DE1642662A1 - Verfahren zur Gewinnung von Urokinase - Google Patents
Verfahren zur Gewinnung von UrokinaseInfo
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-
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Description
Dipl. Fhy·;. R. Hdxb
70/Haok
A 86 259
A 86 259
Starling Drug Inc. Rev York, 1T,Y./USA
Verfahren zur Gewinnung von Urokinase
P 14 42 162. 6%
Ausscheidung III aus Patent (Patentanmeldung '
Die vorliegend© Erfindung betrifft die Gewinnung, von
Urokinaae aua dem Urin von Säugetieren und die Reinigung der
so gewonnenen Urokinase.
Urokinase, ein Enzya, das im Urin von Säugetieren vorlcoaat,
katalysiert die Umwandlung von Plasminogen (Profibrino
lysin) zu Plasmin (Fibrinolysin), einem Enaya9 das zum Auflösen
von Fibringerinnseln fällig ist* Urokinase -enthaltende
Präparate haben sich als therapeutische Motel als wertvoll
erwiesen, insbesondere bei der fibrinolytisehen Behandlung
von thromboesibolisohen Krankheiten des Menschen»
Ks ist bekannt, Urokinaae-enthaiteDfaPräparate aua
dem Urin τοη Säugetieren dvirch verachiedene Verfahren su gewinnen,
die im allgemeinen dio folgenden Verfahrensatufen
Bahaadlung von Sclugetiaruirin mit einem Reagens, fias
die Bildung eines Urokinase-haltigen Hiedörachlags bewirkt;
Sammeln des Urokinase-heltigen Niederschlags; und Elution dea
Niederschlags, um eine Urokiitaae-enthalt er d?.· Lösung hersustsllen.
In einigen Fällen wurde das so erhaltene Bluat als solche
β wegen seiner fibrinolytischen Aktivität verwendet, in
anderen Fällen vrarde das Eluat weiter verarbeitet, um die Re inheit
der Urokinase su verbessern. ETach den bekannten Verfahren gelang es nicht, ein kristallines Präparat von Urokinase herzustellen.
Es sind verschiedene Beagentien bekannt, die beim Kontaktieren
mit Säugetierurin eine Abtrennung eines leicht zu sammelnden Siiedersehlags bewirken, der im wesentlichen die
gesamten, oder einen Großteil der Urinproteine, einschließlich
der Urokinase, enthält, zusammen rait anderem protoinartige»
Material· Andererseits briagen 5yrogene, Inhibitoren, thromboplastieche
Substanzen rmß. dergleichen beim Aufarbeiten des erhaltenen Urokinase-haltigen Siederachlaga zur Abtrermung der
Urokinase in guter Ausbeute und hoher Qualität von dein Ausfällungsmittel und von den verunreinigenden Proteinen viele
schwierige Probleme mit sich. Als Folge davon litten alle diese Verfahren an schwerwiegenden Nachteilen, obwohl
die bekannten Methoden mahr oder weniger konzentrierte Präparate
von Urokinase herzustellen gestatteten,und keines dieser Verfahren führte su einem kristallinen Urokinase-Präparat.
109821/1512 BÄn rte
16A2662
_ 3 —
Ea ist ein 2iel der vorliegenden Erfindung, neuartige
Verbesserungen in bestimmten Verfahrensschritten der oben ernannten
allgemeinen Methoden zur Isolierung und Reinigung von
Urokinaae aua Säugatiorurin zn schaffen, ma damit' ein neues
Verfahren zur Gewinnung von Urokinase au liefern, das diese verbesserten Verfahrensaehritte beinhaltet, aodaß Urokinase in
guter Ausbeute und von einem hohen Heinheitagrad gewonnen wird, und um Urokinaae in kristalliner Pora herzustellen.
I. Blution von Urokinaae aus Urokinaee-haltigen, aus Urin
gewonnenen niederschlagen
In meiner Hinsioht betrifft die vorliegende Erfindung
eine Verbesserung der Elutionsstufe der oben gezeigten, allgemeinen
Methode zur Gewinnung von Urokinase, wonach Urin von Säugetieren mit einem Reagenz behandelt wird, das die Bildung
eines Urokinase-haltigen Niederschlags bewirkt, der entstandene
Niederschlag gesammelt wird und die Urokinase dann aua dem Siederschlag eluiert wird, wobei die Verbesserung die
Elution der Urokinase aus dem Urokinase-enthaltenden Niederschlag mit einer verdünnten -wäßrigen Lösung von 6,9-Mamino-2-äthoxyacridin
umfaßt. Die Konzentration des 6,9-Diamino-2-äthoxyacrldins
in der Elutionslösung beträgt 0,1 bis 2 oder mehr Gewichtsprozent und vorzugsweise etwa 0,4 Gewicfc&sproaent.
Der pH der Lösung wird auf einen Woi't im ungefährer- Bereich
von 1,5-7 eingestellt; vorzugsweise ißt die Lösung cauer im
109821/1512 BADOR1GlNA1.
pH-Bereich von 2-5- Sewünschtenfalls kann das 6,9-Diamino-2-äthoxyacrielin
aus dem Eluat durch Aussalzen mit natriumchlorid
oder oiaem äquivalenten wasaerlöalichen anorganischen
SaIs leicht entfernt werden. Wahlweise und vorteilhafterweise
wird die Entfernung dea 6,9~Biamino-2-äthoxyacridins in Zusammenhang
mit dem im Folgenden im Abschnitt II beschriebenen
Verfahren sur Entfernung von lyrogenen aua Urokinase-Lösungen
bewirkt·
Die Ausfällung des Urokinase-haltigen Niederschlags
nach der oben beschriebenen Methode ist leicht durchzuführen, sum Beispiel durch Anwendung der vielen gut Vekaunten Methoden
sur Ausfällung von Urokinase aus Säugetierurin. In den fällen,
vro die Blutionsatufe nicht eof ort auf die Auefällungsstufe
folgt* z.B» dann« \19wa. eine Ansah! von Chargen an Niederschlag
Über eine Anzahl von Tagen gesammelt und dann zusaiaisiengegeben
wird, xxn eine zufriedenstellende Auobeute an Urokinase sicherjsus.tellon,
sollte der naone Urokinase-haltige Niederschlag
oof ort nach dem Sammeln eingefroren und in gefrorenem Zustand
aufbewahrt werden. Die gefrorenen ÜTiederechläge werden aufgetaut,
wenn sie für den Slutionoechritt gebraucht werden.
Es iet insbesondere vorzuziehen, den Urokinase-haltigen
iiiederßchlag in der Weise au gewinnen» daß der Säugetierurin
mit Beirfconit oder einer äquivalenten Aluminiuinsilikatzusaininen~
ootfsuu^ koritaktiert und danach der Bentonit mit der daran adsorbierten
urokinase* bsispiel^iöisö durch Zöirtrifugieron,
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SAD
gesaiamelt wird. Im allgemeinen <s?ird bevorzugt, etwa 0s1 - 0,5 g
Bentonit pro Eiter Urin au verwenden, um schnelle und ausreichende
Adsorption von Urokinase sicherzustellen. Obwohl nach de» Stand der Technik bekannt mr, daß Bentonit wirkungsvoll
die. gesamte Urokinase aus urin adsorbiert, mirde nach den "bekannten
Verfahren keine praktische Methode zur Rückgewinnung
der adsorbierten Urokinase von dem Bentonit beschrieben. Es wurde nun gefunden, daß eine v/äßrige lösung von 6,S-Diaaino-2-äthoxyacrldin,
vorzugsweise bei einem pH-Wert im ungefähren Bereich von 1,5 - 7» ein hochwirksames Elutionsinittel
sur Wiedergewinnung von Urokinase v<m Bentonit, an dem die
Urokinase adsorbiert 1st, darstellt.
Bine weitere bequeme und einfache Methode zur Gewinnung
eines Urokinase enthaltenden Niederschlage aus Säugetierurin, die im Zusammenhang mit dem oben beschriebenen Verfahren verwendet
werden kann, umfaßt das Einstellen des pi !-Werts des
Urins auf einen Wert im ungefähren Bereich von 4 - 5,5* z»B,
durch Zugabe von Essigsäure oder einer anderen geeigneten Säure, Abkühlen des in der Weise angesäuerten Urins und Sammeln
des gebildeten Urokinase-haltigen ITiederschlaga.
Bs wurde noch eine weitere Methode gefunden, wonach Urokinase In guter Ausbeute aus dem Urokinase-haltigen niederschlag,
der durch Ansäuern des Urins gebildet mirde, elulort
werden kann. Die neue Methode umfaßt das ausgiebige Waschen :
des [irokfnasQ~haltigeii liiedorochlags mit angesäuertem Wasoer I
SAD ORiQlNAL
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ο ~
oai einea ρΐϊ-tferi; im ungefähren Bereich von 3S2 Ms 5,5 und
dä&ach die Slution der Urokinase aus clem so ge^aaclieneii^
schlag jait angesäuerter* Waasez» bei einem pH-T/eri im aägsirüliron
Eoreioh von 1,5 Ms 3, tfobai ein ρ3«-?.'β^* von 2 "bavörsugt
II. Entfernung von gyrogenen von
Ia aaderöj? Hinaiont betrifft die vorliegende Erfindung
üeuea Verfahren zur Entfernung von £yrogenen aua v/äSrigan
Es ist bekennt, Pyro&ena aus wäßrigen Lösungen von
aktiven Materialien, einschließlich von verschiede*
non ßur Injektion vorgesehenen I&zyatypexi, durch Zugabe eines
vraaffGrunlöaJLichen Eröallralipboophate trie OaXoiumphoaphat au entferum
die Pyrogene, nicht jedoch dos gotrUnachte biologisch aktive
Material zu adeorbieren, wobei äae Shoephat mit den darauf adeorbierten
Pyrogenon dann entfernt und verworfen i?ird. Dieaa
"bekannte Methode bewirkt jjedooh nicht die Abtrennung von iyrogenen
von Urokinase, da Urokinase ebenfalls durch daa wasserunlösliche
Phosphat adsorbiert raird und darüber hinaus konventionelle Blutionamittel sowohl die adsorbierten Pyrogena ala
auoh die adsorbierte Urokinase von dem unlöslichen Phosphat
entformen.
£3 vnirde nun gefunden, daß, -nenn eine pyrogenhaltige
lösung von Urokinase miii Caloiuaphosphatgal oder einem
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äquivalenten amorphen wAaaesnralÖsliclien Ifc
das 6f9-Siamiuo"2~ätlioxyi.cridisi adsorbiert enthält, kontaktiort
T?irü, cie Urokinaee und ein Großteil der Pyrcgene auf das GgX
• ado or liiert «ird und üureli EIuMon nit oinan Vixfge? aua ilai;ri\«a-
-RIiOSpIIa-G odor oisiem äq,uivalen'i;ea wasoorlöslicheii Biospiial;. dio
adsorMoitea
edsoroiarte Urokinase πηά au? ein geringer Soil aes765S~Eia?ßino-2-äihoxyacridins
entfernt v/ß-rdea, während fast die geaesrfcen
Pyrogene auf dem GgI verbleiben. Der Slutionsschritt verläuft
sehr' viel wirksamer, wenn das GeX eingefroren und danach auf~
gQtaut wird. Die relativ geringe Menge an 6,9-33i£uaino»2~äthoxy~
acriöin, die in dem entstandenen Bluat Torhanden sind, können
aus dem Urokinase-haltigen EXuat durch Behandlung sit natriumchlorid
_ odor einem äquivalonten waaserlösliclien anorganischen
SaIs auagesalsen oder durcü Adßoiption an Carboxymethylcellulose
entfernt werden. Wahlweise wird dio Urokinase aucgefällt und
auo dem Eluat durch Zugabe eines niederen Alkanols isoliert,
xfobei das δ, 9-Diaiaino-2-ätliQsyaci*idi,n in lösung bleibt.
Kach einer bevorsugten Auoführuagsfom unfaßt die neue
Methode zur Pyrogonontfermmg die folgenden Verfahrenoechritts ϊ
Kontaktieren einer Pyrogen-haltigen wäßrigen Urokinaaelöauag
bei einem pH-Wert im ungefähren Bereich von 6,0 - 7,0 aiit
CaXciiunphcüphatgQl, daa 6,9-Dieißino-2-äthoXyaoriäin adsorbiert
enthält, wobei die ürokinaae und ein Großteil der £yroß©ne an
daa Caiciurajf-iiocpliatgel adsorbiert τ/erdoii; SorBieln. öeo Calciumphoophatgola
mit döii darauf aduorbifirten
10 9 8 21/15 12
I^yrogeno und 6,9-3)iaiaino--2-ötho3cyacridin, Waschen dee Gels ait
Waaeer unter Verwerfen der Waschflüssigkeit; Suspendieren dea Gele in einem ITatriiuaphoophatpuffer bei einem pH-Werk im ungefähren Bereich von 6,0 - 7,0, wobei die molare Koneentration
von Efatriumphoaphat mindestens 0,25 betrügt und vorsugsweiee ±nungefähren Bereich von 0,25 - 0,50 liegt, wobei wiederum eine
molare Konzentration von 0,36 besonders bevorsugt wird} H.n~
frieren dee entstandenen Gemisches und danach Auftauen desselben,
vrobei die Urokinase und eine geringe Menge von 6,9-IHLa»ino-2-
äthoxyaoridin von dem Gel in den Ihoephatpuffer «luiert werden
und der gröBt« Teil der fyroge&e mm Gel cdaorbiert bleibt!
und Abtrennen dee r*etlichen 6t9-I}iftÄino-2-Ätho3cyacridine von
der urokinase.
