EP1181058A2 - Vakzine gegen konformationsabhängige antigene sowie gegen antigene, die keine oder nicht ausschliesslich proteine oder peptide sind - Google Patents

Vakzine gegen konformationsabhängige antigene sowie gegen antigene, die keine oder nicht ausschliesslich proteine oder peptide sind

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EP1181058A2
EP1181058A2 EP00951201A EP00951201A EP1181058A2 EP 1181058 A2 EP1181058 A2 EP 1181058A2 EP 00951201 A EP00951201 A EP 00951201A EP 00951201 A EP00951201 A EP 00951201A EP 1181058 A2 EP1181058 A2 EP 1181058A2
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EP
European Patent Office
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peptides
antigen
conformation
dna
sequences
Prior art date
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Withdrawn
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EP00951201A
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English (en)
French (fr)
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Steffen Goletz
Uwe Karsten
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Max Delbrueck Centrum fuer Molekulare in der Helmholtz Gemeinschaft
Original Assignee
Max Delbrueck Centrum fuer Molekulare in der Helmholtz Gemeinschaft
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Publication date
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    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53—DNA (RNA) vaccination

Definitions

  • Vaccine against conformation-dependent antigens as well as against antigens that are not or not exclusively proteins or peptides
  • the invention relates to naczines against conformation-dependent antigens and against antigens which are not or not exclusively proteins or peptides. Furthermore, the invention relates to methods for their preparation and their use and human anti-idiotypic antibody fragments against the MUCl conformation epitope and amino acid sequences of mimicry peptides against the MUCl conformation epitope and antiidiotypic antibody fragments against the TF antigen and amino acid sequences of mimicry peptide hydrides against the tep antigen .
  • Target structures of vaccines against pathogens of infectious diseases and non-infectious diseases, including tumors can be proteins or peptides, carbohydrates or lipids, and combinations of these.
  • the immunogenic determinant can be determined either by the sequence of the amino acids of a section of the molecule (sequence epitope) or by a certain spatial arrangement of binding forces that does not correspond to the linear arrangement of the amino acids (conformation epitope). Conformation epitopes are more common than sequence epitopes; Mixed forms also occur.
  • Conformation epitopes and antigens that are not or not exclusively proteins or peptides are difficult to convert into an effective and practicable vaccine. Conformation epitopes usually only develop in the native protein and not in shorter peptides. Antigens that are not or not exclusively proteins or peptides, such as glycostructures or lipids, are not very immunogenic. Their synthesis is often complex. A particularly serious circumstance is that in many cases these antigens are not properly presented to the immune system. An effective antigen presentation is, among other things, a prerequisite for the development of cytotoxic T lymphocytes, i.e. for an effective cellular defense. Finally, the very effective form of DNA vaccination is not applicable to these antigens.
  • DNA vaccination instead of a protein or peptide antigen, the coding DNA sequence is injected intramuscularly or intradermally as a vaccine, as such or packed into a vector.
  • a vaccine as such or packed into a vector.
  • an effective humoral response and cellular response can be achieved (Wolff J.A. et al., Science 247: 1465, 1990; Ulmer, JB et al, Vaccine 12: 1541, 1994; Raz, E. et al., Cancer Res. 52: 1954, 1992).
  • a particularly successful method is the so-called "Prime Boost Protocol” (Keystone Symposia: DNA-Vaccines, April 12-17, 1999, Snowbird, Utah, USA, conference proceedings), in which the intradermal, intramuscular or intrarectal injection of a DNA (Priming), followed by a booster with the corresponding antigen.
  • a corresponding recombinant virus vector particle for example fowlpox, adeno or alpha virus-derived constructs
  • the "prime boost” process is known to result in a strong cellular immune response with the activation of specific cytotoxic T cells, which is particularly desirable in the case of tumor vaccines.
  • the immune response can be significantly enhanced by additional administration of suitable cytokines, also in the form of DNA, of immunostimulatory CpG-DNA motifs (non-methylated cytosine guanine dinucleotides) or of suitable adjuvants (eg aluminum phosphates).
  • suitable cytokines also in the form of DNA
  • immunostimulatory CpG-DNA motifs non-methylated cytosine guanine dinucleotides
  • suitable adjuvants eg aluminum phosphates
  • the object of the invention is to circumvent the disadvantages mentioned above and to develop a vaccine, in particular a DNA vaccine, even for those cases which have not been accessible to a corresponding vaccination.
  • the invention is implemented according to the claims. It relates, on the one hand, to a method by which the field of application of vaccination, in particular DNA vaccination, to conformation-dependent antigens and mixed forms, these also fall within the scope of the invention under the concept of conformation epitopes, and antigens, the relevant epitopes of which, or not exclusively, proteins or Peptides are, for example carbohydrates, combined carbohydrate-peptide epitopes, lipids, glycolipids, expanded and the disadvantages listed above can thus be avoided. According to the invention, this takes place by means of a detour via a peptide (mimicry peptide) which immunologically depicts the original epitope (the antigen determinant) but which has a different amino acid sequence.
  • a detour via a peptide (mimicry peptide) which immunologically depicts the original epitope (the antigen determinant) but which has a different amino acid sequence.
  • the mimicry peptide is preferably prepared using the methods of the phage display or ribosome display known per se (Scott J.K. and Smith, GP Science, 249: 386, 1990; Winter, G. et al., Annu Rev Immunol, 12: 433, 1994; HanesJ. Et al, Proc Natl Acad Sei USA, 95: 14130, 1998), either as a shorter peptide from peptide libraries or in the form of an anti-idiotypic antibody fragment from corresponding libraries.
  • the third, but more complex method is the generation of anti-idiotypic antibodies using hybridoma technology.
  • the common goal of the three methodological variants mentioned is to "rewrite" the original conformational epitope or the epitope, which is not or not exclusively a protein or peptide, into an immunologically corresponding sequence epitope, which enables better immunological presentation and is suitable for DNA vaccination is.
  • the vaccines in particular the DNA vaccines, can be used not only in the form of the example described (Prime Boost protocol), but also in comparable variants and in the form of the DNA vaccine alone or the mimicry structures alone in appropriately suitable formulations .
  • the invention relates to vaccines against conformation-dependent antigens.
  • the relevant conformation epitopes are "rewritten" with the aid of the phage display or ribosome display method into an immunologically corresponding sequence epitope imitating the conformation epitope.
  • the primary reagents used are molecules that specifically bind the target antigen in its desired conformation, e.g. Antibodies, antibody fragments or receptors.
  • Antibody fragments (anti-idiotypic antibody fragments, Ab2) or linear or circular peptides are obtained from the various gene libraries, which specifically bind the primary reagents and imitate the antigen immunologically.
  • anti-idiotypic antibodies are obtained using hybridoma technology and fragments are isolated if necessary. These mimicry peptides are rewritten into a DNA and used as a DNA vaccine.
  • One method is the so-called "Prime Boost Protocol", in which the intradermal, intramuscular or intrarectal injection of DNA (priming), in the form of a plasmid DNA, linear DNA or a plasmid replicon vector, from a booster with the corresponding antigen, alone, in the form of a chemical coupling to proteins, in the form of bacteriophages as fusion proteins with phage coat proteins on their surface, in the form of a fusion protein on the surface of other viruses or attenuated biological carriers or in the form of dendritic cells loaded with the peptide, is followed.
  • both the DNA and the expressed mimicry peptide are required, which is possible without any problems when using the phage display or ribosome display technology.
  • a corresponding recombinant virus vector particle e.g. fowlpox, adeno or alpha virus-derived constructs
  • the immune response can be significantly enhanced by the additional administration of suitable cytokines, also in the form of DNA, of immunostimulatory CpG-DNA motifs (non-methylated cytosine guanine dinucleotides) or of suitable adjuvants (e.g. aluminum phosphates).
  • the invention also relates to vaccines against antigens which are not or not exclusively proteins or peptides, according to claim 3.
  • a target antigen type of the group antigens which are not or not exclusively proteins or peptides are glycostructures, further immunogenic ones Structures are combined carbohydrate-protein epitopes, lipids, glycolipids or synthetic structures.
  • a method is known with which a monoclonal anti-idiotypic antibody is obtained with the help of hybridoma technology, which immunologically imitates pure carbohydrate structures.
  • a vaccine preferably a DNA vaccine, of this antibody or a suitable fragment thereof is used for the vaccination.
  • the present invention extends this method from DE196 27 352 AI in several points.
  • Antiidiotypic antibody fragments can be obtained directly from antibody gene libraries using the phage display technique or the ribosome display technique. With this method, human antibody fragments can also be obtained directly. Combined carbohydrate-peptide epitopes can also be used.
  • the invention also relates to vaccines, to the full extent as described for conformation-dependent antigens, against the antigens glycopeptides, glycolipids, lipids, synthetic structures or other antigens which are no or only partially proteins or peptides, the relevant epitopes having improved immunogenic structures, processes their manufacture and their use.
  • the approach of immunotherapy for tumor diseases assumes that it is possible to strengthen or activate the natural immune response.
  • the rationale for vaccination is to combat the residual disease (metastasis prophylaxis) after conventional therapy (eg surgical removal of the majority of the tumor cells).
  • Mimicry peptides immunologically mimic the original antigen or epitope. They do this as far as possible, but not one hundred percent. For the application in the context of a vaccine (in particular in the case of a tumor vaccine), this is to be seen rather positively in the sense that specifically inhibiting processes, for example tolerance phenomena, are avoided.
  • a widespread carcinoma antigen is the epithelial mucin, MUC1, whose immunodominant epitope occurs repeatedly in the extracellular part of the molecule.
  • This epitope forms a type I ß turn in its native state, but only on synthetic peptides under certain conditions, e.g. if the threonine in the immunodominant region is glycosylated with GalNAc ⁇ l-0-Thr or Galßl-3GalNAc ⁇ l-0-Thr ( Karsten, U., et al, Cancer Res. 58: 2541-2549, 1998).
  • This epitope is usually perceived by the immune system as a typical conformation epitope, cf.
  • Example 1 A widespread carcinoma antigen is the epithelial mucin, MUC1, whose immunodominant epitope occurs repeatedly in the extracellular part of the molecule.
  • This epitope forms a type I ß turn in its native state, but only on synthetic peptides under certain conditions, e.g. if the
  • this conformation epitope is imitated by means of the phage display technique by immunologically identical (or almost identical) sequence epitopes which are part of a tumor vaccine in the form of a DNA in a DNA vaccination vector (Example 1).
  • the invention therefore also relates to human anti-idiotypic antibody fragments against the MUCl conformation epitope and all DNA sequences which encode these fragments and protein sequences or DNA or partial protein sequences which can be derived from them and which have the corresponding properties.
  • Fragments containing the desired DNA of the scFv and the peptides were amplified using the PCR and then sequenced.
  • the numbering, e.g. Q33, corresponds to a certain isolated clone; the sequences of the different scFv are aligned with each other (alignment); the complete sequence of a clone can be read continuously for each clone across the different blocks)
  • R6 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
  • the invention furthermore also relates to amino acid sequences of mimicry peptides against the MUCl conformation epitope and all DNA sequences which code for these amino acid sequences, DNA and peptide and partial peptide sequences which are derived from them and which have the same properties.
  • Antigens that are not or not exclusively proteins or peptides e.g. carbohydrate antigens
  • carbohydrate antigens like conformational epitopes of proteins
  • the selection of mimicry peptides according to the invention by means of the phage display technique can lead to a "rewriting" of the antigen into a peptide sequence, which in turn enables the use of the DNA vaccination technique, cf.
  • Example 2
  • the invention also relates to protein sequences of anti-idiotypic antibody fragments against TF and amino acid sequences of mimicry peptides against the TF carbohydrate epitope and all DNA sequences which code these amino acid sequences and DNA and protein or peptide and partial sequences which are derived from them and which have the same properties.
  • mice were immunized ip with a suspension of living human breast carcinoma cells from the T-47D cell line (Keydar., Et al, Eur J Cancer, 15: 659, 1979) after treatment with neuraminidase (V.cholerae) without adjuvant.
  • X63-Ag8.653 (Kearney, JF, et al, J Immunol 123: 1548, 1979) served as the fusion cell line.
  • the hybridoma technology itself was carried out according to standard methods (for example Peters, HH, et al, "Monoclonal Antibodies, Production and Characterization", Berlin 1985; Friemel, H., "Immunological Working Methods", 4th edition, Jena 1991).
  • the specificity analysis of the monoclonal antibodies (mAb) produced by the hydridome cell lines was based on enzyme immunoassays with natural glycoproteins and synthetic peptides and glycopeptides, immunofluorescence analyzes with various cell lines and immunohistochemical tests on tissue sections.
  • the epithelial mucin, MUC1 was clearly identified as a specific antigen.
  • IgGl, k with a small proportion of IgM of the same specificity was determined as the isotype using a commercial isotyping kit (Pharmingen, San Diego, USA).
  • An epitope Mapping as part of the ISOBM TD-4 International Workshop on Monoclonal Antibodies against MUC1 (Tumor Biol. 19, SupplJ, 1998) defined the epitope as APDTRPAP.
  • the antibody binds only slightly to a single unit (a repeat), although it contains the epitope sequence.
  • Binding to non-glycosylated peptides depends on the length of the peptide, more precisely on the number of repeats lined up (Fig. La). It is known from the literature that the native conformation of the PDTRP motif only forms when the peptide length is more than 3 repeats (FontenotJ.D., Et al., J Biomol Struct Dyn 13: 245, 1995). - The binding of mAb A76-A / C7 to a single MUC1 unit (1 repeat) is greatly increased if it is glycosylated in the region of the epitope on the thr with GalNAc- or Galßl-3GalNAc (Fig. Lb; see also Karsten , U., et al., Cancer Res, 58: 2541, 1998).
  • the antibody was followed by ammonium sulfate precipitation
  • the one antibody gene library (Griffin 1 Library; http://www.mrc-cpe.cam.ac.uk/ ⁇ phage/) consists of more than 10 9 phages, each with different combinations of the variable regions of the heavy and light chains human Antibodies with partially randomized hypervariable regions, which are connected to a peptide piece (linker) and are covalently bound to a phage coat protein (pIII). It is derived from another antibody gene library (Griffiths, A. et al., 1994, EMBO j., 13: 3245-3260).
