DE10064064A1 - Verfahren zur Beschleunigung biokatalytischer und/oder hormoneller Prozesse und dessen Verwendung - Google Patents
Verfahren zur Beschleunigung biokatalytischer und/oder hormoneller Prozesse und dessen VerwendungInfo
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Abstract
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Beschleunigung biokatalytischer und/oder hormoneller Prozesse in Stoffen. Das Verfahren beruht darauf, daß Wasser vor und/oder während des Prozeßablaufs mit Singulett-Sauerstoff aktiviert wird. Dabei kann es sich um das in dem Stoff enthaltene Wasser handeln oder um ein wäßriges Medium, das anschließend dem Stoff zugesetzt wird. Eine beispielhafte Verwendung dieses Verfahrens ist die Beschleunigung von biokatalytischen und/oder hormonellen Prozessen in Böden.
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur
Beschleunigung biokatalytischer und/oder hormoneller
Prozesse in Stoffen, beispielsweise wäßrigen Medien.
Das Verfahren beruht darauf, daß das in dem Stoff
enthaltene Wasser mit Singulett-Sauerstoff aktiviert
wird oder zunächst Wasser mit Singulett-Sauerstoff
aktiviert wird und in einem weiteren Schritt der
Stoff mit diesem aktivierten Wasser behandelt wird.
Eine beispielhafte Verwendung dieses Verfahren sind
biokatalytische und/oder hormonelle Prozessen in Bö
den.
Aus der DE 198 55 881 ist ein Verfahren zur Aktivie
rung von Wasser bekannt. Dieses Verfahren basiert auf
der Anregung von z. B. Luftsauerstoff vom Triplett- in
den Singulett-Zustand. Die auf diese Weise im Sauer
stoff gespeicherte Energie kann in einem weiteren
Schritt, z. B. indem der Sauerstoff in das Wasser ein
geleitet wird, auf die Wassermoleküle übertragen wer
den (Quenching). Wie aus der PCT/EP99/09488 bekannt
ist, kommt es bei dieser Energieübertragung zu einer
Veränderung der Struktur der Wasserstoffbrückenbin
dungen, was anhand von Infrarotspektren an charakte
ristischen Bandenverschiebungen gezeigt werden konn
te. Eine Verwendung von aktiviertem Wässer (im fol
genden als "AquaNovalis" bezeichnet) in biokatalyti
schen Prozeßkreisläufen ist dagegen bis jetzt noch
nicht bekannt.
Die vorliegende Erfindung stellt sich daher die Auf
gabe, nun ein Verfahren bereitzustellen, mit dem die
gezielte Beschleunigung biokatalytischer und/oder
hormoneller Prozesse ermöglicht und in einfach zu
praktizierender Weise umzusetzen ist.
Diese Aufgabe wird durch das gattungsgemäße Verfahren
mit den Merkmalen des Anspruchs 1 gelöst. Die Un
teransprüche 2 bis 17 zeigen vorteilhafte Weiterbil
dungen des erfindungsgemäßen Verfahrens auf. Die Ver
wendungen des Verfahrens werden in den Ansprüchen 18
bis 39 gegeben.
Das erfindungsgemäße Verfahren beruht darauf, daß ei
ne Aktivierung des in einem wäßrigen Medium enthalte
nen Wassers mit Hilfe von Singulett-Sauerstöff durch
geführt wird. So kann das Wasser in dem Medium unmit
telbar behandelt werden, so daß die biokatalytischen
oder hormonellen Prozesse in dem Medium beschleunigt
werden. Zum anderen kann auch Wasser oder ein wäßri
ges Medium behandelt und anschließend zu dem Stoff
bzw. Material zugegeben werden, in dem die biokataly
tischen bzw. hormonellen Prozesse beschleunigt werden
sollen. Das so aktivierte Wasser wird im folgenden
auch als "AquaNovalis" bezeichnet.
