DE2405316C3 - Immobilisiertes Enzympräparat - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft immobilisierte Enzympräparale,
bei denen das Enzym an anorganische im wesentlichen kieselsäurefreie Träger gebunden sind.
Die meisten hochmolekularen Enzyme sind wasserlöslich,
was ihre Anwendbarkeit als Katalysatoren begrenzt, weil sie mit in Lösung gehen, die Produktreinheit
beeinträchtigen und verlorengehen.
Es ist daher versucht worden, sie zu immobilisieren,
wasserunlöslich zu machen, z.B. durch Bindung an oder Einschiuli in einem wasserunlöslichen Träger
ohne Beeinträchtigung der katalytischen Aktivität auf längere Dauer. Bisher wurden vielfach organische
Träger verwendet, z.B. Polyaminostyrolperlen oder Zellulosederivate. Nachteile der organischen Träger
sind Quellung, mangelndeSteiflgkeil, geringe Diffusion des Substrats, Mikrobenbefall, geringe Wärmebeständigktit,
schwierige Sterilisicrung usf. (vgl. Wectall, in Science, Bd. 166, |l%9|, S. 615). Deshalb wurden
nach der Lehre der US-PS 35 56 945 und 35 19538 anorganische Träger vorgeschlagen.
l'ür die nach der Lehre der DT-OS 1944 418. entsprechend
US-PS 35 19 538, geforderte kovalente Bindung des En/yms über zwischengeschaltete, einen
sili/itinifiinklionellen Teil und einen organischen Teil
aufweisenden Silankopplcr wird cm slark kieselsir.irehaltiges
Material, insbesondere poröses Glas bevorzugt,
wenn auch anderes, nicht sili/iumhaltige Metalloxide
;ils Möglichkeit erwähnt wen.len. ohne jedoch die physikalische Beschaffenheit. Porös lät. Korngröße
und dergleichen als kritische Merl· rn.de erkannt /u
haben. »Jas gill auch für die weitere Entwicklung
auf Jiesenn Gebiet, wobei die spätere US-PS mit ihrt:m
Vorschlag einer Bindung Jes Enzyms an eine Triig:r-Substrat-Kombination
wiederum die Verwendung \on porösem Cilas ais Trägennaterial bevorzugt, vgl. den
Anspruch I, und in je Jem Falle die Bedeutung wesentlicher physikalischer Merkmale nicht behänd*;It.
Zwar erörtert Messing in Enzymologia, Bt). .'W,
S. 12-14 das Verhältnis von Porengröße und Oberflächengröße
auf die Quantität adsorbierter Enzyme, beschränkt diese Betrachtung aber auf poröse Glasträger
und auf den rein quantitativen Gesichtspunkt der adsorbierten Enzynim engen.
Demgegenüber wurde gefunden, daß kieselsäurehal-
Demgegenüber wurde gefunden, daß kieselsäurehal-
is tige Träger, wie z.B. poröses Glas in alkalischer Umgebung
nur eine sehr kurze Lebensdauer haben; das ist umso bedauerlicher, as viele Enzyme bei alkalischen
pH-Werten katalytisch besonders wirksam sind. Die Alkalifestigkeit kann durch Überzug mit einem
•o Metalloxid, z.B. Zirkono^id, verbessert werden. Jedoch
bedeutet dies einen sveiteren Bearbeitungsschntt und höhere Gestehungskoiten.
Auch ein Überzug von organischen Polymeren wurde bereits vorgeschlagen, US-PS 37 05 084. Auch dies erfordert
aber ein aufwendiges Beschichtungsverfahren und führt wiederum die Nachteile organischer Stolfe
ein.
Besondere Schwierigkeilen entstehen auch bei dt.n
für die großindustrielle Produktionsweise in Durcilaufkolonnen,
die eine besonders zuverlässige und dauerhafte Immobilisierung der benötigten Enzyme
verlangt.
Es ist daher Aufgabe de: Erfindung, immobilisierte, auch für die Verwendung in großem Umfang, inshe-
.15 sondere Durchlaufkolonni.:n und dergleichen, geeignete
Enzympräparate mit guter Lebensdauer, Alkalibeständigkeit sowie verbesserter quantitativer und
qualitativer Immobilisierung zur Verfügung zu stellen. Diese Aufgabe wird durch das Enzympräparat der
Erfindung mit einem im Wesentlichen kieselsäurefreien Träger dadurch gelöst, daß das Material em
poröser Keramikkörper m t einer durchschnittlichen Korngröße von 0,074-4,76 mm ist, dessen durchschnittlicher
Porendurchmesser wenigstens so groß w e die größte Abmessung de Enzyms, aber kleiner a s
1000 Ä, und daß das Enz>m an die Innenfläche dts
porösen Keramikkörper gebunden ist.
Von kritischer Bedeutung ist das Verhältnis von durchschnittlicher Porengrc ße und der Abmessung dts
an den Träger zu bindenden Enzyms. Die durchschnit liehe Porengröße soll Beschickung und llalbwertsze t
der Lebensdauer möglichst erhöhen und eine leicht: Diffusion des Substrats in dis Trägermaterial und zum
gebundenen Enzym gewährleisten. Vorzugsweise wird
Ss das Enzym an kieselsäurefrsies, keramisches Material
aus agglomerierten Mctnlloxidpurtikeln wie Aluminium-,
Titan- oder Zirkonoxid gebunden. Der Träger kann auch mehrere dieser Metalloxide enthalten.
