JPH0646839A - 植物の組織培養法 - Google Patents
植物の組織培養法Info
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- JPH0646839A JPH0646839A JP4224726A JP22472692A JPH0646839A JP H0646839 A JPH0646839 A JP H0646839A JP 4224726 A JP4224726 A JP 4224726A JP 22472692 A JP22472692 A JP 22472692A JP H0646839 A JPH0646839 A JP H0646839A
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- plants
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- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 本発明は、植物の組織を無菌的に分離し、こ
の組織を培養することを特徴とする植物の組織培養法で
ある。 【効果】 本発明の培養法を用いれば、各種の植物、特
にサクラソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植物、ミ
ズトンボ属植物、ツワブキ属植物の大量生産が可能にな
ると共に季節に左右されず周年生産が可能となる。
の組織を培養することを特徴とする植物の組織培養法で
ある。 【効果】 本発明の培養法を用いれば、各種の植物、特
にサクラソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植物、ミ
ズトンボ属植物、ツワブキ属植物の大量生産が可能にな
ると共に季節に左右されず周年生産が可能となる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、植物を組織培養する方
法に関する。
法に関する。
【０００２】
【従来の技術】サクラソウ科植物は低性の多年草であ
り、花菖蒲、朝顔、菊等と並ぶ日本の伝統的な園芸草花
である。サクラソウ属の１種であるサクラソウは、特に
多くの園芸種を有する。しかしながら、サクラソウの園
芸品はただ１種の種子播を繰り返した結果得られた変異
品で成り立っており、増殖はもっぱら株分けにより行わ
れる。
り、花菖蒲、朝顔、菊等と並ぶ日本の伝統的な園芸草花
である。サクラソウ属の１種であるサクラソウは、特に
多くの園芸種を有する。しかしながら、サクラソウの園
芸品はただ１種の種子播を繰り返した結果得られた変異
品で成り立っており、増殖はもっぱら株分けにより行わ
れる。
【０００３】サトイモ科植物（特にテンナンショウ属）
は、地下に球茎を有する夏緑の多年草であるが、１年に
１度しか葉を展開せず、根が出るのも葉の展開期であ
る。増殖は実生によるが、開花株になるまでに数年を要
するため、ほとんどの場合山採りにより採取され自然集
団が壊滅的な打撃を受けている。
は、地下に球茎を有する夏緑の多年草であるが、１年に
１度しか葉を展開せず、根が出るのも葉の展開期であ
る。増殖は実生によるが、開花株になるまでに数年を要
するため、ほとんどの場合山採りにより採取され自然集
団が壊滅的な打撃を受けている。
【０００４】また、球根植物のササユリなどユリ科植物
の増殖は実生、球根分割、鱗片挿し、珠芽を利用する方
法が知られている。しかし多くの土地および労力を必要
とするほか、ウイルスに汚染され、生育の遅延が生じた
り、品質が低下している。このため近年、組織培養によ
るユリ類の増殖も試みられている。（特開平２−４６２
３９号、特開昭６３−１６４８１９号、特開昭６３−２
７９７２１号等参照） また安価で簡便に球根を増殖できる実用的な増殖技術も
検討されている。（園学雑６１別１.'９２，ｐ４４６） ミズトンボ属植物は、日本に約１１種が自生している。
特にミズトンボ属の１種であるサギソウは、花姿が白鷺
の飛ぶ様子に似ているところから名付けられている。こ
の属の植物は一般に塊根を有するが、生育サイクルの中
で子珠を年に数個付けるのみであり、繁殖効率は必ずし
もよくない。