Der Singulett-Sauerstoff kann dabei in einem gasför
migen, sauerstoffhaltigen Medium photochemisch er
zeugt werden und für die anschließende Aktivierung in
das wäßrige Medium eingeleitet werden. Auch eine Er
zeugung unmittelbar in einem sauerstoffhaltigen, wäß
rigen Medium ist möglich. Bevorzugt wird ein Photo
sensibilisator in das gasförmige, sauerstoffhaltige
Medium eingebracht, um eine sich anschließende Erzeu
gung von Singulett-Sauerstoff durch Bestrahlung auf
photochemischem Weg zu ermöglichen. Dieser Photosen
sibilisator ist bevorzugt ausgewählt aus wasserunlös
lichen Porphyrinen, Phthalocyaninen, Chlorinen, Te
traphenylporphyrinen, Benzoporphyrin-Derivaten, Pur
purinen, Pheophorbiden und deren Metallkomplexen. Be
sonders bevorzugt ist die Verwendung von Kupfer(II)-
Phthalocyanin, Rose Bengal und 5-Aminolävulinsäure
als Photosensibilisator.
Die Bestrahlung zum Starten der photochemischen Reak
tion kann dabei entweder durch künstliche Lichtquel
len und/oder Sonneneinstrahlung durchgeführt werden.
Bevorzugt kann die Aktivierung des Wassers diskonti
nuierlich in einstellbaren Zeitintervallen erfolgen.
Ebenso ist es möglich, daß die Aktivierung des Was
sers gleichzeitig mit den biokatalytischen und/oder
hormonellen Prozessen erfolgt. Vorzugsweise werden
die Biokatalysatoren und/oder Hormone vor der Umset
zung mit dem Material mit AquaNovalis vorbehandelt.
Die Dosierung des AquaNovalis hängt dabei von den je
weiligen biokatalytischen und/oder hormonellen Pro
zessen ab.
Das Verfahren zur Beschleunigung biokatalytischer
und/oder hormoneller Prozesse kann auch in Böden
durchgeführt. Hierbei sind vor allem Böden mit einem
Tongehalt über 15 Masse-% bevorzugt. Dabei kann das
Verfahren zur Einstellung des Redoxpotentials in Bö
den über das Verhältnis zwischen unbehandeltem und
aktiviertem Wasser (AquaNovalis) genutzt werden.
Durch Zugabe von AquaNovalis kommt es dabei zu einer
Erhöhung des Redoxpotentials.
Ebenso ist eine beschleunigte Nitrifikation bei Ver
wendung des AquaNovalis in Böden zu beobachten. Die
Verwendung des Verfahrens zur Anregung biokatalyti
scher und/oder hormoneller Prozesse kann sich ebenso
auf exogene wie endogene Enzyme enthaltende Materia
lien erstrecken. So wird beispielsweise die Glukosi
dase-, Laccase-, DMSO-Reduktase- und Dehydrogenase-
Aktivität angeregt.
Weitere Verwendungsfelder des vorliegenden Verfahrens
sind z. B. der Abbau von Kohlenwasserstoffen, die Ab
fallbehandlung, die Altlastensanierung, die Verwen
dung in Lebensmitteln sowie die Rohstoffgewinnung
durch biokatalytische Prozesse, sowie generell alle
biokatalytischen/hormonellen Prozesse, die in wäßri
gen Medien ablaufen.
Anhand der folgenden Beispiele und Figuren soll das
Verfahren näher erläutert werden, um weitere vorteil
hafte Weiterbildungen aufzuzeigen, ohne das Verfahren
dadurch einzuschränken.
Oxidations- und Reduktionsreaktionen im Boden bestim
men maßgeblich die Verfügbarkeit von Nährstoffen für
Pflanzen.
Von großer Bedeutung für die Intensität der Redukti
onsprozesse ist der Gehalt des Bodens an organischer
Substanz. Eine Überstauung des Bodens führt zum Ab
sinken des Redoxpotentials. Stellt man dem überstau
ten Boden wieder Sauerstoff zur Verfügung (wie in un
serem Versuch geschehen) laufen die oben genannten
Prozesse rückwärts ab. Durch den Anstieg des Redoxpo
tentials laufen nun Oxidationsprozesse ab.
Zur Durchführung des Versuches wurde Löß-Schwarzerde
vom Standort Bad Lauchstädt verwendet. Die Proben
stammen aus dem rAxp-Horizont (0-30 cm) einer Ver
suchsfläche, die jährlich mit 100 dt Stallmist ge
düngt wird. Die Bodenart wurde als stark toniger
Schluff beschrieben. Demnach setzt sich die Körnung
dieses Horizontes aus ca. 21% Ton, ca. 68% Schluff
und ca. 11% Sand zusammen. Der Gesamt-Kohlenstoff
gehalt (Ct) des Bodens betrug 3,04%, der Gesamt-
Stickstoffgehalt 0,26%. Der pH-Wert (CaCl2) beträgt
6,2.
