CS238399B2 - 19-epi-dianemycine production method - Google Patents

19-epi-dianemycine production method Download PDF

Info

Publication number
CS238399B2
CS238399B2 CS841067A CS106784A CS238399B2 CS 238399 B2 CS238399 B2 CS 238399B2 CS 841067 A CS841067 A CS 841067A CS 106784 A CS106784 A CS 106784A CS 238399 B2 CS238399 B2 CS 238399B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
agar
culture
medium
antibiotic
epi
Prior art date
Application number
CS841067A
Other languages
English (en)
Other versions
CS106784A2 (en
Inventor
Walter D Celmer
Walter P Cullen
Hiroshi Maeda
John C Ruddock
Junsuke Tone
Original Assignee
Pfizer
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pfizer filed Critical Pfizer
Publication of CS106784A2 publication Critical patent/CS106784A2/cs
Publication of CS238399B2 publication Critical patent/CS238399B2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • C07H19/01Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing oxygen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K20/00Accessory food factors for animal feeding-stuffs
    • A23K20/10Organic substances
    • A23K20/195Antibiotics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00Antiparasitic agents
    • A61P33/02Antiprotozoals, e.g. for leishmaniasis, trichomoniasis, toxoplasmosis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/44Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides
    • C12P19/445The saccharide radical is condensed with a heterocyclic radical, e.g. everninomycin, papulacandin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/44Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides
    • C12P19/60Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides having an oxygen of the saccharide radical directly bound to a non-saccharide heterocyclic ring or a condensed ring system containing a non-saccharide heterocyclic ring, e.g. coumermycin, novobiocin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/465Streptomyces
    • C12R2001/55Streptomyces hygroscopicus

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Nitrogen And Oxygen Or Sulfur-Condensed Heterocyclic Ring Systems (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)
  • Cephalosporin Compounds (AREA)

