CS272926B1 - Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production - Google Patents

Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production Download PDF

Info

Publication number
CS272926B1
CS272926B1 CS33589A CS33589A CS272926B1 CS 272926 B1 CS272926 B1 CS 272926B1 CS 33589 A CS33589 A CS 33589A CS 33589 A CS33589 A CS 33589A CS 272926 B1 CS272926 B1 CS 272926B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
pro
peptides
thr
hpv
val
Prior art date
Application number
CS33589A
Other languages
English (en)
Other versions
CS33589A1 (en
Inventor
Alena Rndr Csc Suchankova
Ivan Rndr Csc Hirsch
Eva Rndr Hamsikova
Viktor Rndr Csc Krchnak
Josef Ing Vagner
Otto Rndr Ritter
Vladimir Mudr Drsc Vonka
Original Assignee
Alena Rndr Csc Suchankova
Ivan Rndr Csc Hirsch
Eva Rndr Hamsikova
Krchnak Viktor
Vagner Josef
Otto Rndr Ritter
Vladimir Mudr Drsc Vonka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Alena Rndr Csc Suchankova, Ivan Rndr Csc Hirsch, Eva Rndr Hamsikova, Krchnak Viktor, Vagner Josef, Otto Rndr Ritter, Vladimir Mudr Drsc Vonka filed Critical Alena Rndr Csc Suchankova
Priority to CS33589A priority Critical patent/CS272926B1/cs
Publication of CS33589A1 publication Critical patent/CS33589A1/cs
Publication of CS272926B1 publication Critical patent/CS272926B1/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Vynález se týká peptidu s vlastnostmi antigenní determinanty obecného vzorce I
H-Met-Gly-Thr-Pro-Phe-Ser-Pro-Val-Thr-Pro-Ala-Leu-Pro-Thr-Gly-Pro-Val-NH2 (I) a jeho konjugátu s nosiči typu bílkovin nebo makromolekulárních polymerů, zejména latexu, spheronu a polystyrenu nebo aktivovanými membránami, a způsobu jejich výroby.
Látky podle vynálezu jsou nové a byly u nich prokázány vlastnosti antigenních determinant proteinu kódovaného L-2 oblasti genomů HPV-6 a HPV-11. Peptidy mohou sloužit jako vhodné diagnostikům pro průkaz protilátek u. osob infikovaných těmito typy HPV.
průkazu imunitních reakcí proti HPV byly v minulosti použity různé serologické techniky jako např. imunoagregační test (Almeida J. D., a P. Goffe, 1965, Lancet ii, 1205 až 1207) difúze v agarovém gelu (Cubie H. A., 1972, J. Hyg. 70, 677 až 690), fixace komplementu (Genver J, 1971, Acta Dermato-veneřol 51, 365 až 373), radíoimunostanovení (Hefton J. M. ,,M. Eisinger 1977, J. Gen. Virol. 38, 179 až 182) a neutralizační text (Kienzler J. L. a spol. 1983, Br. J. Dermatol. 108, 665 až 672). Vzhledem k tomu, že HPV nelze kultivovat in vitro, že tedy není možné k přípravě antigénu použít klasické způsoby přípravy virových antigenů na tkáňových kulturách, jediným zdrojem antigenů byly až donedávka přirozené virové leze. Možnosti získat preparativní množství vírových antigenů jsou však omezené. Některé leze vyvolané HPV, jako např. konóyloma accuminatum, obsahující jen velmi málo virových části a v některých zhoubných nádorech spojovaných s HPV jsou prokazatelné pouze virové nukleové kyseliny.
Uvedené nedostatky řeší způsob podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že používá k detekci protilátek vytvořených po infekci viry HPV 6 a HPV 11 syntetický peptid s vlastnostmi antigenní determinanty proteinu kódovaného L-2 oblastí genorau.
Látky podle vynálezu byly syntetizovány způsobem podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se na polymerní nosič polystyrénového typu s chlormetylovými nebo benzhydrylaminovými skupinami zakotví karboxyterminální aminokyselina a postupnou kondenzací jednotlivých aminokyselin se vystaví peptidický řetězec. Potom se získaný peptid acidolyticky odštěpí z polymerního nosiče a přečistí se.
