DE10052066A1 - Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor - Google Patents

Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor

Info

Publication number
DE10052066A1
DE10052066A1 DE10052066A DE10052066A DE10052066A1 DE 10052066 A1 DE10052066 A1 DE 10052066A1 DE 10052066 A DE10052066 A DE 10052066A DE 10052066 A DE10052066 A DE 10052066A DE 10052066 A1 DE10052066 A1 DE 10052066A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
paste
polymer
weight
screen
printable paste
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
DE10052066A
Other languages
English (en)
Inventor
Matthias Stiene
Birgit Von Tiedemann
Jamie Roders
Lucy Macgregor
Jerry Mcaleer
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
LifeScan Scotland Ltd
Original Assignee
Inverness Medical Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inverness Medical Ltd filed Critical Inverness Medical Ltd
Priority to DE10052066A priority Critical patent/DE10052066A1/de
Priority to MXPA02006101A priority patent/MXPA02006101A/es
Priority to IL15017501A priority patent/IL150175A/xx
Priority to AT01987692T priority patent/ATE266461T1/de
Priority to CA2394948A priority patent/CA2394948C/en
Priority to CZ20022136A priority patent/CZ20022136A3/cs
Priority to RU2002119393/04A priority patent/RU2225249C1/ru
Priority to DZ013245A priority patent/DZ3245A1/fr
Priority to EP01987692A priority patent/EP1246688B1/de
Priority to ES01987692T priority patent/ES2218465T3/es
Priority to AU21701/02A priority patent/AU780195B2/en
Priority to DE50102260T priority patent/DE50102260D1/de
Priority to PCT/EP2001/012073 priority patent/WO2002032559A1/de
Priority to DK01987692T priority patent/DK1246688T3/da
Priority to JP2002535792A priority patent/JP3939651B2/ja
Priority to PT01987692T priority patent/PT1246688E/pt
Priority to TR2004/01526T priority patent/TR200401526T4/xx
Priority to KR1020027007799A priority patent/KR100830855B1/ko
Priority to US10/168,876 priority patent/US6719923B2/en
Publication of DE10052066A1 publication Critical patent/DE10052066A1/de
Ceased legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08JWORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J5/00Manufacture of articles or shaped materials containing macromolecular substances
    • C08J5/20Manufacture of shaped structures of ion-exchange resins
    • C08J5/22Films, membranes or diaphragms
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D67/00Processes specially adapted for manufacturing semi-permeable membranes for separation processes or apparatus
    • B01D67/0002Organic membrane manufacture
    • B01D67/0009Organic membrane manufacture by phase separation, sol-gel transition, evaporation or solvent quenching
    • B01D67/0011Casting solutions therefor
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D67/00Processes specially adapted for manufacturing semi-permeable membranes for separation processes or apparatus
    • B01D67/0002Organic membrane manufacture
    • B01D67/0009Organic membrane manufacture by phase separation, sol-gel transition, evaporation or solvent quenching
    • B01D67/0013Casting processes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D69/00Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by their form, structure or properties; Manufacturing processes specially adapted therefor
    • B01D69/12Composite membranes; Ultra-thin membranes
    • B01D69/122Separate manufacturing of ultra-thin membranes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D69/00Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by their form, structure or properties; Manufacturing processes specially adapted therefor
    • B01D69/14Dynamic membranes
    • B01D69/141Heterogeneous membranes, e.g. containing dispersed material; Mixed matrix membranes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D69/00Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by their form, structure or properties; Manufacturing processes specially adapted therefor
    • B01D69/14Dynamic membranes
    • B01D69/141Heterogeneous membranes, e.g. containing dispersed material; Mixed matrix membranes
    • B01D69/1411Heterogeneous membranes, e.g. containing dispersed material; Mixed matrix membranes containing dispersed material in a continuous matrix
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D71/00Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
    • B01D71/06Organic material
    • B01D71/08Polysaccharides
    • B01D71/12Cellulose derivatives
    • B01D71/14Esters of organic acids
    • B01D71/16Cellulose acetate
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/001Enzyme electrodes
    • C12Q1/002Electrode membranes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2323/00Details relating to membrane preparation
    • B01D2323/06Specific viscosities of materials involved
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2323/00Details relating to membrane preparation
    • B01D2323/12Specific ratios of components used

Abstract

Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran, enthaltend wenigstens ein Polymeres, ein oder mehrere Lösungsmittel für das Polymere mit einem Siedepunkt von > 100 DEG C, ein oder mehrere Nichtlösungsmittel für das Polymere (Porenbildner) mit einem höheren Siedepunkt als das/die Lösungsmittel und einen hydrophilen Viskositätsmodifizierer.