Es wurden 200 g Boden in biogeochemischen Mikrokosmen
in 2 l destilliertem Wasser gelöst und während der
gesamten Versuchsdauer gerührt. Die Untersuchungen
wurden unter Laborbedingungen in biogeochemische Mi
krokosmen durchgeführt, da diese über geregelte Gas
phasen-, pH-, Temperatur- und Eh-Bedingungen verfügen
und eine Einstelluig quasi natürlicher Feldbedingun
gen dieser Parametr erlauben. Das Redoxpotential
dieser Bodensuspenion konnte durch Zugabe von Sauer
stoff bzw. Stickstoff reguliert werden. Vor Versuchs
beginn wurde mit Hilfe von Stickstoff (N2) ein Redox
potential von 0 mV eingestellt.
Nach der Einregulierung des Redoxpotentials wurden
jeweils zwei der vier Mikrokosmen kontinuierlich mit
AquaNovalis befeuchtete Luft bzw. mit deionisiertem
Wasserdampf befeuchtete Luft zugeführt.
Die Probenahme erfolgte einmal täglich über einen
Zeitraum von zwei Wochen. Aus jedem Mikrokosmos wur
den dabei je 30 ml Bodensuspension entnommen, zentri
fugiert und filtriert. Die Bodenlösungen wurden an
schließend am EPOS-Analyzer spektralphotometrisch auf
ihren Gehalt an NH4 +, NO3 - und NO2 - untersucht. Das Re
doxpotential sowie die Temperatur und der pH-Wert
wurden alle 15 min online gemessen.
In den ersten Tagen nach Versuchsbeginn konnte ein
relativ schneller Anstieg des Redoxpotentials beob
achtet werden.
Das Redoxpotential in den Mikrokosmen, denen mit
deionisiertem Wasser befeuchtete synthetische Luft
zugefügt wurde, stieg in den ersten neun Tagen konti
nuierlich an und erreichte bei ca. 550 mV einen
Gleichgewichtszustand.
In der Variante, bei der AquaNovalis verwendet wurde,
stieg das Redoxpotential deutlich schneller auf höhe
re Eh-Werte um 600 mV an (Fig. 1).
Der Versuch zeigt, daß durch AquaNovalis ein höheres
Redoxpotential bei Anwesenheit von Mikroorganismen
bzw. deren Biokatalysatoren erreichbar ist. Hierdurch
können biologische Umsetzungen beschleunigt werden.
Die Konzentration an Ammonium nimmt während der Ver
suchsdauer stark ab. Die Variante mit AquaNovalis
sinkt schneller ab als die andere Variante (Fig. 2).
Die Nitritkonzentration steigt bei beiden Varianten
in den ersten Tagen nach Versuchsbeginn an, sinkt
aber nach vier bzw. fünf Tagen und erreicht gegen
Null tendierende Konzentrationen (Fig. 3). Die AquaNo
valis-Variante zeigt in den ersten Tagen mehr als
doppelt so hohe Konzentrationen wie die anderen bei
den Varianten, weist dann aber ab dem vierten Tag ei
nen wesentlich schnelleren Konzentrationsabfall auf.
Die Nitratkonzentration stieg während der gesamten
Versuchsdauer in allen Varianten an. Die mit AquaNo
valis belüftete Variante wies zu Versuchsbeginn die
schnellste Konzentrationszunahme auf, zeigte aber ge
gen Ende des Versuches Konzentrationen, die unterhalb
der Nitratgehalte der anderen Variante liegt (Fig. 4).
Die Ammonium-, Nitrit- und Nitratkonzentrationsunter
schiede zwischen mit AquaNovalis und normalen Wasser
dampf durchlüftenden Mikrokosmen belegen die Be
schleunigung der Nitrifikation durch AquaNovalis.
Die beta-Glykosidase stellt ein exogenes Enzym dar,
welches dem Kohlenstoffkreislauf angehört und Kohlen
hydrate mit beta-D-glukosidischer Bindung hydroli
siert, in dem es die terminale beta-D-Glukose abspal
tet. So wird mit Hilfe der beta-Glukosidase die Cel
lulose über die Cellobiose bis hin zur Glukose zerlegt.
