DE2638193B2 - Laminierte Membran fur die Verwendung in einer Enzymelektrode und Verfahren zur Herstellung einer solchen Membran - Google Patents
Laminierte Membran fur die Verwendung in einer Enzymelektrode und Verfahren zur Herstellung einer solchen MembranInfo
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Description
Die Erfindung bezieht sich auf eine laminierte e>5
Membran gemäß dem Oberbegriff des Anspruches 1, sowie auf ein Verfahren zur Herstellung einer
laminierten Membran.
Polarographische Zellsysteme sind in der Medizin zur
Messung verschiedener Substanzen recht üblich geworden. Außerdem sind Enzyme in Verbindung mit
polarographischen Zellen verwendet worden, insbesondere in Fällen, wo die unbekannte zu messende Substanz
nicht polarographisch aktiv ist, sondern ein Material, das von einer enzymatischen Reaktion mit dieser
unbekannten Substanz erzeugt oder verbraucht wird, erfaßbar ist Zum Beispiel ist es bekannt, daß Glucose
nicht polarographisch aktiv ist, daß aber dii folgende
Reaktion in der Gegenwart von Enzymglycolseoxidase stattfindet:
Glucoseoxidase
Glucose+ O2 >
Gluconsäure + H2 O:
Das Bestehen dieser Reaktion ist für die Ermöglichung einer polarographischen Messung der Glucose
bedeutend.
Durch den Aufwatz von Clark and Lysons in den »Annals of the New York Academy of Science«, 102,
Seiten 29 bis 45 (1962) ist die Verwendung einer pH-Wert-empfindlichen Elektrode zur Erfassung bzw.
zum Nachweis der durch die Reaktion erzeugten Gluconsäure bekanntgeworden. Es wurde dabei beschrieben, daß das Enzym in einem solchen System
zwischen Cuprophanmembranen eingefangen werden könnte. Die Glucc^e diffundiert durch die Membran und
wird durch das Enzym zur Gluconsäure umgewandelt, welche dann sowohl durch das pH-Wert-empfindliche
Glas als auch zurück in die Donatorlösung diffundiert.
Es ist weitirrhin bekanntgeworden, daß durch Verwendung einer hydrophoben Membran, einer
Dialysemembran, Glucoseoxidase. und einer pO2-EIektrode ein System aufgebaut werden kann, das auf
Glucose auf Grund der Tatsache empfindlich ist, daß Sauerstoff aus der fließenden Glucoselösung im
Verhältnis zu ihrem Glucosegehalt verbraucht wird.
Aus der US-PS 35 39 455 ist eine Weiterbildung dieses Systems bekanntgeworden. Statt die p-Wertveränderung oder den Sauerstoffverbrauch zu messen, wird
gemäß der vorgenannten US-Patnntschrift eine Platinanode verwendet, um das erzeugte Wasserstoffperoxid
zu messen. In der in dieser Patentschrift beschriebenen polarographischen Zelle ist das Enzym auf der anodalen
Seite einer Cellophanmembran angeordnet Die Glucose mit niedrigem Molekulargewicht geht durch die
Membran hindurch und reagiert mit dem Enzym, aber störende hochmolekulare Katalase- und Peroxidastmaterialien tun dies nicht. Es wird beschrieben, daß die
Enzyme in einem dünnen Film direkt zwischen der Platinoberfläche und der Membran dadurch gehalten
werden können, daß man das Enzym auf einem porösen Film anordnet, der hinreichend große Räume hat, um die
Enzymmoleküle zu halten. Die Verwendung von polymeren Gelen zur Stabilisierung des Enzyms ist auch
beschrieben.
Weil die Cellophanmembran störende niedermolekulare Materialien, wie z. B. Harnsäure oder Ascorbinsäure, nicht am Erreichen der Anode hindert, wird in der
vorgenannten US-Patentschrift ein Doppelelektrodensystem vorgeschlagen. Die Kompensationselektrode
gibt ohne die Gegenwart eines Enzyms ein Signal für die Störsubstanzen, während die Enzymelektroden sowohl
das Wasserstoffperoxid als auch die Störung nachweist. Durch Abziehen des gelesenen Wertes der Kompensationselektrode von dem der Glucoseelektrode wird der
Betrag der Wasserstoffperoxidproduktion und somit
das Glucoseniveau bestimmt, Ein solches Düppelsensorsystem
bei der Verbindung der zwei Zellen stößt jedoch noch immerauf Schwierigkeiten.
