EP2470147B1 - Poche de stockage de solution therapeutique - Google Patents

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EP2470147B1
EP2470147B1 EP10752431.6A EP10752431A EP2470147B1 EP 2470147 B1 EP2470147 B1 EP 2470147B1 EP 10752431 A EP10752431 A EP 10752431A EP 2470147 B1 EP2470147 B1 EP 2470147B1
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EP
European Patent Office
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membrane
solution
bag
compartment
pocket
Prior art date
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Not-in-force
Application number
EP10752431.6A
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German (de)
English (en)
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EP2470147A1 (fr
Inventor
Priscille Paruit
Brigitte Chaumeton
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LFB SA
Original Assignee
LFB SA
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Filing date
Publication date
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Priority to EP15188993.8A priority patent/EP3000457A1/fr
Publication of EP2470147A1 publication Critical patent/EP2470147A1/fr
Application granted granted Critical
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    • A61J1/00—Containers specially adapted for medical or pharmaceutical purposes
    • A61J1/05—Containers specially adapted for medical or pharmaceutical purposes for collecting, storing or administering blood, plasma or medical fluids ; Infusion or perfusion containers
    • A61J1/10—Bag-type containers
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B65—CONVEYING; PACKING; STORING; HANDLING THIN OR FILAMENTARY MATERIAL
    • B65D—CONTAINERS FOR STORAGE OR TRANSPORT OF ARTICLES OR MATERIALS, e.g. BAGS, BARRELS, BOTTLES, BOXES, CANS, CARTONS, CRATES, DRUMS, JARS, TANKS, HOPPERS, FORWARDING CONTAINERS; ACCESSORIES, CLOSURES, OR FITTINGS THEREFOR; PACKAGING ELEMENTS; PACKAGES
    • B65D29/00—Sacks or like containers made of fabrics; Flexible containers of open-work, e.g. net-like construction
    • B65D29/02—Sacks with laminated or multiple walls
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B65—CONVEYING; PACKING; STORING; HANDLING THIN OR FILAMENTARY MATERIAL
    • B65D—CONTAINERS FOR STORAGE OR TRANSPORT OF ARTICLES OR MATERIALS, e.g. BAGS, BARRELS, BOTTLES, BOXES, CANS, CARTONS, CRATES, DRUMS, JARS, TANKS, HOPPERS, FORWARDING CONTAINERS; ACCESSORIES, CLOSURES, OR FITTINGS THEREFOR; PACKAGING ELEMENTS; PACKAGES
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    • B65D47/04—Closures with discharging devices other than pumps
    • B65D47/06—Closures with discharging devices other than pumps with pouring spouts or tubes; with discharge nozzles or passages
    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • B65D33/00—Details of, or accessories for, sacks or bags
    • B65D33/004—Information or decoration elements, e.g. level indicators, detachable tabs or coupons

Definitions

  • the present invention relates to a therapeutic solution storage bag.
  • therapeutic solution any type of product in liquid form used for a therapeutic purpose.
  • blood components in liquid form for example blood plasma, platelets, or a packed cell.
  • blood plasma derivatives for example albumin or an immunoglobulin.
  • It can also be medication solutions, or even nutritional solutions.
  • glucose solution for example at 5%, G5, or else saline solutions, especially isotonic solutions or a Ringer's solution.
  • Storage bags like glass bottles, are subject to very demanding regulations, particularly with regard to their manufacture and traceability.
  • the pockets must have an inscription providing information about the solution, safety elements such as, the name of the manufacturer, the expiry date, the lot number, the recipient or the name of the patient, including traceability of the solution.
  • the pouches are usually packaged and sent to hospitals or to any recipient who can administer the solution to a patient. The patient can himself be a recipient and administer the solution.
  • the bags currently on the market have an inscription carried directly on a membrane delimiting a receiving compartment of the solution, as is the case of the Flexbumin ® flexible pouch, flexible pouch containing human albumin, manufactured and marketed, particularly in Sweden, by Baxter.
  • the inscription can also be worn by gluing a label on which it was previously written, printed and / or stamped, or by gluing a blank label on which one writes and / or stamps thereafter.
  • the inscription can also be worn directly on the membrane by handwriting typically with a pen or pen or ink pad. This is particularly the case when the bag is used to administer an infusion to a patient. It may be that during the course of administration the contents of the bag are modified, for example by the addition of a drug, and that the nursing staff then wear a marker indicating the modification in question. quantity to be administered or the administration time to be respected.
  • a solution to reduce the risk of contamination in the case where the inscription is carried on the membrane is to use a particular ink whose molecules pass through the membrane more difficult.
  • such an ink is expensive.
  • this solution does not sufficiently reduce the risk of contamination because ink molecules continue to cross the membrane, and because the membrane can still be damaged.
  • this solution does not respond to the risk of contamination related to the inscription carried by sticking a label. There is therefore a need to enhance the safety of the batches of therapeutic solution.
  • the Applicant has surprisingly developed by the present invention a storage bag of a therapeutic solution, providing an improvement in the safety of the therapeutic solution, and allowing to carry an inscription while reducing the risk of contamination. .
  • the application describes a therapeutic solution storage bag comprising at least one membrane-delimited solution receiving compartment.
  • the bag further comprises at least one appendage in the extension of the membrane and having a registration area.
  • the method further comprises a step of irradiating the storage bag before step (i) filling.
  • the invention relates to a ⁇ a> page 4a.
  • the pocket comprises at least one receiving compartment of the solution.
  • the pocket also includes a membrane, the compartment being the space delimited by the membrane.
  • the pocket also comprises at least one appendix in the extension of the membrane and having a registration area.
  • the membrane may consist of a single piece folded and / or welded so as to define the compartment.
  • the membrane may also consist of an assembly of several parts welded together so as to define the compartment.
  • the compartment allows the reception of a volume of solution for its storage.
  • the registration area allows for an inscription providing information relating to the pocket. This information includes but is not limited to one or more of the following: the contents of the solution, the solution producer and its logo, the solution vendor, the concentration of the solution, information about the hospital or the solution institution or recipient, the name of the patient.
  • the inscription may be carried, in a non-limiting manner, by writing by hand with ink on the appendix, by gluing or stapling a label on which was previously printed, handwritten, or stamped, or by gluing or stapling a blank label on which the inscription is subsequently handwritten or stamped.
  • the registration area is on the appendage in the extension of the membrane, it is possible to wear an inscription on the pocket with a reduced risk of contamination. Indeed, carrying an inscription on an area of an appendage in the prolongation of the membrane and not directly on the membrane in contact with the solution reduces the risk of deterioration of the membrane and migration of contaminating molecules towards the membrane. compartment.
  • mirage refers to a visual inspection operation on containers intended to detect any contamination or other defects, such as particles, filling defects, pieces of plastic.
  • FIG 1 has a view of a storage pocket 10 according to a preferred embodiment of the invention.
  • the bag 10 comprises a compartment 11 for receiving solution delimited by a membrane 12.
  • the bag 10 also comprises an appendage 13 in the extension of the membrane 12.
  • the appendix 13 is projecting of the membrane 12, but not necessarily in the axis or in the plane of the membrane 12.
  • the appendix 13 comprises an inscription zone 14, which is separated from the membrane 12 in a separate zone.
  • An inscription 15 providing information on the bag can be worn with a reduced risk of contamination.
  • the membrane 12 is transparent. This makes it possible to examine visually or by any other equivalent means a solution stored in the pocket 10. In fact, carrying an inscription on an area of an appendix in the extension of a transparent membrane and not directly on the membrane improves the effectiveness of the mirage, especially at the time of filling, because the membrane is blank, but also at the time of use by hospital staff to check the clarity of the solution to be infused.
  • the storage pockets on the market have an inscription on the membrane.
  • an inscription on the membrane is an inconvenience for the nursing staff when it wishes to take the precautionary measures mentioned above.
  • An inscription on the membrane is also an inconvenience when the caregiver wishes to check the volume of solution contained in the compartment 11, for example to verify that an infusion is proceeding correctly.
  • the presence of this inscription on the membrane is a hindrance during the operation of mirage therapeutic solutions.
  • the inscription zone 14 is separated from the transparent membrane 12 . No registration thus hinders the eye, which facilitates and consequently speeds up the work of the nursing staff. The facilitation of the work of the nursing staff is of great importance especially in emergency care.
  • the membrane 12 is not transparent, but rather opaque in order to protect the solution from light irradiation. This can be the case when the solution stored in the bag 10 is not directly administered, but taken for example by means of a syringe before being administered. In this case, the precautionary measures mentioned above can be taken after taking the solution from the syringe. It is also possible that the solution is administered from the bag 10 in this case of the opaque membrane.
  • the invention uses a surface ratio of the appendix / pocket storage area between 0.20 and 0.35, in particular between 0.25 and 0.30, in particular equal to 0.27.
  • the membrane 12 of the figure 1 comprises an orifice 16.
  • the orifice 16 allows the injection into the compartment 11 of a solution for storage.
  • the orifice 16 also allows the flow of a solution stored out of the compartment 11 for its administration by infusion to a patient.
  • the orifice 16 is connected to a conduit, not shown, administering the solution to a patient.
  • the conduit connects the compartment 11 to a vein of the patient.
  • the orifice 16 may also be used as an access route for taking a certain amount of solution using a syringe or other sampling tool.
  • the orifice 16 may also be used as an access route for the injection of a given quantity of a medicament, for example for the treatment of cancer patients, for whom a solution of active principle is injected. in the pocket, possibly after reconstitution by the medical staff.
  • the membrane may also include several orifices.
  • the membrane may comprise two orifices: a first orifice for injecting the solution into the compartment for its storage, and a second orifice for the flow of the solution out of the compartment for its administration to a patient.
  • a pocket comprising a plurality of orifices makes it possible to add elements to a solution stored in the pocket via the first orifice at the same time as the solution flows through the second orifice during the infusion.
