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GEBIET DER
ERFINDUNG
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Die
vorliegende Erfindung betrifft neue Verbindungen, Verfahren zu deren
Herstellung, die Verbindungen umfassende Zusammensetzungen, die
Verwendung dieser Verbindungen als Medikamente und deren therapeutische
Verwendung, wobei derartige Verbindungen der Formel 1 pharmazeutisch
nützliche
Hemmer von Proteintyrosinphosphatasen (PTPasen) wie PTP1B, CD45,
SHP-1, SHP-2, PTPα,
LAR und HePTP oder dergleichen sind,
Formel
1 wobei n, m, X, Y, R
1, R
2, R
3, R
4,
R
5 und R
6 vollständiger nachstehend
definiert sind.
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Es
wurde gefunden, dass PTPasen bei der intrazellulären Modulation und Regulation
von grundlegenden Zellsignalisierungsmechanismen, die am Stoffwechsel,
am Wachstum, an der Wucherung und an der Differenzierung beteiligt
sind, eine Hauptrolle spielen (Hunter, Phil. Trans. R. Soc. Lond.
B 353: 583–605
(1998); Chan et al., Annu. Rev. Immunol. 12: 555–592 (1994); Zhang, Curr. Top.
Cell. Reg. 35: 21–68
(1997); Matozaki und Kasuga, Cell. Signal. 8: 113–19 (1996);
Flint et al., The EMBO J. 12: 1937–46 (1993); Fischer et al,
Science 253: 401–6
(1991)). Eine Überexpression
oder eine abgeänderte
Aktivität
von Tyrosinphosphatasen kann auch zu den Symptomen und dem Fortschreiten
von verschiedenen Erkrankungen beitragen (Wiener, et al., J. Natl. cancer
Inst. 86: 372–8
(1994); Hunter und Cooper, Ann. Rev. Biochem, 54: 897–930 (1985)).
Weiterhin gibt es einen zunehmenden Hinweis, der nahe legt, dass
die Hemmung dieser PTPasen die Behandlung von bestimmten Erkrankungstypen
wie Diabetes Typ I und II, Autoimmunerkrankung, akute und chronische
Entzündung,
Osteoporose und verschiedene Formen von Krebs unterstützen kann.
5252–263: 1397-b-PTP-PTP-colony-270:
20824–16104
(1993), Brady-
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Hintergrund der Erfindung
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Die
Proteinphosphorylierung ist nun als wichtiger Mechanismus, der von
Zellen zum Umwandeln und Regulieren von Signalen während den
verschiedenen Stufen der Zellfunktion verwendet wird, weithin anerkannt
(Hunter, Phil. Trans. R. Soc. Lond. B 353: 583–605 (1998); Chan et al., Annu.
Rev. Immunol. 12: 555–592 (1994);
Zhang, Curr. Top. Cell. Reg. 35: 21–68 (1997); Matozaki and Kasuga,
Cell. Signal. 8: 113–19
(1996); Fischer et al, Science 253: 401–6 (1991); Flint et al., EMBO
J. 12: 1937–46
(1993)). Es gibt mindestens zwei Hauptklassen von Phosphatasen:
(1) diejenigen, die Proteine (oder Peptide) dephosphorylieren, die
(eine) Phosphatgruppe(n) an einer Serin- oder Threonineinheit enthalten,
(Ser/Thr-Phosphatasen genannt), und (2) diejenigen, die (eine) Phosphatgruppe(n)
vom Aminosäuretyrosin
entfernen (Proteintyrosinphosphatasen oder PTPasen oder PTPs genannt).
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Bei
den PTPasen handelt es sich um eine Enzymfamilie, die in zwei Gruppen
unterteilt werden kann: a) intrazelluläre oder Nichttransmembran-PTPasen
und b) PTPasen vom Rezeptor-Typ oder Transmembran-PTPasen.
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Intrazelluläre PTPasen:
Besonders bekannte PTPasen vom intrazellulären Typ enthalten eine einzelne
bewahrte katalytische Phosphatasedomäne, die aus 220–240 Aminosäureresten
besteht. Es wird angenommen, dass die Regionen außerhalb
der PTPase-Domänen
beim subzellulären
Lokalisieren der intrazellulären
PTPasen wichtige Rollen spielen (Mauro, L. J. und Dixon, J. E. TIBS
19: 151–155
(1994)). Bei der ersten zu reinigenden und charakterisierenden PTPase
handelte es sich um PTP1B, das von der menschlichen Plazenta isoliert
wurde (Tonks et al., J. Biol. Chem. 263: 6722–6730 (1988)). Kurz danach
wurde PTP1B kloniert (Charbonneau et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 86: 5252–5256
(1989); Chernoff et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87: 2735–2789 (1989)).
Andere Beispiele für
intrazelluläre
PTPasen schließen
ein: (1) T-Zell-PTPase/TC-PTP (Cool et al. Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 86: 5257–5261
(1989)), (2) Rattengehirn-PTPase (Guan et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 87: 1501–1502
(1990)), (3) Neuronen-Phosphatase STEP (Lombroso et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 88: 7242–7246
(1991)), (4) Ezrin-Domänen
enthaltende PTPasen: PTPMEG1 (Gu et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 88: 5867–57871
(1991)), PTPH1 (Yang und Tonks, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88: 5949–5953 (1991)),
PTPD1 und PTPD2 (Møller
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 7477–7481 (1994)), FAP-1/BAS (Sato
et al., Science 268: 411–415
(1995); Banville et al., J. Biol. Chem. 269: 22320–22327 (1994); Maekawa
et al., FEBS Letters 337: 200–206
(1994)), und SH2-Domänen
enthaltende PTPasen: PTP1C/SH-PTP1/SHP-1 (Plutzky et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 89: 1123–1127
(1992); Shen et al., Nature Lond. 352: 736–739 (1991)) und PTP1D/Syp/SH-PTP2/SHP-2
(Vogel et al., Science 259: 1611–1614 (1993); Feng et al.,
Science 259: 1607–1611
(1993); Bastein et al., Biochem. Biophys. Res. Comm. 196: 124–133 (1993)).
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PTPasen
vom Rezeptor-Typ bestehen aus a) einer mutmaßlichen ligandbindenden extrazellulären Domäne, b) einem
Transmembransegment und c) einer intrazellulären katalytischen Region. Die
Strukturen und Größen der
mutmaßlichen
ligandbindenden Domänen
von PTPasen vom Rezeptor-Typ sind ziemlich divergent. Im Gegensatz
dazu sind die intrazellulären
katalytischen Regionen von PTPasen vom Rezeptor-Typ zueinander und
zu den intrazellulären
PTPasen sehr homolog. Der Hauptteil der PTPasen vom Rezeptor-Typ weist
zwei hintereinander duplizierte katalytische PTPase-Domänen auf.
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Bei
den ersten zu identifizierenden PTPasen handelte es sich um (1)
CD45/LCA (Ralph, S. J., EMBO J. 6: 1251–1257 (1987)) und (2) LAR (Streuli
et al., J. Exp. Med. 168: 1523–1530
(1988)), von welchen auf der Basis der Homologie zu PTP1B erkannt
wurde, dass sie zu dieser Enzymklasse gehören (Charbonneau et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 86: 5252–5256
(1989)). Bei CD45 handelt es sich um eine Familie von Glycoproteinen
mit hohem Molekulargewicht und es ist eines der besonders reichlich
vorhandenen Glycoproteinen von Leukozytenzelloberflächen und
scheint ausschließlich
auf Zellen des hämopoietischen
Systems exprimiert zu werden (Trowbridge und Thomas, Ann. Rev. Immunol.
12: 85–116
(1994)).
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Der
Identifizierung von CD45 und LAR als Vertreter der PTPase-Familie
folgte rasch die Identifizierung und das Klonieren von mehreren
unterschiedlichen Vertretern der PTPase-Gruppe vom Rezeptor-Typ.
So wurden 5 verschiedene PTPasen, (3) PTPα, (4) PTPβ, (5) PTPδ, (6) PTPε, and (7) PTPζ, in einer
frühen
Studie identifiziert (Krueger et al., EMBO J. 9: 3241–3252 (1990)).
Andere Beispiele für
PTPasen vom Rezeptor-Typ schließen
ein: (8) PTPγ (Barnea
et al., Mol. Cell. Biol. 13: 1497–1506 (1995)), die wie PTPζ (Krueger
und Saito, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 7417–7421 (1992)) eine Carbonsäureanhydrase-artige
Domäne
in der extrazellulären
Region enthält,
(9) PTPμ (Gebbink
et al., FEBS Letters 290: 123–130
(1991)), (10) PTPκ (Jiang
et al., Mol. Cell. Biol. 13: 2942–2951 (1993)). Auf der Basis
von Strukturunterschieden können
die PTPasen vom Rezeptor-Typ auch in Subtypen unterteilt werden
(Fischer et al., Science 253: 401–406 (1991)): (I) CD45; (II)
LAR, PTPδ,
(11) PTPσ;
(III) PTP☐, (12) SAP-1 (Matozaki et al., J. Biol. Chem.
269: 2075–2081
(1994)), (13) PTP-U2/GLEPP1 (Seimiya et al., Oncogene 10: 1731–1738 (1995);
Thomas et al., J. Biol. Chem. 269: 19953–19962 (1994)) und (14) DEP-1;
(IV) PTPα,
PTPε. Alle
PTPasen vom Rezeptor-Typ außer
Typ III enthalten zwei PTPase-Domänen. Neue PTPasen werden fortlaufend
identifiziert. In den frühen
Tagen der PTPase-Forschung wurde angenommen, dass die Anzahl an
PTPs mit derjenigen der Proteintyrosinkinasen (PTKs) übereinstimmen
würde (Hanks
und Hunter, FASEB J. 9: 576–596
(1995)). Jedoch scheint es nun, dass, obwohl etwa 90 offene Ableseraster
in C. elegans das Hallmark-Motiv von PTPs enthalten, die Schätzung von
,klassischen' PTPasen
möglicherweise
auf zwischen 100 und 200 bei Menschen herabgesetzt werden muss.
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Bei
PTPasen handelt es sich um die biologischen Gegenstücke zu Proteintyrosinkinasen.
Deshalb ist es eine wichtige Funktion von PTPasen, die Aktivität von PTKs
zu steuern, herab zu regulieren. Jedoch zeichnete sich ein komplexeres
Bild der Funktion von PTPasen ab. So zeigten mehrere Studien, dass
einige PTPasen tatsächlich
als positive Vermittler des Zellsignalisierens wirken. Beispielsweise
scheint das SH2-Domänen enthaltende
SHP-2 als positiver Vermittler bei der Insulin-stimulierten Ras-Aktivierung
(Noguchi et al., Mol. Cell. Biol. 14: 6674–6682 (1994)) und der durch
Wachstumsfaktor induzierten mitogenen Signalumwandlung (Xiao et
al., J. Biol. Chem. 269: 21244–21248
(1994)) zu wirken, wohingegen das homologe SHP-1 als negativer Regulator
der durch Wachstumsfaktor stimulierten Wucherung zu wirken scheint
(Bignon und Siminovitch, Clin. Immunol. Immunopathol. 73: 168–179 (1994)).
Ein anderes Beispiel für
PTPasen als positive Regulatoren wurde durch Studien bereitgestellt,
die zum Definieren der Aktivierung der Src-Familie von Tyrosinkinasen
vorgesehen waren. Insbesondere weisen mehrere Nachweisreihen darauf
hin, dass CD45 möglicherweise
durch Dephosphorylierung des C-terminalen Tyrosins von Fyn und Lck
die Aktivierung von hämopoietischen
Zellen positiv reguliert (Chan et al., Annu. Rev. Immunol. 12: 555–592 (1994)).
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PTPasen
wurden ursprünglich
unter Verwendung einer Vielfalt an künstlichen Substraten aus Zell-
und Gewebelysaten identifiziert und gereinigt, und deshalb war deren
natürliche
Funktion der Dephosphorylierung nicht weithin bekannt. Da eine Tyrosinphosphorylierung
durch Tyrosinkinasen üblicherweise
mit Zellwucherung, Zelltransformation und Zelldifferenzierung verbunden
ist, wurde angenommen, dass PTPasen ebenfalls mit diesen Vorgängen verbunden
sind. Es erwies sich dass dieser Zusammenhang mit vielen PTPasen
der Fall war. Es zeigte sich, dass PTP1B, eine Phosphatase, deren
Struktur die erste zu erläuternde
PTPase war (Barford et al., Science 263: 1397–1404 (1994)) an der Insulin-induzierten
Oozyten-Reifung beteiligt ist (Flint et al., The EMBO J. 12: 1937–46 (1993))
und es wurde nahe gelegt, dass die Überexpression dieses Enzyms
an mit p185c-erbB2 verbundenen Brust- und
Eierstockkrebsen beteiligt sein kann (Wiener, et al., J. Natl. cancer
Inst. 86: 372–8
(1994); Weiner et al., Am. J. Obstet. Gynecol. 170: 1177–883 (1994)).
Der Zusammenhang mit Krebs ist ein jüngster Nachweis, der nahe legt,
dass eine Überexpression
von PTP1B statistisch mit erhöhten
Gehalten an p185c-erbB2 bei Eierstock- und
Brustkrebs verbunden ist. Die Rolle von PTP1B bei der Ätiologie
und beim Fortschreiten der Erkrankung wurde noch nicht geklärt. Hemmer
von PTP1B können
deshalb dabei helfen, die Rolle von PTP1B bei Krebs zu klären und
in manchen Fällen
eine therapeutische Behandlung für
bestimmte Krebsformen bereitstellen.
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PTPasen: Der Insulinrezeptorsignalisierungsweg/Diabetes
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Insulin
ist ein wichtiger Regulator von verschiedenen Stoffwechselprozessen
und spielt bei der Blutzuckerregulierung eine Schlüsselrolle.
Defekte, die mit seiner Synthese oder Signalisierung verbunden sind,
führen
zu Diabetes mellitus. Die Bindung von Insulin am Insulinrezeptor
(IR) verursacht eine schnelle (Auto)Phosphorylierung von mehreren
Tyrosinresten im intrazellulären
Teil der β-Subeinheit. Drei
eng positionierte Tyrosinreste (die Tyrosin-1150-Domäne) müssen alle
phosphoryliert werden, um eine volle Aktivität der Insulinrezeptortyrosinkinase
(IRTK) zu erhalten, die das Signal durch Tyrosinphosphorylierung
von anderen Zellsubstraten, einschließlich Rezeptorsubstrat-1 (IRS-1)
weiter stromabwärts überträgt (Wilden
et al., J. Biol. Chem. 267: 16660–16668 (1992); Myers und White,
Diabetes 42: 643–650
(1993); Lee und Pilch, Am. J. Physiol. 266: C319–C334 (1994); White et al.,
J. Biol. Chem. 263: 2969–2980
(1988)). Die strukturelle Basis für die Funktion des Tyrosintripletts
wurde durch röntgenkristallografische
Studien von IRTK, die zeigten, dass Tyrosin-1150 in seinem unphosphorylierten
Zustand selbsthemmend ist (Hubhard et al., Nature 372: 746–754 (1994)),
und des aktivierten IRTK (Hubhard, EMBO J. 16: 5572–5581 (1997))
bereitgestellt.
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Mehrere
Studien weisen deutlich darauf hin, dass die Aktivität des autophosphorylierten
IRTK durch Dephosphorylierung in vitro (erörtert in Goldstein, Receptor
3: 1–15
(1993); Mooney und Anderson, J. Biol. Chem. 264: 6850–6857 (1989))
umgekehrt werden kann, wobei die triphosphorylierte Tyrosin-1150-Domäne verglichen
mit den di- und monophosphorylierten Formen das empfindlichste Ziel
für Proteintyrosinphosphatasen
(PTPasen) ist (King et al., Biochem. J. 275: 413–418 (1991)). Diese Tyrosintriplett-Funktionen
als Kontrollschaltung der IRTK-Aktivität scheint durch die PTP-vermittelte
Dephosphorylierung in vivo eng reguliert zu sein (Khan et al., J.
Biol. Chem. 264: 12931–12940
(1989); Faure et al., J. Biol. Chem. 267: 11215–11221 (1992); Rothenberg et
al., J. Biol. Chem. 266: 8302–8311
(1991)). Die innige Kupplung von PTPasen am Insulinsignalisierungsweg
wird des Weiteren durch den Fund nachgewiesen, dass Insulin die
PTPase-Aktivität
in Rattenhepatomzellen (Meyerovitch et al., Biochemistry 31: 10338–10344 (1992))
und in den Lebern von Alloxan-diabetischen Ratten (Boylan et al.,
J. Clin. Invest. 90: 174–179
(1992)) unterschiedlich reguliert.
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Bis
heute war relativ wenig über
die Identität
der an der IRTK-Regulierung beteiligten PTPasen bekannt. Jedoch
kann die Gegenwart von PTPasen mit Aktivität für den Insulinrezeptor wie vorstehend
angegeben aufgezeigt werden. Des Weiteren kann, wenn der starke
PTPase-Hemmer Pervandat ganzen Zellen zugesetzt wird, ein nahezu
vollständiges
Insulinansprechverhalten in Adipozyten (Fantus et al., Biochemistry
28: 8864–8871
(1989); Eriksson et al., Diabetologia 39: 235–242 (1995)) und im Skelettmuskel
(Leighton et al., Biochem. J. 276: 289–292 (1991)) erhalten werden.
Zudem zeigen andere Studien, dass eine neue Klasse an Peroxovanadiumverbindungen
als leistungsfähige
hypoglykämische
Verbindungen in vivo wirken (Posner et al., vorstehend). Es zeigte
sich, dass zwei dieser Verbindungen leistungsfähigere Hemmer für die Dephosphorylierung
des Insulinrezeptors als für
den EGF-Rezeptor waren, was darauf hinweist, dass sogar derartige
relativ unselektive Hemmer beim Regulieren von verschiedenen Signalumwandlungswegen
etwas Spezifität
fördern
können.
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Es
wurde jüngst
von Forschungsgruppen aus Montreal gefunden, dass durch Mäuse, welchen
das Proteintyrosinphosphatase-1B-Gen (PTP1B) (Elchebly et al., Science
283: 1544–1548
(1999)) fehlt, Mäuse
erhalten wurden, die eine erhöhte
Insulinempfindlichkeit und Resistenz gegen nahrungsinduzierte Fettsucht zeigten.
Bedeutsamerweise wurden diese Ergebnisse von einem anderen Forschungsteam
aus Boston unabhängig
bestätigt
und erweitert (Klaman et al., Mol. Cell. Biol. 20: 5479–5489 (2000)).
Die verbesserte Insulinempfindlichkeit der PTP–/–-Mäuse war
auch in Glucose- und Insulintoleranztests ersichtlich. Die PTP-1B-Knock-out-Maus
zeigte viele Eigenschaften, deren Vorhandensein für eine Antidiabetesbehandlung hocherwünscht wären. Am
Bedeutsamsten wuchsen die Knock-out-Mäuse normal und waren fruchtbar
und zeigten kein erhöhtes
Vorkommnis von Krebs, da es offensichtlich Bedenken gäbe, wenn
man die mitogenen Eigenschaften von Insulin in Betracht zieht. Aus
der Sicht von Diabetes waren die ersten erkennbaren Merkmale der
Knock-out-Tiere, dass die Blutglucose- und Insulingehalte vermindert
wa ren und die daraus folgende deutliche Zunahme in der Insulinempfindlichkeit
der Knock-out-Tiere. Außerdem
wurde gefunden, dass die Insulin-stimulierten Tyrosinphosphorylierungsgrade
von IR and IRS-1 in Muskel- und Leber- – jedoch nicht in Fettgewebe – erhöht/verlängert waren.
Folglich wäre
das Hauptzielgewebe für
diesen Zugangstyp scheinbar die Insulinwirkung in der Leber und
im Muskel Dies steht im Gegensatz zu dem Hauptzielgewebe für die PPARγ-Agonistenklasse von
Insulinsensibilatoren (die „-dione"), bei welchem es
sich um Fettgewebe handelt (Murphy & Nolan, Exp. Opin. Invest. Drugs
9: 1347–1361
(2000)). Mehrere andere „diabetische" Parameter wurden
ebenfalls verbessert, so dass Plasmatriglyceride in den Knock-out-Mäusen vermindert
sind. Jedoch, vielleicht noch deutlicher und unerwarteter, zeigten
die Knock-out-Tiere auch eine Resistenz gegen Gewichtszunahme, wenn
sie auf eine fettreiche Ernährung
gesetzt wurden. Dies steht wiederum im Gegensatz zu der Wirkung
der PPARγ-Agonistenklasse von
Insulinsensibilisatoren, die eher eine Gewichtszunahme induzieren (Murphy & Nolan, vorstehend),
und würde
nahe legen, dass eine Hemmung von PTP-1B eine besonders attraktive
Möglichkeit
für die
Behandlung von fettsüchtigen
Typ-II-Diabetikern sein könnte.
Dies wird auch durch die Tatsache gestützt, dass die heterozygoten
Mäuse aus
dieser Studie viele dieser erwünschten
Merkmale zeigten. In der Montreal-Studie traten keine geschlechtsspezifischen
Unterschiede auf, wohingegen in der Boston-Studie im Allgemeinen
die männlichen
Tiere ein größeres Ansprechverhalten
auf PTP-1B hatten, in dem sie knocked out waren. In beiden Studien
wurde gefunden, dass die Reduktion der Gewichtszunahme der Knock-out-Tiere
mit fettreicher Ernährung
aufgrund einer verminderten Fettzellmasse vorlag, obwohl Unterschiede
in Bezug auf die Fettzellanzahl vorlagen. Die Leptingehalte waren
vermutlich als Widerspiegelung der verminderten Fettmasse in den
Knock-out-Mäusen
ebenfalls geringer. Bedeutsamerweise fand die Boston-Gruppe auch,
dass die Knock-out-Tiere einen erhöhten Energieverbrauch um 20%
und einen erhöhten
Atmungskoeffizienten verglichen mit dem Wild-Typ aufwiesen; wiederum
zeigten heterozygote Tiere einen Zwischengrad des Energieverbrauchs.
Ob diese Erhöhung
in der Stoffwechselgeschwindigkeit eine Widerspiegelung der Wirkungen
von PTP-1B auf das Insulin- signalisieren
oder auf andere Zellbestandteile ist, bleibt zu ermitteln, jedoch
ist die Grundbotschaft, dass eine Hemmung dieses Enzyms eine wirksame
antidiabetische und vielleicht auch Antifettsucht-Therapie sein
kann, klar.
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Es
sollte angemerkt werden, dass der Basistyrosinphosphorylierungsgrad
der Insulinrezeptortyrosinkinase in den PTP-1B-Knock-out-Mäusen nicht
erhöht
zu sein scheint, was zu der Situation nach einer Insulinbehandlung
gegensätzlich
ist, wo eine erhöhte
oder verlängerte
Phosphorylierung vorliegt. Dies könnte darauf hinweisen, dass
andere PTPs den Basisphosphorylierungszustand des Insulinrezeptors
in den Knock-out-Mäusen – und vielleicht
im Menschen steuern.
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Frühere Funde
sind gemäß den von
Elchebly et al. (vorstehend) (jüngst
erörtert
in Kennedy, Biomed. Pharmacother. 53: 466–470 (1999)) erörterten
Ergebnissen. So wurde gefunden, dass eine hohe Glucosekonzentration
Insulinresistenz induziert und die Expression von PTP1B in der Ratte
erhöht
(wobei Fibroblaste den menschlichen Insulinrezeptor exprimieren
(Maegawa et al., J. Biol. Chem. 270: 7724–7730 (1995)). Es wurde gefunden,
dass in der Ratte L6-Zellen, Insulin und insulinartiger Wachstumsfaktor
I (IGF-1) eine erhöhte
PTPase-Aktivität,
einschließlich
eine erhöhte
PTP1B-Expression induzieren (Kenner et al. J. Biol. Chem. 266: 25455–25462 (1993)).
Zudem zeigte dieselbe Gruppe, dass PTP1B direkt mit dem aktivierten
IR wechselwirken (Seely et al. Diabetes 45: 1379–1385 (1996)) und direkt als
negativer Regulator von Insulin- und IGF-1-stimutiertem Signalisieren
wirken kann (Kenner et al. J. Biol. Chem. 271: 19810–19816 (1996)).
Eine osmotische Beladung von Ratten-KRC-7-Hepatomzellen mit neutralisierenden
Anti-PTP1B-Antikörpern wies
ebenfalls auf eine Rolle für
PTP1B beim negativen Regulieren des Insulinsignalisierungswegs hin
(Akmad et al. J. Biol. Chem. 270. 20503–20508 (1995)).
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Auch
wurden andere PTPasen als Regulatoren des Insulinsignalisierungswegs
in Verbindung gebracht. So wurde gefunden, dass die allgegenwärtige SH2-Domäne, die
PTPase, PTP1D/SHP-2 enthält
(Vogel et al., 1993, vorstehend) mit IRS-1, jedoch scheinbar nicht
dem IR selbst assoziiert und dies (nicht) dephosphoryliert (Kuhné et al.,
J. Biol. Chem. 268: 11479–11481
(1993); (Kuhné et
al., J. Biol. Chem. 269: 15833–15837
(1994)).
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Andere
Studien legen nahe, dass PTPasen vom Rezeptor-Typ oder Membran-assoziierte PTPasen
an der IRTK-Regulierung beteiligt sind (Faure et al., J. Biol. Chem.
267: 11215–11221
(1992), (Häring
et al., Biochemistry 23: 3298–3306
(1984); Sale, Adv. Prot. Phosphatases 6: 159–186 (1991)). Hashimoto et
al. schlugen vor, dass LAR eine Rolle bei der physiologischen Regulierung
von Insulinrezeptoren in intakten Zellen spielen könnte (Hashimoto
et al., J. Biol. Chem. 267: 13811–13814 (1992)). Ihr Rückschluss
wurde durch Vergleichen der Dephosphorylierungs-/Inaktivierungsgeschwindigkeit
von gereinigtem IR unter Verwendung von rekombinantem PTP1B sowie
der zytoplasmischen Domänen
von LAR und PTPα erreicht.
Antisense-Hemmung wurde zum Untersuchen der Wirkung von LAR auf
das Insulinsignalisieren in einer Rattenhepatomzelllinie verwendet (Kulas
et al., J. Biol. Chem. 270: 2435–2438 (1995)). Eine Suppression
von LAR-Proteingehalten um etwa 60 Prozent ist parallel mit einer
etwa 150–prozentigen
Erhöhung
in der Insulin-induzierten Autophosphorylierung. Jedoch wurde nur
eine bescheidene 35-prozentige Erhöhung in der IRTK-Aktivität beobachtet,
wohingegen die insulinabhängige
Phosphatidylinositol-3-kinase-(PI 3-Kinase)Aktivität um 350 Prozent deutlich erhöht war.
Reduzierte LAR-Gehalte veränderten
den Basisgrad der IRTK-Tyrosinphosphorylierung oder -aktivität nicht.
Die Autoren spekulieren, dass LAR Tyrosinreste dephosphorylieren
könnte,
die für
die PI3-Kinaseaktivierung entweder auf dem Insulinrezeptor selbst
oder auf einem Stromabwärtssubstrat
entscheidend sind. Widersprüchliche
Ergebnisse wurden für
PTP-LAR-Knock-out-Mäuse
berichtet. So berichteten Goldstein und Mitarbeiter, dass transgene
Mäuse,
welchen es an PTP-LAR mangelt, profunde Defekte in der Glucose-Homöostase zeigen
(Ren et al., Diabetes 47: 493–497
(1998)). Jedoch ist es schwierig, den Beitrag des PTP-LAR-Mangels
an der Glucosehomöostase
in diesen Mäusen
zu beurteilen, aufgrund der Tatsache, dass die Kontrollmäuse einen
anderen genetischen Hintergrund als die Knock-out-Mäuse hatten.
Darüber
hinaus wurde eine normale Glucosehomöostase in einem anderen Stamm
von PTP-LAR-Knock-out-Mäusen
berichtet (Sorensen et al., Diabetologia 40: A143 (1997)).
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Während frühere Berichte
auf eine Rolle von PTPα bei
der Signalumwandlung durch src-Aktivierung (Zheng et al., Nature
359: 336–339
(1992); den Hertog et al., EMBO J. 12: 3789–3798 (1993)) und Wechselwirkung
mit GRB-2 (den Hertog et al., EMBO J. 13: 3020–3032 (1994); Su et al., J.
Biol. Chem. 269: 18731–18734
(1994)) hinweisen, lieferten Møller,
Lammers und Mitarbeiter Ergebnisse, die eine Funktion dieser Phosphatase
und ihres eng verwandten PTP☐ als negative Regulatoren
des Insulinrezeptorsignals nahe legen (Møller et al., 1995 vorstehend;
Lammers, et al., FEBS Lett. 404: 37–40 (1997). Diese Studien wiesen auch
darauf hin, dass rezeptorartige PTPasen eine beträchtliche
Rolle beim Regulieren des IRTK spielen könnten.
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Andere
Studien zeigten, dass PTP1B und TC-PTP zusätzlich zu den beschriebenen
regulatorischen Rollen beim Insulinsignalisieren wahrscheinlich
an der Regulierung von mehreren anderen Zellprozessen beteiligt
sind. Deshalb sind PTP1B und/oder TC-PTP sowie andere PTPasen, die
strukturelle Schlüsselfunktionen
mit PTP1B und TC-PTP zeigen, wahrscheinlich wichtige therapeutische
Ziele in einer Vielfalt von Erkrankungen von Mensch und Tier. Die
Verbindungen der vorliegenden Erfindung sind zum Modulieren oder
Hemmen von PTP1B und/oder TC-PTP und/oder anderen PTPasen, die mit
den PTPasen strukturelle Schlüsselfunktionen
zeigen, und zur Behandlung von Erkrankungen, in welchen die Modulation
oder Hemmung angezeigt ist, nützlich.
Ein paar Beispiele, die den Umfang der Erfindung in keinster Weise
einschränken
sollen, von Substanzen, die durch PTP1B reguliert werden können, sind
nachstehend angegeben.
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Tonks
und Mitarbeiter entwickelten eine elegante ,Substratanzapf'-Technik, die die
Identifikation des epidermen Wachstumsfaktors (EGF-R) als Hauptsubstrat
von PTP1B in COS-Zellen erlaubte (Flint et al. Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 94: 1680–1685
(1997)). Zudem wurden drei andere noch unidentifizierte Substrate
von PTP1B isoliert. Beispielsweise wurde in diesen Studien – unter
Verwendung der vorstehenden Substratanzapftechnik – gefunden
dass PTP1B zusätzlich
zu dem EGF-R mit aktiviertem plättchenabgeleitetem
Wachstumsfaktorrezeptor (PDGF-R), jedoch nicht mit dem Kolonie-stimulierenden
Faktor-1-Rezeptor (CSF-1R) assoziiert (Liu & Chernoff, Biochem. J. 327: 139–145 (1997)).
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Frühe Studien
zeigten, dass die subzelluläre
Lokalisierung sowie die Enzymaktivität von PTP1B durch Agonist-induzierte
Calpain-katalysierte Spaltung in menschlichen Plättchen reguliert werden kann
(Frangioni et al. EMBO J. 12: 4843–4856 (1993)). Darüber hinaus
korrelierte eine PTP1B-Spaltung mit der Transaktion von reversibler
zu irreversibler Plättchenaggregation.
Folglich könnten
als nicht beschränkendes
Beispiel Verbindungen der vorliegenden Erfindung zum Verhindern
oder Induzieren von irreversibler Plättchenaggregation in dies benötigenden
Individuen verwendet werden. Es wurde vorgeschlagen, dass die spaltungsinduzierte Änderung
in der subzellulären
Lokalisierung von PTP1B (von Membran zu Cytosol) nicht nur in Plättchen,
sondern auch in anderen Zelltypen zu einer unterschiedlichen Substratspezifität führt (Frangioni
et al., vorstehend).
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Das
vorstehende Substratanzapfverfahren wurde des Weiteren zum Identifizieren
der Proteintyrosinkinase p210bcr-abl als
Substrat für
PTP1B verwendet (LaMontagne, Jr. et al. Mol. Cell. Biol. 18: 2965–2975 (1998)).
Diese Studien legen nahe, dass PTP1B als negativer Regulator des
p210bcr-abl-Signalisierens in vivo fungieren könnte. Zudem
wurde jüngste
gefunden, dass PTP1B an das Kupplungsprotein p130Cas in
Rattenfibroblasten binden und dies dephosphorylieren und dadurch
die Transformation durch v-crk, v-src und v-ras, jedoch nicht durch
v-raf supprimieren könnte
(Liu et al. Mol. Cell. Biol. 18: 250–259 (1998)).
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Es
wurde gefunden, dass die transmembrane PTPase CD45, von welcher
angenommen wird, dass sie für
hämopoietische
Zellen spezifisch ist, die Insulinrezeptortyrosinkinase in der menschlichen
Mehrfachmyelomzelllinie U266 negativ reguliert (Kulas et al., J.
Biol. Chem. 271: 755–760
(1996)).
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Des
Weiteren beeinflussen PTPasen die folgenden Hormone oder Erkrankungen
oder Krankheitszustände:
Somatostatin, das Immunsystem/die Autoimmunität, Zell-Zell-Wechselwirkung/Krebs,
Plättchenaggregation,
Osteoporose und Mikroorganismen, wie offenbart in der PCT-Veröffentlichung
WO 99/15529.
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Somatostatin
hemmt mehrere biologische Funktionen, einschließlich Zellwucherung (Lamberts
et al., Molec. Endocrinol. 8: 1289–1297 (1994)). Während ein
Teil der Antiwucherungsaktivitäten
von Somatostatin für
dessen Hemmung von Hormon- und Wachstumsfaktorsekretion (z.B. Wachstumshormon
und epidermen Wachstumsfaktor) sekundär sind, bestehen andere Antiwucherungswirkungen
von Somatostatin aufgrund einer direkten Wirkung auf die Zielzellen.
Beispielsweise hemmen Somatostatinanaloga vermutlich eher über Stimulierung
einer einzelnen PTPase oder einer Untergruppe von PTPasen, als über eine
allgemeine Aktivierung von PTPase-Gehalten in den Zellen das Wachstum
von Bauchspeicheldrüsenkrebs
(Liebow et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86: 2003–2007 (1989);
Colas et al., Eur. J. Biochem. 207: 1017–1024 (1992)).
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PTPasen: Das Immunsystem/Autoimmunität
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Mehrere
Studien legen nahe, dass die PTPase vom Rezeptor-Typ CD45 nicht
nur zur Hemmung von T-Zell-Aktivierung, sondern auch zum Beibehalt
der durch den T-Zell-Rezeptor vermittelten Signalisierungskaskade
eine entscheidende Rolle spielt. Diese Studien sind in (Weiss A.,
Ann. Rev. Genet. 25: 487–510 (1991);
Chan et al., Annu. Rev. Immunol. 12: 555–592 (1994); Trowbridge und
Thomas, Annu. Rev. Immunol. 12: 85–116 (1994)) erörtert.
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CD45
ist eines der Reichhaltigsten der Zelloberflächenglycoproteine und wird
ausschließlich
in hämopoietischen
Zellen exprimiert. Es zeigte sich, dass CD45 in T-Zellen einer der
entscheidenden Bestandteile der Signalumwandlungsmaschinerie von
Lymphozyten ist. Insbesondere legte eine Beweisführung nahe, dass CD45-Phosphatase
eine Kernrolle bei der antigenstimulierten Wucherung von T-Lymphozyten spielt,
nachdem sich ein Antigen an den T-Zell-Rezeptor gebunden hat (Trowbridge,
Ann. Rev. Immunol, 12: 85–116
(1994)). Mehrere Studien legen nahe, dass die PTPase-Aktivität von CD45
eine Rolle bei der Aktivierung von Lck, ein lymphozytenspezifischer
Vertreter der Proteintyrosinkinase der Src-Familie, spielt (Mustelin et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 86: 6302–6306
(1989); Ostergaard et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86: 8959–8963 (1989)). Diese
Autoren stellten die Hypothese auf, dass die Phosphataseaktivität von CD45
Lck durch Dephosphorylierung eines C-terminalen Tyrosinrests aktiviert,
was wiederum mit der T-Zell-Aktivierung verbunden sein kann. So
wurde gefunden, dass rekombinantes p56lck mit dem rekombinanten
zytoplasmischen CD45-Domäneprotein,
jedoch nicht mit der zytoplasmischen Domäne des verwandten PTPα spezifisch
assoziiert (Ng et al., J. Biol. Chem. 271: 1295–1300 (1996)). Die p56lck-CD45- Wechselwirkung scheint über eine
nicht herkömmliche
SH2-Domänenwechselwirkung
vermittelt zu werden, die kein Phosphotyrosin erfordert. In unreifen
B-Zellen, ein anderer Vertreter der Proteintyrosinkinasen der Src-Familie, scheint
Fyn ein selektives Substrat für CD45
verglichen mit Lck und Syk zu sein (Katagiri et al., J. Biol. Chem.
270: 27987–27990
(1995)).
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Studien
unter Verwendung von transgenen Mäusen mit einer Mutation für das CD45-Exon6
zeigten fehlende reife T-Zellen. Diese Mäuse sprachen auf eine antigene
Herausforderung mit dem typischen T-Zell-vermittelten Ansprechverhalten
nicht an. (Kishihara et al., Cell 74: 143–56 (1993)). Hemmer der CD45-Phosphatase wären deshalb
sehr wirksame therapeutische Mittel in Zuständen, die mit Autoimmunerkrankungen
verbunden sind, mit rheumatoider Arthritis, systemischer Lupuserythematose,
Diabetes Typ 1 und entzündlicher
Darmerkrankung als nicht beschränkende
Beispiele. Eine andere wichtige Verwendung von CD45-Hemmern ist die Immunsuppression
in Verbindung mit Gewebe- oder Zelltransplantation und anderen Zuständen mit
der Notwendigkeit einer Immunsuppressionsbehandlung.
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Es
zeigte sich auch, dass CD45 für
eine Antikörper-vermittelte
Degranulierung von Mastzellen wichtig ist (Berger et al., J. Exp.
Med. 180: 471–6
(1994)). Diese Studien wurden ebenfalls mit Mäusen durchgeführt, welchen
es an CD45 mangelte. In diesem Fall wurde eine IgE-vermittelte Degranulierung
im Wild-Typ jedoch nicht in CD45-armen T-Zellen von Mäusen aufgezeigt.
Diese Daten legen nahe, dass CD45-Hemmer auch eine Rolle bei der
symptomatischen oder therapeutischen Behandlung von allergenen Störungen spielen könnte, mit
Asthma, allergischer Rhinitis, Nahrungsmittelallergie, Ekzemen,
Nesselsucht und Anaphylaxie als nicht beschränkende Beispiele.
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Eine
andere PTPase, eine induzierbare Lymphoid-spezifische Proteintyrosinphosphatase
(HePTP) wurden ebenfalls mit dem Immunansprechverhalten in Verbindung
gebracht. Diese Phosphatase wird sowohl in ruhenden T- als auch
in ruhenden B-Lymphozyten, jedoch nicht in nicht hämopoietischen
Zellen exprimiert. Durch Stimulation dieser Zellen nehmen mRNA-Gehalte
des HePTP-Gens auf das 10–15-Fache
zu (Zanke et al., Eur. J. Immunol. 22: 235–239 (1992)). sowohl in T-
als auch in B-Zellen kann HePTP während einer andauernden Stimulation
zum Modulieren des Immunansprechverhaltens durch Dephosphorylierung
von spezifischen Resten fungieren. Seine genaue Rolle bleibt jedoch
zu definieren.
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Gleichermaßen scheint
das für
hämopoietische
Zellen spezifische SHP-1 als negativer Regulator zu wirken und eine
wesentliche Rolle in der Immunzellentwicklung zu spielen. Gemäß der vorstehend
erwähnten wichtigen
Funktion von CD45, HePTP und SHP-1 können selektive PTPase-Hemmer
attraktive Arzneimittelkandidaten sowohl als Immunsuppressoren als
auch als Immunstimulanzien sein. Jüngste Studien veranschaulichen
das Potential von PTPase-Hemmern als Immunmodulatoren durch Aufzeigen
der Fähigkeit
des nicht selektiven PTPase-Hemmers
auf Vanadium-Basis BMLOV zum Induzieren einer scheinbaren für B-Zellen selektiven
Apoptose verglichen mit T-Zellen (Dawson et al., FEBS Lett. 478:
233–236;
Schieven et al., J. Biol. Chem. 270: 20824–20831 (1995)).
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PTPasen: Zell-Zell-Wechselwirkungen/Krebs
-
Fokale
Adhäsionsplaques,
ein In-vitro-Phänomen,
in welchem spezifische Kontaktpunkte gebildet werden, wenn Fibroblaste
auf geeigneten Substraten wachsen, scheinen zumindest teilweise
Zellen und deren natürliche
Umgebungen nachzuahmen, Mehrere fokale Adhäsionsproteine werden an Tyrosinresten
dephosphoryliert, wenn Fibropblaste an extrazellulärer Matrix
anhaften und sich darauf verbreiten (Gumbiner, Neuron 11: 551–564 (1993)).