In jeweils 300 ml AquaNovalis bzw. deionisiertem Was
ser wurden jeweils 3 mg beta Glukosidase gelöst. Im
Teilversuch 1 (Fig. 5) wurden unmittelbar nach Zugabe
des Enzyms sowie nach 3 h und 6 h Proben genommen und
die beta-Glukosidaseaktivität nach HOFFMANN und DEDE
KEN (1965) bestimmt. Im Teilversuch 2 (Fig. 6) wurden
neben der beta-Glukosidase (Enzym, 3 mg/300 ml) noch
1,5 g Salicin als zuzügliche Energiequelle zugegeben
und die beta-Glukosidaseaktivität unmittelbar nach
Zugabe von Salicin und Enzym, nach 3 h und nach 6 h
vermessen.
Unmittelbar nach der Aktivierung erfolgte die Zugabe
des Enzyms (3 mg/300 ml). Nach 3 Tagen erfolgte die
Zugabe des Salicins. Unmittelbar danach und 3 h und 6 h
nach Salicinzugabe erfolgte die beta-
Glukosidasebestimmung.
Sämtliche Versuche wurden in jeweils 8 Wiederholungen
durchgeführt.
In Fig. 5 bleibt der Verlauf der Enzymaktivität in
der Referenz (deionisiertes Wasser) während des Ver
suchsverlaufes mit 748 µg Saligenin/ml/3 h am Ver
suchsbeginn und 714 bzw. 774 nach 3 bzw. 6 h relativ
konstant (leichte Zunahme um 3%).
In der Variante AquaNovalis kam es zu einer anfängli
chen starken Erhöhung der Enzymaktivität auf 882 µg
Saligenin/ml/3 h, was einer Erhöhung um 18% im Ver
gleich zum deionisierten Wasser entspricht. Aufgrund
einer fehlenden Energiequelle sinkt die beta-
Glukosidaseaktivität dann im Versuchsverlauf auf 699
bzw. 634 µg Saligenin/ml/3 h ab. Im gesamten Versuchsverlauf
kommt das einer Abnahme um 28% gleich.
In Fig. 6 nimmt bei der Referenz (deionisiertes Was
ser) die Enzymaktivität während des Versuchsverlaufes
von 376 µg Saligenin/ml/3 h auf 236 bzw. 183 µg Sali
genin/ml/3 h ab. Dies entspricht einer Gesamtabnahme
von 51%.
Die Variante AquaNovalis zeigte während des Versuchs
verlaufes eine starke Erhöhung der Enzymaktivität
(126% bei 0 h, 216% nach 3 h, 295% nach 6 h) im
Vergleich zur Referenz. Im Versuchsverlauf kam es zu
einer im Vergleich zur Variante AquaNovalis deutlich
langsameren Kinetik der Abnahme der Enzymaktivität
(851 µg Saligenin/ml/3 h nach 0 h, 747 µg Salige
nin/ml/3 h nach 3 h, 723 µg Saligenin/ml/3 h nach
6 h). Die Abnahme während des Versuchsverlaufes be
trug 15%.
Der Verlauf der Referenz in Fig. 7 mit deionisiertem
Wasser ist identisch zur Fig. 6. Auch 3 Tage nach Her
stellung zeigte AquaNovalis noch eine im Vergleich
zum deionisiertem Wasser deutlich erhöhte Enzymakti
vität (793 µg Saligenin/ml/3 h, 110% höhere Aktivi
tät als deionisiertes Wasser), die dann allerdings
nach 3 h und 6 h deutlich abnahm (530 µg Sali
genin/ml/3 h nach 3 h und 362 µg Saligenin/ml/3 h nach
6 h) aber immer noch deutlich höher als die Variante
deionisiertes Wasser (114% nach 3 h, 97% nach 6 h)
lag. Die Gesamtabnahme der Enzymaktivität bei AquaNo
valls betrug 54% während des Versuchsverlaufes.
Im Vergleich zur Originalbodenprobe zeigten alle
Schlammvarianten einen deutlichen Rückgang der mikro
biellen Biomasse. Von den Schlämmen zeigte die mit
Luftsauerstoff behandelte und die nicht befeuchtete
Variante ein gleiches Verhalten. In der mit befeuch
tetem Singulettsauerstoff behandelten Variante wurde
ein leichter aber nicht signifikanter Rückgang der
mikrobiellen Biomasse verzeichnet (zu geringe Stich
probenzahl für gesicherte Aussagt).