Der Träger muß im wesentlichen frei von Kiesel-
to säure sein, also möglichst kein SiO-, enthalten. Er
besteht aus einem nicht brü jhigcn, keramischen Material
mit einer Oberfläche jirölkr als 5 ijm/g und hat
einen Durchmesser der durcischnilllichen Porengröße,
der wenigstens so groß we die größte Abmessung
(κ des zu bindenden I 11/virs. aber kleiner als etw 1
KHK) A ist
Der fuger muH porös sein, bloß lein verteilt.-Metalloxulnartikeln
uenime 1 also nicht ohne weitere1
Ein kritische« Merkp u| ist das Verhältnis der durchschnittlichen
Porengi UIe des Trägers und deruröUten
Abmessung des Enzym >. Der bevorzugte durchschnittliche
Porendurchmesstsr hängt unmittelbar von der
größten Abmessung des verwendeten En/yms und in gewissem Umfang auch von der GröUe des in
Frage kommenden Substrats ab, falls dieses etwas größer als das En/yn sein sollte. In jedem FaJIe
muß es zwar wenigstens so groll wie die größte Abmessung
des Enzyms, aber kleiner als 1000 λ sein. Durch geeignete Auswahl aus diesem Bereich können
auch Träger mit die Diffusion größerer Substrate gestattender Porengröüi erhalten werden. Das Enzym
muß in das innere Po rennetzwerk im Wege der Massendiffusion eindringen können. IstdasSubstratgrößer,
z. B. bei proteolytischen Enzymen, so muß die durchschnittliche
Porengröl e auch das Substrat eindringen lassen. Die obere Grenze sollte aus zwei Gründen
jedoch 1000 Ä nicht iil·ersteigen. Größere Porenweiten
verringern die Gesam!oberfläche für die Enzymaufnähme.
Zweitens wire der Schutz des Enzyms unter
Turbiilenzbedingungei! bei größeren Porcnwcitcn geringer,
d. h., es besteht die Gefahr der Ablösung des Enzyms, besonders bei Durchlaufumsetzungen mit
größerem Druckabfall Der praktische Bereich für die meisten Enz)me lieyt zwischen 100 und 1000 Ä,
vorzugsweise IOO-500 Ä. Die beste durchschnittliche
Porengröße hangt abei immer vom jeweiligen Enzym
und seinem Substrat al).
Die größte Abmessung eines Enzyms oder seines Substrats kann in beknn lter Weise aus dem Molekülgewicht
oder du:-"!; Ausichlußversuche bestimmt werden.
Bei sphärischen I nzvmen ist die größte Abmessung etwa der Molek j|durchmesser. Bei länglichen
Enzymen ist tlie größte Abmessung die Länge, usw. Die durchschnittliche Porengröße muß in manchen
Fällen auch Jas Substrat berücksichtigen. Ist das Substrat kleiner als cias Enzym, so diffundiert das
Substrat zum gebundenen Enzym (z.B. Glucose und
Sauerstoff zur gebunJencn Glucoseoxidase) meist ohne Schwierigkeit. Is das Substrat dagegen so groß
wie oder größer als dis Enzym, so muß die durchschnittliche Porengröß; des Trägers dies berücksichtigen.
Soll ein stabilisiertes Papainpräparat z.B. zur Hydrolyse einss Proteins wie Alpha-Casein dienen,
so muß das mehrfach größere Alphu-Caseinmolekül
(Molekülgewicht 121OCO im Vergleich /u 21000 des
Papains) diffundieren lassen. Die durchschnittliche Porengröße muß z. B. das 2- bis 4fache der Größe
des Papainmoleküls b !tragen, also wenigstens etwa 100-200 Ä, W'inn da.' Papain zur Hydrolyse von
Eiweiß (Mol«:külgewi:ht40000-70000) verwendet werden soll. Dagegen l.ann bei Herstellung von Fructose
durch Einwirkung vnn Glucoseisomerase (Molekülgewicht 1803(K), Gräte etwa 100 Ä) auf Glucose
die Porengrößfi näher am unteren Ende des angegebenen
Bereichs liegsn. Das gleiche gilt z.B. bei Urease (etwa 125 Ä) mil ebenfalls kleinem Substrat.
Hei sehr großen Enzymen wie Pyruvatdecarboxylasc mit einem berichteten Molekülgewicht von über
I 000000 muß der Träger näher an der Porengröße von 1(KM)A liegen, und auch der kritische Bereich
ist entsprechend kleiner. Auch bei Catalase mit einem
Molekülgewicht von et>v;i 2.SO(KK) und einer größten Abmessung von etwa I H.! Ä ist der kritische Bereich
ctwiis kleiner, liegt also /wischen 1831(KK)A, wobei
übrigens (his kleinere S.ihslral (Wasserstoffperoxid)
unberücksichtigt bleiben kann.
Die Art der Bindung hängt in bekannter Weise vom beabsichtigten Gebrauch, den Kosten, der technischen
Durchführbarkeit, der behaltenen Enzymaktivität, der Zugänglichkeil der Reagenzien usw. ab.
s Meist kommen drei Methoden in Frage, nämlich Adsorption z. B. gemäß US-PS 35 561MS, chemische Bindung
über Silankuppler gemäß US-PS 35 I1) 538, 36 6') 841 und Adsorption und Verkettung in den
Poren gemäß Patentanmeldung P 23 39 805.2 der gleichen
Anmelderin. Die Trägeroberlläche muß lediglich freie Oxid- oder Hydroxylgruppen zur Bindung aufweisen,
die das Enzym über Adsorption, eventuell auch Verkettung in den Poren oder über chemische
Kuppler mit wenigstens einem mit diesen Gruppen umsatzbereiten Teil binden. Alle drei Methoden
,verden hier mit »Bindung« bezeichnet. Sie können auch kombiniert werden. In den weiter unten erläuterten
Beispielen wurden die Enzyme nach dem Verfahren der US-PS 35 56 945 adsorbiert.
ίο Von großer Wichtigkeit für Herstellung und Gehrauch
des Präparats ist die Korngröße des porösen Kcramikirägers. Lim seine Oberfläche voll auszunutzen,
muß das Enzym vor Bindung lief in den porösen Träger eindringen können und nach Bindung
des Enzyms gilt dies auch für das Substrat.
Die DilTusionsfähigkeit des Enzyms hängt von mehreren
Faktoren ab, wie Porengröße und Korngröße des Trägers, pH-Wert und isoeleklrischcr Punkt des
Enzyms, sowie Zeit und Temperatur. Als bevorzugter Korngrößenbereich des Trägers wurden 0,074-4,76
mm (4-200 p)csh) gefunden. Größere Partikeln
erschweren die Diffusion, so daß die Oberfläche nicht voll genutzt wird, und erfordern beim Durchlaufeine
sehr lange Verweilzeit des Substrats. Kleinere
is Partikeln sind nur schwer in der Kolonne zu hallen
und verursachen bei dichter Packung einen besonderen Aufwand erfordernden starken Druckabfall. Besonders
günstig ist der Bereich 0,177-0,71 mm (25-80 mesh).
