para calceína a los 2-3 días de cultivo
por el número total de células marcada con DAPI-I a
los 2-3 días de cultivo. Por encima del 30% de
supervivencia se consideró positivo. Los polipéptidos PRO siguientes
fueron positivos en este ensayo: PRO617.
Este ejemplo demuestra que diversos polipéptidos
PRO tienen eficacia para aumentar la supervivencia de los bastones
fotoreceptores.
Se sacrificaron crías de ratas Sprague Dawley el
día 7 de su nacimiento (población mezclada de: tipos neuronales y
glías de la retina) por decapitación tras anestesia con CO_{2} y
se extrajeron los ojos en condiciones estériles. Se diseccionó la
retina neural del epitelio pigmentado y otros tejidos oculares y
luego, el tejido se disoció con tripsina al 0,25% en PBS sin
Ca^{2+} ni Mg^{2+} hasta obtener una suspensión de células
separadas. Las retinas se incubaron a 37ºC durante
7-10 minutos después de lo cual, se inactivó la
tripsina añadiendo 1 ml de inhibidor de tripsina de soja. Las
células se sembraron a 100.000 células por pocillo en placas de 96
pocillos en medio DMEM/F12 suplementado con N2 y con o sin el
polipéptido PRO específico a analizar. Las células para todos los
experimentos se crecieron a 37ºC con CO_{2} al 5%. Al cabo de
2-3 días de cultivo, las células se fijaron con
paraformaldehído al 4%, y luego se tiñeron con CellTracker Green
CMFDA. Se utilizó un anticuerpo monoclonal, Rho 4D2 (de ascitas o
IgG1 a 1:100) dirigido contra el pigmento visual rodopsina para
detectar las células fotoreceptoras bastones mediante
inmunofluorescencia indirecta. Los resultados se editaron como % de
supervivencia:número total de células positivas para
calceína/CellTracker-rodopsina a los
2-3 días de cultivo, dividido por el número total
de células positivas de rodopsina a los 2-3 días de
cultivo. El número total de células (fluorescentes) se cuantificó
con un objetivo de 20X aumentos utilizando una cámara CCD y un
programa de análisis de imagen NIH para MacInstosh. Los campos de
los pocillos se eligieron al azar.
En relación con el efecto de las diversas
concentraciones de polipéptidos PRO, se consideró positivo por
encima del 10% de supervivencia. Los polipéptidos PRO siguientes
positivos en este ensayo fueron: PRO617.
La Hibridación in situ es una técnica
potente y versátil para la detección y localización de secuencias de
ácido nucleico en las preparaciones celulares o de tejidos. Puede
ser útil, por ejemplo, para identificar sitios de expresión génica,
analizar la distribución en el tejido, identificar y localizar la
infección viral, seguir los cambios en la síntesis de mRNA
específico y con la ayuda del mapeo cromosómico.
La hibridación in situ se realizó según la
versión optimizada del protocolo de Lu y Gillet, Cell Vision
1:169-176 (1994), utilizando las ribosondas marcadas
con P^{32} generadas por PCR. En resumen, los tejidos humanos
incluidos en parafina, fijados en formalina se seccionaron,
desparafinaron, desproteinizaron en proteinasa K (20 g/ml) durante
15 minutos a 37ºC y se procesaron posteriormente para la
hibridación in situ tal como se describió por Lu y Gillet,
supra. Una ribosonda antisentido marcada con
UTP-P^{32} se generó de un producto de PCR y se
hibridó a 55ºC durante la noche. A continuación los portaobjetos con
las hibridaciones se sumergieron en la emulsión fotográfica Kodak
NTB2 y se expusieron durante 4 semanas.
