DE4430637A1 - Neue Brassica oleracea Pflanzen - Google Patents
Neue Brassica oleracea PflanzenInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft das Erhalten von Brassica ole
racea Pflanzen, die cytoplasmatische männliche Sterilität zeigen
(CMS). insbesondere bezieht sich die Erfindung auf das Einführen
von CMS in kommerziell erwünschte Pflanzen von B. oleracea.
Männliche Sterilität ist bei der Hybridsamenzüchtung von
B. oleracea nützlich, da normale B. oleracea Pflanzen Blüten her
vorbringen, die sich häufig selbst bestäuben. Sterile männliche
Pflanzenlinien bringen keinen lebensfähigen Pollen hervor und sind
nicht fähig sich selbst zu bestäuben. Die Eliminierung von Pollen
in einer Elterpflanze bei einer Kreuzung stellt sicher, daß der
Pflanzenzüchter Hybridsamen von einheitlicher Qualität erhält. In
der Vergangenheit haben kommerzielle Hersteller von Hybridsamen
nukleare Selbst-Inkompatibilitäts-Systeme benutzt, um Selbstbe
stäubung während der Samenproduktion zu vermeiden, jedoch können
solche Systeme unreine Hybridsamen-Chargen zum Ergebnis haben.
Weitere Nachteile solcher Systeme sind, daß sie zeit- und
arbeitsaufwendig sind.
Züchter sind auf andere Methoden umgestiegen, um männliche Steri
lität in B. oleracea Pflanzen einzuführen. Ein System ist in GB-A
2 211 205 beschrieben, worin B. oleracea Protoplasten, die einen
inaktivierten Nukleus enthalten und Ogura CMS Cytoplasma besitzen,
mit Protoplasten von B. oleracea fusioniert werden, die einen
funktionellen Nukleus und Kälte-tolerante Chloroplasten besitzen.
So erhaltene allogene Zellen, werden zu Pflanzen regeneriert, die
dann dazu verwendet werden könnten, durch Anwendung von in vitro
und/oder Kreuzungs-Techniken andere cytoplasmatisch männlich ste
rile B. oleracea Pflanzen herzustellen, die einen B. oleracea
Nukleus und B. oleracea Chloroplasten und Mitochondrien des CMS
Ogura Cytoplasmas besitzen. So wurde männliche cytcplasmatische
Sterilität erfolgreich auf kommerzielle Varietäten übertragen. Je
doch hat dieses Verfahren auch Nachteile. Pflanzen, die durch die
Erfindung von GB-A 2 211 205 erhalten werden, zeigen eine gewisse
Buntheit im Blatt, die durch weitere Züchtungsschritte herausge
züchtet werden muß. Darüber hinaus sind die Nektarien von Pflanzen
von GB-A 2 211 205 im allgemeinen nicht so gut entwickelt, wie die
Nektarien von nicht Ogura CMS enthaltenden B. oleracea Pflanzen,
und diese Unterentwicklung kann eine sub-optimale Samenausstattung
in solchen Pflanzen zur Folge haben.
Es besteht die Notwendigkeit ein alternatives Verfahren zu CMS
B. oleracea Pflanzen bereitzustellen, das die oben zusammengefaß
ten Nachteile nicht aufweist.
Eine Quelle von CMS ist die von CMS Brassica juncea (CMSj), Brown
Mustard, ein amphidiploides Produkt von monogenomischen Eltern B.
campestris und B. nigra. Diese CMS Quelle ist seit einigen Jahren
bekannt. Auch wurde beschrieben, daß das Genom von B. napus in das
Cytoplasma von B. juncea übertragen wurde (R. Mathias (1985) Z.
pflanzenzuchtig. 95 : 371-374), wodurch CMSj B. napus Pflanzen her
gestellt wurden. Jedoch wurden CMSj B. napus Pflanzen bisher nicht
in der kommerziellen Herstellung von Hybridsamen von B. napus ver
wendet, da die Herstellung von Hybridsamen durch den teilweise al
logamen Charakter dieser Feldfrucht behindert wird. Es ist nicht
bekannt, daß solche Pflanzen, sei es für experimentelle oder kom
merzielle Zwecke, bisher verwendet wurden, um B. oleracea Pflanzen
zu erhalten.
