CS270236B2 - Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture - Google Patents

Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture Download PDF

Info

Publication number
CS270236B2
CS270236B2 CS881183A CS118388A CS270236B2 CS 270236 B2 CS270236 B2 CS 270236B2 CS 881183 A CS881183 A CS 881183A CS 118388 A CS118388 A CS 118388A CS 270236 B2 CS270236 B2 CS 270236B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
plants
tubers
vitro
induced
greenhouse
Prior art date
Application number
CS881183A
Other languages
English (en)
Other versions
CS118388A2 (en
Inventor
Ferenc Dr Foglein
Zoltan Osvath
Jozsef Balogh
Original Assignee
Novotrade R T
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Novotrade R T filed Critical Novotrade R T
Priority to CS881183A priority Critical patent/CS270236B2/cs
Publication of CS118388A2 publication Critical patent/CS118388A2/cs
Publication of CS270236B2 publication Critical patent/CS270236B2/cs

Links

Landscapes

  • Cultivation Of Plants (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Description

Vynález se týká účinného způsobu produkce bramborových minihlíz in vltro - in vívo.
□e znám způsob hromadné výroby bramborového množitelského materiálu prostého virů a viroidů kultivací rostlinné tkáně, při kterém se tkáňové buňky výhonku kultivují a množí in vitro na živném prostředí, pak se výhonky zakořeňují nebo se na nich navozuje vytváření minihlíz, in vitro zakořeněné rostliny se vysázují do skleníku к růstu in vivo jakožto mateřských rostlin, nebo se na nich in vitro může navozovat vytváření minihlíz, z těchto minihlíz se mohou pěstovat další mateřské rostliny a z nich se mohou získávat semenáčky nebo malé hlízy jakožto množitelský materiál, nebo se jakožto množ itelského materiálu může používat minihlíz. Vytváření semenáčku nebo hlíz se může řídit ovlivňováním patatinové syntézy mateřských rostlin.
Rychlost pomnožení bramborového množítelského materiálu tradičními způsoby je * nízká, maximálně 10 až 12 násobně ročně, takže je nutno udržovat tradiční kultivar 8 až 12 let· Současně dostupné kultivary brambor jsou citlivé na různé houbové, bakteriální a virová onemocnění· Uchování tradičního kultivaru je možné jen v oblastech, kde je úroveň onemocnění dostatečně nízká pro příznivé ekologické faktory· ’
Obsah vody v bramborovém množitelském materiálu je přibližně 90 %t takže pro dopravu a skladování jsou nutné zvláštní podmínky· V určitém případě náklady na dopravu mohou být vyšší než je cena brambor v místě pěstování· .
Známý způsob je vhodný pro eliminování shora uvedených obtíží· Za použití popsaného způsobu je rychlost množení vysoká, doba potřebná pro uchovávání kultivaru se může snížit na 1 až 2 roky, je.možno produkovat zdravý množitelský materiál, naklady na dopravu a skladování se mohou podstatně snížit množením minihlíz· podle shora uvedeného způsobu se bramborový množitelský materiál může produkovat v laboratoři nebo ve skleníku· Oelikož investiční a údržbové náklady Jsou vysoké v obou případech, je výnosnost způsobu závislá na množství produkovaného množitelského materiálu na jednotku plochy· Založeni skleníku je nákladnější nežli zřízení laboratoře· přesazování rostlin vyprodukovaných v laboratoři potřebuje dobrou technickou úroveň ve skleníku (zařízení к přesnému vyhřívání půdy, regulace vlhkosti, přídavné osvětlování)· Nutno vzít v úvahu, že rostliny přesazené z laboratoře do skleníku mají růst ekonomicky a to se může zajistit v případě produkce minihlíz jedině nejlepším využitím skleníku· Podle dřívějších procesů autorů bylo možno produkovat 400 a 800 minihlíz na m2· Tato skutečnost omezuje využitelnost skleníku pro produkci minihlíz· Nyní byl vypracován způsob к podstatnému zvýšení účinnosti produkce minihlíz na jednotku plochy· Při způsobu podle vynálezu - což ze známého stavu techniky není zřejmé - se může účinnost dřívějšího způsobu zvýšit alespoň o 300 až 500 %. 1