  • the orifice 16 is advantageously located in an area opposite the appendix 13 with respect to the compartment 11.
  • the appendix 13 may be provided with a fastening member 17, as is the case in the realization of the figure 1 .
  • the attachment member 17 consists of a hole passing through the appendix 13. This configuration is however not limiting. Indeed, a different number of holes can be made.
  • other types of attachment members such as a magnet, a hook protruding from the appendix 13 or an adhesive can be used.
  • the fastening member 17 makes it possible to suspend the pocket at a support preferably located at a height. Since the orifice 16 is situated in an area opposite the appendix 13 with respect to the compartment 11, the suspension of the pocket 10 by the fastening member 17 allows the solution to flow out of the compartment 11 through the orifice 16 under the effect of gravity.
  • the bag 10 can thus be suspended over a patient and be used as an infusion bag.
  • the term "zone opposite to the appendix to the compartment" means the zone of the membrane 12 the lowest when the bag is suspended by a fastening member 17 of Appendix 13.
  • the orifice or the orifices intended for the flow of the solution out of the compartment 11 are situated in an area opposite to the appendix 13 with respect to the compartment 11, which ensures flow of the solution under the effect of gravity.
  • the flow of the solution is by means of a pump, or even by compression of the compartment 11, especially in the infusion assisted infusion mode.
  • the orifice 16 may as well be located in an opposite zone to the appendix 13 with respect to the compartment 11 as in another zone, the gravity being no longer necessary to ensure the flow of the solution.
  • the orifice 16 is provided with a closure member 18. This closure member makes it possible to prevent an undesired flow of the solution.
  • the closure member 18 may be closed by the removable portion 20, or by another element, although it has been previously removed using for example a screw mechanism.
  • This configuration makes it possible to close the orifice 16 despite a first beginning of flow of the solution.
  • This configuration is of interest for example when it is desired to temporarily interrupt an infusion.
  • the membrane 12 is preferably made of a flexible material. It is advantageously a plastic material. PVC, polyethylene, polypropylene or any other material commonly used for producing flexible bags can be used. The thickness of the films is classic.
  • the membrane is made from polypropylene.
  • the flexibility of the pocket 10 allows easier storage of the pocket 10, a simpler waste disposal, as well as greater ease of use compared to rigid bottles.
  • the membrane being made of a flexible material, it is unbreakable. This avoids the problems of decontamination related to the use of glass vials.
  • the membrane 12 consists of multilayer films, in particular three-layer films, the constituent materials of the different layers having their own functions, for example a barrier (for example an oxygen barrier or an infusion product), a support, a binder between two layers, etc. ...
  • a barrier for example an oxygen barrier or an infusion product
  • a use of several layers makes it possible to further reduce the risk of contamination and to increase the resistance capabilities of the membrane 12, in particular to physical stresses and beta-ray irradiations.
  • a use of three layers makes it possible to compromise between an increase in the resistance and the preservation of the transparency of the membrane 12.
  • the bag is placed in a removable outer envelope preferably waterproof.
  • This outer shell has the advantage of constituting a physical barrier for the loss of water.
  • this outer envelope if it is opaque, protects the solution from denaturations that could be induced by light.
  • Such an outer envelope is particularly advantageous in the case where the solution stored in the bag 10 is albumin or an immunoglobulin for example, particularly sensitive to light.
  • the immunoglobulin can be manufactured according to the method described in the documents FR-2824568-A1 and FR-2895263-A1 . It may be an intravenous immunoglobulin G (IVIG).
  • IVIG intravenous immunoglobulin G
  • the outer casing may also consist of multilayer films, in particular three-layer films, the constituent materials of the different layers having their own functions, for example that of blocking the light, or that of ensuring a seal.
  • the outer shell can be made of aluminum or plastic or a mixture of both.
  • the outer casing may be thermoformed around the storage bag 10.
  • the outer envelope consists of a multilayer film containing an aluminum layer surrounded on both sides by a layer of plastic, for example polypropylene, which makes it gives special resistance to shocks, and is a barrier to light.
  • the outer envelope consists of a polyethylene layer, an aluminum layer and a polypropylene layer.
  • a storage bag 10 is packaged in the outer envelope and then sent to a recipient. Before using the bag 10, the recipient removes the outer envelope. Thus, the envelope constitutes a additional protection until it is removed, i.e. until the use of the pocket 10.
  • the compartment 11 has a capacity of maximum capacity of between one milliliter and one liter, advantageously a capacity of maximum capacity of between 5 and 500 milliliters, advantageously between 10 and 500 milliliters, and still more advantageously between 20 and 200 milliliters, advantageously 50 and 100 milliliters.
  • the pouch has a capacity of up to 100 milliliters.
  • the invention is all the more interesting that the volume of the compartment 11 is small.
  • the smaller the volume of the compartment 11 the smaller the surface of the membrane 12 , and the more an inscription on the membrane 12 constitutes an inconvenience.
  • the pocket 10 comprises a weld separating the membrane 12 from the appendix 13.
  • the weld gives a flexibility to the appendix 13 relative to the compartment 11 . This flexibility is useful especially in the case where several pockets storing a solution are stored in a storage box. Since the inscription 15 is on an inscription area 14 of Appendix 13, it is possible to identify a pocket without removing it from the box. The work of the nursing staff is thus facilitated.
  • the bag comprises a plurality of solution receiving compartments.
  • a membrane delimits the compartments, and as in the embodiment of the figure 1 , an appendage is in the extension (projecting) of the membrane.
  • several appendices may be in the extension of the membrane, one after the other or next to each other superimposed on each other. This allows to carry several inscriptions on the pocket. This allows for example to carry an inscription per compartment when the pocket comprises several compartments.
  • the bag may be provided with a mixer ensuring a mixture of the contents of the different compartments, the mixture then flowing through the orifice.
  • the bag may also be provided with an orifice per compartment, a mixture then being provided by a mixer outside the bag.
  • the new flexible pouch is manufactured by any conventional method of manufacturing flexible pouches.
  • the compartment 11 is prepared by welding according to a predefined scheme, by welding a folded membrane on itself or two separate films. A cover is provided during the welding, conventionally.
  • the welding can also be done in a conventional manner, by heat-sealing or ultrasound.
  • the appendage in the extension (projecting) can be attached by welding on an already existing pocket, or on the contrary be obtained directly during manufacture.
  • the folded membrane on itself can be continued to form the appendix; it is also possible that the two films are welded together to form the appendix, or that only one of the films is extended to form the appendix.
  • the pouch comprises a weld 21 between separating the membrane of the appendix.
  • the method may include a step of irradiating the storage bag prior to step (i) of filling to sterilize the bag.
  • the irradiation is by beta 25 kilograys.
  • the method may comprise an intermediate step of pasteurization and / or incubation of the storage bag containing the therapeutic solution, after the step (ii) of capping and before the step (iii) of candling of the storage bag.
  • the method comprises an intermediate step of pasteurization and incubation between steps (ii) and (iii).
  • the tested pouches conform to the figure 1 . These are pockets previously sterilized by ⁇ -irradiation, at 25 kGy.
  • the membrane 12 is each time transparent, comprises an orifice 16 provided with a twist-off, and is a multilayer membrane consisting of three layers of polypropylene.
  • the pouch 12 also comprises an outer casing made of a multilayer film containing an aluminum layer surrounded on either side by a plastic layer.
  • the aluminum layer has a thickness of 8 ⁇ m.
  • the layers surrounding the aluminum layer are polypropylene terephthalate and polypropylene and have a thickness of 12 microns and 75 microns respectively.
  • the outer envelope also called “overpouch” below and in the figures) is thus waterproof and opaque.
  • the outer envelope has a width of substantially 160 mm and a length of substantially 270 mm.
  • the compartment 11 has a capacity of maximum capacity substantially equal to 100 milliliters. In both cases also, pre-prints information on labels, and for each pocket, it then sticks a label on the registration area (14) of the appendix (13) in the extension of the membrane (12), and another label is glued to the outer envelope.
  • Example 1 Study of the stability of 20% albumin stored in test bags.
  • the albumin volume is uniform and is substantially equal to 50 or 100 ml depending on the batch (hereinafter referred to as "lot in 50/100 ml presentation" depending on the capacity of the pockets of the lot in question).
  • the analyzes can be classified according to three categories according to their characterization: qualitative, microbiological or functional.
  • the qualitative characterization of the bags focuses on the appearance of the solution (color, degree of opalescence), pH, osmolality, concentration of polymers, aggregates, enzymatic degradation products, sodium , to the potential adsorption of the stabilizer sodium caprylate, to the study of the migration of the highly toxic component of the overpouch aluminum, to the study of the prekallikrein activator, to the observation of the presence of water between the membrane and the overpouch, to the extent of the extractable volume and the weight of the pocket to highlight a possible loss of water during storage.
  • Microbiological characterization focuses on sterility.
  • the functional characterization focuses on the total protein content (active ingredient content).
  • Table I groups the different analyzes and provides for each the method used and the acceptance criterion applied. ⁇ b> ⁇ u> Table I: Analysis, Method and Application Criteria Applied ⁇ / u> ⁇ /b> Analysis Method Criteria of acceptance Aspect of the solution Ph.Eur 2.2.2 Ph.Eur 2.2.1 Virtually colorless, -Color yellow (J, JB ⁇ JV3) - Degree of opalescence limpid pH Ph.Eur 2.2.3 6.7-7.3 Osmolality (mosmol / kg) Ph.Eur 2.2.35 200-300 Total protein (g / l) Ph.Eur 2.5.33 method 5 190-210 Polymers and aggregates (%) Ph.Eur 2.2.29 ⁇ 5 Sodium caprylate (mg / g protein) Ph.Eur 2.2.28 12.80 - 16.80 Sodium (mmol / l) Ph.Eur 2.2.22 114-126 Degradation Products (%) Ph.Eur 2.2.29 ⁇ 5 Extractable volume Ph.Eur 2.9
  • Table II presents the results for a batch in 50ml presentation subjected to the set of conditions ECE 1, the batch being representative.