Für die Herstellung wird ein poröser, im wesenlliehen kieselsäurefreier Keramikkörper mit entsprechender
Porengröße gemahlen und klassiert, wobei vorzugsweise auf möglichst gleichmäßige Porenverteilung
geachtet wird. Geeignet sind beispielsweise poröses Aluminium-, Titan- oder Zirkonoxid, einzeln
oder in Mischung oder auch andere, wasserunlösliche Metalloxide. Die porösen Körper werden dann mit
einem geeigneten Puffer für die anschließende Enzymbindung vorbereitet oder hydratiert, um möglichst
viele Oxid- oder Hydroxylgruppen an der Oberfläche zu bilden. Zur Adsorption von 1. ti. Glucoseisomerase
auf porösem Aluminiumoxid wird eine Hydratation mit einem Puffer mit mehr als 7 pH bevorzugt. Zur
Bindung durch Adsorption wird zunächst der Puffer entfernt, jedoch werden die Partikeln feucht gehalten.
Sodann wird das Enzym mit einer die optimale Adsorption oder optimale Beschickung der verfügbaren
Oberfläche gewährleistenden Konzentration zugesetzt. Die Adsorption und Massendiffusion des Enzyms
in den Poren kann durch Bewegung beschleunigt
ho werden, l. ti. Umlauf, Rühren, Umkippen, Verwendung
eines lluiden Betts und dergleichen. Die erforderliche
Dauer der optimalen Adsorption hängt vom Träger der Porengröße. Partikclgrößc. (irößc und Spin der
Enzymmoleküle, Temperatur, pll-Wcrl. Bewegung
ds usw. ab, jedoch ist für ausreichende Adsorption und
Beschickung mindestens eine halbe Stunde erforderlich,
meist l'/'-5Std. Meist sollte der pll-Wcrl so
uewahlt werden, daß die Oherlliichcnhidiinii ili?s
Hn/ynis umgekehrt der Oberflächenladung des 1 rägers
ist. Nach der Adsorption wird loses Hn/ym abgcvviiti-licn,/.
B. mit Wasser, Salzlösung(z. B. 0,5 MNaCI) u.a., die das Präparat nicht beeinträchtigen.
Bei Anwendung kann das Fnzymprä'parat in einer s vcrslöpsclten Durchlaullcolonne, einem ständig gerührten
Umsctzungsgelaß, einem fluiden Bett und dergleichen mit der Möglichkeil der Subslrataufgabe
zur Inkubation gehallen werden. In den Beispielen wurde dir Fnzymaktivität wiederholt unter statischen
und dynamischen Bedingungen untersucht. Bei Prüfung unter dynamischen Bedingungen (entsprechend
der gcpllanten Anwendung) wurde die Halbzeit des Enzyms (Verlust der halben Anfangsaktivität) gemessen.
Jc länger diese Halbzeit, desto wertvoller ist auch das Fnzym. Die Beispiele zeigen durchweg
sein lange Halbzeiten und gute Lagerfähigkeit.
Meist wird kontinuierliches Arbeiten dem abschnittsweiscn
gegenüber bevorzugt. Bei Verwendung in einer Kolonne kann mit Hilfe eines Wassermantels eine
optimale Inkubationstemperatur und eine die IIaIbwcrls/ciil
möglichst verlängernde Temperatur eingehallen werden: z.B. bei Herstellung von Fructose
Gliicosc-Substral und Glucoscisomerase ist für beide
Gesichtspunkte 60° günstig. Der pH-Bereich und das Ptilfersystem für die Inkubation hängen auch vom
jeweiligen Fnzymsystcm ab, z. B. bei Herstellung von Fructose. 7,2-8,2 oder, besonders günstig, 7.4-7.8.
In der Regel wird das PulTcrsystcm im Hinblick auf
die saure oder alkalische Beschaffenheit des Substrats gewühlt, die durch die Substratlösung selbst und/
oder die Gegenwart verschiedener, zugesetzter aktivierender Ionen verursacht wird, sowie den optimalen
pH-Wert des Fnzymsystcms.
In den folgenden Beispielen wurden als Träger für is
die angesehenen Fnzymc poröse Keramikkörper verschiedener,
kiesclsäurclrcier Metalloxide mit PorcngröUcn von 140-985 A verwendet. Die ParlikclgröBc
der Träger lag zwischen etwa 25 und 80 mesh. Die Träger bestanden jeweils aus
AUO, (175 A)
ZrO, (175 A)
TiO. (350 A) (420 A) (820 A) (855 A)
TiO-AU), - (220 A) 4s
Der zuletzt aufgeführte Trägci bestand ;uis44 Gew.-1',
TiO, und 56", AU)1.
B c i s ρ i e I I sn
(ilucoseisomcrase adsorbiert auf porösem AIiO1
Cilucoscisonicra.se (größte molekulare Abmessung
etwa 4(KlA. Molckülgewiclit 1800(K)/ wurde auf po- ss
rösem Aluminiumoxidkörpcrn mit den folgenden physikalischen Merkmalen adsorbiert:
l'orösei Al O1-I rager
Durchschnittlicher Poren- 175 A
(Itiri'hmesser
l'oieniluichniesset. Minimum 140 A
l'iih'Hiliiii hmcssei. Maximum .VO Λ
l'oiein olumcii O.d em Vg
OIktII.r-Ik 1(1(1 m 7g
IMOHc 1 mesh .'■>
(Ό
Das adsorbierte Hnzym bcsland aus roher Glucoseisomerase
enthaltend 444 internationale Glucnseisnnieraseeinheilen
(IGIH) pro g. Die Fnzymaklivitäl wurde mit einem modifizierten Cyslein-Carbozolverfahrcn
bestimmt. Das stabilisierte Präparat wurde folgendermaßen hergestellt: einer Lösung von 28,7 ml
0,1 M Magncsiumacclat wurde 5 g des obigen rohen Glueoscisomcrasepräparats zugesetzt. Die Aufschlämmung
wurde 25 Min. bei Zimmertemperatur gerührt und durch Filterpapier filtriert. Der Rückstand aul'dcm
Filterpapier wurde mit 14,3 ml 0,1 M Magncsiumacetatlösung
und anschließend mit 14,3 ml 0,5 M NaIICO, und 4,3 ml 0,5 M NaIICO, gewaschen. Das Waschprodukt
wurde direkt im Filterpapier aufgefangen. Das Gesamtvolumen der f-nzymwaschlösung betrug
etwa 50 ml.