Es wurde nun erkannt, daß CMS B. oleracea Pflanzen, die Mito
chondrien des CMSj Cytoplasmas enthalten, nicht die Nachteile be
sitzen, die man bei den CMS Pflanzen beobachten kann, die Ogura
Cytoplasma besitzen.
Ein Ziel der vorliegenden Erfindung ist CMS B. oleracea Pflanzen
bereitzustellen, die die Mitochondrien des CMSj Cytoplasmas ent
halten.
Mit dem Ausdruck "Pflanze" ist die Pflanze als Ganzes oder jeder
Teil oder Teile hiervon gemeint. Die Teile können entweder ver
mehrbar, beispielsweise ein Steckling, oder ein eßbarer Teil sein.
Eßbare Teile beinhalten die Teile, die typischerweise in den
Frischproduktregalen von Supermärkten und dergleichen oder an die
Dosen- und/oder Picklesindustrie verkauft werden. Solche eßbaren
Teile beinhalten, sind aber nicht beschränkt auf Pflanzenteile, wie
Rosenkohlknospen, Broccoliköpfe oder Broccoliröschen und/oder
Sprosse, Blumenkohlköpfe, Blumenkohlröschen, Kohlköpfe, Kohlblät
ter und dergleichen.
Der Ausdruck CMSj, wie er nachstehend verwendet wird, bezieht sich
auf Cytoplasma, daß von Brassica juncea abstammt und Brassica
juncea Mitochondrien enthält und das, wenn es in Brassica oleracea
Pflanzen vorkommt, männliche Sterilität verleiht. Der Ausdruck CMSj
Brassica oleracea Pflanze oder Pflanzenmaterial, wie er im nach
folgenden verwendet wird, bezieht sich auf Brassica oleracea
Pflanzen oder Pflanzenmaterial, das CMSj Cytoplasma enthält. Die
ses CMSj Cytoplasma enthält natürlich auch Brassica juncea Chloro
plasten.
Der Ausdruck Hybridsamen, wie er im nachfolgenden verwendet wird,
bezieht sich auf F1 Hybridsamen und Samen von Pflanzenmaterial,
das von diesem abstammt.
Die vorliegende Erfindung ist insbesondere für das Erhalten von
CMS in den folgenden Brassica oleracea-Pflanzen geeignet:
- 1. Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var. botrytis J. (Blumenkohl)
- 2. Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. alba DC (Weißkohl)
- 3. Brassica oleracea L. convar. gemmifera DC (Rosenkohl)
- 4. Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var. sabellica L. (Krauskohl)
- 5. Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. sabauda L. (Wirsingkohl;
- 6. Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. rubra DC (Rotkohl)
- 7. Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var. gongylodes (Kohlrabi)
- 8. Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var. ithalica (Broccoli)
und vor allem in Blumenkohl, Weißkohl, Rosenkohl und Broccoli der
oben angegebenen Art. Verständlicherweise beziehen sich die Bras
sica Arten, auf die oben unter 1 bis 8 Bezug genommen wird, in
allgemeiner Weise auf Brassica Arten. Beispielsweise bezieht sich
Punkt 8, Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var.
ithalica, auf Broccoli Pflanzen, ob sie violette oder grüne
Sprosse besitzen oder auf andere Broccoli Arten.
Als weitere Ausführungsform der Erfindung wird ein Verfahren zur
Herstellung von B. oleracea Pflanzen geliefert, die zumindest das
Merkmal der CMSj enthalten, wobei das Verfahren umfaßt
- i) Durchführung einer anfänglichen Kreuzung zwischen einer CMSj enthaltenden Brassica Pflanze und einer B. oleracea Pflanze;
- ii) Entnahme von Embryomaterial der beschriebenen Kreuzung und Regeneration einer Pflanze hieraus; und
- iii) Auswahl regenerierter Pflanzen und Durchführung wiederholter Rückkreuzungen mit ausgewählten Nachkommen hiervon bis B. oleracea Pflanzen erhalten werden, die normales Samengut und zumindest in bezug auf das Merkmal der männlichen Sterilität phänotypische Uniformität zeigen.
