DE19651935A1 - Detektionssystem für den optischen Nachweis von Molekülen - Google Patents
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft neuartige Sensoren für den optischen Nachweis
von Molekülen. Es handelt sich um Festphasensensoren, die selektiv Fluoreszenzfarb
stoffe an Wellenleiteroberflächen nachweisen und in der Lage sind, mehrere Substan
zen aus einem Gemisch nachzuweisen.
Der Nachweis von Molekülen, wie Proteine, Nukleinsäure, Pestizide, Toxine, phar
mazeutische Wirkstoffe, organische und anorganische Substanzen, Mikroorganismen
und Ionen kann über eine spezifische Bindung an ein anderes Molekül, das Rezep
toreigenschaften besitzt, sehr selektiv auch aus einem Gemisch durchgeführt werden.
Ein solches Rezeptormolekül kann z. B. ein Antikörpermolekül, oder ein DNS-Mo
lekül, das zumindest teilweise eine zu der nachzuweisenden DNS-Sequenz kom
plementäre Struktur aufweist, sein. Diese Rezeptormoleküle werden auf einem opti
schen Wellenleiter immobilisiert. Dazu sind verschiedene Verfahren bekannt. Als op
tische Wellenleiter können beispielsweise quader- oder zylinderförmige Substrate aus
lichtdurchlässigem Material, wie Glas oder Kunststoff, dienen.
Bei dem Testverfahren bindet das nachzuweisende Molekül, das sich in der Lösung,
oder bei gasförmigen Substanzen, das sich im Gasraum über der Oberfläche befindet,
an das Rezeptormolekül. Der Nachweis wird mit Hilfe eines weiteren markierten
Moleküls in einem kompetitiven oder einem Sandwichtest erreicht. Die Markierung,
die mit Fluoreszenzfarbstoffen erfolgt, erlaubt nicht nur den Nachweis der markierten
Moleküle, sondern, wenn der Test kompetitiv oder als Sandwich-Test ausgelegt ist,
auch den Nachweis nicht markierter Analyte. Für die Anregung der Fluoreszenzfarb
stoffe können alle Arten von Lichtquellen dienen, die im Absorptionsbereich des
Farbstoffs emittieren.
Entscheidend für optische Sensoren auf Basis der Fluoreszenztechnik ist, daß sie zwi
schen gebundenen und nicht gebundenen farbstoffmarkierten Molekülen unterschei
den können. Hier wird das besondere Emissionsverhalten von Fluoreszenzfarbstoffen
an einer dielektrischen Grenzschicht ausgenutzt.
Photonen, die seitlich auf die Oberfläche eines Wellenleiters treffen, dringen zwar in
den Wellenleiter, werden aber bei jeder der folgenden internen Reflexionen das op
tisch dichtere Medium zum Teil wieder verlassen. Die Intensität nimmt mit zuneh
mender zurückgelegter Wegstrecke im Innern des Wellenleiters immer mehr ab, bis
sie völlig verschwunden ist.
Der Lichtstrahl, der als eine ebene Welle charakterisiert werden kann, ist also nicht in
der Lage, seitlich in den Wellenleiter einzukoppeln, d. h. in seinem Innern weiterge
leitet zu werden.
Ein Fluoreszenzfarbstoffmolekül, das einen elektromagnetischen Strahler darstellt,
sendet bei ausreichender Nähe zu einem Medium mit höherem Brechungsindex neben
den sich ins Unendliche ausbreitenden ebenen Wellen, zusätzlich sogenannte evanes
zente Wellen aus. Diese Wellen klingen mit zunehmendem Abstand zum Strahler ex
ponentiell ab und spielen bei Entfernungen oberhalb einiger Wellenlängen keine
Rolle mehr. Die evaneszenten Wellen, die auf das benachbarte Medium mit höherem
Brechungsindex treffen, werden darin in ebene Wellen umgewandelt. Die Ausbrei
tung der ebenen Wellen erfolgt dabei auch in den Winkelbereich, in den ein Licht
strahl nach dem Snelliusschen Brechungsgesetz nicht gebrochen werden kann. Der
größte Anteil der Strahlung dringt dabei mit Raumwinkeln in das optisch dichtere
Medium ein, die in der Nähe des Grenzwinkels für Totalreflexion liegen [W. Lukosz,
R. E. Kunz, Light emission by magnetic and electric dipoles close to a plane inter
face. Radiation patterns of dipoles with arbitrary orientation, J. Opt. Soc. Am., 69,
1979, S. 1495-1503]. Handelt es sich bei dem optisch dichteren Medium um einen op
tischen Wellenleiter, so erfüllen die sich ausbreitenden ebenen Wellen die Bedingung
der internen Totalreflexion, sind also in den Wellenleiter eingekoppelt. Dieser Effekt
ist als Evaneszenzfeld-Kopplung bekannt [El-Hang Lee, Brenner, R. E. Fenn, J. B. &
Change, R. K., Angular distribution of fluorescencefrom liquids and monodispersed
sheres by evanescent wave excitation, Appl. Opt. 18 (6), 1979, S. 862-868]. Dieses
Fluoreszenzlicht stammt ausschließlich von oberflächennahen Farbstoffmolekülen.