500 mg des porösen Aluminiumoxids wurden in eine 50-ml-Kugeinasche gegeben und 10 ml der Glucoseisomeraselösung
zugesetzt. Die Flasche wurde an einen: Rotationsverdampfer befestigt, ein Vakuum
angelegt und die Flasche in ei>em auf 30-45° gehaltenen
Bad 25 Min. tang roiicrt. Sod inn wurden IO weitere
ml Glucoseisomcraselösung zugesetzt und die Verdampfung unter den gleichen Bedingungen 35 Min.
fortgesetzt. Dies wurde zweimal wiederholt, dann eine abschließende Menge von 7 ml Glucoscisomerasc
zugesetzt und bei 45° wcilcrc 70 Min. verdampft. Die Flasche wurde dann übers Wochenende in einen
kalten Raum verbracht. Insgesamt 47 ml Glucoscisomcrasclöi-ung
waren den porösen Aliiminiumoxidpartikeln
zugesetzt worden.
50ml Puffer aus 0,01 M Natriummalcal mit pll
6,8-6,9 und enthaltend 0,(KIl Cobaltchlorid und 0.005
Magnesiumsulfat wurden dem Fnzympräparat zugesetzt und die Probe I Ski. bei Zimmertemperatur
extrahiert, dann mit 200 ml Wasser und anschließend IO ml 0,5 M NaCI gewaschen. Die letzte Wäsche
wurde über einem Glasfrittcntrichtcr mit 50 ml Wasser durchgeführt. Das Fnzympräparat winde darm in einen
.SO-ml-Frlcnmcycr-Kolben gegeben und im Puffer bei
Zimmertemperatur gelagert. Wiederholte Proben wurden während 106Tagen entnommen. Der durchschnittliche
Wert der Prüfungen betrug 130KiIF pro 500 mg, die Fnzymaktivitälsausbeutc betrug 6%. Der
Durchschnittswert wurde durch 20 Prüfungen während der 106 Tage ermittelt, wobei 16 der Prüfungen eine
Aktivität von KK)- 150 IGIF pro 5(K) mg (2(K)-300 KiIF
pro μ) zeigten. Diese Ergebnisse zeigen eine sehr
hohe statische Stabilität bei vergleichsweise starker
Fnzynihcschickung. Die zurückbehaltene Fxtraktlösung wurde ebenfalls geprüft; sie enthielt 39.8KiIF!
pro ml. also eine Fnzymaklivitätsausbcutc von 90"/,.
Zur Prüfung unter dynamischen Bedingungen, die
einen besonderen Wert der crfiiuiungsgcmäßen Präparate
ausmachen, wurde die Fn/yniwirkung bei der Isomerisation von Glucose zur Fructose unter industriellen
Fi.isalzbedingungcn geprüft. Die IructoschcrstcP.ung
aus billiger Glucoselösiing ist wegen der doppelten Süßwirkung hei gleichem Kaloriengehalt.
Ivu. gleicher Süßwirkung bei halben Kaloriengehalt
\on besonderem wirtschaftlichen Interesse
KIg des stabilisierten Glucoscisonierascpräparals
vwirden in mil vVasscrkühlmänlcln umgebene Kolonnen
tiegelien. Die Kolonnen wurden dureh I hernioslale
,Uli einer i'emneraliir von Ml" ιμΊκιΙιιίι lim·
Ml1 ige ( dm η se I os ι in;1 w nid.· Ii ι ndii 11 hpepiimpl. wobei
del Diifchsa!.' so emre-.l·1!!! wurde, dall cmc I riictoseiimwandluii!'
\on XO X^ del Iheoielischen errcii hl
wurde (iegebenerilalN wurde del Diinhsaiz in hesliulnilen
Absätzen herabgesetzt Die A nlailgsdiircllsatzrale
war I1MI ml pm SId Das Piaparat wurde
lulgendeimalU'ii hergestelll
llj: del im Beispiel I IuS1 hiiehencn porösen AInniiiiiiiinoMdkorper
winden in einen IOO-ml-( ilas/\ linder
gebracht und iinlei Zusal/ um KHImI l'.ll>
M Magncsiumai elal und 0.01 M ( ohallacclat mit pH 7.5
\ ot in1 handeil Del Z \ linde ι winde \ ei stöpsel I und nach
Mischen dun h l:nidrehen in ein 60" uarmcs Had
gesetzt Nai h IvMin. I imselziing wurde der Zylinder
umgcdiehl um\ die I liissigkcil abgegossen. KIOmI
Irisches Magnesium-( Obaitaceiat wurden zugesetzl.
duri. Ii I nidrehen des Z) linde is gemischI und 2'/1Sl(I.
bei Zimnierlcnipeialur stehen gelassen.
Vor der Adsorption wurde eine rolle l.nzymlösung bestehend aus Si)(I KiIL pro ml in 0.6 gc-siiitipicm
Amnioniumsullal wie lolgt geieuugl: 40ml der (ilncoseisomeiaselösiing
\Mirdeii. 1.4 weitere μ Ammoniunisullal
zugesetzt, um das I iizwii auszulallen. Die
\ulschl,immung w urde hei Zimmertemperatur 20 Min.
