EP1877773A1 - Neue apparatur und verfahren zur beschichtung von trägersubstraten für einen analytnachweis mittels affinitäts-nachweisverfahren - Google Patents

Neue apparatur und verfahren zur beschichtung von trägersubstraten für einen analytnachweis mittels affinitäts-nachweisverfahren

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EP1877773A1
EP1877773A1 EP06724515A EP06724515A EP1877773A1 EP 1877773 A1 EP1877773 A1 EP 1877773A1 EP 06724515 A EP06724515 A EP 06724515A EP 06724515 A EP06724515 A EP 06724515A EP 1877773 A1 EP1877773 A1 EP 1877773A1
Authority
EP
European Patent Office
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carrier substrates
liquid
atomized
coating
coated
Prior art date
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Application number
EP06724515A
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English (en)
French (fr)
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EP1877773B1 (de
Inventor
Eginhard Schick
Dominic Utinger
Claudio Calonder
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Bayer Intellectual Property GmbH
Original Assignee
Bayer Technology Services GmbH
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Publication date
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Application granted granted Critical
Publication of EP1877773B1 publication Critical patent/EP1877773B1/de
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Anticipated expiration legal-status Critical

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Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B05SPRAYING OR ATOMISING IN GENERAL; APPLYING FLUENT MATERIALS TO SURFACES, IN GENERAL
    • B05BSPRAYING APPARATUS; ATOMISING APPARATUS; NOZZLES
    • B05B17/00Apparatus for spraying or atomising liquids or other fluent materials, not covered by the preceding groups
    • B05B17/04Apparatus for spraying or atomising liquids or other fluent materials, not covered by the preceding groups operating with special methods
    • B05B17/06Apparatus for spraying or atomising liquids or other fluent materials, not covered by the preceding groups operating with special methods using ultrasonic or other kinds of vibrations
    • B05B17/0607Apparatus for spraying or atomising liquids or other fluent materials, not covered by the preceding groups operating with special methods using ultrasonic or other kinds of vibrations generated by electrical means, e.g. piezoelectric transducers
    • B05B17/0615Apparatus for spraying or atomising liquids or other fluent materials, not covered by the preceding groups operating with special methods using ultrasonic or other kinds of vibrations generated by electrical means, e.g. piezoelectric transducers spray being produced at the free surface of the liquid or other fluent material in a container and subjected to the vibrations
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers

Definitions

  • a detection method based on bioaffinity reactions can be carried out both in a homogeneous solution and on the surface of a solid support ("carrier substrate").
  • carrier substrate Depending on the specific structure of the method, after binding of the analytes to the corresponding recognition elements and optionally further detection substances and optionally between different Each step of the washing steps is necessary in order to separate the complexes formed from the recognition elements and the analytes to be detected and optionally further detection substances from the remainder of the sample and any additional reagents used.
  • methods are used in which the detection of different analytes in discrete sample containers or "wells" of these plates takes place in so-called microtiter plates.
  • an adhesion-promoting layer applied to the carrier substrate As suitable for the preparation of the primer layer, a variety of materials are known, for example, unfunctionalized or functionalized silanes, epoxides, functionalized, charged or polar polymers and "self-assembled passive or functionalized mono- or multilayers", alkyl phosphates and phosphonates, multifunctional block copolymers , such as poly (L) lysine / polyethylene glycols.
  • coatings of bioanalytical sensor platforms or implants for medical applications are used as carrier substrates with graft copolymers as adhesion-promoting layer, with a polyionic main chain, for example binding to a carrier substrate (electrostatically), and non-interactive "(adsorption-resistant) side chains.
  • these non-binding components may be known be selected from the groups of albumins, in particular bovine serum albumin or human serum albumin, casein, unspecific, polyclonal or monoclonal, non-specific or empirical for the analyte or antibodies to be detected non-specific antibodies (especially for immunoassays), detergents - such as Tween 20 -, not with to be analyzed polynucleotides hybridizing, fragmented natural or synthetic DNA, such as an extract of herring or salmon sperm (especially for polynucleotide hybridization assays), or uncharged, but hydrophilic polymers, such as polyethylene glycols or dextranes.
  • albumins in particular bovine serum albumin or human serum albumin, casein, unspecific, polyclonal or monoclonal, non-specific or empirical for the analyte or antibodies to be detected non-specific antibodies (especially for immunoassays), detergents - such as Tween 20 -, not with to be analyzed polynu
  • the inventive method represents a further development of the spraying method described above, wherein the production of very fine liquid droplets for the inventive method in a preferred embodiment by ultrasound treatment.
  • the coating apparatus used for this method comprises in a preferred embodiment a closed container with a holder for horizontal storage of the carrier substrates (based on the surface of the liquid to be atomized) and an underlying ultrasonic generator, which is immersed in the liquid to be atomized.
  • the inventive method is characterized in that the droplets produced are substantially smaller than in the case of the spray process.
  • a very dense fog is generated over the liquid to be atomized, which is evenly distributed in a preferred embodiment by turbulence using a weak additional nitrogen stream in the container, the container is preferably closed except for gas inlets and gas outlets.
  • Fig. 1 shows schematically a coating apparatus according to the invention.
  • Fig. 2 shows the geometry of an array of measurement areas with 12 different applied samples in a two-dimensional array (“microarray”) and a linear array of 6 arrays on a common carrier substrate.
  • 3A-3C show the fluorescence signals of microarrays, wherein the free surfaces of the associated carrier substrates were passivated by means of different coating methods, in each case with enlargements of the marked image sections underneath (A: dipping method, B: spraying method, C: nebulizing method according to the invention).
  • FIG. 4A shows the mean values and standard deviations of the background signal intensities, which were respectively determined between all spots of the microarrays, wherein the free surfaces of the associated carrier substrates were passivated by means of different coating methods (A: dipping method, B: spraying method, C: nebulizing method according to the invention).
  • 4B shows the mean values and standard deviations of the fluorescence intensities of all reference spots (for explanation, see in the exemplary embodiment) of the microarrays, wherein the free surfaces of the associated carrier substrates were passivated using different coating methods (A: dipping method, B: spraying method, C: nebulizing method according to the invention).
  • 5A shows the averaged intensities and standard deviations of the fluorescence signals from the measuring ranges of the microarrays intended for analyte detection, wherein the free surfaces of the associated carrier substrates were passivated using different coating methods (A: dipping method, B: spraying method, C: nebulisation method according to the invention) and the microarrays afterwards with solutions of the antibody Al (anti-p53) and then each incubated for detection by fluorescence detection with Alexa 647 fluorine anti-rabbit Fab fragments.
  • A dipping method
  • B spraying method
  • C nebulisation method according to the invention
  • 5B shows the average intensities and standard deviations of the fluorescence signals from the measuring ranges of the microarrays intended for analyte detection, wherein the free surfaces of the associated carrier substrates were passivated using different coating methods (A: dipping method, B: spraying method, C: nebulizing method according to the invention) and the microarrays afterwards with solutions of antibody A2 (anti-phospho-p53) and then each incubated for detection by fluorescence detection with Alexa 647 fluorine anti-rabbit Fab fragments.
  • A dipping method
  • B spraying method
  • C nebulizing method according to the invention
  • the first object of the present invention is an apparatus for coating carrier substrates for detecting one or more analytes in an affinity detection method, comprising:
  • liquid to be atomized is to be understood as the total amount of liquid within the coating apparatus according to the invention, to which the pulses of the actuator act to atomize the liquid, with the consequence of the conversion of a part of this liquid into mist.
  • the generation of the mist above the liquid to be atomized is effected by the action of ultrasound within that liquid. Accordingly, it is preferred that said actuator serves to generate ultrasound.
  • said actuator comprises the membrane of an ultrasonic generator.
  • the uniformity and high homogeneity of the layer to be produced is of utmost importance.
  • simple, commercial nebulizers such as those used primarily in terrarium, but must also be expected with the occurrence of large drops or even splashes from the liquid to be atomized.
  • the coating apparatus comprises a droplet separator.
  • This droplet separator is to be arranged in the volume of space between the surface of the liquid to be atomized and the holder on which the carrier substrates to be coated are stored during the coating process.
  • a mist eliminator to be used may be impermeable to vapor and mist (for example, if the mist eliminator is a closed solid). It may be advantageous if the mist eliminator has the geometric shape of a concave mirror. For example, a watch glass (having a concave surface) may be used as a mist eliminator.
  • the carrier substrates are coated during storage in the holder during the coating process on its side facing away from the surface of the liquid to be atomized / surface, wherein a coating on other surfaces must not be excluded.
  • a coating apparatus in a coating method according to the invention to produce geometrically structured coatings by optionally sequential atomization of one or more optionally different liquids.
  • the prerequisite for producing reproducible coated regions on the carrier substrates in their geometry is that areas of the carrier substrate that are not to be coated in each case are covered fluidically by a corresponding suitable mask, so that no mist droplets reach the areas not to be coated.
  • the coating apparatus additionally comprises at least one gas inlet.
  • the apparatus may additionally include one or more outlets for venting gas and / or mist.
  • said provisions for producing a uniform distribution of the generated mist to be deposited on the carrier substrates in the vicinity of said carrier substrates comprise a ventilator with which the generated mist and, if appropriate, additional gases introduced into the container of the apparatus are fluidized to achieve a better mixing and thus elimination of inhomogeneities of the mist distribution.
  • the coating apparatus additionally comprises provisions for controlling and / or regulating the temperature of the liquid to be atomized and / or one or all walls of the liquid container. It is also preferred that the holder of the coating apparatus for receiving and / or storing the carrier substrates during the coating process is thermostatable.
  • the coating apparatus additionally comprises provisions for controlling and / or regulating the pressure within the liquid container during the coating process.
  • the coating apparatus according to the invention additionally nebulizes provisions for collecting and recycling / recycling on the walls of the liquid container Liquid includes.
  • the coating apparatus additionally comprises provisions to facilitate the cleaning of the liquid container.
  • the provisions may include a hydrophobic coating on the surface of said container walls, both for recirculation to the inner walls of the liquid container and liquid to be atomized, and for ease of cleaning.
  • Such provisions may also relate to the geometric shape, for example, by corners are avoided in which liquid can collect and is difficult to remove again, or at least rounded.
  • the carrier substrates to be coated are stored substantially horizontally in the holder of the coating apparatus.
  • essentially horizontal deviations of up to +/- 10 ° from a horizontal bearing should be included.
  • the coating apparatus additionally comprises provisions for the controlled adjustment and / or variation of the distance between the surface of the liquid to be atomized and surfaces of the carrier substrates to be coated.
  • the liquid container is closed except for optional gas inlet and optional additional gas and / or mist outlets.
  • the liquids to be atomized are low-viscosity liquids having a viscosity of less than 3 cP. In particular, this may be act aqueous solutions. However, the liquids to be atomized may also be organic, in particular alcoholic solutions.
  • the carrier substrates to be coated are substantially planar.
  • the term "essentially planar” should be understood to mean that said carrier substrates comprise a plane in which, apart from a possibly existing three-dimensional structure (such as side walls of sample containers to be provided on the carrier substrate surface), the surface to be coated is located to substantially parallel second plane in which the opposite surface of the carrier substrates is located, wherein under the name “substantially parallel” deviations of up to +/- 10 ° of parallelism are included.
  • substantially planar carrier substrates with both smooth and rough surfaces to be coated are to be understood.
  • the carrier substrates to be coated may consist of a single (self-supporting) layer, such as. As glass slides, or even of several layers.
  • At least one layer of the carrier substrates to be coated in the propagation direction of an irradiated excitation light or measurement light is substantially optically transparent.
  • optical transparency of a material or of a carrier substrate should be understood to mean that the run length of a light propagating in said material or in said carrier substrate or in the (high-index) waveguiding film of a carrier substrate (see below) as optical waveguide is at least is a portion of the visible spectrum (between 400 nm and 750 nm) greater than 2 mm, provided that this run length is not limited by structures for changing the propagation direction of said light, for example, the run length of optically visible light, ie the distance on the path of the Light in the corresponding material, until the light intensity decreases to a value 1 / e of the intensity of origin when the light enters this material, on the order of several centimeters (eg in thin-film waveguides, see below) up to meters or kilometers (in Trap of optical fiber n for the optical signal transmission).
  • the propagation length of an in of the waveguiding layer guided light by a decoupling diffractive grating are limited to a few microns.
  • this limitation of the run length is due to the structuring, and not by the material properties of the structure.
  • such a lattice waveguide structure is to be referred to as "optically transparent.”
  • support structures or “layers that are substantially optically transparent” are to be understood as meaning the intensity of a support substrate or layers transmitted light by less than 50%.
  • the support substrates to be coated comprise a thin metal layer, preferably of gold or silver, optionally on an underlying intermediate layer with refractive index preferably ⁇ 1.5, wherein the thickness of the metal layer and the possible intermediate layer are selected such that a microwavenplasmon at the wavelength of an incident excitation light and / or at the wavelength of a generated luminescence can be excited.
  • the thickness of the metal layer is preferably between 10 nm and 1000 nm, more preferably between 30 nm and 200 nm.
  • luminescence in this application refers to the spontaneous emission of photons in the ultraviolet to infrared range after optical or non-optical, such as electrical or chemical or biochemical or thermal excitation.
  • chemiluminescence, bioluminescence, electroluminescence and in particular fluorescence and phosphorescence are included under the term “luminescence”. Fluorescence and phosphorescence are particularly preferred forms of luminescence.
  • Optical waveguides are particularly well suited as a carrier substrate for analyte detection in an affinity detection method, since waveguiding combines the formation of a so-called "evanescent" field at the interfaces of the high-refractive-wave waveguiding layer with the adjacent layers (which may also be air) with lower refractive index
  • the penetration depth of this evanescent field into the environment is limited to dimensions less than the wavelength of the guided light (eg, 200 nm to 400 nm) such that interactions of analyte molecules or detection molecules or molecular moieties (such as fluorescent labels ) with this evanescent field excited and observed spatially highly selectively on a surface of the waveguide and interference signals from the far field, eg., From the depth of a sample medium, can be largely excluded.
  • the continuous or discrete waveguiding regions to be coated on the carrier substrates comprise a surface of the carrier substrates to be coated.
  • the carrier substrates to be coated planar waveguide optical waveguide having a substantially optically transparent, waveguiding layer (a) on a second, also substantially optically transparent layer (b) having a lower refractive index than layer (a) and optionally also in Substantially optically transparent intermediate layer (b ') between layer (a) and layer (b) also with a lower refractive index than layer (a).
  • the lower the layer thickness the greater the sensitivity up to a lower limit of the layer thickness.
  • the lower limit value is determined by the termination of the light pipe when the value falls below a value which depends on the wavelength of the light to be led, as well as by an increase in the propagation losses in the case of very thin layers with further layer thickness decrease. It is preferred that the product of the thickness of the layer (a) and its refractive index is one tenth to one whole, preferably one third to two thirds, of the wavelength of an excitation light or measurement light to be coupled into the layer (a).
  • the coupling via prisms which are preferably added to the waveguide without interstice or connected to the waveguide via a refractive index-matching liquid. It is also possible to introduce the excitation light via an optical fiber to the optical waveguide and to couple in via an end face or to couple the light coupled into another waveguide into the waveguide by bringing both waveguides close to each other such that their evanescent fields overlap and therewith Energy transfer can take place.
  • the discrete or continuous waveguiding regions of the carrier substrates to be coated are in contact with one or more grating structures (c), which enable the coupling of excitation light or measuring light into waveguiding layers of said carrier substrates, and / or to one or more grating structures (c '), which enable the decoupling of excitation light or measuring light from waveguiding layers of said carrier substrates are, wherein in the case of simultaneously present on a carrier substrate grating structures (c) and (c') may have the same or different grating periods.
  • Said lattice structures are preferably relief gratings of any desired profile, for example of rectangular, triangular, sawtooth, semicircular or sinusoidal profile, or of phase or volume gratings with a periodic modulation of the refractive index in the essentially planar layer (a ).
  • grating structures (c) are formed as surface relief gratings.
  • the grating structures (c) and / or (c ') may be mono- or multi-diffractive and have a depth of 2 nm-100 nm, preferably 10 nm-30 nm, and a period of 200 nm-1000 nm, preferably 300 nm - 700 nm, have.
  • the ratio of the land width of the grid lines to the grating period may be between 0.01 and 0.99, with a ratio between 0.2 and 0.8 being preferred.
  • Glass or quartz, transparent thermoplastic moldable or millable plastics for example polycarbonates, polyimides, acrylates, especially polymethyl methacrylates, polystyrenes, cyclo-olefin polymers and cyclo-olefin copolymers.
  • Another object of the present invention is a method for coating carrier substrates for the detection of one or more analytes in an affinity detection method, characterized in that said to be coated carrier substrates in a holder of a coating apparatus according to the invention according to one of
  • Liquid is fogged up and - From the generated mist, a deposition of substances contained in the nebulised liquid (compounds) on the carrier substrates to be coated takes place, wherein the carrier substrates in any contact with the surface to be nebulized
  • Liquid are located.
  • the generation of the mist above the liquid to be atomized is effected by the action of ultrasound within that liquid. Accordingly, it is preferred that said actuator serves to generate ultrasound.
  • said actuator comprises the membrane of an ultrasonic generator and the atomization of liquid occurs by means of ultrasonic waves generated therein.
  • said actuator is immersed in the operating state in liquid to be atomized.
  • the actuator is completely within the liquid to be atomized.
  • the coating apparatus comprises a droplet separator which prevents the contact of splashes and large droplets from the liquid to be atomized with the carrier substrates to be coated.
  • a "large" drop is to be understood as meaning a drop with a diameter of more than 200 ⁇ m, whereby the mist eliminator may be impermeable to gas and mist, for example, the mist eliminator may be a closed solid
  • a watch glass having a concave surface
  • a mist eliminator to be used may also be permeable to drops up to a defined size. This can be technically realized, for example, by virtue of the fact that the mist eliminator comprises a fine-meshed net, with the mesh spacing of which the maximum size of drops to be passed is determined.
  • the coating apparatus additionally comprises provisions for controlling and / or regulating the temperature of the liquid to be atomized and / or individual or all walls of the liquid container and the temperature of the nebulizing Liquid and / or single or all walls of the liquid container is controlled and / or varied during the coating process. It is also preferred that the holder of the coating apparatus for receiving and / or storing the carrier substrates is thermostated during the coating process.
  • the carrier substrates during the coating process about an axis be rotated perpendicular to the mounting plane.
  • a particular variant of the method according to the invention is characterized in that geometrically structured coatings are produced by optionally sequential atomization of one or more optionally different liquids using masks to be applied to the carrier substrates to be coated with a coating apparatus according to the invention.
  • the prerequisite for the production of coated regions reproducible in their geometry on the carrier substrates is that areas of the carrier substrate which are not to be coated are covered in a fluid-tight manner by a suitable mask, so that no mist droplets reach the areas not to be coated.
  • the carrier substrates to be coated are stored substantially horizontally during the coating process in the holder of the coating apparatus.
  • the coating apparatus additionally comprises provisions for the controlled adjustment and / or variation of the distance between the surface of the liquid to be atomized and surfaces of the carrier substrates to be coated, and so that a well-defined distance between said liquid and the liquid surfaces to be coated for the period of the coating process is set.
  • the liquid container of the coating apparatus is closed except for optional gas inlet and optional additional gas and / or mist outlets.
  • the liquids to be atomized are low-viscosity liquids having a viscosity of less than 3 cP.
  • these may be aqueous solutions.
  • the liquids to be atomized may also be organic, in particular alcoholic solutions.
  • the carrier substrates to be coated are substantially planar.
  • the carrier substrates to be coated may consist of a single (self-supporting) layer, such as. As glass slides, or even of several layers.
  • the carrier substrates to be coated comprise a thin metal layer, preferably of gold or silver, optionally on an underlying intermediate layer with refractive index preferably ⁇ 1.5, wherein the thickness of the metal layer and the possible intermediate layer are selected such that a microwavenplasmon at the wavelength of an incident excitation light and / or at the wavelength of a generated luminescence can be excited.
  • the carrier substrates to be coated comprise optical waveguides comprising one or more layers.
  • the carrier substrates may be formed throughout as optical waveguides or comprise discrete waveguiding regions.
  • the carrier substrates to be coated planar waveguide optical waveguide having a substantially optically transparent, waveguiding layer (a) on a second, also substantially optically transparent layer (b) having a lower refractive index than layer (a) and optionally also in Substantially optically transparent intermediate layer (b ') between layer (a) and layer (b) also with a lower refractive index than layer (a).
  • the discrete or continuous waveguiding regions of the carrier substrates to be coated can be brought into optical interaction with one or more optical coupling elements for coupling excitation or measuring light from one or more light sources during the detection step of an affinity detection method with said carrier substrates, wherein said optical coupling elements are selected from the group comprising prism couplers, evanescent couplers with matched optical waveguides with overlapping evanescent fields, face couplers with focusing lenses arranged in front of one waveguide layer of the carrier substrates, preferably cylindrical lenses, and grating couplers.
  • the discrete or continuous waveguiding regions of the carrier substrates to be coated are in contact with one or more grating structures (c), which enable the coupling of excitation light or measuring light into waveguiding layers of said carrier substrates, and / or to one or more grating structures (c '), which enable the decoupling of excitation light or measuring light from waveguiding layers of said carrier substrates are, wherein in the case of simultaneously present on a carrier substrate grating structures (c) and (c') may have the same or different grating periods.
  • the refractive index of the first optically transparent layer (a) is larger than 1.8. It is also preferable that the first optically transparent layer (a) comprises a material selected from the group consisting of silicon nitride, TiO 2 , ZnO, Nb 2 O 5 , Ta 2 O 5 , HfO 2 , and ZrO 2 , particularly preferably TiO 2 , Ta 2 O 5 or Nb 2 O 5 .