  • the statistical analysis of the results shows the absence of a change in the total protein content as a function of the storage time for all the batches, except for one lot in the 100 ml presentation, for which a decrease in the total protein content is observed over time (existence of a linear regression, p ⁇ 0.05). But this decrease has no impact on the quality of the product, given the conformity of the results obtained at each deadline.
  • Table III presents the results for a batch in 100ml presentation subjected to the set of conditions ECE 2, the batch being representative.
  • the statistical analysis of the results shows the absence of a change in the total protein content as a function of the storage time for all the batches, except for one batch in 50 ml presentation and one batch. in presentation 100 ml, for which a decrease in the total protein content is observed over time (existence of a linear regression, p ⁇ 0.05). But this decrease has no impact on the quality of the product, given the conformity of the results obtained at each deadline.
  • Example 2 Study of the stability of IgNG (immunoglobulin G normal) 5% stored in test pockets
  • Example 1 The notations of Example 1 are repeated.
  • ECE 1 normal immunoglobulin G
  • ECE 2 ie 40 ° C ⁇ 2 ° C RH ⁇ 25%).
  • glass vials are filled with the same quantity and then stored under the same conditions for reference.
  • the analyzes carried out are primarily aimed at verifying the stability of 5% IgNG in the pockets and a possible loss of water during storage, resulting from the diffusion of water through the multilayer membrane of the pocket.
  • the analyzes are carried out at T0 and after storage for 1 month and 3 months, at 25 ° C. and 40 ° C.
  • the methods used are those recommended by the European Pharmacopoeia with regard to the appearance of the solution (degree of opalescence and color), pH, osmolality, total protein content (HPSEC, Anti-Hbs activity, AAC ).
  • the fragment assay ( ⁇ 3%), the evaluation of the presence of visible and sub-visible particles, and the tween 80 assay are also performed.
  • the aspect of the pocket (flexibility of the membrane, transparency, sealing of the welds, presence of water between membrane and overflow) is also followed.
  • the extractables and relargables are dosed, according to the "guideline on plastic immediate packaging materials" (CPMP / QWP / 4359/03).
  • the extractables study is carried out with four extraction matrices (EPPI, NaOH, HCl and ethanol), at 100 ° C., for 5 hours. Only antioxidants are sought. This study being carried out on non-irradiated bags, a study on ⁇ pockets radiated at 50 kGy is also conducted. EPPI is used as an extraction medium in this study.
  • the substances released from the pockets of IgNG stored for 3 months at 25 ° C and 40 ° C are assayed, in view of the results of the study extractables.
  • the analyzes are of a semi-quantitative nature, which means that the assays have not been validated beforehand. For techniques requiring extraction (in dichloromethane) of potentially salted organic compounds (GC / MS and PTVGC / MS), the extraction yield may not be total and the values underestimated. On the other hand, by this semi-quantitative analysis, the response factor of the detected species is assumed equal to that of the internal standard, which is not always accurate.
  • Tables IV and V present the results of the stability study of the bags under the conditions ECE 1 and ECE 2 respectively, with each time the result of the references (glass bottles).
  • the results show that IgNG is not destabilized in the pockets after 3 months at 25 ° C and 40 ° C, compared to storage in a glass bottle.
  • the increase in the polymer and fragment content at 40 ° C. is comparable in the pockets and the glass bottles.
  • the anti-HBS activity decreases in the same proportions in the pockets and glass vials.
  • There is no clear evolution of the AAC the different results being related to the variability of the test.
  • the use of an all-aluminum overpouch proved effective in preventing water loss. Ig concentration and osmolality do not increase after 3 months of pocket storage with overpouch.
  • the main entities detected are Irganox 1076, Irganox 1010, Irganox 1330, Irgafos 168 and Irgafos 168 oxidized at concentrations below the limit of 1 ppm set by the Pharmacopoeia. European, for extractions in aqueous medium and at very low concentrations for extraction in ethanol. In the case of the ⁇ -radiated pockets, volatile compounds by HS-GC / MS and semi-volatile by GC / MS, conventionally known as degradation products or solvents of the polymers have been identified.
  • Tables VI and VII below provide the evolution of the content of volatile compounds detected in pockets filled with 5% IgNG after storage for three months at 25 ° C. and 40 ° C. respectively. The values are expressed in ppb. ⁇ b> ⁇ u> Table VI: Evolution of the content of volatile compounds at 25 ° C ⁇ / u> ⁇ /b> Time (months) 0 1 3 isobutylene 12 7 9 Cylcohexane 43 24 17 Ethyl acetate 0 170 180 Time (months) 0 1 3 isobutylene 12 8 12 Cylcohexane 43 17 14 Ethyl acetate 0 210 190 Acetone 0 0 5 tert-butanol 0 0 6
  • the values detected are of the order of ppb and close to the detection limit of the method (5 ppb); the differences between the maturities are not significant.
  • These are degradation products of polymers, identified in the study of extractables and solvents of the polymers used in the production of the bags. Only the evolution of the ethyl acetate content is significant. While this solvent is not initially detected, it is released after 1 month of storage, at concentrations that remain low.

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Description

    Domaine de l'invention
  • La présente invention concerne une poche de stockage de solution thérapeutique.
    • Arrière plan technologique
  • On entend par solution thérapeutique tout type de produit sous forme liquide utilisé dans un but thérapeutique. Il s'agit généralement de constituants sanguins sous forme liquide, par exemple du plasma sanguin, des plaquettes, ou un concentré globulaire. Il peut s'agir de dérivés de plasma sanguin, par exemple l'albumine ou une immunoglobuline. Il peut également s'agir de solutions médicamenteuses, ou encore de solutions nutritives. Il peut s'agir de solution de glucose par exemple à 5%, G5, ou encore de solutions salines, notamment isotoniques ou encore une solution de Ringer. Il peut encore s'agir de solutions préparées extemporanément, notamment par ajout d'un médicament dans une poche contenant une solution d'un fluide porteur, typiquement pour le traitement de maladies par voie intraveineuse comme pour le traitement du cancer.
  • Les poches de stockage représentent aujourd'hui une alternative au conditionnement en flacons de verre pour les produits issus de biotechnologies. D'usage courant en administration intraveineuse pour les solutés en perfusion ou pour des solutions de nutrition parentérale ou encore pour le sang, les poches de stockage souples présentent de nombreux avantages, notamment de par leur légèreté et leur facilité à être manipulées.
  • Les poches de stockage, comme les flacons de verres, sont soumises à une réglementation très exigeante notamment en ce qui concerne leur fabrication et leur traçabilité. Les poches doivent en effet présenter une inscription fournissant une information relative à la solution, les éléments de sécurité comme, le nom du fabricant, la date de péremption, le numéro de lot, le destinataire ou encore le nom du patient, permettant notamment la traçabilité de la solution. Les poches sont généralement emballées et envoyées à des hôpitaux ou à tout destinataire susceptible d'administrer la solution à un patient. Le patient peut lui-même être destinataire et s'administrer la solution.
  • Les poches actuellement proposées sur le marché possèdent une inscription portée directement sur une membrane délimitant un compartiment de réception de la solution, comme c'est le cas de la poche souple Flexbumin®, poche souple contenant de l'albumine humaine, fabriquée et commercialisée, notamment en Suède, par la société Baxter. L'inscription peut aussi être portée par collage d'une étiquette sur laquelle il a été au préalable écrit, imprimé et/ou tamponné, ou encore par collage d'une étiquette vierge sur laquelle on écrit et/ou tamponne par la suite. L'inscription peut également être portée directement sur la membrane par écriture à la main typiquement avec un feutre ou un stylo ou par tampon d'encre. C'est le cas notamment lorsque la poche est utilisée pour administrer une perfusion à un patient. Il peut s'avérer qu'en cours d'administration le contenu de la poche soit modifié, par exemple par l'ajout d'un médicament, et qu'alors le personnel soignant porte au feutre une inscription indiquant la modification en question, la quantité à administrer ou encore le temps d'administration à respecter.
  • Cependant des molécules contenues dans l'encre et/ou la colle utilisées peuvent traverser la membrane et migrer jusque dans la solution thérapeutique. De telles molécules sont susceptibles de présenter une toxicité pour le receveur ou de modifier les propriétés de la solution. Leur présence est donc indésirable et doit être évitée. Par ailleurs, le matériau constituant la membrane est susceptible de se détériorer lorsque l'inscription est portée du fait que des molécules de la membrane peuvent s'en dissocier et contaminer la solution. Cette contamination de la solution et/ou détérioration de la membrane peuvent être particulièrement importantes dans le cas où l'on porte une inscription par écriture à la main avec un feutre ou un stylo directement sur la membrane ou sur une étiquette vierge préalablement collée à la membrane.
  • Des poches de stockage souples sont décrites dans la demande de brevet WO 02/072429 et le brevet US 4,654,240 de Baxter. La demande de brevet WO 02/072429 décrit une poche souple en polymère pour le stockage d'une solution de peptides et/ou de protéines, ainsi qu'un procédé d'introduction d'une telle solution dans un récipient souple en polymère. La manière de porter une inscription sur la poche de stockage n'est pas mentionnée dans ce document. Le brevet US 4,654,240 décrit un matériau en film laminé pour une poche souple capable de stocker un produit devant être maintenu et extrait dans des conditions stériles. La poche est éventuellement stérilisée à la vapeur. La manière de porter une inscription sur la poche de stockage n'est pas mentionnée dans ce document non plus.