の増殖は実生、球根分割、鱗片挿し、珠芽を利用する方
法が知られている。しかし多くの土地および労力を必要
とするほか、ウイルスに汚染され、生育の遅延が生じた
り、品質が低下している。このため近年、組織培養によ
るユリ類の増殖も試みられている。（特開平２−４６２
３９号、特開昭６３−１６４８１９号、特開昭６３−２
７９７２１号等参照） また安価で簡便に球根を増殖できる実用的な増殖技術も
検討されている。（園学雑６１別１.'９２，ｐ４４６） ミズトンボ属植物は、日本に約１１種が自生している。
特にミズトンボ属の１種であるサギソウは、花姿が白鷺
の飛ぶ様子に似ているところから名付けられている。こ
の属の植物は一般に塊根を有するが、生育サイクルの中
で子珠を年に数個付けるのみであり、繁殖効率は必ずし
もよくない。
【０００５】さらに、キク科の多年草であるツワブキ属
植物は、日本と中国との特産で２種存在する。特にツワ
ブキは江戸時代から茶室の庭に植えられ、現在も広く栽
培されているが、幾つかの変種が栽培されているほか、
山菜として食用としたり民間薬としても利用されてい
る。増殖は種子にもよる場合もあるが、主に株分けによ
ることが多い。そのとき鉢や植え込み材により極度に小
型化することがあり、繁殖効率は必ずしもよくない。
植物は、日本と中国との特産で２種存在する。特にツワ
ブキは江戸時代から茶室の庭に植えられ、現在も広く栽
培されているが、幾つかの変種が栽培されているほか、
山菜として食用としたり民間薬としても利用されてい
る。増殖は種子にもよる場合もあるが、主に株分けによ
ることが多い。そのとき鉢や植え込み材により極度に小
型化することがあり、繁殖効率は必ずしもよくない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、効率
的な植物の組織培養法を提供することにある。本発明の
目的はサクラソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植
物、ミズトンボ属植物、ツワブキ属植物の効率的な増殖
をはかることにある。
的な植物の組織培養法を提供することにある。本発明の
目的はサクラソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植
物、ミズトンボ属植物、ツワブキ属植物の効率的な増殖
をはかることにある。
【０００７】
【課題を解決するための手段】本発明者は前記の課題に
ついて種々検討を重ねた結果、本発明を完成するに至っ
た。
ついて種々検討を重ねた結果、本発明を完成するに至っ
た。
【０００８】本発明は植物の組織を無菌的に分離し、こ
の組織を培養することを特徴とする植物の組織培養法を
提供するものである。
の組織を培養することを特徴とする植物の組織培養法を
提供するものである。
【０００９】本発明の組織培養法によれば、特にサクラ
ソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植物、ミズトンボ
属植物およびツワブキ属植物の効率的な組織培養を行う
ことができる。
ソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植物、ミズトンボ
属植物およびツワブキ属植物の効率的な組織培養を行う
ことができる。
【００１０】本発明はまず、植物の組織を無菌的に分離
し培養することからなる。分離する組織としては、一般
に茎、葉、花、根などがいずれも用いられるが、特に好
ましいのはサクラソウ科植物の場合は根茎、サトイモ科
植物の場合は球茎、ユリ科植物の場合は球根の鱗片、ミ
ズトンボ属植物の場合は塊根、ツワブキ属植物の場合は
根出葉である。
し培養することからなる。分離する組織としては、一般
に茎、葉、花、根などがいずれも用いられるが、特に好
ましいのはサクラソウ科植物の場合は根茎、サトイモ科
植物の場合は球茎、ユリ科植物の場合は球根の鱗片、ミ
ズトンボ属植物の場合は塊根、ツワブキ属植物の場合は
根出葉である。
【００１１】植物の組織を無菌的に分離するには、界面
活性剤、アルコール、塩化ベンザルコンニウム液、次亜
塩素酸ナトリウム溶液などを用いるのが好ましい。分離
にあたっては組織を界面活性剤で洗浄し、アルコール、