Es wäre erwünscht, eine Enzymelektrode zu haben, die eine dünne Filtermembran verwendet, um den
Durchgang von störenden, sogar niedermolekularen Materialien, wie z. B. Harnsäure und Ascorbinsäure zu
verhindern, während sie den Durchgang von Wasserstoffperoxid mit minimaler Behinderung ermöglicht Es
gibt zwar Membranmaterialien, wie z.B. Siliconkautschuk
und Celluloseacetat, welche den Durchgang von Wasserstoffperoxid gestatten, die aber wirksame
Barrieren für störende Substanzen sind. Weil diese Art
von Membran zwischen die Anode und eine gewisse Komponente des Abtastsystems angeordnet werden
muß, folgt, daß zur schnellstmöglichen Messung des Gleichgewichts die Membran so dünn wie möglich sein
muß, während sie immer noch ihre Selektivität behält Im FpJIe einer Wasserstoffperoxidabtastprobe muß
diese Membran eine geringere Dicke als 2 μπι haben.
Eine Membran dieser Dicke ist jedoch in der Praxis schwierig, wenn nicht unmöglich :;u benutzen, da sie
eine unzureichende Festigkeit hat
Eine gewisse Stützung der Membran ist daher erforderlich.
In der schweizerischen Patentschrift 5 69 973 werden verschiedene Alternativen zum Aufbau von laminierten
Membranen beschrieben. So ist z. B. das Absetzen des
Membranmaterials in einer dünnen Schicht auf einem porösen Aufbau in mancher Hinsicht zufriedenstellend, v,
Der poröse Aufbau sorgt für die notwendige Festigkeit, während er gleichzeitig für den Durchgang des
Wasserstoffperoxids ein geringes Hemmnis ist, und dir schwache abweisende oder sperrende Störschicht kann
dünn sein, um die Geschwindigkeit des Ansprechens zu begünstigen. Diese laminierte Membran wi^d mit einer
polarographischen Elektrode und einem geeigneten Enzym derart kombiniert, daß der vervollständigte
Sensor in zufriedenstellender Weise auf das gewünschte nichtpolarographische Substrat anspricht. In einem 4»
üblichen Aufbau bei einer speziellen Membran wird das Enzym zwischen der Anode und der Membran
angeordnet, wie es in der obengenannten US-Patentschrift beschrieben ist Bei einer derartigen laminierten
Membran wäre jedoch das Enzym ebenso wirksam abgeschirmt wie die Anode. Deshalb ist die Sperrwirkung
der Interferenz auf Moleküle gleicher Größe oder größere Moleküle als das Substrat des Enzyms begrenzt.
Membranmaterialien, welche kleinere Interferenzen abweisen oder sperren wurden, würden dann auch das
Substrat daran hindere, das Enzym zu erreichen.
Altsrnativ kann das Enzym auch auf der der Anode abgewandten Seite dieser laminierten Membran angeordnet
sein. In diesem Falle kann es durch eine dritte äußere Membranschicht eingefangen werden, die für 5-,
das Substrat durchlässig, aber für das Enzym undurchlässig
ist. Bei diesem Aufbau wird das Substrat nicht unnötig an einer Reaktion mit dem Enzym gehindert,
und es ist eine gute Sperrwirkung aufgrund der gegenseitigen Beeinflussung möglich, da die Filter- bo
schicht nur die sich ergebende polarographische Substanz durchlassen muß, z.B. Wasserstoffperoxid.