  • Une solution pour réduire le risque de contamination dans le cas où l'inscription est portée sur la membrane consiste à utiliser une encre particulière dont les molécules traversent plus difficilement la membrane. Cependant, une telle encre est coûteuse. Par ailleurs, cette solution ne réduit pas suffisamment le risque de contamination car des molécules d'encre continuent à traverser la membrane, et car la membrane peut toujours être détériorée. Enfin, cette solution ne répond pas au risque de contamination lié à l'inscription portée par collage d'une étiquette. Il existe donc un besoin de renforcer la sécurité des lots de solution thérapeutique. La Demanderesse a mis au point de manière surprenante par la présente invention une poche de stockage d'une solution thérapeutique, apportant une amélioration à la sécurité liée à la solution thérapeutique, et permettant d'y porter une inscription tout en réduisant le risque de contamination.
    • Résumé de l'invention
  • L'invention propose une poche (10) de stockage de solution thérapeutique comprenant au moins un compartiment (11) de réception de solution délimité par une membrane multicouche, et au moins un appendice (13) dans le prolongement de la membrane multicouche (12) et comportant une zone d'inscription (14), et une immunoglobuline, ou de l'albumine, dans le compartiment (11) de la poche (10), caractérisée en ce que ladite poche comprend une enveloppe externe étanche et/ou opaque et en ce que le ratio surface de l'appendice / surface poche de stockage est compris entre 0,20 et 0,35.
  • Pour cela, la demande décrit une poche de stockage de solution thérapeutique comprenant au moins un compartiment de réception de solution délimité par une membrane. La poche comprend en outre au moins un appendice dans le prolongement de la membrane et comportant une zone d'inscription.
  • Suivant des modes de réalisation préférés, la poche de stockage présente en outre une ou plusieurs des caractéristiques suivantes :
    • la membrane est transparente ;
    • la membrane comprend un ou plusieurs orifices ;
    • l'enveloppe externe est constituée d'un film multicouche contenant une couche d'aluminium entourée de part et d'autre d'une couche de plastique ;
    • le compartiment a une capacité de contenance maximale comprise entre un millilitre et un litre, avantageusement comprise entre 5 et 500 millilitres, avantageusement comprise entre 10 et 500 millilitres, plus avantageusement comprise entre 20 et 200 millilitres, et encore plus avantageusement comprise entre 50 et 100 millilitres ;
    • le compartiment contient une solution thérapeutique d'immunoglobuline G normale (IGNG).
  • La demande décrit également un procédé de fabrication d'une poche de stockage de solution thérapeutique, précédemment décrite, comprenant les étapes de:
    1. (i) formation simultanée de la membrane et de l'appendice,
    2. (ii) formation du compartiment par soudure,
    3. (iii) perforation de la poche de stockage et éventuellement formation de l'organe d'accrochage,
    4. (iv) insertion d'orifices, et scellage des orifices.
  • La demande décrit également un procédé de fabrication d'une poche de stockage de solution thérapeutique dont le compartiment contient une solution thérapeutique ou de l'albumine ou une immunoglobuline, précédemment décrite, comprenant les étapes de :
    1. (i) remplissage de la poche de stockage avec une solution thérapeutique,
    2. (ii) bouchage de la poche de stockage remplie par la solution thérapeutique par un organe d'obturation,
    3. (iii) mirage de la poche de stockage remplie par la solution thérapeutique et fermée par l'organe d'obturation,
    4. (iv) apposition d'inscriptions sur l'appendice de la poche de stockage contenant la solution thérapeutique, ainsi mirée,
    5. (v) éventuellement suremballage de la poche de stockage contenant la solution thérapeutique par une enveloppe externe, et
    6. (vi) éventuellement apposition d'inscriptions sur l'enveloppe externe contenant la poche de stockage.
  • Optionnellement, le procédé comprend en outre une étape d'irradiation de la poche de stockage avant l'étape (i) de remplissage.
    • Brève description des figures.
  • Dans les dessins, on fournit :
    • figure 1, une vue d'une poche de stockage selon un mode de réalisation préféré de l'invention.
    Exposé détaillé de modes de réalisation de l'invention.
  • D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture de la description détaillée qui suit d'un mode de réalisation de l'invention, donné à titre d'exemple uniquement et en référence à la figure 1.
  • L'invention se rapporte à une <a> page 4a. La poche comprend au moins un compartiment de réception de la solution. La poche comprend également une membrane, le compartiment étant l'espace délimité par la membrane. La poche comprend également au moins un appendice dans le prolongement de la membrane et comportant une zone d'inscription.
  • La membrane peut être constituée d'une seule pièce pliée et/ou soudée de manière à délimiter le compartiment. La membrane peut également être constituée d'un assemblage de plusieurs pièces soudées entre elles de manière à délimiter le compartiment.
  • Le compartiment permet la réception d'un volume de solution pour son stockage. La zone d'inscription permet de porter une inscription fournissant des informations relatives à la poche. Ces informations concernent de manière non limitative un ou plusieurs des éléments suivants : le contenu de la solution, le producteur de la solution et son logo, le vendeur de la solution, la concentration de la solution, des informations sur l'hôpital ou l'établissement ou la personne destinataire, le nom du patient. Les informations peuvent être codées en se présentant par exemple sous forme d'un code barres ou datamatrix (matrice constituée de points poche (10) de stockage de solution thérapeutique comprenant au moins un compartiment (11) de réception de solution délimité par une membrane multicouche, et au moins un appendice (13) dans le prolongement de la membrane multicouche (12) et comportant une zone d'inscription (14), et une immunoglobuline, ou de l'albumine, dans le compartiment (11) de la poche (10), caractérisée en ce que ladite poche comprend une enveloppe externe étanche et/ou opaque et en ce que le ratio surface de l'appendice / surface poche de stockage est compris entre 0,20 et 0,35. ou de carrés juxtaposés, équivalent du code barre en deux dimensions). L'inscription peut être portée, de manière non limitative, par écriture à la main à l'aide d'encre sur l'appendice, par collage ou agrafage d'une étiquette sur laquelle a été au préalable imprimée, écrite à la main, ou tamponnée, ou encore par collage ou agrafage d'une étiquette vierge sur laquelle l'inscription est par la suite écrite à la main ou tamponnée.
  • La zone d'inscription étant sur l'appendice dans le prolongement de la membrane, il est possible de porter une inscription sur la poche avec un risque de contamination réduit. En effet, porter une inscription sur une zone d'un appendice dans le prolongement de la membrane et non directement sur la membrane en contact avec la solution réduit le risque d'une détérioration de la membrane et d'une migration de molécules contaminantes vers le compartiment.
  • Afin de supprimer avant la commercialisation, les cas où une migration aurait pu se produire, on réalise normalement une étape de mirage. On appelle « mirage » une opération de contrôle visuel sur des récipients destinée à détecter toute contamination ou autres vices, tels que des particules, des défauts de remplissage, des morceaux de plastique.
  • L'invention est maintenant décrite en référence à la figure 1 qui présente une vue d'une poche 10 de stockage selon un mode de réalisation préféré de l'invention.
  • Dans ce mode de réalisation, la poche 10 comprend un compartiment 11 de réception de solution délimité par une membrane 12. La poche 10 comprend également un appendice 13 dans le prolongement de la membrane 12. De manière générale, l'appendice 13 est en saillie de la membrane 12, mais non nécessairement dans l'axe ou dans le plan de la membrane 12. L'appendice 13 comporte une zone d'inscription 14, qui est séparée de la membrane 12 en une zone distincte. Une inscription 15 fournissant des informations relatives à la poche peut donc être portée avec un risque de contamination réduit.
  • En outre, dans un mode de réalisation préféré, la membrane 12 est transparente. Cela permet d'examiner visuellement ou par tout autre moyen équivalent une solution stockée dans la poche 10. En effet, porter une inscription sur une zone d'un appendice dans le prolongement d'une membrane transparente et non directement sur la membrane améliore l'efficacité du mirage, notamment au moment du remplissage, car la membrane est vierge de toute impression, mais également au moment de l'utilisation par le personnel hospitalier pour vérifier la limpidité de la solution à perfuser.
  • Il existe dans le domaine médical des normes qui obligent le personnel soignant à prendre certaines mesures de précaution avant l'administration d'une solution thérapeutique à un patient. Un exemple d'une telle mesure de précaution est l'opération d'inspection visuelle qui consiste en plusieurs étapes permettant au personnel soignant de vérifier visuellement qu'aucun dépôt ne s'est formé ou qu'aucune impureté n'est présente dans une solution thérapeutique avant une perfusion. La transparence de la membrane 12 permet donc au personnel soignant de prendre les mesures de précaution nécessitant l'inspection visuelle de la solution stockée dans la poche, comme notamment la vérification de la couleur de la solution thérapeutique ou la présence de contamination bactérienne ou particulaire au sein de la solution thérapeutique à perfuser 10.
  • Les poches de stockage sur le marché portent une inscription sur la membrane. Or, outre les problèmes de contamination qui lui sont liés, une inscription sur la membrane constitue une gêne pour le personnel soignant lorsqu'il souhaite prendre les mesures de précaution mentionnées ci-dessus. Une inscription sur la membrane constitue une gêne également lorsque le personnel soignant souhaite vérifier le volume de solution contenu dans le compartiment 11, par exemple pour vérifier qu'une perfusion se déroule correctement. De plus, la présence de cette inscription sur la membrane constitue une gêne lors de l'opération de mirage des solutions thérapeutiques.
  • Dans la poche 10 représentée à la figure 1, la zone d'inscription 14 est séparée de la membrane 12 transparente. Aucune inscription ne gêne donc l'oeil, ce qui facilite et par conséquent accélère le travail du personnel soignant. La facilitation du travail du personnel soignant trouve une grande importance notamment dans les soins d'urgence.