Wenn man das Signal an den Seitenflächen des Wellenleiters mit einem lichtemp
findlichen Detektor auffängt, so erhält man einen selektiven Nachweis für oberflä
chennahe bzw. gebundene Farbstoffmoleküle.
Dieser Effekt wurde schon zur Konstruktion von optischen Sensoren ausgenutzt:
Im sogenannten Fluoreszenz-Kapillar-Gerät wurden Probenlösungen in einer Glaska pillaren mit einer Blitzlampe angestrahlt. Als Fluoreszenzfarbstoff diente Fluorescein Isothiocyanat (FITC). In einem kompetitiven Test konnte das menschliche Immuno globulin G (hIgG) nachgewiesen werden [R. A. Badley, R. A. L. Drake, I. A. Shanks, F. R. S., A. M. Smith, P. R. Stephenson, Optical biosensors for immunoassays: the fluorescence capillary-fill device, Phil. Trans. R. Soc. Lond. B 316, 1987, S. 143- 160]. Mit diesem Sensor konnte man mit hIgG nur eine Substanz aus der Lösung nachweisen und mit einer präparierten Kapillare, die hier als optischer Wellenleiter fungierte, konnte nur eine Konzentrationsmessung durchgeführt werden.
Im sogenannten Fluoreszenz-Kapillar-Gerät wurden Probenlösungen in einer Glaska pillaren mit einer Blitzlampe angestrahlt. Als Fluoreszenzfarbstoff diente Fluorescein Isothiocyanat (FITC). In einem kompetitiven Test konnte das menschliche Immuno globulin G (hIgG) nachgewiesen werden [R. A. Badley, R. A. L. Drake, I. A. Shanks, F. R. S., A. M. Smith, P. R. Stephenson, Optical biosensors for immunoassays: the fluorescence capillary-fill device, Phil. Trans. R. Soc. Lond. B 316, 1987, S. 143- 160]. Mit diesem Sensor konnte man mit hIgG nur eine Substanz aus der Lösung nachweisen und mit einer präparierten Kapillare, die hier als optischer Wellenleiter fungierte, konnte nur eine Konzentrationsmessung durchgeführt werden.
In einem anderem Sensor wurde eine optische Faser verwendet, die an ihrem sensiti
ven Ende in die zu untersuchende Lösung geführt war. Auch hier erfolgte die Anre
gung von außen und auch hier konnte nur eine Konzentrationsbestimmung von Ter
butryn (Pestizid) an einem beschichteten Wellenleiter durchgeführt werden. Detek
tiert wurde nur an einem der Faserenden [F. F. Bier, W. Stöcklein, M. Böcher, U. Bi
litewski, R. D. Schmid, Use ofafibre optic immunosensor for the detection of pesti
cides, Sensors and actuators, B, 7, 1992, S. 502-512].
Es sind auch bereits optische Sensoren entwickelt worden, die mehrere Messungen
am selben Wellenleiter ermöglichen. Sie beruhen aber auf anderen physikalischen
Konzepten, die verschiedene Nachteile beinhalten. Hierbei muß das Anregungslicht
durch den Wellenleiter geführt werden, auf dem die Rezeptormoleküle immobilisiert
sind. Um den Wellenleiter entsteht dabei ein schmales Anregungsfeld, das für die An
regung der Fluoreszenzfarbstoffe genutzt wird.