6,0 \mul de UTP-P^{32} (125
mCi) (Amersham BF 1002, SA<2000 Ci/mmol) se secaron al vacío. Y a
cada tubo que contenía el UTP-P^{32} secado se
añadieron los siguientes ingredientes:
2,0 \mul de tampón de transcripción 5X
1,0 \mul de DTT (100 mM)
2,0 \mul de mezcla de NTP (2,5 mM: 10 \mul de
cada GTP, CTP, TTP y ATP a 10 mM + 10 \mul de H_{2}O)
1,0 \mul de UTP (50 \muM)
1,0 de Rnasin
1,0 \mul de DNA molde (1 \mug)
1,0 \mul de H_{2}O
1,0 \mul de RNA polimerasa (para productos de
PCR T3 = antisentido, T7 = sentido 5', generalmente)
Los tubos se incubaron a 37ºC durante 1 hora. Se
añadió 1,0 \mul de DNasa RQ1, seguido de una incubación a 37ºC
durante 15 minutos. Se añadieron 90 \mul de TE (10 mM de Tris pH
7,6/EDTA 1 mM, pH 8,0) y la mezcla se pipeteó en papel DE81. La
solución restante se cargó en una unidad de ultrafiltración
Microcon-50 y se centrifugó utilizando el programa
10 (6 minutos). La unidad de filtración se invirtió sobre un
segundo tubo y se centrifugó con el programa 2 (3 minutos). En la
última recuperación, se añadieron 100 \mul de TE. Se pipeteó 1
\mul de producto final sobre papel DE81 y se contaron en 6 ml de
Biofluor II.
La sonda se migró en un gel de TBE/urea. Se
añadieron 1-3 \mul de la sonda o 5 \mul de RNA
Mrk II a 3 \mul de tampón de carga. Se calentó la mezcla a 95ºC
en termobloque durante 3 min e inmediatamente después se colocó en
hielo. Se nivelaron los pocillos, se cargó la muestra y se migró a
180-250 voltios durante 45 minutos. El gel se
envolvió en saran-wrap y se expuso a una
película XAR con una pantalla intensificadora a -70ºC durante 1 h a
toda la noche.
Los portas se sacaron del congelador, se
colocaron en bandejas de aluminio y se descongelaron a temperatura
ambiente durante 5 minutos. Las bandejas se colocaron en el
incubador a 55ºC durante 5 minutos para reducir la condensación.
Los portaobjetos se fijaron durante 10 minutos en paraformaldehído
al 4% en hielo en la campana de gases y se lavaron en 0,5XSSC
durante 5 minutos, a temperatura ambiente (25 ml de 20XSSC + 975 ml
de H_{2}O SQ). Después de desproteinizar con proteinasa K a 0,5
\mug/ml durante 10 minutos a 37ºC (12,5 \mul de solución madre
de proteinasa K en 250 ml de tampón sin RNasa precalentado), las
secciones se lavaron en 0,5XSSC durante 10 minutos a temperatura
ambiente. Las secciones se deshidrataron en etanol al 70%, 95%,
100%, durante 2 min en cada baño.
Los portaobjetos se desparafinaron, se colocaron
en H_{2}O SQ y se lavaron dos veces con 2XSSC a temperatura
ambiente, durante 5 minutos cada vez. Las secciones de embriones
humanos se desproteinizaron con proteinasa K 20\mug/ml (500
\mul de una solución madre de 10 mg/ml en 250 ml de tampón sin
RNAsa; 37ºC, 15 minutos), o 8X proteinasa K (100 \mul en 250 ml
de tampón sin RNasa, 37ºC, 30 minutos) para tejidos en formalina. A
continuación, se realizaron lavados en 0,5XSSC y se deshidrataron
tal como se describió anteriormente.
Las preparaciones de los portaobjetos se
colocaron en una cajita de plástico con tampón Box (4XSSC, formamida
al 50%) - saturada con papel de filtro. El tejido se recubrió con
50 \mul de tampón de hibridación (3,75 g de Dextrano de sulfato
+ 6 ml de H_{2}O SQ), se mezcló con ayuda del vórtex y se calentó
en el microondas durante 2 minutos con la tapa aflojada. Después de
enfriar las cajas con los tejidos en hielo, se añadieron 18,75 ml
de formamida, 3,75 ml de 20XSSC y 9 ml de H_{2}O SQ, se volvió a
mezclar bien con el vórtex y se incubó a 42ºC durante
1-4 horas.