  • the second, smaller gene library consists of scFv with the same framework (single framework library), which was pre-selected for active folding of the antibody fragments by binding to protein L and protein A (I. Tomlinson, 9th anniverary conference: "Antibody engineering”, IBC -Conferences, SanDiego 1998; I.Tomlinson, 10th anniverary conference: "Antibody engineering", IBC-Conferences, SanDiego 1999; speaker abstract).
  • the first library comes from the Dr.G. Winter laboratory and the second from the Dr.I.Tomlinson laboratory (each MRC Center for Protein Engineering, Cambridge, UK).
  • the specific phages were selected in 2-3 rounds (phage panning) under Use of the proteolytic selection method with the helper phage KM 13 (Kristensen, P. and Winter, G., Folding & Design, 3: 321, 1998).
  • the purified monoclonal antibody A76-A / C7 (35 ⁇ g / ml in 4 ml), which was immobilized in a test tube (Immunotube, Nunc, Wiesbaden) overnight at 4 ° C. in PBS, served as antigen.
  • A76-A / C7 was incubated with the phages; the phages bound to the antibodies were obtained by magnetic beads with immobilized anti-IgG antibodies (Deutsche Dynal, Hamburg).
  • the phages specifically bound in the selection rounds were, after stringent washing steps (up to 20 times PBS / 0.1% Tween20 and then 20 times PBS), replaced by the tandem repeat (100 ⁇ g / ml; Biosynthan, Berlin-Buch) and then treated with trypsin (proteolytic selection method). Between the rounds of selection, the eluted phages in the bacteria were multiplied with helper phages and selected again.
  • the selection and testing was carried out as described for the generation of the anti-idiotypic antibodies. Analogously to this, additional linear and circular mimicry peptides were obtained with further peptide libraries. These are peptide libraries which were produced analogously to the peptide library described above.
  • the expressed peptides are linear peptides with 7 amino acids and circular peptides with 7 randomized amino acids, flanked by two cysteines (CX7C), circular peptides with 10 randomized amino acids, flanked by two cysteines (CX10C), and circular peptides with a total of 9 randomized amino acids, with two internal and two flanking cysteines (CX3CX3CX3C).
  • the form of the peptides and antibody fragments coupled to phages was used for the ELISA tests.
  • the anti-idiotypic svFv and the mimicry peptides can be divided into groups that: - bind only to A76-A / C7 to A76-A / C7 and to other MUC1 -specific antibodies that either only bind to the conformation epitope (in the Bind PDTR region glycosylated MUCl tandem repeat (type A) or their binding is greatly increased by the PDTR glycosylation of the MUC1 tandem repeat (conformational induction) (type B) to MUC1 -specific antibodies, which in addition to type A and B also MUC1 -specific antibodies bind, which bind glycosylated and unglycosylated MUC1 tandem repeats to the same extent (type D) have a strong binding to MUC1 -specific antibodies which are concerned with the glycosylation of the PDTR region of the MUC1 repeats to
  • the mimicry peptides and anti-idiotypic antibody fragments were also examined in ELISA inhibition tests to determine whether, in the form of the synthesized peptides or purified scFv (alone or coupled to phages), the binding of the A76-A / C7 to the glycosylated MUC1 peptide (im Inhibit epitope PDTR with GalNAc glycosylated tandem repeat) and non-glycosylated oligomers of the 20-mer tandem repeat specifically and concentration-dependent.
  • These experiments were carried out with streptavidin-coated microtest plates (BioTeZ, Berlin-Buch) and biotinylated MUC1 peptides (Biosynthan, Berlin-Buch; Fig. Lc) as well as with normal ELISA test plates, on which the MUC1 peptides were immobilized by drying .
  • mice of the Balb / c strain were intraperitoneally immunized with mimicry peptides and anti-idiotypic antibody fragments in the form of the synthesized peptides or purified scFv alone, each coupled to the KLH protein or coupled to bacteriophages in PBS, mixed with incomplete Freund's adjuvant. Mixtures of anti-idiotypic scFv phages or mimicry peptide phages from the different groups (see above) were used. Three weeks later, the same approach was used to boost without an adjuvant. The booster was repeated after 3 weeks and blood was drawn from the mice 10 days later.
  • the serum was tested in ELISA tests for antibodies that specifically recognize the conformation-dependent epitope of MUC1 (experimental setup as above).
  • the Mixtures of the anti-idiotypic scFv and the mimicry peptides generate a strong reaction against the conformation-dependent epitope of the MUC 1.
  • the antiidiotypic scFv were directionally cloned into a DNA vaccination vector.
  • the scFv were cut out of the phagemid vector by Sfil and Notl and cloned directionally into different DNA vaccination vectors which had previously been cleaved with the same enzymes.
  • a suitable vector here is the vector pVAC2 (I.Harmer et al., Keystone Symposium “DNA-Vaccines", Snowbird, USA, 1999; poster and poster abstract), which, after the scFv has been inserted into the DNA vaccination vector, is a fusion protein encoded from the antiidiotypical scFv with a tetanus toxoid, which acts as an adjuvant and enhances the immune response against the fused protein portion (C. King et al., 1998, Nat.Medicine 4: 1281-86).
  • the mimicry peptides were also cloned into various DNA vaccine vectors, which were cloned using the known method of PCR cloning, in which the sequences coding for the mimicry peptides were inserted into the DNA vaccination vectors using synthetic primers DNA vaccination vectors based on the pVAC2 produced, each coding for a fusion protein of the mimicry peptide with the tetanus toxoid, the DNA of the vaccination vector was multiplied according to methods known per se, cleaned and then injected into mice.
  • DNA vaccination vectors which encode anti-idiotypic scFv or mimicry peptides as fusion proteins with the tetanus toxoid, which come from the different groups with different binding patterns for MUC 1 -specific antibodies (see above), were used for the immunization. 50 ⁇ g or 200 ⁇ g of total DNA were used as the dose and administered intra-muscularly. Four weeks later, the same approach was used for the booster and the booster was repeated after 4 weeks and blood was drawn from the mice 10 days later. The serum was tested in ELISA tests for antibodies that specifically recognize the conformation-dependent epitope of MUC1 (experimental setup as above).
  • the immunization with the mixtures of the DNA vaccine vectors resulted in a strong humoral immune reaction against the conformation-dependent epitope of the MUC1 and a strong reaction against the tetanus toxoid both in the antiidiotypic scFv and in the mimicry peptides.
  • mice were used in the mouse tumor challenge model, which stably transfected with the cDNA of the transmembrane form of the human MUCl.
  • the MUCl-positive mouse cell lines express the conformation epitope of the MUCl, which was tested by immunological studies with the A76-A / C7.
  • Several strains of mice were used in the studies (Balb / c, DBA 2 and C57BL / 6).
  • the mice were injected subcutaneously with 10 6 to 10 7 tumor cells in 200 ⁇ l PBS near the peritoneum and the tumor growth (tumor size in mm) was measured over 20-30 days.
  • Prime Boost vaccination scheme :
  • a combination of DNA vaccination vectors (coding for scFv-tetanus toxoid or mimicry peptide-tetanus toxoid fusion protein) with two candidates from each of the 4 different groups of the anti-idiotypic-scFv or mimicry peptides were used for the immunizations (priming) .
  • the same combinations of the antiidiotypic scFv or mimicry peptides were used in their protein form in an incomplete Freund's adjuvant.
  • the scFv were purified by methods known per se by nickel chelate chromatography and the mimicry peptides were chemically coupled to KLH by methods known per se.
  • the same vaccination when subsequently injected with the same tumor cells without transfected MUCl, has an average tumor size of over 200 mm 2 (after 20 days).
  • the injection of MUCl-positive mouse tumor cell lines into mice without prior vaccination also results in strong tumor growth (> 200 mm 2 after 20 days).
  • An immunization and booster with the proteins of the antiidiotypic scFv or the mimicry peptides coupled to KLH without DNA vaccination vectors results in an immune response against the MUC1 tumor cells, but the tumor protection is many times less than with the prime boost protocol with the DNA Vaccination vectors.
  • mice were mixed with 100 ⁇ g asialoglycophorin (Sigma, Deisenhofen) in PBS, mixed with Freund's adjuvant , immunized intraperitoneally. After 24 h, 100 ⁇ g / kg body weight of cyclophosphamide in PBS i.p. administered. The booster was carried out after 2 weeks with 100 ⁇ g asialoglycophorin.
  • X63-Ag8.653 was used as the fusion cell line (Kearney, J.F., et al., J Immunol 123: 1548, 1979).
  • the hybridoma technique was carried out according to standard methods (e.g. Peters, H.H., et al., "Monoclonal Antibodies, Production and Characterization", Berlin 1985; Friemel, H., “Immunological Working Methods", 4. AufL, Jena 1991).
  • the specificity analysis of the monoclonal antibodies produced by the hydridoma cell lines was based on enzyme immunoassays with natural glycoproteins, synthetic peptides and glycopeptides, glycolipids and neoglycolipids and synthetic polyacrylamide-carbohydrate conjugates, absorption analyzes on synthetic carbohydrate conjugates (Synsorb, Edmontonomensomenom, cellulite analysis, Chemondomedomensol, cellulite analysis, Chemondomedomedomone, Chemontomedomelizone, Chemondomedomensol, cellulite analysis, Synmont, cellulosomal enzyme analysis) as well as immunohistochemical studies on tissue sections.
  • the tumor-associated carbohydrate epitope Thomsen-Friedenreich (TF) was clearly identified as a specific antigen:
  • TFß which can occur on the glycan chains of glycolipids, as well as other carbohydrate structures, peptide or lipid components are not bound.
  • A78-G / A7 binds highly specifically to various carcinoma cell lines in immunofluorescence studies and to various carcinomas in histochemical Investigations.
  • the isotype IgM, k was determined for the A78-G / A7 using a commercial isotyping kit (Pharmingen, San Diego, USA).
  • A78-G / A7 was isolated from cell culture supernatants by means of ammonium sulfate precipitation, followed by affinity chromatography on a ProteinG affinity matrix to remove unwanted IgG antibodies from the calf serum and finally by affinity chromatography using a goat anti-mouse Ig affinity matrix (percellulose, BioTeZ , Berlin-Buch) cleaned (Dr.G.Butschak).
  • the one antibody gene library consists of more than 10 10 phages, each with different combinations of the variable regions of the heavy and light chains of human antibodies with partially randomized hypervariable regions, which are linked to a piece of peptide (linker) and covalently linked to a phage coat protein (pIII) are bound. It is derived from another antibody gene library (Griffiths, A. et al., 1994, EMBO J., 13: 3245-3260).
  • the second, smaller gene library consists of scFv, which were pre-selected for active folding of the antibody fragments.
  • the first library comes from the Dr.G.
  • the purified antibody was incubated with the phages; the phages bound to the antibody were obtained by magnetic beads with immobilized anti-IgM antibodies (Deutsche Dynal, Hamburg).
  • the phages specifically bound in the selection rounds (3 h at RT) became specific after stringent washing steps (up to 20 times PBS / 0.1% Tween20 and then 20 times PBS) by the TF-bearing glycoprotein asialoglycophorin (100-165 ⁇ g / ml) eluted and then partially treated with trypsin (proteolytic selection method).
  • the eluted phages in the bacteria were propagated with helper phages and selected again. Two to three rounds of selection were carried out. Identification of peptides using a peptide gene library that specifically mimic the Thomsen-Friedenreich antigen
  • Example for the generation of anti-idiotypic antibodies was in several rounds of selection from a peptide gene library (. Oligino, L, et al, J Biol Chem 272: 29046, 1997) has coupled to the phage coat protein pIII 10 7 different short peptides, specifically binding peptides obtained (in collaboration with Dr. H. Gollasch, Robert-Rössle-Klinik, Berlin-Buch).
  • the peptides expressed are randomized nonapeptides flanked by two cysteines and thus circularized, which increases stability and affinity.
  • the selection and testing was carried out as described in the generation of the anti-idiotypic antibodies.
  • the potential mimicry peptides and anti-idiotypic antibody fragments were examined in ELISA inhibition tests to determine whether they specifically inhibit the binding of the A78-G / A7 and / or other TF-recognizing antibodies and lectins to the disaccharide TF ⁇ .
  • the glycoprotein asialoglycophorin carrying the TF ⁇ was immobilized on ELISA plates by drying, and the binding of the monoclonal antibodies and lectins was inhibited by the mimicry peptides or anti-idiotypic antibody fragments in the form of the synthesized peptides or purified scFv alone or coupled to phages in a concentration-dependent manner (Fig. 2).
  • mice of the Balb / c strain and the NMRI strain were immunized intraperitoneally with mimicry peptides and anti-idiotypic antibody fragments in the form of the synthesized peptides or purified scFv alone, each coupled to the KLH protein or coupled to bacteriophages in PBS, mixed with complete Freund's adjuvant. Three weeks later, the same approach was used to boost without an adjuvant. The booster was repeated after 3 weeks and blood was drawn from the mice 10 days later. The serum was examined in ELISA tests for antibody bindings against the Thomsen-Friedenreich antigen. Vaccination with TF-mimicking peptides in a mouse tumor model
  • the mouse colon carcinoma cell line C-26 was in the medium RPMI 1640 with
  • Tumor model 10 cells of the syngeneic colon carcinoma cell line C-26 s.c. transplanted, in two variants: a) untreated and b) pretreated with neuraminidase from V.cholerae (Serva, Heidelberg) (TF positive). The tumor size was determined externally at weekly intervals. After 3 weeks, the animals were sacrificed and the liver was prepared to determine the number of metastases visible on the surface of the liver.
  • Vaccination The vaccination of the mice was started 6 weeks before the tumor transplant.
  • the phage preparation or the purified scFv (and corresponding controls) were emulsified 1: 1 with incomplete Freund's adjuvant and i.p. injected. Four weeks later there was a boost (without adjuvant). After a further 2 weeks, the tumor transplantation (tumor challenge) was carried out with untreated and neuraminidase-treated C-26 cells.