Description

Die vorliegende Erfindung betrifft eine siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran, welche bei elektrochemischen Sensoren, insbesondere bei elektroche­ mischen Biosensoren, zur integrierten Vorbereitung von insbe­ sondere Vollblutproben verwendet werden kann.
Biosensoren finden bereits in einer Vielzahl diagnosti­ scher Verfahren, beispielsweise bei der Bestimmung der Kon­ zentration verschiedener Faktoren in Körperflüssigleiten, wie dem Blut, Anwendung. Angestrebt werden dabei Sensoren, die keine aufwendige Aufarbeitung der (Blut-)Probe erfordern, sondern bereits durch bloßes Auftragen der Körperflüssigkeit auf einen Teststreifen ein schnelles Ergebnis liefern. Dabei läuft eine spezifische biochemische Reaktion ab, wie bei­ spielsweise die enzymatische Umsetzung der zu bestimmenden Komponente, welche dann einen Elektronentransfer zwischen verschiedenen Elektroden (Arbeits- und Referenzelektroden) bewirkt, der quantitativ bestimmt werden kann.
Nachteilig an den meisten bekannten elektrochemischen Biosensoren ist, dass beim Auftragen des Blutes auf den dafür vorgesehenen Bereich des Teststreifens die ablaufende bioche­ mische Reaktion durch andere, im Blut enthaltene Bestandtei­ le, vor allem die roten Blutkörperchen (Erythrozyten), beein­ flusst wird. So ist beispielsweise bei hohen Hämatokritwerten (= Volumenanteil der Erythrozyten an der gesamten Blutmenge in Vol. Gew.-%) der mit Hilfe von herkömmlichen Blutglucose­ sensoren gemessene Glucosewert niedriger als der tatsächliche Wert. Diese Beeinträchtigung entsteht dadurch, dass die Erythrozyten durch Adsorption an der reaktiven Schicht des Biosensors die Diffusion der Glucose in diese und zur Elek­ trode beeinflussen und das Messsignal verringern.
Zur Lösung dieses Problems wurden verschiedene Membranen vorgeschlagen, die über der auf den Elektroden angeordneten Enzymschicht des Teststreifens aufgebracht werden, um die Erythrozyten von dieser fernzuhalten.
So beschreibt beispielsweise das US-Patent 5,658,444 ei­ ne Erythrozytenausschlussmembran für einen Sensor, welche aus einem wasserunlöslichen, hydrophoben Polymeren, einem wasser­ löslichen hydrophilen Polymeren und einem Erythrozyten­ aggregationsagens besteht und durch Aufsprühen auf die Ober­ fläche des Teststreifens hergestellt wird.
Nachteilig bei dieser Membran ist zum einen, dass der Porendurchmesser der Membran in Abhängigkeit der Sprühdistanz und des Aufsprühdruckes variiert. Außerdem bedeutet das Auf­ sprühen der Membran bei der Produktion des Teststreifens ei­ nen zusätzlichen, von der Herstellung des übrigen Teststrei­ fens verschiedenen und deshalb aufwendigen Arbeitsgang, was den Produktionsvorgang verkompliziert und damit verteuert.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es deshalb, eine Paste zur Herstellung einer porösen Membran zur Verfügung zu stellen, welche die genannten Nachteile nicht aufweist, indem sie während des Herstellungsprozesses des Biosensors durch ein sich in den übrigen Ablauf einfügendes Verfahren und des­ halb kostengünstig aufgebracht werden kann und eine Membran mit gleichbleibender Porengröße liefert.
Diese Aufgabe wird durch eine Paste für eine poröse Po­ lymermembran gemäß Anspruch 1 gelöst. Vorteilhafte Ausgestal­ tungen ergeben sich aus den Ansprüchen 2 bis 16.
Im folgenden wird die Erfindung anhand der Figuren er­ läutert, wobei
Fig. 1 schematisch den Aufbau eines Teststreifens mit der erfindungsgemäßen Membran zeigt,
Fig. 2 eine rheologische Charakteristik der erfindungs­ gemäßen Paste zeigt,
Fig. 3a eine elektronenmikroskopische Aufnahme einer Polymermembran mit unzureichend ausgebildeter Porenstruktur zeigt,
Fig. 3b eine elektronenmikroskopische Aufnahme der er­ findungsgemäßen Polymermembran mit gut ausgebildeter Poren­ struktur zeigt,
Fig. 4 die Messergebnisse zweier Biosensoren, wobei ei­ ner von ihnen mit einer erfindungsgemäßen Membran versehen ist, bei ansteigenden Hämatokritwerten im Vergleich zeigt,
die Fig. 5a bis 5c die klinische Performanz dreier Blutglucosesensoren im Vergleich zeigen.
In Fig. 1 ist der Aufbau eines Teststreifens mit der erfindungsgemäßen Polymermembran dargestellt. Auf einem Poly­ ester-Trägermaterial 1 befindet sich eine Elektrodenanordnung 2 in Form einer Kohlenstoffschicht, die wiederum teilweise von einer Isolierung 3 abgedeckt wird. Eine Enzym- und Media­ torschicht 4 ist auf dem Bereich der Elektrodenschicht ange­ ordnet, der von der Isolierung freigelassen wird. Im Falle eines Blutglucosesensors enthält diese Schicht beispielsweise das Enzym Glucoseoxidase und den Mediator Fe3+. Die erfindungsgemäße Polymermembran 5 ist über der Enzym- und Media­ torschicht 4 angeordnet. Das ganze wird durch eine Klebe­ schicht 6 und eine Deckelfolie 7 abgedeckt.
Bei der Massenherstellung von Biosensoren wird für das Aufdrucken der verschiedenen Schichten, wie Elektroden-, Iso­ lier- und Enzymschichten, das Siebdruckverfahren angewendet. Die vorliegende Erfindung stellt eine Membran zur Verfügung, die mit der gleichen Technik aufgebracht werden kann. Das hat einerseits den Vorteil, dass für das Aufdrucken der Membran und damit während des gesamten Herstellungsprozesses des Sen­ sors die gleiche Siebdruckvorrichtung verwendet werden kann, was bei der Massenproduktion enorme ökonomische Vorteile mit sich bringt. Zum anderen kann durch das Siebdruckverfahren reproduzierbar eine Membran gleichmäßiger Dicke und Porengrö­ ße hergestellt werden, was mit den anderen Methoden, wie Auf­ spinnen, Eintauchen oder Aufsprühen nicht gewährleistet ist.
Damit die zur Herstellung der Polymermembran verwendete Paste durch Siebdruck aufgebracht werden kann, müssen das oder die darin enthaltenen Lösungsmittel für das Polymere ei­ nen möglichst hohen Siedepunkt (über 100°C) aufweisen, um das vorzeitige Trocknen des Materials in der Druckmaschine zu vermeiden. Außerdem enthält die Paste ein Nichtlösungsmittel für das Polymere, das als Porenbildner fungiert und einen hö­ heren Siedepunkt als das oder die verwendeten Lösungsmittel aufweist.
