DE2660011C2 - Unter Verwendung von Mikroorganismus-Mutanten durchgeführtes Verfahren zur Herstellung neuer 7 a ß - Methylhexahydro-1,(5)indan(di)on-Verbindungen - Google Patents
Unter Verwendung von Mikroorganismus-Mutanten durchgeführtes Verfahren zur Herstellung neuer 7 a ß - Methylhexahydro-1,(5)indan(di)on-VerbindungenInfo
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Description
(II)
(III)
HO
(IV)
HO
dadurch gekennzeichnet, daß man einen Mikroorganismen-Mutanten aus der Gruppe Arthrobacter,
Bacillus, Brevibacterium, Corynebacterium, Mycobacterium, Nocardia, Protaminobacter,
Serratia und Streptomyces, der sich durch seine Fähigkeit zum selektiven Abbau von Steroiden mit
oder ohne 17-Alkylseitenkette mit 2 bis einschließlich
10 Kohlenstoffatomen und zur Bildung bzw. Ansammlung von
3a«-H4Ä-[3'-Propanol]-7a0-methyl-
hexahydro-l,5-indandion-Hemiketal:
3a«-H-4«-[3'-Propanal]-5«-hydroxy-
3a«-H-4«-[3'-Propanal]-5«-hydroxy-
7a/?-methylhexahydro-1 -indanon-
Hemiacetal;
3a«-H-4a-[3'-Propionsäure]-5«-hydroxy-
3a«-H-4a-[3'-Propionsäure]-5«-hydroxy-
7a/?-methylhexahydro-1 -indanon-
(5-lacton und
3a«-H-4a-[3'-Propanol]-5«-hydroxy-
3a«-H-4a-[3'-Propanol]-5«-hydroxy-
7a/8-methylhexahydro-1 -indanon
in der Gärbrühe auszeichnet, in einem wäßrigen Nährmedium unter aeroben Bedingungen in Gegenwart eines Steroids mit oder ohne 17'Aikylseilenkelte mit 2 bis einschließlich 10 Kohlenstoffatomen züchtet.
in der Gärbrühe auszeichnet, in einem wäßrigen Nährmedium unter aeroben Bedingungen in Gegenwart eines Steroids mit oder ohne 17'Aikylseilenkelte mit 2 bis einschließlich 10 Kohlenstoffatomen züchtet.
2, Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,
daß man als Steroid Sitosterin, Cholesterin, Stigmasterin, Campesterin, Androst^en^.^dion,
Androstan M-dienö.H'dionj Dehydroepiandrosteröri
oder Testosteron verwendet.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Gemisch aus Steroiden,
bestehend aus Sitosterin, Cholesterin, Stigmasterin, Campesterin, Androst-4-en-3,17-dion, Androsta-1,4-dien-3,17-dion,
Dehydroepiandrosteron und Testosteron, verwendet.
IO
15
20 Die Umwandlung von Steroiden durch Mikroorganismen wurde bereits recht weitgehend untersucht und in
der Literatur veröffentlicht. Die früheste einschlägige
Arbeit stammt offensichtlich von Mamoli und Vercellone
aus dem Jahre 1937, »Berichte« 70, 470 und »Berichte« 70, 2079. AaO wird über die Reduktion von
17-Ketosteroiden zu 17/?-Hydroxysteroiden mit Hilfe
von Gärhefe berichtet Im Jahre 1952 (\jl US-PS
26 02 769) berichten Peterson und Murray über die lla-Hyciroxylierung von Progesteron mit Hilfe des
Pilzes Rhizopus nigricans. 1972 (vgl. US-PS 36 84 657) berichten Kraychy und Mitarbeiter über den selektiven
mikrobiologischen Abbau von steroidischen 17-AlkyIresten
durch Vergären von Steroiden mit mindestens 8 Kohlenstoffatomen in der 17-Alkylseitenkette mit
Mycobacterium sp. NRRL B-3683 unter Bildung von Androst-4-en-3,17-dion, Androst-l,4-dien-3,17-dion und
20oc-HydroxymethyIpregna-l,4-dien-3-on. 1973 (vgl. US-PS 37 59 791) berichten Marsheck und Mitarbeiter
über die selektive mikrobiologische Darstellung von Androst-4-en-3,17-dion durch Vergären eines Steroids
der Cholestan- oder Stigmastanreihe mit mindestens 8 Kohlenstoffatomen in der 17-Alkylseitenkette mit
Mycobacterium sp. NRRL B-3805.