  • the second optically transparent layer (b) of the carrier substrates to be coated comprises a material from the group consisting of silicates, for.
  • silicates for.
  • glass or quartz transparent thermoplastic molding, sprayable or millable plastics, such as polycarbonates, polyimides, acrylates, in particular polymethyl methacrylates, polystyrenes, cyclo-olefin polymers and cyclo-olefin copolymers.
  • Characteristic of a preferred group of embodiments of the coating method according to the invention is that the carrier substrates to be coated enable the detection of one or more analytes in an affinity detection method by means of detection of one or more excited luminescences.
  • the carrier substrates to be coated enable the detection of one or more analytes in an affinity detection method by means of detection of changes in the effective refractive index in the near field (evanescent field) on a surface of said carrier substrates.
  • a group of embodiments of the method according to the invention is characterized in that the layer to be deposited on the carrier substrates is an adhesion-promoting layer.
  • said adhesion promoting layer has a thickness of less than 200 nm, more preferably less than 20 nm.
  • the primer layer may comprise a chemical compound from the groups comprising silanes, functionalized silanes, epoxides, functionalized charged or polar polymers, and "self-assembled passive or functionalized monolayers or multilayers", thiols, alkyl phosphates and phosphonates, multifunctional block copolymers, such as poly (L) lysine / polyethylene glycols.
  • the method according to the invention is characterized in that one or more specific binding partners are immobilized on the surface of the carrier substrates for the detection of one or more analytes in an affinity detection method (binding the binding partner from a supplied solution to the immobilized binding partner).
  • These specific binding partners can be applied to an adhesion-promoting layer applied by means of the coating method according to the invention or else directly to the uncoated surface of the carrier substrates, with areas of the surface remaining free of specific binding partners preferably being provided with a passivation layer in a subsequent coating step according to the method according to the invention below).
  • the specific binding partners immobilized on the surface of said carrier substrates are biological or biochemical or synthetic recognition elements for the specific recognition of one or more analytes present in a sample supplied.
  • different such specific recognition elements are present in each case in as highly pure a form as possible, generally in different discrete measurement ranges, so that different analytes from the sample generally bind to measurement regions with different recognition elements.
  • Such arrays of measurement areas are also referred to as "capture arrays".
  • Characteristic of a further widely applicable embodiment of the method according to the invention is therefore that the specific binding partners immobilized on the surface of said carrier substrates are the one or more analytes themselves, which are embedded in a native sample matrix or modified with one or more processing steps Form of the sample matrix are immobilized.
  • Said binding partners i. the self-immobilized analyte to be detected or detected in a supplied sample and / or their immobilized or supplied in a supplied detection reagent biological or biochemical or synthetic Erkenuungs shame can be selected from the group which proteins, such as monoclonal or polyclonal antibodies and antibody fragments, peptides, enzymes , Glycopeptides, oligosaccharides, lectins, antigens for antibodies, proteins functionalized with additional binding sites ("tag proteins", such as "histidine tag proteins") and nucleic acids (for example DNA, RNA, oligonucleotides) and nucleic acid analogs (eg. PNA), aptamers, membrane-bound and isolated receptors and their ligands, cavities produced by chemical synthesis for incorporation of molecular imprints, natural and artificial polymers, etc.
  • proteins such as monoclonal or polyclonal antibodies and antibody fragments, peptides, enzymes , Glycopeptides
  • said specific binding partners applied to the surface of the carrier substrates can be immobilized in discrete measuring areas (spots) which can have any geometry, for example circular, oval, triangular, rectangular, polygonal, etc., wherein a single measuring area has identical or different specific binding partners may contain.
  • albumins in particular bovine serum albumin or human serum albumin, casein, nonspecific, polyclonal or monoclonal, alien or empirical for the analyte (s) to be detected and / or their Binding partners non
  • the present invention therefore relates to a method according to the invention according to one of the aforementioned embodiments, which is characterized in that the layer deposited on the carrier substrates is a passivation layer which is located between the spatially separated measuring areas or in unoccupied partial areas within these measuring areas
  • Analytes and / or to its binding partners "chemically neutral" compounds after the generation of these measuring ranges is applied and preferably, for example, comprises compounds from the groups which albumin, especially bovine serum albumin or human serum albumin, casein, unspecific, polyclonal or monoclonal, alien or empirical for the or the analytes to be detected and their binding partners nonspecific antibodies (especially for immunoassays), detergents - such as Tween 20 -, do not hybridize with polynucleotides to be analyzed end, fragmented natural or synthetic DNA, such as extracts of herring or salmon sperm (especially for polynucleotide hybridization assays), or even uncharged but hydrophilic polymers, such as polyethylene glyco
  • a further subject of the present invention is a carrier substrate for the detection of one or more analytes in an affinity detection method comprising an adhesion-promoting layer, characterized in that said adhesion-promoting layer is produced by a coating method according to the invention according to one of said embodiments.
  • a carrier substrate for the detection of one or more analytes in an affinity detection method comprising a passivation layer covering the carrier substrate at least in partial regions, characterized in that said passivation layer is produced by a coating method according to the invention according to one of said embodiments.
  • FIG. 1 A schematic representation of a coating apparatus according to the invention is shown in FIG. 1.
  • the areas of unprotected areas of specific binding partners are to be "passivated” by carrier substrates prepared for an affinity detection method, i.e. a "passivation layer” is applied in these areas.
  • the inventive apparatus in this exemplary embodiment comprises a desiccator (1) with a volume of about 2 1 as a container for the liquid to be atomized and the volume of mist to be generated over the liquid, a holder (2) for receiving the carrier substrates to be coated Ultrasonic atomizer ("Lucky Reptile Mini-Nebulizer", Reptilica, D-90431 Nuremberg, Germany) as an actuator (3) for liquid atomization, a watch glass as a droplet separator (4) and a gas inlet (5) and an outlet (6) for gas and / or generated fog.
  • the ultrasonic generator mounted on the bottom of the desiccator was poured into polydimethylsiloxane (PDMS) just below the vibrating vibrating diaphragm, requiring only the application of a thin layer of fluid to be atomized is.
  • PDMS polydimethylsiloxane
  • the holder To be coated planar optical thin-film waveguides as carrier substrates, with the external dimensions of 14 mm wide x 57 mm long x 0.7 mm thick (for more details see below), in the holder (2) during the coating process at a distance of about 8 cm the liquid surface stored horizontally (with respect to the liquid surface).
  • the holder is formed in the present example as a perforated carrier made of plastic, so that through these holes Excess liquid separated from the mist can flow off.
  • the holder can accommodate ten thin-film waveguides as carrier substrates with the dimensions mentioned.
  • the watch glass as a droplet is glued in the present example to the underside of the holder (2) and shields the substrates to be coated against splashes from the nebulizing solution (coating solution).
  • the generated, very homogeneously distributed mist deposits on the carrier substrates, with in the present example on the top (with respect to the storage in the coating apparatus) arranged high-refractive wave-guiding layer (a), in the form of very small droplets, and already within 5 minutes to 10 Minutes forms on the tops of these substrates a thin, continuous liquid film.
  • the carrier substrates are removed from the coating apparatus, thoroughly rinsed with flowing ultrapure water (Millipore) and finally dried in a stream of nitrogen.
  • a volume of about 2 ml of passivation solution (liquid to be atomized) is required for a thin-film waveguide of the stated dimensions as the carrier substrate.
  • the carrier substrates used for an affinity detection method to be carried out later are planar optical thin-film waveguides, each with the outer dimensions 14 mm wide x 57 mm long x 0.7 mm thick.
  • These support substrates each comprise a glass substrate (AF 45) and a 150 nm thin, high refractive layer of tantalum pentoxide applied thereon.
  • grating period: 318 nm, grating depth: (12 +/- 2) nm are modulated at a distance of 9 mm, which are to serve as diffractive gratings of the light coupling into the high refractive layer.
  • a monolayer of mono-dodecyl phosphate (DDP) formed as an adhesion-promoting layer by spontaneous self-assembly (“soap assembly”) is applied hydrophobic bonding layer provided carrier substrates are each 6 identical microarrays of 144 discrete measuring areas (spots), in turn, in an array of 16 rows and 9 columns, with an inkjet spotter (model NP 1.2, GeSiM, Grosserkmannsdorf, Germany) applied is created by applying a single droplet of approximately 350 pL volume to the chip surface.
  • DDP mono-dodecyl phosphate
  • the analytes to be detected themselves are to be immobilized in a subsequent affinity detection method on the prepared carrier substrates, embedded in a native sample matrix or in a form of sample matrix (cell lysate) prepared with a few sample preparation steps. These forms of the samples are also referred to below as “nature-identical samples.”
  • the detection step should then take place after addition of further detection reagents.
  • a signaling pathway via a marker protein is the tumor suppressor protein p53, which via its degree of phosphorylation controls cell division, apoptosis and certain repair mechanisms for damaged DNA. These signaling pathways are often disturbed in cancer cells at one or more sites by mutations or lack of one or more marker proteins in their regulation, which may ultimately be responsible for uncontrolled growth.
  • the detection and determination of the relative levels of p53 and P-p53 is performed by using highly specific antibodies that bind to these proteins, which directly act as analytes in the recovered and treated cell lysates the carrier substrates (preferably after application of a primer layer as described above) to be immobilized.
  • each microarray contains further measurement areas with Cy5 fluorescently labeled bovine serum albumin (Cy5-BSA) immobilized therein, which are used to refer to local differences and / or temporal variations of the excitation light intensity during the measurement ("reference spots"). Cy5-BSA is applied in a concentration of 0.5 nM in 7 M urea, 2 M thiourea (labeling rate: about 3 Cy5 molecules per BSA molecule).
  • FIG. 2 The geometry of the arrangement of the measurement areas in a two-dimensional array and a linear arrangement of six (identical) arrays on a carrier substrate are shown in FIG. 2.
  • An array of measuring ranges for these examples comprises in each case an arrangement of measuring regions with 12 different samples applied in 4 replicates, the 4 identical measuring regions each being arranged in a common column perpendicular to the direction of propagation of the light guided during the detection step in the waveguiding layer of these carrier substrates ,
  • the reproducibility of the measuring signals within the array of measuring ranges is to be determined with the help of the 4 identical measuring ranges.
  • the analytical platform according to the invention in this example comprises 6 similar arrays of measuring ranges, as shown in FIG. 2.3. Passivation of the free areas between and within the measuring ranges
  • the support substrates After application of the "naturally identical" samples and Cy5-BSA, the support substrates are dried in dust-free room air before the free, uncovered hydrophobic surface areas of the support substrates in a further step to minimize undesired non-specific binding of detection reagents, in this case antibodies and / or fluorescently labeled molecules, are saturated (passivated) with bovine serum albumin (BSA).
  • detection reagents in this case antibodies and / or fluorescently labeled molecules
  • a second assay step is carried out using an Alexa Fluor 647-labeled anti-rabbit Fab fragment (Molecular Probes, cat no Z-25308 , Leiden, The Netherlands), which binds to the aforementioned antibodies Al and A2.
  • This fluorescently labeled Fab fragment is, starting from the commercially available stock solution, in a dilution of 1: 500 in assay buffer applied to the arrays (each 30 ul) and then for 1 hour at Room temperature incubated in the dark.
  • the excitation wavelength in the measurements for the present example is 635 nm
  • the detection of the fluorescent light with a cooled camera at the fluorescence wavelength of Cy5 using an interference filter (transmission (675 ⁇ 20) nm) for the suppression of scattered light at the excitation wavelength is positioned in front of the lens of the camera.
  • the generated fluorescence images are automatically stored on the disk of the control computer. Further details of the optical system (ZeptoREADER TM) are described in International Patent Application PCT / EP01 / 10012, which is hereby incorporated in its entirety as part of this application.
  • the raw data of the individual pixels of the camera represent a two-dimensional matrix of digitized measured values, with the measured intensity as the measured value of a single pixel corresponding to the area imaged on it on the sensor platform.
  • a two-dimensional (coordinate) network is placed over the pixels (pixel values) in such a way that the partial image of each spot falls into an individual two-dimensional network element.
  • each spot is assigned a circular area of interest (AOI) with a user-definable radius (typically 120 ⁇ m), which can be adjusted as well as the location of the individual AOIs individually as a function of the signal intensity of the individual
  • the average radius signal intensity of each spot determines the arithmetic mean of the pixel values (signal intensities) within a selected evaluation range.
  • the background signals are determined from the measured signal intensities between the spots.
  • four further circular areas are defined per spot as evaluation areas for background signal determination, which are preferably arranged in the middle between between adjacent spots.
  • the average background signal intensity is determined, for example, as the arithmetic mean of the pixel values (signal intensities) within an AOI selected for this purpose.
  • the average net signal intensity from the measurement areas (spots) is then calculated as the difference between the local average gross and local mean background signal intensity of the respective spot.
  • the referencing of the net signal intensity of all spots is done with the help of reference spots (Cy5-BSA) of each array of measuring ranges.
  • the net signal intensity of each spot is divided by the average of the net signal intensities of the adjacent reference spots of the same row (arranged parallel to the propagation direction of the light guided in the evanescent field sensor platform).
  • 3A shows a typical image of the fluorescence signals of a microarray according to an assay for the detection of p53, in which free areas between the measurement areas were passivated by means of the dipping method (according to 2.3.1.).
  • the signal intensity within each individual reference spot and between different reference spots (Cy5-BSA) is distributed very evenly and homogeneously, and the edge of the almost perfectly circular spots is sharply delimited from the background (see detail image).
  • the measuring ranges of the immobilized cell lysates are characterized by tail-like "smears", which is particularly noticeable at high signal intensities. As described above, these "smears" are caused during the moment of immersion of the carrier substrates provided with the spots into the passivation solution.
  • sample components dissolved from the measurement areas by the passivation solution which are adsorbed along the flow in the opposite direction in the immediate vicinity of such a measurement area on the free, not yet passivated carrier substrate surface, before they even contain the BSA contained in the passivation solution can be passivated. Since these sample portions, which have been removed from the measurement areas and resorbed in the neighborhood, always contain a certain content of analyte to be detected, a corresponding fluorescence signal is visible on reading at said locations.
  • 3B shows a typical image of the fluorescence signals of a microarray according to an assay for the detection of p53, in which free areas between the spots were passivated by means of the spray method (according to 2.3.2.).
  • the signals from the reference spots are comparable in terms of their shape and uniformity or homogeneity as well as their intensity with those of a microarray after use of the dipping method.
  • the signals from the measurement areas with immobilized cell lysates are also comparable in their intensity to the corresponding measurement signals from the microarrays which had been subjected to the immersion process.
  • the cell lysate spots do not show the "smudges" described above, but only smaller "outgrowths” of lesser fluorescence intensity, which are evidently arranged approximately randomly around the intended spots. These are most likely caused by the local dissolution and outflow of non-bound cell lysate at the edges of the measurement areas, since the impinging small spray droplets of the passivation solution on impact with the surface have a non-negligible impulse perpendicular to the coating surface, which can lead to the generation of splashes.
  • 3C shows a typical image of the fluorescence signals of a microarray according to an assay for the detection of p53, in which free areas between the measurement areas were passivated by means of the method according to the invention by fogging passivation solution, as described under 1. Striking here, compared to the passivated with the other methods described microarray, the high quality with comparably good homogeneity and shape of reference spots and Zellysatspots. "Smudges" or "outgrowths" of the cell lysate spots can be avoided here due to the fact, apart from the influence of gravity, essentially undirected and pulse-free application of the passivation in the form of fine mist droplets, the size of which is well below that produced by spraying droplets.
  • the efficiency of passivation of the surface free of components from the immobilized sample i. the degree of suppression of nonspecific binding by means of the BSA contained in the passivation solution can be determined semiquantitatively from the signal intensity measured in the areas free of spots (between the spots, "background signals") nonspecific binding of the fluorescently labeled detection reagents (Alexa 647 anti-rabbit Fab) used in the assay to the BS A-free surface give a higher signal than a surface continuously coated with BSA.
  • Figure 4A shows the averages and standard deviations of the background signal intensities determined between all spots of the free carrier substrate surfaces passivated by the three different methods with the microarrays generated thereon.
  • the standard deviation of the background signal intensities after application of the spray method or the nebulization method according to the invention is in each case significantly lower than after use of the dipping method for surface passivation, which led to a standard deviation of the background signal intensities of 34%. It is concluded that the uniformity or homogeneity of the coating after application of the spraying or misting process is higher than after use of the dipping process.
  • 4B shows the mean values of the fluorescence intensities of all reference spots of the microarrays, wherein the free surfaces of the associated carrier substrates were in turn treated with the three different coating methods.
  • FIG. 5 A shows the average intensities and standard deviations of the fluorescence signals from the measuring ranges of the microarrays intended for analyte detection, the carrier substrate surfaces of which were each treated with the different passivation methods and which are subsequently treated with solutions of the antibody Al (anti-p53) (FIG. 5 A, top ) and A2 (anti-phospho-p53) (Figure 5A, bottom) and then each incubated for detection by fluorescence detection with Alexa 647 Fluor anti-rabbit F ab fragments.
  • the measured fluorescence signal intensities correlate with the respective relative content of analytes contained in a cell lysate (corresponding to Zellysatkonzentration; higher signal corresponding to a higher analyte concentration, the correlation obviously being nonlinear in nature).
  • Fig. 5B shows that the content of phospho-p53 in the UV-light-treated sample is also markedly increased compared to the control sample, while the content of phospho-p53 in the doxorubicin-treated sample, despite a massively increased total concentration of p53 only slightly above (in the case of lysate concentrations from 0.2 mg / ml to 0.4 mg / ml) or even below (in the case of the lysate concentration of 0.1 mg / ml) that of the control sample.

Abstract

Gegenstand der vorliegenden Erfindung sind verschiedene Ausführungsfomen einer Apparatur zur Beschichtung von Trägersubstraten zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren, umfassend: - ein Behältnis zur Aufnahme zu vernebelnder Flüssigkeit ('Flüssigkeitsbehältnis') mit darin enthaltenen, auf mindestens einer Oberfläche besagter Trägersubstrate abzuscheidenden Stoffen (Verbindungen) sowie eines über der Flüssigkeit im Betriebszustand erzeugten Nebelvolumens, - einen Aktuator zur Veranlassung des Vernebelungsprozesses und - eine Halterung zur Aufnahme und Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses, dadurch gekennzeichnet, dass sich die Trägersubstrate in keinem Kontakt zur Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit befinden. Die vorliegende Erfindung umfasst auch verschiedene Ausführungsformen von Verfahren zur Beschichtung von Trägersubstraten zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren, mit Haftvermittlungs- und / oder Passivierungsschichten.

Description

Neue Apparatur und Verfahren zur Beschichtung von Trägersubstraten für einen Analytnachweis mittels Affinitäts-Nachweisverfahren
Technischer Hintergrund der Erfindung
Für zahlreiche Anwendungsgebiete ist es erforderlich, eine Vielzahl von Analyten in einer Probe von eventuell komplexer Zusammensetzung und Beschaffenheit zu bestimmen, beispielsweise in diagnostischen Verfahren zur Bestimmung des Gesundheitszustandes eines Individuums oder in der Pharmaforschung und -entwicklung zur Bestimmung der Beeinflussung eines Organismus und dessen komplexer Funktionsweise durch Zuführung biologisch aktiver Verbindungen.
Während bekannte analytische Trennverfahren im allgemeinen dahingehend optimiert sind, innerhalb möglichst kurzer Zeit eine möglichst grosse Anzahl von in einer gegebenen Probe enthaltenen Verbindungen gemäss eines vorgegebenen physikalisch-chemischen Parameters, wie beispielsweise des Molekulargewichts oder des Quotienten aus molekularer Ladung und Masse, aufzutrennen, beruhen Bioaffinitäts-Nachweisverfahren darauf, mit jeweils einem biologischen oder biochemischen oder synthetischen Erkennungselement möglichst hoher Spezifϊzität, nachfolgend auch bezeichnet als „Bindungspartner" bzw. „spezifischer Bindungspartner", den entsprechenden (einzelnen) Analyten hochselektiv in einer komplex zusammengesetzten Probe zu erkennen und zu binden. Der Nachweis einer Vielzahl unterschiedlicher Verbindungen erfordert also die Verwendung einer entsprechenden Anzahl unterschiedlicher spezifischer Erkennungselemente.
Ein Nachweisverfahren basierend auf Bioaffinitätsreaktionen kann sowohl in einer homogenen Lösung als auch an der Oberfläche eines festen Trägers („Trägersubstrat") erfolgen. Je nach dem spezifischen Aufbau des Verfahrens sind nach Bindung der Analyten an die entsprechenden Erkennungselemente und gegebenenfalls weitere Nachweissubstanzen sowie gegebenenfalls zwischen verschiedenen Verfahrensschritten jeweils Waschschritte notwendig, um die gebildeten Komplexe aus den Erkennungselementen und den nachzuweisenden Analyten sowie gegebenenfalls weiteren Nachweissubstanzen vom Rest der Probe und der gegebenenfalls eingesetzten zusätzlichen Reagentien zu trennen. Zur Bestimmung einer Vielzahl von Analyten oder Untersuchung einer Vielzahl von Proben sind, vor allem in industriellen Analytiklabors, Verfahren verbreitet, in denen in sogenannten Mikrotiterplatten der Nachweis unterschiedlicher Analyten in diskreten Probenbehältnissen oder "Wells" dieser Platten erfolgt. Am weitesten verbreitet sind dabei Platten mit einem Raster von 8 x 12 Wells auf einer Grundfläche von typischerweise ca. 8 cm x 12 cm, wobei zur Füllung eines einzelnen Wells ein Volumen von einigen hundert Mikrolitern erforderlich ist. Für zahlreiche Anwendungen wäre es jedoch wünschenswert, mehrere Analyten in einem einzigen Probenbehältnis, unter Einsatz eines möglichst kleinen Probenvolumens, gleichzeitig zu bestimmen.