  • Dans une autre variante, la membrane 12 n'est pas transparente, mais au contraire opaque afin de protéger la solution des irradiations lumineuses. Ceci peut être le cas lorsque la solution stockée dans la poche 10 n'est pas directement administrée, mais prélevée par exemple à l'aide d'une seringue avant d'être administrée. Dans ce cas, les mesures de précaution mentionnées plus haut peuvent être prises après prélèvement de la solution dans la seringue. Il est aussi possible que la solution soit administrée à partir de la poche 10 dans ce cas de la membrane opaque.
  • L'invention utilise un ratio surface de l'appendice / surface poche de stockage compris entre 0,20 et 0,35, notamment entre 0,25 et 0,30 en particulier égal à 0,27.
  • La membrane 12 de la figure 1 comprend un orifice 16. L'orifice 16 permet l'injection dans le compartiment 11 d'une solution pour son stockage. L'orifice 16 permet également l'écoulement d'une solution stockée hors du compartiment 11 pour son administration par perfusion à un patient. Dans le cas d'une telle utilisation, l'orifice 16 est relié à un conduit, non représenté, administrant la solution à un patient. Typiquement, le conduit relie le compartiment 11 à une veine du patient. L'orifice 16 peut également être utilisé comme voie d'accès pour le prélèvement d'une certaine quantité de solution à l'aide d'une seringue ou d'un autre outil de prélèvement. L'orifice 16 peut également être utilisé comme voie d'accès pour l'injection d'une quantité donnée d'un médicament, comme par exemple pour le traitement des patients atteints d'un cancer, pour lesquels une solution de principe actif est injectée dans la poche, éventuellement après reconstitution par le personnel médical.
  • La membrane peut également comprendre plusieurs orifices. Par exemple la membrane peut comprendre deux orifices: un premier orifice pour l'injection de la solution dans le compartiment pour son stockage, et un deuxième orifice pour l'écoulement de la solution hors du compartiment pour son administration à un patient. Dans ce cas, une poche comprenant plusieurs orifices permet d'ajouter des éléments à une solution stockée dans la poche par l'intermédiaire du premier orifice en même temps que s'écoule la solution par l'intermédiaire du deuxième orifice lors de la perfusion.
  • L'orifice 16 est avantageusement situé en une zone opposée à l'appendice 13 par rapport au compartiment 11. Dans ce cas, l'appendice 13 peut être muni d'un organe d'accrochage 17, comme cela est le cas dans le mode de réalisation de la figure 1. Dans ce mode de réalisation 1, l'organe d'accrochage 17 est constitué d'un trou traversant l'appendice 13. Cette configuration n'est cependant pas limitative. En effet, un nombre différent de trous peut être réalisé. Par ailleurs, d'autres types d'organes d'accrochage, comme par exemple un aimant, un crochet en saillie de l'appendice 13 ou encore un adhésif peuvent être utilisés. De même, il est possible d'avoir un crochet prédécoupé dans l'appendice 13, et qui peut être déplié pour permettre l'accrochage.
  • L'organe d'accrochage 17 permet de suspendre la poche à un support de préférence situé en hauteur. L'orifice 16 étant situé en une zone opposée à l'appendice 13 par rapport au compartiment 11, la suspension de la poche 10 par l'organe d'accrochage 17 permet l'écoulement de la solution hors du compartiment 11 par l'orifice 16 sous l'effet de la gravité. La poche 10 peut ainsi être suspendue au dessus d'un patient et être utilisée comme une poche de perfusion. On entend donc par « zone opposée à l'appendice par rapport au compartiment » la zone de la membrane 12 la plus basse lorsque la poche est suspendue par un organe d'accrochage 17 de l'appendice 13.
  • Dans le cas où la membrane 12 comprend plusieurs orifices, l'orifice ou les orifices destinés à l'écoulement de la solution hors du compartiment 11 sont situés en une zone opposée à l'appendice 13 par rapport au compartiment 11, ce qui assure l'écoulement de la solution sous l'effet de la gravité.
  • Dans une variante, l'écoulement de la solution se fait à l'aide d'une pompe, ou même par compression du compartiment 11, notamment dans le mode perfusion assistée sur pompe à perfusion. Dans cette variante, l'orifice 16 peut aussi bien être situé en une zone opposée à l'appendice 13 par rapport au compartiment 11 qu'en une autre zone, la gravité n'étant plus nécessaire pour assurer l'écoulement de la solution.
  • L'orifice 16 est muni d'un organe d'obturation 18. Cet organe d'obturation permet d'empêcher un écoulement non désiré de la solution.
  • Typiquement, après l'injection de solution dans le compartiment 11 par l'orifice 16, on munit l'orifice 16 de l'organe d'obturation 18, par exemple en soudant une partie fixe 19 de l'organe d'obturation 18 sur le contour de l'orifice 16. Lors de l'utilisation de la poche, par exemple pour une perfusion, on retire une partie amovible 20 de l'organe d'obturation 18 en cassant une jointure sécable entre la partie fixe 19 et la partie amovible 20. Typiquement la jointure est sécable par une rotation de la partie amovible 20 relativement à la partie fixe 19. Ce mécanisme est connu sous le terme anglais de « twist-off ». Une jointure sécable permet une utilisation rapide de la poche 10.
  • Des configurations différentes de celle représentée peuvent cependant être utilisées pour l'organe d'obturation 18. Par exemple, la partie fixe 19 peut être obturée par la partie amovible 20, ou par un autre élément, bien que celle-ci ait été préalablement retirée à l'aide par exemple d'un mécanisme de vissage. Cette configuration permet d'obturer l'orifice 16 malgré un premier début d'écoulement de la solution. Cette configuration trouve un intérêt par exemple lorsque l'on souhaite interrompre temporairement une perfusion.
  • La membrane 12 est préférablement réalisée dans un matériau souple. Il s'agit avantageusement d'un matériau plastique. On peut utiliser du PVC, du polyéthylène, du polypropylène ou tout autre matériau communément utilisé pour la réalisation de poches souples. L'épaisseur des films est classique.
  • Dans un mode de réalisation préféré, la membrane est réalisée à partir de polypropylène.
  • La souplesse de la poche 10 permet un rangement plus facile de la poche 10, une élimination des déchets plus simple, ainsi qu'une plus grande facilité d'utilisation par rapport à des flacons rigides. Par ailleurs, la membrane étant réalisée dans un matériau souple, elle est incassable. On évite ainsi les problèmes de décontamination liés à l'utilisation des flacons en verre.
  • La membrane 12 est constituée de films multicouches, notamment tricouches, les matériaux constitutifs des différentes couches ayant des fonctions propres, par exemple barrière (par exemple barrière à l'oxygène ou au produit de la perfusion), support, liant entre deux couches, etc... Une utilisation de plusieurs couches permet de diminuer encore le risque de contamination et d'augmenter les capacités de résistance de la membrane 12, notamment aux contraintes physiques et aux irradiations au rayon bêta. Une utilisation de trois couches permet un compromis entre une augmentation de la résistance et la conservation de la transparence de la membrane 12.
  • La poche est placée dans une enveloppe externe amovible de préférence étanche. Cette enveloppe externe a l'avantage de constituer une barrière physique pour la perte d'eau. De plus, cette enveloppe externe, si elle est opaque, protège la solution de dénaturations qui pourraient être induites par la lumière. Une telle enveloppe externe est particulièrement avantageuse dans le cas où la solution stockée dans la poche 10 est de l'albumine ou une immunoglobuline par exemple, particulièrement sensibles à la lumière.
  • Dans le cas du stockage d'une immunoglobuline, l'immunoglobuline peut être fabriquée selon le procédé décrit dans les documents FR-2824568-A1 et FR-2895263-A1 . Il peut s'agir d'une immunoglobuline G intraveineuse (IgIV).
  • L'enveloppe externe peut aussi être constituée de films multicouches, notamment tricouches, les matériaux constitutifs des différentes couches ayant des fonctions propres, par exemple celle de barrer la lumière, ou encore celle d'assurer une étanchéité. L'enveloppe externe peut être réalisée en aluminium ou en plastique ou en un mélange des deux. L'enveloppe externe peut être thermoformée autour de la poche de stockage 10.
  • Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, l'enveloppe externe est constituée d'un film multicouche contenant une couche d'aluminium entourée de part et d'autre d'une couche de plastique, par exemple en polypropylène, ce qui lui confère une résistance particulière face aux chocs, et constitue une barrière à la lumière. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, l'enveloppe externe est constituée d'une couche de polyéthylène, d'une couche d'aluminium et d'une couche de polypropylène.
  • Typiquement, une poche 10 de stockage selon l'invention est emballée dans l'enveloppe externe puis envoyée à un destinataire. Avant l'utilisation de la poche 10, le destinataire retire l'enveloppe externe. Ainsi, l'enveloppe constitue une protection supplémentaire valant jusqu'à ce qu'elle soit retirée, c'est-à-dire jusqu'à l'utilisation de la poche 10.
  • Le compartiment 11 a une capacité de contenance maximale comprise entre un millilitre et un litre, avantageusement une capacité de contenance maximale comprise entre 5 et 500 millilitres, avantageusement comprise entre 10 et 500 millilitres, et encore plus avantageusement comprise entre 20 et 200 millilitres, avantageusement 50 et 100 millilitres. Par exemple, la poche a une capacité de contenance maximale de 100 millilitres.
  • Dans le cas où la membrane 12 est transparente permettant ainsi d'examiner à l'oeil la solution dans le compartiment 11, l'invention est d'autant plus intéressante que le volume du compartiment 11 est petit. En effet, de manière générale, plus le volume du compartiment 11 est petit, plus la surface de la membrane 12 est petite, et plus une éventuelle inscription portée sur la membrane 12 constitue une gêne.