Die Verbindung III wird von Wang und Sih in »Biochem.« 2,1238 bis 1243 (1963) als Zwischenprodukt
beim Abbau von Androst-4-en-17/?ol-3-on durch Nocardia
restrictus beschrieben. Die offene Ringform der Verbindung I, nämlich 7«-Methylperhydroindandion-(l,5)-[j9-propylalkohoI-(4)],
wird von Schubert und Mitarbeitern in »Steroids«, 4, 581 bis 586 (1964) als Zwischenprodukt beim Abbau von Progesteron durch
Mycobacterium smegmatis beschrieben.
Mutanten, die durch ihre Fähigkeit zum selektiven Abbau von Steroiden mit oder ohne 17-Alkylseitenketten
mit 2 bis einschließlich 10 Kohlenstoffatomen gekennzeichnet sind und in der Gärbrühe Verbindungen
der folgenden Formeln:
3ii t - H -4>-[.V- Propiinol]·
1.5-inil.iiulion-Hcmikciiil:
1.5-inil.iiulion-Hcmikciiil:
(1Ί HO
7/.; mvilivlhexalivdm-
\.i\- H -4\ -| l - PropiiMiil] -S-hulmw
lic.xiiliydro-l-incliinon-llcmiacclal:
lic.xiiliydro-l-incliinon-llcmiacclal:
melhvl-
3ii\-H-4\-[3'-PropionsiiHre]-5\-hydro,xy-7ai;-methylhexahydro-Mndanon-fVlacian:
und
3a\-H-4\-[3'-Propanol]-5\-hydroxy-7a/j-methyI-hexahydro-I-indanon:
(IV)
HO
anhäufen, erhält man nach den im folgenden näher erläuterten Mutationsmaßnahmen oder anderen Mutationsmaßnahmen
aus Mikroorganismen der Gattungen Arthrobacter, Bacillus, Brevibacteiium, Corynebacterium,
Mycobacterium, Nocardia, Protaminobacter, Serratia und Streptomyces, vorzugsweise Mycobacterium.
Beispiele für Arten dieser Gattungen sind M. phlei, M. imegmatis, M. rhoouchrous, M. mucosum, M. fortuitum
und M. butyricum.
Beispiele für zum Abbau gseignete Steroide sind
Sitosterine, Cholesterin, Stigmasterin, ·"ampesterin und
dergleichen mit 17-AlkyIseitenketten mit 2 bis einichließlich
10 Kohlenstoffatomen und Androst-4-en-3,17-dion, Androsta l,4-dien-3,17-dion, Dehydroepiandrosteron
und Testosteron. Diese Steroidsubstrate können entweder in reiner Form oder in Rohform zum
Einsatz gelangen.
Für den Erfindungszweck wurde als ein von vielen möglichen Beispielen in der später beschriebenen Weise
die Art Mycobacterium fortuitum ATCC 6842 zu einer neuen Laboratoriumsmikroorganismusmutante mutiert
Der ATCC-Katalog von 1974 erläutert neben der Auflistung von ATCC 6842 folgendes: »J. C. Cruz 2. Cold
tbscess. Acta Med. Rio de Janeiro 1 :1 (1936). Medium 90 37C«. M. forluitum ATCC 6842 baut Sterine nicht
jelektiv zu niedrigmolekularen Verbindungen, beispielsweise
CO? + HjO, ab. Somit eignet sich dieser
Mikroorganismus nicht zum selektiven Steroidabbau.
Bei der Mutation von M. fortuitum ATCC 6842 mittels Nitrosoguanidin erhält man eine neue Mutante, die
leiektiv Steroide mit oder ohne 17-Alkylseitenketten
mit 2 bis einschließlich 10 Kohlenstoffatomen in der Gärbrühe zu hauptsächlich Verbindungen der Formeln I
bis IV abzubauen vermag.