Die CMSj besitzenden Brassica Pflanzenarten, die in der anfängli
chen Kreuzung verwendet werden, können irgendeine Pflanzenart aus
der Familie der Brassicaceae sein, die für die Kompatibilität mit
einer B. oleracea Pflanze geeignet ist. Das bedeutet, daß eine
CMSj besitzende Pflanze, wenn sie mit einer B. oleracea Pflanze
gekreuzt wird, lebensfähige Nachkommen hervorbringen sollte, aus
denen die Auswahl für Pflanzen getroffen werden kann, die in einem
Züchtungsprogramm verwendet werden können, um letztendlich CMSj
enthaltende B. oleracea Pflanzen zu erhalten. Beispiele für Bras
sica Pflanzen, die CMSj enthalten, sind B. juncea und CMSj
B. napus. Die CMSj Brassica Pflanze ist die weiblich fertile,
männlich sterile Pflanze (das heißt der weibliche Elter) in der
anfänglichen Kreuzung. Die B. oleracea Pflanze mit der gekreuzt
wird ist die weiblich fertile, männlich fertile Pflanze (das heißt
der männliche Elter). Der zur Kreuzung verwendete B. oleracea
Pflanzenpartner kann jede Pflanze sein, die aus einem landwirt
schaftlich bedeutenden Pflanzentypus ausgewählt wurde, wie Blumen
kohl, Broccoli, Kohl (roter, weißer oder grüner), Kohlrabi, Rosen
kohl und dergleichen.
Das Embryomaterial kann den ganzen Embryo beinhalten oder ein Teil
hiervon, oder Material, das hieraus hervorgeht, (beispielsweise
Kallus Material) soweit es fähig ist, mittels im Fachgebiet
verwendeter Techniken kultiviert und zu einer B. oleracea Pflanze
regeneriert zu werden. Das Embryomaterial ist typischerweise ein
ganzer Embryo, der von der samenhülle durch Embryo-Rescue-Technik
getrennt wird, die im Fachgebiet gut bekannt ist. Ein Beispiel für
Embryo-Rescue-Techniken und die Regeneration von B. oleracea
Pflanzen wird später beschrieben (Beispiel 1).
Ausgewählte Nachkommen in Schritt iii), die für den Züchter wün
schenswerte Merkmale zeigen, werden wiederholten Rückkreuzungen
mit B. oleracea Pflanzen unterworfen, die die gleichen oder an
dere, für den Züchter interessante Merkmale zeigen, solange, bis
zumindest das Merkmal der männlichen Sterilität einheitlich in den
Nachkommen der B. oleracea Pflanzen eingeführt ist. Auf diese
Weise sind die erhaltenen Pflanzen zumindest in Bezug auf das
Merkmal der männlichen Sterilität phänotypisch einheitlich. Typi
scherweise erfordert die einheitliche Vererbung zumindest des
Merkmals der männlichen Sterilität, wenigstens 2 Rückkreuzungen.
Gewöhnlich führt der Züchter in Abhängigkeit von der B. oleracea
Pflanzenart, die von Interesse ist, ungefähr 4 Rückkreuzungen, vor
zugsweise wenigstens 6 Rückkreuzungen durch. Der Züchter wird
ebenso nach normalem Samengut suchen, das er aus B. oleracea
Pflanzen erhält, das ihm zeigt, daß die erhaltenen Pflanzen im
Phänotyp mit dem für B. oleracea typischen übereinstimmen. Norma
les Samengut bedeutet Samengut, das gleich ist zu dem Samengut des
elterlichen Rückkreuzungspartners das heißt dem weiblich ferti
len, männlich fertilen Elter. Der Züchter wird sich auch für an
dere Merkmale interessieren, um sie in die erhaltenen männlich
sterilen B. oleracea Pflanzen einzuzüchten, und es kann eine län
gere Zeit von Rückkreuzungen in Anspruch nehmen, solche Merkmale
stabil in erfindungsgemäße B. oleracea Pflanzen einzuzüchten. Zu
solchen Merkmalen gehören unter anderem beispielsweise, die Kopf
oder Markqualität (curd quality), und/oder der Selbstschutz beim
Blumenkohl, die innere Qualität und/oder Farbe von Rotkohl, das
Stehvermögen von Rosenkohl, Krankheitsresistenz, Pflanzenaufbau,
Frühzeitigkeit und dergleichen.