Bei einem der beschriebenen Sensoren wurde eine mit Rezeptormolekülen beschich
tete Faser durch mehrere Meßzellen geführt. Gepulstes Anregungslicht wurde in eines
der Faserenden eingekoppelt. Das den Wellenleiter umgebende, schwache Evanes
zenzfeld diente zur Anregung der gebundenen Farbstoffmoleküle. Die Fluoreszenz
antwort wurde am selben Faserende gesammelt. Fluoreszenzphotonen aus den ver
schiedenen Meßzellen haben unterschiedliche Laufzeiten zum Detektor. Mit zeitauf
gelöster Registrierung des Photons konnte daher ermittelt werden, in welcher der
Meßzellen es ausgesendet worden war. Damit lassen sich mehrere Bindungsvorgänge
gleichzeitig beobachten und man erhält einen sogenannten Multiparametertest, d. h.
den simultanen Nachweis mehrerer Substanzen [C. A. Browne, D. H. Tarrant, M.S.
Olteanu, J. W. Mullens, E. L. Chronister, Intrinsic sol-gel cladfiber-optic sensors
with time resolved detection, Anal. Chem, 68, 1996, S. 2289-2295]. Die hier einge
setzte evaneszente Anregung führt jedoch zu viel geringeren Anregungsfeldstärken im
Vergleich zur direkten Bestrahlung des Wellenleiters und deshalb zu einer deutlich
reduzierten Empfindlichkeit des Nachweises.
Ein weiterer Fasersensor, mit dem ein Multiparametertest durchgeführt werden kann,
basiert auf der unterschiedlichen Fluoreszenzlebensdauer verschiedener Farbstoffe.
Mit gepulster Fluoreszenzanregung und zeitaufgelöster Messung der Fluoreszenz
photonen können die Farbstoffe durch ihre unterschiedlichen Abklingzeiten unter
schieden werden. Auch hier erfolgte die Anregung durch den Wellenleiter [K. Galla,
J. Arden-Jacob, G. Deltau, K. H. Drexhage, M, Martin, M. Sauer, J. Wolfrum, S. See
ger, Simultaneous antigen detection using multiplex dyes, Journal of Fluorescence,
Vol. 4, No. 1, 1994, S. 111-115].
Die vorliegende Erfindung betrifft neuartige optische Sensoren, mit denen an einem
mit Rezeptormolekülen beschichteten Wellenleiter mehrere vollkommen voneinander
unabhängige Messungen durchgeführt werden können. Dabei wird die evaneszente
Einkopplung oberflächennaher Farbstoffe ausgenutzt und der Wellenleiter nacheinan
der an mehreren Stellen von außen bestrahlt. Dabei muß nur die Intensität des Fluo
reszenz gemessen werden braucht dabei nur die Intensität des Fluoreszenzlichts. Der
gepulste Betrieb der Anregungsquelle wird nicht benötigt, wenn nur ein Fluoreszenz
farbstoff eingesetzt werden soll. Es sind aber auch zeitaufgelöste Messungen möglich,
wenn über das Abklingverhalten der Fluoreszenzstrahlung unterschiedliche Farbstoffe
nachgewiesen werden sollen.
Wie in Abb. 1 dargestellt, sind an einem beschichteten Wellenleiter (3) mehrere
Meßzellen (6) nebeneinander angebracht (nicht maßstabsgerecht). Die Anzahl der
möglichen Messungen entspricht hier der Anzahl der Zellen und ist theoretisch unbe
grenzt. Die Zellen sind jeweils mit Zu- und Abflußleitungen (7) versehen, so daß sie
unabhängig voneinander mit Probenvolumen gefüllt werden können. Die Anregung
der Wellenleiteroberfläche mit einer oder mehrerer Lichtquellen (1) erfolgt von au
ßen, d. h. durch die Probe (4) hindurch. Dazu sind die Meßzellen mit optischen Fen
stern (5) versehen. Mit Hilfe von Linsen (10) und Filtern (2) kann die Anregungsfeld
stärke an der Oberfläche optimiert und unerwünschte Streueffekte eliminiert werden.
Die Bestrahlung der einzelnen Wellenleiterabschnitte muß nacheinander bzw. ab
wechselnd erfolgen, die resultierenden Fluoreszenzsignale stehen mit der Konzentra
tion der nachzuweisenden Substanz in der jeweiligen Zelle in Verbindung. Der ge
naue Aufbau des Sensors muß in Abhängigkeit der Geometrie des verwendeten Wel
lenleiters gewählt werden.