Das obige Verfahren 1st insbesondere vorteilhaft, trenn
ea αυτ Entfernung von Pyrogenen aue dem 6,9"Bia»ino-2oäthoxy<-
aoridin-enthaltenden wäßrigan Urokinaoeluoungeu, die in obigen
angewandt wird, Abaohnitt I alo Slutionezsittel beachrieben sind ,/da in dieaom
Falle dad zur Adaorption auf das Calciusphosphat benötigte
6,9-Diamino-2~ätlTioxyecridjLn bereite vorhanden ist und damit
keine Vorbehandlung des Calciumpho&phata erforderlioh ietj und
gleichzeitig dient natürlich dae Verfahren eur Entfernung dea
Pyrogöne auch daeu, den größten Teil des 6v9*'I2innino-2->ttthox7>-aoridin-Blutionsmittela von der Urokinase abzutrennen·
8 2 1/15 12 BA^ original
_9-. 16A2662
III. Adsorption von Urokinase auf Carbogymethyloelluloae
und Elution von diesem Material
In weiterer Hinsicht betrifft die vorliegende Erfindung eine neue Methode zur Reinigung und Konzentrierung von Urokinase
in wäßrigen Lösungen, die mindestens 500 CTA-Einheiten
Urokinase pro ml Lösung enthalten, also in Lösungen, in denen die Urokinasekonzentration etwa das hundert- oder mehrfache
der Konzentration an Urokinase, die üblicherweise im Urin vorhanden
1st und 4-6 CTA-Einheiten pro ml ausmacht, beträgt.
Die neue Methode umfaßt die folgenden Verfahrensschritte:
Kontaktieren einer wäßrigen Lösung, die mindestens 500 CIA-Einheiten
Urokinase pro ml enthält, bei einem pH-Wert im ungefähren Bereich von 5,0 bis 6,5 mit Carboxymethylcellulose,
welche die Urokinase adsorbiert; und anschließend Elution der Urokinase von dor Carboxymethylcellulose« Die Elution wird
leicht bewirkt durch Vorwendung wäßriger Lösungen hoher lonenatärke,
z.B. einer JJatriuraphosphatpufferlösung; oder wahlweise
können statt des Salzes oder der Pufferlösung auch stark saure
Medien von einem pH-Wert bis hinab zu 1,5» oder stark basische Medien von einem pH-Wert bis hinauf zu 11,5 verwendet werden.
Diese neue Methode kann entweder in einem ohargemTOiaen Verfahren
durchgeführt werden, bei dem die wäßrige Lösung und die Carboxymethylcellulose vermischt worden und zwischen den festen
und flüssigen Blasen Gleichgewichte eingestellt werden, oder in
einer kontinuierlichen Waschprozedur, wie in einer Elution durch oine Säule. In einem ohargernieioen Verfahren Tiird die
109821/1512 BADOMGSMAl
1042662 - ίο -
Carboxymethylcellulose mit <ier darauf adsorbierten Uroiiinaco
gesarasielt und die Urokinase -wird von der Carboxymethylcelluloce
eXuiert, vorzugsYieise mit Katriuiüphosphatpuffer bei einem pH-Wert
Ih ungef Öhren Bereich von 6,0 - 7,0, TJObei die lsoXaro
Konzentration an Katriuraphoaphat aindestens 0<25 beträgt und
vorzugsweise im ungefähren Bereich, von 0,25 - 0,50 liegt, ttobei
eine solare Konsentration von 0,29 beoondere bovoraugt '/?ird.
In einer koatinuierXiclien AuaiührimgsiTona liegt der pH-\/ert dos
ITatriumpiiospaatpuffers vorsugs^eise im ungefähren Bereich, von
1-11 und. die molare Konzentration an liatriumphoophat liegt im
ungefähren Bereich von 0,005 - 0,5, wobei eine Konzentration von etwa 0,05 iia pH-Bereich von 2-5 und 7-11 bevorzugt \7irde
und eine Konzentration von aindastena 0,05 und I7ünocii8as»?ertor-weiae
von etwa 0,2 iia pH-Bereich von 5-7 bevorzugt v/ird.
Die meisten Pyrogene werden durch diese Carboxyiaethylcellulosetahandlung
von der Urolcinaoe abgetrennt. Darüber
hinaus "wird eine wesentliche Konaentrierung der Urokinase bs~
wirltt. Wenn daher die Methode sur Reinigung von Urokinase rait
einer relativ niedrigen durchschnittlichen spöjsifischen Urokinaaeaktivität,
a,B. iia ungefähren Bereich von 1000 bis 20.000
CIA-Einheiten pro rag Protein, verwendet wird, °i7eiot die Urokinase
in dem resultierenden Eluat eine wesentlich gesteigerte Aktivität auf, im allgemeinen das 5- bis 10-fache oder mehr.
Das urokinasehaltige Eluat, das nach dein im obigen Abschnitt
II beschriebenen Verfahren gewonnen v/ird, ist inabe-
1 09821 /15 1? BAD
1b42662
sondere sur Verwendung als Ausgangsmaterial bei diesem Carboxymethyleellulose-Verfahren
geeignet. In dieoem PaIXe sollte
die raolare Konzentration des Hatriumphosphatt? im Eluat durch
Verdünnen auf einen Wort unter 0,15 vermindert werden, ura
liiaxiinalo Adsorption von Urokinase auf Carboxymethylcellulose
zu gewährleisten.
Durch Anwendung beider Methoden, nämlich sowohl der Adsorption
auf Carboxymethylcellulose ala auch der Adoorption auf
698-Diaffiino-2~äthoxyacridiii-bGh&ntiolt<33 Calciuzapho3pbatt τ/ird
Urokinase erhalten, die im \7ßDeutlichen pyrogenfrei ist.
IV. GotYinntmg von TTrokinase in hqchkonzentrierter;.
. S-HuSQtierurin
In weiterer Hinsicht betrifft die vorliegende Erfindung eine neue Methode sur Gewinnung von urokinase im Hinblick auf
ein neues Verfahren aur Gewinnung von Urokinase in hochkonzentrierter1
Form aus Säugetierarin, in dsm die verschiedenen anderen
oben beschriebenen orfindungageinüßen Merkmale kombiniert
sind. Dieses neue Verfahren umfaßt die folgenden Verfahrensschritte:
Behandlung von Sängetierurin mit einem Reagens, das
die Bildung eines urokinaaehaltigen ITioderachlags bewirkt,
Elution der Urokinase von dem urokinasehaltigen Niederschlag
mit einer verdünnten ^7üßrigen Lösung von 6,9-Dianino~2-äthoxyacridin;
Kontaktieren des entotandenen Eluats, vorzugev/eise bei
einem pH-Wort im ungefähren Bereicn von 6,0-7,0, mit Calcium-
1°98?1/1R1' BADORIGINAL
phoaphatgei, Y?obei die Urokinaset Pyrogene und ein geringer Soil
des 6,9~Diaßino~2~äthoxyaoridiii3 auf dem Gel adsorbiert v/eräen.,
und Einschließend Sammeln des GeIa1 Suspendieren dea GeIa In
einen liatriuraphosphcttpuffor (vorzugsweise bei einem pH-V.Tert ir.
ungefähren Bereich von 6,0-7fO, v?obei die molare Konzentration
des Uatriumphosphats im ungefähren Bereich von 0,25 bis 0,50
liegt) und Einfrieren dos Gemisches und anschließendes Auftauen desselben, wobei die Urokinase und ein geringer Teil des 65,9-Diamino-2~ätho3cyaeridin3
von dem Gel in den Phosphatpuffer eluiert werden und die Hauptmenge der Pyrogene an Gel adsorbiort
bleibt; Kontaktieren des urokinasehaltigen Eluats mit Gcruoxylnethylcellulose,
die das restliche 6,9-Diamino-2-äthoxyaoriöin
adsorbiert; Abtrennen der CarboxynethylcQlluioae mit
adsorbierton 6f9-3>lamino~2-äthoxyacridin von der urol
haltigen Lösung; Einstellen dor molaren Konzentration äea
Natriumphosphatß in der urokinaoelialtigen Lösung auf oinen
V/ert, der nicht größer ist als ungefähr Ot15 tmd Kontaktieron
der entstandenen Lösung bei einen pH-Wert ita ungefähren Beraich
von 5t0 bia 6,5 rait CarboxyrAStliylcollulose, die die Urokinass
adsorbiert; und Elution der Urokinase von der Carboxyciothylmethylcellulose,
voz'zugsweiae mit einen liatriunphonipbatpuffer
bei einem pH-Wort im ungefäliren Seroich von 6,0 bis 7,0,
wobei die molare Konzentration des Hatriumphosphats
0,25 beträgt.
1098 2-1 / TB 1 *■ v: BAD
V. Höret ellung von Icg3.atalli.ner )nsiischllohey_Urok:baag9
In weiterer Hinsicht betrifft die vorliegende Erfindung
menschliche Urokinase in kristalliner, im wesentlichen homogener Fora und Mittel sur Gewinnung derselben·
Seit der Entdeckung der Urokinase vor mehr aia einera
Jahrcehnt mirde eine Reihe von Vorfahren sur partielle* Reinigung
des Enzyme beschrieben« Viele der mehr grundaatzlichen
chemischen und biologischen Untersuchungen der Urokinaso litten
jedoch an dem Mangel an im wesentlichen homogenen Präparaten, liuniaehr ist es gelungen, menschliche Urokinase in kristalliner,
ia wesentlichen houiogener Poria dadurch au gewinnen, daß
aia Äusgangsmaterial wäßrige Lösungen hoehgoreinigter naenschlicher
Urokinasepräparate ciit einer Aktivität von 40.000
oder mehr CTA-Einheiten pro rag Protein verwendet werden. Die
erföräe2*lieheii Atisgaagspräparate für dieses Verfahren vnirden
durch Anwendung der verschiedenen v/eiteren Merkmale dieser Erfindung,
wie sie vorstehend beschrieben sind, verfügbar. GoraäQ
der vorliegenden Erfindung wird menschliche Urokinase in kristalliner
Porm folgendermaßen gewonnen: lösen eines Urokinooepräparats
mit einer Urokinaaeaktivität von mindestens 40.000
CTA-Einheiten pro mg Protein mit Efatriumphoophatpuffer bei einem
pH-Wert im ungefähren Bereich vcm 6 bis 7 »ur Herstellung einer
lösung mit einer Urokina3eaktivität von mindestens 100.000 CTA-Einheiten
pro ml; Dialyoieren der erhaltenen üösung bei 0-4°0
gegen Wasser, bis der spezifische Widerstand auf mindestens
109821/151? BADOT1Q.NA«.
-_ u _ Ί642662
2500 Ohm ansteigt? Entfernen und Verwerfen dea gebildeten LTiedorschlags»
Aussalzen der Urokinaae aus der Lösung durch Behandeln mit ilatriumehlorid, Sasmeln der auf diese Weise ausgefällten
Urokinase und Lösen derselben in wäßriger Hatriumchloriälösung;
und Aussalzen der Urokinase aus der üb*sung mit Natriumchlorid,
wobei die Urokinase in kristalliner Pona erhalten wird«
Duroh weitere Urakristallisation dieses Produktes \7ie in Beispiel
3 beschrieben, wird Urokinase in kristalliner, im wesentlichen
homogener Poria erhalten. Das so erhaltene Produkt hat ein Molekulargewicht
von etwa 53.300 und eine speaifische Aktivität
von 652.000 £ 29.800 (s.d.) COIA-Sinheiten pro ing Stickstoff
(ICjeldahl), oder 104.000 * 4.800 (s.d.) CTA-Einhoiten pro rag
geschätates Protein.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung, ohne sie
zu beschränken. Die engon Bereiche für pH, Temperatur, Konzentrationen
und - dergleichen werden in diesen Beispielen nur deshalb angegeben, um in einer Serie von Ansätsea ausreichend gut
reproduzierbare Resultate au ersielen und dies8 Angaben stellen
keine kritischen Bedingungen dar, die in einem bestimmten Falle
für eine zufriedenstellende ifaeharbeitbarkelt notwendig aind.
Ssispigl m\
(A) Sammeln dea^ürlna
Menschlicher Urin von Männern wird direkt über Bors&urapulver
(U.S.P.) in reinen 19 lüter (5-gallon) Polyäthylen-
109821/151?