Es folgt nun eine allgemeine Beschreibung, auf welche Weise erfin
dungsgemäße B. oleracea Pflanzen erhalten werden können.
CMSj B. oleracea Pflanzen können erhalten werden durch Kreuzen von
CMSj B. napus, als weiblichen Elter, mit B. oleracea als männli
chen Elter, und Anwendung der Embryo-Rescue-Technik auf sich ent
wickelnde Embryos, Regenerierung von Pflanzen aus ausgewählten Em
bryos, gefolgt von der Rückkreuzung von ausgewählten Pflanzen, die
die erwünschten Merkmale zeigen, mit B. oleracea Pflanzen, die
ähnliche und/oder wünschenswerte zusätzliche Merkmale zeigen, so
lange bis ein für B. oleracea Pflanzen typisches, normales Samen
gut beobachtet wird, das heißt es zeigt einen für B. oleracea ty
pischen Ploidiegrad. Vorzugsweise ist die B. oleracea Pflanze di
ploid, das heißt 2n=2x=18. Solche normales Samengut enthaltenden
B. oleracea Pflanzen werden wiederholt mit B. oleracea Pflanzen
rückgekreuzt, die ähnliche und/oder wünschenswerte zusätzliche
Merkmale besitzen, wenigstens bis zur zweiten Rückkreuzung, vor
zugsweise wenigstens bis zur sechsten Rückkreuzung. Ist das Merk
mal der männlichen Sterilität einmal einheitlich in eine B. olera
cea Pflanze eingeführt, kann diese Pflanze oder dieses Pflanzenma
terial weiter eingesetzt werden, beispielsweise zur Rückkreuzung
mit Pflanzen ihrer eigenen Art, oder sie kann mit verschiedenen
Pflanzentypen von B. oleracea gekreuzt werden, um das Merkmal der
männlichen Sterilität in andere B. oleracea Pflanzentypen einzu
führen. Beispielsweise kann männlich steriler Broccoli aus der
dritten oder einer späteren Rückkreuzung mit Blumenkohl gekreuzt
werden, und durch die Anwendung von wiederholter Rückkreuzung mit
Blumenkohl kann cytoplasmatische männliche Sterilität in Blumen
kohl eingeführt werden. CMSj Kohl (roter, weißer oder grüner), Ro
senkohl, Kohlrabi, Krauskohl und dergleichen können auf ähnliche
Weise erhalten werden. Embryo-Rescue-Technik und Kreu
zungstechniken sind dem erfahrenen Züchter gut bekannt.
Die Nachkommen der anfänglichen Kreuzung können so mehrere mögli
che Wege einschlagen, einschließlich der oben beschriebenen und im
folgenden zusammengefaßten:
- 1) Sie können mit dem B. oleracea Elter gekreuzt werden. Solch eine Kreuzung ist eine Rückkreuzung und würde den Effekt haben, daß sich die Merkmale des B. oleracea Elters in der nächsten Generation anreichern.
- 2) Sie können mit einer Pflanze der selben Art oder Unterart wie der B. oleracea Elter gekreuzt werden, entweder um neue Merkmale einzuführen oder um den Erbteil von bestimmten Merkmalen dieser Unterart zu verstärken.
- 3) Sie können mit einer Pflanze einer Art oder Unterart gekreuzt werden, die sich von der Art oder Unterart des B. oleracea Elters unterscheidet. Solch eine Kreuzung würde die Wirkung haben, daß weiter neue Merkmale eingeführt werden.
- 4) Sie können mit einer Pflanze gekreuzt werden, die selbst das Produkt einer oder mehrerer Kreuzungen ist.