L-enihil. und dann bei 2 .10 Min. lang mit Hi(KK) DpM
/enirilugierl Die überstehende I lüssigkeil wurde abgegossen
uni\ weggewmlcn !2 ml der obigen Magnesium-!
iihall.Ketallosiiug winden der Ausladung zugesetzt
iind getuhrt Sodann winden .1 ml 0.5 M Natriumhicarhii'ial
zugegeben und bis zur A ulinsung gemischt. Die Losung wurde 15 Min in em 60' warmes Had
gehrai hl und n,n h I nliiahme 15 Min. bei 2" mit
IMKHII pM zenliiliigieit Die klare überstehende Lnz
> inIn--ung wurde ahg·, ιό-sei: und die Ausladung wegiiewnilen.
Die I nz) mloMinr (2XmIl halle einen pll-W
en ".s. IaIIs bei dei Reinigung keine Aktivität
verlorenging, so hciiui' die Aktivität der Lösung
clw.ι 2.1600 Kill
Zur \dsorplion wurde mn die Magnesium-( oballacet.illösung
tiai. h Tmtehien um den porösen AIuii"iiniumo\i(lkörpetu
ahgegos-eii und 2XmI Lnzymh'isung
m einem Z) linder zugeselzt. Der Zylinder wurde \erstopsel!. diirJ; I ;n liehen gemischt und in
ein Ml warme- Bad ge-et/i Die I nz\me wurden
m die Puren dillundieren ιιιι>! mn dem porösen AIu-
:iiiniumo\id bei Mi 2 ' Md umsetzen gelassen.
Während nie-e^ Zeitraum- v. urde der Zylinder alle
ivMin durch I nidrehen gcnu-i. ht. Naeli lontnahme
,tu- dem Bad wurde die \ds"iption Ih.ι Zimmertemperatur
durch I'nidrehen und Mischen alle .10 Min. während 2 Std. lurlgc-el/l und über NaJiI bei Z.imirertemperatur
dur..ii Stehenlassen zu Lnde gelVihrl.
Die Lnzwnio-imi'. wurde abgegoisi i2S.5 ml. pll ~.ίι
"die eitere Prüfung ;:ii(liev,iiir! Du- -tabili-.P')
!■ :';■.;;■.ira: wurde mit Mi iv:! destilliertem
UH,: ~ ■- - r".; π ι -; mit -ίο ml n.5 M NaCi und
··. u ■''.::;. Magne-iium-i 'ohaMü.. ei.illö-■■
Dr r ν nc Proben :<
<n ·■: cIa:· ] n \\a
• :■'-.. ' I'τ..ϊLiiijj entivmmc!!
der Iheiiielisi hen lenlspieehend einei I na loseaus
heule um etwa 40 I1V ι \eiiin;u'il wurde. Dn
Diiiehl.iul/eil hclrui: iiis^eMiml .'I I ;ιμΐ". Die Koliinin
winde dann diiieh \hhiurh del I i'lSiings/'iilnhr aus
gelioekiiel. l'roiliiklproben enliiommen und die π
μ/Std. cr/eiiule I im tiiscmcmu· μeιncsseιl. Da de
Duiehlaiil penodisih \ltiίιιμοΓΐ wurde, so dall eiiu
konstante I !mw.inilluimsiatc um X(I X5"„ μι:μ^κ·η war
isl die an einem hestiiiimlen Ι;ιμ pro SId. er/eiiül·
I ruetosemei^e ein getreuei M.illslab liir die [ n/\ in
akliMlal in der Kolonne. Die An'angsbeschn kirn;
dei Kolonne belruj». .1X1 Kill, pro μ, die μι^ίΐηιΚ' Ko
Imine enthielt IXI(IKiIi:. die über .11 Ί ape 42 2X >
I ructose pro Sl(I. e^ahcn. so dall die Halb/eil de·
Präparats elwa 42 laj!e ΙκΊπιμ. Der Versuch /eiut eiin
hohe Stabilität des I n/ympräparals. der vermutlul
aiii der spc/iliselieii Ausk^ung des Ί riijicrs mit eine
liir die (ilucoseisonieiase optimalen durehsehnill
liehen l'orei\i:roflc beruhl.
Beispiele III und IV
(ilucoseisoiiierase adsoihierl aiii porösem /rO. und
IiO-Λ LO;
Die I rai'er hallen die lohnenden liigcnsLli.Hlon.
ni: ge-
u:id i
' pH
' pH
ZrO | A | lid | -M-O | |
Porendurchmesser. | I"- | 2211 | A | |
d u rc hsc h n. | A | |||
Porendurchniesser. | Md | 14(1 | Λ | |
Minimum | A | |||
PorcndurchmessLr. | 200 | "-0(I | A | |
Ma\imuni | ||||
l'orensolumen ir. ccni/g | 0.2. | 0.5 | ||
Obertlache in (|iu/g | 50 | Ml | 75 | |
ParlikeleröHe in mesh | 1% - | Iv- | SO | |
5(Ηΐηιμ poröses ZrO und /00 mi: IiO-AI-O: ν urden
gelrennt mit O.O.vM Magnesiumacetat-0.01 M C oballaceliitlösung.
pll 7.5. 60'· w'jIirend 15Mm. iiiid ihiiin
bei Zimmertemperatur wahrend .1 Std. vorbehandelt
Die Lösung wurde sodami nbucgossen. Den I'riigern
w irde ι'I.is nil 1(1"2IdIi-J ri.ich Beispiel il gtrcinigte
(ihiLiiseisomeraselosunu lieigegehen. Die Adsorption
wurde bei W): wlihrend 4 Std. durjhgerührl urd dabei
.iile 15 Min. durch I '!'drehen gemischt. i.nd ;ι!\τ
N;r. hl !ihn:· weiter:- Mi-chin weiter adsorbieren gj-'.:--ei"i
Die re^lhciie I·;v. mliisuni: wurde dar'ii ab^·.·-
Die stabilisiert.;:! (W j :n- jisomcraseprapani se wurd^ri
(iann naciiei'-: :iuie: .'ist nut (!.5 M NaCI-..<" suhl.