Die polarographische Substanz wird jetzt jedoch zwei Schichten von der Abföhlanode entfernt erzeugt, ist von
ihr also durch die dünne Interferenzsperrschicht und den porösen Unteraufbau getrennt, und die Ansprechgeschwindigkeit
wild durch die Behälterwirkung dieses Raumes oder Abstandes begrenzt
Nach einer anderen Ausführung kann das Enzym in dem porösen Unteraufbau angeordnet und durch eine
andere Membran umschlossen werden: dieser Aufbau hat jedoch in nachteiliger Weise Grenzen hinsichtlich
der Geschwindigkeit infolge der Mehrfachschichten und insbesondere durch die Dicke des porösen Aufbaues;
denn jetzt wird das Enzym in dieser dicken Schicht dispergiert und ist für sein Substrat weniger zugänglich.
Nach einer weiteren Ausführung kann das Enzym in dem porösen Aufbau angeordnet und mit diesem
verbunden werden, so daß die dritte äußere Membran wegfallen kann. Somit wird die polarographische
Substanz, Wasserstoffperoxid, dicht neben der Anode erzeugt, und das Enzym ist für sein Substrat leicht
zugänglich. Diese Lösung erfordert jedoch sehr komplizierte Enzymimmobilisationstechniken und bietet
Schwierigkeiten bei der Steuerung der Diffusion des Substrates, durch welche der Linearitätsbereich der
Elektrode bestimmt wird.
Ein anderes Problem bei einer solchen Membran besieht darin, daß, wenn sie zu dünn ist, sie nicht
hinreichende Festigkeit hat Wen« sie andererseits zu dick ist, dann wird die insgesamt gesehen wichtige
Meßgeschwindigkeit über das Tolerierbare hinaus verlängert
Das heißt für die Messung der unbekannten Substanz in irgendeiner Probe wird Zeit verbraucht während die
Reaktion stattfindet, und das Potentiometer gleicht den Betrag des erzeugten H2O2 ab und schreibt ihn auf.
Bevor dann eine andere Probe geprüft werden kann, muß das Potentiometer auf den Nullpunkt zurückgehen.
Wenn eine große Zahl von Proben analysiert werden soll, versteht sich, daß jegliche Verringerung dieser
Zeitdauer recht bedeutsam ist
Die Erfindung geht von einer in der vorgenannten schweizerischen Patentschrift beschriebenen Ausführungsform
aus und bezieht sich daher auf eine laminierte Membran für die Verwendung in einer Enzymelektrode,
die im wesentlichen aus einer ersten Schicht aus im wesentlichen homogenem Material besteht, das aus der
Gruppe von Siliconkautschuk, Methylacrylat und Celluloseacetat ausgewählt ist, gefolgt von einer
Enzymschicht, der außerdem zur Probenlösung hin eine übliche Membranschicht vorgesetzt ist, die den Durchgang
niedermolekularer Substanzen, wi-i Glucose
gestattet, aber hochmolekulare Substanzen, wie Proteine zurückhält.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, diese laminierte Membran so auszubilden, daß sie den
Durchgang sowohl von hoch- als auch niedermolekularen interferierenden Chemikalien verhindert und für die
Probenausmessunj keine übermäßige Zeit erfordert.
Die Lösung dieser Aufgabe gelingt gemäß der Erfindung dadurch, da3 die Gesamtdicke der laminier-
:en Membran weniger als 25 μπι beträgt, daß die Enzymschicht aus einer Klebeschicht besteht, die die
erste Schicht aus dem homogenen Material mit der zweiten Schicht als Stützschicht verbindet, und daß die
Stützschicht eine Dicke zwischen 1 und 20 μπι aufweist.
Es ist somit dr>p. laminierte doppellagige Membran
vorgesehen, in welcher das Enzym selbst dazu verwendet wird, die zwei Schichten zusammen zu
verbinden, oder bei welcher die die zwei !schichten zusammen verbindende Klebschicht das Enzym enthält.
Die Membran weist 1. eine Stützschicht auf, weiche die Substratdiffusion -,teuert und als eine Barriere für
hochmolekulare Substanzen dient weist 2. eine Enzymzubereitung bzw. Enzympräparat für die Reak-
tion mit der unbekannten Substanz auf und weist 3. eine
im wesentlichen homogene Schicht auf, die als eine Barriere für niedermolekulare interferierende Materialien dient, jedoch den Durchgang von Wasserstoffperoxid gestattet. Vorzugsweise ist die Gesamtmembrandicke kleiner als etwa ΙΟμηι, obwohl etwas dickere
Membranen bis zu etwa 25 μπι auch möglich sind. Die
laminierte Membran gemäß der Erfindung weist eine niedrige Ausgleichsgeschwindigkeit, z. B. 10 Sekunden
auf, wenn sie bei einer polarographischen Zelle verwendet wird, wie sie in der obengenannten
US-Patentschrift 35 39 455 beschrieben ist.