塩化ベンサルコンニウム液、次亜塩素酸ナトリウムに順
次浸したあと滅菌水で洗浄し無菌的に分離する。
活性剤、アルコール、塩化ベンザルコンニウム液、次亜
塩素酸ナトリウム溶液などを用いるのが好ましい。分離
にあたっては組織を界面活性剤で洗浄し、アルコール、
塩化ベンサルコンニウム液、次亜塩素酸ナトリウムに順
次浸したあと滅菌水で洗浄し無菌的に分離する。
【００１２】培地組成としては、通常植物の培養に用い
られるＬＳ培地（Ｌinsmaier ＆Ｓkoog, １９６５)、Ｗ
培地(Ｗhite, １９６３)、Ｂ５培地(Ｇamborg, １９６
８)、ＭＳ培地（Ｍurashige ＆ Ｓkoog, １９６２）な
どがいずれも用いられるが、ＭＳ培地が特に好ましい。
培地固形成分としてはジェランガムを用いるのが好まし
い。
られるＬＳ培地（Ｌinsmaier ＆Ｓkoog, １９６５)、Ｗ
培地(Ｗhite, １９６３)、Ｂ５培地(Ｇamborg, １９６
８)、ＭＳ培地（Ｍurashige ＆ Ｓkoog, １９６２）な
どがいずれも用いられるが、ＭＳ培地が特に好ましい。
培地固形成分としてはジェランガムを用いるのが好まし
い。
【００１３】また、各植物の新芽やユリ科植物の球根、
ミズトンボ属植物の新根、ツワブキ属植物の脱分化細胞
など植物組織の誘導を促進させるため、これらの培地に
植物ホルモンとしてオーキシン類、サイトカイニン類等
を添加してもよい。オーキシン類としては２,４−ジク
ロロフェノキシ酢酸（２,４−Ｄ）、インドール酢酸
（ＩＡＡ）、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）等が挙げられ
る。また、サイトカイニン類としてはカイネチン、ベン
ジルアデニン（ＢＡ）等が挙げられる。新芽の誘導を促
進するには、これらの植物ホルモンを０.０２〜２ｍｇ
／Ｌの濃度で培地に添加するのが好ましい。
ミズトンボ属植物の新根、ツワブキ属植物の脱分化細胞
など植物組織の誘導を促進させるため、これらの培地に
植物ホルモンとしてオーキシン類、サイトカイニン類等
を添加してもよい。オーキシン類としては２,４−ジク
ロロフェノキシ酢酸（２,４−Ｄ）、インドール酢酸
（ＩＡＡ）、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）等が挙げられ
る。また、サイトカイニン類としてはカイネチン、ベン
ジルアデニン（ＢＡ）等が挙げられる。新芽の誘導を促
進するには、これらの植物ホルモンを０.０２〜２ｍｇ
／Ｌの濃度で培地に添加するのが好ましい。
【００１４】サクラソウ科植物の場合、新芽の形成は、
通常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で３０日前後培
養することにより行い、この培養により組織片から新芽
が誘導される。
通常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で３０日前後培
養することにより行い、この培養により組織片から新芽
が誘導される。
【００１５】サトイモ科植物の場合、新芽の形成には通
常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で３０〜６０日培
養することにより行い、この培養により組織片から新芽
が誘導される。
常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で３０〜６０日培
養することにより行い、この培養により組織片から新芽
が誘導される。
【００１６】ユリ科植物の場合、球根の形成は、通常暗
所で１５〜２５℃の温度で６０日前後培養することによ
り行い、この培養により組織片から新しい球根が形成さ
れる。
所で１５〜２５℃の温度で６０日前後培養することによ
り行い、この培養により組織片から新しい球根が形成さ
れる。
【００１７】ミズトンボ属植物の場合、新根の形成は、
通常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で約２０日間培
養することにより行い、この培養により組織片から新根
が誘導される。
通常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で約２０日間培