Solche Züchtungsprogramm sind kumulativ und erstrecken sich über
eine Reihe von Jahren, wobei in jedem Stadium des Programms eine
sorgfältige Auswahl stattfindet.
Selbstverständlich müssen solche Züchtungsprogramme so ausgewählt
werden, daß B. oleracea erhalten werden, die die Chloroplasten und
Mitochondrien von B. juncea und einen Nukleus von B. oleracea
Pflanzen enthalten.
Selbstverständlich erkennt der Züchter, daß das Embryomaterial der
anfänglichen Kreuzung durch Embryo-Rescue-Techniken erhalten und
zu Pflanzen regeneriert werden kann, oder daß Pflanzen aus Samen
erhalten werden können, der aus der anfänglichen Kreuzung stammt.
Vorzugsweise werden Produktpflanzen der anfänglichen Kreuzung aus
Embryomaterial entwickelt, da die Anzahl möglicher Pflanzen, unter
denen eine Auswahl getroffen werden kann, relativ groß ist, verg
lichen mit der Größe der Auswahl, die von Pflanzen getroffen wer
den kann, die durch konventionelle Samenpflanzung und Pflanzenaus
wahlverfahren wachsen.
Die obige Beschreibung erläutert allgemein die vorliegende Erfin
dung. Ein umfassenderes Verständnis der Erfindung kann durch Be
zugnahme auf die folgenden Beispiele erhalten werden. Selbstver
ständlich dienen die folgenden Beispiele nur der Veranschaulichung
der Erfindung und sollen den Schutzumfang der Erfindung nicht be
schränken.
Zwölf bis fünfzehn Tage nach Kreuzung einer CMSj B. napus
(weiblicher Elter) mit einer B. oleracea (männlicher Elter), wer
den die Ovarien, die Zeichen von Wachstum zeigen, das heißt die
Frucht beginnt anzuschwellen und härter zu werden und hat eine
grünliche Färbung, geerntet und desinfiziert durch kurzes Eintau
chen in 70% Alkohol für eine Minute, gefolgt von einer Inkubation
der Ovarien in einer eingewichtsprozentigen NaOCl-Lösung für 10
Minuten, gefolgt von zweimaligem Spülen in sterilisiertem Wasser,
5 Minuten pro Spülung. Der sich entwickelnde Samen wird dann unter
einem Seziermikroskop (geringe Vergrößerung) in einer Sterilbank
entfernt, und der Embryo von der Samenhülle entfernt.
Einzelne Gruppen von 15-30 Embryonen werden dann zusammen mit 25
ml flüssigem White A Medium in 75 ml Erlenmeyerkolben für 7-20
Tage bei etwa 15°C inkubiert, mit 16 Stunden Licht pro Tag. Das
White A Medium enthält pro Liter:
1 l filtriertes oder destilliertes Wasser
0,94 g Whites Basissalzmischung (im Handel erhältlich von Sigma Chemicals, USA)
80 g Saccharose
400 mg Caseinhydrolysat (im Handel erhältlich von Sigma Chemicals, USA)
pH Einstellung auf 5,8 ± 0,2 vor dem Autoklavieren und Einfüllen in die Erlenmeyerkolben.
1 l filtriertes oder destilliertes Wasser
0,94 g Whites Basissalzmischung (im Handel erhältlich von Sigma Chemicals, USA)
80 g Saccharose
400 mg Caseinhydrolysat (im Handel erhältlich von Sigma Chemicals, USA)
pH Einstellung auf 5,8 ± 0,2 vor dem Autoklavieren und Einfüllen in die Erlenmeyerkolben.
Wenn die Embryonen nach 7-20 Tagen ± 1,5 mm lang sind, werden sie
von flüssigem White A Medium auf 25 ml festes White B Medium in 75
ml Kolben umgesetzt; ein Embryo pro Kolben, für 14-21 Tage, bei
22°C mit 16 Stunden Licht pro Tag, das heißt bis zur Kallusbil
dung.