In den WO 84/01031, US-P 5807755, US-P 5837,551 und US-P 5432,099 wird die Immobilisierung für den Analyten spezifischer Erkennungselemente in Form kleiner "Spots" als diskreten Messbereichen mit teilweise deutlich unter 1 mm2 Fläche auf einem gemeinsamen Trägersubstrat vorgeschlagen, um durch Bindung eines nur kleinen Teils vorhandener Analytmoleküle eine nur von der Inkubationszeit abhängige, aber - in Abwesenheit eines kontinuierlichen Flusses - vom absoluten Probenvolumen im wesentlichen unabhängige Konzentrationsbestimmung des Analyten vornehmen zu können. Eine Vielzahl solcher „Spots" als Messbereiche stellt in einer zweidimensionalen Anordnung auf einem gemeinsamen Trägersubstrat ein sogenanntes „Mikroarray" dar.
Relativ weit verbreitet sind inzwischen Verfahren zum gleichzeitigen Nachweis einer Vielzahl unterschiedlicher Nukleinsäuren in einer Probe mithilfe entsprechender komplementärer, auf einem Trägersubstrat in diskreten, räumlich getrennten Messbereichen immobiliserter Nukleinsäuren als Erkennungselementen. Beispielsweise sind, basierend auf einfachen Glas- oder Mikroskop-Plättchen als Trägersubstraten, Arrays von Oligonukleotiden als Erkennungselementen mit einer sehr hohen Feature-Dichte (Dichte von Messbereichen auf einem gemeinsamen festen Träger) bekannt. Beispielsweise werden in der US-Patentschrift No. 5,445,934 (Affymax Technologies) Arrays von Oligonukleotiden mit einer Dichte von mehr als 1000 Features pro Quadratzentimeter beschrieben und beansprucht.
Seit kurzem häufen sich auch Beschreibungen von Arrays und damit ausgeführter Nachweisverfahren ähnlicher Art zur gleichzeitigen Bestimmung einer Vielzahl von Proteinen, beispielsweise in der US-Patentschrift No. 6,365,418 Bl. Die einfachste Form der Immobilisierung der Bindungspartner für den Analytnachweis besteht in physikalischer Adsorption, beispielsweise infolge hydrophober Wechselwirkungen zwischen den Bindungspartnern und dem Trägersubstrat. Diese Wechselwirkungen können jedoch durch die Zusammensetzung des Mediums und dessen physikalisch-chemische Eigenschaften, wie beispielsweise Polarität und Ionenstärke, in ihrem Ausmass stark verändert werden. Insbesondere im Falle sequentieller Zugabe verschiedener Reagentien in einem mehrstufigen Assay ist das Haftvermögen der Bindungspartner nach rein adsorptiver Immobilisierung auf der Oberfläche oft unzureichend.
Es wird daher oft bevorzugt, die Bindungspartner auf einer auf dem Trägersubstrat aufgebrachten Haftvermittlungsschicht zu immobilisieren. Als für die Herstellung der Haftvermittlungsschicht geeignet sind eine Vielzahl von Materialien bekannt, beispielsweise nicht funktionalisierte oder funktionalisierte Silane, Epoxide, funktionalisierte, geladene oder polare Polymere und "selbstorganisierte passive oder funktionalisierte Mono- oder Mehrfachschichten", Alkylphosphate und -phosphonate, multifunktionellen Block- Copolymere, wie beispielsweise Poly(L)lysin/Polyethylenglycole.
Beispielsweise in der WO 00/65352 werden Beschichtungen von bioanalytischen Sensorplattformen oder Implantaten für medizinische Anwendungen als Trägersubstraten mit Pfropf-Copolymeren („graft copolymers") als Haftvermittlungsschicht, mit einer polyionischen, z. B. an ein Trägersubstrat (elektrostatisch) bindenden Hauptkette und „nicht interaktiven" (adsorptionresistenten) Seitenketten, beschrieben.
Zur Minimierung unspezifischer Bindung von Analyten oder deren Nachweissubstanzen oder anderen Bindungspartnern, insbesondere in den (unbedeckten) Bereichen zwischen den durch lokal adressierte Aufgabe erzeugten Messbereichen (Spots) zum Analytnachweis, wird es vielfach bevorzugt, diese Bereiche zu „passivieren". Dazu werden zwischen den räumlich getrennten Messbereichen auf den Trägersubstraten Verbindungen aufgebracht, welche gegenüber den Analyten oder gegenüber deren Nachweissubstanzen oder anderen Bindungspartnern „chemisch neutral", d. h.nicht-bindend, sind.
Besagte gegenüber den Analyten oder deren Nachweissubstanzen oder anderen Bindungspartnern „chemisch neutralen", d.h. diese nicht bindenden, Komponenten (nachfolgend auch als „Passivierungsverbindungen" bezeichnet) können bekanntermassen ausgewählt sein aus den Gruppen, die von Albuminen, insbesondere Rinderserumalbumin oder Humanserumalbumin, Casein, unspezifischen, polyklonalen oder monoklonalen, artfremden oder empirisch ftir den oder die nachzuweisenden Analyten unspezifischen Antikörpern (insbesondere für Immunoassays), Detergentien - wie beispielsweise Tween 20 - , nicht mit zu analysierenden Polynukleotiden hybridisierender, fragmentierter natürlicher oder synthetischer DNA, wie beispielsweise ein Extrakt von Herings- oder Lachssperma (insbesondere für Polynukleotid-Hybridisierungsassays), oder auch ungeladenen, aber hydrophilen Polymeren, wie beispielsweise Polyethylenglycolen oder Dextranen, gebildet werden.
Um die Erzeugung verlässlich quantifizierbarer Daten aus den Bindungssignalen, beispielsweise mithilfe von Fluoreszenzdetektion, von verschiedenen Messbereichen (Spots) eines Mikroarrays zu ermöglichen, ist es notwendig, eine einheitliche Oberflächendichte und Bindungsaktivität immobilisierter Bindungspartner in miteinander zu vergleichenden Messbereichen zu gewährleisten. Zur Erfüllung dieser Anforderung ist eine hohe räumliche Homogenität der Haftvermittlungsschicht, auf der die diskreten Messbereiche (Spots) erzeugt werden, eine wesentliche Voraussetzung. Ähnliche Anforderungen an die räumliche Homogenität bestehen auch für die aufgebrachte Passivierungsschicht, zur Gewährleistung eines einheitlichen, möglichst niedrigen Signalhintergrunds zwischen den ausgewiesenen Messbereichen (Spots).
In Abhängigkeit von der molekularen Beschaffenheit der Komponenten der zu erzeugenden Haftvermittlungsschicht sowie natürlich der thermischen und chemischen Stabilität der zu beschichtenden Trägersubstrate sind für die Aufbringung der Haftvermittlungsschicht auf dem Trägersubstrat verschiedene Methoden einsetzbar. Silanisierungen können beispielsweise sowohl in der Gas- und der Flüssigphase, beispielsweise mithilfe von Tauchverfahren, durchgeführt werden. Während die Beschichtungsverfahren in der Gasphase, bei ausreichend gross bemessenen Reaktionsgefässen (im Vergleich zur Grosse der zu beschichtenden Trägersubstrate), in der Regel zu einer guten Homogenität der abgeschiedenen Schicht führen, weisen aus der Flüssigphase abgeschiedene Schichten oft starke räumliche Inhomogenitäten auf, beispielsweise Ablaufspuren nach Anwendung von Tauchverfahren.
Da die Abscheidungen aus der Gasphase in der Regel erhöhte Prozesstemperaturen erfordern, erfolgt der Schritt der Aufbringung von Passivierungsschichten, nach Auftragung der in den meisten Fällen nicht hitzebeständigen Erkennungselemente zum Analytnachweis, in der Regel aus der Flüssigphase. Für den Passivierungsschritt wird typischerweise ein Tauchverfahren benutzt. Dabei wird das Trägersubstrat in ein Gefäss fallen gelassen, welches mit einer Lösung der gegenüber den Analyten oder deren Nachweissubstanzen oder anderen Bindungspartnern „chemisch neutralen", d.h. diese nicht bindenden, Verbindungen („Passivierungslösung") gefüllt ist, um die gesamte Oberfläche des Trägersubstrats möglichst schnell und gleichzeitig mit der Passivierungslösung zu benetzen. Nachfolgend wird das Trägersubstrat während eines vorbestimmten Zeitraumes in der Passivierungslösung belassen („inkubiert"), damit die zur Oberflächenpassivierung eingesetzten Verbindungen auf der Substratoberfläche adsorbiert werden können.
Ein Vorteil dieses herkömmlichen Verfahrens besteht darin, dass es ohne jegliche weitere Hilfsmittel durchgeführt werden kann und keine speziellen Anforderungen an die Fähigkeiten des Laborpersonals voraussetzt.
Eine nachteilige Eigenschaft dieses Verfahrens ist jedoch ein relativ hohes Risiko des „Verschmierens" von Spots während des Moments des Eintauchens des Trägersubstrats durch an der Substratoberfläche entlangströmende Passivierungslösung. Dabei wird Material aus den diskreten Messbereichen (immobilisierte spezifische Bindungspartner) desorbiert und weggeschwemmt und kann in der Umgebung in Richtung der relativen Strömungsrichtung der Passivierungslösung (bezogen auf die Substratoberfläche) in noch nicht vollständig mit Passivierungsverbindungen bedeckten Bereichen wieder adsorbiert werden.
Das Ausmass des „Verschmierens" von Spots ist unter anderem abhängig von der Oberflächendichte der immobilisierten spezifischen Bindungspartner in den diskreten Messbereichen und der Zusammensetzung der Passivierungslösung, insbesondere von der Löslichkeit der spezifischen Bindungspartner in dieser Passivierungslösung. Der Effekt des „Verschmierens" kann bei einer hohen Feature-Dichte, d.h. bei einem geringen Abstand zwischen benachbarten Spots, die quantitative Analyse der Assay-Signale aus einem Array von Messbereichen stark beeinträchtigen oder sogar ausschliessen, aufgrund der resultierenden inhomogenen Verteilung der Hintergrundsignale aus den Bereichen zwischen den diskreten Messbereichen. Insbesondere wenn immobilisiertes Material sogar von einem Spot bis zu einem benachbarten Spot transportiert wird, kann dieser unerwünschte Effekt dazu führen, dass eine aussagekräftige Analyse der Assay-Signale nicht mehr möglich ist. Ein weiterer Nachteil dieses Verfahrens besteht in dem inhärenten Bedarf an relativ grossen Volumina von Passivierungslösung und damit verbundenen relativ hohen Kosten.
Zur Vermeidung des beschriebenen Effekts des „Verschmierens" ist der Einsatz von Sprühverfahren bekannt, beispielsweise mithilfe von Zerstäubern. Dabei wird die Passivierungslösung in Form kleiner Flüssigkeitströpfchen auf der Substratoberfläche aufgetragen, bis sich auf dieser Oberfläche ein durchgehender Flüssigkeitsfilm ausgebildet hat. Anschliessend wird die Substratoberfläche in einer gesättigten Atmosphäre des Flüssigkeitsdampfes (d.h. bei 100 % Luchtfeuchtigkeit im Fall einer wässrigen Passivierungslösung) während eines vorgegebenen Zeitraumes inkubiert, wiederum damit die zur Oberflächenpassivierung eingesetzten Verbindungen auf der Substratoberfläche adsorbiert werden können. Zur Vermeidung von Ablaufspuren werden die Trägersubstrate während der Durchführung dieses Passivierungsverfahrens horizontal (bezüglich der zu beschichtenden Substratoberfläche) gelagert.
Bei sachgemässer Durchführung dieses Verfahrens kann ein „Verschmieren" der Spots weitgehend vermieden werden. Vorteilhaft ist auch der im Vergleich zum vorangehend beschriebenen Tauchverfahren um typischerweise einen Faktor 10 verminderte Bedarf an Passivierungslösung.
Die erforderliche gleichmässige Benetzung und recht genaue Dosierung der aufgebrachten Flüssigkeitsmenge, welche zur Ausbildung eines homogenen Flüssigkeitsfilms auf der Substratoberfläche erforderlich sind, stellen jedoch eine verfahrensinhärente Schwierigkeit mit damit verbundenen erhöhten Anforderungen an das Bedienungspersonal dar. Im Falle eines Überschusses an aufgebrachter Passivierungslösung kann beispielsweise wieder ein „Verschmieren" der Spots auftreten. Ein auf dieser Beschichtungsmethode basierendes modulares System zur Herstellung von Mikroarrays mit Nukleinsäuren, Proteinen oder anderen chemischen oder biologischen Verbindungen als in diskreten Messbereichen immobilisierten spezifischen Bindungspartnern ist beispielsweise in der internationalen Patentanmeldung WO 01/57254 beschrieben worden.
Trotz klarer Vorteile im Vergleich zum Tauchverfahren sind die Resultate des Sprühverfahrens ebenfalls nicht optimal. Aufgrund des Ausstossens der Tröpfchen über eine Düse oder einen Zerstäuber besitzen die Tröpfchen im Moment des Auftreffens auf der zu beschichtenden Oberfläche einen mehr oder minder starken gegen diese Oberfläche gerichteten Impuls. Dieses ist mit dem Risiko des Zerspritzens in noch kleinere Tröpfchen beim Auftreffen auf der Oberfläche verbunden, so dass die Ränder der zu erzeugenden Messbereiche (Spots) in der Regel nicht wohldefiniert erzeugt werden. Ausserdem werden durch Sprühverfahren in der Regel relativ grosse Tröpfchen mit einer grossen Variation der Tröpfchengrösse erzeugt.
Aufgabenstellung
Es besteht daher das Bedürfnis nach Entwicklung eines Beschichtungsverfahrens aus der Flüssigphase sowie einer Apparatur zur Durchführung dieses Beschichtungsverfahrens, womit eine ähnlich hohe Homogenität der erzeugten Schichten wie bei einer Abscheidung aus der Gasphase erreicht werden kann und wofür der Einsatz einer möglichst kleinen Flüssigkeitsmenge erforderlich ist. Ausserdem ist es wünschenswert, dass ein entsprechendes neuartiges Beschichtungsverfahren und eine dafür zu verwendende Beschichtungsapparatur sowohl für die Aufbringung einer Haftvermittlungsschicht als auch einer Passivierungsschicht geeignet sind. Unter dem Aspekt der Wirtschaftlichkeit ist dabei eine möglichst kostengünstige Lösung anzustreben, d.h. der intrumentelle Aufwand möglichst gering zu halten. Eine entsprechende neue Beschichtungsapparatur sollte leicht bedienbar und ein damit auszuführendes Beschichtungsverfahren leicht automatisierbar sein.
Kurzbeschreibung der Erfindung
Es wurde nun überraschend gefunden, dass die genannten Anforderungen mit dem nachfolgend beschriebenen erfindungsgemässen Verfahren, basierend auf einer Vernebelung von Lösung, welche die auf den Trägersubstraten aufzubringenden Verbindungen enthält und wobei kein wesentlicher Impuls aus dem Nebel auf den Trägersubstraten abzuscheidender Tröpfchen in Richtung der Trägersubstrate erforderlich ist, erfüllt werden kann. Die zur Durchführung dieses Verfahrens entwickelte erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur zeichnet sich durch eine sehr einfache Konstruktion, bei der kostengünstige kommerziell erhältliche Komponenten verwendet werden können, und auch einfache Bedienbarkeit aus. Das erfindungsgemässe Verfahren, durchzuführen mit einer erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur entsprechend einer der nachfolgend beschriebenen Ausführungsformen, eignet sich zum Aufbringen von sowohl Haftvermittlungs- als auch Passivierungsschichten auf beliebigen, aber vorzugsweise planaren Trägersubstraten zum Nachweis von Analyten in Affinitäts-Nachweisverfahren.
Das erfindungsgemässe Verfahren stellt eine Weiterentwicklung des vorangehend beschriebenen Sprühverfahrens dar, wobei die Erzeugung feinster Flüssigkeitströpfchen für das erfindungsgemässe Verfahren in einer bevorzugten Ausführungsform durch Ultraschallbehandlung erfolgt. Die für dieses Verfahren eingesetzte Beschichtungsapparatur umfasst in einer bevorzugten Ausführungsform ein geschlossenes Behältnis mit einer Halterung zur horizontalen Lagerung der Trägersubstrate (bezogen auf die Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit) und einem darunter befindlichen Ultraschallgenerator, der in die zu vernebelnde Flüssigkeit eingetaucht ist. Das erfindungsgemässe Verfahren zeichnet sich dadurch aus, dass die erzeugten Tröpfchen wesentlich kleiner als im Falle des Sprühverfahrens sind. Im Betriebszustand wird ein sehr dichter Nebel über der zu vernebelnden Flüssigkeit erzeugt, der in einer bevorzugten Ausführungsform durch Verwirbelung mithilfe eines schwachen zusätzlich eingesetzten Stickstoffstroms in dem Behältnis gleichmässig verteilt wird, wobei das Behältnis vorzugsweise bis auf Gaseinlässe und Gasauslässe geschlossen ist. Da keine Strömung der Beschichtungslösung bezüglich der zu beschichtenden Oberflächen der Trägersubstrate auftritt, wird ein „Verschmieren" der Spots, wie es für das Tauchverfahren beschrieben wurde, bei dem erfindungsgemässen Verfahren verhindert. Demzufolge gibt es auch kaum verfahrensbedingte Beschränkungen hinsichtlich der Auswahl der Zusammensetzung sowohl einer Passivierungslösung als auch einer in einem vorangehenden Arbeitsschritt zur Immobilisierung der spezifischen Bindungspartner in diskreten Messbereichen einzusetzenden „Spottinglösung" sowie der Konzentration dieser Lösung an spezifischen Bindungspartnern und damit der resultierenden Oberflächendichte immobilisierter spezifischer Bindungspartner in den Messbereichen. Aufgrund der Abwesenheit von Strömungen entlang der Oberfläche der Trägersubstrate während des Oberflächenpassivierungsschritts besteht insbesondere keinerlei Gefahr des „Verschmierens" zwischen benachbarten Spots, so dass deren erzeugbare Dichte in einem Array von Messbereichen nur durch die Dosierfeinheit und Positioniergenauigkeit der zur Erzeugung der diskreten Messbereiche einzusetzenden Apparatur („Spotter") beschränkt wird. Das erfindungsgemässe Verfahren zeichnet sich ausserdem durch die Möglichkeit zur gleichzeitigen Beschichtung einer grossen Anzahl von Trägersubstraten in einem gemeinsamen, entsprechend dimensionierten Behältnis und einfache Automatisierbarkeit aus und ist auch für ungeschultes Personal leicht durchführbar. Die für die Beschichtung der Trägersubstrate notwendigen einzusetzenden Flüssigkeitsvolumina sind von ähnlicher Grössenordnung wie im Falle des Sprühverfahrens.
Kurzbeschreibung der Abbildungen
Fig. 1 zeigt schematisch eine erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur.
Fig. 2 zeigt die Geometrie einer Anordnung von Messbereichen mit 12 unterschiedlichen aufgebrachten Proben in einem zweidimensionalen Array („Mikroarray") und eine lineare Anordnung von 6 Arrays auf einem gemeinsamen Trägersubstrat.
Fig. 3A - Fig. 3C zeigen die Fluoreszenzsignale von Mikroarrays, wobei die freien Oberflächen der zugehörigen Trägersubstrate mithilfe unterschiedlicher Beschichtungsverfahren passiviert wurden, jeweils mit darunter befindlichen Vergrösserungen der markierten Bildausschnitte (A: Tauchverfahren, B: Sprühverfahren, C: erfindungsgemässes Vernebelungsverfahren).
Fig. 4A zeigt die Mittelwerte und Standardabweichungen der Hintergrundsignalintensitäten, die jeweils zwischen allen Spots der Mikroarrays bestimmt wurden, wobei die freien Oberflächen der zugehörigen Trägersubstrate mithilfe unterschiedlicher Beschichtungsverfahren passiviert wurden (A: Tauchverfahren, B: Sprühverfahren, C: erfindungsgemässes Vernebelungsverfahren).
Fig. 4B zeigt die Mittelwerte und Standardabweichungen der Fluoreszenzintensitäten aller Referenzspots (zur Begriffserklärung siehe im Ausführungsbeispiel) der Mikroarrays, wobei die freien Oberflächen der zugehörigen Trägersubstrate mithilfe unterschiedlicher Beschichtungsverfahren passiviert wurden (A: Tauchverfahren, B: Sprühverfahren, C: erfindungsgemässes Vernebelungsverfahren). Fig. 5A zeigt die gemittelten Intensitäten und Standardabweichungen der Fluoreszenzsignale aus den zum Analytnachweis vorgesehenen Messbereichen der Mikroarrays, wobei die freien Oberflächen der zugehörigen Trägersubstrate mithilfe unterschiedlicher Beschichtungsverfahren passiviert wurden (A: Tauchverfahren, B: Sprühverfahren, C: erfindungsgemässes Vernebelungsverfahren) und die Mikroarrays danach mit Lösungen des Antikörpers Al (anti-p53) und anschliessend jeweils für den Nachweis mittels Fluoreszenzdetektion mit Alexa 647 Fluor anti-Kaninchen Fab-Fragmenten inkubiert wurden.