養することにより行い、この培養により組織片から新根
が誘導される。
【００１８】ツワブキ属植物の場合、脱分化細胞の形成
は、通常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で約４０日
間培養することにより行い、この培養により組織片から
脱分化細胞が誘導される。
は、通常１５〜２５℃の温度で１６ｈｒ日長で約４０日
間培養することにより行い、この培養により組織片から
脱分化細胞が誘導される。
【００１９】ミズトンボ属植物の場合、植物組織から人
為的に根のみを大量培養することが可能になる。このこ
とは根から新塊根が形成されることによりインビトロで
ミズトンボ属植物の増殖が可能となるばかりでなく、増
殖した根から芽を誘導すれば幼植物を分化させることが
できる。
為的に根のみを大量培養することが可能になる。このこ
とは根から新塊根が形成されることによりインビトロで
ミズトンボ属植物の増殖が可能となるばかりでなく、増
殖した根から芽を誘導すれば幼植物を分化させることが
できる。
【００２０】このようにして形成された各植物の新芽、
球根、脱分化細胞などの植物組織は、新鮮培地に移植し
て培養し増殖する。ユリ科植物の新しい球根の増殖培養
にあたっては、培地形態により次の２通りの方法が用い
られる。
球根、脱分化細胞などの植物組織は、新鮮培地に移植し
て培養し増殖する。ユリ科植物の新しい球根の増殖培養
にあたっては、培地形態により次の２通りの方法が用い
られる。
【００２１】固形培地に移植して培養する場合は球根数
の増加が期待できる。液体培地に移植して培養する場合
は各球根重の増加が期待できる。つまり、固形培地で数
量を増やし、ついで液体培地で球根を充実させるとい
う、２段階の増殖培養が球根の大量生産には好ましい方
法である。
の増加が期待できる。液体培地に移植して培養する場合
は各球根重の増加が期待できる。つまり、固形培地で数
量を増やし、ついで液体培地で球根を充実させるとい
う、２段階の増殖培養が球根の大量生産には好ましい方
法である。
【００２２】このようにして得られたユリ植物の球根は
約３０日の低温処理により開花珠となり、ポット栽培が
可能になる。
約３０日の低温処理により開花珠となり、ポット栽培が
可能になる。
【００２３】
【実施例】つぎに本発明を実施例にもとづきさらに具体
的に説明するが、これは本発明を何等限定するものでは
ない。
的に説明するが、これは本発明を何等限定するものでは
ない。
【００２４】［実施例１］（サクラソウ科植物の培養） （１）クリンソウ（Ｐrimulajaponica）の培養 クリンソウより根茎を取り、流水および中性洗剤で充分
に洗浄した。次に７０％エタノール溶液で３０秒間、２
％次亜鉛素酸ナトリウム溶液に２０分間浸して滅菌を行
った。滅菌を行った根茎を滅菌水で充分に洗浄し、約１
〜３ｍｍ四方の大きさとしたあと培地に置いた。培地は
ＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝酸カリウムは何れも１
／２濃度に調整）に植物ホルモンとしてベンジルアデニ
ンとナフテレン酢酸を０〜０.２ｍｇ／Ｌ、蔗糖を１
％、ジェランガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整した。
２０℃１６ｈｒ照明にて約３０日培養したところ、植物
ホルモンを含まない区に新芽を１組織１芽誘導した。 （２）サクラソウ（Ｐrimula sieboldii）の培養 実施例１と同様にして滅菌し、同様のＭＳ培地で培養し
た。２０℃１６ｈｒ照明で約４０日培養したところ、植
物ホルモンを含まない区に新芽を１組織１芽誘導した。
また、植物ホルモンとしてベンジルアデニンを０.２ｍ
ｇ／Ｌ含む区において新芽を１組織５芽以上含む多芽体
を誘導した。
に洗浄した。次に７０％エタノール溶液で３０秒間、２
％次亜鉛素酸ナトリウム溶液に２０分間浸して滅菌を行
った。滅菌を行った根茎を滅菌水で充分に洗浄し、約１
〜３ｍｍ四方の大きさとしたあと培地に置いた。培地は
ＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝酸カリウムは何れも１