Das feste White B Medium enthält pro Liter:
1 l filtriertes oder destilliertes Wasser
0,94 g White Basissalzmischung (Sigma Chemicals, USA)
20 g Saccharose
pH Einstellung auf 5,8 ± 0,2 vor Zugabe von 8 g Agar (im Handel erhältlich von Merck, NL), anschließend in den Kolben, vor der Zugabe der Embryonen autoklavieren.
1 l filtriertes oder destilliertes Wasser
0,94 g White Basissalzmischung (Sigma Chemicals, USA)
20 g Saccharose
pH Einstellung auf 5,8 ± 0,2 vor Zugabe von 8 g Agar (im Handel erhältlich von Merck, NL), anschließend in den Kolben, vor der Zugabe der Embryonen autoklavieren.
Sobald Kallus-Wurzelmaterial sichtbar wird, werden die Wurzel-aus
bildenden Kali von festem White B Medium auf festes O-Medium
überführt (einer pro Gefäß) und für 3 Wochen bei 22°C mit 16 Stun
den Licht pro Tag darin stehengelassen. Alle 3 Wochen wird das O-
Medium durch frisches O-Medium ersetzt. Weiteres neues Pflanzenma
terial erscheint nach 28-60 Tagen.
Festes O-Medium enthält pro Liter:
4,42 g/l MS-Macro Elemente (im Handel erhältlich von Duchefa BV, NL)
1,00 ml MS-Micro Elemente von 1 l Lösung, die enthält:
4,42 g/l MS-Macro Elemente (im Handel erhältlich von Duchefa BV, NL)
1,00 ml MS-Micro Elemente von 1 l Lösung, die enthält:
| CoCl₂ · 6 H₂O | |
| 0,025 mg/l | |
| CuSO₄ · 5 H₂O | 0,025 mg/l |
| H₃BO₃ | 6,20 mg/l |
| KI | 0,83 mg/l |
| MnSO₄ · H₂O | 16,90 mg/l |
| Na₂MoO₄ · 2 H₂O | 0,25 mg/l |
| ZnSO₄ · 7 H₂O | 8,60 mg/l |
1 ml MS-Vitamine (im Handel erhältlich von Duchefa BV)
1 ml FeNaEDTA (36,7 mg/ml) (FeNaEDTA im Handel erhältlich von Sigma Chemicals, USA)
30 g Saccharose
7 g Agar (Merck, NL).
1 ml FeNaEDTA (36,7 mg/ml) (FeNaEDTA im Handel erhältlich von Sigma Chemicals, USA)
30 g Saccharose
7 g Agar (Merck, NL).
Sich entwickelnde Sprosse werden vom Kallus getrennt und auf
O-Medium gesetzt, 4 bis 5 Sprosse pro Gefäß und darin für eine ge
wisse Zeit stehengelassen. Nach 10 Tagen kann man Wurzeln von 1-15
mm Länge beobachten. Sobald sich ausreichend viele Wurzeln gebil
det haben, werden die Pflänzchen in Erdboden umgesetzt und in ei
nem Gewächshaus unter einer Plastikfolie bei hoher relativer
Feuchtigkeit (RF: 90-100%) gehalten. Nach einer Woche wird die
Plastikfolie nach und nach entfernt und die Pflänzchen einer ge
ringeren RF von ca. 40 bis 80% ausgesetzt. Die Temperatur des Ge
wächshauses ist nicht entscheidend und kann im Bereich von 15°C
bis 25°C liegen.
Die durchschnittliche Überlebensrate, das heißt Entwicklung zu ei
ner Pflanze aus isolierten Embryos, beträgt etwa 5 bis etwa 10%.
Es wird Bezug auf Züchtungsschema 1 genommen.
CMSj B. napus (2n=2x=38 Chromosomen - weiblicher Elter), vom In
stitut für Landwirtschaft und Pflanzenzüchtung, Georg August Uni
versität, Göttingen, Deutschland erhalten, wird mit B. oleracea
var. ithalica (2n=2x=18 Chromosomen - männlicher Elter) gekreuzt,
(Zaadunie BV). 12 F1 Pflanzen werden durch Embryo-Rescue-Technik
erhalten wie dies in Beispiel 1 beschrieben ist.