Fig. 5B zeigt die gemittelten Intensitäten und Standardabweichungen der Fluoreszenzsignale aus den zum Analytnachweis vorgesehenen Messbereichen der Mikroarrays, wobei die freien Oberflächen der zugehörigen Trägersubstrate mithilfe unterschiedlicher Beschichtungsverfahren passiviert wurden (A: Tauchverfahren, B: Sprühverfahren, C: erfindungsgemässes Vernebelungsverfahren) und die Mikroarrays danach mit Lösungen des Antikörpers A2 (anti-Phospho-p53) und anschliessend jeweils für den Nachweis mittels Fluoreszenzdetektion mit Alexa 647 Fluor anti-Kaninchen Fab-Fragmenten inkubiert wurden.
Genaue Beschreibung der Erfindung
Erster Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist eine Apparatur zur Beschichtung von Trägersubstraten zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts- Nachweisverfahren, umfassend:
- ein Behältnis zur Aufnahme zu vernebelnder Flüssigkeit ("Flüssigkeitsbehältnis") mit darin enthaltenen, auf mindestens einer Oberfläche besagter Trägersubstrate abzuscheidenden Stoffen (Verbindungen) sowie eines über der Flüssigkeit im Betriebszustand erzeugten Nebelvolumens, einen Aktuator zur Veranlassung des Vernebelungsprozesses und
- eine Halterung zur Aufnahme und Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses, dadurch gekennzeichnet, dass sich die Trägersubstrate in keinem Kontakt zur Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit befinden. Unter dem Begriff „zu vernebelnder Flüssigkeit" soll dabei die Gesamtmenge an Flüssigkeit innerhalb der erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur verstanden werden, aufweiche die Impulse des Aktuators zur Flüssigkeitsvernebelung einwirken, mit der Folge der Umwandlung eines Teils dieser Flüssigkeit in Nebel.
Vorzugsweise wird die Erzeugung des Nebels über der zu vernebelnden Flüssigkeit durch die Einwirkung von Ultraschall innerhalb dieser Flüssigkeit bewirkt. Entsprechend wird bevorzugt, dass besagter Aktuator der Erzeugung von Ultraschall dient.
Es sind verschiedene technische Verfahren zur Erzeugung von Ultraschall bekannt, beispielsweise mithilfe piezoeletrischer Kristalle, schwingender Membranen etc. Es wird bevorzugt, dass besagter Aktuator die Membran eines Ultraschall-Generators umfasst.
Ausserdem wird bevorzugt, dass besagter Aktuator im Betriebszustand in zu vernebelnde Flüssigkeit eingetaucht ist. Vorzugsweise befindet sich der Aktuator vollständig innerhalb der zu vernebelnden Flüssigkeit.
Des weiteren ist es vorteilhaft, wenn die Intensität und Frequenz des auf die zu vernebelnde Flüssigkeit einwirkenden Ultraschalls regulierbar sind und / oder mittels geeigneter Vorkehrungen gemessen werden können.
Wie in den Anforderungen an ein neues Beschichtungsverfahren genannt, ist die Gleichmässigkeit und hohe Homogenität der zu erzeugenden Schicht von grösster Wichtigkeit. Um dieses gewährleisten zu können, ist eine möglichst enge Grössenverteilung möglichst kleiner Tröpfchen eines abzuscheidenden Nebels wünschenswert. Im Falle einfacher, kommerzieller Vernebler, wie sie vor allem in der Terraristik Anwendung finden, muss jedoch auch mit dem Auftreten grosser Tropfen oder sogar von Spritzern aus der zu vernebelnden Flüssigkeit gerechnet werden.
Daher wird bevorzugt, dass die erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur einen Tropfenabscheider umfasst. Dieser Tropfenabscheider ist in dem Raumvolumen zwischen der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit und der Halterung, auf der die zu beschichtenden Trägersubstrate während des Beschichtungsvorganges gelagert werden, anzuordnen. Es sind unterschiedliche Ausftihrungsformen von Topfenanscheidern geeignet. Prinzipiell kann ein zu verwendender Tropfenabscheider für Dampfund Nebel undurchlässig sein (wenn es sich bei dem Tropfenabscheider zum Beispiel um einen geschlossenen festen Körper handelt). Es kann von Vorteil sein, wenn der Tropfenabscheider die geometrische Form eines konkaven Spiegels hat. Beispielsweise kann ein Uhrglas (mit einer konkaven Oberfläche) als Tropfenabscheider verwendet werden.
Ein zu verwendender Tropfenabscheider kann auch für Tropfen bis zu einer definierten Grosse, beispielsweise mit einem Durchmesser von weniger als 200 μm, durchlässig sein. Dieses lässt sich zum Beispiel dadurch technisch realisieren, dass der Tropfenabscheider ein feinmaschiges Netz umfasst, mit dessen Maschenabstand die maximale Grosse durchzulassender Tropfen festgelegt wird.
Es wird bevorzugt, dass die Trägersubstrate bei Lagerung in der Halterung während des Beschichtungsprozesses auf ihrer von der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit abgewandten Seite / Oberfläche beschichtet werden, wobei eine Beschichtung auf anderen Oberflächen nicht ausgeschlossen sein muss.
Unter Verwendung von auf den zu beschichtenden Trägersubstraten aufzubringender Masken ist es auch möglich, mit einer einer erfϊndungsgemäßen Beschichtungsapparatur in einem erfindungsgemäßen Beschichtungsverfahren geometrisch strukturierte Beschichtungen durch gegebenenfalls sequentielle Vernebelung einer oder mehrerer gegebenenfalls unterschiedlicher Flüssigkeiten zu erzeugen. Voraussetzung für eine Erzeugung in ihrer Geometrie reproduzierbaren beschichteten Bereichen auf den Trägesrsubstraten ist dabei, dass jeweils nicht zu beschichtende Bereiche des Trägersubstrats durch eine entsprechende geeignete Maske fluidisch dichtend abgedeckt werden, so dass keine Nebeltröpfchen auf die nicht zu beschichtenden Bereiche gelangen.
Um das vorrangige Ziel der Erzeugung einer möglichst gleichmässigen und homogenen Beschichtung der Trägersubstrate erfüllen zu können, ist es des weiteren von Vorteil, wenn die erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Erzeugung einer gleichmässigen Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate umfasst. Dafür kann es zum Beispiel hilfreich sein, wenn in das Behältnis der Apparatur (d.h. in den Luft- bzw. Gas- oder Nebelraum) ein Gas eingelassen wird, welches sich mit dem erzeugten Nebel mischt und / oder mit ihm verwirbelt.
Daher ist es von Vorteil, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich mindestens einen Gas- Einlass umfasst. Die Apparatur kann zusätzlich auch ein oder mehrere Auslässe zum Auslassen von Gas und / oder Nebel umfassen.
Es kann ausserdem vorteilhaft sein, wenn besagte Vorkehrungen zur Erzeugung einer gleichmässigen Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate einen Ventilator umfassen, mit dem der erzeugte Nebel und gegebenenfalls zusätzlich in das Behältnis der Apparatur eingelassene Gase verwirbelt werden, um eine bessere Durchmischung und damit Beseitigung von Inhomogenitäten der Nebelverteilung zu erzielen.
Zur Gewährleistung konstanter und wohldefinierter Bedingungen während des Beschichtungsprozesses kann es des weiteren vorteilhaft sein, wenn die erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung der Temperatur der zu vernebelnden Flüssigkeit und / oder einzelner oder aller Wände des Flüssigkeitsbehältnisses umfasst. Es wird auch bevorzugt, dass die Halterung der Beschichtungsapparatur zur Aufnahme und / oder Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses thermostatisierbar ist.
Aus demselben Grund kann es auch von Vorteil sein, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung des Drucks innerhalb des Flüssigkeitsbehältnisses während des Beschichtungsprozesses umfasst.
Zur Gewährleistung der Gleichmässigkeit und Homogenität der Beschichtung der Trägersubstrate, insbesondere zum Ausschluss eines Einflusses möglicherweise trotz entsprechender Vorkehrungen noch vorhandener Inhomogenitäten des in dem Behältnis der erfindungsgemässen Apparatur zu erzeugenden Nebels, kann es ausserdem von Vorteil sein, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Rotation der Trägersubstrate um eine Achse senkrecht zur Halterungsebene umfasst. Aufgrund einer inhärenten Eigenschaft des erfindungsgemässen Verfahrens, nämlich einer im wesentlichen räumlich ungerichteten Abscheidung, findet die Tröpfchenbildung und damit Aufbringung der enthaltenen Verbindungen zur Oberflächenbeschichtung nicht nur auf den freien Oberflächen der Trägersubstrate, sondern beispielsweise auch auf den Wänden des Flüssigkeitsbehältnisses der erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur statt. Da es sich bei den auf die Trägersubstrate aufzubringenden Verbindungen um sehr spezielle Substanzen in hochreiner Form handeln kann, welche demzufolge relativ teuer sein können, wird bevorzugt, dass die erfϊndungsgemässe Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zum Auffangen und zur Rückführung / Wiedergewinnung an den Wänden des Flüssigkeitsbehältnisses abgeschiedener vernebelter Flüssigkeit umfasst.
Ausserdem ist es vorteilhaft, wenn die erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Erleichterung der Reinigung des Flüssigkeitsbehältnisses umfasst. Beispielsweise können die Vorkehrungen sowohl zur Rückführung an den Innenwänden des Flüssigkeitsbehältnisses und in die zu vernebelnde Flüssigkeit zurückzuführender Flüssigkeit als auch zur Erleichterung der Reinigung eine hydrophobe Beschichtung der Oberfläche besagter Behältniswände umfassen. Derartige Vorkehrungen können auch die geometrische Formgebung betreffen, beispielsweise indem Ecken, in denen sich Flüssigkeit sammeln kann und schwer wieder zu entfernen ist, vermieden werden oder zumindest abgerundet sind.
Vorzugsweise werden die zu beschichtenden Trägersubstrate in der Halterung der Beschichtungsapparatur im wesentlichen horizontal gelagert. Unter der Bezeichnung „im wesentlichen horizontal" sollen dabei Abweichungen von bis zu +/- 10° von einer horizontalen Lagerung mit eingeschlossen sein.
Es ist ausserdem vorteilhaft, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur kontrollierten Einstellung und / oder Variation des Abstandes zwischen der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit und zu beschichtenden Oberflächen der Trägersubstrate umfasst.
Vorzugsweise ist das Flüssigkeitsbehältnis, abgesehen von optionalen Einlassen für Gas und optionalen zusätzlichen Auslässen für Gas und / oder Nebel, geschlossen.
Vorzugsweise handelt es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um niederviskose Flüssigkeiten mit einer Viskosität von weniger als 3 cP. Insbesondere kann es sich dabei um wässrige Lösungen handeln. Die zu vernebelnden Flüssigkeiten können aber auch organische, insbesondere alkoholische Lösungen sein.
Ausserdem wird bevorzugt, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate im wesentlichen planar sind. Unter der Bezeichnung „im wesentlichen planar" soll dabei verstanden werden, dass besagte Trägersubstrate eine Ebene umfassen, in welcher sich, abgesehen von einer möglicherweise vorhandenen dreidimensionalen Struktur (wie beispielsweise Seitenwänden von auf der Trägersubstratoberfläche bereitzustellenden Probenbehältnissen) die zu beschichtende Oberfläche befindet, und eine dazu im wesentlichen parallele zweite Ebene, in der sich die entgegengesetzte Oberfläche der Trägersubstrate befindet, wobei unter der Bezeichnung „im wesentlichen parallel" Abweichungen von bis zu +/- 10° von Parallelität mit eingeschlossen sind. Als „im wesentlichen planar" sollen Trägersubstrate mit sowohl glatten als auch rauhen zu beschichtenden Oberflächen verstanden werden.
Die zu beschichtenden Trägersubstrate können aus einer einzelnen (selbsttragenden) Schicht bestehen, wie z. B. Glasplättchen, oder auch aus mehreren Schichten.
Es wird bevorzugt, dass mindestens eine Schicht der zu beschichtenden Trägersubstrate in der Ausbreitungsrichtung eines eingestrahlten Anregungslichts oder Messlichts im wesentlichen optisch transparent ist.
Unter „optischer Transparenz" eines Materials beziehungsweise eines Trägersubstrats soll dabei verstanden werden, dass die Lauflänge eines sich in besagtem Material oder in besagtem Trägersubstrat ausbreitenden Lichts oder im (hochbrechenden) wellenleitenden Film eines als optischer Wellenleiter ausgebildeten Trägersubstrats (siehe unten) geführten Lichts in mindestens einem Teilbereich des sichtbaren Spektrums (zwischen 400 nm und 750 nm) grösser als 2 mm ist, sofern diese Lauflänge nicht durch Strukturen zur Änderung der Ausbreitungsrichtung besagten Lichts begrenzt wird. Beispielsweise kann die Lauflänge von optisch sichtbarem Licht, d. h. die Strecke auf dem Weg des Lichts im entsprechenden Material, bis zur Abnahme der Lichtintensität auf einen Wert 1/e der Urspungsintensität beim Eintritt des Lichts in dieses Material, in der Grössenordnung von etlichen Zentimetern (z. B. in Dünnschichtwellenleitern, siehe unten) bis zu Metern oder Kilometern (im Falle von Lichtleitern für die optische Signalübermittlung) liegen. Im Falle einer Gitter- Wellenleiter- Struktur, basierend auf einem Dünnschichtwellenleiter, kann die Ausbreitungslänge eines in der wellenleitenden Schicht geführten Lichts durch ein auskoppelndes diffraktives Gitter (ausgebildet in der wellenleitenden Schicht) auf wenige Mikrometer begrenzt werden. Diese Begrenzung der Lauflänge ist dann jedoch durch die Strukturierung, und nicht durch die Materialeigenschaften der Struktur, bedingt. Im Sinne der vorliegenden Erfindung soll eine solche Gitter- Wellenleiter-Struktur als „optisch transparent" bezeichnet werden. Als „im wesentlichen optisch transparent" sollen im Rahmen der vorliegenden Erfindung auch solche Trägersubstrate oder Schichten bezeichnet werden, welche die Intensität eines diese Trägersubstrate oder Schichten durchstrahlenden Lichts um weniger als 50 % abschwächen.
Die mindestens eine in Ausbreitungsrichtung eines eingestrahlten Anregungslichts oder Messlichts im wesentlichen optisch transparente Schicht von zu beschichtenden Trägersubstraten kann beispielsweise ein Material umfassen, welches ausgewählt ist aus der Gruppe, welche Silikate, z. B. Glas oder Quarz, transparente thermoplastische form-, spritz- oder fräsbare Kunststoffe, beispielsweise Polycarbonate, Polyimide, Acrylate, insbesondere Polymethylmethacrylate, Polystyrole, Cyclo-Olefϊnpolymere und Cyclo-Olefincopolymere umfasst.
In einer speziellen Ausführungsform einer erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur umfassen die zu beschichtenden Trägersubstrate eine dünne Metallschicht, vorzugsweise aus Gold oder Silber, gegebenenfalls auf einer darunter befindlichen Zwischenschicht mit Brechungsindex vorzugsweise < 1.5, wobei die Dicke der Metallschicht und der eventuellen Zwischenschicht so ausgewählt sind, dass ein Oberflächenplasmon bei der Wellenlänge eines eingestrahlten Anregungslichts und / oder bei der Wellenlänge einer erzeugten Lumineszenz angeregt werden kann. Die Dicke der Metallschicht beträgt vorzugsweise zwischen 10 nm und 1000 nm, besonders bevorzugt zwischen 30 nm und 200 nm.
Die Bedingungen zur Erzeugung einer Oberflächenplasmonenresonanz, sowie zur Kombination mit Lumineszenzmessungen, sowie mit wellenleitenden Strukturen sind vielfach in der Literatur beschrieben.
Mit dem Begriff "Lumineszenz" wird in dieser Anmeldung die spontane Emission von Photonen im ultravioletten bis infraroten Bereich nach optischer oder nichtoptischer, wie beispielsweise elektrischer oder chemischer oder biochemischer oder thermischer Anregung, bezeichnet. Beispielsweise sind Chemilumineszenz, Biolumineszenz, Elektrolumineszenz und insbesondere Fluoreszenz und Phosphoreszenz unter dem Begriff "Lumineszenz" mit eingeschlossen. Dabei sind Fluoreszenz und Phosphoreszenz besonders bevorzugte Formen der Lumineszenz.
Es wird bevorzugt, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate optische Wellenleiter, umfassend eine oder mehrere Schichten, umfassen. Dabei können die Trägersubstrate durchgehend als optische Wellenleiter ausgebildet sein oder diskrete wellenleitende Bereiche umfassen.
Als „durchgehende wellenleitende Bereiche" sollen entsprechend wellenleitende Bereiche verstanden werden, die sich ohne eine Unterbrechung der hochbrechenden, wellenleitenden Schicht im wesentlichen über den gesamten Bereich des Teils der für einen Analytnachweis benutzten Oberfläche eines Trägersubstrats erstrecken.
Optische Wellenleiter sind besonders gut geeignet als Trägersubstrat für einen Analytnachweis in einem Affinitätsnachweisverfahren, da mit der Wellenleitung die Ausbildung eines sogenannten „evaneszenten" Feldes an den Grenzflächen der hochbrechenden wellenleitenden Schicht zu den benachbarten Schichten (worunter auch Luft verstanden werden kann) mit niedrigerem Brechungsindex verbunden ist. Die Eindringtiefe dieses evaneszenten Feldes in die Umgebung ist auf Dimensionen von weniger als der Wellenlänge des geführten Lichts (z. B. auf 200 nm bis 400 nm) beschränkt, so dass Wechselwirkungen von Analytmolekülen oder von Nachweismolekülen oder -molekülteilen (wie Z. B. Fluoreszenzlabeln) mit diesem evaneszenten Feld räumlich hochselektiv an einer Oberfläche des Wellenleiters angeregt und beobachtet und Störsignale aus dem Fernfeld, z. B. aus der Tiefe eines Probenmediums, weitgehend ausgeschlossen werden können.
Daher wird in der Regel bevorzugt, dass die durchgehenden oder diskreten wellenleitenden Bereiche zu beschichtender Trägersubstrate eine zu beschichtende Oberfläche der Trägersubstrate umfassen.
Besonders bevorzugt wird, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate planare optische Dünnschichtwellenleiter mit einer im wesentlichen optisch transparenten, wellenleitenden Schicht (a) auf einer zweiten, ebenfalls im wesentlichen optisch transparenten Schicht (b) mit niedrigerem Brechungsindex als Schicht (a) und gegebenenfalls einer ebenfalls im wesentlichen optisch transparenten Zwischenschicht (b') zwischen Schicht (a) und Schicht (b) mit ebenfalls niedrigerem Brechungsindex als Schicht (a) umfassen.
Bei gegebenem Material der Schicht (a) und gegebenem Brechungsindex ist die Empfindlichkeit bis zu einem unteren Grenzwert der Schichtdicke umso grösser, je geringer die Schichtdicke ist. Der untere Grenzwert wird bestimmt durch den Abbruch der Lichtleitung bei Unterschreiten eines von der Wellenlänge des zu führenden Lichts abhängigen Werts sowie einem zu beobachtenden Anstieg der Ausbreitungsverluste bei sehr dünnen Schichten mit weiterer Schichtdickenabnahme. Es wird bevorzugt, dass das Produkt aus der Dicke der Schicht (a) und ihrem Brechungsindex ein Zehntel bis ein Ganzes, bevorzugt ein Drittel bis zwei Drittel, der Wellenlänge eines in die Schicht (a) einzukoppelnden Anregungslichts oder Messlichts beträgt.
Für die Einkopplung von Anregungslicht oder Messlicht in einen optischen Wellenleiter sind eine Vielzahl von Methoden bekannt. Im Falle einer relativ dicken wellenleitenden Schicht bis hin zu einem selbsttragenden Wellenleiter ist es möglich, das Licht unter Verwendung von Linsen geeigneter numerischer Apertur so in eine Stirnfläche des Wellenleiters zu fokussieren, dass es über innere Totalreflexion geleitet wird. Im Falle von Wellenleitern mit grosserer Stirnbreite als Wellenleiterschichtdicke werden dafür bevorzugt Zylinderlinsen verwendet. Dabei können die Linsen sowohl räumlich entfernt vom Wellenleiter angeordnet als auch direkt mit diesem verbunden sein. Im Falle geringerer Wellenleiterschichtdicken ist diese Form der Stirnflächenkopplung weniger geeignet. Besser eingesetzt werden kann dann die Kopplung über Prismen, die bevorzugt zwischenraumfrei an den Wellenleiter angefügt oder über eine brechungsindexanpassende Flüssigkeit mit dem Wellenleiter verbunden sind. Es ist auch möglich, das Anregungslicht über eine optische Faser an den optischen Wellenleiter heranzuführen und über eine Stirnfläche einzukoppelnoder das in einen anderen Wellenleiter eingekoppelte Licht in den Wellenleiter überzukoppeln, indem beide Wellenleiter einander so nahe gebracht werden, dass ihre evaneszenten Felder überlappen und damit eine Energieübertragung stattfinden kann.
Es wird daher bevorzugt, dass die diskreten oder durchgehenden wellenleitenden Bereiche der zu beschichtenden Trägersubstrate während des Detektionsschritts eines Affinitäts- Nachweisverfahrens mit besagten Trägersubstraten in optische Wechselwirkung mit einem oder mehreren optischen Koppelelementen zur Einkopplung von Anregungs- oder Messlicht von einer oder mehreren Lichtquellen gebracht werden können, wobei besagte optische Koppelemente ausgewählt sind aus der Gruppe, welche Prismenkoppler, evaneszente Koppler mit zusammengebrachten optischen Wellenleitern mit überlappenden evaneszenten Feldern, Stirnflächenkoppler mit vor einer Stirnseite einer wellenleitenden Schicht der Trägersubstrate angeordneten fokussierenden Linsen, vorzugsweise Zylinderlinsen, und Gitterkoppler umfasst.
