DE4321944A1 - Verfahren zur Diagnose und Analyse von Kolonkarzinomen - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft Verfahren zur Analyse und/oder Diagnose Tumoren, insbesondere
von Kolonkarzinomen, Mittel für solche Verfahren sowie deren Verwendung.
Es wurde kürzlich gezeigt, daß die Expression von Varianten des Oberflächen-Glykopro
teins CD44 notwendig und hinreichend ist, um sogenanntes spontanes metastatisches Ver
halten sowohl in einer nicht-metastasierenden Pankreas-Adenokarzinom-Zellinie der Ratte
als auch in einer nicht-metastasierenden Fibrosarkom-Zellinie der Ratte auszulösen
(Günthert et al., 1991). Während die kleinste CD44-Isoform, die Standardform CD44s, in
einer Reihe verschiedener Gewebe, darunter Epithelzellen, ubiquitär exprimiert wird, wer
den bestimmte Spleißvarianten von CD44 (CD44v) nur auf einer Untergruppe von Epi
thelzellen exprimiert. Die CD44-Varianten werden durch alternatives Spleißen so erzeugt,
daß die Sequenzen von 10 Exons (v1-v10) in CD44s komplett ausgeschnitten werden, je
doch in den größeren Varianten in verschiedenen Kombinationen vorkommen können
(Screaton et al., 1992; Tölg et al., 1993; Hofmann et al., 1991). Die Varianten unterschei
den sich dadurch, daß an einer bestimmten Stelle des extrazellulären Teils des Proteins un
terschiedliche Aminosäuresequenzen inseriert sind. Solche Varianten konnten in verschie
denen menschlichen Tumorzellen und in menschlichem Tumorgewebe nachgewiesen wer
den. So wurde kürzlich die Expression von CD44-Varianten im Verlauf der kolorektalen
Karzinogenese untersucht (Heider et al., 1993). Die Expression von CD44-Varianten fehlt
in normalem menschlichem Kolonepithel und nur eine schwache Expression ist in den proli
ferierenden Zellen der Krypten nachweisbar. In späteren Stadien der Tumorprogression,
z. B. in Adenokarzinomen, exprimieren alle malignen Entartungen Varianten von CD44.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war die Entwicklung von neuen Verfahren zur Diagno
se und Analyse von Kolonkarzinomen sowie die Bereitstellung von Mitteln für solche Ver
fahren.
Diese Aufgabe konnte mit der vorliegenden Erfindung gelöst werden. Sie betrifft ein Ver
fahren zur Diagnose und/oder Analyse von Tumoren, insbesondere Kolonkarzinomen, das
dadurch gekennzeichnet ist, daß variantes CD44 als molekularer Marker verwendet wird.
Der Nachweis varianter CD44-Moleküle kann auf Proteinebene mittels Antikörpern oder
auf Nukleinsäureebene mittels Nukleinsäuresonden erfolgen. Die Erfindung betrifft demzu
folge auch Antikörper und Nukleinsäuren, die als Sonden für solche Verfahren geeignet
sind, die Verwendung solcher Antikörper und Nukleinsäuren zur Diagnose und Analyse von
Tumoren, insbesondere von Kolonkarzinomen, sowie Verfahren zu ihrer Herstellung.
Bevorzugt sind Verfahren der Untersuchung der Expression von Molekülen, die das Exon
v6 enthalten bzw. von Molekülen, die Aminosäuresequenzen enthalten, die durch das Exon
v6 kodiert werden. Entsprechend betrifft die Erfindung bevorzugt auch Nukleinsäuren, die
mit dem Exon v6 hybridisieren können, Antikörper gegen Epitope, die von Exon v6 kodiert
werden und die Verwendung solcher Nukleinsäuren und Antikörper. Besonders bevorzugt
sind Verfahren zur Untersuchung des Tumorstadiums eines Kolonkarzinoms, bei dem die
v6-Expression untersucht wird.
