DE4009709A1 - Optisch aktive verbindung und verfahren zu ihrer herstellung - Google Patents
Optisch aktive verbindung und verfahren zu ihrer herstellungInfo
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Description
Die Erfindung betrifft optisch aktive Verbindungen und Verfahren
zu ihrer Herstellung; sie betrifft insbesondere optisch
aktive Verbindungen, die wertvolle Ausgangsmaterialien für
chirale Dotierungsmittel, die bei der Bildung von Flüssigkristallzusammensetzungen
zugegeben werden, sowie wertvolle
Ausgangsmaterialien für Arzneimittel oder landwirtschaftliche
Chemikalien darstellen sowie ein Verfahren zu ihrer Herstellung;
sie betrifft ferner eine optisch aktive Verbindung,
die ein wertvolles chirales Dotierungsmittel (Additiv) für
die Bildung ferroelektrischer Flüssigkristallzusammensetzungen
darstellt, sowie ein Verfahren zu ihrer Herstellung.
Die heute am verbreitetsten verwendete Flüssigkristall-Display-
Zelle oder -Vorrichtung ist eine Display-Zelle oder
-Vorrichtung vom getwisteten nematischen (TN)-Modus, sie hat
jedoch den Nachteil, daß ihre Ansprechzeit langsam (lang)
ist im Vergleich zu Display-Systemen vom Licht emittierenden
Typ, wie z. B. ein Elektrolumineszenz-Display und ein Plasma-
Display. Um diesen Mangel zu beseitigen, wurden verschiedene
Untersuchungen durchgeführt.
So wird beispielsweise von N. A. Clark et al. in "Applied
Physics Letters", Band 36, 899 (1980), ein Display-System
in dem ferroelektrische Flüssigkristalle verwendet werden,
als Flüssigkristall-Display vorgeschlagen, bei dem ein anderes
Prinzip als in dem TN-Modus-Display angewendet wird.
In diesem Display-System wird die chirale smektische C-Phase
von ferroelektrischen Flüssigkristallen ausgenutzt. Es ist
dem Display vom TN-Modus überlegen in bezug auf seine hohe
Ansprechgeschwindigkeit und dgl. Die hohe Ansprechgeschwindigkeit
würde auch die Herstellung eines Displays mit einer
großen Kapazität ermöglichen. Als ferroelektrisches Flüssigkristall-
Display-Material ist daher eine ferroelektrische
Flüssigkristall-Verbindung erwünscht, welche die chirale
smektische C-Phase aufweisen kann und eine große spontane
Polarisation (Ps) ermöglicht. Bisher ist jedoch kein zufriedenstellender
ferroelektrischer Flüssigkristall bekannt.
Es ist bekannt, daß eine Flüssigkristall-Zusammensetzung
mit einer Ansprechgeschwindigkeit bzw. -empfindlichkeit erhalten
werden kann, wenn man eine optisch aktive Verbindung,
welche die Mesophase selbst nicht aufweist, smektischen
Flüssigkristallen oder nematischen Flüssigkristallen zusetzt.
Die Eigenschaften der Flüssigkristall-Zusammensetzung variiert
stark in Abhängigkeit von den Arten der verwendeten
optischen aktiven Verbindungen und den Flüssigkristall-Monomeren,
vom Verhältnis der Verbindung zum Monomeren in der
Zusammensetzung, von der Kompatibilität der Verbindung mit
dem Monomeren und dgl. Der Bereich der Erforschung von
ferroelektrischen Flüssigkristall-Materialien ist daher noch
weit (vgl. L. A. Bresner et al., "Molecular Crystals and
Liquid Crystals", Band 89, Seite 327, 1982). Im allgemeinen
ist es jedoch schwierig, optisch aktive Verbindungen zu erhalten
mit Ausnahme von Aminosäuren, organischen Säuren und
Sacchariden, die durch mikrobielle Fermentation oder als
Naturprodukte leicht zugänglich sind. Insbesondere ist es
bisher nicht gelungen, eine Technik zur Erzeugung optisch
aktiver Verbindungen zu entwickeln, die als Additiv für die
Bildung ferroelektrischer Flüssigkristall-Zusammensetzungen
durch Zugabe zu smektischen Flüssigkristallen oder
nematischen Flüssigkristallen geeignet sind.
Das heißt, wenn optisch aktive Verbindungen nach biochemischen
oder organisch-chemischen Verfahren hergestellt werden,
haben diese Verfahren einen engen Anwendungsbereich, und sie
weisen die folgenden Mängel auf.
So besteht beispielsweise bei einer asymmetrischen Synthese
als einem der biochemischen Verfahren, die unter Verwendung
von Bäcker-Hefe oder Dehydrogenase durchgeführt wird, die
Gefahr, daß die Ausbeute oder die optische Reinheit des
gewünschten Produktes stark abnimmt in Abhängigkeit von der
Löslichkeit des verwendeten Substrats in Wasser. Es ist
schwierig, dieses Verfahren auf wasserunlösliche Verbindungen
anzuwenden.
Auch bei einer asymmetrischen Umesterungsreaktion als einem
anderen der biochemischen Verfahren, bei der Tributyrin und
ein sekundärer Alkohol in einem organischen Lösungsmittel
unter Verwendung von Lipase einer Umesterung unterworfen
werden, ist die Reaktionsgeschwindigkeit sehr niedrig, und
darüber hinaus sind einige weitere Stufen zur Erzielung der
gewünschten Verbindung erforderlich, da die erhaltene optisch
aktive Verbindung auf Butylester beschränkt ist.
Andererseits gibt es bei den organisch-chemischen Verfahren
viele Fälle, bei denen die optische Reinheit und die chemische
Ausbeute niedrig sind in Abhängigkeit vom verwendeten
Substrat, und die erhaltene optisch aktive Verbindung ist auf
eine Verbindung mit einem niedrigen Molekulargewicht beschränkt.
Daher ist es nach diesen Verfahren schwierig, optisch
aktive Verbindungen herzustellen, die als Zusätze
für die Zugabe zu smektischen Flüssigkristallen oder nematischen
Flüssigkristallen für die Bildung von Flüssigkristall-
Zusammensetzungen oder als Ausgangsmaterialien für diese
Zusätze brauchbar sind.
Hauptziel der vorliegenden Erfindung ist es daher, optisch
aktive Verbindungen zu finden, die insbesondere verwendbar
sind als Ausgangsmaterialien für eine optisch aktive Verbindung
mit einer hohen Kompatibilität mit bekannten smektischen
Flüssigkristallen oder nematischen Flüssigkristallen
und die eine Flüssigkristall-Zusammensetzung mit einem hohen
Ps-Wert ergeben können, wenn sie den smektischen Flüssigkristallen
oder nematischen Flüssigkristallen zugesetzt werden,
wobei aus diesem Ausgangsmaterial leicht eine optisch reaktive
Verbindung hergestellt werden kann.
Ein weiteres Ziel der Erfindung besteht darin, ein Verfahren
zur Herstellung der obengenannten optisch aktiven Verbindungen
zu schaffen.
Ziel der Erfindung ist es ferner, eine optisch aktive Verbindung
mit einer hohen Kompatibilität mit bekannten smektischen
Flüssigkristallen oder nematischen Flüssigkristallen zu
finden, die eine Flüssigkristall-Zusammensetzung mit einem
hohen Ps-Wert ergeben kann, wenn sie den smektischen Flüssigkristallen
oder nematischen Flüssigkristallen zugesetzt
wird.
Ein weiteres Ziel der Erfindung besteht darin, ein Verfahren
anzugeben, mit dessen Hilfe die obengenannte optisch aktive
Verbindung leicht hergestellt werden kann.
Diese und weitere Ziele, Merkmale und Vorteile der Erfindung
gehen aus der nachfolgenden Beschreibung hervor.
Die Gegenstände der Erfindung sind:
eine optische aktive Verbindung der allgmeinen Formel
eine optische aktive Verbindung der allgmeinen Formel
worin A¹ eine Tetrahydro-2-pyranyl- oder 1-Ethoxyethyl-
Gruppe bedeutet;
eine optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
eine optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen und
A¹ eine Tetrahydro-2-pyranyl- oder 1-Ethoxyethyl-Gruppe bedeuten; und
eine optische aktive Verbindung der allgemeinen Formel
eine optische aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
bedeutet.
Gegenstand der Erfindung ist ferner ein Verfahren zur Herstellung
der optisch aktiven Verbindungen (1) und (2), das dadurch
gekennzeichnet ist, daß es umfaßt:
die Verwendung eines racemischen Alkohols der allgemeinen Formel
die Verwendung eines racemischen Alkohols der allgemeinen Formel
worin A¹ wie oben definiert ist,
mit einem Ester einer Fettsäure mit 2 bis 16 Kohlenstoffatomen und 2,2,2-Trichlorethanol oder einem Vinylester einer Fettsäure der allgemeinen Formel
mit einem Ester einer Fettsäure mit 2 bis 16 Kohlenstoffatomen und 2,2,2-Trichlorethanol oder einem Vinylester einer Fettsäure der allgemeinen Formel
H₂C=CR²-O-CO-R³ (3)
worin R² ein Wasserstoffatom oder die Methylgruppe und R³
eine Alkylgruppe mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeutet,
in einem organischen Lösungsmittel in Gegenwart eines Enzyms mit einer Esterase-Aktivität, um nur die R-Form des racemischen Alkohols (5) in den Ester zu überführen, und
die Abtrennung der nicht-umgesetzten S-Form des racemischen Alkohols (5) von der Reaktionsmischung.
in einem organischen Lösungsmittel in Gegenwart eines Enzyms mit einer Esterase-Aktivität, um nur die R-Form des racemischen Alkohols (5) in den Ester zu überführen, und
die Abtrennung der nicht-umgesetzten S-Form des racemischen Alkohols (5) von der Reaktionsmischung.
Gemäß einem weiteren Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung
eine optische aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen,
R⁴ eine Alkyl- oder Alkyloxy-Gruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
und A²
worin X¹ für ein Wasserstoffatom, ein Halogenatom oder eine
Cyanogruppe steht, oder
worin X¹ wie oben definiert ist, bedeuten.
Gegenstand der Erfindung ist ferner ein Verfahren zur Herstellung
der optisch aktiven Verbindung der Formel (4), das dadurch
gekennzeichnet ist, daß es umfaßt
die Veresterung einer Verbindung der allgemeinen Formel
die Veresterung einer Verbindung der allgemeinen Formel
R⁴-A²-COOH (7)
worin R⁴ und A² wie oben definiert sind,
mit einer optisch aktiven Verbindung der allgemeinen Formel
mit einer optisch aktiven Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ wie oben definiert ist.
Die vorliegende Erfindung betrifft eine optisch aktive Verbindung
der allgemeinen Formel
eine optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
und eine optisch aktive Verbindung (einen Fettsäureester
von 1-(p-Hydroxyphenylethanol) der allgemeinen Formel
In der vorliegenden Erfindung wird die R-Form eines Alkohols
der Formel (1) als "(R)-(1)-Alkohol" bezeichnet, die
S-Form eines Alkohols der Formel (1) wird als "(S)-(1)-Alkohol"
bezeichnet, die R-Form eines Esters der Formel (2) wird
als "(R)-(2)-Ester" bezeichnet, und die S-Form eines Esters
der Formel (2) wird als "(S)-(2)-Ester" bezeichnet.
Die optisch aktiven Verbindungen (1) und (2) sind Zwischenprodukte
der optisch aktiven Verbindung (3). Das heißt,
der optisch aktive Alkohol (1) ist eine Verbindung, in der
die Hydroxylgruppe an ihrem aromatischen Ring durch den
Substituenten A¹ geschützt ist unter Bildung der Verbindung
(2), in der nur die Hydroxylgruppe an dem asymmetrischen
Kohlenstoffatom verestert ist. Außerdem wird nur der Substituent
(die Schutzgruppe) A¹ durch Hydrolyse aus der Verbindung
(2) entfernt, wobei leicht die optisch aktive Verbindung
(3) gebildet wird. Daher ist es erforderlich, daß
der Substituent A¹ leicht aus der Verbindung (2) entfernt
werden kann und keine Aufspaltung der Esterbindung in der
Verbindung (2) hervorgerufen wird, wenn der Substituent
A¹ entfernt wird. Um die obengenannten Bedingungen zu erfüllen,
ist erfindungsgemäß der Substituent A¹ beschränkt auf
die Tetrahydro-2-pyranyl-Gruppe und die 1-Ethoxyethyl-Gruppe.
Wenn eine andere Gruppe als die obengenannten beiden Gruppen
als Substituent A¹ verwendet wird, ist es schwierig, die
Verbindung (3) herzustellen.
Zur Entfernung des Substituenten A¹ aus der Verbindung (2)
wird beispielsweise ein gemischtes Lösungsmittel aus Essigsäure,
Dioxan und Wasser und dgl. verwendet.
In den optisch aktiven Verbindungen (1), (2) und (3) ist die
Gruppe R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15, vorzugsweise 2 bis
12 Kohlenstoffatomen. Die Alkylgruppe R¹ kann ein asymmetrisches
Kohlenstoffatom enthalten. Wenn die Gruppe R¹ eine
solche mit 16 oder mehr Kohlenstoffatomen ist, kann nicht
erwartet werden, daß eine Flüssigkristall-Zusammensetzung,
die durch Zugabe eines aus einer solchen Verbindung hergestellten
Additive zu Flüssigkristallen erhalten worden ist,
bevorzugte Eigenschaften als Flüssigkristalle aufweist.