Besonders bevorzugt wird, dass die diskreten oder durchgehenden wellenleitenden Bereiche der zu beschichtenden Trägersubstrate in Kontakt zu einer oder mehreren Gitterstrukturen (c), welche die Einkopplung von Anregungslicht oder Messlicht in wellenleitende Schichten besagter Trägersubstrate ermöglichen, und / oder zu einer oder mehreren Gitterstrukturen (c'), welche die Auskopplung von Anregungslicht oder Messlicht aus wellenleitenden Schichten besagter Trägersubstrate ermöglichen, stehen, wobei im Falle von gleichzeitig auf einem Trägersubstrat vorhandenen Gitterstrukturen (c) und (c') diese gleiche oder unterschiedliche Gitterperioden haben können.
Bei besagten Gitterstrukturen handelt es sich vorzugsweise um Reliefgitter mit beliebigem Profil, beispielsweise mit Rechteck-, Dreieck-, Sägezahn-, halbkreis- oder sinusförmigem Profil, oder um Phasen- oder Volumengitter mit einer periodischen Modulation des Brechungsindex in der im wesentlichen planaren Schicht (a). Vorzugsweise sind Gitterstrukturen (c) als Oberflächenreliefgitter ausgebildet.
Die Gitterstrukturen (c) und / oder (c') können mono- oder multidiffraktiv sein und eine Tiefe von 2 nm - 100 nm, bevorzugt von 10 nm - 30 nm, sowie eine Periode von 200 ran - 1000 nm, bevorzugt von 300 nm - 700 nm, haben. Das Verhältnis der Stegbreite der Gitterlinien zur Gitterperiode kann zwischen 0.01 und 0.99 betragen, wobei ein Verhältnis zwischen 0.2 und 0.8 bevorzugt wird.
Es wird bevorzugt, dass der Brechungsindex der ersten optisch transparenten Schicht (a) grösser als 1.8 ist. Es wird auch bevorzugt, dass die erste optisch transparente Schicht (a) ein Material aus der Gruppe umfasst, welche Silicium-Nitrid, TiO2, ZnO, Nb2O5, Ta2O5, HfO2, und ZrO2, besonders bevorzugt TiO2, Ta2O5 oder Nb2O5 umfasst. Es wird ausserdem bevorzugt, dass die zweite optisch transparente Schicht (b) der zu beschichtenden Trägersubstrate ein Material aus der Gruppe umfasst, welche Silikate, z. B. Glas oder Quarz, transparente thermoplastischen form- spritz- oder fräsbare Kunststoffe, beispielsweise Polycarbonate, Polyimide, Acrylate, insbesondere Polymethylmethacrylate, Polystyrole, Cyclo-Olefinpolymere und Cyclo-Olefincopolymere umfasst.
Verschiedene Ausführungsformen von planaren optischen Dünnschichtwellenleitern, welche als Trägersubstrate geeignet sind, sind beispielsweise in den internationalen Patentanmeldungen WO 95/33197, WO 95/33198, WO 96/35940, WO 98/09156, WO 01/79821, WO 01/88511, WO 01/55691 und WO 02/79765 beschrieben. Die in diesen Patentanmeldungen beschriebenen Ausführungsformen von speziellen Trägersubstraten, dort meistens bezeichnet als Sensorplattformen, und damit auszuführenden Verfahren zum Analytnachweis sowie der Inhalt dieser Anmeldungschriftem werden hiermit vollumfänglich als Bestandteil der vorliegenden Erfindung eingeführt.
Kennzeichnend für eine bevorzugte Gruppe von Ausführungsformen von erfindungsgemässen Beschichtungsapparaturen ist, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate den Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren mitteles Detektion einer oder mehrerer angeregter Lumineszenzen ermöglichen.
Kennzeichnend für eine weitere Gruppe von Ausführungsformen ist, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate den Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren mitteles Detektion von Änderungen des effektiven Brechungsindex im Nahfeld (evaneszenten Feld) an einer Oberfläche besagter Trägersubstrate ermöglichen.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur Beschichtung von Trägersubstraten zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts- Nachweisverfahren, dadurch gekennzeichnet, dass besagte zu beschichtende Trägersubstrate in eine Halterung einer erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur nach einer der beschriebenen
Ausführungsformen eingelegt werden, - in dem Flüssigkeitsbehältnis besagter Beschichtungsapparatur enthaltene
Flüssigkeit vernebelt wird und - aus dem erzeugten Nebel eine Abscheidung von in der vernebelten Flüssigkeit enthaltenenen Stoffen (Verbindungen) auf den zu beschichtenden Trägersubstraten erfolgt, wobei sich die Trägersubstrate in keinem Kontakt zur Oberfläche der zu vernebelnden
Flüssigkeit befinden.
Vorzugsweise wird die Erzeugung des Nebels über der zu vernebelnden Flüssigkeit durch die Einwirkung von Ultraschall innerhalb dieser Flüssigkeit bewirkt. Entsprechend wird bevorzugt, dass besagter Aktuator der Erzeugung von Ultraschall dient.
Es sind verschiedene technische Verfahren zur Erzeugung von Ultraschall bekannt, beispielsweise mithilfe piezoeletrischer Kristalle, schwingender Membranen etc. Es wird bevorzugt, dass besagter Aktuator die Membran eines Ultraschall-Generators umfasst und die Vernebelung von Flüssigkeit mittels darin erzeugter Ultraschallwellen geschieht.
Ausserdem wird bevorzugt, dass besagter Aktuator im Betriebszustand in zu vernebelnde Flüssigkeit eingetaucht ist. Vorzugsweise befindet sich der Aktuator vollständig innerhalb der zu vernebelnden Flüssigkeit.
Des weiteren ist es vorteilhaft, wenn die Intensität und Frequenz des auf die zu vernebelnde Flüssigkeit einwirkenden Ultraschalls regulierbar sind und / oder mittels geeigneter Vorkehrungen gemessen werden können.
Ausserdem wird bevorzugt, dass die Beschichtungsapparatur einen Tropfenabscheider umfasst, welcher den Kontakt von Spritzern und grossen Tropfen aus der zu vernebelnden Flüssigkeit mit den zu beschichtenden Trägersubstraten verhindert. Unter einem „großen" Tropfen soll ein Tropfen mit einem Durchmesser von mehr als 200 μm verstanden werden. Dabei kann der Tropfenabscheider für Gas und Nebel undurchlässig sein. Beispielsweise kann es sich bei dem Tropfenabscheider um einen geschlossenen festen Körper handeln. Es kann von Vorteil sein, wenn der Tropfenabscheider die geometrische Form eines konkaven Spiegels hat. Beispielsweise kann ein Uhrglas (mit einer konkaven Oberfläche) als Tropfenabscheider verwendet werden. Ein zu verwendender Tropfenabscheider kann auch für Tropfen bis zu einer definierten Grösse durchlässig sein. Dieses lässt sich zum Beispiel dadurch technisch realisieren, dass der Tropfenabscheider ein feinmaschiges Netz umfasst, mit dessen Maschenabstand die maximale Grosse durchzulassender Tropfen festgelegt wird.
Um das vorrangige Ziel der Erzeugung einer möglichst gleichmässigen und homogenen Beschichtung der Trägersubstrate erfüllen zu können, ist es des weiteren von Vorteil, wenn die erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur Vorkehrungen zur Erzeugung einer gleichmässigen Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate umfasst.
Dafür kann es zum Beispiel hilfreich sein, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich mindestens einen Gas-Einlass umfasst, über den ein Gas in das Flüssigkeitsbehältnis eingelassen wird, welches Gas sich mit dem erzeugten Nebel vermischt. Die Apparatur kann zusätzlich auch ein oder mehrere Auslässe zum Auslassen von Gas und / oder Nebel umfassen.
Vorteilhaft für die Gleichmässigkeit und Homogenität der Beschichtung kann auch sein, wenn mithilfe eines Ventilators eine gleichmässige Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate erzeugt wird.
Zur Gewährleistung konstanter und wohldefinierter Bedingungen während des Beschichtungsprozesses kann es des weiteren vorteilhaft sein, wenn die erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung der Temperatur der zu vernebelnden Flüssigkeit und / oder einzelner oder aller Wände des Flüssigkeitsbehältnisses umfasst und die Temperatur der zu vernebelnden Flüssigkeit und / oder einzelner oder aller Wände des Flüssigkeitsbehältnisses während des Beschichtungsprozesses kontrolliert und / oder variiert wird. Es wird auch bevorzugt, dass die Halterung der Beschichtungsapparatur zur Aufnahme und / oder Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses thermostatisiert wird.
Aus demselben Grund kann es auch von Vorteil sein, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung des Drucks innerhalb des Flüssigkeitsbehältnisses während des Beschichtungsprozesses umfasst und der Druck während des Beschichtungsprozesses kontrolliert und / oder variiert wird.
Zur Gewährleistung der Gleichmässigkeit und Homogenität der Beschichtung der Trägersubstrate, insbesondere zum Ausschluss eines Einflusses möglicherweise trotz entsprechender Vorkehrungen noch vorhandener Inhomogenitäten des in dem Behältnis der erfϊndungsgemässen Apparatur zu erzeugenden Nebels, kann es ausserdem von Vorteil sein, wenn die Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses um eine Achse senkrecht zur Halterungsebene rotiert werden.
Es wird bevorzugt, dass die Trägersubstrate bei Lagerung in der Halterung während des Beschichtungsprozesses auf ihrer von der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit abgewandten Seite / Oberfläche beschichtet werden, wobei eine Beschichtung auf anderen Oberflächen nicht ausgeschlossen sein muss.
Eine besondere Variante des erfindungsgemäßen Verfahrens ist dadurch gekennzeichnet, dass unter Verwendung von auf den zu beschichtenden Trägersubstraten aufzubringenden Masken mit einer erfindungsgemäßen Beschichtungsapparatur in einem erfindungsgemäßen Beschichtungsverfahren geometrisch strukturierte Beschichtungen durch gegebenenfalls sequentielle Vernebelung einer oder mehrerer gegebenenfalls unterschiedlicher Flüssigkeiten erzeugt werden. Voraussetzung für eine Erzeugung von in ihrer Geometrie reproduzierbaren beschichteten Bereichen auf den Trägesrsubstraten ist dabei, dass jeweils nicht zu beschichtende Bereiche des Trägersubstrats durch eine entsprechende geeignete Maske fluidisch dichtend abgedeckt werden, so dass keine Nebeltröpfchen auf die nicht zu beschichtenden Bereiche gelangen.
Vorzugsweise werden die zu beschichtenden Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses in der Halterung der Beschichtungsapparatur im wesentlichen horizontal gelagert.
Es ist ausserdem vorteilhaft, wenn die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur kontrollierten Einstellung und / oder Variation des Abstandes zwischen der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit und zu beschichtenden Oberflächen der Trägersubstrate umfasst und damit ein wohldefinierter Abstand zwischen besagter Flüssigkeit und den zu beschichtenden Flüssigkeitsoberflächen für den Zeitraum des Beschichtungsprozesses eingestellt wird.
Zur Verminderung des Verbrauchs an zu vernebelnder Flüssigkeit wird ausserdem bevorzugt, dass an den Wänden des Flüssigkeitsbehältnisses abgeschiedene Flüssigkeit aufgefangen und zu der zu vernebelnden Flüssigkeit zurückgeführt wird.
Vorzugsweise ist das Flüssigkeitsbehältnis der Beschichtungsapparatur, abgesehen von optionalen Einlassen für Gas und optionalen zusätzlichen Auslässen für Gas und / oder Nebel, geschlossen.
Vorzugsweise handelt es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um niederviskose Flüssigkeiten mit einer Viskosität von weniger als 3 cP. Insbesondere kann es sich dabei um wässrige Lösungen handeln. Die zu vernebelnden Flüssigkeiten können aber auch organische, insbesondere alkoholische Lösungen sein.
Ausserdem wird bevorzugt, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate im wesentlichen planar sind.
Die zu beschichtenden Trägersubstrate können aus einer einzelnen (selbsttragenden) Schicht bestehen, wie z. B. Glasplättchen, oder auch aus mehreren Schichten.
Es wird bevorzugt, dass mindestens eine Schicht der zu beschichtenden Trägersubstrate in der Ausbreitungsrichtung eines eingestrahlten Anregungslichts oder Messlichts im wesentlichen optisch transparent ist.
Die mindestens eine in Ausbreitungsrichtung eines eingestrahlten Anregungslichts oder Messlichts im wesentlichen optisch transparente Schicht von zu beschichtenden Trägersubstraten kann beispielsweise ein Material umfassen, welches ausgewählt ist aus der Gruppe, welche Silikate, z. B. Glas oder Quarz, transparente thermoplastische form-, spritz- oder fräsbare Kunststoffe, beispielsweise Polycarbonate, Polyimide, Acrylate, insbesondere Polymethylmethacrylate, Polystyrole, Cyclo-Olefinpolymere und Cyclo-Olefincopolymere umfasst. In einer speziellen Ausfuhrungsform einer erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur umfassen die zu beschichtenden Trägersubstrate eine dünne Metallschicht, vorzugsweise aus Gold oder Silber, gegebenenfalls auf einer darunter befindlichen Zwischenschicht mit Brechungsindex vorzugsweise < 1.5, wobei die Dicke der Metallschicht und der eventuellen Zwischenschicht so ausgewählt sind, dass ein Oberflächenplasmon bei der Wellenlänge eines eingestrahlten Anregungslichts und / oder bei der Wellenlänge einer erzeugten Lumineszenz angeregt werden kann.
Es wird bevorzugt, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate optische Wellenleiter, umfassend eine oder mehrere Schichten, umfassen. Dabei können die Trägersubstrate durchgehend als optische Wellenleiter ausgebildet sein oder diskrete wellenleitende Bereiche umfassen.
Dabei wird in der Regel bevorzugt, dass die durchgehenden oder diskreten wellenleitenden Bereiche zu beschichtender Trägersubstrate eine zu beschichtende Oberfläche der Trägersubstrate umfassen.
Besonders bevorzugt wird, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate planare optische Dünnschichtwellenleiter mit einer im wesentlichen optisch transparenten, wellenleitenden Schicht (a) auf einer zweiten, ebenfalls im wesentlichen optisch transparenten Schicht (b) mit niedrigerem Brechungsindex als Schicht (a) und gegebenenfalls einer ebenfalls im wesentlichen optisch transparenten Zwischenschicht (b') zwischen Schicht (a) und Schicht (b) mit ebenfalls niedrigerem Brechungsindex als Schicht (a) umfassen.
Dabei wird bevorzugt, dass die diskreten oder durchgehenden wellenleitenden Bereiche der zu beschichtenden Trägersubstrate während des Detektionsschritts eines Affinitäts- Nachweisverfahrens mit besagten Trägersubstraten in optische Wechselwirkung mit einem oder mehreren optischen Koppelelementen zur Einkopplung von Anregungs- oder Messlicht von einer oder mehreren Lichtquellen gebracht werden können, wobei besagte optische Koppelemente ausgewählt sind aus der Gruppe, welche Prismenkoppler, evaneszente Koppler mit zusammengebrachten optischen Wellenleitern mit überlappenden evaneszenten Feldern, Stirnflächenkoppler mit vor einer Stirnseite einer wellenleitenden Schicht der Trägersubstrate angeordneten fokussierenden Linsen, vorzugsweise Zylinderlinsen, und Gitterkoppler umfasst. Besonders bevorzugt wird, dass die diskreten oder durchgehenden wellenleitenden Bereiche der zu beschichtenden Trägersubstrate in Kontakt zu einer oder mehreren Gitterstrukturen (c), welche die Einkopplung von Anregungslicht oder Messlicht in wellenleitende Schichten besagter Trägersubstrate ermöglichen, und / oder zu einer oder mehreren Gitterstrukturen (c'), welche die Auskopplung von Anregungslicht oder Messlicht aus wellenleitenden Schichten besagter Trägersubstrate ermöglichen, stehen, wobei im Falle von gleichzeitig auf einem Trägersubstrat vorhandenen Gitterstrukturen (c) und (c') diese gleiche oder unterschiedliche Gitterperioden haben können.
Es wird bevorzugt, dass der Brechungsindex der ersten optisch transparenten Schicht (a) grösser als 1.8 ist. Es wird auch bevorzugt, dass die erste optisch transparente Schicht (a) ein Material aus der Gruppe umfasst, welche Silicium-Nitrid, TiO2, ZnO, Nb2O5, Ta2O5, HfO2, und ZrO2, besonders bevorzugt TiO2, Ta2O5 oder Nb2O5 umfasst.
Es wird ausserdem bevorzugt, dass die zweite optisch transparente Schicht (b) der zu beschichtenden Trägersubstrate ein Material aus der Gruppe umfasst, welche Silikate, z. B. Glas oder Quarz, transparente thermoplastischen form-, spritz- oder fräsbare Kunststoffe, beispielsweise Polycarbonate, Polyimide, Acrylate, insbesondere Polymethylmethacrylate, Polystyrole, Cyclo-Olefinpolymere und Cyclo-Olefincopolymere umfasst.
Kennzeichnend für eine bevorzugte Gruppe von Ausführungsformen des erfindungsgemässen Beschichtungsverfahrens ist, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate den Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren mittels Detektion einer oder mehrerer angeregter Lumineszenzen ermöglichen.
Kennzeichnend für eine weitere Gruppe von Ausführungsformen ist, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate den Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren mittels Detektion von Änderungen des effektiven Brechungsindex im Nahfeld (evaneszenten Feld) an einer Oberfläche besagter Trägersubstrate ermöglichen. Eine Gruppe von Ausfiihrungsformen des erfindungsgemässen Verfahrens ist dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei der auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Schicht um eine Haftvermittlungsschicht handelt.
Dabei wird bevorzugt, dass besagte Haftvermittlungsschicht eine Dicke von weniger als 200 nm, besonders bevorzugt von weniger als 20 nm hat.
Für die Herstellung der Haftvermittlungsschicht in einem erfindungsgemässen Beschichtungsverfahren eignen sich eine Vielzahl von Verbindungen. Beispielsweise kann die Haftvermittlungsschicht eine chemische Verbindung aus den Gruppen umfassen, welche Silane, funktionalisierte Silane, Epoxide, funktionalisierte, geladene oder polare Polymere und "selbstorganisierte passive oder funktionalisierte Mono- oder Mehrfachschichten", Thiole, Alkylphosphate und -phosphonate, multifunktionelle Block-Copolymere, wie beispielsweise Poly(L)lysin/Polyethylenglycole, umfassen.
Das erfindungsgemässe Verfahren ist dadurch gekennzeichnet, dass auf der Oberfläche der Trägersubstrate einer oder mehrere spezifische Bindungspartner zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren (unter Bindung des Bindungspartners aus einer zugeführten Lösung an den immobilisierten Bindungspartner) immobilisiert sind.
Diese spezifischen Bindungspartner können auf einer mithilfe des erfindungsgemässen Beschichtungsverfahren aufgebrachten Haftvermittlungsschicht oder auch direkt auf der unbeschichteten Oberfläche der Trägersubstrate aufgebracht sein, wobei vorzugsweise in einem nachfolgenden Beschichtungsschritt gemäss des erfindungsgemässen Verfahrens verbliebene, von spezifischen Bindungspartnern freie Bereiche der Oberfläche mit einer Passivierungsschicht versehen werden (siehe unten).
In einer breit anwendbaren Ausführungsform des erfindungsgemässen Verfahrens handelt es sich bei den auf der Oberfläche besagter Trägersubstrate immobilisierten spezifischen Bindungspartnern um biologische oder biochemische oder synthetische Erkennungselemente zur spezifischen Erkennung eines oder mehreren in einer zugeführten Probe befindlicher Analyten. Dabei liegen unterschiedliche derartige spezifische Erkennungselemente jeweils in einer möglichst hochreinen Form im allgemeinen in unterschiedlichen diskreten Messbereichen vor, so dass an Messbereiche mit unterschiedlichen Erkennungselementen im allgemeinen unterschiedliche Analyten aus der Probe binden. Solche Arrays von Messbereichen werden auch als „Capture Arrays" bezeichnet.
Da sich unterschiedliche Erkennungselemente mehr oder minder stark in ihren physikalischchemischen Eigenschaften (z. B. in ihrer Polarität) unterscheiden, gibt es auch entsprechende Unterschiede in den Bedingungen für eine optimale Immobilisierung dieser Erkennungselemente, beispielsweise durch Adsorption oder kovalente Bindung, in diskreten Messbereichen auf einem gemeinsamen festen Träger, gegebenenfalls auf einer darauf aufgebrachten Haftvermittlungsschicht. Demzufolge können die zur Immobilisierung einer Vielzahl unterschiedlicher Erkennungselemente gewählten Immobilisierungsbedingungen (wie z. B. Art der Haftvermittlungsschicht) kaum gleichzeitig für alle Erkennungselemente ein Optimum, sondern lediglich einen Kompromiss zwischen den Immobilisierungseigenschaften der verschiedenen Erkennungselemente darstellen.
Bei dieser Art des Assays ist ausserdem nachteilig, dass zum Nachweis von Analyten in einer Vielzahl unterschiedlichen Proben im allgemeinen die Bereitstellung einer entsprechenden Anzahl diskreter Arrays von Erkennungselementen, denen die unterschiedlichen Proben zugeführt werden, auf gemeinsamen oder diskreten Trägern erforderlich ist. Zur Untersuchung einer Vielzahl unterschiedlicher Proben bedeutet dieses den Bedarf einer hohen Anzahl diskreter Arrays, deren Herstellung relativ aufwendig ist.