Zudem muss die Paste eine geeignete Viskosität (30.000-­ 50.000 cpi) besitzen, um einen gleichmäßigen Fluss durch das Sieb während des Aufdruckens zu gewährleisten. Bevorzugt ver­ ringert sich die Viskosität der Paste bei Einwirkung von Scherkräften, wie in der rheologischen Charakteristik in Fig. 2 dargestellt.
Als Polymeres wird in der erfindungsgemäßen Paste bevor­ zugt Zelluloseacetat (50 kDa) verwendet. Es ist bevorzugt mit einem Anteil von etwa 8 Gew.-% in der siebdruckfähigen Paste enthalten. Außerdem kann als weiteres Polymeres Zelluloseni­ trat mit einem Anteil von bis zu 10 Gew.-% enthalten sein.
Als Lösungsmittel für das Polymere können beispielsweise 1,4-Dioxan (Siedepunkt 102°C) und/oder 4-Hydroxymethyl­ pentanon (Siedepunkt 165°C) verwendet werden. Eine bevorzug­ te Zusammensetzung enthält 0-20 Gew.-%, bevorzugter 20 Gew.-%, 1,4-Dioxan und 0-70 Gew.-%, bevorzugter 56 Gew.-%, 4-Hydroxymethylpentanon, wobei das 4-Hydroxymethylpentanon alternativ durch Ethylacetat oder Ethylenglycoldiacetat er­ setzt sein kann.
Es stellte sich heraus, dass als Porenbildner für die siebdruckfähige Membranpaste langkettige Alkohole mit, einem Siedepunkt von < 150°C geeignet sind; bevorzugt wird n- Octanol, welches einen Siedepunkt von 196°C aufweist, ver­ wendet. Es sollte mit einem Anteil von 5-20 Gew.-%, bevor­ zugt 12 Gew.-%, enthalten sein.
Als Viskositätsmodifizierer werden beispielsweise hydro­ phile Kiesel-Xerogele oder äquivalente "Fumed Silicas" verwen­ det. Sie sollten mit einem Anteil von 1 bis 10 Gew.-% der siebdruckfähigen Paste zugesetzt werden. Bevorzugt wird hy­ drophiles Cab-O-Sil (Handelsbezeichnung eines Kiesel- Xerogels, vertrieben durch das Unternehmen Cabot) mit einem Anteil von 4 Gew.-% verwendet.
Außerdem können weitere Zusatzstoffe, wie Tween 20, Tri­ ton X, Silvet 7600 oder 7280, Laurylsulfat (SDS), andere De­ tergenzien sowie Polyole, wie Glycerol, oder hydrophile Poly­ mere, wie Polyvinylpyrolidon (PVP) bzw. Vinylpyrolidon- Vinylacetat-Copolymere (PVP/VA) der erfindungsgemäßen Paste zugesetzt werden.
Der Zusatz eines oder mehrerer dieser Zusatzstoffe ist nicht obligatorisch für die Herstellung der Membran; es zeig­ te sich jedoch, dass sie das Benetzen der Membran verbessern und die Sensorantwort beschleunigen können. Bevorzugt wird PVP/VA oder PVP mit einem Anteil von 0,1 Gew.-% in der sieb­ druckfähigen Paste verwendet.
Nach dem Aufbringen einer gleichmäßigen Schicht der Druckpaste auf ein geeignetes Substrat bildet sich die Mem­ bran im Trocknungsprozess. Es bildet sich eine poröse Schicht und kein geschlossener Film, da die verwendeten Lösungsmittel einen niedrigeren Siedepunkt besitzen als der Porenbildner; entsprechend schnell verdampfen die Lösungsmittel und das Zelluloseacetat-Polymere fällt in dem verbliebenen Film des Porenbildners aus.
In Verbindung mit einem Biosensor darf in dem Trocknungsprozess jedoch nicht eine beliebig hohe Temperatur verwendet werden, da bei zu hohen Temperaturen die verwende­ ten Enzyme/Proteine denaturiert werden. In Verbindung mit einem Biosensor zur Bestimmung von Glucose im Vollblut wurden mit einer Trocknungstemperatur von etwa 70°C die besten Er­ gebnisse erzielt. Entsprechend sollten die Siedepunkte der verwendeten Lösungsmittel und Porenbildner ausgewählt werden.
Einen entscheidenden Faktor für die Porenbildung spielt der verwendete Viskositätsmodifizierer, der zusammen mit dem Porenbildner ein Gel bildet, um die Polymerstruktur zu stabi­ lisieren. Bei den verwendeten Substanzen entsteht das Gel durch die Wechselwirkung zwischen den OH-Gruppen des Kiesel- Xerogels und dem langkettingen Alkohol (z. B. Octanol). Die Menge und die Verteilung des Gels, das während des Trocknungsprozesses entsteht, entscheidet schließlich über die Größe und die Form der sich ausbildenden Poren.
Bei Verwendung zu geringer Mengen an Viskositätsmodifi­ zierer (< 1 Gew.-%) erhält man eine Membran mit nur unzurei­ chend ausgebildeter Porenstruktur, wie sie in Fig. 3a wie­ dergegeben ist.
Ohne Zugabe eines Viskositätsmodifizierers bildet sich aus dem Lösungsmitteln und dem Porenbildner eine Emulsion, da der Porenbildner alleine nicht in der Lage ist, das Poly­ merskelett zu stabilisieren. Als Resultat erhält man einen weißen, glatten und unstrukturierten Film mit eingeschlosse­ nem Porenbildner, der keinen lateralen Flüssigkeitstransport erlaubt. Im Vergleich dazu erhält man einen klaren Film, wenn kein Porenbildner in der Paste verwendet wird.
Entsprechend der obigen Ausführung ist die Differenz der Siedepunkte zwischen Lösungsmittel und Porenbildner neben der Stabilisierung des Polymerskeletts durch den Viskositätsmodi­ fizierer von Bedeutung für die Ausbildung einer geeigneten Membran. Hierbei sollte die Differenz etwa 30°C betragen, damit im Trocknungsprozess ein Film ausgebildet wird, der ei­ ne ausreichend hohe Konzentration an Porenbildner enthält, in dem das Membranpolymer ausfallen kann. Bei geringeren Siede­ punktsdifferenzen beginnt der Porenbildner zu verdampfen, be­ vor ein kritisches Verhältnis zwischen Lösungsmittel und Po­ renbildner erreicht wird, welches das Ausfallen des Membran­ polymers bewirkt.
Nach Aufdrucken der siebdruckfähigen Paste mit der zu­ vor beschriebenen Zusammensetzung und Verdampfen des Lösungs­ mittels bildet sich durch Ablagerung der Zelluloseester eine Membran mit einer durchschnittlichen Porengröße von 0,1 bis 2 µm, wobei die Porengröße durch die verwendete Menge des lang­ kettigen Alkohols beeinflusst werden kann. Eine elektronenmi­ kroskopische Aufnahme der Membran ist in Fig. 3b wiedergege­ ben. Da die Erythrozyten eine durchschnittliche Größe von 8 bis 10 µm aufweisen, werden sie durch die Membran von der En­ zymschicht zurückgehalten, während das Plasma ungehindert passieren kann. Zusätzlich trägt die Membran zur mechanischen Stabilität der Enzymschicht bei und verhindert, dass sich das Enzym beim Auftragen der Blutprobe von der Elektrode ablöst und dann nicht mehr für die elektrochemische Reaktion zur Verfügung steht.