Auch haben Flüssigkristall-Zusammensetzungen, die durch
Zugabe der Verbindung der Formel (4), in der R¹ eine Alkylgruppe
mit mehr als 15 Kohlenstoffatomen ist, zu Flüssigkristallen
hergestellt worden sind, eine hohe Viskosität,
so daß die Ansprechempfindlichkeit bzw. -geschwindigkeit
gering ist. Außerdem kann nicht erwartet werden, daß Verbindungen
mit anderen Gruppen als der Alkylgruppe, wie sie oben
für R¹ definiert ist, ausgezeichnete Eigenschaften als Flüssigkristalle
aufweisen. Sie haben ferner die Neigung, die
Wärmebeständigkeit der smektischen Phase schnell zu verringern,
wenn sie Flüssigkristallen zugesetzt werden. Die
hier verwendete Alkylgruppe umfaßt eine halogenierte Alkylgruppe,
in der ein Wasserstoffatom durch ein Halogenatom
substituiert ist, eine Gruppe, in der eine Ätherbindung in
die Alkylgruppe eingeführt ist, eine Gruppe, in der eine
Esterbindung in die Alkylgruppe eingeführt ist. Zusätzlich
zu diesen Gruppen kann als Gruppe R¹ auch ein Rest von Alkyläthern
mit einem asymmetrischen Kohlenstoffatom, ein Rest
eines Milchsäurederivats, ein Rest eines Aminosäurederivats,
ein Rest eines Apfelsäurederivats und dgl. verwendet werden.
Konkrete Beispiele für die Alkylgruppe R¹ sind beispielsweise
Methyl-, Ethyl-, Propyl-, Isopropyl-, Butyl-, Isobutyl-,
Pentyl-, 1- oder 2-Methylbutyl-, Hexyl-, 1- oder 3-
Methylpentyl-, Heptyl-, 1- oder 4-Methylhexyl-, Octyl-,
1-Methylheptyl-, Nonyl-, 1- oder 6-Methyloctyl-, Decyl-,
1-Methylnonyl-, Undecyl-, 1-Methyldecyl-, Dodecyl-, 1-Methylundecyl-
Gruppen und dgl. Die Alkylgruppe R¹ ist auf die
beispielhaft angegebenen Gruppen nicht beschränkt. Die Alkylgruppe
R¹ kann ein asymmetrisches Kohlenstoffatom enthalten.
Die optisch aktive Verbindung (3) ist verwendbar als Ausgangsmaterial
für chirale Dotierungsmittel (Additive) mit
einer hohen Kompatibilität mit verschiedenen bekannten
Flüssigkristallen. Beispiele für chirale Dotierungsmittel,
die smektischen Flüssigkristallen oder nematischen Flüssigkristallen
zugesetzt werden sollen, sind folgende:
worin R eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen bedeutet
und R¹ wie oben definiert ist
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind
worin R und R¹ wie oben definiert sind und dgl.
Die chiralen Dotierungsmittel können aus der nachstehend
angegebenen Verbindung (3) hergestellt werden. Wenn die
chiralen Dotierungsmittel, die aus der erfindungsgemäßen
Verbindung (3) hergestellt sind, smektischen Flüssigkristallen
oder nematischen Flüssigkristallen zugesetzt werden,
können die erhaltenen Mischungen hohen Ps-Werte in der smektischen
Phase oder in der nematischen Phase und die gewünschte
Helixsteigung aufweisen.
Außerdem sind alle optisch aktiven Verbindungen (1), (2) und
(3) geeignet für die Verwendung als Ausgangsmaterialien
für Arzneimittel, landwirtschaftliche Chemikalien, Parfüme
und dgl.
In der erfindungsgemäßen optisch aktiven Verbindung der Formel
(4)
steht die Gruppe R⁴ für eine Alkyl- oder Alkyloxygruppe mit
1 bis 15 Kohlenstoffatomen, vorzugsweise 2 bis 12 Kohlenstoffatomen,
die Gruppe A² steht für
worin X¹ ein Wasserstoffatom,
ein Halogenatom oder eine Cyanogruppe darstellt, oder
worin X¹ wie oben definiert
ist.
Wenn die Gruppe R⁴ eine solche mit 16 oder mehr Kohlenstoffatomen
ist, weisen die Flüssigkristall-Zusammensetzungen,
die durch Zugabe der Verbindung (4) zu Flüssigkristallen
erhalten worden sind, eine hohe Viskosität auf, und deshalb
ist ihre Ansprechzeit langsam (lang). Verbindungen, wie sie
oben für die Gruppe R⁴ definiert sind, sind nicht geeignet,
da sie die Neigung haben, die Wärmebeständigkeit der smektischen
Phase schnell zu verringern, wenn sie Flüssigkristallen
zugesetzt werden.
Beispiele für die Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
der Gruppe R⁴ sind Methyl-, Ethyl-, Propyl-, Isopropyl-,
Butyl-, Isobutyl-, Pentyl-, 1- oder 2-Methylbutyl-, Hexyl-,
1- oder 3-Methylpentyl-, Heptyl-, 1- oder 4-Methylhexyl-,
Octyl-, 1-Methylheptyl-, Nonyl-, 1- oder 6-Methyloctyl-,
Decyl-, 1-Methylnonyl-, Undecyl-, 1-Methyldecyl-, Dodecyl-,
1-Methylundecylgruppen und dgl. Die Alkylgruppe R⁴ ist nicht
auf die beispielhaft angegebenen Gruppen beschränkt. Die
Alklygruppe R⁴ kann ein asymmetrisches Kohlenstoffatom
enthalten.
Beispiele für die Alkyloxygruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
der Gruppe R⁴ sind Methoxy-, Ethoxy-, Propoxy-, Isopropoxy-,
Butoxy-, Isobutoxy-, Pentyloxy-, 1- oder 2-Methylbutyloxy-,
Hexyloxy-, 1- oder 3-Methylpentyloxy-, Heptyloxy-, 1- oder
4-Methylhexyloxy-, Octyloxy-, 1-Methylheptyloxy-, Nonyloxy-,
1- oder 6-Methyloctyloxy-, Decyloxy-, 1-Methylnonyloxy-,
Undecyloxy-, 1-Methyldecyloxy-, Dodecyloxy-, 1-Methylundecyloxygruppen
und dgl. Die Alkyloxygruppe R⁴ ist nicht auf die
beispielhaft angegebenen Gruppen beschränkt. Die Alkyloxygruppe
R⁴ kann ein asymmetrisches Kohlenstoffatom enthalten.
In der Formel (4) bedeutet die Gruppe A²
Es kann angenommen werden, daß die für die Bildung von
ferroelektrischen Flüssigkristallen erforderliche smektische
Phase leicht erhalten werden kann, da die optisch aktive
Verbindung (4) eine solche Gruppe aufweist.
Wenn X¹ in der Formel (4) kein Wasserstoffatom, kein Halogenatom
und keine Cyanogruppe ist, ist es außerdem schwierig,
durch Zugabe der Verbindung mit einer solchen Struktur eine
ferroelektrische Flüssigkristall-Zusammensetzung zu erhalten.
Bezüglich der optisch aktiven Verbindung (4) mit zwei asymmetrischen
Kohlenstoffatomen gibt es die (S,S)-Form, die
(S,R)-Form, die (R,S)-Form und die (R,R)-Form in bezug auf
jedes asymmetrische Kohlenstoffatom.
Vorzugsweise beträgt die optische Reinheit der Verbindung (4)
100%, da die ferroelektrischen Flüssigkristall-Zusammensetzungen
erhalten werden können durch Zugabe einer geringen
Menge (2 bis 10 Gew.-%) der Verbindung (4) und der Einfluß
bezüglich der Phasenumwandlungstemperatur der smektischen
Phase vernachlässigt werden kann. Wenn jedoch die optische
Reinheit nicht weniger als etwa 85% beträgt, können die
Verbindungen (4) ohne Problem zur Herstellung der ferroelektrischen
Flüssigkristall-Zusammensetzung verwendet
werden.
Die optisch aktiven Verbindungen (4) sind in der Regel weiß,
obgleich ihre Farbe variiert in Abhängigkeit von der Anzahl
der Kohlenstoffatome der Gruppe R⁴, der Alkyl- oder Alkyloxygruppen.
Die optisch aktiven Verbindungen (4) weisen eine hohe Kompatibilität
mit vielen bekannten Flüssigkristallen auf, und
sie können daher im Gemisch damit als Komponente für
Flüssigkristall-Materialien verwendet werden. Insbesondere
dann, wenn die Verbindungen (4) smektischen Flüssigkristallen
zugesetzt werden, können die erhaltenen Gemische
hohe Ps-Werte in der smektischen Phase aufweisen.
Die optisch aktiven Verbindungen (1), (2), (3) und (4)
können wie folgt hergestellt werden:
Die Verbindung (3) wird hergestellt durch Entfernung der
Schutzgruppe A¹ aus der Verbindung (2), die durch asymmetrische
Umesterung des racemischen Alkohols (5) mit dem
Fettsäureester von 2,2,2-Trichloroethanol oder dem Vinylester
(6) in dem organischen Lösungsmittel in Gegenwart
des Enzyms mit einer Esterase-Aktivität erhalten worden ist.
Die optisch aktive Verbindung (3) [optisch aktiver Ester von
Fettsäure und 1-(p-Hydroxyphenyl)ethanol] wird beispielsweise
nach dem folgenden Reaktionsschema hergestellt:
Die optisch aktiven Verbindungen (1) und (2) werden hergestellt,
indem man einen racemischen Alkohol der Formel
worin A¹ wie oben definiert ist, einer Zerlegung in die
optischen Antipoden unterwirft. Der optisch aktive
Alkohol der Formel (1) enthält die S-Form oder die R-Form
des Alkohols. Der optisch aktive Ester
der Formel (2) ist der Fettsäureester, der dem optisch
aktiven Alkohol (1) entspricht. In dem erfindungsgemäßen
Herstellungsverfahren wird der racemische Alkohol (5) mit
einem Ester einer Fettsäure mit 2 bis 16 Kohlenstoffatomen
und von 2,2,2-Trichlorethanol oder einem Vinylether einer
Fettsäure der Formel (6)
H₂C=CR²-O-CO-R³ (6)
worin R² ein Wasserstoffatom oder die Methylgruppe und R³
eine Alkylgruppe mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeuten,
in einem organischen Lösungsmittel in Gegenwart eines Enzyms
mit einer Esterase-Aktivität umgesetzt. Da das Enzym mit
einer Esterase-Aktivität selektiv nur die R-Form des racemischen
Alkohols (5) gemäß der obengenannten Reaktion verestern
kann, können der (R)-(2)-Test und der (S)-(1)-Alkohol erhalten
werden. Auch kann der (R)-(2)-Ester durch Hydrolyse
unter Verwendung eines Alkalihydroxids, wie KOH oder NaOH,
in den (R)-(1)-Alkohol überführt werden, und andererseits
kann der (S)-(1)-Alkohol durch Veresterung in den (S)-(2)-
Ester überführt werden.
Das Verfahren zur Herstellung des racemischen Alkohols (5)
unterliegt keinen speziellen Beschränkungen, und es können
beliebige Verfahren durchgeführt werden, so lange dabei der
racemische Alkohol (5) erhalten wird.
So kann beispielsweise der racemische Alkohol der Formel (5),
in dem A¹ eine Ethoxxyethylgruppe darstellt, erhalten werden
durch Schützen der Hydroxylgruppe von p-Hydroxyacetophenon
mit Ethylvinyläther und Reduzieren des dabei erhaltenen
Produkts mit einem Reduktionsmittel, wie Natriumborhydrid.
In entsprechender Weise kann der racemische Alkohol der
Formel (5), worin A¹ eine Tetrahydro-2-pyranyl-Gruppe darstellt,
erhalten werden durch Schützen der Hydroxylgruppe
von p-Hydroxyacetophenon mit Dihydropyran
und Reduzieren.
Der Ester der Fettsäure mit 2 bis 16 Kohlenstoffatomen und
von 2,2,2-Trichlorethanol oder der Vinylester der Fettsäure
der Formel (6):
H₂C=CR²-O-CO-R³ (6)
worin R² ein Wasserstoffatom oder die Methylgruppe und R³
eine Alkylgruppe mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeuten,
werden als Acylierungsmittel in der obengenannten Reaktion
verwendet. Die Anzahl der Kohlenstoffatome der Fettsäure in
dem Fettsäureester von 2,2,2-Trichloroethanol oder in dem
Vinylester (6) entspricht der Anzahl der Kohlenstoffatome
der Gruppe R¹ in den Verbindungen (2) und (3), so daß das
gewünschte Produkt erhalten werden kann durch geeignete
Auswahl und Verwendung der Fettsäure mit der gewünschten
Anzahl von Kohlenstoffatomen.
Beispiele für Fettsäureester von 2,2,2-Trichloroethanol
sind 2,2,2-Trichlorethylacetat, 2,2,2-Trichloroethylbutyrat,
2,2,2-Trichloroethylheptanoat und dgl.
Beispiele für den Vinylester von Fettsäuren sind Isopropenylacetat,
Vinylacetat, Vinylvalerat, Vinyloctanoat und dgl.
Bezüglich des Vinylesters der Fettsäure (6) gilt, daß dann,
wenn die Anzahl der Kohlenstoffatome der Alkylgruppe R³
9 oder mehr beträgt, es schwierig ist, Ester der Formel (6)
zu synthetisieren, in denen R³ eine Alkylgruppe mit 9 oder
mehr Kohlenstoffatomen bedeutet, und eine solche Synthese
ist wirtschaftlich nachteilig.