. 15 , (642662
balXongefäßen, die mit reinen lO-Zoll-Polyäthylantrichtern
auogestattet oind, gesammelt. Me Henge an Borsäure, die in
3eäöia Ballon vorhanden iet, sollte so bemeaaoa sein, daß nach
aera Sanuaeln dea beabsichtigten Voluicens Urin die BndkoziKentration
an Borsäure annähernd 0,25 $ (G/V) beträgt; "$?emn a.B. beabsichtigt
ist, daß dor Inhalt der Ballons durchschnittlich
11,5 Liter (3 gallons) Urin aufnehmen soll, sollten 30 g
Borsäure in jedem Ballon vor Gebrauch eingeführt werden« Die
Trichter enthalten die üblicherweise verwendeten Deaodoransbioelca
aus p-Dichlorbenzol. Vorteilhafterweioe sollten die
SaTMiielperioden 12 Stunden nicht überschreitens da sur Ersieluiig
der besten Resultate Bakterien»mehstuia und Bildung von
Pyroganen im Urin auf ein Miniiauia beschränkt werden oolite.
Die vollen Grof&ßo werden alao sofort nach der relativ volusozireiehen
iaorgendlicheii Harnabgabe gesajisaelt. Eine derartige Zeiteinteilung
erlaubt das Aufarbeiten öeo Urins ©it der geringe»ton
Verzögerung. Wenn Urin während der folgenden 12 Stimden-Periode
gesammelt v/ird, wird er unter Kühlung aufbewahrt, bis er am
nächsten Morgen aufgearbeitet
(B) Adsorption von. Urokinase aus Urin
Zu 160 Liter auaaminengoscliüttGtem menschlichen Urin
werden bei 15 - 250C 24 g Bentonitpulver (U.S.P.) unter Rühren
zugegeben. Um eine gleichmäßige Dispersion den Bentonita aichor
zuotellen, wird er vorzugsweise als oine frisch bereitete 3
1 b 4 ^ b B 2
Suspension in Urin gugeoetzt· IiacMem das Gemisch 20 Minuten
oder länger gerührt wurde, wird der gebildete Niederschlag isoliert
durch Zentrifugiersn, s.B. in einer eiev/aDCorgGlcülilton
Zentrifuge mit einer ein Viertel Zoll Zu/.aufröhrö und einer
Durchlauf rate von 473 Itr./Std. (125 gal/hr). Der Niederschlag
wird aus der Zentrifuge unversiiglich entnommen und sofort in
einem Polyäthylenbeutel odor oisrier Polyäthyloiiflasche eingefroren;
daa Durcllsc^^llittagG^7lcht des so erhaltenen nasaGn liiedorachlaga
beträgt 0,8 g pro Liter Urin (In einer röpräoentativon
Serie von Versuchsanaätsen bewegt sich die Menge arischen 0.G5
und 1,4 g). Der Urintiberstaiid wird nsch Probeentnahme verworfen«
während der Hiedersclilagf dor über 98 "p der im Urin uraprüngj.icii
vorhandenen Urokinaoe enthält, im göfrorsnen Zustand aufbewahrt
wird, bia eine ausreichende Zahl von Chargen beiaammen eind» um
mit der weiteren Reinigung fortzufahren.
(C) Elution jrpn adsorbierter Ugpkinaop_ypji. Böiitonit
Die erhaltenen, wie in Abschnitt (B) boochriebeiien
Bentonit-Uiederfschläge würden vereinigt, um in einer -beliebigen
Menge, die von der Kapazität der vorhandenen Auootattung, dor
Zeiteinteilung odor anderen durchgreifenden "tiborleguiisoii abhängt,
weiter verarbeitet eu werden. Iia vorließonden Beiox>iöl
werden zum Zwecke der Erläuterung »ehn Chargen voreinigt.
Wenn eine injiaierbare Urokinasesuscuüraensötsung erhalten
werden .soll, sollten während des geoaiaten folgenden präparativon
1 0 9 K ? 1 / 1 * 1 '>
BAD ORIGINAL
HeratGllungaverfaarene Wasser, Reagonsien und Gefäße pyrögenfrei
aein.
Die gefrorenen Bentonitnioderachläge (ungefähr 1,25 kg)r
die durch Behandlung von insgesamt 1600 Litern Urin gewonnen
wurden* werden susamisengegebon und partiell "bei Zimmertemperatur
auftauen gelassen; die vereinigten Fiederschläge ?rarden homo~
genisiert ait geringen Mengen kalten Waaaera von weniger als
100C. Das Horaogenat wird auf 32 Liter durch Zugäbe von Wasser
von 100C verdünnt und der pH~Wert wird sorgfältig auf 4,00 £
O505 durch langsame Zugabe von n-H01 unter gutem Rühren
otellt. Der iiiederaehlag wird durch Zentrifugieren in der Kälte
bei 1500 g isoliert; das überstehende Waschfässer wird ver-Tiorfon.
Das Waschen wird wiederholt, doch ist der Hoiaogenisierungaachritt
im allgemeinen während dieser gleiten Wasichproasdu
unnötig. Der zweimal gewaschene Bentonit-liiederachleg ??ird in
25,6 liter Waoser suopendiert, voraugnweise bei etwa 37°Ct und
6,4 Mt er 2,0 #ige (G/V) wäßrige lösung von ejS-Bismino^-ätliOÄ
ecridin-lactat-inouohydratj, die vorher auf pH 4,0 eingestellt
wurde, v/orden bei einer Temperatur von 370C oder woniger angegeben
. Die Temperatur dee Geiniochea wird dann auf 37 ± 1°C
orhöht und dor pH-Wert unter konstantem Rühren auf 4,00 eingo»
«teilt. 3)aa Gomiach 'tfird dann bei 1500 g 20 Minuten zentrifugiert
und dor ffiedorschlag verworfen; die überatehcnde Fiüflfjigkoit,
die? mehr ala 90 # der im uraprünglichen Urin vorhandenen
Aktivität enthält, wird achnell auf 0 - 40C abgekühlt und der
109821/151» 6ADOR1GINAL
pH-Wort \7ird dann auf 6,50 4; Of05 durch vorsichtige Zugabe von
n-HCl unter Rühren eingestellt· Sine aliquote Proba i?ird sur
sofortigen Untersuchung
Die nächste YeriTahrensstufe (D) muß unversüglich
angeschlossen werden.
(D) Adaorjybioa von Urokinano m\ Calciuaffhoapliat^ol
Eine Caloiuaphosphatgelouspension wird folgendermaßen
hergestellt:
Eine lösung von 5515 g Calciumchlorid in 3 »5 Liter
destilliertes! Wasser \*ird zn einer 7/öB\mg von 122,5 g ITa-PO, »12
HgO in 3,5 Liter destilliertem Wascer augegöTaen. Das Geasiach
T/ird 30 Minuten in der Kälte gorulirt und daa Gel durch 10-»iinütiges
Zentrifugieren bei 1500 g wnä O0C geisasaaslt; das Gelvolumen
beträgt ungefähr T,5 Mter. Da3 GoI wird erneut in
4 Liter 0,0725 m-BaHgB}« suspendiert und 30 Hinuten gerührt nv4
erneut ciicch Zentrifugieren gessiaaielt. Das Gel wird dann avioiiaai
mit 4 Ltr.*·Portionen Wasser gewaschen; daß Endvolumon des se?itri
fugierton GoIo betrSgt ungefShr 800 ml (entaprechond 50 g
Cax(PO^)0* bezogen auf Srockenge-Hicht). Daa Gel wird in soviel
destillierten Wasser suspendiertt daß das Gecamtvoluraen 2000 τύ.
beträgt und 25 Mg (besogen auf Troolcerigev?ioht) Ca«(PO^)
enthält.
Die wäßrige Löcamg voa ö.D-Dianiiiio-iVöthoxyacrid
monohydrat und Urokinase von pH 6,50, die entapreohend obigeia
10 9821/151?
-I9- Ί b 4 2 B 6
Abschnitt (O) erhalten >7urdsr wird sit soviel Caieiimpiioaphatgolf3"aopeisionr
die ?<ie oben beschrieben erhalten wurde» behandelt,
daß 1 mgt besogen auf Trockengewicht, Cav(P0Ä)p pro 200 CSA-Einheiton
Urokinase vorliegt, Me Düreliselmittsiaenge an gebrauchtem
Ca-(PO,)o beträgt 33 xag (besogen auf Srockengev/icht)
pro Liter bis su dieser Strife aufgearbeitetes} Urin. Palis spezielle Verauehsdaten nicht vorliegen,, wird die 50 ag Trockengewicht
entsprechende Menge Ca^(PO4,.)« pro Liter bis zu dieser
Verfahrensstufe aufgearbeiteten Urins zugesetzt, um hinreichende Adsorption von Urokinase sicherzustellen. Die Cax(POi)0-GeI-suspension
wird au der Urolcinaselösuag schnell unter heftigem
Bühron bei 40C oder darunter sugesetst. Me EührgeschTTinsigkeit
wird dann sofort vermindert und imter diesen Bedingungen 30 Kinnten
gehalten, wonach die Gelfraktion durch Zentrifugieren isoliert
wird. Bevor die überstehende Flüssigkeit varvforfea wird,
sollte man sich durch eine Probsnestiismung vergö-wissern, daß
•weniger als 5 $> der ursprünglichen Urokinasealctivität darin verbleiben.
Das Gel, das adsorbierte Urokinase und 6,9-Diaaino-2-äthoxyccriäin-lactat
enthält, wird durch gelindes Dispergieren,
in 10 Volumen Woaser von 4 0C oder darunter g&waschen. Das Gel
wird dann erneut durch Zentrifugieren isoliert und gewogen;
die Waschflüssigkeit wird verworfen· Mae Menge von Or725 s-Ilatriiunphoophatpuffer
vom pH 6t50 + 0,02, dio go^richtsisitßig der
Menge Flüssigkeit entspricht, die in dem feuchten Gel eingeschlossen istj wird su dem Gel zugefügt und daa Gemisch wird
109821/151? BADORiGlNAl.
langsam gerührt» um eine gleiolimäSiga !Dispersion des GeXs au
erhalten. Sine aliquot© Probe v/ird sur Bestimmung der Wirksamkeit und Pyrogenit&t und sur vorläufigen Untersuchung der Thermostabilität
entnommen. Die aliquote Menge Golsuspenaion wird isentrifugiert,
bsw. vorsugeneios eingefroren und cli© Suspenaion
vor dem Zentrifugieren aufgetaut. Bei Verwendung der uliersteheiiöen
Fraktion sollten intravenöse Losen von 200 CIA-Einheiten/lcg
bei dieser Verfahrensstufe nur geringfügig pyrogen wirken, ö.h«
der jOeraperaturanatiog in Verauchorstten sollte nicht raelir al π
0,6 - 0F8°C "betragen. Palis dieses Erfordernio nicht erfüllt
wirdt kann sur Entfernung der Pyrogene eine Behandlung des
Bluats mit Ca^(P0^)p-6el, das mit .6,9-Biamino-2-ätho2yacridin-lactat-monohydrat
vorbehandelt ist, durchgeführt Herden. AIo
Vorsichtsmaßnahme kann zusätzlich eine vorläufige TTnterBuchung.für
öie Stufen (E) und (1) an einer aliquoten Probe durchgeführt
werden, und falls dieser Vorverouch. Verluste iVoev 30 $ erkannen
läßt, die auf das Srhitsen in Stufe (1?) zurückeufCüireu sind,
da in diesem lalle vermutlich atörende Verimreinisimgen In äo-n
Präparat vorhanden sind, iat ea era beatent die thex'miache Behandlung in Stufe (P) aufsuschieben, bis daa UrolcixiasoprSp&rcit
an CarboxyDiethylcelluloae adsorbiert und davon mieder ©luiort
ist entsprechend der Verfahreiißstufe, die normalerweise auf dio
thermiache Behandlung folgen würde.
10 9 8 2 1/1 B 1 ?
Sie erhaltene Suspension wird nun achnell In einem verschlossenen Gefäß an der Gefäßwand eingefroren
und bei -200O oder darunter mindestens 16 Stunden lang gelagert.
Die gefrorene Suspension ist unter diesen Bedingungen mehrere Wochen stabil. Darüber hinaus erlaubt dieser Einfrier soha?i;i;t
eine ausgezeichnete nachfolgende EIution der Urokinase, die auf
andere Weise nioht abglich 1st. Mehrere Gelchargen können bei dieser Verfahrensβtuf© gesammelt werden, um anschließend vor
der weiteren Reinigung vereinigt zu werden· .