Eine F1 Pflanze, intern mit Nr. 7 bezeichnet (2n=2x=36 Chromoso
men), wird ausgewählt und mit B. oleracea var. ithalica (2n=2x=18)
rückgekreuzt und kann Samen ausbilden. Dies ist die erste Rück
kreuzung (BC1). 9 Pflanzen werden erhalten (2n=2x=26-27 Chromo
somen). Eine Pflanze von BC1, intern mit 7-3 bezeichnet, wird aus
gewählt und mit B. oleracea var. ithalica rückgekreuzt, was die
zweite Rückkreuzung darstellt (BC2). Aus BC2 werden Samen gezogen
und ausgewählte Pflanzen mit B. oleracea var. ithalica rückge
kreuzt, was die dritte Rückkreuzung bildet (BC3). Pflanzen aus BC3
zeigen ein für B. oleracea Pflanzen normales Samengut (2n=2x=18
Chromosomen). Ausgewählte BC3 Pflanzen werden weiter mit B. olera
cea var. ithalica rückgekreuzt, was BC4 ergibt, aus der ausge
wählte Nachkommen erneut rückgekreuzt werden, was BC5 ergibt und
ausgewählte Nachkommen hieraus werden weiter rückgekreuzt, was BC6
Pflanzen ergibt. Pflanzen aus BC3 bis BC6 sind einheitlich in Be
zug auf das Merkmal der männlichen cytoplasmatischen Sterilität.
Sie besitzen ein für B. oleracea var. ithalica (Broccoli) normales
Samengut, was zeigt, daß es richtige B. oleracea Pflanzen mit nor
malem diploidem Chromosomensatz (2n=2x=18) sind.
Es wird Bezug auf Züchtungsschema 2 genommen.
Gemäß Beispiel 2 erhaltene CMSj B. oleracea var. ithalica
(Broccoli; 2n=2x=18 Chromosomen - weiblicher Elter) wird mit B.
oleracea var. botrytis (Blumenkohl; 2n=2x=18 Chromosomen - männli
cher Elter) gekreuzt. Eine mit 920111 bezeichnete F1 Pflanze wird
ausgewählt und mit B. oleracea var. botrytis (2n=2x=18) rückge
kreuzt und kann Samen ausbilden. Dies ist die erste Rückkreuzung
(BC1). Eine Pflanze aus dieser BC1 Population, intern mit 930131
bezeichnet, wird ausgewählt und mit B. oleracea var. botrytis
rückgekreuzt, was die zweite Rückkreuzungspopulation (BC2) dar
stellt. B. oleracea var. botrytis Pflanzen aus BC2 zeigen ein für
B. oleracea var. botrytis Pflanzen normales Samengut (2n=2x=18
Chromosomen) und zeigen normale Blumenkohlform und Blumenkohl
farbe.
Claims (13)
1. CMS B. oleracea Pflanzen oder Teile hiervon, die Mitochondrien
des CMSj Cytoplasmas enthalten.
2. Pflanzen oder Teile hiervon nach Anspruch 1, worin das CMSj Cy
toplasma von einer CMS B. napus Pflanze stammt.
3. Pflanzen oder Teile hiervon nach Anspruch 1 oder 2, die diploid
sind.
4. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var.
botrytis L. (Blumenkohl) ist.
5. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var.
alba DC. (Weißkohl) ist.
6. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. gemmifera DC (Rosenkohl)
ist.
7. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var.
sabellica L. (Krauskohl) ist.
8. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var.
sabauda L. (Wirsingkohl) ist.
9. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var.
rubra DC. (Rotkohl) ist.
10. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var.
gongylodes (Kohlrabi) ist.
11. CMS Brassica oleracea Pflanze oder Teile hiervon nach Anspruch
1, die Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var.
ithalica (Broccoli) ist.