Als Enzym mit einer Esterase-Aktivität kann jedes beliebige
Enzym ohne Beschränkung verwendet werden, so lange das
Enzym asymmetrisch nur die R-Form des racemischen Alkohols
(5) verestern kann. Sowohl Enzyme, die von Mikroorganismen
gebildet werden, als auch Enzyme, die aus Tieren stammen,
können verwendet werden. Es können auch Enzyme verwendet
werden, die bereits auf den Markt gebracht sind oder nicht.
Beispiele für Enzyme, die von Mikroorganismen abgeleitet
sind, sind Enzyme, die gebildet werden von Mikroorganismen,
die zu Pseudomonas (Pseudomonas aeruginosa), Achromobacterium
(Achromobacterium viscosm) oder Candida (Candida
cylindracea) gehören. Beispiele für Enzyme, die aus Tieren
stammen, sind Enzyme, die im Pankreas von Schweinen gebildet
werden. Die erfindungsgemäß verwendbaren Enzyme sind darauf
jedoch nicht beschränkt.
Beispiele für Enzyme, die auf den Markt gebracht worden
sind, sind "Lipase Amano P" (Warenzeichen), ein im Handel erhältliches
Produkt der Firma Amano Seiyaku Kabushiki Kaisha,
"Lipase Toyo" (Warenzeichen), ein im Handel erhältliches
Produkt der Firma Toyo Jozo Kabushiki Kaisha, "Pancreatin
Lipase" (Warenzeichen), ein im Handel erhältliches Produkt
der Firma Amano Seiyaku Kabushiki Kaisha, "Pancreatin
Lipase" (Warenzeichen), ein im Handel erhältliches Produkt
der Firma SIGUMA Chemical Company, "Lipase B" (Warenzeichen)
für ein im Handel erhältliches Produkt der Firma Wako
Junyaku Kabsihiki Kaisha, "Lipase MY" (Warenzeichen),
ein im Handel erhältliches Produkt der Firma Meito
Sangyo Kabushiki Kaisha und dgl.
Es kann jedes beliebige organische Lösungsmittel bei der Zerlegung
in die optischen Antipoden ohne spezielle Beschränkung
verwendet werden, so lange der racemische Alkohol (5) und das
Acylierungsmittel darin gelöst werden können und die Esterase-
Aktivität des Enzyms nicht verhindert wird. Beispiele für
geeignete organische Lösungsmittel sind Diethyläther, Methylethyläther,
Diisopropyläther, n-Hexan, Cyclohexan, n-Heptan,
Toluol und dgl.
Die Lösung, die den racemischen Alkohol (5), das Acylierungsmittel
und das Enzym mit der Esterase-Aktivität in dem organischen
Lösungsmittel enthält, kann nach irgendeinem beliebigen
Verfahren ohne spezielle Beschränkung hergestellt werden.
So ist es beispielsweise möglich, daß der racemische Alkohol
(5), das Acylierungsmittel und das Enzym mit der Esterase-
Aktivität auf einmal dem organischen Lösungsmittel zugesetzt
werden zur Herstellung der Lösung. Es ist auch möglich, die
Lösung oder Dispersion des racemischen Alkohols (5), die
Lösung oder Dispersion des Acylierungsmittels und die Lösung
oder Dispersion des Enzyms getrennt herzustellen und sie dann
miteinander zu mischen zur Herstellung der gewünschten Lösung.
Ferner ist es möglich, die Lösung einer Komponente, die in
dem Lösungsmittel schwerlöslich ist, jedoch beim Erhitzen
gelöst werden kann, zuerst herzustellen und die andere Lösung
dazu zuzugeben.
Vorzugsweise beträgt die Menge des Acylierungsmittels, bezogen
auf den racemischen Alkohol (5), 0,5 bis 2 Mol, insbesondere
1 bis 1,5 Mol, pro Mol Alkohol (5). Wenn die Menge des Acylierungsmittels
weniger als 0,5 Mol pro Mol des Alkohols (5)
beträgt, kann nicht die gesamte R-Form des racemischen Alkohols
(5) in den Ester überführt werden, da die Molmenge des
Acylierungsmittels kleiner ist als diejenige der R-Form des
Alkohols (5). Wenn andererseits die Menge des Acylierungsmittels
mehr als 2 Mol pro Mol des Alkohols (5) beträgt,
steigt die Menge des Acylierungsmittels, die an der Reaktion
nicht teilnimmt, so daß es wirtschaftlich nachteilig ist.
Vorzugsweise beträgt die Menge des Enzyms mit der Esterase-
Aktivität 10 bis 600 g, insbesondere 100 bis 500 g, pro Mol
des racemischen Alkohols (5). Wenn die Menge des Enzyms weniger
als 10 g beträgt, ist die Reaktionsgeschwindigkeit
so langsam, daß es wirtschaftlich nachteilig ist. Wenn andererseits
die Menge des Enzyms mehr als 600 g beträgt, kann
die Reaktionsgeschwindigkeit für die Menge des verwendeten
Enzyms nicht erhöht werden, so daß es wirtschaftlich nachteilig
ist.
Vorzugsweise beträgt die Konzentration der Summe von racemischem
Alkohol (5) und Acylierungsmittel 0,1 bis 50 Gew.-%,
insbesondere 10 bis 30 Gew.-%, bezogen auf das Gewicht der
Lösung. Wenn die Konzentration weniger als 0,1 Gew.-%
beträgt, ist die Ausbeute des erhaltenen Produkts gering,
bezogen auf die Menge der verwendeten Lösung, so daß es
wirtschaftlich nachteilig ist. Wenn andererseits die Konzentration
mehr als 50 Gew.-% beträgt, wird die Reaktionsgeschwindigkeit
herabgesetzt in Abhängigkeit von der zu hohen
Konzentration, wodurch die Ausbeute abnimmt.
Die Reaktion wird bei einer Temperatur in der Regel von 10
bis 40°C, vorzugsweise von 25 bis 30°C, durchgeführt, da
ein Enzym mit Esterase-Aktivität verwendet wird.
Die Reaktionszeit variiert in Abhängigkeit von der Art des
racemischen Alkohols (5) und der Art des Enzyms mit Esterase-
Aktivität, dem Verhältnis zwischen dem verwendeten
Alkohol (5) und dem verwendeten Enzym und den Reaktionsbedingungen,
wie z. B. den Rührbedingungen, so daß sie nicht
allgemein angegeben werden kann. In der Regel beträgt die
Reaktionszeit vorzugsweise 1 bis 150 Stunden, insbesondere
24 bis 96 Stunden.
Das Ende der Reaktion kann durch Messung der Umwandlung
des racemischen Alkohols (5) in den Ester durch Gaschromatographie
bestätigt werden, d. h., die Reaktion ist beendet,
wenn die Umwandlung konstant ist.
Die so erhaltene Reaktionsmischung wird filtriert, um das
Enzym mit Esterase-Aktivität zu entfernen. Nach der Entfernung
des organischen Lösungsmittels, je nach Bedarf, wird
dann der (R)-(2)-Ester von dem (S)-(1)-Alkohol abgetrennt,
beispielsweise durch Anwendung der Silicagel-Säulenchormatographie.
Wenn das erhaltene Produkt Alkohole enthält, die
durch Acylierung gebildet worden sind, oder wenn es das
nicht-umgesetzte Acylierungsmittel enthält, kann ferner eine
Reinigung, wie z. B. eine Verdampfung, durchgeführt werden.
Als Entwicklungslösungsmittel, das in der Säulenchromatographie
angewendet wird, kann ein Gemisch aus Ethylacetat
und n-Hexan (Ethylacetat/n-Hexan = 1/4 bis 1/20, bezogen auf
das Volumen), ein Gemisch aus Chloroform und Methanol (Chloroform/
Methanol = 1/10 bis 1/40, bezogen auf das Volumen) und
dgl. verwendet werden.
Das von der Reaktionsmischung abgetrennte verwendete Enzym
kann wiederverwendet werden.
Die Identifizierung der Verbindungen (1) und (2) kann durchgeführt
werden durch Messung des ¹H-NMR-Spektrums, des
IR-Spektrums und der spezifischen Drehung.
Dann wird der erhaltene (R)-(2)-Ester chemisch oder enzymatisch
hydrolysiert, wobei leicht der (R)-(1)-Alkohol gebildet
wird, der ein Enantiomer des (S)-(1)-Alkohols ist. Auch
der (S)-(1)-Alkohol wird verestert unter Bildung des (S)-(2)-
Esters, der ein Enantiomer des (R)-(2)-Esters ist.
Auf diese Weise können die optisch aktiven Verbindungen
(1) und (2) in Ausbeuten von 80 bis 90% erhalten werden.
Die optisch aktive Verbindung (2) kann leicht in die optisch
aktive Verbindung (3) (den Fettsäureester von p-Hydroxyphenylethanol)
überführt werden durch Entfernung der Schutzgruppe
A¹.
Dann wird die optisch aktive Verbindung der Formel (4):
worin A², R¹ und R⁴ wie oben definiert sind,
hergestellt, indem man eine Verbindung der Formel (7)
hergestellt, indem man eine Verbindung der Formel (7)
R⁴-A²-COOH (7)
worin R⁴ und A² wie oben definiert sind,
einer Veresterung mit der Verbindung der Formel (3) unterwirft
einer Veresterung mit der Verbindung der Formel (3) unterwirft
worin R¹ wie oben definiert ist.
So wie beispielsweise die Verbindung der Formel (4), in
der R⁴ eine Alkylgruppe und A²
darstellt, beispielsweise nach dem folgenden Reaktionsschema
hergestellt:
Das heißt, der Methylester der Terephthalaldehydsäure wird
umgesetzt mit einem Diol mit einer Alkylgruppe, die der
Gruppe R⁴ der gewünschten Verbindung (4) entspricht, unter
Bildung eines trans-2-(p-Carbomethoxyphenyl)-5-alkyl-
1,3-dioxans. Dann wird das Dioxan mit KOH/MeOH (1 Äquivalent)
hydrolysiert unter Bildung einer Verbindung der Formel
(7). Schließlich wird die Verbindung (7) mit dem Fettsäureester
von 1-(p-Hydroxyphenyl)ethanol der Formel (3) umgesetzt
unter Bildung der gewünschten Verbindung (4).
Die Verbindung der Formel (4), in der A²
bedeutet, wird auch beispielsweise hergestellt nach dem
folgenden Reaktionsschema:
Das heißt, Chlorwasserstoffgas wird durch ein p-Alkyloxy-
oder p-Alkylcyanobenzol in einem Gemisch aus absolutem
Ethanol und wasserfreiem Benzol hindurchgeleitet unter Bildung
eines Imidethyläthers [Reaktion (1)], dann wird der
Äther mit Ammoniakgas in Ethanol umgesetzt unter Bildung eines
p-Alkoxy- oder p-Alkyl-phenylamidinhydrochlorids
[Reaktion (2)] und das Hydrochlorid wird mit Diethylethoxymethylenmalonat
in einer Natriummethylatlösung (Natrium/EtOH)
umgesetzt unter Bildung eines Ethyl-2-(p-alkyloxyphenyl)-
4-hydroxypyrimidincarboxylats oder Ethyl-2-(p-alkylphenyl)-
4-hydroxypyrimidin-5-carboxylats [Reaktion (3)]. Nachdem
die Hydroxylgruppe in der 4-Position des Pyrimidinringes
mit POCl₃ halogeniert (chloriert) worden ist [Reaktion (4)],
wird eine Hydrierung mit Pd/BaSO₄ durchgeführt unter Bildung
eines Ethyl-2-(p-alkyloxyphenyl)pyrimidin-5-carboxylats
oder Ethyl-2-(p-alkylphenyl)pyrimidin-5-carboxylats [Reaktion
(5)]. Das erhaltene Carboxylat wird in KOH/MeOH (1-N-
Lösung) hydrolysiert unter Bildung einer 2-(p-Alkyloxyphenyl)-
pyrimidin-5-carbonsäure oder einer 2-(p-Alkylphenyl)pyrimidin-
5-carbonsäure der Formel (7). Die Veresterung der Verbindung
(7) mit dem Fettsäureester von 1-(p-Hydroxyphenyl)-
ethanol der Formel (3) wird durchgeführt zur Herstellung der
gewünschten Verbindung (4).
Die Veresterung der Verbindung (7) und der Verbindung (3)
kann durchgeführt werden unter Anwendung irgendeines bekannten
Verfahrens, wie z. B. des DCC-Verfahrens oder des Säurechloridverfahrens,
und die optisch aktive Verbindung (4)
kann in einer Ausbeute von 80 bis 90% hergestellt werden.
Die Erfindung wird nachstehend unter Bezugnahme auf die folgenden
Beispiele näher beschrieben und erläutert, in denen
alle Prozentsätze und Teile, wenn nicht anderes angegeben
ist, auf das Gewicht bezogen sind. Es sei darauf hingewiesen,
daß die Erfindung keineswegs auf diese Beispiele beschränkt
ist.
In jedem Beispiel ist eine Verbindung mit zwei asymmetrischen
Kohlenstoffatomen der Einfachheit halber als (S,S)-Form,
(S,R)-Form, (R,S)-Form oder (R,R)-Form ausgedrückt, die eine
absolute Konfiguration darstellt, die natürlich aufgrund
der Ausgangsmaterialien erwartet werden kann, so daß eine
absolute Konfiguration der Verbindung nicht angegeben ist.
Auch bei der Auftrennung in die optischen Antipoden unter Verwendung
eines Enzyms ist ein Enantiomer, das erhalten wird,
durch Durchführung der Umesterung mit einem Fettsäureester
von 2,2,2-Trichlorethanol oder einem Vinylester (6) ausgedrückt
durch die R-Form entsprechend der Beschreibung im
"Journal of American Chemical Society", 107, 7072 (1985).
i) Zuerst wurde 4-(1-Ethoxyethoxy)acetophenon wie nachstehend
angegeben hergestellt.
In 100 ml Diethyläther wurden 13,6 g (0,1 Mol) p-Hydroxyacetophenon
und Vinyläther gelöst, es wurde 1 ml konzentrierte
Chlorwasserstoffsäure zu der erhaltenen Lösung zugegeben, und
die Mischung wurde 4 Stunden lang unter Rückfluß erhitzt und
dann 16 Stunden lang bei Raumtemperatur reagieren gelassen.
Die Reaktionsmischung wurde mit 50 ml einer 0,1 N wäßrigen
Natriumhydroxidlösung zweimal gewaschen und dann dreimal mit
Wasser gewaschen. Die resultierende Ätherschicht wurde mit
wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet, und der Äther wurde
unter vermindertem Druck abdestilliert, wobei man 20,5 g
4-(1-Ethoxyethoxy)acetophenon erhielt (Ausbeute 92%).
Die δ-Werte (ppm) des ¹H-NMR-Spektrums des Produkts (300
MHz, CDCl₃) waren wie folgt:
1.17 (t, 3H), 1.51 (d, 3H),
2.52 (s, 3H), 3.50 (m, 1H),
3.72 (m, 1H), 5.48 (q, 1H),
6.95 (d, 2H), 7.88 (d, 2H).
2.52 (s, 3H), 3.50 (m, 1H),
3.72 (m, 1H), 5.48 (q, 1H),
6.95 (d, 2H), 7.88 (d, 2H).
ii) Dann wurde 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol wie folgt
hergestellt:
In 100 ml Ethanol wurden 15,0 g (72 mMol) 4-(1-Ethoxyethoxy)
acetophenon, wie es im Beispiel (i) erhalten worden war,
gelöst, es wurden 2,2 g (58 mMol) NaBH₄ zugegeben, und die
Mischung wurde 5 Stunden lang reagieren gelassen. Nachdem
das Ethanol unter vermindertem Druck abdestilliert worden war,
wurden 200 ml Äther zugegeben, und die resultierende Mischung
wurde mit verdünnter Chlorwasserstoffsäure gewaschen, dann mit
Wasser gewaschen und schließlich mit einer wäßrigen Natriumhydrogencarbonatlösung
gewaschen. Die resultierende Ätherschicht
wurde mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet,
und das Lösungsmittel wurde unter vermindertem Druck abdestilliert,
wobei man 13,6 g 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)
ethanol erhielt (Ausbeute 90%).
Die δ-Werte (ppm) des ¹H-NMR-Spektrums des Produkts (300 MHz,
CDCl₃) waren wie folgt:
1.17 (t, 3H), 1.44 (d, 3H),
1.46 (d, 3H), 1.93 (s, 1H),
3.52 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
4.82 (m, 1H), 5.34 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
1.46 (d, 3H), 1.93 (s, 1H),
3.52 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
4.82 (m, 1H), 5.34 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
i) Zuerst wurde die Umesterung mit 2,2,2-Trichlorethylbutyrat
wie folgt durchgeführt:
Zu 120 ml wasserfreiem Diethyläther wurden 21 g (0,1 Mol) 1-
(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol, 22,4 g (0,1 Mol) 2,2,2-
Trichloroethylbutyrat und 25,2 g Lipase P (im Handel erhältlich
von der Firma Amano Seiyaku Kabushiki Kaisha) zugegeben,
und die Mischung wurde 90 Stunden lang bei 25°C unter Rühren
reagieren gelassen. Die Reaktionsmischung wurde abgesaugt
zur Entfernung von Lipase P, das Filtrat wurde eingeengt, und
das Konzentrat wurde dann durch Silicagelchromatographie
gereinigt [Ethylacetat/n-Hexan = 1/4, bezogen auf das Volumen
(das gilt auch für die nachstehenden Angaben)], wobei man
9,6 g der S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol
(Ausbeute 91%) und 13,0 g der R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)
phenyl)ethylbutyrat (Ausbeute 93%) erhielt.
Bezüglich des jeweils erhaltenen Produkts waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse, der IR-Spektralanalyse und der
spezifischen Drehung [a] wie folgt:
S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
1.17 (t, 3H), 1.44 (d, 3H),
1.46 (d, 3H), 1.93 (s, 1H),
3.52 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
4.82 (m, 1H), 5.34 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3398, 2974, 2931, 2889, 1612, 1512,
1446, 1381, 1342, 1238, 1176, 1134,
1118, 1076, 1049, 1010, 945, 898,
837.
[α]=-36.1° (CHCl₃, c=1).
1.17 (t, 3H), 1.44 (d, 3H),
1.46 (d, 3H), 1.93 (s, 1H),
3.52 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
4.82 (m, 1H), 5.34 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3398, 2974, 2931, 2889, 1612, 1512,
1446, 1381, 1342, 1238, 1176, 1134,
1118, 1076, 1049, 1010, 945, 898,
837.
[α]=-36.1° (CHCl₃, c=1).
R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylbutyrat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.90 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.47 (d, 3H), 1.49 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 2.27 (t, 2H),
3.51 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
5.35 (q, 1H), 5.84 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.26 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2974, 2935, 2877, 1735, 1612, 1585,
1512, 1454, 1419, 1381, 1346, 1288,
1176, 1134, 1099, 1076, 1060, 1014,
1003, 941, 898, 833, 551.
[α]=+84.0° (CHCl₃, c=1).
0.90 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.47 (d, 3H), 1.49 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 2.27 (t, 2H),
3.51 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
5.35 (q, 1H), 5.84 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.26 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2974, 2935, 2877, 1735, 1612, 1585,
1512, 1454, 1419, 1381, 1346, 1288,
1176, 1134, 1099, 1076, 1060, 1014,
1003, 941, 898, 833, 551.
[α]=+84.0° (CHCl₃, c=1).
ii) Das Verfahren des Beispiels 2 (i) wurde wiederholt, wobei
diesmal 2,2,2-Trichlorethylheptanoat anstelle von 2,2,2-
Trichloroethylbutyrat verwendet wurde, wobei man 9,5 g der
S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol (Ausbeute
90%) und 14,8 der R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)
ethylheptanoat (Ausbeute 92%) erhielt.
Bezüglich der jeweils erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse und
der spezifischen Drehung [α] wie folgt:
Bezüglich der S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol
wurden die gleichen Ergebnisse wie diejenigen der in Beispiel
2 (i) erhaltenen S-Form erzielt bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse
und der IR-Spektralanalyse, [α]=-36,1° (CHCl₃,
c=1).
R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylheptanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.84 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.24 (m, 6H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.58 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.49 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2958, 2931, 2870, 2858, 1735,
1612, 1585, 1512, 1454, 1419, 1377,
1342, 1288, 1238, 1168, 1134, 1118,
1099, 1076, 1057, 1014, 1003, 941,
898, 833, 551.
[α]=+69.0° (CHCl₃, c=1).
0.84 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.24 (m, 6H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.58 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.49 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2958, 2931, 2870, 2858, 1735,
1612, 1585, 1512, 1454, 1419, 1377,
1342, 1288, 1238, 1168, 1134, 1118,
1099, 1076, 1057, 1014, 1003, 941,
898, 833, 551.
[α]=+69.0° (CHCl₃, c=1).
iii) Das Verfahren des Beispiels 2 (i) wurde wiederholt, wobei
diesmal Vinylvalerat anstelle von 2,2,2-Trichloroethylbutyrat
verwendet wurde, wobei man 9,8 g der S-Form von
1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol (Ausbeute nur 93%) und
11,8 g der R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylvalerat
(Ausbeute 94%) erhielt.
Bezüglich der jeweils erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse, der IR-Spektralanalyse und
der spezifischen Drehung [α] die folgenden:
Bezüglich der S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol
wurden die gleichen Ergebnisse wie diejenigen der in Beispiel
2 (i) erhaltenen S-Form erzielt bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse
und der FT-IR-Spektralanalyse, [α]=-36,1° (CHCl₃,
c=1).
R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylvalerat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.86 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.26 (m, 2H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.50 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2974, 2935, 2877, 1735, 1612, 1585,
1512, 1454, 1419, 1381, 1346, 1288,
1238, 1176, 1134, 1099, 1076, 1060,
1014, 1003, 941, 898, 833, 551.
[α]=+80.2° (CHCl₃, c=1).
0.86 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.26 (m, 2H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.50 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2974, 2935, 2877, 1735, 1612, 1585,
1512, 1454, 1419, 1381, 1346, 1288,
1238, 1176, 1134, 1099, 1076, 1060,
1014, 1003, 941, 898, 833, 551.
[α]=+80.2° (CHCl₃, c=1).
iv) Die R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol wurde
wie folgt hergestellt:
In 210 ml einer 1N-Ethanollösung von Kaliumhydroxid wurden
28 g (0,1 Mol) der R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)
ethylbutyrat, wie es in Beispiel 2 (i), (ii) oder (iii) erhalten
worden war, gelöst, und die Reaktionsmischung wurde
unter vermindertem Druck eingeengt. Zu dem Rückstand wurden
200 ml Äther zugegeben, und es wurde mit einer wäßrigen 2N-
Natriumhydroxidlösung zweimal gewaschen und dann mit Wasser
dreimal gewaschen. Die resultierende Ätherschicht wurde mit
wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet, und der Äther wurde
unter vermindertem Druck abdestilliert. Der Rückstand wurde
durch Silicagelchromatographie (Ethylacetat/n-Hexan = 1/4)
gereinigt, wobei man 18,9 g der R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)
phenyl)ethanol erhielt (Ausbeute 90%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse, der IR-Spektralanalyse und der spezifischen
Drehung [α wie folgt:
Es wurden die gleichen Ergebnisse wie diejenigen der in
Beispiel 2 (i) erhaltenen Verbindung bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse
und der FT-IR-Spektralanalyse erzielt, [α]=+36,9°
(CHCl₃, c=1).
2i) Die S-Form eines Fettsäureesters von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol
wurde wie folgt hergestellt:
In 50 ml Pyridin wurden 0,05 Mol der S-Form von 1-(4-(1-
Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol gelöst, und es wurden 0,06 Mol
eines Säurechlorids einer Fettsäure [Butansäure (Buttersäure),
Hexansäure, Heptansäure oder Decansäure] portionsweise zu der
Mischung zugetropft. Nach Beendigung der Zugabe wurde die
Reaktion weitere 10 Stunden lang fortgesetzt, und die Reaktionsmischung
wurde unter vermindertem Druck eingeengt. Zu dem
Rückstand wurden 100 ml Diethyläther zugegeben, und er wurde
mit verdünnter Chlorwasserstoffsäure, dann mit Wasser und
schließlich mit einer 10%igen wäßrigen Natriumhydrogencarbonatlösung
gewaschen. Die resultierende Ätherschicht wurde mit
wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet, und der Äther wurde
unter vermindertem Druck abdestilliert, wobei man die S-Form
des Fettsäureesters (der dem verwendeten Säurechlorid entsprach)
von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol erhielt.
Die Ergebnisse in bezug auf die Ausbeute und die spezifische
Drehung [α] der jeweils erhaltenen Verbindung sind in der
folgenden Tabelle I angegeben.
Die Ergebnisse der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der IR-Spektralanalyse
waren folgende:
S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylbutyrat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.90 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.47 (d, 3H), 1.49 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 2.27 (t, 2H),
3.51 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
5.35 (q, 1H), 5.84 (q, 1H),
6.94 (q, 2H), 7.26 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2974, 2935, 2877, 1735, 1612, 1585,
1512, 1454, 1419, 1381, 1346, 1288,
1238, 1176, 1134, 1099, 1076, 1060,
1014, 1003, 941, 898, 833, 551.
0.90 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.47 (d, 3H), 1.49 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 2.27 (t, 2H),
3.51 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
5.35 (q, 1H), 5.84 (q, 1H),
6.94 (q, 2H), 7.26 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2974, 2935, 2877, 1735, 1612, 1585,
1512, 1454, 1419, 1381, 1346, 1288,
1238, 1176, 1134, 1099, 1076, 1060,
1014, 1003, 941, 898, 833, 551.
S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylhexanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.85 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.27 (m, 4H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.50 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2958, 2931, 2870, 1735, 1612,
1585, 1512, 1454, 1377, 1342, 1288,
1242, 1172, 1122, 1057, 1014, 945,
898, 833, 551.
0.85 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.27 (m, 4H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.50 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2958, 2931, 2870, 1735, 1612,
1585, 1512, 1454, 1377, 1342, 1288,
1242, 1172, 1122, 1057, 1014, 945,
898, 833, 551.
S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethylheptanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.84 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.24 (m, 6H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.58 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.49 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 2H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2958, 2931, 2870, 2858, 1735,
1612, 1585, 1512, 1454, 1419, 1377,
1342, 1288, 1238, 1168, 1134, 1118,
1099, 1076, 1057, 1014, 1003, 941,
898, 833, 551.
0.84 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.24 (m, 6H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.58 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 3.49 (m, 1H),
3.76 (m, 1H), 5.35 (q, 2H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2958, 2931, 2870, 2858, 1735,
1612, 1585, 1512, 1454, 1419, 1377,
1342, 1288, 1238, 1168, 1134, 1118,
1099, 1076, 1057, 1014, 1003, 941,
898, 833, 551.
S-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethyldecanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.85 (t, 1H), 1.19 (t, 3H),
1.23 (m, 12H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.58 (m, 1H),
2.28 (t, 2H), 3.54 (m, 1H),
3.75 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2954, 2927, 2854, 1735, 1612,
1585, 1512, 1458, 1419, 1377, 1300,
1288, 1238, 1176, 1118, 1076, 1057,
1014, 1003, 941, 902, 833, 551.
0.85 (t, 1H), 1.19 (t, 3H),
1.23 (m, 12H), 1.47 (d, 3H),
1.49 (d, 3H), 1.58 (m, 1H),
2.28 (t, 2H), 3.54 (m, 1H),
3.75 (m, 1H), 5.35 (q, 1H),
5.83 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2978, 2954, 2927, 2854, 1735, 1612,
1585, 1512, 1458, 1419, 1377, 1300,
1288, 1238, 1176, 1118, 1076, 1057,
1014, 1003, 941, 902, 833, 551.
ii) Die S-Form eines Fettsäureesters von 1-(4-Hydroxyphenyl)
ethanol wurde wie folgt hergestellt:
In etwa 200 ml eines Lösungsmittelgemisches von Essigsäure/
Dioxan/Wasser (Volumenverhältnis 10/5/5) wurden 0,1 Mol
jeder S-Form des Fettsäureesters von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)
phenyl)ethanol, wie er in Beispiel 3 (i) erhalten worden war,
gelöst, und die Mischung wurde 2 Stunden lang bei Raumtemperatur
gerührt. Das Lösungsmittel wurde unter vermindertem
Druck abdestilliert, wobei man die S-Form des Fettsäureesters
von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethanol erhielt.
Die Ausbeute und die spezifische Drehung des jeweils erhaltenen
Esters sind in der folgenden Tabelle I angegeben.
Die Ergebnisse der ¹H-NMR-Analyse und der IR-Spektralanalyse
waren wie folgt:
S-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethylbutyrat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.89 (t, 3H), 1.50 (d, 3H),
1.61 (m, 2H), 2.28 (t, 2H),
5.83 (q, 1H), 6.14 (breit s, 1H),
6.77 (d, 2H), 7.20 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3387, 2970, 2935, 2873, 1732, 1705,
1616, 1597, 1516, 1450, 1373, 1265,
1199, 1172, 1091, 1057, 999, 956,
941, 833, 547.
0.89 (t, 3H), 1.50 (d, 3H),
1.61 (m, 2H), 2.28 (t, 2H),
5.83 (q, 1H), 6.14 (breit s, 1H),
6.77 (d, 2H), 7.20 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3387, 2970, 2935, 2873, 1732, 1705,
1616, 1597, 1516, 1450, 1373, 1265,
1199, 1172, 1091, 1057, 999, 956,
941, 833, 547.
S-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethylhexanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.85 (t, 3H), 1.25 (m, 4H),
1.49 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.74 (breit s, 1H),
5.67 (q, 1H), 6.77 (d, 2H),
7.20 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3371, 3024, 2958, 2931, 2870, 1732,
1705, 1616, 1597, 1516, 1450, 1415,
1357, 1288, 1265, 1242, 1222, 1211,
1168, 1099, 1057, 1014, 1003, 956,
833, 729, 547.
0.85 (t, 3H), 1.25 (m, 4H),
1.49 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.74 (breit s, 1H),
5.67 (q, 1H), 6.77 (d, 2H),
7.20 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3371, 3024, 2958, 2931, 2870, 1732,
1705, 1616, 1597, 1516, 1450, 1415,
1357, 1288, 1265, 1242, 1222, 1211,
1168, 1099, 1057, 1014, 1003, 956,
833, 729, 547.
S-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethylheptanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.85 (t, 3H), 1.23 (m, 6H),
1.48 (d, 3H), 1.57 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.83 (q, 1H),
5.91 (breit s, 1H), 6.77 (d, 2H),
7.22 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3390, 3024, 2954, 2931, 2858, 1732,
1706, 1616, 1597, 1516, 1450, 1377,
1269, 1222, 1168, 1099, 1057, 999,
949, 833, 725, 644, 547.
0.85 (t, 3H), 1.23 (m, 6H),
1.48 (d, 3H), 1.57 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.83 (q, 1H),
5.91 (breit s, 1H), 6.77 (d, 2H),
7.22 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3390, 3024, 2954, 2931, 2858, 1732,
1706, 1616, 1597, 1516, 1450, 1377,
1269, 1222, 1168, 1099, 1057, 999,
949, 833, 725, 644, 547.
S-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethyldecanoat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.85 (t, 3H), 1.23 (m, 12H),
1.49 (d, 2H), 1.58 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.51 (breit s, 1H),
5.82 (q, 1H), 6.77 (d, 2H),
7.20 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3394, 3024, 2927, 2854, 1732, 1705,
1616, 1597, 1516, 1450, 1377, 1269,
1207, 1168, 1111, 1057, 999, 952,
833, 721, 547.
0.85 (t, 3H), 1.23 (m, 12H),
1.49 (d, 2H), 1.58 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.51 (breit s, 1H),
5.82 (q, 1H), 6.77 (d, 2H),
7.20 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3394, 3024, 2927, 2854, 1732, 1705,
1616, 1597, 1516, 1450, 1377, 1269,
1207, 1168, 1111, 1057, 999, 952,
833, 721, 547.
iii) Die R-Form des Fettsäureesters von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)
phenylethanol wurde wie folgt hergestellt:
Das Verfahren des Beispiels 3 (i) wurde wiederholt, wobei
diesmal die R-Form von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol
verwendet wurde, wobei man die R-Form des Fettsäureesters
von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol (welcher dem verwendeten
Säurechlorid entsprach) erhielt.
Bezüglich der jeweils erhaltenen Verbindung wurden die gleichen
Ergebnisse wie diejenigen der in Beispiel 3 (i) erhaltenen
Verbindung bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der FT-IR-
Spektralanalyse erzielt.
iv) Die R-Form des Fettsäuresters von 1-(4-Hydroxyphenyl)
ethanol wurde wie folgt hergestellt:
In 700 ml eines Lösungsmittelgemisches von Essigsäure/Dioxan/
Wasser (10/5/5) wurden 0,35 Mol jeweils der R-Form des Fettsäureesters
von 1-(4-(1-Ethoxyethoxy)phenyl)ethanol gelöst, und
die Mischung wurde 2 Stunden lang bei Raumtemperatur gerührt.
Das Lösungsmittel wurde unter vermindertem Druck abdestilliert,
wobei man die R-Form des Fettsäureesters von 1-(4-
Hydroxyphenyl)ethanol erhielt.
Bezüglich des erhaltenen Butyrats und Heptanoats wurden die
gleichen Ergebnisse wie für die S-Form des Fettsäureesters
von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethanol in Beispiel 3 (ii) bei der
¹H-NMR-Spektralanalyse und der FT-IR-Spektralanalyse erzielt.
Bezüglich des Valerats waren die Ergebnisse der ¹H-NMR-Spektralanalyse
wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.85 (t, 3H), 1.26 (m, 2H),
1.47 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.71 (breit s, 1H),
5.82 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
0.85 (t, 3H), 1.26 (m, 2H),
1.47 (d, 3H), 1.59 (m, 2H),
2.28 (t, 2H), 5.71 (breit s, 1H),
5.82 (q, 1H), 6.94 (d, 2H),
7.25 (d, 2H).
i) Zuerst wurde 4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)-acetophenon wie
folgt hergestellt:
In 150 ml Dichlormethan wurden 13,6 g (0,1 Mol) p-Hydroxyacetophenon
und 12,5 g 3,4-Dihydro-α-pyran gelöst, wozu 1,1 g
Pyrimidinium-p-toluolsulfonat zugegeben wurde, und die Mischung
wurde über Nacht bei Raumtemperatur reagieren gelassen. Die
Reaktionsmischung wurde mit 50 ml einer 0,5 N wäßriger
Natriumhydroxidlösung dreimal und dann dreimal mit Wasser gewaschen.
Die resultierende Ätherschicht wurde mit wasserfreiem
Magnesiumsulfat getrocknet, und der Äther wurde unter vermindertem
Druck abdestilliert, wobei man 20,5 g öliges 4-(Tetrahydro-
2-pyranyloxy)acetophenon erhielt (Ausbeute 93%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
1.68 (m, 3H), 1.86 (m, 2H),
1.98 (m, 1H), 2.53 (s, 3H),
3.60 (m, 1H), 3.82 (m, 1H),
5.50 (t, 1H), 7.07 (d, 2H),
7.91 (d, 2H).
1.68 (m, 3H), 1.86 (m, 2H),
1.98 (m, 1H), 2.53 (s, 3H),
3.60 (m, 1H), 3.82 (m, 1H),
5.50 (t, 1H), 7.07 (d, 2H),
7.91 (d, 2H).
ii) 1-(4-Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethanol wurde wie
folgt hergestellt:
In 200 ml Ethanol wurden 22,0 g (0,1 Mol) 4-(Tetrahydro-
2-pyranyloxy)acetophenon, wie es im Beispiel 4 (i) erhalten
worden war, gelöst, es wurden 2,3 g (58 mMol) NaBH₄ zugegeben,
und die Mischung wurde 3 Stunden lang bei 25°C reagieren
gelassen. Nachdem das Ethanol unter vermindertem Druck
abdestilliert worden war, wurden 200 ml Ethanol zugegeben, und
es wurde mit verdünnter Chlorwasserstoffsäure, dann mit
Wasser und schließlich mit einer wäßrigen Natriumhydrogencarbonatlösung
gewaschen. Die resultierende Ätherschicht
wurde mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet, und das
Lösungsmittel wurde unter vermindertem Druck abdestilliert,
wobei man 19,5 g 1-(4-Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethanol
erhielt (Ausbeute 88%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
1.46 (d, 3H), 1.63 (m, 3H),
1.84 (m, 2H), 1.97 (m, 1H),
3.68 (m, 1H), 3.89 (m, 1H),
4.83 (q, 1H), 5.39 (t, 1H),
7.02 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
1.46 (d, 3H), 1.63 (m, 3H),
1.84 (m, 2H), 1.97 (m, 1H),
3.68 (m, 1H), 3.89 (m, 1H),
4.83 (q, 1H), 5.39 (t, 1H),
7.02 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
i) Die asymmetrische Umesterung mit 2,2,2-Trichloroethylbutyrat
wurde wie folgt durchgeführt:
Zu 120 ml wasserfreiem Diethyläther wurden 22,2 g (0,1 Mol)
1-(4-Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethanol, 22,4 g
(0,1 Mol) 2,2,2-Trichlorethylbutyrat und 25,2 g Lipase P
zugegeben, und die Mischung wurde 90 Stunden lang bei 25°C
unter Rühren reagieren gelassen. Nachdem die Reaktionsmischung
saugfiltriert worden war, um die Lipase P zu entfernen,
wurde das Filtrat eingeengt, und das Konzentrat wurde dann
durch Silicagelchromatographie gereinigt [Ethylacetat/n-
Hexan = 1/4, bezogen auf das Volumen], wobei man 10,2 g
der S-Form von 1-(4-Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethanol
(Ausbeute 92%) und 13,1 g der R-Form von 1-(4-(Tetrahydro-
2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat (Ausbeute 91%) erhielt.
Bezüglich des jeweils erhaltenen Produkts waren die Ergebnisse
des ¹H-NMR-Spektrums und der spezifischen Drehung [α]
wie folgt:
S-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethanol
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
1.46 (d, 3H), 1.63 (m, 3H),
1.84 (m, 2H), 1.97 (m, 1H),
3.68 (m, 1H), 3.89 (m, 1H),
4.83 (q, 1H), 5.39 (t, 1H),
7.02 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
[α]=-33.6° (CHCl₃, c=1).
1.46 (d, 3H), 1.63 (m, 3H),
1.84 (m, 2H), 1.97 (m, 1H),
3.68 (m, 1H), 3.89 (m, 1H),
4.83 (q, 1H), 5.39 (t, 1H),
7.02 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
[α]=-33.6° (CHCl₃, c=1).
R-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.90 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.47 (d, 3H), 1.49 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 2.27 (t, 2H),
3.51 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
5.35 (q, 1H), 5.84 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.26 (d, 2H).
[α]=+34.1° (CHCl₃, c=1).
0.90 (t, 3H), 1.19 (t, 3H),
1.47 (d, 3H), 1.49 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 2.27 (t, 2H),
3.51 (m, 1H), 3.76 (m, 1H),
5.35 (q, 1H), 5.84 (q, 1H),
6.94 (d, 2H), 7.26 (d, 2H).
[α]=+34.1° (CHCl₃, c=1).
ii) Die Umsetzung mit Vinylvalerat wurde wie folgt durchgeführt:
Das Verfahren des Beispiels 5 (i) wurde wiederholt, wobei
diesmal Vinylvalerat anstelle von 2,2,2-Trichloroethylbutyrat
verwendet wurde, wobei man 10,4 g der S-Form von 1-(4-Tetrahydro-
2-pyranyloxy)phenyl)ethanol (Ausbeute 94%) und 13,9 g
der R-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylvalerat
(Ausbeute 91%) erhielt.
Für die jeweils erhaltene Verbindung waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der spezifischen Drehung
[a wie folgt:
Bezüglich der S-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenylethanol
wurden die gleichen Ergebnisse wie diejenigen der
in Beispiel 5 (i) erhaltenen S-Form bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse
erzielt, [α]=+34,1° (CHCl₃, c=1).
R-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylvalerat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.89 (t, 3H), 1.48 (d, 3H),
1.62 (m, 7H), 1.83 (m, 2H),
1.98 (m, 1H), 2.24 (t, 2H),
3.58 (m, 1H), 3.88 (m, 1H),
5.39 (t, 1H), 5.84 (q, 1H),
7.00 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
[a]=+77.4° (CHCl₃, c=1).
0.89 (t, 3H), 1.48 (d, 3H),
1.62 (m, 7H), 1.83 (m, 2H),
1.98 (m, 1H), 2.24 (t, 2H),
3.58 (m, 1H), 3.88 (m, 1H),
5.39 (t, 1H), 5.84 (q, 1H),
7.00 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
[a]=+77.4° (CHCl₃, c=1).
i) Die S-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)
ethylbutyrat wurde wie folgt hergestellt:
In 50 ml Pyridin wurden 0,05 Mol der S-Form in Beispiel
5 erhaltenen 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)
chlorid portionsweise zugetropft. Nach Beendigung der Zugabe
wurde die Reaktion weitere 10 Stunden lang fortgesetzt,
und die Reaktionsmischung wurde unter vermindertem
Druck eingeengt. Zu dem Rückstand wurden 100 ml Diethyläther
zugegeben, und es wurde mit verdünnter Chlorwasserstoffsäure,
mit Wasser und 10%iger wäßriger Natriumhydrogencarbonatlösung
gewaschen. Die resultierende Ätherschicht wurde
mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet, und der Äther
wurde unter vermindertem Druck abdestilliert, wobei man die
S-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat
erhielt (Ausbeute 90%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse und der spezifischen Drehung [α]
wie folgt:
S-Form von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.89 (t, 3H), 1.48 (d, 3H),
1.62 (m, 5H), 1.83 (m, 2H),
1.98 (m, 1H), 2.24 (t, 2H),
3.58 (m, 1H), 3.88 (m, 1H),
5.39 (t, 1H), 5.84 (q, 1H),
7.00 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
[α]=-80.6° (CHCl₃, c=1).
0.89 (t, 3H), 1.48 (d, 3H),
1.62 (m, 5H), 1.83 (m, 2H),
1.98 (m, 1H), 2.24 (t, 2H),
3.58 (m, 1H), 3.88 (m, 1H),
5.39 (t, 1H), 5.84 (q, 1H),
7.00 (d, 2H), 7.27 (d, 2H).
[α]=-80.6° (CHCl₃, c=1).
ii) Die S-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethylbutyrat wurde wie
folgt hergestellt:
In 150 ml Methanol wurden 0,1 Mol der S-Form von 1-(4-(Tetrahydro-
2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat gelöst, es wurde 1,1 g
Pyridinium-p-toluolsulfonat zugegeben, und die Mischung wurde
2 Stunden lang bei Raumtemperatur reagieren gelassen. Dann
wurde Methanol unter vermindertem Druck abdestilliert, es
wurden 200 ml Äther zugegeben, und die Mischung wurde mit
Wasser gewaschen. Die resultierende Ätherschicht wurde mit
wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet, und der Äther wurde
unter vermindertem Druck abdestilliert, wobei man die S-Form
von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethylbutyrat erhielt (Ausbeute 13%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung wurden die gleichen Ergebnisse
wie diejenigen der in Beispiel 3 (ii) erhaltenen Verbindung
bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse erzielt.
Das Ergebnis bezüglich der spezifischen Drehung [α] betrug
-109,8° (CHCl₃, c=1).
iii) Die R-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)ethylbutyrat wurde wie
folgt hergestellt:
In 150 ml Methanol wurde 0,1 Mol der R-Form von 1-(4-Tetrahydro-
2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat gelöst, es wurden 1,1 g
Pyridinium-p-toluolsulfonat zugegeben, und die Mischung wurde
2 Stunden lang bei Raumtemperatur reagieren gelassen. Dann
wurde das Methanol unter vermindertem Druck abdestilliert,
es wurden 200 ml Äther zugegeben und mit Wasser gewaschen.
Die resultierende Ätherschicht wurde mit wasserfreiem Magnesiumsulfat
getrocknet, und der Äther wurde unter vermindertem
Druck abdestilliert, wobei man die R-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)
ethylbutyrat erhielt (Ausbeute 11%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung wurden die gleichen Ergebnisse
wie diejenigen der in Beispiel 3 (iii) erhaltenen Verbindung
in der ¹H-NMR-Spektralanalyse erzielt, [α]=110,1°
(CHCl₃, c=1).
iv) Die R-Form von 1-(4-Hydroxyphenylethyl)valerat wurde wie
folgt hergestellt:
Das Verfahren des Beispiels 3 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal 1-(4-Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylvalerat
anstelle von 1-(4-(Tetrahydro-2-pyranyloxy)phenyl)ethylbutyrat
verwendet wurde, wobei man die R-Form von 1-(4-Hydroxyphenyl)
ethylvalerat erhielt (Ausbeute 10%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung wurden die gleichen
Ergebnisse wie diejenigen der in Beispiel 3 (iii) erhaltenen
Verbindung bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse erzielt,
[α]=-83,5° (CHCl₃, c=1).
Die optisch aktiven Verbindungen wurden zur leichten Herstellung
von optisch aktiven Additiven (chiralen Dotierungsmitteln)
verwendet, die eine ausgezeichnete Kompatibilität mit
bekannten smektischen Flüssigkristallen oder nematischen
Flüssigkristallen hatten und in der Lage waren, Flüssigkristall-
Verbindungen mit einem hohen Ps-Wert zu bilden. Die
optisch aktiven Verbindungen können nach dem vorstehend beschriebenen
erfindungsgemäßen Verfahren leicht hergestellt
werden.
i) p-Octyloxybenzonitril wurde wie folgt hergestellt:
In 4000 ml Aceton wurden 500 g (4,2 Mol) p-Hydroxybenzonitril
und 965 g (5,0 Mol) Octylbromid gelöst, es wurden 828 g
(6,0 Mol) wasserfreies Kaliumcarbonat zugegeben, und die Mischung
wurde 30 Stunden lang unter Rückfluß erhitzt. Dann
wurde das anorganische Salz aus dem Reaktionsgemisch abfiltriert,
das Aceton wurde unter vermindertem Druck abdestilliert.
Zu dem Rückstand wurden 2000 ml Äther zugegeben, und
die Mischung wurde mit einer wäßrigen 2-N-Natriumhydroxidlösung,
mit Wasser, dann mit einer gesättigten wäßrigen Natriumchloridlösung
gewaschen. Die resultierende organische
Schicht wurde mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet,
und der Äther wurde unter vermindertem Druck abdestilliert,
wobei man 855 g p-Octyloxybenzonitril (Ausbeute 88%) erhielt.
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.86 (t, 3H), 1.26 (m, 10H),
1.42 (m, 2H), 1.77 (m, 2H),
3.96 (t, 2H), 6.90 (d, 2H),
7.55 (d, 2H).
0.86 (t, 3H), 1.26 (m, 10H),
1.42 (m, 2H), 1.77 (m, 2H),
3.96 (t, 2H), 6.90 (d, 2H),
7.55 (d, 2H).
ii) Ethyl-2-(p-octyloxyphenyl)pyrimidin-5-carboxylat wurde
wie folgt hergestellt:
In einem gemischten Lösungsmittel aus 120 ml wasserfreiem
Ethanol und 160 ml wasserfreiem Benzol wurden 170 g (0,74
Mol) p-Octyloxybenzonitril gelöst, es wurde Chlorwasserstoffgas
unter Kühlen bei 0°C hindurchgeleitet bis zur Sättigung.
Die Reaktion wurde 15 Stunden lang unter Rühren bei Raumtemperatur
fortgesetzt. Das Lösungsmittel wurde unter vermindertem
Druck abdestilliert, zu dem Rückstand wurden 300 ml
Diethyläther zugegeben. Der Niederschlag wurde abfiltriert
und getrocknet, wobei man 150 g rohes p-Octyloxyphenylimidethylätherhydrochlorid
erhielt (Ausbeute 65%).
In 800 ml wasserfreiem Ethanol wurden 150 g des erhaltenen
Imidethylätherhydrochlorids dispergiert, es wurde Ammoniumgas
hindurchgeleitet bis zur Auflösung, und die Mischung
wurde 40 Stunden lang unter Rühren bei Raumtemperatur reagieren
gelassen. Das Ethanol wurde unter vermindertem Druck abdestilliert,
und zu dem Rückstand wurden 500 ml Diethyläther
zugegeben, wobei ein Niederschlag auftrat. Der Niederschlag
wurde abfiltriert und getrocknet, wobei man 101 g p-Octyloxyphenylamidinhydrochlorid
erhielt (Ausbeute 74%).
In wasserfreiem Ethanol wurden 100 g (0,37 Mol) des erhaltenen
p-Octyloxyphenylamidinhydrochlorids und 14,6 g (0,37 Mol)
Diethylethoxyethylenmalonat gelöst, es wurden 7,6 g (0,74
Mol) Natriumethylat zugegeben, und die Mischung wurde 8
Stunden lang unter Rückfluß erhitzt. Dann wurde die erhaltene
gelbe Reaktionsmischung unter vermindertem Druck eingeengt,
zu dem Konzentrat wurden 500 ml kühles Wasser zugegeben,
und mit Essigsäure wurde auf pH 3 eingestellt. Nach dem
Filtrieren wurde der Niederschlag mit Wasser gründlich gewaschen
und aus THF umkristallisiert, wobei man 90 g Ethyl-
2-(p-octyloxyphenyl)-4-hydroxypyrimidin-5-carboxylat erhielt
(Ausbeute 65%).
Dann wurden 5 g (0,013 Mol) des erhaltenen Ethyl-2-(p-octyloxyphenyl)-
4-hydroxypyrimidin-5-carboxylats in 25 ml Phosphoroxychlorid
gelöst, und die Mischung wurde 3 Stunden lang unter
Rückfluß erhitzt. Das überschüssige Phosphorsäureoxychlorid wurde
unter vermindertem Druck abdestilliert, und der Rückstand
wurde durch Silicagelchromatographie (Entwicklungslösungsmittel
CHCl₃) gereinigt, wobei man 4,9 g Ethyl-2-(p-octyloxyphenyl)-
4-chloropyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute
91%).
Dann wurden 4,9 g (0,012 Mol) des erhaltenen 2-(p-Octyloxyphenl)-
4-chloropyrimidin-5-carboxylats in 100 ml Ethanol
gelöst, und es wurde mit 0,3 g Pd/BaSO₄ in Gegenwart von
Kaliumacetat reduziert, wobei man 4,0 g Ethyl-2-(p-octyloxyphenyl)
pyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute 93%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindungen waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.84 (t, 3H), 1.28 (m, 10H),
1.47 (t, 3H), 1.78 (m, 2H),
4.00 (t, 2H), 4.41 (q, 2H),
6.96 (d, 2H), 8.42 (d, 2H),
9.22 (s, 2H).
0.84 (t, 3H), 1.28 (m, 10H),
1.47 (t, 3H), 1.78 (m, 2H),
4.00 (t, 2H), 4.41 (q, 2H),
6.96 (d, 2H), 8.42 (d, 2H),
9.22 (s, 2H).
iii) Die S-Form von 4′-(1′′-(Decanoyloxy)ethyl)phenyl-2-(p-
octyloxyphenyl)parimidn-5-carboxylat wurde wie folgt hergestellt:
4,0 g (0,11 Mol) Ethyl-2-(p-octyloxyphenyl)pyrimidin-5-carboxylat
wurden in einer Lösung von 1,1 Äquivalenten Kaliumhydroxid,
gelöst in einer 80%igen wäßrigen Ethanollösung, 5 Stunden
lang unter Rückfluß erhitzt, um es zu hydrolysieren.
In 20 ml Methylenchlorid wurden 2,9 g (0,009 Mol) der erhaltenen
2-(p-Octyloxyphenyl)pyrimidin-5-carbonsäure und 2,6 g
(0,009 Mol) der S-Form des Decansäureesters von 1-(p-Hydroxyphenyl)
ethanol gelöst, es wurden 1,8 g (0,009 Mol) Dichlorohexylcarbodiimid
und 0,9 g (0,009 Mol) Triethylamin zugegeben,
und die Mischung wurde 40 Stunden lang reagieren gelassen.
Die Reaktionsmischung wurde unter vermindertem Druck eingeengt,
es wurden 50 ml Chloroform zu dem Konzentrat zugegeben
und mit einer 0,1 N wäßrigen Chlorwasserstoffsäurelösung, mit
Wasser, mit einer 0,1 N wäßrigen Kaliumhydroxidlösung und
dann mit Wasser gewaschen. Die resultierende organische
Schicht wurde mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet,
eingeengt und durch Silicagelchromatographie gereinigt (Entwicklungslösungsmittel:
Chloroform), wobei man 3,8 g der
S-Form von 4′-(1′′-(Decanoyloxy)ethyl)phenyl-2-(p-octyloxyphenyl)
pyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute 71%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse
der ¹H-NMR-Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse, der
spezifischen Drehung und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=-34,5°C (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 98,9°C.
[α]=-34,5°C (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 98,9°C.
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.86 (m, 6H), 1.25 (m, 20H),
1.47 (m, 2H), 1.53 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 1.81 (m, 2H),
2.31 (t, 2H), 4.04 (t, 2H),
5.91 (g, 1H), 7.00 (d, 2H),
7.21 (d, 2H), 7.42 (d, 2H),
8.49 (d, 2H), 9.36 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3039, 2954, 2924, 2870, 2854, 1739,
1697, 1589, 1543, 1508, 1465, 1438,
1388, 1377, 1334, 1288, 1257, 1242,
1199, 1168, 1103, 1057, 1010, 976,
964, 941, 910, 888, 852, 802,
771, 748, 721, 651, 555, 528,
497, 486, 451.
0.86 (m, 6H), 1.25 (m, 20H),
1.47 (m, 2H), 1.53 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 1.81 (m, 2H),
2.31 (t, 2H), 4.04 (t, 2H),
5.91 (g, 1H), 7.00 (d, 2H),
7.21 (d, 2H), 7.42 (d, 2H),
8.49 (d, 2H), 9.36 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3039, 2954, 2924, 2870, 2854, 1739,
1697, 1589, 1543, 1508, 1465, 1438,
1388, 1377, 1334, 1288, 1257, 1242,
1199, 1168, 1103, 1057, 1010, 976,
964, 941, 910, 888, 852, 802,
771, 748, 721, 651, 555, 528,
497, 486, 451.
Das Verfahren des Beispiels 7 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die S-Form von 1-(p-Hydroxyphenyl)ethylheptanoat
anstelle von 1-(p-Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet
wurde, wobei man 3,4 g 4′-(1′′-(Heptanoyloxy)ethyl)phenyl-
2-(p-octyloxyphenyl)pyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute
68%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse, der
spezifischen Drehung [α] und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=-37,0° (CHCl₃ c=1);
Klarpunkt: 103,9°C.
[α]=-37,0° (CHCl₃ c=1);
Klarpunkt: 103,9°C.
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.86 (m, 6H), 1.25 (m, 14H),
1.47 (m, 2H), 1.53 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 1.81 (m, 2H),
2.31 (t, 2H), 4.04 (t, 2H),
5.91 (g, 1H), 7.00 (d, 2H),
7.21 (d, 2H), 7.42 (d, 2H),
8.49 (d, 2H), 9.36 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3039, 2954, 2927, 2873, 2854, 1739,
1697, 1589, 1543, 1508, 1465, 1438,
1388, 1377, 1334, 1288, 1257, 1238,
1199, 1168, 1103, 1057, 1018, 976,
937, 914, 883, 852, 771, 748,
725, 651, 555, 532.
0.86 (m, 6H), 1.25 (m, 14H),
1.47 (m, 2H), 1.53 (d, 3H),
1.62 (m, 2H), 1.81 (m, 2H),
2.31 (t, 2H), 4.04 (t, 2H),
5.91 (g, 1H), 7.00 (d, 2H),
7.21 (d, 2H), 7.42 (d, 2H),
8.49 (d, 2H), 9.36 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3039, 2954, 2927, 2873, 2854, 1739,
1697, 1589, 1543, 1508, 1465, 1438,
1388, 1377, 1334, 1288, 1257, 1238,
1199, 1168, 1103, 1057, 1018, 976,
937, 914, 883, 852, 771, 748,
725, 651, 555, 532.
Das Verfahren des Beispiels 7 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die S-Form des Butansäureesters von 1-(p-Hydroxyphenyl)
ethanol, wie sie in Beispiel 3 (ii) erhalten worden war,
anstelle der S-Form von 1-(p-Hydroxyphenyl)ethyldecanoat
verwendet wurde, wobei man 3,2 g der S-Form von 4′-(1′′-
(Butanoyloxy)ethyl)phenyl-2-(p-octyloxyphenyl)pyrimidin-
5-carboxylat erhielt (Ausbeute 66%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse, der spezifischen
Drehung [α] und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=-40,3° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 107,8°C.
[α]=-40,3° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 107,8°C.
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.89 (m, 6H), 1.35 (m, 8H),
1.50 (m, 2H), 1.55 (d, 3H),
1.70 (m, 2H), 1.82 (m, 2H),
2.32 (t, 2H), 4.10 (t, 2H),
5.91 (g, 1H), 6.99 (d, 2H),
7.20 (d, 2H), 7.42 (d, 2H),
8.49 (d, 2H), 9.37 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3040, 2954, 2927, 2873, 2856, 1739,
1697, 1589, 1543, 1508, 1466, 1438,
1390, 1377, 1335, 1288, 1257, 1238,
1200, 1168, 1105, 1057, 1018, 978,
937, 914, 883, 853, 773, 748,
727, 651, 555, 534.
0.89 (m, 6H), 1.35 (m, 8H),
1.50 (m, 2H), 1.55 (d, 3H),
1.70 (m, 2H), 1.82 (m, 2H),
2.32 (t, 2H), 4.10 (t, 2H),
5.91 (g, 1H), 6.99 (d, 2H),
7.20 (d, 2H), 7.42 (d, 2H),
8.49 (d, 2H), 9.37 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
3040, 2954, 2927, 2873, 2856, 1739,
1697, 1589, 1543, 1508, 1466, 1438,
1390, 1377, 1335, 1288, 1257, 1238,
1200, 1168, 1105, 1057, 1018, 978,
937, 914, 883, 853, 773, 748,
727, 651, 555, 534.
Das Verfahren des Beispiels 7 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (iv) erhaltene R-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,7 g
der R-Form von 4′-(1′′-(Decanoyloxy)ethyl)phenyl-2-(p-octyloxyphenyl)
pyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute 68%).
Bezüglich der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
spezifischen Drehung und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=+34,5° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 98,9°C.
[α]=+34,5° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 98,9°C.
Bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der FZ-IR-Spektralanalyse
wurden die gleichen Ergebnisse wie bei der in Beispiel 7 (iii)
erhaltenen Verbindung erzielt.
Das Verfahren des Beispiels 7 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (iv) erhaltene R-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethylheptanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,5 g
der R-Form von 4′-(1′′-(Heptanoyloxy)ethyl)phenyl-2-(p-otyloxyphenyl)
pyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute 70%).
Die Ergebnisse bezüglich der spezifischen Drehung und des
Klarpunktes bei der erhaltenen Verbindung waren wie folgt:
[α]=+37,8° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 103,9°C.
[α]=+37,8° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 103,9°C.
Bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der FT-IR-Spektralanalyse
wurden die gleichen Ergebnisse wie bei der in Beispiel 8
erhaltenen Verbindung erzielt.
Das Verfahren des Beispiels 7 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (iv) erhaltene R-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethylbutanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,0 g
der R-Form von 4′-(1′′-(Butanoyloxy)ethyl)phenyl-2-(p-octyloxyphenyl)
pyrimidin-5-carboxylat erhielt (Ausbeute 65%).
Bei der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse bezüglich
der spezifischen Drehung und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=+41,1° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 107,8°C.
[α]=+41,1° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 107,8°C.
Bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der FT-IR-Spektralanalyse
wurden die gleichen Ergebnisse erzielt wie bei der in
Beispiel 9 erhaltenen Verbindung.
i) 2-Heptyl-1,3-propandiol wurde wie folgt hergestellt:
Zu 400 ml wasserfreiem Methanol wurden 18,4 g (0,8 Mol)
Natriummetall und 128 g (0,8 Mol) Diethylmalonat zugegeben,
dann wurden 143,1 g (0,8 Mol) Heptanbromid zugegeben, und die
Mischung wurde 8 Stunden lang unter Rückfluß erhitzt. Dann
wurde das Ethanol unter vermindertem Druck abdestilliert,
zu dem Rückstand wurden 500 ml Diethyläther zugegeben, und
es wurde mit Wasser gewaschen, mit wasserfreiem Magnesiumsulfat
getrocknet und unter vermindertem Druck eingeengt.
In wasserfreiem Diethyläther wurden 100 g des erhaltenen
Diethylheptylmalonats gelöst, und die Mischung wurde zu einer
Lösung von 28,7 g Lithiumaluminiumhydrid, dispergiert in
270 ml Diethyläther, zugetropft. Die Mischung wurde 15
Stunden lang gerührt. Dann wurde zu der Reaktionsmischung
portionsweise 3 N Chlorwasserstoffsäure zugegeben, um das
überschüssige Lithiumaluminiumhydrid zu inaktivieren. Nach
dem Waschen mit einer 10%igen wäßrigen Nariumcarbonatlösung
und dann mit Wasser wurde die resultierende Ätherschicht
mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet. Nach
dem Abdestillieren des Äthers unter vermindertem Druck wurde
der Rückstand durch Silicagelchromatographie gereinigt
(Entwicklungslösungsmittel: Hexan/Ethylacetat = 4/1) und
unter vermindertem Druck abdestilliert, wobei man 41,2 g
2-Heptyl-1,3-propandiol erhielt (Ausbeute 56%).
Bei der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der ¹H-NMR-
Spektralanalyse wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.83 (t, 3H), 1.22 (br. s, 12H),
1.73 (m, 1H), 2.88 (br. s, 2H),
3.60 (m, 2H), 3.76 (m, 2H).
0.83 (t, 3H), 1.22 (br. s, 12H),
1.73 (m, 1H), 2.88 (br. s, 2H),
3.60 (m, 2H), 3.76 (m, 2H).
ii) Trans-2-(p-methoxycarbonylphenyl)-5-heptyl-1,3-dioxan
wurde wie folgt hergestellt:
In 100 ml Benzol wurden 19 g (0,11 Mol) 2-Heptyl-1,3-propandiol,
18 g (0,11 Mol Methylester der Terephthalaldehydsäure
und 0,07 g (0,0003 Mol) Sulfosalicylsäure gelöst, und
die Mischung wurde 24 Stunden lang unter Rückfluß erhitzt
und entwässert. Nach dem Abkühlen der Reaktionsmischung auf
Raumtemperatur wurde der Rückstand mit einer 0,1 N wäßrigen
Natriumhydroxidlösung und Wasser gewaschen, und die organische
Schicht wurde mit wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet.
Dann wurde die organische Schicht unter vermindertem Druck
destilliert, und der Rückstand wurde aus Ethanol umkristallisiert,
filtriert und getrocknet, wobei man 14,5 g trans-
2-(p-Methoxycarbonylphenyl)-5-heptyl-1,3-dioxan erhielt (Ausbeute
41%).
Bei der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der
¹H-NMR-Spektralanalyse wie folgt:
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, w-Wert (ppm)]:
0.86 (t, 3H), 1.08 (m, 2H),
1.26 (br. s, 10H), 2.11 (m, 1H),
3.52 (t, 2H), 3.88 (s, 3H),
4.23 (m, 2H), 5.41 (s, 1H),
7.53 (d, 2H), 8.02 (d, 2H).
0.86 (t, 3H), 1.08 (m, 2H),
1.26 (br. s, 10H), 2.11 (m, 1H),
3.52 (t, 2H), 3.88 (s, 3H),
4.23 (m, 2H), 5.41 (s, 1H),
7.53 (d, 2H), 8.02 (d, 2H).
iii) Die S-Form von 4′′-(1′′′-(Decanoyloxy)ethyl)phenyl-4-
(trans-2′-(5′-heptyl)-1′,3′-dioxanyl)benzoat wurde wie folgt
hergestellt:
In Methanol wurden 5 g (0,016 Mol) trans-2-(p-Methoxycarbonylphenyl)-
5-heptyl-1,3-dioxan gelöst, und es wurden 1,2 Äquivalente
Kaliumhydroxid zugegeben, und die Mischung wurde 8 Stunden
lang unter Rückfluß erhitzt. Nach dem Abdestillieren von
Methanol unter vermindertem Druck wurden 300 ml Ethylacetat
zu dem Rückstand zugegeben, und die Mischung wurde mit 10%iger
wäßriger Chlorwasserstoffsäurelösung unter Kühlen bei einer
Temperatur von -10°C neutralisiert. Dann wurde die organische
Schicht eingeengt und aus Methanol umkristallisiert, wobei
man 4,2 g trans-2-(p-Hydroxycarbonylphenyl)-5-heptyl-1,3-
dioxan erhielt (Ausbeute 86%).
Dann wurden 3 g (0,01 Mol) des erhaltenen trans-2-(p-Hydroxycarbonylphenyl)-
5-heptyl-1,3-dioxans, 1,0 g Triethylamin und
0,8 g Pyridin in 150 ml Methylenchlorid gelöst, es wurden
1,4 g (0,01 Mol) Isobutylchloroformiat zugegeben, und die
Mischung wurde 5 Stunden lang gerührt. Außerdem wurde eine
Lösung von 2,9 g (0,01 Mol) der S-Form von 1-(p-Hydroxyphenyl)
ethyldecanoat, gelöst in Methylenchlorid, zu der resultierenden
Mischung zugegeben, und die Mischung wurde 20 Stunden lang
unter Rühren bei Raumtemperatur reagieren gelassen. Die Reaktionsmischung
wurde unter vermindertem Druck eingeengt und
durch Silicagelchromatographie gereinigt (Entwicklungslösungsmittel:
CHCl₃), wobei man 3,3 g der S-Form von 4′′-(1′′′-(Decanoyloxy)ethyl)
phenyl-4-(trans-2′-(5′-heptyl-1′,3′-dioxanyl)-
benzoat erhielt (Ausbeute 62%). Die erhaltene Verbindung
lag in kristallinem Zustand vor.
Bei der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der ¹H-
NMR-Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse, der spezifischen
Drehung [α] und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=-32,8° (c=1, CHCl₃);
Klarpunkt: 60,9°C.
[α]=-32,8° (c=1, CHCl₃);
Klarpunkt: 60,9°C.
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.86 (m, 6H), 1.11 (m, 2H),
1.27 (m, 22H), 1.52 (d, 3H),
1.60 (m, 2H), 2.12 (m, 1H),
2.30 (t, 2H), 3.51 (t, 2H),
4.25 (m, 2H), 5.46 (s, 1H),
5.90 (q, 1H), 7.18 (d, 2H),
7.39 (d, 2H), 7.61 (d, 2H),
8.17 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2958, 2924, 2850, 1739, 1724, 1612,
1512, 1465, 1415, 1384, 1342, 1334,
1288, 1269, 1238, 1215, 1184, 1172,
1141, 1130, 1084, 1057, 1016, 995,
976, 956, 941, 895, 871, 841,
817, 775, 756, 721, 705, 698,
655, 590, 551.
0.86 (m, 6H), 1.11 (m, 2H),
1.27 (m, 22H), 1.52 (d, 3H),
1.60 (m, 2H), 2.12 (m, 1H),
2.30 (t, 2H), 3.51 (t, 2H),
4.25 (m, 2H), 5.46 (s, 1H),
5.90 (q, 1H), 7.18 (d, 2H),
7.39 (d, 2H), 7.61 (d, 2H),
8.17 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2958, 2924, 2850, 1739, 1724, 1612,
1512, 1465, 1415, 1384, 1342, 1334,
1288, 1269, 1238, 1215, 1184, 1172,
1141, 1130, 1084, 1057, 1016, 995,
976, 956, 941, 895, 871, 841,
817, 775, 756, 721, 705, 698,
655, 590, 551.
Das Verfahren des Beispiels 13 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (ii) erhaltene S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethylheptanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,7 g
der S-Form von 4′′-(1′′′-(Heptanoyloxy)ethyl)phenyl-4-trans-
2′-(5′-heptyl)-1′,3′-dioxanyl)benzoat erhielt (Ausbeute
68%).
Bei der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse der ¹H-NMR-
Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse, der spezifischen
Drehung und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=-39,5° (c=1, CHCl₃);
Klarpunkt: 71,3°C.
[α]=-39,5° (c=1, CHCl₃);
Klarpunkt: 71,3°C.
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.86 (t, 6H), 1.11 (m, 2H),
1.27 (br. s, 16H), 1.52 (d, 3H),
1.61 (m, 2H), 2.12 (m, 1H),
2.31 (t, 2H), 3.54 (t, 2H),
4.24 (m, 2H), 5.46 (s, 1H),
5.90 (q, 1H), 7.18 (d, 2H),
7.39 (d, 2H), 7.61 (d, 2H),
8.17 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2958, 2924, 2854, 1739, 1724, 1612,
1512, 1465, 1415, 1384, 1346, 1334,
1292, 1273, 1238, 1219, 1208, 1188,
1172, 1130, 1084, 1060, 1018, 995,
976, 956, 895, 871, 841, 756,
725, 705, 690, 655, 590, 547.
0.86 (t, 6H), 1.11 (m, 2H),
1.27 (br. s, 16H), 1.52 (d, 3H),
1.61 (m, 2H), 2.12 (m, 1H),
2.31 (t, 2H), 3.54 (t, 2H),
4.24 (m, 2H), 5.46 (s, 1H),
5.90 (q, 1H), 7.18 (d, 2H),
7.39 (d, 2H), 7.61 (d, 2H),
8.17 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2958, 2924, 2854, 1739, 1724, 1612,
1512, 1465, 1415, 1384, 1346, 1334,
1292, 1273, 1238, 1219, 1208, 1188,
1172, 1130, 1084, 1060, 1018, 995,
976, 956, 895, 871, 841, 756,
725, 705, 690, 655, 590, 547.
Das Verfahren des Beispiels 13 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (ii) erhaltene S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethylbutanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,4 g
der S-Form von 4′′-(1′′′-(Butanoyloxy)ethyl)phenyl-4-(trans-
2′-(5-heptyl)-1′,3′-dioxanyl)benzoat erhielt (Ausbeute 69%).
Für die erhaltene Verbindung waren die Ergebnisse der ¹H-NMR-
Spektralanalyse, der FT-IR-Spektralanalyse, der spezifischen
Drehung und des Klarpunktes wie folgt:
[α]=-46,5° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 80,9°C.
[α]=-46,5° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 80,9°C.
¹H-NMR [300 MHz, CDCl₃, δ-Wert (ppm)]:
0.91 (m, 6H), 1.13 (m, 2H),
1.29 (m, 10H), 1.53 (d, 3H),
1.65 (m, 2H), 2.21 (m, 1H),
2.34 (t, 2H), 3.70 (t, 2H),
4.23 (m, 2H), 5.48 (s, 1H),
5.90 (q, 1H), 7.18 (d, 2H),
7.39 (d, 2H), 7.61 (d, 2H),
8.17 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2960, 2926, 2856, 1739, 1724, 1612,
1512, 1465, 1415, 1384, 1346, 1334,
1292, 1273, 1240, 1219, 1208, 1190,
1172, 1130, 1086, 1060, 1018, 995,
976, 956, 895, 871, 843, 756,
725, 708, 690, 657, 590, 548.
0.91 (m, 6H), 1.13 (m, 2H),
1.29 (m, 10H), 1.53 (d, 3H),
1.65 (m, 2H), 2.21 (m, 1H),
2.34 (t, 2H), 3.70 (t, 2H),
4.23 (m, 2H), 5.48 (s, 1H),
5.90 (q, 1H), 7.18 (d, 2H),
7.39 (d, 2H), 7.61 (d, 2H),
8.17 (d, 2H).
FT-IR (cm-1):
2960, 2926, 2856, 1739, 1724, 1612,
1512, 1465, 1415, 1384, 1346, 1334,
1292, 1273, 1240, 1219, 1208, 1190,
1172, 1130, 1086, 1060, 1018, 995,
976, 956, 895, 871, 843, 756,
725, 708, 690, 657, 590, 548.
Das Verfahren des Beispiels 13 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (iv) erhaltene R-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,9 g
der R-Form von 4′′-(1′′′-(Decanoyloxy)ethyl)phenyl-4-(trans-
2′-(5′-heptyl)-1′,3′-dioxanyl)benzoat erhielt (Ausbeute
67%).
Für die erhaltene Verbindung waren die Ergebnisse in bezug
auf die Phasenumwandlungstemperatur, die spezifische Drehung
und den Klarpunkt wie folgt:
Phasenumwandlungstemperatur (gemessen mit einem Polarisationsmikroskop, das mit einer Heizstufe ausgestattet war:
Phasenumwandlungstemperatur (gemessen mit einem Polarisationsmikroskop, das mit einer Heizstufe ausgestattet war:
Klarpunkt: 60,9°C.
Bei der ¹N-NMR-Spektralanalyse und der FT-IR-Spektralanalyse
wurden die gleichen Ergebnisse erzielt wie bei der in Beispiel
13 (iii) erhaltenen Verbindung.
Das Verfahren des Beispiels 13 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 (iv) erhaltene R-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethylheptanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxylphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,8 g
der R-Form von 4′′-(1′′′-(Heptanoyloxy)ethyl)phenyl-4-(trans-
2′-(5′-heptyl)-1′,3′-dioxanyl)benzoat erhielt (Ausbeute 70%).
Bei der erhaltenen Verbindung waren die Ergebnisse in bezug
auf die Phasenumwandlungstemperatur, die spezifische Drehung
und den Klarpunkt wie folgt:
[α]=+40,4° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 71,3°C.
[α]=+40,4° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 71,3°C.
In dem ¹H-NMR-Spektrum und in dem FT-IR-Spektrum wurden die
gleichen Ergebnisse erzielt wie mit der in Beispiel 14 erhaltenen
Verbindung.
Das Verfahren des Beispiels 13 (iii) wurde wiederholt, wobei
diesmal die in Beispiel 3 erhaltene R-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethylbutanoat anstelle der S-Form von 1-(p-
Hydroxyphenyl)ethyldecanoat verwendet wurde, wobei man 3,3 g
der R-Form von 4′′-(1′′′-(Butanoyloxy)ethyl)phenyl-4-(trans-
2′-(5′-heptyl)-1′,3′-dioxanyl)benzoat erhielt (Ausbeute 66%).
Für die erhaltene Verbindung waren die Ergebnisse in bezug
auf die spezifische Drehung [α] und den Klarpunkt wie folgt:
[α]=+47,5° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 80,9°C.
[α]=+47,5° (CHCl₃, c=1);
Klarpunkt: 80,9°C.
Bei der ¹H-NMR-Spektralanalyse und der FT-IR-Spektralanalyse
wurden die gleichen Ergebnisse erzielt wie bei der in Beispiel
15 erhaltenen Verbindung.
Die optisch aktiven Verbindungen sind wertvoll als Additive
für die Zugabe zu ferroelektrischen Flüssigkristall-Verbindungen,
und dei Verbindungen können nach dem vorstehend angegebenen
erfindungsgemäßen Verfahren leicht hergestellt
werden.
Außer den in den Beispielen angegebenen Zusätzen können auch
andere Zusätze in den Beispielen verwendet werden, wie sie
in der Beschreibung angegeben sind, wobei im wesentlichen
die gleichen Ergebnisse erzielt werden.
Claims (8)
1. Optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin A¹ eine Tetrahydro-2-pyranyl- oder 1-Ethoxyethyl-
Gruppe bedeutet.
2. Optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
und A¹ eine Tetrahydro-2-pyranyl- oder 1-Ethoxyethyl-Gruppe
bedeuten.
3. Optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
bedeutet.
4. Optisch aktive Verbindung der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen,
R⁴ eine Alkyl- oder Alkyloxygruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
und A²
bedeuten, worin X¹ für ein Wasserstoffatom, ein Halogenatom
oder eine Cyanogruppe steht.
5. Verfahren zur Herstellung von optisch aktiven Verbindungen
der nachstehend angegebenen allgemeinen Formeln (1)
und (2):
worin A¹ eine Tetrahydro-2-pyranyl- oder 1-Ethoxyethyl-Gruppe
bedeutet,
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
bedeutet und A¹ wie oben definiert ist,
dadurch gekennzeichnet, daß es umfaßt
die Veresterung eines racemischen Alkohols der allgemeinen Formel worin A¹ wie oben definiert ist,
mit einem Ester einer Fettsäure mit 2 bis 16 Kohlenstoffatomen und 2,2,2-Trichlorethanol oder einem Vinylester einer Fettsäure der allgemeinen FormelH₂C=CR²-O-COR³ (6)worin R² ein Wasserstoffatom oder die Methylgruppe und R³ eine Alkylgruppe mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeuten,
in einem organischen Lösungsmittel in Gegenwart eines Enzyms mit einer Esterase-Aktivität, um nur die R-Form des racemischen Alkohols (5) in den Ester zu überführen, und
die Abtrennung der S-Form des racemischen Alkohols (5) von der Reaktionsmischung.
dadurch gekennzeichnet, daß es umfaßt
die Veresterung eines racemischen Alkohols der allgemeinen Formel worin A¹ wie oben definiert ist,
mit einem Ester einer Fettsäure mit 2 bis 16 Kohlenstoffatomen und 2,2,2-Trichlorethanol oder einem Vinylester einer Fettsäure der allgemeinen FormelH₂C=CR²-O-COR³ (6)worin R² ein Wasserstoffatom oder die Methylgruppe und R³ eine Alkylgruppe mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeuten,
in einem organischen Lösungsmittel in Gegenwart eines Enzyms mit einer Esterase-Aktivität, um nur die R-Form des racemischen Alkohols (5) in den Ester zu überführen, und
die Abtrennung der S-Form des racemischen Alkohols (5) von der Reaktionsmischung.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Enzym um ein Enzym handelt, das von einem
Mikroorganismus gebildet wird, der zu Pseudomonas, Candida
und Achromobacterium gehört.
7. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Enzym um ein Enzym handelt, das im Pankreas
eines Tieres gebildet wird.
8. Verfahren zur Herstellung einer optisch aktiven Verbindung
der allgemeinen Formel
worin R¹ eine Alkylgruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen,
R⁴ eine Alkyl- oder Alkyloxygruppe mit 1 bis 15 Kohlenstoffatomen
und A²
bedeuten, worin X¹ für ein Wasserstoffatom, ein Halogenatom
oder eine Cyanogruppe steht,
dadurch gekennzeichnet, daß es umfaßt
die Veresterung einer Verbindung der allgemeinen FormelR⁴-A²-COOH (7)worin R⁴ und A² die oben angegebenen Bedeutungen haben,
mit einer optisch aktiven Verbindung der allgemeinen Formel worin R¹ wie oben definiert ist.
dadurch gekennzeichnet, daß es umfaßt
die Veresterung einer Verbindung der allgemeinen FormelR⁴-A²-COOH (7)worin R⁴ und A² die oben angegebenen Bedeutungen haben,
mit einer optisch aktiven Verbindung der allgemeinen Formel worin R¹ wie oben definiert ist.
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