Die neue Mikroorganismus-Mutante wurde bei der Deutschen Sammlung von Mikroorganismen der
Gesellschaft für Strahlen- und Umweltforsehung mbH München, Grisebachstraße 8, D'34ÖO Göttingen unter
der Hinterlegungsnümmer DSM 774 hinterlegt.
Die Morphologie und die Chemikalien· bzw, Drogen··
empfindlichkeit von M, fortuitum DSM 774 sind von den entsprechenden Eigenschaften der Ausgangsart M,
fortuitum ÄTCC 6842 nicht zu unterscheiden. Beide M. fortuitunvKulturen stellen säurefeste, unbewegliche,
nichtsporenbildende Bacilli aus der Familie Mycobacteriaceae der Ordnung Actinomycetales dar. Nach der
Runyon's Klassifizierung (vgl. E. H. Runyon »Med. Clin. North America«, 43, 273 [1959]) handelt es sich um ein
nichtchromogenes, der Gruppe IV angehörendes Mycobacterium, d.h. es wächst rasch bei niedriger
Temperatur unter Bildung nichtpigmentierter Kolonien auf relativ einfach zusammengesetzten Medien.
M. fortuitum ATCC 6842 und M. fortuitum DSM 774 lassen sich hinsichtlich ihrer Wirkung auf Steroidmoleküle
eindeutig voneinander unterscheiden. Wie bereits ausgeführt, kommt es beim Einsatz von M. fortuitum
ATCC 6842 zu einem nichtselektiven Abbau von Steroiden, bei Einsatz von M. fortuitum DSM 774
ertnlgt dagegen ein selektiver Steroidabbau. Diese Eigenschaft von M. fortuitum DSM 774 stellt eine in
hohem Maße wertvolle Eigenschaft dar.
Die Mutation von M. fortuitum ATCC 6842 zu M. fortuitum DSM 774 erfolgte mit Hilfe von Nitrosoguanidin.
Die Einzelheiten der Mutationsmaßnahmen werden im folgenden noch näher erläutert werden. Obwohl
Mutationsverfahren allgemein bekannt sind, gibt es auf dem einschlägigen Fachgebiet keine Lehren oder sogar
Vermutungen bezüglich der möglicherweise bei Durchführung der im vorliegenden Falle eingehaltenen
Mutationsmaßnahmen erhältlichen Arten von Mutanten. Die im folgenden näher erläuterten Mutations- und
Umwandlungs- bzw. Transformationsmaßnahmen werden zwar im einzelnen für ein Mycobacterium
in beschrieben, es ist jedoch ohne weiteres möglich, ähnliche oder äquivalente Maßnahmen bei Mikroorganismen
der anderen genannten Gattungen anzuwenden. Die erfindungsgemäße selektive Umwandlung läßt
sich in einer wachsenden Kultur von M. fortuitum DSM
j) 774 entweder durch Zugabe des jeweiligen Steroidsubstrats
zu der Kultur während der Inkubationsdauer oder durch Zusatz des jeweiligen Steroidsubstrats zu dem
Nährmedium vor dem Beimpfen bewerkstelligen. Das Steroid kann entweder alleine oder in Kombination mit
•in einem anderen Steroid zugesetzt weräen. Der bevorzugte,
jedoch nicht zwingend erforderliche, Kor.zentrationsbereich für das Steroid in der Kultur beträgt etwa
0,1 bis etwa 100 g/l. Die Kultur wird in einem Nährmedium mit einem Kohlenstofflieferanten, bei-
4) spielsweise einem assimilierbaren Kohlenhydrat, und
einem Stickstofflieferanten, beispielsweise einer assimilierbaren Stickstoffverbindung oder einem eiweißartigen
Material, wachsen gelassen bzw. gezüchtet. Bevorzugte Kohlenstofflieferanten sind Glucose, brau-
■>n ncr Zucker, Rohrzucker, Glycerin, Stärke, Maisstärke,
Lactose, Dextrin, Melasse und dergleichen. Bevorzugte Stickstofflieferanten sind Maiseinweichflüssigkeit, Hefe,
autoiysierte Brauhefe mit Milchfeststoffen, Sojabohnenmehl, Baumwollsaatmehl, Maismehl, Milchfeststoffe,
ü Pankreas-Verdauungsprodukte von Casein, Fischmehl,
Brennereirückstände, Tierpeptonflüssigkeiten, Fleisch- und Knochenabfälle, Ammoniumsalze und dergleichen.