  • La poche 10 comprend une soudure séparant la membrane 12 de l'appendice 13. Dans le cas où la poche est réalisée dans un matériau souple et où elle est remplie d'une solution, la soudure donne une flexibilité à l'appendice 13 relativement au compartiment 11. Cette flexibilité est utile notamment dans le cas où plusieurs poches stockant une solution sont rangées dans une boîte de rangement. L'inscription 15 étant portée sur une zone d'inscription 14 de l'appendice 13, il est possible d'identifier une poche sans la retirer de la boîte. Le travail du personnel soignant est ainsi facilité.
  • Dans un autre mode de réalisation non représenté, la poche comprend plusieurs compartiments de réception de solution. Une membrane délimite les compartiments, et de même que dans le mode de réalisation de la figure 1, un appendice est dans le prolongement (en saillie) de la membrane. Que ce soit dans ce mode de réalisation non représenté ou dans le précédent, plusieurs appendices peuvent être dans le prolongement de la membrane, les uns après les autres ou les uns à côtés des autres superposés les uns sur les autres. Cela permet de porter plusieurs inscriptions sur la poche. Cela permet par exemple de porter une inscription par compartiment lorsque la poche comprend plusieurs compartiments.
  • Dans le mode de réalisation où la poche comprend plusieurs compartiments, la poche peut être munie d'un mélangeur assurant un mélange du contenu des différents compartiments, le mélange s'écoulant alors par l'orifice. La poche peut également être munie d'un orifice par compartiment, un mélange étant alors assuré par un mélangeur à l'extérieur de la poche.
  • La nouvelle poche souple est fabriquée par tout procédé classique de fabrication des poches souples. En général, on prépare le compartiment 11 par soudure selon un schéma prédéfini, en soudant une membrane repliée sur elle-même ou deux films distincts. Un opercule est prévu lors de la soudure, de façon classique. La soudure peut se faire aussi de façon classique, par thermosoudure ou ultra-sons. L'appendice dans le prolongement (en saillie) peut être rapporté par soudure sur une poche déjà existante, ou au contraire être obtenu directement lors de la fabrication. La membrane repliée sur elle-même peut être continuée pour former l'appendice ; il est aussi possible que les deux films soient soudés ensemble pour former l'appendice, ou encore qu'un seul des films soit prolongé pour former l'appendice. Selon un mode de réalisation, la poche comprend une soudure 21 entre séparant la membrane de l'appendice.
  • Par exemple, un procédé de fabrication d'une poche peut comprendre les étapes de :
    1. (i) Formation simultanée de la membrane et de l'appendice,
    2. (ii) Formation du compartiment par soudure,
    3. (iii) Perforation de la poche de stockage et éventuellement formation de l'organe d'accrochage,
    4. (iv) Insertion d'orifices et scellage des orifices.
  • Le procédé de conditionnement de la poche comprend les étapes suivantes (après la dernière étape du procédé de fabrication de la poche):
    1. (i) Remplissage de la poche de stockage avec une solution thérapeutique,
    2. (ii) Bouchage de la poche de stockage remplie par la solution thérapeutique par un organe d'obturation,
    3. (iii) Mirage de la poche de stockage remplie par la solution thérapeutique et fermée par l'organe d'obturation,
    4. (iv) Apposition d'inscriptions sur l'appendice, de la poche de stockage contenant la solution thérapeutique, ainsi mirée,
    5. (v) Eventuellement suremballage de la poche de stockage contenant la solution thérapeutique par l'enveloppe externe,
    6. (vi) Eventuellement apposition d'inscriptions sur l'enveloppe externe contenant la poche de stockage.
  • Le procédé peut comprendre une étape d'irradiation de la poche de stockage avant l'étape (i) de remplissage afin de stériliser la poche. De manière préférée, l'irradiation se fait par rayon bêta 25 kilograys. Le procédé peut comprendre une étape intermédiaire de pasteurisation et/ou d'incubation de la poche de stockage contenant la solution thérapeutique, après l'étape (ii) de bouchage et avant l'étape (iii) de mirage de la poche de stockage. Avantageusement la méthode comprend une étape intermédiaire de pasteurisation et d'incubation entre les étapes (ii) et (iii).
    • Exemples
  • Les exemples suivants illustrent l'invention sans la limiter.
  • Dans les exemples, les poches testées sont conformes à la figure 1. Il s'agit de poches préalablement stérilisées par β-irradiation, à 25 kGy. La membrane 12 est à chaque fois transparente, comprend un orifice 16 munie d'un twist-off, et est une membrane multicouches, constituée de trois couches en polypropylène. La poche 12 comprend par ailleurs une enveloppe externe constituée d'un film multicouche contenant une couche d'aluminium entourée de part et d'autre d'une couche de plastique. La couche d'aluminium a une épaisseur de 8 µm. Les couches entourant la couche d'aluminium sont en polypropylène téréphtalate et en polypropylène et ont une épaisseur respectivement de 12 µm et de 75 µm. L'enveloppe externe (également appelée « surpoche » ci-après et dans les figures) est ainsi étanche et opaque. L'enveloppe externe présente une largeur de sensiblement 160 mm et une longueur de sensiblement 270 mm. Le compartiment 11 a une capacité de contenance maximale sensiblement égale à 100 millilitres. Dans les deux cas également, on pré-imprime des informations sur des étiquettes, et pour chaque poche, l'on colle ensuite une étiquette sur la zone d'inscription (14) de l'appendice (13) dans le prolongement de la membrane (12), et l'on colle une autre étiquette sur l'enveloppe externe.
    • Exemple 1 : étude de la stabilité d'albumine à 20% stockée dans des poches de test. 1. Matériel
  • Dans cet essai, de l'albumine à 20% est conservée dans le compartiment des poches de test. Les poches sont regroupées en différents lots contrôlés indépendamment. Au sein d'un lot, le volume d'albumine est uniforme et est sensiblement égal à 50 ou à 100 ml suivant le lot (on parlera ci-après de « lot en présentation 50 / 100 ml » suivant la contenance des poches du lot en question).
  • Les poches sont placées dans des enceintes à température et à humidité contrôlées suivant deux ensembles de conditions expérimentales (ECE) :
    • ECE 1 : température de +25°C ±2°C, humidité relative (HR) de 40% ±5%,
    • ECE 2 : température de +40°C ±2°C, HR ≤ 25%.
  • Les poches sont prélevées à des échéances programmées pour analyse. Ces analyses suivent l'ordre suivant :
    1. a) avant conditionnement (Tavc), i.e. au stade MPVP (Matière Première Vrac Purifiée : albumine stabilisée préchauffée),
    2. b) après conditionnement (Tapc), i.e. après la répartition en poche,
    3. c) après pasteurisation, incubation et conditionnement secondaire avec la surpoche (T0), et
    4. d) tous les mois pendant six mois.
  • Les analyses peuvent être classées suivant trois catégories selon leur caractérisation : qualitative, microbiologique ou fonctionnelle. La caractérisation qualitative des poches s'attache à l'aspect de la solution (couleur, degré d'opalescence), au pH, à l'osmolalité, à la concentration de polymères, d'agrégats, de produits de dégradation enzymatique, de sodium, à l'adsorption potentielle du stabilisant qu'est le caprylate de sodium, à l'étude de la migration du composant hautement toxique de la surpoche qu'est l'aluminium, à l'étude de l'activateur de prékallikréine, à l'observation de la présence d'eau entre la membrane et la surpoche, à la mesure du volume extractible et au suivi du poids de la poche afin de mettre en évidence une éventuelle perte d'eau au cours du stockage. La caractérisation microbiologique s'attache à la stérilité. La caractérisation fonctionnelle s'attache à la teneur en protéines totale (teneur en principe actif).
  • Le tableau I regroupe les différentes analyses et fournit pour chacune la méthode employée et le critère d'acceptation appliqué. Tableau I : Analyse, méthode et critère d'application appliqués
    Analyse Méthode Critère d ' acceptation
    Aspect de la solution Ph.Eur 2.2.2 Ph.Eur 2.2.1 Pratiquement incolore,
    -Couleur jaune (J, JB≥JV3)
    -Degré d'opalescence Limpide
    pH Ph.Eur 2.2.3 6,7-7,3
    Osmolalité (mosmol/kg) Ph.Eur 2.2.35 200-300
    Protéines totales (g/l) Ph.Eur 2.5.33 méthode 5 190-210
    Polymères et agrégats (%) Ph.Eur 2.2.29 ≤5
    Caprylate de sodium (mg/g protéines) Ph.Eur 2.2.28 12,80 - 16,80
    Sodium (mmol/l) Ph.Eur 2.2.22 114-126
    Produits de dégradation (%) Ph.Eur 2.2.29 ≤5
    Volume extractible Ph.Eur 2.9.17 ≥ volume nominal
    Activateur de prekallikreine (Ul/ml) Ph.Eur 2.6.15 ≤35
    Stérilité Ph.Eur 2.6.1 Stérile
    Aluminium (µg/l) Ph.Eur 2.2.23 procédé I ≤200
    Suivi du poids de la poche avec surpoche de référence Pesée NA
    Présence d'eau entre la membrane et la surpoche Observation visuelle NA
  • Les résultats obtenus pour chaque analyse sont comparés aux critères d'acceptation du produit à chaque échéance. Par ailleurs, l'évolution de la teneur en principe actif (protéines totales) est étudiée par régression linéaire conformément aux recommandations ICH Q1A (à partir de 5 échéances). L'absence d'une régression linéaire (p ≥ 0,05) met en évidence l'absence d'une évolution sur les résultats étudiés au cours du temps.
    • 2. Résultats Lots ECE 1
  • Le tableau II présente les résultats pour un lot en présentation 50ml soumis à l'ensemble de conditions ECE 1, le lot étant représentatif.
  • Quels que soient le lot et la présentation (50ml ou 100ml), les teneurs en protéines totales observées à chaque échéance sont conformes au critère d'acceptation.