Při způsobu podle vynálezu se chorob prosté množitelské rostliny produkují známými způsoby kultivace tkání a zakořenováním v kapalném prostředí in vitro za steril- □ nich laboratorních podmínek» jakmile rostlina vyvine kořeny, vymění se živné prostředí obsahující antigibberellové chemikálie pro indukování hlíz a rostlina se inkubuje v tomto prostředí· Po navození vzniku hlíz se rostliny ošetří chemikálií, která podporuje zakořeňování a rostliny še vysázejí do pevného prostředí ve skleníku· Vegetativní růst rostlin se omezuje snižováním obsahu gibberellinu na obsah cytokininu periodicky a pravidelně a produkované minihlízy se sbírají z kořenů, rostlina se pak ošetří zakořeňovacím hormonem a přesadí se zpět do pevného prostředí a ošetřuje se pravidelně a periodicky antigibverellovou chemikálií a pak se opět produkované minihlízy sesbírají.
Při způsobu podle vynálezu se produkují chorob prosté rostliny z tkáňové kultury o sobě známými způsoby· Virů a nemocí prosté rostliny se mohou množit jakýmkoliv známým způsobem pro pěstování tkání· Rostliny, množené tkáňovou kulturou, se zakoře2 nu j í v kapalném prostředí. Po vytvoření kořenů, když již rostliny mají kořeny, se zakořeňovací proces změní za prostředí navozující vytváření hlíz, což je hlavně prostředí MS (Murashige and Skoog; physiol· Plant. 15, 473 až 397 /1962/) a toto prostředí je odlišné v množství zdroje anorganického dusíku (10 % původního prostředí) a požadavek rostlin na dusík se zajištuje přidáním zdroje organického dusíku (glutamin, asparagin) v průběhu navozování vzniku hlíz. Koncentrace sacharozy v navozovacím prostředí je vyšší než v prostředí MS, s výhodou se používá sacharozy 40 g/1* prostředí, používané pro navozování vzniku hlíz, obsahuje cytokininy ve vysoké koncentraci, vhodné je množství 5 až 10 tng/1. podstatné části prostředí používaného pro navozování vzniku hlíz jsou různé antigibberelllhy· Takovými chemikáliemi jsou kumarin a jeho deriváty, chlořeholinchlorid (CCC), s výhodou dichloracetykhexamethylenimi. oichloracetylhexamethylenimin má růst omezující a antidotové působení· V rostlinách navozuje vznikání hlíz snižováním obsahu gibberellinu v poměru к cytokinimům a má výhodné působení na strukturu buněčných membrán rostlin· Při způsobu podle vynálezu se může používat dichloracetylhexamethyleniminu v koncentraci 6 až 20 mg/1·
Rostliny se inkubují v prostředí navozujícím vznik hlíz za teploty 18 až 20 °C při osmihodinovém osvětlování po dobu 10 až 14 dní·
Po navození se hlízy brambor vyvíjejí v pevném prostředí ve sklenících· před přesazením do skleníku se navozující prostředí z kořenů vymyje а к podpoření zakořeňování а к předcházení infikování rostlin Rhizoctonia se rostliny ponoří do kapaliny obsahující indol-octovou kyselinu v množství 0,05 mg/1 a 0,2% Previcur-N/propyl-N- /3-dimethylaminopropyl/karbamáthydrochlorid/·
Po zakořenění rostlin ve sklenících - tři týdny po přesazení - se rostliny postříkají roztokem obsahujícím kumarinu 10 mg/1 a/nebo dichloracetylhexamethyleniminu 5 až 10 mg/1 jednou týdně* Tak rostliny zůstávají malé, avšak jejich fyziologický stav je vhodný pro vytváření hlíz· Oe důležité, že se rostliny mohou zbrzdit к předcházení delšího růstu· .