Jedoch kann eine anormale Tyrosinphosphorylierung dieser Proteine
zur Zelltransformation führen.
Der enge Zusammenhang zwischen PTPasen und fokalen Adhäsionen wird
den Fund von mehreren intrazellulären PTPasen mit Ezrin-artigen
N-terminalen Domänen,
z.B. PTPMEG1 (Gu et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88: 5867–5871 (1991),
PTPH1 (Yang und Tonks, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88: 5949–5953 (1991))
und PTPD1 (Møller
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 7477–7481 (1994)) gestützt. Die
Exrin-artige Domäne
zeigt Ähnlichkeit
mit mehreren Proteinen, von welchen angenommen wird, dass sie als
Verknüpfungen
zwischen der Zellmembran und dem Zytoskelett wirken. Es wurde gefunden,
dass PTPD1 durch c-src in vitro dephosphoryliert wird und damit
assoziiert, und es wird die Hypothese aufgestellt, dass es an der
Regulierung der Phosphorylierung von fokalen Adhäsionen beteiligt ist (Møller et
al., vorstehend).
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PTPasen
können
der Wirkung von Tyrosinkinasen, einschließlich denjenigen, die für die Phosphorylierung
von fokalen Adhäsionsproteinen
verantwortlich sind, entgegensetzen und können deshalb als neutrale Transformationshemmer
fungieren. TC-PTP und insbesondere die verkürzte Form dieses Enzyms (Cool
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87: 7280–7284 (1990)) kann die Transformationsaktivität von v-erb
und v-fms hemmen (Lammers et al., J. Biol. Chem. 268: 22456–22462 (1993),
Zander et al., Oncogene 8: 1175–1182
(1993)). Darüber
hinaus wurde gefunden, dass die Transformation durch die onkogene
Form des HER2/neu-Gens in NIH-3T3-Fribroblasten, die PTP1B überexprimieren,
supprimiert war (Brown-Shimer et al., Cancer Res. 52: 478–482 (1992)).
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Es
wurde gefunden, dass der Expressionsgrad von PTP1B in einer mit
neu transformierten Brustzelllinie erhöht war (Zhay et al., Cancer
Res. 53: 2272–2278
(1993)). Die enge Beziehung zwischen Tyrosinkinasen und PTPasen
bei der Entwicklung von Krebs wird des Weiteren durch den Fund nachgewiesen,
dass PTPε in
Mäusebrusttumoren
in transgenen Mäusen,
die c-neu und v-Ha-ras, jedoch nicht c-myc or int-2 überexprimieren,
hoch exprimiert ist (Elson und Leder, J. Biol. Chem. 270: 26116–26122 (1995)).
Des Weiteren wurde das menschliche Gen, das PTPγ kodiert, was auf 3p2l, eine
Chromosomenregion, die häufig
in Nieren und Lungenkarzinomen deletiert ist, abgebildet (LaForgia
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88: 5036–5040 (1991)).
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In
diesem Zusammenhang scheint es bemerkenswert, dass PTPasen am Steuern
des Wachstums von Fibroblasten beteiligt zu sein scheinen. So wurde
gefunden, dass Swiss-3T3-Zellen, die mit hoher Dichte geerntet wurden,
eine Membran-assoziierte PTPase enthalten, deren Aktivität um durchschnittlich
das 8-Fache höher
als diejenige von Zellen ist, die mit niedriger oder mittlerer Dichte
geerntet wurden (Pallen und Tong, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:
6996–7000
(1991)). Es wurde von den Autoren die Hypothese aufgestellt, dass eine
dichteabhängige
Hemmung des Zellwachstums die regulierte Zunahme der Aktivität der fraglichen
PTPases(n) beteiligt. Gemäß dieser
Sichtweise zeigte eine memgrangebundene PTPase vom Rezeptor-Typ, DEP-1,
verbesserte (>= 10-fach)
Expressionsgrade mit zunehmender Zelldichte von menschlichen WI-38-Embryonenlungenfibroblastzelllinien
(Östman
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 9680–9684 (1994)).
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Zwei
eng verwandte PTPasen vom Rezeptor-Typ, PTPκ und PTPμ, können eine homophile Zell-Zell-Wechselwirkung
vermitteln, wenn sie in nicht adhärenten Insektenzellen exprimiert
werden, was nahe legt, dass diese PTPasen eine normale physiologische
Funktion beim Signalisieren von Zelle zu Zelle aufweisen könnten (Gebbink
et al., J. Biol. Chem. 268: 16101–16104 (1993), Brady-Kalnay
et al., J. Cell Biol. 122: 961–972
(1993); Sap et al., Mol. Cell. Biol. 14: 1–9 (1994)). Interessanterweise
wechselwirken PTPκ und
PTPμ trotz
deren Strukturähnlichkeit
nicht miteinander (Zondag et al., J. Biol. Chem. 270: 14247–14250 (1995)).
Aus den vorstehend beschriebenen Studien ist es klar, dass PTPasen
eine wichtige Rolle beim Regulieren des normalen Zellwachstums spielen
könnten.
Jedoch weisen, wie vorstehend hervorgehoben, andere Studien darauf hin,
dass PTPasen auch als positive Vermittler des intrazellulären Signalisierens
fungieren können
und folglich mitogene Ansprechverhalten induzieren oder verbessern.
Eine erhöhte
Aktivität
von bestimmten PTPasen könnte
deshalb zur Zelltransformation und Tumorbildung führen. Tatsächlich wurde
in einer Studie gefunden, dass eine Überexpression von PTPα zur Transformation
von Rattenembryofibroblasten führt
(Zheng, vorstehend). Zudem wurde gefunden, dass SAP-1 in pankreatischen
und kolorektalen Krebszellen hoch exprimiert ist. SAP-1 wird an
die Chromosom-19-Region q13.4 abgebildet und könnte mit dem karzinoembryonischen
Antigen verwandt sein, das an 19g13.2 abgebildet ist (Uchida et
al., J. Biol. Chem. 269: 12220–12228
(1994)). Des Weiteren dephosphoryliert die dsPTPase, cdc25, cdc2
an Thr14/Tyr-15 und fungiert dadurch als positiver Mitoseregulator
(erörtert
von Hunter, Cell 80: 225–236
(1995)). Hemmer von spezifischen PTPasen sind deshalb wahrscheinlich
von beträchtlichem
therapeutischem Wert bei der Behandlung von bestimmten Krebsformen.
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PTPasen: Plättchenaggregation
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PTPasen
scheinen an der Plättchenaggregation
zentral beteiligt zu sein. So führt
die Agonist-induzierte Plättchenaktivierung
zu einer Calpain-katalysierten Spaltung von PTP1B mit einer gleichzeitigen
2-fachen Stimulation der PTPase-Aktivität (Frangioni et al., EMBO J.
12: 4843–4856
(1993)). Die Spaltung von PTP1B führt zu subzellulärer Umlokalisierung
des Enzyms und korreliert mit dem Übergang von reversibler zu
irreversibler Plättchenaggregation
in plättchenreichem
Plasma. Zudem wurde gefunden, dass die PTPase enthaltende SH2-Domäne, SHP-1,
zum Zytoskelett in Plättchen
nach einer Thrombinstimulation in einer aggregationsabhängigen Weise
translokalisiert (Li et al., FEBS Lett. 343: 89–93 (1994)).
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Obwohl
einige Details in den vorstehenden zwei Studien erfragt wurden,
besteht eine Gesamtübereinkunft,
dass PTP1B und SHP-1 beträchtliche
funktionelle Rollen bei der Plättchenaggregation
spielen (Ezumi et al., J. Biol. Chem. 270: 11927–11934 (1995)). Gemäß diesen
Beobachtungen führt
eine Behandlung von Plättchen
mit dem PTPase-Hemmer Pervanadat zu einer deutlichen Zunahme an
Tyrosinphosphorylierung, Sekretion und Aggregation (Purniglia et
al., Biochem. J. 286: 441–449
(1992)).
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PTPasen: Osteoporose
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Die
Geschwindigkeit der Knochenbildung wird durch die Anzahl und die
Aktivität
von Osteoblasten bestimmt, die wiederum durch die Geschwindigkeit
der Wucherung bzw. Differenzierung von Osteoblastvorläuferzellen
bestimmt werden. Histomorphometrische Studien weisen darauf hin,
dass die Osteoblastanzahl der primäre Bestimmungsfaktor der Geschwindigkeit
der Knochenbildung beim Menschen ist (Gruber et al., Mineral Electrolyte
Metab. 12: 246–254
(1987), erörtert
in Lau et al., Biochem. J. 257: 23–36 (1989)). Säurephosphatasen/PTPasen
können
an der negativen Regulierung der Osteoblastwucherung beteiligt sein.
So wurde gefunden, dass Fluorid, das Phosphatasehemmaktivität aufweist,
die Knochendichte der Wirbelsäule
in Osteoporotikern durch Erhöhen
der Osteoblastwucherung erhöht
(Lau et al., J. Biol. Chem. 260: 4653–4660 (1985), Lau et al., J.
Biol. Chem. 262: 1389–1397
(1987), Lau et al., Adv. Protein Phosphatases 4: 165–198 (1987)).
Interessanterweise wurde der Grad an membrangebundener PTPase-Aktivität drastisch
erhöht,
wenn die osteoblastartige Zelllinie UMR 106.06 auf Matrix vom Kollagen-Typ
1 verglichen mit unbeschichteter Gewebekulturplatte wuchs. Da eine
deutliche Zunahme in der PTPase-Aktivität in dichteabhängigen wachstumsruhenden
Fibroblasten beobachtet wurde (Pallen und Tong, Proc. Natl. Acad.
Sci. 88: 6996–7000
(1991)), könnte
spekuliert werden, dass die erhöhte
PTPase-Aktivität
direkt das Zellwachstum hemmt. Die mitogene Wirkung von Fluorid
und anderen Phopshatasehemmern (Molybdat und Vanadat) kann folglich durch
deren Hemmung von Säurephosphatasen/PTPasen
erklärt
werden, die die Zellwucherung von Osteoblasten negative regulieren.
Die komplexe Natur der Beteiligung von PTPasen an der Knochenbildung
ist des Weiteren durch die Identifikation einer neuen Parathyroid-regulierten
PTPase vom Rezeptor-Typ, OST-PTP,
exprimiert in Knochen und Hoden, erklärt werden (Mauro et al., J.
Biol. Chem. 269: 30659–30667
(1994)). OST-PTP wird nach der Differenzierung und Matrixbildung
von primären
Osteoblasten nach oben reguliert und anschließend in den Osteoblasten, die
Knochen in Kultur aktiv mineralisieren, nach unten reguliert. Es
kann die Hypothese aufgestellt werden, dass PTPase-Hemmer die Differenzierung
durch Hemmung von OST-PTP oder anderen PTPasen verhindern können, was
zu einer fortgesetzten Wucherung führt. Dies würde mit den vorstehend erwähnten Wirkungen
von Fluorid und der Beobachtung, dass der Tyrosinphosphatasehemmer
Orthovanadat die Osteoblastwucherung und Matrixbildung zu verbessern
scheint, übereinstimmen
(Lau et al., Endocrinology 116: 2463–2468 (1988)). Zudem wurde
beobachtet, dass Vanadat, Vanadyl und Pervanadat alle das Wachstum
der osteoblastartigen Zelllinie UMR106 erhöhte. Vanadyl und Pervanadat
waren stärkere
Stimulanzien für
das Zellwachstum als Vanadat. Nur Vanadat konnte die Zelldifferenzierung
regulieren, wie gemessen durch die alkalische Phosphatasezellaktivität (Cortizo
et al., Mol. Cell. Biochem. 147: 97–102 (1995)). Es ist für die vorliegende
Erfindung von besonderem Interesse, dass mehrere Studien zeigten,
dass Biphosphonate wie Alendronat und Tiludronat die PTPase-Aktivität in Osteoclasten
hemmen und dass die Hemmung der PTPase-Aktivität mit der Hemmung der Osteoclastbildung
und Knochenresorption in vitro korrelierte (Schmidt et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93: 3068–3073 (1996); Murakami et al.,
Bone 20: 399–404
(1997); Opas et al., Biochem. Pharmacol. 54: 721–727 (1997); Skorey et al.,
J. Biol. Chem. 272: 22472–22480
(1997)). Folglich können
andere PTPase-Hemmer als Biphosphonate zur Vorbeugung und/oder Behandlung
von Osteoporose möglicherweise
wirksam sein.
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PTPasen: Mikroorganismen
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Dixon
und Mitarbeiter richteten Aufmerksamkeit auf die Tatsache, dass
PTPasen ein Schlüsselelement
bei den pathogenen Eigenschaften von Yersinia sein können (erörtert in
Clemens et al. Molecular Microbiology 5: 2617–2620 (1991)). Dieser Fund
war ziemlich überraschend,
da gelehrt wurde, dass Tyrosinphoshat in Bakterien nicht vorhanden
ist. Die Gattung Yersinia umfasst 3 Spezies: Y. pestis (verantwortlich
für Beulenpest),
Y. pseudoturberculosis und Y. enterocolitica (die Darmentzündung und
Mesenteriallymphadenitis verursachen). Interessanterweise wurde
eine zweifach spezifische Phosphatase, VH1, im Vaccinia-Virus identifiziert
(Guan et al., Nature 350: 359–263
(1991)). Diese Beobachtungen weisen darauf hin, dass PTPasen entscheidende
Rollen bei mikrobiellen und parasitären Injektionen spielen können und
heben des Weiteren PTPase-Hemmer als neues, mögliches Behandlungsprinzip
von Infektionserkrankungen hervor.
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WO
99/46267 offenbart Verbindungen, die pharmakologisch nützliche
Hemmer von PTPasen sind. Jedoch offenbart die vorliegende Erfindung,
die eine neue Auswahl unter WO 99/46267 repräsentiert, eine Klasse von Verbindungen,
die überraschenderweise
gegen Proteintyrosinphosphatasen (z.B. PTP1B) leistungsfähiger als
diejenigen sind, die in WO 99/46267 offenbart sind
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BESCHREIBUNG
DER ERFINDUNG
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Die
vorliegende Erfindung betrifft Verbindungen der Formel 1, wobei
n, m, X, R1, R2,
R3, R4, R5 und R6 wie nachstehend
definiert sind.
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In
der vorstehenden Formel 1
ist n 1;
ist m 1;
ist X
S;
ist R1 COOR3;
ist
R2 Wasserstoff;
ist R3 Wasserstoff,
C1-C6Alkyl, ArylC1-C6alkyl, C1-C6AlkylcarbonyloxyC1-C6alkyl oder C1-C6alkylcarbonyloxyarylC1-C6alkyl;
ist R4 Wasserstoff;
sind
R5 und R6 unabhängig voneinander
Wasserstoff, Trihalogenmethyl, C1-C6Alkyl,
Aryl, ArylC1-C6alkyl,
Oxo, C1-C6AlkyloxyC1-C6alkyl, ArylC1-C6alkyloxyC1-C6alkyl, C1-C6AlkylthioC1-C6alkyl, ArylC1-C6alkylthioC1-C6alkyl, NR8R9, R8R9NC1-C6alkyl, C1-C6AlkylaminoC1-C6alkyl, ArylaminoC1-C6alkyl, ArylC1-C6alkylaminoC1-C6alkyl, Di(arylC1-C6alkyl)aminoC1-C6alkyl, C1-C6Alkylcarbonyl, C1-C6AlkylcarbonylC1-C6alkyl, ArylC1-C6alkylcarbonyl, A rylC1-C6alkylcarbonylC1-C6alkyl, C1-C6Alkylcarbonylamino, C1-C6AlkylcarbonylaminoC1-C6alkyl, -carbonylNR8C1-C6alkylCOR12, ArylC1-C6alkylcarbonylamino,
ArylC1-C6alkylcarbonylaminoC1-C6alkyl, ArylcarbonylaminoC1-C6alkyl, CONR8R9, oder C1-C6Alkyl-CONR8R9 ist, wobei die
Alkylgruppen wahlweise substituiert sind mit Halogen, Cyano, Nitro,
Trihalogenmethyl, Hydroxy, Oxo, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl, C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl,
wobei die Arylgruppen wahlweise substituiert sind mit Halogen, Cyano,
Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl, Aryl, Aryl-C1-C6alkyl, C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl;
und R12 NR8R9 oder C1-C6AlkylNR8R9 ist;
ist R7 Wasserstoff
oder Arylalkyl, wahlweise substituiert mit Methoxy;
sind R8 und R9 jeweils
unabhängig
voneinander ausgewählt
aus C1-C6Alkyl,
Aryl, ArylC1-C6alkyl, C1-C6Alkylcarbonyl,
C1-C6Alkyloxocarbonyl,
Arylcarbonyl, Aryloxocarbonyl, ArylC1-C6alkylcarbonyl, ArylC1-C6alkyloxocarbonyl, C1-C6Alkylcarboxy,
ArylC1-C6alkylcarboxy,
R10R11NCarbonylC1-C6alkyl, wobei
die Alkylgruppen wahlweise substituiert sind mit Halogen, Cyano,
Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy, Oxo, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl, C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl,
wobei die Arylgruppen wahlweise substituiert sind mit Halogen, Cyano,
Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy, COOR3,
CONR8R9, C1-C6Alkyl, Aryl,
Aryl-C1-C6alkyl,
C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl oder ArylC1-C6alkylcarbonyl; oder
bilden R8 und R9 zusammen
mit dem Stickstoff, an welchem sie angelagert sind, ein gesättigtes,
teilweise gesättigtes
oder aromatisches cyclisches, bicyclisches oder tricyclisches Ringsystem,
das 3 bis 14 Kohlenstoffatome und 0 bis 3 zusätz liche Heteroatome, ausgewählt aus
Stickstoff, Sauerstoff oder Schwefel, enthält, wobei das Ringsystem wahlweise
substituiert sein kann mit mindestens einem C1-C6Alkyl,
Aryl, ArylC1-C6alkyl, Hydroxy,
Oxo, C1-C6Alkyloxy,
ArylC1-C6alkyloxy, C1-C6AlkyloxyC1-C6alkyl, NR10R11 oder C1-C6AlkylaminoC1-C6alkyl,
wobei R10 und R11 ausgewählt sind
aus Wasserstoff, C1-C6Alkyl,
Aryl, ArylC1-C6alkyl,
C1-C6Alkylcarbonyl,
Arylcarbonyl, ArylC1-C6alkylcarbonyl,
C1-C6Alkylcarboxy oder ArylC1-C6alkylcarboxy; wobei die Alkylgruppen wahlweise
substituiert sind mit Halogen, Cyano, Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy,
Oxo, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl,
C1-C6Alkyloxy, Aryloxy,
ArylC1-C6alkyloxy,
NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl,
wobei die Arylgruppen wahlweise substituiert sind mit Halogen, Cyano,
Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy, COOR3,
CONR8R9, C1-C6Alkyl, Aryl,
Aryl-C1-C6alkyl, C1-C6Alkyloxy, Aryloxy,
ArylC1-C6alkyloxy,
NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl;
oder
sind R8 und R9 jeweils
unabhängig
voneinander ein gesättigtes
oder teilweise gesättigtes
cyclisches 5-, 6- oder 7-gliedriges Amin, Imid oder Lactam;
oder
ein Salz davon mit einer pharmazeutisch verträglichen Säure oder Base oder ein beliebiges
optisches Isomer oder Gemisch von optischen Isomeren, einschließlich eines
racemischen Gemischs, oder eine beliebige tautomere Form,
mit
der Maßgabe,
dass nicht alle Reste R3, R5 und
R6 Wasserstoff sind.
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Die
Verbindungen der Erfindung können
des Weiteren derart modifiziert sein, dass sie als Prodrug wirken.
-
Es
ist ein weithin bekanntes Problem in der Arzneimittelentdeckung,
dass Verbindungen wie Enzymhemmer in biochemischen Tests sehr leistungsfähig und
selektiv sein können
und dennoch in vivo inaktiv sind. Dieser Mangel an so genannter
Bioverfügbarkeit
kann einer Anzahl von verschiedenen Faktoren wie dem Mangel an schlechter
Absorption im Darm, dem ersten Durchgangsstoffwechsel in der Leber,
der schlechten Zellaufnahme zugeschrieben werden. Obwohl die die
Bioverfügbarkeit
bestimmenden Faktoren nicht völlig
klar sind, gibt es in der wissenschaftlichen Literatur – dem Fachmann
bekannt – viele
Beispiele dafür,
wie Verbindungen, die in biochemischen Tests leistungsfähig und
selektiv sind, jedoch geringe oder keine Aktivität in vivo zeigen, zu Arzneimitteln,
die biologisch aktiv sind, zu modifizieren sind. Es liegt im Umfang
der Erfindung, die Verbindungen der Erfindung, genannt die ,ursprüngliche
Verbindung', durch
Anlagern von chemischen Gruppen, zu modifizieren, die die Bioverfügbarkeit
der Verbindungen in einer derartigen Weise verbessern, dass die Aufnahme
in Zellen oder Säugern
erleichtert wird. Beispiele für
die Modifikationen, die in keinster Weise den Umfang der Erfindung
einschränken
sollen, schließen
das Ändern
von einer oder mehreren Carboxygruppen zu Estern (z.B. Methylestern,
Ethylestern, Acetoxymethylestern oder anderen Acyloxymethylestern)
ein. Verbindungen der Erfindung, ursprüngliche Verbindungen, die derart
modifiziert sind, dass chemische Gruppen angelagert sind, werden
,modifizierte Verbindungen' genannt.
Die chemischen Gruppen können
in den Ansprüchen
dieser Erfindung auftauchen oder nicht. Andere Beispiele für modifizierte
Verbindungen, die den Umfang der Erfindung in keinster Weise einschränken sollen,
sind Verbindungen, die an spezifischen Positionen cyclisiert wurden – so genannte
,cyclische Verbindungen' – die bei
Aufnahme in Zellen oder Säugern
an derselben (denselben) spezifischen Position(en) im Molekül hydrolysiert
werden, um die Verbindungen der Erfindung, die ursprünglichen
Verbindungen, zu erhalten, die dann als ,nicht cyclisch' gelten. Zum Vermeiden
jeglichen Zweifels ist es klar, dass die letzteren ursprünglichen
Verbindungen in den meisten Fällen
andere cyclische oder heterocyclische Strukturen enthalten, die
nach der Aufnahme in Zellen oder Säugern nicht hydrolysiert werden. Im
Allgemeinen zeigen die modifizierten Verbindungen in biochemi schen
Tests kein Verhalten, das demjenigen der ursprünglichen Verbindung, d.h. den
entsprechenden Verbindungen der Erfindung ohne die angelagerten chemischen
Gruppen oder den Modifikationen, gleicht. Die modifizierten Verbindungen
können
in biochemischen Tests sogar inaktiv sein. Jedoch können diese
angelagerten chemischen Gruppen der modifizierten Verbindungen nach
der Aufnahme in Zellen oder Säugern
wiederum spontan oder durch endogene Enzyme oder Enzymsysteme entfernt
werden, um Verbindungen der Erfindung, ursprüngliche Verbindungen, zu erhalten. ,Aufnahme' ist als beliebiger
Prozess definiert, der zu einer beträchtlichen Konzentration der
Verbindung in den Zellen oder in Säugern führt. Nach der Aufnahme in Zellen
oder Säugern
und nach der Entfernung der angelagerten chemischen Gruppe oder
Hydrolyse der cyclischen Verbindung können die Verbindungen dieselbe Struktur
wie die ursprünglichen
Verbindungen aufweisen und dadurch ihre Aktivität zurück erhalten und somit in Zellen
und/oder in vivo nach der Aufnahme aktiv werden. Eine Anzahl an
dem Fachmann weithin bekannten Verfahren kann folglich verwendet
werden, um zu verwirklichen, dass die angelagerten chemischen Gruppen entfernt
wurden, oder dass die cyclische Verbindung nach der Aufnahme in
Zellen oder Säugern
hydrolysiert wurde. Als Beispiel, das den Umfang der Erfindung in
keinster Weise einschränken
soll, ist Folgendes bereitgestellt. Eine Säugerzellinie, die von der American
Tissue Type Collection oder anderen ähnlichen staatlichen oder handelsüblichen
Quellen erhalten werden kann, wird mit der modifizierten Verbindung
inkubiert. Nach der Inkubation unter dem Fachmann weithin bekannten
Bedingungen werden die Zellen geeignet gewaschen, lysiert, und das
Lysat wird isoliert. Geeignete, dem Fachmann weithin bekannte Kontrollen
müssen
eingeschlossen sein. Eine Anzahl an unterschiedlichen Verfahren
können
wiederum zum Extrahieren und Reinigen der Verbindung aus dem Lysat
verwendet werden. Die Verbindung kann die angelagerten chemischen
Gruppen beibehalten oder nicht, oder die cyclische Verbindung kann
hydrolysiert worden sein oder nicht. Gleichermaßen kann eine Anzahl an dem
Fachmann weithin bekannten Verfahren zum strukturellen und chemischen
Charakterisieren der gereinigten Verbindung verwendet werden. Da
die gereinigte Verbindung von dem Zelllysat extrahiert und damit
von der Zellli nie aufgenommen wurde, wird ein Vergleich der strukturell
und chemisch charakterisierten Verbindung mit demjenigen der ursprünglich modifizierten
Verbindung (d.h. ohne die angelagerte chemische Gruppe oder die
nicht cyclische Verbindung) dem Fachmann unmittelbar Informationen
darüber
bereitstellen, ob die angelagerte chemische Gruppe in der Zelle
entfernt wurde oder ob die cyclische Verbindung hydrolysiert wurde.
Als eine weitere Analyse kann die gereinigte Verbindung einer Enzymkinetikanalyse,
wie detailliert in der vorliegenden Erfindung beschrieben, unterzogen
werden. Gleicht das Kinetikprofil demjenigen der ursprünglichen
Verbindung ohne die angelagerte chemische Gruppe, unterscheidet
sich jedoch von der modifizierten Verbindung, bestätigt dies,
dass die chemische Gruppe entfernt wurde oder dass die cyclischen Verbindungen
hydrolysiert wurden. Ähnliche
Techniken können
zum Analysieren von Verbindungen der Erfindung in ganzen Tieren
und Säugern
verwendet werden.
-
Bei
einer bevorzugten Prodrug handelt es sich um Acetoxymethylester
der Verbindungen der vorliegenden Erfindung, die durch das folgende
allgemeine Verfahren hergestellt werden können (C. Schultz et al, The
Journal of Biological Chemistry, 1993, 268, 6316–6322:
Eine Carbonsäure (1 Äquivalent)
wird in trockenem Acetonitril (2 ml pro 0,1 mmol) suspendiert. Diisopropylamin
(3,0 Äquivalente)
wird zugesetzt, gefolgt von Brommethylacetat (1,5 Äquivalente).
Das Gemisch wird unter Stickstoff über Nacht bei Raumtemperatur
gerührt.
Acetonitril wird unter reduziertem Druck entfernt, um ein Öl zu erhalten,
das in Ethylacetat gelöst
und mit Wasser (3×)
gewaschen wird. Die organische Schicht wird über wasserfreiem Magnesiumsulfat
getrocknet. Durch Filtration, gefolgt von Lösungsmittelentfernung wird
ein rohes Öl
erhalten. Das Produkt wird durch Säulenchromatografie über Silicagel
unter Verwendung eines geeigneten Lösungsmittelsystems gereinigt.
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DEFINITIONEN
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Wie
hier verwendet, bedeutet der Begriff „angelagert" oder „-" (z.B. -COR11, was den Carbonylanlagerungspunkt am Gerüst angibt)
eine stabile kovalente Bindung, wobei bestimmte bevorzugte Anlagerungspunkte
dem Fachmann klar sind.
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Die
Begriffe „Halogen" oder „Halo" schließen Fluor,
Chlor, Brom and Iod ein.
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Der
Begriff „Alkyl" schließt geradkettige
gesättigte
C1-C6-, Methylen-
und ungesättigte
aliphatische C2-C6-Kohlenwasserstoffgruppen,
verzweigte gesättigte
C1-C6- und ungesättigte aliphatische C2-C6-Kohlenwasserstoffgruppen,
cyclische gesättigte
C3-C6- und ungesättigte aliphatische
C5-C6-Kohlenwasserstoffgruppen
und geradkettige oder verzweigte gesättigte C1-C6- oder verzweigte gesättigte und geradkettige oder
verzweigte ungesättigte
aliphatische C2-C6-Kohlenwasserstoffgruppen,
substituiert mit cyclischen gesättigten
und ungesättigten
aliphatischen C3-C6-Kohlenwasserstoffgruppen
mit der angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen ein. Zum Beispiel
soll diese Definition Methyl (Me), Ethyl (Et), Propyl (Pr), Butyl
(Bu), Pentyl, Hexyl, Hexyl, Ethenyl, Propenyl, Butenyl, Penentyl,
Hexenyl, Isopropyl (i-Pr), Isobutyl (i-Bu), tert-Butyl (t-Bu), sec-Butyl (s-Bu),
Isopentyl, Neopentyl, Cyclopropyl, Cyclobutyl, Cyclopentyl, Cyclohexyl,
Cyclopentenyl, Cyclohexenyl, Methylcyclopropyl, Ethylcyclohexenyl,
Butenylcyclopentyl und dergleichen einschließen, ist jedoch nicht darauf
beschränkt.
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Der
Begriff „substituiertes
Alkyl" oder „wahlweise
substituiertes Alkyl" stellt
eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe dar, wobei die Substituenten
unabhängig
voneinander ausgewählt
sind aus Halogen, Cyano, Nitro, Trihalogenmethyl, Carbamoyl, Hydroxy,
Oxo, COOR3, CONR8R4, C1-C6Alkyl,
C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy, Thio, C1-C6Alkylthio, Arylthio, A rylC1-C6alkylthio, NR8R9, C1-C6Alkylamino,
Arylamino, ArylC1-C6alkylamino,
Di(arylC1-C6alkyl)amino,
C1-C6Alkylcarbonyl,
ArylC1-C6alkylcarbonyl,
C1-C6alkylcarboxy, Arylcarboxy, ArylC1-C6alkylcarboxy,
C1-C6Alkylcarbonylamino,
-C1-C6alkylaminoCOR12, ArylC1-C6alkylcarbonylamino, Tetrahydrofuranyl, Morpholinyl,
Piperazinyl, -CONR8R9,
-C1-C6alkylCONR8R9, oder einem gesättigten
oder teilweise gesättigten
cyclischen 5-, 6- oder 7-gliedrigen Amin, Imid oder Lactam; wobei
R11 Hydroxy, C1-C6Alkyl, Aryl, ArylC1-C6alkyl, C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy ist und R3 wie vorstehend
definiert oder NR8R9 ist,
wobei R8, R9 wie
vorstehend definiert sind.
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Der
Begriff „gesättigtes,
teilweise gesättigtes
oder aromatisches cyclisches, bicyclisches oder tricyclisches Ringsystem
stellt Aziridinyl, Pyrrolyl, Pyrrolinyl, Pyrrolidinyl, Imidazolyl,
2-Imidazolinyl, Imidazolidinyl, Pyrazolyl, 2-Pyrazolinyl, 1,2,3-Triazolyl,
1,2,4-Triazolyl, Morpholinyl, Piperidinyl, Thiomorpholinyl, Piperazinyl, Indolyl,
Isoindolyl, 1,2,3,4-Tetrahydrochinolinyl, 1,2,3,4-Tetrahydroisochinolinyl,
1,2,3,4-Tetrahydrochinoxalinyl, Indolinyl, Indazolyl, Benzimidazolyl,
Benzotriazolyl, Purinyl, Carbazolyl, Acridinyl, Phenothiazinyl,
Phenoxazinyl, Iminodibenzyl, Iminostilbenyl dar, ist jedoch nicht
darauf beschränkt.
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Der
Begriff „Alkyloxy" (z.B. Methoxy, Ethoxy,
Propyloxy, Allyloxy, Cyclohexyloxy) stellt eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Sauerstoffbrücke, dar.
-
Der
Begriff „Alkyloxyalkyl" stellt eine „Alkyloxy"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Alkyloxyalkyloxy" stellt eine wie
vorstehend definierte „Alkyloxyalkyl"-Gruppe, angelagert durch
ein Sauerstoffatom, mit der angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen,
dar.
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Der
Begriff „Aryloxy" (z.B. Phenoxy, Naphthyloxy
und dergleichen) stellt eine wie nachstehend definierte Arylgruppe,
angelagert durch eine Sauerstoffbrücke, dar.
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Der
Begriff „Arylalkyloxy" (z.B. Phenethyloxy,
Naphthylmethyloxy und dergleichen) stellt eine wie nachstehend definierte „Arylalkyl"-Gruppe, angelagert
durch eine Sauerstoffbrücke,
dar.
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Der
Begriff „Arylalkyloxyalkyl" stellt eine wie
vorstehend definierte „Arylalkyloxy"-Gruppe, angelagert durch
eine vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylthio" (z.B. Phenylthio,
Naphthylthio und dergleichen) stellt eine wie nachstehend definierte „Aryl"-Gruppe, angelagert
durch eine Schwefelbrücke,
dar.
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Der
Begriff „Alkyloxycarbonyl" (z.B. Methylformiat,
Ethylformiat und dergleichen) stellt eine wie vorstehend definierte „Alkyloxy"-Gruppe, angelagert
durch eine Carbonylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Aryloxycarbonyl" (z.B. Phenylformiat,
2-Thiazolylformiat und dergleichen) stellt eine wie vorstehend definierte „Aryloxy"-Gruppe, angelagert
durch eine Carbonylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Arylalkyloxycarbonyl" (z.B. Benzylformiat,
Phenyletylformiat und dergleichen) stellt eine wie vorstehend definierte „Arylalkyloxy"-Gruppe, angelagert
durch eine Carbonylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Alkyloxycarbonylalkyl" stellt eine wie
vorstehend definierte „Alkyloxycarbonyl" Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe
mit der angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylalkyloxycarbonylalkyl" stellt eine wie
vorstehend definierte „Arylalkyloxycarbonyl"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen,
dar.
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Der
Begriff „Alkylthio" (z.B. Methylthio,
Ethylthio, Propylthio, Cyclohexenylthio und dergleichen) stellt eine
wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Schwefelbrücke, dar.
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Der
Begriff „Arylalkylthio" (z.B. Phenylmethylthio,
Phenylethylthio und dergleichen) stellt eine wie vorstehend definierte „Arylalkyl" Gruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Schwefelbrücke, dar.
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Der
Begriff „Alkylthioalkyl" stellt eine „Alkylthio"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylalkylthioalkyl" stellt eine „Arylalkylthio"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Alkylamino" (z.B. Methylamino,
Diethylamino, Butylamino, N-Propyl-N-hexylamino,
(2-Cyclopentyl)propylamino, Hexenylamino, Pyrrolidinyl, Piperidinyl
und dergleichen) stellt eine oder zwei wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppen mit der
angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Aminbrücke, dar.
Die beiden Alkylgruppen können
mit dem Stickstoffatom, an welches sie gebunden sind zusammengenommen
werden, um ein gesättigtes,
teilweise gesättigtes
oder aromatisches cyclisches, bicyclisches oder tricyclisches Ringsystem,
enthaltend 3 bis 14 Kohlenstoffatome und 0 bis 3 zusätzliche
Heteroatome, ausgewählt
aus Stickstoff, Sauerstoff und Schwefel, zu bilden, wobei das Ringsystem
wahlweise substituiert sein kann mit mindestens einem C1-C6Alkyl-, Aryl-, ArylC1-C6alkyl-, Hydroxy-, Oxo-, C1-C6Alkyloxy-, C1-C6AlkyloxyC1-C6alkyl-, NR8R9-, C1-C6AlkylaminoC1-C6alkylsubstituenten, wobei die Alkyl- and
Arylgruppen wahlweise wie im Definitionsabschnitt definiert sind
und R8 und R9 wie
vorstehend definiert sind.
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Der
Begriff „Arylalkylamino" (z.B. Benzylamino,
Diphenylethylamino und dergleichen) stellt eine oder zwei wie vorstehend
definierte „Arylalkyl"-Gruppen mit der
angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Aminbrücke, dar.
Die beiden Alkylgruppen können
mit dem Stickstoffatom, an welches sie gebunden sind zusammengenommen
werden, um ein gesättigtes,
teilweise gesättigtes
oder aromatisches cyclisches, bicyclisches oder tricyclisches Ringsystem,
enthaltend 3 bis 14 Kohlenstoffatome und 0 bis 3 zusätzliche
Heteroatome, ausgewählt
aus Stickstoff, Sauerstoff und Schwefel, zu bilden, wobei das Ringsystem
wahlweise substituiert sein kann mit mindestens einem C1-C6Alkyl-, Aryl-, ArylC1-C6alkyl-, Hydroxy-, Oxo-, C1-C6Alkyloxy-, C1-C6AlkyloxyC1-C6alkyl-, NR8R9-, C1-C6AlkylaminoC1-C6alkylsubstituenten,
wobei die Alkyl- and A rylgruppen wahlweise wie im Definitionsabschnitt
definiert sind und R8 und R9 wie
vorstehend definiert sind.
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Der
Begriff „Alkylaminoalkyl" stellt eine „Alkylamino"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylalkylaminoalkyl" stellt eine „Arylalkylamino"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylamino" stellt eine wie
nachstehend definierte „Aryl"-Gruppe, angelagert
durch eine Aminogruppe, dar.
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Der
Begriff „Arylaminoalkyl" stellt eine „Arylamino"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
-
Der
Begriff „Arylalkyl" (z.B. Benzyl, Phenylethyl)
stellt eine wie nachstehend definierte „Aryl"-Gruppe, angelagert durch ein Alkyl
mit der angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen oder substituiert
mit einer wie vorstehend definierten Alkylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Alkylcarbonyl" (z.B. Cyclooctylcarbonyl,
Pentylcarbonyl, 3-Hexenylcarbonyl)
stellt eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen Anzahl an
Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Carbonylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Arylcarbonyl" (Benzoyl) stellt
eine wie vorstehend definierte „Aryl"-Gruppe, angelagert durch eine Carbonylgruppe,
dar.
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Der
Begriff „Arylalkylcarbonyl" (z.B. Phenylcyclopropylcarbonyl,
Phenylethylcarbonyl und dergleichen) stellt eine wie vorstehend
definierte „Arylalkyl"-Gruppe mit der angegebenen Anzahl an
Kohlenstoffatomen, angelagert durch eine Carbonylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Alkylcarbonylalkyl" stellt eine „Alkylcarbonyl"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen Anzahl an
Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylalkylcarbonylalkyl" stellt eine „Arylalkylcarbonyl"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylcarbonylamino" stellt eine wie
vorstehend definierte „Arylcarbonyl"-Gruppe, angelagert
durch eine Aminogruppe, dar.
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Der
Begriff „Arylcarbonylaminoalkyl" stellt eine „Arylcarbonylamino"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte Alkylgruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Alkylcarboxy" (z.B. Heptylcarboxy,
Cyclopropylcarboxy, 3-Pentenylcarboxy)
stellt eine wie vorstehend definierte „Alkylcarbonyl" Gruppe dar, wobei
das Carbonyl wiederum durch eine Sauerstoffbrücke angelagert ist.
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Der
Begriff „Arylcarboxyalkyl" (z.B. Phenylcarboxymethyl)
stellt eine wie vorstehend definierte „Arylcarbonyl"-Gruppe dar, wobei
das Carbonyl wiederum durch eine Sauerstoffbrücke an eine Alkylkette mit
der angegebenen Anzahl an Kohlenstoffatomen angelagert ist.
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Der
Begriff „Arylalkylcarboxy" (z.B. Benzylcarboxy,
Phenylcyclopropylcarboxy und dergleichen) stellt eine wie vorstehend
definierte „Arylalkylcarbonyl"-Gruppe dar, wobei
das Carbonyl wiederum durch eine Sauerstoffbrücke angelagert ist.
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Der
Begriff „Alkylcarboxyalkyl" stellt eine „Alkylcarboxy"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen Anzahl an
Kohlenstoffatomen, dar.
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Der
Begriff „Arylalkylcarboxyalkyl" stellt eine „Arylalkylcarboxy"-Gruppe, angelagert
durch eine wie vorstehend definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen Anzahl an
Kohlenstoffatomen, dar.
-
Der
Begriff „Alkylcarbonylamino" (z.B. Hexylcarbonylamino,
Cyclopentylcarbonyl-aminomethyl, Methylcarbonylaminophenyl) stellt
eine wie vorstehend definierte „Alkylcarbonyl"-Gruppe dar, wobei
das Carbonyl wiederum durch das Stickstoffatom einer Aminogruppe
angelagert ist. Das Stickstoffatom kann selbst mit einer Alkyl-
oder Arylgruppe substituiert sein.