  • L'analyse statistique des résultats met en évidence l'absence d'une évolution de la teneur en protéines totales en fonction du temps de conservation pour l'ensemble des lots, exception faite d'un lot en présentation 100 ml pour lequel une diminution de la teneur en protéines totales est observée au cours du temps (existence d'une régression linéaire, p < 0,05). Mais cette diminution est sans incidence sur la qualité du produit, compte tenu de la conformité des résultats obtenus à chaque échéance.
  • Par ailleurs, quels que soient le lot et la présentation (50ml ou 100ml), les résultats obtenus à chaque échéance sont conformes aux critères d'acceptation, à l'exception de la stérilité de l'un des lots en présentation 50 ml à l'échéance 6 mois. Cependant après enquête, l'absence de stérilité observée est avérée probablement liée à un défaut d'étanchéité de la poche. En effet, un essai de stérilité réalisé sur une poche prélevée à une échéance proche de 9 mois a donné un résultat conforme.
  • Egalement, quels que soient le lot et la présentation (50ml ou 100ml), aucune évolution n'est constatée après 6 mois sur le poids des poches (surpoches inclues) de référence, et aucune présence anormale d'eau entre la membrane et la surpoche n'a été constatée.
    • Lots ECE 2
  • Le tableau III présente les résultats pour un lot en présentation 100ml soumis à l'ensemble de conditions ECE 2, le lot étant représentatif.
  • Quels que soient le lot et la présentation (50ml ou 100ml), les teneurs en protéines totales observées à chaque échéance sont conformes au critère d'acceptation.
  • L'analyse statistique des résultats met en évidence l'absence d'une évolution de la teneur en protéines totales en fonction du temps de conservation pour l'ensemble des lots, exception faite d'un lot en présentation 50 ml et d'un lot en présentation 100 ml, pour lesquels une diminution de la teneur en protéines totales est observée au cours du temps (existence d'une régression linéaire, p < 0,05). Mais cette diminution est sans incidence sur la qualité du produit, compte tenu de la conformité des résultats obtenus à chaque échéance.
  • Par ailleurs, quels que soient le lot et la présentation (50ml ou 100ml), les résultats obtenus à chaque échéance sont conformes aux critères d'acceptation, à l'exception de la stérilité de l'un des lots en présentation 100 ml à l'échéance 6 mois. Mais après enquête, l'absence de stérilité observée est avérée probablement liée à un défaut d'étanchéité de la poche. En effet, un essai de stérilité réalisé sur une poche prélevée à une échéance proche de 9 mois a donné un résultat conforme.
  • Egalement, si une perte d'eau devait se produire lors du stockage, elle serait confirmée par une augmentation des valeurs de pH, d'osmolalité et de teneur en sodium, ce qui n'est pas le cas.
    • Conclusion
  • Les résultats obtenus permettent de conclure que l'albumine 20% stockée dans les poches souples testées, en présentation 50ml et 100ml, est stable :
    • pendant 6 mois à une température de 25 °C ± 2°C,
    • pendant 6 mois à une température de 40°C ± 2°C.
    Exemple 2 : étude de la stabilité d'IgNG (Immunoglobuline G normale) 5% stockée dans des poches de test 1. Matériel
  • Les notations de l'exemple 1 sont reprises. Les compartiments des poches sont remplies, manuellement à l'aide d'une pompe péristaltique, avec 50 ml d'immunoglobuline G normale (IgNG) 5% fabriquée selon le procédé décrit dans les documents FR-2824568-A1 et FR-2895263-A1 , recouverts de surpoches et stockées dans des conditions ECE 1 (i.e. 25°C ± 2°C RH = 40% ± 5%) ou ECE 2 (i.e. 40°C ± 2°C RH ≤25%). Parallèlement, des flacon en verre sont remplis avec la même quantité puis stockés dans les mêmes conditions pour référence.
  • Les analyses réalisées visent en premier lieu à vérifier la stabilité d'IgNG 5% dans les poches et une éventuelle perte en eau au cours du stockage, résultant de la diffusion de l'eau à travers la membrane multicouche de la poche.
  • Les analyses sont effectuées à T0 et après stockage 1 mois et 3 mois, à 25°C et 40°C. Les méthodes utilisées sont celles préconisées par la Pharmacopée Européenne en ce qui concerne l'aspect de la solution (degré d'opalescence et couleur), le pH, l'osmolalité, la teneur en protéines totales (HPSEC, activité Anti-Hbs, AAC). En outre, le dosage des fragments (≤ 3 %), l'évaluation de la présence de particules visibles et sub-visibles, et le dosage du tween 80 sont également réalisés. L'aspect de la poche (souplesse de la membrane, transparence, étanchéité des soudures, présence d'eau entre membrane et surpoce) est également suivi.
  • En deuxième lieu, les interactions contenant/contenu sont évaluées.
  • Pour cela, les extractibles et les relargables sont dosés, selon la « guideline on plastic immediate packaging materials » (CPMP/QWP/4359/03).
  • L'étude des extractibles est réalisée avec quatre matrices d'extraction (EPPI, NaOH, HCl et éthanol), à 100°C, pendant 5h. Seuls les antioxydants sont recherchés. Cette étude étant réalisée sur des poches non irradiées, une étude sur poches γ radiées à 50 kGy est également menée. L'EPPI est utilisée comme milieu d'extraction dans cette étude.
  • Les substances relarguées à partir des poches d'IgNG stockées pendant 3 mois à 25°C et 40°C sont dosées, au vu des résultats de l'étude des extractibles. Les analyses sont de nature semi-quantitative, ce qui signifie que les dosages n'ont pas été validés au préalable. Pour les techniques nécessitant une extraction (dans le dichlorométhane) des composés organiques potentiellement relargués (GC/MS et PTVGC/MS), le rendement d'extraction peut ne pas être total et les valeurs sous-estimées. D'autre part, par cette analyse semi-quantitative, le facteur de réponse des espèces détectées est supposé égal à celui de l'étalon interne, ce qui n'est pas toujours exact.
    • 2. Résultats Stabilité
  • Les tableaux IV et V présentent les résultats de l'étude de stabilité des poches dans les conditions respectivement ECE 1 et ECE2, avec à chaque fois le résultat des références (flacons de verre).
  • De manière générale, les résultats montrent qu'IgNG n'est pas déstabilisée dans les poches après 3 mois à 25°C et 40°C, comparativement à un stockage en flacon en verre. L'augmentation du taux de polymères et de fragments à 40°C est comparable dans les poches et les flacons en verre. L'activité anti-HBS diminue dans les mêmes proportions dans les poches et les flacons en verre. On n'observe pas d'évolution nette de l'AAC, les différents résultats étant liés à la variabilité du test. Dans cette étude, l'usage d'une surpoche tout aluminium s'est révélé efficace pour éviter les pertes d'eau. La concentration en Ig et l'osmolalité n'augmentent pas après 3 mois de stockage en poche avec surpoche.
    • Extractibles
  • En ce qui concerne l'étude des extractibles pour les poches non irradiées, les principales entités détectées sont Irganox 1076, Irganox 1010, Irganox 1330, Irgafos 168 et Irgafos 168 oxydé, à des concentrations inférieures à la limite de 1 ppm fixée par la Pharmacopée Européenne, pour les extractions en milieu aqueux et à de très faibles concentrations pour l'extraction dans l'éthanol. Dans le cas des poches γ radiées, des composés volatiles par HS-GC/MS et semi-volatiles par GC/MS, classiquement connus comme produits de dégradation ou solvants des polymères ont été identifiés.
    • Relargables
  • Les tableaux VI et VII ci-dessous fournissent l'évolution de la teneur en composés volatiles détectés dans des poches remplies d'IgNG 5%, après stockage pendant trois mois, à 25°C et à 40°C respectivement. Les valeurs sont exprimées en ppb. Tableau VI : Evolution de la teneur en composés volatiles, à 25°C
    Temps (mois) 0 1 3
    Isobutylène 12 7 9
    Cylcohexane 43 24 17
    Acétate d'éthyle 0 170 180
    Tableau VII : Evolution de la teneur en composés volatiles, à 40°C
    Temps (mois) 0 1 3
    Isobutylène 12 8 12
    Cylcohexane 43 17 14
    Acétate d'éthyle 0 210 190
    Acétone 0 0 5
    Terbutanol 0 0 6
  • Pour la majorité des composés, les valeurs détectées sont de l'ordre du ppb et proches de la limite de détection de la méthode (5 ppb); les différences entre les échéances ne sont pas significatives. Il s'agit de produits de dégradation des polymères, identifiés dans l'étude des extractibles et de solvants des polymères utilisés lors de la production des poches. Seule l'évolution de la teneur en acétate d'éthyle est significative. Alors que ce solvant n'est pas détecté initialement, il est libéré après 1 mois de stockage, à des concentrations qui restent faibles.
  • Les tableaux VIII et IX ci-dessous fournissent l'évolution de la teneur en composés volatiles détectés dans des poches remplies d'IgNG 5%, après stockage pendant trois mois, à 25°C et à 40°C respectivement. Les valeurs sont exprimées en ppb. Tableau VIII : Evolution de la teneur en composés semi-volatiles, à 25°C
    Temps (mois) 0 1 3
    2,4-di-ter-Butylphenol 25 240 200
    Tableau IX : Evolution de la teneur en composés semi-volatiles, à 40°C
    Temps (mois) 0 1 3
    2,4-di-ter-Butylphenol, 25 130 110
    Benzyl alcohol, 0 0 11
    Ethylhexanoic acid, 0 14 15
    Unknown, 0 0 18
    Bislactone, 0 44 110
    Terbutyl-oxaspirodecadienedione, 0 20 40
    (ter-butyl-hydroxyphenyl) propionic acid, 0 19 34
  • Là aussi, pour la majorité des composés détectés, les valeurs ne sont pas significatives et proches de la limite de détection (10 ppb). Deux composés ont des teneurs significatives après un mois de stockage: le 2,4-di-terbutylphénol (CAS 96-76-4), un produit de dégradation des antioxydants, très couramment retrouvé dans les poches plastiques. Il est irritant mais pas connus pour être cancérigène. Le bislactone (CAS 6607-34-7) est un relargable pour lequel on ne dispose pas de données de toxicité. Le terbutylphénol avait été identifié dans les extractibles alors que le bislactone, n'apparait toujours qu'après une longue exposition.