／２濃度に調整）に植物ホルモンとしてベンジルアデニ
ンとナフテレン酢酸を０〜０.２ｍｇ／Ｌ、蔗糖を１
％、ジェランガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整した。
２０℃１６ｈｒ照明にて約３０日培養したところ、植物
ホルモンを含まない区に新芽を１組織１芽誘導した。 （２）サクラソウ（Ｐrimula sieboldii）の培養 実施例１と同様にして滅菌し、同様のＭＳ培地で培養し
た。２０℃１６ｈｒ照明で約４０日培養したところ、植
物ホルモンを含まない区に新芽を１組織１芽誘導した。
また、植物ホルモンとしてベンジルアデニンを０.２ｍ
ｇ／Ｌ含む区において新芽を１組織５芽以上含む多芽体
を誘導した。
【００２５】［実施例２］（サトイモ科植物の培養） （１）ユキモチソウ（Ａrisaema sikokianum）の培養 ユキモチソウの球茎より茎頂付近の組織を取り、流水お
よび中性洗剤で充分に洗浄した。次に７０％エタノール
溶液で３０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウム溶液に２０
分間浸し滅菌を行った。滅菌を行った根茎を滅菌水で充
分に洗浄し、約１〜３ｍｍ四方の大きさとしたあと培地
に置いた。培地は実施例１と同様のＭＳ培地に植物ホル
モンとしてナフタレン酢酸を０.０２ｍｇ／Ｌ、蔗糖を
１０％、ジェランガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整し
た。２０℃１６ｈｒ照明で約３０日培養したところ、根
を伴った新芽を誘導した。 （２）キャンディディシマム（Ａrisaema candidissimu
m）の培養 実施例１と同様にして滅菌し、同様のＭＳ培地で培養し
た。２０℃暗所で約３０日培養したあと、新鮮培地に移
植した。新鮮培地にはＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝
酸カリウムは何れも１／２濃度に調整）に植物ホルモン
としてベンジルアデニンとナフタレン酢酸を０〜０.２
ｍｇ／Ｌ、蔗糖を１％、ジェランガムを０.２％加えｐ
Ｈ５.７に調整したものを用いた。２０℃１６ｈｒ照明
で約３０日培養したところ、植物ホルモンとして、ナフ
タレン酢酸を０.０２〜２ｍｇ／Ｌ含む区に新芽を１組
織１〜２芽誘導した。
よび中性洗剤で充分に洗浄した。次に７０％エタノール
溶液で３０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウム溶液に２０
分間浸し滅菌を行った。滅菌を行った根茎を滅菌水で充
分に洗浄し、約１〜３ｍｍ四方の大きさとしたあと培地
に置いた。培地は実施例１と同様のＭＳ培地に植物ホル
モンとしてナフタレン酢酸を０.０２ｍｇ／Ｌ、蔗糖を
１０％、ジェランガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整し
た。２０℃１６ｈｒ照明で約３０日培養したところ、根
を伴った新芽を誘導した。 （２）キャンディディシマム（Ａrisaema candidissimu
m）の培養 実施例１と同様にして滅菌し、同様のＭＳ培地で培養し
た。２０℃暗所で約３０日培養したあと、新鮮培地に移
植した。新鮮培地にはＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝
酸カリウムは何れも１／２濃度に調整）に植物ホルモン
としてベンジルアデニンとナフタレン酢酸を０〜０.２
ｍｇ／Ｌ、蔗糖を１％、ジェランガムを０.２％加えｐ
Ｈ５.７に調整したものを用いた。２０℃１６ｈｒ照明
で約３０日培養したところ、植物ホルモンとして、ナフ
タレン酢酸を０.０２〜２ｍｇ／Ｌ含む区に新芽を１組
織１〜２芽誘導した。
【００２６】［実施例３］（ユリ科植物の培養） （１）覆輪ササユリ（Ｌilium japonicum var.albomarg
inatum）の培養 覆輪ササユリの開花球より鱗片を取り、流水および中性
洗剤で充分に洗浄した。次に７０％エタノール溶液で３
０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウム溶液に４０分間浸し
滅菌を行った。滅菌を行った鱗片を滅菌水で充分に洗浄