Die der Anode der Enzymelektrode benachbarte Schicht besteht aus Siliconkautschuk, Methylmethacrylat,
Celluloseacetat oder aus einem anderen Material, welches den Durchgang der interferierenden Chemikalien,
wie z. B. Ascorbinsäure oder Harnsäure, verhindert. Diese Schicht kann eine Dicke von weniger als 2 μηι und
vorzugsweise eine Dicke zwischen 0,5 und 1,0 μπι haben.
Die zur Probenlösung hin benachbarte Schicht ist eine Diffusionsbarriere, welche den Durchgang hochmolekularer
Substanzen verhindert, während sie gleichzeitig die Zugfestigkeit vorsieht, um die Form der Membran
zu halten und eine innige Berührung mit der Elektrode aufrechtzuerhalten. Dieses Material ist vorzugsweise
ein poröses Polycarbonat, kann aber auch eine andere Art sein, wie z. B. ein Metallgitter. Es hat vorzugsweise
eine Dicke von weniger als 20 μπι, wobei es besonders vorteilhaft eine Dicke zwischen I und 10 μπι und am
meisten bevorzugt eine Dicke zwischen 5 und 7 μπι hat.
Der die zwei Schichten zusammen verbindende Klebstoff kann ein Enzympräparat sein, z. B. Glucoseoxidase,
Gluctoseoxidase, Uricase usw., welches z. B. mit Glutaraldehyd gemischt sein kann. In diesem Falle kann
das Glutaraldehyd als der die zwei Schichten zusammen verbindende Klebstoff wirken, und das Enzym ist nur
darin enthalten. Andere Klebstoffe können ebenfalls verwendet werden. Ein Beispiel ist bovine syrum
Albumin. Ähnlich kann der Klebstoff auf die innere Fläche jeder äußeren Membranschicht und das an
diesem angebrachte Enzym aufgebracht werden. In jedem Fall wird der Enzymklebstoff in einer dünnen
gleichmäßigen Schicht aus einer wäßrigen Paste oder Lösung auf einem im wesentlichen homogenen Film
angeordnet, der auf einer Trägerbahn gehaltert ist. Ein selbsttragender Stützfilm wird dann mit dem Enzymklebstoffpräparat
auf dem Substrat zur Bildung eines Laminates in Berührung gebracht. Dann wird das
Laminat getrocknet, um das Enzymklebepräparat auszuhärten und die Schichten sicher aneinander zu
verbinden. Die Membran kann in dieser Form verwendet werden, nachdem der Träger entfernt ist. Für
eine leichte Aufbringung auf eine polarographische
Zelle kann alternativ ein geeignet bemessener O-Ring auf die Stützschichtoberfläche geklebt werden, einzelne
laminierte Membranen aus der Bahn ausgestanzt und die Trägerschicht von jedem entfernt werden.
Fin besonders vorteilhaftes Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen Membran ist in Anspruch 6
angegeben.
Die Erfindung wird in der folgenden Beschreibung im Zusammenhang mit der Zeichnung näher erläutert.
F i g. 1 zeigt eine teilweise Schnitt- und teilweise Seitenansicht einer polarographischen Zelle, bei welcher die laminierte Membran gemäß der Erfindung
angeordnet ist;
Fig.2 zeigt eine vergrößerte Ansicht des unteren
Mittelteils der polarographischen Zelle der F i g. 1 unter
ausführlicherer Darstellung der laminierten Membran gemäß der Erfindung.