Description

Vynález se týká^způsobu výroby nového polyéterového mttibiotika, které je možno získat mikrobiálním postupem. Jde o způsob pěstování nového kmene Streptomyces hygroscopicus. Antibiotikum se pak izoluje z živného prostředí a je možno je užít jako antikokcidiální prostředek a antibakteriální látku.
Kokcidióza je obecná a široce rozšířená infekce, způsobovaná různými čeleděmi parazitů ze skupiny prvoků rodu Eimeria. Jsou známy dva typy tohoto onemocnění, při jednom z nich dochází k převážnému postižení tenkého střeva a při druhém · k převážnému postižení počáteční části střeva tlustého.
První typ je způsobován E. tenella a je vyznačen těžkým krvácením. Druhý typ je způsobován různými čeleděmi Eimerií, například: E. acervulina, E. necatrix, E. maxima, E. hagani, E. mitis, E. praecox a E. brunetti. U krocanů jsou příčinou kokcidiózy E. adenoides a E. maleagrimitis.
Hospodářské důsledky výskytu kokcidiózy jsou velmi závažné a potlačování choroby je proto zejména v případech velkochovů drůbeže velmi důležité.
Až dosud byla popsána celá řada různých strukturních typů antikokcidiálně účinných látek včetně polyéterových antibiotik, například monensin [J. Amer. Chem. Soc. 89, 5737 (1967)], nigericin [Biochem. Biophys. Res. Connn.
33, 29 (1968)], grlsorixin [J. Chem. Soc. Chem. Commun., 1421 (1970)], dianemycin [J. Antibiotics 22, 161 (19619)],
US. patentový spis č. 3 577 351 z 4. 5. 1971, salinomycin [J. Antibiotics 27, 814 (1974)], X—537—(A [J. Chem. Soc. Chem. Commun.,
927 (1971)],
A204A [J. Amer. Chem. Coc., 101, 3344 (19719)], mutalomycin [J. Antibiotics, 30, 903 (19^*7)], ionomycin [J. Amer. Chem. Soc. 101, 3344 (19719)],
K—41B [J. Antibiotics 32, 169 (19719)], A—130B a A—130C [J. Antibiotics 33, 94 (1980)], leuseramycin [J. Antibiotics 33, 137 (1980)], a
A—28695 B [J. Antibiotics 33, 252 (1980)].
. Celý problém byl shrnut v publikacích Westley „Polyether Antibiotics“, Adv. Appl. Microbiol. 22, 177 (1977) · a Shumard a další, Antimicrob. Agents and Chemother. 369— —377 (1967).
Dysenterie vepřů, jedno· z nejčastějších onemocnění vepřů, zjišťované v USA a převažující i v řadě jiných států způsobuje ročně velké hospodářské ztráty. V poslední době bylo prokázáno, že velká spirocheta Treponema hyodysenteriae je přinejmenším primárním zdrojem této· infekce (Harris D.
L. a další, „Swine Dysentery—1) Inoculation of Plgs with Treponema hyodysenteriae (New Species) and Reproduction of the Disease“, Vet. Med/SAC 67, 61—64 (1972).
Zvýšení užitkovosti (rychlejší růst a/nebo zvýšené využití krmiv) u přežvýkavců, například skotu je dalším hospodářsky žádoucím cílem veterinární medicíny. Zvláštní význam má urychlení růstu, jehož je možno dosáhnout zvýšeným využitím krmivá. Mechanismus využití hlavní živné složky (uhlohydrátů) u přežvýkavců je dobře znám. Mikroorganismy v bachoru rozkládají uhlohydráty na monosacharidy, které pak jsou převáděny na pyrohroznan.
Pyrohroznany jsou metabolizovány mikrobiologickým způsobem na acetáty, butyráty nebo propionáty (těkavé alifatické kyseliny VFA).
Podrobně jsou tyto poměry shrnuty v publikaci Leng, „Physiology of Digestion and Metabolism· in the Rumiiiant“, Phillipson a další, Oriel Press, Newcastleupon-Tyne Velká Británie, str. 408—410.
Relativní účinnost využití VFA je diskutována v publikaci Mc Cullough „Feedstuffs“, 19. června 1971, str. 19, Eskeland a další, J. An. Sci., 33, 282 (1971) a Church a další v „Digestive Physiology and Nutrition of Ruminants“, Sv. 2, 1971, str. 622 až 625.
Přestože dochází k využití octanů a máselnanů, propionáty jsou využívány nejlépe. Mimoto v případě, že je k dispozici příliš malé množství propionanu, vyvíjí se u zvířat ketóza. Látky, které tento pochod příznivě ovlivňují, tedy stimulují zvířata k produkcí vyššího množství propionátů z uhlohydrátů, a tak ke zvýšenému využití krmivá při sníženém výskytu ketózy.
Nyní bylo prokázáno, že nový kmen Streptomyces hygroscopicus, izolovaný ze vzorku půdy ve Washingtonu, produkuje nové a cenné antibiotikum· s antikokcidiálními vlastnostmi. Tento produkt byl izolován a identifikován jako 19-epi-dianemycin.
Mikroorganismus, který produkuje uvedené antibiotikum, byl izolován ze vzorku půdy ve Washingtonu, USA a byl označen jako kultura N—483—29. Taxonomické studie tohoto mikroorganismu byly prováděny L. H. Huangem, který také mikroorganismus popsal tak, jak bude dále uvedeno. Na základě těchto studií bylo· uzavřeno, že běží o kmen Streptomyces hygroscopicus (Jensen) Waksman a Henrici.
Nová kultura má úzké hyfy jako Actinomycetales, produkuje řetězce spor na vzdušném myceliu a nefragmentovaný myceliální substrát. Analýza celých neporušených buněk ukazuje, že běží o· rod Streptomyces.
Kultura N—483—29 byla pěstována na šikmém agaru, přenesena do bujónu ATCC 172 a pěstována tři dny při teplotě 28 °C na třepačce. Pak byla 20 minut odstřeďována, třikrát promyta sterilní destilovanou vodou a dále pěstována na prostředích, kte238399