Un sonda de 1,0x10^{6} cpm y 1,0 \mul de tRNA
(50 mg/ml de solución madre) por porta se calentaron a 95ºC durante
3 minutos. Los portas se enfriaron en hielo, y se añadieron 48
\mul de tampón de hibridación por porta. Después de mezclar con
el vórtex, se añadieron 50 \mul de P3 a 50 \mul de solución de
prehibridacicón sobre el porta. Y se incubaron durante toda la noche
a 55ºC.
Se realizaron dos lavados durante 10 minutos con
2XSSC, EDTA a temperatura ambiente (400 ml de 20XSSC + 16 ml de EDTA
0,25 M, Vf = 4L), seguido de un tratamiento con RNasa a 37ºC durante
30 minutos (500 \mul de 10 mg/ml en 250 ml de tampón RNasa = 20
mg/ml). Los portas se lavaron 2x10 min con 2XSSC, EDTA a
temperatura ambiente. Las condiciones de astringencia del lavado
fueron las siguientes: 2 horas a 55ºC, 0,1 SSC, EDTA (20 ml de
20XSSC + 16 ml de EDTA, V_{f}=4 l).
El análisis in situ se realizó con
diversas secuencias de DNA descritas en la patente europea EP
99912321.9. Los oligonucleótidos utilizados para estos análisis se
derivaron de secuencias nucleotídicas descritas en la patente
europea 99912321.9 y por lo general tuvieron una longitud de 40 a 55
nucleótidos.
Los siguientes materiales se han depositado en el
American Type Culture Collection, 12301.
Material | Número Dep. ATCC | Fecha del depósito |
DNA48309-1280 | ATCC 209656 | 5 de marzo de 1998 |
Este depósito se realizó de acuerdo con la
normativa del Tratado de Budapest sobre el Reconocimiento
Internacional del Depósito de Microorganismos para los Propósitos
de Procedimientos de Patentes y de la Regulación que se contempla
(Tratado de Budapest). Ello asegura el mantenimiento de un cultivo
viable del depósito durante 30 años desde la fecha del depósito.
Los depósitos estarán disponibles por el ATCC bajo los términos del
tratado de Budapest y sometidos a un acuerdo entre Genentech, Inc. Y
ATCC, que asegure la disponibilidad permanente y no restringida de
la progenie del cultivo del depósito para el público tras la
emisión de la patente americana pertinente o tras que sea accesible
al público cualquier patente americana o europea, que la preceda, y
asegure la disponibilidad de la progenie a uno determinado por el
de acuerdo con el 35\NAK122 y las normas del Comisionado de
Patentes y Marcas (incluyendo 37 CFR\NAK1,14 con la referencia
especial a 886 OG 638).
El beneficiario de la presente solicitud está de
acuerdo que si el cultivo de los materiales en depósito perece, se
pierde o se destruye cuando se cultiva en las condiciones
adecuadas, los materiales se reemplazarán en la mayor prontitud
posible con otro similar. La disponibilidad del material depositado
no debe considerarse como una licencia para practicar la invención
en contravención de los derechos garantizados bajo la autoridad de
cualquier gobierno de acuerdo con sus leyes de patentes.
La especificación escrita en la presente
invención se considera suficiente para que un experto en la materia
ponga en práctica la invención. La presente invención no limita su
ámbito por la construcción depositada, ya que la realización
depositada se considera una ilustración de ciertos aspectos de la
invención y cualquier construcción que sea equivalente
funcionalmente se halla dentro del ámbito de la presente invención.
El depósito de materiales no constituye una admisión de que la
descripción aquí descrita sea inadecuada para permitir la práctica
de cualquier aspecto de la invención, incluyendo el mejor modo de
realización, tampoco debe considerarse como limitante del ámbito de
las reivindicaciones con las ilustraciones específicas que se
representan. Incluso, diversas modificaciones de la invención,
además de las aquí mostradas y descritas, serán evidentes a los
expertos en la materia a partir de la descripción presente y se
hallan por tanto dentro del ámbito de las reivindicaciones
anexadas.
Claims (25)
1. Ácido nucleico que codifica un polipéptido con
la secuencia aminoacídica de tamaño completo que se muestra en la
Figura 2, o una forma secretada natural de dicho polipéptido, o el
complemento de dicho ácido nucleico.