In F i g. 1 ist ein Zellenaufbau gezeigt, der einen elektrisch isolierenden Stützkörper 12 aus Kunststoff
oder Glas aufweist, welcher zylindrisch sein kann und von einer elektrisch isolierenden Kappe 14 abgedeckt
ist. In dem Stützkörper 12 ist ein elektrisch isolierender Körper oder Stab 15 aus Kunststoff oder Glas
angeordnet, welcher eine Platinelektrode 16 halten, welche eine aktive oder freie Fliehe 17 aufweist, und ein
Leiter 18 ist an der Elektrode 16 angebracht und geht
durch den Stab 15 sowie durch die Kappe 14 hindurch.
Das untere Ende des Stützkörpers 12 ist mit einem
Ring oder einem ringförmigen Halter 19 versehen, und eine laminierte Membran 20 gemäß der Erfindung ist
über dem Ende des Stützkörpers 12 nahe der Elektrode 16 und in Kapillarabstand von der aktiven Fläche 17
gehaltert. Die Membrane 20 wird auf dem Stützkörper 12 durch einen O-Ring 21 oder dergleichen in Stellung
gehalten.
Ein Ringraum 25 befindet sich zwischen dem Stab 15 und dem Stützkörper 12 und nimmt eine Bezugselektro
de 30 auf, die z. B. ein mit Silberchlorid beschichteter
Silberdraht sein kann. Der Raum 25 ist mindestens teilweise und meistens vollständig mit einer flüssigen
Mischung der Elektrolyten gefüllt, der beide Elektroden 30 und 16 berührt und in den Ringraum 25 durch eine
öffnung 31 eingeführt werden kann, die unterhalb der
Kappe 14 vorgesehen ist.
Bei polarographischen Messungen werden gewöhnlich zwei Elektroden verwendet, deren eine polarisiert
ist und keinen Stromfluß erlaubt, bis sie durch eine Substanz, die gemessen wird, depolarisiert ist. In dem
Zellenaufbau gemäß F i g. 1 ist die Elektrode 30 die Kathode, die polarisiert ist und häufig als die
Bezugselektrode bezeichnet wird. Die andere Elektrode, die in F i g. 1 mit 16 bezeichnet ist, arbeitet als Anode
und ist in der Gegenwart der Substanzen, die gemessen werden, nicht polarisiert und hält deshalb den relativ
großen Stromfluß nicht zurück und wird häufig als die Sensorelektrode bezeichnet Die in Fig. 1 gezeigten
Elektroden sind elektrisch gegeneinander isoliert, und das Elektrolytmaterial, welches die Kammer 15 füllt,
schafft einen elektrischen Pfad zwischen den zwei Elektroden. Typische Elektrolyten enthalten Natriumoder
Kaliumchloridpuffer einschließlich Carbonat, Phosphat, Bicarbonat, Acetat oder Alkalisalze oder
Salze Seltener Erden oder andere organische Puffer oder Mischungen derselben. Das Lösungsmittel für
einen solchen Elektrolyten kann Wasser, G'ycole, Glycerin und Gemische daraus seia
Eine ausführlichere Beschreibung der Enzymelektrode selbst findet man in der US-PS 35 39 455 (Clark), auf
die hierdurch Bezug genommen wird.
F i g. 2 zeigt die Membrane 20 vollständiger, und es wird in der Beschreibung der Membran vornehmlich
hierauf Bezug genommen. Die gezeigte Schicht 32 ist diejenige neben der aktiven Fläche 17 der Anode 16.
Diese Schicht 32 ist das im wesentliche homogene Silicon-, Methyunethacrylat- oder Celhiloseacetatmaterial. Die Schicht 34 ist die äußere Schicht, die mit der zu
analysierenden Probe in Berührung ist Bei der bevorzugten Ausführungsform ist dies ein mit 0,03 um.
Porengröße perforierter Polycarbonatfilm mit einer
Dicke von 5 μπι, einer Stickstofffließrate bzw. -geschwindigkeit von 25 ml/Mm/cm2 bei 0,7 kg/cm2 und
mit 6 χ 10* Löchern/cm2. Wenn ein Stützfilm mit einer
Dicke von etwa 5 bis 7 um verwendet wird, beträgt die
Gesamtdieke der laminierten Membran weniger als IO μπι, die bevorzugt ist. Typische Dicken würden 5 μηι
für die Schicht 34,1 μηι für die Schicht 32 und 1 μπι für
die Schicht 36 oder eine Gesamtdieke von 7 μηι
betragen. Die Schicht 36 ist das Klebenzymmaterial, welches die Schichten 32 und 34 zusammen verbindet.
Die laminierte Membran 20 wird vorzugsweise dadurch hergestellt, daß man zuerst die im wesentlichen
homogene Schicht auf einer abstreifbaren Trägerbahn anordnet. Im Falle von Celluloseacetat geschieht dies
durch Ablagern des Celluloseacetats in einem Lösungsmittel (z. B. Cyclohexanon) auf Wasser. Es bildet sich ein
Film, der von einer abstreifbaren Trägerbahn, wie z. B. Polyäthylen, aufgenommen werden kann. Ein ähnliches
Verfahren kann man für Silicon un^ andere im wesentlichen homogene Materialien verwenden, wie
/. B. Methylmethacrylat. Wie erwähnt, liegt die bevorzugte Dicke für die im wesentlichen homogene Schicht
im Bereich von 0,5 bis 1,0 μηι.
Das Enzymklebepräparat kann in einfacher Weise eine Mischung eines geeigneten Enzyms, wie z. B.
Glucoseoxidase, Glactoseoxidase usw. in Wasser sein. Bei einer anderen Ausführungsform können andere
Materialien, wie z. B. ein Binder oder ein Vernetzungsmittel, wie Glutaraldehyd, in dem Enzympräparat
enthalten sein. In diesem Falle kann das Glutaraldehyd der Klebstoff sein. Auch kann ein Klebstoff auf die
Innenfläche jeder Außenschicht und des damit verbundenen Enzyms aufgebracht werden. Erforderlich ist nur,
daß das Klebstoffmaterial den Schirm der Außenschichten rcht beeinflußt. Ebenso ist das Verhältnis von
Enzym zu Wasser in dem Präparat so lange immateriell, wie eine fließfähige Paste oder Lösung gebildet wird, die
leicht zu einer dünnen, gleichmäßigen Schicht aufgetragen oder gepreßt werden kann, und genügend Enzym ist
eingeschlossen, um eine angemessene reaktionsfähige Menge für die Messung vorzugsehen.
Nachdem man die wäßrige Enzymklebelösung oder Paste auf der im wesentlichen homogenen Schicht
angeordnet hat. wird eine selbsttragende Stützbahn aus Diffusionsbarrierenmaterial 34, vorzugsweise ein poröses Polycaibonat, in Berührung mit dem Enzymklebe
präparat auf der Celluloseacetatschicht zur Bildung eines Laminates gebracht. Das Laminat wird dann
dadurch getrocknet, daß man ihm die Möglichkeit gibt, sich bei Raumtemperatur '/2 Stunde lang oder mehr in
der Luft zu setzen. Um das Laminat außerdem Für den Transport und die Lagerung geeignet zu machen, kann
es etwa '/2 Stunde lang bei 45°C gebrannt werden. Wenn die Trägerbahn abgenommen ist, sind die
laminierten Membranen für den Einbau auf eine polarographische Zelle fertig.
Wenn es jedoch bevorzugt ist, kann man nach dem l.aminierungsverfahren auf die Halterungsschiclit 34
einen Kautschuk-O-Ring 21 geeigneter Größe zum Passen in den Halter 19 auf der polarographischen Zelle
10 (siehe Fig. 1) kleben. Für die Benutzung fertige laminierte Membranen 20 können dann um die O-Ringe
herum ausgestanzt werden. Selbstverständlich wird die Halterungsschicht von der Fläche der im wesentlichen
homogenen Schicht in diesem Falle ebenfalls abgestreift.
Wenn die laminierte Membran 20 für die Benutzung fertig ist oder sich in Benutzung befindet, muß sie nicht
feucht gehalten werden, weil die Verbindung zwischen den Schichten 32 und 34 der durch die Trocknung
hervorgerufenen unterschiedlichen Ausdehnung widersteht. Das heißt das Trocknen des Laminates verursacht
nicht ein Brechen oder eine andere Beschädigung der Beeinflussungssperrschicht.