In den internationalen Patentanmeldungen PCT/EP 03/09561 und PCT/EP 03/09562, deren Inhalt hiermit vollumfänglich als Bestandteil der vorliegenden Erfindung eingeführt wird, wird ein neuartiger Assay-Aufbau vorgeschlagen, welcher es ermöglicht, eine Vielzahl von Proben in einem Array auf einem gemeinsamen Träger gleichzeitig auf in den Proben enthaltene Analyten zu untersuchen. Dazu werden nicht die unterschiedlichen spezifischen Erkennungselemente, sondern die zu untersuchenden Proben selbst unbehandelt oder nach möglichst wenigen Vorbereitungsschritten, in diskreten Messbereichen in einem Array auf einem Trägersubstrat aufgetragen. Ein solcher Assay-Aufbau wird in den beiden genannten Anmeldungsschriften als eine „invertierte Assay- Architektur" bezeichnet. Kennzeichen einer weiteren breit anwendbaren Ausfuhrungsform des erfindungsgemässen Verfahrens ist daher, dass es sich bei den auf der Oberfläche besagter Trägersubstrate immobilisierten spezifischen Bindungspartnern um den einen oder die mehreren Analyten selbst handelt, welche eingebettet in eine native Probenmatrix oder in einer mit einem oder mehreren Aufbereitungsschritten modifizierten Form der Probenmatrix immobilisiert sind.
Besagte Bindungspartner, d.h. die selbst immobilisierten nachzuweisenden oder in einer zugeführten Probe nachzuweisenden Analyten und / oder deren immobilisierte oder in einem zugeführten Nachweisreagens zugeführte biologische oder biochemische oder synthetische Erkenuungselemente können ausgewählt sein aus der Gruppe, welche Proteine, beispielsweise mono- oder polyklonale Antikörper und Antikörperfragmente, Peptide, Enzyme, Glycopeptide, Oligosaccharide, Lektine, Antigene für Antikörper, mit zusätzlichen Bindungsstellen funktionalisierte Proteine („Tag-Proteine", wie beispielsweise „Histidin-Tag- Proteine") sowie Nukleinsäuren (beispielsweise DNA, RNA, Oligonukleotide) und Nukleinsäureanaloge (z. B. PNA), Aptamere, membrangebundene und isolierte Rezeptoren und deren Liganden, durch chemische Synthese erzeugte Kavitäten zur Aufnahme molekularer Imprints, natürliche und künstliche Polymere, etc. umfasst.
Dabei können besagte auf der Oberfläche der Trägersubstrate aufgebrachte spezifische Bindungspartner in diskreten Messbereichen (Spots) immobilisiert sein, welche eine beliebige Geometrie, beispielsweise kreisförmige, ovale, dreieckige, rechteckige, polygonartige Form etc. haben können, wobei ein einzelner Messbereich gleichartige oder unterschiedliche spezifische Bindungspartner enthalten kann.
Es wird bevorzugt, dass diskrete Messbereiche durch räumlich selektive Aufbringung von spezifischen Bindungspartnern auf besagten Trägersubstraten erzeugt werden, vorzugsweise unter Verwendung eines oder mehrerer Verfahren aus der Gruppe von Verfahren, welche "Ink jet Spotting", mechanisches Spotting, „micro contact printing", fluidische Kontaktierung der Bereiche für die zu erschaffenden Messbereiche mit den zu immobilisierenden Verbindungen durch deren Zufuhr in parallelen oder gekreuzten Mikrokanälen, unter Einwirkung von Druckunterschieden oder elektrischen oder elektromagnetischen Potentialen, sowie photochemische und photolithographische Immobilisierungsverfahren umfasst. Wie schon vorangehend erwähnt, wird es zwecks Minimierung unspezifischer Bindung von Analytmolekülen oder von deren Nachweisreagentien in von immobilisierten spezifischen Bindungspartnern der Trägersubstratoberflächen freien Bereichen bevorzugt, dass zwischen den räumlich getrennten Messbereichen oder in unbesetzten Teilbereichen innerhalb dieser Messbereiche gegenüber den Analyten und / oder gegenüber seinen Bindungspartnern "chemisch neutrale" Verbindungen aufgebracht sind. Vorzugsweise sind diese gegenüber den Analyten und / oder gegenüber seinen Bindungspartnern "chemisch neutralen" Verbindungen beispielsweise ausgewählt aus den Gruppen, welche Albumine, insbesondere Rinderserumalbumin oder Humanserumalbumin, Casein, unspezifische, polyklonale oder monoklonale, artfremde oder empirisch für den oder die nachzuweisenden Analyten und deren Bindungspartner unspezifische Antikörper (insbesondere für Immunoassays), Detergentien - wie beispielsweise Tween 20 -, nicht mit zu analysierenden Polynukleotiden hybridisierende, fragmentierte natürliche oder synthetische DNA, wie beispielsweise Extrakte von Herings- oder Lachssperma (insbesondere für Polynukleotid-Hybridisierungsassays), oder auch ungeladene, aber hydrophile Polymere, wie beispielsweise Polyethylenglycole oder Dextrane, umfassen.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist daher ein erfindungsgemässes Verfahren nach einer der genannten Ausführungsformen, welches dadurch gekennzeichnet ist, dass es sich bei der auf den Trägersubstraten abgeschiedenen Schicht um eine Passivierungsschicht handelt, welche zwischen den räumlich getrennten Messbereichen oder in unbesetzten Teilbereichen innerhalb dieser Messbereiche gegenüber den Analyten und / oder gegenüber seinen Bindungspartnern "chemisch neutrale" Verbindungen nach der Erzeugung dieser Messbereiche aufgebracht wird und vorzugsweise beispielsweise Verbindungen umfasst aus den Gruppen, welche Albumine, insbesondere Rinderserumalbumin oder Humanserumalbumin, Casein, unspezifische, polyklonale oder monoklonale, artfremde oder empirisch für den oder die nachzuweisenden Analyten und deren Bindungspartner unspezifische Antikörper (insbesondere für Immunoassays), Detergentien - wie beispielsweise Tween 20 -, nicht mit zu analysierenden Polynukleotiden hybridisierende, fragmentierte natürliche oder synthetische DNA, wie beispielsweise Extrakte von Heringsoder Lachssperma (insbesondere für Polynukleotid-Hybridisierungsassays), oder auch ungeladene, aber hydrophile Polymere, wie beispielsweise Polyethylenglycole oder Dextrane, umfassen. Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Trägersubstrat zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren umfassend eine Haftvermittlungsschicht, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Haftvermittlungsschicht mit einem erfindungsgemässen Beschichtungsverfahren nach einer der genannten Ausführungsformen erzeugt wird.
Ebenfalls Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Trägersubstrat zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren umfassend eine das Trägersubstrat zumindest in Teilbereichen bedeckende Passivierungsschicht, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Passivierungsschicht mit einem erfindungsgemässen Beschichtungsverfahren nach einer der genannten Ausführungsformen erzeugt wird.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Trägersubstrat nach einer der genannten Ausführungsformen zur Anwendung in der Human- und / oder Tierdiagnostik.
Die vorliegende Erfindung wird nachfolgend beispielhaft in einem Ausführungsbeispiel näher erläutert.
Beispiele:
1. Erfindungsgemässe Beschichtungsapparatur und Beschichtungsverfahren
Eine schematische Darstellung einer erfindungsgemässen Beschichtungsapparatur ist in Fig. 1 dargestellt. In dem vorliegenden Beispiel sollen mit der erfindungsgemässen Apparatur die von spezifischen Bindungspartnern unbedeckten Bereiche von für ein Affinitäts- Nachweisverfahren vorbereiteten Trägersubstraten „passiviert", d.h. in diesen Bereichen eine „Passivierungsschicht" aufgebracht werden. Die erfindungsgemässe Apparatur umfasst in dieser beispielhaften Ausfuhrungsform einen Exsikkator (1) mit einem Volumen von ca. 2 1 als Behältnis für die zu vernebelnde Flüssigkeit und des über der Flüssigkeit zu erzeugenden Nebelvolumens, eine Halterung (2) zur Aufnahme der zu beschichtenden Trägersubstrate, einen Ultraschallzerstäuber („Lucky Reptile Mini-Nebler", Reptilica, D-90431 Nürnberg, Deutschland) als Aktuator (3) zur Flüssigkeitsvernebelung, ein Uhrglas als Tropfenabscheider (4) sowie einen Gaseinlass (5) und einen Auslass (6) für Gas und / oder erzeugten Nebel.
Im Betriebszustand ist der Ultraschallgenerator in die zu vernebelnde Flüssigkeit (7) eingetaucht. Um das erforderliche Flüssigkeitsvolumen zu minimeren, wurde in der Ausführungsform des vorliegenden Beispiels der Ultraschallgenerator, angebracht auf dem Boden des Exsikkators, dort bis knapp unterhalb der schallgebenden Schwingmembran in Polydimethylsiloxan (PDMS) eingegossen, so dass nur die Aufbringung einer dünnen Schicht zu vernebelndender Flüssigkeit erforderlich ist.
Die unter Einwirkung des Ultraschalls erzeugten und sich über den Flüssigkeitsspiegel erhebenden feinsten Tröpfchen werden mithilfe eines schwachen Stromes von Stickstoff, der über den Einlass (5) in das Behältnis eingeführt wird, zusätzlich verwirbelt, um im gesamten Behältnis eine möglichst homogene Verteilung des resultierenden Nebels zu erzeugen.
Zu beschichtende planare optische Dünnschichtwellenleiter als Trägersubstrate, mit den äusseren Abmessungen 14 mm Breite x 57 mm Länge x 0.7 mm Dicke (weitere Details hierzu siehe unten), werden in der Halterung (2) während des Beschichtungsvorganges in einem Abstand von ca. 8 cm über der Flüssigkeitsoberfläche horizontal (bezüglich der Flüssigkeitsoberfläche) gelagert. Die Halterung ist im vorliegenden Beispiel als ein mit Löchern versehener Träger aus Kunststoff ausgebildet, so dass durch diese Löcher überschüssige aus dem Nebel abgeschiedene Flüssigkeit abfliessen kann. In der vorliegenden beispielhaften Ausfuhrungsform kann die Halterung zehn Dünnschichtwellenleiter als Trägersubstrate mit den genannten Abmessungen aufnehmen.
Das Uhrglas als Tropfenabscheider ist im vorliegenden Beispiel an die Unterseite der Halterung (2) angeklebt und schirmt die zu beschichtenden Trägersubstrate gegen Spritzer aus der Vernebelungslösung (Beschichtungslösung) ab.
Der erzeugte, sehr homogen verteilte Nebel scheidet sich auf den Trägersubstraten, mit im vorliegenden Beispiel auf der Oberseite (bezüglich der Lagerung in der Beschichtungsapparatur) angeordneter hochbrechender wellenleitender Schicht (a), in Form kleinster Tröpfchen ab, und bereits innerhalb von 5 Minuten bis 10 Minuten bildet sich auf den Oberseiten dieser Trägersubstrate ein dünner, durchgehender Flüssigkeitsfilm aus. Nach einer Gesamt-Inkubationszeit von 30 Minuten werden die Trägersubstrate aus der Beschichtungsapparatur entnommen, sorgfältig mit fliessendem Reinstwasser (Millipore) gespült und abschliessend in Stickstoffstrom getrocknet.
Im vorliegenden Beispiel wird für einen Dünnschichtwellenleiter der genannten Abmessungen als Trägersubstrat ein Volumen von ca. 2 ml Passivierungslösung (zu vernebelnder Flüssigkeit) benötigt.
2. Durchführung herkömmlicher Beschichtungsverfahren 2.1. Trägersubstrate
Als Trägersubstrat für ein später damit auszuführendes Affϊnitäts-Nachweisverfahren dienen in den vorliegenden Beispielen (wie auch schon erwähnt unter 1.) planare optische Dünnschichtwellenleiter, jeweils mit den äusseren Abmessungen 14 mm Breite x 57 mm Länge x 0.7 mm Dicke. Diese Trägersubstrate umfassen jeweils ein Glasssubstrat (AF 45) und eine darauf aufgebrachte 150-nm dünne, hochbrechende Schicht aus Tantalpentoxid. In dem Glassubstrat sind, parallel zur Länge, zwei Oberflächenreliefgitter (Gitterperiode: 318 nm, Gittertiefe: (12 +/- 2) nm) im Abstand von 9 mm moduliert, welche als diffraktive Gitter der Lichteinkopplung in die hochbrechende Schicht dienen sollen. Auf der Oberfläche der Metalloxidschicht dieser Trägersubstrat ist eine durch spontane Selbstorganisation („Seif Assembly") gebildete Monoschicht aus Mono-Dodecylphosphat (DDP) als Haftvermittlungsschicht aufgebracht. Die mit dieser Haftvermittlungsschicht versehene Oberfläche der Trägersubstrate zeichnet sich durch grosse Hydrophobizität aus. Auf den mit der hydrophoben Haftvermittlungsschicht versehenen Trägersubstraten werden jeweils 6 identische Mikroarrays von je 144 diskreten Messbereichen (Spots), ihrerseits in einer Anordnung von jeweils 16 Reihen und 9 Spalten, mit einem InkJet- Spotter (Modell NP 1.2, GeSiM, Grosserkmannsdorf, Deutschland) aufgetragen. Jeder Spot wird durch die Auftragung eines einzelnen Tröpfchens von ca. 350 pL Volumen auf die Chipoberfläche erzeugt.
2.2. Reagentien und Erzeugung von Arrays von Messbereichen auf den Trägersubstraten
In dem vorliegenden Beispiel sollen in einem nachfolgenden Affinitäts-Nachweisverfahren auf den vorbereiteten Trägersubstraten die nachzuweisenden Analyten selbst immobilisiert werden, eingebettet in eine native Probenmatrix bzw. in eine mit wenigen Probenvorbereitungsschritten aufbereitete Form der Probenmatrix (Zellysat). Diese Formen der Proben sollen nachfolgend auch als „natur-identische Proben" bezeichnet werden. Der Nachweisschritt soll dann nach Zufuhrung weiterer Nachweis-Reagentien erfolgen.
Für den Nachweis von biologisch relevanten Proteinanalyten in den „natur-identischen" Proben wird eine humane Darmkrebszellinie (HT29) benutzt. Diese adherenten Zellen werden in modifiziertem McCoy's 5A Medium bei 37°C in herkömmlichen, aus Kunststoff bestehenden Kulturflaschen (Greiner Bio-One, St. Gallen, Schweiz, Kat-Nr. 658170) kultiviert. Gleichartige Zellkulturen unterschiedlicher Kulturflaschen werden dann entweder 10 Minuten lang mit UV-Licht bestrahlt oder mit 10 μM Doxorubicin behandelt. Als Vergleichsprobe zu diesen behandelten Zellkulturen wird eine ansonsten gleichartige Zellkultur benutzt, die unbehandelt bleibt und im analytischen Nachweisverfahren als Negativ-Kontrolle dienen wird. Nach der Behandlung werden die unterschiedlichen Zellkulturen mit je 10 ml PBS (phosphatgepufferter Kochsalzlösung, gekühlt auf 4°C) gewaschen.
Danach werden die Zellen mittels Zugabe von Lysepuffer, enthaltend 7 M Harnstoff, 2 M Thioharnstoff und Complete (Proteaseinhibitor, Roche AG, 1 Tablette/50 ml) vom Boden der Kulturflaschen abgelöst und gleichzeitig vollständig lysiert, wobei alle proteinhaltigen Zellbestandteile spontan denaturiert und solubilisiert werden. Das so erhaltene Zellysat wird zur Abtrennung von unlöslichen Zellbestandteilen (z.B. von DNA und Zellmembranfragmenten) 5 Minuten lang bei 13 OOOxg in einer Tischzentrifuge (Eppendorf, Hamburg, Deutschland) zentrifugiert. Der Überstand wird abgenommen und für die folgenden Messungen verwendet, wobei die Totalproteinkonzentration typischerweise zwischen 5 mg/ml und 10 mg/ml liegt.
Die beschriebenen Behandlungen der HT29-Zellkulturen führen zu Schädigungen der DNA, und zwar bei UV-Bestrahlung u.a. durch Kettenbruch oder durch Bildung von Thymin- Dimeren und bei Doxorubicin-Zugabe durch dessen Interkalation zwischen benachbarte Basen der DNA. Dieses hat zur Folge, dass innerhalb geschädigter Zellen bestimmte Signalwege aktiviert oder deaktiviert werden, was z.B. den programmierten Zelltod (Apoptose) zur Folge haben kann. Verantwortlich für die Aktivierung oder Deaktivierung von Signalwegen sind bestimmte Schlüsselproteine (sogenannte „Markerproteine"), die durch Phosphorylierung an einer oder mehreren unterschiedlichen Stellen einen oder mehrere Signalwege regeln.
Ein Beispiel für die Regulation eines Signalwegs über ein Markerprotein ist das Tumorsupressorprotein p53, welches über dessen Phosphorylierungsgrad die Zellteilung, die Apoptose sowie gewisse Reparaturmechanismen für geschädigte DNA steuert. Diese Signalwege sind in Krebszellen oft an einer bestimmten oder an mehreren Stellen durch Mutationen oder Fehlen eines oder mehrerer Markerproteine in ihrer Regulation gestört, was letztlich für ein unkontrolliertes Wachstum verantwortlich sein kann.
Die Detektion und die Bestimmung der relativen Gehalte an p53 und P-p53 (phosphorylierte Form des p53) erfolgt mithilfe von hochspezifischen Antikörpern, die an diese Proteine binden, welche als Analyten in den gewonnenen und weiterbehandelten Zellysaten direkt auf den Trägersubstraten (vorzugsweise nach Aufbringung einer Haftvermittlungsschicht wie vorangehend beschrieben) immobilisiert werden sollen.
Die gewonnenen Zellysate werden um einen Faktor 10 - 20 auf eine Totalproteinkonzentration von etwa 0.4 mg/ml verdünnt und anschliessend in diskreten Messbereichen zur Erzeugung eines Arrays von Messbereichen auf der mit der Haftvermittlungsschicht versehenen Metalloxide-Oberfläche der Dünnschichtwellenleiter als Trägersubstraten aufgetragen. Zusätzlich zu den Messbereichen mit darin aufgebrachten Zellysaten enthält jedes Mikroarray weitere Messbereiche mit darin immobilisiertem Cy5- fluoreszenzmarkiertem Rinderserumalbumin (Cy5-BSA), die zur Referenzierung von lokalen Unterschieden und / oder zeitlichen Variationen der Anregungslichtintensität bei der Messung verwendet werden („Referenz-Spots"). Cy5-BSA wird in einer Konzentration von 0.5 nM in 7 M Harnstoff, 2 M Thioharnstoff aufgetragen (Markierungsrate: ca. 3 Cy5-Moleküle pro BSA- Molekül).
Die Geometrie der Anordnung der Messbereiche in einem zweidimensionalen Array und eine lineare Anordnung von sechs (identischen) Arrays auf einem Trägersubstrat sind in Fig. 2 dargestellt. Der Durchmesser der Spots, mit einem Abstand (Zentrum-zu-Zentrum) von 300 μm, beträgt etwa 120 μm. Ein Array von Messbereichen umfasst für diese Beispiele jeweils eine Anordnung von Messbereichen mit 12 verschiedenen, in 4 Replikaten aufgetragenenen Proben, wobei die 4 gleichartigen Messbereiche jeweils in einer gemeinsamen Spalte senkrecht zur Aubreitungsrichtung des während des Detektionsschritts in der wellenleitenden Schicht dieser Trägersubstrate geführten Lichts angeordnet sind. Mithilfe der jeweils 4 gleichartigen Messbereiche soll die Reproduzierbarkeit der Mess-Signale innerhalb des Arrays von Messbereichen bestimmt werden. Zwischen und neben den Spalten von Messbereichen mit darin aufgebrachten zu analysierenden Proben sind jeweils Spalten von Messbereichen mit darin aufgebrachtem Cy5-BSA (zu Referenzierungszwecken) angeordnet. Die erfindungsgemässe analytische Plattform umfasst in diesem Beispiel 6 gleichartige derartige Arrays von Messbereichen, wie in Fig. 2 dargestellt. 2.3. Passivierung der freien Bereiche zwischen und innerhalb der Messbereiche
Nach Aufbringen der „natur-identischen" Proben und Cy5-BSA werden die Trägersubstrate in staubfreier Raumluft getrocknet, bevor die freien, nicht bedeckten hydrophoben Oberflächenbereiche der Trägersubstrate in einem weiteren Arbeitsschritt zur Minimierung unerwünschter unspezifischer Bindung von Nachweis-Reagentien, in diesem Fall von Antikörpern und/oder fluoreszenzmarkierten Molekülen, mit Rinderserumalbumin (BSA) abgesättigt (passiviert) werden.
Mit der bereits unter 1. beschriebenen erfindungsgemässen Methode der Oberflächenpassivierung werden zwei weitere Methoden (2.3.1. Tauchverfahren und 2.3.2. Sprühverfahren) verglichen, wobei in allen Fällen frisch filtierte Passivierungslösung (50 mM Imidazol, 10OmM NaCl, 3% BSA (w/v) pH 7.4) benutzt wird. Nach erfolgter Passivierung der freien Oberfläche durch die unter 1. bzw. nachfolgend beschriebenen Verfahren werden die Trägersubstrate bei 4°C in geschlossenen Polystyrol-Röhrchen bis zur Messung im Rahmen des nachfolgend auszuführenden Affinitäts-Nachweisverfahrens aufbewahrt.