In Fig. 4 wird anhand einer Messreihe verdeutlicht, dass bei konstanter Glucosekonzentration der mit einer erfin­ dungsgemäßen Membran versehene Teststreifen im Gegensatz zu einem Teststreifen ohne Membran bei steigenden Hämatokritwer­ ten gleichbleibende Ergebnisse liefert, während bei dem Test­ streifen ohne Membran die Antwort bei steigender Erythro­ zytenkonzentration abnimmt. Aufgrund der erhöhten Diffusions­ barriere zwischen der Enzymschicht und der Blutprobe ist die Antwort bei dem Sensor mit Membran insgesamt etwas verrin­ gert.
Die Erfindung wird anhand der folgenden Beispiele ver­ deutlicht.
Herstellung der Druckpaste
Entsprechend den in den folgenden Beispielen angegebenen Mengenverhältnissen wird eine Mischung aus dem Lösungsmittel (z. B. Hydroxymethylpenanon, Dioxan) und dem Porenbildner (z. B. Octanol) hergestellt, damit eine gleichmäßige Vertei­ lung beider Substanzen gewährleistet ist. Im nächsten Schritt werden alle Additive (z. B. PVP/VA) zugefügt und, falls erfor­ derlich, mit Hilfe von Ultraschall aufgelöst. Anschließend wird das Membranpolymer (Zelluloseactat 50 kDa) zügig unter das zuvor hergestellte Lösungsmittel gemischt, bis eine gleichmäßige Suspension entsteht. Diese Suspension rollt für 48 h in einem verschlossenen Behälter bis ein klares Gel ent­ steht, dem der Viskositätsmodifizierer (z. B. Cab-O-Sil) zu­ gesetzt werden kann. Die fertige Druckpaste rollt für weiter 24 h, um eine gleichmäßige Verteilung des Viskositätsmodifi­ zierers zu gewährleisten.
Beispiel 1 Polymer(e)
Zelluloseacetat (Mw 30000): 7,5 Gew.-%
Lösungsmittel
Ethylenglycoldiacetat (Sp 186°C): 65,5 Gew.-%
Porenbildner
n-Decanol (Sp 231°C): 25,0 Gew.-%
Viskositätsmodifizierer
Cab-O-Sil: 2,0 Gew.-%
Beispiel 2 Polymer(e)
Zelluloseacetat (Mw 50000): 8,0 Gew.-%
Lösungsmittel
1,4-Dioxan (Sp 102°C): 35,0 Gew.-%
Ethylacetat (Sp 154°C): 35,0 Gew.-%
Porenbildner
n-Octanol (Sp 196°C): 18,0 Gew.-%
Viskositätsmodifizierer
Cab-O-Sil: 4,0 Gew.-%
Beispiel 3 Polymer(e)
Zelluloseacetat (Mw 50.000): 8,0 Gew.-%
Lösungsmittel
1,4-Dioxan (Sp 102°C): 20,0 Gew.-%
4-Hydroxymethylpentanon (Sp 165°C): 56,0 Gew.-%
Porenbildner
n-Octanol (Sp 196°C): 12,0 Gew.-%
Viskositätsmodifizierer
Cab-O-Sil: 4,0 Gew.-%
Additive
PVP/VA: 0,1 Gew.-%
Fig. 5 zeigt die klinische Performanz von Blutglucose­ sensoren
  • a) ohne Polymermembran
  • b) mit Polymermembran (Zusammensetzung gemäß Beispiel 2)
  • c) mit Polymermembran (Zusammensetzung gemäß Beispiel 3).
Bei den vergleichenden klinischen Untersuchungen wurden die Messergebnisse der drei unterschiedlichen Sensortypen mit den Messergebnissen der Referenzmethode (YSI Model 2300 Stat Plus) verglichen und die prozentuale Abweichung über die Hä­ matokritwerte der einzelnen Blutproben aufgetragen. Im Ideal­ fall ergibt sich eine Messsgerade horizontal zur x-Achse. Die Steigung dieser Messgeraden, welche in Tabelle 1 wiedergege­ ben ist, gibt Aufschluss über die Hämatokritinterferenz des verwendeten Sensorsystems.
Tabelle 1
Die Daten lassen eindeutig die überlegene Performanz des Sensorsystems mit der bevorzugten Membran (Zusammensetzung gemäß Beispiel 3) erkennen. Diese Verbesserung wird durch die Separation von Vollblut und Plasma unmittelbar vor der Elek­ trode erreicht, da sich die Nernstsche Diffusionsschicht vor der Elektrode nicht mehr in den Bereich mit Erythrozyten aus­ dehnt und daher auch nicht mehr durch unterschiedliche Häma­ tokritwerte beeinflußt werden kann.
In den folgenden Vergleichsbeispielen werden Druckpasten beschrieben, bei denen keine geeignete Abstimmung zwischen dem Porenbildner, den Lösungsmitteln und dem Viskositätsmodi­ fizierer besteht.
Vergleichsbeispiel 1 Polymer(e)
Zelluloseacetat (Mw 50.000): 8,0 Gew.-%
Lösungsmittel
Ethylenglycoldiacetat (Sp 186°C): 76,0 Gew.-%
Porenbildner
n-Octanol (Sp 196°C): 12,0 Gew.-%
Viskositätsmodifizierer
Cab-O-Sil M5 (hydrophil): 4,0 Gew.-%
Additive
PVP/VA: 0,1 Gew.-%
Vergleichsbeispiel 2 Polymer(e)
Zelluloseacetat (Mw 50.000): 8,0 Gew.-%
Lösungsmittel
1,4-Dioxan (Sp 102°C): 20,0 Gew.-%
4-Hydroxymethylpentanon (Sp 165°C): 56,0 Gew.-%
Porenbildner
n-Octanol (Sp 196°C): 12,0 Gew.-%
Viskositätsmodifizierer
Cab-O-Sil TS720 (hydrophob): 4,0 Gew.-%
Additive
PVP/VA: 0,1 Gew.-%
Vergleichsbeispiel 3 Polymer(e)
Zelluloseacetatpropionat (Mw 75.000): 8,0 Gew.-%
Lösungsmittel
1,4-Dioxan (Sp 102°C): 20,0 Gew.-%
4-Hydroxymethylpentanon (Sp 165°C): 56,0 Gew.-%
Porenbildner
n-Octanol (Sp 196°C): 12,0 Gew.-%
Viskositätsmodifizierer
Cab-O-Sil M5 (hydrophil): 4,0 Gew.-%
Additive
PVP/VA: 0,1 Gew.-%
In Vergleichsbeispiel 1 wird aufgrund der zu geringen Differenz der Siedepunkte von in der Druckpaste verwendetem Lösungsmittel (Ethylenglycoldiacetat) und Porenbildner (n- Octanol) keine poröse Membran ausgebildet. Wird hingegen n- Decanol als Porenbildner verwendet (wie in Beispiel 1 be­ schrieben) erhält man eine poröse Membran nach dem Trocknungsprozess, da der Siedepunkt zwischen dem Lösungsmit­ tel und dem Porenbildner ausreichend groß ist.
In Vergleichsbeispiel 2 findet aufgrund der Verwendung von hydrophobem Cab-O-Sil, welches nicht in der Lage ist, mit den OH-Gruppen des Porenbildners zu reagieren, nur eine unzu­ reichende Gelbildung zwischen dem Porenbildner und dem Visko­ sitätsmodifizierer und somit keine ausreichende Stabilisie­ rung des Polymerskeletts statt. Dadurch wird die Bildung ei­ ner porösen Membran verhindert.
Auch in Vergleichsbeispiel 3, wo das verwendete Polymere (Zelluloseacetatpropionat) eine zu hohe Löslichkeit in dem Porenbildner aufweist, wird keine poröse Membran ausgebildet.