In vorteilhafter Weise können Kombinationen dieser Kohlenstoff- und Stickstofflieferanten zum Einsatz
wi gelangen. Den Gär- bzw. Fermentationsmedien brauchen
keine Spurenmetalle, z.B. Zink, Magnesium, Mangan, Kobalt, Eisen und dergleichen, zugesetzt
Werden, da Vor der Sterilisation des Mediums Leitungswasser und ungereinigte Bestandteile als
ij ■> Komponenten des Mediums zum Einsatz gelangen.
Das Umwandlungsverfahren dauert etwa 72 h bis 15
Tage. Die !nkübationstetnperatur während des Umwandlungsverfahrens
reicht von etwa 25° bis etwa 37° C
und beträgt vorzugsweise 300C. Der Inhalt des
Umwandlungsgefäßes wird mit sterilisierter Luft belüftet und zum leichteren Wachstum des Mikroorganismus
bewegt Auf diese Weise läßt sich der Wirkungsgrad des Umwandlungsverfahrens erhöhen.
Nach beendeter Umwandlung, ermittelt durch Dünnschichtchromatographie
unter Verwendung von handelsüblichen Silikagelplatten und eines Lösungsmittelsystems
aus 2 Volumina Äthylacetat und 3 Volumina Cyclohexan, wird das umgewandelte Steroid in üblicher
bekannter Weise isoliert So kann beispielsweise das Gär- bzw. Fermentations- oder Umwandlungsgemisch
einschließlich der Gärbrühe und der Mikroorganismenzellen mit einem mit Wasser nicht mischbaren
organischei. Lösungsmittel für Steroide extrahiert werden. Geeignete Lösungsmittel sind Chloroform,
Tetrachlorkohlenstoff, Äthylenchlorid, Trichloräthylen,
Äther, Amylacetat Benzol und dergleichen, vorzugsweise Methylenchlorid.
Andererseits können die Gär- bzw. Fermentationsbrühe und die Zellen zunächst in üblicher bekannter
Weise, beispielsweise durch Filtrieren oder Zentrifugieren voneinander getrennt und dann getrennt mit
geeigneten Lösungsmitteln extrahiert werden. Die Zellen können entweder mit einem mit Wasser
mischbaren oder mit einem mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmittel extrahiert werden. Die zellenfreie
Gär- oder Fermantationsbrühe läßt sich mit mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmitteln extrahieren.
Die Extrakte können durch Diatomeenerde filtriert werden, worauf das Filtrat im Vakuum zur Trockne
destilliert wird.
Der die gewünschten umgewandelten Steroide enthaltende Destillationsrückstand kann in einem 10%
Chloroform enthaltenden handelsüblichen Hexanisomerengemisch gelöst und auf Silikagel Chromatographien
werden, wobei als Entwickler das handelsübliche Hexanisomerengemisch einerseits und Mischungen
desselben mit zunehmenden Mengen Äthylacetats verwendet werden. Bei diesen Maßnahmen lassen sich
die Verbindungen I, II und III eluieren. Die Verbindung IV läßt sich beispielsweise mit 5% Methanol enthaltendem
Äthylacetat eluieren. Kristalline Produkte erhält man mit Hilfe eines Lösungsmittels, beispielsweise
Äthylacetat. Die gewünschten umgewandelten Steroide erhält man auch aus der überstehenden Flüssigkeit nach
dem Verdampfen des in der übersteherden Flüssigkeit enthaltenen Lösungsmittels.