2.3.1. Tauchverfahren
Die planaren optischen Dünnschichtwellenleiter als Trägersubstrate werden senkrecht in ein mit Passivierungslösung gefülltes Gefäss (Polystyrol-Röhrchen) fallen gelassen, so dass die gesamte Oberfläche der Trägersubstrate möglichst gleichzeitig und schnell benetzt wird. Nach einstündiger Inkubation bei Raumtemperatur werden die Trägersubstrate unter fliessendem Reinstwasser (Millipore) sorgfältig gespült und anschliessend im Stickstoffstrom (Qualität 50) getrocknet. Pro Dünnschichtwellenleiter der genannten Abmessungen als Trägersubstrat wird ein Volumen von ca. 25 ml Passivierungslösung benötigt.
2.3.2. Sprühverfahren
Die Passivierungslösung wird hier mittels eines Chromatographie-Zerstäubers (Glas Keller Kat.-Nr. 12.159.603, Basel, Schweiz) und einem Druck von ca. 3.5 bar auf die Trägersubstrate gesprüht, bis sich auf deren zu beschichtender Oberfläche ein durchgehender Flüssigkeitsfilm gebildet hat. Der Abstand zwischen der Ausgangsdüse des Zerstäubers und der Trägersubstratoberfläche beträgt hierbei ca. 30 cm. Anschliessend werden die so behandelten Trägersubstrate in einem geschlossenen Behältnis bei 100% Luftfeuchte eine Stunde lang bei Raumtemperatur inkubiert, danach unter fliessendem Reinstwasser (Millipore) sorgfältig gespült und zuletzt im Stickstoffstrom (Qualität 50) getrocknet. Pro Trägersubstrat der in diesen Beispielen genannten Ausführungsform wird ein Volumen von ca. 3 ml Passivierungslösung benötigt.
3. Affϊnitäts-Nachweisverfahren 3.1. Assay-Architektur
Der Nachweis bestimmter Proteine allgemein (d. h. z. B. mit oder ohne Phosphorylierung) bzw. bestimmter Proteine speziell in aktivierter (z.B. phosphorylierter) Form in den immobilisierten in diskreten Messbereichen aufgetragenen Zellysaten erfolgt durch sequentielle Zugabe entsprechender Nachweisreagentien vor der Vermessung der resultierenden Fluoreszenzsignale: Zur Vorbereitung für einen ersten Assay-Schritt werden polyklonale analytspezifische Kaninchen-Antikörper (Antikörper Al (#9282): anti-p53; Antikörper A2 (#9284): anti-Phospho-p53 (Serl5); beide Antikörper bezogen von Cell Signaling Technology, INC., Beverly, MA, USA) im Verhältnis 1 :500 in Assay-Puffer (50 mM Imidazol, 100 mM NaCl, 5% BSA, 0.1% Tween 20 pH 7.4) verdünnt. Von diesen verschiedenen Antikörperlösungen werden jeweils 30 μl auf jeweils eines der 6 identischen Arrays von Messbereichen aufgebracht, gefolgt von einer Inkubation bei Raumtemperatur über Nacht (erster Assay-Schritt). Überschüssige, nicht spezifisch gebundene Antikörper werden durch Waschen eines jeden Arrays mit Assaypuffer (2 x 200 μl) entfernt.
Für den Nachweis von in diskreten Messbereichen an dort in den immobilisierten Zellysaten enthaltene gebundene analytspezifische Antikörper erfolgt ein zweiter Assay-Schritt unter Benutzung eines Alexa Fluor 647-markierten anti-Kaninchen-Fab-Fragments (Molecular Probes, Kat.-Nr. Z-25308, Leiden, Niederlande), welches an die vorangehend genannten Antikörper Al und A2 bindet. Dieses fluoreszenzmarkierte Fab-Fragment wird, ausgehend von der kommerziell erhältlichen Stammlösung, in einer Verdünnung von 1:500 in Assay- Puffer auf die Arrays aufgebracht (je 30 μl) und anschliessend 1 Stunde lang bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Anschliessend werden die Arrays mit Assay-Puffer (jeweils zweimal mit 200 μl) gewaschen, um nicht spezifisch gebundene fluoreszenzmarkierte Fab-Fragmente zu entfernen. Danach werden die so vorbereiteten analytischen Plattformen bis zum Detektionsschritt mittels Anregung und Detektion resultierender Fluoreszenzsignale im ZeptoREADER™ (siehe unten) gelagert.
3.2. Bestimmung der Fluoreszenzsignale aus den Arrays von Messbereichen
Die Fluoreszenzsignale aus den verschiedenen Arrays von Messbereichen werden mit einem ZeptoREADER™ (Zeptosens AG, CH-4108 Witterswil, Schweiz) sequentiell automatisch gemessen. Für jedes Array von Messbereichen wird der planare optische Dünnschichtwellenleiter als Trägersubstrat (gemäss 2.1.) justiert zur Erfüllung der Resonanzbedingung für die Lichteinkopplung über eine Gitterstruktur (c) in die wellenleitende Tantalpentoxid-Schicht und zur Maximierung des in den Messbereichen verfügbaren Anregungslichts. Anschliessend wird von jedem Array eine vom Benutzer wählbare Anzahl von Bildern der Fluoreszenzsignale aus dem betreffenden Array erzeugt, wobei unterschiedliche Belichtungszeiten gewählt werden können. Die Anregungswellenlänge beträgt bei den Messungen für das vorliegende Beispiel 635 nm, die Detektion des Fluoreszenzlicht erfolgt mit einer gekühlten Kamera bei der Fluoreszenzwellenlänge von Cy5, unter Verwendung eines Interferenzfilters (Transmission (675±20) nm) zur Unterdrückung von Streulicht bei der Anregungswellenlänge, der vor dem Objektiv der Kamera positioniert ist. Die erzeugten Fluoreszenzbilder werden automatisch auf der Speicherplatte des Steuer-Computers abgespeichert. Weitere Details des optischen Systems (ZeptoREADER™) sind in der internationalen Patentanmeldung PCT/EP 01/10012 beschrieben, welche hiermit vollumfänglich als Bestandteil dieser Anmeldung eingeführt wird.
3.3. Auswertung und Referenzierung
Die mittlere Signalintensität aus den Messbereichen (Spots) wird bestimmt mithilfe einer Bildanalyse-Software (ZeptoVIEW™, Zeptosens AG, CH-4108 Witterswil), welche es ermöglicht, die Fluoreszenzbilder einer Vielzahl von Arrays von Messbereichen halbautomatisch auzuwerten.
Die Rohdaten der einzelnen Pixel der Kamera stellen eine zweidimensionale Matrix digitalisierter Messwerte dar, mit der gemessenen Intensität als Messwert eines einzelnen Pixels entsprechend der auf ihn abgebildeten Fläche auf der Sensorplattform. Für die Auswertung der Daten wird zunächst manuell ein zweidimensionales (Koordinaten-) Netz über die Bildpunkte (Pixelwerte) gelegt derart, dass das Teilbild jedes Spots in ein individuelles zweidimensionales Netzelement fällt. Innerhalb dieses Netzelements wird jedem Spot ein kreisförmiger möglichst gut anzupassender „Auswertebereich" (area of interest, AOI) mit einem vom Benutzer vorzugebenden Radius (typischerweise 120 μm) zugeordnet. Durch die Bildanalysesoftware wird der Ort der einzelnen AOIs individuell als Funktion der Signalintensität der einzelnen Pixel bestimmt. Dabei bleibt der zu Beginn vom Nutzer vorgegebene Radius der AOIs erhalten. Als mittlere Bruttosignalintensität eines jeden Spots wird das arithmetische Mittel der Pixelwerte (Signalintensitäten) innerhalb eines gewählten Auswertebereichs bestimmt.
Die Hintergrundsignale werden bestimmt aus den gemessenen Signalintensitäten zwischen den Spots. Dazu werden pro Spot vier weitere kreisförmige Flächen (mit typischerweise zusammengenommen gleichem Radius wie für die Auswertebereiche der Spots) als Auswertebereiche zur Hintergrundsignalbestimmung definiert, welche vorzugsweise in der Mitte zwischen zwischen benachbarten Spots angeordnet sind. Aus diesen vier Kreisflächen wird die mittlere Hintergrundsignalintensität beispielsweise als das arithmetische Mittel der Pixelwerte (Signalintensitäten) innerhalb eines hierfür gewählten AOIs bestimmt. Die mittlere Nettosignalintensität aus den Messbereichen (Spots) wird dann als Differenz zwischen der lokalen mittleren Brutto- und der lokalen mittleren Hintergrundsignalintensität des jeweiligen Spots berechnet.
Die Referenzierung der Netto-Signalintensität aller Spots erfolgt geweils mit Hilfe von Referenzspots (Cy5-BSA) eines jeden Arrays von Messbereichen. Dazu wird die Netto- Signalintensität eines jeden Spots durch den Mittelwert der Netto-Signalintensitäten der benachbarten Referenzspots derselben Reihe (angeordnet parallel zur Ausbreitungsrichtung des in der Evaneszentfeld-Sensorplattform geführten Lichts) dividiert. Durch diese Referenzierung werden die lokalen Unterschiede der verfügbaren Anregungslichtintensität orthogonal zur Lichtausbreitungsrichtung sowohl innerhalb eines jeden Mikroarrays als auch zwischen verschiedenen Mikroarrays kompensiert.
3.4. Ergebnisse
Fig. 3A zeigt ein typisches Bild der Fluoreszenzsignale eines Mikroarrays nach einem Assay zum Nachweis von p53, wobei freie Flächen zwischen den Messbereichen mithilfe des Tauchverfahrens (gemäss 2.3.1.) passiviert wurden. Die Signalintensität innerhalb eines jeden einzelnen Referenzspots und zwischen unterschiedlichen Referenzspots (Cy5-BSA) ist sehr gleichmässig und homogen verteilt, und der Rand der nahezu ideal kreisförmigen Spots ist scharf vom Hintergrund abgegrenzt (siehe Detailbild). Demgegenüber sind die Messbereiche der immobilisierten Zellysate durch schweifartige „Verschmierungen" gekennzeichnet, was besonders deutlich bei hohen Signalintensitäten zu erkennen ist. Diese „Verschmierungen" werden, wie vorangehend beschrieben, während des Moments des Eintauchens der mit den Spots versehenen Trägersubstrate in die Passivierungslösung verursacht, und zwar durch von der Passivierungslösung aus den Messbereichen gelöste, nicht fest adsorbierte Probenanteile, die entlang der Strömung in entgegengesetzter Eintauchrichtung in unmittelbarer Nähe eines solchen Messbereiches auf der freien, noch nicht passivierten Trägersubstratoberfläche adsorbiert werden, noch bevor diese mit dem in der Passivierungslösung enthaltenen BSA passiviert werden können. Da diese aus den Messbereichen herausgelösten und in der Nachbarschaft wieder adsorbierten Probenanteile auch immer einen gewissen Gehalt an nachzuweisenden Analyten enthalten, wird beim Auslesen an besagten Stellen ein entsprechendes Fluoreszenzsignal sichtbar.
Fig. 3B zeigt ein typisches Bild der Fluoreszenzsignale eines Mikroarrays nach einem Assay zum Nachweis von p53, wobei freie Flächen zwischen den Spots mittels des Sprühverfahrens (gemäss 2.3.2.) passiviert wurden. Die Signale aus den Referenzspots sind sowohl hinsichtlich ihrer Form und Gleichmässigkeit bzw. Homogenität als auch ihrer Intensität vergleichbar mit denen eines Mikroarrays nach Einsatz des Tauchverfahrens. Die Signale aus den Messbereichen mit immobilisierten Zellysaten sind hinsichtlich ihrer Intensität ebenfalls mit den entsprechenden Messignalen aus den Mikroarrays vergleichbar, welche dem Tauchverfahren unterzogen worden waren. Aufgrund der beim Sprühverfahren, im Gegensatz zum Tauchverfahren, zu vernachlässigenden Strömungen von Passivierungslösung auf der Trägersubstratoberfläche zeigen die Zellysat-Spots jedoch nicht die oben beschriebenen „Verschmierungen", sondern lediglich kleinere „Auswüchse" mit geringerer Fluoreszenzintensität, die offensichtlich annähernd statistisch um die vorgesehenen Spots herum angeordnet sind. Diese werden mit grosser Wahrscheinlichkeit durch das lokale Lösen und Ausfliessen von nicht fest gebundenem Zellysat an den Rändern der Messbereiche verursacht, da die hier auftreffenden kleinen Spray-Tröpfchen der Passivierungslösung beim Auftreffen auf der Oberfläche einen nicht zu vernachlässigenden Impuls senkrecht zur beschichtenden Oberfläche aufweisen, was zur Erzeugung von Spritzern führen kann.
Fig. 3C zeigt ein typisches Bild der Fluoreszenzsignale eines Mikroarrays nach einem Assay zum Nachweis von p53, wobei freie Flächen zwischen den Messbereichen mittels des erfindungsgemässen Verfahrens durch Vernebelung von Passivierungslösung, wie unter 1. beschrieben, passiviert wurden. Auffallend ist hier, im Vergleich zu den mit den anderen beschriebenen Methoden passivierten Mikroarrays, die hohe Qualität mit vergleichbar guter Homogenität und Form von Referenzspots und Zellysatspots. „Verschmierungen" oder „Auswüchse" der Zellysatspots können hier vermieden werden aufgrund der, abgesehen von Einflüssen der Schwerkraft, im wesentlichen ungerichteten und impulsfreien Aufbringung der Passivierungslösung in Form feinster Nebeltröpfchen, deren Grosse deutlich unter derjenigen durch Versprühen hergestellter Tröpfchen liegt.
Die Effizienz der Passivierung der von Komponenten aus der immobilisierten Probe freien Oberfläche, d.h. das Ausmass der Unterdrückung unspezifischer Bindung mittels des in der Passivierungslösung enthaltenen BSA, lässt sich aus der in den von Spots freien Bereichen gemessenen Signalintensität (zwischen den Spots, „Hintergrundsignale") semiquantitativ ermitteln. Eine unvollständig mit BSA bedeckte Oberfläche würde demnach aufgrund zumindest teilweise auftretender unspezifischer Bindung der im Assay verwendeten fluoreszenzmarkierten Detektionsreagentien (Alexa 647 anti-rabbit-Fab) auf die B S A- freie Oberfläche ein höheres Signal ergeben als eine durchgehend mit BSA beschichtete Oberfläche.
Fig. 4A zeigt die Mittelwerte und Standardabweichungen der Hintergrundsignalintensitäten, die zwischen allen Spots der mithilfe der drei verschiedenen Verfahren passivierten freien Trägersubstratoberflächen mit den darauf erzeugten Mikroarrays bestimmt wurden. Die Bezeichnungen A, B und C beziehen sich, ebenso wie in Fig. 4B, Fig. 5A und Fig. 5B auf Passivierung mittels des Tauchverfahrens (A), Sprühverfahrens (B) bzw. Verfahren durch Vernebelung der Passivierungslösung (C). Es zeigt sich anhand der gemessenen (niedrigeren) Hintergrundsignalintensitäten überraschenderweise, dass die Passivierungseffizienz nach Behandlung mit dem Sprühverfahren und dem erfindungsgemässen Vernebelungsverfahren deutlich höher als nach Anwendung des Tauchverfahrens zur Oberflächenpassivierung ist. Ausserdem ist die Standardabweichung der Hintergrundsignalintensitäten nach Anwendung des Sprüh- oder des erfindungsgemässen Vernebelungsverfahrens mit 11 - 12% jeweils deutlich niedriger als nach Einsatz des Tauchverfahrens zur Oberflächenpassivierung, was zu einer Standardabweichung der Hintergrundsignalintensitäten von 34% führte. Hieraus wird geschlossen, dass auch die Gleichmässigkeit bzw. Homogenität der Beschichtung nach Anwendung des Sprüh- oder des Vernebelungsverfahrens höher als nach Einsatz des Tauchverfahrens ist.
Fig. 4B zeigt die Mittelwerte der Fluoreszenzintensitäten aller Referenzspots der Mikroarrays, wobei die freien Oberflächen der zugehörigen Trägersubstrate wiederum mit den drei unterschiedlichen Beschichtungsverfahren behandelt wurden. Überraschend zeigt sich aus dem Vergleich, dass die Signalintensität nach Anwendung des Sprühverfahrens leicht und nach Anwendung des Vernebelungsverfahrens deutlich (nämlich um etwa 60 %), im Vergleich zu den Signalen nach Anwendung des Tauchverfahrens, erhöht ist. Diese Unterschiede werden auf die Verminderung des Volumens an aufgebrachter Passivierungslösung, welche wahrscheinlich die zur Referenzierung aufgebrachten Cy5-BSA- Verbindungen teilweise ablösen kann, sowie auf die nahezu impulsfreie Aufbringung der Passivierungslösung im Falle des Vernebelungsverfahrens zurückgeführt.
Fig. 5 A zeigt die gemittelten Intensitäten und Standardabweichungen der Fluoreszenzsignale aus den zum Analytnachweis vorgesehenen Messbereichen der Mikroarrays, deren Trägersubstratoberflächen jeweils mit den unterschiedlichen Passivierungsverfahren behandelt wurden und welche danach mit Lösungen des Antikörpers Al (anti-p53) (Fig. 5 A, oben) und A2 (anti-Phospho-p53) (Fig. 5A, unten) und anschliessend jeweils für den Nachweis mittels Fluoreszenzdetektion mit Alexa 647 Fluor anti-Kaninchen Fab-Fragmenten inkubiert wurden. Die gemessenen Fluoreszenzsignalintensitäten korrelieren mit dem jeweils in einem Zellysat enthaltenen relativen Gehalt an Analyten (entsprechend der Zellysatkonzentration; höheres Signal entsprechend einer höheren Analytkonzentration, wobei die Korrelation offensichtlich nicht linearer Natur ist).
Im Vergleich zur Kontrollprobe ohne Vorbehandlung (jeweils gekennzeichnet in Fig. 5A und Fig. 5B als „Control") zeigen das Lysat der mit UV-Licht (jeweils gekennzeichnet in Fig. 5A und Fig. 5B mit ,,+UV") und insbesondere der mit Doxorubicin behandelten HT29-Zellkultur (jeweils gekennzeichnet in Fig. 5A und Fig. 5B mit ,,+Dx") einen deutlich erhöhten Gehalt an p53, hervorgerufen durch einen Anstieg der Expression dieses Proteins in den betreffenden Zellen.
Demgegenüber zeigt Fig. 5B, dass der Gehalt an Phospho-p53 in der mit UV-Licht behandeltem Probe ebenfalls deutlich im Vergleich zu der Kontrollprobe erhöht ist, während der Gehalt an Phospho-p53 in der mit Doxorubicin behandelten Probe trotz massiv erhöhter Gesamtkonzentration an p53 nur geringfügig über (im Fall der Lysatkonzentrationen von 0.2 mg/ml bis 0.4 mg/ml) oder sogar unter (im Fall der Lysatkonzentration von 0.1 mg/ml) demjenigen der Kontrollprobe liegt. Dieses zeigt, dass der durch DNA-Schädigung induzierte Signalweg, in dem Phospho-p53 als Schlüsselprotein zur Regulation fungiert, in dieser Zellinie deutlich auf Behandlung mit UV-Licht, jedoch offensichtlich nur schwach auf Behandlung mit Doxorubicin anspricht.
Wesentlich bezüglich des Einflusses der unterschiedlichen eingesetzten Verfahren zur Passivierung der freien Trägersubstratoberflächen ist, dass die gemessenen Signalintensitäten aus den Messbereichen zum Analytnachweis unter Berücksichtigung der experimentell bedingten Variationen (Fehlerbalken) nicht statistisch signifikant unterschiedlich, d.h. unabhängig von der durchgeführten Beschichtungsmethode zur Oberflächenpassivierung sind. Dieses bedeutet, dass - offensichtlich im Gegensatz zu den Effekten auf die zur Referenzierung eingesetzten Cy5 -B S A- Verbindungen - die unterschiedlichen Passivierungsmethoden sich im Einfluss auf die auf den Trägersubstraten adsorbierten Zellysate nicht unterscheiden.
Zusammenfassend zeigen diese Ergebnisse, dass das erfindungsgemässe Verfahren zum Aufbringen der Passivierungslösung auf die Trägersubstratoberfläche mittels Vernebelung, im Gegensatz zum herkömmlichen Tauchverfahren und auch zum Sprühverfahren, deutliche Vorteile bietet und die gestellten Anforderungen vollumfänglich erfüllt. Für den Fachmann ist ersichtlich, dass das in den vorangehenden Ausfuhrungsbeispielen dargestellte Verfahren für die Trägersubstratbeschichtung zur Oberflächenpassivierung direkt auf Beschichtungen mit geeigneten Haftvermittlungsschichten übertragbar und in dieser Weise verallgemeinerbar ist.

Claims

Ansprüche:
1. Apparatur zur Beschichtung von Trägersubstraten zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren, umfassend: ein Behältnis zur Aufnahme zu vernebelnder Flüssigkeit ("Flüssigkeitsbehältnis") mit darin enthaltenen, auf mindestens einer Oberfläche besagter Trägersubstrate abzuscheidenden Stoffen (Verbindungen) sowie eines über der Flüssigkeit im Betriebszustand erzeugten Nebelvolumens,
- einen Aktuator zur Veranlassung des Vernebelungsprozesses und
- eine Halterung zur Aufnahme und Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses, dadurch gekennzeichnet, dass sich die Trägersubstrate in keinem Kontakt zur Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit befinden.
2. Apparatur nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass besagter Aktuator der Erzeugung von Ultraschall dient.
3. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 - 2, dadurch gekennzeichnet, dass besagter Aktuator die Membran eines Ultraschall-Generators umfasst.
4. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 - 3, dadurch gekennzeichnet, dass besagter Aktuator im Betriebszustand in zu vernebelnde Flüssigkeit eingetaucht ist.
5. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 - 4, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich einen Tropfenabscheider umfasst.