(B) . EIu ti on der Urokinase
Vorzugsweise sollte diese Verfahrensstufe nur in Angriff
genOBiDWη worden, wenn es die Zelt erlaubt, auch die Stufe F
ohne Unterbrechung In einem Arbeitegang durchzuführen; bevor
begonnen wird, sollten Vorrersuche auoh eine ausreichende Thermo-Stabilität erkennen lassen (vgl. Abschnitt (?))·
Der Puffer, In dem das Oa5(PO^)2-GeI, wie oben in Abschnitt (D) boschrieben, eingefroren wurde, dient auch als
Elutlonsmittel. Die gefrorene Suspension von Ca5(PO^)2-GeI wird
vorsichtig und sohnell aufgetaut unter der kloiaotmöglichen
Rührlnteneität, die nötig 1st, um eine Temperatur von weniger als
40O aufrecht zu erhalten. Die völlig aufgetaute Suspension wird
dann auf einer groben ßlasfritte filtriert. Der Rückstand auf
der Nuteoho wird dann unter Verdrängung der eingeschlossenen
flüssigkeit gewaschen; als Waschflüssigkeit wird eine Gesamt-
10 9 8 21/15 12 eAD oRtGlNAu
menge von dem I9 5-fachen Rückhaltevoluisien an 0s3'625 n-ff
phosphatpufier von pH 6,50 + 0,02 verwendet. 3)ao mit der Waschflüssigkeit
vereinigte Filtrat enthält im allgemeinen etwa 87 - 97 $ der ursprünglich im Bentoniteluat vorhandenen Urokinase
aktivitätj die Eöoung ist gelb gefärbt, waa auf teilweise EIution
des adsorbierten 6f9-Mamino-2-äthoxyacridin-lectat~ffionohyclrata
von Ca^(FO^)2 zurückzuführen ist. Das gelöste 6Tg-Diafflino-2-äthosyacridin-laotat-monoiiydrat
wird anschließend von don vereinigten ürokinaoeoluaten entfernt, indem es durch ein
Bett aus einer geeignet ins Gleichgewicht gesetssten Carboxymethylcellulose,
V7io im folgenden beschrieben, durchgeochickt
wird:
(1) I1Ur jeden ml au entfärbendes Bltiat werden sunächa-ö
8 mg Oarbozyraothylcelluloae v?ie unten beochriebßn vorbohandelt.
Dann wird diese Carboxymethylcellulose gegon 0,3625 m~Katriuniphoaphatpuffer
von pH 6,50 £ 0,05 ina Gleichgöwicht gesetat.
P Die ina Gleichgev/icht geoetszt© Carboxyiaetiiylcelluloae wird Bit
Hilfe von zusätsslichen Mengen Puffer auf eine grobe Gleafritte
überführt und der Ifutacheninhalt v?ird durch Schwerkraft abtropfen
gelaaoen. Zur Ersielung der beaten Resultate oollto daa
Bett aus ina Gleichgewicht gesetzter CorboxymethylcelluloDe ao
hoch wie bx-oit sein*
(2) Die vereinigten Urokinaseβluate werden durch diooos
Bett aua Carboxymethylcellulose durchlaufen gelaaßsn unter Vermeidung
von Kanalbildung und Burohbruch dos 6,9-Diaraino-2~ätho2£y~
acridiii-lactat-monohydrata ·
' 10 9 8 2 1/15 1? ßAD ORIGINAL
(2) EacMea die Urokiiiaselöaung dieses Bett durchlaufen
hat9 vi'ItUl die surücli gehaltene I-ösung durch die minimal nötige
Menge an 093S25 la-Hatriunphosphatpuffer von pH 6,50 £ 0$05 er~
setat· Die Piltrat« worden vereinigt und sofort dor Verfahrensatufe
(P) unterworfen»
Herotellung von vorfrehanfiolter OarfeoxyaothylcolJUilpse:
200 g Carboxymethylcellulose ("Cellex-CM Cation Exchange
Cellulose" - 3io-Bod üaboratorieaj Kapaaität: 0,4 biß 0,6 iaXq,u.
pro (Jraiam) trordea in 4 Liter. 0,29 u-TS&^BSOa euepondiert und
30 Minuten gcriftirt· i)ie CarooxyiaeihyXcelluloae wird durch Sch^or«
kraft a'ofiltriert durch eine grotiö (Jlasfritte und ea wird solange
durch äaa Bett Wasser geschickt, Mo das filtrat neutral reogievb.
Die Garhoxyiaethylcolluloße wird dami in A- liiter 0,145 in-Hs-POi,
30 Minuten cucpendiert und orneut auf einer ölaafritte ge^ascliGöi,
bis das Waschwasner neutral reagiert. Falls die Carboxymethylcellulose
gelagert werden eoll, wird βJLe in gefrorenem Zustand
bei -200C gelagert. Kurs vor Gebrauch wird die Carboxymethylcellulose
gegen den geeigneten Puffer, d.h. gegen Os3625 ei-Hatriumphoaphat
in Stufe (E) und gegen 0,0725 m-Hatriumphoöphat-Puffer
in den Stufen (G) und (H), ine Gleichgewicht gesetzt. Nach dem ins Gleichgewicht setzen wird die Carboxymethylcellulose
in der ainiraaloten Menge Puffer suspendiertt die nötig
ist, um ein leichtes Überführen su ermöglichen. Die Konsentration der Carboxymethylcellulose wird auf der Basis des uroprünglich
109821/151?
1Ö42662"
verwendeten Sroekongewichta berechnet
(P)rjgtiaxT£ieoh9 Ba&anfllunft ,yon
Diese Verfahrensαtufe *rf.rä durchgeführt, vrenn die Mög~
. liohkeit, irgendwelche pathogene Viren aus dew Urin im Endprodukt
zurttckßuhalten, auf ein Minimum verringert werden ο oll.
^ Im allgemeinen tritt bei dieaer Verfahrensstufe ein -Verlust en
Urokinasoaktivität von etwa 20 # auf; ee sollte ein Vorveraucla
sur Bestimmung des Einflusses der thermischen Behandlung durohgeführt
werden, uia im voraus das Auümaß.des Verlusteo in äedesr
einzelnen Charge oder einest vereinigten Ansatz zu bestimmen.
Der Vorversuch wird entweder mit der aliquoten Mongö durchgö~
fuhrt, die wie in Abschnitt (D) beschrieben, entnoif&aon v;ird,
oder mit einem repräsentativen vereinigten Ansäte solcher aliquoter
Mengen, έθώά verschiedene Einzeichargon eusamniengegeben
werden sollen.
" Die in Verfahrens stufe (B) erhaltene entfärbte Urokinacelööimg
wird nun durch Zugabe von festemt wasserfreiem KaH9PO4
auf eine Ehoephatkonzentration von 0,50 Molar eingeoteilt; der
pH-Wert wird sorgfältig auf 6,25 +. 0,05 eingestellt! es wird
schwach gerührt und Schaumbildung vermieden. Die Lösung wird so
schnell wie möglich auf 60° ± 0,5°0 erhitzt und bei dieser
Temperatur 10 Stunden belassen; zu keiner Zeit sollte irgendein Seil der Lösung die angegebene Temperatur überschreiten. Während
des Erhitsono wird das Rühren der LÖoung durch geeignetes Sin-
109821/151»
tauchen der Urokinaselo&ung in das Heisbad vermieden. Aliquote
Proben werden periodisch sur untersuchung der Urokiüaao-AIrfcivität
entnommen. Am Schluß der Erhitsungspsriode wird die lösung in
einem Eisbaä unter 50C gekühlt. Lagerung bei O0C über ITaeht ist
dann ausreichend· Die geringe Menge koaguliertes Protein» das sich
während der thermischen Behandlung dea urokinasepräparats gebildet hat, wird, nachdem das Präparat abgekühlt mirde, durch Filtration
durch eine mittlere Glasfritte mit Hilfe von Diatoaeenerde
(Super CeI - Johno-Hanville) entfernt; für die aua 1600 Ltr.
Urin gewonnene Menge Urokinase aollton nicht mehr als 1,0 g
Diatomeenerde notwendig Bein. Das Viltrat wird in einem Eiabad
gesammelt.
(G) Adsorption von Urokinase an Carboxymethylcellulose und
Blution von diesem Material
Wegen der starken Adsorption von Urokinase an Glas ist es wünschenswert, Polyäthylengefäfte oder ähnliches nicht*»
adsorbierendes Material au verwenden, um urokinaselösungen zu
erhalten, wenn die Phosphatkonzentrationen unter 0,29 Molar bei den nachfolgenden Aufarbeitungeschritten liegen·
Das am Schluß der Stufe (1?) erhaltene PiItrat wird mit
6 Volumen kaltem Wasser von weniger als 40C verdünnt und vorsichtig
auf einen pH-Wert von 6,00 £ 0,05 mit kaltem 0,0725 m-HjPO^
titriert; lokaler Säureüberschuß und jedes unnötige Bühren
sind zu vermeiden; der Rührer sollte aus Polyäthylen oder einem
1 0 9 8 2 1 / 1 R 1 7 BAD ORIGINAL
1b42B62
ähnlichen Material besteben. Zu dor Lösung wird unter Rühren
die unten angeg ebene Menge an Carboxymethylcellulose augos et st, die zunächst wie in Stufe (E) angegeben vorbehandelt
wurde und dann mit 0,0725 m-Hatriumphosphatpuffer von pH
6,00 + 0,05 ina Gleichgewicht gesetzt wurde; die Menge der
zu diesem Zeitpunkt zugegebenen Carboxymethylcellulose beträgt 1,0 mg (bezogen auf Trockengewicht) für jeweils 600 CTA-Einhei
ten Urokinase; ungefähr 10 g Carboxymethylcellulose werden für die aus 1600 Litern Urin gewonnene Urokinase erforderlich
sein· In einem Eisbad wird ungefähr eine Stunde langsam gerührt.
Nach den ersten 15 Hinuten Rühren wird ein aliquoter Seil
für eine Schnellbeatiomung der restlichen Aktivität in der überstehenden, nach dem Zentrifugieren erhaltenen Flüssigkeit
entnommen; wenn der Versuch ergibt» daß mehr als 7 $ der Gesamtaktivität
nicht adsorbiert wurden, wird die berechnete susätsliohe
Menge an vorbehandelter, ina Gleichgewicht gesetster
Carboxymethylcellulose der Hauptzaenge an Suspension unter Rühren zugesetzt, die notwendig ist, um 93 % oder mehr Adsorption zu
erzielen; die Gesamtmenge an verwendeter Carboxymethylcellulose sollte 1 rag (bezogen auf Trockengewicht) für jeweils 000 CTA-Binhelten
Urokinase nicht überschreiten· 30 bis 60 Minuten nach,
der letzten Zugabe von Carboxymethylcellulose wird die Suspension durch Schwerkraft filtriert durch eine grob9 Glasf ritte;
das Bett aus Carboxymethylcellulose wird auf dem Filter wieder~
holt mit einer Gesamtmenge von 10 Volumen unter 4°C kaltem
109821/1B1?
Of0725 m-JTatriumphoaphatpuffer von pH 6,00 _+ 0,05 gewaaohsn;
Kanalbildung ist au vermeiden. Hach dem letzten Waschen wird
achtfach abgesaugt, um einen festen aber feuchten filterkuchen
su erzielen. Der filterkuchen TrtLrd quantitativ in Qin austariertes
Gefäß tiberführt und sein Gewicht bestimmt; nach der
Subatraktion deo Trockengewichts an vorhandener öarboxymethylcellulose
im Kuchen läßt eich daa Gewicht an eingeschlossener
Flüssigkeit berechnen. Sine Menge an unter 4°C kalten 0,51 E-Katriumphosphatpuffer
von pH 6,50 +, 0,05, die dem Gewicht der eingeschlossenen Flüssigkeit entspricht, wird nun zugegeben.
Zu dieser Suspension wird dann ein oolchea Volumen an kaltem,
0,29 m-Hatriuiaphoaphatpuffer von pH 6,50 + O1.05 zugesetzt„
daß die Suspension achätssungQTreicie 40.000 - 50.000 CTA-Einheiten/ml
enthält· Die Suapenoion wird eine Stunde bei 0 - 40C
gerührt und dann durch eine Bittiere Glaafritte filtriert.
Daa im filterkuchen eingeachloeeene Eluat wird oorgfältig
durch taschen iait einein minima3.en Volucen an kaltem 0,29 m-Hatriiunphoaphatpuffer
von pH 6,50 + 0,05 eroetzt. Die TTroklnaoealctivitSt
in vereinigtem Eluat und Waschflüssigkeit beträgt im allgemeinen 20.000 - 25.000 CXA-Binheiten/ml und e:atapricht
im allgemeinen einer Ausbeute von Θ5 - 90 f>
der Aktivität, die zu Beginn dieser Verfahronsetufe vorlag» Aliquote Mengen
des vereinigten Eluats mit der Waschflüsoigkeit werden entnommen
und zur Bestimmung von spezifischer Aktivität, Pyrogonität
und Throxaboplastingohalt verwendet· Die Hauptmonge wird an
badobiqinau
schnell
öor Gefäßwand/eingefroren, z.B. in einom Troclceneisbad, und bei -200C oder darunter in Abhängigkeit vom Ergebnis der Versuche gelagert.
öor Gefäßwand/eingefroren, z.B. in einom Troclceneisbad, und bei -200C oder darunter in Abhängigkeit vom Ergebnis der Versuche gelagert.
(H) Per freien Wahl uherlaaoen? Zweite Adsorption von Urofcmaöo
sel Carboxyiaethylcellulooe und Elation von die gem Material..
Diese Verfahrenootufe wird in allgemeinen nur denn durchgeführt,
wenn weitere Reinigung des Uroklnasepräparato am Ende
der Stufe (G) gewünscht wird. Technik und Arbeitsweise dieser Verfahrensstufe ähneln der unmittelbar vorausgehenden. Bio can
Schluß der Stufe (β) erhaltene gefrorene Lösung wird voi'sichtig
und so schnell wie möglich unter minimalem Rühren aufgetaut,
ohne j ο do ch die örtliche Temperatur yotl aufgetauten Teilen auf
über 4°C ansteigen zu lassen. Die Lösung wird ia einem Polyäthylengefäß
mit 3,00 Vlumen kaltem Wasser verdünnt, um die
Phosphatkonssentration auf 0,0725 Molar zu erniedrigen; der ρΠ-Wert
wird dann auf 6,00 + 0,05 durch Zugabe von 0,725 m-H^PO^
vermindert. Unter leichtem Rühren werden 1,0 sag (bezogen auf Trockengewicht) CarboxyiaotliylcelluloEtG, die vorher, Trio in
Stufe (E) beschrieben, vorbehandelt und anschließend gegen 0,0725 m-Natriiuaphosphatpuffer von pH 6,00 ♦ 0,05 ins Gleichgewicht
gesetzt worden war, für jeweils 1.000 CTA-Einheiten
vorhandener Urokinase zugegeben» Sach 30 Minuten schwachem
Rühren wird die Suspension filtriert und der Filterkuchen wie
in Abschnitt (G) beschrieben gewaschen· Der feste, aber feuchte
BAD
!Filterkuchen wird gewogen und das Gericht der eingeschlossenen
Flüssigkeit berechnet; es wird eine solche Geftichteiaenge an
kaltem 0,51 m-lSiatriuiaphosphat von pH 6,80 £ 0,02 zugegeben, die
dein (rOEFicht der eingeschlossenen Pitts si&keit entspricht. Die
Suspension wird dann mit einem solchen Volumen unter 40O kaltem
pH
ftatriwuphoaphatpuff&r von/6,80 £ O902 veraetat, das ausreicht, um eine Suspension bu ergeben, die sch&tzungoireiee 60.000 CTA-Einheiten/zal enthält» Die Suspension wird von Zeit ssu Zeit bsi 0 - 40C eine Stunde gerührt und darin durch eine mittlere Glas«· fritte rait Hilfe von leichtem Saugen filtriert. Bar Filterkuchen wird alt der minimalsten Menge kalten 0,29 &~3?atriLmphoophatpuffer vom pH 6,80 + 0,02 gewaschen, die erforderlich ist, um das eingeschlossene Eluac zu ereetsen. Voreinigtoa Eluat und Waschflüssigkeit sollten etwa 50.000 CSA-I3inheiten TTrokinase/ial entsprechend einer Ausbeute von mehr als 90 £ der zu Beginn άοτ Verfahrens ßtufe vorhandenen Urokinaseaktivität enthalten. Ea werden wiederum aliquote Teile für die erforderlichen Bestimmungen entnommen. Die Hauptmenge ?7ird dann an der Gefäßwand eingefroren und bei -200C oder weniger in Abhängigkeit vom Yerauchsexgibnis der aliquoten Proben gelagert.
ftatriwuphoaphatpuff&r von/6,80 £ O902 veraetat, das ausreicht, um eine Suspension bu ergeben, die sch&tzungoireiee 60.000 CTA-Einheiten/zal enthält» Die Suspension wird von Zeit ssu Zeit bsi 0 - 40C eine Stunde gerührt und darin durch eine mittlere Glas«· fritte rait Hilfe von leichtem Saugen filtriert. Bar Filterkuchen wird alt der minimalsten Menge kalten 0,29 &~3?atriLmphoophatpuffer vom pH 6,80 + 0,02 gewaschen, die erforderlich ist, um das eingeschlossene Eluac zu ereetsen. Voreinigtoa Eluat und Waschflüssigkeit sollten etwa 50.000 CSA-I3inheiten TTrokinase/ial entsprechend einer Ausbeute von mehr als 90 £ der zu Beginn άοτ Verfahrens ßtufe vorhandenen Urokinaseaktivität enthalten. Ea werden wiederum aliquote Teile für die erforderlichen Bestimmungen entnommen. Die Hauptmenge ?7ird dann an der Gefäßwand eingefroren und bei -200C oder weniger in Abhängigkeit vom Yerauchsexgibnis der aliquoten Proben gelagert.
(I) Sterile Filtration
Die am Schluß des Abschnitte (G) oder (H) erhaltene gefrorene Lösung Tiird wie oben in Abschnitt (H) beschrieben auf-
BAD ORIGINAL. 109821/151?
-getaut. Der pH-Wert des Produktes am Schlüsse &qv Stufe (G)
beträgt 6,50, während der pH-Wert am Ende der Stufe (H) 6,60
beträgt* Der pH-Wert sollte erforderlichenfalls vorsichtig auf 6,80 mit Hilfe von kalter n-KaOH eingestellt werden· Bine aliquote
Menge von aufgetauter I'ösung wird zur Bestimmung des Uro~
kinasegehalts entnommen· Die Hauptmonge wird dann aseptisch
durch das kleinste Seitz-SK-Filter, das eine brauchbare Flltrationsgeschwlndigkeit
ergibt, filtriert; ein Pilter von 5 osi Durehmesser genügt für 300 ml Löoiuig. Das Aufnahaegefäß
für das Eiltrat sollte in ein Eiabad gestellt werden. Fallο
sich eine Klärung vor der Durchführung dieser Filtration al ο
notwendig erweist, kann diese Klärung durch hochtouriges Zentrifugloren
in einer Kühlsentrifuge oder durch Filtration durch ein
Seita-K-5-SHter mit dem kleinsten Durchmesser bevrirkt werden·
f.Ή Abfüllung, Gefriertroclraung und lagerung
Das Abfüllen in entsprechende Glasflaschen hängt von den
Versuchsergebnissen ab, die mit den aliquoten Proben, die in
Abschnitt (I) entnommen wurden, erhalten werden; ein Verlust von 5 i>
wird während der nachfolgenden Mltrations- und Gefriertrocknung
α operationen in Kauf genommen· Die Gefriertrocknung wird unter aseptischen Bedingungen in Standardgeräten mit den folgenden K oiifikationen der Standardausführung durchgeführt ϊ Das Einfrieren
der gefüllten Gefäße wird so schnell durchgeführt, wie es die Kapazität der Apparatur erlaubt; die Kapazität der Gefäße
109821/151? BAO OUlOlML-
beträgt das zehn- bis fünfzehnfache des Volumens an eingefüllter
Flüssigkeit; v/egen der vorhandenen Phosphate beträgt der Feuchtigkeitsgehalt der lyophilisierten Gefäße 3 - 5 i»\
intensivere Dehydration sollte vermieden werden. Abgedichtete, fertiggestellte Flaaohen werden unterhalb der Gefriartemperatur
gelagert#
Die folgende Tabelle faßt die Ausbeuteangaben und die Angaben für die spezifische Aktivität der Urokinase, die entsprechend
dem oben beschriebenen Verfahren in 58 Versuchsan&ätzen
gewonnen wurde, zusammen.
Durchschnitt- Durchschnittliche CTA-Ein- liehe apezifiheiten
Uroki- sehe Urokinasenase,die pro Aktivität Liter Urin ge- (CTA-Einheiten
Verfahrensstufe wonnen wurde /mg Protein)
Vereinigte Urinchargen | 6,850 | 34 |
Bentonit-Eluat | 6,600 | schwer bestimmbar |
(E) entfärbtes Ca,(PO^^-Eluat | 6,300 | 6,000 - 8,000 |
(F) erhitzte Lösung | 4,700 | |
(Q) Carboxymethylcellulose- Eluat |
4,000 | 30,000 -35,000 |
(H) zweites Carboxymethyl- cellulose-Sluat |
3,600 | 50,000 -55,000 |
Urinproben und Bentoniteluate wurden im allgemeinen mit dem
Pibrinplattentost untersucht· Die restlichen vier Proben wurden nach einer reproduzierbaren Methode, die sioh vom Test
109821/151? BADORiaiNAU
- 52 -
nach Fletcher für Plasmin ableitet, untersucht« Es ist selbstverständlich schwierig, genaue Verauohsergebniöse für Urinproben
au erhalten» wegen der wechselnden Mengen an vorhandenen
Urokinaao-Inhibitoren, Salzen, protoolytieohen Ensymen und anderen Paktoren, die dio Veraucheergebniose beeinflussen. '
A. 535 Mter normaler mensohlicher Urin von Männern, der im
Laufe des vorangehenden Tages ge sau molt und unter Kühlung auf etwa 40C in der Zwischenzeit gelagert wurde, wurde auf eine Temperatur
zwischen 0° und 20C in einem Kessel aus rostfreiem
Stahl gekühlt und der pH-Wert des Urins wurde auf 5,0 £ 0,05
duroh Zugabe von Eisessig eingestellt. JDae Rühren des Urins in
der Kälte wurde ©ine Stunde fortgesetst» wobei sich ein liiederschlag
bildete. Dieser Niederschlag mtrde durch 10-minütiges
Zentrifugieren bei 1500 g und O0C isoliert. Auf diese Weise
wurden 500 ml feuchter Niederschlag gesammelt, der hauptsächlich aus Harnsäuresaleen, Harnsäure und Muooproteinen bestand,
die im wesentlichen die gesamte im Urin vorhandene und als Auogangsmaterial
verwendete Urokinase in adsorbierter oder anderweitig gebundener Form enthielten« Her beim Zentrifugieren erhaltene Überstand wurde verworfen. Die 500 ml feuchter Hiedersohlag,
die als Fraktion A bezeichnet vrurden, wurden eingefroren und im gefroreren Zustand bin zur weiteren Verarbeitung
gelagert.
1 0 9 B ? 1 / 1 R 1 7 ÖAD
Die vorstehende Arbeitsweise wurde zweimal mit je zwei
weiteren 535 Liter Chargen normalem menschlichen Urin von Mnnorn wiederholtt sodaß auf diese Weise die gefrorenen Mieder
aohläge von insgesamt etwa 1600 Litern normalem menschlichen
Urin von Miinnern erhalten wurden, die, wie durch Versuche
bestimmt wurde, 10.900.000 CEA-Einheiten Urokinase enthielten.
B. Der gefrorene Niederschlag (Fraktion A), der, wie im
obigen Abschnitt A beschrieben erhalten wurde, wurde vereinigt und aufgetaut und dann durch Anteigen mit 80 Idter kaltem
Wasser gewaschen. Der pH-Wert der erhaltenen Suspension mirde
auf 3,8 durch Zugabe voniy&Salzaäure eingestellt und die Suspension wurde gekühlt und 15 Minuten gerührt. Dann mirde die
Suspension zentrifugiert· Der überstand wurde verworfen und
der Rückstand wurde durch Anteigen mit einer zweiten 80 Idter-Portion kaltem Wasser und Zentrifugieren der erhaltenen Suspensio2i
bei pH 3,8 gewaschen und der Überstand wurde verworfen* Urokinase wurde aus dem gewaschenen niederschlag folgendermaßen
eluiert! Der Niederschlag imrde mit 12 Liter Wasser bei 200C
angeteigt und der pH-Wert der entstandenen Suspension wurde . durch Zugabe von η-Salzsäure auf 2,0 eingestellt· Zu dieser
Suspension wurden 4000 ml einer 1 #igen wäßrigen Lösung von
6,9-Diajmino~2Ȋtho:xyaoridin-laotat-monohydrat zugegeben, das
vorher auf pH 2,0 durch Zugabe von η-Salzsäure eingestellt und auf 200C gekühlt «orden war. Elution der Urokinase wurde be-
109821/151? BAD0R.QINA1.
-34- "Ib42662
wirkt, indem das Gemisch 30 Minuten gerührt wurde, wobei die
Temperatur bei 20°0 £ 2°C und der pH bei 2,0 gehalten mirde.
Gemisch wurde dann bei 1500 g ungefähr eine halbe Stunde
bei O - 40O zentrifugiert. Der entstandene Niederschlag vrurde
verworfen und der Überstand, der die Urokinase enthielt, wurde auf 0 - 4°O gekühlt. Es wurde soviel Natriumchlorid (80 g)
zugesetzt, um eine Konzentration von 0,5 5^ (G/7) zu erzielen
und der pH-Wert wurde durch Zugabe γοη n-ITatriumhydroxydlöoung
auf 6,5 + 0,05 eingestellt. Dann wurden 2,3 Volumen wasserfreier
Äthylalkohol (oder wahlweise 2,9 Volumen 95 $igor Äthylalkohol)
zugesetzt, der vorher auf -350O gekühlt worden war, das erhaltene Gemisch wurde nötigenfalls gekühlt, um die temperatur
nicht über 4O|3 ansteigen au lassen. 15 Minuten nach
Zugabe des Äthylalkohols wurde der gebildete Niederschlag gesammelt, indem 20 Minuten bei 1500 g und O0O zentrifugiert
wurde. Dieser Niederschlag wurde homogenisiert in einem gleichen Volumen kaltem Wasser zwischen 0 und 40C und dann wurde
das Gemisch mit kaltem Wasser auf. ein Gesamtvolumen von 12 Mtern
verdünnt. Durch dieses Verdünnen wurde sichtlich der gesamte niederschlag gelöst. Der pH-Wert der erhaltenen Lösung, der
ungefähr 7,0 betrug, wurde durch Zugabe von η-Salzsäure unter Rühren in einem Eiebad auf 5,00 £ 0,02 eingestellt.(In einigen
fällen erwies es sich als vorteilhaft, den pH-Wert ßuorst auf
4,2 - 4»5 und dann erst auf 5,00 + 0,02 einzustellen, um optimale
Ausbeuten an der urokinae ehalt igen Fraktion zu erhalten.) Räch
1 0 9 8 2 1 / 1 B 1 ? 6AD Original
- 55 -
30-mintitigem Rühren des Gemisches wurde der gebildete Nieder-
Zentrifugieren schlag durch 10-mintttigGa / . bei 1500 g und 0 0 gesammelt.