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Der
Begriff „Arylalkylcarbonylamino" (z.B. Benzylcarbonylamino
und dergleichen) stellt eine wie vorstehend definierte „Arylalkylcarbonyl"-Gruppe dar, wobei
das Carbonyl wiederum durch das Stickstoffatom einer Aminogruppe
angelagert ist. Das Stickstoffatom kann selbst mit einer Alkyl-
oder Arylgruppe substituiert sein.
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Der
Begriff „Alkylcarbonylaminoalkyl" stellt eine „Alkylcarbonylamino"-Gruppe, angelagert durch eine wie vorstehend
definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen dar. Das Stickstoffatom kann selbst
mit einer Alkyl- oder Arylgruppe substituiert sein.
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Der
Begriff „Arylalkylcarbonylaminoalkyl" stellt eine „Arylalkylcarbonylamino"-Gruppe, angelagert durch eine wie vorstehend
definierte „Alkyl"-Gruppe mit der angegebenen
Anzahl an Kohlenstoffatomen dar. Das Stickstoffatom kann selbst
mit einer Alkyl- oder Arylgruppe substituiert sein.
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Der
Begriff „Alkylcarbonylaminoalkylcarbonyl" stellt eine Alkylcarbonylaminoalkylgruppe,
angelagert durch eine Carbonylgruppe, dar. Das Stickstoffatom kann
weiter mit einer „Alkyl-" oder „Aryl"-Gruppe substituiert
sein.
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Der
Begriff „Aryl" stellt eine unsubstituierte,
monocyclische, polycyclische, Biaryl- und heterocyclische aromatische
Gruppe dar, die an einer beliebigen Ringposition, die eine stabile
kovalente Bindung bilden kann, kovalent angelagert ist, wobei bestimmte
bevorzugte Anlagerungspunkte dem Fachmann klar sind (z.B., 3-Indolyl,
4(5)-Imidazolyl).
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Die
Definition von Aryl schließt
Phenyl, Biphenyl, Indenyl, Fluorenyl, Naphthyl (1-Naphthyl, 2-Naphthyl),
Pyrrolyl (2-Pyrrolyl), Pyrazolyl (3-Pyrazolyl), Imida zolyl (1-Imidazolyl,
2-Imidazolyl, 4-Imidazolyl, 5-Imidazolyl), Triazolyl (1,2,3-Triazol-1-yl, 1,2,3-Triazol-2-yl,
1,2,3-Triazol-4-yl, 1,2,4-Triazol-3-yl), Oxazolyl (2-Oxazolyl, 4-Oxazolyl,
5-Oxazolyl), Isoxazolyl (3-Isoxazolyl, 4-Isoxazolyl, 5-Isoxazolyl), Thiazolyl
(2-Thiazolyl, 4-Thiazolyl, 5-Thiazolyl), Thiophenyl (2-Thiophenyl, 3-Thiophenyl,
4-Thiophenyl, 5-Thiophenyl), Furanyl (2-Furanyl, 3-Furanyl, 4-Furanyl,
5-Furanyl), Pyridyl (2-Pyridyl, 3-Pyridyl, 4-Pyridyl, 5-Pyridyl), 5-Tetrazolyl,
Pyrimidinyl (2-Pyrimidinyl, 4-Pyrimidinyl, 5-Pyrimidinyl, 6-Pyrimidinyl),
Pyrazinyl, Pyridazinyl (3-Pyridazinyl, 4-Pyridazinyl, 5-Pyridazinyl), Chinolyl
(2-Chinolyl, 3-Chinolyl, 4-Chinolyl, 5-Chinolyl, 6-Chinolyl, 7-Chinolyl,
8-Chinolyl), Isochinolyl (1-Isochinolyl, 3-Isochinolyl, 4-Isochinolyl, 5-Isochinolyl,
6-Isochinolyl, 7-Isochinolyl, 8-Isochinolyl), Benzo[B]furanyl (2-Benzo[B]furanyl,
3-Benzo[B]furanyl, 4-Benzo[B]furanyl, 5-Benzo[B]furanyl, 6-Benzo[B]furanyl,
7-Benzo[B]furanyl), 2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl
(2-(2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl), 3-(2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl), 4-(2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl),
5-(2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl),
6-(2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl), 7-(2,3-Dihydrobenzo[B]furanyl)), Benzo[B]thiophenyl
(2-Benzo[B]thiophenyl, 3-Benzo[B]thiophenyl, 4-Benzo[B]thiophenyl,
5-Benzo[B]thiophenyl, 6-Benzo[B]thiophenyl,
7-Benzo[B]thiophenyl), 2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl (2-(2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl),
3-(2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl), 4-(2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl), 5-(2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl),
6-(2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl),
7-(2,3-Dihydrobenzo[B]thiophenyl)), 4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl (2-(4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl), 3-(4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl),
4-(4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl),
5-(4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl), 6-(4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl),
7-(4,5,6,7-Tetrahydrobenzo[B]thiophenyl)), 4,5,6,7-Tetrahydrothieno[2,3-C]pyridyl
(4-(4,5,6,7-Tetrahydrothieno[2,3-C]pyridyl),
5-4,5,6,7-Tetrahydrothieno[2,3-C]pyridyl),
6-(4,5,6,7-Tetrahydrothieno[2,3-C]pyridyl), 7-(4,5,6,7-Tetrahydrothieno[2,3-C]pyridyl)), Indolyl
(1-Indolyl, 2-Indolyl, 3-Indolyl, 4-Indolyl, 5-Indolyl, 6-Indolyl, 7-Indolyl),
Isoindolyl (1-Isoindolyl, 2-Isoindolyl, 3- Isoindolyl, 4-Isoindolyl, 5-Isoindolyl,
6-Isoindolyl, 7-Isoindolyl), 1,3-Dihydroisoindolyl
(1-(1,3-Dihydroisoindolyl), 2-(1,3-Dihydroisoindolyl), 3-(1,3-Dihydroisoindolyl),
4-(1,3-Dihydroisoindolyl), 5-(1,3-Dihydroisoindolyl), 6-(1,3-Dihydroisoindolyl),
7-(1,3-Dihydroisoindolyl)), Indazol (1-Indazolyl, 3-Indazolyl, 4-Indazolyl,
5-Indazolyl, 6-Indazolyl, 7-Indazolyl), Benzimidazolyl (1-Benzimidazolyl, 2-Benzimidazolyl,
4-Benzimidazolyl, 5-Benzimidazolyl, 6-Benzimidazolyl, 7-Benzimidazolyl, 8-Benzimidazolyl),
Benzoxazolyl (1-Benzoxazolyl, 2-Benzoxazolyl),
Benzothiazolyl (1-Benzothiazolyl, 2-Benzothiazolyl, 4-Benzothiazolyl, 5-Benzothiazolyl, 6-Benzothiazolyl,
7-Benzothiazolyl),
Carbazolyl (1-Carbazolyl, 2-Carbazolyl, 3-Carbazolyl, 4-Carbazolyl), 5H-Dibenz[B,F]azepin
(5H-Dibenz[B,F]azepin-1-yl, 5H-Dibenz[B,F]azepin-2-yl,
5H-Dibenz[B,F]azepin-3-yl, 5H-Dibenz[B,F]azepin-4-yl, 5H-Dibenz[B,F]azepin-5-yl),
10,11-Dihydro-5H-dibenz[B,F]azepin (10,11-Dihydro-5H-dibenz[B,F]azepin-1-yl, 10,11-Dihydro-5H-dibenz[B,F]azepin-2-yl,
10,11-Dihydro-5H-dibenz[B,F]azepin-3-yl, 10,11-Dihydro-5H-dibenz[B,F]azepin-4-yl,
10,11-Dihydro-5H-dibenz[B,F]azepin-5-yl), Piperidinyl (2-Piperidinyl, 3-Piperidinyl,
4-Piperidinyl), Pyrrolidinyl (1-Pyrrolidinyl, 2-Pyrrolidinyl, 3-Pyrrolidinyl), Phenylpyridyl
(2-Phenylpyridyl, 3-Phenylpyridyl, 4-Phenylpyridyl), Phenylpyrimidinyl (2-Phenylpyrimidinyl,
4-Phenylpyrimidinyl, 5-Phenylpyrimidinyl, 6-Phenylpyrimidinyl),
Phenylpyrazinyl, Phenylpyridazinyl (3-Phenylpyridazinyl, 4-Phenylpyridazinyl,
5-Phenylpyridazinyl) ein, ist jedoch nicht darauf beschränkt.
-
Der
Begriff „wahlweise
substituiertes Aryl" stellt
ein wie vorstehend definiertes mono-, di- oder trisubstituiertes
Aryl dar, wobei die Substituenten unabhängig voneinander ausgewählt sind
aus der Gruppe, bestehend aus Halogen, Nitro, Cyano, Trihalogenmethyl,
C1-C6Alkyl, Aryl,
ArylC1-C6alkyl,
Hydroxy, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyloxy,
C1-C6AlkyloxyC1-C6alkyl, Aryloxy,
ArylC1-C6alkyloxy, ArylC1-C6alkyloxyC1-C6alkyl, Thio, C1-C6Alkylthio, C1-C6AlkylthioC1-C6alkyl, Arylthio,
ArylC1-C6alkylthio,
ArylC1-C6alkylthioC1- C6alkyl, NR8R9, C1-C6Alkylamino,
C1-C6AlkylaminoC1-C6alkyl, Arylamino,
ArylC1-C6alkylamino,
ArylC1-C6alkylaminoC1-C6alkyl, Di(arylC1-C6alkyl)aminoC1-C6alkyl, C1-C6Alkylcarbonyl, C1-C6AlkylcarbonylC1-C6alkyl, ArylC1-C6alkylcarbonyl, ArylC1-C6alkylcarbonylC1-C6alkyl, C1-C6Alkylcarboxy, C1-C6AlkylcarboxyC1-C6alkyl, ArylC1-C6alkylcarboxy, ArylC1-C6alkylcarboxyC1-C6alkyl, CarboxyC1-C6alkyloxy, C1-C6Alkylcarbonylamino, C1-C6AlkylcarbonylaminoC1-C6alkyl, -CarbonylNR7C1-C6alkylCOR11, ArylC1-C6alkylcarbonylamino, ArylC1-C6alkylcarbonylaminoC1-C6alkyl, -CONR8R9, oder -C1-C6AlkylCONR8R9; wobei R3, R8, R9,
und R11 wie vorstehend definiert sind und
die Alkyl- und Arylgruppen wahlweise wie im Definitionsabschnitt
definiert substituiert sind.
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Der
Begriff „Arylcarbonyl" (z.B. 2-Thiophenylcarbonyl,
3-Methoxyanthrylcarbonyl,
Oxazolylcarbonyl) stellt eine wie vorstehend definierte „Aryl"-Gruppe, angelagert
durch eine Carbonylgruppe, dar.
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Der
Begriff „Arylalkylcarbonyl" (z.B. (2,3-Dimethoxyphenyl)propylcarbonyl,
(2-Chlornaphthyl)pentenylcarbonyl,
Imidazolylcyclopentylcarbonyl) stellt eine wie vorstehend definierte „Arylalkyl"-Gruppe dar, wobei
die „Alkyl"-Gruppe wiederum
durch ein Carbonyl angelagert ist.
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Die
Verbindungen der vorliegenden Erfindung weisen asymmetrische Zentren
auf und können
als Racemate, racemische Gemische und als einzelne Enantiomere oder
Diastereomere vorkommen, wobei alle isomeren Formen, sowie Gemische
davon in der vorliegenden Erfindung eingeschlossen sind.
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Pharmazeutisch
verträgliche
Salze der Verbindungen der Formel 1, in welchen eine basische oder saure
Gruppe in der Struktur vorliegt, sind ebenfalls im Um fang dieser
Erfindung eingeschlossen. Liegt ein saurer Substituent wie -COOH,
5-Tetrazolyl oder
-P(O)(OH)2 vor, kann das Ammonium-, Morpholinium-,
Natrium, Kalium-, Barium-, Calciumsalz und dergleichen zur Verwendung
als die Dosierungsform gebildet werden. Liegt eine basische Gruppe
wie Amino oder ein basischer Heteroarylrest wie Pyridyl vor, können ein
Säuresalz
wie Hydrochlorid, Hydrobromid, Phosphat, Sulfat, Trifluoracetat,
Trichloracetat, Acetat, Oxalat, Maleat, Pyruvat, Malonat, Succinat,
Citrat, Tartarat, Fumarat, Mandelat, Benzoat, Cinnamat, Methansulfonat,
Ethansulfonat, Picrat und dergleichen und einschließlich Säuren, die
mit den in Journal of Pharmaceutical Science, 66, 2 (1977) verwandt
und hier unter Bezugnahme eingebracht sind, als die Dosierungsform
verwendet werden.
-
Auch
können
in dem Falle, in welchem -COOH oder -P(O)(OH)2 vorliegt,
pharmazeutisch verträgliche Ester,
z.B. Methyl, tert-Butyl, Pivaloyloxymethyl und dergleichen und diejenigen
Ester, die auf dem Fachgebiet zum Modifizieren der Löslichkeits-
oder Hydrolyseeigenschaften zur Verwendung als Dauerfreisetzungs-
oder Prodrugformulierungen bekannt sind, eingesetzt werden.
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Zudem
können
einige der Verbindungen der vorliegenden Erfindung mit Wasser oder üblichen
organische Lösungsmitteln
Solvate bilden. Derartige Solvate sind im Umfang der Erfindung eingeschlossen.
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Der
Begriff „therapeutisch
wirksame Menge" soll
diejenige Menge des Arzneimittels oder pharmazeutischen Mittels
bedeuten, das das biologische oder medizinische Ansprechverhalten
eines Gewebes, Systems, Tieres oder Menschen auslöst, das
von einem Forscher, Tierarzt, Mediziner oder Anderen gefragt ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R5 C1-C6alkylNR8R9 ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R6 Wasserstoff ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R6 C1-C6AlkylNR8R9 ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R5 Wasserstoff ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R5 und R6 C1-C6AlkylNR8R9 sind.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R8 und R9 zusammen
mit dem Stickstoff, an welchem sie angelagert sind ein teilweise
gesättigtes
bicyclisches Ringsystem bilden, das 8 Kohlenstoffatome enthält, wobei
das Ringsystem wahlweise mit zwei Oxogruppen substituiert ist.
-
In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei das Ringsystem
Isoindolyl ist.
-
In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R8 und R9 zusammen
mit dem Stickstoff, an welchem sie angelagert sind ein teilweise
gesättigtes
bicyclisches Ringsystem bilden, das 8 Kohlenstoffatome enthält, wobei
das Ringsystem wahlweise mit zwei Oxogruppen substituiert ist.
-
In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei das Ringsystem
Isoindolyl ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R8 und R9 zusammen
mit dem Stickstoff, an welchem sie angelagert sind ein teilweise
gesättigtes
bicyclisches Ringsystem bilden, das 7 Kohlenstoffatome und ein Schwefelatom
enthält,
wobei das Ringsystem wahlweise mit drei Oxogruppen substituiert
ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei das Ringsystem
2,3-Dihydrobenzo[d]isothiazolyl ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R8 und R9 zusammen
mit dem Stickstoff, an welchem sie angelagert sind ein teilweise
gesättigtes
bicyclisches Ringsystem bilden, das 7 Kohlenstoffatome und ein Schwefelatom
enthält,
wobei das Ringsystem wahlweise mit zwei Oxogruppen substituiert
ist.
-
In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei R8 und R9 zusammen
mit dem Stickstoff, an welchem sie angelagert sind ein teilweise
gesättigtes
bicyclisches Ringsystem bilden, das 8 Kohlenstoffatome enthält, wobei
das Ringsystem wahlweise mit einer Oxogruppe substituiert ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei das Ringsystem
wahlweise substituiertes Isoindolyl ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen, wobei das Ringsystem
wahlweise substituiertes 1-Oxo-1,3-dihydroisoindolyl ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen der Formel I, wobei
R5 1,3-Dihydroisoindol, substituiert mit
1 oder 2 Oxogruppen an den Atompositionen neben dem Stickstoffatom
und wahlweise substituiert mit Hydroxy, C1-6Alkyloxy,
ArylC1-6alkyloxy oder C1-6Alkylcarboxy ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen der Formel I, wobei
R5 1,1,3-Trioxo-1,2-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-yl
ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen der Formel I, wobei
R5 oder R6 Arylaminoalkyl
ist, wobei Aryl 1,1-Dioxo-1,2-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-3-yl
ist.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen der Formel I, wobei
R5 oder R6 Arylcarbonylaminoalkyl
ist, wobei Aryl Phenyl, Indol-3-yl, Indol-2-yl, 1,2,3-Triazol-4-yl,
Chinolin-4-yl oder Naphth-1-yl ist, wobei Aryl wahlweise substituiert
ist mit Halogen, Cyano, Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl,
Aryl, ArylC1- C6alkyl, C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6Alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen der Formel I, wobei
R5 Arylalkylaminoalkyl ist, wobei Aryl Phenyl,
Dibenzofuranyl, Naphth-2-yl oder Indo-3-yl ist und wobei die Alkylgruppen
wahlweise substituiert sind mit Halogen, Cyano, Nitro, Trihalogenmethyl,
Hydroxy, Oxo, COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl,
C1-C6Alkyloxy, Aryloxy,
ArylC1-C6alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl,
wobei die Arylgruppen wahlweise substituiert sind mit Halo, Cyano,
Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy, COOR3,
CONR8R9, C1-C6Alkyl, Aryl,
Aryl-C1-C6alkyl,
C1-C6Alkyloxy, Aryloxy, ArylC1-C6alkyloxy, NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl
oder ArylC1-C6alkylcarbonyl.
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In
einer anderen bevorzugten Ausführungsform
betrifft die vorliegende Erfindung Verbindungen der Formel I, wobei
R6 AlkylNR8R9 ist, wobei R8 Alkylcarbonyl
ist und R9 Arylalkyl ist, wobei Aryl wahlweise
substituiert ist mit Halogen, Cyano, Nitro, Trihalogenmethyl, Hydroxy,
COOR3, CONR8R9, C1-C6Alkyl,
Aryl, ArylC1-C6alkyl,
C1-C6Alkyloxy, Aryloxy,
ArylC1-C6Alkyloxy,
NR8R9, C1-C6Alkylcarbonyl oder ArylC1-C6alkylcarbonyl.
-
Die
folgenden Verbindungen sind bevorzugt:
5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(S)-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(4-Hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(4-Hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
2-(Oxalylamino)-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(4-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-((1,1-Dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-((1,1-Dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(7-Methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(7-Benzyloxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(((5-Benzyloxy-1H-indol-2-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(((6-Brom-2-p-tolyl-chinolin-4-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
6-(4-Methoxybenzyl)-7-(((5-methyl-2-phenyl-2H-[1,2,3]triazol-4-carbonyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(((1H-Indol-3-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-((4-Ethoxy-2-hydroxybenzoylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-((4-Benzoylaminobenzoylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(((Biphenyl-4-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(((1H-Indol-2-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-((3-Biphenyl-4-yl-acryloylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
6-(4-Methoxybenzyl)-7-(((5-methoxy-1H-indol-2-carbonyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-((4-Benzylbenzoylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
6-(4-Methoxybenzyl)-7-(((naphthalin-1-carbonyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
6-(4-Methoxybenzyl)-5-((2-naphthalin-2-yl-ethylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-((2-Benzo[1,3]dioxol-5-yl-acetylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-((2-Dibenzofuran-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
6-(4-Methoxybenzyl)-5-((2-(5-methoxy-2-methyl-1H-indol-3-yl)acetylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-((2-(1H-Indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(R)-(7-Methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(S)-(7-Methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(S)-(4-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
2-(Oxalylamino)-5-(S)-((4-phenoxybenzylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(S)-((4-Acetylaminobenzylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(S)-((Acetyl-(4-phenoxybenzyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(S)-((Acetylbenzylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(S)-((1,1-Dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(4-Benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(6-Methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
2-(Oxalylamino)-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
2-(Oxalylamino)-7-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
7-(R)-Carbamoyl-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
2-(Oxalylamino)-5-(S)-phenylcarbamoyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
2-(Oxalylamino)-7-(R)-phenylcarbamoyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
5-(R),7-(R)-Bisbenzyloxymethyl-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
6-Benzyl-2-(oxalylamino)-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1,6-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure;
oder
ein Salz davon mit einer pharmazeutisch verträglichen Säure oder Base oder ein beliebiges
optisches Isomer oder Gemisch von optischen Isomeren, einschließlich eines
racemischen Gemischs, oder eine beliebige tautomere Form.
-
PHARMAKOLOGISCHE
VERFAHREN
-
Die
Verbindungen werden mit einer verkürzten Form von PTP1B (entsprechend
den ersten 321 Aminosäuren),
das in E. coli exprimiert und unter Verwendung von dem Fachmann
weithin bekannten Verfahren auf eine scheinbare Homogenität gereinigt
wurde, auf biologische Aktivität
beurteilt. Die Enzymreaktionen wurden unter Verwendung von Standardbedingungen
im Wesentlichen beschrieben wie von Burke et al. (Biochemistry 35;
15939–15996
(1996)) durchgeführt.
Die Testbedingungen lauten wie folgt: Geeignete Konzentrationen
der Verbindungen der Erfindung werden den Reaktionsgemischen zugesetzt,
die verschiedene Konzentrationen des Substrats p-Nitrophenylphosphat
(Bereich: 0,16 bis 10 mM – Testendkonzentration)
enthalten. Der verwendete Puffer war 50 mM HEPES pH 7,0, 100 mM
Natriumchlorid, 0,1% (G/V) Rinderserumalbumin, 5 mM Glutathion und
1 mM EDTA. Die Reaktion wurde durch Zugabe des Enzyms gestartet
und in Mikrotiterplatten bei 25°C
für eine
Dauer von 60 Minuten durchgeführt.
Die Reaktionen werden durch Zugabe von NaOH gestoppt. Die Enzymaktivität wurde
durch Messung der Absorption bei 405 nm mit geeigneten Korrekturen
für die
Absorption bei 405 nm der Verbindungen und von p-Nitrophenylphosphat bestimmt. Die Daten
werden unter Verwendung eines nicht linearen Regressionsabgleichs
mit klassischen Michaelis-Menten-Enzymkinetikmodellen
analysiert. Die Hemmung wird als K
i-Werte
in nM ausgedrückt.
Die Ergebnisse der repräsentativen Versuche
sind in Tabelle 1 dargestellt. Tabelle
1 Hemmung
von klassischem PTP1B durch Verbindungen der Erfindung PTP1B
Beispiel | Ki-Werte |
Nr. | (nM) |
8 | 250 |
10 | 270 |
11 | 240 |
12 | 570 |
36 | 830 |
42 | 220 |
46 | 300 |
-
Analyse der
Wirkungen der Blutglucosesenkung
-
Die
Verbindungen der Erfindung werden auf die Wirkungen der Blutglucosesenkung
in diabetischen, fettsüchtigen
weiblichen ob/ob-Mäusen
getestet. Die Mäuse
sind von ähnlichem
Alter und Körpergewicht,
und sie werden willkürlich
in Gruppen von 10 Mäusen
aufgeteilt. Sie haben während
des Versuchs freien Zugang zu Futter und Wasser. Die Verbindungen
werden entweder durch Sondenfütterung,
subkutane, intravenöse oder
intraperitoneale Injektionen verabreicht. Die Kontrollgruppe erhält dasselbe
Volumen an Vehikulum wie die Mäuse,
die die Verbindungen erhalten. Nicht beschränkende Beispiele für den Dosisbereich:
0,1, 0,3, 1,0, 3,0,10, 30, 100 mg pro kg Körpergewicht. Die Blutglucosegehalte
werden zweimal vor Verabreichung der Verbindungen der Erfindung
und des Vehikulums (an die Kontrollgruppe) gemessen. Nach der Verabreichung
der Verbindung werden die Blutglucosegehalte zu folgenden Zeitpunkten
gemessen: 1, 2, 4, 6, und 8 Stunden. Ein positives Ansprechverhalten
ist entweder als (i) eine mehr als 25%ige Reduktion der Blutglucosegehalte
in der die Verbindung der Erfindung erhaltenden Gruppe, verglichen
mit der das Vehikulum erhaltenden Gruppe an einem beliebigen Zeitpunkt
(ii) eine statistisch merkliche (d.h. p < 0,05) Reduktion der Fläche unter
der Blutglucosekurve während
der gesamten Dauer (d.h. 8 Std.) in der mit den Verbindungen der
Erfindung behandelten Gruppe, verglichen mit der das Vehikulum erhaltenden
Gruppe.
-
Verbindungen,
die ein positives Ansprechverhalten zeigen, können als Entwicklungskandidaten
und zur Behandlung von menschlichen Erkrankungen wie Diabetes und
Fettsucht verwendet werden.
-
SYNTHESE DER
VERBINDUNGEN
-
Gemäß einem
Aspekt der Erfindung werden die Verbindungen der Erfindung wie im
folgenden Reaktionsschema veranschaulicht hergestellt: Verfahren
A)
a) NCCH
2COOR
3,
Schwefel, Morpholin oder Triethylamin, Ethanol; b) R
3OCOCO.OImidazole,
Tetrahydrofuran; c) 25%ige Trifluoressigsäure/Dichlormethan; wobei n,
m, X, R
1, R
1, R
3, R
4, R
5,
R
6 und R
7 wie vorstehend definiert
sind.
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Ist
R4 Wasserstoff wird durch den Reaktionsschritt
a) in Verfahren A ein Gemisch 5 aus Regioisomeren erhalten, das
durch die Verwendung von dem Fachmann bekannter Säulenchromatografie
aufgetrennt werden kann.
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-
Indem
man ein Amin (I) und ein substituiertes Oxalylamid (II) unter basischen
Bedingungen (z.B. K2CO3,
in N,N-Dimethylformamid oder Methylethylketon) oder unter Mitsunobu-Bedingungen
(Oyo Mitsunobu, Synthesis, (1981) 1–28) reagieren lässt, um
(III) zu erhalten, wobei W OH, OSO2Me oder
Halogen ist und n, m, X, R1, R2,
R3, R4, R6, R7 und R8 wie vorstehend definiert sind.
-
-
Indem
man ein Amin (I) und ein substituiertes Oxalylamid (II) unter basischen
Bedingungen (z.B. K2CO3,
in N,N-Dimethylformamid oder Methylethylketon) oder unter Mitsunobu-Bedingungen
(Oyo Mitsunobu, Synthesis, (1981) 1–28) reagieren lässt, um
(III) zu erhalten, wobei W OH, OSO2Me oder
Halogen ist und n, m, X, R1, R2,
R3, R4, R5, R7 und R8 wie vorstehend definiert sind.
-
Pharmakologische Präparate
-
In
einem anderen Aspekt schließt
die vorliegende Erfindung in ihrem Umfang Arzneimittel bereit, die als
Wirkstoff mindestens eine der Verbindungen der allgemeinen Formel
I oder ein pharmazeutisch verträgliches
Salz davon zusammen mit einem pharmazeutisch verträglichen
Träger
oder Verdünnungsmittel
enthalten.
-
Die
vorliegenden Verbindungen können
auch in Kombination mit einer oder mehreren weiteren pharmakologisch
wirksamen Substanzen, z.B. ausgewählt aus Mitteln gegen Fettsucht,
Mitteln gegen Diabetes, Mitteln gegen Bluthochdruck, Mitteln zur
Behandlung und/oder Vorbeugung von Komplikationen, die aus Diabetes
resultieren oder damit verbunden sind, und Mitteln zur Behandlung
und/oder Vorbeugung von Komplikationen und Störungen, die aus Fettsucht resultieren
oder damit verbunden sind, verabreicht werden.
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So
können
die vorliegenden Verbindungen in einem weiteren Aspekt der Erfindung
in Kombination mit einem oder mehreren Mitteln gegen Fettsucht oder
appetitsregulirenden Mitteln verabreicht werden.
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Derartige
Mittel können
ausgewählt
sein aus der Gruppe, bestehend aus CART(Cocainamphetamin-regulierter
Transkript)-Agonisten, NPY(Neuropeptid Y)-Antagonisten, MC4(Melanocortin
4)-Agonisten, Orexinantagonisten, TNF(Tumornekrosefaktor)-Agonisten,
CRF(Corticotropin-freisetzender Faktor)-Agonisten, CRF-BP(Bindungsprotein für Corticotropin-freisetzenden
Faktor)-Antagonisten,
Urocortinagonisten, β3-Agonisten,
MSH(Melanozyten-stimulierendes
Hormon)-Agonisten, MCH(Melanozyten-konzentrierendes Hormon)-Antagonisten,
CCK(Cholecystokinin)-Agonisten, Serotonin-Wiederaufnahmehemmern, Serotonin- und
NoradrenalinWiederaufnahmehemmern, gemischten Serotonin- und noradrenergischen
Verbindungen, 5HT(Serotonin)-Agonisten, Bombesinagonisten, Galaninantagonisten,
Wachstumshormon, Wachstumshormon-freisetzenden Verbindungen, TRH(Thyreotropin-feisetzendes
Hormon)-Agonisten, UCP-2 oder -3(nicht kuppelndes Protein 2 oder
3)-Modulatoren, Leptinagonisten, DA-Agonisten (Bromocriptin, Doprexin),
Lipase/Amylase-Hemmern, PPAR(durch Peroxisom-Wucherungsmittel aktivierter Rezeptor)-Modulatoren, RXR(Retinoid-X-Rezeptor)-Modulatoren
oder TRβ-Agonisten.
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In
einer Ausführungsform
der Erfindung ist das Mittel gegen Fettsucht Leptin.
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In
einer anderen Ausführungsform
ist das Mittel gegen Fettsucht Dexamphetamin oder Amphetamin.
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In
einer anderen Ausführungsform
ist das Mittel gegen Fettsucht Fenfluramin oder Dexfenfluramin.
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In
noch einer anderen Ausführungsform
ist das Mittel gegen Fettsucht Sibutramin.
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In
einer weiteren Ausführungsform
ist das Mittel gegen Fettsucht Orlistat.
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In
einer anderen Ausführungsform
ist das Mittel gegen Fettsucht Mazindol oder Phentermin.
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Geeignete
Mittel gegen Diabetes umfassen Insulin, GLP-1(Glucagon-artiges Peptid-1)-Derivate
wie diejenigen, offenbart in WO 98/08871 an Novo Nordisk A/S, die
hier unter Bezugnahme eingebracht ist, sowie oral wirksame hypoglykämische Mittel.
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Die
oral wirksamen hypoglykämischen
Mittel umfassen vorzugsweise Sulfonylharnstoffe, Biguanide, Meglitinide,
Oxadiazolidindione, Thiazolidindione, Glucosidasehemmer, Glucagonantagonisten
wie diejenigen, offenbart in WO 99/01423 an Novo Nordisk A/S und
Agouron Pharmaceuticals, Inc., GLP-1-Agonisten, Kaliumkanalöffner wie
diejenigen, offenbart ist WO 97/26265 und WO 99/03861 an Novo Nordisk
A/S, die hier unter Bezugnahme eingebracht ist, Insulinsensibilatoren,
DPP-IV(Dipeptidylpeptidase-IV)-Hemmer, Hemmer von Leberenzymen,
die an der Stimulation der Gluconeogenese und/oder Glycogenolyse
beteiligt sind, Glucoseaufnahmemodulatoren, Verbindungen, die den
Lipidstoffwechsel modifizieren wie antihyperlipidämische Mittel
und antilipidämische
Mittel wie HMG-CoAHemmer
(Statine), Verbindungen die die Nahrungsaufnahme senken, PPAR- und RXR-Agonisten
und Mittel, die auf den ATP-abhängigen
Kaliumkanal der β-Zellen wirken.
-
In
einer Ausführungsform
der Erfindung werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination
mit Insulin verabreicht.
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In
einer weiteren Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem Sulfonylharnstoff,
z.B. Tolbutamid, Glibenclamid, Glipizid oder Glicazid verabreicht.
-
In
einer anderen Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem Biguanid,
z.B. Metformin verabreicht.
-
In
noch einer anderen Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem Meglitinid,
z.B. Repaglinid verabreicht.
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In
noch einer anderen Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem Thiazolidindion,
z.B. Troglitazon, Ciglitazon, Pioglitazon, Rosiglitazon oder Verbindungen,
offenbart in WO 97/41097 wie 5-[[4-[3-Methyl-4-oxo-3,4-dihydro-2-chinazolinyl]methoxy]phenylmethyl]thiazolidin-2,4-dion oder einem pharmazeutisch
verträglichen
Salz davon, vorzugsweise dem Kaliumsalz verabreicht.
-
Des
Weiteren können
die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit den Insulinsensibilisatoren, offenbart
in WO 99/19313 wie (–)3-[4-[2-Phenoxazin-10-yl)ethoxy]phenyl]-2-ethoxypropansäure oder
einem pharmazeutisch verträglichen
Salz davon, vorzugsweise dem Argininsalz verabreicht werden.
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In
einer weiteren Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem α-Glucosidasehemmer,
z.B. Miglitol oder Acarbose verabreicht.
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In
einer anderen Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem Mittel,
das auf den ATP-abhängigen
Kaliumkanal der β- Zellen wirkt, z.B.
Tolbutamid, Glibenclamid, Glipizid, Glicazid oder Repaglinid verabreicht.
-
Des
Weiteren können
die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit Nateglinid verabreicht
werden.
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In
noch einer anderen Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem antihyperlipidämischen
Mittel oder antilipidämischen
Mittel, z.B. Cholestyramin, Colestipol, Clofibrat, Gemfibrozil,
Lovastatin, Pravastatin, Simvastatin, Probucol oder Dextrothyroxin
verabreicht.
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In
noch einer weiteren Ausführungsform
werden die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit mehr als
einer der vorstehend erwähnten
Verbindungen, z.B. in Kombination mit einem Sulfonylharnstoff und Metformin,
einem Sulfonylharnstoff und Acarbose, Repaglinid und Metformin,
Insulin und einem Sulfonylharnstoff Insulin und Metformin, Insulin,
Insulin und Lovastatin usw. verabreicht.
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Des
Weiteren können
die vorliegenden Verbindungen in Kombination mit einem oder mehreren
Mitteln gegen Bluthochdruck verabreicht werden. Beispiele für Mittel
gegen Bluthochdruck sind β-Blocker
wie Alprenolol, Atenolol, Timolol, Pindolol, Propranolol und Metoprolol,
ACE Angiotensin-umwandelndes Emzym)-Hemmer wie Benazepril, Captopril,
Enalapril, Fosinopril, Lisinopril, Chinapril und Ramipril, Calciumkanalblocker
wie Nifedipin, Felodipin, Nicardipin, Isradipin, Nimodipin, Diltiazem
und Verapamil und α-Blocker
wie Doxazosin, Urapidil, Prazosin und Terazosin. Ferner kann auf
Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 19th Edition,
Gennaro, Ed., Mack Publishing Co., Easton, PA, 1995 verwiesen werden.
-
Es
sollte klar sein, dass jede beliebige geeignete Kombination der
erfindungsgemäßen Verbindungen mit
einer oder mehreren der vorstehend erwähnten Verbin dungen und wahlweise
einer oder mehreren weiteren pharmakologisch wirksamen Substanzen
als innerhalb dem Umfang der vorliegenden Erfindung liegend betrachtet
wird.
-
Für die vorstehenden
Indikationen variiert die Dosierung je nach eingesetzter Verbindung
der Erfindung, Verabreichungsmodus und gewünschter Therapie. Jedoch werden
im Allgemeinen zufrieden stellende Ergebnisse mit einer Dosierung
von etwa 0,5 bis etwa 1000 mg, vorzugsweise etwa 1 bis etwa 500
mg der Verbindungen der Erfindung, günstigerweise verabreicht 1
bis 5 mal täglich,
wahlweise in Dauerfreisetzungsform, erhalten. Gewöhnlich umfassen
zur oralen Verabreichung geeignete Dosierungsformen etwa 0,5 bis etwa
1000 mg, vorzugsweise etwa 1 bis etwa 500 mg der Verbindungen der
Erfindung, gemischt mit einem pharmazeutischen Träger oder
Verdünnungsmittel.
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Die
Verbindungen der Erfindung können
in einer pharmazeutisch verträglichen
Säuresalzform
oder, wo möglich,
als Metall- oder C1-6-Alkylammoniumsalz
verabreicht werden. Derartige Salzformen weisen in etwa dieselbe
Aktivitätsordnung
wie die Formen der freien Säure
auf.
-
Diese
Erfindung betrifft Arzneimittel, die eine Verbindung der Erfindung
oder ein pharmazeutisch verträgliches
Salz davon umfassen, und gewöhnlich
enthaltend derartige Zusammensetzungen auch einen pharmazeutischen
Träger
oder ein pharmazeutisches Verdünnungsmittel.
Die die Verbindungen dieser Erfindung enthaltenden Zusammensetzungen
können
durch herkömmliche
Techniken hergestellt werden und in herkömmlichen Formen, z.B. Kapseln,
Tabletten, Lösungen
oder Suspensionen vorkommen.
-
Bei
dem eingesetzten pharmazeutischen Träger kann es sich um einen herkömmlichen
festen oder flüssigen
Träger
handeln. Beispiele für
feste Träger
sind Lactose, Terra alba, Saccharose, Talkum, Gelatine, Agar, Pektin,
Akaziengummi, Magnesiumstearat und Stearinsäure. Beispiele für flüssige Träger sind
Sirup, Erdnussöl,
Olivenöl
und Wasser.
-
Gleichermaßen kann
der Träger
oder das Verdünnungsmittel
jedes beliebige auf dem Fachgebiet bekannte zeitverzögernde Material
wie Glycerylmonostearat oder Glyceryldistearate allein oder gemischt
mit einem Wachs einschließen.
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Wird
ein fester Träger
zur oralen Verabreichung verwendet, kann das Präparat tablettiert, platziert
in eine Hartgelatinekapsel in Pulver oder Pelletform, oder in Form
eines Trochus oder einer Pastille vorliegen. Die Menge an festem
Träger
variiert breit, beträgt
jedoch gewöhnlich
etwa 25 mg bis etwa 1 g. Wird ein flüssiger Träger verwendet, kann das Präparat in
Form eines Sirups, einer Emulsion, einer Weichgelatinekapsel oder einer
sterilen injizierbaren Flüssigkeit
wie einer wässrigen
oder nicht wässrigen
flüssigen
Suspension oder Lösung
vorliegen.
-
Im
Allgemeinen werden die Verbindungen in einer Dosierungseinheitsform,
umfassend 10–200
mg Wirkstoff in oder zusammen mit einem pharmazeutisch verträglichen
Träger
pro Dosierungseinheit abgegeben.
-
Die
Dosierung der erfindungsgemäßen Verbindungen
beträgt
1–500
mg/Tag, z.B. etwa 100 mg pro Dosis beim Verabreichen an Patienten,
z.B. Menschen als Arzneimittel.
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Eine
typische Tablette, die durch herkömmliche Tablettiertechniken
hergestellt werden kann, enthält: Kern:
Wirkverbindung
(als freie Verbindung oder Salz davon) | 100
mg |
Kolloidales
Siliciumdioxid (Areosil®) | 1,5
mg |
Cellulose,
mikrokrist. (Avicel®) | 70
mg |
Modifizierten
Cellulosegummi (Ac-Di-Sol®) Magnesiumstearat | 7,5
mg |
Überzug:
HPMC | etwa
9 mg |
*Mywacett® 9-40
T | etwa
0,9 mg |
- * Acyliertes Monoglycerid, verwendet als
Weichmacher für
den Filmüberzug.
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Der
Verabreichungsweg kann ein beliebiger Weg, der die Wirkverbindung
wirksam zu der geeigneten oder gewünschten Wirkstelle transportiert,
wie oral oder parenteral, z.B. rektal, transdermal, subkutan, intranasal,
intramuskulär,
topisch, intravenös,
intraurethral, ophthalmische Lösung
oder eine Salbe sein, wobei der orale Weg bevorzugt ist.
-
BEISPIELE
-
Das
Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der Formel 1 und diese
enthaltenden Präparaten wird
des Weiteren in den folgenden Beispielen veranschaulicht, die jedoch
nicht als Beschränkung
angesehen werden sollen.
-
Hier
nachstehend ist DSC Dünnschichtchromatografie,
ist CDCl3 Deuterochloroform, ist CD3OD Tetradeuteromethanol und ist DMSO-d6 Hexadeuterodimethylsulfoxid. Die Strukturen
der Verbindungen werden entweder durch Elementaranalyse oder NMR
bestätigt,
wobei Peaks, die charakteristischen Protonen in den Titelverbindungen
zugeordnet sind, sind, wo geeignet, dargestellt. 1H-NMR-Verschiebungen (δH)
sind in Parts per Million (ppm) feldabwärts von Tetramethylsilan als
interner Standard angegeben. Schmp. ist Schmelzpunkt und in °C angegeben
und nicht korrigiert. Säulenchromatografie
wurde unter Verwendung der von W. C. Still et al., J. Org. Chem.
43: 2923 (1978) beschriebenen Technik über Merck Silicagel 60 (Art.