po přesazení do skleníku (za 1,5 až 2 měsíce) se rostliny vyjmou z půdy a hlízy větší než 0,5 cm se z kořenů seberou· Může se získat přibližně 1000 hlíz z m2 z rostlin pěstovaných tímto způsobem při prvním oddělování hlíz· při vyjmutí rostliny z půdy a při sbírání hlíz se kořeny mohou poškodit· stonek rostliny se opět ponoří do roztoku obsahujícího indol-acetonovou kyselinu v množství 0,05 mg/1 a 0,2 % Previcur-N a pak se rostlina zasadí do původní nebo do nové pudy· Po fázi zakořeňování se opakuje předchozí opatření (10 mg/1 kumarinu a/nebo 6 mg/1 dichloracetylhexamethyleniminu)· Odstranění hlíz, ošetření shora popsaným roztokem a přesazení rostlin se může opakovat po 3 až 4 týdnech· při druhé sklizni se může získat hlíz 2000 až 3000/m2· Když Jsou rostliny staré - 4 měsíce po zasazení - vyjmou se z půdy a zničí se· Rostliny, ošetřované shora popsaným způsobem, mohou vytvořit 2500 až 4000 hlíz/m2 v závislosti na kultivaru a toto množství je 3 až 4 krát větší než bylo možné získat známým způsobem·
Sebrané hlízy se nechávají zkorkovatět po dobu dvou týdnů za difuzního světla a 70% vlhkosti, pak se roztřídí a skladují se při teplotě 2 aŽ 5 °C·
Způsob podle vynálezu se může opakovat dva a půl krát ročně, to znamená, že se účinnost produkce minihlíz zvýší 4 až 5 krát ve srovnání se známým způsobem· Následující příklad vynález objasňuje a uvádí nejlepší způsob provádění vynálezu·
Příklad
Bramborový kultivar Somogy Gyongye* se množí tkáňovou kulturou o sobě známým způsobem, po očíslování se výhonky zakoření v kapalném prostředí, po dvoutýdenním zakořeňování se kapalné prostředí vymění za jiné prostředí к navozování vzniku hlíz.
Prostředí pro navozování vzniku hlíz má toto složení: základní prostředí Murashige
CS 270236 02 a skoog (MS), 1/10 koncentrace, dusičnan amonný a dusičnan draselný, 20 mg/1 gluternové kyseliny, 40 g/1 sacharózy, 5 mg/1 benzyladeninu, 25 mg/1 kuearinu a 6 mg/1 dich loracety lhexaoiethyleniminu· Rostliny se inkubují v tomto prostředí к navození vzniku hlíz po dobu 10 dní za 8 hodinového oevitu 200 lux/m2 a při teplotě 10 °c. po navození vzniku hlíz se svazky rostlin vyjmou z kultivační banky, rostliny se omyjí ve vodě z vodovodu, oklepou se к odstranění nadbytku vody a ponoří se do roztoku obsahujícího 0,08 mg/1 indol-octové kyseliny a 0,2% Previcur n, pak se vysázejí do rašelinové směsi, 50 rostlin/m2. Po zakořeněni rostlin se vytvoří malé brázdičky (2 cm), pak od druhého týdnu po vysázení rostlin se rostliny postříkají roztokem obsahujícím 10 mg/1 kumarinu a 6 mg/1 dichlorecetylhexamethyleniminu jednou týdně· po vysázení - za 1,5 až 2 měsíce - rozkošetělé rostliny se vyjmou z půdy· Hlízy větší než 0,5 cm ae oddělí ručně hřebenem vyrobeným pro tento účel· Rašelina a hlína se setřepe z rostlin, které se ponoří do roztoku obsahujícího 0,08 mg/1 indol-octové kyseliny a 0,2% Prfevicur-N a pak se zpět zasází do původní půdy a zavlaží se* V ošetření rostlin se pokračuje postříkáním roztokem obsahujícím 10 mg/1 kumarinu а 6 ag/1 dlchloracetyIhexamethyleniminu· po 2 až 4 týdnech se sběr hlíz a zasazení rostlin opakuje· Rostliny se ošetří seříznutím к udrženi vhodného malého vzrůstu rostlin· získané řízky bez kořenů se mohou použít pro další množení a vytváření hlíz.
Rostliny 'somogy Gyongye* pěstované a množené tímto způsobem vytvářejí 3500 mini2 hlíz/m za 4 měsíce·