Bei einem Fasersensor ist der verwendete Wellenleiter eine optische Faser, die vor der
Immobilisierung der Rezeptormoleküle von Schutzschicht und Mantel befreit wird, so
daß der Faserkern im sensitiven Bereich frei liegt. Die Art der Faser ist dabei nicht
auf die gewöhnlichen Fasern mit kreisförmiger Querschnittsfläche beschränkt. Es
eignen sich auch Fasern mit ellipsenförmigem oder rechteckigem Querschnitt. Im hier
vorgeschlagenen Fasersensor wird der beschichtete Faserkern mittels Faserkopplun
gen (8) und zusätzlichen Fasern (9), auf beiden Seiten hin zum Detektor (11) verlän
gert. Die Bestrahlung der Faserkernoberfläche erfolgt von außen durch das Proben
volumen; die Lichtquelle kann mit konstanter Intensität betrieben werden. Der in Abb.
1 gezeigte schematische Aufbau beschreibt den ersten Fasersensor bei dem
die Sammlung von Fluoreszenzlicht an beiden Faserenden durchgeführt wird.
Die Erfindung ist nicht nur auf optische Fasern beschränkt, sondern betrifft auch die
lektrische Filme, Streifen oder Platten (13), an denen ebenfalls mehrere Meßzellen
angebracht werden (vgl. Abb. 2). Das zu detektierende Fluoreszenzlicht tritt aus
den Seitenflächen des Wellenleiters und kann mit Hilfe von Spiegeln, Linsen
und/oder weiteren Wellenleitern zum Detektor geleitet werden.
Besonders hierfür geeignet ist ein Aufbau, der in Abb. 3 vorgestellt wird und
ebenfalls einen Teil der Erfindung darstellt. Das Fluoreszenzlicht eines planaren
Wellenleiters wird hier mit sehr hoher Effizienz zum Detektor geleitet. Es handelt
sich um einen flaschenförmigen Wellenleiter (14), an dessen Hals das Fluoreszenzsi
gnal austritt und von den detektierenden Bauteilen aufgefangen wird. Die evaneszente
Kopplung der Fluoreszenzphotonen erfolgt auf der gegenüberliegenden Seite, wo der
Wellenleiter an der Kontaktfläche zum beschichteten Substrat abgeflacht ist. Um die
beiden Lichtleiter, die einen ähnlichen Brechungsindex besitzen sollten, optimal zu
verbinden, kann ein optisches Kontaktmittel verwendet werden. Mit diesem neuarti
gen Aufbau eines Sensors wird erreicht, daß praktisch das gesamte in den ebenen
Wellenleiter eingekoppelte Fluoreszenzlicht zum Detektor geführt wird.
Ein weiterer Sensoraufbau ist in Abb. 4 dargestellt. Hier wird die besondere
Abstrahlungscharakteristik der oberflächennahen Farbstoffe ausgenutzt, die ein aus
geprägtes Maximum in Richtung des Grenzwinkels aufweist. In einer Ebene befinden
sich kegelförmige Wellenleiter (15), deren Spitzen abgeflacht und mit verschiedenen
Rezeptormolekülen beschichtet sind (12). Das Anregungslicht, das wieder durch die
Probe eingestrahlt wird, trifft hier gleichzeitig auf die verschieden Meßpunkte. Das
emittierte Fluoreszenzlicht koppelt wieder zu einem Großteil in den Wellenleiter ein.
Nur die starke, grenzwinkelnahe Strahlung wird dabei an der kegelförmigen Grenz
fläche zu der umgebenden Luft (18) so totalreflektiert, daß sie an der Unterseite des
Wellenleiters wieder austritt. Dort wird das Signal der verschiedenen Zellen simultan
von einem ortsauflösenden Detektor (16), wie z. B. einer CCD-Kamera, gemessen.
Um den Detektor vor Anregungslicht zu schützen sind lichtundurchlässige Schichten
(17) am Wellenleiter aufgebracht. Dieser Aufbau ermöglicht einen hochempfindli
chen, simultanen Nachweis mehrerer Stoffe aus einem Gemisch der mit konstanter
Anregungsintensität und nur einem Fluoreszenzfarbstoff auskommt.