S 6 rá se běžně užívají při identifikaci členů Actinomycetes.
Kultura se inkubuje při teplotě 28 CC. Výsledky, které je možno zjišťovat v různé době, se obvykle zjišťují po 14 dnech. Barvy byly popsány běžným způsobem, přesné zbarvení bylo stanoveno srovnáním s barevnými proužky Color Harmony Manual, 4. vydání. Způsoby pro analýzu aminokyselin a cukrů byly popsány v Becker В. a další, Appl. Microbiol. 12, 421—423 (1964) a v publikaci Lechevalier Μ. P., J. Lab. Clin. Med. 71, 934 až 944 (1968).
К identifikaci bylo užito následujících živných prostředí:
I. Bujón s tryptonem a extraktem z kvas- nic (ISP prostředí 1, Difco).
2. Agar z extraktem z kvasnic a se sladovým extraktem (ISP prostředí 2, Difco).
3. Agar s ovesnou moukou (ISP prostředí 3, Difco).
4. Agar s anorganickými solemi a škrobem (ISP prostředí 4, Difco).
5. Agar s glycerolem a s asparaginem (ISP prostředí 5, Difco).
6. Agar s peptonem a extraktem z kvasnic (ISP prostředí 6, Difco).
7. Czapkův agar se sacharózou — S. A. Waksman, The Actinomycetes, sv. 2, prostředí č. 1, str. 328, 1961.
8. Agar s glukózou a asparaginem tamtéž, prostředí č. 2, str. 328.
9. Bennetův agar — tamtéž, prostředí č. 30, str. 331.
10. Emersonův agar — tamtéž, prostředí č. 28, str. 331.
II. Živný agar — tamtéž, prostředí č. 14, str. 330.
12. Gordonův a Smithův agar s tyrosinem — R. E. Gordon a Μ. M. Smith, Jr. Bact. 69, 147-—150 1955.
13. Agar s kaseinem — tamtéž.
14. Agar s malátem vápenatým — S. A. Waksman, Bact. Rev. 21, 1—29, 1957.
15. Želatina — R. E. Gordon a J. M. Mihm, Jr. Bact 73, 15 —27, 1957.
16. Škrob — tamtéž.
17. Bujón s organickým dusičnanem — tamtéž.
18. Bujón s dusičnanem dextrózy — S. A. Waksman, The Actinomycetes, sv. 2, prostředí č. 1, str. 328, 1961 s 3 g dextrózy místo 30 g sacharózy, agar je vynechán.
19. Agar s bramborem a mrkví — Μ. P. Lechevalier, Jr. Lab. and Clinícal Med. 71, 934—944, 1968, avšak použito bylo pouze 30 g brambor, 2,5 g mrkve a 20 g aga.ru.
20. 2% agar z vody z vodovodu.
21. Odstředěné mléko (Difco).
22. Prostředí na využití celulózy:
a) H. L. Jensen, Proč. Linn, Soc. N. S. W. 55, 231—248 (1930).
b] M. Levine a H. W. Schóenlein, A Compilation of Culture Media, prostředí č. 2511, 1930.
23. Uhlohydráty: prostředí ISP č. 9 (Difco).
24. Sledování teplotního rozmezí pro růst.
ISP prostředí č. 2 -h 50 ml kokosového mléka.
Získané výsledky
Agar s extraktem z kvasnic a sladovým extraktem
Růst dobrý, barva kultury špinavě bílá (přibližně 3ie) se žlutavými (2ea) rýhami nebo membránami, mírně zvýšená, zvrásněná až membranózní, mycelium na vzduchu se netvoří. Zadní strana kultury bledě žlutavá (2ea) s hnědavými liliemi (3gc, 3ic), rozpustný pigment je hnědý (31c, 3ne).
Agar s ovesnou moukou
Růst střední, kultura bílá, žlutavá až šedá (1 1/2 ea, 1 1/2 ga, šedá 3 dc, 3 fe), plochá až poněkud vyvýšená, hladká, v některých oblastech hygroskopická, vzdušné mycelium má stejnou barvu jako povrch kultury, zadní strana bezbarvá nebo krémová až šedá (11/2 ca, šedá 3 dc, 3 fe), rozpustný pigment bleděžlutavý (1 1/2 ca).
Agar s anorganickými solemi a škrobem
Růst středně dobrý až dobrý, kultura žlutavá až šedá (lea, 11/2 ea, šedá 3dc, 3fe, 3ih), kultura plochá až vyvýšená, hladká, avšak u okraje zvrásněná, v některých oblastech hygroskopická, mycelium na vzduchu stejné jako kultura, zadní strana kultury bledě žlutošedá (2ea, šedá 3dc, 3fe), rozpustný pigment bleděžlutavý (11/2 ca).
Agar s glycerolem a asparaginem
Růst slabý až střední, barva krémová až bezbarvá (šedá lba), kultura plochá, hladká, mycelium na vzduchu se netvoří, zadní strana bezbarvá, rozpustný pigment se netvoří.
Agar s asparaginem a glukózou
Růst dobrý, kultura bílá až krémová, (2ca), zvýšený povrch, kultura je zvrásněná, mycelium na vzduchu je bílé. Zadní strana kultury bledě žlutavá (2ea), rozpustný pigment je bledě žlutavý (2ca, 2ea).
Czapkův agar se sacharózou
Růst středně dobrý až dobrý, barva krémová (2ca), kultura plochá, hladká, se zploštělým okrajem, bez vzdušného mycelia, zadní strana bezbarvá až krémová (2ca), rozpustný pigment krémový (2ca).
Emersonův agar
Růst dobrý, barva špinavě bílá (poblíž
3gc), kolonie vyvýšené, hladké až mírně zvrásněné, netvoří se žádné vzdušné mycelium, zadní strana kultury má stejnou barvu jako povrch, rozpustný pigment je hnědý · (31c}.
Živný agar
Růst středně dobrý, barva krémová, (11/2 ca, 2ca), kolonie mírně zvýšené, hladké nebo se vyskytují jako izolované kolonie, žádné vzdušné mycelium, zadní strana bledě žlutavá (2ca, 2ea), rozpustný pigment se netvoří.
Bennetův agar
Růst dobrý, kolonie krémové (2ca), mírně zvýšné, zvrásněné až rýhované, mycelium na vzduchu se buď netvoří, nebo je málo vytvořeno, bílé, zadní strana krémová až bledě šedožlutá (2ca, 2gej, rozpustný pigment bledě žlutavý (2ea).
Gordonův· a Smithův agar s tyrosinem
Růst špatný až střední, kolonie žlutavě hnědé až tmavě hnědé (4ec, 4nl, 5nl], ploché až mírně zvýšené, hladké, mycelium na vzduchu se netvoří. Zadní strana hnědá až tmavě hnědá (51g, 5ni), rozpustný pigment tmavě hnědý až černý (5nl, 5pn).