Claims (4)

1· Způsob produkce bramborových minihlíz z rostlin množených in vitro tkáňovou kulturou v kapalném prostředí, vyznačený tím, že vytváření hlíz se navozuje in vitro na zakořeněných rostlinách, rostliny s navozeným vytvářením hlíz se zasadí do pevného prostředí ve skleníku a hlízy ae vyvíjí ve sklenících, zatímco růst rostlinných stonků se omezuje postřikem antigibberelliny jako jsou kumarin a jeho deriváty nebo chlorcholinchlorid pravidelně alespoň třikrát během jejich vývoje, vyvinuté minihlízy se sbírají, rostliny se zasázejí zpět do půdy, růst stonků se dále omezuje a vyjímání rostlin z půdy a opětné zasazování se periodicky opakuje v průběhu vegetační periody rostlin·
2· Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se vytváření hlíz navozuje použitím základního prostředí Murashige a Skoog obsahujícího dusičnan amonný a dusičnan draselný v koncentraci 1/10, 20 mg/1 glutamové kyseliny, 40 g/1 sacharózy, 5 eg/1 benzylade- я ninu, 25 mg/1 kumarinu a 6 mg/1 dichloracethyIhexamethyleniminu· w
3· způsob podle bodu 1, vyznačený tím, Že se před zasazením do skleníku rostliny opatří chemikálií, která navozuje zakořenování a popřípadě prostředkem к předcházení infikování Rhizoctonia·
4« Způsob podle bodu 3, vyznačený tím, že se rostliny před zasazením do skleníku ošetřují indol-octovou kyselinou a popřípadě propyl-N-/3-dimethylaminopropyl/karbamáthydrochloridem ve formě roztoku·
CS881183A 1988-02-24 1988-02-24 Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture CS270236B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881183A CS270236B2 (en) 1988-02-24 1988-02-24 Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS881183A CS270236B2 (en) 1988-02-24 1988-02-24 Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS118388A2 CS118388A2 (en) 1989-10-13
CS270236B2 true CS270236B2 (en) 1990-06-13

Family

ID=5345582

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS881183A CS270236B2 (en) 1988-02-24 1988-02-24 Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS270236B2 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS118388A2 (en) 1989-10-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4569914A (en) Process for the sterile micropropagation of plant material
JPH03195427A (ja) 組織培養技法による人工ジャガイモ種子の急速大量生産方法およびその利用方法
KR0160086B1 (ko) 종강용 생강 인공종묘의 제조방법
Batukaev et al. Block-container system for growing strawberry planting material in greenhouses
JPH0446104A (ja) 植物生長促進剤
KR100361652B1 (ko) 바이오텍 씨감자의 생산방법
JPS6258934A (ja) 組織培養によるナガイモの大量増殖法
Ombrello et al. Establishing Asparagus from Seedling Transplants1
EP0294412A1 (en) An effective process for the in vitro-in vivo production of potato minitubers
CS270236B2 (en) Method of potatoes minibulb production from plants multiplied in vitro by means of tissue culture
HU183433B (en) Process for producing multiplying material of digitalis lanata ehrh in tissue culture
Levy Propagation of potato by direct transfer of in vitro proliferated shoot cuttings into the field
JP3585050B2 (ja) ウイルスフリー化ホップ棒苗の製造方法
RU2810554C1 (ru) Способ ускоренного размножения клубней картофеля ex vivo
RU2617948C2 (ru) Способ клонального размножения растений в автотрофных условиях на гидропонике
JPH0335738A (ja) バレイショ小塊茎の生産法
Hirota Endogenous factors affecting the curved growth of seminal roots of Zea mays L. seedlings grown in liquid culture
JPH0646839A (ja) 植物の組織培養法
Singh et al. Effect of various growing media, GA3 and thiourea on growth and root characters in gladiolus
SU1761057A1 (ru) Способ микроклонального размножени ели обыкновенной ин витро
JP4257910B2 (ja) シクラメンの増殖法
JP3080784B2 (ja) フウロソウの大量増殖方法
CN110447522B (zh) 一种利用幼胚进行映山红亚属植物育苗的方法
RU2726034C1 (ru) Способ стимуляции роста и развития меристемных ростков клубней картофеля
JP2768454B2 (ja) シオデの鱗芽の萌芽方法