  • En ce qui concerne les composés non-volatiles par PTV-GC/MS et LC/UV (antioxydants), les 5 antioxydants identifiés dans l'étude des extractibles ont été recherchés. Leur présence au-delà de limite de détection n'a pas été mise en évidence.
    • Conclusion
  • Les résultats de l'étude de stabilité montrent qu'IgNG n'est pas déstabilisée dans les poches Inerta 101 après 3 mois à 25°C et 40°C, comparativement à un stockage en flacon en verre.
  • L'étude des relargables montre la bonne inertie chimique de la poche Inerta 101. Seuls, un solvant des polymères, l'acétate d'éthyle et un produit de dégradation d'un antioxydant classiquement retrouvé dans les poches plastiques, le terbutylphénol, ont été détectés à des teneurs très faibles (de l'ordre du ppb).
  • L'utilisation de la surpoche en aluminium est efficace pour bloquer la diffusion de l'eau à travers la membrane. TABLEAU II
    Analyses Critères d'acceptation Tave Tape T0 1 mois 2 mois 3 mois 4 mois 6 mois
    Aspect de la solution: degré d'opalesence limpide limpide limpide limpide limpide limpide limpide limpide limpide
    Aspect de la solution couleur pratiquement incolore, jaune (J, JB ≥ JV3) JB3 JB3 JB3 JB3 JB3 JB3 JB3 JB3
    Présence d'eau entre poche et surpoche NA NA NA absence absence absence absence présence de quelques gouttes absence
    pH 6,7-7,3 7,0 6,9 7,0 7,0 6,9 7,0 6,9 6,9
    Osmolalité 200-300 mosmol/kg 218 220 221 219 219 220 219 222
    Protéines totales 190-210 g/l 201 202 204 204 205 204 204 201
    Sodium 114 -126 mmol/l 116 119 119 122 120 120 118 121
    Produits de dégradation ≤ 5% <5 <5 <5 <5 <5 <5 <5 <5
    Caprylate de sodium 12,80-16,80 mg/g prot. 15,30 14,62 14,20 15,17 14,76 15,19 14,84 15,03
    Volume extractible ≥ 50 ml NA NA 51 NA NA 51 NA 51
    Polymères et agrégats ≤ 5% 4 4 4 4 4 4 4 4
    Aluminium ≤ 200 µg/l NA NA <10 <10 <10 <10 <10 <10
    Activateur de prékallikréine ≤ 35 VI/ml <1 <1 <1 <1 <1 <1 <1 <1
    Stérilité stérile NA NA stérile NA NA NA NA stérile
    Poids poche de référence NA NA NA 72,0 72,1 72,0 72,0 72,0 72,0
    TABLEAU III
    Analyses Critères d'acceptation Tave Tape T0 1 mois 2 mois 3 mois 4 mois 6 mois
    Aspect de la solution : degré d'opalesence limpide limpide limpide limpide limpide limpide limpide limpide limpide
    Aspect de la solution : couleur pratiquement incolore, jaune (J, JB ≥ N3) JB3 JB3 JB3 JB3 JB3 JB3 JB3 JB3
    Présence d'eau entre poche et surpoche NA NA NA absence absence absence absence présence de quelques gouttes absence
    pH 6.7-7,3 7,0 7,0 7,0 6,9 6,9 6,9 6,8 6,8
    Osmolalité 200 - 300 mosmol/kg 218 221 220 220 219 222 220 222
    Protéines totales 190-210 g/l 201 201 202 204 204 200 201 202
    Sodium 114-126 mmol/l 116 118 117 118 118 120 120 120
    Produits de dégradation ≤ 5% <5 <5 <5 <5 <5 <5 <5 <5
    Caprylate de sodium 12,80 - 16,80 mg/g prot. 15,30 16,57 14,78 14,78 14,73 15,76 13,95 15,18
    Volume extractible ≥ 100 ml NA NA 102 104 102 102 100 100
    Polymères et agrégats ≤5% 4 4 4 45 5 5 5 5
    Aluminium ≤200 µg/l NA NA <10 <10 <10 <10 <10 <10
    Activateur de prékallikréine ≤ 35 UI/ml <1 <1 <1 <1 <1 <1 <1 <1
    Stérilité stérile NA NA stérile NA NA NA NA NR(1)
    Poids poche de référence NA NA NA NR(2) NR(2) NR(2) NR(2) NR(2) NR(2)
    TABLEAU IV
    POCHES
    Analyses Spécifications (Normes internes) T0 T1 T3
    Aspect de la solution - RAS Particules blanchâtres* RAS
    pH 4,6-5,0 4,7 4,8 4,7
    Osmolalité, mosm/kg 270-330 310 311 311
    Protéines totales, g/l 45-55 51 51 50
    HPSEC
    % Polymères ≤ 1,00 <LOD** <LOD** <LOD**
    % Dimères ≤8,0 6,25 6,37 5,34
    % Monomères ≥ 90,0 93,46 93.26 94,22
    % Fragments ≤ 0,70 0,29 0,37 0,44
    Anti-Hbs ≥ 0,03 UI/ml 4,33 4,10 3,92
    AAC ≤ 50% 40% 40% 38%
    Dosage du tween 80 20,0-50,0 mg/l
    FLACONS EN VERRE
    Analyses Spécifications (Normes internes) T0 T1 T3
    Aspect de la solution - RAS RAS RAS
    pH 4,6-5,0 4,7 4.7 4,6
    Osmolalité, mosm/kg 270-330 310 308 308
    Protéines totales, g/l 45-55 50 50 49
    HPSEC
    % Polymères ≤1,00 < LOD** <LOD** <LOD**
    % Dimères ≤8,0 6,41 6,45 6,06
    % Monomères ≥ 90,0 93,32 93,20 93,51
    % Fragments ≤ 0,70 0,27 0,34 0,43
    Anti-Hbs ≥0,03 UI/ml 4,47 4,24 3,85
    AAC ≤ 50% 42% 56% 39%
    Dosage du tween 80 20,0-50,0 mg/l
    * Contamination microbienne probable au cours du stockage de l'échantillon avant analyse
    ** LOD=0,0,5%
    TABLEAU V
    POCHES
    Analyses Spécifications (Nornmes internes) T0 T1 T3
    Aspect de la solution - RAS RAS RAS
    pH 4,6-5,0 4,7 4,7 4,7
    Osmolalité, mosm/kg 270-330 310 309 311
    Protéines totales, g/l 45-55 51 50 49
    HPSEC
    % Polymères ≤ 1,00 < LOD** 0,07 0,21
    % Dimères ≤8,0 6,25 5,31 5,32
    % Monomères ≥ 90,0 93,46 93,74 92,63
    % Fragments ≤ 0,70 0,29 0,89 1,84
    Anti-Hbs ≥ 0,03 UI/ml 4,33 3,60 2,78
    AAC ≤ 50% 40% 42% 36%
    Dosage du tween 80 20,0-50,0 mg/l
    FLACONS EN VERRE
    Analyses Spécifications (Normes internes) T0 T1 T3
    Aspect de la solution - RAS RAS Particules noirâtres*
    pH 4,6-5,0 4,7 4,7 4,7
    Osmolalité, mosm/kg 270-330 310 311 311
    Protéines totales, g/l 45-55 50 50 50
    HPSEC
    % Polymères ≤ 1,00 <LOD** 0,08 0,29
    % Dimères ≤8,0 6,41 5,89 5,82
    % Monomères ≥90,0 93,32 93,17 92,09
    % Fragments ≤0,70 0,27 0,86 1.79
    Anti-Hbs ≥ 0,03 UI/ml 4,47 3,41 2,76
    AAC ≤ 50% 42% 53% 38%
    Dosage du tween 80 20,0-50,0 mg/l
    *Contamination microbienne probable au cours du stockage de l'échantillon avant analyse
    **LOD=0,05%

Claims (6)

  1. Poche (10) de stockage de solution thérapeutique comprenant :
    - au moins un compartiment (11) de réception de solution délimité par une membrane multicouche, et
    - au moins un appendice (13) dans le prolongement de la membrane multicouche (12) et comportant une zone d'inscription (14), et
    - une immunoglobuline, ou de l'albumine, dans le compartiment (11) de la poche (10), caractérisée en ce que ladite poche comprend une enveloppe externe étanche et/ou opaque et en ce que le ratio surface de l'appendice / surface poche de stockage est compris entre 0,20 et 0,35.
  2. Poche selon la revendication 1 dans laquelle la membrane est transparente.
  3. Poche selon l'une des revendications 1 à 2, dans laquelle la membrane comprend un ou plusieurs orifices (16).
  4. Poche selon la revendication 3, dans laquelle l'enveloppe externe est constituée d'un film multicouche contenant une couche d'aluminium entourée de part et d'autre d'une couche de plastique.
  5. Poche selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 dans laquelle le compartiment a une capacité de contenance maximale comprise entre un millilitre et un litre, avantageusement comprise entre 5 et 500 millilitres, avantageusement comprise entre 10 et 500 millilitres, plus avantageusement comprise entre 20 et 200 millilitres, et encore plus avantageusement comprise entre 50 et 100 millilitres.
  6. Poche selon la revendication 1 dans laquelle l'immunoglobuline est l'immunoglobuline G normale (IGNG).
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