Die überstehende Flüssigkeit wurde verworfen. Der gesaamolte
Niederschlag, der alo Fraktion B bezeichnet wurde, enthielt ungefähr
85 $> der in der obigen Fraktion A vorhandenen Urokinase-Aktivität.
Fraktion B wurde eingefroren und bei -2O0C aufbewahrt,
bis mit der nächsten Verfahrensatufe C begonnen wurde.
In jedem der folgenden Vorfahrenaschritte wurdennur pyrogenfreie Geräte und Reagentien, einschließlich Wasser, die
mit den urokinas ehalt igen Fraktionen in Berührung kommen, verwendet.
C. Der im obigen Abschnitt B erhaltene gefrorene Hiederschlag
(Fraktion B) wurde aufgetaut und dann in 12 liter kaltem Wasser durch Zugabe von η-Salzsäure gelöst, bis der pH-Wert der
Lösung 3,0 betrug, wobei während dieser Zugabe gerührt und in einem Eisbade gekühlt wurde· Nochmaliges Ausfällen der urokinaoehaltigen
Fraktion wurde dann durch Zugabe von n-Natriumhydroxydlösung,
bis der pH-Wert 5,00 ± 0,02 betrug, bewirkt. Die erhaltene
Suspension wurde 10 Minuten bei 1500 g und 0°C zentrifugiert. Der Überstand wurde verworfen. In gleicher Weise wurde
nooh drei oder mehrmals der Niederschlag durch Zugabe von Salzsäure gelöst, durch Zugabe von Natriumhydroxydlöaung erneut
ausgefällt und durch Zentrifugieren gesammelt, wobei der Über* stand jeweils verworfen wurde. Der auf diese Weise schließlich
BAD ORIGINAL
1 0 9 8 2 1 / 1 R 1 ?
1Ö42662
— 3ο —
erhaltene Niederschlag wurde alo Fraktion C bezeichnet. Bis
ziuB Gebrauch in der nächsten Verfahrensstufe D wurde die
Fraktion O in gefrorenem Zustand aufbewahrt·
D. Der im obigen Abschnitt O beschriebener gefrorene Niederschlag
(Fraktion C) wurde aufgetaut und dann homogenisiert in 6 Id tern einer 0,25 $igen w&Srigen Lösung von 6,9-Diarairc«·
2-iithoxyaoridin-lactat-monohydrat, aas auf pH 5,00 + 0,02 durch
Zugabo von n-Phoßphorsäure eingestellt worden war, und das entstandene Gemisch wurde 30 Minuten bei ungefähr 25 + 5°C gerührt«
Der Niederschlag wurde durch 30 minütlges Zentrifugieren
bei 1500 g und O0C isoliert und verworfen· Der Überstand, der
etwa 95 # der in obiger Fraktion C vorhandenen Urokinase-Aktivität
aufwies, wurde auf eine Konzentration von etwa 7000 Einheiten Urokinase pro ml durch Zugabe von 7 Litern einer 0,25 $
igen wäßrigen Lösung von 6,9-Dia2aino-2-äthoxyaoridin-iactatmonohydrat,
die auf pH 5,00 £ 0,02 durch Zugabe von n-Hiosphorsäure
eingestellt worden war, verdünnt. Ein Caloiumphoaphatgel wurde folgendermaßen hergestellt: 535 g Calciumchlorid wurden
in 35 Litern Wasser gelöst und diese Lösung wurde bu einer Lösung
aus 1225 g ITa^PO* · 12H2O in 35 Litern Wasser zugesetst;
das entstandene Gemisch wurde 30 Hinuten in einem Bisbad gerührt und das gebildete Gel durch 10-minütiges Zentrifugieren
bei 1500 β und O0C gesammelt; das auf diese Weise gesammelte Gel,
das ein Volumen von etwa 15 Litern hatte, wurde in 4-0 Litern
109821 / 15 1?
0,0725 H-SaHgPO^ suspendiert, die Suspension wurde 30 Minuten
gerührt und das Gel wurde erneut durch Zentrifugieren gesammelt j dann wurde das Gel mit zweimal 40 Idtern Wasser gewä sollen und
in ausreichend Wasser suspendiert, um ein Gesamtvolumen von
20 Litern mit einem Gehalt von 25 g Ca-(PO^)2 pro Liter au ergeben»
Die auf diese Weise hergestellte Gelsuapension wurde unter Rühren zu dem urokinasehaltigen Präparat in einem Verhältnis
von einem Volumen Suspension auf sieben Volumen Urokinasepräparat zugesetzt, «ras einem Verhältnis von etwa 1 mg Ca^(PO*)g
pro 2000 Einheiten Urokinase entspricht, nachdem dieses Gemisch
30 Minuten gerührt worden war, wurde das erhaltene Gel durch Zentrifugieren isoliert und mit 10 Volumen Wasser gewaschen.
Das so gesammelte Gel mirde gewogen und mit einem gleichen Ge» wicht an 0,58 m-Ifetriumphosphatlösung (pH 6,5 ± 0,02) versetzt
und dann mirde 0,29 ra-ITatriumphosphatlösung zugegeben,
um eine homogene Suspension, die ungefähr 50.000 Einheiten Urokinase pro ml enthielt, zu erzielen. Diese Suspension wurde
an der Gefäßwand eingefroren und bei. -200G über Nacht aufbewahrt.
Die Suspension wurde dann aufgetaut und 30 Minuten bei 1500 g 'and O0C zentrifugiert! der Überstand wurde gesammelt und
zurückbehalten. Der Niederschlag wurde zweimal mit einem gleichen Volumen kalter 0,29 m-liaHgPO^-IiöBung (pH 6,5) gewaschen·
Der Überstand und die Waschflüssigkeiton, die wegen der Anwesenheit einer geringen Hengo 6,9~Mamino»2~äthqxyaorldi&
gelb waren, wurden vereinigt; diese Lösung enthielt ungefähr 90 i» der in der obigen Fraktion C vorhandenen Urokinase-
10 9 8 2 1/15 1? BAD
aktivität· (In einigen Yersuohsansätzen lag die Ausbeute im
Bereich von 87 Mb 97 5»). Die gelbe Plüsaigkeit wurde entfärbt*
indem daa 6,9~Maxaino-2-ätnoxyacridin daraus entfernt Ynirde,
indem sie durch, ein Bett einer ins Gleichgewicht gesetzten
Carboxymethylcellulose geaohickt wurde, die folgendermaßen hergestellt mirdes 2000 g Oarboxymethylcellulose-Ionenaustauacher
(Auatauscherkapazitäti 0,4 bia 0,9 Milliäquivalent
pro g) wurden in 40 Litern Q729 m-l^HPO^-Löaung suspendiert
und die erhaltene Lösung mirde 30 Minuten gerührt. Die Suspension
wurde durch Schwerkraft durch eine grobe Glasfritte
filtriert und durch die auf diese Weise gesammelte Feataubatanz
wurde Wasser laufen gelassen, bis das Piltrat neutral reagierte.
Die Postaubstanz wurde in 40 Litern 0,145 m-HjPO* 30 Minuten
suspendiert und die Suspension wurde erneut durch eine grobe Glasfritte filtriert und die Carboxymethylcellulose wurde mit
Wasser gewaschen, bis das Waschfässer neutral war. (Palls die
Carboxymethylcellulose gelagert werden soll, wird sie in dieser Verfahrenaatufe eingefroren und in gefrorenem Zustand
bei -200O aufbewahrt)· Diese vorbehandelte Carboxymethylcellulose
wurde in einer Menge von 8 mg/wl der wie oben beschrieben
vereinigten gelben Flüssigkeit gegen 0,29 m-ITatriumphosphatliSsung
(pH 6,5) ins Gleichgewicht gesetzt und die so erhaltene im Gleichgewicht befindliche Carboxymethylcellulose
wurde mit Hilfe von zusätzlicher 0,29 m-Natriumphoaphatlösung
(pH 6,5) auf eine grobe Glasfritte überführt· Das nasso Bett
Ι09821/1Β1λ
aus CarboxymethylcollulosG wurde durch Schwerkraft abtropfen
gelaasen. Dao Bett war ungefähr 1 Zoll hoch und et??a 2 Zoll
breit· Die gelbe, urokinasehaltlge Plüssigkeit wurde durch das
Carboxyraathylöellulosebett filtriert und danach mirde 0,29
m-HatriuEiphoaphatlöaung (pH 6,5) durchlaufen gelassen, un das
Bett 2u "waschen. Dao so erhaltene Filtrat, das ale JPraktion D
I)O se lohnet wurde, war im wesentlichen farblos und frei von
6,9-Diamino-2-äthoxyaoridin· Diese Fraktion Tmrde nach dem
unten aufgeführten nächsten Verfahrenssohritt E unverzüglich weiter verarbeitet.
E. Die 'eiüäß dem obigen Abschnitt D erhaltene Fraktion D
TTurde mit 3 Volumen Wasser von 0 - 40O verdünnt» wobei die
EhoaphaiJfeonsentration auf 0,0725 Molar verringert mirde, und
die verdünnte Lösung wurde mit 0,0725 ra-H^PO^ auf pH 6,0 £ 0»°5
titriert. Vorbehandelte Carboxymethylcellulose, die wie in
Abschnitt D beschrieben erhalten wurde, vfurde gegen 0,0725 m- ■
Natriumphosphatpuffer von pH 6,0 + 0,05 ins Gleichgewicht ge~
setsst und zu der urokinasehaltigen Xtöaung in einer Menge von
1 mg (bezogen auf Trockengewicht) Carboxymethylcellulose pro 800 CIA-Einheiten Urokinase zugegeben. ITach 15-al nut igen Rühren.,
des Gemisches mirde eine geringe aliquote Menge entnommen und
zentrifugiert und die noch im Überstand befindliche Urokinaseaktivität vmrde durch eine Schnellmethode bestimmt, vroboi gefunden
mirde, daß sie ungefähr 5 $>
der in Fraktion B befindlichen Menge betrug. (Wenn diese Untersuchung einen Wert von
1 0 9 8 ? 1 / 1 R 1 ? mx)
mehr öl a 5 % erkennen ließ, wurde auf alle Fälle eine susäteliohQ
Menge von im Gleichgewicht befindlicher Carboxymethylcellulose
EU der Hauptmsagö an Suspension zugesetzt; die Gesaiatmeiige
on Carboxymethylcellulose» bezogen auf 3?roekengevd.clit,
überstieg jedoch in keinem Pail 1 mg pro 500 CTA-Einheiten
Urokinase). Die Eauptmenge Suopenaion wurde dann durch Schwerkraft durch oine grobe Glaafritte filtriert» Der öo gewonnene
ETiederschlag mirde auf dem Filter mit insgesamt 10 Volumen
kalter 0,0725 m-Isatriumphosphatloaung (pH 6t0 ± 0,05) gewaschen und bei der Filtration wurde schwach abgesaugt, bin
ein fester feuchter Kuchen erhalten wurde. Der feuchte Filterkuchen wurde gewogen und daß Volumen der im Kuohen eingeschlossenen
Flüssigkeit mirde au 6,5 ral berechnet. Der feuchte Kuchen
wurde dann in 6,5 ml kalter 0,51 ra-lfatriumphosphatlöaung
(pH 6,00 + 0,05) auspendiert und ein ausreichendem Volumen
(70 al) kalter 0,29 m-ITatriumphosphatlösung (pH 6,00 + 0,05)
vmrde zugesetzt, um eine Suspension mit annähernd 50*000 CiPA-Einheiten
Urokinase pro ml su erhalten. Die erhaltene Suopension
wurde eine Stunde bei O0C gerührt und dann durch eine
mittlere Glasfritte filtriert. Das im Filterkuchen eingeschlossene
Sluat wurde durch Waschen mit 100 ml kalter 0,29 m-Natriuisphosphatlösung
(pH 6,00 + 0,05) verdrängt. Das 331uat und die Waschflüssigkeit wurden vereinigt und als Fraktion E bezeichnet;
diese Fraktior hi.tte ein Volumen von 230 ml und ent-,
hielt 37.000 CTA-Einheiten Urokinase pro nl. Die Urokinase-
10 9 8 2 1/15 1?
aktivität in Fraktion E betrug 85 # der in Fraktion S vorhandenen·
Fraktion E wurde eingefroren und bei -200C bis but weiteren Verarbeitung aufbewahrt.