Claims (16)

1. Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran, enthaltend wenigstens ein Polymeres, ein oder mehrere Lösungsmittel für das Polymere mit einem Siedepunkt von < 100°C, ein oder mehrere Nichtlösungsmittel (Porenbild­ ner) für das Polymere mit einem höheren Siedepunkt als das/die Lösungsmittel und einen hydrophilen Viskositätsmodi­ fizierer.
2. Siebdruckfähige Paste gemäß Anspruch 1, dadurch ge­ kennzeichnet, dass die Differenz der Siedepunkte von Lösungs­ mittel und Porenbildner wenigstens 30°C beträgt.
3. Siebdruckfähige Paste gemäß Anspruch 1 oder 2, da­ durch gekennzeichnet, dass die Paste als Polymeres Zellulose­ acetat enthält.
4. Siebdruckfähige Paste nach Anspruch 3, dadurch ge­ kennzeichnet, dass die Paste als Lösungsmittel 1,4-Dioxan und/oder 4-Hydroxymethylpentanon und/oder Ethylacetat ent­ hält.
5. Siebdruckfähige Paste nach wenigstens einem der An­ sprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Paste als Porenbildner einen langkettigen Alkohol enthält.
6. Siebdruckfähige Paste nach Anspruch 5, dadurch ge­ kennzeichnet, dass die Paste als Porenbildner n-Octanol ent­ hält.
7. Siebdruckfähige Paste nach Anspruch 6, dadurch ge­ kennzeichnet, dass n-Octanol mit einem Anteil von 5-20 Gew.-% enthalten ist.
8. Siebdruckfähige Paste nach wenigstens einem der vor­ hergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Paste als Viskositätsmodifizierer (hydrophiles) Kiesel-Xerogel ent­ hält.
9. Siebdruckfähige Paste gemäß Anspruch 8, dadurch ge­ kennzeichnet, dass das Kiesel-Xerogel mit einem Anteil von 1­ -10 Gew.-% enthalten ist.
10. Siebdruckfähige Paste nach wenigstens einem der vor­ hergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Paste außerdem Vinylpyrolidon-Vinylacetat-Copolymere (PVP/VA) und/oder Polyvinylpyrolidon (PVP) enthält.
11. Siebdruckfähige Paste nach Anspruch 10, dadurch ge­ kennzeichnet, dass das PVP/VA bzw. PVP mit einem Anteil von 0,1 Gew.-% enthalten ist.
12. Siebdruckfähige Paste nach wenigstens einem der vor­ hergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Paste 8 Gew.-% Zelluloseacetat, 12 Gew.-% n-Octanol, 20 Gew.-% 1,4- Dioxan, 56 Gew.-% 4-Hydroxymethylpentanon oder Ethylacetat, 4 Gew.-% Kiesel-Xerogel und 0,1 Gew.-% PVP/VA, enthält.
13. Verfahren zur Herstellung einer siebdruckfähigen Pa­ ste, in dem man
eine Mischung aus einem oder mehreren Lösungsmittel(n) für ein Polymeres und einem oder mehreren Nichtlösungsmit­ tel(n) für ein Polymeres (Porenbildner) herstellt,
das Polymere bis zum Entstehen einer gleichmäßigen Sus­ pension untermischt,
die Suspension bis zum Entstehen eines klaren Gels rollt,
einen hydrophilen Viskositätsmodifizierer zugibt und
das ganze bis zur gleichmäßigen Verteilung des Viskosi­ tätsmodifiziereres rollt.
14. Verwendung der Paste nach wenigstens einem der An­ sprüche 1 bis 12 zur Herstellung einer porösen Polymermem­ bran.
15. Verwendung gemäß Anspruch 14, wobei die Polymermem­ bran in einen Biosensor-Teststreifen eingebracht wird.
16. Verwendung gemäß Anspruch 15, dadurch gekennzeich­ net, dass der Biosensor zur Messung der Blutglucosekonzentra­ tion ausgebildet ist.
DE10052066A 2000-10-19 2000-10-19 Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor Ceased DE10052066A1 (de)