In bemerkenswerter Weise dauert wegen der Dicke der laminierten Membran von weniger als 10 μίτι die
polarographische Analyse weniger als 30 Sekunden (und in einigen Fällen sogar nur 10 Sekunden). Während
dieser kurzen Zeit diffundieren die unbekannte Substanz und Sauerstoff durch die Schicht 34, reagieren mit
dem Enzym in der Schicht 36, und dann diffundiert das gebildete Wasserstoffperoxid durch die Schicht 32, um
die aktive Fläche 17 der Anode 16 zu berühren. Das Potentiometer gleicht dann bei der Messung die Menge
des Wasserstoffperoxids aus. Diese kurze Meßzeit ist für Laboratorien und Krankenhäuser äußerst wichtig,
wo pro Tag zahlreiche Analysen vorgenommen werden müssen.
Claims (7)
1. Laminierte Membran für die Verwendung in einer Enzymelektrode, die im wesentlichen aus einer
ersten Schicht aus im wesentlichen homogenem Material besteht, das aus der Gruppe von Silikonkautschuk, Methylacrylat und Celluloseacetat ausgewählt ist, gefolgt von einer Enzymschicht, der
außerdem zur Probenlösung hin eine übliche Membranschicht vorgesetzt ist, die den Durchgang ι ο
niedermolekularer Substanzen, wie Glucose gestattet, aber hochmolekulare Substanzen, wie Proteine
zurückhält, dadurch gekennzeichnet, daß die Gesamtdicke der laminierten Membran weniger
als 25 um beträgt, daß die Enzymschicht aus einer ;s
Klebeschicht besteht, die die erste Schicht aus dem homogenen Material mit der zweiten Schicht als
Stützschicht verbindet, und daß die Stützschicht eine Dicke zwischen 1 und 20 μΐη aufweist
2. Membran nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das im wesentliche homogene Material
Cellulosea;etat mit einer Dicke von 0,5 bis 1,0 μπι ist.
3. Membran nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das Enzym aus der Gruppe mit
Glucosfcoxidase, Glactoseoxidase und LJricase ausgewählt, ist
4. Membran nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die zweite Schicht (34) ein poröser
Polycarbonatfilm mit einer Dicke von etwa 5 bis
7 μπι ist und die Gesamtdicke der Membran (20)
kleiner als 10 μπιίεΐ.
5. Membran nach einem der Ansprüche 1 bis 4,
dadurch gekennzeichnet, daß ein O-Ring (21) zum Befestigen der Memhran (2C) an einer polarographischen Zelle an der zweiten Schicht (34) durch a
Klebung angebracht ist.
6. Verfahren zur Herstellung einer laminierten Membran zur Verwendung in einer polarographischen Zelle nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daCl man einen dünnen Film von im wesentlichen
homogenem Material auf einer glatten Oberfläche ablagert, wobei das Material aus der Gruppe
ausgewählt ist, die Siliconkautschuk, Methylmeihacrylat und Celluloseacetat aufweist, der abgelagerte
Film mit einer abstreifbaren Trägerbahn aufgenommen wird, ein wäßriges Enzymklebepräparat auf
dem im wesentlichen homogenen Film angeordnet wird, eine selbsttragende poröse Stützbahn zur
Bildung eines Laminates in Berührung mit dem beschichteten Substrat gebracht wird, das Laminat v>
zum klebenden Ablagern oder Sichhärten des Enzyms getrocknet wird und die abstreifbare
Trägerbahn vcn der laminierten Membran abgestreift wird.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekenn- η
zeichnet, daß ein O-Ring auf die Polycarbonatbali«
aufgeklebt wird und dann aus der laminierten Membran um den O-Ring herum vor dem Abstreifen
der abstreifbaren Trägerbahn von der laminierten Membran ausgestanzt wird. to
Applications Claiming Priority (2)
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Cited By (5)
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EP0080601A1 (de) * | 1981-11-05 | 1983-06-08 | Miles Laboratories, Inc. | Membran für Enzymelektrode, Verfahren zur Herstellung einer solchen Membran und polarographische Zellenstruktur |
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