F. um evtl. vorhandene Viren, z.B. Hepatitis virus,
su inaktivieren, wurde Fraktion E folgendermaßen behandelt:
Sie Fraktion wurde aufgetaut und die vorhandene Phosphatkonzentration
γοη 0,29-Molar durch Zugabe von Ha2HPOj auf 0,50-Mo.lar
erhöht· Sie so erhaltene Lösung, die einen pH-Wert von 6,8 aufwies, wurde auf 60,0 ± 0,50C 10 Stunden erwärmt.
Sie durch dieses Behandlungsverfahren erhaltene Lösung wurde als Fraktion F bezeichnet; sie besaß 70 $>
der in Fraktion E . vorhandenen ürokinaseaktivität. Fraktion F wurde in einem Eisbad
gekühlt und Über ftacht bei O0C aufbewahrt. .
G. Fraktion F wurde mit kaltem destilliertem Wasser verdünnt,
um die Phosphatkonzentration von 0,50-Molar, auf 0,0725-Molar
zu erniedrigen und der pH-Wert der verdünnten Lösung wurde auf 6,00 + 0,05 durch Zugabe von 0,0725 m-H^PO^ vermindert.
Sie erhaltene Lösung wurde in einem Eisbad gerührt und dann wurde im Gleichgewicht befindliche Carboxymethylcellulose zugesetzt,
die dadurch hergestellt worden war, daß vorbehandelte Carboxymethylcellulose, die gemäß dem in Absohnitt S beschriebenen
Vorfahren erhalten wurde, gegen 0,0725 Bi-Katriumphosphat-,
lösung von pH 6,00 +, 0,05 ins Gleichgewicht gesetzt wurde, wo
bei die Zugabe in einer Menge von 1,0 g (bezogen auf Trooken-
6AD ORIGINAL 10 9 8 21/15 1?
gewicht) pro 1.000.000 in der Iiöouag befindlicher CIA-Einheiten
Urokinase erfolgte. Hackdem das Gemisch 30 Minuten gerührt worden war, wurde es filtriert und in der in Stufe E beschriebenen
Weise gewaschen. Dor erhaltene feuchte Kuchen wurde gewogen und
das Volumen der im Kuchen eingeschlossenen Flüssigkeit wurde zu 33 ml berechnet. Der feuchte Kuchen wurde dann in 33 ml
kalter 0,51 a-Natriumphoaphatlösung (pH 6,80 + 0>02) suspendiert
und ein ausreichendes Volumen (20 ml) kalter, 0,29 m~ tfatriumphoaphatlösung (pH 6,80 + 0,02) wurde zugegeben, um eino
Suspension mit ungefähr 60.000 CTA-Einheiten Urokinase pro ml
zu erhalten. Diese Suspension wurde mit Unterbrechungen eine
Stunde bei O0C gerührt und dann duroh eino mittlere ßlasfritte
filtriert« Das im Filterkuchen eingeschlossene Eluat wurde durch
Waschen mit 40 ml einer kalten 0,29 M-Natriuiaphoaphatlöaung
(pH 6,80 £ 0,02) verdrängt. Das Eluat und die Waschflüssigkeit
wurden vereinigt und als Fraktion G bezeichnet» Diese Fraktion hatte ein Volumen von 110 ml und enthielt 49*000 CIA-Einheiten
Urokinase pro ml. Die Urokinase-Aktivität in Fraktion Q betrug
91 $t der in Fraktion F vorhandenen Aktivität. Fraktion Q wurde
eingefroren und bei -200C bis zur weiteren Verarbeitung aufbewahrt«
H. Fraktion G wurde aufgetaut und dann zur Sterilisation
aseptisch duroh ein Seitz-EK-Filter filtriert· Die sterile Lösung
wurde gefriergetrocknet·
1/15
Sie in den obigen Abschnitten A bis H und in Beispiel 1
beschriebene lOlge von VerfahrenoBtufen wurde wiederholt mit
der Ausnahme,, daß Stufe F, also die thermische Behandlung,
weggelassen wurde. Unter leiohtem Rühren wurden zwei Volumen
auf O - 40C gekühlter, gesättigter Aramoniuaisulfatlösung au
aa Ende der Stufe H erhaltenen Eluat zugesetzt. Das Gemisch,
wurde eins Stunde in der Kälte stehen gelassen und die ausgefallene Urokinasefraktion wurde durch hoohtourige Zeatrifugation
in einer Kühlzentrifuge (19*000 UpM 20 Hinuten in
einer Servall-Zontrifugo) isoliert. Die überstehende PlÜBDigkeit
wurde dekantiert und verworfen. Der llioderechlag wurde ·
in 0,29 m-Natriumphosphatpuffer vom pH 6,5 diapergiert, um
eine Konzentration von 3 x 10 CIA-Einheiten pro ml bu erhalten.
Das Gemiach wurde bei 0 - 40C gegen Mufig gewechseltes destilliertes
Wasser in einer wirksamen Dialyoiorvorrichtuug dialyalort,
bia der spezifische Widerstand der UrokinasslUBung auf
2.500 0hm anstieg. Sobald die Leitfähigkeit durch die Dialyse
bis auf den obigen Wert reduziert \rar, war in der Suspension
ein in «resentliohen inerter und üblicherweise kristalliner
Niederschlag vorhanden und der pH-Wert betrug 6,6. Diese Suspension vrarde zentrifugiert und der Niederschlag verworfen.
Unter schwachem, jedoch wirkungsvollem Rühren wurde der pH-Wert
der überstehenden Flüssigkeit mit 0,1 n-ffaOH von 0° - 4°0 auf
7,00 eingestellt und das Präparat wurde beobachtet, ob nach
10 9 8 2 1/15 1? BAD ORiGlNAL
lb42B62
15 Miauten erneut Niederschlagsbildung auftrat. Die Lösung
wurde nötigenfalls durch Zentrifugieren geklärt» Die Ausbeute an Urokinaee-Aktivität betrug 85 - 90 55 der in Stufe H vorhandenen
Aktivität« Zu je 10 mi klarer Urokinaeelösung wurden
0,2 g festes Natriumchlorid zugegeben und der pH-Wert der Löaung
mrde sorgfältig mit 0,1 n-H01 auf 5,30 £ 0,05 eingeotollt.
Die lösung wurde mit festem Natriumchlorid gesättigt
und die entstandene Suspension wurde bei 0 - 40C über Macht
aufbewahrt· Die auf diese Weise ausgefällte Urokinase wurde durch Zentrifugieren isoliert. Die durchschnittliche Ausbeute
an XTjJOkinase-Aktivität betrug bei diesem Verfahrensschritt 83#.
Der tJrokinaaoniederechlag wurde in 10 #iger wäßriger liatrium-.chloridlöoung
von 4-0O gelöst, um eine lösung nlt ungefähr
150.000 CTA-Einheiten pro ml zu erhalten; der pEMffort der Lösung
wurde, auf 5,00 +, 0,05 eingestellt« Έθ wurde soviel festes
Natriumchlorid zugesetzt, um halbe Sättigung an Natriumchlorid
au ersielen und die lösung wurde zur Entfernung von unlb'slichora
Material zentrifugiert. Dann mirde die TJrokinaselösurtg bei A0C
mit zusätzlichem festen Natriumchlorid versetzt, bis die Lösung
©in echvraeh-trübes Aussehen zeigte? mit anderen Worten, bei
schwachem Rühren wurde ein "seidenartiger* Schimmer sichtbar.
Die NatriumchlOiridkonzentration wurde dann nach und nach innerhalb
von mehreren Tagen erhöht, bis 98 &Lge Sättigung erreicht
war·
109821 / 1 R 1 ?
Bio sich au© der Söaung aufgrund der obigen Verfahrensweise
abscheidenden Urokinaaekriotalle waren farblose, dünne
Pl&ttchen von ungewöhnlicher Brüehigkeit und Sprödigkeitj
uiitei· dom Mikroskop wurden sie bei Anwendung von nur mäßigem
Druck auf das Deckgläsehen leicht in Bruchstücke verbrochen·
Wenn das obige einmal kristallisierte Präparat noch ". ·
zweimal us^riatalliaiert wurde, erreichte die spezifische
Urokinase-Aktivität einen konstanten Maximalwert (in weiteren
Versuchsansätzen wurde gefunden, daß zwei- oder dreimaliges
Umkristallisieren im allgemeinen für diesen Zweck ausreichend war). Bin mittlerer Auabeuteverlust von 12 $>
der gesamten ITrokinase-Aktivität wurde bei jeder TTmkristallisation gefunden· Die maximale apesiflache Aktivität, die mit federn
von drei Kristallcliargen erreicht wurde, betrug 652*000 ^
29.Ö0O (s.d.) CIA-Einheiten pro mg Stickstoff (Kjeldahl),
oder 104*000 ± 4*800 (s.d.) CTA-Einhoiten pro mg geschätztes
Protein. (Ss wurde angenommen» daß die Proteinkongentration
das 6,25-facne der Stickstoffkonzentratipn betrug? die Stiok-.
stoffkonsentration Kurde nach dem Mikro-Kjeldahl-Vorfahrön '.;' :
bestimmt,^ Eins Lösung der kristallinen Urokinase mit 0,100 mg
N/ml zeigte "eine optische Dichte von 0,853 bei 280 φ in
1,00 cm Küvetten.)
29 mg kristalline Urokinase wurden aus 2.270 Eitern ;
(600 gallons) menschlichem Urin von Männern erhalten, was einer
Gosamtausbeutö von 24 f» entspricht. Sei der Polyacrylamidgol-
109821 /15
-» 4ο —
platten-Elektrophorese zeigten Lösungen dieser kristallinen
menschlichen Urokinase nu · eine einzige» scharf definierte
Komponente. Sie kristalline menschliche Urokinase wurde auch in der Ultrazentrifuge auf Homogenität untersucht« Alle Ultrazentrifugcnversuche wurden bei 1O9O0C in einer analytischen
Spinoo-Hodell E-Ultrazentrifuge durchgeführt, die alt einer
Phaoenplatte, sohlierenoptisohem System, Rotor-Iemperatur-Anzeiger und Kontrolleinheit ausgestattet war. Sedimentationskurven von Lösungen kristalliner Urokinase wurden "bei (A) pH
2,1 und (B) pH 6,8 in mit Überaohichtungszellen durchgeführten
geschah Versuchen erhalten. Die Übersohlohtunf / 12 Minuten, bevor
die !fahrgeschwindigkeit 59.780 UpM erreicht hatte«
Sohlieren-Biaphragmavrinkel 6OC· In Ansatz (A) entsprach die Uroklnasekonzentratiott einer optischen Dichte
280 SHi a 4,05 in 0,21 m-Naöl, 0,07 Phosphat bei pH 2,1;
die Kurven wurden 22, 62 und 94 Hinuten, nachdem die Rotor- .
geschwindigkeit $9*780 UpK erreicht hatte, fotografiert.
Zn Ansäte (B) entsprach die Urokinaeekonaentration einer optischen Diohte 280 κα « 4,22 in 0,£i m-KaOl, 0,07 Phoaphat
von pH 6,8; die Kurven irurden 13, 53 und 85 Minuten, nachdem
die RotorgeBChWindigkeit 59*780 UpU erreicht hatte, fotografiert.
Die Löttfe bei pH 2,1 und pH 6,8 zeigten in beiden
fällen nur eine einzige sysuaetrisohe Gradientenkurve*.^n dem .
bei pH 6j8 gefahrenen Ansatz zeigte die Kurve jedoch, eine v.
10 9 8 21/1512 BAD original
relativ schnelle und irgendwie übertriebene Verbreiterung beim Durchqueren der Zelle; darüber hinaus zeigte der aus den Ultra-Zentrifugendaten
berechnete acheinbare Diffusionekoeffizient
eins gewisse Abhängigkeit von der Größe dea Zentrifugalfoldes.
Während die Anwesenheit nur eines einsigen symmetrischen Gipfele
' in den Sedimentationskurven natürlich die Homogenität- der Urokinaeopräparate anzeigte, sprach die relativ schnelle und
progressive Verbreiterung der Kurve bei pH 6,8 für eine PoIydisperaität
bei diesem pH-Wert.
Um die bei der Sedimentation bei pH 2,1 gefundene Homogenität der kristallinen Urokinase mit der bei pH 6,8 auftretenden
PolvdiepereitSt in Einklang zu bringen, wurde angenoamöü,
dad bei den höheren pH-Wort Urokinase relativ schnell
einem Aasoziation-Dissoslation-Gleichgewicht unterliegt«
Falls die £instollungogeschwindigkeit des Assoziations-Sissoziatione-Gloiohgewichts
nicht größer wäre ale die Geschwindigkeit
der ultrazentrifugalen Trennung der verschiedenen Molekülarten (Monomere, Dimere usw.), müßte mehr als ein
Gradient während der Sedimentation auftreten· In Asaoziations-Dlssoziationssyetemen,
bei denen nur eine einsige Komponente beteiligt ist, bewegt eich der Sedimentationsgradient mit einer
Geschwindigkeit dea Geirichtsmittels; darüber hinaus ist der
Gradient auch noch der Ort, wo sich die Gleichgewichte dauernd
wieder einstellen wegen der Konzentrationsänderungen über den
ganzen Gradienten· Am Schwanzende des Gradienten, tro die
109821/1512
Proteinkonzeniration niedrig ist, wird die Dissoziation in
die monomere Form selbstverständlich begünstigt. Ba die monomeren Moleküle weniger rauch aedimentieren als das Durcheohnittsmaterisl
in der Platoauzone vor dem Gradienten, bleiben
die Sonoreren zurück und verursachen eine größere Verbreiterung
dea Gradienten als sie auftreten würdo, Trenn nvar die . ;
Monomaren anlesend wären. Sine Bestätigung für den Befund, ·;.,
daß kristalline Urokinase dazu neigt, in Lösung bei £0 6,8
reversibel zu aggregieren, mtrdo dadurch erhalten, daß eine
Konzentrationsabhängigkeit dea gewichtsmittleren Molekular- *:
geniohts des Enzyms in lösung bei diea em pH-Wert festgestellt
mirde. In diesen Verau&nsserien wurden die Solekttlargevichte '"'"'·'
naoh der Archibald-Gleiehung berechnet (J. Ehys. and Colloid ■ ,
One*., £1, Ί204 (1947))i · ■ - -
ET idcr/dac}
JM
Zn der Gleichung bedeuten: B » Gaakonstante, 8,314 x 10 org/
aol/Grad; T ■ absolute Temperatur; f »Dichte der LOaung;
ta » Winkölgeechwindigkeit des Zentritugenrotora in Badianen
pro Sekunde» (UpM) (2 i")/60j x^ » Abstand des Ueniacun von
der Rotationsachse; cm und (do/dx)m « Konssentration bew. Konssentratlonagradlent
am Meniecuo; V a partielles spesifisches
Volumen von Urokinase, das su 0,735 hI/g töi 10°c ansionommen
Tiurde» Hie Heniscuäkonsientration cm viurde naoh der Gleichung von
Klainer und Kogeles (19) berechnet.;
!09821/1512
co -
In der Gleichung bedeuten: oQ = Anfangskonsentration der
Urokinase in optischen Einheiten, wie sie in Überschichtungsläufen in der Ultrazentrifuge bestirnt- wurde; X ist eine
Stelle in der Plateauaone (wo tiberall (dc/dx) gleich KuIl ist).
Experimentelle Bestimmungen wurden gemäß dem Verfahren von
Sehaohmann durchgeführt (Methods in Enzymology, Vol. IV» S.P.
Colowiek and H.O. Kaplan, Herausgeber, Academic Press» Kew
York, 1957, S.32). Im wesentlichen läßt sich die Archibald-Methode
während der Annäherung an ein Sedimentationsgleioheoaioht
la einem Ultrazentrifugenfeld anwenden. Sie erlaubt
die Bestimmung des gayichtomittleron Molekulargovrichto τοη
gelösten Molekülen, die am Meniaoua einer Lösung vorhanden
sind, wenn die Konzentrationsvertoilung in der Gegend des
Meniscus bekannt ist.
Sie Molekulargewichtsdaten, die Über ein Bereich von
Menisouskonzentrationen τοη Urokinase bei pH 6,8 erhalten
wurden, ließen erkennen, daß der reziproke Wert dem Gerichts- :
mittels des liolekulargewichto in !linearer Abhängigkeit τοη
der Konzentration in dem bei pH 6,8 untersuchten Konzentration«
bereioh ist. Die Methode der kleinsten Quadrate dieser Daten
führte zu der folgenden Gleichung für die Hegressionskurre:
« 1,853 - 0,OS64(o)
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In dieaor Gleichung "bedoutet c dio Uroicinasekonsentration,
ausgedrückt in optischer Dichte bei 280 wi in 1,00 cir-ifellon.
Danach v?arde bei unendlicher Verdünnung ein Wort von 54-000
£ 900 (o.e.) für das Molekulargewicht der monomeren Urokinase
erhalten; dieser Wert beruht jedoch auf der Annahme» daß das
partielle spezifische Volumen 0,735 lal/g bei 10°C beträgt.
Ähnliche Holelmlargesfiohtsheatiasungen, Tfie sie bei
pH 6,8 durchgeführt mirden, mirdon an Orokinaselösungon auch
bei pH 2,1 und pH 10,5 durchgeführt. Innerhalb der Fehlergrenze
mirde bei koinom der beiden pH-Werte VOsot das untersuchte
Exmzentrationsbereich eine Konsentrationoabhängigkeit
des scheinbaren Molekulargewichte beobachtet;. Bei pH 2,1 vrurde
der Mittelwert und der Standardfehler bei einer Vorsuchsoerie
von 11 MolekulargewichtobeatiiaEiungen zu 52.500 +, 530 gefunden.
Bei pH 10,5 wurde der Mttel^ert und der Standardfehl&r für
eine Serie von 8 Bo&timsiungen zu 53.300 ± 440 gefunden· Jodor
dieser beiden Werte lag in guter ÜbereinstisoBung mit den Wert
von 54·.000 + 900, der durch Extrapolation der Werte bei pH 6,8
bei unendlicher Verdünnung abgeleitet mirde. Vermutlich wurde
die Aggregation bei den mahr extremen pH-Werten durch abstoßende Kräf te der elektrostatieohen Ladungen an den fionomeren
Molekülen gehessat; andererseits ist os auch möglich, dass ein
relativ geringer Grad an Aggregation durch ein nicht ideales Verhalten der Lösungen oder durch analytische ünempfindliohkeit,
der Bestimmung nicht zugänglioh ist.
109821/1512 «AD
— pi —
Sie experimentelle Gestaltung der MolekulargewichtsbeStimmungen
bei jedem untersuchten pEMr/ert lieferte auch
einen weiteren Beweis für die Homogenität der kristallinen
Urokinaoöpriiparate j die Verauehsdurehführung erlaubte darüberhinaus
bei Jedem pH-Wert die Unterouchung einer Einseiprobe Über ein ziemlich weites Bereich an ISenieeuskonsentrationen·
Während der Archibald-Versuche vrurde jede von mehreren ver-0chiedenen
Anfangakonzentrationen der Urokinase drei vor- i
achiedenen Zentrifugalfeidern ausgesetzt. Xn Systemen» die
eich in der Ultrazentrifuge als polydispera erweisen, bewirken
die höheron Zentrifugalfelder bevorzugt eine Verarmung der schneller sedistentieronden Molekulart aus der Menlecuszone»
Wenn die Polydicpersität auf eine reversible Aggregation suriicksufuhren iat, führt die bevorzugte Verarmung au einer
Ueueinstellung des Gleichgewichts der Molekülart und damit
ssu einer Lösung, deren ZuoauEsensotaung identisch rait einer
Zusammensetzung ist, die durch einfache Verdünnung derselben LöQungokonzentration erhalten v?ird. Das gewicht emittiere
Molekulargewicht der Lösung am Meniscus eines solchen Systems
ist strar kons ent rations abhängig, jedoch unabhängig davon, ob
die Vorminderung der Konzentration in erster Linie durch einfache Verdünnung oder durch fraktionierung in der Ultra*
zentrifuge bewirkt wird. Biese Verhältnisse wurden mit Urokinaselösungon
bei pH 6,8 gefunden· Bei den beiden anderen untersuohten
pH-Werten vrurde die Homogenität der kristallinen ' .,
10982 1/1512 ßAD ORIGINAL.
Urokinase auch noch dadurch, angezeigt., daß keine Anseichen
für ein© Abhi-mgigfceit der ArcMbaia
von der Groß© der angöV7andi;eji Zentrifug&lfelder
Die oben beschriebenen erfindungogeaUoea Verfahren
führen au hochgoreinigten tfrokiiiaeepräparatsn, die ±m vrsaontliehaa
frei von I^rrosöaen tmd thromboplastiechen SubDtanisen
waren und die eich boi der Aiiflöaung von intravasculören
Gerinnseln im aonschliciion Körper ale Tdrksaai erwiesen.
Darüber hinaus war die beschriebene kristalline Urokinase
nicht nur im wesentlichen frei von ^rogenea und throaboplßfltischen
Substanzen» sondern ebenso frei von potentiell antigenen Verunreinigungen, ood&B die kriGtalline TJrokinaoe
beim ttenachen wiederholt an^owandt ?mrden kann, ohne ochv?ero
energische Eeaktionen befürchten su jsUoaen.
lach dem Stand der Technik mtrde die Wirksamkeit von
TJrokinaeopripjixaten in aohroren voreohiadönon Aktivitäteeinheit
an ausgedrückt, wovon jede auf einer bc&tiisnten
Standardbdstisaiungeiaethod'e basierte. Sie in vorliegender
Anmeldung verwendeten C TA-Ei nli ei ten entsprechen der Standardurokinaoeeinhöit,
dio kürelich vom "Comsiittee on Shrombolytic
Agents« Rational Haart Institute" genehmigt mirdai vgl.
Sherry, Alk^aeraig und Gleicher» J. lab. & Clin. H&d, 64,
145-153 (Juli 196Λ).
109821/1512
BAD
Claims (3)
1.) Verfahren zur Gewinnung von Urokinase in kristalliner
Form aus einer Urokinaseaufbereitung mit einer Urokinaseaktivität
von mindestens 40 000 CTA-Einheiten pro mg Protein, dadurch gekennzeichnet,
daß die Aufbereitung mit Natriumphosphatpuffer bei einem pH-Wert im ungefähren Bereich von 6 bis 7 zur Herstellung
einer Lösung mit einer Uronkinase-Aktivität von mindestens 100 000 CTA-Einheiten pro ml gelöst wird, die erhaltene Lösung
bei einer Temperatur im ungefähren Bereich von O0C bis 40C gegen
Wasser dialysiert wird, bis der spezifische Widerstand auf mindestens 2 500 Ohm ansteigt, der gebildete Niederschlag entfernt
und verworfen wird, die Urokinase aus der Lösung mit Natriumchlorid ausgesalzen wird, die auf diese Weise ausgefällte Urokinase
gesammelt und in wäßriger Natriumchloridlösung gelöst wird und die Urokinase aus der Lösung mit Natriumchlorid ausgesalzen
wird, wobei die Urokinase in kristalliner Form gewonnen wird.
2.) Menschliche Urokinase in praktisch homogener Form mit einem Molekulargewicht von etwa 54 000 und einer spezifischen
Urokinaseaktivität von annähernd 652 000 CTA-Einheiten pro
mg Stickstoff und annähernd 104 000 CTA-Einheiten pro mg geschätztem Protein, die völlig frei von pyrogenen und thrombo-
BAD ORIGINAL 109821/1512
plastischen Substanzen ist.
3.) Injizierbare Zubereitung von menschlicher Urokinase
zur Auflösung von Blutklumpen im Menschen, die im -wesentlichen aus einer wäßrigen Lösung von menschlicher Urokinase gemäß
Anspruch 2 besteht.
10 9821/151?. 8AD
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US3477910A (en) * | 1966-10-17 | 1969-11-11 | Century Lab Inc | Method of production of urokinase |
US3542646A (en) * | 1966-11-22 | 1970-11-24 | Green Cross Corp | Process for fractionally obtaining urokinase and blood coagulation accelerator in human urine |
US3477913A (en) * | 1967-10-31 | 1969-11-11 | Century Lab Inc | Method of production of urokinase |
US3544427A (en) * | 1968-04-18 | 1970-12-01 | Century Lab Inc | Method of production of urokinase |
US3620924A (en) * | 1969-04-01 | 1971-11-16 | Baxter Laboratories Inc | Production of acid-active lactase |
FR2190412A1 (en) * | 1972-06-30 | 1974-02-01 | Choay Sa | Stable,pyrogen-free urokinase prepns - from human urine |
BE789189A (fr) * | 1971-09-24 | 1973-03-22 | Choay Sa | Perfectionnements aux procedes de preparation, de depyrogenation et de stabilisation de l'urokinase et compositions obtenues |
JPS5341485A (en) * | 1976-09-25 | 1978-04-14 | Wakamoto Pharma Co Ltd | Removing method of pyrogenic substance containe in urokinase |
US4066506A (en) * | 1976-10-08 | 1978-01-03 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Health, Education And Welfare | Method of separating and purifying two active forms of urokinase using affinity chromatography |
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US4370417A (en) * | 1980-04-03 | 1983-01-25 | Abbott Laboratories | Recombinant deoxyribonucleic acid which codes for plasminogen activator |
US4558010A (en) * | 1980-04-03 | 1985-12-10 | Abbott Laboratories | Recombinant deoxyribonucleic acid which codes for plasminogen activator and method of making plasminogen activator protein therefrom |
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US4920051A (en) * | 1988-02-03 | 1990-04-24 | Damon Biotech, Inc. | Recovery of urokinase compounds |
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