Priority Applications (19)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10052066A DE10052066A1 (de) 2000-10-19 2000-10-19 Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor
MXPA02006101A MXPA02006101A (es) 2000-10-19 2001-10-18 Pasta estampable con estarcido para producir una membrana de polimero porosa para un biosensor.
IL15017501A IL150175A (en) 2000-10-19 2001-10-18 Paste which can undergo screen printing for producing a porous polymer membrane for a sensor
AT01987692T ATE266461T1 (de) 2000-10-19 2001-10-18 Siebdruckfähige paste zur herstellung einer porösen polymermembran für einen biosensor
CA2394948A CA2394948C (en) 2000-10-19 2001-10-18 Screen-printable paste for producing a porous polymer membrane for a biosensor
CZ20022136A CZ20022136A3 (cs) 2000-10-19 2001-10-18 Pasta pro sítotisk pro výrobu porézní polymerní membrány boisenzoru
RU2002119393/04A RU2225249C1 (ru) 2000-10-19 2001-10-18 Паста, пригодная для трафаретной печати, для получения пористой полимерной мембраны для биосенсора
DZ013245A DZ3245A1 (fr) 2000-10-19 2001-10-18 Pate pouvant etre imprimee par serigraphie, utilisee pour produire une membrane polymere poreuse pour un biodetecteur
EP01987692A EP1246688B1 (de) 2000-10-19 2001-10-18 Siebdruckfähige paste zur herstellung einer porösen polymermembran für einen biosensor
ES01987692T ES2218465T3 (es) 2000-10-19 2001-10-18 Pasta aplicable por serigrafia para la fabricacion de una membrana polimera porosa para un biosensor.
AU21701/02A AU780195B2 (en) 2000-10-19 2001-10-18 Paste, which can undergo screen printing, for producing a porous polymer membrane for a biosensor
DE50102260T DE50102260D1 (de) 2000-10-19 2001-10-18 Siebdruckfähige paste zur herstellung einer porösen polymermembran für einen biosensor
PCT/EP2001/012073 WO2002032559A1 (de) 2000-10-19 2001-10-18 Siebdruckfähige paste zur herstellung einer porösen polymermembran für einen biosensor
DK01987692T DK1246688T3 (da) 2000-10-19 2001-10-18 Pasta, velegnet til silketryk, til fremstilling af en porös polymermembran til en biosensor
JP2002535792A JP3939651B2 (ja) 2000-10-19 2001-10-18 バイオセンサー用の多孔質高分子膜を製造するためのスクリーン印刷可能なペースト材
PT01987692T PT1246688E (pt) 2000-10-19 2001-10-18 Pasta com capacidade para impressao serigrafica para a producao de uma membrana polimerica porosa para um biosensor
TR2004/01526T TR200401526T4 (tr) 2000-10-19 2001-10-18 Bir biyosensör için gözenekli bir polimer membranın üretimi için serigrafiye uygun macun.
KR1020027007799A KR100830855B1 (ko) 2000-10-19 2001-10-18 바이오센서용 다공성 중합체 막 제조용의 스크린 인쇄 가능한 페이스트
US10/168,876 US6719923B2 (en) 2000-10-19 2001-10-18 Paste, which can undergo screen printing for producing a porous polymer membrane for a biosensor

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10052066A DE10052066A1 (de) 2000-10-19 2000-10-19 Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE10052066A1 true DE10052066A1 (de) 2002-05-29

Family

ID=7660463

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE10052066A Ceased DE10052066A1 (de) 2000-10-19 2000-10-19 Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor
DE50102260T Expired - Lifetime DE50102260D1 (de) 2000-10-19 2001-10-18 Siebdruckfähige paste zur herstellung einer porösen polymermembran für einen biosensor

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE50102260T Expired - Lifetime DE50102260D1 (de) 2000-10-19 2001-10-18 Siebdruckfähige paste zur herstellung einer porösen polymermembran für einen biosensor

Country Status (18)

Country Link
US (1) US6719923B2 (de)
EP (1) EP1246688B1 (de)
JP (1) JP3939651B2 (de)
KR (1) KR100830855B1 (de)
AT (1) ATE266461T1 (de)
AU (1) AU780195B2 (de)
CA (1) CA2394948C (de)
CZ (1) CZ20022136A3 (de)
DE (2) DE10052066A1 (de)
DK (1) DK1246688T3 (de)
DZ (1) DZ3245A1 (de)
ES (1) ES2218465T3 (de)
IL (1) IL150175A (de)
MX (1) MXPA02006101A (de)
PT (1) PT1246688E (de)
RU (1) RU2225249C1 (de)
TR (1) TR200401526T4 (de)
WO (1) WO2002032559A1 (de)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2305102A1 (de) 2000-12-19 2011-04-06 Lifescan Scotland Ltd Analytenmessung