2. Ácido nucleico de acuerdo con la
reivindicación 1, que comprende la secuencia codificante de tamaño
completo de la secuencia que se muestra en la Figura 1 o el
complemento de éste.
3. Ácido nucleico de acuerdo con la
reivindicación 1, que comprende la secuencia nucleotídica que se
muestra en la Figura 1 o su complemento.
4. Ácido nucleico que comprende la secuencia
codificante de tamaño completo del inserto de ácido nucleico, DNA
48309-1280 contenido en el número de acceso ATCC
209656.
5. Vector que comprende el ácido nucleico de
cualquier reivindicación anterior.
6. Vector de acuerdo con la reivindicación 5,
unido operativamente a las secuencias control reconocidas por una
célula huésped transformada con el vector.
7. Célula huésped que comprende el vector de
acuerdo con la reivindicación 5 ó 6.
8. Célula huésped de acuerdo con la
reivindicación 7, en donde dicha célula es una célula CHO, una
célula de E. coli o de levadura.
9. Procedimiento para la producción de un
polipéptido que comprende el cultivo de una célula huésped de
acuerdo con la reivindicación 7, o la reivindicación 8 en
condiciones adecuadas para la expresión de dicho polipéptido y la
recuperación de dicho polipéptido del cultivo celular.
10. Polipéptido aislado con al menos un 80% de
identidad de secuencia con la secuencia aminoacídica que se muestra
en la Figura 2, el cual es capaz de aumentar la supervivencia de las
células fotoreceptoras bastones, o es una forma secretada natural
del polipéptido cuya secuencia aminoacídica se muestra en la Figura
2.
11. Polipéptido de acuerdo con la reivindicación
10 que consiste en la secuencia aminoacídica de tamaño completo que
se muestra en la Figura 2.
12. Polipéptido aislado que al menos un 80% de
identidad de secuencia con la secuencia aminoacídica codificada por
la secuencias de tamaño completo del inserto de ácido nucleico, DNA
48309-1280 contenido en el número de acceso ATCC
209656, el cual es capaz de aumentar la supervivencia de las células
fotoreceptoras bastones, o es una forma secretada natural del
polipéptido codificado por la secuencia codificante de tamaño
completo del inserto de ácido nucleico, DNA
48309-1280 contenido en el número de acceso ATCC
209656.
13. Polipéptido de acuerdo con la reivindicación
12, que consiste en la secuencia aminoacídica de tamaño completo
codificada por la secuencia codificante de tamaño completo del
inserto de ácido nucleico, DNA 48309-1280 contenido
en el número de acceso ATCC 209656.
14. Molécula quimérica que comprende un
polipéptido de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 10 a
13 fusionado con una secuencia aminoacídica heteróloga.
15. Molécula quimérica de acuerdo con la
reivindicación 14, en donde dicha secuencia aminoacídica heteróloga
es una secuencia de un epílogo tag.
16. Molécula quimérica de acuerdo con la
reivindicación 14, en donde dicha secuencia aminoacídica heteróloga
es una región Fc de una inmunoglobulina.
17. Polipéptido de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 10 a 13 para su uso en un procedimiento de
tratamiento médico.
18. Polipéptido de acuerdo con la reivindicación
17, en donde dicho uso hace referencia al aumento de la
supervivencia de células fotoreceptoras bastones.
19. Composición farmacéutica que comprende un
polipéptido de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 10 a
13 con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
20. Composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 19, que es efectiva para aumentar la supervivencia de
células fotoreceptoras bastones.
21. Utilización de un polipéptido de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 10 a 13 en la preparación de un
medicamento para aumentar la supervivencia de células fotoreceptoras
bastones.
22. Anticuerpo que se une específicamente al
polipéptido de acuerdo con la reivindicación 11 ó 13, o polipéptido
natural de la reivindicación 10 ó 12.
23. Anticuerpo de acuerdo con la reivindicación
22, en donde dicho anticuerpo es un anticuerpo humanizado.
24. Anticuerpo de acuerdo con la reivindicación
22, en donde dicho anticuerpo es un anticuerpo monoclonal.
25. Anticuerpo de acuerdo con la reivindicación
24, en donde dicho anticuerpo es un anticuerpo quimérico.
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