Γ-.:i ii.i.vM .M;!.i;:ie-ium.1i.etat-O.(.i] M CribalbccUilln-
-■::vj. pH ".ς t:nd /-iiel/i mit destilliertem W a·--·.·:
μ j w asl ;·,·-·η Sic \· ι· γ- ίc:- : !ϋ] ^e!rennt hei Zimrierie:-.;-
;-Lr.:ijr ;i"i W ,ι--·;' .::i;]"_\-,!hri. Sie wurden ibrn --·..; = -■end
i S 1 Lilien .:·.:! (ii.l· ■ - ;'-":n era sea.kl; \ :!,'·! ::c :ri:!i
IaIvIIe
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11().- MO, (JJiI Al
9.06
(t.XO
4,X5
1.00
(t.XO
4,X5
1.00
Beispiele VII und VIII
Heide Träger ergaben ein stabiles Kn/ympräparat.
IiOi-AIiO1 /eigle infolge größerer durchschnittlicher
Porenweite, größerer Oherlläche und ιτηΙΙι·π·ηι Pnronvolumen
eine Starkcrc Besetzung mit .iktivem lin/ym. :<
> Alkalischer Bacillus sulililis Protease adsorbiert auf
porösem PiO. und porösem IiOi-ALO,
It e i spi el e V und Vl
l'apain adsorbiert auf porösem IiO und porösem :s
TiO,-AI.O;
/ur Herstellung stabilisierter l'apainpraparate wurden
Träger mit den l'olyenden physikalischen l'igenschiil'len
verwendet: »o
l'oröse TiO, und IiO,-A I ,O1-I rauer
Porendurchmesser. | 350 | 220 |
durchschnittl. (A) | ||
Porendurchmesser, | 220 | 140 |
Minimum (A) | ||
Innendurchmesser, | 400 | 300 |
Maximum (A) | ||
Porenvolumen (ccm/g) | 0,45 | 0.5 |
Oberlläche in t|m/g | 4 H | 77 |
Partikelgröße in mesh | 25-60 | 25 -M) |
4" Ahnliche Träger vsie in den vorigen beiden Beispielen
wurden Tür die Adsorption des llacillus subtilis
verwendet, der ein Molekiilgewichl von 27(XM) und eine giöl.Ue Abmessung von 42 A auTweist. Die
lin/ynipriiparate wurden durch Verwendung einer aus
IO g alkalischer l'rolease sus| endiert in 50 ml 0, IM
PhosphatpulTer, pll 7,K enth; Itentlen Lösung hergestellt.
IO ml (2 g Fin/ym) der l'roteaselösung wurden
5(X) mg Proben jede^ Tr.igers (350 A Ti()_, und 220 Λ
TiO2-Al3O1) /ugeset/t. Die Adsorption entsprach etwa
der Tür die obigen P; painbeispiele.
Die erhaltenen Präparate vurden wie gemali der
US-PS 35 56 945 mit Casein (Molekülgewicht 121000) geprüft, jedoch enthielt die Substrallösung OJM
PhosphatpulTer und der pll 'letruj; 7.4. Die Proben
enthielten weder C'ysteinhydr ichlorid noch AthylendiamintetraessigsäLre.
Die Tabelle III enthalt die Prülergehnisse von l5Taaen.
Statische Prüfung
Aktivität in mg alkalische l'rot:ase/g Träger
Tag
.Ie 500 mg Träger wurden getrennt mit 9 ml 0,5 M NallC'OrLösung während l'/?Std. bei 37° in einem
Küttelwasscrhad vorbehandelt. Der Puffer wurde dann
abgegossen und die Träger mit destilliertem Wasser gewaschen. IO g Papin (Molckülgcwicht 21 (K)O. größte
Abmessung4X A) wurden in 50 ml I).] M Phosphatpulferlösung
mit pH 6.95 enthaltend H6 mg Cysieinhydrochlorid
und 37 mg Dinatriumäthylendiamintetraessigsäure suspendiert und auf den betreffenden Trägern
adsorbiert. Die erhaltenen Präparate wurden mit Casein (Molekülgewicht 12!00O) nach dem Verfahr.-n
der LS-PS 35 56 945 geprüft. Dies geschah im einzelnen folgendermaßen.
lü ml enthaltend 2 g F.n/ym der Papiniösung wurden
jedem Träger zugegeben und die Adsorption während 3SuI. bei 37° in einem Sehüttelwasserbad vorgenommen.
Die L-nzymlösung wurde dann abgegossen
und die Präparate mit destilliertem Wasser gewaschen, anschließend rni; 0,5 M NuC! und riochmais mii
destilliertem Wasser nachgewaschen. Sie wurden dann bei Zimmertemperatur in Wasser aufbewahrt. Die Prä-Friuer.
diirchschnilll. l'iircngröHe in Λ
TiO, (W) Al IiOvAIiO, (220 Al
0 | 5.47 | 4,69 |
5 | 3.M) | 1.57 |
6 | 1.17 | O.M |
Ί | 0.67 | 0.40 |
Beispiele IX -XlII
LJrease adsorbiert auf Trägern mit verschiedener Porengröße
Stabilisierte l'reaseprä'parate können /um Messen des Harnstickstoffgehalts im Blut verwendet werden,
weil Urease Harnstoff selektiv zu meßbaren Mengen NH-, und CO, hydroiisiert. die ihrerseits zum Ilarnstoffgehalt
in Beziehung gesetzt werden können. In den folgenden Beispielen wurde urease an verschiedene
poröse Keramikkörper mit Porengrößen von
140-985 A und durchschnittlichen Porenweiten von
Il
I7S 85S \ gchi nden. ipii den Γ rager mil der optimalen
l'orengrölte IVir ( ieses Enzym /u bestimmen.