Die Verbindungen der Formeln I, II. III und IV eignen
sich als Zwischenprodukte bei der chemischen Synthese wertvoller Steroide. So lassen sich beispielsweise die
• erfindungsgemäß herstellbaren Verbindungen in bei dem aus der US-PS 38 80 884 bekannten Verfahren zur
Totalsynthese wertvoller 19-Norsteroide verwendeten Ausgangssubstanzen überführen. Diese Umwandlung zu
den genannten Ausgangssubstanzen läßt sich in üblicher bekannter Weise durchführen, beispielsweise durch
Oxidation mit Chromsäure in Essigsäure und anschließender Nachbehandlung mit Essigsäureanhydrid und
Natriumacetat (vgl. »Biochem.« 2, 1238 bis 1243 und »J.A.C.S.« 85,2135 bis2137).
Die folgenden Beispiele sollen das Verfahren gemäß der Erfindung näher veranschaulichen. Sofern nichts
anderes angegeben, bedeuten sämtliche Prözerttangaben »Gewichtsprozente«.
Ferner bedeuten sämtliche Mengenangaben bei Lösungsmittelgemischen, sofern nichts anderes angegeben.
»Volumina«.
Herstellung der Mutanten M. fortuitum NRRL
B-812S ( = DSM 774) aus M. fortuitum ATCC 6842:
a) Nitrosoguanidin-Mutagenese
Zellen von M. fortuitum ATCC 6842 wurden bei einer Temperatur von 28° C in einem sterilen Saatmedium dor
folgenden Zusammensetzung wachsen gelassen:
Nährbrühe 8 g/l
Hefeextrakt 1 g'I
Natriumpropionat 0,5 g/I
mit destilliertem Wasser
mit destilliertem Wasser
aufgefüllt auf 1 1
Der pH-Wert des Mediums wurde mit 1 n-NaOH vor einer 20minütigen Sterilisation bei 121° C auf 7,0
eingestellt
Die Zellen wurden bis zu einer Dichte von etwa 5xlOs/ml wachsen gelassen, durch Zentrifugieren in
Kügeluhen überführt und dann mit einem gleichen Volumen sterilen 0,1 m-Natriuii,:itrat eines pH-Werts
von 5,6 gewaschen. Die gewaschene,! Zellen wurden in demselben Volumen Citratpuffer resuspendiert worauf
j-, ein aliquoter Teil zur Titerfeststellung (d. h. zur
Zellenzählung) abgetrennt wurde. Schließlich wurde Nivosoguanidin bis zu einer Endkonzentration von
50 μg/ml zugesetzt Die Zellensuspension wurde in
einem Wasserbad 30 min lang bei einer Temperatur von
jo 37° C inkubiert, worauf erneut ein aliquoter Teil zur
Titerfeststellung abgetrennt wurae. Der Rest wurde abzentrifugiert und mit einem gleichen Volumen sterilen
0,1 m-Kaliumphosphats eines pH-Werts von 7,0 gewaschen. Schließlich wurden die Zellen in einem sterilen
υ Minimalsalzmedium ohne Kohlenstofflieferant der
folgenden Zusammensetzung:
NH4NO, | 1,0 g/l |
K2HPO4 | 0,25 g/I |
MgSO4-7 H2O | 0 25 g/I |
NaCl | 0,005 g/I |
FeSO4? H2O | 0,001 g/l |
mit destilliertem Wasser | |
aufgefüllt auf | 1 1 |
•ι j resuspendiert. Der pH-Wert dieses Mediums wurde vor
einem 20minütigem Sterilisieren bei 121°C mit 1 n-HCl auf 7,0 eingestellt. Endlich wurden die Zellen zur
Auswahl der Mutanten ausgebreitet
-n b) Auswahl und Isolierung der Mutanten
M. fortuitum NRRL B-8128
Die in der geschilderten Weise mutagenisierten
Zellen wurden verdünnt und auf Platten verstrichen, die ein Medium der folgenden Zusammensetzung enthiel-
jj '«η (modifiziert nach Fräser und Jerrel, 1963 »J. Biol.
Chem.«, 205,29 Ibis 295):
Glyzerin 10,0 g/I
Na2HPO4 8,4 g/l
KH2PO4 4,5 g/l
"° NH4Cl 2,0 g/I
MgSO4-7 H2O 0,3 g/l
FeCl3-6H2O 0,05 g/l
mit destilliertem Wasser
mit destilliertem Wasser
aufgefüllt auf 1 I
Nach Zugabe von 15 g/l Agar wurde das Medium 30 min lang in einem Autoklav auf eine Temperatur von
1210C erhitzt und dann in sterile Petrischalen gegossen.