Agar s malátem vápenatým
Růst střední, kolonie krémové (11/2 ca), ploché až mírně zvýšené, hladké, mycelium na vzduchu se netvoří, zadní strana stejná jako povrch, rozpustný pigment se netvoří.
Agar s kaseinem
Růst středně dobrý až dobrý, kolonie krémové (2ca, 3ca), mírně vyvýšené, hladké až jemné zvrásněné, mycelium na vzduchu se netvoří, zadní strana kultury ie krémová, rozpustný pigment růžově hnědý (4ia, 4ga).
Agar s želatinou
Růst dobrý, kolonie · krémové (v blízkosti 2ca), mírně vyvýšené, hldké, avšak v · blízkosti okraje zvrásněné, mycelium na vzduchu se netvoří, zadní strana stejná jako· povrch, rozpustný pigment krémový.
“C 28 0C dobrý až výborný dobrý
Analýza celých buněk
Buněčná stěna obsahuje kyselinu LL-dlaminopimelovou avšak ne charakteristické cukry.
Kultura N—483—29 je charakterizována
Agar se škrobem
Růst dobrý, kolonie krémové (v blízkosti 2ca), mírně vyvýšené, zvrásněné, avšak k okraji mohou být hladké, mycelium na vzduchu se netvoří, zadní strana stejná jako povrch, rozpustný pigment krémový.
Agar s bramborem a mrkví
Růst středně dobrý, kolonie krémové (11/2 caj, ploché, hladké, mycelium na vzduchu je málo vyvinuto, bílé, barva zadní strany krémová nebo bezbarvá, rozpustný pigment se netvoří.
Agar z vody z vodovodu
Růst špatný, kolonie bezbarvé až krémové (šedá 2ba), ploché, hladké, většinou vnořené, mycelium na vzduchu je málo vyvinuté, bílé, zadní strana stejná jako povrch, rozpustný pigment se netvoří.
Morfologické vlastnosti
Morfologické vlastnosti byly pozorovány na agaru se škrobem a anorganickými solemi po 14 dnech inkubace. Hmota spor byla šedá, řetězce spor tvoří spirály poněkud otevřené, malého průměhu (6 až 10 μΐη dlouhé a 3 až 4,5 μπι široké), 3 až 6 závitů v jedné spirále, 8 až 30 spor v jednom řetězci, sporoformy monopodicky rozvětvené, někdy i vícenásobně, spory, oválné až elipsoidní, někdy tyčinkovité, rozměry 1,2 až 2,0 x 0,9 až 1,2 /um.
Biochemické vlastnosti
K produkci melaninu nedochází, sirovodík se produkuje, želatina zkapalňuje, škrob hydrolyzuje, dusičnan se redukuje na dusitan v obou nitrátových prostředích. Ke špatnému růstu a k žádnému rozkladu nedochází na Jensenově celulóze a na Levinově a Schoenleínově celulóza, u mléka dochází k vyčeření, avšak nikoliv ke koagulaci, trávení kaseinu je pozitivní, trávení malátu vápenatého· pozitivní, štěpení tyrosinu pozitivní.
Využití uhlohydrátů: využívá se glukóza, arabinóza, fruktóza, inositol, rnannito-l, rafinóza, rhamnóza, sacharóza a xylóza.
Vliv teploty na růst °C 4 50c středně dobrý žádný šedými sporami, spirálními řetězci spor, sporami s drsným· povrchem a negativní reakcí na melanin. Na některých prostředích je v některých oblastech vzdušné mycelium hygroskopické. Až na využití sacharózy a rafinózy by izolovaný kmen spadal do· popisu
S. hygroscopicus, tak jak byl · popsán v Int. J. Syst. Bact. 22, 265—394, 1972. Využití uhlíkových zdrojů se liší od popisu H. D. Tresnera a E. J. Backuse, kteří popsali čeleď podrobněji v Applied Microbiology 4, 243— — 250, 1956.
Kulturu je proto možno považovat za kmen Streptomyces hygroscopicus (Jensen) Waksman a Henrici. Byl uložen ve sbírce Američan Type Culture Collection, Rockville, Maryland, USA, kde bude běžně k dispozici pod označením Streptomyces hygroscopicus ATCC 39205. Všechna omezení, která až dosud jsou v platnosti, pokud jde o dostupnost mikroorganismu, budou odstraněna po· udělení patentu.
Mimo svrchu uvedeného mikroorganismu je při provádění způsobu podle vynálezu možno užít také přírodně se vyskytující nebo uměle získané mutanty a/nebo varianty, vzniklé například působením paprsků X, ultrafialového záření, působením hořčičného dusíku apod.
Použít je možno i jakýkoliv jiný organismus, nezávisle na jeho· typu a fyziologii, který může být získán transformací, transdukcí, genetickou rekombinací nebo jiným genetickým postupem při použití nukleové kyseliny nebo ekvivalentního materiálu, pokud tento organismus má schopnost produkce svrchu uvedeného antibiotika.
Kultura Streptomyces hygroscopicus ATCC 39205 se pěstují v submersní kultuře za aerobních podmínek při teplotě 21 až 37 °C za míchání živného prostředí. Typické živné prostředí pro toto použití má obsahovat využitelný zdroj uhlíku, například cukry, škroby nebo glycerol, zdroje organického dusíku, například kasein, enzymaticky rozštěpený kasein, kasaminokyseliny, sójovou mouku, mouku z bavlníkových semen, arašídovou moukou, pšeničný gluten, extrakt z kvasnic, masovou a rybí moučku, a anorganické soli, například chlorid sodný, uhličitan vápenatý a stopové prvky jako železo, zinek, kobalt hořčík a mangan a pufry jako uhličitan vápenatý nebo- fosfáty.