Families Citing this family (77)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6036924A (en) 1997-12-04 2000-03-14 Hewlett-Packard Company Cassette of lancet cartridges for sampling blood
US6391005B1 (en) 1998-03-30 2002-05-21 Agilent Technologies, Inc. Apparatus and method for penetration with shaft having a sensor for sensing penetration depth
US20050103624A1 (en) 1999-10-04 2005-05-19 Bhullar Raghbir S. Biosensor and method of making
US8641644B2 (en) 2000-11-21 2014-02-04 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means
WO2002100254A2 (en) 2001-06-12 2002-12-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for lancet launching device integrated onto a blood-sampling cartridge
CA2448905C (en) 2001-06-12 2010-09-07 Pelikan Technologies, Inc. Blood sampling apparatus and method
US9427532B2 (en) 2001-06-12 2016-08-30 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US9226699B2 (en) 2002-04-19 2016-01-05 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface
US8337419B2 (en) 2002-04-19 2012-12-25 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
CA2448902C (en) 2001-06-12 2010-09-07 Pelikan Technologies, Inc. Self optimizing lancing device with adaptation means to temporal variations in cutaneous properties
AU2002344825A1 (en) 2001-06-12 2002-12-23 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for improving success rate of blood yield from a fingerstick
ES2352998T3 (es) 2001-06-12 2011-02-24 Pelikan Technologies Inc. Accionador eléctrico de lanceta.
US9795747B2 (en) 2010-06-02 2017-10-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Methods and apparatus for lancet actuation
US7981056B2 (en) 2002-04-19 2011-07-19 Pelikan Technologies, Inc. Methods and apparatus for lancet actuation
US7025774B2 (en) 2001-06-12 2006-04-11 Pelikan Technologies, Inc. Tissue penetration device
US7229458B2 (en) 2002-04-19 2007-06-12 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8221334B2 (en) 2002-04-19 2012-07-17 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US7297122B2 (en) 2002-04-19 2007-11-20 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7717863B2 (en) 2002-04-19 2010-05-18 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7175642B2 (en) 2002-04-19 2007-02-13 Pelikan Technologies, Inc. Methods and apparatus for lancet actuation
US9314194B2 (en) 2002-04-19 2016-04-19 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US7491178B2 (en) 2002-04-19 2009-02-17 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8372016B2 (en) 2002-04-19 2013-02-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US7909778B2 (en) 2002-04-19 2011-03-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8360992B2 (en) 2002-04-19 2013-01-29 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US9248267B2 (en) 2002-04-19 2016-02-02 Sanofi-Aventis Deustchland Gmbh Tissue penetration device
US7371247B2 (en) 2002-04-19 2008-05-13 Pelikan Technologies, Inc Method and apparatus for penetrating tissue
US7674232B2 (en) 2002-04-19 2010-03-09 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7331931B2 (en) 2002-04-19 2008-02-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7892183B2 (en) 2002-04-19 2011-02-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US7232451B2 (en) 2002-04-19 2007-06-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US9795334B2 (en) 2002-04-19 2017-10-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US8267870B2 (en) 2002-04-19 2012-09-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation
US7547287B2 (en) 2002-04-19 2009-06-16 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7648468B2 (en) 2002-04-19 2010-01-19 Pelikon Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8579831B2 (en) 2002-04-19 2013-11-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US7976476B2 (en) 2002-04-19 2011-07-12 Pelikan Technologies, Inc. Device and method for variable speed lancet
US8702624B2 (en) 2006-09-29 2014-04-22 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Analyte measurement device with a single shot actuator
US7291117B2 (en) 2002-04-19 2007-11-06 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7713214B2 (en) 2002-04-19 2010-05-11 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device with optical analyte sensing
US8784335B2 (en) 2002-04-19 2014-07-22 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Body fluid sampling device with a capacitive sensor
US7901362B2 (en) 2002-04-19 2011-03-08 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
ES2290507T3 (es) * 2002-10-30 2008-02-16 Lifescan Scotland Ltd Estaciones de refrigeracion para uso en un proceso de impresion de bobina para la fabricacion de sensores electromecanicos.
US7244264B2 (en) 2002-12-03 2007-07-17 Roche Diagnostics Operations, Inc. Dual blade lancing test strip
US8574895B2 (en) 2002-12-30 2013-11-05 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels
EP2238892A3 (de) 2003-05-30 2011-02-09 Pelikan Technologies Inc. Vorrichtung zur Entnahme von Körperflüssigkeit
US7850621B2 (en) 2003-06-06 2010-12-14 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US20040251132A1 (en) * 2003-06-06 2004-12-16 Leach Christopher Philip Reduced volume strip
US7462265B2 (en) * 2003-06-06 2008-12-09 Lifescan, Inc. Reduced volume electrochemical sensor
WO2006001797A1 (en) 2004-06-14 2006-01-05 Pelikan Technologies, Inc. Low pain penetrating
JP4480672B2 (ja) 2003-06-19 2010-06-16 アークレイ株式会社 絶縁膜に開口部を設けた分析用具
CN1846131B (zh) 2003-06-20 2012-01-18 霍夫曼-拉罗奇有限公司 制备窄的均匀试剂条的方法和试剂
WO2005033659A2 (en) 2003-09-29 2005-04-14 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for an improved sample capture device
WO2005037095A1 (en) 2003-10-14 2005-04-28 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for a variable user interface
US8668656B2 (en) 2003-12-31 2014-03-11 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture
US7822454B1 (en) 2005-01-03 2010-10-26 Pelikan Technologies, Inc. Fluid sampling device with improved analyte detecting member configuration
EP1751546A2 (de) 2004-05-20 2007-02-14 Albatros Technologies GmbH &amp; Co. KG Bedruckbares wassergel für biosensoren
WO2005120365A1 (en) 2004-06-03 2005-12-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for a fluid sampling device
US9775553B2 (en) 2004-06-03 2017-10-03 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for a fluid sampling device
US7569126B2 (en) 2004-06-18 2009-08-04 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for quality assurance of a biosensor test strip
WO2006042304A1 (en) 2004-10-12 2006-04-20 Bayer Healthcare Llc Concentration determination in a diffusion barrier layer
JP4643222B2 (ja) * 2004-10-27 2011-03-02 日機装株式会社 バイオセンサーおよびその製造方法
US8652831B2 (en) 2004-12-30 2014-02-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for analyte measurement test time
US8744546B2 (en) * 2005-05-05 2014-06-03 Dexcom, Inc. Cellulosic-based resistance domain for an analyte sensor
US9386944B2 (en) 2008-04-11 2016-07-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for analyte detecting device
US20090294302A1 (en) * 2008-05-28 2009-12-03 John Pasqua Use of Alginate to Reduce Hematocrit Bias in Biosensors
US9375169B2 (en) 2009-01-30 2016-06-28 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system
US8025788B2 (en) * 2009-04-24 2011-09-27 Lifescan Scotland Limited Method for manufacturing an enzymatic reagent ink
US20100273249A1 (en) * 2009-04-24 2010-10-28 Lifescan Scotland Limited Analytical test strips
KR101239219B1 (ko) * 2009-10-15 2013-03-06 한국전자통신연구원 바이오 칩 및 바이오 칩 검출 방법
US8965476B2 (en) 2010-04-16 2015-02-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
WO2012055107A1 (zh) * 2010-10-28 2012-05-03 深圳智慧天使投资有限公司 一种w/o乳液油墨组合物及其应用
US8486717B2 (en) 2011-01-18 2013-07-16 Symbolics, Llc Lateral flow assays using two dimensional features
US20150004686A1 (en) 2012-02-02 2015-01-01 Corning Incorporated Automatic continuous perfusion cell culture microplate consumables
US9874556B2 (en) 2012-07-18 2018-01-23 Symbolics, Llc Lateral flow assays using two dimensional features
WO2015038978A1 (en) 2013-09-13 2015-03-19 Symbolics, Llc Lateral flow assays using two dimensional test and control signal readout patterns
EP3817922A1 (de) * 2018-07-04 2021-05-12 Duralchrome AG Direct-to-mesh-siebdruckschablonenererzeugung