Peptidy obecného vzorce I byly .připraveny Merrifieldovou metodou syntézy peptidu v pevné fázi. Jako polymerní nosič byl použit polystyren síťovaný divinylbenzenem, s výhodou jedním procentem, s funkčními skupinami chlormetylovými nebo benzhydrylaminovými. N-alfa-aminoskupiny byly chráněny acidolabilní chránící skupinou, s výhodou Boc skupinou, její odštěpování v jednotlivých fázích syntézy bylo prováděno acidolyticky, s výhodou směsí TFA a DCM nebo nasyceným roztokem chlorovodíku.v DCM. Postranní funkční skupiny vícefunkčních aminokyselin byly chráněny skupinami benzylového typu. Kondenzace chráněných aminokyselin byly prováděny vhodně aktivovanými deriváty, s výhodou symetrickými anhydridy nebo HOBt estery. Po .ukončené syntéze byl peptid z pryskyřice odštěpen a současně byly odstraněny chránící skupiny vícefunkčních aminokyselin acidolytícky, s výhodou působením kapalného HP nebo TPMSA ve směsi s TFA a thioanisolem. Surový produkt byl čištěn buď pomocí sloupcové chromatografie na nosičích používaných v chemii peptidů, s výhodou silikagelu, potaženém hydrofobními uhlíkatými řetězci nebo nosičů fungujících jako molekulární síta. Peptidy byly charakterizovány aminokyselinoo
Vou analýzou a jejich čistota byla ověřena chroraatografickými a elektroforetickými metodami.
Aminokyselinová sekvence peptidu I byla odvozena z oblasti L-2 genomu HPV 6, který je homologní a HPV 11 a zároveň zahrnuje antigenní determinantu proteinu kočovaného genomem L-2. Peptidy mohou sloužit pro diagnostické účely, což bylo prokázáno autory vynálezu a pro produkci monodeterminantních protilátek.
Základem diagnostické reakce je vytvoření komplexu syntetických peptidů podle vynálezu s protilátkami vytvořenými v organismu, který byl infikován virem HPV 6 nebo
CS 272 926 Bl
HPV 11. Při praktickém použití lze s výhodou použít např. enzymoimunologický test (ELISA). Syntetický peptid byl konjugován s bílkovinným nosičem (např. BSA) pomocí glutaraldehydu a po navázání antigenu na mikrotitrační ELISA dističku, opláchnutí pufrem a vysycení neobsazených míst 1% roztokem BSA byla aplikována vyšetřovaná séra. Po inkubaci a promytí pufrem byla přidána prasečí protilátka proti lidskému IgG značená peroxidázou. Pokud byly ve vyšetřovaném séru protilátky proti zvolené antigenní deterr minantě viru HPV 6 či HPV 11 , peroxidázou značená protilátka se navázala na komplex antigen-lióská protilátka. Množství navázaných protilátek je úměrné jejich koncentraci ve vyšetřovaném séru. Detekce peroxidázové aktivity se provádí oxidací o-fenýlendiaminu kyslíkem, který se uvolňuje z peroxidu přítomného v substrátovém roztoku. Hodnoty absorbancí u pozitivních vzorků se pohybovaly od O.L. 1,2 AV do 2.612 A.V. (74 vyšetřených vzorků), hodnoty pro negativní séra nepřevýšily 0,5 A.V. (250 stanovení).
Získané výsledky ukazují, že peptidy podle vynálezu je možno použít jako diagnostika k průkazu specifických protilátek a přicházejí v úvahu při produkci monodeterminantních protilátek.
Následující příklady provedení látky a způsob podle vynálezu pouze dokládají, ale nikterak neomezují.
Příklad 1
Do průtokového reaktoru (vnitřní objem 1 ml) bylo umístěno 100 mg benzhydrylaminové kopoly (styren-1% divinylbenzen)ové pryskyřice (obsah aminoskupin 0.4 meg/g)i o Syntéza byla provedena na manuálně ovládaném syntetizátoru vlastní kontrukce, autorské osvědčení č. 262081, kontinuální průtokovou metodou, viz autorské osvědčení č. 255089. Jeden syntetický cyklus obsahoval tyto kroky: (1) štěpení Boc chránících skupin, 40% TFA v DCM, 30 min (3 min promývat, 27 min v klidu); (2) promývání, DCM, do slabě kyselého efluentu, (kontrolováno navlhčeným pH papírkem); (3) neutralizace, 5% N-ethyl-N, N-diisopropylamin v chloroformu, 3 min; (4) promývání, DMF, do neutrálního efluentu;
(5) kondenzace: chráněná aminokyselina, 0.4 meg v DCM (nebo DCM : DMF, 4:1, je-li třeba), přidat HOBt, 0.4 meg v DMF, přidat DCC, 0.4 meg v DCM, 30 min při 20 °C, odfiltrovat N, N-dicyklohexylmočovinu, promýt DCM, odpařit DCM za sníženého tlaku (t 25 °C), naředit DMF, zfiltrovat, promýt DMF, doplnit DMF na koncentraci 0.2M, nastříknout do průtokového reaktoru, ponechat reagovat doi:ineutrální reakce na ninhy*· dřin; (6) promývání, DCM, 5 min. Průtok během promývacích cyklů byl cca 20 až 30 ml/min, přetlak inertního plynu 20 až 50 kPa. Syntéza byla ukončena odštěpením gOC chránící skupiny z poslední kondenzované aminokyseliny (krok (1)) a peptidy1-pryskyřice byla promyta DCM a metanolem