Das Wachse« bzw. die Züchtung auf diesem Medium eliminierte die meisten durch das Mutageneseverfahren
gebildeten Nährauxotrophe. So wutderi beispielsweise
Kulturen, die zum Wachsen auf chemisch definierten Medien Vitamine, Wachstumsfaktoren und dergleichen
erfordern, eliminiert. Nach etwa 7tägiger Inkubation bei einer Temperatur Von 28°C wurden die gebildeten
Kolonien auf zur Auswahl von Mutanten geeignete Testplatten und dann zurück auf das auf Glycerin
basierende Medium enthaltende Kontrollblatt repliziert. Die Testplatten wurden entsprechend der Veröffentlichung
von G. E. Peterson, H. L Lewis und J. R. Davis »Preparation of uniform dispersions of cholesterol and
other water-insoluble carbon sources in agar media«, J. Lipid Research 3, 275 bis 276 (1962) hergestellt. Das
Minimalsalzmedium auf diesen Platten ist unter (a) von Beispiel 1 beschrieben. Nach Zugabe von 15 g/l Agar
und 1,0 g/l eines geeigneten Kohlenstofflieferanten wurden Steroide, wie Sitosterin oder Androstendion
(AD), zugesetzt, worauf die erhaltene Suspension 30 min lang bei 121 "C im Autoklav erhitzt wurde. Das sterile,
heiße Gemisch wurde hierauf in ein steriles Mischgefäß gegossen, mehrere min lang durchgemischt und
schließlich in sterile Pelrischalen gegossen. Bei diesen Maßnahmen konnte es infolge Schaumbildung zu
Schwierigkeiten kommen, diese ließen sich jedoch durch Durchmischen des heißen Gemischs und durch Abflarnmen
der Oberfläche der geschmolzenen Agarplatten verringern. Auf diese Weise erhielt man gleichmäßige
Dispersionen wasserunlöslicher Kohlenstofflieferanten, wodurch die Herstellung sehr homogener, jedoch
opaker Agarplatten erleichtert wurde.
Die auf den Kontrollplatten gewachsenen Kolonien, jedoch nicht die auf den AD als einzigen Kohlenstofflieferanten
enthaltenden Testplatten gewachsenen Kolonien, wurden durch Ausstreichen auf Nähragarplatten
gereinigt Nach dem Wachsen bei einer Temperatur von 280C wurden mit Hilfe steriler
Zahnstocher Einzelklonen von den Nähragarplatten gepflückt und durch Beimpfen netzartig gemusterter
Platten mit AD als Kohlenstofflieferanten erneut getestet Gereinigte Isolate, die noch einen von der
Mutterkultur unterschiedlichen Fhenotypus aulwiesen, wurden dann in Schüttelflaschen ausgewertet
45
c) Schüttelflaschenauswertung
Es wurden 500 ml fassende Schüttelflaschen mit 100 ml eines Biotransformationsmittels der folgenden
Zusammensetzung verwendet:
Glycerin | 10,0 g/l |
Na2HPO4 | 8,4 g/l |
KH2PO4 | 4,5 g/l |
NH4Cl | 2,0 g/l |
MgSO4-7 H2O | 03 g/l |
FeCl3-6 H2O | 0,05 g/l |
mit destilliertem Wasser | |
aufgefüllt auf | 11 |
Hierauf wurden in das Medium 1 g/l Sojamehl und dann 10 g/l Sitosterin eingemischt Nach 20minütigem
Erhitzen der Flaschen in einem Autoklav auf 121°C wurden sie auf 28" C abgekühlt und dann mit 10 ml eines
wie folgt hergestellten Saatguts beimpft:
Die gereinigten Isolate aus Stufe (b) wurden bei einer
Temperatur von 28° C auf geneigtem Agar wachsen gelassen. Zum Beimpfen einer 500 ml fassenden Flasche
mit 100 ml eines sterilen Saatmediums der folgenden Zusammensetzung:
Nährbrühe | 8 g/l |
Hefeextrakt | lg/l |
Glyzerin | 5 g/l |
mit destilliertem Wasser | |
aufgefüllt auf | 1 1 |
wurde eine von einem geneigten Agar entnommene öse voll Zellen verwendet.