6. Apparatur nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider für Dampfund Nebel undurchlässig ist.
7. Apparatur nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider für Tropfen bis zu einer definierten Grosse durchlässig ist.
8. Apparatur nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider die Form eines konkaven Spiegels hat.
9. Apparatur nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider ein feinmaschiges Netz umfasst, mit dessen Maschenabstand die maximale Grosse durchzulassender Tropfen festgelegt wird.
10. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 - 9, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich mindestens einen Gas-Einlass umfasst.
11. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -10, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zur Erzeugung einer gleichmässigen Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate umfasst.
12. Apparatur nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Vorkehrungen zur Erzeugung einer gleichmässigen Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate einen Ventilator umfassen.
13. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -12, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung der Temperatur der zu vernebelnden Flüssigkeit und / oder einzelner oder aller Wände des Flüssigkeitsbehältnisses umfasst.
14. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 —13, dadurch gekennzeichnet, dass die Halterung der Beschichtungsapparatur zur Aufnahme und / oder Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses thermostatisierbar ist.
15. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 —14, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung des Drucks innerhalb des Flüssigkeitsbehältnisses während des Beschichtungsprozesses umfasst.
16. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -15, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zur Rotation der Trägersubstrate um eine Achse senkrecht zur Halterungsebene umfasst.
17. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -16, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zum Auffangen und zur Rückführung / Wiedergewinnung an den Wänden des Flüssigkeitsbehältnisses abgeschiedener vernebelter Flüssigkeit umfasst.
18. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -17, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zur Erleichterung der Reinigung des Flüssigkeitsbehältnisses umfasst.
19. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -18, dadurch gekennzeichnet, dass diese zusätzlich Vorkehrungen zur kontrollierten Einstellung und / oder Variation des Abstandes zwischen der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit und zu beschichtenden Oberflächen der Trägersubstrate umfasst.
20. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -18, dadurch gekennzeichnet, dass die Trägersubstrate in der Halterung im wesentlichen horizontal gelagert sind.
21. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -20, dadurch gekennzeichnet, dass das Flüssigkeitsbehältnis, abgesehen von optionalen Einlassen für Gas und optionalen zusätzlichen Auslässen für Gas und / oder Nebel, geschlossen ist.
22. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -21, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um niederviskose Flüssigkeiten mit einer Viskosität von weniger als 3 cP handelt.
23. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -22, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um wässrige Lösungen handelt.
24. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -22, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um organische Lösungen handelt.
25. Apparatur nach Anspruch 24, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um alkoholische Lösungen handelt.
26. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -25, dadurch gekennzeichnet, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate im wesentlichen planar sind.
27. Apparatur nach einem der Ansprüche 1 -26, dadurch gekennzeichnet, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate aus einer oder mehreren Schichten bestehen.
28. Verfahren zur Beschichtung von Trägersubstraten zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren, dadurch gekennzeichnet, dass besagte zu beschichtende Trägersubstrate in eine Halterung einer Beschichtungsapparatur nach einem der Ansprüche 1 — 40 eingelegt werden, in dem Flüssigkeitsbehältnis besagter Beschichtungsapparatur enthaltene Flüssigkeit vernebelt wird und aus dem erzeugten Nebel eine Abscheidung von in der vernebelten Flüssigkeit enthaltenenen Stoffen (Verbindungen) auf den zu beschichtenden Trägersubstraten erfolgt, wobei sich die Trägersubstrate in keinem Kontakt zur Oberfläche der zu vernebelnden
Flüssigkeit befinden.
29. Verfahren nach Anspruch 28, dadurch gekennzeichnet, dass besagter Aktuator der Erzeugung von Ultraschall dient.
30. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 29, dadurch gekennzeichnet, dass der Aktuator besagter Beschichtungsapparatur die Membran eines Ultraschall-Generators umfasst und die Vernebelung von Flüssigkeit mittels darin erzeugter Ultraschallwellen geschieht.
31. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 30, dadurch gekennzeichnet, dass der Aktuator besagter Beschichtungsapparatur im Betriebszustand in zu vernebelnde Flüssigkeit eingetaucht ist.
32. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 31, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtungsapparatur zusätzlich einen Tropfenabscheider umfasst, welcher den Kontakt von Spritzern und grossen Tropfen aus der zu vernebelnden Flüssigkeit mit den zu beschichtenden Trägersubstraten verhindert.
33. Verfahren nach Anspruch 32, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider besagter Beschichtungsapparatur für Dampfund Nebel undurchlässig ist.
34. Verfahren nach Anspruch 32, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider besagter Beschichtungsapparatur für Tropfen bis zu einer definierten Grosse durchlässig ist.
35. Verfahren nach Anspruch 33, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider besagter Beschichtungsapparatur die Form eines konkaven Spiegels hat.
36. Verfahren nach Anspruch 34, dadurch gekennzeichnet, dass der Tropfenabscheider besagter Beschichtungsapparatur ein feinmaschiges Netz umfasst, mit dessen Maschenabstand die maximale Grosse durchzulassender Tropfen festgelegt wird.
37. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 — 36, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtungsapparatur zusätzlich mindestens einen Gas-Einlass umfasst, über den ein Gas in das Flüssigkeitsbehältnis eingelassen wird, welches Gas sich mit dem erzeugten Nebel vermischt.
38. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 37, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Erzeugung einer gleichmässigen Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate umfasst.
39. Verfahren nach Anspruch 38, dadurch gekennzeichnet, dass mithilfe eines Ventilators eine gleichmässige Verteilung des erzeugten und auf den Trägersubstraten abzuscheidenden Nebels in der Umgebung besagter Trägersubstrate erzeugt wird.
40. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 -39, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung der Temperatur der zu vernebelnden Flüssigkeit und / oder einzelner oder aller Wände des Flüssigkeitsbehältnisses umfasst und die Temperatur der zu vernebelnden Flüssigkeit und / oder einzelner oder aller Wände des Flüssigkeitsbehältnisses während des Beschichtungsprozesses kontrolliert und / oder variiert wird.
41. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 -40, dadurch gekennzeichnet, dass die Halterung der Beschichtungsapparatur zur Aufnahme und / oder Lagerung der Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses thermostatisiert wird.
42. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 41, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur Kontrolle und / oder Regelung des Drucks innerhalb des Flüssigkeitsbehältnisses während des Beschichtungsprozesses umfasst und der Druck während des Beschichtungsprozesses kontrolliert und / oder variiert wird.
43. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 -42, dadurch gekennzeichnet, dass die Trägersubstrate während des Beschichtungsprozesses um eine Achse senkrecht zur Halterungsebene rotiert werden.
44. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 43, dadurch gekennzeichnet, dass an den Wänden des Flüssigkeitsbehältnisses abgeschiedene Flüssigkeit aufgefangen und zu der zu vernebelnden Flüssigkeit zurückgeführt wird.
45. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 44, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtungsapparatur zusätzlich Vorkehrungen zur kontrollierten Einstellung und / oder Variation des Abstandes zwischen der Oberfläche der zu vernebelnden Flüssigkeit und zu beschichtenden Oberflächen der Trägersubstrate umfasst und damit ein wohldefinierter Abstand zwischen besagter Flüssigkeit und den zu beschichtenden Flüssigkeitsoberflächen für den Zeitraum des Beschichtungsprozesses eingestellt wird.
46. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 45, dadurch gekennzeichnet, dass die Trägersubstrate der Beschichtungsapparatur in der Halterung im wesentlichen horizontal gelagert werden.
47. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 46, dadurch gekennzeichnet, dass das Flüssigkeitsbehältnis der Beschichtungsapparatur, abgesehen von optionalen Einlassen für Gas und optionalen zusätzlichen Auslässen für Gas und / oder Nebel, geschlossen ist.
48. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 47, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um niederviskose Flüssigkeiten mit einer Viskosität von weniger als 3 cP handelt.
49. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 48, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um wässrige Lösungen handelt.
50. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 49, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um organische Lösungen handelt.
51. Verfahren nach Anspruch 50, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den zu vernebelnden Flüssigkeiten um alkoholische Lösungen handelt.
52. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 51, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtung der Trägersubstrate geometrisch strukturiert unter Verwendung von auf den zu beschichtenden Trägersubstraten aufgebrachten Masken erfolgt.
53. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 — 52, dadurch gekennzeichnet, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate im wesentlichen planar sind.
54. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 53, dadurch gekennzeichnet, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate aus einer oder mehreren Schichten bestehen.
55. Verfahren nach Anspruch 54, dadurch gekennzeichnet, dass mindestens eine Schicht der zu beschichtenden Trägersubstrate in der Ausbreitungsrichtung eines eingestrahlten Anregungslichts oder Messlichts im wesentlichen optisch transparent ist.
56. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 55, dadurch gekennzeichnet, dass die zu beschichtenden Trägersubstrate den Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Afϊlnitäts-Nachweisverfahren mittels Detektion einer oder mehrerer angeregter Lumineszenzen ermöglichen.
57. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 56, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei der auf den Trägersubstraten abgeschiedenen Schicht um eine Haftvermittlungsschicht handelt.
58. Verfahren nach Anspruch 57, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Haftvermittlungsschicht eine Dicke von weniger als 200 nm, bevorzugt von weniger als 20 nm hat.
59. Verfahren nach einem der Ansprüche 57 - 58, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Haftvermittlungsschicht eine chemische Verbindung aus den Gruppen umfasst, welche Silane, funktionalisierte Silane, Epoxide, funktionalisierte, geladene oder polare Polymere und "selbstorganisierte passive oder funktionalisierte Mono- oder Mehrfachschichten", Thiole, Alkylphosphate und -phosphonate, multifunktionelle Block-Copolymere, wie beispielsweise Poly(L)lysin/Polyethylenglycole, umfassen.
60. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 59, dadurch gekennzeichnet, dass auf der Oberfläche der Trägersubstrate ein oder mehrere spezifische Bindungspartner zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts-Nachweisverfahren (unter Bindung des Bindungspartners aus einer zugeführten Lösung an den immobilisierten Bindungspartner) immobilisiert sind.
61. Verfahren nach Anspruch 60, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den auf der Oberfläche besagter Trägersubstrate immobilisierten spezifischen Bindungspartnern um den einen oder die mehreren Analyten selbst handelt, welche eingebettet in eine native Probenmatrix oder in einer mit einem oder mehreren Aufbereitungsschritten modifizierten Form der Probenmatrix immobilisiert sind.
62. Verfahren nach Anspruch 60, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den auf der Oberfläche besagter Trägersubstrate immobilisierten spezifischen Bindungspartnern um biologische oder biochemische oder synthetische Erkennungselemente zur spezifischen Erkennung eines oder mehreren in einer zugeführten Probe befindlicher Analyten handelt.
63. Verfahren nach einem der Ansprüche 60 - 62, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Bindungspartner, d.h. die selbst immobilisierten nachzuweisenden oder in einer zugeführten Probe nachzuweisenden Analyten und / oder deren immobilisierte oder in einem zugefuhrten Nachweisreagens zugeführte biologische oder biochemische oder synthetische Erkenuungselemente ausgewählt sind aus der Gruppe, welche Proteine, beispielsweise mono- oder polyklonale Antikörper und Antikörperfragmente, Peptide, Enzyme, Glycopeptide, Oligosaccharide, Lektine, Antigene für Antikörper, mit zusätzlichen Bindungsstellen funktionalisierte Proteine („Tag-Proteine", wie beispielsweise „Histidin-Tag-Proteine") sowie Nukleinsäuren (beispielsweise DNA, RNA, Oligonukleotide) und Nukleinsäureanaloge (z. B. PNA), Aptamere, membrangebundene und isolierte Rezeptoren und deren Liganden, durch chemische Synthese erzeugte Kavitäten zur Aufnahme molekularer Imprints, natürliche und künstliche Polymere, etc. umfasst.
64. Verfahren nach einem der Ansprüche 60 - 63, dadurch gekennzeichnet, dass auf der Oberfläche besagter Trägersubstrate aufgebrachte spezifische Bindungspartner in diskreten Messbereichen (Spots) immobilisiert sind, welche eine beliebige Geometrie, beispielsweise kreisförmige, ovale, dreieckige, rechteckige, polygonartige Form etc. haben können, wobei ein einzelner Messbereich gleichartige oder unterschiedliche spezifische Bindungspartner enthalten kann.
65. Verfahren nach Anspruch 64 , dadurch gekennzeichnet, dass zwischen den räumlich getrennten Messbereichen oder in unbesetzten Teilbereichen innerhalb dieser Messbereiche gegenüber den Analyten und / oder gegenüber seinen Bindungspartnern "chemisch neutrale" Verbindungen aufgebracht sind, vorzugsweise beispielsweise bestehend aus den Gruppen, welche Albumine, insbesondere Rinderserumalbumin oder Humanserumalbumin, Casein, unspezifische, polyklonale oder monoklonale, artfremde oder empirisch für den oder die nachzuweisenden Analyten und deren Bindungspartner unspezifische Antikörper (insbesondere für Immunoassays), Detergentien - wie beispielsweise Tween 20 -, nicht mit zu analysierenden Polynukleotiden hybridisierende, fragmentierte natürliche oder synthetische DNA, wie beispielsweise Extrakte von Herings- oder Lachssperma (insbesondere für Polynukleotid-Hybridisierungsassays), oder auch ungeladene, aber hydrophile Polymere, wie beispielsweise Polyethylenglycole oder Dextrane, umfassen.
66. Verfahren nach einem der Ansprüche 28 - 64, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei der auf den Trägersubstraten abgeschiedenen Schicht um eine Passivierungsschicht handelt, welche zwischen den räumlich getrennten Messbereichen oder in unbesetzten Teilbereichen innerhalb dieser Messbereiche gegenüber den Analyten und / oder gegenüber seinen Bindungspartnern "chemisch neutrale" Verbindungen nach der Erzeugung dieser Messbereiche aufgebracht wird und vorzugsweise beispielsweise Verbindungen umfasst aus den Gruppen, welche Albumine, insbesondere Rinderserumalbumin oder Humanserumalbumin, Casein, unspezifische, polyklonale oder monoklonale, artfremde oder empirisch für den oder die nachzuweisenden Analyten und deren Bindungspartner unspezifische Antikörper (insbesondere für Immunoassays), Detergentien — wie beispielsweise Tween 20 -, nicht mit zu analysierenden Polynukleotiden hybridisierende, fragmentierte natürliche oder synthetische DNA, wie beispielsweise Extrakte von Herings- oder Lachssperma (insbesondere für Polynukleotid-Hybridisierungsassays), oder auch ungeladene, aber hydrophile Polymere, wie beispielsweise Polyethylenglycole oder Dextrane, umfassen.
67. Trägersubstrat zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affmitäts- Nachweisverfahren umfassend eine Haftvermittlungsschicht, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Haftvermittlungsschicht mit einem Beschichtungsverfahren nach einem der Ansprüche 28 - 66 erzeugt wird.
68. Trägersubstrat zum Nachweis eines oder mehrerer Analyten in einem Affinitäts- Nachweisverfahren umfassend eine das Trägersubstrat zumindest in Teilbereichen bedeckende Passivierungsschicht, dadurch gekennzeichnet, dass besagte Passivierungssschicht mit einem Beschichtungsverfahren nach einem der Ansprüche 28 - 66 erzeugt wird.
69. Trägersubstrat nach einem der Ansprüche 67 - 68 zur Anwendung in der Human- und / oder Tierdiagnostik.
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ES (1) ES2525324T3 (de)
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Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2485564A (en) * 2010-11-18 2012-05-23 Rolls Royce Plc Luminescent surface coating for inspection
EP2726852B1 (de) 2011-06-30 2020-11-25 Koninklijke Philips N.V. Mehrfache untersuchungen einer probe
WO2015105114A1 (ja) 2014-01-10 2015-07-16 コニカミノルタ株式会社 イムノアッセイ法およびイムノアッセイシステム
DE102014112625A1 (de) * 2014-09-02 2016-03-03 Schmid Energy Systems Gmbh Großflächen-Ultraschallverdampfer
US10703843B2 (en) 2014-12-08 2020-07-07 University Of Virginia Patent Foundation Compositions and methods for bonding glues, adhesives, and coatings to surfaces
CH712376A1 (de) 2016-04-19 2017-10-31 Camag Derivatisierungsgerät und -verfahren.
CN106198952A (zh) * 2016-07-01 2016-12-07 清华大学 一种抑制核酸分子对传感界面非特异性吸附的封闭方法
CN107807133A (zh) * 2017-11-08 2018-03-16 苏州安路特汽车部件有限公司 一种雾化渗透探伤装置
CN115147617B (zh) * 2022-09-06 2022-11-22 聊城集众环保科技有限公司 基于计算机视觉的污水处理智能监控方法
CN115837944A (zh) * 2023-02-16 2023-03-24 太原理工大学 一种电厂烟气注入采空区防灾封存的气体监测装置

Family Cites Families (34)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3514847A (en) * 1966-05-10 1970-06-02 Gen Dynamics Corp Process for making photoconductive matrices
EP0134215B1 (de) 1982-08-27 1989-10-25 EKINS, Roger Philip Messung der analytkonzentration
JPS5955367A (ja) * 1982-09-21 1984-03-30 Tdk Corp 静電防止剤塗布装置
JPS6146028A (ja) * 1984-08-10 1986-03-06 Fujitsu Ltd レジスト塗布装置
US5807755A (en) 1987-08-06 1998-09-15 Multilyte Limited Determination of ambient concentrations of several analytes
GB8803000D0 (en) 1988-02-10 1988-03-09 Ekins Roger Philip Determination of ambient concentrations of several analytes
JPH01115450A (ja) * 1987-10-28 1989-05-08 Seiko Epson Corp 潤滑層の形成方法
US5143854A (en) 1989-06-07 1992-09-01 Affymax Technologies N.V. Large scale photolithographic solid phase synthesis of polypeptides and receptor binding screening thereof
JPH03296460A (ja) * 1990-04-13 1991-12-27 Fujitsu General Ltd フラックス塗付装置
FR2669246A1 (fr) * 1990-11-16 1992-05-22 Centre Nat Rech Scient Procede sol-gel de depot de couches minces par pulverisation ultrasonore.
JPH05506314A (ja) * 1991-02-11 1993-09-16 バイオスター・メディカル・プロダクツ・インコーポレイテッド 生物学的結合の光学的検出に使用する試験表面の製造方法
JPH06134367A (ja) * 1992-04-10 1994-05-17 Murata Mfg Co Ltd 電子部品の外装構造
IT1271969B (it) * 1993-03-04 1997-06-10 Mario Bonzi Dispositivo per la umidificazione ed ionizzazione dell'aria
GB9326450D0 (en) 1993-12-24 1994-02-23 Multilyte Ltd Binding assay
JPH10501616A (ja) 1994-05-27 1998-02-10 ノバルティス アクチエンゲゼルシャフト 漸減励起された発光を検出するための方法
DE69637315T2 (de) 1995-05-12 2008-08-28 Novartis Ag Verfahren zur parallelen bestimmung mehrerer analyten mittels evaneszent angeregter lumineszenz
WO1997002856A1 (fr) 1995-07-10 1997-01-30 A & D Company, Limited Atomiseur pratique
KR0144065B1 (ko) 1995-08-30 1998-08-01 배순훈 히터식 초음파 가습기
US6143063A (en) * 1996-03-04 2000-11-07 Symetrix Corporation Misted precursor deposition apparatus and method with improved mist and mist flow
WO1998009156A1 (en) 1996-08-29 1998-03-05 Novartis Ag Optical chemical / biochemical sensor
US6045864A (en) * 1997-12-01 2000-04-04 3M Innovative Properties Company Vapor coating method
US6406921B1 (en) 1998-07-14 2002-06-18 Zyomyx, Incorporated Protein arrays for high-throughput screening
CA2371011C (en) 1999-04-28 2009-12-22 Eidgenossisch Technische Hochschule Zurich Polyionic coatings in analytic and sensor devices
EP1207955A1 (de) * 1999-08-27 2002-05-29 Picogram, Inc. Verfahren und vorrichtung zur durchführung von operationen an geladenen mikro-orten
US6510263B1 (en) 2000-01-27 2003-01-21 Unaxis Balzers Aktiengesellschaft Waveguide plate and process for its production and microtitre plate
US20020064482A1 (en) 2000-02-02 2002-05-30 Tisone Thomas C. Method and apparatus for developing DNA microarrays
EP1272829A1 (de) 2000-04-14 2003-01-08 Zeptosens AG Gitter-wellenleiter-struktur zur verstärkung eines anregungsfeldes und deren verwendung
WO2001088511A1 (de) 2000-05-06 2001-11-22 Zeptosens Ag Gitter-wellenleiter-struktur für multianalytbestimmungen und deren verwendung
WO2002021110A1 (de) 2000-09-04 2002-03-14 Zeptosens Ag System und verfahren zur multianalytbestimmung
US20040052489A1 (en) 2001-04-02 2004-03-18 Duveneck Gert Ludwig Optical structure for multi-photon excitation and the use thereof
AU2002357547A1 (en) * 2001-12-13 2003-06-23 Zeptosens Ag Optically transparent substrate for a maldi measuring system and the use thereof
JP2005537486A (ja) 2002-09-03 2005-12-08 ツェプトゼンス アクチエンゲゼルシャフト 分析対象物が試料中で固定化された特異的結合パートナーとして測定される分析プラットフォーム及び検出法
DE10320312A1 (de) * 2003-05-06 2004-12-02 Friz Biochem Gmbh Substrat als Träger von Ligaten
JP4318978B2 (ja) * 2003-07-29 2009-08-26 独立行政法人科学技術振興機構 高分子固定化基板の製造方法およびこの方法により得られる高分子固定化基板

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
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