a vysušena proudem dusíku. Surový peptid byl získán po štěpení peptydyl-pryskyřice kapalným fluorovodíkem. Po odstranění HF byl produkt a pryskyřice suspendovány v etylacetátu, zfiltrovány, promyty etylacetátem a produkt extrahován do 20% kyseliny octové a lyofilizovén. Výtěžek 49,5 mg. Surový peptid byl čištěn na koloně (2.6 x 13 cm) obsahující jako stacionární fázi silikagel potažený hydrofóbními uhlíkatými řetězci, mobilní fáze 50 % metanolu, 50 % vody obsahující 0.1 % TFA. Frakce obsahující homogenní produkt byly spojeny a lyofilizovány. Výsledný produkt měl aminokyselinovou analýzu shodnou s teoretickými hodnotami, čistota produktu byla potvrzena při analytické HPCL (Rt 3.3 min, mobilní fáze 60 % MeOH, 40 % vody obsahující 0.1% TFA), chromatografií na tenké vrstvě (Rf 0.21 v soustavě n-butanol : kyselina octová : voda - 4 : 1 : 1) a elektroforéze na papíru při pH 2,5- Výtěžek 18,2 mg H-Met-Gly-Thr-Pro-Phe-Ser-Pro-Val-Thr-Pro-Ala-Leu-Pro-Thr-Gly-Pro-Val-NH2.
Příklad 2
K roztoku 26 mg (0.37 ^uM1) BSA ve 2.6 ml fyziologického roztoku bylo přidáno
6.3 mg (3.7 /UM - 10ti nás. molární přebytek) peptidu v 1,3 ml fyziologického roztoku. Ke směsi bylo za intenzivního míchání při laboratorní teplotě pomalu přikapáno 0.39
CS 272 926 Bl ml 1% roztoku glutaraldehydu a směs byla ponechána při laboratorní teplotě v temnu 16 hodin. Potom byl roztok přenesen do dializaěního střeva a dialyzován 4 hodiny proti 0.5 M roztoku etanolaminu pH 7.2 a přes noc proti fyziologickému roztoku s 0.05% azidera sodným. V roztoku konjugátu byla stanovena koncentrace bílkovin a po rozplnění byl uložen při -20 °C.
Příklad 3
Polystyrénová mikrotítraění destička byla inkubována s 100 /Ul roztoku konjugátu syntetického peptidu s BSA v uhličitanovém pufru (0.015 M NagGO^, 0.03 M NaHCO,
0.003 M NaN^j pH = 9.6) 16 h při 37 °C (koncentrace antigenu 0.0625 /Ug/ jamku). Vysycení volných míst v jamce bylo provedeno inkubaci se 100 /Ul 1% roztoku kravského sérového albuminu v uhličitanovém pufru 1 h při 20 °C. Jamky byly vypláchnuty fosfátovým pufrem (0.034 M KaCL, 0.002 JI KOI, 0.001 M KHgPO^ 0.006 M Na2HP04, 2 HgO, pH = 7-2) s přídavkem O.1£ neionogenního detergentu (Tritonu X-100). Potom bylo do jamek aplikováno 100 /Ul vyšetřovaného séra ředěného fosfátovým pufrem pH = 7.2, s 0.1% přídavkem neiontového detergentu (Triton X-100) a obohaceném 10 % bovinního sera (BS). Po inkubaci (20 °C, 60 min) a opláchnutí fosfátovým pufrem pH 7.2 s 0.1% detergentera bylo do jamek přidáno 100 /Ul roztoku peroxidázou značené prasečí protilátky proti lidskému imunoglobulinu G ve fosfátovém pufru pH = 7.2, s 0.1% neiontového detergentu (Triton X-100) a obohaceném 10 % BS. Po inkubaci (20 °C, 60 min) a promyti 5krát fosfátovým pufrem, Ikrát citrátovým pufrem byla provedena detekce peroxidázové aktivity přidáním 100 yUl 0.04% roztoku o-fenylendiaminu v citrátovém pufru (0.066 M Na^HPO^ . 2H20 a 0.034 M roztoku kyseliny citrónové o pH = 5·0) a obohaceném 0.006 % HgOg.
Reakce byla ukončena přidáním 100 /Ul 2 M kyseliny sírové a zbarvení vyhodnocené kvantitativně při 492 nm. Peptidu s vlastnostmi antigenních determinant proteinu kódovaného L-2 oblastí genomu HPV-6 a 11 bylo použito k otestování více než 400 lidských sér. Zatímco méně než 15 % sér od zdravých jedinců vykazovalo přítomnost specifických protilátek, většina sér (52 %) od pacientů s condyloma accuminatum (onemocnění způsobené papillomaviry typu 6 a 11) s antigenem specificky reagovalo. Příprava syntetického peptidu podle vynálezu umožňuje zavedení typově specifického serologického testu nezbytného při studiu úlohy papillomavirů v patogeneze lidských onemocnění.
Vysvětlivky ke zkratkám použitým v textu:
HPV lidský papillomavirus
ELISA$ enzymoimunologický test
BSA bovinní sérum albumin
O.D. optická densita
HPLC vysokoúčinná kapalinová chromatografie
TEA kyselina trifluoroctová
DCM dichlormetan
MeOH metanol
TEMSA kyselina trigluormetansulfonová
HOBt N-hydroxybenzotriazol
TEA trietylamin
Bac t-butyloxykarbonyl
Tos p-toluensulfonyl
Bzl benzyl
For formyl