し培地に置いた。このとき培地はＭＳ培地（硝酸アンモ
ニウムと硝酸カリウムは何れも１／２濃度に調整）に植
物ホルモンとしてナフタレン酢酸を０.２ｍｇ／Ｌ、蔗
糖を１０％、ジェランガムを０.２％加えｐＨ５.７に調
整した。
inatum）の培養 覆輪ササユリの開花球より鱗片を取り、流水および中性
洗剤で充分に洗浄した。次に７０％エタノール溶液で３
０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウム溶液に４０分間浸し
滅菌を行った。滅菌を行った鱗片を滅菌水で充分に洗浄
し培地に置いた。このとき培地はＭＳ培地（硝酸アンモ
ニウムと硝酸カリウムは何れも１／２濃度に調整）に植
物ホルモンとしてナフタレン酢酸を０.２ｍｇ／Ｌ、蔗
糖を１０％、ジェランガムを０.２％加えｐＨ５.７に調
整した。
【００２７】２２℃１６ｈｒ照明で約３０日培養した
後、新鮮培地には、ＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝酸
カリウムは何れも１／４濃度に調整）を用い蔗糖を３
％、ジェランガムを０.２％加え、ｐＨ５.７に調整し
た。このとき鱗片を垂直に３等分した。
後、新鮮培地には、ＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝酸
カリウムは何れも１／４濃度に調整）を用い蔗糖を３
％、ジェランガムを０.２％加え、ｐＨ５.７に調整し
た。このとき鱗片を垂直に３等分した。
【００２８】２２℃暗条件で約３０日培養し鱗片に新球
を形成した。 （２）ヒメサユリ（Ｌilium rubellum）の培養 実施例１と同様にして滅菌し、ナフタレン酢酸を０.２
ｍｇ／Ｌ含むＭＳ培地(硝酸アンモニウムと硝酸カリウ
ムは何れも１／２濃度に調整)で２２℃、１６ｈｒ照明
で約４０日培養し、鱗片に新球を形成した。 （３）ササユリ(Ｌilium japonicum)の培養 実施例１と同様にしてＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝
酸カリウムは何れも１／４濃度に調整、蔗糖を３％、ジ
ェランガムを２％加えｐＨ５.７に調整）で培養してい
るササユリの新球を採り、３％の蔗糖を加えｐＨ５.７
に調整したＭＳ培地２０ｍｌを含む直茎３０ｍｍ長さ２
００ｍｍの試験管に移植し、回転培養機（広島設備開発
(株)製）にて２ｒｐｍ連続照明で培養した。約３０に後
に同組成の新鮮培地に移植し、更に約３０日培養したと
ころササユリは直径約１０ｍｍ程度に生長した。
を形成した。 （２）ヒメサユリ（Ｌilium rubellum）の培養 実施例１と同様にして滅菌し、ナフタレン酢酸を０.２
ｍｇ／Ｌ含むＭＳ培地(硝酸アンモニウムと硝酸カリウ
ムは何れも１／２濃度に調整)で２２℃、１６ｈｒ照明
で約４０日培養し、鱗片に新球を形成した。 （３）ササユリ(Ｌilium japonicum)の培養 実施例１と同様にしてＭＳ培地（硝酸アンモニウムと硝
酸カリウムは何れも１／４濃度に調整、蔗糖を３％、ジ
ェランガムを２％加えｐＨ５.７に調整）で培養してい
るササユリの新球を採り、３％の蔗糖を加えｐＨ５.７
に調整したＭＳ培地２０ｍｌを含む直茎３０ｍｍ長さ２
００ｍｍの試験管に移植し、回転培養機（広島設備開発
(株)製）にて２ｒｐｍ連続照明で培養した。約３０に後
に同組成の新鮮培地に移植し、更に約３０日培養したと
ころササユリは直径約１０ｍｍ程度に生長した。
【００２９】［実施例４］（ミズトンボ属植物の培養） サギソウ（Ｈabenaria radiata）の培養 サギソウの塊根の表面の毛をガスバーナーで焼いた後、
流水および中性洗剤で充分に洗浄した。次に７０％エタ
ノール溶液で３０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウム溶液
に４０分間浸し滅菌を行った。滅菌を行った塊根を滅菌
水で充分に洗浄したあと培地に置いた。このとき培地は
１／２濃度のＭＳ培地に蔗糖を３％、ジェランガムを
０.２％加え、ｐＨ５.７に調整した。
流水および中性洗剤で充分に洗浄した。次に７０％エタ
ノール溶液で３０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウム溶液
