DE4112563A1 - Neues restriktionsenzym - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft ein Restriktionsenzym. Insbe
sondere betrifft sie ein Verfahren zur Herstellung
eines Restriktionsenzymes durch Kultivierung eines
Mikroorganismus der Art Brevibakterium.
Restriktionsenzyme sind Endonucleasen, die in der
Lage sind, spezifische Nucleotidsequenzen eines
Desoxyribonucleinsäure-Moleküls (DNS) zu erkennen
und die doppelsträngige DNS an spezifischen Stellen
zu schneiden.
Als ein Ergebnis des Fortschritts der Molekulargene
tik, Biochemie und verwandten Wissenschaften ergab
sich, daß die DNS den Schlüssel zur Erbsubstanz von
Lebewesen darstellt, und seitdem sind Restriktions
enzyme ausgiebig als nützliche Enzyme für verschiedene
Zwecke eingesetzt worden, wie zur Aufklärung genetisch
bedingter Krankheiten und zur Massenproduktion nütz
licher Substanzen durch genetische Manipulation. Re
striktionsenzyme sind aus einer Vielzahl von Mikro
organismen isoliert worden, so sind zur Zeit etwa
150 Enzyme bekannt, die jeweils durch ihr spezifi
sches Erkennen einer Nucleotidsequenz und ihr Schnitt
muster identifiziert sind. Als ein Restriktionsenzym,
das in der Lage ist, folgende Nucleotidsequenz zu
erkennen und sie an den durch Pfeile markierten Stel
len zu schneiden
(wobei C, T, A und G Cytidin Thymidin, Adenosin und
Guanosin bedeuten), ist das AVR II bekannt, das von
Anabaena variabilis UW (Gene, Vol. 7, 1979, S. 217-270)
gebildet wird.
Dieser AVR II-bildende Mikroorganismus ist eine Alge,
die schwer zu kultivieren ist und die AVR II mit einer
sehr geringen Ausbeute produziert; daher ist dieser
Mikroorganismus nicht für die industrielle Produktion
geeignet.
Demgemäß liegt der Erfindung die Aufgabe zugrunde,
ein für die industrielle Produktion geeignetes Ver
fahren zur Herstellung eines Restriktionsenzyms be
reitzustellen, das in der Lage ist, die gleiche Basen
sequenz wie das AVR II zu erkennen und zu schneiden.
Zusammengefaßt betrifft die Erfindung ein Verfahren
zur Herstellung eines Restriktionsenzyms, das die
Kultivierung eines Mikroorganismus der Art Brevibak
terium, der in der Lage ist ein Restriktionsenzym
zu bilden, das folgende Nucleotidsequenz an den
durch Pfeile markierten Stellen schneidet,
wobei C, T, A und G Cytidin, Thymidin, Adenosin und
Guanosin bedeuten, und die Gewinnung dieses Restrik
tionsenzyms aus der Kulturlösung, umfaßt.
Die Erfinder haben ein Restriktionsenzym gefunden,
das in der Lage ist, dieselbe spezifische Nucleotid
sequenz wie das AVR II zu erkennen und zu schneiden
und in großen Mengen durch die Kultivierung eines
Mikroorganismus der Art Brevibakterium hergestellt
werden kann, wobei dieser Mikroorganismus kein anderes
Restriktionsenzym als das AVR II produziert und da
her das gebildete Enzym leicht gereinigt werden kann.
Auf der Basis dieser Erkenntnisse wurde diese Erfin
dung ausgearbeitet.
Die Erfindung wird nachfolgend eingehender beschrie
ben.
Jeder zur Art Brevibakterium gehörende Mikroorganis
mus, der in der Lage ist, das Restriktionsenzym zu bil
den, kann für das erfindungsgemäße Verfahren verwendet
werden. Als Beispiel ist Brevibakterium linens IAM 1902,
aufbewahrt im "Applied Microorganism Laboratory" der
Universität zu Tokyo und hinterlegt unter FERM BP-2870
am "Fermentation Research Institute, Agency of Industrial
Science and Technology" zu nennen.
Das im erfindungsgemäßen Verfahren verwendete Kultur
medium enthält eine zweckmäßige Kombination von Koh
lenstoff- und Stickstoffquellen, anorganischen Salzen
und anderen Nährstoffen, die der verwendete Mikroorga
nismus zur Bildung des Restriktionsenzyms assimilieren
kann. Sein pH-Wert sollte vorzugsweise im Bereich von
5,0-9,0 liegen. Es können Schüttel-, Rühr- und Be
lüftungskulturen eingesetzt werden, aber zur Massen-
Produktion ist die Kultivierung mit Belüftung und Rüh
ren bevorzugt. Die Kulturtemperatur sollte in dem Be
reich liegen, der die Bildung des Restriktionsenzyms
gewährleistet, ein Bereich von 20-33°C ist jedoch
bevorzugt. Die optimale Kultivierungszeit variiert
in Abhängigkeit von den angewandten Kulturbedingungen,
wobei die Kultivierung solange fortgesetzt werden
sollte, bis die Ausbeute des Restriktionsenzyms sein
Maximum erreicht.
Das durch das erfindungsgemäße Verfahren hergestellte
Restriktionsenzym wird hauptsächlich innerhalb der
mikrobiellen Zellen akkumuliert, und die gezüchteten
Zellen können beispielsweise durch Zentrifugation
von der Kulturlösung abgetrennt werden.
Das gebildete Enzym kann durch Anwendung von für Restrik
tionsenzyme bekannte und üblicherweise eingesetzte Ver
fahren isoliert und gereinigt werden. Die gewonnenen
mikrobiellen Zellen werden in einer Pufferlösung dis
pergiert, die Zellwände durch Ultraschallbehandlung auf
gebrochen und die akkumulierten Enzyme extrahiert. Nach
Entfernung des Rückstandes durch Ultrazentrifugation
wird der Extrakt zur Entfernung der Nucleinsäuren mit
1% Streptomycin behandelt und anschließend Ammonium
sulfat zur Aussalzung zugesetzt.
Der abgetrennte Niederschlag wird gesammelt, in einem
Tris-HCl-Puffer (pH-Wert = 7,5) gelöst und die Lösung
gegen dieselbe Pufferlösung dialysiert. Das Dialysat
wird dann über Ionenaustauschchromatographie mittels
Phosphocellulose und Hydroxylapatit oder über Affini
tätschromatographie mittels Heparin-Sepharose gerei
nigt, wodurch das erfindungsgemäße Restriktionsenzym
erhalten wird.
Die Enzymaktivität wurde durch nachstehende Methode
bestimmt.
Es wurde eine Substratlösung der Zusammensetzung ent
sprechend folgender Tabelle 1 vorbereitet.
10 mM Tris - HCl, pH 7,5
7 mM MgCl₂
7 mM 2-Mercaptoethanol
100 mM NaCl
1,0 µm λ-DNA (Ein Produkt von Takara Shuzo Co., Ltd.)
7 mM MgCl₂
7 mM 2-Mercaptoethanol
100 mM NaCl
1,0 µm λ-DNA (Ein Produkt von Takara Shuzo Co., Ltd.)
Diese Lösung (50 µl) wurde auf 37°C vorgewärmt, eine
zu testende Probe des erfindungsgemäßen Enzyms wurde
hinzugegeben, um der enzymatischen Reaktion zu erlau
ben bei dieser Temperatur abzulaufen. Die Reaktion
wurde nach 60 min durch Zugabe von 5 µl einer Stopp
lösung (enthielt 1% SDS, 50% Glycerin und 0,02%
Bromphenolblau) beendet. Das Reaktionsgemisch wurde
auf ein 1%iges Agarose-Flachgel aufgebracht und die
Elektrophorese bei einer konstanten Spannung von
10 V/cm über etwa 1 bis 2 Stunden durchgeführt. Die
für die Elektrophorese benutzte Pufferlösung war ein
90 mM Tris-Borat Puffer, der 2,5 mM EDTA (pH 8,3)
enthielt. Die DNS-Banden können durch UV-Strahlung
nachgewiesen werden, wenn vorher dem Gel 0,5 µm/ml
Ethidiumbromid zugesetzt wurde. Die Elektrophorese
wurde als beendet betrachtet, wenn die Anzahl und In
tensität der Banden der DNS-Fragmente sich nicht
länger veränderten.
Die Enzymaktivität, die einen vollständigen Abbau von
1 µm λ-DNS nach einer Reaktionszeit von einer Stunde
bei 37°C bewirkt, wurde als eine Einheit definiert.
Das durch das erfindungsgemäße Verfahren erhaltene
Restriktionsenzym hat die nachstehend beschriebenen
physikochemischen Eigenschaften.
Dieses Enzym ist in der Lage, eine Nucleotidsequenz
in einem doppelsträngigen DNS-Molekül, wie unten ge
zeigt, zu erkennen und sie an den durch Pfeile mar
kierten Stellen zu schneiden, es ist daher ein Iso
schizomer zu dem bekannten Restriktionsenzym AVRII.
Die Basensequenz, die von dem Restriktionsenzym die
ser Erfindung erkannt wird, wurde durch den Einsatz
der Substrate λ-DNS, pBR 322 DNS und ⌀X 174 RFI DNS
(Produkte von Takara Shuzo Co., Ltd.) sowie von
Adenovirus-2 DNS (Produkt der "Bethesda Research
Laboratories") bestimmt. Das Ergebnis war, daß das
erfindungsgemäße Restriktionsenzym die λ-DNS und
die Adenovirus-2 DNS an zwei Stellen schnitt, dagegen
wurde die pBR 322 DNS und ⌀X 174 RFI DNS nicht ge
schnitten. Zusätzlich wurde dem bekannten Restrik
tionsenzym AVRII erlaubt, mit diesen Substraten zu
reagieren, wobei das erhaltene Schnittmuster, ver
glichen mit dem erfindungsgemäßen Restriktionsenzym,
das gleiche Muster für beide Enzymtypen zeigte. Diese
Daten ließen die Schlußfolgerung zu, daß das erfin
dungsgemäße Restriktionsenzym die Nucleotidsequenz
5′-CCTAGG-3′ in DNS-Molekülen erkennt.
Die durch das erfindungsgemäße Restriktionsenzym ge
schnittenen Stellen wurden bestimmt durch Gewinnung
einer einsträngigen DNS aus einem Vektor, der durch
Einfügung von 5-GCCTAGGC-3′ (eine Nukleotidsequenz,
die 5′-CCTAGG-3′ enthält, welche die vom erfindungs
gemäßen Restriktionsenzym erkannte Sequenz ist) in
M13 mp 18 RFI DNS (ein Produkt der "Takara Shuzo Co.,
Ltd." hergestellt ist; ihre Hybridisierung mit
5′GTTTTCCCAGTCACGAC, einem mit 32P am 5′-Ende mar
kierten Primer; Synthese einer doppelsträngigen
Kette eines E. coli DNS Polymerase I Klenow Frag
ments; Schneiden der so erhaltenen doppelsträngigen
DNS durch das erfindungsgemäße Restriktionsenzym
und Messen der Kettenlänge der so gebildeten Frag
mente durch Elektrophorese auf einem modifizierten
Polyacrylamidgel. Das erhaltene Produkt wurde als
Fleck nachgewiesen, der durch das Schneiden an der
durch den Pfeil markierten Stelle von
entstanden ist, was zu der Schlußfolgerung führt,
daß das erfindungsgemäße Enzym die folgende Nucleo
tidsequenz erkennt und sie an den mit Pfeilen mar
kierten Stellen schneidet.
- a) Optimale Temperatur.
Die optimale Temperatur betrug etwa 37°C, - b) optimaler pH-Wert.
Der optimale pH-Wert lag im Bereich von 7,0 bis 8,5 - c) Salzkonzentration.
Die optimale Salzkonzentration lag im Bereich von 50 bis 150 mM NaCl, - d) MgCl2-Konzentration.
Die enzymatische Reaktion des erfindungsgemäßen Restriktionsenzyms wurde bei einer MgCl2-Konzen tration im Bereich von 5 mM bis 20 mM aktiviert. - e) Molekulargewicht.
Das Molekulargewicht des erfindungsgemäßen Restrik tionsenzyms betrug 159,377 ×10-21±6,641×10-21 g (96 000±4000 Daltons), nach Messung mit der Gelfiltration-Methode mit Sephadex G-100, und 69,727×10-21±3,320×10-21 g (42 000±2000 Daltons) nach Elektrophorese mit einem SDS-Poly acrylamidgel. Das zeigt, daß dieses Enzym ein Di meres ist, das aus zwei Untereinheiten mit einem Molekulargewicht von jeweils etwa 74,708×10-21 g (45 000 Daltons) besteht.
Das folgende Beispiel erläutert die Erfindung näher.
Zwanzig Liter eines Kulturmediums mit der in Tabelle 2
aufgeführten Zusammensetzung wurde in einen 30-Liter
Glasfermenter gefüllt und durch das übliche Verfahren
sterilisiert.
Glucose | |
1 g | |
Hefeextrakt | 5 g |
Polypepton | 10 g |
Natriumchlorid | 5 g |
Deionisiertes Wasser | 1 l |
pH-Wert | 7,2 |
500 ml eines Inokulums von Brevibakterium linens
IAM 1902 (FERM BP-2870), das aus einer Schüttelkul
tur in einem Medium derselben obigen Zusammensetzung
bei 30°C über 24 h erhalten wurde, wurde in den
Glasfermenter überführt und die Kultivierung bei 30°C
über 18 Stunden unter Belüftung (1 vvm) und Rühren
(250 U/min) durchgeführt. Die gezüchteten Zellen
wurden aus der Nährlösung durch Einsatz einer Tief
kühlzentrifuge gewonnen (etwa 114 g Naßgewicht ge
züchteter Zellen von 20 l Nährlösung).
72 g der so erhaltenen mikrobiellen Zellen wurden in
360 ml Pufferlösung A (enthielt 20 mM Tris-HCl,
pH-Wert 7,5, 10 mM 2-Mercaptoethanol und 5% Glyce
rin) suspendiert, die Suspension wurde mit einem
Ultraschallzerkleinerer zum Brechen der Zellwände
behandelt und die erhaltene Mischung zentrifugiert
(100 000× g, 1 h),um den Rückstand zu entfernen.
Zu dem so erhaltenen Extrakt (400 ml) wurde 4 g
Streptomycin gegeben, die Mischung bei 4°C
für eine Stunde stehengelassen und anschließend
zentrifugiert (10 000×g, 10 min). Zu dem so
erhaltenen Überstand wurde bis zu einer 80%igen Sätti
gung Ammoniumsulfat zugegeben, der abgetrennte Nieder
schlag durch Zentrifugation gewonnen, in Pufferlösung A,
der zusätzlich 0,2 M KCl enthielt, gelöst und die Lö
sung über Nacht gegen den gleichen Puffer wie oben
dialysiert.
Danach wurde das Dialysat an 100 ml Phosphocellulose
(ein Produkt von Whatman Co.) adsorbiert, die in einer
Säule gepackt war und zuvor mit der Pufferlösung A
(0,2 M KCl enthaltend) äquilibriert wurde. Nach Waschung
mit demselben obigen Puffer wurde der adsorbierte An
teil mit Pufferlösung A, der 0,2-1,0 M KCl enthielt,
eluiert (lineare Konzentrationsgradiententechnik).
Die so erhaltenen aktiven Fraktionen wurden zusammenge
mischt, die vereinigte Lösung wurde anschließend an
30 ml Hydroxyalpatit ("Bio-rad Laboratories Ltd.") ad
sorbiert, das in einer Säule gepackt war und zuvor mit
10 mM Kaliumphosphatpuffer äquilibriert wurde, und der
adsorbierte Anteil mit 10 mM-500 mM Kaliumphosphat
puffer eluiert (lineare Konzentrationsgradiententechnik).
Die so erhaltenen aktiven Fraktionen wurden zusammenge
mischt, die vereinigte Lösung gegen Pufferlösung A über
vier Stunden dialysiert und das Dialysat nochmals an
Heparin-Sepharose (ein Produkt der "Pharmacia Fine
Chemicals Inc.") adsorbiert, das zuvor mit Pufferlö
sung A äquilibriert wurde. Nach sorgfältiger Waschung
mit demselben obigen Puffer wurde der adsorbierte An
teil mit Pufferlösung A, die 0,8 mM KCl enthielt, elu
iert und somit die Standardprobe des erfindungsgemäßen
Restriktionsenzyms hergestellt.
Diese Standardprobe war frei von sämtlichen unspezi
fischen DNasen oder Phosphatasen.
Das oben beschriebene Reinigungsverfahren ergab
800 000 Aktivitätseinheiten von 72 g Naßgewicht
mikrobieller Zellen.
Aus dieser Beschreibung geht hervor, daß die Erfin
dung ein industriell vorteilhaftes Verfahren zur
Herstellung eines Restriktionsenzyms, das in der Lage
ist, dieselbe Basensequenz wie das AVR II zu erkennen
und zu schneiden, bereitstellt.
Claims (1)
- Ein Verfahren zur Herstellung eines Restriktions enzyms, das die Kultivierung eines Mikroorganis mus der Art Brevibakterium, der in der Lage ist, ein Restriktionsenzym zu bilden, das folgende Nucleotidsequenz spezifisch an den durch Pfeile markierten Stellen schneidet, wobei C, T, A und G Cytidin, Thymidin, Adenosin und Guanosin bedeuten, und die Gewinnung des Restriktionsenzyms, das diese Nucleotidsequenz spezifisch an den durch Pfeile markierten Stellen schneidet, aus der Nährlösung, umfaßt.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2106231A JPH066056B2 (ja) | 1990-04-20 | 1990-04-20 | 制限酵素の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE4112563A1 true DE4112563A1 (de) | 1991-10-24 |
DE4112563C2 DE4112563C2 (de) | 1992-08-20 |
Family
ID=14428351
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
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---|---|---|---|---|
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1990
- 1990-04-20 JP JP2106231A patent/JPH066056B2/ja not_active Expired - Fee Related
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1991
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Non-Patent Citations (1)
Title |
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Gene, Vol. 7, 1979, S. 217-270 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB2243153B (en) | 1993-08-04 |
US5470732A (en) | 1995-11-28 |
JPH044875A (ja) | 1992-01-09 |
GB2243153A (en) | 1991-10-23 |
GB9107589D0 (en) | 1991-05-29 |
JPH066056B2 (ja) | 1994-01-26 |
DE4112563C2 (de) | 1992-08-20 |
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8327 | Change in the person/name/address of the patent owner |
Owner name: TAKARA BIO INC., OTSU, SHIGA, JP |
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R071 | Expiry of right |