  • Culture supernatant of the A76-A / C7 (diluted 1:80) was preincubated with the scFv phages purified by polyethylene glycol precipitation in the indicated concentrations (volume percentage of adjusted phage solutions in PBS) for one hour and then added to the MUCl glycopeptide plate for 2 hours .
  • the detection was carried out using an anti-mouse POD antibody (Dako).
  • the scFv phages Q6, Q7 and Q8 are examples of anti-idiotypic scFv, while Q4 and Q10 are examples of control scFv that bind the A78-A / C7 but are not anti-idiotypic scFv.
  • A78-G / A7 binding to asialoglycophorin by scFv phages The asialoglycophorin (A-GP) was immobilized on the ELISA plate by drying (25ng / well) and then blocked with 30% FCS in RPMI. Culture supernatant of the A78-G / A7 (diluted 1:20) was pre-incubated for one hour with the scFv phages purified by polyethylene glycol precipitation in the stated concentrations (volume percentage of adjusted phage solutions in PBS) and then for 2 hours on the A-GP plate given. The detection was carried out using an anti-mouse POD antibody (Dako).
  • the scFv phages P9, P13, P16, P3 and K3 are examples of antiidiotypic scFv, while P8 and Ql are examples of control scFv, of which P8 binds the A78-G / A7 but is not an antiidiotypical scFv and Ql Is phage that does not bind the A78-G / A7.

Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren, das es erlaubt, die hocheffektive Technologie der Vakzinierung mittels Desoxyribonukleinsäure (DNA) nicht nur auf Sequenzepitope von Proteinen oder Peptiden, sondern auch auf Konformationsepitope anzuwenden. Dieses Verfahren ermöglicht darüber hinaus die Nutzung der DNA-Vakzinierung auch bei solchen Antigenen, die keine oder nur teilweise Proteine oder Peptide sind. Die bevorzugte erfindungsgemässe Vakzine enthält als wesentlichen Bestandteil eine Desoxyribonukleinsäure (DNA), die eine Peptidsequenz kodiert, welche ihrerseits die immunologische Imitation (Mimikry) eines konformationsabhängigen Antigens einschliesslich Protein-Konformationsepitope oder eines Antigens, das kein oder nur teilweise Protein oder Peptid ist, darstellt. Das Mimikry-Peptid, das ebenfalls Teil der erfindungsgemässen Vakzine ist oder sein kann, ist entweder ein antiidiotypischer Antikörper, ein Antikörperfragment, ein daraus abgeleitetes Peptid oder ein durch Selektion aus einer Peptid-Genbank erhaltenes spezifisch bindendes Peptid. Anwendungsgebiete der Erfindung sind die medizinische und die veterinärmedizinische Immunologie, darunter die adjuvante Therapie von Tumorerkrankungen.

Description

Vakzine gegen konformationsabhängige Antigene sowie gegen Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind
Beschreibung
Die Erfindung betrifft Nakzinen gegen konformationsabhängige Antigene sowie gegen Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind. Desweiteren betrifft die Erfindung Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung sowie humane antiidiotypische Antikörperfragmente gegen das MUCl-Konformationsepitop und Aminosäuresequenzen von Mimikry-Peptiden gegen das MUCl-Konformationsepitop sowie antiidiotypische Antikörperfragmente gegen das TF-Antigen und Aminosäuresequenzen von Mimikry-Peptiden gegen das TF-Kohlenhydratepitop.
Zielstrukturen von Vakzinen gegen Erreger infektiöser Erkrankungen und nicht infektiöser Erkrankungen, einschließlich Tumoren, können Proteine bzw. Peptide, Kohlenhydrate oder Lipide, sowie Kombinationen aus diesen sein. Bei Proteinen bzw. Peptiden kann die immunogene Determinante (Epitop) entweder durch die Sequenz der Aminosäuren eines Abschnitts des Moleküls (Sequenzepitop) oder durch eine bestimmte räumliche Anordnung von Bindungskräften, die nicht der linearen Anordnung der Aminosäuren entspricht, bestimmt sein (Konformationsepitop). Konformationsepitope sind häufiger als Sequenzepitope; Mischformen kommen ebenfalls vor.
Konformationsepitope und Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, sind nur schwer in eine wirksame und praktikable Vakzine umzusetzen. Konformationsepitope bilden sich in der Regel nur im nativen Protein und nicht in kürzeren Peptiden aus. Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, wie beispielsweise Glykostrukturen oder Lipide, sind wenig immunogen. Ihre Synthese ist oft aufwendig. Ein besonders schwerwiegender Umstand ist, daß diese Antigene dem Immunsystem in vielen Fällen nicht richtig präsentiert werden. Eine effektive Antigenpräsentation ist aber unter anderem eine Voraussetzung für die Entstehung zytotoxischer T-Lymphozyten, d.h. für eine wirksame zelluläre Abwehr. Schließlich ist die sehr wirksame Form der DNA- Vakzinierung auf diese Antigene nicht anwendbar.
Bei der DNA- Vakzinierung (genomischen Vakzinierung) wird anstelle eines Protein- oder Peptidantigens die kodierende DNA-Sequenz als solche oder in einen Vektor verpackt intramuskulär oder intradermal als Vakzine injiziert. Auf diese Weise kann eine effektive humorale Antwort und zelluläre Antwort erreicht werden (WolffJ.A. et al., Science 247:1465, 1990; Ulmer,J.B. et al, Vaccine 12:1541, 1994; Raz,E. et al., Cancer Res. 52: 1954, 1992). Ein besonders erfolgreiches Verfahren ist das sog. "Prime-Boost-Protocol" (Keystone Symposia: DNA-Vaccines, 12.-17.4.99, Snowbird, Utah, USA, Konferenzband), bei dem die intradermale, intramuskuläre oder intrarektale Injektion einer DNA (Priming), von einer Boosterung mit dem korrespondierenden Antigen gefolgt wird. Für die Boosterung kann auch ein entsprechendes rekombinantes Virus- Vektorpartikel (z.B. Fowlpox-, Adeno- oder Alphavirus- abgeleitete Konstrukte) erfolgreich eingesetzt werden. Das "Prime-Boost" -Verfahren führt bekannterweise zu einer starken zellulären Immunantwort mit der Aktivierung spezifischer zytotoxischer T Zellen, die im Falle von Tumorvakzinen besonders erwünscht ist. Deutlich verstärkt werden kann die Immunantwort durch zusätzliche Gabe von geeigneten Cytokinen, ebenfalls in Form einer DNA, von immunstimulatorischen CpG-DNA-Motiven (nichtmethylierte Cytosin-Guanin- Dinukleotide) oder von geeigneten Adjuvantien (z.B. Aluminiumphosphaten).
Die Aufgabe der Erfindung besteht darin, die oben genannten Nachteile zu umgehen und eine Vakzine, insbesondere eine DNA- Vakzine, auch für die Fälle zu entwickeln, die einer entsprechenden Vakzinierung bisher nicht zugänglich sind.
Die Erfindung wird gemäß den Ansprüchen realisiert. Sie betrifft zum einen ein Verfahren, mit dem der Anwendungsbereich der Vakzinierung, insbesondere der DNA- Vakzinierung auf konformationsabhängige Antigene und Mischformen, diese fallen im Sinne der Erfindung ebenfalls unter den Begriff der Konformationsepitope, sowie Antigene, deren relevante Epitope keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, z.B. Kohlenhydrate, kombinierte Kohlenhydrat-Peptidepitope, Lipide, Glykolipide, erweitert wird und somit die oben aufgeführten Nachteile umgangen werden können. Dies geschieht erfindungsgemäß auf dem Umweg über ein das ursprüngliche Epitop (die Antigen- Determinante) immunologisch abbildendes, aber in seiner Aminosäuresequenz verschiedenes Peptid (Mimikry-Peptid). Dabei wird das Mimikry-Peptid vorzugsweise mit Hilfe der an sich bekannten Methoden des Phagen-Displays oder Ribosomen-Displays (ScottJ.K. und Smith,G.P. Science, 249:386, 1990; Winter,G. et al, Annu Rev Immunol, 12:433, 1994; HanesJ. et al, Proc Natl Acad Sei USA, 95:14130, 1998) gewonnen, und zwar entweder als kürzeres Peptid aus Peptid-Genbanken oder in Form eines antiidiotypischen Antikörperfragments aus entsprechenden Genbanken. Als dritte, allerdings aufwendigere Methode kommt die Gewinnung antiidiotypischer Antikörper mittels der Hybridomtechnik in Frage. Das gemeinsame Ziel der drei genannten methodischen Varianten ist, das ursprüngliche Konformationsepitop oder das Epitop, das kein oder nicht ausschließlich ein Protein oder Peptid ist, in ein immunologisch entsprechendes Sequenzepitop "umzuschreiben", das eine bessere immunologische Präsentation ermöglicht und für eine DNA- Vakzinierung geeignet ist. Erfindungsgemäß können die Vakzinen, insbesondere die DNA- Vakzinen nicht nur in Form des beschriebenen Beispiels (Prime-Boost-Protokoll), sondern, auch in vergleichbaren Varianten und in Form der DNA- Vakzine allein oder der Mimikry- Strukturen allein in entsprechend geeigneten Formulierungen eingesetzt werden.
Außerdem betrifft die Erfindung Vakzinen gegen konformationsabhängige Antigene gemäß Anspruch 1. In dem erfindungsgemäßen Verfahren werden dabei die relevanten Konformationsepitope mit Hilfe der Phagen-Display- oder Ribosomen-Display-Methode in ein immunologisch entsprechendes und das Konformationsepitop imitierendes Sequenzepitop "umgeschrieben". Als primäre Reagenzien dienen dabei Moleküle, die das Zielantigen in seiner gewünschten Konformation spezifisch binden, z.B. Antikörper, Antikörperfragmente oder Rezeptoren. Aus den verschiedenen Genbibliotheken werden so Antikörperfragmente (antiidiotypische Antikörperfragmente, Ab2) oder lineare oder zirkuläre Peptide gewonnen, die die primären Reagenzien spezifisch binden und das Antigen immunologisch imitieren. Alternativ werden antiidiotypische Antikörper mit Hilfe der Hybridomtechnik gewonnen und gegebenenfalls Fragmente daraus isoliert. Diese Mimikry-Peptide werden in eine DNA umgeschrieben und als DNA- Vakzine eingesetzt. Ein Verfahren ist dabei das sog. "Prime-Boost-Protocol", bei dem die intradermale, intramuskuläre oder intrarektale Injektion einer DNA (Priming), in Form einer Plasmid- DNA, linearen DNA oder eines Plasmid-Replikon- Vektors, von einer Boosterung mit dem korrespondierenden Antigen, alleine, in Form einer chemischen Kopplung an Proteine, in Form von Bakteriophagen als Fusionsproteine mit Phagenhüllproteinen auf deren Oberfäche, in Form eines Fusionsproteins auf der Oberfläche anderer Viren oder attenuierter biologischer Träger oder in Form mit dem Peptid beladener dendritischer Zellen, gefolgt wird. In diesem Fall werden sowohl die DNA als auch das exprimierte Mimikry-Peptid benötigt, was bei Anwendung der Phagen-Display- bzw. Ribosomen- Display-Technik problemlos möglich ist. Alternativ kann für die Boosterung ein entsprechendes rekombinantes Virus- Vektorpartikel (z.B. Fowlpox-, Adeno- oder Alphavirus- abgeleitete Konstrukte) erfolgreich eingesetzt werden. Die Immunantwort kann deutlich durch die zusätzliche Gabe von geeigneten Cytokinen, ebenfalls in Form einer DNA, von immunstimulatorischen CpG-DNA-Motiven (nichtmethylierte Cytosin-Guanin- Dinukleotide) oder von geeigneten Adjuvantien (z.B. Aluminiumphosphaten) verstärkt werden.
Die Erfindung betrifft neben Vakzinen gegen konformationsabhängige Antigene auch Vakzinen gegen Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, gemäß Anspruch 3. Ein Zielantigentyp der Gruppe Antigene die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, sind Glykostrukturen, weitere, immunogene Strukturen sind kombinierte Kohlenhydrat-Proteinepitope, Lipide, Glykolipide oder synthetische Strukturen.
Aus DE 196 27 352 AI ist ein Verfahren bekannt, mit dem ein monoklonaler antiidiotypischer Antikörper mit Hilfe der Hybridomtechnik gewonnen wird, der reine Kohlenhydratstrukturen immunologisch imitiert. Erfindungsgemäß wird ausgehend von diesem antiidiotypischen Antikörper wird eine Vakzine, bevorzugt eine DNA- Vakzine dieses Antikörpers oder eines geeigneten Fragmentes davon für die Vakzinierung verwendet. So erweitert die vorliegende Erfindung dieses Verfahren aus DE196 27 352 AI in mehreren Punkten. Es können antiidiotypische Antikörperfragmente direkt aus Antikörper-Genbibliotheken mittels der Phagen-Display-Technik oder der Ribosomen- Display-Technik gewonnen werden. Mit Hilfe dieses Verfahrens können direkt auch humane Antikörperfragmente gewonnen werden. Darüber hinaus können auch kombinierte Kohlenhydrat-Peptidepitope angewendet werden. Hinzu kommt weiter ein Verfahren, mit dem kurze lineare oder zirkuläre Peptide, die das Antigen immunologisch imitieren (sogenannte Mimikry-Peptide), aus Peptid-Genbibliotheken, ebenfalls mittels der Phagen- Display-Technik oder der Ribosomen-Display-Technik, gewonnen werden können. Dabei dienen nicht nur spezifische idiotypische Antikörper (Abi), sondern auch andere Substanzen, die die Glykostruktur spezifisch erkennen, wie z.B. Lektine oder Rezeptoren, als primäre Reagenzien zur Selektion dieser imitierenden Strukturen. Das Verfahren schließt weiterhin die Verwendung dieser gewonnenen Strukturen bevorzugt als DNA- Vakzine ein, allein oder in Kombination mit den das Antigen immunologisch imitierenden Antikörpern, Antikörperfragmenten oder Peptiden in einer geeigneten Formulierung (siehe oben und Ansprüche), beispielsweise in der Formulierung des Prime-Boost-Protokolls. Außerdem können gemäß der Erfindung die imitierenden Proteinstrukturen auch alleine zur Vakzinierung verwendet werden.
Die Erfindung betrifft auch Vakzine, im vollen Umfang wie für konformationsabhängige Antigene beschrieben, gegen die Antigene Glykopeptide, Glykolipide, Lipide, synthetische Strukturen oder weitere Antigene, die keine oder lediglich teilweise Proteine oder Peptide sind, wobei die relevanten Epitope verbesserte immunogene Strukturen aufweisen, Verfahren ihrer Herstellung und ihre Verwendung.
Der Ansatz einer Immuntherapie bei Tumorerkrankungen geht davon aus, daß es möglich ist, die natürliche Immunantwort zu verstärken oder zu aktivieren. Die Rationale einer Vakzinierung besteht in der Bekämpfung der Residualerkrankung (Metastasenprophylaxe) nach einer konventionellen Therapie (z.B. chirurgischer Entfernung der Hauptmenge der Tumorzellen). Mimikry-Peptide imitieren definitionsgemäß immunologisch das ursprüngliche Antigen bzw. Epitop. Sie tun dies weitestgehend, aber nicht hundertprozentig. Dies ist für den Anwendungsfall im Rahmen einer Vakzine (im besonderen bei einer Tumorvakzine) eher positiv in dem Sinne zu sehen, daß spezifisch inhibierende Prozesse, z.B. Toleranzphänomene, umgangen werden.
Voraussetzung für die Entwicklung definierter Tumorvakzinen ist nicht nur das Vorhandensein tumorspezifischer Antigene, sondern auch ihre Kenntnis. Auf diesem Gebiet sind in den letzten drei Jahrzehnten große Fortschritte erzielt worden, nicht zuletzt durch die Entwicklung monoklonaler Antikörper.
Ein weitverbreitetes Karzinomantigen ist das epitheliale Muzin, MUC1, dessen immundominantes Epitop in vielfacher Wiederholung auf dem extrazellulären Teil des Moleküls vorkommt. Dieses Epitop bildet im nativen Zustand einen Typ-I-ß-Turn aus, an synthetischen Peptiden allerdings nur unter bestimmten Bedingungen, z.B., wenn das Threonin der immundominanten Region mit GalNAcαl-0-Thr oder Galßl-3GalNAcαl-0- Thr glykosyliert ist (Karsten,U., et al, Cancer Res.58:2541-2549, 1998). Dieses Epitop wird vom Immunsystem in der Regel als typisches Konformationsepitop wahrgenommen, vgl. Beispiel 1. Erfindungsgemäß wird dieses Konformationsepitop mittels der Phagen-Display- Technik durch immunologisch identische (oder nahezu identische) Sequenzepitope imitiert, die in Form einer DNA in einem DNA-Vakzinierungsvektor Bestandteil einer Tumorvakzine sind (Beispiel 1).
Gegenstand der Erfindung sind deshalb auch humane antiidiotypische Antikörperfragmente gegen das MUCl-Konformationsepitop sowie alle DNA Sequenzen, die diese Fragmente kodieren, und Proteinsequenzen oder DNA- o. Proteinteilsequenzen, die von diesen abgeleitet werden können und die die entsprechenden Eigenschaften aufweisen.
Bevorzugt handelt es sich um die folgenden humanen antiidiotypischen Antikörperfragmente gegen das MUCl-Konformationsepitop mit den folgenden Sequenzen Nr. I bis 31.
Fragmente, die die gewünschte DNA der scFv und der Peptide enthalten, wurden mit Hilfe der PCR vermehrt und anschließend sequenziert.
(Die Bezifferung, z.B. Q33, entspricht einem bestimmten isolierten Klon; die Sequenzen der verschiedenen scFv sind gegeneinander ausgerichtet (Alignment); die komplette Sequenz eines Klones ist für jeden Klon durchgehend über die verschiedenen Blöcke zu lesen)
Nr .1 : Q33 EVQL ESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSSIQRHGT TGY Nr .2 : Ql .3 EVQLLESGEG VQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSSINYNGDATSY Nr.3 Q12 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLE VSTINAAGAQTGY
Nr. 4: Q4 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSRIGQKGNKTTY
Nr. 5: R2 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSRITQSGTYTQY
Nr. 6: Q15 EVQLLESGEG VQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSSINAFGQSTRY
Nr 7: RIO EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKG EWVSGINASGTLTRY
Nr 8: Q5 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSSISDTGSATTY
Nr 9: N6 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLE VSNISDAGCATYY
Nr 10: Q32 EVQLLESGEG VQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKG E VSTIHSAGQETIY
Nr 11: R6 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSYITTNGSTTSY
Nr 12: Q9.3 EVQLLESGGGLVQPGGSLR SCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLE VSYITTNGSTTSY
Nr 13: Q24 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYA SWVRQAPGKGLEWVSSITTSGGDTAY
Nr 14: Q3.1 EVQLLESGEG VQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSYINASGASTSY
Nr 15: Q25 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSTITSSGQQTFY
Nr 16: N2 EVQLLESGEGLVQPGGS R SCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEVA/SSIYSQGPVT Y
Nr 17: Q3.3 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSGISTSGSYTTY
Nr 18: Q21 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSTINGLGTPTAY
Nr 19: N4 EVQLLESGEGLVQPGGSLR SCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSTIQTSGRDTTY
Nr 20: R3 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYA S VRQAPGKGLE VSAITQYGGDTGY
Nr 21: Q2 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSTISNLGQPTHY
Nr .22: Q30 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSTISNLGQ THY
Nr 23: Q16 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSTIDPMGQSTNY
Nr .24: R5 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSAITNTGQWTTY
Nr .25: Q26 EVQ LESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSTIQSVGTYTVY
Nr .26: Q34 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSTIPATGQRTFY Nr .27 : Q6.1 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSSISRTGKVTDY Nr .28 : Ql .2 EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSAIEAGGGETTY Nr .29 : R4 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSGIRPQGHPTQY Nr .30 : Nl EVQL ESGEG VQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSAIRPPGQTTQY Nr .31 : R7 EVQLLESGEGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLE VSQIQENGVTTTY
Q33 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKRNGEFDYWGQGTLVTVSSGGGG
Ql .3 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSSSTFDYWGQGTLVTVSSGGGG
Q12 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKTGTNFDYWGQGTLVTVSSGGGG
Q4 ADSVKGRFTISRDNSKNT YLQMNSLRAEDTAVYYCAKKSHDFDY GQGTLVTVSSGGGG
R2 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKGLSRFDY GQGTLVTVSSGGGG
Q15 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKYDHSFDYWGQGTLVTVSSGGGG
Rl0 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSAKSFDYWGQGTLVTVSSGGGG Q5 ADSVKGRFTI SRDNSKNT YLQMNSLRAEDTAVYYCAKNYYDFDYRGQGTLVTVSSGGGG
N6 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKNSCGFDY GQGTLVTVSSGGGG
Q32 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKTLLGFDY GQGTLVTVSSGGGG
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Q25 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKRARPFDYWGQGTLVTVSSGGGG
N2 ADSVKGRFTISRDNSKNT YLQMNS RAEDTAVYYCARHS PFDYWGQGTLVTVSSGGGG
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N4 AD S VKGRFT I SRDNS KNTLYLQMNS LRAEDTAVY CAKRSQRFD YWGQGT VTVS S GGGG
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R5 ADS VKGRFT I S RDNS KNTLYLQMNS LRAEDTAVYYCAKAGQNFDYWGQGTLVTVS SGGGG
Q26 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKRHNPFDY GQGTLVTVSSGGGG
Q34 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKTASPFDY GQGTLVTVSSGGGG
Q6 . 1 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKKMTSFDY GQGTLVTVSSGGGG
Q1 . 2 AD S VKGRFT I SRDNS KNTLYLQMNS LRAEDTAVYYCAKATTTFDYWGQGTLVTVS SGGGG
R4 ADSVKGGFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKRPPPFDYWGQGTLVTVSSGGGG
Nl ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKTASVFDY GQGTLVTVSSGGGG
R7 ADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAIYYCAKERLQFDY GQGTLVTVSSGGGG
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Ql . 3 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDGVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
Q12 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
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Q15 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
RI O SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
Q5 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
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R6 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
Q9 . 3 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI Q24 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
Q3.1 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
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R5 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLI
Q26 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
Q34 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
Q6.1 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
Ql .2 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
R4 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGEAPKLLI
Nl SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
R7 SGGGGSGGGGSTDIQMTQSPPSLSASVGDRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLI
Q33 YSASTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQNSTIPRTFGQGTKVEIKR
Ql .3 YSASTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQTSNSPATFGQGTKVEIKR
Q12 YSASALQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQTNTDPATFGQGTKVEIKR
Q4 YRASDLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQP DPPRMFGQGTKVΞIKR
R2 YHASFLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQPWEPPRTFGQGTKVEIKR
Q15 YAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQPWLPPRTFGQGTKVEIKR
RIO YNASMLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQTLLWPLTFGQGTKVEIKR
Q5 YDASTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQGTASPSTFGQGTKVEIKR
N6 YNASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQYTGNPATFGQGTKVEIKR
Q32 YAAS LQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQYSGHPSTFGQGTKVEIKR
R6 YSASYLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQTSANPYTFGQGTKVEIKR
Q9.3 YSASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQNGATPNTFGQGTKVEIKR
Q24 YAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQSSATPGTFGQGTKVEIKR
Q3.1 YSASTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQSGSAPATFGQGTKVEIKR
Q25 YAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQSYSTPNTFGQGTKVEIKR
N2 YAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQSYSTPNTFGQGTKVEIKR
Q3.3 YAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQSYSTPNTFGQGTKVEIKR Q21 YAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQSYSTPNTFGQGTKVEIKR
N4 YAASHLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQQGQTPVTFGQGTKVEIKR
R3 YYASNLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQNSFTPYTFGQGTKVEIKR
Q2 YDASFLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRPPTTFGQGTKVEIKR
Q30 YDASFLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRPPITFGQGTKVEIKR
Q16 YDASKLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRNPGTFGQGTKVEIKR
R5 YDASFLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRGPGTFGQGTKVEIKR
Q26 YDASFLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRGPGTFGQGTKVEIKR
Q34 YSASRLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRQPGTFGQGTKVEIKR
Q6.1 YDASNLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRQPGTFGQGTKVEIKR
Ql .2 YDASNLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQDTRPPVTFGQGTKVEIKR
R4 YDASVLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQRRTYPPTFGQGTKVEIKR
Nl YGASVLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQHLNYPLTFGQGTKVEIKR
R7 YDASNLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQFGNYPRTFGQGTKVEIKR
Gegenstand der Erfindung sind weiterhin auch Aminosäurensequenzen von Mimikry- Peptiden gegen das MUCl-Konformationsepitop sowie alle DNA Sequenzen, die diese Aminosäuresequenzen kodieren, DNA und Peptid- sowie Peptidteilsequenzen, die von diesen abgeleitet werden und die die gleichen Eigenschaften aufweisen.
Insbesondere handelt es sich um die Aminosäurensequenzen von Mimikry-Peptiden mit den folgenden Sequenzen Nr. 32 bis 47.
(Die Bezifferung, z.B. Sl, entspricht einem bestimmten isolierten Klon; die Sequenzen der verschiedenen Peptide sind gegeneinander ausgerichtet)
Nr.32: Sl CEYYDVPMARC
Nr.33: S12 CDYPSRLIDLC
Nr.34: Rol CGLACERPCGWVC
Nr .35 : Rθ5 CLGGCERPCMYSC
Nr.36: Rol3 CRGRCGEWCSRPC
Nr.37: Ro6 CRGRCDQRCSRPC
Nr.38: Rol2 CPARCGVPCAMGC
Nr.39: VI1 CIPHRHDGC
Nr.40: V4 CQPHRYDKSLPC
Nr.41: VI0 CTTRLLNEDGSC
Nr.42: U7 LHGPLWD Nr.43: U10 LHGPLGM
Nr.44: U6 LHGPL E
Nr.45: U7a LHGPL DGAAGAETVES
Nr.46: UlOa LHGPLGMGPLGPKLLKV
Nr.47: U6a LHGPL EGPLGPKLLKV
Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind (z.B. Kohlenhydrat-Antigene) werden, ähnlich wie Konformationsepitope von Proteinen, vom Immunsystem als dreidimensionale Muster von Ladungen und anderen molekularen Wechselwirkungen wahrgenommen und unterliegen wie diese Einschränkungen bei der Generierung einer zellulären Immunantwort. Auch in diesen Fällen kann die erfindungsgemäße Selektion von Mimikry-Peptiden mittels der Phagen-Display-Technik zu einem "Umschreiben" des Antigens in eine Peptid-Sequenz führen, die wiederum die Anwendung der DNA-Vakzinierungstechnik ermöglicht, vgl. Beispiel 2.
Gegenstand der Erfindung sind auch Protein- Sequenzen antiidiotypischer Antikörperfragmente gegen TF sowie Aminosäurensequenzen von Mimikry-Peptiden gegen das TF-Kohlenhydratepitop sowie alle DNA Sequenzen, die diese Aminosäuresequenzen kodieren und DNA sowie Protein- bzw. Peptid- sowie -teilsequenzen, die von diesen abgeleitet werden und die die gleichen Eigenschaften aufweisen.
Insbesondere handelt es sich um die folgenden Protein-Sequenzen antiidiotypischer Antikörperfragmente gegen TF mit den Sequenzen Nr. 48 bis 71.
Nr. 48 - >H16
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSMIDGSGSQTYYADSVKGRFTISRDN
SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSDLDFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG
DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYAASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ
SYSTPNTFGQGTKVEIKR
Nr. 49 - >P3
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSSISYSGATTNYADSVKGRFTISRDN
SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSDASFDYWGQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG
DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYDASSLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ
DYGGPTTFGQGTKVEIKR
Nr. 50 - >P8 EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSTISATGGSTYYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAVDTAVYYCAKSSDGFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYSASNLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ ASSAPATFGQGTKVEIKR
Nr. 51 - >H6
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLE VSTISAQGLTTTYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKGRSSFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ RKLLP TFGQGTKVEIKR
Nr. 52 - >H1
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSVJVRQAPGKGLE VSSITELGRSTQYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKPWPHFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ AARRPTTFGQGTKVEIKR
Nr. 53 - >H13
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSKISELGRNTSYADSVKGRFTISRDN
SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKDITAFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG
DRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ
SMRMPPTFGQGTKVEIKR
Nr. 54 - >K3
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSAIQWSGEST YADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSTSSFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLIYDASLLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ RRHTPTTFGQGTKVEIKR
Nr. 55 - >K3
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSAIQ SGESTWYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSTSSFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLIYDASLLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ RRHTPTTFGQGTKVEIKR
Nr.56 - >K4
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSGIQFSGQGTRYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKTLSTFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQITQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYRASHLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ
GYRQPTTFGQ
GTKVEIKR
Nr. 57 - >K2
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLE VSSIRPLGSATQYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSNMAFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ TTRPPTTFGQGTKVEIKR
Nr. 58 - >J6
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMS VRQAPGKGLEWVSDISEQGARTMYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKSTPAFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLNWYQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ MNNKPNTFGQGTKVEIKR
Nr. 59 - >E3
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSQITGLGSQTRYADSVKGRFTISRDN
SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKGETAFDYWGQGTLVTVSSGGGGSGDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRAS
QSISSYLNWYQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQRQQRPSTFGQ
GTKVEIKR
Nr. 60 - >K1
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLE VSNITQMGMTTAYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKGEQTFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ RRTHPQTFGQGTKVEIKR
Nr. 61 - >E5
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSAISQTGTRTKYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAKGSASFDY GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGGGSTDIQMTQSPSSLSASVG DRVTITCRASQSISSYLN YQQKPGKAPKLLIYGASGLQSGVPTRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQ VTTHPNTFGQGTKVEIKR
Nr. 62 - >K2+
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYAMSWVRQAPGKGLEWVSAISGSGGSTYYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCARQVKS TRWGQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGSALSSELTQDPAVSVALGQT VRITCRGDSLRSYYAS YQQKPGQAPVLVIYGKNNRPSGIPDRFSGSSSGNTASLTITGAQAEDEADYYCNSRD SSGNHYVFGGGTKLTVLG
Nr. 63 - >K4+
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYSMN VRQAPGKGLE VSAISGSGGSTYYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMDSLRAEDTAVYYCARGRRKQDKSTR GQGTLVTVSSGEGGSGGGGSGGSALSSELTQDPAVSVAL GQTVRITCQGSLRSYYAS YQQKPGQAPVLVIYGKNNRPSGIPDRFSGSSSGNTASLTITGAQAEDEADYYCNS RDSSGSSSVFGGGTKLTVLG
Nr. 64 - >K4-
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYSMNWRQAPGKGLEWVSAISGSGGSTYYADSVKGRFTISRDN SKNTLYLQMDSLRAEDTAVYYCARGRRKQDKSTR GQGTLVTVSGSGGGGSGGSALSSELTQDPAVSVALGQTV RITCQGDSLRSYYAS YQQKPGQAPVLVIYGKN RPSGIPDRFSGSSSGNTASLTITGAQAEDEADYYCNSRDS SGSSSVFGGGTKLTVLG
Nr. 65 - >K9+
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSSYEMNWVRQAPGKGLE VSYISSSGSTIYYADSVKGRFTISRDN
AKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARDPFHP GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGSALSSELIQDPAVSVALGQTVR
ITCQGDSLRSYYASWYQQKPGQAPVLVIYGKNNRPSGIPDRFSGSSSGNTASLTITGAQAEDEADYYCNSRDSS
GTVFGGGTKLTVLG
Nr. 66 - >K1+
QVQLQESGPGLVKPSETLSLTCWSGGSISSSN SWVRQPPGKGLE IGEIYHSGSPNYSPSLKSRATISVDK
SKNQFSLKLSSVTAADTAVYYCARQDMTQQTS GQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGSALQSVLTQPPSASGTPGQ
RVTISCSGSSSNIGSNYVYWYQQLPGTAPKLLIYRNNQRPSGVPDRFSGSKSGTSASLAISGLRSEDEADYYCA
AWDDSLRNLVFGEGTKLTVLG
Nr . 67 - >K3 +
QVQLQESGPGLVKPSETLSLTCWSGGSISSSNWWSWVRQPPGKGLEWIGEIYHSGSPNYSPSLKSRATISVDK
SKNQFSLKLSSVTAADTAVYYCARQDMTQQTSWGQGTLVTVSSGEGGSGEGGSGGSALQSVLTQPPSASGTPGQ
RVTISCSGSSSNIGSNYVY YQQLPGTAPKLLIYRNNQRPSGVPDRFSGSKSGTSASLAISGLRSEDEADYYCA
A DDSLRNLVFGEGTKLTVL
Nr . 68 - >ZA4
QVQLQESGPGLVKPSGTLSLTCAVSGGSISSSNW S VRQP
PGKGLE IGEIYHSGSTNYNPSLKSRVTISVDKSKNQFSLKLSSVTAADTAVYYCARDDK
GGWGQGTLVTVSSGGGGSGGGGSGGSALQSVLTQPPSASGTPGQRVTISCSGSSSNIGSN
TVNWYQQLPGTAPKLLIYSNNQRPSGVPDRFSGSKSGTSASLAISGLQSEDEADYYCAAW
DDSLRSLVFGGGTKLTVLG Nr. 69 - >ZA36
QVQLQESGPGLVKPSGTLSLTCAVSGGSISSSN WS VRQPPGKGLEWIGEIYH
SGSTNYNPSLKSRVTISVDKSKNQFSLKLSSVTAADTAVYYCARPSSI GQGTLVTVSSG
GGGSGGGGSGGSALQSVLTQPPSASGTPGQRVTISCSGSSSNIGSNYVY YQQLPGTAPK
LLIYRNNQRPSGVPDRFSGSKSGTSASLAISGLRSΞDEADYYCAAWDDSLRSLVFGGGTK
LTVLG
Nr. 70 - >ZA14
QVQLQESGPGLVKPSGTLSLTCAVSGGSISSSN SWVRQPPGKGLEWIGEIYHS
GSTNYNPSLKSRVTISVXKSKNQFSLKLSSVTAXDTAVYYCARPSHHAGTHTWGQGTLVT
VSSGGGGSGGGGSGGSALQSVLTQPPSASGTPGQRVTISCSGSSSNIGSNTVN YQQLPG
TAPKLLIYSNNQRPSGVPDRFSGSKSGTSASLAISGLQSEDEADYYCAA DDSLRALVFG
GGTKLTVLG
Nr. 71 - >Z9
QVQLQESGAGLLKPSETLSLTCAVYGGSFSGYYWS IRQPPGKGLEWIGEINHSGS
TNYNPSLKSRVTISVDTSKNQFSLKLSSVTAADTAVYYCARKGLNFGPWGQGTLVTVSSG
GGGSGGGGSGGSALQSVLTQPPSASGTPGQRVTISCSGSSSNVGSNTVNWYQQLPGTAPK
LLIYSNNQRPSGVPDRFSGSKSGTSASLAISGLQSEDEADYYCAAWDDSLRSYVFGGGTK
LTVLG
Desweiteren handelt es sich um die Aminosäurensequenzen von Mimikry-Peptiden gegen das TF-Kohlenhydratepitop mit den folgenden Sequenzen Nr. 72 bis 96 .
(Die Bezifferung, z.B. Sl, entspricht einem bestimmten isolierten Klon)
Nr.72: Tl CLREGHFASFC
Nr.73: T14 CGMLTPAWIKC
Nr.74: T4 CETFSNLAFLC
Nr.75: T7 CEGPEIPAFVC
Nr.76: T3 CESMVEPAWVC
Nr.77: T15 CTNDIMPP VC
Nr.78: T2 CDGLLLPI AC
Nr.79: TU CAGEFVPV AC
Nr.80: T16 CDLGLKPAWLC
Nr.81: X3 CGPMCSGSCVPQC
Nr.82: X9 CDAGCNFFCPWRC Nr.83: X2 CGPMCSGSCXPQC
Nr.84: Y8 VW WQ S
Nr.85: Yl M RPFWL
Nr.86: Y4 PP VXHL
Nr.87: Y9 LIPQWIV
Nr.88: 4 CTPADMSGC
Nr.89: 3 CTPADMSGC
Nr.90: W16 CPSV MLDLGPC
Nr.91: 15 CHGGLTPLC
Nr.92: 8 CGPMMLWHW
Nr.93: W5 CTRHIHWGNAH
Nr.94: 14 CTPADMSGW
Nr.95: AI CFRGGPWWSLC
Nr.96: A2 CAVRT VISEC
Die Erfindung wird durch Ausführungsbeispiele näher erläutert, soll jedoch auf diese Beispiele nicht beschränkt werden.
Ausführungsbeispiele
Beispiel 1
Herstellung der Hybridomzellinie A76-A/C7 und von Antikörpern
Balb/c-Mäuse wurden mit einer Suspension lebender menschlicher Mammakarzinomzellen der Zellinie T-47D (Keydar ., et al, Eur J Cancer, 15:659, 1979) nach Behandlung mit Neuraminidase (V.cholerae) ohne Adjuvans i.p. immunisiert. Als Fusionszellinie diente X63-Ag8.653 (Kearney, J.F., et al, J Immunol 123:1548, 1979). Die Hybridomtechnik selbst wurde nach Standardmethoden (z.B. Peters,H.H., et al, "Monoklonale Antikörper, Herstellung und Charakterisierung", Berlin 1985; Friemel, H., "Immunologische Arbeitsmethoden", 4.Aufl., Jena 1991) durchgeführt. Die Spezifitätsanalyse der von den Hydridomzellinien produzierten monoklonalen Antikörper (mAk) basierte auf Enzymimmunoassays mit natürlichen Glykoproteinen und synthetischen Peptiden und Glykopeptiden, Immunfluoreszenzanalysen mit diversen Zellinien sowie immunhistochemischen Untersuchungen an Gewebsschnitten. Für den mAk A76-A/C7 wurde das epitheliale Muzin, MUC1, als spezifisches Antigen eindeutig bestimmt. Als Isotyp wurde IgGl, k, mit einem kleinen Anteil von IgM der gleichen Spezifität mit Hilfe eines kommerziellen Isotyping Kit (Pharmingen, San Diego, USA) ermittelt. Ein Epitop- Mapping im Rahmen des ISOBM TD-4 International Workshop on Monoclonal Antibodies against MUC1 (Tumor Biol. 19, SupplJ, 1998) definierte das Epitop als APDTRPAP.
Weitere Untersuchungen unter Benutzung synthetischer, glykosylierter und nicht glykosylierter Peptide zeigten, daß das Epitop des mAk A76-A/C7 in starkem Maße durch seine Konformation bestimmt wird:
Der Antikörper bindet nur geringfügig an eine einzelne Einheit (ein Repeat), obgleich diese die Epitopsequenz enthält.
Die Bindung an nicht glykosylierte Peptide ist von der Länge des Peptids, genau genommen von der Zahl der aneinandergereihten Repeats, abhängig (Abb. la). Aus der Literatur ist bekannt, daß sich die native Konformation des PDTRP-Motivs erst bei einer Peptidlänge von mehr als 3 Repeats ausbildet (FontenotJ.D., et al., J Biomol Struct Dyn 13:245, 1995). - Die Bindung des mAk A76-A/C7 an eine einzelne MUC1 -Einheit (1 Repeat) wird stark erhöht, wenn diese im Bereich des Epitops am Thr mit GalNAc- oder Galßl- 3GalNAc-glykosyliert ist (Abb. lb; siehe auch Karsten,U., et al., Cancer Res, 58:2541, 1998).
Der Antikörper wurde mittels Ammoniumsulfatfällung gefolgt von einer
Affinitätschromatographie an ProteinA-Sepharose gereinigt.
Gewinnung von humanen rekombinanten Antikörperfragmenten, die das konformationsabhängige Epitop des MUC1 imitieren, aus Antikörper-Genbibliotheken mit Hilfe der Phagen-Display-Technik
Es wurden zwei verschiedene synthetische Antikörper-Genbibliothek verwendet, die humane single-chain Antikörperfragmente (scFv) darstellen. Die eine Antikörper- Genbibliothek (Griffin 1 Library; http://www.mrc-cpe.cam.ac.uk/~phage/) besteht aus mehr als 109 Phagen mit jeweils verschiedenen Kombinationen der variablen Regionen der schweren und leichten Ketten humaner Antikörper mit zum Teil randomisierten hypervariablen Regionen, welche mit einem Peptidstück (Linker) verbunden sind und kovalent an ein Phagenhüllprotein (pIII) gebunden sind. Sie leitet sich aus einer anderen Antikörper-Genbibliothek ab (Griffiths,A. et al., 1994, EMBO j., 13: 3245-3260). Die zweite, kleinere Genbibliothek besteht aus scFv mit dem gleichen Framework (single- framework library), die durch Bindung an Protein L und Protein A auf aktive Faltung der Antikörperfragmente vorselektioniert wurde (I.Tomlinson, 9th anniverary Conference: "Antibody engineering", IBC-Conferences, SanDiego 1998; I.Tomlinson, lOth anniverary conference:"Antibody engineering", IBC-Conferences, SanDiego 1999; Speaker-Abstract). Die erste Bibliothek stammt aus dem Labor Dr.G.Winter und die zweite aus dem Labor Dr.I.Tomlinson (jeweils MRC Centre for Protein Engineering, Cambridge, UK). Die spezifischen Phagen wurden in 2-3 Runden selektioniert (Phagen-Panning) unter Verwendung der proteolytischen Selektionsmethode mit dem Helferphagen KM 13 (Kristensen,P. und Winter,G., Folding & Design, 3:321, 1998). Als Antigen diente der gereinigte monoklonale Antikörpre A76-A/C7 (35 μg/ ml in 4 ml), das in einem Teströhrchen (Immunotube, Nunc, Wiesbaden) über Nacht bei 4°C in PBS immobilisiert wurde. Alternativ wurde A76-A/C7 mit den Phagen inkubiert; die an die Antikörper gebundenen Phagen wurden durch Magnetbeads mit immobilisierten anti-IgG Antikörpern (Deutsche Dynal, Hamburg) gewonnen. Die in den Selektionsrunden spezifisch gebundenen Phagen (3 h bei RT) wurden nach stringenten Waschschritten (bis zu 20 mal PBS/ 0.1% Tween20 und darauffolgend 20 mal PBS) durch das in der PDTR mit GalNAc glykosylierte Tandem-Repeat (100 μg/ ml; Biosynthan, Berlin-Buch) eluiert und anschließend mit Trypsin (proteolytische Selektionsmethode) behandelt. Zwischen den Selektionsrunden wurden die eluierten Phagen in den Bakterien mit Helferphagen vermehrt und erneut selektioniert.
Gewinnung von Mimikry-Peptiden, die das konformationsabhängige Epitop des MUC1 imitieren, aus Peptid-Genbibliotheken mit Hilfe der Phagen-Display-Technik Analog dem Beispiel zur Generierung von antiidiotypischen Antikörpern wurde in mehreren Selektionsrunden aus einer Peptid-Genbibliothek (Genbibliothek erhalten von Dr.H.Gollasch; Oligino,L., et al., J Biol Chem 272:29046, 1997), die 107 verschiedene kurze Peptide an das Phagenhüllprotein pIII gekoppelt besitzt, spezifisch bindende Peptide gewonnen. Die exprimierten Peptide sind randomisierte Nonapeptide, die von zwei Cysteinen flankiert (CX9C) und damit zirkularisiert werden, wodurch die Stabilität und die Affinität erhöht werden. Die Selektion und Testung erfolgte wie bei der Generierung der antiidiotypischen Antikörper beschrieben. Analog dazu wurden mit weiteren Peptidbibliotheken zusätzliche lineare und zirkuläre Mimikry-Peptide gewonnen. Dabei handelt es sich um Peptid-Bibliotheken, die analog der oben beschriebenen Peptid- Bibliothek hergestellt wurden. Bei den exprimierten Peptiden handelt es sich um lineare Peptide mit 7 Aminosäuren und um zirkuläre Peptide mit 7 randomisierten Aminosäuren, flankiert von zwei Cysteinen (CX7C), um zirkuläre Peptide mit 10 randomisierten Aminosäuren, flankiert von zwei Cysteinen (CX10C),und um zirkuläre Peptide mit insgesamt 9 randomisierten Aminosäuren, mit zwei internen und zwei flankierenden Cysteinen (CX3CX3CX3C).
Spezifitätstests der Mimikry-Peptide und der antiidiotypischen Antikörperfragmente Die selektionierten Peptide und Antikörperfragmente wurden in ELISA-Tests auf ihre Bindung an den mAk A76-A/C7 sowie in Form einer Negativ-Kontrolle an andere IgG und IgM-mAk getestet. Außerdem wurden sie in ELISA-Tests auf ihre Bindung an eine Reihe von gut charakterisierten MUC1 -spezifischen Antikörpern geprüft, die sich in ihrer o
Feinspezifität unterscheiden. Für die ELISA-Tests wurde die an Phagen gekoppelte Form der Peptide und Antikörperfragmente verwendet. Die antiidiotypischen svFv und die Mimikry-Peptide lassen sich dabei in Gruppen unterteilen, die: - ausschließlich an A76-A/C7 binden an A76-A/C7 und an andere MUC1 -spezifische Antikörper binden, die entweder nur an das Konformationsepitop (in der PDTR-Region glykosyliertes MUCl-Tandem- Repeat) binden (Typ A) oder deren Bindung durch die PDTR-Glykosylierung des MUC1 Tandem Repeats (Konformationsinduktion) stark erhöht wird (Typ B) an MUC1 -spezifische Antikörper, die neben Typ A und B auch MUC1 -spezifische Antikörper binden, die in gleichem Maße glykosylierte und unglykosylierte MUC1- Tandem-Repeats binden (Typ D) eine starke Bindung an MUC1 -spezifische Antikörper haben, die sich bezüglich der Glykosylierung der PDTR-Region des MUC1 -Repeats zu A76-A/C7 umgekehrt verhalten und das glykosylierte MUC1 -Peptid nicht oder wesentlich geringer als das nichtglykosylierte MUC1 -Peptid binden (Typ C). Dabei können diese Mimikry- Peptide oder antiidiotypischen scFv auch an andere Typen der MUC1 -spezifischen Antikörper binden.
Die Mimikry-Peptide und antiidiotypischen Antikörperfragmente wurden außerdem in ELISA-Inhibitionstests daraufhin untersucht, ob sie, in Form der synthetisierten Peptide oder gereinigten scFv (allein oder an Phagen gekoppelt) die Bindung des A76-A/C7 an das glykosylierte MUC1 -Peptid (im Epitop PDTR mit GalNAc glykosyliertes Tandem-Repeat) und nichtglykosylierte Oligomere des 20-mer Tandem-Repeats spezifisch und konzentrationsabhängig hemmen. Diese Versuche wurden mit Streptavidin-beschichteten Mikrotestplatten (BioTeZ, Berlin-Buch) und biotinylierten MUC1 -Peptiden (Biosynthan, Berlin-Buch; Abb. lc) sowie mit normalen ELISA-Testplatten, auf denen die MUC1- Peptide durch Antrocknen immobilisiert wurden, durchgeführt.
Inzuchtmäuse des Stammes Balb/c wurden intraperitoneal mit Mimikry-Peptiden und antiidiotypischen Antikörperfragmenten in Form der synthetisierten Peptide oder gereinigten scFv alleine, jeweils gekoppelt an das Protein KLH oder gekoppelt an Bakteriophagen in PBS, gemischt mit inkomplettem Freundschem Adjuvans, immunisiert. Dabei wurden Mischungen von antiidiotypischen scFv-Phagen beziehungsweise Mimikry- Peptid-Phagen aus jeweils den verschiedenen Gruppen (s.o.) verwendet. Drei Wochen später wurde mit dem gleichen Ansatz jedoch ohne Adjuvans geboostert. Die Boosterung wurde nach 3 Wochen wiederholt und 10 Tage später den Mäusen Blut entnommen. Das Serum wurde in ELISA-Tests auf Antikörper getestet, die spezifisch das konformationsabhängige Epitop des MUC1 erkennen (Versuchsaufbau wie oben). Die Mischungen der antiidiotypischen scFv sowie der Mimikry-Peptide erzeugen eine starke Reaktion gegen das konformationsabhängige Epitop des MUC 1.
Konstruktion der DNA- Vakzine und Testung an der Maus
Die antiidiotypischen scFv wurden direktional in einen DNA-Vakzinierungsvektor kloniert. Dabei wurden die scFv durch Sfil und Notl aus dem Phagemid Vektor ausgeschnitten und direktional in verschiedene DNA-Vakzinierungsvektoren kloniert die zuvor mit den gleichen Enzymen gespalten wurden. Ein geeigneter Vektor hierbei ist der Vektor pVAC2 (I.Harmer et al., Keystone Symposium „DNA-Vaccines", Snowbird, USA, 1999; Poster und Posterabstract), der, nach erfolgter Einfügung des scFv in den DNA-Vakzinierungsvektor, ein Fusionsprotein aus dem antiidiotypischen scFv mit einem Tetanus-Toxoid kodiert. Das Tetanustoxoid hat dabei die Eigenschaft eines Adjuvans und verstärkt die Immunreaktion gegen den fusionierten Proteinanteil C.King et al.,1998, Nat.Medicine 4: 1281-86). Die Mimikry-Peptide wurden ebenfalls in verschiedene DNA- Vakzinevektoren kloniert. Die Klonierung erfolgte nach der an sich bekannten Methode der PCR-Klonierung, bei der mit Hilfe synthetischer Primer die Sequenzen die für die Mimikry-Peptide kodieren, in die DNA-Vakzinierungsvektoren eingefügt wurden. Dabei wurden ebenfalls DNA- Vakzinierungsvektoren auf der Basis des pVAC2 hergestellt, die jeweils für ein Fusionsprotein des Mimikry-Peptides mit dem Tetanustoxoid kodieren. Die DNA der Vakzinierungsvektoren wurde nach an sich bekannten Methoden vermehrt, gereinigt und anschließend Mäusen injiziert. Dabei wurden für die Immunisierung Mischungen von DNA-Vakzinierungsvektoren, die antiidiotypische scFv beziehungsweise Mimikry-Peptide als Fusionsprotein mit dem Tetanustoxoid kodieren, die jeweils aus den verschiedenen Gruppen mit unterschiedlichen Bindungsmustern für MUC 1 -spezifische Antikörper (s.o.) stammen, verwendet. Als Dosis wurden 50 μg bzw. 200 μg an Gesamt- DNA verwendet und intra muskulär appliziert. Vier Wochen später wurde mit dem gleichen Ansatz geboostert und die Boosterung nach 4 Wochen wiederholt und 10 Tage später den Mäusen Blut entnommen. Das Serum wurde in ELISA-Tests auf Antikörper getestet, die spezifisch das konformationsabhängige Epitop des MUC1 erkennen (Versuchsaufbau wie oben).
Die Immuniserung mit den Mischungen der DNA- Vakzinevektoren, ergab sowohl bei den antiidiotypischen scFv als auch bei den Mimikry-Peptiden die kodierenden DNA- Vektoren eine starke humorale Immunreaktion gegen das konformationsabhängige Epitop des MUC1 sowie eine starke Reaktion gegen das Tetanustoxoid.
Vakzine im Tumor-Challenge Modell Im Maus Tumor-Challenge Modell wurden verschiedene Maustumorzellinien (3T3 und P815) verwendet, die mit der cDNA der Transmembran-Form des humanen MUCl stabil transfiziert. Die MUCl -positiven Mauszellinien exprimieren das Konformationsepitop des MUCl, das durch Immunbmdungsstudien mit dem A76-A/C7 getestet wurde. Für die Studien wurden mehrere Mäusestämme verwendet (Balb/c, DBA 2 und C57BL/6). Nach der Vakzinierung der Mäuse nach dem unten beschriebenen Prime-Boost-Protokoll wurden die Mäuse mit 106 bis 107 Tumorzellen in 200 μl PBS subkutan in der Nähe des Peritoneum injiziiert und das Tumorwachstum (Tumorgröße in mm)über 20-30 Tage gemessen. Vakzinierungsschema Prime-Boost:
Es wurden für die Immuniserungen (Priming) eine Kombination aus DNA- Vakzinierungsvektoren (kodierend für scFv-Tetanustoxoid- bzw. Mimikry-Peptid- Tetanustoxoid-Fusionsprotein) mit jeweils zwei Kandidaten aus den 4 unterschiedlichen Gruppen der antiidiotypischen-scFv bzw. Mimikry-Peptide verwendet. Für die Boosterung wurden die gleichen Kombinationen der antiidiotypischen scFv bzw. Mimikry-Peptide jedoch in ihrer Proteinform in inkomplettem Freundschem Adjuvans verwendet. Hierfür wurden die scFv nach an sich bekannten Verfahren durch eine Nickel-Chelat- Chromatographie gereinigt und die Mimikry-Peptide nach an sich bekannten Vefahren chemisch an KLH gekoppelt. Für die Immunisierung wurden 50-200 μg gesamt-DNA intra muskulär appliziert und für die scFv und Mimikry-Peptide 10-200 μg intraperitoneal. Die zeitlichen Abstände waren 3 Wochen und die Boosterungen erfolgten 2-3 mal. Als Kontrolle wurden die DNA-Vakzinierungsvektoren für ein scFv mit einer Spezifität gegen ein irrelevantes bakterielles Protein bzw. für ein irrelevantes Peptid (SSGSSSSGS), beziehungsweise deren gereinigte scFv oder der Peptid-KLH Komplex verwendet. Für die verschiedenen Versuchsansätze wurden jeweils 5-10 Tiere untersucht Die Versuche zeigen, dass eine Vakzinierung nach dem Prime-Boost-Protokoll das Wachstum von injiziierten MUCl -positiven Maus-Tumorzellini en verhindert oder auf eine minimale Größe reduziert (0-20 mm2 nach 20 Tagen). Die gleiche Vakzinierung erreicht bei darauffolgender Injektion mit den gleichen Tumorzellen ohne transfiziertes MUCl eine Tumorgröße von durchschnittlich über 200 mm2 (nach 20 Tagen). Auch die Injektion von MUCl -positiven Maus-Tumorzellinien in Mäuse ohne vorherige Vakzinierung ergibt eine starkes Tumorwachstum (>200 mm2 nach 20 Tagen). Eine Immunisierung und Boosterung mit den Proteinen der antiidiotypischen scFv bzw. den Mimikry-Peptiden an KLH gekoppelt ohne DNA-Vakzinierungsvektoren erbgibt eine Immunantwort gegen die MUC1- Tumorzellen, die Tumorprotektion ist jedoch um ein vielfaches geringer als bei dem Prime- Boost Protokoll mit den DNA-Vakzinierungsvektoren.
Die Ergebnisse zeigen, dass eine Vakzinierung mit DNA-Vakzinierungsvektoren, die für antiidiotypische scFv bzw Mimikry-Peptide kodieren, eine ausgezeichnete Tumorprotektion ergibt. Diese Reaktion ist MUC 1 spezifisch. Sie ist um ein Vielfaches besser oder überhaupt möglich im Vergleich zu Vakzinierungsstudien mit den Proteinen der antiidiotypischen scFv bzw. Mimikry-Peptiden ohne vorangegangene Immunisierung mit den entsprechenden
DNA-Vakzinierungsvektoren.
Damit ist gezeigt, dass die erfindungsgemäße Vakzine gegen konformationsabhängige
Antigene durch DNA-Vakzinierungsvektoren von Mimikry- Strukturen eine erfolgreiche
Form der Bekämpfung von Tumoren ist, die diese konformationsabhängigen Antigene tragen.
Beispiel 2
Herstellung der Hybridomzellinien A78-G/A7 und von Antikörpern
Balb/c-Mäuse wurden im Fall des A78-G/A7 (siehe auch Karsten,U., et al., Hybridoma 14:37, 1995), mit 100 μg Asialoglykophorin (Sigma, Deisenhofen) in PBS, gemischt mit Freundschem Adjuvans, intraperitoneal immunisiert. Nach 24 h wurde 100 μg/kg Körpergewicht Cyclophosphamid in PBS i.p. verabreicht. Die Boosterung erfolgte nach 2 Wochen mit 100 μg Asialoglykophorin. Als Fusionszellinie diente jeweils X63-Ag8.653 (Kearney, J.F., et al., J Immunol 123:1548, 1979). Die Hybridomtechnik wurde nach Standardmethoden (z.B. Peters,H.H., et al., "Monoklonale Antikörper, Herstellung und Charakterisierung", Berlin 1985; Friemel, H., "Immunologische Arbeitsmethoden", 4.AufL, Jena 1991) durchgeführt. Die Spezifitätsanalyse der von den Hydridomzellinien produzierten monoklonalen Antikörper basierte auf Enzymimmunoassays mit natürlichen Glykoproteinen, synthetischen Peptiden und Glykopeptiden, Glykolipiden und Neoglykolipiden und synthetischen Polyacrylamid-Kohlenhydrat-Konjugaten, Absorptionsanalysen an synthetischen Kohlenhydratkonjugaten (Synsorb, Chembiomed, Edmonton, Canada), Immunfluoreszenzanalysen mit diversen Zellinien sowie immunhistochemischen Untersuchungen an Gewebsschnitten. Für den A78-G/A7 wurde das tumorassoziierte Kohlenhydratepitop Thomsen-Friedenreich (TF), als spezifisches Antigen eindeutig bestimmt:
- A78-G/A7 bindet ausschließlich an das Disaccharid TF in der α-anomeren Konfiguration (TFα; Galßl-3GalNAcαl-O-Ser/Thr) auf natürlichen und synthetischen Strukturen, wie es natürlich nur auf Glykoproteinen in Form einer direkten O-glykosidischen Bindung an Serine oder Threonine vorkommt. TFß, das endständig an Glykanketten von Glykolipiden vorkommen kann, sowie andere Kohlenhydratstrukturen, Peptid- oder Lipidanteile werden dagegen nicht gebunden.
A78-G/A7 bindet hochspezifisch an verschiedene Karzinomzellinien in Immunfluoreszenzuntersuchungen und an verschiedene Karzinome in histochemischen Untersuchungen. (Cao,Y., et al., Histochem Cell Biol 106:197, 1996; Cao,Y., et al, Cancer 76:1700, 1995; Cao,Y., et al., Virchows Arch 431:159, 1997; Karsten,U., et al, Hybridoma 14:37, 1995)
- Als Isotyp wurde für A78-G/A7 der Isotyp IgM, k, mit Hilfe eines kommerziellen Isotyping Kit (Pharmingen, San Diego, USA) ermittelt.
A78-G/A7 wurde aus Zellkulturüberständen mittels einer Ammoniumsulfatfällung, gefolgt von einer Affinitätschromatographie an einer ProteinG-Affinitätsmatrix zur Abreinigung von ungewünschten IgG Antikörpern aus dem Kälberserum und schließlich mit einer Affinitätschromatographie mittels einer Ziege-anti-Maus-Ig-Affinitätsmatrix (Perzellulose, BioTeZ, Berlin-Buch) gereinigt (Dr.G.Butschak).
Herstellung von humanen rekombinanten Antikörperfragmenten gegen das Thomsen- Friedenreich Antigen aus Antikörper-Genbibliotheken mit Hilfe der Phagen-Display- Technik
Es wurden zwei verschiedene synthetische Antikörper-Genbibliotheken verwendet, die humane single-chain Antikörperfragmente (scFv) darstellen. Die eine Antikörper- Genbibliothek besteht aus mehr als 1010 Phagen mit jeweils verschiedenen Kombinationen der variablen Regionen der schweren und leichten Ketten humaner Antikörper mit zum Teil randomisierten hypervariablen Regionen, welche mit einem Peptidstück (Linker) verbunden sind und kovalent an ein Phagenhüllprotein (pIII) gebunden sind. Sie leitet sich aus einer anderen Antikörper-Genbibliothek ab (Griffiths,A. et al., 1994, EMBO J., 13: 3245-3260). Die zweite, kleinere Genbibliothek besteht aus scFv, die auf aktive Faltung der Antikörperfragmente vorselektioniert wurden. Die erste Bibliothek stammt aus dem Labor Dr.G.Winter und die zweite aus dem Labor Dr.I.Tomlinson (jeweils MRC Centre for Protein Engineering, Cambridge, UK). Die spezifischen Phagen wurden in 2-3 Runden selektioniert (Phagen-Panning) unter Verwendung der proteolytischen Selektionsmethode mit dem Helferphagen KM 13 (Kristensen,P. und Winter,G., Folding & Design, 3:321, 1998). Als Antigen diente der gereinigte A78-G/A7 (35 μg/ ml in 4 ml), das in einem Teströhrchen (Immunotube, Nunc, Wiesbaden) über Nacht bei 4°C in PBS immobilisiert wurde. Alternativ wurde der gereinigte Antikörper mit den Phagen inkubiert; die an den Antikörper gebundenen Phagen durch Magnetbeads mit immobilisierten anti-IgM Antikörpern (Deutsche Dynal, Hamburg) gewonnen. Die in den Selektionsrunden spezifisch gebundenen Phagen (3 h bei RT) wurden nach stringenten Waschschritten (bis zu 20 mal PBS/ 0.1% Tween20 und darauffolgend 20 mal PBS) durch das das TFα-tragende Glykoprotein Asialoglykophorin (100-165 μg/ ml) spezifisch eluiert und teilweise anschließend mit Trypsin (proteolytische Selektionsmethode) behandelt. Zwischen den Selektionsrunden wurden die eluierten Phagen in den Bakterien mit Helferphagen vermehrt und erneut selektioniert. Es wurden 2 bis 3 Selektionsrunden durchgeführt. Identifizierung von Peptiden mit Hilfe einer Peptid-Genbibliothek, die spezifisch das Thomsen-Friedenreich Antigen imitieren
Analog dem Beispiel zur Generierung von antiidiotypischen Antikörpern wurde in mehreren Selektionsrunden aus einer Peptid-Genbibliothek (Oligino,L., et al, J Biol Chem 272:29046, 1997), die 107 verschiedene kurze Peptide an das Phagenhüllprotein pIII gekoppelt besitzt, spezifisch bindende Peptide gewonnen (in Zusammenarbeit mit Dr.H.Gollasch, Robert-Rössle-Klinik, Berlin-Buch). Die exprimierten Peptide sind randomisierte Nonapeptide, die von zwei Cysteinen flankiert und damit zirkularisiert werden, wodurch die Stabilität und die Affinität erhöht wird. Die Selektion und Testung erfolgte wie in der Generierung der antiidiotypischen Antikörper beschrieben.
Spezifitätstests der Mimikry-Peptide und antiidiotypischen Antikörperfragmenten Die selektionierten Peptide und Antikörperfragmente wurden in ELISA-Tests auf ihre Bindung an TF-spezifische Antikörper und an das Pflanzenlektin PNA (Peanut Agglutinin, Arachis hypogaea Lektin; Sigma), das auch, wenn auch nicht ausschließlich, das Thomsen- Friedenreich-Antigen bindet, sowie zur Kontrolle an andere IgM und IgG-Antikörper getestet. Hierfür wurden die an Phagen gekoppelte Form der Peptide und Antikörperfragmente verwendet, die zuvor durch eine in 96-Well Platten durchgeführte Polyethylenglykol-Fällung gereinigt wurden. Die potentiellen Mimikry-Peptide und antiidiotypischen Antikörperfragmente wurden in ELISA-Inhibitionstests daraufhin untersucht, ob sie die Bindung des A78-G/A7 und/oder andere TF-erkennender Antikörper und Lektine an das Disaccharid TFα spezifisch hemmen. Dabei wurde das das TFα tragende Glykoprotein Asialoglykophorin auf ELISA-Platten durch Antrocknen immobilisiert, und die Bindung der monoklonalen Antikörper und Lektine durch die Mimikry-Peptide oder antiidiotypischen Antikörperfragmente in Form der synthetisierten Peptide oder gereinigten scFv alleine oder gekoppelt an Phagen konzentrationsabhängig inhibiert (Abb. 2).
Inzuchtmäuse des Stammes Balb/c und des Stammes NMRI wurden intraperitoneal mit Mimikry-Peptiden und antiidiotypischen Antikörperfragmenten in Form der synthetisierten Peptide oder gereinigten scFv alleine, jeweils gekoppelt an das Protein KLH oder gekoppelt an Bakteriophagen in PBS, gemischt mit komplettem Freundschem Adjuvans, immunisiert. Drei Wochen später wurde mit dem gleichen Ansatz jedoch ohne Adjuvans geboostert. Die Boosterung wurde nach 3 Wochen wiederholt und 10 Tage später den Mäusen Blut entnommen. Das Serum wurde in ELISA-Tests auf Antikörperbindungen gegen das Thomsen-Friedenreich- Antigen untersucht. Vakzinierung mit TF -imitierenden Peptiden im Maus-Tumormodell
Zellkultur '/Die Maus-Colon-Karzinom-Zellinie C-26 wurde im Medium RPMI 1640 mit
Zusatz von 10 % fetalem Kälberserum gehalten.
Tumormodell: In Mäuse des Stammes Balb/c wurden 10 Zellen der syngenen Colon- Karzinom-Zellinie C-26 s.c. transplantiert, und zwar in zwei Varianten: a) unbehandelt und b) mit Neuraminidase aus V.cholerae (Serva, Heidelberg) vorbehandelt (TF-positiv). In wöchentlichen Intervallen wurde die Tumorgröße extern ermittelt. Nach 3 Wochen wurden die Tiere getötet und jeweils die Leber herauspräpariert, um die Zahl der an der Oberfläche der Leber sichtbaren Metastasen zu ermitteln.
Vakzinierung: Die Vakzinierung der Mäuse wurde 6 Wochen vor der Tumortransplantation begonnen. Die Phagenpräparation bzw. die gereinigten scFv (sowie entsprechende Kontrollen) wurden mit inkomplettem Freund- Adjuvans 1 : 1 emulgiert und i.p. injiziert. Vier Wochen später wurde geboostert (ohne Adjuvans). Nach weiteren 2 Wochen wurde die Tumortransplantation (Tumor-Challenge) mit unbehandelten und Neuraminidase- behandelten C-26-Zellen vorgenommen.
Ergebnis: Die vorliegenden Ergebnisse mit drei der genannten antiidiotypischen scFv zeigten, daß die Angangsrate der Tumoren bei den Neuraminidase-behandelten C-26-Zellen durch die Vakzinierung signifikant erniedrigt werden kann (auf 3- 16 % der Kontrolle; Kontrolle: 100 % Angangsrate). Darüber hinaus entsprach die Zahl der Lebermetastasen bei den vakzinierten Tieren annähernd der der Tiere, die mit unbehandelten (TF-negativen) C- 26-Zellen transplantiert worden waren (rund 2 pro Leber), während die nichtvakzinierten Kontrolltiere mit TF-positiven C-26-Zellen 5-9 Metastasen pro Leber aufwiesen.
Legenden zu den Abbildungen:
Abb.lc:
Inhibition der A76-A/C7 Bindung an das MUCl-Glykopeptid (Biotin-Ahx- APPAHGVTSAPD-Thr(α-D-GalNAc)-RPAPGSTAPPAHGVTSA) durch scFv-Phagen. Das MUCl-Glykopeptid wurde an die Streptavidin-ELISA-Platte immobilisiert (5ng/Well) und anschließend mit 30% FKS in RPMI blockiert. Kulturüberstand des A76-A/C7 (1 :80 verdünnt) wurde mit den durch eine Polyethylenglykolfällung gereinigten scFv-Phagen in den angegebenen Konzentrationen (Volumenprozentanteil von abgeglichenen Phagenlösungen in PBS) für eine Stunde vorinkubiert und anschließend für 2 Stunden auf die MUCl-Glykopeptidplatte gegeben. Der Nachweis erfolgte über einen anti-Maus-POD- Antikörper (Dako). Die scFv-Phagen Q6, Q7 und Q8 sind Beispiele für antiidiotypische scFv, während Q4 und Q10 Beispiele für Kontrol-scFv sind, die den A78-A/C7 zwar binden, jedoch keine antiidiotypischen scFv sind.
Abb.2:
Inhibition der A78-G/A7 Bindung an Asialoglykophorin durch scFv-Phagen. Das Asialoglykophorin (A-GP) wurde an die ELISA-Platte durch Antrocknen immobilsiert (25ng/Well) und anschließend mit 30% FKS in RPMI blockiert. Kulturüberstand des A78- G/A7 (1:20 verdünnt) wurde mit den durch eine Polyethylenglykolfällung gereinigten scFv- Phagen in den angegebenen Konzentrationen (Volumenprozentanteil von abgeglichenen Phagenlösungen in PBS) für eine Stunde vorinkubiert und anschließend für 2 Stunden auf die A-GP Platte gegeben. Der Nachweis erfolgte über einen anti-Maus-POD-Antikörper (Dako). Die scFv-Phagen P9, P13, P16, P3 und K3 sind Beispiele für antiidiotypische scFv, während P8 und Ql Beispiele für Kontrol-scFv sind, von denen P8 zwar den A78-G/A7 bindet, jedoch kein antiidiotypischer scFv ist und Ql ein Phage ist, der nicht den A78-G/A7 bindet.

Claims

Patentansprüche
1. Vakzine gegen konformationsabhängige Antigene, gekennzeichnet durch
a. eine DNA, welche diejenige Region eines antiidiotypischen Antikörpers (Ab2), eines antiidiotypischen Antikörperfragmentes oder eines anderen Peptides kodiert, die die Bindungsstelle eines Antikörpers (Abi) oder eines das Antigen bindende Molekül spezifisch bindet und das ursprüngliche Antigen immunologisch imitiert, wobei das Epitop ganz oder teilweise konformationsabhängig ist und eine immunogene Struktur aufweist, welche nicht durch eine einfache Aufeinanderfolge von Aminosäuren der Primärsequenz des Antigens sondern durch eine bestimmte räumliche Konformation von Aminosäuren definiert ist, und die DNA entweder in Form nackter DNA, linear oder zirkulär, und/oder mit Hilfe eines viralen Vektors mit oder ohne Adjuvantien angewendet wird, oder
b. durch einen Antikörper, ein Antikörperfragment oder ein Peptid, die das konformationsabhängige Antigen immunologisch imitieren, oder
c. durch eine Kombination der Stoffe aus a und b.
2. Vakzine nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die immunogenen Strukturen durch eine bestimmte räumliche Konformation von Aminosäuren definiert sind, die beispielsweise durch die Interaktion von Aminosäuren zustande kommen, welche in der Primärsequenz des Antigens nicht benachbart sind, oder durch Ausbildung einer Sekundäroder höheren Strukturordnung aufgrund einer Interaktion von Aminosäuren aus Proteinen eines Proteinkomplexes oder durch die Modifikation der Primärstrukturen, beispielsweise durch Glykosylierung oder Phosphorylierung, bedingt sind.
3. Vakzine gegen Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, gekennzeichnet durch
a. eine DNA, welche diejenige Region eines antiidiotypischen Antikörpers (Ab2), eines antiidiotypischen Antikörperfragmentes oder eines anderen Peptides kodiert, die die Bindungsstelle eines Antikörpers (Abi) oder eines das Antigen bindende Molekül spezifisch bindet und das ursprüngliche Antigen immunologisch imitiert, wobei es sich bei dem Antigen um Substanzen handelt, deren relevanten Epitope zwar keine Protein- oder Peptidepitope sind, jedoch immunogene Strukturen aufweisen und die DNA entweder in Form nackter DNA, linear oder zirkulär, und/oder mit Hilfe eines viralen Vektors mit oder ohne Adjuvantien angewendet wird, oder b. durch einen Antiköφer, ein Antiköφerfragment oder ein Peptid, die das Antigen, das kein oder nicht auschließlich ein Protein oder Peptid ist, immunologisch imitieren, oder
c. durch eine Kombination der Stoffe aus a und b.
4. Vakzine nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß immunogene Strukturen der relevanten Epitope vorzugsweise Glykostrukturen, kombinierte Kohlenhydrat- Proteinepitope, Lipide, Glykolipide oder synthetische Strukturen darstellen.
5. Vakzine nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Peptide linear oder zirkulär, beispielsweise durch Einfügung von Cysteinen an geeigneten Stellen, vorliegen.
6. Verwendung einer Vakzine nach Anspruch 1 bis 5 zur Immunisierung mittels DNA und/oder den das Antigen immunologisch imitierenden Antiköφern, Antiköφerfragmenten (antiidiotypische Ak) oder Peptiden (Mimikry-Peptide).
7. Verwendung der Vakzine nach Anspruch 6, gekennzeichnet durch als Vakzine geeignete Formulierungen dieser Proteinstrukturen entweder durch Gabe der sie kodierenden DNA gemäß la oder 3 a, oder durch Gabe der Strukturen alleine, wie Peptide, inverse Peptide oder retroinverse Peptide, in Form einer chemischen Kopplung an Proteine, wie Keyhole limpet hemocyanin (KLH), in Form von Bakteriophagen als Fusionsproteine mit Phagenhüllproteinen auf deren Oberfäche, in Form eines Fusionsproteins auf der Oberfläche anderer Viren oder attenuierter biologischer Träger oder durch Beladung dendritischer Zellen nach an sich bekannten Verfahren, jeweils gegebenenfalls in Kombination mit geeigneten Adjuvantien oder immunstimulatorischen Molekülen wie Cytokinen, die auch in Form einer sie kodierenden DNA verabreicht werden können.
8. Verwendung der Vakzine nach Anspruch 6 und 7, gekennzeichnet durch eine Kombination der DNA und der Protein- Strukturen in einer geeigneten Formulierung.
9. Verwendung von Vakzinen nach Anspruch 1, 2, 5, 6, 7 oder 8 gegen tumorassoziierte konformationsabhängige Antigene.
10. Verwendung von Vakzinen nach Anspruch 3 bis 8 gegen tumorassoziierte Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind.
11. Verwendung von Vakzinen nach Anspruch 1, 2, 5, 6, 7 oder 8 gegen konformationsabhängige Antigene von Erregern infektiöser Erkrankungen, wie Prionen, Viren, Bakterien, Parasiten.
12. Verwendung von Vakzinen nach Anspruch 3 bis 8 gegen Antigene von Erregern infektiöser Erkrankungen, wie Prionen, Viren, Bakterien, Parasiten, die keine oder nicht ausschließlich.Proteine oder Peptide sind.
13. Verwendung von Vakzinen nach Anspruch 1 bis 8 gegen weitere infektiöse oder nichtinfektiöse Erkrankungen auf dem medizinischen und veterinärmedizinischen Gebiet.
14. Verfahren zur Herstellung einer Vakzine gegen konformationsabhängige Antigene gemäß einem oder mehreren der Ansprüche 1, 2 oder 5 auf der Basis immunologisch imitierender Strukturen in Form antiidiotypischer Antiköφer, antiidiotypischer Antiköφerfragmente oder Mimikry-Peptide oder daraus resultierender DNA- Sequenzen, dadurch gekennzeichnet, daß man:
a. mit der Hybridomtechnik monoklonale Antiköφer (Abi) gegen konformationsabhängige Antigene nach Anspruch 1 und antiidiotypische Antiköφer (Ab2 vom Typ b), die das Antigen nach Anspruch 1 oder 2 immunologisch imitieren,
b. aus genomischen, Hybrid-, semisynthetischen oder synthetischen Antiköφer- Genbibliotheken sowie aus Genbibliotheken immunisierter oder nicht-immunisierter Spender mittels der Phagen-Display-Technik oder der Ribosomen-Display-Technik rekombinante Antiköφerfragmente (Abi) gegen konformationsabhängige Antigene oder mit Hilfe idiotypischer Antiköφer oder Antiköφerfragmente, die das konformationsabhängige Antigen spezifisch erkennen, rekombinante antiidiotypische Antiköφerfragmente (Ab2), die das Antigen nach Anspruch 1, 2 oder 5 immunologisch imitieren,
c. aus genomischen, Hybrid-, semisynthetischen oder synthetischen Antiköφer- Genbibliotheken sowie aus Genbibliotheken immunisierter oder nicht-immunisierter Spender mittels der Phagen-Display-Technik oder der Ribosomen-Display-Technik mit Hilfe von Substanzen (z.B. Rezeptoren), die das konformationsabhängige Antigen spezifisch erkennen, rekombinante Antiköφerfragmente, die das konformationsabhängige Antigen nach Anspruch 1, 2 oder 5 immunologisch imitieren, d. aus synthetischen Peptid-Genbibliotheken mittels Phagen-Display-Technik oder Ribosomen-Display-Technik mit Hilfe idiotypischer Antiköφer oder Antiköφerfragmente, die das konformationsabhängige Antigen spezifisch erkennen, lineare oder zirkuläre Peptide, die die antigen-bindende Regionen der konformationsspezifischen Antiköφer (Abi) nach Anspruch 1 binden und somit das Antigen nach Anspruch 1, 2 oder 5 immunologisch imitieren, e. aus synthetischen Peptid-Genbibliotheken mittels Phagen-Display-Technik oder Ribosomen-Display-Technik mit Hilfe von Substanzen (z.B. Rezeptoren), die das Zielantigen spezifisch erkennen, lineare oder zirkuläre Peptide, die die antigen-bindende Regionen der konformationsspezifischen Antiköφer (Abi) nach Anspruch 1 binden und somit das Antigen nach Anspruch 1 , 2 oder 5 immunologisch imitieren,
herstellt bzw. selektioniert und eine den Antiköφern oder Peptiden nach a-e oder geeigneten Teilpeptiden oder abgeleiteten Peptiden, beispielsweise durch Zirkularisierung, Mutationen, in Form inverser oder retroinverser Peptide, oder repetitiven Konstrukten entsprechende DNA entsprechend des Anspruches 1 nach an sich bekannten Verfahren erzeugt.
15. Verfahren zur Herstellung von Vakzinen gegen Antigene gemäß einem der Ansprüche 3, 4 oder 5 auf der Basis immunologisch imitierender Strukturen in Form antiidiotypischer Antiköφerfragmente oder Mimikry-Peptide oder daraus resultierender DNA- Sequenzen, dadurch gekennzeichnet, daß man:
a. aus genomischen, Hybrid-, semisynthetischen oder synthetischen Antiköφer- Genbibliotheken sowie aus Genbibliotheken immunisierter oder nicht-immunisierter Spender mittels der Phagen-Display-Technik oder der Ribosomen-Display-Technik rekombinante Antiköφerfragmente (Abi) gegen Antigene, die primär keine Proteine oder Peptide sind, oder mit Hilfe idiotypischer Antiköφer oder Antiköφerfragmente, die das konformationsabhängige Antigen spezifisch erkennen, rekombinante antiidiotypische Antiköφerfragmente (Ab2), die das Antigen nach Anspruch 3, 4 oder 5 immunologisch imitieren,
b. aus genomischen, Hybrid-, semisynthetischen oder synthetischen Antiköφer- Genbibliotheken sowie aus Genbibliotheken immunisierter oder nicht-immunisierter Spender mittels der Phagen-Display-Technik oder der Ribosomen-Display-Technik mit Hilfe von Substanzen, beispielsweise von Lektinen, Rezeptoren, Peptiden, die das Zielantigen spezifisch erkennen, rekombinante Antiköφerfragmente, die das Zielantigen nach Anspruch 3, 4 oder 5 immunologisch imitieren, c. aus synthetischen Peptid-Genbibliotheken mittels Phagen-Display-Technik oder Ribosomen-Display-Technik lineare oder zirkuläre Peptide, die die antigen-bindende Regionen der Antiköφer (Abi) gegen Antigene, die keine oder nicht ausschließlich Proteine oder Peptide sind, nach Anspruch 3 und 4, binden und somit das Antigen nach Anspruch 3, 4 oder 5 immunologisch imitieren,
d. aus synthetischen Peptid-Genbibliotheken mittels Phagen-Display-Technik oder Ribosomen-Display-Technik mit Hilfe von Substanzen, beispielsweise Lektine, Rezeptoren, Peptide, die das Zielantigen spezifisch erkennen, lineare oder zirkuläre Peptide, die das Zielantigen nach Anspruch 3, 4 oder 5 immunologisch imitieren,
herstellt bzw. selektioniert und eine den Antiköφern oder Peptiden nach a-d oder geeigneten Teilpeptiden oder abgeleiteten Peptiden, beispielsweise durch Zirkularisierung, Mutationen, in Form inverser oder retroinverser Peptide, oder repetitiven Konstrukten entsprechende DNA entsprechend des Anspruches 3 nach an sich bekannten Verfahren erzeugt.
16. Verfahren nach Anspruch 14 oder 15, dadurch gekennzeichnet, daß man Vakzinen nach einem der Ansprüche 1 bis 5 herstellt.
17. Verfahren nach einem der Ansprüche 14 oder 16, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Vakzine gegen das immundominante Epitop (PDTR) des MUCl herstellt, dessen für die Immunogenität wichtige Konformation beispielsweise durch die Glykosylierung des Thr im Epitop PDTR herausgebildet wird.
18. Verfahren nach einem der Ansprüche 15 oder 16, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Vakzine gegen die tumorassoziierten Glykostrukturen Core-1 Struktur (GalNAcßl-3-GalNAcαl), Tn oder Sialyl-Tn herstellt.
19 . Humane antiidiotypische Antiköφerfragmente gegen das MUCl- Konformationsepitop mit den Sequenzen Nr. 1 bis 31, sowie davon abgeleitete Proteinsequenzen und -teilsequenzen, die die gleichen Eigenschaften aufweisen.
20. DNA Sequenzen, die die Fragmente und davon abgeleitete Proteine bzw. Teilsequenzen mit den gleichen Eigenschaften gemäß Anspruch 19 kodieren.
21. Aminosäurensequenzen von Mimikry-Peptiden gegen das MUCl-Konformationsepitop mit den Sequenzen Nr. 32 bis 47, sowie davon abgeleitete Peptidsequenzen und - teilsequenzen, die die gleichen Eigenschaften aufweisen.
22. DNA Sequenzen, die die Aminosäurensequenzen und davon abgeleitete Peptide bzw. Teilsequenzen mit den gleichen Eigenschaften gemäß Anspruch 21 kodieren.
23. Antiidiotypische Antiköφerfragmente gegen das TF- Antigen mit den Sequenzen Nr. 48 bis 71, sowie davon abgeleitete Proteinsequenzen und -teilsequenzen, die die gleichen Eigenschaften aufweisen.
24. DNA Sequenzen, die die Fragmente und davon abgeleitete Proteine bzw. Teilsequenzen mit den gleichen Eigenschaften gemäß Anspruch 23 kodieren.
25. Aminosäurensequenzen von Mimikry-Peptiden gegen das TF-Kohlenhydratepitop mit den Sequenzen Nr. 71 bis 96, sowie davon abgeleitete Peptidsequenzen und -teilsequenzen, die die gleichen Eigenschaften aufweisen.
26. DNA Sequenzen, die die Aminosäurensequenzen und davon abgeleitete Peptide bzw. Teilsequenzen mit den gleichen Eigenschaften gemäß Anspruch 25 kodieren.
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