に４０分間浸し滅菌を行った。滅菌を行った塊根を滅菌
水で充分に洗浄したあと培地に置いた。このとき培地は
１／２濃度のＭＳ培地に蔗糖を３％、ジェランガムを
０.２％加え、ｐＨ５.７に調整した。
【００３０】２０℃１６ｈｒ照明で約２０日培養し発芽
発根した。このとき根の先端の生長組織を約０.５ｍｍ
採り、植物ホルモンを含む培地に置床した。このとき培
地にはＭＳ培地（ただし硝酸アンモニウム、および硝酸
カリウムの濃度は１／２に調整）に蔗糖を３％、ジェラ
ンガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整したものを用い
た。
発根した。このとき根の先端の生長組織を約０.５ｍｍ
採り、植物ホルモンを含む培地に置床した。このとき培
地にはＭＳ培地（ただし硝酸アンモニウム、および硝酸
カリウムの濃度は１／２に調整）に蔗糖を３％、ジェラ
ンガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整したものを用い
た。
【００３１】２０℃１６ｈｒ照明で約４０日培養したと
ころ、植物ホルモンとしてナフタレン酢酸を０.２ｍｇ
／Ｌ含む区において根を複数誘導し、またベンジルアデ
ニンを０〜０.２ｍｇ／Ｌ含む区においてベンジルアデ
ニンの量が増すほど根の伸長が阻害された。
ころ、植物ホルモンとしてナフタレン酢酸を０.２ｍｇ
／Ｌ含む区において根を複数誘導し、またベンジルアデ
ニンを０〜０.２ｍｇ／Ｌ含む区においてベンジルアデ
ニンの量が増すほど根の伸長が阻害された。
【００３２】［実施例５］（ツワブキ属植物の培養） ツワブキ（Ｆarfugium japonicum） ツワブキの根出葉をとり表面の毛をガスバーナーで焼い
た後、流水および中性洗剤で充分に洗浄した。次に７０
％エタノール溶液で３０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウ
ム溶液に２０分間浸し滅菌を行った。滅菌を行った葉片
を滅菌水で充分に洗浄したあと培地に置いた。このとき
培地はＭＳ培地（ただし硝酸アンモニウム、および硝酸
カリウムの濃度は１／２に調整）に蔗糖を１％、ジェラ
ンガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整したものを用い
た。
た後、流水および中性洗剤で充分に洗浄した。次に７０
％エタノール溶液で３０秒間、２％次亜鉛素酸ナトリウ
ム溶液に２０分間浸し滅菌を行った。滅菌を行った葉片
を滅菌水で充分に洗浄したあと培地に置いた。このとき
培地はＭＳ培地（ただし硝酸アンモニウム、および硝酸
カリウムの濃度は１／２に調整）に蔗糖を１％、ジェラ
ンガムを０.２％加えｐＨ５.７に調整したものを用い
た。
【００３３】２０℃１６ｈｒ照明で約２０日培養したと
ころ、植物ホルモンとしてナフタレン酢酸を０.２ｍｇ
／Ｌ含みベンジルアデニンを０.０２〜０.２ｍｇ／Ｌ含
む区において脱分化細胞を誘導した。
ころ、植物ホルモンとしてナフタレン酢酸を０.２ｍｇ
／Ｌ含みベンジルアデニンを０.０２〜０.２ｍｇ／Ｌ含
む区において脱分化細胞を誘導した。
【００３４】
【発明の効果】本発明によれば、各種の植物、特にサク
ラソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植物、ミズトン
ボ属植物、ツワブキ属植物の大量生産が可能になると共
に季節に左右されず周年生産が可能となる。
ラソウ科植物、サトイモ科植物、ユリ科植物、ミズトン
ボ属植物、ツワブキ属植物の大量生産が可能になると共
に季節に左右されず周年生産が可能となる。
【００３５】また、耐寒性のあるサクラソウ科植物の培
養は、遺伝子の材料として有用であり、耐寒性遺伝子の
解析や耐暑性遺伝子の導入などに利用できる。
養は、遺伝子の材料として有用であり、耐寒性遺伝子の
解析や耐暑性遺伝子の導入などに利用できる。
【００３６】また、開花期待時期から逆算して低温処理
の適期が求められることから、ユリ科植物の場合などを
はじめ出荷調整が可能になる。また、低温処理可能な充
実球も培養を続ければ新しい球根を形成し続けるので、
出荷調整のための在庫管理方法が簡便になる。このよう