Claims (2)

1. Peptidy s vlastnostmi antigenní determinanty bílkoviny viru HPV vzorce I
H-Met-Gly-Thr-Pro-Phe-Ser-Pro-Val-Thr-Pro-Ala-Leu-Pro-Thr-Gly-Pro-Val-NH2 (I)a jejich konjugátů s biologicky inaktivními nosiči typu bílkovin nebo makromolekulárních polymerů', zejména latexu, spheronu a polystyrenu nebo s aktivovanými membránami.
2. Způsob výroby peptidů vzorce I podle bodu 1, vyznačující se tím, že se na polyměrní nosič polystyrénového typu s chlormetylovými nebo henzhydrylaminovými skupinami zakotví karbox:yterminální aminokyselina a postupnou kondenzací se vystaví peptidický řetězec, načež se získaný peptid acidolyticky odštěpí z polymerního nosiče, přečistí se a naváže se na makromolekulám! bílkovinný nosič, s výhodou bovinní sérový albumin, pomocí glutaraldehydu nebo rozpustného karbodiimidu.
CS33589A 1989-01-18 1989-01-18 Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production CS272926B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS33589A CS272926B1 (en) 1989-01-18 1989-01-18 Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS33589A CS272926B1 (en) 1989-01-18 1989-01-18 Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS33589A1 CS33589A1 (en) 1990-06-13
CS272926B1 true CS272926B1 (en) 1991-02-12

Family

ID=5335283

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS33589A CS272926B1 (en) 1989-01-18 1989-01-18 Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS272926B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS33589A1 (en) 1990-06-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1220420A (en) Method of determining antigenically active amino acid sequences
AU667578B2 (en) Retro-, inverso-, and retro-inverso synthetic peptide analogues
CA1250100A (en) Pre-s gene coded peptide hepatitis b immunogens, vaccines, diagnostics, and synthetic lipid vesicle carriers
CA1246054A (en) Synthetic st toxin, process for its preparation and its use as a vaccinating agent
JP2774872B2 (ja) Hcvペプチド抗原とhcvの同定方法
US4833072A (en) Antigentic peptides and process for their preparation
JPH0751598B2 (ja) Htlv‐1感染検出用合成ペプチド抗原
JPH03503047A (ja) ポリマーおよびポリマー‐ペプチド複合体
KANDA et al. Synthesis of polyamide supports for use in peptide synthesis and as peptide‐resin conjugates for antibody production
US4761470A (en) Immunogenic synthetic peptide capable of eliciting herpes simplex virus neutralizing antibody
JP3851761B2 (ja) Hiv抗体を検出するための合成ペプチド及びその混合物
JP2598245B2 (ja) Htlv−iii/lavウイルス関連ペプチドに対する抗体
AU664828B2 (en) Synthetic peptides and mixtures thereof for detecting HIV antibodies
US5674676A (en) HCV peptide antigens and method of determining HCV
JPH11242028A (ja) D−アミノ酸からなるペプチドによる診断方法の干渉の 排除
JPS61246199A (ja) 免疫原性havペプチド
CS272926B1 (en) Peptides with properties of hpv-virus protein's antigen determinant and method of their production
DE69106998T2 (de) Mit Antikörper gegen Hepatitis-Virus non-A, non-B immunochemisch reagierende Peptide.
JP2001519800A (ja) グループo hiv−1ウイルスによる感染検出用の生物学的アッセイに有用な合成ペプチド
CA1293188C (en) Composition of matter and method of immunizing against viral causative agents of aids and arc
Urbès et al. C-terminal glyoxylyl peptides for sensitive enzyme-linked immunosorbent assays
CS258289B1 (cs) Peptid s vlastnostmi antigennfch determinant a způsob jeho výroby
RU2304146C2 (ru) Способ стабилизации петлеобразной структуры синтетических пептидов с помощью n- и c-концевых модификаций
CS258288B1 (cs) Peptid s vlastnostmi antigennich determinant a způsob jeho výroby
CS258290B1 (cs) Peptid s vlastnostmi antigennlch determinant a způsob jeho výroby