Mit den vorgestellten Sensoraufbauten, die eine abwechselnde Bestrahlung der ein
zelnen Meßpunkte erfordern, ist ebenfalls ein Multiparametertest durchführbar. Für
den vorgeschlagenen Nachweis von mehreren Substanzen mit einem Wellenleiter ge
nügt ebenfalls eine konstanter Anregungsintensität und nur ein Fluoreszenzfarbstoff.
Auf der Wellenleiteroberfläche an den Meßstellen jeweils andere Rezeptormoleküle
immobilisiert, die eine der nachzuweisenden Molekülsorten binden sollen. Das zu
analysierende Volumen und die verschiedenen mit Farbstoff markierten Molekülsor
ten werden zusammen oder nacheinander in die Meßzelle gegeben. Mit Beginn der
Einwirkzeit der markierten Moleküle werden mit einer oder mehrerer Anregungs
quellen abwechselnd die Wellenleiteroberflächen in den Meßzellen bestrahlt. Das
Lichtsignal, das dabei jeweils mit dem Detektor gemessen wird, steht mit dem Bin
dungsverhalten einer der nachzuweisenden Substanzen in direktem Zusammenhang
und ermöglicht die quantitative Bestimmung der Konzentration. Wenn die Bestrah
lung in einem im Vergleich zum Bindungsverhalten schnellen Wechsel erfolgt, lassen
sich die Bindungsabläufe an der Oberfläche quasi simultan beobachten. Die abwech
selnde Bestrahlung kann z. B. erreicht werden durch die bewegliche Lagerung der
Lichtquelle und/oder des Wellenleiters, durch Einsatz von beweglichen Spiegeln, oder
durch eine Schaltung mit mehreren Lichtquellen.
Ein Beispiel für die Umsetzung der Erfindung ist der Faserimmunosensor mit Evanes
zenzfeld-Kopplung und mehreren Meßzellen nach Abb. 1. Auf der Faser werden
dazu Antikörper nach bekannten Verfahren immobilisiert [A. Hartmann, S. Seeger,
Direct immobilization of antibodies on phthalocyaninato-polysiloxane photopoly
mers, Thin Solid Films, 245, 1994, S. 206-210]. Antikörper, die gegen dasselbe Anti
gen gerichtet sind werden an Fluoreszenzfarbstoffe gekoppelt. Das Antigen wird an
die Oberfläche des Wellenleiters gebunden und durch ein ansteigendes Fluoreszenzsi
gnal nachgewiesen.
Es lassen sich ebenfalls DNA-Sequenzen nachweisen. Die optische Faser wird mit
dem Protein Streptavidin nach bekannten Verfahren beschichtet. Biotin, das soge
nannte Vitamin H, geht mit Streptavidin eine sehr starke und spezifische Bindung ein.
Biotinylierte Oligonukleotide sind kommerziell erhältlich und werden auf der Ober
fläche des Wellenleiters immobilisiert. DNA-Analytmoleküle können wieder in ei
nem Sandwichtest mit Fluoreszenzfarbstoffmarkierten Oligonukleotiden nachgewie
sen werden.
Mit einem leicht modifizierten Aufbau läßt sich eine konkrete Anwendung des Multi
parametertests angeben. Die optische Faser wird mit dem Protein Streptavidin be
schichtet. Verschiedene biotinylierte Antikörper werden an den Meßpunkten der Fa
ser immobilisiert. Die Meßzelle, die an diesen Stellen für Anregungslicht durchlässig
ist, wird auf der Faser angebracht. Die zu untersuchende Analytlösung, z. B. Blut wird
durch die Meßzelle geleitet. Passende Antigene werden dabei an die jeweiligen Faser
abschnitte gebunden. Danach werden farbstoffmarkierte Antikörper in die Zelle gege
ben, die im Sandwich ebenfalls an die Oberfläche gebunden werden. Das System der
Durchflußzellen ist beweglich gelagert, so daß ein Laser abwechselnd die relevanten
Meßabschnitte bestrahlt. Das Fluoreszenzsignal wird wie in Abb. 1 an beiden
Faserenden gesammelt und zu einem Photomultiplier geführt. Die Steuerung des ge
samten Systems sowie die Aufnahme der Meßwerte der verschiedenen Zellen kann
über einen PC erfolgen.
Claims (7)
1. Optischer Sensor auf Basis der evaneszenten Kopplung von Fluoreszenzlicht in
Wellenleiter, der mehrere Messungen nacheinander an einem mit Rezeptormo
lekülen beschichteten Wellenleiter ermöglicht, wobei der Wellenleiter nachein
ander an verschiedenen Meßpunkten durch die umgebende Probenlösung mit
Anregungslicht bestrahlt wird, bestehend aus
- a) einem optischen Wellenleiter, auf dem Repeztormoleküle immo bilisiert sind
- b) einer oder mehreren Anregungslichtquellen
- c) einem Detektor
- d) einer oder mehreren Linsen und oder Filtern
- e) einem Fluoreszenzfarbstoff, der an andere Moleküle gebunden ist und mit dem Anregungslicht zur Emission von Fluoreszenzphoto nen angeregt werden kann
- f) einem oder mehreren Probenbehältnissen, die auf dem Wellenleiter angebracht sind und die für Anregungslicht durchlässig sind
- g) weiteren optischen Wellenleitern, die das Fluoreszenzlicht zum Detektor transportieren
2. Optischer Sensor nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Anre
gungslicht durch die Probe auf die Wellenleiteroberfläche trifft und die dort ge
bundenen Farbstoffe zur Emission von Fluoreszenzphotonen angeregt werden.
3. Optischer Sensor nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß der be
schichtete Wellenleiter nacheinander oder abwechselnd an den unterschiedli
chen Meßpunkten vom Anregungslicht bestrahlt wird.
4. Optischer Sensor nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß das Fluo
reszenzlicht an beiden Faserenden gesammelt und zum Detektor geleitet wird.
Dazu ist die beschichtete Faser mittels Faserkopplungen und zwei zusätzlichen
Fasern an beiden Enden zum Detektor hin verlängert.
5. Optischer Sensor nach Anspruch 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß der
Wechsel in der Bestrahlung der Meßpunkte im Vergleich zur Bindungskinetik
schnell erfolgt und damit mehrere Bindungsvorgänge simultan beobachtbar
werden.
6. Optischer Sensor nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß bei einem
planaren mit Rezeptormolekülen beschichteten Wellenleiter, die Sammlung des
Fluoreszenzlichts durch einem flaschenförmigen Wellenleiter erfolgt und somit
das eingekoppelte Fluoreszenzlicht fast vollständig zu den detektierenden Bau
teilen geführt werden kann.
7. Optischer Sensor nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß ein Wel
lenleiter mit einer speziellen Geometrie in Form von abgeflachten Kegeln für
die Beschichtung der Rezeptormoleküle verwendet wird, so daß die gleichzeiti
ge Anregung aller Meßpunkte und eine ortsaufgelöste Detektion und eine si
multane Auswertung aller Bindungsvorgänge erlaubt.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19651935A DE19651935A1 (de) | 1996-12-14 | 1996-12-14 | Detektionssystem für den optischen Nachweis von Molekülen |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19651935A DE19651935A1 (de) | 1996-12-14 | 1996-12-14 | Detektionssystem für den optischen Nachweis von Molekülen |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE19651935A1 true DE19651935A1 (de) | 1998-06-18 |
Family
ID=7814639
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19651935A Withdrawn DE19651935A1 (de) | 1996-12-14 | 1996-12-14 | Detektionssystem für den optischen Nachweis von Molekülen |
Country Status (1)
Country | Link |
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DE (1) | DE19651935A1 (de) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999046596A1 (de) * | 1998-03-12 | 1999-09-16 | Thomas Ruckstuhl | Optische anordnung zum erfassen von licht |
DE10024132B4 (de) * | 2000-01-28 | 2007-03-22 | Leica Microsystems Cms Gmbh | Anordnung zur Detektion von Fluoreszenzlicht mehrerer Probenpunkte |