Urease hai ein Molekül^.ewiclil von elwa 1X0000 und
eine gröllle \hniessiing ,on elwa 125 Λ als Monomer
und elwa 250 \ als Dimer. Da Harnstoff, das SuIi-
slrat Itir Urease. :.'i \'erh.dlnis /um I ii/\m sehr klein
lsi, kann es hei licslimniung der durchsi hnillliihen
l'oreiigröl.te liir ''en I rager aiilS'.i achl hleihen, im
(iegensal/ /um l'apainsiihstrat Casein. Die I rager
h.itleii die folgenden Physikalischen l'.igcnsrhallcn:
Durchschnidl. l'iirendiirehmesser (A)
MiniiiHim l'orendurehmesser (A)
Maximum Poren liirelimesser (A)
Porenvolumen, o.m/g
Oberfläche, qni/j!
l'arlikelgrölie, nitsh
Oberfläche, qni/j!
l'arlikelgrölie, nitsh
rurüsi: | I Γ,ιμοΓ | VhO1-IiO, | no, | lid, | U) |
ALO1 | 220 | 350 | 420 | 8.SS | |
175 | 140 | 220 | 300 | 725 | |
140 | 300 | KK) | 51H) | 985 | |
220 | 0,5 | 0.45 | 0,4 | 0.22 | |
0,6 | 77 | -IH | .15 | 9 | |
KH) | 2"< 60 | 25 60 | .10 SO | ||
25 60 |
80
500 mg eines eden dieser Träger wurden durch Schütteln in 11 ml 0,5 M NaIICO, hei 37° während
I Std. und 40 Min vorbehandelt. Die NallCO,-Lösung wurde dann abgegossen, leder 500 mg Probe des Trägers
wurden 20 ml einer I'/,igen wässerigen Urease- js
suspension mit -lOOSumn JrEinheilen (SI;) Ureaseaktivitäl
pro g oder HOSI; ρ ο Probe beigegeben. Träger
und Ureaselosungen wun en 5 Std. in einem Wasserbad
bei 37° geschüttelt inl die Mischung dann bei Zimmertemperatur 22 .S il stehengelassen. Dann «>
wurde die Enzym ösung u ij,egossen und die Präparate
zuerst mit destilliertem W η scr, dann mit 0,5 M NaCI-Lösung
und /ulei/t wied :r mit destilliertem Wasser
gewaschen. Sie wurden da in in kleine Kolonnen überführt und bei /in inerten" icratur während eines Zsit- ι5
raums von 32 Tagen aul Aktivität geprüft. Die Tabelle
mithält die Ergebnis e
labeile IV
Aktivität in SE/g mit Tr gern verschiedener Poran- ·*"
grollen
AU),
1175)
1175)
( !20)
TiO, (350)
TiC), (420)
TiC2
-45
0.35
0.22
0,11
0.22
0,11
0,05
0,Hl
0.59
0 45
0 06
0 05
0.03
0.03
0.(11
0 45
0 06
0 05
0.03
0.03
0.(11
1,18 4,36
0,63 0,43 0,33 0,29 0,16 0.11 0.07 0,05
2,32 1,98 1,98 1,56
1,11 0,73 0.47 0,34
2,4(i
I1T 0,9.', 0,61 0,3(i
0.19 0,0V 0.(Ij
erhellt auch aus den folgenden Iteispielen, in denen zwei verschiedene Enzyme gleichzeitig in den Poren
eines Trägers mit kleinerer und eines Trägers mit gröHerer durchschnittlicher Poreiigröl.le als der En/ymgrol.ie
adsorbiert wurden. Als Enzyme wurden CiIucoseoxidase und Catalase mit den l'olgen;len Eigenschaften
gewählt:
Glucoseoxidase - Molekülgewicht 1500(K). grollte Abmessung
84 A, Catalase, Molekülgewicht 250(KK). gröBle Abmessung 183 A.
Diese beiden Enzyme wurden auf einem porösen Akiminiumoxidträger nach Iteispicl I und einem porösem
Titanoxidträger nach Beispiel V nil durchschnittlichen Porendurcliniessern von 175 bzw 350 A
adsorbiert. Das Adsorptionsverfahren entsprach dem der oben erwähnten gleichlaufenden Anmeldung
Durch Einwirkung von Gkieoseoxida.se auf Glucose in Gegenwart von Sauerstoff entsteht Glueonsäure
und Wasserstoffsuperoxid. Es wird also fortlaufend sauerstoff benötigt, gleichzeitig aber oxidiert das Wasserstoffsuperoxid
das Enzym, das dadurch seine Aktivität
einbüßt. Dem kann durch gleichzeitige Adsorption von Catalase entgegengewirkt werden, da
diese durch Einwirkung aul das Wassers ollsuperoxid Sauerstoff freisetzt. Hei kleineren Poreiigröllen, wie
Aluminiumoxid (175 A) bleibt Catalase (IMA) aber
ausgeschlossen, und die Tabelle zeigt d e Folgen hiervon im Vergleich zum Träger mit weiterer Porengröl.ie.
Vergleich der Glucoseoxidase-Aktivitätei; (■ iOU) pro
g poröses AIiCJ5 und TiO*
Wie die Tabelle zeigt, lie-gt die durchschnittliche
Porengröße für L! -ease bei etwa 420 A, wenn auch eine kleinere Ein/yrnaktivitii nit Trägern durchschnittlicher
PorengroLle ι von l'5 oder 855 Ä erhalten
bleibt.
IiV und XV
Die kritische Iied nitung e ner zumindest der En/yn ürötie
enisprcchent en durchschnittlichen PorenimH.e
Hrütungs- Hoispiel \l\'
till!
Pciröse·. Ü75 A) AIjO-,
18,"
1 I.τ
l(),i
8.5
7 (ι
Ik | S| ιοί | W |
Po | ü;cs | |
ti·: | :j \i | no j |
20 | 5 | |
36. | 1 | |
'(> | 1 | |
36 | 1 | |
16 | ■> | |
16. | 1 |
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.K',2 .VS.1»
.15.5 .12.5
Die Aktivität winde lueibei durch umsetzen von
.1(K)IiIj! l'ioben in cine Duichlatilkolonnc gemessen.
I ine Slandaiillösiing mim (ilueose wurde mil einem Durchs:;!.- \:ü) ! !5 ni!/S!d. eiügcüihr!. Die (JIüi.oleiiiheitcii
winden indirekt duich peiiodisebe Messung
des (iii.ioiisaiiieanleiK heslimml.