9385) durchgeführt. HPLC-Analysen
werden unter Verwendung einer 5 μ-C18-Säule mit
4 × 250
mm, eluiert mit verschiedenen Gemischen aus Wasser und Acetonitril,
Fluss = 1 ml/Min., wie beschrieben im Experimentalabschnitt, durchgeführt.
-
Als
Ausgangsmaterial verwendete Verbindungen sind entweder bekannte
Verbindungen oder Verbindungen, die leicht durch an sich bekannte
Verfahren hergestellt werden können.
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BEISPIEL
1 (nicht erfindungsgemäß)
5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäure 6-ethylester
-
Einer
Lösung
von 4-(2-Spiro[1,3]dioxolan)piperidin (51,5 g, 0,36 mol) in einem
Gemisch aus Dichlormethan (500 ml) und gesättigter Natriumbicarbonatlösung (500
ml) wurde Di-tert-butyldicarbonat (69,8 g, 0,32 mol) zugesetzt und
die Reaktion für
eine Dauer von 3 Stunden kräftig
gerührt,
und die Schichten wurden getrennt. Die organische Schicht wurde
mit 1 N Salzsäure
(2 × 150
ml), Kochsalzlösung
(100 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4),
filtriert und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft, um 75,5 g (97%) 4-(2-Spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
als kristallisierendes Öl
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 3,96
(s, 4H), 3,49 (bm, 4H), 1,65 (bm, 4H), 1,45 (s, 9H).
-
Dem
vorstehenden 4-(2-Spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester (4,0 g,
16,4 mmol), gelöst
in trockenem Diethylether (32 ml) wurde 2,2'-Bipyridyl (1 mg) zugesetzt und die
Lösung
auf –75°C abgekühlt. Tetramethylethylendiamin
(3,2 ml, 21,4 mmol) wurde zugesetzt, gefolgt vom Zutropfen von sec-Butyllithium
(16,4 ml, 21,4 mmol, 1,3 M in Cyclohexan). Das Gemisch wurde bei –75°C für eine Dauer
von 10 Min. gerührt,
dann langsam auf –20°C erwärmt und
bei dieser Temperatur für
eine Dauer von 0,5 Std. gerührt,
dann auf –30°C abgekühlt. Bei
dieser Temperatur wurde Formaldehyd durch Erwärmen von Paraformaldehyd bei 150°C gebildet
und mit trockenem Stickstoff durch das Gemisch geleitet, bis die
Farbe zu gebrochenem weiß verblasste,
wobei zu diesem Zeitpunkt Wasser (40 ml) zugesetzt wurde. Die Schichten
wurden getrennt, und die wässrige
Schicht wurde mit Diethylether (2 × 50 ml) extrahiert. Die vereinigten
organischen Extrakte wurden mit 1 N Salzsäure (2 × 75 ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(50 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand (2,9 g) durch Silicagelsäulenchromatografie
(Hexan/Ethylacetat, 10% Ethylacetat bis 30% Ethylacetat, Gradient)
gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 1,3 g (29%) 2- Hydroxymethyl-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
als dickes Öl
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 4,42
(bm, 1H), 4,08–3,96
(m, 5H), 3,96–3,88
(m, 1H), 3,78–3,70
(m, 1H), 3,30–3,16
(bm, 1H), 2,30–1,98
(bs, 1H), 1,96–1,78
(m, 2H), 1,74–1,64
(m, 2H), 1,49 (s, 9H).
-
Zu
2-Hydroxymethyl-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester (0,4 g,
1,5 mmol), gelöst
in trockenem Tetrahydrofuran (20 ml) wurden Phthalimid (0,28 g,
1,9 mmol), Triphenylphosphin (0,5 g, 1,9 mmol) zugesetzt, und das
Gemisch wurde auf 0°C
in einem Eisbad abgekühlt.
Diethylazodicarboxylat (0,29 ml, 1,82 mmol) wurde zugetropft und
das Gemisch 0°C
für eine
Dauer von 0,5 Std. gerührt,
dann bei Umgebungstemperatur für
eine Dauer von 18 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand durch Silicagelsäulenchromatografie
(Hexan/Ethylacetat, 18% Ethylacetat bis 25% Ethylacetat, Gradient)
gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 0,29 g (48%) 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester zu
erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 7,94–7,80 (bs,
2H), 7,80–7,64
(bd, 2H), 4,96–4,70
(2bs, 1H), 4,66–4,52
(m, 1H), 4,30–4,14
(bm, 1H), 4,12–4,04
(m, 2H), 4,04–3,94
(m, 2H), 3,56–3,32
(m, 2H), 2,04–1,92
(m, 1H), 1,90–1,60 (m,
4H), 1,22–1,00
(bs, 9H).
MS: m/z: 403 [M + H]+, 303
[M – Boc]
-
Dem
vorstehenden 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
(1,1 g, 2,7 mmol), gelöst
in Dichlormethan (6 ml) wurde 1,0 N Chlorwasserstoff in Diethylether
(50 ml) zugesetzt und die Lösung
bei Umgebungstemperatur für
eine Dauer von 62 Std. gehalten. Der Niederschlag wurde abfiltriert
und mit Diethylether gewaschen und mit Stickstoff getrocknet, um 0,83
g (90%) 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-Hydrochlorid
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (400
MHz, DMSO-d6): δ 9,2–8,8 (2bs, 2H), 7,8–8,1 (m,
2H), 4,1–3,6
(m, 5H), 2,9 (bs, 1H), 2,2–1,6
(m, 5H).
MS: m/z: 303,5 [M + H]+
-
Einer
Suspension von dem vorstehenden 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-Hydrochlorid
(0,7 g, 2,1 mmol) und Ethylchlorformiat (0,24 ml, 2,5 mmol) in trockenem Tetrahydrofuran
(14 ml), gekühlt
in einem Eisbad unter Stickstoff wurde Diisopropylethylamin (0,95
ml, 5,4 mmol) zugesetzt und das Reaktionsgemisch bei Umgebungstemperatur
für eine
Dauer von 3 Std. gerührt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt und der Rückstand zwischen Dichlormethan
(25 ml) und 1 N Salzsäure
(25 ml) aufgeteilt. Die Schichten wurden getrennt, und die wässrige Schicht
wurde mit Dichlormethan (20 ml) extrahiert. Die vereinigten organischen
Schichten wurden mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung (50
ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand was mit n-Butylchlorid
verrieben, filtriert und mit Stickstoff getrocknet, um 0,47 g (61%)
2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäureethylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 7,9
(s, 2H), 7,7 (s, 2H), 4,9–4,7
(bs, 1H), 4,7–4,5
(m, 1H), 4,3–3,9
(m, 5H), 3,9–3,6 (bs,
1H), 3,6–3,3
(m, 2H), 2,0–1,9
(m, 1H), 1,9–1,5
(m, 4H), 1,1–0,7
(bs, 3H).
MS: m/z: 373 [M – H]–.
-
Eine
Lösung
des vorstehenden 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäureethylesters
(0,44 g, 1,2 mmol) in einem Gemisch aus 1 N Salzsäure (18
ml) und Tetrahydrofuran (18 ml) wurde bei 75°C unter Stickstoff unter Rühren für eine Dauer
von 18 Std. erwärmt.
Das Tetrahydrofuran wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand
mit Dichlormethan (2 × 75
ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden mit
gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(50 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt, um 0,42 g (> 100%) 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-oxopiperidin-1-carbonsäureethylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (400
MHz, CDCl3): δ 7,9 (s, 2H), 7,8 (s, 2H), 5,3–5,0 (bm,
1H), 4,6–4,2
(bm, 1H), 4,0 (m, 2H), 3,8–3,6 (bm,
3H), 2,8 (m, 1H), 2,7–2,4
(bm, 3H), 1,0 (bs, 3H).
MS: m/z: 330,6 [M + H]+.
-
Ein
Gemisch aus dem vorstehenden 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-oxopiperidin-1-carbonsäureethylester
(0,39 g, 1,2 mmol), tert-Butylcyanoacetat
(0,22 g, 1,55 mmol), Schwefel (42 mg, 1,3 mmol) in Ethanol (1,5
ml) wurde entgast. Diesem Gemisch wurde unter Stickstoff Morpholin
(205 μl)
zugesetzt und das Gemisch bei 50°C
für eine
Dauer von 13 Std. erwärmt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
(0,74 g) wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Hexan/Ethylacetat (7:3) als
Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand (0,29 g) wurde mit
Acetonitril verrieben, filtriert und mit Stickstoff getrocknet,
um 84 mg (15%) 2-Amino-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäure-3-tert-butylester-6-ethylester
zu erhalten.
1H-MNR (400 MHz, CDCl3): δ 7,9–7,7 (2m,
4H), 6,0 (bs, 2H), 5,1–4,8
(bm, 1H), 4,8–4,5
(m, 1H), 4,5–4,2
(m, 1H), 4,1–3,4
(3m, 4H), 3,0 (m, 2H), 1,8–1,4
(m, 10H), 1,1–0,9
(m, 3H).
MS: m/z: 486 [M + H]+.
-
Dem
vorstehenden 2-Amino-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäure-3-tert-butylester-6-ethylester (48 mg,
0,1 mmol), gelöst
in trockenem Tetrahydrofuran (1 ml), wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(0,4 ml) zugesetzt und die Lösung
für eine
Dauer von 18 Std. bei Umgebungstemperatur gerührt. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum
entfernt und der Rückstand
in Dichlormethan (25 ml) gelöst,
und gesättigte
Natriumbicarbonatlösung
(25 ml) wurde zugesetzt. Die Schichten wurden getrennt, und die
wässrige
Schicht wurde mit Dichlormethan (25 ml) extrahiert. Die vereinigten
organischen Extrakte wurden getrocknet (Na2SO4), filtriert, und das Lösungsmittel wurde im Vakuum
abgedampft. Der Rückstand
(63 mg) wurde in Ethylacetat gelöst
und durch 1 g Silicagel geleitet und das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft,
um 55 mg (90%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäure-3-tert-butylester-6-ethylester
als Feststoff erhalten.
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäure-3-tert-butylester-6-ethylester
(55 mg, 0,09 mmol) wurde in 50%iger Trifluoressigsäure in Dichlormethan
(2 ml) gelöst
und bei Umgebungstemperatur für
eine Dauer von 18 Std. gerührt.
Die flüchtigen Bestandteile
wurden im Vakuum entfernt und der Rückstand durch präparative
HPLC (Säule:
Kromasil C18, 250 × 4,6
mm., Fluss: 2 ml/Min., Gradient: Acetonitril/Wasser, 20% Acetonitril
bis 60% Acetonitril über
eine Dauer von 20 Min.) gereinigt, um nach Abdampfen des Lösungsmittels
im Vakuum 13,8 mg (31%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ 14–13 (bs,
1H), 12,4 (s, 1H), 7,9 (s, 4H), 4,9 (m, 2H), 4,4 (m, 1H), 4,0–2,8 (m, 13H),
0,8 (m, 3H).
MS: m/z: 502 [M + H]+.
-
BEISPIEL
2
5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
(353 mg, 0,88 mmol) wurde in einem Eisbad gekühlt und dann in einer Lösung von
20% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(7 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde für
eine Dauer von 5 Minuten in einem Eisbad und dann für eine weitere
Dauer von 3 Std. bei Umgebungstemperatur gerührt, wonach sie im Vakuum eingeengt
wurde, um einen festen Rückstand
zu erhalten. Dem Rückstand
wurde 2 N Salzsäure
(9 ml) zugesetzt und das Gemisch bei 50°C (Ölbad) unter Rühren für eine Dauer
von 24 Std. erwärmt.
Das gekühlte
Reaktionsgemisch wurde mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
abgeschreckt, bis der pH-Wert basisch war. Die wässrige Schicht wurde mit Chloroform
(3 × 20
ml) extrahiert, und die vereinigten organischen Extrakte wurden
getrocknet (K2CO3),
filtriert, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 205 mg (91%) 2-(4-Oxopiperidin-2-ylmethyl)isoindol-1,3-dion
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (400
MHz, CDCl3): δ 7,90–7,83 (m, 2H), 7,78–7,71 (m,
2H), 3,81–3,73
(m, 2H), 3,43–3,35
(m, 1H), 3,30–3,22
(m, 1H), 2,83 (dt, 1H, J = 13 Hz und J = 3 Hz), 2,46 (d, 1H, J =
15 Hz), 2,42–2,32
(m, 2H), 2,21 (dd, 1H, J = 14 Hz und J = 13 Hz).
APCI-MS: m/z:
259 [M + H]+
-
Das
vorstehende 2-(4-Oxopiperidin-2-ylmethyl)isoindol-1,3-dion (0,20
g, 0,76 mmol) wurde in Dichlormethan (5 ml) gelöst. Gesättigte Natriumbicarbonatlösung (5
ml) wurde zugesetzt, gefolgt von Di-tert-butyldicarbonat (0,20 g,
0,91 mmol). Die Reaktion wurde für
eine Dauer von 16 Std. kräftig
gerührt,
wonach die organische Phase abgetrennt wurde. Die wässrige Schicht
wurde mit Dichlormethan (2 × 10
ml) extrahiert, und die vereinigten organischen Extrakte wurden
getrocknet (Na2SO4),
filtriert, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Ethylacetat/Dichlormethan
(0 bis 10%iger Gradient) als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen
wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 0,23 g (85%) 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-oxopiperidin-1-carbonsäure-tert-butylester.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 7,86 (bs,
2H), 7,72 (bs, 2H), 5,15–4,98
(m, 1H), 4,23–4,14
(m, 1H), 3,90 (t, 1H, J = 12 Hz), 3,61–3,52 (m, 2H), 2,78–2,70 (m,
1H), 2,57–2,39
(m, 3H), 1,15 (s, 9H).
APCI-MS: m/z: 359 [M + H]+
-
Der
vorstehende 2-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-oxopiperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
(0,43 g, 1,2 mmol) wurde in absolutem Ethanol (9 ml) gelöst. Der
Lösung
wurde Schwefel (42 mg, 1,32 mmol) und tert-Butylcyanoacetat (0,22 g, 1,56 mmol)
zugesetzt. Das Gemisch wurde unter Stickstoff gesetzt und in einem Ölbad mit
50°C gerührt. Morpholin
(0,21 ml, 2,4 mmol) wurde zugesetzt und die Reaktion für eine Dauer
von 16 Std. gerührt.
Der gebildete Niederschlag wurde abfiltriert und mit Acetonitril
(2 × 3
ml) gewaschen und getrocknet, um 0,18 g 2-Amino-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester (A) (30%)
zu erhalten. Das Filtrat wurde im Vakuum eingeengt und der Rückstand
durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Ethylacetat/Hexan (1:4 bis
1:3 Gradient) als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 0,3 g eines Gemischs aus 2-Amino-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester und 2-Amino-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten. Durch HPLC-Reinigung eines kleinen Teils des Gemischs
wurden 28 mg reiner 2-Amino-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(B) erhalten.
- (A):
1H-NMR
(400 MHz, CDCl3): δ 7,87–7,82 (m, 2H) 7,73–7,66 (m,
2H), 6,00 (bs, 2H), 5,02–4,87
(m, 1H), 4,72–4,21
(m, 2H), 4,03–3,93
(m, 1H), 3,51 (t, 1H, J = 14 Hz), 2,97–2,91 (m, 2H), 1,56 (s, 9H),
1,12–1,09 (s,
9H).
LC-MS: Rt = 3,96 Min., m/z: 514,4
[M + H]+
- (B):
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 7,88–7,82 (m,
2H), 7,74–7,66
(m, 2H), 5,39–5,19
(m, 1H), 4,30–4,02
(m, 2H), 3,78–3,70
(m, 1H), 3,33–3,18
(m, 1H), 2,86 (dd, 1H, J = 18 Hz und J = 4 Hz), 2,75–2,61 (m,
1H), 1,54 (s, 9H), 1,13–1,05
(s, 9H).
LC-MS: Rt = 4,01 Min., m/z:
514,4 [M + H]+
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 2-Amino-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylesters (50 mg,
0,097 mmol) in Dichlormethan (3 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(60 mg, 0,29 mmol) zugesetzt. Die Reaktion wurde unter Stickstoff
gesetzt und für
eine Dauer von 3 Std. bei Umgebungstemperatur gerührt. Die
Lösung
wurde im Vakuum eingeengt und der Rückstand durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines 5%igen Gemischs aus Ethyl acetat/Dichlormethan
als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das
Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 54 mg (87%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 12,52
(s, 1H), 7,85 (bs, 2H), 7,74–7,67
(m, 2H), 5,08–4,92
(m, 1H), 4,93–4,40 (m,
2H), 3,97–3,87
(m, 1H), 3,53 (t, 1H, J = 14 Hz), 3,11–2,99 (m, 2H), 1,62 (s, 18H),
1,14–1,12
(2s, 9H).
APCI-MS: m/z: 641 [M – H]–
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester (54 mg,
0,084 mmol) wurde in einer Lösung
von 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(2 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer von 7 Std. gerührt, im
Vakuum eingeengt und der Rückstand
im Vakuum aus Dichlormethan (3 × 10
ml) abgedampft. Der erhaltene Niederschlag wurde mit Dichlormethan
gewaschen, abfiltriert und im Vakuum getrocknet, um 41 mg (90%)
der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ 12,31 (s,
1H), 9,36 (bs, 2H), 7,93–7,90
(m, 2H), 7,88–7,85
(m, 2H), 4,43 (d, 1H, J = 16 Hz), 4,26 (d, 1H, J = 16 Hz), 4,03–3,91 (m,
2H), 3,83–3,76
(m, 1H), 3,31 (dd, 1H, J = 18 Hz und J = 4 Hz), 2,82 (dd, 1H, J
= 18 Hz und J = 10 Hz).
APCI-MS: m/z: 430 [M + H]+
HPLC
(254,4 nm): Rt = 6,72 Min., 98%
-
BEISPIEL
3
5-(S)-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von L-Aspartamsäure
(120 g, 0,90 mol) in Methanol (600 ml), gekühlt auf –20°C wurde Thionylchorid (93 ml,
1,29 mol) über
eine Dauer von 0,5 Std. zugetropft. Das Kühlbad wurde entfernt und das Gemisch
für eine
Dauer von 1 Std. gerührt,
bevor Diethylether (1,8 l, enthaltend 50 ml 1 N Salzsäure in Diethylether)
unter Kühlen
zugesetzt wurde. Der erhaltene Niederschlag wurde abfiltriert off
und mit Diethylether gewaschen. Das Produkt wurde zweimal umkristallisiert:
Erste
Umkristallisation: Das Produkt wurde in warmem Methanol (600 ml)
gelöst
und mit 1,8 ml Diethylether (enthaltend 50 ml 1 N Salzsäure in Diethylether)
erneut ausgefällt.
Zweite
Umkristallisation: Das Produkt wurde in warmem Methanol (250 ml)
gelöst
und mit 1,0 m Diethylether (enthaltend 50 ml 1 N Salzsäure in Diethylether)
erneut ausgefällt.
-
Dadurch
wurden 75 g (45%) L-Aspartamsäure-β-methyletter-Hydrochlorid
als Feststoff erhalten.
-
Einer
Lösung
des vorstehenden β-Methylesters
(50 g, 0,27 mol) in Wasser (120 ml), gekühlt auf 0°C wurden Triethylamin (95 ml,
0,68 mol) und Methylacrylat (74 ml, 0,82 mol) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch wurde
für eine
Dauer von 3 Std. gerührt,
bevor das Kühlbad
entfernt wurde, nach Rühren
für eine
zusätzliche Dauer
von 1 Std. wurde das Gemisch mit Petrolether (2 × 400 ml) gewaschen, bevor
tert-Butanol (40 ml) und Di-tert-butyldicarbonat (74 g, 0,34 mol)
zugesetzt wurden und das Reaktionsgemisch für eine Dauer von 16 Std. gerührt wurde.
Das Gemisch wurde mit Petrolether (2 × 400 ml) gewaschen, auf 0°C abgekühlt, und der pH-Wert
wurde mit konzentrierter Salzsäure
auf 3 eingestellt. Nach Extraktion mit Ethylacetat (3 × 200 ml)
wurde die organische Phase mit Kochsalzlösung (200 ml) gewaschen, getrocknet
(MgSO4), filtriert, und die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde einer Säulenchromatografie über Silicagel
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan/Methanol/Essigsäure (25:25:2,5:1)
als Eluent unterzogen. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und
das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 60 g (66%) 2-(tert-Butoxycarbonyl-(2-methoxycarbonylethyl)amino)bernsteinsäure-4-methylester
als Feststoff zu erhalten.
-
Einer
Lösung
des vorstehenden Diethylesters (96,9 g, 0,29 mol) in trockenem entgastem
Tetrahydrofuran (1,0 l) wurde Natriummethoxid (161 ml, 30%ige Lösung in
Methanol) zugesetzt und das Reaktionsgemisch unter Stickstoff für eine Dauer
von 16 Std. unter mechanischem Rühren
unter Rückfluss
gekocht. Das Reaktionsgemisch wurde auf Raumtemperatur abgekühlt, die
flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt, bis ein feuchter Kuchen
beobachtet wurde. Wasser (500 ml) wurde zugesetzt und das Reaktionsgemisch für eine Dauer
von 16 Std. unter Rückfluss
gekocht. Die restlichen organischen Lösungsmittel wurden im Vakuum
abgedampft, bevor der pH-Wert mit konzentrierter Salzsäure auf
2,5 eingestellt wurde. Die wässrige Phase
wurde mit Ethylacetat (3 × 300
ml) extrahiert, und die vereinigten organischen Phasen wurden mit
Kochsalzlösung
(100 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. tert-Butylamin (25,36 g, 0,350 mol) wurde unter Rühren zugetropft,
worauf sich ein weißer
Niederschlag bildete. Der Niederschlag wurde abfiltriert und mit Ethylacetat
gewaschen, im Vakuum getrocknet, um 74,4 g (81%) 4-Oxopiperidin-1,2-dicarbonsäure-1-tert-butylester-tert-Butylaminsalz
als Feststoff zu erhalten.
-
Die
analytisch reine Verbindung kann aus der Umkristallisation des Rohprodukts
aus Ethanol-Diisopropylether durch Erwärmen der Verbindung in Ethanol
(ca. 100 ml pro 10 g Verbindung) und während immer noch heißer Diisopropylether zugesetzt
wird (ca. 250 ml pro 10 g Verbindung erhalten werden). Die Ausbeute bei
der Umkristallisation beträgt
etwa 50%.
-
Eine
Lösung
von dem vorstehenden 4-Oxopiperidin-1,2-dicarbonsäure-1-tert-butylester-tert-Butylaminsalz
(3,0 g, 9,48 mmol), tert-Butylcyanoacetat (2,01 g, 14,22 mmol),
Schwefel (0,46 g, 14,22 mmol) und Diisopropylethylamin (1,64 ml,
9,48 mmol) wurde auf 50°C
unter Stickstoff für
eine Dauer von 12 Std. erwärmt. Man
ließ die
Lösung
auf Raumtemperatur abkühlen,
bevor eine kleine Menge Niederschlag abfiltriert wurde. Das Filtrat
wurde im Vakuum eingedampft und der Rückstand mit zwischen Ethylacetat
(50 ml) und gesättigter Ammoniumchloridlösung (100
ml) aufgeteilt. Die wässrige
Phase wurde mit Ethylacetat (3 × 50
m) extrahiert, und die vereinigten organischen Phasen wurden mit
Kochsalzlösung
(50 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde einer Säulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Petrolether/Ethylacetat/Methanol
(8:4:1) als Eluent unterzogen. Reine Fraktionen wurden aufgefangen,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 2,22 g (58%) 2-Amino-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,5,6-tricarbonsäure-3,6-di-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 3,5,6-Tricarbonsäure-3,6-di-tert-butylesters
(0,63 g, 1,58 mmol) in Dimethoxyethan (10 ml), gekühlt auf –20°C wurde N-Methylmorpholin (174
ml, 1,58 mmol), gefolgt von Isobutylchlorformiat (205 ml, 1,58 mmol)
zugesetzt, und das Reaktionsgemisch wurde für eine Dauer von zwei Minuten gerührt, bevor
ein Niederschlag abfiltriert wurde. Der Niederschlag wurde rasch
mit Dimethoxyethan (2 × 2,5 ml)
gewaschen, erneut auf –20°C abgekühlt, und
eine Lösung
von Natriumborhydrid (90 mg, 2,37 mmol) in Wasser (1 ml) wurde in
einer Portion dem Filtrat zugesetzt (Vorsicht – Gasentwicklung).
-
Das
Reaktionsgemisch wurde gerührt,
bis die Gasentwicklung aufhörte
(etwa 3 Min.), und das Gemisch wurde in Wasser (25 ml) gegossen
und mit Ethylacetat (10 ml) extrahiert, mit Kochsalzlösung (5
ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft, um 0,40 g (66%) 2-Amino-5-(S)-hydroxymethyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
-
Einem
Gemisch aus dem vorstehenden 2-Amino-5-(S)-hydroxymethyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(2,00 g, 5,20 mmol), Phthalimid (0,92 g, 6,24 mmol) und Triphenylphosphin
(1,64 g, 6,24 mmol) in trockenem Tetrahydrofuran (30 ml) abgekühlt auf
0°C unter Stickstoffatmosphäre wurde
Diethylazodicarboxylat (DEAD) (0,98 ml, 6,24 mmol) zugesetzt. Man
ließ das
Reaktionsgemisch über
Nacht rühren,
indem es langsam auf Raumtemperatur erwärmt wurde. Am nächsten Tag wurde
das Reaktionsgemisch erneut auf 0°C
abgekühlt,
und Phthalimid (0,46 g, 3,12 mmol), Triphenylphosphin (0,82 g, 3,12
mmol) und Diethylazodicarboxylat (DEAD) (0,49 ml, 3,12 mmol) wurden
nacheinander zugesetzt, und man ließ das Reaktionsgemisch über Nacht
rühren,
indem es langsam auf Raumtemperatur erwärmt wurde. Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum abgedampft, und der erhaltene Feststoff
wurde in Dichlormethan (20 ml) gelöst. Der Rückstand wurde einer Flashsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:2) als
Eluent unterzogen. Fraktionen wurden aufgefangen, um nach Eindampfen
im Vakuum 1,0 g der gewünschten
Verbindung, verunreinigt mit Phthalimid zu erhalten. Durch Umkristallisation
aus Ethanol wurden 0,23 g (9%) reiner 2-Amino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Feststoff erhalten.
-
Dem
vorstehenden Di-tert-butylester (0,20 g, 0,39 mmol), gelöst in Dichlormethan
(4 ml) wurde ein Gemisch aus Imidazol-1-yl-oxoessigsäurfe-tert-butylester (0,23
g, 1,17 mmol) in Dichlormethan (1 ml) unter Stickstoff zugesetzt.
Man ließ das
Reaktionsgemisch bei Raumtemperatur über Nacht rühren. Dem Reaktionsgemisch
wurde Dichlormethan (5 ml) zugesetzt und dies mit 1% Salz säure (10
ml) gewaschen, getrocknet (Na2SO4), filtriert, und die organische Phase im
Vakuum eingedampft, um 0,25 g (100%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
-
Der
vorstehenden Tri-tert-butylester (0,25 g, 0,39 mmol) wurde in 20%iger
Trifluoressigsäure
in Dichlormethan (5 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde bei Raumtemperatur für eine Dauer von 24 Std. gerührt, bevor Diethylether
(5 ml) zugesetzt wurde. Der Niederschlag wurde abfiltriert, mit
Diethylether gewaschen, im Vakuum getrocknet, um 150 mg eines Feststoffs
zu erhalten. Eine NMR zeigte die Gegenwart einer Spurenmenge Material,
das aus einer unvollständigen
Schutzgruppenabspaltung resultierte. 100 mg des Rohprodukts wurde erneut
in 20%iger Trifluoressigsäure
in Dichlormethan (5 ml) gelöst,
und bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 24 Std. gerührt,
bevor Diethylether (5 ml) zugesetzt wurde. Das Produkt wurde abfiltriert
und mit Diethylether gewaschen und im Vakuum getrocknet, um 50 mg
(40%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
Schmp.:
Zers. > 240°C
Berechnet
für C19H15N3O7S, 1/3 × C2HF3O2,
0,5 × H2O;
C, 49,58%; H, 3,46%; N, 8,82%. Gefunden:
C,
49,84%; H, 3,83%; N, 8,99%.
-
BEISPIEL
4
7-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von reinem 2-Amino-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(28 mg, 0,057 mmol) in Dichlormethan (2 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxo-essigsäure-tert-butylester (35 mg,
0,17 mmol) zugesetzt. Die Reaktion wurde unter Stickstoff gesetzt
und für
eine Dauer von 12 Std. bei Umgebungstemperatur gerührt. Die
flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum abgedampft, und der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:3) als
Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 25 mg (67%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 12,59–12,53 (bs,
1H), 7,89–7,84
(m, 2H), 7,75–7,67
(m, 2H), 5,61–5,41
(m, 1H), 4,36–4,15
(m, 1H), 4,12–4,06
(m, 1H), 3,90–3,82
(m, 1H), 3,34–3,21
(m, 1H), 2,99–2,93
(m, 1H), 2,84–2,68
(m, 1H), 1,62–1,59
(s, 18H), 1,12–1,06
(s, 9H).
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester (25 mg,
0,039 mmol) wurde in einer Lösung
von 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(1,5 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer von 7 Std. gerührt, im
Vakuum eingeengt und der Rückstand
im Vakuum aus Dichlormethan (3 × 10
ml) eingedampft. Der erhaltene Niederschlag wurde mit Dichlormethan
gewaschen, abfiltriert und im Vakuum getrocknet, um 41 mg (85%)
der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ 12,32 (s,
1H), 9,48 (bs, 2H), 7,95–7,91
(m, 2H), 7,89–7,84
(m, 2H), 4,89 (s, 1H), 4,15–4,07
(m, 2H), 3,43–3,28
(2m, 2H, teilweise verdeckt durch Wasser), 3,04 (bs, 2H).
LC-MS:
Rt = 1,51 Min., m/z: 428,4 [M – H]–
-
BEISPIEL
5
5-(4-Hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
7-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-1,4-dioxa-8-aza-spiro[4,5]decane-8-carbonsäure-tert-butylester
(1,55 g, 3,85 mmol) wurde in einem Eisbad gekühlt und dann in einer Lösung von
20% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(15 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde gerührt,
und man ließ wie
auf Umgebungstemperatur innerhalb von 3 Std. abkühlen. Die Lösung wurde im Vakuum eingeengt,
um rohes 2-(1,4-Dioxa-8-aza-spiro[4,5]dec-7-ylmethyl)isoindol-1,3-dion
zu erhalten, das direkt im folgenden Schritt verwendet wurde (unter
Annahme einer 100%igen Ausbeute).
1H-NMR
(400 MHz, CDCl3): δ 9,26 (bs, 1H), 8,19 (bs, 1H),
7,78–7,75
(m, 2H), 7,74–7,71
(m, 2H), 4,11–3,98 (m,
5H), 3,90–3,79
(m, 3H), 3,26–3,17
(m, 1H), 2,10–2,00
(m, 3H), 1,92–1,88
(m, 1H).
-
Einer
Suspension des vorstehenden 2-(1,4-Dioxa-8-aza-spiro[4,5]dec-7-ylmethyl)isoindol-1,3-dions (3,85
mmol) in absolutem Ethanol (25 ml) wurde Hydrazin (0,36 ml, 11,55
mmol) zugesetzt. Die Reaktion wurde bei 80°C (Ölbad) für eine Dauer von 6 Std. gerührt, dann
auf Umgebungstemperatur abgekühlt
und für
eine zusätzliche
Dauer von 12 Std. gerührt.
Der dicke Niederschlag wurde abfiltriert und mit Ethanol gewaschen. Das
Filtrat wurde im Vakuum eingeengt und in Dichlormethan (20 ml) erneut
aufgenommen, wodurch eine kleine Menge eines zweiten Niederschlags
gebildet wurde, der abfiltriert wurde. Das Filtrat wurde im Vakuum
eingedampft und das erhaltene Öl
in Wasser (10 ml) gelöst
und mit 1 N Natriumhydroxid auf pH = 10 basisch gestellt. Die wässrige Schicht
wurde mit 20% Isopropylalkohol/Chloroform (12 × 40 ml) extrahiert. Die vereinigten organischen
Extrakte wurden getrocknet (K2CO3), filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft,
um 0,42 g (63%) (1,4-Dioxa-8-aza-spiro[4,5]dec-7-yl)methylamine
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 3,94
(bs, 4H), 3,11–3,05
(m, 1H), 2,81 (dt, 1H, J = 12 Hz und J = 3 Hz), 2,76–2,65 (m,
2H), 2,58–2,50
(m, 1H), 1,70–1,57
(m, 3H), 1,31 (t, 1H, J = 12 Hz).
APCI-MS: m/z: 173,2 [M +
H]+
-
Einer
Lösung
von 4-Hydroxyisobenzofuran-1,3-dion (0,51 g, 3,09 mmol) in wasserfreiem
N,N-Dimethylformamid (7 ml) unter Stickstoff wurde Natriumhydrid
(130 mg, 3,25 mmol) zugesetzt. Eine sofortige Gasentwicklung und
hellgelbe Farbe wurden beobachtet. Die Reaktion wurde für eine Dauer
von 5 Minuten gerührt,
wonach Benzylbromid (1,8 ml, 15,45 mmol) zugesetzt wurde. Die Reaktion
wurde für
eine Dauer von 72 Std. gerührt.
Gesättigte
Natriumbicarbonatlösung
(2 ml) wurde zugesetzt und das Gemisch für eine Dauer von 2 Minuten
gerührt,
in Ethylacetat (35 ml) verdünnt
und mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(5 ml), 1 N Salzsäure
(5 ml) und Kochsalzlösung
(2 × 5
ml) gewaschen. Die organische Schicht wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft.
Dem Rohmaterial wurde Hexan zugesetzt und der gebildete Niederschlag
abfiltriert, weiter mit Hexan gewaschen und im Vakuum getrocknet,
um 0,54 g (69%) 4-(Benzyloxy)-isobenzofuran-1,3-dion als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 7,74
(t, 1H, J = 8 Hz), 7,54 (d, 1H, J = 8 Hz), 7,47–7,29 (m, 6H), 5,36 (s, 2H).
-
Eine
Lösung
von (1,4-Dioxa-8-aza-spiro[4,5]dec-7-yl)methylamin (0,19 g, 1,1
mmol) und 4-(Benzyloxy)isobenzofuran-1,3-dion (0,27 g, 1,05 mmol)
wurde in einem Gemisch aus destilliertem Dichlormethan (3 ml) und
wasserfreiem N,N-Dimethylformamid
(2,5 ml) unter Stickstoff hergestellt. 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimid-Hydrochlorid
(0,23 g, 1,21 mmol) wurde zugesetzt, gefolgt von Triethylamin (0,46
ml, 3,3 mmol), und die Reaktion wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer
von 18 Std. gerührt.
Die Lösung wurde
im Vakuum eingeengt und der Rückstand
mit Ethylacetat (25 ml) verdünnt
und mit Wasser (5 ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(5 ml) und Kochsalzlösung
(5 ml) gewaschen. Die organische Schicht wurde im Vakuum eingedampft
und der Rückstand
durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus 5% Methanol/Dichlormethan/1%
Triethylamin als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 0,22 g (50%) 4-Benzyloxy-2-(1,4-dioxa-8-aza-spiro[4,5]dec-7-ylmethyl)isoindol-1,3-dion
as Halbfeststoff zu erhalten.
1H-NMR
(400 MHz, CDCl3): δ 7,57 (t, 1H, J = 8 Hz), 7,48
(d, 2H, J = 7 Hz), 7,42–7,29
(m, 4H), 7,18 (d, 1H, J = 8 Hz), 5,31 (s, 2H), 3,94–3,90 (m,
4H), 3,65 (d, 2H, J = 6 Hz), 3,16–3,09 (m, 1H), 3,07–3,02 (m,
1H), 2,76 (dt, 1H, J = 13 Hz und J = 3 Hz), 1,78 (d, 1H, J = 12
Hz), 1,64–1,54
(m, 3H), 1,37 (t, 1H, J = 12 Hz), 1,08 (t, 1H, J = 7 Hz).
LC-MS:
Rt = 2,59 Min., m/z: 409 [M + H]+
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 4-Benzyloxy-2-(1,4-dioxa-8-aza-spiro[4,5]dec-7-ylmethyl)-isoindol-1,3-dions
(0,22 g, 0,54 mmol) in 1,4-Dioxan (4 ml) wurde 4 N Salzsäure (4 ml)
zugesetzt und die Reaktion bei 65°C
(Ölbad)
für eine
Dauer von 6 Std. gerührt.
Das Gemisch wurde mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
auf pH = 8 basisch gestellt und mit Dichlormethan (3 × 20 ml)
extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden getrocknet
(MgSO4), filtriert, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um rohes 4-Benzyloxy-2-(4-oxopiperidin-2-ylmethyl)isoindol-1,3-dion
als Öl
zu erhalten, das ohne weitere Reinigung oder Charakterisierung verwendet
wurde.
-
Das
vorstehende rohe 4-Benzyloxy-2-(4-oxopiperidin-2-ylmethyl)isoindol-1,3-dion (0,17 g, 0,47
mmol) wurde in Dichlormethan (4 ml) gelöst. Gesättigte Natriumbicarbonatlösung (4
ml) wurde zugesetzt, gefolgt von Di-tert-butyldicarbonat (0,11 g,
0,52 mmol). Die Reaktion wurde für
eine Dauer von 16 Std. kräftig
gerührt,
und dann wurden die Schichten getrennt. Die wässrige Schicht wurde mit Dichlormethan
(2 × 10
ml) extrahiert, und vereinigten organischen Phasen wurden getrocknet
(MgSO4), filtriert, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:2) als
Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 0,14 g (64%) 2-(4-Benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-oxo-piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3): δ 7,57
(bs, 1H), 7,47–7,31
(m, 6H), 7,18 (bs, 1H), 5,34 (s, 2H), 5,03 (bs, 1H), 4,45–4,14 (m,
1H), 3,89 (t, 1H, J = 12 Hz), 3,55 (bs, 2H), 2,76–2,71 (m,
1H), 2,57–2,38
(m, 3H), 1,17 (s, 9H).
-
Eine
Lösung
von 2-(4-Benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4-oxo-piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
(0,14 g, 0,30 mmol), Schwefel (10,6 mg, 0,33 mmol), und tert-Butylcyanoacetat
(55 mg, 0,39 mmol) in absolutem Ethanol (4 ml) wurde bei 50°C (Ölbad) gerührt. Morpholin
(53 μl,
0,6 mmol) wurde zugesetzt und die Reaktion unter Stickstoff gesetzt
und für
eine Dauer von 16 Std. gerührt.
Die Lösung
wurde auf Umgebungstemperatur abgekühlt, im Vakuum eingeengt und
der Rückstand
durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwen dung eines Gradienten aus Ethylacetat/Dichlormethan
(0 bis 5%iger Gradient) als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden
aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um ein Gemisch aus den Regioisomeren
0,15 g (80%) 2-Amino-5-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
und 2-Amino-7-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten, die chromatografisch nicht trennbar waren.
-
Einer
Lösung
des vorstehenden Gemischs aus 2-Amino-5-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
und 2Aamino-7-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(0,15 g, 0,24 mmol) in destilliertem Dichlormethan (4 ml) unter
Stickstoff wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester (0,14 g,
0,72 mmol) zugesetzt und das Reaktionsgemisch bei Umgebungstemperatur
für eine
Dauer von 1,5 Std. gerührt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum abgedampft, und der rohe Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatogafie
unter Verwendung von Dichlormethan als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen
wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 50 mg 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(A) und 50 mg 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(B) zu erhalten. Weitere 50 mg blieben als Gemisch aus den beiden
Isomeren (A) und (B) übrig.
- (A):
1H-NMR (300
MHz, CDCl3): δ 12,52 (s, 1H), 7,60–7,31 (m,
7H), 7,20–7,10
(m, 1H), 5,33 (s, 2H), 5,05–4,38 (m,
3H), 3,96–3,83
(m, 1H), 3,52–3,41
(m, 1H), 3,01 (bs, 2H), 1,60 (s, 9H), 1,59 (s, 9H), 1,17–1,14 (s,
9H).
LC-MS: Rt = 4,93 Min., m/z: 748,1
[M + H]+
- (B):
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 12,58–12,52 (s,
1H), 7,60–7,30
(m, 7H), 7,20–7,10
(m, 1H), 5,60–5,39
(m, 1H), 5,34 (s, 2H), 4,36–4,02
(m, 2H), 3,86–3,75
(m, 1H), 3,33–3,18
(m, 1H), 2,97–2,90
(m, 1H), 2,83–2,68 (m,
1H), 1,60 (s, 9H), 1,58–1,57
(s, 9H), 1,15–1,09
(s, 9H)
LC-MS: Rt = 4,93 Min., m/z:
748,1 [M + H]+
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(50 mg, 0,067 mmol) wurde in einem Gemisch aus Ethylacetat/Ethanol
(3 ml, 1:1) gelöst.