V případě, že v průběhu fermentace dojde k přílišnému pěnění, je možno užít protipěnivá činidla jako rostlinné oleje nebo silikony. Provzdušňování živného prostředí v tancích a submersní kultuře se udržuje obvykle na hodnotě 1/2 a 2 objemy sterilního vzduchu na jeden objem prostředí za minutu. Prostředí se míchá běžnými míchacími zařízeními. Rychlost míchání závisí na použitém typu zařízení. Při použití třepačky jde obvykle o 150 až 200 cyklů za minutu, ferraentor se obvykle otáčí rychlostí 300 až 1700 otáček za minutu. Při přenášení a pěstování mikroorganismu je samozřejmě nutno zachovat aseptické podmínky.
Očkovací materiál se získává odebráním buněk ze šikmého agaru nebo Ro-uxových lahví, naočkovaných vegetativní kulturou N—483—29. Pevným prostředím, vhodným pro použití pro šikmý agar a Rousovy ve je ATCC č. 172.
Složení živného prostředí ATCC 172 glukóza rozpustný škrob extrakt z kvasnic
NZ Amin A uhličitan vápenatý destilovaná voda do 1000 ml pil se upraví na 7,0 použitím KO1I pak se přidá agar láhg/l
až 120 hodin, v za 72 až 96 hovegetativní kulza aseptických
Vegetativní buňky ze šikmého agaru se užijí k naočkování třepa cích lahví nebo tanků. Růst ve třepacích lahvích dosáhne maxima obvykle v průběhu 96 očkovacích tancích obvykle din. Fermentor se naočkuje turou z láhve nebo· tanku podmínek a pak se provádí fermentace p>c·· dobu 96 až 168 hodin. Živné prostředí se provzdušňuje mícháním nebo vstřikováním, sterilního vzduchu rychlostí 1/2 až 2 objemy vzduchu na 1 objem živného prostředí za minutu. Rychlost míchání závisí na typu použitého zařízení. Teplota se udržuje v rozmezí 24 až 36 °C.
Po ukončení fermentace se .antibiotikum izoluje extrakcí živného· prostředí rozpouštědlem, neutišitelným s vodou, například n-butanolem, methylisobutylketonem, ethylacetátem nebo chloroformem při pH 4,0 až 8,0. Je také možno mycelium oddělit a extrahovat některým ze svrchu uvedených rozpouštědel k izolaci antibiotika. Extrakt se zahustí, koncentrát se smísí s heptanem a chromatografuje na silikagelu.
Produkci antibiotika při fermentaci je možno sledovat biologickou zkouškou živného prostředí při použití citlivého mikroorganismu Staphylococcus aureus nebo Bacillus substilis. Vhodnými kmeny pro toto použití jsou S. aureus ATCC 6538 a B. subtilis ATCC 6633. Užívá se standardního· způsobu stanovením· zóny inhibice na plotnách s použitím kotoučů filtračního papíru. Analýzu antibiotika je rovněž možno· provést chromátografií na tenké vrstvě silikagelu, tak je rovněž možno zjistit složení surové · ho· a čistého výsledného produktu po extrakci z živného prostředí.
Chromatogramy na silikagelu· Aualtech Cl' se vyvíjí směsí ethylacetátu a methanu lu v poměru 9 : 1 nebo směsí chloroformu a m.e· thanolu v poměru 9 : 1. Antibiotikum se prokazuje postřikem činidlem s obsahem ve nilinu (3 g vanilinu v 75 ml eteanolu a 25 mililitrů 85% kyseliny fosforečné) s následným· zahrátím plotny na 80 Л. Antibiotikum je možno prokázat jako purpurovou skvrnu. Plotnu je možno také převrstvit agarem, naočkovaným S. aureus ne':o B. subtilis s přidáním immobydrátii 2,3,1 trhu nyl-211-telrazolinmchloridu s následnou inkubací 16 hodin při teplotě 37 °C, antibiotikum je bílé na růžovém podkladě.
Antibiotikum 19-epi-dianeinycin působí inhibičně na celou řadu grampozitivních mikroorganismů.
Každý ze zkoumaných mikroorganismu byl naočkován do série zkumavek s obsahem živného prostředí s různou koncentrací 19-epi-dianemycinu ke stanovení minimální koncentrace antibiotika v ^g/ml, která inhibuje růst mikroorganismu v průběhu 24 hodin (minimální inhibiční koncentrace—MÍC).
19-epi-Dianemycin a jeho soli s kationty mají velmi dobrou účinnost proti infekcím způsobeným kokcidiemi u drůbeže. V případě včlenění do krmivá pro kuřata v dávce 50 až 200 ppm je tato látka schopna zabránit infekci nebo potlačit infekci, způsobenou Eimeria tenella, E. acervulina, E. maxima, E. brunetti a E. necatrix.
Údaje o účinnosti 19-epi-dianemycinu byly získány následujícím způsobem. Skupiny 3 až 5 desetidenních kohoutků (leghorn SPF) byly krmeny krmivém s obsahem 19-epi-dianemycinu nebo jeho sodnou a/nebo draselnou solí. Po 24 hodinách byla kuřata infikována per os oocystami příslušného kmene Eimeria. Další skupiny kuřat byly krmeny krmivém bez epidianemycinu a nebyly infikovány. Tyto skupiny byly užity jako normální kontroly. Výsledky pokusů byly vyhodnoceny po pěti dnech v případě E. acervulna, v ostatních případech vždy po šesti dnech.
V případě E. tenella byly výsledky vyhodnoceny podle zjištěného poškození stupnicí 0 až 4 podle publikace J. E. Lynch, „A New Method for the Primary Evaluation of Anticoccidial Act.ivity“, Am. J. Vet. Res. 22, 324—326 (1961), u ostatních kmenů bylo užito stupnice 0 až 3 podle modifikace systému hodnocení, uvedeného v publikaci J. Johnson a W. H. Reid, „Anticoccidial Drugs. Lesion Scoring Techniques in Battery and Floor Pen Experiments in Chiks“, Exp. Parasit. 28, 30—36 (1970). Pak byl stanoven příslušný poměr vydělením celkové hodnoty pro poškození pokusných skupin hodnotou, získanou u infikovaných kontrol.