12. Samen von Pflanzen nach einem der Ansprüche 1 bis 11.
13. Verfahren zur Herstellung von B. oleracea Pflanzen, gekenn
zeichnet durch:
- i) Durchführung einer Ausgangskreuzung zwischen einer CMSj enthal tenden Brassica-Pflanze und einer B. oleracea Pflanze;
- ii) Entnahme von Embryomaterial aus dieser anfänglichen Kreuzung und Regeneration einer Pflanze hieraus; und
- iii) Auswahl regenerierter Pflanzen von (ii) und Durchführung wie derholter Rückkreuzungen mit ausgewählten Nachkommen hiervon, bis B. oleracea Pflanzen erhalten werden, die normales Samengut und wenigstens in bezug auf das Merkmal der männlichen Sterilität phänotypische Uniformität zeigen.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| GB939318429A GB9318429D0 (en) | 1993-09-06 | 1993-09-06 | Improvements in or relating to organic compounds |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE4430637A1 true DE4430637A1 (de) | 1995-03-09 |
Family
ID=10741567
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE4430637A Withdrawn DE4430637A1 (de) | 1993-09-06 | 1994-08-29 | Neue Brassica oleracea Pflanzen |
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| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07147860A (de) |
| DE (1) | DE4430637A1 (de) |
| FR (1) | FR2712771A1 (de) |
| GB (2) | GB9318429D0 (de) |
| IT (1) | ITRM940566A1 (de) |
| NL (1) | NL9401447A (de) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10136378A1 (de) * | 2001-07-26 | 2003-02-20 | Norddeutsche Pflanzenzucht Han | Männliche Sterilität in Gräsern der Gattung Lolium |
| WO2004098271A1 (en) * | 2003-05-05 | 2004-11-18 | University Of Delhi South Campus | Development of cytoplasmic male sterile brassica oleracea plants and the method of producing such plants |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CA2578187C (en) | 2004-08-26 | 2015-08-04 | Dhara Vegetable Oil And Foods Company Limited | A novel cytoplasmic male sterility system for brassica species and its use for hybrid seed production in indian oilseed mustard brassica juncea |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4751347A (en) * | 1986-11-07 | 1988-06-14 | Allelix, Inc. | Process for transferring cytoplasmic elements in Brassica, and products thereof |
| US4767888A (en) * | 1987-02-24 | 1988-08-30 | University Of Guelph | Production of cole crops which exhibit triazine tolerance |
| HU204561B (en) * | 1987-12-17 | 1992-01-28 | Zaadunie Bv | Process for producing hybrid brassicaceae with citoplasmic male sterility |
-
1993
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-
1994
- 1994-08-29 DE DE4430637A patent/DE4430637A1/de not_active Withdrawn
- 1994-09-02 FR FR9410635A patent/FR2712771A1/fr active Pending
- 1994-09-02 GB GB9417753A patent/GB2281568A/en not_active Withdrawn
- 1994-09-05 JP JP6211107A patent/JPH07147860A/ja active Pending
- 1994-09-05 IT IT94RM000566A patent/ITRM940566A1/it not_active IP Right Cessation
- 1994-09-06 NL NL9401447A patent/NL9401447A/nl not_active Application Discontinuation
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10136378A1 (de) * | 2001-07-26 | 2003-02-20 | Norddeutsche Pflanzenzucht Han | Männliche Sterilität in Gräsern der Gattung Lolium |
| DE10136378C2 (de) * | 2001-07-26 | 2003-07-31 | Norddeutsche Pflanzenzucht Han | Männliche Sterilität in Gräsern der Gattung Lolium |
| WO2004098271A1 (en) * | 2003-05-05 | 2004-11-18 | University Of Delhi South Campus | Development of cytoplasmic male sterile brassica oleracea plants and the method of producing such plants |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| GB9417753D0 (en) | 1994-10-19 |
| GB2281568A (en) | 1995-03-08 |
| FR2712771A1 (fr) | 1995-06-02 |
| ITRM940566A0 (it) | 1994-09-05 |
| JPH07147860A (ja) | 1995-06-13 |
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| ITRM940566A1 (it) | 1996-03-06 |
| GB9318429D0 (en) | 1993-10-20 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| 8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |