DE2856988C1 - Verfahren zur Herstellung von biologischen Zusammensetzungen fuer die Verwendung als Bezugs-Kontrollproben bei der diagnostischen Analyse - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von biologischen Zusammensetzungen fuer die Verwendung als Bezugs-Kontrollproben bei der diagnostischen AnalyseInfo
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Description
40
Biologisch aktive Substanzen, wie sie in Seren oder anderem biologischem Material gefunden werden, wie
Enzyme; Hormone; Elektrolyte und biologisch aktive Metaboliten, werden in großem Umfang zur Diagnose
von Krankheiten analytisch bestimmt. Dabei werden Bezugs-Kontrollproben für die mittels Apparaten
durchgeführten automatisierten kolorimetrischen Analysen benötigt. Diese enthalten alle oder die Mehrzahl
der Komponenten, welche in dem zu analysierenden unbekannten biologischen Untersuchungsmaterial vorkommen.
In ihrer natürlichen Form, wenn sie von ihrer normalen biologischen Umgebung getrennt sind, sind
solche biologisch aktiven Substanzen instabil und sind unter dem Einfluß von Wärme, der Wirkung von
Enzym, der Hydrolyse und anderen Einflüssen, welche molekulare Umwandlungen hervorrufen, unerwünschten
Veränderungen unterworfen. In der Vergangenheit sind mehrere Konservierungsmethoden für solche labilen
biologischen Produkte verwendet worden, insbesondere die Gefriertrocknung, bei der die betreffende biologische
Zusammensetzung praktisch vollständig entwässert wird.
So kann beispielsweise ein solches entwässertes Kontrollmaterial, wie Blutserum oder Blutplasma, ein bis
zwei Jahre lang bei 2 bis 8° C gelagert werden.
Derzeit werden diese entwässerten gefriergetrockneten biologischen Zusammensetzungen kurz vor ihrer
beabsichtigten Verwendung als Bezugs-Kontrollprobe mit destilliertem Wasser rekonstituiert. Einmal rekonstituiert,
beträgt ihre Aufbewahrungsdauer üblicherweise aber nur 3 bis 24 Stunden, wenn sie in flüssiger
Form bei 2 bis 8° C gelagert werden, wobei die Stabilitätsdauer von der Art des biologischen Materials
abhängt.
Üblicherweise muß die nicht verbrauchte Teilmenge von gefriergetrockneten und rekonstituierten biologischen
Kontrollzusammensetzungen am Ende eines jeden Arbeitstages entweder wieder bis zur festen Form
eingefroren oder verworfen werden. Die erste Methode zur Verlängerung der Aufbewahrungsdauer ist sowohl
kostspielig (in bezug auf die Energie), weil das Wiedereinfrieren Temperaturen von —20 bis —30° C erfordert,
als auch zeitaufwendig wegen der für das Wiederauftauen erforderlichen Zeit. Außerdem führt ein wiederholtes
Auftauen und Einfrieren auch häufig zu nicht tragbaren, unkontrollierbaren Veränderungen in der
biologischen Zusammensetzung, so daß sie nicht mehr als Bezugs-Kontrollprobe verwendet werden kann. Die
zweite Methode ist offensichtlich eine Verschwendung und daher teuer.
Um dieses Problem der Lagerfähigkeit von rekonstituierten, gefriergetrockneten Präparaten zu umgehen,
ist in der US-PS 38 76 375 eine andere Arbeitsweise vorgesehen, gemäß welcher aus einer flüssigen Ausgangszusammensetzung
direkt ein flüssiges gebrauchsfertiges Produkt erhalten wird, welches sich beim Endverbraucher
bei Temperaturen von —200C mehrere
Monate lagern läßt.
Bei dieser Arbeitsweise wird dem flüssigen Ausgangsmaterial soviel Wasser entzogen, daß ein noch flüssiges
Konzentrat entsteht,-welchem dann eine der entzogenen Wassermenge genau entsprechende Menge an
einem reinen, unverdünnten Alkylenpolyol zugesetzt wird. Der Wasserentzug soll dabei nur 20 bis 40
Gewichtsprozent der ursprünglichen Wassermenge entsprechen, so daß auch die zugesetzte Menge an Alkylenpolyol
in diesem Bereich liegt.
Derartige flüssige Bezugs-Kontrollzusammensetzungen weisen aber eine Reihe von praktischen Nachteilen
auf. So sind die Versandkosten höher als für ein entsprechendes gefriergetrocknetes festes Präparat,
welches erst am Verbrauchsort rekonstituiert wird. Außerdem läßt sich ein gefriergetrocknetes Präparat bei
milden Kühltemperaturen (2 bis 10° C) mindestens 2 Jahre lang lagern, während die flüssigen, gebrauchsfertigen
Präparate der US-PS 38 76 375 bei wesentlich tieferen Temperaturen (—20° C) aufbewahrt werden
müssen und die Lagerstabilität kürzer als ein Jahr ist.
Es wäre daher sehr erwünscht, eine Möglichkeit zur Verfugung zu haben, um auch gefriergetrocknete
Zusammensetzungen besser rekonstituierbar zu machen.
' Dieses Problem wird durch das erfindungsgemäße Verfahren gelöst.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von stabilen flüssigen biologischen Zusammensetzungen
zur Anwendung als Bezugskontrollprobe bei der diagnostischen Analyse von natürlich vorkommenden
biologisch aktiven Substanzen, durch Rekonstituierung von als Feststoffe vorliegenden gefriergetrockneten
Zusammensetzungen, ist dadurch gekennzeichnet, daß aus einem biologischen Ausgangsmaterial im eingefrorenen
Zustand während etwa 10 bis 24 Stunden etwa 98 bis 99 Gewichtsprozent des darin vorhandenen Wassers
entfernt werden und der so erhaltene, praktisch wasserfreie Feststoff für den Gebrauch als Bezugskontroll-
probe mit einer wäßrigen, etwa 20 bis 50 Gewichtsprozent mindestens eines Alkylenpolyols mit 2 bis 5 Kohlenstoffatomen
im Molekül enthaltenden Flüssigkeit in einer solchen Menge rekonstituiert wird, die der in der
Gefriertrocknungsstufe entzogenen Wassermenge entspricht.
Die vorliegende Erfindung verlängert die ausnutzbare Aufbewahrungsdauer (Lagerdauer) von rekonstituierten
gefriergetrockneten biologischen Bezugs-Kontrollzusammensetzungen in ökonomischer Weise
und ermöglicht es, sie während Zeiträumen von 4 bis 5 Wochen bei 2 bis 8° C in flüssigem Zustand vorrätig zu
halten, wodurch nicht nur die Instabilitätsprobleme praktisch vermieden werden, welche bei der Lagerung
im Eisschrank (bei 2 bis 8° C) von Zusammensetzungen auftreten, welche gemäß dem Stand der Technik rekonstituiert
worden sind, sondern auch die Notwendigkeit vermieden wird, sie für die Lagerung (bei —200C)
wieder zum festen Zustand einzufrieren und für die Verwendung wieder aufzutauen. Unter Verwendung der
Verfahrensverbesserung dieser Erfindung sind bei gefriergetrockneten rekonstituierten biologischen
Bezugs-Kontrollzusammensetzungen signifikante Verbesserungen in der Aufbewahrungsdauer bei 2 bis 8° C
erzielt worden, und die Instabilität in solchen Zusammensetzungen, welche Harnsäure, Glukose, Bilirubin,
eine Vielzahl von Enzymen, beispielsweise alkalische Phosphatase usw. enthalten, ist gehemmt worden.
Gemäß der vorliegenden Erfindung kann das praktisch vollständig entwässerte biologische Bezugs-Objekt
im entwässerten Zustand gelagert und versandt werden, wodurch Versandkosten erspart werden.
Geeignete Alkylenpolyole, welche im erfindungsgemäßen Verfahren für die Rekonstituierung verwendet
werden können, sind: Äthylenglykol, Propylenglykol, Butylenglykol, Pentandiol und Glycerin, wobei Äthylenglykol
bevorzugt ist.
Die zur Rekonstituierung verwendete Flüssigkeit besteht zweckmäßig zu etwa 60 bis etwa 80 Gewichtsprozent
aus Wasser und zu etwa 20 bis etwa 40 Gewichtsprozent aus einem Alkylenpolyol des vorstehend
genannten Typs.
In einigen Fällen ist es wünschenswert, die verschiedensten Kombinationen von Alkylenpolyolen zu verwenden,
beispielsweise Mischungen von Äthylenglykol und/oder Propylenglykol und Glycerin. Obwohl Glycerin
öfters Äthylenglykol in bezug auf das Inlösunghalten von Proteinen überlegen ist, führt es doch zu etwas
unerwünschten Erhöhungen in bezug auf die Viskosität von biologischen Flüssigkeiten.
Durch die Verwendung von Äthylenglykol wird hingegen eine niedrige Viskosität und zu gleicher Zeit eine
gute Erniedrigung des Gefrierpunktes erzielt, wodurch eine Lagerung bei niedrigen Temperaturen im flüssigen
Zustand ermöglicht wird. Die Verwendung von Äthylenglykol in Konzentrationen von wesentlich über 33
Volumenprozent begünstigt andererseits die Neigung des in solchen labilen biologischen Objekten vorhandenen
Proteins zum Ausfällen.
Typisches Plasma- und Serum-Kontrollmaterial für die Verwendung als Bezugs-Seren in Analysen, aufweichen
Diagnosen basieren, wird gemäß den Angaben in Clinical Chemistry, Bd. 21, Seiten 1380 und folgende
(1975), Herausgeber: Bowers & Co. Publishers, wie folgt hergestellt:
Sammel-Abfall-Plasma oder -Serum wird in Form eines gefrorenen Pools (-5° C bis -20° C) von 25 bis
35 Litern gesammelt. Der Ausdruck »Sammel-Abfall-Plasma«, wie er hier verwendet wird, bedeutet eine
Serum-Sammelprobe von mehreren tausend Klinikpatienten; Abfallmengen von jeweils 2 bis 5 ml werden
im »Pool« vereinigt. Gemäß der bisher üblichen Praxis wird der Serum-Pool dann aufgetaut (bei Temperaturen
von 10 bis 25° C während eines Zeitraumes von 10 bis 24 Stunden) und darin vorhandenes teilchenformiges
Material wird aus dem aufgetauten Sammel-Pool abfiltriert.
Biologische Verbindungen, beispielsweise Glukose, Harnstoff, Enzyme usw., werden dann zusammen
mit Stabilisatoren, z. B. Natriumazid usw., zu dem Serum-Pool zugesetzt, um »arithmetische Zielwerte«
einzustellen, und der so erhaltene Serum-Pool wird in Ampullen von 10 ml abgefüllt (insgesamt 2500 Stück),
anschließend während eines Zeitraums von 2 bis 10 Stunden bei vermindertem Druck (für die Trocknungsstufe) von etwa 20 bis etwa 1 mmHg und vorzugsweise
von etwa 5 bis 10 mmHg bei Temperaturen von etwa -100C bis -200C gefriergetrocknet. Nach dem
Trocknen werden die Ampullen mit Stopfen versehen und bei Temperaturen von etwa 2 bis 8° C gelagert.
Die entwässerten und verschlossenen Ampullen können dann bei Temperaturen im Bereich von 2 bis 8° C
bis zu 2 Jahren gelagert werden. Gemäß dieser üblichen Praxis wird die trockene Probe nur in Wasser wieder
aufgelöst und dann sofort verbraucht oder am Ende des Arbeitstages verworfen.
Diese verschwenderischen Maßnahmen werden durch das Verfahren der vorliegenden Erfindung praktisch
ganz ausgeschaltet, da nicht verwendete Proben für 4 bis 5 Wochen bei 2 bis 8° C gelagert werden können,
ohne daß sie erneut eingefroren werden müssen. Während die übliche Rekonstituierung eines gefriergetrockneten
Serums nur mit Wasser ein Bezugsprodukt mit einer Aufbewahrungsdauer im Gefrierschrank
(etwa 4° C) von 2 Tagen für die Glukosebestimmung ergibt, beträgt die Aufbewahrungsdauer 4 bis 5
Wochen, wenn das Serum des gleichen Serum-Pools erfindungsgemäß während eines Zeitraumes von 10 bis
24 Stunden unter Entzug von etwa 98 bis 99 Gewichtsprozent des ursprünglich vorhandenen Wassers gefriergetrocknet
und dann mit einer Mischung rekonstituiert wird, die z. B. 33 Gewichtsprozent Äthylenglykol
in Wasser enthält. Zusätzlich können die erfindungsgemäßen, mit einer Mischung aus Äthylenglykol und
Wasser rekonstituierten B ezugs-Kontrollzusammensetzungen bei —20° C gelagert werden, ohne fest zu werden,
wodurch die Notwendigkeit eines zeitaufwendigen Entfrostens entfallt. Dies ist ein klarer Vorteil bei den
heutzutage sehr beschäftigten Laboratorien.
Die nach dem Verfahren dieser Erfindung herstellbaren flüssigen biologischen Bezugs-Kontrollzusammensetzungen
können in im Handel erhältlichen Mehrkanal-Analysatoren
verwendet werden, die sich kolorimetrischer oder spektrophotometrischer Methoden
bedienen, indem man das betreffende flüssige Präparat (die Konzentration für jede Komponente ist durch
getrennte unabhängige Analyse bekannt) in einen der Probebehälter in der Maschine einbringt und es dann
durch die Maschine laufen läßt und per Hand den Ausdrucker oder Aufzeichner auf die bekannte Konzentration
jeder Komponente einstellt, wie sie durch unabhängige Analyse ermittelt worden ist. Daher hat jede
standardisierte Komponente ihre eigene Färb intensität oder optische Dichte und kann als ein Bezugsstandard
für jede Analyse (Kanal) dienen. Wenn einmal die Durchlässigkeit oder die Farbtiefe oder die Färb intensität
mathematisch mit einem Einheitswert für die Kon-
zentration jeder Komponente in Bezug gesetzt worden ist, kann die Analyse der verschiedenen unbekannten
Stoffe automatisch erfolgen, und man erhält folgerichtig im Mehrkanalsystem ausgedruckte analytische Ergebnisse
für eine große Anzahl unbekannter Substanzen. Die Verwendung der getaäß der Erfindung hergestellten
Bezugs-Kontrollzusammensetzungen stellt eine
Verbesserung dar, weil sie die Verwendung eines stabilen Bezugs-Kontrollpräparats mit einer Zusammensetzung
ermöglicht, welche derjenigen im menschlichen Körper sehr nahe kommt.
10 Liter Humanserum, welches in gefrorenem Zustand von Sammelstationen erhalten wurde, wurden
sorgfaltig gemischt, durch mehrere Lagen Nesseltuch geseiht und bei einem Druck von 1,75 kg/cm2 filtriert.
Um die verschiedenen Zielkonzentrationsstufen für die Serumkomponenten einzustellen, wurden dem
Serum-Pool die folgenden Chemikalien von Reagenzqualität zugesetzt: Glukose, Lithiumcarbonat, Harnsäure,
Bilirubin, Harnstoff, Dinatriumphosphat, Creatinin und Phosphorsäure. Außerdem wurden die folgenden
Enzympräparationen zugesetzt: Milchsäuredehydrogenase (aus Rinderherz), Aspartat-Aminotransferase
(vom Rinderherz), Creatin-Phosphokinase (vom Rinderherz) und alkalische Phosphatase (aus Pflanzen
gewonnen).
Der 10 Liter-Pool wurde in Ampullen von 10 ml abgefüllt, was insgesamt 1000 Ampullen ergab. Man fror
dann bei —20° C bis zum festen Zustand ein. Etwa 98 bis 99 Gewichtsprozent des in den Ampullen vorhandenen
Wassers wurden im Vakuum aus dem gefrorenen Serum entfernt. Die Ampullen wurden dann unter Vakuum
mit Stopfen versehen und im Kühlschrank bei 4° C aufbewahrt.
Um die Stabilität eines mit Glykol-Wasser rekonstituierten Serums mit derjenigen eines Serums zu vergleichen,
welches nur mit reinem destilliertem Wasser rekonstituiert wurde, wurde eine ausreichende Anzahl
von Ampullen mit einer Mischung, die 33 Volumenprozent Glykol-Rest Wasser enthielt, bis zum ursprünglichen
Volumen von 10 ml rekonstituiert. Die Vergleichskontrollproben wurden nur mit destilliertem Wasser
rekonstituiert.
Die Ampullen wurden mit Gummistopfen verschlossen und in 3 gleiche Anteilsmengen aufgeteilt:
a) für die Aufbewahrung bei Raumtemperatur
b) für die Aufbewahrung im Kühlschrank bei 4° C und
c) für die Aufbewahrung in einem Tiefkühlgerät bei -20° C.
Für die Analyse wurde jeweils eine Ampulle aus jedem Lagerbehälter entnommen. Die Proben wurden
auf 17 verschiedene Komponenten analysiert: Gesamt-Protein, Albumin, Calcium, anorganischer Phosphor,
Cholesterin, Harnsäure, Creatinin, Gesamt-Bilirubin, alkalische Phosphatase, Creatin-Phosphokinase, Milchsaure-Dehydrogenase,
Aspartat-Aminotransferase, Chlorid, Kalium, Natrium, Stickstoff aus Harnstoff und
Glukose. Ein im Handel erhältliches Analysiergerät »Hycel 17 Analyzer«, (hergestellt und vertrieben durch
»Hycel Inc.«, Houston, Texas) wurde mit »Hycel«- Bezugsserum calibriert und für die vorstehend genannten Analyse-Untersuchungen verwendet. Die Proben
wurden zunächst etwa täglich und dann in Abständen von jeweils einer Woche untersucht. Als Ergebnis die-
ser Versuche wurde festgestellt, daß eine Konzentration an Äthylenglykol von 33% in Wasser ein praktisches
Optimum darstellt, wahrscheinlich teilweise aufgrund der Tatsache, daß ein so rekonstituiertes Produkt
praktisch die gleiche Viskosität hatte wie Humanserum.
(Stabilität von Serum bei Raumtemperatur)
zu bestimmende
Substanz
Substanz
zu
Beginn
Beginn
1.
Woche 2. 3.
Kreatinin mg% 2,9
Calcium mg% 10,2
Milchsäure- 175
Dehydrogenase
Phosphor mg% 6,8
Kreatin- 91
Phosphokinase
(LU.)
Phosphokinase
(LU.)
Triglyceride mg% 136
Transaminase 68
(I. U.)
(I. U.)
Alk. Phosphatase 24
(LU.)
(LU.)
Gesamt-Bilirubin 3,6
mg°/o
Natrium mÄq/L .148
Kalium mÄq/L 5,6
Chlorid mÄq/L 112
Cholesterin mg% 200
Harnsäure mg 8,0
Gesamtprotein 6,9
mg%
Globulin gm% 2,7
Stickstoff aus 28
Harnstoff mg%
Harnstoff mg%
Glukose mg% 186
3,5 2,5 3,1 3,0 9,8 9,7 8,5 8,0 198 190 ' 187
6,8 7,3 7,7 8,0 70 60 75 50
108 154 160 110 75 62 57 40
32 33
3,4 2,9 2,4 -
151 154 152 152
5,2 5,5 5,5 5,6
110 111 110
185 202 193 200
7,7 7,7 7,7 8,0
6.6 7,1 7,0 6,8
2.7 2,8 2,6 2,7 27 27 27 26
179 181 187 185
(Stabilität von Serum bei 2° C bis 8° C)
zu bestimmende
Substanz
Substanz
zu
Beginn 1.
Beginn 1.
Woche 2. 3.
Kreatinin mg% | 4,0 | 3,2 | 2,6 | 4,2 | 3,5 |
Calcium mg% | 9,9 | 10,0 | 10,2 | 10,0 | 9,9 |
Milchsäure- Dehydrogenase α. u.) |
196 | 200 | 191 | 190 | 200 |
Phosphor mg% | 6,7 | 6,5 | 6,5 | 6,5 | 6,7 |
Kreatin- Phosphokinase (LU.) |
97 | 101 | 68 | 73 | 65 |
Triglyceride mg% | 154 | 98 | 138 | 138 | 140 |
Transaminase (L U.) |
73 | 78 | 68 | 68 | 70 |
Fortsetzung | zu | 2° C bis | 80C) | 2. | 3. | 4. | 5 | Fortsetzung | ZU | -13° C | bis - 20° C) | 2. | J. 4. |
Beginn | 27 | 27 | 27 | Beginn | Woche | 153 | 151 150 | ||||||
(Stabilität von Serum bei | 25 | 1. | (Stabilität von Serum bei - | 148 | 1. | 5,4 | 5,3 5,2 | ||||||
zu bestimmende | 26 | Woche | 3,7 | 3,6 | 3,2 | 10 | zu bestimmende | 5,2 | 148 | 111 | |||
Substanz | 3,7 | Substanz | 107 | 5,2 | 193 | 179 180 | |||||||
Alk. Phosphatase | 3,7 | 154 | 156 | 154 | Natrium mÄq/L | 190 | 110 | 7,5 | 7,3 - | ||||
(I. U.) | 153 | 5,4 | 5,7 | 5,4 | 15 | Kalium mÄq/L | 8,0 | 190 | 6,6 | 6,1 - | |||
Gesamt-Bilirubin | 5,4 | 149 | 110 | 107 | 110 | Chlorid mÄq/L | 6,8 | 7,5 | |||||
mg% | 108 | 5,1 | 199 | 190 | 188 | Cholesterin mg% | 6,5 | 2,7 | 2,4 - | ||||
Natrium mÄq/L | 188 | 107 | 7,6 | 7,7 | 7,5 | Harnsäure mg | 2,8 | 28 | 27 - | ||||
Kalium mÄq/L | 8,1 | 187 | 6,9 | 6,7 | 6,7 | on | Gesamtprotein | 27 | 2,8 | ||||
Chlorid mÄq/L | 6,7 | 7,5 | zu | gm% | 29 | 169 | 165 - | ||||||
Cholesterin mg% | 6,8 | 2,7 | 2,6 | 2,7 | Globulin gm°/o | 185 | |||||||
Harnsäure mg | 2,8 | 28 | 27 | 27 | Stickstoff aus | 182 | |||||||
Gesamtprotein | 31 | 2,7 | Harnstoff mg% | hergestellt wurden, wie in | |||||||||
gm°/o | 27 | Glukose mg% | Zusammensetzungen, die | ||||||||||
Globulin gm% | |||||||||||||
Stickstoff aus | |||||||||||||
Harnstoff mg% |
Glukose mg% 185 173 178 187 177
(Stabilität von Serum bei - 13° C bis - 20° C)
zu bestimmende | zu | 1. | 3,2 | Woche | 2. | 2,6 | 3. | 3,4 | 4. | 3,0 |
Substanz | Beginn | 10,0 | 10,2 | 10,9 | 10,2 | |||||
Kreatinin mg% | 3,0 | 188 | 180 | 184 | 180 | |||||
Calcium mg% | 10,3 | |||||||||
Milchsäure- | 180 | |||||||||
Dehydrogenase | 6,8 | 6,5 | 6,8 | 6,5 | ||||||
. (I-U.) | 70 | 68 | 84 | 70 | ||||||
Phosphor mg°/o | 6,9 | |||||||||
Kreatin- | 89 | |||||||||
Phosphokinase | 100 | 132 | 134 | 130 | ||||||
(I-U.) | 72 | 70 | 69 | 71 | ||||||
Triglyceride mg% | 111 | |||||||||
Transaminase | 68 | 27 | 24 | 23 | 24 | |||||
(I-U.) | ||||||||||
Alk. Phosphatase | 24 | 3,8 | 3,7 | 3,5 | 3,8 | |||||
(I-U.) | ||||||||||
Gesamt-Bilirubin | 3,6 | |||||||||
mg% | ||||||||||
diesem Beispiel beschrieben, wurden bezüglich ihrer Stabilität bei der Aufbewahrung im Kühlschrank
geprüft, und zwar unter Bezugnahme auf anerkannte zulässige Grenzen der Abweichung, wie nachstehend in
Tabelle 4 gezeigt.
Wenn sich bei Analysen der rekonstituierten flüssigen Bezugsseren Resultate ergeben, welche nahe oder
innerhalb dieser Grenzen liegen, dann kann daraus geschlossen werden, daß die Komponenten stabil
waren. Eine Probentrübung (in Zeitabständen visuell geprüft) erbrachte keine analytischen Probleme, die
Proben blieben nämlich bis zur angezeigten Stabilitätsgrenze klar.
Außer für Plasma und Serum ist das Verfahren der vorliegenden Erfindung von Nutzen zur Verlängerung
der Auibewahrungsdauer (nämlich im Kühlschrank)
von Hämoglobin-Standards, von Urin-Kontrollproben und anderen biologischen Bezugs-Kontrollproben oder
Standards in bezug auf signifikante Verbesserungen in der Stabilität, wobei aber gleichzeitig die Notwendigkeit
zum erneuten Einfrieren bis auf den festen Zustand nach dem Rekonstituieren entfällt.
Das beschriebene stabile flüssige rekonstituierte Bezugs-Pool-Serum ist geeignet zur Verwendung als
Eichstandard oder Bezugs-Kontrollprobe für klinische chemische Analysen sowohl mittels manueller Technik
als auch mittels automatisierter Analysatoren, welche geeignet sind, eine Vielzahl von unbekannten Blut- oder
Serumproben zu analysieren.