Beispiele Wl MX
NVeik-κ· 100 mg l'iäpaiale wurden hergestellt, bestehend
aus (ihn iiseoMilase wnu (alalase. adsorbiert
aiii porösem I itiinoxiditägcni mil durchschnittlichen
l'orcngiöHcn win I'M). 120. Sl'O und 855 A und den
!tilgenden I igenschallen
hilu-lk \ I
I1IiIIiSf I i,ii:iT
ho. IMI
ho.
Duichschnitll
porenduii.hmessei (A)
Minimum
l'oienilunhmessci (A)
porenduii.hmessei (A)
Minimum
l'oienilunhmessci (A)
Maximum
l'orendurL'hmesser (Λ)
l'orenvolumen.
ccni/g
l'orendurL'hmesser (Λ)
l'orenvolumen.
ccni/g
Obeill.iehe. i|in/g
l'aitikelj'inlie.
mesh
l'aitikelj'inlie.
mesh
.150 420 820 X55
.100 7W) 725
400 51KI 875
0.45 0.4 0.2 0.22
48 .15 7 ')
2.^ (id .10- SO 25 -SO 2>
80 D:is .Adsiiiplionsverliihien isl in der j'.k-ii lila
Anmelduii}'. heschriehen.
Anmelduii}'. heschriehen.
Die I*r:ipjir;iIo wurden ualuciiil 42 I iijien »ic in
den vollseil Keispielcn wiedeihiill gepnill. uohei d.is
Si'hstiiil in die Kolonnen aber mil dem luiheren
Duiehsal/ \on .W(I ml/Sld i-injieli'ilr! winde Iniolge
\ ersti'iiklei Stilist im (<li 11 iision ί ·■ t liici eine i'.eslei|-!iTle
(ilucosei)\i(lasi.-akli\i(,:il zu eiwaiti-n
Vergleich der (illlcoscoxidaseaklivital pm μ IiO.
Träger mil steigenden durchschnittlichen I'oiendurchmcssern
l'rüliini'.s- IiO. I liigi-i. iliiiihsi Im Ι'οιι-μι-ΊμΚι' in Λ
Ιίΐμ
Ιίΐμ
1^(I Λ 42(1 Λ S.'ll \ Sss Λ
0 | ()(i,() | 5(>.4 | 4.1.') | 17.X |
iiG.d | 77,7 | 4.1.V | y)j | |
8 | M)1O | 84.5 | Id..1 | 40..1 |
1.1 | ()().() | 84.5 | 4(,,2 | 4I..1 |
42 | M)1O | 80.5 | 40.1 | 42.0 |
Wie die I abellc zeigt, isl die hingliislige (iluciiseoxidaseaklivitiit
((iOli/g) allci viei l'räparale auHerordentlich
beständig. Dies gilt jüin/ besonders Tür
poröse I iliinoxidlriiger mit diiichschnilllichen l'orengröHen
von Γι5() A; über einen /citrullin son 42 lagen
konnte hier kein Akliv ilätsverlust beobaehlet werden,
und das unter Bedingungen mit gesteigertem Durchsatz derSiihs(ratlf">sung(.V)(>ml/Std. gegenüber 145 ml/
Stil), die an sieh eine gröKere lin/yniaHosimg erwarten
ließen. Bei grüUercm durchscbnittliclicm l'oienduixhmcsser
des Trägers, über 42(1 A. war eine abnehmende lin/ynibesciiickiing /u beobaehlen. die aiii die geringere
Oberlläche (7 ') qm/μ) der porösen IiO.-Iräger
mit durchsclr iltlichen l'orengröHcn von X20
und X55 Λ zurückgeführt weiden kann, l'iäparatc mil
Trägern aus porösem Titanoxid mit diiichschniltlicliem
l'orendurchmesMer von 420 A zeigten die sliirksle Beschickung
in (i()l-!/g. Ιίιι diesem etwa en!',irechendcr
poröser Träger (l'orcndurchmcsser .MKlA Minimum.
590 A Maximum) wird tür ein synergistisches (ilueosc-Oxidase-Catalasesystcm
daher bexor/ugl Selbst Präparate
mit Trägern einer durchschnittlichen l'orengrölie
von 855 Λ (725 Λ Minimum und 4X5 Λ Maximum)
waren bemerkenswert beständig, obgleich ü\r
/iihl der (i()I:/g infolge der kleineren Obcrlläebc
ucrinuer war.
Claims (5)
1. Immobilisiertes Enzympriparat, bei dem das
Enzym an ein im wesentlichen kieselsäurefreies anorganisches Material gebunden ist, dadurch
gekennzeichnet, dali das Material ein poröser
Keramikkörper mit einer durchschnittlichen Korngröße von 0,074-4,76 mm ist, dessen durchschnittlicher
Porendurchmesser wenigstens so groß wie die größte Abmessung des Erzyms, aber kleiner
als 1000A, und daß das Enzym an die Innenlläche
des porösen Keramikkörpers gebunden ist.
2. Enzympräparat nach Ansp-uch I, dadurch gekennzeichnet,
daß derPorendurchmesser 100-1000 Ä,
vorzugsweise 100-500 Ä, beträ|;L
3. Enzympräparat nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet,
daß der Keramikkörper wenigstens teilweise aus Aluminiumoxid, Titanoxid oder Zinkoxid
besteht.
4. Enzympräparat nach Anspruch 3, didurch gekennzeichnet,
daß die durchschnittliche Korngröße 0,177-0,71 mm beträgt
5. Immobilisiertes Enzympräparat, bei dem das Enzym an ein im wesentlichen kieselsäurefreies
anorganisches Material gebunden ist, dadurch gekennzeichnet, daß das Material ein poröser Keramikkörper
mit einer durchschnittlichen Korngrüße von 0,074-4,76 mm ist, dessen durchschnittlicher
Porendurchmesser wenigstens so groß wie die größte Abmessung des Enzymsubstrates, aber kleiner
als KXX)A ist, und daß das Enzym die Jnnenlläche des porösen Keramikkörpers gebunden ist.
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