WO2009021964A2 (en) * | 2007-08-13 | 2009-02-19 | Dublin City University | Optical biochip platform with plasmonic structure |
EP2098854A1 (de) * | 2001-01-23 | 2009-09-09 | Dublin City University | Lumineszenzbasierter Sensor |
Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AT41526B (de) * | 1908-05-04 | 1910-03-25 | Emile Nicolas Joseph Germeau | Dampfkesseleinmauerung. |
DE3630353A1 (de) * | 1985-09-09 | 1987-03-19 | Ord Inc | Vorrichtung zur untersuchung einer fluessigkeitsprobe |
DE3532563C2 (de) * | 1984-09-17 | 1988-06-23 | Avl Ag, Schaffhausen, Ch | |
DD271953A1 (de) * | 1988-05-09 | 1989-09-20 | Zeiss Jena Veb Carl | Einrichtung zur automatischen photometrischen analyse kleinster probenmengen |
WO1989009408A1 (en) * | 1988-03-29 | 1989-10-05 | Ares-Serono Research & Development Limited Partner | Method of assay |
DE9001289U1 (de) * | 1989-02-17 | 1990-04-12 | Siemens AG, 1000 Berlin und 8000 München | Gassensor |
EP0519623A2 (de) * | 1991-06-07 | 1992-12-23 | Ciba Corning Diagnostics Corp. | Sensorsystem mit mehreren Oberflächen für evaneszente Wellen |
DE4128846A1 (de) * | 1991-08-30 | 1993-03-04 | Rainer Klein | Integriert-optischer stoffsensor |
WO1994027137A2 (en) * | 1993-05-18 | 1994-11-24 | University Of Utah Research Foundation | Apparatus and methods for multianalyte homogeneous fluoroimmunoassays |
EP0725270A1 (de) * | 1994-05-25 | 1996-08-07 | Daikin Industries, Limited | Vorrichtung und verfahren zur optischen messung |
-
1996
- 1996-12-14 DE DE19651935A patent/DE19651935A1/de not_active Withdrawn
Patent Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AT41526B (de) * | 1908-05-04 | 1910-03-25 | Emile Nicolas Joseph Germeau | Dampfkesseleinmauerung. |
DE3532563C2 (de) * | 1984-09-17 | 1988-06-23 | Avl Ag, Schaffhausen, Ch | |
DE3630353A1 (de) * | 1985-09-09 | 1987-03-19 | Ord Inc | Vorrichtung zur untersuchung einer fluessigkeitsprobe |
WO1989009408A1 (en) * | 1988-03-29 | 1989-10-05 | Ares-Serono Research & Development Limited Partner | Method of assay |
DD271953A1 (de) * | 1988-05-09 | 1989-09-20 | Zeiss Jena Veb Carl | Einrichtung zur automatischen photometrischen analyse kleinster probenmengen |
DE9001289U1 (de) * | 1989-02-17 | 1990-04-12 | Siemens AG, 1000 Berlin und 8000 München | Gassensor |
EP0519623A2 (de) * | 1991-06-07 | 1992-12-23 | Ciba Corning Diagnostics Corp. | Sensorsystem mit mehreren Oberflächen für evaneszente Wellen |
DE4128846A1 (de) * | 1991-08-30 | 1993-03-04 | Rainer Klein | Integriert-optischer stoffsensor |
WO1994027137A2 (en) * | 1993-05-18 | 1994-11-24 | University Of Utah Research Foundation | Apparatus and methods for multianalyte homogeneous fluoroimmunoassays |
EP0725270A1 (de) * | 1994-05-25 | 1996-08-07 | Daikin Industries, Limited | Vorrichtung und verfahren zur optischen messung |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999046596A1 (de) * | 1998-03-12 | 1999-09-16 | Thomas Ruckstuhl | Optische anordnung zum erfassen von licht |
DE19810615A1 (de) * | 1998-03-12 | 1999-09-16 | Thomas Ruckstuhl | Optische Anordnung zum Erfassen von Licht |
DE10024132B4 (de) * | 2000-01-28 | 2007-03-22 | Leica Microsystems Cms Gmbh | Anordnung zur Detektion von Fluoreszenzlicht mehrerer Probenpunkte |
EP2098854A1 (de) * | 2001-01-23 | 2009-09-09 | Dublin City University | Lumineszenzbasierter Sensor |
WO2009021964A2 (en) * | 2007-08-13 | 2009-02-19 | Dublin City University | Optical biochip platform with plasmonic structure |
WO2009021964A3 (en) * | 2007-08-13 | 2009-04-16 | Univ Dublin City | Optical biochip platform with plasmonic structure |
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