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999002248A1 (en) * 1997-07-08 1999-01-21 Usf Filtration And Separations Group Inc. Highly asymmetric polyethersulfone filtration membranes

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4425263A (en) * 1981-06-03 1984-01-10 E. I. Du Pont De Nemours & Co. Flexible screen-printable conductive composition
US5607566A (en) * 1989-06-23 1997-03-04 The Board Of Regents Of The University Of Michigan Batch deposition of polymeric ion sensor membranes
GB9309797D0 (en) * 1993-05-12 1993-06-23 Medisense Inc Electrochemical sensors
US5378408A (en) * 1993-07-29 1995-01-03 E. I. Du Pont De Nemours And Company Lead-free thick film paste composition
US5556576A (en) * 1995-09-22 1996-09-17 Kim; Yong C. Method for producing conductive polymeric coatings with positive temperature coefficients of resistivity and articles made therefrom
US6134461A (en) * 1998-03-04 2000-10-17 E. Heller & Company Electrochemical analyte

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999002248A1 (en) * 1997-07-08 1999-01-21 Usf Filtration And Separations Group Inc. Highly asymmetric polyethersulfone filtration membranes

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2305102A1 (de) 2000-12-19 2011-04-06 Lifescan Scotland Ltd Analytenmessung

Also Published As

Publication number Publication date
IL150175A (en) 2005-12-18
RU2225249C1 (ru) 2004-03-10
PT1246688E (pt) 2004-09-30
US20030125403A1 (en) 2003-07-03
AU780195B2 (en) 2005-03-10
CA2394948A1 (en) 2002-04-25
IL150175A0 (en) 2002-12-01
KR100830855B1 (ko) 2008-05-21
ATE266461T1 (de) 2004-05-15
EP1246688B1 (de) 2004-05-12
AU2170102A (en) 2002-04-29
DZ3245A1 (fr) 2002-04-25
TR200401526T4 (tr) 2004-09-21
JP3939651B2 (ja) 2007-07-04
DK1246688T3 (da) 2004-08-30
DE50102260D1 (de) 2004-06-17
US6719923B2 (en) 2004-04-13
WO2002032559A1 (de) 2002-04-25
CA2394948C (en) 2010-04-20
KR20020081226A (ko) 2002-10-26
JP2004511791A (ja) 2004-04-15
ES2218465T3 (es) 2004-11-16
MXPA02006101A (es) 2004-08-23
RU2002119393A (ru) 2004-01-10
CZ20022136A3 (cs) 2003-01-15
EP1246688A1 (de) 2002-10-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE10052066A1 (de) Siebdruckfähige Paste zur Herstellung einer porösen Polymermembran für einen Biosensor
EP0175990B1 (de) Membran für Reagenzträgerschichten, Verfahren zu deren Herstellung, sowie deren Verwendung in analytischen Mitteln und Analysenverfahren
DE69735554T2 (de) Hochgradig assymetrische, hydrophile mikrofiltrationsmembranen mit grossen porendurchmessern
EP2235514B1 (de) Gassensor mit mikroporöser elektrolytschicht
DE2903216C2 (de) Enzymelektrode und immobilisiertes Enzym enthaltende Membran
DE3407359A1 (de) Testvorrichtung und methode zum nachweis einer komponente einer fluessigen probe
DE2722617C2 (de) Ionenselektive Elektrode und Verwendung derselben
DE1598153A1 (de) Diagnostisches Mittel zum Nachweis der Inhaltsstoffe von Koerperfluessigkeiten
EP0790498A1 (de) Elektrochemische Sensoren mit verbesserter Selektivität und erhöhter Empfindlichkeit
DE69628468T2 (de) Verbesserte trägerschicht für eine multischichtmembran zur herstellung von enzymelektrode
EP0575364B1 (de) Testträger zur bestimmung eines analyten aus vollblut
DE3237233A1 (de) Teststueck fuer die quantitative analyse von substanzen in koerperfluessigkeiten
EP0586789A2 (de) Asymmetrisch poröse Membranen
DE602004008752T2 (de) Testpapier und poröse membran
DE3210579A1 (de) Verfahren zum aufbringen einer fluessigkeitsprobe auf ein nach einem trockenverfahren arbeitendes analysenelement
EP1591779B1 (de) Elektrochemischer Gas-Sensor mit hydrophiler Membranbeschichtung
EP1591778A1 (de) Elektrochemischer Gas-Sensor mit hydrophiler Membranbeschichtung
DE4438381C2 (de) Durch eine Trägerfolie aus Polyestern unterstützte mikroporöse Membran aus Cellulosenitrat
EP0691408B1 (de) UV-polymerisierbare Enzympaste zur Herstellung von Biosensoren und damit hergestellte Biosensoren
AT397661B (de) Äussere membranschicht einer enzymelektrode
DE2602975A1 (de) Pruefmittel und verfahren zu dessen herstellung
WO2004083829A1 (de) Membran-osmometer und verfahren zur selektiven bestimmung spezifischer analyte
DE4308150A1 (de) Semipermeable Membranen aus strukturviskosen Gießlösungen
DE10217415B4 (de) Poröser Film mit einem Funktionskörper auf Basis von Cellulosenitrat mit hydrophilen Eigenschaften, dessen Verwendung und Verfahren zu seiner Herstellung
DE10141987C2 (de) Planarer Zeolithmembransensor zur potentiometrischen Bestimmung von ionischen Tensiden

Legal Events

Date Code Title Description
OP8 Request for examination as to paragraph 44 patent law
8125 Change of the main classification

Ipc: C08L 112

8131 Rejection