Hodnoty pro krmivá byly získány přímým zkrmiováním pokusným zvířatům. V britském patentovém spisu č. 1 197 826 je popsána technika in vitro pro bachor, kde je možno snadno stanovit změny, к nimž dochází v krmivu působením mikroorganismů s velkou přesností. Při tomto postupu se užívá zařízení, v němž je in vitro možno napodobit trávicí pochod normálních zvířat. Do zařízení se přivádí krmivo, inokulum bachoro-vé šťávy a různé látky, podporující růst za přísně řízených podmínek a probíhající změny je možno postupně sledovat v průběh, u působení mikroorganismu na krmivo. Vzestup obsahu kyseliny propionové je známkou žádoucí odpovědi. Tyto změny se vy jadřují v procentech obsahu této kyseliny v kontrolních vzorku. Dlouhodobé krmné pokusy in vivo prokázaly korelaci mezi pokusy in vitro a skutečným prospíváním zvířat.
Bachorová stává se odebírá od zvířete se zavedenou bachoro-vou pištěli, krmeného obchodně dodávaným krmivém pro· žír a senem. Bachorová šťává se okamžitě zfiltruje přes gázu a 10 ml tohoto materiálu se přidá do- kónické láhve o objemu 50 ml s obsahem 400 mg standardního substrátu (68 proč, kukuřičného škrobu 4- 17 % celulózy 4- 15 % extraktu ze sójové mouky), 10 mililitrů pufru o pH 6,8 a zkoumané látky. Baňky se provzdušňují dusíkem dvě minuty a pak se inkubují ve vodní lázni o teplotě 39 CC na třepačce 16 hodin. Všechny pokusy byly prováděny třikrát.
Po inkubaci bylo 5 ml vzorku smíseno s 1 ml kyseliny metafosforečné o koncentraci 25 °/o. Po 10 minutách bylo přidáno 0,25 kyseliny mravenčí a směs byla odstředěna při 1500 otáčkách za minutu 10 minut.
Pak byly vzorky analyzovány plynově-kapalinovou chromatograHí způsobem podle publikace D. W. Kellog, J. Dairy Sciece 52, 1690 (1969). Vrcholy pro kyselinu octovou, propicnovou a máselnou se stanoví pro zkoumané vzorky i pro vzorky kontrolní.
Ke zlepšenému využití krmiv u přežvýkavců například skotu a ovcí a u zvířat s jedním žaludkem, například vepřů a králíků je možno včlenit 19-epi-dianemycin do- krmivá ve volné formě, ve formě sodné nebo draselné soli nebo ve směsi těchto forem. Je samozřejmě také možno včlenit do krmivá i surovou sloučeninu nebo sušené fermentační prostředí do požadované koncentrace účinné látky.
Vynález bude osvětlen následujícími příklady.
Příklad 1
Do třepacích láhví bylo uloženo živné pro-
středí následujícího složení:
C113M 8/1
Cerelóza 20,0
sójová mouka 10,0
lihovarské výpalky 5,0
síran sodný 0,5
chlorid kobaltnatý 0,002
uhličitan vápenatý 2,0
100 ml tohoto prostředí bylo vloženo do lahví o objemu 300 ml a sterilizováno- při teplotě 120 °C a tlaku 0,15 MPa po- dobu 30 minut. Pak bylo prostření naočkováno vegetativní suspenzí buněk Streptomyces hygroscopicus ATCC 39205, pěstovaného- na agarovém prostředí ATCC 172. Láhve byly třepány při teplo-tě 28 CC na rotační třepačce s výkyvem 4 až 8 cm při 150 až 200 cyk lech za minutu 3 až 5 dní. Jedna láhev se pak užije k naočkování pětilitrové fermentační nádoby s obsahem tří litrů následujícího živného prostředí:
CL13M cerelóza20,0 sójová mouka10,0 lihovarské výpalky5,0 síran sodný0,5 uhličitan sodný2,0 chlorid kobaltnatý0,002 voda do 1 litru, pH 6,9 až 7,0
Jako protipěnivé činidlo se přidá 1 ml silikonu L61, pak se nádoby uzavřou a sterilizují při teplotě 120 °C a při tlaku 0,15 MPa celkem 45 minut. Pak se nádoby naočkují přibližně 3 · % očkovacího materiálu, fermentace se provádí 96 až 168 hodin při teplotě 30 °C, prostředí se míchá 1700 otáčkami za minutu, užije se 1 objem vzduchu na 1 objem prostředí za minutu.
Po skončené fermentaci (v závislosti na testu s papírovými kotouči při použití B. subtilis ATCC 6633) se fermentace zastaví, prostředí se zfiltruje pří původním. pH a při použití infusoriové hlinky. Filtrační koláč se uvede do· suspenze v methanclu, suspenze se zfiltruje, rozpouštědlo se odpaří ve vakuu, odparek se zředí 2 — 3 objemy vody, pak se extrahuje 2 x 1/3 až 1/2 objemu rozpouštědla, například methylisobutylketonu. Rozpouštědlo se oddělí od vodné fáze odstředěním nebo aspirací a odpaří se ve vakuu na viskózní kapalinu.
Antibiotikum· je také možno izolovat extrakcí celého živného prostředí při původním pH methylisobutylketonem s následujícím odpařením rozpouštědla za získání viskózního oleje. Tento· olej se rozpustí v heptanu a nechá projít sloupcem silikagelu 60. Silikagel se vymývá chloroformem, směsí chloroformu a. ethylacetátu a ethylacetátem. Po odpaření se z ethylacetátové frakce získá surový produkt, z něhož krystalizuje 19-epi-dianemycin jako směs sodné a draselné soli.
Při chromatografii na tenké vrstvě byly pro surový produkt užity následující systémy, z nichž každý je schopen oddělit dianemycin a 19-epi-dianemycin, byl však prokázán pouze 19'epi-dianemycin.
Systém R( dianemycin Rř 19-epi’dianemycm
ethylacetát 0,30 0,40
chloroform-aceton 1 : 1 0,42 0,49
ethylacetát-chloroform 2 : 1 0,15 0,22
Podobných výsledků bylo dosaženo v případě, Že se místo svrchu uvedených živných prostředí užije některé z následujících prostředí:
Prostředí Cg;/1 cerelóza10,0 kukuřičný škrob10,0 sójová mouka10,0 pevný fermentovatelný podíl kukuřice5,0 chlorid sodný5,0 uhličitan vápenatý1,0 voda do> 1 litru, pH 6,9 až 7,0
Prostředí M g/lttr cerelóza10,0 škrob20,0 extrakt z kvasnic5,0 chlorid kobaltnatý0,002
NZ Amine A5,0 uhličitan vápenatý1,0 voda do 1 litru, pH 6,9 až 7,0
Příklad 2
Postup z příkladu 1 byl prováděn ve větším měřítku tak, že nejprve byly připraveny láhve s obsahem 0,7 litru prostředí CL13M. Naočkované láhve byly inkubovány až 5 dnů při teplotě 28 °C. Obsah lahví pak byl užit k naočkování fermentoru o obsahu 6434,5 litrů, obsahujícího 4542 litrů živného· prostředí CL13M. Bylo užito přibližně 1 litru (0,05%) očkovacího materiálu. Po čtyřech dnech bylo z fermentoru odebráno 4164 litrů prostředí. Toto prostředí bylo» extrahováno 1/5 svého objemu nieíbylisobu · · tylketonu při původním pH, pak se oddělení provádí v Podbielniackově extraktoru a rozpouštědlo se odpaří ve vakuu na o-le · jovitou kapalinu (30,3 litry).
Tato olejovitá kapalina se dále zahustí na sirup. Pak se olej uvede do suspenze v heptanu, smísí se se silikagelein (Měrek) 60, pak se zfiltruje přes vrstvu silikagelu a opakovaně se promývá heptanem. Antibiotikum se postupně vymývá chloroformem, směsí chloroformu a ethylacetátu, ethylacetátem a nakonec 50% acetonem v ethylacetátu. Eluce se sleduje chromatografii na tenké vrstvě a biologickými zkouškami jednotlivých frakcí. Aktivní frakce se slijí, zahustí a znovu chromatografují k izolaci an tibiotika. V průběhu izolace vznikly potíže s oddělením aktivních frakcí na silikagelu. Bylo proto užito aktivního uhlí Darco, na němž bylo· možno oddělit znečišťující materiály a zlepšit výtěžek. Tímto způsobem bylo získáno 40 gramů krystalického 19-epidianemycinu.
Příklad 3
Přibližně 4164 litrů prostředí po fermentaci S. hygroscopicus ATCC 39205 bylo získáno způsobem podle příkladu 2. Živné prostředí bylo extrahováno 1/5 objemu methylisobutylketonu a extrakt byl odpařen ve vakuu na hnědou olejovitou kapalinu (přibližně 3,79 litrů). Koncentrát byl vlit do 11,4 litrů heptanu za stálého míchání a výsledná suspenze byla /filtrována přes vrstvu infusorlové hlinky.
Filtrát byl zpracováván na sloupci s obsahem 3 kg silikagelu 60 o průměru částic 152 až 44 1(um (Merek). Silikagel byl promýván vždy 11,4 litry heptanu, chloroformu, acetonu a methanolu. Tyto frakce byly sledovány cbromatografií na tenké vrstvě a bylo prokázáno, že se 19-api-dianemycin nachází primárně v acetonových a chloroformových frakcích.
Acetonová frakce (180 g) byla chromatografována na sloupci o· rozměru 8 x 100 centimetrů s obsahem silikagelu 60 a průměru částic 44 až 25 (um (Merek) v ethylacetátu. Ethylacetát byl také užit jako· eluční činidlo. Rychlost průtoku byla 70 ml/minutu a byly odebírány frakce po 1 litru. Jednotlivé frakce byly analyzovány chromatografií na tenké vrstvě silikagelu Analtech GF, jako rozpouštědlo k vyvíjení ploten byl užit ethylacetát. K průkazu antibiotika bylo užito reakčního činidla s vanilinem (3g vanilinu v 75 ml ethanolu a 25 ml 85% kyseliny fosforečné) s následným zahřátím na teplotu 80 °C. 19-epi-Dianemycin za těchto podmínek tvoří purpurové skvrny.
Frakce s obsahem 19-epi-dianemycmu se slijí a odpaří. Koncentrát se rozpustí v 1 litru chloroformu, promyje se 1 litrem vody, okyselené na pH 4, pak jedním litrem 5% hydrogenfo-sforečnanu sodného o pH 9, vysuší sc bezvodým síranem sodným, pak se zfiltruje a odpaří. Koncentrát se smísí s acetonem, přidá se malé množství (přibližně 10 %) vody, čímž dojde ke krystallzaci 19-epi-dianemycinu ve formě sodné soli. Krystalky se oddělí filtrací a usuší ve vakuu při teplotě místnosti. Získá se 23 g sodné soli.
Chloroformová frakce (280 g) se znovu rozpustí v 1 litru chloroformu a roztok se nechá projít sloupcem o rozměru 7 x 120 centimetrů s náplní granulovaného aktivovaného uhlí v chloroformu. Sloupec se promývá chloroformem rychlostí 20 ml/minuta a odebírají se frakce, po 300 ml. Frakce s obsahem antibiotika se slijí a odpaří. Odparek se nechá krystalizovat ve formě sodné soli tak. jak bylo popsáno pro acetonovou frakci. Výtěžek byl 14 gramů. Dalších 10 gramů surového produktu bylo získáno opakováním postupu.
Sodná sůl 19-epi-dianemycinu má teplotu tání 193—205 °C. Další vlastnosti produktu jsou:
Maximum v ultrafialovém světle je při 232 nm, E [ = 157 aD + 11,0 ° (c = 1, methonol)
Analýza pro CjHyyO^Na vypočteno:
63,49 % C, 8,73 '% II, 27,78 % O, nalezeno:
63.10 % C, 8,86 % H, 28,04 % O.
Velnou kyselinu je možno získat tak, že se chloroformový roztok sodné soli promyje okyselenou vodou (na pH 4) a pak se chloroform odpaří. Volnou sloučeninu nebylo možno získat v krystalickém stavu, avšak byla získána ve formě sklovité hmoty.
Volná látka měla tyto vlastnosti:
Spektrum v ultrafialovém záření mělo maximum při 232 nm, E ^ll = 163.
«π = + 15,6 ° (c = 1, inethanol)
Analýza pro С^-Н77ОГ|:
vypočteno:
65.10 % C, 9,06 % H, 25,84 % O; nalezeno:
64,45 % 0, 8,94 % H, 26,61 % O.