な大量培養方法により、絶滅の危機に瀕している植物を
増殖して自生地に戻すことにより環境保全に貢献するこ
とができる。
の適期が求められることから、ユリ科植物の場合などを
はじめ出荷調整が可能になる。また、低温処理可能な充
実球も培養を続ければ新しい球根を形成し続けるので、
出荷調整のための在庫管理方法が簡便になる。このよう
な大量培養方法により、絶滅の危機に瀕している植物を
増殖して自生地に戻すことにより環境保全に貢献するこ
とができる。
Claims (2)
- 【請求項１】 植物の組織を無菌的に分離し、この組織
を培養することを特徴とする植物の組織培養法。 - 【請求項２】 植物がサクラソウ科植物、サトイモ科植
物、ユリ科植物、ミズトンボ属植物またはツワブキ属植
物である前記請求項１記載の組織培養法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4224726A JPH0646839A (ja) | 1992-07-31 | 1992-07-31 | 植物の組織培養法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4224726A JPH0646839A (ja) | 1992-07-31 | 1992-07-31 | 植物の組織培養法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0646839A true JPH0646839A (ja) | 1994-02-22 |
Family
ID=16818288
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4224726A Pending JPH0646839A (ja) | 1992-07-31 | 1992-07-31 | 植物の組織培養法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0646839A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002302403A (ja) * | 2001-03-30 | 2002-10-18 | Kagoshima Prefecture | 暗黒培養によるユリ類の試験管内保存，増殖，球根養成法 |
| CN103004609A (zh) * | 2013-01-10 | 2013-04-03 | 中国科学院昆明植物研究所 | 白花灯台报春的组织培养方法 |
| CN103404444A (zh) * | 2013-08-26 | 2013-11-27 | 四川省自然资源科学研究院 | 迎阳报春组培快繁方法 |
| CN109089883A (zh) * | 2018-08-31 | 2018-12-28 | 贵州民族大学人文科技学院 | 一种川东灯台报春的离体保存方法 |
-
1992
- 1992-07-31 JP JP4224726A patent/JPH0646839A/ja active Pending
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002302403A (ja) * | 2001-03-30 | 2002-10-18 | Kagoshima Prefecture | 暗黒培養によるユリ類の試験管内保存，増殖，球根養成法 |
| CN103004609A (zh) * | 2013-01-10 | 2013-04-03 | 中国科学院昆明植物研究所 | 白花灯台报春的组织培养方法 |
| CN103404444A (zh) * | 2013-08-26 | 2013-11-27 | 四川省自然资源科学研究院 | 迎阳报春组培快繁方法 |
| CN109089883A (zh) * | 2018-08-31 | 2018-12-28 | 贵州民族大学人文科技学院 | 一种川东灯台报春的离体保存方法 |
| CN109089883B (zh) * | 2018-08-31 | 2021-07-27 | 贵州民族大学人文科技学院 | 一种川东灯台报春的离体保存方法 |
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