Der pH-Wert des Saatmediums wurde vor dem 20minütigen Erhitzen der Flaschen auf 12PC in einem
Autoklav mit 1 n-NaOH auf 7,0 eingestellt. Die Saatflaschen wurden 72 h lang bei einer Temperatur
von 28° C inkubiert.
Wie bereits erwähnt, wurden 10 ml gewachsene Saat zum Beimpfen sämtlicher 500 ml-Flaschen mit jeweils
100 ml sterilen Transformationsmediums verwendet. Hierauf wurden die Flaschen bei einer Temperatur von
28 bis 300C auf einem Drehrüttler inkubiert, wobei von Zeit zu Zeit aliquote Proben entnommen wurden. Diese
Proben umfaßten jeweils 10 ml und wurden nach dem Austragen durch Schütteln mit 3 Volumina MethylenchloriH
extrahiert. Teile der Extrakte wurden durch Dünnschichtchromatographie unter Verwendung von
Silikagel und des beschriebenen Lösungsmittelsystems, d. h. 2 Volumina Äthylacetat und 3 Volumina Cyclohexan,
sowie durch Gas/Flüssig-Chromatographie analysiert Ein Nachweis der Anwesenheit der Verbindungen
der Formeln I, II, III und IV bestätigte den selektiven Abbau von Sitosterin durch die neuen Mutanten aus
dem Muttermycobacterium M. fortuitum ATCC 6842.
Umwandlung von Sitosterin in die Verbindungen der Formeln 1, ii, iii und iV:
Das verwendete Medium entspricht dem Medium von
Beispiel 1 (c). Dieses Medium wird durch 30minütiges Erhitzen auf 121°C sterilisiert, dann auf 30°C abgekühlt
und schließlich mit 10 Teilen einer Saatkultur des Mutanten-Mycobacterium M. fortuitum NRRL B-8128,
die entsprechend Beispiel 1 (c) hergestellt worden war, beimpft Das beimpfte Gemisch wird unter Bewegung
336 h lang bei einer Temperatur von 30° C zur Begünstigung eines submersen Wachstums inkubiert
Nach der Inkubation wird das Gemisch mit Methylenchlorid extrahiert Der Extrakt wird durch Diatomeenerde
filtriert, worauf das Filtrat im Vakuum zur Trockne destilliert wird. Der hierbei angefallene Destillationsrückstand
wird mit einem handelsüblichen, 10% Chloroform enthaltenden Hexanisomerengemisch aufgenommen
und auf Silikagel Chromatographien, wobei als Entwickler das handelsübliche Hexanisomerengemisch
und Mischungen desselben mit zunehmenden Mengen an Äthylacetat verwendet werden. Hierbei
lassen sich die Verbindungen I, II und ΠΙ eluieren. Die Verbindung IV läßt sich aus der Säule mit 5% Methanol
enthaltendem Äthylacetat eluieren. Die Reihenfolge des Eluirens der betreffenden Verbindungen ist
IV.
030 220/253
26 60 Oil
IO
Die Rf-Werte dieser Verbindungen auf einem Dünnschichtchromatogramm
unter Verwendung eines 3 :2-Cyclohexan/Äthylacetat-Gemischssind:
I = 0,37
II = 0,28
III = 0,16
IV = 0,05
Auf dGilnschichtchromatographischem Wege ermil·
telte geeignete Fraktionen werden gesammelt Und zur Trockne eingedampft, wobei die Verbindungen I1II, III
und IV in guter Ausbeute erhalten werden.
Beim Umkristallisieren aus Äthylacetat erhält man
die Verbindung I in Form eines 1 :1-Epimerengemischs
eines Fp, von 100 bis 112"C;
die Verbindung II stellt ein öl dar;
die Verbindung III besitzt einen Fp. von 122 bis 124°C und
die Vsrbindun" !Y besitzt einen Fn. von !48 bi^
15O0C.