Claims (4)

1. Způsob výroby 19-^(^[pi-(^lianemycinu, vyznačující se tím, že se pěstuje Streptomyces hygroscopicus ATCC 39205 ve vodném živném prostředí s obsahem využitelných zdrojů uhlíku, dusíku a anorganických solí za aerobních podmínek do nahromadění antibiotika 19-epi-dianemycinu, které se popřípadě z kultivačního média izoluje.
VYNÁLEZU
2. Způsob podle bodu 1, vyznačující -se tím, že se 19-epi-dianemycin izoluje.
3. Způsob podle bodu 2, vyznačující se tím, že se jako zdroje uhlíku užije glukózy.
4. Způsob podle bodu 3, vyznačující se tím, že se 19-epi-dianemycin izoluje etxrakcí živného prostředí methylisobutylketonem.
CS841067A 1983-02-15 1984-02-15 19-epi-dianemycine production method CS238399B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US46646883A 1983-02-15 1983-02-15

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS106784A2 CS106784A2 (en) 1984-12-14
CS238399B2 true CS238399B2 (en) 1985-11-13

Family

ID=23851872

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS841067A CS238399B2 (en) 1983-02-15 1984-02-15 19-epi-dianemycine production method

Country Status (28)

Country Link
EP (1) EP0117107B1 (cs)
JP (2) JPS59224691A (cs)
KR (1) KR870001147B1 (cs)
AT (1) ATE36339T1 (cs)
AU (2) AU547035B2 (cs)
CA (1) CA1214414A (cs)
CS (1) CS238399B2 (cs)
DD (1) DD220336A5 (cs)
DE (1) DE3473277D1 (cs)
DK (1) DK159320C (cs)
EG (1) EG16996A (cs)
ES (1) ES8505381A1 (cs)
FI (1) FI77263C (cs)
GR (1) GR81785B (cs)
GT (1) GT198400008A (cs)
HU (1) HU192536B (cs)
IE (1) IE56789B1 (cs)
IL (1) IL70952A (cs)
MX (1) MX167931B (cs)
NO (1) NO158223C (cs)
NZ (1) NZ207126A (cs)
PH (2) PH21705A (cs)
PL (1) PL144963B1 (cs)
PT (1) PT78078B (cs)
SU (1) SU1296010A3 (cs)
YU (1) YU43340B (cs)
ZA (1) ZA841055B (cs)
ZW (1) ZW1984A1 (cs)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4510317A (en) * 1983-07-28 1985-04-09 Hoffmann-La Roche Inc. Antibiotic X-14934A
JPS6373117U (cs) * 1986-10-30 1988-05-16
KR20230155763A (ko) 2022-05-04 2023-11-13 한국식품연구원 파툴린(Patulin), 디아네마이신(Dianemycin) 또는 아르니콜라이드 D(Arnicolide D)를 포함하는 지질 대사 개선용 조성물

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0048585A1 (en) * 1980-09-16 1982-03-31 Taisho Pharmaceutical Co. Ltd Antibiotics TM-531 B and TM-531 C

Also Published As

Publication number Publication date
PH21674A (en) 1988-01-13
KR870001147B1 (ko) 1987-06-11
MX167931B (es) 1993-04-22
YU43340B (en) 1989-06-30
PT78078A (en) 1984-03-01
ES529755A0 (es) 1985-05-16
IE56789B1 (en) 1991-12-18
ES8505381A1 (es) 1985-05-16
HUT34544A (en) 1985-03-28
PH21705A (en) 1988-01-27
JPS63152392A (ja) 1988-06-24
HU192536B (en) 1987-06-29
FI77263B (fi) 1988-10-31
IL70952A0 (en) 1984-05-31
PL144963B1 (en) 1988-07-30
EP0117107A2 (en) 1984-08-29
GT198400008A (es) 1985-07-12
KR840007604A (ko) 1984-12-08
GR81785B (cs) 1984-12-12
FI77263C (fi) 1989-02-10
DK64784A (da) 1984-08-16
AU584629B2 (en) 1989-06-01
IE840337L (en) 1984-08-15
ZA841055B (en) 1985-09-25
NO158223B (no) 1988-04-25
JPH0159866B2 (cs) 1989-12-20
YU26684A (en) 1986-08-31
DK64784D0 (da) 1984-02-14
FI840590A0 (fi) 1984-02-14
NO840538L (no) 1984-08-16
ATE36339T1 (de) 1988-08-15
EP0117107A3 (en) 1985-11-27
AU4628785A (en) 1985-11-28
AU2457284A (en) 1984-08-23
JPS6259115B2 (cs) 1987-12-09
EG16996A (en) 1993-07-30
JPS59224691A (ja) 1984-12-17
PL246205A1 (en) 1986-04-22
DK159320C (da) 1991-03-04
ZW1984A1 (en) 1984-05-30
AU547035B2 (en) 1985-10-03
DK159320B (da) 1990-10-01
DE3473277D1 (en) 1988-09-15
FI840590A (fi) 1984-08-16
DD220336A5 (de) 1985-03-27
CA1214414A (en) 1986-11-25
EP0117107B1 (en) 1988-08-10
NZ207126A (en) 1986-05-09
CS106784A2 (en) 1984-12-14
PT78078B (en) 1986-06-11
SU1296010A3 (ru) 1987-03-07
IL70952A (en) 1986-11-30
NO158223C (no) 1988-08-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI78732B (fi) Foerfarande foer framstaellning av antibiotika uk-58852, cp-70228 och cp-70828.
US4431801A (en) Polycyclic ether antibiotic
CA1337803C (en) Antibiotic produced by fermentation with amycolatopsis orientalis
US4361649A (en) Polycyclic ether antibiotic
CS238399B2 (en) 19-epi-dianemycine production method
US4533553A (en) Polycyclic ether antibiotic
US4552843A (en) Process for producing an acidic polycyclic ether antibiotic by cultivation of a novel strain of Streptomyces endus subspecies aureus
US4547523A (en) Polyether antibiotic from streptomyces
US4625041A (en) Acidic polycyclic ether antibiotic
US4707493A (en) 19-epi-dianemycin as an anticoccidial and antibacterial agent
AU622557B2 (en) Novel acidic polycyclic ether antibiotics and microorganisms useful in the production thereof
US4652523A (en) Method of preparing a new polyether antibiotic from streptomyces