Die Nuklein- und Aminosäuresequenz des varianten Teils des CD44-Gens ist bekannt
(Hofmann et al., 1991, Tölg et al., 1993, Screaton et al., 1992). Die Existenz degenerierter
oder alleler Varianten ist für die Ausführung der Erfindung nicht von Bedeutung; solche
Varianten sind daher ausdrücklich mit eingeschlossen. Die Sequenz von Exon v6
(einschließlich des Gegenstranges der dargestellten Nukleotidsequenz) ist besonders be
vorzugt. Als Mittel, um die Erfindung auszuführen, können Antikörper dienen, insbesondere
solche, die gegen Epitope innerhalb der Aminosäuresequenz von Exon v6, besonders bevor
zugt innerhalb der Sequenz
gerichtet sind. Besonders bevorzugt sind monoklonale Antikörper. Für das erfindungsge
mäße Verfahren können jedoch auch andere Antikörpermoleküle verwendet werden, z. B.
Fab- oder F(ab′)₂-Fragmente von Immunglobulinen, rekombinant hergestellte single-chain-
Antikörper (scFv), chimäre bzw. humanisierte Antikörper sowie andere Moleküle, die spe
zifisch an Epitope binden, die durch Exon v6 kodiert werden. Die Herstellung von Antikör
pern gegen bekannte Aminosäuresequenzen kann nach an sich bekannten Methoden erfol
gen (Catty, 1989). Beispielsweise kann ein Peptid dieser Sequenz synthetisch hergestellt
und als Antigen in einem Immunisierungsprotokoll eingesetzt werden. Ein anderer Weg ist
die Herstellung eines Fusionsproteins, das die gewünschte Aminosäuresequenz enthält,
indem eine Nukleinsäure (die synthetisch oder z. B. durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR)
aus einer geeigneten Probe hergestellt werden kann), die für diese Sequenz kodiert, in einen
Expressionsvektor integriert und das Fusionsprotein in einem Wirtsorganismus exprimiert
wird. Das gegebenenfalls gereinigte Fusionsprotein kann dann als Antigen in einem
Immunisierungsprotokoll eingesetzt und Insert-spezifische Antikörper oder, im Falle
monoklonaler Antikörper, Hybridome, die insert spezifische Antikörper exprimieren, mit
geeigneten Verfahren selektiert werden. Solche Verfahren sind Stand der Technik. Heider et
al. (1993) und Koopman et al. (1993) beschreiben die Herstellung von Antikörpern gegen
variante Epitope von CD44. Ebenfalls als Mittel zur Ausführung können Nukleinsäuren
dienen, die mit varianten Exons, insbesondere v6, hybridisieren, insbesondere solche mit
einer Homologie von mehr als 80% zur entsprechenden Exonsequenz. Die Herstellung sol
cher Nukleinsäuren kann nach an sich bekannten Methoden erfolgen.
Die Ausführung des erfindungsgemäßen Verfahrens zur Diagnose und/oder Analyse von
Tumoren, insbesondere von Kolonkarzinomen, kann zweckmäßig durch Untersuchungen
von aus dem Körper entnommenen Proben, beispielsweise aus Biopsien, erfolgen. Vorteil
haft können dabei die erfindungsgemäßen Mittel verwendet werden. Beispielsweise können
Gewebsschnitte immunhistochemisch mit den erfindungsgemäßen Antikörpern mit an sich
bekannten Methoden untersucht werden. Aus Gewebeproben gewonnene Extrakte können
ferner mit anderen immunologischen Methoden unter Verwendung der besagten Antikörper
untersucht werden, beispielsweise in Western Blots, Enzyme-linked Immunosorbent Assays
(ELISA), Radioimmunoassays (RIA) oder verwandten Immunoassays. Der Nachweis der
Expression varianter Exons kann auch auf Nukleinsäureebene erfolgen, beispielsweise durch
Hybridisierung von aus Gewebeproben gewonnener RNA (Northern Blot) oder revers
transkribierter und PCR-amplifizierter RNA mit geeigneten Proben, oder durch Hybridisie
rung von Nukleinsäuren in Gewebsschnitten mit geeigneten Proben (in-situ-Hybridisierung).