Palladium auf Aktivkohle (10%, 10 mg) wurde zugesetzt und die Lösung entgast und
unter Wasserstoff (1 atm.) für
eine Dauer von 72 Std. gerührt.
Eine DSC-Aanalyse zeigte an, dass die Reaktion unvollständig war.
Das Gemisch wurde durch Celite filtriert und der Filterkuchen mit
heißen
Ethylacetat. Das Filtrat wurde im Vakuum eingeengt und durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Ethylacetat/Dichlormethan
(0 bis 5%iger Gradient) als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden
aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 15 mg (30%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 12,50
(s, 1H), 7,61–7,51
(m, 1H), 7,39–7,34
(m, 1H), 7,17–7,09
(m, 1H), 5,04–4,64
(m, 2H), 4,49–4,34
(m, 1H), 3,90–3,78
(m, 1H), 3,51–3,42
(m, 1H), 3,02 (bs, 2H), 1,60 (s, 18H), 1,17–1,14 (2s, 9H).
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6- dicarbonsäuredi-tert-butylester
(15 mg, 0,023 mmol) wurde in einer Lösung von 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(2 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer von 12 Std. gerührt, im
Vakuum eingeengt und im Vakuum aus Dichlormethan (3 × 10 ml)
eingedampft. Der erhaltene Niederschlag wurde mit Dichlormethan
gewaschen und im Vakuum getrocknet, um 6 mg (47%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(400 MHz, DMSO-d6): δ 12,32 (s, 1H), 11,17 (s, 1H),
9,25 (bs, 2H), 7,64 (t, 1H, J = 8 Hz), 7,32 (d, 1H, J = 8 Hz), 7,24
(d, 1H, J = 8 Hz), 4,41–4,23
(m, 2H), 3,96–3,71
(m, 3H), 3,5–3,2
(verdeckt durch Wasser, 1H), 2,83–2,75 (m, 1H).
LC-MS:
Rt = 1,53 Min., m/z: 446,2 [M + H]+
-
BEISPIEL
6
7-(4-Hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(4-benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester (50 mg,
0,067 mmol) wurde in einem Gemisch aus Ethylacetat/Ethanol (3 ml,
1:1) gelöst.
Palladium auf Aktivkohle (10%, 10 mg) wurde zugesetzt und die Lösung entgast und
unter Wasserstoff (1 atm) für
eine Dauer von 72 Std. gerührt.
Das Gemisch wurde durch Celite filtriert und der Filterkuchen mit
heißem
Ethylacetat gewaschen. Das Filtrat wurde im Vakuum eingeengt und
der Rückstand
durch Silicagelsäulenchromatografie
(10% Ethylacetat/Dichlormethan) ge reinigt, um 42 mg (95%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(4-hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ 12,59–12,53 (2s,
1H), 7,64–7,53
(m, 1H), 7,42–7,36
(m, 1H), 7,19–7,11
(m, 1H), 5,58–5,37
(m, 1H), 4,37–4,00
(m, 2H), 3,86–3,78
(m, 1H), 3,32–3,18
(m, 1H), 2,99–2,94
(m, 1H), 2,84–2,69
(m, 1H), 1,62–1,59
(3s, 18H), 1,17–1,11
(2s, 9H);
LC-MS: Rt = 4,55 Min., m/z:
658 [M + H]+,
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(4-hydroxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester (42 mg,
0,064 mmol) wurde in einer Lösung
von 50% Trifluoressigsäure/Methylenchlorid
(3 ml) gelöst.
Die Reaktion wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer von 7 Std. gerührt, im
Vakuum eingeengt und Dichlormethan (10 ml) dreimal eingedampft.
Der erhaltene Niederschlag wurde mit Dichlormethan gewaschen und
im Vakuum getrocknet, um 29 mg (81%) der Titelverbindung als festes
Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(400 MHz, DMSO-d6) δ 12,32 (bs, 1H), 11,26 (s, 1H),
9,30 (bs, 2H), 7,64 (t, 1H, J = 7 Hz), 7,33 (d, 1H, J = 7 Hz), 7,25
(d, 1H, J = 7 Hz), 4,84 (s, 1H), 4,06–3,96 (m, 2H), 3,56 (m, 2H),
3,05 (bs, 2H),
LC-MS: Rt = 1,26 Min.,
m/z: 446 [M + H]+,
-
BEISPIEL
7
2-(Oxalylamino)-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
2-Methyl-benzoesäuremethylester
(1,50 g 10 mmol), N-Bromsuccinimid (1,96 g, 11 mmol) und 2,2'-Azobis(2-methylpropionitril)
(AIBN) (25 mg, 0,15 mmol) wurden in Chloroform (3 ml) gelöst. Die
Lösung wurde
unter Rückfluss
für eine
Dauer von 16 Std. erwärmt,
abgekühlt
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Ethylacetat/Hexan (1–2%) als
Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 2,05 g (89%) 2-Brommethylbenzoesäuremethylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,97
(d, 1H, J = 7,6 Hz), 7,45–7,52
(m, 2H), 7,38 (dt, 1H, J = 1,2 Hz und J = 7,6 Hz), 4,96 (s, 2H),
3,95 (s, 1H).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(100 mg, 0,20 mmol) und Pyridin (0,18 ml, 2,0 mmol) in Acetonitril
(1 ml) bei Raumtemperatur wurde Benzylchlorformiat (0,28 ml, 2,0
mmol) in 10 Aliquoten über
eine Dauer von 48 Std. zugesetzt. Die Lösung wurde dann in Ethylacetat
(30 ml) aufgenommen, mit 0,5 N Salzsäure (3 × 10 ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(3 × 10
ml), Kochsalzlösung
(10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Das erhaltene Öl kristallisierte beim Stehenlassen
für eine
Dauer von 2 Tagen aus. Der Niederschlag wurde abfiltriert und mit
Diethylether (3 × 1
ml) gewaschen, um nach Trocknen im Vakuum 59 mg (47%) 2-Benzyloxycarbonylamino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 10,60
(s, 1H), 7,60–7,92
(m, 4H), 7,38 (m, 5H), 5,26 (s, 2H), 4,30–5,10 (m, 3H), 3,40–4,00 (m,
2H), 1,57 (m, 9H), 1,15 (m, 9H).
-
Einer
Lösung
von 1 N Salzsäure
in Ethylacetat (1,0 ml) wurde 2-Benzyloxycarbonylamino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(52 mg, 0,08 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 48 Std. gerührt.
Ein Niederschlag wurde abfiltriert, um 42 mg (90%) 2-Benzyloxycarbonylamino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester-Hydrochlorid
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 10,45
(s, 1H), 9,40 (s, 1H), 9,25 (s, 1H), 7,89 (m, 4H), 7,39 (m, 5H),
5,22 (s, 2H), 4,39 (d, 1H, J = 15 Hz), 4,28 (m, 1H), 3,95 (m, 2H),
3,79 (m, 1H), 3,20 (m, 1H), 2,70 (m, 1H), 1,48 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 2-Benzyloxycarbonylamino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester-Hydrochlorids
(42 mg, 0,072 mmol) in Ethanol (0,5 ml) wurde Hydrazin (68 μl, 0,22 mmol)
zugesetzt. Die Lösung
wurde bei 80°C
für eine
Dauer von 5 Std. und bei Raumtemperatur für eine Dauer von 16 Std. gerührt. Das
Gemisch wurde abfiltriert und das Filtrat im Vakuum eingedampft.
Der Rückstand
wurde mit Dichlormethan (5 × 1
ml) extrahiert. Die vereinigten Dichlormethanwaschungen wurden im
Vakuum eingedampft, um 20 mg (67%) 5-(S)-Aminomethyl-2-benzyloxycarbonylamino-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 10,55 (bs,
1H), 7,37 (m, 5H), 5,23 (s, 2H), 3,92 (s, 2H), 2,60–3,10 (m,
3H), 1,53 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 5-(S)-Aminomethyl-2-benzyloxycarbonylamino-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(20 mg, 0,048 mmol) in Acetonitril (1 ml) bei 0°C wurden Diisopropylethylamin
(18 μl,
0,15 mmol) und 2-Brommethylbenzoesäuremethyl (12 mg, 0,048 mmol)
zugesetzt. Die Lösung
wurde bei 0°C
für eine
Dauer von 3 Std. und bei Raumtemperatur für eine Dauer von 16 Std. gerührt. Di-tert-butyldicarbonat
(21 mg, 0,096 mmol) wurde dann der Lösung zugesetzt. Die Lösung wurde
dann bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 16 Std. gerührt.
Die Lösung
wurde in Ethylacetat (30 ml) aufgenommen, mit 0,5 N Salzsäure (3 × 10 ml),
gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(3 × 10
ml) und Kochsalzlösung
(10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der feste Rückstand wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines 5%igen Gemischs aus Ethylacetat/Hexan als
Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 10 mg (33%) 2-(Benzyloxycarbonylamino)-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 10,59 (s,
1H), 7,81 (m, 1H), 7,52 (m, 1H), 7,39 (m, 7H), 5,25 (s, 1H), 4,22–5,00 (m,
4H), 4,40–4,80
(m, 2H), 2,80–3,10
(m, 2H), 1,55 (s, 9H), 1,25 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 2-Benzyloxycarbonylamino-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylesters
(9 mg, 0,014 mmol) in Methanol (2 ml) wurde 10% Pd/C (4 mg). Das
Gemisch wurde unter Wasserstoff (1 atm.) für eine Dauer von 3 Std. gerührt und
dann filtriert. Das Filtrat wurde im Vakuum eingedampft, um 6 mg
(93%) 2-Amino-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,80
(m, 1H), 7,50 (m, 1H), 7,44 (m, 2H), 4,22–5,00 (m, 4H), 4,40–4,80 (m,
2H), 2,80–3,10 (m,
2H), 1,63 (s, 9H), 1,25 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
des vorstehenden 2-Amino-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylesters (6 mg,
0,013 mmol) in Acetonitril (0,5 ml) bei Raumtemperatur wurde Imidazol-1-yl-oxoesigsäure-tert-butylester
(27 mg, 0,13 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde für eine Dauer
von 3 Std. bei Raumtemperatur gerührt und dann mit Ethylacetat
(20 ml) verdünnt,
mit 0,5 N Salzsäure
(2 × 5
ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 5
ml), Kochsalzlösung
(5 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Ethylacetat/Hexan (10–25%iger
Gradient) als Eluent gereinigt. Reine Fraktionen wurden aufgefangen,
und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 4 mg (50%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,49
(s, 1H), 7,80 (m, 1H), 7,50 (m, 1H), 7,44 (m, 2H), 4,22–5,00 (m,
4H), 4,20–4,90
(m, 2H), 2,90–3,20
(m, 2H), 1,63 (s, 9H), 1,60 (s, 9H), 1,25 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(0,5 ml, 1:1) bei Raumtemperatur wurde der vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(4 mg, 0,006 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde für eine Dauer
von 3 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde mit Dichlormethan gewaschen, um in quantitativer Ausbeute
die Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 12,32 (s,
1H), 4,62 (s, 1H), 4,12 (m, 1H), 3,62–3,78 (m, 2H), 3,40–3,52 (m,
1H), 2,83 (m, 2H).
MS: m/z: 416 [M + H]+.
-
BEISPIEL
8
5-(4-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Acetylchlorid
(5,4 ml, 5,96 g, 76 mmol) wurde Methanol (15 ml) bei 0°C in einem
verschlossenen Rundkolben mit einem Volumen von 50 ml zugetropft.
Man ließ diese
Lösung
für eine
Dauer von 1 Std. unter Rühren auf
Raumtemperatur erwärmen.
Dieser Lösung
wurde 3-Hydroxy-2-methylbenzoesäure
(519 mg, 3,4 mmol) zugesetzt, und die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 42 Std. gerührt.
Die Reaktion wurde mit gesättigter,
wässriger
Natriumbicarbonatlösung
und festem Natriumbicarbonat abgeschreckt. Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt, und die basische, wässrige Lösung wurde
dann mit Dichlormethan (4 × 40
ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden getrocknet
(MgSO4), filtriert, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft, um 493 mg (87%) 3-Hydroxy-2-methylbenzoesäuremethylester als
Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (300
MHz, CDCl3): δ 7,43 (d, 1H, J = 9 Hz), 7,12
(t, 1H, J = 8 Hz), 6,95 (d, 1H, J = 8 Hz), 5,05 (bs, 1H), 3,90 (s,
3H), 2,47 (s, 3H).
-
Einer
Lösung
von dem vorstehenden Methylester (256 mg, 1,54 mmol) und N,N-Diisopropylethylamin (530 μl, 3,0 mmol)
in Dichlormethan (8 ml) bei 0°C
wurde Methyloxymethylchlorid (175 μl, 2,3 mmol) zugetropft. man
ließ die
Lösung
langsam auf Raumtemperatur erwärmen,
und sie wurde für
eine Dauer von 24 Std. gerührt.
Die Lösung
wurde mit Dichlormethan (12 ml) verdünnt, mit Wasser (20 ml), Kochsalzlösung (20
ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und im Vakuum eingeengt. Das erhaltene Öl wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Hexahnen/Ethylacetat (4:1) als
Eluent gereinigt, um 269 mg (85%) 3-Methoxymethoxy-2-methylbenzoesäuremethylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 7,48
(d, 1H, J = 8 Hz), 7,24–7,15
(m, 2H), 5,22 (s, 2H), 3,90 (s, 3H), 3,50 (s, 3H), 2,47 (s, 3H).
-
In
einem Rundkolben mit einem Volumen von 25 ml wurden N-Bromsuccinimid
(236 mg, 1,3 mmol) und Azubis(cyclohexancarbonitril) (33 mg, 0,14
mmol) einer Lösung
von 3-Methoxymethoxy-2-methylbenzoesäuremethylester (265 mg, 1,26
mmol) in Tetrachlorkohlenstoff (6,5 ml) zugesetzt. Die Reaktion
wurde unter Rühren
für eine
Dauer von 3,5 Std. unter Rückfluss
erwärmt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt, und der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Hexanen/Ethylacetat (9:1) als
Eluent gereinigt, um 364 mg (100%) 2-Brommethyl-3-methoxymethoxybenzoesäuremethylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (300
MHz, CDCl3): δ 7,55 (dd, 1H, J = 6,3 Hz),
7,29 (d, 2H, J = 3 Hz), 5,27 (s, 2H), 5,05 (s, 2H), 3,91 (s, 3H),
3,50 (s, 3H).
-
In
einem Rundkolben mit einem Volumen von 100 ml wurden 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(298 mg, 0,74 mmol) und N,N-Diisopropylethylamin (195 μl, 1,12 mmol)
in Acetonitril (40 ml) gelöst.
2-Brommethyl-3- methoxymethoxybenzoesäuremethylester
(193 mg, 0,67 mmol) in Acetonitril (5 ml) wurde der Aminlösung langsam über eine
gasdichte Spritze über
eine Dauer von 24 Std. zugesetzt, gefolgt von Rühren bei Raumtemperatur für eine Dauer
von einer weiteren Dauer von 36 Std. Die Lösung wurde im Vakuum eingeengt,
der Rückstand
erneut in Ethylacetat (25 ml) gelöst und mit gesättigter,
wässriger
Natriumbicarbonatlösung
(25 ml) und Kochsalzlösung
(25 ml) gewaschen. Die organischen Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft.
Der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Hexanen/Ethylacetat (1:1) als
Eluent gereinigt, um 345 mg (81%) 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydro[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (300
MHz, CDCl3): δ 7,67 (d, 1H, J = 8 Hz), 7,57–7,38 (m,
5H), 7,14 (d, 2H, J = 8 Hz), 6,96 (m, 2H), 6,77 (d, 2H, J = 9 Hz),
6,20 (d, 2H, J = 6 Hz), 5,96 (s, 2H), 4,69–2,58 (m, 17H), 1,55 (s, 9H).
-
In
einem Rundkolben mit einem Volumen von 50 ml wurde eine Lösung von 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydro[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(338 mg, 0,58 mmol) in Dichlormethan (20 ml) mit Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester (575 mg,
2,9 mmol) behandelt. Nach Rühren
für eine
Dauer von 18 Std. bei Raumtemperatur, wurde das Gemisch im Vakuum
zur Trockene eingeengt. Der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Hexanen/Ethylacetat (1:1) als
Eluent gereinigt, um 310 mg (75%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (300
MHz, CDCl3): δ 12,57 (s, 1H), 7,53 (d, 1H,
J = 8 Hz), 7,43 (t, 1H, J = 8 Hz), 7,26 (d, 1H, J = 8 Hz), 7,13
(d, 2H, J = 9 Hz), 6,78 (d, 2H, J = 9 Hz), 5,28 (s, 2H), 4,47 (q,
2H, J = 18 Hz), 4,02–3,44
(m, 11H), 2,97 (dd, 1H, J = 18 Hz und J = 5 Hz), 2,76 (dd, 1H, J
= 17 Hz und J = 5 Hz), 1,63 (s, 9H), 1,59 (s, 9H).
-
10%
Pd/C (145 mg, 50 Gew.-%) wurde einem Gemisch aus 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(283 mg, 0,40 mmol) in 10%iger Ameisensäure und Methanol (10 ml) zugesetzt.
Nach Rühren
bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 18 Std. wurde mehr Pd/C (141 mg, 50 Gew.-%) dem Reaktionsgemisch
zugesetzt. Nach Rühren
bei Raumtemperatur für
eine zusätzliche
Dauer von 20 Std., wurde der Katalysator über Filtration durch Celite
entfernt. Frisches Pd/C (255 mg) und Ammoniumformiat (1,0 g) wurden
dem Rückstand
(253 mg, 0,36 mmol), gelöst
in 10%iger Ameisensäure
in Methanol (10 ml), zugesetzt. Die Lösung wurde auf 40°C für eine Dauer
von 48 Std. erwärmt.
Der Katalysator wurde über
Filtration durch Celite und großzügiges Waschen
mit Methanol. Durch chromatografische Reinigung (Ethylacetat/Triethylamin
(99:1)) wurden 63 mg (27%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-caxbonsäure-tert-butylester
A und 46 mg (19%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-methyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
B erhalten
- A: 1H-NMR
(300 MHz, CDCl3): δ 12,54 (s, 1H), 7,50 (d, 1H,
J = 8 Hz), 7,41 (t, 1H, J = 8 Hz), 7,25 (d, 1H, J = 8 Hz), 5,27
(s, 2H), 4,52 (dd, 2H, J = 30 Hz und J = 19 Hz), 4,08–3,90 (m,
2H), 3,86–3,67
(m, 2H), 3,51 (s, 3H), 3,27 (m, 1H), 2,99 (dd, 1H, J = 18 Hz und
J = 4 Hz), 2,53 (dd, 1H, J = 18 Hz und J = 11 Hz), 1,61 (s, 9H),
1,53 (s, 9H).
LC-MS (APCI+) m/z: 588
[M + H]+; Rt = 1,32
Min.
- B: 1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 12,56 (s,
1H), 7,50 (d, 1H, J = 7 Hz), 7,41 (t, 1H, J = 8 Hz), 7,25 (d, 1H,
J = 8 Hz), 5,27 (s, 2H), 4,50 (dd, J = 28 Hz und J = 18 Hz), 3,93–3,68 (m,
4H), 3,51 (s, 1H), 3,51 (s, 3H), 3,31 (m, 1H), 2,88 (dd, 1H, J =
18 Hz und J = 4 Hz), 2,68 (dd, 1H, J = 19 Hz und J = 9 Hz), 2,46
(s, 3H), 1,61 (s, 9H), 1,54 (s, 9H).
LC-MS (APCI+)
m/z: 602 [M + H]+; Rt =
1,35 Min.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
A (63 mg, 0,11 mmol) wurde in 30%iger Trifluoressigsäure in Dichlormethan
(4 ml) gelöst.
Die Lösung
wurde zur Atmosphäre
offen ohne Rühren
stehen gelassen. Nach 24 Std. wurde der Niederschlag abfiltriert
und mit Diethylether gewaschen, um 57 mg (90%) der Titelverbindung als
festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(300 MHz, DMSO-d6): δ 12,30 (s, 1H), 10,17 (s, 1H),
9,23 (s, 2H, J = 5 Hz und J = 7 Hz), 7,34 (t, 1H, J = 6 Hz), 7,19
(d, 1H, J = 5 Hz), 7,03 (d, 1H, J = 6 Hz), 5,76 (s, 2H), 4,53 (d,
1H, J = 13 Hz), 4,43–4,22
(m, 3H), 4,07 (m, 1H), 3,91 (m, 1H), 3,70 (m, 1H), 3,10 (m, 1H),
2,82 (dd, 1H, J = 14 Hz und J = 8 Hz).
-
BEISPIEL
9 (nicht erfindungsgemäß)
5-(4-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-methyl-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-methyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
B (46 mg, 0,08 mmol) wurde in 30%iger Trifluores sigsäure in Dichlormethan
(4 ml) gelöst.
he Lösung
wurde zur Atmosphäre
offen ohne Rühren
stehen gelassen. Nach 24 Std. wurde der Niederschlag abfiltriert
und mit Diethylether gewaschen, um 41 mg (90%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(400 MHz, CDCl3): δ 12,39 (s, 1H), 10,19 (s, 1H),
10,10 (s, 1H), 7,32 (t, 1H, J = 7,6 Hz), 7,17 (d, 1H, J = 7,2 Hz),
7,02 (t, 1H, J = 7,2 Hz), 4,55 (d, 2H, J = 15 Hz), 4,0–4,5 (m,
4H), 2,95–3,70
(m, 5H), 2,85 (s, 3H).
LC-MS (APCI+)
m/z: 446 [M + H]+; Rt =
1,02 Min.
-
BEISPIEL
10
5-((1,1-Dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Saccharin
(8,8 g, 48 mmol) und Phosphorpentachlorid (15 g, 72 mmol) wurden
unverdünnt
einem mit einer kurzen Destillationssäule ausgestatteten Rundkolben
zugesetzt. Das Gemisch wurde auf 175°C erwärmt. Nach etwa 0,5 Std. wurde
DAS Phosphoroxychlorid langsam abdestilliert. Nach Beendigung der
Reaktion wurde das Gemisch abgekühlt
und der erhaltene Feststoff aus Benzol auskristallisiert, um 3,6
g (37%) 3-Chlorbenzo[d]isothiazol-1,1-dioxid als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,92 (d,
1H, J = 6,9 Hz), 7,8 (m, 3H).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminormethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(155 mg, 0,384 mmol) und Triethylamin (59 μl, 0,423 mmol) in Dichlormethan (2
ml) bei 0°C
wurde eine Lösung
von 3-Chlorbenzo[d]isothiazol-1,1-dioxid (85,2 mg, 0,423 mmol) in
Dichlormethan (2 ml) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch wurde bei 0°C für eine Dauer
von 1 Std. gerührt.
Die Reaktion wurde durch DSC (Dichlormethan/Ethylacetat (1:1)) als
vollständig
beurteilt. Das Reaktionsgemisch wurde mit Wasser (3 × 20 ml)
gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der rohe Rückstand
wurde einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gradienten
aus 100% Dichlormethan bis Dichlormethan/Ethylacetat (80/20) als
Eluent unterzogen, um 200 mg (92%) 2-Amino-5-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Schaum
zu erhalten.
1H-NMR (CD3OD): δ 7,99 (m,
1H), 7,87 (m, 1H), 7,79 (m, 2H), 7,19 (d, 2H, J = 8,4 Hz), 6,75
(d, 2H, J = 8,7 Hz), 3,88–3,79
(m, 2H), 3,75–3,59
(m, 3H), 3,69 (s, 3H), 3,52–3,46
(m, 2H), 2,84 (dd, 1H, J = 15,3 Hz und J = 5,4 Hz), 2,68 (dd, J
= 18 Hz und J = 4,5 Hz), 1,46 (s, 9H).
LC-MS: Rt =
2,83, m/z: 569 [M + H]+
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(129 mg, 0,227 mmol) in Tetrahydrofuran (3 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(1,1 ml, 1,1 mmol, 1 M in Tetrahydrofuran) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 18 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde im Vakuum eingeengt und der Rückstand
einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Dichlormethan
(10:90) als Eluent unterzogen, um 142 mg (90%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3- ylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,92 (d,
1H, J = 6,3 Hz), 7,73 (m, 2H), 7,56 (d, 1H, J = 5,7 Hz), 7,20 (d,
2H, J = 6,3 Hz), 7,05 (bs, 1H), 6,87 (d, 2H, J = 6,6 Hz), 3,91 (m,
2H), 3,82–3,72
(m, 2H), 3,79 (s, 3H), 3,61–3,49
(m, 2H), 3,44 (m, 1H), 3,11 (dd, 1H, J = 15 Hz und J = 3,6 Hz),
2,72 (dd, 1H, J = 12 Hz und J = 4,2 Hz), 1,63 (s, 18H);
LC-MS:
Rt = 3,48, m/z: 697 [M + H]+
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(120 mg, 0,172 mmol) wurde in einem Gemisch aus Ethanol (4 ml) und
Ameisensäure
(0,5 ml) unterzogen. 10%iges Pd-C (20 mg) wurde zugesetzt und das Reaktionsgemisch
bei Umgebungstemperatur für
eine Dauer von 4 Tagen gerührt
(nach dem zweiten Tag wurden 150 mg zusätzliches 10%iges Pd-C zugesetzt).
Das Reaktionsgemisch wurde durch Celite filtriert und das Celite
mit Dichlormethan gewaschen. Die organischen Fraktionen wurden vereinigt
und im Vakuum eingeengt. Das erhaltene Öl wurde einer präparativen
Dünnschichtchromatografie
(Dichlormethan/Methanol (95:5)) unterzogen, um 17 mg (17%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,91 (m,
1H), 7,72 (m, 3H), 7,34 (bs, 1H), 4,16–4,08 (m, 1H), 4,07 (dd, 2H,
J = 36,3 Hz und J = 8,7 Hz), 3,38–3,30 (m, 1H), 3,22–3,06 (m,
2H), 2,51 (dd, 1H, J = 16,8 Hz und J = 9,9 Hz), 1,61 (s, 18H).
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (15 mg,
0,026 mmol) wurde in einer Lösung
von 50% Trifluoressigsäu re/Dichlormethan
(3 ml) gelöst.
Das Reaktionsgemisch wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer von
18 Std. gerührt,
im Vakuum eingeengt und erneut aus Acetonitril (2×) eingedampft.
Der Rückstand
wurde mit Dichlormethan gewaschen und im Vakuum und getrocknet,
um 16 mg (90%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu
erhalten.
1H-NMR (CD3OD): δ 7,98 (d,
1H, J = 7,2 Hz), 7,92 (d, 1H, J = 6,6 Hz), 7,83 (m, 2H), 4,51–4,39 (m,
2H), 4,11–4,08
(m, 1H), 3,97–3,91
(m, 2H), 3,53–3,47
(m, 1H), 3,16–3,10
(m, 1H).
-
BEISPIEL
11
7-((1,1-Dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
3-Chlorbenzo[d]isothiazole-1,1-dioxid
(160 mg, 0,79 mmol) und Diisopropylethylamin (150 μl, 0,86 mmol)
wurden in Dichlormethan (7 ml) bei 0°C gelöst. 2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(284 mg, 0,70 mmol) wurde zugesetzt und das Gemisch für eine Dauer
von 15 Minuten bei 0°C
gerührt,
mit Dichlormethan (10 ml) verdünnt
und mit Wasser (20 ml) und Kochsalzlösung (20 ml) gewaschen. Die
organische Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Hexanen/Ethylacetat (1:1)
bis reines Ethylacetat als Eluent gereinigt, um 309 mg (77%) 2-Amino-7-((1,1-dioxo- 1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Schaum zu erhalten.
1H-NMR (300
MHz, CDCl3): δ 7,89 (d, 1H, J = 8 Hz), 7,77–7,63 (m,
2H), 7,37 (d, 1H, J = 7 Hz), 7,25 (d, 2H, J = 10 Hz), 6,82 (d, 2H,
J = 8 Hz), 6,62 (bs, 1H), 6,08 (s, 2H), 3,91 (m, 1H), 3,71 (s, 3H),
3,49–2,65
(m, 8H), 1,59 (s, 9H).
LC-MS (APCI+)
m/z: 569 [M + H]+, [M + Na] 591; Rt = 2,85 Min.
-
2-Amino-7-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (102 mg,
0,18 mmol) in Dichlormethan (10 ml) wurde mit Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(85 mg, 0,43 mmol) behandelt. Nach Rühren für eine Dauer von 18 Std. bei
Raumtemperatur wurde die Reaktionslösung im Vakuum zur Trockene
eingeengt. Der Rückstand
wurde durch Silicagelsäulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Hexanen/Ethylacetat (1:1)
bis reines Ethylacetat als Gradient gereinigt, um 98 mg (78%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)-methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 12,57
(s, 1H), 7,89 (d, 1H, J = 8 Hz), 7,77–7,63 (m, 2H), 7,39 (d, 1H,
J = 7 Hz), 7,25 (d, 2H, J = 9 Hz), 6,84 (d, 2H, J = 9 Hz), 6,64
(bs, 1H), 3,99–2,76
(m, 12H), 1,64 (s, 9H), 1,63 (s, 9H).
-
10%iges
Pd/C (100 mg) wurde einem Gemisch aus 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)-methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(98 mg, 0,14 mmol) in 10%iger Ameisensäure in Methanol (10 ml) zugesetzt.
Nach Rühren
bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 48 Std. wurde der Katalysator über Filtration durch Celite
und großzügiges Waschen
mit Methanol entfernt. Die flüchtigen
Be standteile wurden im Vakuum entfernt, und der Rückstand
wurde chromatografisch (Ethylacetat/Triethylamin, 99:1) gereinigt,
um 32 mg (40%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 12,48
(s, 1H), 10,21–9,15
(m, 2H), 8,49–7,42
(m, 3H), 5,62–5,00
(bs, 1H), 4,53–2,87
(m, 8H), 1,61 (s, 18H).
HPLC (254,4 nm) Rt =
3,67 Minuten.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(32 mg) wurde in einem Gemisch aus 30%iger Trifluoressigsäure in Dichlormethan
(4 ml) gelöst.
Die Lösung
wurde offen zur Atmosphäre
hin ohne Rühren
stehen gelassen. Nach 24 Std. wurde der Niederschlag abfiltriert
und mit Diethylether gewaschen, um 29 mg (90%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(300 MHz, DMSO-d6): δ 12,36 (s, 1H), 9,92 (bs, 1H),
9,73 (bs, 1H), 9,38 (bs, 1H), 8,20 (m, 1H), 8,05 (m, 1H), 7,89 (m,
2H), 4,95 (s, 1H), 4,12–3,00
(m, teilweise verdeckt von Wasser, 8H).
LC-MS (APCI+) m/z: 466 [M + H]+;
Rt = 0,66 Min.
-
BEISPIEL
12
5-(7-Methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
2-Methoxy-6-methylbenzoesäureethylester
(500 mg, 2,67 mmol), N-Bromsuccinimid
(483,8 mg, 2,72 mmol) und 2,2'-Azobis(2-methylpropionitrile)
(30,2 mg, 0,123 mmol) in Tetrachlorkohlenstoff (10 ml) wurden unter
Rückfluss
erwärmt.
Nach 18 Std. wurde das Reaktionsgemisch im Vakuum zur Trockene eingedampft. Der
Rückstand
wurde in Dichlormethan (100 ml) gelöst und mit Wasser (2 × 50 ml)
gewaschen. Die organische Schicht wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft.
Der Rückstand
(702 mg) wurde durch Säulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Hexanen/Dichlormethan (1:1) als
Eluent gereinigt, um 573 mg (85%) 6-Brommethyl-2-methoxybenzoesäureethylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,37 (t,
1H, J = 8,4 Hz), 7,01 (d, 1H, J = 8,1 Hz), 6,90 (d, 1H, J = 8,4
Hz), 4,54 (s, 2H), 4,45 (q, 2H, J = 7,2 Hz), 3,82 (s, 3H), 1,42
(t, 3H, J = 9 Hz).
-
6-Brommethyl-2-methoxybenzoesäureethylester
(71,1 mg, 0,260 mmol), gelöst
in Acetonitril (5 ml) und Diisopropylethylamin (453 μl, 2,60 mmol)
wurde bei Raumtemperatur gerührt.
Diesem Gemisch wurde 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (200 mg,
0,52 mmol), gelöst
in Acetonitril (5 ml), durch eine Spritzenpumpe (0,2 ml/Min.) zugesetzt.
Nach Beendigung der Zugabe ließ man
das Reaktionsgemisch für
eine Dauer von 2 Std. rühren.
Das Reaktionsgemisch wurde im Vakuum eingeengt und der Rückstand
mit Ethylacetat (50 ml) verdünnt.
Die organische Schicht wurde mit gesättigter Natriumbicarbonatlösung (2 × 25 ml)
und Kochsalzlösung
(2 × 25
ml) gewaschen. Die organische Schicht wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und im Vakuum eingeengt. Der
Rückstand
(308 mg) wurde einer Säulenchromatografie
unter Verwendung eines Gradienten aus Hexan/Ethylacetat (95:5) bis (50:50)
und dann Dichlormethan/Ethylacetat (95:5) als Eluent unterzogen,
um 106 mg (75%) 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-(7- methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,48 (t,
1H, J = 7,5 Hz), 7,12 (d, 2H, J = 8,4 Hz), 7,01 (d, 1H, J = 7,5
Hz), 6,91 (d, 1H, J = 8,4 Hz), 6,76 (d, 2H, J = 7,8 Hz), 5,95 (bs,
2H), 4,37 (s, 2H), 4,05 (m, 1H), 3,97 (s, 3H), 3,88–3,78 (m,
2H), 3,81 (s, 3H), 3,71–3,39
(m, 4H), 2,90 (dd, 1H, J = 18 Hz und J = 5,4 Hz), 2,62 (dd, 1H,
J = 18 Hz und J = 5,4 Hz), 1,53 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(105 mg, 0,192 mmol) in Tetrahydrofuran (3 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(0,534 ml, 0,534 mmol, 1 M in Tetrahydrofuran) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 18 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde im Vakuum eingeengt und der Rückstand
einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Dichlormethan
(10:90) als Eluent unterzogen, um 85 mg (66%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,47 (t,
1H, J = 5,7 Hz), 7,10 (d, 2H, J = 6 Hz), 6,99 (d, 1H, J = 5,7 Hz),
6,90 (d, 1H, J = 6,3 Hz), 6,76 (d, 2H, J = 6,3 Hz), 4,37 (q, 2H,
J = 11,4 Hz), 3,99–3,92
(m, 1H), 3,97 (s, 3H), 3,79–3,76
(m, 2H), 3,77 (s, 3H), 3,66 (d, 1H, J = 12,6 Hz), 3,58–3,50 (m,
3H), 2,95 (dd, 1H, J = 13,5 Hz und J = 3,6 Hz), 2,70 (dd, 1H, J
= 13,5 Hz und J = 3,6 Hz), 1,61 (d, 9H), 1,57 (s, 9H).
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(66 mg, 0,12 mmol) wurde in Ethanol (2 ml) und Ameisensäure (0,3
ml) gelöst.
10%iges Pd-C (15 mg) wurde zugesetzt und das Re aktionsgemisch bei
Raumtemperatur für
eine Dauer von 3 Tagen gerührt.
Eine DSC (Hexan/Ethylacetat (1/1)) zeigte eine vollständige Reaktion
an. Das Reaktionsgemisch wurde durch Celite filtriert und das Celite
mit Dichlormethan gewaschen. Die organischen Fraktionen wurden vereinigt
und einer präparativen
Dünnschichtchromatografie
(Hexan/Ethylacetat (1/1) unterzogen, um 14,7 mg (22%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,48 (t,
1H, J = 7,5 Hz), 7,01 (d, 1H, J = 7,2 Hz), 6,90 (d, 1H, J = 8,4
Hz), 5,50 (d, 2H, J = 6,6 Hz), 4,04–3,90 (m, 1H), 3,97 (s, 3H),
3,24 (m, 1H), 3,01–2,95
(m, 1H), 2,57–2,43
(m, 2H), 1,62 (s, 9H), 1,57 (s, 9H).
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(14,7 mg, 0,026 mmol) wurde in einer Lösung von 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(2 ml) gelöst.
Das Reaktionsgemisch wurde bei Umgebungstemperatur für eine Dauer
von 18 Std. gerührt,
im Vakuum eingeengt und erneut aus Acetonitril (2×) eingedampft.
Der erhaltene Niederschlag wurde mit Dichlormethan gewaschen und
im Vakuum getrocknet, um 13 mg (89%) der Titelverbindung als festes
Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(CD3OD): δ 7,56
(t, 1H, J = 8,1 Hz), 7,13 (d, 1H, J = 7,2 Hz), 7,01 (d, 1H, J =
8,1 Hz), 4,87–4,44
(m, 4H), 4,15 (m, 1H), 3,90 (s, 3H), 3,88–3,79 (m, 1H), 3,43 (m, 1H),
2,98 (m, 2H);
LC-MS: Rt = 0,71, m/z:
446 [M + H]+.
-
BEISPIEL
13
5-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahdrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Hydroxy-6-methylbenzoesäureethylester
(5,00 g, 27,8 mmol) und t-Butyldimethylsilylchlorid (6,27 g, 41,6
mmol) in Dichlormethan (100 ml) wurde Diisopropylethylamin zugesetzt.
Die Lösung wurde
bei 50°C
für eine
Dauer von 24 Std. gerührt,
mit Wasser, Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft, um 7,6 g (93%) 2-(tert-Butyldimethylsilanyloxy)-6-methylbenzoesäureethylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,13 (t,
1H, J = 7,5 Hz), 6,78 (d, 1H, J = 7,5 Hz), 6,67 (d, 1H, J = 7,5
Hz), 4,35 (q, 2H, J = 7,2 Hz), 2,29 (s, 3H), 1,38 (t, 3H, J = 7,2
Hz), 0,97 (s, 9H), 0,23 (s, 6H).
-
2-(tert-Butyldimethylsilanyloxy)-6-methylbenzoesäureethylester
(7,6 g, 25,8 mmol), N-Bromsuccinimid (4,82 g, 27,1 mmol) und Azo-bis(cyclohexancarbonitril)
(0,32 g, 1,3 mmol) wurden in Tetrachlormethan (130 ml) gelöst. Die
Lösung
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 60 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum eingedampft und der Rückstand wurde über einer
Silicagelsäule
unter Verwendung eines Gradienten aus 1–2% Ethylacetat/Hexan als Eluent
chromatografiert, um 8,0 g (83%) 6-Brommethyl-2-(tert-butyldimethylsilanyloxy)benzoesäureethylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,21 (t,
1H, J = 8,4 Hz), 7,00 (d, 1H, J = 8,4 Hz), 6,81 (d, 1H, J = 8,4
Hz), 4,51 (s, 2H), 4,40 (q, 2H, J = 7,2 Hz), 1,42 (t, 3H, J = 7,2
Hz), 0,98 (s, 9H), 0,23 (s, 6H).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(3,00 g, 7,45 mmol) und Diisopropylethylamin (1,93 ml, 11,2 mmol)
in Acetonitril bei Raumtemperatur wurde eine Lösung von 6-Brommethyl-2-(tert-butyldimethylsilanyloxy)benzoesäureethylester
(2,78 g, 7,45 mmol) in Acetonitril über eine Dauer von 48 Std.
zugesetzt. Die Lösung
wurde für
eine Dauer von 12 Std. gerührt,
wonach die Reaktion vollständig
war. Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum abgedampft, und der Rückstand
wurde in Ethylacetat (50 ml) aufgenommen und mit Wasser, 1 N Salzsäure, Kochsalzlösung gewaschen,
getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde über
einer Silicagelsäule
chromatografiert, mit einem Gemisch aus 20% Ethylacetat/Hexan eluiert,
um 3,2 g (66%) 2-Amino-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl]-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Öl zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,36 (t,
1H, J = 8,0 Hz), 7,11 (d, 2H, J = 8,8 Hz), 6,99 (d, 1H, J = 8,0
Hz), 6,82 (d, 1H, J = 8,0 Hz), 6,76 (d, 2H, J = 8,8 Hz), 5,94 (s,
2H), 4,48 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 4,33 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 3,90–3,45 (m,
7H), 3,78 (s, 3H), 2,95 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und J = 5,2 Hz), 2,72
(dd, 1H, J = 17 Hz und J = 5,6 Hz), 1,52 (s, 9H), 1,05 (s, 9H),
0,26 (s, 6H).
-
Einer
gerührten
Lösung
von 2-Amino-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(2,37 g, 3,64 mmol) in Tetrahydrofuran (50 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(2,14 mg, 10,9 mmol) in Tetrahydrofuran (10 ml) zugesetzt. Das Gemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (100 ml) aufgenommen. Die Lösung wurde mit 0,5 N Salzsäurelösung (2 × 20 ml),
gesättigter
Natriumbi carbonatlösung
(2 × 20
ml) und Kochsalzlösung
(20 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde unter Verwendung eines Gradienten aus 10–20% Ethylacetat/Hexan als
Eluent chromatografiert, um 2,40 g (92%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,59 (s,
1H), 7,37 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 7,10 (d, 2H, J = 8,8 Hz), 7,00 (d,
1H, J = 8,0 Hz), 6,83 (d, 1H, J = 8,0 Hz), 6,77 (d, 2H, J = 8,8
Hz), 4,50 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 4,34 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 3,90–3,45 (m,
7H), 3,77 (s, 3H), 2,95 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und J = 5,2 Hz), 2,72
(dd, 1H, J = 18 und J = 5,6 Hz), 1,61 (s, 9H), 1,58 (s, 9H), 1,06
(s, 9H), 0,26 (s, 6H).
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (2,40
g, 3,34 mmol) in 10% Ameisensäure/Methanol
(50 ml) bei Raumtemperatur unter Stickstoff wurde 10%iges Pd/C (1,2
g) zugesetzt. Das Gemisch wurde für eine Dauer von 48 Std. gerührt. Das
Pd/C wurde abfiltriert und das Filtrat im Vakuum eingedampft. Der
Rückstand
wurde in Dichlormethan (10 ml) gelöst. Die erhaltene Lösung wurde
in Hexan gegossen. Der Niederschlag wurde abfiltriert und im Vakuum
getrocknet, um 1,3 g (61%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,45 (s,
1H), 8,05 (s, 1H), 7,39 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 7,00 (d, 1H, J = 8,0
Hz), 6,83 (d, 1H, J = 8,0 Hz), 4,50 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 4,45 (q,
2H, J = 17 Hz), 4,05 (q, 2H, J = 17 Hz), 3,82 (dd, 1H, J = 17,2
Hz und J = 5,2 Hz), 3,72 (dd, 1H, J = 17 Hz und J = 5,6 Hz), 3,40
(s, 1H), 3,08 (d, 1H, J = 17 Hz), 2,61 (dd, 1H, J = 18 Hz und J
= 7,2 Hz), 1,61 (s, 9H), 1,54 (s, 9H), 1,05 (s, 9H), 0,26 (s, 6H).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(33,3 ml) und H2O (2,7 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,70 g, 1,04 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 40 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde in Ethylether (400 ml) gegossen. Der Niederschlag wurde abfiltriert
off und im Vakuum getrocknet, um 450 mg (80%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6): δ 12,30 (s, 1H), 9,71 (s, 1H),
9,20 (s, 2H), 7,39 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 6,99 (d, 1H, J = 8,0 Hz),
6,82 (d, 1H, J = 8,0 Hz), 4,52 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 4,36 (d, 2H,
J = 17 Hz), 4,22 (d, 2H, J = 17 Hz), 4,00 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und
J = 5,2 Hz), 3,86 (s, 1H), 3,62 (d, 1H, J = 17 Hz), 2,81 (dd, 1H,
J = 18 Hz und J = 7,2 Hz);
LC-MS: Rt =
1,20 Min; m/z = 432 [M + H]+
-
BEISPIEL
14
5-(7-Benzyloxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-butoxyoxalylamino)-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (2,40
g, 3,34 mmol) in 10% Ameisensäure/Methanol
(50 ml) bei Raumtemperatur unter Stickstoff wurde 10%iges Pd/C (1,2
g) zugesetzt. Das Gemisch wurde für eine Dauer von 48 Std. gerührt. Das
Pd/C wurde abfiltriert und das Filtrat im Vakuum eingedampft. Der
Rückstand
wurde in Dichlormethan (10 ml) gelöst und die erhaltene Lösung in
Hexan gegossen. Der Niederschlag wurde abfiltriert (1,3 g) und das
Filtrat im Vakuum eingedampft. Der restliche Schaum (1,1 g) wurde
in Dichlormethan (50 ml) aufgenommen und mit Di-tert-butyldicarbonat
(1,1 g, 5,0 mmol) und gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(20 ml) behandelt. Das Gemisch wurde für eine Dauer von 2 Std. gerührt und
die organische Schicht abgetrennt und getrocknet (MgSO4).
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum eingedampft und der Rückstand unter Verwendung eines
Gradienten aus 10–30%
Ethylacetat/Hexan als Eluent chromatografiert, um 175 mg 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-carbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,55 (s,
1H), 8,53 (s, 1H), 7,37 (t, 1H, J = 7,6 Hz), 6,92 (d, 1H, J = 7,6
Hz), 6,83 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 4,95 (s, 1H), 4,84 (d, 1H, J = 16,4
Hz), 4,72 (d, 1H, J = 16,0 Hz), 4,56 (d, 1H, J = 16,0 Hz), 4,28
(d, 1H, J = 17,6 Hz), 4,13 (m, 1H), 3,68 (s, 0,5H), 3,42 (s, 0,5H),
3,16–2,94
(m, 2H), 1,62 (s, 9H), 1,61 (s, 9H), 1,26 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-carbonsäuredi-tert-butylester
(16 mg, 0,025 mmol) in N,N-Dimethylformamid (0,5 ml) unter Stickstoff wurde
Natriumhydrid (1,0 mg, 0,026 mmol) bei Raumtemperatur zugesetzt.
Die Lösung
wurde für
eine Dauer von 2 Std. gerührt,
und es folgte die Zugabe von Benzylbromid (5,9 ml, 0,050 mmol).
Die Lösung
wurde für eine
Dauer von 16 Std. gerührt,
mit Ethylacetat (20 ml) verdünnt
und mit 0,5 N Salzsäurelösung (2 × 10 ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 10
ml), Kochsalzlösung
(10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und filtriert.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde unter Verwendung eines Gradienten aus 10–20% Ethylacetat/Hexan als
Eluent chromatografiert, um 14 mg (76%) 5-(7-Benzyloxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(tert-butoxyoxalylamino)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-carbonsäuredi-tert-butylester als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,49 (s,
1H), 7,48 (d, 2H, J = 7,2 Hz), 7,35 (m, 3H), 7,28 (d, 1H, J = 7,2
Hz), 6,97 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 6,80 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 5,32 (s,
2H), 4,97 (m, 2H), 4,82–4,62
(m, 2H), 4,45–4,15
(m, 2H), 3,68 (s, 0,5H), 3,48 (s, 0,5H), 3,16–2,94 (m, 2H), 1,62 (s, 9H),
1,60 (s, 9H), 1,26 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (2,7 ml) wurde 5-(7-Benzyloxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(tert-butoxyoxalylamino)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-carbonsäuredi-tert-butylester (14 mg,
0,019 mmol) zugesetzt. Die Lösung
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 40 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde in Ethylether (20 ml) gegossen. Der Niederschlag
wurde abfiltriert und im Vakuum getrocknet, um 8,0 mg (68%) der
Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 12,25 (s,
1H), 9,28 (s, 1H), 9,02 (s, 1H), 7,53 (m, 3H), 7,39 (t, 2H, J =
7,6 Hz), 7,13 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 7,11 (d, 1H, J = 8,4 Hz), 5,27
(m, 2H), 4,54 (d, 1H, J = 17,2 Hz), 4,38 (d, 2H, J = 17,6 Hz), 4,22 (m,
2H), 4,00 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und J = 5,2 Hz), 3,86 (s, 1H), 3,64
(d, 1H, J = 17,2 Hz), 2,81 (dd, 1H, J = 18 Hz und J = 7,2 Hz);
LC-MS:
Rt = 2,96 Min.; m/z: 522 [M + H]+
-
BEISPIEL
15
5-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (0,5 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(11 mg, 0,014 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 16 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde in Ethylether (20 ml) gegossen. Der Niederschlag
wurde abfiltriert und im Vakuum getrocknet, um 7,0 mg (79%) der
Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 12,39 (s,
1H), 9,95 (s, 1H), 9,75 (s, 2H), 7,42 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 7,30
(s, 2H), 7,02 (d, 1H, J = 7,2 Hz), 6,96 (s, 2H), 6,85 (d, 1H, J
= 7,2 Hz), 4,95–3,65
(m, 11H), 3,76 (s, 3H).
LC-MS: Rt =
1,93 Min., m/z: 553 [M + H]+
-
BEISPIEL
16
5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methox
benzyl)-2-(oxalylaminol-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
gerührten
Lösung
von 2-Amino-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(15 mg, 0,028 mmol) in Tetrahydrofuran (1,0 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(27 mg, 0,11 mmol) in Tetrahydrofuran (1,0 ml) zugesetzt. Das Gemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (20 ml) aufgenommen, Die Lösung wurde mit 0,5 N Salzsäurelösung (2 × 10 ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 10
ml) und Kochsalzlösung
(10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde unter Verwendung eines Gradienten aus 10–25% Ethylacetat/Hexan als
Eluent chromatografiert, um 17 mg (93%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,54
(s, 1H), 7,86 (m, 2H), 7,40 (m, 2H), 7,08 (d, 2H, J = 8,4 Hz), 6,72
(d, 2H, J = 8,4 Hz), 4,08 (dd, 1H, J = 13,6 Hz und J = 8,8 Hz),
3,94 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 3,82 (d, 1H, J = 12,8 Hz), 3,78 (s, 3H), 3,92
(s, 3H), 3,70–3,56
(m, 3H), 3,53 (d, 1H, J = 12,8), 2,93 (dd, 1H, J = 16,8 Hz und J
= 4,8 Hz), 2,75 (dd, 1H, J = 18,0 Hz und J = 5,6 Hz), 1,61 (s, 9H),
1,58 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (0,5 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (15 mg,
0,023 mmol) zugesetzt. Die Lösung
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 40 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde in Ethylether (20 ml) gegossen. Der Niederschlag
wurde abfiltriert und im Vakuum getrocknet, um 13 mg (87%) der Titelverbindung als
festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6): δ 12,38 (s, 1H), 7,89 (d, 4H,
J = 11,2 Hz), 7,18 (s, 2H), 6,85 (s, 2H), 4,20–3,60 (m, 9H), 3,71 (s, 3H);
LC-MS:
Rt = 2,05 Min., m/z: 550 [M + H]+
-
BEISPIEL
17
7-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(80 mg, 0,20 mmol) und Diisopropylethylamin (35 μl, 0,40 mmol) in Acetonitril (10
ml) bei Raumtemperatur wurde eine Lösung von 6-Brommethyl-2-(tert-butyldimethylsilanyloxy)benzoesäureethylester
(69 mg, 0,20 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde für eine Dauer
von 12 Std. bei Raumtemperatur gerührt und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (50 ml) gelöst
und mit Wasser, 1 N Salzsäure,
Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde über
einer Silicagelsäule
chromatografiert, mit 20% Ethylacetat/Hexan eluiert, um 42 mg (33%) 2-Amino-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,64 (d,
1H, J = 8,8 Hz), 7,39 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 7,10–6,80 (m, 5H), 6,09 (s, 2H),
5,0–4,2 (m,
4H), 3,80 (s, 3H), 3,66–2,92
(m, 3H), 1,55 (s, 9H), 1,04 (s, 9H), 0,22 (s, 6H).
-
Einer
gerührten
Lösung
von 2-Amino-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(40 mg, 0,060 mmol) in Tetrahydrofuran (1 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(59 mg, 0,30 mmol) in Tetrahydrofuran (1 ml) zugesetzt. Das Gemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (20 ml) gelöst
und die Lösung
mit 0,5 N Salzsäure
(2 × 20
ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 20
ml), Kochsalzlösung
(20 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und filtriert.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand unter Verwendung eines
Gradienten aus 10–20%
Ethylacetat/Hexan als Eluent chromatografiert, um 40 mg (83%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,52
(s, 1H), 7,37 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 6,97 (d, 2H, J = 8,4 Hz), 6,94
(d, 1H, J = 8,0 Hz), 6,83 (d, 1H, J = 8,0 Hz), 6,54 (d, 1H, J =
8,4 Hz), 4,26 (d, 1H, J = 16,8 Hz), 3,93–3,84 (m, 2H), 3,77 (d, 1H,
J = 16,8 Hz), 3,69 (s, 3H), 3,66–3,48 (m, 3H), 3,42–3,32 (m,
1H), 2,95 (dd, 1H, J = 14,4 Hz und J = 4,8 Hz), 2,92–2,82 (m,
1H), 2,73 (dd, 1H, J = 14,4 Hz und J = 4,8 Hz), 1,60 (s, 9H), 1,59
(s, 9H), 1,02 (s, 9H), 0,22 (d, 6H, J = 1,6 Hz).
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (4,0 mg,
5,1 μmol)
in 10% Ameisensäure/Methanol
(1 ml) bei Raumtemperatur unter Stickstoff wurde 10%iges Pd/C (4
mg) zugesetzt. Das Gemisch wurde für eine Dauer von 1 Std. gerührt. Das
Pd/C wurde abfiltriert und das Filtrat im Vakuum eingedampft, um
2,8 mg (82%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-5H-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,45
(s, 1H), 8,05 (s, 1H), 7,39 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 6,99 (d, 1H, J
= 8,0 Hz), 6,79 (d, 1H, J = 8,0 Hz), 4,50 (d, 1H, J = 17,2 Hz),
4,45 (d, 1H, J = 17,2 Hz), 4,24 (d, 1H, 8,4 Hz), 4,03 (dd, 1H, J
= 16,0 Hz und J = 7,2 Hz), 3,78–3,68
(m, 2H), 3,38–3,28
(m, 1H), 3,21 (d, 1H, J = 18,8 Hz), 3,08–2,98 (m, 1H), 1,57 (s, 9H),
1,56 (s, 9H), 0,98 (s, 9H), 0,15 (d, 6H, J = 1 Hz).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (0,5 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-5H-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(2,8 mg, 0,0042 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 16 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand mit Dichlormethan gewaschen,
um 1,8 mg (79%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu
erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 12,30 (s,
1H), 9,76 (s, 1H), 9,40 (s, 1H), 8,95 (s, 1H), 7,40 (t, 1H, J =
7,6 Hz), 7,00 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 6,83 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 4,92
(s, 1H), 4,54 (d, 1H, J = 18,4 Hz), 4,40 (d, 2H, J = 18,4 Hz), 4,08–4,00 (m,
1H), 3,91 (d, 1H, J = 15,2 Hz), 3,60 (s, 2H), 3,06 (s, 2H);
LC-MS:
Rt: 1,41 Min., m/z: 432 [M + H]+
-
BEISPIEL
18
7-(7-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (0,5 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(7-(tert-butyldimethylsilanyloxy)-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(10 mg, 0,013 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 16 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand mit Dichlormethan gewaschen,
um 6,8 mg (92%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu
erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 12,35 (s,
1H), 9,90 (s, 1H), 9,70 (s, 2H), 7,41 (t, 1H, J = 8,0 Hz), 7,28
(s, 2H), 7,04 (d, 1H, J = 7,2 Hz), 6,92 (s, 2H), 6,83 (d, 1H, J
= 7,2 Hz), 4,90–3,60
(m, 11H), 3,80 (s, 3H).
LC-MS: Rt =
1,92 Min., m/z: 552 [M + H]+
-
BEISPIEL
19
7-(1,3-Dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
gerührten
Lösung
von 2-Amino-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(10 mg, 0,019 mmol) in Tetrahydrofuran (1,0 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(18 mg, 0,092 mmol) in Tetrahydrofuran (1,0 ml) zugesetzt. Das Gemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (20 ml) gelöst
und mit 0,5 N Salzsäurelösung (2 × 10 ml),
gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 10
ml), Kochsalzlösung
(10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand unter Verwendung eines
Gradienten aus 10–25%
Ethylacetat/Hexan als Eluent chromatografiert, um 11 mg (89%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Feststoff
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,54 (s,
1H), 7,76 (m, 4H), 6,82 (d, 2H, J = 11,6 Hz), 6,33 (d, 2H, J = 11,6
Hz), 4,02 (d, 1H, J = 14,4 Hz), 3,98 (d, 1H, J = 14,4 Hz), 3,62
(s, 3H), 3,62–3,54
(m, 2H), 3,48–3,34
(m, 2H), 3,02–2,70
(m, 3H), 1,60 (s, 9H), 1,59 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (0,5 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino-7-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (10 mg,
0,015 mmol) zugesetzt. Die Lösung
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 16 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand mit Dichlormethan gewaschen,
um 6,8 mg (80%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6): δ 12,38 (s,
1H), 7,86 (m, 4H), 6,82 (s, 2H), 6,30 (s, 2H), 4,00–2,86 (m,
9H), 3,58 (s, 3H);
LC-MS: Rt = 2,02
Min.; m/z: 550 [M + H]+
-
BEISPIEL
20
7-(((5-Benzyloxy-1H-indol-2-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,50 g; 1,2 mmol) wurde in N,N-Dimethylformamid
(20 ml) gelöst.
1-Hydroxy-7-azabenzotriazol (0,19 g; 1,3 mmol) und N-(3-Dimethylaminopropyl)-N'-ethylcarbodiimid-Hydrochlorid
(0,26 g; 1,3 mmol) und Diisopropylethylamin (0,23 ml; 1,3 mmol)
wurden zugesetzt, und das Gemisch wurde für eine Dauer von 15 Min, gerührt. 5-Benzyloxyindol
(0,36 g; 1,3 mmol) wurde in N,N-Dimethylformamid (20 ml) gelöst und zugesetzt. Diisopropylethylamin
(0,23 ml; 1,3 mmol) wurde zugesetzt und das Gemisch über Nacht
gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt, der Rückstand
in Dichlormethan (30 ml) gelöst
und die organische Phase mit einer wässrigen Lösung von Natriumhydrogencarbonat
(15 ml) gewaschen. Die organische Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum entfernt.
Der Rückstand
wurde über
Silica unter Verwendung von Ethylacetat/Heptan (1:1) als Eluent
chromatografiert, um 569 mg 2-Amino-7-(((5-benzyloxy-1H-indol-2-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 1 beschrieben unter Verwendung der letzten
beiden Schritte hergestellt.
MS: m/z: 669,4 [M + H]+
Berechnet für C35H32N4O8S,
2/3 × C2HF3O2,
4/3 × H2O;
C, 56,77%; H, 4,63%; N, 7,29%. Gefunden:
C,
56,43%; H, 4,57%; N, 7,13%.
-
BEISPIEL
21
7-(((6-Brom-2-p-tolylchinolin-4-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 6-Brom-2-p-tolylchinolin-4-carbonsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Ausgangsmaterial hergestellt.
LC-MS: m/z: 745,2 [M + H]+
Berechnet für C36H31BrN4O7S,
2 × C2HF3O2;
C,
49,44%; H, 3,42%; N, 5,77%. Gefunden:
C, 49,19%; H, 3,59%;
N, 6,00%.
-
BEISPIEL
22
6-(4-Methoxybenzyl)-7-(((5-methyl-2-phenyl-2H-[1,2,3]triazol-4-carbonyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 5-Methyl-2-phenyl-2H-[1,2,3]triazol-4-carbonsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Ausgangsmaterial hergestellt.
LC-MS: m/z: 605,2 [M + H]+
Berechnet für C29H28N6O7S,
1,3 × C2HF3O2,
1,7 × H2O;
C, 48,14%; H, 3,94%; N, 10,94%.
Gefunden:
C, 48,35%; H, 4,19%; N, 10,68%.
-
BEISPIEL
23
7-(((1H-Indol-3-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 3-Indol-carbonsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Ausgangsmaterial
hergestellt.
LC-MS: m/z: 563,2 [M + H]+
Berechnet
für C28H26N4O7S, 5/3 × C2HF3O2;
C,
49,63%; H, 3,82%; N, 7,35%. Gefunden:
C, 50,00%; H, 3,71%;
N, 7,44%.
-
BEISPIEL
24
7-((4-Ethoxy-2-hydroxybenzoylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 4-Ethoxy-2-hydroxybenzoesäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Ausgangsmaterial hergestellt.
LC-MS: m/z: 584 [M + H]+
HPLC: (B6): 23,8 Min.
-
BEISPIEL
25
7-((4-Benzoylaminobenzoylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 4-Benzoylaminobenzoesäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Ausgangsmaterial hergestellt.
LC-MS: m/z: 643,1 [M + H]+
Berechnet für C33H30N4O8S,
3 × C2HF3O2;
C,
47,57%; H, 3,38%; N, 5,69%. Gefunden:
C, 47,34%; H, 3,55%;
N, 5,62%.
-
BEISPIEL
26
7-(((Biphenyl-4-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 4-Phenylbenzoesäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Ausgangsmaterial
hergestellt.
LC-MS: m/z: 599,0 [M + H]+
Berechnet
für C32H29N3O7S, 2 × C2HF3O2,
1 × H2O;
C, 51,13%; H, 3,93%; N, 4,97%. Gefunden:
C,
52,02%; H, 4,02%; N, 5,16%.
-
BEISPIEL
27
7-(((1H-Indol-2-carbonyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von Indol-2-carbonsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Ausgangsmaterial
hergestellt.
LC-MS: m/z: 563,2 [M + H]+
HPLC
(B6) Rt = 23,07 Min.
-
BEISPIEL
28
7-((3-Biphenyl-4-ylacryloylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 3-Biphenyl-4-yl-acrylsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Ausgangsmaterial hergestellt.
LC-MS: m/z: 626,2 [M + H]+
HPLC (B6) Rt =
28,74 Min.
Berechnet für
C34H31N3O7S, 2 × C2HF3O2;
C,
53,46%; H, 3,90%; N, 4,92%. Gefunden:
C, 53,89%; H, 4,23%;
N, 5,08%.
-
BEISPIEL
29
6-(4-Methoxybenzyl)-7-(((5-methoxy-1H-indol-2-carbonyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 5-Methoxyindol-2-carbonsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Ausgangsmaterial hergestellt.
LC-MS: m/z: 593,2 [M + H]+
HPLC (B6) Rt =
21,81 Min.
-
BEISPIEL
30
7-((4-Benzlbenzoylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 4-Benzylbenzoesäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6- (4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Ausgangsmaterial
hergestellt.
LC-MS: m/z: 614,2 [M + H]+
HPLC
(B6) Rt = 27,23 Min.
Berechnet für C33H31N3O7S, 1,5 × C2HF3O2,
1 × H2O;
C, 53,87%; H, 4,33%; N, 5,23%. Gefunden:
C,
53,92%; H, 4,24%; N, 5,18%.
-
BEISPIEL
31
6-(4-Methoxybenzyl)-7-(((naphthalin-1-carbonyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 19 beschrieben unter Verwendung von 1-Napthylcarbonsäure und
2-Amino-7-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Ausgangsmaterial
hergestellt.
LC-MS: m/z: 574,0 [M + H]+
HPLC
(B6) Rt = 22,51 Min.
Berechnet für C30H27N3O7S, 2 × C2HF3O2;
C,
50,94%; H, 3,65%; N, 5,24%. Gefunden:
C, 51,39%; H, 3,79%;
N, 5,16%.
-
BEISPIEL
32
6-(4-Methoxybenzyl)-5-((2-naphthalin-2-yl-ethylamino)methyl)-2-(oxalylaminol-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 2-Naphthalin-2-ylethanol (1,02 g, 5,8 mmol), 2,2,6,6-Tetramethyl-1-piperidinyloxy (TEMPO)
(9 mg, 0,058 mmol) und Natriumbromid (0,65 g, 6,4 mmol) in einem
Gemisch aus Toluol (18 ml), Ethylacetat (18 ml) und Wasser (3 ml)
wurde auf 0°C
abgekühlt
und über
eine Dauer von 1 Std. einer Folgendes enthaltenden Lösung zugetropft:
Natriumhypochlorit (17,2 ml, 0,37 M, 6,4 mmol) und Natriumhydrogencarbonat
(1,46 g, 17,4 mmol). Das Reaktionsgemisch wurde bei 0°C für eine Dauer
von 10 Min. gerührt,
und die Phasen wurden getrennt. Die wässrige Schicht wurde mit Ethylacetat
(150 ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Phasen wurden mit
einer Lösung
von Kaliumiodon (0,2 g) in 10%iger, wässriger Kaliumhydrogensulfatlösung (150
ml), Wasser (150 ml), Kochsalzlösung
(150 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4),
filtriert und im Vakuum eingeengt, um 980 mg eines 3:1-Gemischs
von Naphthalin-2-yl-acetaldehyd und 2-Naphthalin-2-yl-ethanol bereitzustellen.
1H-NMR (CDCl3): δ 9,81 (t,
1H, J = 1,5 Hz), 7,92–7,80
(m, 3H), 7,68 (bs, 1H), 7,55–7,42
(m, 3H), 3,87 (d, 2H, J = 1,5 Hz).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(290 mg, 0,71 mmol) in 1,2-Dichlorethan (3 ml) wurde das vorstehende
Gemisch aus 2-Naphthylacetaldehyde
(100 mg, 0,59 mmol), Natriumtriacetoxyborhydrid (190 mg, 0,88 mmol)
zugesetzt, und das Gemisch wurde bei Raumtemperatur unter Stickstoff
für eine
Dauer von 2,5 Std. gerührt.
Das rohe Reaktionsgemisch wurde mit gesättigter Natriumbicarbonatlösung (50
ml) abgeschreckt und die Lösung mit
Ethylacetat (100 ml) extrahiert. Die organische Phase wurde getrocknet
(MgSO4), filtriert und im Vakuum eingeengt,
um einem Schaum bereitzustellen, der direkt im nächsten Schritt verwendet wurde.
Eine LC-MS zeigte, dass 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-((2-naphthalin-2-yl-ethylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
der Hauptbestandteil war.
LC-MS: m/z: 558,1 [M + H]+, Rf = 2,23 Min.
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-((2-naphthalin-2-yl-ethylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester in Tetrahydrofuran
(3 ml) wurden Di-tert-butyldicarbonat (188 mg, 0,85 mmol) und N,N-Dimethylformamid
(18 mg, 0,14 mmol) zugesetzt. Die Reaktion wurde bei Raumtemperatur
für eine Dauer
von 7 Std. unter Stickstoff gerührt.
Das rohe Reaktionsgemisch wurde mit Dichlormethan (50 ml) verdünnt und
mit Wasser (50 ml) und Kochsalzlösung
(50 ml) gewaschen. Die organische Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und im Vakuum eingeengt, um
einen Schaum zu erhalten, der ohne weitere Reinigung im nächsten Schritt
verwendet wurde.
-
Eine
LC-MS zeigte, dass 2-Amino-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-naphthalin-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
der Hauptbestandteil war.
Rf = 2,74,
m/z: 658,1 [M + H]+, Berechnet: 657,4,
-
Dem
rohen 2-Amino-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-naphthalin-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
wurden Dichlormethan (5 ml) und Imidazol-1-yl- oxoessigsäure-tert-butylester (400 mg,
1,78 mmol) zugesetzt, und das Reaktionsgemisch wurde bei Raumtemperatur für eine Dauer
von 12 Std. gerührt.
Das rohe Reaktionsgemisch wurde zu Dichlormethan (50 ml) zugesetzt
und mit Wasser (50 ml) und Kochsalzlösung (50 ml) gewaschen. Die
organische Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert
und im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde durch Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs
aus Dichlormethan/Ethylacetat (10:1) als Eluent gereinigt, um 20,3
mg (39% über
drei Schritte) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-naphthalin-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Schaum zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,99–7,92 (m,
3H), 7,88 (s, 1H), 7,68–7,57
(m, 3H), 7,45 (d, 2H, J = 7,8 Hz), 6,99 (d, 2H, J = 8,1 Hz), 3,90–3,75 (m,
7H), 3,56–3,42
(m, 5H), 3,19–3,13
(m, 2H), 2,88–2,82
(m, 2H), 1,79 (s, 9H), 1,71 (s, 18H);
LC-MS: m/z: 786,2 [M
+ H]+, Rf = 3,03
Min.
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-naphthalin-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(20 mg, 0,03 mmol) in trockenem Dichlormethan (200 μl) bei 0°C wurde 50%ige
Trifluoressigsäure
in Dichlormethan (2,5 ml) zugesetzt. Die Reaktion wurde für eine Dauer
von 14 Std. bei Raumtemperatur gerührt und dann im Vakuum eingeengt.
Der erhaltene Feststoff wurde erneut in Dichlormethan suspendiert,
filtriert und im Vakuum getrocknet, um 13 mg (90%) der Titelverbindung
als Feststoff bereitzustellen.
1H-NMR
(DMSO-d6) δ 9,15 (s, 1H), 8,09–8,01 (m,
3H), 7,93 (s, 1H), 7,68–7,57
(m, 3H), 7,45 (d, 2H, J = 7,8 Hz), 6,99 (d, 2H, J = 8,1 Hz), 4,18–4,12 (m,
2H), 3,90–3,75
(m, 7H), 3,56–3,42
(m, 3H), 3,19–3,13
(m, 2H), 2,88–2,82
(m, 2H);
LC-MS: m/z: 574,7 [M + H]+,
Rf = 1,36 Min.
-
BEISPIEL
33
5-((2-Benzo[1,3]dioxol-5-yl-acetylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einem
Gemisch aus 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(300 mg, 0,74 mmol), Benzo[1,3]dioxol-5-yl-essigsäure (134
mg, 0,74 mmol), 1-Hydroxybenzotriazol-Hydrat
(111 mg, 0,82 mmol) und N,N-Diisopropylethylamin
(258 μl,
1,48 mmol) in Acetonitril (5 ml) bei Raumtemperatur wurde 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimid-Hydrochlorid (157
mg, 0,82 mmol) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch wurde für eine Dauer
von 16 Std. gerührt
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde in Ethylacetate (50 ml) aufgenommen, mit Wasser, 1 N Salzsäure, gesättigter
Natriumbicarbonatlösung,
Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert und
das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gradienten
aus 10–20%
Ethylacetat/Hexanen als Eluent unterzogen, um 268 mg (64%) 2-Amino-5-((2-benzo[1,3]dioxol-5-yl-acetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 6,95 (bs,
2H), 6,75–6,85
(m, 5H), 5,96 (bs, 2H), 5,95 (s, 2H), 3,81 (s, 3H), 3,75–3,30 (m, 5H),
3,53 (s, 2H), 3,18 (bs, 2H), 2,82 (d, 1H, J = 17 Hz), 2,52 (d, 1H,
J = 17 Hz).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-((2-benzo[1,3]dioxol-5-yl-acetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert- butylester (133 mg,
0,235 mmol) in Tetrahydrofuran (1 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxo-essigsäure-tert-butylester
(100 mg, 0,51 mmol) zugesetzt. Das Gemisch wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (50 ml) aufgenommen, mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung,
Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (Na2SO4)
und filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand unter Verwendung eines
Gradienten aus 10–20%
Ethylacetat/Dichlormethan chromatografiert, um 130 mg (80%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((2-benzo[1,3]dioxol-5-yl-acetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Öl zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 12,50 (s,
1H), 7,95–7,75
(m, 7H), 5,96 (s, 2H), 3,81 (s, 3H), 3,80–3,40 (m, 5H), 3,15 (bs, 2H),
2,90 (d, 1H, J = 17 Hz), 2,58 (d, 1H, J = 17 Hz), 1,61 (s, 9H),
1,60 (s, 9H).
-
Eine
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((2-benzo[1,3]dioxol-5-yl-acetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(130 mg, 0,188 mmol) in Tetrahydrofuran (2 ml) wurde durch ein Raney-Ni-Bett
(120 mg, 50% Raney-Ni-Wasser, gewaschen mit Methanol (6 ml) und
Tetrahydrofuran (6 ml) und vor der Verwendung getrocknet) geleitet.
Das Raney-Ni-Bett wurde mit Tetrahydrofuran (10 ml) gewaschen. Das
Filtrat und die Waschungen wurden vereinigt, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde in 10% Ameisensäure/Methanol
(6 ml) gelöst
und mit 10%igem Pd/C (120 mg) für
eine Dauer von 13 Std. gerührt.
Gesättigte
Natriumbicarbonatlösung
(60 ml) wurde der Lösung
zugesetzt. Das Gemisch wurde mit Dichlormethan extrahiert. Die Extrakte
wurden vereinigt, getrocknet (Na2SO4) und filtriert. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum
entfernt und der Rückstand
mit 50% Hexan/Diethylether gewaschen, um 62 mg (57%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((2-benzo[1,3]dioxol-5- ylacetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester als Öl zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 12,59 (s,
1H), 6,80–6,70
(m, 3H), 5,96 (s, 2H), 4,05 (q, 2H, J = 15 Hz), 3,85–3,60 (m,
2H), 3,25–3,00
(m, 4H), 2,58 (m, 1H), 1,61 (s, 9H), 1,59 (s, 9H);
LC-MS: Rt = 1,75 Min., m/z: 574 [M + H]+.
-
Eine
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((2-benzo[1,3]dioxol-5-ylacetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (62 mg,
0,11 mmol) in 50% Trifluoressigsäure-Dichlormethan
(2 ml) wurde über
das Wochenende in einem offenen Kolben stehengelassen und das Lösungsmittel
dann im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde mit Dichlormethan gewaschen und der Feststoff abfiltriert,
um 39 mg (62%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu
erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,39 (s,
1H), 9,18 (bs, 1H), 9,10 (bs, 1H), 8,35 (s, 1H), 6,83 (d, 1H, J
= 1,2 Hz), 6,82 (d, 1H, J = 8,4 Hz), 6,70 (dd, 1H, J = 8,4 Hz und
J = 1,2 Hz), 5,96 (s, 2H), 4,38 (d, 1H, J = 14 Hz), 4,28 (m, 1H), 3,60–3,40 (m,
4H), 3,16 (d, 2H, J = 14 Hz), 2,80 (dd, 1H, J = 14 Hz und J = 11
Hz);
LC-MS: Rt = 1,11 Min., m/z: 462
[M + H]+.
-
BEISPIEL
34
5-((2-Dibenzofuran-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Dibenzofuran-2-ylethanol (200 mg, 0,94 mmol) und 2,2,6,6-Tetramethyl-1-piperidinyloxy
(TEMPO) (2 mg, 0,009 mmol) in Dichlormethan (2 ml) wurde einer wässrigen
Lösung
von Natriumbromid (97 mg in 1,3 ml für eine 0,7 M Lösung, 0,94
mmol) zugesetzt und auf 0°C
abgekühlt.
Diesem Gemisch wurde über
eine Dauer von 30 Min. eine Folgendes enthaltende Lösung zugetropft:
Natriumhypochlorit (1,4 ml, 0,74 M, 1,03 mmol) und Natriumhydrogencarbonat
(120 mg, 1,4 mmol) und Wasser (1,4 ml). Das Reaktionsgemisch wurde
bei 0°C
für eine
Dauer von 0,5 Std. gerührt,
und man ließ es
auf Raumtemperatur erwärmen.
Die organische Phase und die wässrige
Schicht wurden getrennt, und die wässrige Schicht wurde mit Dichlormethan
(20 ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Phasen wurden mit
einer Lösung
von Kaliumiodon (0,2 g) in 10%iger wäss. Kaliumhydrogensulfatlösung (20
ml), Wasser (20 ml), Kochsalzlösung
(20 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) filtriert
und im Vakuum eingeengt, um 198 mg eines 5:1-Gemsichs aus Dibenzofuran-2-yl-acetaldehyd
und 2-Dibenzofuran-2-ylethanol
als Öl
bereitzustellen.
1H-NMR (CDCl3): δ 9,80
(t, 1H, J = 1,5 Hz), 8,02 (d, 2H, J = 8,2 Hz), 7,71 (bs, 1H), 7,75–7,42 (m,
4H), 3,82 (d, 2H, J = 1,5 Hz).
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(340 mg, 0,85 mmol) in 1,2-Dichlorethan (3 ml) wurde das vorstehende
Gemisch aus Dibenzofuran-2-yl-acetaldehyd
(150 mg, 0,70 mmol) und Natriumtriacetoxyborhydrid (225 mg, 1,07 mmol)
zugesetzt und das Gemisch bei Raumtemperatur unter Stickstoff für eine Dauer
von 2,5 Std. gerührt. Das
rohe Reaktionsgemisch wurde mit gesättigter Natriumbicarbonatlösung (50
ml) abgeschreckt und die Lösung
mit Ethylacetat (100 ml) extrahiert. Die organische Phase wurde
getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der rohe Rückstand
wurde direkt im nächsten
Schritt verwendet. Eine LC-MS zeigte, dass 2-Amino-5-((2-dibenzofuran-2-yl-ethylamino)methyl]-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7- tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
der Hauptbestandteil im Rohgemisch war:
m/z: 598,1 [M + H]+, Rf = 2,40 min).
-
Roher 2-Amino-5-((2-dibenzofuran-2-yl-ethylamino)methyl]-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester wurde
in Tetrahydrofuran (3 ml) verdünnt
und Di-tert-butyldicarbonat (262 mg, 1,20 mmol) und 4-(N,N-Dimethylamino)pyridin
(25 mg, 0,20 mmol) wurden zugesetzt. Die Reaktion wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 7 Std. unter Stickstoff gerührt. Das rohe Reaktionsgemisch
wurde zu Dichlormethan (50 ml) zugesetzt und mit Wasser (50 ml)
und Kochsalzlösung
(50 ml) gewaschen. Die organische Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und im Vakuum eingeengt. Der
Rückstand
wurde direkt im nächsten
Schritt verwendet. Eine LC-MS
zeigte dass 2-Amino-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-dibenzofuran-2-yl-ethyl)aminomethyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
der Hauptbestandteil im Rohgemisch war:
Rf =
2,76, m/z: 698,2 [M + H]+.
-
Der
Verbindung 2-Amino-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-dibenzofuran-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
wurden Dichlormethan (5 ml) und Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester (420 mg,
2,12 mmol) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 12 Std. gerührt.
Das rohe Reaktionsgemisch wurde zu Dichlormethan (50 ml) zugesetzt
und mit Wasser (50 ml) und Kochsalzlösung (50 ml) gewaschen. Die
organische Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert
und im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs
aus Dichlormethan/Ethylacetat (10:1) als Eluent unterzogen, um 35,2
mg (51% über
3 Schritte) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-dibenzofuran-2-yl- ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure tert-butylester
als Schaum zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,95–7,90 (m,
3H), 7,84 (s, 1H), 7,68–7,57
(m, 3H), 7,45 (d, 2H, J = 7,8 Hz), 6,95 (m, 3H), 3,90–3,75 (m,
7H), 3,56–3,42
(m, 5H), 3,19–3,13
(m, 2H), 2,88–2,82
(m, 2H), 1,79 (s, 9H), 1,71 (s, 18H);
LC-MS: Rf =
3,03 Min., m/z: 826,2 [M + H]+.
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-((tert-butoxycarbonyl-(2-dibenzofuran-2-yl-ethyl)amino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(28 mg, 0,034 mmol) in trockenem Dichlormethan (200 μl) at 0°C wurde 50%
Trifluoressigsäure
in Dichlormethan (2,5 ml) zugesetzt. Die Reaktion wurde für eine Dauer
von 14 Std. bei Raumtemperatur gerührt und dann im Vakuum eingeengt.
Der erhaltene Feststoff wurde erneut in Dichlormethan suspendiert,
filtriert und im Vakuum getrocknet, um 22 mg (90%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6) δ 9,15 (s, 1H), 8,11–8,21 (m,
3H), 7,93 (s, 1H), 7,68–7,57
(m, 3H), 7,45 (d, 2H, J = 7,8 Hz), 6,99 (d, 2H, J = 8,1 Hz), 4,18–4,12 (m,
2H), 3,90–3,75
(m, 7H), 3,56–3,42
(m, 3H), 3,19–3,13
(m, 2H), 2,88–2,82
(m, 2H);
LC-MS: Rf = 3,03, m/z: 614,7
[M + H]+.
-
BEISPIEL
35
6-(4-Methoxybenzyl)-5-((2-(5-methoxy-2-methyl-1H-indol-3-yl)acetylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(202 mg, 0,50 mmol) in N,N-Dimethylformamid (4 ml) wurden S-Methoxy-2-methyl-3-indolessigsäure (170
mg, 0,74 mmol), 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimide-Hydrochlorid (150
mg, 0,75 mmol) und 1-Hydroxybenzotriazol (105 mg, 0,74 mmol) zugesetzt.
Das Gemisch wurde bei Raumtemperatur für eine Dauer von 12 Std. gerührt. Das
rohe Reaktionsgemisch wurde mit Dichlormethan (100 ml) verdünnt und
mit Wasser (100 ml), Kochsalzlösung
(100 ml), getrocknet (MgSO4) gewaschen,
filtriert und im Vakuum eingeengt, um 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-((2-(5-methoxy-2-methyl-1H-indol-3-yl)acetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,16 (d,
2H, J = 10,8 Hz), 6,99 (d, 1H, J = 2,5 Hz), 6,94 (m, 1H), 6,85 (dd,
1H, J = 8,4 Hz und J = 1,2 Hz), 6,78 (dd, 1H, J = 8,3 Hz und J =
1,2 Hz), 6,65 (m, 3H), 6,57 (m, 4H), 3,57 (t, 4H, J = 3,0 Hz), 3,53
(m, 6H), 3,59–3,29
(m, 5H), 3,12–2,92
(m, 4H), 2,39 (s, 3H), 1,6 (s, 9H);
LC-MS Rt =
2,19, m/z: 605 [M + H]+.
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-((2-(5-methoxy-2-methyl-1H-indol-3-yl)acetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(96 mg, 0,5 mmol) in Dichlormethan (5 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäuretert-butylester
(583 mg, 3,0 mmol) zugesetzt und die Reaktion bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Gemisch wurde dann im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde durch Flashsäulenchromatografie
(25% Ethylacetat/Dichlormethan) gereinigt, um 53 mg (15%) 2- (tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-((2-(5-methoxy-2-methyl-1H-indol-3-yl)acetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,16 (d,
2H, J = 10,8 Hz), 6,99 (d, 1H, J = 2,5 Hz), 6,94 (m, 1H), 6,85 (dd,
1H, J = 8,4 Hz und J = 1,2 Hz), 6,78 (dd, 1H, J = 8,3 Hz und J =
1,2 Hz), 6,65 (m, 3H), 6,56 (m, 3H), 3,57 (m, 3H), 3,53 (m, 6H),
3,59–3,29
(m, 5H), 3,12–2,92
(m, 4H), 2,39 (s, 3H), 1,6 (s, 18H);
LC-MS Rt =
2,36 Min., m/z: 733 [M + H]+.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-((2-(5-methoxy-2-methyl-1H-indol-3-yl)acetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
wurde in 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(3 ml) gelöst
und bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 48 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und die restliche Trifluoressigsäure unter
reduziertem Druck entfernt, um 17 mg (49%) der Titelverbindung als
festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6) δ 10,62 (s, 1H), 7,31 (s, 1H),
7,08 (d, 1H, J = 10,2 Hz), 6,93 (s, 2H), 6,58 (dd, 1H, J1 = 5,25 Hz und J2 =
2,8 Hz), 3,84–3,44
(m, 19H, teilweise verdeckt durch Lösungsmittel), 2,95 (s, 1H),
2,28 (s, 3H), 1,31 (s, 1H), 1,19 (s, 2H);
LC-MS Rt =
1,89 Min., m/z: 621 [M + H]+.
-
BEISPIEL
36
5-((2-(1H-Indol-3-yl)-2-oxo-acetylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(209 mg, 0,51 mmol) in trockenem N,N-Dimethylformamid (4 ml) wurden 3-Indolglyoxylsäure (141
mg, 0,74 mmol), 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimide-Hydrochloride
(152 mg, 0,76 mmol) und 1-Hydroxybenzotriazol (100 mg, 0,74 mmol)
zugesetzt. Das Gemisch wurde bei Raumtemperatur für eine Dauer
von 16 Std. gerührt,
mit Dichlormethan (100 ml) verdünnt
und mit Wasser (100 ml), Kochsalzlösung (100 ml) gewaschen, getrocknet
(MgSO4), filtriert und im Vakuum eingeengt.
Der Rückstand wurde
einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexanen
(2:5) als Eluent unterzogen, um 143 mg (40%) 2-Amino-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
LC-MS Rt = 2,31 Min.,
m/z: 574,9 [M + H]+.
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (143 mg,
0,25 mmol) in Dichlormethan (5 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(144 mg, 0,75 mmol) zugesetzt, und der Kolben wurde mit Stickstoff
gespült.
Nach 24 Std. wurde ein zusätzlicher
Teil Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(169 mg, 0,86 mmol) zugesetzt, und man ließ das Reaktionsgemisch für eine zusätzliche
Dauer von 24 Std. rühren.
Das Gemisch wurde dann im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde durch Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs aus
Ethylacetat/Hexanen (2:5) als Eluent gereinigt, um 101 mg (58%) 2-(tert-Butyoxyoxalylamino)-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 9,23 (s,
1H), 9,07 (d, 1H, J = 3,6 Hz), 8,50 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 8,15 (d,
1H, J = 4,0 Hz), 7,47 (d, 2H, J = 7,2 Hz), 7,38–7,27 (m, 6H), 6,89 (d, 2H,
J = 8,8 Hz), 3,87–3,59
(m, 6H), 3,04 (dd, 2H, J = 23,6 Hz), 2,74 (dd, 2H, J = 22,4 Hz),
1,62 (s, 18H);
LC-MS Rt = 2,49 Min.,
m/z: 703 [M + H]+.
-
2-(tert-Butyoxyoxalylamino)-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester (101 mg,
0,143 mmol) wurde in trockenem Tetrahydrofuran (6 ml) gelöst und durch
eine Pipette, verschlossen mit einer Raney 2800 Nickel (0,38 g)
enthaltenden Watte, geleitet. Die Pipette wurde mit trockenem Tetrahydrofuran
(6 ml) gespült
und das Filtrat im Vakuum eingeengt. Pd auf Aktivkohle (10%ig, 102
mg, Quelle: Avocado) und Ameisensäure (10%ig in Methanol, 5 ml)
wurden dem Kolben, enthaltend 2-(tert-Butyoxyoxalylamino)-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester,
zugesetzt. Nach Rühren
für eine
Dauer von 18 Std. wurde die Lösung
durch ein Celitekissen filtriert und im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat verdünnt,
mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 25
ml), Kochsalzlösung
(2 × 25
ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs
aus 10% Methanol/Dichlormethan als Eluent gereinigt, um 2-(tert-Butyoxyoxalylamino)-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 9,23 (s,
1H), 9,07 (d, 1H, J = 3,6 Hz), 8,50 (d, 1H, J = 7,6 Hz), 8,15 (d,
1H, J = 4,0 Hz), 7,27 (s, 2H), 7,09 (d, 1H, J = 8,8 Hz), 6,81 (d,
1H, J = 8,8 Hz), 3,79 (s, 1H), 2,29 (s, 1H), 1,62–1,57 (m,
18H), 0,08 (s, 5H);
LC-MS: Rt = 2,17
Min., m/z: 583 [M + H]+.
-
Der
vorstehende 2-(tert-Butyoxyoxalylamino)-5-((2-(1H-indol-3-yl)-2-oxoacetylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester wurde
in 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(3 ml) gelöst
und bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 18 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und restliche Trifluoressigsäure unter
reduziertem Druck entfernt, um 17,1 mg der Titelverbindung als festes
Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6) δ 12,28 (s, 2H), 9,26 (s, 1H),
9,13 (s, 1H), 8,83 (d, 1H, J = 2,8 Hz), 8,26 (d, 1H, J = 8,8 Hz),
7,55 (d, 1H, J = 4,8 Hz), 7,27 (d, 2H, J = 7,6 Hz), 4,42 (d, 1H,
J = 15,2 Hz), 4,29 (d, 1H, J = 16,4 Hz), 3,76–3,22 (m, 4H, teilweise verdeckt
durch Lösungsmittel),
2,91–2,834
(m, 1H), 1,23 (s, 1H); LC-MS: Rt = 0,99 Min.,
m/z 471,4 [M + H]+.
-
ALLEGMEINE
CHIRALSYNTHESE 4-Oxo-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
-
Dichlormethan
(1 l) und Molekularsieb 3 Å (113
g) und Amin-(S)-(–)α-methylbenzylamin
(71,7 ml) wurden in einer Dreihalsflasche mit einem Volumen von
2 l auf –5°C (unter
Verwendung eines Ethanol/Wasser/Eisbads) abgekühlt. Eine 50%ige Lösung von
Ethylglyoxylat in Toluol (117,6 ml) wurde über eine Dauer von 20 Min.
zugetropft, wobei die Temperatur zwischen –5°C und 0°C gehalten wurde. Das Gemisch
wurde für
eine Dauer von 0,5 Std. gerührt,
bevor es auf –30°C abgekühlt wurde.
Trifluoressigsäure
(45,2 ml) wurde über
eine Dauer von 3–4
Minuten zugesetzt. Bortrifluoriddiethylether (69,8 ml) wurde über eine
Dauer von 5 Min. at –55°C zugetropft.
Das Eisbad wurde entfernt, und man ließ das Gemisch auf –45°C aufwärmen, worauf
2-(Trimethylsilyloxy)-1,3-butadien (100 ml) über eine Dauer von 10 Minuten
zugetropft wurde. Während
der Zugabe wurde das das Gemisch wurde gekühlt und die Temperatur unter –20°C gehalten.
Alle vorstehenden Zugaben sind exotherm, womit das Kühlbad eine
ausreichende Kapazität
zum entfernen der während
der raschen Zugabe gebildeten Wärme
aufweisen sollte. Das Reaktionsgemisch wurde für eine Dauer von 2 Std. bei –15°C und 1 Std.
bei 0°C
gerührt
und dann auf Eis/Wasser gegossen und für eine Dauer von 15 Minuten
gerührt. Festes
Natriumhydrogencarbonat wurde auf pH 7–8 zugesetzt. Das Gemisch wurde über Nacht
bei Raumtemperatur gerührt.
Die Schichten wurden getrennt, und die wässrige Phase wurde mit Dichlormethan
extrahiert. Die vereinigten organischen Phasen wurden durch einen
Silicastopfen, eluierend mit Dichlormethan filtriert. Die relevanten
Fraktionen wurden im Vakuum eingeengt. Der Rückstand wurde in heißem Heptan
gelöst
und abgekühlt.
Dadurch wird ein gelbliches gummiartiges Material auf der Kolbenseite
zurück
gelassen, und Kristalle beginnen, sich zu bilden. Die Heptanlösung wurde
erneut erwärmt,
um die Kristalle zu lösen,
wobei das gummiartige Material auf der Kolbenseite zurück gelassen
wurde, und das Gemisch wurde heiß filtriert. Die Heptanlösung wurde
auf Raumtemperatur abgekühlt
und der Niederschlag abfiltriert und im Vakuum getrocknet, um 38
g 4-Oxo-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester als Feststoff
zu erhalten.
-
Das
Filtrat wurde in einen Kühlschrank
gegeben, und ein zweiter Ertrag bildete sich, der weniger rein war
und aus Heptan umkristallisiert werden musste, um weitere 7,5 g
4-Oxo-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
zu erhalten.
-
4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(S)-2-carbonsäureethylester
-
Die
Mutterlauge der vorstehenden Kristallisation wurde im Vakuum eingeengt
5,0 g des erhaltenen Materials (18,16 mmol) wurden in Ethanol (100
ml) gelöst,
und Triethylorthoformiat (26,9 g, 181,6 mmol) und para-Toluolsulfonsäure (6,9
g, 36,32 mmol) wurden zugesetzt. Die Reaktion wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 16 Std. gerührt,
bevor das Gemisch auf wässrige
Natriumhydrogencarbonatlösung
(200 ml) gegossen und mit Ethylacetat (4 × 75 ml) extrahiert wurde.
Die vereinigten Extrakte wurden im Vakuum eingeengt und durch Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Petrolether-Ethylacetat
10:1) gereinigt. Durch Auffangen der ersten Bande (Rf =
0,68) wurden 1,14 g (18%) 4,4-Diethoxy-1-((S)-1- phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
und durch Auffangen der zweiten Bande (Rf =
0,4) 3,60 g (57%) der Titelverbindung erhalten.
-
4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
-
4-Oxo-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
(11,0 g, 0,040 mmol) wurde in einem 1:1-Gemisch aus Triethylorthoformiat
und Ethanol (140 ml) gelöst,
und para-Toluol-4-sulfonsäure
(15,2 g, 80 mmol) wurde zugesetzt und das Reaktionsgemisch für eine Dauer
von 16 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde mit Natriumbicarbonat (auf pH 7–8) neutralisiert
und mit Dichlormethan (3 × 100
ml) extrahiert, getrocknet (MgSO4), filtriert
und im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde durch Säulenchromatografie (SiO2, Petrolether/Ethylacetat 10:1) gereinigt,
um 12,0 g (86%) der Titelverbindung als Öl zu erhalten.
-
4,4-Diethoxy-1-((S)1-phenylethyl)-(R)-2-hydroxymethyl-piperidin
-
Einer
Lösung
von 4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
(36,0 g, 0,103 mol) in trockenem Diethylether (150 ml) wurde eine
Suspension von Lithiumaluminiumhydrid (5,88 g, 0,155 mol) in trockenem
Diethylether (300 ml) unter Stickstoffatmosphäre mit einer derartigen Geschwindigkeit zugesetzt,
dass die Lösung
sanft unter Rückfluss
kochte. Das Reaktionsgemisch wurde über Nacht gerührt, bevor
es auf 0°C
abgekühlt
und Ethylacetat (30 ml) zum Zerstören von überschüssigem Lithiumaluminiumhydrid
zugetropft wurde. Nach Rühren
für eine
Dauer von weiteren 0,5 Std. wurde Wasser (12 ml) zugetropft. Nach
Rühren
für eine
Dauer von 10–15
Min. wurde der Niederschlag durch Celite abfiltriert und der Filterkuchen
mit reichlich Diethylether gewaschen. Das Filtrat wurde mit Kochsalzlösung (100
ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft, um 30 g (95%) der Titelverbindung als Öl zu erhalten.
-
4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)-(R)-2-phthalimidomethylpiperidin
-
Einer
Lösung
von 4,4-Diethoxy-1-((S)1-phenylethyl)-(R)-2-hydroxymethylpiperidin (65,35 g, 0,213 mmol),
Triphenylphosphin (61,3 g, 0,234 mol) und Phthalimid (34,4 g, 0,234
mol) in Tetrahydrofuran (700 ml), gekühlt auf 0°C, wurde über die Dauer von 1,5 Std.
Diethylazodicarboxylat zugesetzt. Das Reaktionsgemisch wurde bei
0°C für eine Dauer
von weiteren 2 Std. gerührt,
bevor das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand
wurde in heißem
Heptan-Toluol (3:2) (650 ml) gelöst,
bevor sie auf einem Eisbad abgekühlt wurde.
Der aus Triphenylphosphinoxid bestehende Niederschlag wurde abfiltriert
und mit Heptan gewaschen. Das Filtrat wurde im Vakuum eingeengt
und der Rückstand
einer Säulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Toluol-Ethylacetat-Heptan (3:1:3)
als Eluent unterzogen. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum eingedampft. worauf ein viskoses Öl erhalten
wurde. Nach Zugabe von leichtem Petrolether kristallisierte das
Produkt aus, um 67,4 g (73%) der Titelverbindung als Feststoff zu
erhalten.
-
BEISPIEL
37
5-(R)-(7-Methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Ein
Gemisch aus 4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)-(R)-2-phthalimidomethylpiperidin
(5,25 g, 12,0 mmol) und Hydrazinhydrat (2,92 ml, 60 mmol) wurde über Nacht
in Ethanol (100 ml) bei Raumtemperatur gerührt. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum
entfernt und der feste Rückstand
mit unter Rückfluss
kochendem Diethylether extrahiert. Die Diethyletherfraktionen wurden
vereinigt und im Vakuum eingedampft, um 3,94 g (94%) 4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)-(R)-2-aminomethylpiperidin
als Öl
zu erhalten.
-
4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)-(R)-2-aminomethylpiperidin
(2,25 g, 7,37 mmol) und Triethylamin (1,49 g, 14,7 mmol) in Acetonitril
(50 ml) wurde auf 60°C
erwärmt,
bevor 2-Chlormethyl-6-methoxybenzoesäuremethylester (1,58 g, 7,37
mmol) in Acetonitril (25 ml) über
die Dauer von 1,5 Std. zugesetzt wurde. Nach der Zugabe wurde das
Reaktionsgemisch wurde über
Nacht bei 60°C
gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand in Dichlormethan (50
ml) gelöst
und mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung gewaschen.
Nach Trocknen (MgSO4), Filtration und Abdampfen
des Lösungsmittels
im Vakuum wurde der Rückstand
einer Flashsäulenchromatografie
(SiO2, Ethylacetat-leichter Petrolether (1:1)) unterzogen,
um 2,3 g (69%) 2-(R)-(7-Methoxy-2,3- dihydroisoindol-1-on-2-ylmethyl)-4,4-diethoxy-1-(1-(S)-phenylethyl)piperidin
zu erhalten.
-
2-(R)-(7-Methoxy-2,3-dihydroisoindol-1-on-2-ylmethyl)-4,4-diethoxy-1(1-(S)-phenylethyl)piperidin
(2,0 g, 4,4 mmol) wurde in einem eiskalten Gemisch aus Trifluoressigsäure und
Wasser (10 ml, 9:1) gelöst
und für eine
Dauer von 0,5 Std. auf einem Eisbad gerührt. Das Reaktionsgemisch wurde
auf wässrige
Natriumcarbonatlösung
(100 ml) gegossen und mit Dichlormethan (2 × 50 ml) extrahiert. Die organische
Phase wurde getrocknet (MgSO4), filtriert
und im Vakuum eingedampft, um 1,67 g (100%) 2-(R)-(7-Methoxy-2,3-dihydroisoindol-1-on-2-ylmethyl)-4-oxo-1(1-(S)-phenylethyl)piperidin
zu erhalten.
-
2-(R)-(7-Methoxy-2,3-dihydroisoindol-1-on-2-ylmethyl)-4-oxo-1(1-(S)-phenylethyl)piperidin
(1,67 g, 4,41 mmol), Schwefel (0,155 g, 4,85 mmol), tert-Butylcyanoacetat
(0,684 g, 4,85 mmol), N-Methylmorpholin (0,892 g, 8,82 mmol) und
Molekularsieb (4 Å,
2 g) wurden auf 50°C
in Ethanol unter Stickstoffatmosphäre für eine Dauer von 16 Std. erwärmt. Das
Reaktionsgemisch wurde durch einen Stopfen (1 cm) aus SiO2 filtriert, das Silica wurde mit Dichlormethan-Ethylacetat gewaschen
und das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt. Der erhaltene Rückstand wurde einer Säulenchromatografie
(Flash 40, SiO2, Toluol-Ethylacetat (3:1))
unterzogen, um 1,17 g (50%) 2-Amino-5-(R)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
und 2-Amino-7-(S)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als 3:1-Gemisch zu erhalten.
-
Das
vorstehende Gemisch aus 5- und 7-Regioisomeren (1,17 g, 2,19 mmol)
und Imidazol-2-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(1,29 g, 7,57 mmol) und Triethylamin (0,66 g, 6,57 mmol) wurden
unter Stickstoffatmosphäre
in Dichlormethan (25 ml) für
eine Dauer von 16 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand einer Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Ethylacetat-Petrolether (1:1))
unterzogen. Durch Auffangen von relevanten Fraktionen wurden 0,61
g (42%) 2-(tert-Butoxyoxalylamin)-5-(R)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindo-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
erhalten.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamin)-5-(R)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindo-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,60 g, 0,91 mmol) wurde für
eine Dauer von 16 Std. in einem Gemisch aus Methanol und Ameisensäure (10:1)
(20 ml) in Gegenwart von 10% Palladium auf Aktivkohle (50% Wasser)
gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde durch einen Celitestopfen filtriert und mit
Methanol gewaschen. Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt und der Rückstand in Dichlormethan (50
ml) gelöst,
mit halb gesättigter
wässriger
Natriumcarbonatlösung
(50 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Ethylacetat-Methanol (100:15))
gereinigt, um 0,36 g (71%) 2-(tert-Butoxyoxalylamin)-5-(R)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindo-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamin)-5-(R)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindo-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(349 mg, 0,63 mmol) wurde für
eine Dauer von 16 Std. in einem Gemisch aus Trifluoressigsäure und
Dichlormethan (1:1) (10 ml) gerührt,
worauf Diethylether (20 ml) zugesetzt wurde. Der Niederschlag wurde
abfiltriert und mit Diethylether gewaschen, um 215 mg (61%) der
Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
LC-MS:
Rt = 1,17 Min., m/z: 446 [M + H]+
Berechnet für C20H19N3O7S,
C2HF3O2,
0,5 × H2O
C, 46,48%; H, 3,72%; N, 7,39%; Gefunden:
C,
46,45%; H, 3,97%; N, 7,43%;
-
BEISPIEL
38
5-(S)-(7-Methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 4,4-Diethoxy-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(S)-2-carbonsäureethylester
(35,98 g, 0,103 mol) in Diethylether (150 ml) wurde einer Suspension
von Lithiumaluminiumhydrid (5,88 g, 0,155 mol) in Diethylether (300
ml) über
die Dauer von 1 Std. zugetropft. Das Reaktionsgemisch wurde bei
Raumtemperatur über
Nacht gerührt,
bevor sie auf einem Eisbad abgekühlt
und die Reaktion durch Zutropfen von Ethylacetat (30 ml), gefolgt
vom Zugtropfen von Wasser (12 ml) abgeschreckt wurde, worauf ein
grauer Niederschlag gebildet wurde. Das Gemisch wurde durch einen
Celitestopfen filtriert und der Filterkuchen mit reichlich Diethylether
gewaschen. Das Filtrat wurde getrocknet (MgSO4),
bevor es filtriert und das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde, um 24,5 g (79%) 4,4-Diethoxy-1-(1-(S)-phenylethyl)-(S)-2-hydroxymethylpiperidin
als Öl
zu erhalten.
-
Einer
Suspension von 4,4-Diethoxy-1-(1-(S)-phenylethyl)-(S)-2-hydroxymethylpiperidin
(20 g, 65 mmol), Triphenylphosphin (18,76 g, 72 mmol) und Phthalimid
(10,52 g, 72 mmol) in Tetrahydrofuran (200 ml), abgekühlt auf
0°C, wurde
Diethylazodicarboxylat (11,34 ml, 72 mmol) über die Dauer von 1 Std. zugesetzt.
Das Reaktionsgemisch wurde bei 0°C
für eine
weitere Dauer 2 Std. gerührt,
bevor die flüchtigen
Bestandteile im Vakuum entfernt wurden. Der Rückstand wurde in heißem Heptan-Toluol
(3:2) (100 ml) gelöst,
bevor dies auf einem Eisbad abgekühlt wurde. Der Niederschlag
wurde abfiltriert und mit Heptan gewaschen. Das Filtrat wurde im
Vakuum eingeengt und der Rückstand
einer Säulenchromatografie
unter Verwendung eines Gemischs aus Toluol/Ethylacetat/Heptan (3:1:3)
als Eluent unterzogen. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum eingedampft und der Rückstand durch die Zugabe von
leichtem Petrolether (250 ml) auskristallisiert. Der Niederschlag
wurde abfiltriert, um 24 g (85%) 4,4-Diethoxy-1-(1-(S)-phenylethyl)-2-(S)-phthalimidomethylpiperidin als
Feststoff zu erhalten.
-
4,4-Diethoxy-1-(1-(S)-phenylethyl)-2-(S)-phthalimidomethylpiperidin
(4,0 g, 9,2 mmol) wurde in einem Gemisch aus Trifluoressigsäure und
Wasser (9:1) (100 ml) bei 0°C
gelöst
und für
eine Dauer von 2 Std. bei dieser Temperatur gerührt. Das Gemisch wurde mit
halbgesättigter,
wässriger
Natriumcarbonatlösung
basisch gestellt, mit Ethylacetat extrahiert und für eine Dauer
von 2 Std. getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand in einem Vakuumofen
bei 40°C
für eine
Dauer von zwei Tagen getrocknet. Dadurch wurden 3,23 g (98%) 4-Oxo-1-(1-(S)-phenylethyl)-2-(S)-phthalimidomethylpiperidin,
das ohne weitere Reinigung rein war (98%) erhalten.
-
Ein
Gemisch aus 4-Oxo-1-(1-(S)-phenylethyl)-2-(S)-phthalimidomethylpiperidin
(17,28 g, 47,73 mmol), tert-Butylcyanoacetat (7,41 g, 52,17 mmol),
Schwefel (1,71 g, 52,17 mmol) und Morpholin (8,31 g, 95,46 mmol)
in Ethanol (150 ml) wurde unter Stickstoffatmosphäre bei 50°C erwärmt. Die
flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt und der Rückstand wurde einer Säulenchromatogra fie über Silicagel
(Heptan-Ethylacetat 5:1) unterzogen. Die aus einem Gemisch aus 5-
und 7-Isomer bestehenden Fraktionen wurden aufgefangen, und das
Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde auf einer Umkehrphasen
(C18)-Säule
unter Verwendung eines Flash-40-Systems gereinigt. Der Rückstand
wurde in einem minimalen Volumen von Acetonitril aufgebracht und
mit 40% Acetonitril in Wasser, enthaltend 0,1% Trifluoressigsäure, eluiert.
Als das 5-Isomer aufgefangen wurde, wurde der Eluent mit 50% Acetonitril
in Wasser mit 0,1% Trifluoressigsäure ersetzt und das 7-Isomer
aufgefangen. Die Ausbeute von 2-Amino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
betrug 7,96 g und die Ausbeute von 2-Amino-7-(R)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
3,72 g (47% insgesamt).
-
2-Amino-5-(S)-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(7,96 g, 15,4 mmol) und Hydrazinhydrat (3,85 g, 77,0 mmol) in Ethanol (250
ml) wurden für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum entfernt
und der feste Rückstand
mit Diethylether (3 × 200
ml) extrahiert. Die Fraktionen wurden vereinigt, und das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt, um 5,9 g (100%) 2-Amino-5-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
-
2-Amino-5-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,55 g, 1,42 mmol) und Triethylamin (396 μl, 2,84 mmol) wurden in Acetonitril
(15 ml) unter Stickstoffatmosphäre
auf 60°C
erwärmt,
worauf eine Lösung
von 2-Chlormethyl-6-methoxybenzoesäuremethylester
(0,32 g, 1,49 mmol) in Acetonitril (5 ml) über die Dauer von 3 Std. zugetropft
wurde, wobei das Reaktionsgemisch bei 60°C gehalten wurde. Man ließ die Reaktion
auf Raumtemperatur abkühlen
und für
eine Dauer von 16 Std. stehen, bevor das Lösungsmittel im Vakuum eingedampft
wur de. Das Produkt wurde durch Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Ethylacetat-Petrolether) gereinigt,
um 400 mg (53%) 2-Amino-5-(S)-(7-methoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-((S)-1-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
-
Die
Titelverbindung wurde als Trifluoracetat in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 32 unter Verwendung der letzten drei Schritte
erhalten.
-
BEISPIEL
39
5-(S)-(4-Hydroxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
3-Hydroxy-2-methylbenzoesäure (0,5
g, 3,2 mmol) wurde in Methanol der HPLC-Qualität (5 ml) gelöst und auf
0°C unter
Stickstoff abgekühlt.
Acetylchlorid (5 ml) wurde zugetropft. Nach Beendigung der Zugabe wurde
das Eisbad entfernt und man ließ das
Reaktionsgemisch über
eine Dauer von 18 Std. auf Raumtemperatur aufwärmen. Die Reaktion wurde durch
DSC (Rf = 0,5, 1:1 Ethylacetat/Hexane) beendet
und mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
abgeschreckt. Das Reaktionsgemisch wurde eingeengt, mit Dichlormethan
und Wasser verdünnt,
und die Schichten wurden getrennt. Die wässrige Schicht wurde mit Dichlormethan
(3×) extrahiert.
Die organischen Schichten wurden vereinigt, getrocknet (MgSO4), filtriert und im Vakuum eingeengt, um
0,5 g (91%) 3-Hydroxy-2-methylbenzoesäuremethylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,39
(dd, 1H, J = 8,1 Hz und J = 1,5 Hz), 7,09 (t, 1H, J = 8,1 Hz), 6,92
(dd, 1H, J = 8,1 Hz und J = 1,2 Hz), 5,11 (bs, 1H), 3,87 (s, 3H),
2,43 (s, 3H).
-
3-Hydroxy-2-methylbenzoesäuremethylester
(0,5 g, 3,01 mmol) in Dichlormethan (15 ml) und N,N-Diisopropylethylamin
(1,57 ml, 9,03 mmol) wurde auf 0°C
unter Stickstoff abgekühlt.
Chlormethylmethylether (0,46 ml, 6,02 mmol) wurde zugetropft, und
man ließ die
Reaktion über
eine Dauer von 18 Std. auf Raumtemperatur aufwärmen. Es wurde durch DSC (1:2
Ethylacetat/Hexane, I2) beurteilt, dass
die Reaktion zu 50% vollständig
war, weshalb N,N-Diisopropylethylamin (1,57 ml, 9,03 mmol) zugesetzt,
das Reaktionsgemisch auf 0°C
abgekühlt
und Chlormethylmethylether (0,46 ml, 6,02 mmol) ein weiteres Mal
zugesetzt wurde. Das Reaktionsgemisch wurde auf Raumtemperatur aufgewärmt und
für eine
Dauer von 5 Std. gerührt.
Die Reaktion wurde mit Wasser abgeschreckt, und die Schichten wurden
getrennt. Die wässrige
Schicht wurde einmal mit Dichlormethan extrahiert, und die organischen
Schichten wurden vereinigt, getrocknet (MgSO4),
filtriert und im Vakuum eingeengt. Der rohe Rückstand wurde durch Säulenchromatografie
(20% Ethylacetat/Hexane) gereinigt, um 0,44 g (69%) 3-Methoxymethoxy-2-methylbenzoesäuremethylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,46 (dd,
1H, J = 7,6 Hz und J = 1,2 Hz), 7,21 (dd, 1H, J = 8 Hz und J = 1,2
Hz), 7,18 (d, 1H, J = 8 Hz), 5,21 (s, 2H), 3,88 (s, 3H), 3,48 (s,
3H), 2,46 (s, 3H).
-
Einem
Gemisch aus 3-Methoxymethoxy-2-methylbenzoesäuremethylester (0,44 g, 2,09
mmol) in Tetrachlorkohlenstoff (10 ml) wurden N-Bromsuccinimid (0,39
g, 2,19 mmol) und 1,1'-Azobis(cyclohexancarbonitril)
(0,051 g, 0,21 mmol) zugesetzt. Das Gemisch wurde unter Rückfluss
für eine
Dauer von 3 Std. erwärmt, wobei
zu diesem Zeitpunkt die Reaktion durch DSC (1:4 Ethylacetat/Hexane)
als vollständig
beurteilt wurde. Das Reaktionsgemisch wurde auf Raumtemperatur abgekühlt und
im Vakuum zu einem Feststoff eingeengt. Der Feststoff wurde aus
Hexan umkristallisiert, um 0,44 g (82%) 2-Brommethyl-3-methoxymethoxybenzoesäuremethylester
als Feststoff zu hinterlassen.
1H-NMR
(CDCl3) δ 7,58
(dd, 1H, J = 6,8 Hz und J = 2,4 Hz), 7,33–7,29 (m, 2H), 5,30 (s, 2H),
5,07 (s, 2H), 3,94 (s, 3H), 3,52 (s, 3H).
-
Einem
gerührten
Gemisch aus 2-Amino-5-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,24 g, 0,67 mmol) in Acetonitril (30 ml) wurde N,N-Diisopropylethylamin
(0,16 ml, 0,93 mmol) unter Stickstoff zugesetzt. 2-Brommethyl-3-methoxymethoxybenzoesäuremethylester
(0,16 g, 0,55 mmol), gelöst
in Acetonitril, wurde über
eine Spritzenpumpe mit einer Geschwindigkeit von 0,3 ml/Std. zugesetzt.
Nach Beendigung der Zugabe wurde das Reaktionsgemisch wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 24 Std. gerührt.
Eine DSC-Analyse (1:1 Ethylacetat/Hexane) zeigte an, dass die Reaktion
vollständig
war. Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt, und das erhaltene Öl wurde
in Ethylacetat/Wasser gelöst.
Die Schichten wurden getrennt, und die wässrige Schicht wurde mit Ethylacetat
(3×) extrahiert.
Die organischen Schichten wurden vereinigt, getrocknet (MgSO4), filtriert, und das Lösungsmittel wurde im Vakuum
eingedampft, um 0,34 g (100%) 2-Amino-5-(S)-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten, der ohne weitere Reinigung im nächsten Schritt verwendet wurde.
1H-NMR (CDCl3) δ 7,51 (d,
1H, J = 6,8 Hz), 7,42 (t, 2H, J = 7,6 Hz), 7,23–7,17 (m, 5H), 5,93 (s, 2H),
5,25 (s, 2H), 4,23 (s, 2H), 4,12 (q, 1H, J = 7,2 Hz), 3,94 (m, 1H),
3,85 (q, 1H, J = 6,4 Hz), 3,66 (d, 1H, J = 16,4 Hz), 3,50 (s, 3H),
3,48–3,46
(m, 1H), 3,20 (dd, 1H, J = 14 Hz und 1 = 6 Hz), 2,94–2,87 (m,
1H), 2,60 (m, 1H), 1,49 (s, 9H), 1,36 (d, 3H, J = 6,4 Hz);
LC-MS:
m/z: 564,1 [M + H]+.
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-(S)-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,34 g, 0,60 mmol) in Dichlormethan (10 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(0,35 g, 1,8 mmol) zugesetzt. Das Reaktionsgemisch wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 18 Std. gerührt
und das Lösungsmittel
im Vakuum eingeengt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat gelöst
und mit Wasser (2 × 20
ml) und Kochsalzlösung
(2 × 25
ml) gewaschen. Die organische Schicht wurde getrocknet (MgSO4), filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum abgedampft.
Der Rückstand
wurde einer Flashchromatografie unter Verwendung eines Gemischs
aus Ethylacetat/Hexanen (1:1) als Eluent unterzogen. Der erhaltene
Rückstand
wurde dann einer chromatografischen Reinigung (1% Methanol/Dichlormethan)
und später
einer weiteren Flashchromatografie (20% Ethylacetat/Hexane bis 25% Ethylacetat/Hexane)
unterzogen, um 210 mg (50%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 12,50 (s,
1H), 7,51 (dd, 1H, J = 6,8 Hz und J = 1,2 Hz), 7,42 (t, 2H, J =
8 Hz), 7,25–7,17
(m, 5H), 5,23 (s, 2H), 4,24 (q, 2H, J = 16,8 Hz), 4,08 (d, 1H, J
= 16,8 Hz), 4,01 (dd, 1H, J = 14 Hz und J = 8,8 Hz), 3,89 (d, 1H,
J = 17,6 Hz), 3,82 (q, 1H, J = 6,8 Hz), 3,56 (q, 1H, J = 6,4 Hz),
3,51 (s, 3H), 2,28 (dd, 1H, J = 14 Hz und J = 6,4), 2,98–2,92 (m,
1H), 2,69 (d, 1H, J = 17,2), 1,56 (s, 9H), 1,54 (s, 9H), 1,38 (d,
3H, J = 6,8 Hz);
LC-MS: m/z: 692,5 [M + H]+.
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,16 g, 0,23 mmol) in Ameisensäure (10%
in Methanol, 5 ml insgesamt) wurde 10% Palladium Ak tivkohle (85
mg, Quelle: Avacado) zugesetzt, und man ließ das Reaktionsgemisch bei
Raumtemperatur rühren.
Nach 6 Std., zeigte eine DSC-Analyse (1:1 Ethylacetat/Hexane) die
Vollständigkeit
der Reaktion an. Das Reaktionsgemisch wurde durch ein Celitekissen
filtriert und im Vakuum eingeengt. Das Rohprodukt wurde über Flashchromatogafie
(Gradient: 3% Isopropylalkohol/Dichlormethan bis 5% Isopropylalkohol/Dichlormethan
(in 1%igen Erhöhungen
von Isopropylalkohol)) gereinigt, um 0,11 g (82%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
bereitzustellen.
1H-NMR (CDCl3) δ 12,50
(bs, 1H), 7,48 (dd, 1H, J = 7,6 Hz und J = 0,8 Hz), 7,38 (t, 1H,
J = 8 Hz), 7,22 (dd, 1H, J = 8 Hz und J = 0,8 Hz), 5,24 (s, 2H),
4,50 (q, 2H, J = 17,3 Hz), 4,02–3,90
(m, 2H), 3,74 (ddd, 2H, J = 34 Hz, J = 13,6 Hz und J = 5,6 Hz),
3,49 (s, 3H), 3,24 (m, 1H), 2,97 (ddd, 1H, J = 20 Hz, J = 4,4 Hz
und J = 2,8 Hz), 2,50 (m, 1H), 1,59 (s, 9H), 1,51 (s, 9H);
LC-MS:
m/z: 587,8 [M + H]+.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(4-methoxymethoxy-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,11 g, 0,18 mmol) wurde in unverdünnter Trifluoressigsäure (4 ml)
gelöst
und bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 48 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde im Vakuum eingeengt und der erhaltene
Feststoff mit Dichlormethan mehrmals gewaschen, um 100 mg (83%) der
Titelverbindung als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,29 (bs,
1H), 10,13 (s, 1H), 9,29 (bs, 1H), 9,10 (bs, 1H), 7,32 (t, 1H, J
= 7,6 Hz), 7,17 (d, 1H, J = 7,2 Hz), 7,01 (d, 1H, J = 8 Hz), 4,52
(d, 1H, J = 17,2 Hz), 4,40–4,22
(m, 3H), 4,05 (dd, 1H, J = 14,4 Hz und J = 9,6 Hz), 3,90 (bs, 1H),
3,69 (dm, 1H), 3,22 (dm, 1H), 2,80 (dm, 1H);
LC-MS: m/z: 432,2
[M + H]+.
-
BEISPIEL
40
2-(S)-(Oxalylamino)-5-((4-phenoxybenzylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 2-Amino-5-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(500 mg, 1,29 mmol) und 4-Phenoxybenzaldehyd (256 mg, 1,29 mmol) wurde
auf 50°C
in Ethanol (50 ml) für
eine Dauer von 1 Std. in Gegenwart von Molekularsieb (4 A, 5 ml)
erwärmt.
Das Reaktionsgemisch wurde auf einem Eisbad abgekühlt, bevor
Natriumborhydrid (98 mg, 2,59 mmol) in drei Portionen über eine
Dauer von 45 Min. zugesetzt wurde. Das Kühlbad wurde entfernt, und man
ließ das Reaktionsgemisch
Raumtemperatur erreichen. Das Gemisch wurde durch einen Celitestopfen
filtriert und der Filterkuchen mit Dichlormethan (3 × 25 ml)
gewaschen. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand erneut in Ethylacetat
(50 ml) gelöst,
mit Natriumbicarbonat (50 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt, bevor der Rückstand erneut in Acetonitril
(20 ml) gelöst
wurde. Triethylamin (130 mg, 1,29 mmol), Di-tert-butyldicarbonat (282 mg, 1,29 mmol)
und 4-(N,N-Dimethylamino)pyridin (5 mg, kat.) wurden zugesetzt,
und das Reaktionsgemisch wurde für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt. Die flüchtigen Bestandteile wurden
im Vakuum entfernt, und Ethylacetat (50 ml) wurde zugesetzt und
die Lösung
mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(50 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4).
Das Rohprodukt wurde durch Säulenchromatografie
(SiO2, Petrolether-Ethylacetat (9:1)) gereinigt, um
325 mg (38% insgesamt) 2-Amino-5-(S)-((4-phenoxybenzylamino)methyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
-
Die
Titelverbindung wurde als Trifluoracetat in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 32 beschrieben unter Verwendung der letzten
drei Schritte erhalten. Oxalierung: Standardverfahren (16 Std.,
82%)
Hydrierung: Standardverfahren (Pd/C, 10% Pd, Methanol-Ameisensäure, 16
Std., ((10:1)) (82%ige Ausbeute)
TFA-Spaltung: Standardverfahren.
Ausbeute 150 mg (87%).
LC-MS m/z: 482 [M + H]+,
Rt = 1,87 Min.
Berechnet für C24H23N3O6S, 2 × (C2HF3O2)
C,
47,40%; H, 3,55%; N, 5,92%; Gefunden:
C, 47,47%; H, 3,87%;
N, 5,88%.
-
BEISPIEL
41
5-(S)-((4-Acetylaminobenzylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde als Trifluoracetat in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 35 beschrieben unter Verwendung von 2-Amino-5-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester und N-(4-Formylphenyl)acetamid
als Ausgangsmaterial hergestellt.
Berechnet für C20H22N4O6S, 1,5 × C2HF3O2,
1,5 × H2O
C, 43,78%; H, 3,99%; N, 8,88%; Gefunden:
C,
44,20%; H, 4,43%; N, 8,75%;
-
BEISPIEL
42
7-(S)-((Acetyl(4-phenoxybenzyl)amino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 2-Amino-7-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(500 mg, 1,29 mmol) und 4-Phenoxybenzaldehyd (256 mg, 1,29 mmol) wurde
auf 50°C
in Ethanol (50 ml) für
eine Dauer von 1 Std. in Gegenwart von Molekularsieb (4 A, 5 ml)
erwärmt.
Das Reaktionsgemisch wurde auf einem Eisbad abgekühlt, bevor
Natriumborhydrid (98 mg, 2,59 mmol) in drei Portionen über eine
Dauer von 45 Min. zugesetzt wurde. Das Kühlbad wurde entfernt, und man
ließ das Reaktionsgemisch
Raumtemperatur erreichen. Das Gemisch wurde durch eine Celitestopfen
filtriert und der Filterkuchen mit Dichlormethan (3 × 25 ml)
gewaschen. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand erneut in Ethylacetat
(50 ml) gelöst,
mit Natriumbicarbonat (50 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt, bevor das Produkt erneut in Dichlormethan
(10 ml) gelöst
wurde. Die Lösung
wurde auf einem Eisbad abgekühlt,
bevor Diisopropylethylamin (101 mg, 1,29 mmol) zugesetzt wurde,
gefolgt vom Zutropfen von Acetylchlorid (101 mg, 1,29 mmol) in Dichlormethan
(1 ml). Das Reaktionsgemisch wurde für eine Dauer von 1 Std. bei
0°C gerührt und
die Lösung
mit Natriumbicarbonat (10 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4). Das Rohprodukt wurde durch Flashsäulenchromatografie
(SiO2, Ethylacetat-Petrolether 1:3) gereinigt,
um 320 mg (41%) 7-(S)-((Acetyl(4-phenoxybenzyl)amino)methyl)-2-amino-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure zu erhalten.
-
Die
Titelverbindung wurde als Trifluoracetat in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 32 beschrieben unter Verwendung der letzten
drei Schritte erhalten.
Oxalierung: Standardverfahren (Ausbeute
69%)
Hydrierung und Trifluoressigsäurespaltung in einem Schritt,
Standardverfahren (Gesamtausbeute 6%).
LC-MS m/z = 524 [M +
H]+, Rt = 2,58 Min.
Berechnet
für C26H25N3O7S, C2HF3O2, 0,5 × H2O
C, 52,01%; H, 4,21%; N, 6,50%; Gefunden:
C,
51,82%; H, 4,34%; N, 6,36%.
-
BEISPIEL
43
7-(S)-((Acetylbenzylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 2-Amino-7-(S)-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(400 mg, 1,03 mmol) und Benzaldehyd (105 mg, 1,03 mmol) wurde auf 50°C in Ethanol
(20 ml) für eine
Dauer von 1 Std. in Gegenwart von Molekularsieb (4 A, 7 ml). Das
Reaktionsgemisch wurde auf einem Eisbad abgekühlt, bevor Natriumborhydrid
(78 mg, 2,06 mmol) in drei Portionen über eine Dauer von 45 Min.
zugesetzt wurde Das Kühlbad
wurde entfernt, und man ließ das
Reaktionsgemisch Raumtemperatur erreichen. Das Gemisch wurde durch
einen Celitestopfen filtriert und der Filterkuchen mit Dichlormethan
(3 × 25
ml) gewaschen. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand erneut in Ethylacetat
(50 ml) gelöst,
mit Natriumbicarbonat (50 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt, bevor das Produkt in Dichlormethan (20
ml) gelöst
wurde. Die Lösung
wurde auf einem Eisbad abgekühlt,
bevor Diisopropylethylamin (267 mg, 2,06 mmol) zugesetzt wurde,
gefolgt vom Zutropfen von Acetylchlorid (81 mg, 1,03 mmol) in Dichlormethan
(1 ml). Das Reaktionsgemisch wurde für eine Dauer von 1 Std. bei
0°C gerührt, bevor
Natriumbicarbonat (20 ml) zugesetzt wurde. Das Gemisch wurde mit Dichlormethan
(2 × 10
ml) extrahiert, und die vereinigten organischen Fraktionen wurden
getrocknet (MgSO4). Das Rohprodukt wurde
durch Flashsäulenchromatografie
(Petrolether/Ethylacetat (3:1)) gereinigt, um 250 mg (46%) 7-(S)-((Acetylbenzylamino)methyl)-2-amino-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester zu erhalten.
-
Die
Titelverbindung wurde als Trifluoracetat in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 32 beschrieben unter Verwendung der letzten
drei Schritte erhalten.
Oxalierung: Standardverfahren (54%)
Hydrierung:
Standardverfahren (Methanol-Ameisensäure (10:1)) Ausbeute 38 mg
(26%)
Trifluoressigsäurespaltung:
Standardverfahren 33 mg (80%)
LC-MS m/z: 432 [M + H]+, Rt = 1,52 Min.
Berechnet
für C20H21N3O6S × 1,5 × C2HF3O2,
2 × H2O
C, 43,26%; H, 4,18%; N, 6,58%; Gefunden:
C,
43,19%; H, 3,86%; N, 6,46%.
-
BEISPIEL
44
5-(S)-((1,1-Dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von (S)-2-Amino-5-aminomethyl-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(1,0 g, 2,58 mmol) in Dichlormethan (10 ml) bei 0°C wurde N,N-Diisopropylethylamin
(0,54 ml, 5,16 mmol) zugesetzt. Eine Lösung von 3-Chlorbenzo[d]isothiazol-1,1-dioxid
(0,52 g, 2,58 mmol) in Dichlormethan (10 ml) wurde dann zugetropft
und für
eine Dauer von 30 Min. gerührt.
Die Lösung
wurde auf Raumtemperatur aufgewärmt
und getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde dann im Vakuum entfernt. Der Rückstand wurde in Dichlormethan
(15 ml) aufgenommen, und Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester (1,0 g,
5,16 mmol) wurde zugesetzt. Die Lösung wurde für eine Dauer von
2 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (100 ml) aufgenommen. Die Lösung wurde mit 0,5 N Salzsäurelösung, gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
und Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (MgSO4) und filtriert.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde unter Verwendung eines Gemischs aus 0–5% Ethylacetat/Dichlormethan
als Eluent chromatografiert, um 0,6 g (34%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 12,50 (s,
1H), 7,94–7,92
(m, 1H), 7,79–7,71
(m, 2H), 7,59–7,50
(m, 1H), 7,38–7,27
(m, 4H), 6,86 (d, 1H, J = 4 Hz), 4,14 (d, 1H, J = 12 Hz), 3,95 (d,
1H, J = 17 Hz), 3,88 (q, 1H, J = 6 Hz), 3,70–3,62 (m, 1H), 3,47 (t, 1H,
J = 13 Hz), 3,34–3,24
(m, 1H), 3,06 (dd, 1H, J = 17, 6 Hz), 2,53 (d, 1H, J = 17 Hz), 1,62
(s, 9H), 1,61 (s, 9H), 1,44 (d, 3H, J = 7 Hz).
-
Eine
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-6-(1-(S)-phenylethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(252 mg, 0,37 mmol) in Tetrahydrofuran (12 ml) wurde durch Raney-Ni
(0,95 g, 50% Raney-Ni-Wasser,
gewaschen mit Methanol (6 ml) und Tetrahydrofuran (10 ml) und vor
der Verwendung getrocknet) geleitet. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum
entfernt. Der Rückstand
wurde in Essigsäure
(7 ml) gelöst
und mit 10% Pd/C (250 mg) bei 50 psi für eine Dauer von 15 Std. hydriert.
Das Gemisch wurde filtriert und das Filtrat zu gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
zugesetzt. Die Lösung
wurde dann mit Ethylacetat (3 × 100
ml) extrahiert. Die Extrakte wurden vereinigt und getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde mit Diethylether gewaschen, um 156 mg (73%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3) δ 12,59 (s,
1H), 7,94–7,90
(m, 1H), 7,70–7,66
(m, 3H), 7,51 (s, 1H), 4,11 (d, 1H, J = 12 Hz), 4,08 (n, 2H, J =
17 Hz), 3,40 (dd, 1H, J = 12, 6 Hz), 3,26–3,18 (m, 1H), 3,18 (d, 1H,
J = 17 Hz), 2,55 (dd, 1H, J = 12, 6 Hz), 1,62 (s, 18H).
LC-MS:
Rt = 3,58 Min., m/z: 577 [M + H]+.
-
Eine
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-((1,1-dioxo-1H-benzo[d]isothiazol-3-ylamino)methyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3- carbonsäure-tert-butylester
(149 mg, 0,26 mmol) in 50% Trifluoressigsäure/Dichlormethan (1 ml) wurde
in einem offenen Kolben für
eine Dauer von 60 Std. stehen gelassen. Die flüchtigen Bestandteile wurden
im Vakuum entfernt, und der Rückstand
wurde mit Dichlormethan gewaschen, um 80 mg (54%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6) δ 12,29 (s, 1H), 9,80 (s, 1H),
9,51 (bs, 2H), 8,19 (d, 1H, J = 5 Hz), 8,02–8,00 (m, 1H), 7,89–7,84 (m,
2H), 4,46 (d, 1H, J = 16 Hz), 4,30 (d, 1H, J = 16 Hz), 3,96–3,80 (m,
3H), 3,30 (d, 1H, J = 17 Hz), 2,93 (dd, 1H, J = 18, 10 Hz);
LC-MS:
Rt = 0,68 Min., m/z: 465 [M + H]+.
-
BEISPIEL
45
5-(4-Benzyloxy-1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Die
Titelverbindung wurde in einer ähnlichen
Weise wie in Beispiel 5 beschrieben als Trifluoracetat hergestellt.
1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 12,31 (s,
1H), 9,25 (bs, 2H), 7,80 (t, 1H, J = 8 Hz), 7,59–7,32 (m, 7H), 5,37 (s, 2H),
4,42–4,21
(m, 2H), 3,95–3,70
(m, 3H), 3,4–3,2
(verdeckt durch Wasser, 1H), 2,83–2,75 (m, 1H)
LC-MS: Rt = 2,16 Min., m/z: 536,1 [M + H]+
-
BEISPIEL
46
5-(6-Methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Amino-5-aminomethyl-6-(4-methoxybenzyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(57,4 mg, 0,142 mmol) und Diisopropylethylamin (49 μl, 0,28 mmol)
in Acetonitril (20 ml) bei Raumtemperatur wurde 2-Brommethyl-5-methoxyisophthalsäuredimethylester
(3,00 g, 7,45 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde für eine Dauer
von 16 Std. gerührt
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (50 ml) aufgenommen und mit Wasser (2 × 20 ml),
1 N Salzsäure
(20 ml), Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde auf einer Silicagelsäule
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:1) als
Eluent gereinigt, um 62 mg (71%) 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-(6-methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR δ (CDCl3): δ 7,75
(d, 1H, J = 2,4 Hz), 7,55 (d, 1H, J = 2,4 Hz), 7,11 (bs, 2H), 6,74
(d, 2H, J = 8,0 Hz), 5,97 (s, 2H), 4,71 (d, 1H, J = 18,4 Hz), 4,62
(d, 1H, J = 18,4 Hz), 4,09 (m, 1H), 3,93 (s, 3H), 3,92 (s, 3H),
3,80 (m, 1H), 3,76 (s, 3H), 3,66–3,40 (m, 5H), 2,80 (d, 1H,
J = 17,2 Hz), 2,64 (d, 1H, J = 17,2 Hz), 1,52 (s, 9H).
-
Einer
gerührten
Lösung
von 2-Amino-6-(4-methoxybenzyl)-5-(6-methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(60 mg, 0,10 mmol) in Tetrahydrofuran (1,0 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(60 mg, 0,30 mmol) in Tetrahydrofuran (1,0 ml) zugesetzt. Das Gemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Ethylacetat (20 ml) aufgenommen und mit 0,5 N Salzsäure (2 × 10 ml), gesättigter
Natriumbicarbonatlösung
(2 × 10
ml) und Kochsalzlösung
(10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand unter Verwendung eines
Gradienten aus Ethylacetat/Hexan (10–25%) als Eluent chromatografiert,
um 40 mg (58%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-(6-methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR δ (CDCl3): δ 12,54
(s, 1H), 7,75 (d, 1H, J = 2,4 Hz), 7,55 (d, 1H, J = 2,4 Hz), 7,10
(d, 2H, J = 8,0 Hz), 6,74 (d, 2H, J = 8,0 Hz), 4,74 (d, 1H, J =
18,4 Hz), 4,62 (d, 1H, J = 18,4 Hz), 4,05–3,90 (m, 2H), 3,94 (s, 3H), 3,92
(s, 3H), 3,82–3,48
(m, 5H), 3,77 (s, 3H), 2,95 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und J = 5,2 Hz),
2,67 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und J = 5,2 Hz), 1,61 (s, 9H), 1,58 (s,
9H).
-
Einer
Lösung
von 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-(4-methoxybenzyl)-5-(6-methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(38 mg, 0,055 mmol) in 10% Ameisensäure/Methanol (1,0 ml) bei Raumtemperatur
unter Stickstoff wurde 10% Pd/C (38 mg) zugesetzt. Das Gemisch wurde
für eine
Dauer von 16 Std. gerührt
und das Pd/C wurde abfiltriert und das Filtrat im Vakuum eingedampft.
Der Rückstand
wurde in Dichlormethan (1,0 ml) aufgenommen, in Hexan gegossen.
Der Niederschlag wurde abfiltriert, um 28 mg (82%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(6-methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3- dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR δ (CDCl3): δ 12,45
(s, 1H), 10,90 (s, 1H), 10,69 (s, H), 7,73 (s, 1H), 7,42 (s, 1H),
4,85 (bs, 2H), 4,65 (bs, 1H), 4,42 (bs, 2H), 3,99 (bs, 2H), 3,96
(s, 3H), 3,89 (s, 3H), 3,35 (bs, 1 Hz), 3,21 (bs, 1H), 1,62 (s,
9H), 1,56 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(0,5 ml) und Dichlormethan (0,5 ml) wurde 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(6-methoxy-4-methoxycarbonyl-1-oxo-1,3-dihydroisoindol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(14 mg, 0,023 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 40 Std. gerührt.
Das Reaktionsgemisch wurde in Diethylether (20 ml) gegossen. Der
Niederschlag wurde ab filtriert, um 10 mg (75%) der Titelverbindung
als festes Trifluoracetat zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6): δ 12,28 (s, 1H), 9,32 (s, 1H),
9,10 (s, 1H), 7,65 (d, 1H, J = 2,4 Hz), 7,50 (d, 1H, J = 2,4 Hz),
4,82 (d, 1H, J = 17,2 Hz), 4,65 (d, 1H, J = 17,6 Hz), 4,40 (d, 1H,
J = 17,6 Hz), 4,30 (m, 1H), 4,10 (dd, 1H, J = 17,2 Hz und J = 5,2
Hz), 3,95 (s, 1H), 3,89 (s, 6H), 3,85 (d, 1H, J = 17,2 Hz), 2,81
(dd, 1H, J = 18 Hz und J = 7,2 Hz).
LC-MS: Rt =
1,30 Min.; m/z: 504 [M + H]+
-
BEISPIEL
47
2-(Oxalylamino)-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure und 2-(Oxalylamino)-7-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-Aminomethyl-4-(2-spiro[1,3]dioxolan)piperidin (193 mg, 1,12
mmol) und Diisopropylethylamin (0,46 ml, 2,55 mmol) in Acetonitril
(10 ml), abgekühlt
auf 0°C,
wurde 2-Chlorsulfonylbenzoesäuremethylester
(278 mg, 1,18 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei 25°C für eine Dauer
von 24 Std. gerührt. Das
Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand unter Verwendung eines
Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:3) als Eluent chromatografiert,
um 199 mg (51%) 2-(4-(2-Spiro[1,3]dioxolan)piperidin-2-ylmethyl)-1,1-dioxo-1,2-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-3-on
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 7,99–7,96 (m,
1H), 7,66–7,53
(m, 3H), 5,01 (s, 1H), 4,73 (dm, 1H, J = 14,4 Hz), 4,06–3,93 (m,
6H), 3,25 (dd, 1H, J = 12,6 Hz), 3,06 (td, 1H, J = 13,5 Hz und J
= 3,6 Hz), 1,93 (dd, 1H, J = 14,1 Hz und J = 5,7 Hz), 1,87 (dd,
1H, J = 14,1 Hz und J = 3,0 Hz), 1,76 (dd, 1H, J = 13,5 Hz und J
= 5,1 Hz).
LC-MS: Rt = 1,78; m/z: 339
[M + H]+.
-
2-(4-(2-Spiro[1,3]dioxolan)piperidin-2-ylmethyl)-1,1-dioxo-1,2-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-3-on (199
mg, 0,588 mmol) wurde in 2 M Salzsäure (12 ml) gelöst und die
Lösung
auf 50°C
für eine
Dauer von 24 Std. erwärmt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden im Vakuum entfernt und der Rückstand (341 mg) ohne weitere
Reinigung mit gesättigter
Natriumcarbonatlösung
(12 ml), Dichlormethan (8 ml) und Di-t-butyldicarbonat (1,64 g,
7,5 mmol) gehandelt. Das Gemisch wurde bei 35°C für eine Dauer von 3 Tagen gerührt und
mit Dichlormethan (30 ml) extrahiert. Die organische Lösung wurde
mit gesättigter
Natriumbicarbonatlösung,
Kochsalzlösung
gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert
und das Lösungsmittel
im Vakuum abgedampft. Der Rückstand
wurde über
einer Silicagelsäule
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:3) als
Eluent chromatografiert, um 115 mg (50%) 4-Oxo-2-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H- benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 8,06 (dd,
1H, J = 6,0, 1,8 Hz), 7,95–7,80
(m, 3H), 5,02 (bs, 1H), 4,35 (bs, 1H), 3,91 (dd, 1H, J = 15,0 Hz
und J = 8,4 Hz), 3,78 (dd, 1H, J = 14,7 Hz und J = 5,7 Hz), 3,53
(t, 1H, J = 10,8 Hz), 2,74 (dd, 1H, J = 15,0 Hz und J = 7,5 Hz),
2,60–2,38
(m, 3H), 1,32 (s, 9H).
-
Einer
Lösung
von 4-Oxo-2-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)piperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
(115 mg, 0,292 mmol) in absolutem Ethanol (5 ml) wurden t-Butylcyanoacetat
(57 01, 0,41 mmol), Schwefel (13 mg, 0,41 mmol) und Morpholin (55 μl, 0,63 mmol)
zugesetzt. Die Lösung
wurde bei 50°C
für eine
Dauer von 14 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum abgedampft und der Rückstand wurde über einer
Silicagelsäule
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:4) als
Eluent chromatografiert, um 100 mg (62%) 2-Amino-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester und 2-Amino-7-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester als Gemisch
zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 8,10–8,00 (m,
1H), 7,98–7,77
(m, 2,8H), 7,66–7,58
(m, 0,2H), 6,11 (s, 0,4H), 6,06 (s, 0,6H), 5,59 (m, 0,2H), 5,39
(t, 0,3H, J = 5,7 Hz) 5,23 (bs, 0,3H), 5,04 (bs, 0,4H), 4,77 (d,
0,4H, J = 14,4 Hz), 4,60 (d, 0,4H, J = 14,4 Hz), 4,45–4,18 (m,
1H), 4,02–3,82
(m, 1,5H), 3,64 (dd, 0,5H, J = 14,7 Hz und J = 5,2 Hz), 3,30–2,60 (m,
2H), 1,54 (s, 7H), 1,53 (s, 2H), 1,26 (s, 7H), 1,21 (s, 2H).
-
Einer
gerührten
Lösung
von dem vorstehenden Gemisch aus 2-Amino-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
und 2-Amino-7-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H- thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(100 mg, 0,18 mmol) in Acetonitril (7 ml) wurde Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(290 mg, 1,46 mmol) in Acetonitril (1 ml) zugesetzt. Das Gemisch
wurde bei Raumtemperatur für
eine Dauer von 16 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand in Ethylacetat aufgenommen.
Die Lösung
wurde mit 0,5 N Salzsäurelösung, gesättigter
Natriumbicarbonatlösung, Kochsalzlösung gewaschen,
getrocknet (MgSO4) und filtriert. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand über Silicagel unter Verwendung
eines Gemischs aus Ethylacetat/Hexan (1:4) als Eluent chromatografiert,
um 98 mg (80%) eines Gemischs aus 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
und 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
als Feststoff zu erhalten.
1H-NMR (CDCl3): δ 12,60
(s, 0,3H), 12,54 (s, 0,7H), 8,12–8,06 (m, 1H), 7,98–7,80 (m,
2,8H), 7,66–7,58
(m, 0,2H), 5,83 (bs, 0,1H), 5,61 (t, 0,2H), 5,40–4,54 (m, 0,9H), 4,53–4,40 (m,
0,8H), 4,02–3,70
(m, 1,42H), 3,66 (dd, 0,58H, J = 14,7 Hz und J = 5,2 Hz), 3,30–2,99 (m,
3H), 1,68 (s, 6H), 1,62 (s, 6H), 1,60 (s, 6H), 1,31 (s, 4,5H), 1,25
(s, 4,5H);
LC-MS: Rt = 4,45; m/z: 678
[M + H]+.
-
Einer
Lösung
von Trifluoressigsäure
(4 ml) und Dichlormethan (2 ml) wurde das Gemisch aus 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
und 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1H-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(78 mg, 0,12 mmol) zugesetzt. Die Lösung wurde bei Raumtemperatur
für eine
Dauer von 24 Std. gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde dann im Vakuum eingedampft, um 50 mg (72%) der Titelverbindung
als Gemisch aus Trifluoracetaten zu erhalten.
1H-NMR
(DMSO-d6): δ 12,32 (s, 1H), 9,75–9,20 (m,
2H), 8,40 (t, 1H, J = 6,0 Hz), 8,22–8,02 (m, 3H), 5,03 (bs, 0,5H),
4,52 (d, 1H), 4,38–4,10
(m, 2H), 3,88 (bs, 0,5H), 3,70–3,64
(m, 0,5H), 3,44–3,34
(m, 0,5H), 3,20–2,90 (m,
2H).
LC-MS: Rt = 1,28 Min., m/z: 466
[M + H]+
-
BEISPIEL
48
7-(R)-Carbamoyl-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-(S)-4-Oxopiperidin-1,2-dicarbonsäure-1-tert-butylester (18,4
g, 75,6 mmol) und Triethylamin (12,65 ml, 90,79 mmol) in Tetrahydrofuran
(50 ml), gekühlt
auf –20°C, wurde
Isobutylchlorformiat (11,81 ml, 90,79 mmol) zugesetzt und das Gemisch
für eine
Dauer von 10 Min. bei –20°C gerührt, bevor
eine 25%ige Lösung
of Ammoniak in Wasser (100 ml) zugesetzt wurde. Die Temperatur wurde
bei –20°C für eine Dauer
von 30 Min. gehalten, bevor das Kühlbad entfernt wurde und man
das Reaktionsgemisch Raumtemperatur erreichen ließ und weiter
für eine
Dauer von einer weiteren Stunde gerührt wurde. Das Reaktionsgemisch wurde
mit Ethylacetat (6 × 50
ml) extrahiert, und die vereinigten organischen Phasen wurden getrocknet (MgSO4). Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand durch Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Ethylacetat) gereinigt,
um 8,51 g (46%) 2-(S)-Carbamoyl-4-oxopiperidin-1-carbonsäure-1-tert-butylester zu erhalten.
-
Eine
Lösung
von 2-(S)-carbamoyl-4-oxopiperidin-1-carbonsäure-1-tert-butylester (3,51
g, 14,48 mmol), tert-Butylcyanoacetat (2,04 g, 14,48 mmol), Schwefel
(0,464 g, 14,48 mmol) und Diisopropylethylamin (2,5 ml, 14,48 mmol)
in Metha nol (20 ml) wurde für
eine Dauer von 16 Std. at 40°C
unter N2 erwärmt. Die flüchtigen Bestandteile wurden
im Vakuum entfernt, und der Rückstand
wurde unter Verwendung von Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Petrolether/Ethylacetat
3:1) gereinigt, um 1,33 g (23%) eines Gemischs aus 2-Amino-5-(S)-carbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester- und 2-Amino-7-(R)-carbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylesterisumeren
zu erhalten.
-
0,5
g (1,25 mmol) des vorstehenden Gemischs wurden in Dichlormethan
(10 ml) gelöst,
und Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(0,74 g, 3,77 mmol) und Triethylamin (525 μl, 3,77 mmol) wurden zugesetzt.
Das Reaktionsgemisch wurde für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt, bevor die flüchtigen
Bestandteile im Vakuum entfernt wurden. Der Rückstand wurde durch Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Petrolether/Ethylacetat
(4:1)) gereinigt, um 75 mg (11%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(R)-carbamoyl-4,7-dithydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
-
Dieser
wurde in einem Gemisch aus Trifluoressigsäure/Dichlormethan (1:1) (10
ml) gelöst
und für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt, bevor das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand
wurde aus Methanol umkristallisiert, um 24 mg (39%) der Titelverbindung
zu erhalten.
LC-MS; Rt = 1,56 Min.,
m/z: 314 [M + H]+
Berechnet für C11H11N3O6S, 0,25 × C2HF3O2, 0,75 × H2O
C, 38,88%; H, 3,62%; N, 11,83%; Gefunden:
C,
38,92%; H, 3,92%; N, 11,81%.
-
BEISPIEL
49 (nicht erfindungsgemäß)
2-(Oxalylamino)-5-(S)-(2-oxotetrahydrothiophen-3-ylcarbamoyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 2-Amino-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,5-(S),6-tricarbonsäure-3,6-di-tert-butylester
(0,30 g, 0,75 mmol) und Triethylamin (0,21 ml, 1,51 mmol) in Tetrahydrofuran
(10 ml) wurde auf –20°C abgekühlt, bevor
Isobutylchlorformiat (103 μl,
0,75 mmol) zugesetzt wurde. Das Reaktionsgemisch wurde für eine Dauer
von 15 Min. bei –20°C gerührt, bevor
Homocystein-Hydrochlorid
(116 mg, 0,75 mmol) zugesetzt wurde. Das Kühlbad wurde entfernt und das
Reaktionsgemisch für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur stehen gelassen. Das Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand wurde einer Säulenchromatagrafie
(SiO2, Flash 40, Heptan/Ethylacetat 2:1)
unterzogen, um 212 mg (56%) 2-Amino-5-(S)-(2-oxotetrahydrothiophen-3-ylcarbamoyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
-
Eine
Lösung
von 2-Amino-5-(S)-(2-oxotetrahydrothiophen-3-ylcarbamoyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
(200 mg, 0,40 mmol), Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester (235 mg,
1,20 mmol) und Triethylamin (168 μl,
1,20 mmol) in Dichlormethan (10 ml) wurde für eine Dauer von 16 Std. bei
Raumtemperatur gerührt,
bevor das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand
wurde durch Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Heptan/Ethylacetat 2:1)
gereinigt, um 250 mg (100%) 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-(2-oxotetrahydrothiophen-3-ylcarbamoyl)-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
-
Dieser
wurde gelöst
in einem Gemisch aus Trifluoressigsäure/Dichlormethan (1:1) (3
ml) gelöst
und für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt, bevor Diethylether (6
ml) zugesetzt wurde. Der Niederschlag wurde abfiltriert und mit
Diethylether gewaschen, um 172 mg (81%) der Titelverbindung als
festes Trifluoracetat zu erhalten.
LC-MS; Rt =
0,41 Min., m/z: 414 [M + H]+
Berechnet
für C15H15N3O7S2, 1,5 × C2HF3O2,
H2O;
C, 35,88%; H, 3,10%; N, 6,97%;
Gefunden:
C, 35,91%; H, 3,54%; N, 6,97%.
-
BEISPIEL
50
2-(Oxalylamino)-5-(S)-phenylcarbamoyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Eine
Lösung
von 2-Amino-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,5-(S),6-tricarbonsäure-3,5-di-tert-butylester
(300 mg, 0,75 mmol) und Triethylamin (210 μl, 1,51 mmol) in Tetrahydrufuran
(10 ml) wurde auf –20°C abgekühlt, bevor
Isobutylchlorformiat (103 mg, 0,75 mmol) eingebracht wurde. Das
Reaktionsgemisch wurde für
eine Dauer von 20 Min. gerührt,
bevor Anilin (70 mg, 0,75 mmol) zugesetzt wurde. Das Kühlbad wurde
entfernt und die Reaktion für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur stehen gelassen, bevor
das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand
wurde zwischen Ethylacetat (50 ml) und Wasser (50 ml) aufgeteilt.
Die organische Phase wurde getrocknet (MgSO4)
und das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt. Der Rückstand
wurde in Dichlormethan (10 ml) gelöst, und Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(443 mg, 2,26 mmol) und Triethylamin (315 μl, 2,26 mmol) wurden zugesetzt.
Das Reaktionsgemisch wurde für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt, bevor das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand
wurde durch Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Heptan/Ethylacetat (3:1))
gereinigt, um 250 mg 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-phenylcarbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-phenylcarbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
wurde in einem Gemisch aus Trifluoressigsäure/Dichlormethan (1:1) (3
ml) gelöst
und für
eine Dauer von 16 Std. bei Raumtemperatur gerührt, bevor Diethylether (6
ml) zugesetzt wurde. Der Niederschlag wurde abfiltriert und mit
Diethylether gewaschen, um 155 mg (41%) der Titelverbindung als
festes Trifluoracetat zu erhalten.
LC-MS; Rt =
0,86 Min., m/z: 390 [M + H]+
Berechnet
für C17H15N3O6S, 1,5 × C2HF3O2,
H2O;
C, 41,53%; H, 3,22%; N, 7,26%;
Gefunden:
C, 41,77%; H, 3,29%; N, 7,28%.
-
BEISPIEL
51
2-(Oxalylamino)-7-(R)-phenylcarbamoyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Einer
Lösung
von 2-(S)-4-Oxopiperidin-1,2-dicarbonsäure-1-tert-butylester (2,06
g, 8,47 mmol) und Triethylamin (1,42 ml, 10,16 mmol) in Tetrahydrofuran
(20 ml), abgekühlt
auf –20°C, wurde
Isobutylchlorformiat (1,39 g, 10,16 mmol) zugesetzt und das Gemisch
für eine
Dauer von 10 Min. bei –20°C gerührt, bevor
Anilin (946 mg, 10,16 mmol) zugesetzt wurde. Das Kühlbad wurde
entfernt und das Reaktionsgemisch für eine Dauer von 16 Std. bei
Raumtemperatur gerührt,
bevor das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand wurde
zwischen Wasser (50 ml) und Ethylacetat (50 ml) aufgeteilt. Die
organische Phase wurde mit gesättigter Natriumchloridlösung (25
ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4). Nach
Filtration und Einengen im Vakuum wurde der Rückstand wurde unter Verwendung
von Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Petrolether/Ethylacetat
5:1) gereinigt, um 1,3 g (48%) 4-Oxo-2-(S)-phenylcarbamoylpiperidin-1-carbonsäure-tert-butylester
zu erhalten.
-
Eine
Lösung
von 4-Oxo-2-(S)-phenylcarbamoylpiperidin-1-carbonsäure-tert-butylester (1,3 g,
4,08 mmol), tert-Butylcyanoacetat (0,58 g, 4,08 mmol), Schwefel
(0,133 g, 4,08 mmol) und Diisopropylethylamin (0,7 ml, 4,08 mmol)
in Methanol (10 ml) wurde unter Stickstoff auf 40°C für eine Dauer
von 16 Std. erwärmt, bevor
das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt wurde. Der Rückstand
wurde einer Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Petrolether/Ethylacetat
6:1) unterzogen, um 0,70 g (36%) eines Gemischs aus 2-Amino-5-(S)-phenylcarbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäure-di-tert-butylester-
und 2-Amino-7-(R)-phenylcarbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylesterisomeren zu
erhalten.
-
Das
vorstehende Gemisch wurde in Dichlormethan (20 ml) gelöst, und
Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(872 mg, 4,44 mmol) und Triethylamin (618 μl, 4,44 mmol) wurden zugesetzt.
Das Reaktionsgemisch wurde für
eine Dauer von 16 Std. gerührt,
bevor das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt und der Rückstand
einer Säulenchromatografie
(SiO2, Flash 40, Petrolether/Ethylacetat
5:1) unterzogen wurde, um 0,50 g (56%) als Gemisch aus 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-5-(S)-phenylcarbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester und 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-7-(R)-phenylcarbamoyl-4,7-dihydro-5H-thieno[2,3-c]pyridin-3,6-dicarbonsäuredi-tert-butylester
zu erhalten.
-
300
mg des Gemischs wurden in einem Gemisch aus Trifluoressigsäure/Dichlormethan
(1:1) (6,0 ml) gelöst,
und die Lösung
wurde für
eine Dauer von 16 Std·s
bei Raumtemperatur gerührt,
bevor das Lösungsmittel
im Vakuum ent fernt wurde. Der Rückstand
wurde auf präparativer
HPLC gereinigt, um 70 mg (34%) der Titelverbindung als festes Trifluoracetat
zu erhalten.
LC-MS; Rt = 0,95 Min.,
m/z: 390 [M + H]+
Berechnet Für C17H15N3O6S, C2HF3O2, H2O;
C, 43,77%;
H, 3,48%; N, 8,06%; Gefunden:
C, 43,92%; H, 3,44%; N, 7,97%.
-
BEISPIEL
52
5-(R),7-(R)-Bisbenzyloxymethyl-2-(oxalylamino)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
Benzyloxyacetaldehyd
(0,90 g; 6,0 mmol) und Dimethyl(2-oxomethyl)phosphonat (1,0 g; 6,0
mmol) wurden in einem Gemisch aus Tetrahydrofuran (25 ml) und Wasser
(20 ml) gelöst.
1 N wässrige
Kaliumhydroxidlösung
(6 ml) wurde zugesetzt und das Gemisch für eine Dauer von 30 Min. gerührt. Dichlormethan
(50 ml) wurde zugesetzt und die organische Phase abgetrennt, getrocknet
(MgSO4) und im Vakuum eingedampft, um 5-Benzyloxypent-3-en-2-on
zu hinterlassen.
1H-NMR (CDCl3): δ 2,25
(s, 3H); 4,19 (dd, 2H); 4,55 (s, 2H); 6,34 (dt; 1H); 6,70 (dt, 1H);
7,26 (m, 5H).
-
5-Benzyloxypent-3-en-2-on
wurde in Methanol (5 ml) gelöst,
und Ammoniumacetat (13 mmol, 1,03 g) wurde mit Benzyloxyacetaldehyd
(1,8 g; 12 mmol) und Essigsäure
(0,69 ml) vermischt und das Gemisch für eine Dauer von 2 Tagen ge rührt. Das
Lösungsmittel
wurde im Vakuum entfernt und der Rückstand wurde über Silica
unter Verwendung einer Gradientelution aus 100% Dichlormethan bis
100% Ethylacetat chromatografiert. Eine Fraktion (411 mg) enthielt
(gemäß LC-MS; m/z 340,4) 2,5-Di(benzyloxymethyl)-4-piperidon
in unreinem Zustand wurde isoliert. Das Rohgemisch wurde in Ethanol
(3 ml) gelöst,
und tert-Butylcyanoacetat
(400 mg), Schwefel (100 mg) und Triethylamin wurden zugesetzt, und
das Gemisch wurde bei Raumtemperatur über Nacht gerührt. Das
Gemisch wurde filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum entfernt.
Der Rückstand wurde über Silica
in einem Gemisch aus Dichlormethan/(7% von 25%igem wässrigem
Ammoniak in Ethanol) (40:1) chromatografiert, um 0,14 g 2-Amino-5-(R),7-(R)-bisbenzyloxymethyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu erhalten.
LC-MS: Rt: 6,03 Min.;
m/z: 495,2 [M + H]+
-
2-Amino-5-(R),7-(R)-bisbenzyloxymethyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(0,14 g; 0,28 mmol) wurde in Dichlormethan (5 ml) gelöst und mit
Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(0,1 g; 0,5 mmol) und Triethylamin (70 μl; 0,5 mmol) behandelt und über Nacht
gerührt,
mit Wasser gewaschen, getrocknet (MgSO4)
und das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt. Der Rückstand über Silica
unter Verwendung von Ethylacetat/Dichlormethan (1:3) als Eluent
chromatografiert. Der Rückstand
wurde mit Trifluoressigsäure
(0,5 ml) in Dichlormethan (0,5 ml) behandelt und für eine Dauer
von 4 Std. gerührt.
Durch Abdampfen des Lösungsmittels
im Vakuum wurden 37 mg der Titelverbindung erhalten.
LC-MS:
Rt: 4,74 Min.; m/z: 511,4 [M + H]+.
-
BEISPIEL
53
6-Benzyl-2-(oxalylamino)-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1,6-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure
-
1-Benzyl-4-oxo-piperidin-2-carbonsäureethylester
(2,9 g; 11,1 mmol) (hergestellt in einer ähnlichen Weise wie beschrieben
in „GENERAL
CHIRAL SYNTHESIS" für 4-Oxo-1-((S)-1-phenylethyl)piperidin-(R)-2-carbonsäureethylester
unter Verwendung von Benzylamin statt 1-(S)-Phenethylamin) wurde
in abs. Ethanol (50 ml) gelöst,
und Schwefel (0,35 g, 11,1 mmol), Triethylamin (1,6 ml, 11,1 mmol)
und tert-Butylcyanoacetat (1,7 g, 11,1 mmol) wurden zugesetzt, und
das Gemisch wurde für
eine Dauer von 2 Tagen bei Raumtemperatur gerührt. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum
entfernt und der Rückstand über Silica
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Heptan (1:4) as
Eluent chromatografiert, um ein Gemisch (700 mg; 1:1 auf NMR-Basis)
aus 2-Amino-6-benzyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,7-dicarbonsäure-3-tert-butylester-7-ethylester
und 2-Amino-6-benzyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3,7-dicarbonsäure-3-tert-butylester-5-ethylester
zu hinterlassen, das ohne Auftrennung im nächsten Schritt verwendet wurde.
Diesem Gemisch wurden Tetrahydrofuran (5 ml) und Lithiumborhydrid
(1,1 ml einer 2 M Lösung
in Tetrahydrofuran) zugesetzt und das Gemisch für eine Dauer von 18 Std. gerührt. Mehr
Lithiumborhydrid (5,0 ml einer 2 M Lösung in Tetrahydrofuran) wurde
zugesetzt und das Gemisch für
eine Dauer von zusätzlichen
4 Tagen gerührt.
Ethylacetat (10 ml) wurde zugetropft, und nach 1 Std. wurde das
Gemisch auf Wasser (100 ml) gegossen und mit Dichlormethan (2 × 100 ml)
extrahiert und über
Silica (unter Verwendung von Ethylacetat/Heptan 1:1 als Eluent)
chromatografiert, um ein Gemisch aus 2-Amino-6-benzyl-7-hydroxymethyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester und 2-Amino-6-benzyl-5-hydroxymethyl-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3- c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(insgesamt 187 mg) zu erhalten. Diesem Gemisch wurden trockenes
Tetrahydrofuran (10 ml), 2,3-Dihydro-1,2-benzisothiazol-3-on-1,1-dioxid (100
mg; 0,55 mmol), Triphenylphosphin (144 mg 0,55 mmol) zugesetzt,
und das Gemisch wurde mit Eis gekühlt. Diethylazodicarboxylat
(86 μl)
wurde zugesetzt und das Gemisch über
Nacht bei Raumtemperatur gerührt.
Das Lösungsmittel wurde
im Vakuum eingedampft und der Rückstand über Silica
unter Verwendung eines Gemischs aus Ethylacetat/Heptan (1:1) als
Eluent chromatografiert, um 94 mg 2-Amino-6-benzyl-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1,6-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
zu hinterlassen.
1H-NMR: (CDCl3): δ 1,52
(s, 9H); 2,75 (dd, 1H); 2,90 (dd, 1H); 3,55 (d, 1H); 3,72 (m, 4H);
3,94 (d, 1H); 4,12 (d, 1H); 5,97 (s, 2H); 7,14–7,37 (m, 5H); 7,80–8,03 (m,
4H).
LC-MS: Rt 5,47 Min., m/z: 540,4
[M + H]+
-
2-Amino-6-benzyl-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1,6-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(94 mg; 0,17 mmol) wurde in Dichlormethan (5 ml) gelöst und mit
Imidazol-1-yl-oxoessigsäure-tert-butylester
(0,07 g; 0,3 mmol) und Triethylamin (49 μl; 0,3 mmol) behandelt und über Nacht
gerührt,
mit Wasser, 1 N wässriger
Zitronensäure
gewaschen, getrocknet (MgSO4) und das Lösungsmittel
im Vakuum entfernt, um 104 mg 2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-benzyl-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1,6-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
als Öl
zu hinterlassen.
LC-MS: Rt: 5,50 Min.,
m/z: 668,6 [M + H]+
-
2-(tert-Butoxyoxalylamino)-6-benzyl-5-(1,1,3-trioxo-1,3-dihydro-1,6-benzo[d]isothiazol-2-ylmethyl)-4,5,6,7-tetrahydrothieno[2,3-c]pyridin-3-carbonsäure-tert-butylester
(100 mg; 0,15 mmol) wurde mit Trifluoressigsäure (1 m) in Dichlormethan
(4 ml) behandelt und für
eine Dauer von 2 Tagen gerührt.
Durch Abdampfen des Lösungsmittels
im Vakuum wurden 90 mg der Titelverbindung als festes Trifluoracetat
erhalten.
Ber. für
C25H21N3O8S2, 1,5 × C2HF3O2,
0,5 × H2O
C, 45,72%; H, 3,22%; N, 5,71%. Gefunden:
C,
45,48%; H, 3,46%; N, 5,72%
LC-MS: Rt:
4,16 Min.; m/z: 556,2 [M + H]+