Zulässige Grenzen der Abweichung
Komponente
Normale Spannweite 8%*
-5SR*
T. Protein | 6,0- 8,0 | g% | .2 | .3 | .16 | 0,22 |
Albumin | 3,5- 5,0 | g% | .2 | .2 | .12 | 0,15 |
Ca | 8,5- 10,5 | mg% | .3 | .4 | .16 | 0,04 |
P | 2,5- 4,5 | mg% | .2 | .3 | .16 | 0,23 |
Cholesterin | 150 -300 | mg% | 10,0 | 18,0 | 12,00 | 17,00 |
Harnsäure | 2,5- 8,0 | mg% | .3 | .6 | .44 | 0,57 |
Fortsetzung
Zulässige Grenzen der Abweichung
10
Komponente | Normale Spannweite | mg% | 1 | .1 | 1 | .2 | 8%* | .5Sr** |
Kreatinin | 0 - 1,4 | mg% | — | .2 | .11 | |||
T. BiIi. | 0,2- 1,0 | mU/ml | 5,0 | 8,0 | .06 | — | ||
Alk. Phos. | 30 - 85 | mU/ml | — | 8,0 | 4,40 | — | ||
CPK | 25 -145 | mU/ml | 16,0 | '16,0 | 9,60 | — | ||
LDH | 100 -225 | mU/ml | 2,0 | 2,0 | 10,00 | — | ||
GOT | 7-40 | niÄq/1 | 3,0 | 4,0 | 2,60 | — | ||
Cl | 95 -105 | mÄq/1 | 2,0 | 2,0 | 0,80 | 0,9 | ||
CO2 | 24 - 32 | mÄq/1 | .2 | •2 | 0,64 | 0,8 | ||
K | 3,5- 5,0 | mÄq/1 | 3,0 | 4,0 | 0,12 | 0,14 | ||
Na | 135 -145 | mg% | 1,0 | 1,0 | 0,80 | 0,5 | ||
BUN | 10-20 | mg% | 6,0 | 11,0 | 0,80 | 1,5 | ||
Glukose | 65 -110 | 3,60 | 4,5 |
*) Ad hoc-beratendes Komitee NIH (Nationales Gesundheitsinstitut), Richtlinien für die Herstellung von Kontrollmaterialien:
Richtlinie für Bezugsmaferial der Klasse A »das 95% Vertrauensintervall überschreitet nicht 8% des
95%-Normalbereiches (Vertrauenswahrscheinlichkeit)«
**) Cotlove Harris & Williams »Clin. Chem.« 16 1028 (1970) .5Sr tolerierbare analytische Variabilität«.
1 Annehmbare Abweichungen, aufgelistet für zwei im Handel erhältliche lyophilisierte Produkte.
- Leerseite -
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Claims (7)
1. Verfahren zur Herstellung von stabilen flüssigen biologischen Zusammensetzungen zur Anwendung
als Bezugskontrollprobe bei der diagnostischen Analyse von natürlich vorkommenden biologisch aktiven
Substanzen, durch Rekonstituierung von als Feststoffe vorliegenden, gefriergetrockneten Zusammensetzungen,
dadurch gekennzeich-io net, daß aus einem biologischen Ausgangsmaterial
im eingefrorenen Zustand während etwa 10 bis 24 Stunden etwa 98 bis 99 Gewichtsprozent des darin
vorhandenen Wassers entfernt werden und der so erhaltene, praktisch wasserfreie Feststoff für den
Gebrauch als Bezugskontrollprobe mit einer wäßrigen, etwa 20 bis 50 Gewichtsprozent mindestens
eines Alkylenpolyols mit 2 bis 5 Kohlenstoffatomen im Molekül enthaltenden Flüssigkeit in einer solchen
Menge rekonstituiert wird, die der in der Gefriertrocknungsstufe entzogenen Wassermenge
entspricht.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Alkylenpolyol Äthylenglykol ist.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Alkylenpolyol Propylenglykol ist.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Alkylenpolyol Glycerin ist.
5. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Alkylenpolyol Butylenglykol ist.
6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Alkylenpolyol Pentandiol ist.
7. Verfahren nach Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die durch die Rekonstituierungsmaßnahme
erhaltene flüssige biologische Bezugs-Kontrollzusammensetzung etwa 2 bis 35
Gewichtsprozent an Alkylenpolyol enthält.
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