Im Vergleich zur Originalbodenprobe zeigten alle
Schlammvarianten einen deutlichen Anstieg der be
ta-Glukosidaseaktivität. Im Vergleich zur mit Luft
sauerstoff behandelten Variante zeigte auch hier die
mit nicht befeuchtetem Singulettsauerstoff behandelte
Variante einen leichten (nicht signifikanten) Anstieg
der beta-Glukosidaseaktivität. Deutlich ist dieser
Effekt in der Variante mit befeuchtetem Singulettsau
erstoff zu beobachten. Hier kommt es zu einer Erhö
hung der beta-Glukosidaseaktivität um 40% im Ver
gleich zum Originalboden bzw. 17% im Vergleich zur
mit Luftsauerstoff behandelten Variante (der eigent
lichen Null).
An den Schlämmen der Mikrokosmen wurden die Enzymak
tivität von Zellulosezersetzern (beta-Glukosidase)
und die mikrobielle Biomasse (DMSO-Reduktase) be
stimmt (s. Fig. 8). Im Vergleich zur Originalboden
probe zeigten alle Schlammvarianten einen deutlichen
Rückgang der mikrobiellen Biomasse. Von den Schlämmen
zeigte die mit Luftsauerstoff behandelte und die
nicht befeuchtete Variante ein gleiches Verhalten. In
der mit befeuchtetem Singulettsauerstoff behandelten
Variante wurde ein leichter aber nicht signifikanter
Rückgang der mikrobiellen Biomasse verzeichnet.
Fig. 9 zeigt den Verlauf der beta-Glukosidase
aktivität in Abhängigkeit von der zugegebenen Sauerstoffart
gemessen in Schlamm im Vergleich zur unbe
handelten Bodenprobe. Im Vergleich zur Originalboden
probe zeigten alle Schlammvarianten einen deutlichen
Anstieg der beta-Glukosidaseaktivität. Im Vergleich
zur mit Luftsauerstoff behandelten Variante zeigte
auch hier die mit nicht befeuchtetem Singulettsauer
stoff behandelte Variante einen leichten (nicht si
gnifikanten) Anstieg der beta-Glukosidaseaktivität.
Deutlich ist dieser Effekt in der Variante mit be
feuchtetem Singulettsauerstoff zu beobachten. Hier
kommt es zu einer Erhöhung der beta-
Glukosidaseaktivität um 40% im Vergleich zum Origi
nalboden bzw. 17% im Vergleich zur mit Luftsauerstoff
behandleten Variante (der eigentlichen Null).
Claims (39)
1. Verfahren zur Beschleunigung biokatalytischer
und/oder hormoneller Prozesse in einem Stoff,
dadurch gekennzeichnet, daß das in dem Stoff
enthaltene Wasser mit Singulett-Sauerstoff vor
oder während des Prozeßablaufs behandelt wird
oder ein wäßriges Medium mit Singulett-
Sauerstoff behandelt und der Stoff vor oder wäh
rend des Prozeßablaufs mit dem so behandelten
wäßrigen Medium behandelt wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeich
net, dass der Singulett-Sauerstoff in einem gas
förmigen, sauerstoffhaltigen Medium photoche
misch erzeugt wird und anschließend für die Ak
tivierung in den Stoff oder das wäßrige Medium
eingeleitet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeich
net, dass ein Photosensibilisator in das gasför
mige, sauerstoffhaltige Medium eingebracht wird
und durch Bestrahlung der Singulett-Sauerstoff
photochemisch erzeugt wird.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeich
net, dass der Photosensibilisator ausgewählt ist
aus wasserunlöslichen Porphyrinen, Phthalocyani
nen, Chlorinen, Tetraphenylporphyrinen, Benzo
porphyrin-Derivaten, Purpurinen, Pheophorbiden
und deren Metallkomplexen.
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeich
net, dass der Photosensibilisator ausgewählt ist
aus Kupfer(II)-Phthalo-cyanin, Rose Bengal und
5-Aminolävulinsäure.
6. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, dass für die Be
strahlung künstliche Lichtquellen und/oder Son
neneinstrahlung genutzt werden.
7. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, dass die Aktivie
rung des Wassers diskontinuierlich in einstell
baren Zeitintervallen erfolgt.
8. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, daß die Behandlung
des Stoffs bzw. des wäßrigen Mediums gleichzei
tig mit den biokatalytischen und/oder hormonel
len Prozessen erfolgt.
9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, dass die Biokataly
satoren und/oder Hormone mit behandeltem Wasser
vorbehandelt werden.
10. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, dass die Dosierung
des behandelten Wassers auf die biokatalytischen
und/oder hormonellen Prozesse abgestimmt wird.
11. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, daß Boden- bzw.
Substratfeuchte aktiviert wird, indem der Photo
sensibilisator auf der Oberfläche eines licht
leitenden Formkörpers in direktem Kontakt mit
der Boden-Substratfeuchte aufgebracht wird.
12. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, daß mit einem Photosensibilisator,
der auf oder in der Unterseite
eines flächigen transparenten Trägers (Glas oder
Polymer), der als Bodenabdeckung verwendet wird,
aufgebracht ist, die Luftfeuchte bzw. Kondens
wasser aktiviert wird.
13. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeich
net, daß als transparenter Träger ein wesentli
cher Teil eines Gewächshauses verwendet wird.
14. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, daß ein Photosensi
bilisator, der auf oder in der Innenwand eines
transparenten Bio-Reaktors aufgebracht ist, ver
wendet wird.
15. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, daß ein Photosensi
bilisator, der auf der Innenwand einer transpa
renten Wasserleitung aufgebracht ist, verwendet
wird.
16. Verfahren nach einem der Ansprüche 11 bis 15,
dadurch gekennzeichnet, daß durch Fluoreszenz
farbstoffe in den transparenten Elementen die
Spektralverteilung des transmittierten Lichts
verändert wird.
17. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprü
che, dadurch gekennzeichnet, daß ein Photosensi
bilisator, der auf der Innenseite der Wand eines
Bio-Reaktors oder auf einem Formkörper im Reak
tor aufgebracht ist, verwendet wird.
18. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Anregung biokatalytischer
und/oder hormoneller Prozesse in Böden oder
Pflanzsubstraten, beispielsweise Nährlösungen.
19. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Anregung biokatalytischer
und/oder hormoneller Prozesse in Böden mit einem
Tongehalt über 15 Massen-%.
20. Verwendung nach Anspruch 18 oder 19 zur Einstel
lung des Redoxpotentials in Böden.
21. Verwendung nach Anspruch 18 oder 19 zur Erhöhung
des Redoxpotentials in Böden.
22. Verwendung nach einem der Ansprüche 18 bis 21
zur Beschleunigung der Nitrifikation in Böden.
23. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Beschleunigung biokatalytischer
und/oder hormoneller Prozesse in exogene Enzyme
enthaltenden Proben.
24. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Beschleunigung biokatalytischer
und/oder hormoneller Prozesse in endogene Enzyme
enthaltenden Proben.
25. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Erhöhung der Glukosidaseaktivi
tät.
26. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Erhöhung der Laccaseaktivität.
27. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Erhöhung der DMSO-Reduktase-
Aktivität.
28. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Erhöhung der Dehydrogenase-
Aktivität.
29. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Beschleunigung des Abbaus von
Kohlenwasserstoffen, bei der Abfallbehandlung
und Altlastensanierung.
30. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 in Lebensmitteln.
31. Verwendung des Verfahrens nach einem der Ansprü
che 1 bis 17 zur Rohstoffgewinnung durch bioka
talytische Prozesse.
32. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 bei der Erzeugung oder
Verarbeitung von Lebensmitteln und Vorprodukten
(z. B. Hefen, Aromastoffen, Fermenten, Zucker).
33. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 zur Beschleunigung von
Gärprozessen.
34. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 bei der Erzeugung von
Futtermitteln.
35. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 bei der Erzeugung und
Verarbeitung von pharmazeutischen Produkten und
Vorprodukten.
36. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 bis der Erzeugung von
chemischen Produkten und Vorprodukten.
37. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 in der Bio-Technologie.
38. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 in der Land- und Forst
wirtschaft.
39. Verwendung des Verfahrens nach mindestens einem
der Ansprüche 1 bis 17 zur Beeinflussung von
biokatalytischen und/oder hormonellen Prozessen
in Lebewesen.
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