Die Untersuchungen können qualitativ, semiquantitativ oder quantitativ erfolgen. Durch
Nachweis und/oder Quantifizierung der Expression varianter CD44-Epitope erhobene
Daten können so in die Diagnose und Prognose einfließen. Vorteilhaft kann dabei die
Kombination mit anderen prognostischen Parametern sein, etwa mit der Gradierung.
Die erfindungsgemäßen Verfahren und Mittel eignen sich hervorragend zur Diagnose
und/oder Analyse von Tumoren, insbesondere von Kolonkarzinomen.
Die immunhistochemische Untersuchung von Gewebeproben ergab eine differentielle Ex
pression von varianten CD44-Proteinen in normaler kolorektaler Mucosa, adenomatösen
Polypen und kolorektalen Karzinomen (Fig. 2). Im normalen Kolonepithel ist die Expres
sion von CD44-Proteinen begrenzt. Nur eine schwache Färbung an der Kryptenbasis zeigte
sich in der Anfärbung mit einem monoklonalen Antikörper (mAb NKI-P1) gegen den
N-terminalen konstanten Anteil von CD44. Ein ähnliches Expressionsmuster wurde für die
Epitope beobachtet, die durch die Exons v8-v10 kodiert werden.
Expression anderer varianter Exons (v3-v7) war in normalem Kolonepithel nicht nachweis
bar (Fig. 2). Wie das normale Kolonepithel, so exprimieren kolorektale Tumoren ebenfalls
Spleißvarianten, die die Exons v8-v10 enthalten. Die Expression ist jedoch viel stärker und
nicht mehr auf die Krypten begrenzt. Darüber hinaus werden in Tumoren zusätzliche Vari
anten gefunden, die im normalen Kolonepithel nicht vorhanden sind. Diese Überexpression
und zunehmende Vielfalt von CD44-Varianten wird bereits in sehr frühen Stadien der kolo
rektalen Tumorprogression beobachtet, z. B. in frühen Adenomen, die zusätzlich zu den
Exons v8-v10 zum größten Teil CD44-Isoformen exprimieren, die v5 enthalten (Fig. 2). In
weiter fortgeschrittenen Stadien der kolorektalen Tumorprogression, z. B. in fortgeschritte
nen Polypen und invasiven Karzinomen, nimmt das Ausmaß der Expression von v5-enthal
tenden CD44-Varianten zu. Überraschend war jedoch, daß die Tumorprogression stark mit
der Expression v6 enthaltender CD44-Isoformen korrelierte (Fig. 2): Expression dieses
Exons war nachweisbar in keiner der normalen Kolonproben, in 9% der frühen Polypen, in
45% der fortgeschrittenen Polypen und in 67% der invasiven Karzinome. (Chi-square 1 df p
< 0.0001). Darüber hinaus war die Expression von v6 in Karzinomen signifikant korreliert
zum Dukes-Stadium. Während der Anteil positiver Proben in den nicht-metastatischen
Dukes A und B Tumoren 52% betrug, war er 83% in der metastatischen Dukes C/D-Grup
pe (Chi-square 1 df p < 0.05). Zusätzlich konnte beobachtet werden, daß die Überexpression
v6 enthaltender CD44-Isoformen während der Tumorprogression nicht nur durch die stei
gende Zahl positiver Fälle reflektiert wird, sondern auch durch eine zunehmende Zahl posi
tiver Zellen innerhalb eines Tumor sowie durch ein höheres Expressionsniveau (stärkere
Anfärbung der Zellen). Die fokale Expression von v6 in Adenomen war mit einem weiteren
Parameter der Tumorprogression korreliert, dem histologischen Tumorgrad, wobei in kei
nem von 17 Adenomen mit niedrigem, jedoch 5 von 6 Adenomen mit hohem Grad v6-Ex
pression positiv war.
Informationen über die v6-Expression, wie sie z. B. durch routinemäßige Immunhistochemie
erhalten werden können, können also wegen des überraschenden Zusammenhangs speziell
der v6-Expression mit dem Tumorstadium wertvolle Erkenntnisse für Diagnose und Pro
gnose von Kolonkarzinomen ermöglichen.
Fig. 1: Schematische Darstellung einer CD44-Spleißvariante. Diese beispielhafte Variante
trägt alle varianten Exonsequenzen an der einzigen Insertionsstelle. Schwarze oder schraf
fierte Kästen symbolisieren CD44-Standardsequenzen (CD44s). Das polyklonale Antiserum
(anti-CD44v) reagiert mit einem bakteriellen Fusionsprotein, das durch die varianten Exons
v3 bis v10 kodiert wird, angezeigt durch den Balken CD44v. Die anderen Balken zeigen die
Lokalisierung der Epitope der monoklonalen Antikörper VFF4, VFF7, VFF8, VFF9,
VFF11, VFF14 und VFF16 an. Alle monoklonalen Antikörper sind exonspezifisch.
Fig. 2: Expression varianter CD44-Exons in verschiedenen Stadien der kolorektalen Tu
morprogression. Ergebnisse aus immunhistochemischen Anfärbungen von Gewebsschnitten
(Beispiel 2).
Normale und pathologische Gewebe wurden aus den Beständen der Abteilung für Patholo
gie, Academic Medical Center, Universität Amsterdam, Niederlande, entnommen.
Kolorektale Karzinome (n=39) wurden nach der Klassifikation von Dukes (1937, 1980) in
Stadien eingeteilt, in Dukes A (n=9), Krankheit beschränkt auf die Darmwand; Dukes B
(n=14), Ausdehnung über die Muskelschicht hinaus ohne Metastasierung; Dukes C/D
(n=16), Tumoren mit regionalen bzw. Fernmetastasen. Adenome wurden unterteilt in frühe
Adenome (Durchmesser < 1 cm, n=11) und späte Adenome (Durchmesser < 1 cm, n=12)
und wurden als niedrig oder hoch differenziert nach Standardkriterien gradiert.
Die gesamte variante Region des HPKII-Typs von CD44v (Hofmann et al., 1991) wurde
aus menschlicher Keratinozyten-cDNA durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR) amplifi
ziert. Die beiden PCR-Primer 5′-CAGGCTGGGAGCCAAATGAAGAAAATG-3′, Posi
tionen 25-52, und 5′-TGATAAGGAACGATTGACATTAGAGTTGGA-3′, Positionen
1013-984 der LCLC97-varianten Region, wie von Hofmann et al. beschrieben, enthielten
eine EcoRI-Erkennungsstelle, die benutzt wurde, um das PCR-Produkt direkt in den Vektor
pGEX-2T (Smith et al., 1988) zu klonieren. Das resultierende Konstrukt (pGEX CD44v
HPKII, v3-v10) kodiert für ein Fusionsprotein von ∼70 kD.
Um Subklone der varianten Regionen zu erhalten, die für Affinitätsreinigungen und
Western-Blot-Analysen verwendet werden konnten, wurden Fragmente kloniert, die DI
(v3), DII/III (v5, v6), und DIII (v6, v7) enthielten, wobei die passenden Restriktionsschnitt
stellen verwendet wurden. Fusionsprotein DI enthält die CD44-Sequenz, die von Stamen
kovic et al. (1989) beschrieben wurde, von Position 744 bis zur Position 142 der Sequenz
von variantem CD44, wie sie von Hofmann et al. (1991) beschrieben wurde. Fusionsprotein
DII/III enthält die variante Sequenz von Position 290-460, Fusionsprotein DIII die variante
Sequenz von Position 378-638 (Hofmann et al., 1991). Die DI und DIII enthaltenden
Fragmente wurden in das pGEX-Vektorsystem, das DII/III-Fragment in den pATH-Vektor
(Angel et al., 1988) kloniert.
Die Herstellung und Reinigung des polyklonalen Antiserums gegen die variante Region des
CD44-Moleküls ist in der Literatur beschrieben (Heider et al., 1993). Die Exonspezifität
des Gesamtserums (anti-CD44v3-v10) ist in Fig. 1 angezeigt (Balken vCD44 polyclonal).
Weibliche BALB/c-Mäuse wurden mit affinitätsgereinigtem Fusionsprotein immunisiert, das
aus pGEX CD44v IIPKII (Exons v3-v10) wie oben beschrieben erhalten wurde. Milzzellen
eine Tieres mit hohem Antikörpertiter wurde mit P3X63Ag8.653-Myelomzellen unter Ver
wendung von Polyethylenglykol 4000 fusioniert. Hybridome wurden in HAT-Medium
selektiert (Kearney et al., 1979). Bestimmung der Antikörpertiter im Serum sowie das An
tikörperscreening wurden mittels ELISA durchgeführt. Die Microtiterplatten wurden mit
Fusionsprotein beschichtet, mit seriellen Verdünnungen von Serumproben oder Hybridoma
überständen inkubiert, und spezifische Antikörper wurden mit Peroxidase-gekoppelten
Antikörpern gegen Maus-IgG detektiert. Hybridome, die mit Glutathion-Transferase rea
gierten, wurden eliminiert. Die verbleibenden Antikörper wurden mit ELISA-Tests weiter
charakterisiert, wobei Fusionsproteine der variablen Domänen DI (Exon v3), DII/III (Exons
v5, v6), DIII (Exons v6, v7), DI-IV (Exons v3-v8), DIII-VI (Exons v7-v10) bzw. v6
(Exon v6) verwendet wurden. Die Reaktivität der Antikörper mit menschlichen Hautke
ratinozyten wurde immunhistochemisch untersucht.
Die Exonspezifität der verwendeten Antikörper (NKI-P1, vCD44[polyklonal], VFF4,
VFF7, VFF8, VFF9, VFF11, VFF14 und VFF16) ist in Fig. 1 dargestellt.
Gefrierschnitte wurden in eisgekühltem Methanol 10 min. fixiert, in PBS (8 g/l NaCl, 0.2 g/l
KCl, 1.44 g/l Na₂HPO₄, 0.24 g/l KH₂PO₄, pH 7.4) gewaschen und mit normalem Ziegen
serum (10% in PBS) präinkubiert. Dann wurden sie 3× mit PBS gewaschen und für 1 Stun
de mit dem Primärantikörper (in PBS, 1% BSA) inkubiert. Endogene Peroxidase wurde mit
0.3% H₂O₂ in Methanol blockiert und die Schnitte mit biotinyliertem Zweitantikörper
(entweder anti-Maus oder anti-Kaninchen F(ab′)₂, DAKO Corp., Santa Barbara, CA, USA,
abhängig vom verwendeten Primärantikörper) inkubiert. Der Immunkomplex wurde mit
Meerrettich-Peroxidase visualisiert, die als Streptavidin-Biotin-Peroxidasekomplex an Bio
tin gekoppelt wurde (DAKO). Nach dreißigminütiger Inkubation mit dem Streptavidin-Bio
tin-Peroxidase-Komplex wurden die Schnitte mit 3,3-Amino-9-ethyl-carbazol (Sigma Che
micals, Deisenhofen, Deutschland) für 5 bis 10 min. entwickelt und die Reaktion mit H₂O
abgestoppt. Die Zellen wurden mit Hämatoxylin gegengefärbt, mit Glyzerin-Gelatine einge
deckelt und mikroskopisch untersucht.
Untersucht wurde eine Gesamtzahl von 70 normalen und pathologischen Kolonproben (s. o.)
Tumoren wurden als "positiv" bezeichnet, wenn mehr als 10% der Tumorzellen angefärbt
waren. Waren weniger als 10% der Tumorzellen gefärbt, wurde dies als "lokal" bezeichnet.
Angel P., Allegretto, E.A., Okuio, S.T.Hatton, K., Boyle, W.J., Hunter, T., Karin, M. On
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Claims (17)
1. Verfahren zur Diagnose außerhalb des menschlichen Körpers und/oder Analyse von
Kolonkarzinomen, dadurch gekennzeichnet, daß dieses Verfahren auf dem Nachweis
von einem oder mehreren variablen Exons des Gens CD44 und/oder auf dem Nach
weis von einem oder mehreren Epitopen, die von einem oder mehreren variablen
Exons des Gens CD44 kodiert werden, beruht.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das variable Exon Exon v6
ist bzw. das Epitop von Exon v6 kodiert wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das Exon für die Ami
nosäuresequenz
oder eine eine allele Variante oder ein Fragment dieser Sequenz kodiert.
4. Verfahren nach den Ansprüchen 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß es zur Bestim
mung des Tumorstadiums angewendet wird.
5. Nukleinsäure, dadurch gekennzeichnet, daß sie mit Exon v6 des CD44-Gens hybridi
siert.
6. Nukleinsäure nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß sie die Nukleotidse
quenz
oder eine degenerierte oder allele Variante oder ein Fragment oder einen Gegenstrang
dieser Sequenz enthält.
7. Verwendung der Nukleinsäure gemäß Ansprüchen 5 bis 6 zur Diagnose und/oder
Analyse von Kolonkarzinomen.
8. Verwendung der Nukleinsäure gemäß Ansprüchen 5 bis 6 zur Diagnose und/oder
Analyse von Metastasen.
9. Antikörper gegen variantes CD44, dadurch gekennzeichnet, daß er gegen ein Epitop
gerichtet ist, das in der Aminosäuresequenz von Exon v6,
vorzugsweise
oder einer allelen Variante oder einem Fragment dieser Sequenzen enthalten ist.
10. Antikörper nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß er monoklonal ist.
11. Antikörper nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß er ein Fab- oder F(ab′)₂-
Fragment eines Immunglobulins, ein rekombinant hergestellter single-chain-Antikör
per (scFv) oder ein chimärer bzw. humanisierter Antikörper ist.
12. Verwendung eines Antikörpers gemäß der Ansprüche 9 bis 11 zur Diagnose und/oder
Analyse von Kolonkarzinomen.
13. Verwendung eines Antikörpers gemäß der Ansprüche 9 bis 11 zur Diagnose und/oder
Analyse von Metastasen.
14. Mittel zur Verwendung bei der Diagnose und/oder Analyse von Krebserkrankungen,
geeignet für ein Verfahren gemäß den Ansprüchen 1 bis 4.
15. Mittel zur Verwendung bei der Diagnose und/oder Analyse von Krebserkrankungen,
dadurch gekennzeichnet, daß es eine Nukleinsäure gemäß einem der Ansprüche 5 bis
6 enthält.
16. Mittel zur Verwendung bei der Diagnose und/oder Analyse von Krebserkrankungen,
dadurch gekennzeichnet, daß es einen Antikörper gemäß einem der Ansprüche 9 bis
11 enthält.
17. Mittel nach einem der Ansprüche 14 bis 16, dadurch gekennzeichnet, daß es in der
Form einer Verpackungseinheit vorliegt, in der mehrere Komponenten separat enthal
ten sind.
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US08/564,225 US6010865A (en) | 1993-06-22 | 1994-06-15 | Process for detecting a variant CD44 gene product |
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Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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US7763244B2 (en) | 2002-07-01 | 2010-07-27 | Human Genome Sciences, Inc. | Antibodies that specifically bind to Reg IV |
-
1993
- 1993-07-02 DE DE4321944A patent/DE4321944A1/de not_active Withdrawn
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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EP0833948A1 (de) * | 1995-06-06 | 1998-04-08 | Human Genome Sciences, Inc. | Für den dickdarm spezifische gene und proteine |
EP0833948A4 (de) * | 1995-06-06 | 2001-09-12 | Human Genome Sciences Inc | Für den dickdarm spezifische gene und proteine |
EP1655382A2 (de) * | 1995-06-06 | 2006-05-10 | Human Genome Sciences, Inc. | Dickdarm spezifisches Gen und Protein |
EP1655382A3 (de) * | 1995-06-06 | 2006-05-17 | Human Genome Sciences, Inc. | Dickdarm spezifisches Gen und Protein |
US7132509B2 (en) | 1995-06-06 | 2006-11-07 | Human Genome Sciences, Inc. | Colon specific gene and protein |
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