Beim Ersatz des im Beispiel 2 verwendeten Sitosterins durch Cholesterin erhält man ebenfalls die
Verbindungen I, II, III und IV.
Beim Ersatz des im Beispie! 2 Verwendeten
Sitosterins durch Stigmasterin erhält man ebenfalls die Verbindungen I1II, III und IV.
Beim Ersatz des im Beispiel 2 verwendeten Sitosterins durch Campesterin erhält man ebenfalls die
Verbindungen I1II, III und IV.
Durch Zusatz einer Kombination aus beliebigen Steroiden der Beispiele 2 bis 5 zu dem Sitosterin in
Beispiel 2 oder durch Verwendung einer beliebigen Kombination der Steroide der Beispiele 2 bis 5 anstelle
des Sitosterins in 2s;sp:c! 2 erhält ττ.ζχ ebenfalls die
Verbindungen der Formeln I, II, III und IV.
Bei Ersatz von Mycobacterium fortuitum ATCC 6842 in Beispiel 1 durch einen Mikroorganismus der Gattung
Arthrobacter, Bacillus, Brevibacterium, Corynebacterium, Nocardia, Protaminobacter, Serratia und Streptomyces
erhält man Mikroorganismenmutanten, die sich durch ihre Fähigkeit zum selektiven Abbau von
Steroiden mit oder ohne 17-AIkylseitenketten mit 2 bis
einschließlich 10 Kohlenstoffatomen und zur Bildung von Verbindungen der Formeln I, II, MI und IV in der
Gärbrühe auszeichnen^
Durch Ersatz der Mutanten M. fortüitürri NRRL
B-8128 in den Beispielen 2 bis 6 durch die gemäß Beispiel 7 hergestellten Mutanten erhält man ebenfalls
die Verbindungen der Formeln I, II, III und IV,
Durch Ersatz des M. fortuitum ATCC 6842 in Beispiel 1 durch einen sterinabbauenden Mikroorganismus der
Gruppe Mycobacterium phlei, M. smegmatis, M.
rhodochrous, M. mueosum und M. butyricum erhält man Mikroorganismenmutanten, die sich durch ihre Fähigkeit
zum selektiven Abbau von Steroiden mit oder ohne i7-Alkylseitenketten mit 2 bis einschließlich 10 Kohlenstoffatomen
und zur Bildung bzw. Anhäufung von
zu Verbindungen der Formein I, ii, in und IV in der
Gärbrühe auszeichnen.
Beispiel 10
Durch Ersatz der Mutanten M. fortuitum NRRL B-8128 in den Beispielen 2 bis 6 durch die gemäß
Beispiel 9 hergestellten Mutanten erhält man ebenfalls Verbindungen der Formeln I, II, III und IV.
Beispiel 11
ίο Durch Ersatz des Sitosterins im Beispiel 2 durch
Androst-4-en-3,17-dion, Androsta-l,4-dien-3,17-dion, Dehydroepiandrosteron oder Testosteron erhält man
ebenfalls die Verbindungen der Formeln I, II, III und IV.
Beispiel 12
Durch Ersatz des Sitosterins im Beispiel 2 durch eine Kombination aus zwei oder mehreren Sterinen,
bestehend aus Sitosterin, Cholesterin, Stigmasterin, Androst-4-en-3,l 7-dion, Androsta-1,4-dien-3,l 7-dion,
Dehydroepiandrosteron und Testosteron, erhält man ebenfalls die Verbindungen der Formeln I, II, III und IV.
Beispiel 13
Durch Ersatz der Mutanten M. fortuitum NRRL ·<■' B-8128 in den Beispielen 11 und 12 durch die gemäß
Beispiel 7 hergestellten Mutanten erhält man ebenfalls die Verbindungen der Formeln I, II, III und IV.
Beispiel 14
><> Durch Ersatz der Mutanten M. fortuitum NRRL
B-8128 in den Beispielen 11 und 12 durch die gemäß Beispiel 9 hergestellten Mutanten erhält man ebenfalls
die Verbindungen der Formeln I, H, III und IV.
SSSJSScfciSSSSSÖiäSrc^^
Claims (1)
1. Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der Formeln:
HO
HO
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